Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Генетическая обусловленность формирования жизнеспособных гамет у межродовых гибридов злаков

Диссертация: Генетическая обусловленность формирования жизнеспособных гамет у межродовых гибридов злаков
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые были вскрыты цитологические механизмы образования жизнеспособных гамет у пшенично-пырейных полигаплоидов. В мейозе пентаплоидных пшеничнопырейных гибридов АВЕ1Е2Х обнаружено три цитоаномалии, приводящие к нерасхождению хромосом в мейозе. У семи гибридов причиной реституции явилось нерасхождение хромосом в первом делении мейоза. У двух гибридов наблюдали двойную реституцию, при этом… Читать ещё >

Генетическая обусловленность формирования жизнеспособных гамет у межродовых гибридов злаков (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Нередукция числа хромосом в гаметах полигаплоидов и диплоидов
    • 1. 2. Реконструкция генома мягкой пшеницы при отдаленной гибридизации
  • 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Геномная структура пшенично-пырейных гибридов
    • 3. 2. Кариологический анализ пшенично-пырейных гибридов второго поколения
    • 3. 3. Мейоз стерильных пшенично-пырейных полигаплоидов ABDEiE2X, 6х=42 и ABEiE2X, 5х=
    • 3. 4. Мейоз фертильных пшенично-пырейных полигаплоидов ABEiE2X, 5х=
    • 3. 5. Возможности преодоления стерильности межродовых гибридов
    • 3. 6. Нарушение мейотической конъюгации гомологичных хромосом у самоопыленных гибридов Triticum durum Desf. х Agropyron intermedium (Host) Beauv., 5x=
    • 3. 7. Особенности стабилизации кариотипов у гибридов (Triticum aestivum L. х Agropyron intermedium
  • Host) Beauv.) x Triticum aestivum L
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ

Актуальность темы

Отдаленная гибридизация является одним из основных методов преобразования структуры генома у растений. Реконструкция генома мягкой пшеницы с целью обогащения ее генофонда путем интрогрессии чужеродного генетического материала от близких видов злаков давно привлекала внимание многих исследователей. Амфиплоиды и сорта пшеницы, созданные с участием отдаленных гибридов, обладают селекционно-ценными признаками (Шулындин, 1970; Цицин, 1978). Использование биотехнологических методов, позволяющих преодолеть несовместимость, стимулировало работы по созданию новых межвидовых и межродовых гибридов пшеницы (Шумный и др., 1979; Pohler, Clauss, 1984; Mujeeb-Kazi, Bernard, 1985; Marais et al., 1998). Однако высокая стерильность гибридов первого поколения ограничивает возможности отдаленной гибридизации.

Одним из способов восстановления фертильности отдаленных гибридов является перевод их на диплоидный уровень с помощью колхицина. Метод колхицинирования трудоемок и не всегда приводит к успеху, вследствие чего поиск новых подходов, направленных на преодоление стерильности гибридов Fi, остается актуальным и в настоящее время.

Установлено, что жизнеспособные гаметы гибридов первого поколения содержат полный набор хромосом родительских видов (Карпеченко, 1927; Левитский, Бенецкая, 1930; Muntzing, 1939; Sharma, Gill, 1983; Mujeeb-Kazi et al., 1996), а гибридные комбинации различаются по фертильности растений, что позволило высказать предположение о генетической обусловленности образования жизнеспособных гамет (Вакар, 1935; 1938;

Wagenaar, 1968aMaan, Sasakuma, 1977; Shchapova et al., 1985; Xu, Joppa, 1995).

Несмотря на проведенные исследования по изучению формирования фертильных гамет в отдельных гибридных комбинациях (Щапова и др., 1987; Орлова, 1988; Wagenaar, 1968аIslam, Shepherd, 1980), цитогенетические механизмы мейотической реституции у отдаленных гибридов остаются недостаточно выясненными. Более того, сложилось представление, что это редкий феномен, который иногда происходит в отдельных гибридных комбинациях. В связи с этим необходимо проведение комплексного исследования по выяснению цитологических механизмов и генетической природы образования реституционных ядер в мейозе полигаплоидов. На важность этой проблемы в настоящее время указывает все возрастающий интерес к работам по хромосомной инженерии, в которых отдаленная гибридизация играет важную роль. Успех проводимых исследований во многом зависит от решения проблемы преодоления стерильности гибридов первого поколения.

Цель и задачи исследования

Основная цель настоящей работы — изучить цитологические механизмы образования реституционных ядер в мейозе межродовых гибридов и выяснить генетическую природу этого процесса на примере пшенично-пырейных и пшенично-ржаных гибридов. Задачи исследования:

1. Изучить мейоз у пшенично-пырейных и пшенично-ржаных полигаплоидов, применяя индивидуальный подход в исследовании гибридных растений.

2. Выяснить цитологические механизмы, приводящие к образованию гамет с нередуцированным числом хромосом у полигаплоидов.

3. Выяснить возможность отбора генотипов ржи, обеспечивающих фертильность межродовым гибридам первого поколения.

4. Изучить особенности стабилизации кариотипов у пшенично-пырейных гибридов, полученных от самоопыления и беккросса.

Научная новизна и практическая ценность работы.

В данной работе:

Приведены экспериментальные доказательства генетической обусловленности формирования жизнеспособных гамет с нередуцированным числом хромосом у межродовых гибридов.

— Впервые у пшенично-пырейных гибридов выяснены цитологические механизмы, приводящие к реституции. Обнаружено три цитотипа образования реституционных ядер в мейозе, из которых два описаны впервые.

— Обнаружена отрицательная корреляционная зависимость между формированием реституционных ядер и уровнем бивалентного спаривания хромосом.

— Впервые показана возможность отбора генотипов ржи, обеспечивающих образование жизнеспособных гамет у пшенично-ржаных полигаплоидов.

— Показано, что бивалентное спаривание гомеологов у пшенично-пырейных полигаплоидов определяется генотипом гибридного растения, вследствие чего уровень гомеологичной конъюгации хромосом не является надежным критерием родственности геномов этих видов злаков.

— Впервые показано, что гены Ph, обуславливающие низкий уровень гомеологичной конъюгации хромосом в мейозе фертильных пшенично-пырейных полигаплоидов 5х=35, оказывают существенное влияние на процесс стабилизации кариотипов в последующих поколениях, снижая уровень плоидности вследствие асинапсиса гомологов.

Проведена цитологическая идентификация хромосом Agropyron intermedium (Host) Beauv. с использованием С-метода дифференциального окрашивания хромосом по.

Гимза и показано, что процесс стабилизации кариотипов у пшенично-пырейных гибридов приводит к формированию октоплоидных форм с комбинированным геномом пырея.

В результате проведенного. исследования внесен существенный вклад в решение одной из важных проблем отдаленной гибридизации растений — преодоление стерильности у межродовых гибридов первого поколения. Созданная коллекция пшенично-пырейных амфиплоидов на основе Triticum durum Desf. и Triticum aestivum L., различающихся по уровню плоидности и набору хромосом пырея, представляет интерес при проведении цитогенетических и молекулярно-генетических исследований. Использование популяции ржи, полученной в результате отбора генотипов, обуславливающих нерасхождение хромосом в мейозе пшенично-ржаных полигаплоидов, позволит значительно увеличить частоту фертильных гибридов Fi.

Апробация работы. Основные результаты работы были доложены на V съезде ВОГиС (Москва, 1987) — на конференции «Частная генетика растений» (Киев, 1989) — на симпозиуме «Актуальные проблемы цитогенетики злаковых культур» (Таллин, 1989) — 8 на II Всесоюзном совещании по кариологии растений (Новосибирск, 1989) — на Международной конференции «Проблемы интродукции растений и отдаленной гибридизации» (Москва, 1998) — на отчетных сессиях Института цитологии и генетики СО РАН.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 16 работ.

Структура и объем работы. .Диссертация включает введение, обзор литературы, описание материала и методов исследования, изложение экспериментальных данных, обсуждение результатов исследования, общее заключение, выводы и список литературы (232 наименования). Работа изложена на 192 страницах машинописного текста, содержит 35 таблиц и 32 рисунка.

ВЫВОДЫ.

1. В результате проведенных исследований пшенично-пырейных и пшенично-ржаных гибридов получены экспериментальные доказательства генетической обусловленности формирования жизнеспособных гамет с нередуцированным числом хромосом: а) высокая частота МКП с реституционными ядрами у фертильных гибридовб) идентичность цитологических картин и количественных характеристик при повторном анализе гибридовв) отбор генотипов, обеспечивающих реституцию.

2. Впервые у пшенично-пырейных полигаплоидов установлены цитологические механизмы образования фертильных гамет. Обнаружено три цитотипа, приводящие к нерасхождению хромосом в мейозе. Детальное описание двух цитоаномалий приведено впервые.

3. Обнаружена зависимость между уровнем гомеологичной конъюгации хромосом и частотой встречаемости реституционных ядер. Показано, что образование жизнеспособных гамет с нередуцированным числом хромосом происходит у полигаплоидов с низким уровнем бивалентного спаривания хромосом.

4. Впервые показана возможность отбора генотипов ржи, обеспечивающих образование жизнеспособных гамет с нередуцированным числом хромосом у пшенично-ржаных гибридов.

5. Показано, что уровень мейотического спаривания гомеологичных хромосом у пшенично-пырейных полигаплоидов зависит от генотипа гибридного растения. Полученные экспериментальные данные подтверждают высказанное ранее заключение, что у пшенично-пырейных полигаплоидов в конъюгации хромосом основное значение имеет не структурное родство их геномов, а гены,.

163 контролирующие этот признак, вследствие чего уровень гомеологичной конъюгации хромосом не может служить надежным критерием гомологии их геномов.

6. Впервые вскрыты особенности стабилизации кариотипов у самоопыленных гибридов Triticum durum Desf. х Agropyron intermedium (Host) Beauv. Показано, что нарушение бивалентного спаривания гомологичных хромосом приводит к снижению уровня плоидности.

7. Проведена цитологическая идентификация хромосом пырея Agropyron intermedium (Host) Beauv. с помощью С-метода дифференциального окрашивания и показано, что процесс стабилизации кариотипов (Triticum aestivum L. х Agropyron intermedium (Host) Beauv.) x Triticum aestivum L. направлен на октоплоидный уровень с образованием одного комбинированного генома из трех геномов пырея.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Настоящая работа была направлена на изучение цитогенетических механизмов образования фертильных гамет у межродовых гибридов пшеницы. В работе были изучены пшенично-пырейные и пшенично-ржаные гибриды трех. различных комбинаций скрещивания. Поведение хромосом в мейозе анализировалось у каждого гибридного растения в отдельности.

В результате проведенных исследований показано, что фертильные и стерильные полигаплоиды изученных комбинаций скрещивания различаются по характеру протекания мейотического деления. У фертильных растений с высокой частотой наблюдали образование реституционных ядер в мейотическом делении. Так, фертильные гибриды АВЭИ имели в среднем 1б, 8 9±3,87% МКП с реституционными ядрами, в то время как у стерильных их число составило 2,95±0,38% (Р<0,001). Гибриды, у которых обнаружена реституция в мейозе, формировали фертильную пыльцу. Гибриды с высокой частотой клеток с реституционными ядрами завязывали зерна от самоопыления и беккросса.

Впервые были вскрыты цитологические механизмы образования жизнеспособных гамет у пшенично-пырейных полигаплоидов. В мейозе пентаплоидных пшеничнопырейных гибридов АВЕ1Е2Х обнаружено три цитоаномалии, приводящие к нерасхождению хромосом в мейозе. У семи гибридов причиной реституции явилось нерасхождение хромосом в первом делении мейоза. У двух гибридов наблюдали двойную реституцию, при этом цитологические картины полного нерасхождения хромосом в мейозе были различными. У одного растения наблюдали одно первое деление, но в А1 униваленты к полюсам не отходили. У второго — мейоз был заблокирован в профазе первого деления. Детальное описание этих цитоаномалий приведено впервые.

У пшенично-ржаных полигаплоидов обнаружено два цитотипа, приводящих к нерасхождению хромосом в мейозе: нерасхождение унивалентов к полюсам в А1 и неравное распределение унивалентов между полюсами в А1.

Высокая частота клеток с реституционными ядрами у фертильных полигаплоидов, идентичность цитологических механизмов реституции и количественных характеристик у многолетних пшенично-пырейных полигаплоидов свидетельствует о генетической обусловленности этого признака. Показано, что степень выраженности признака (нерасхождение хромосом) зависит от генотипа гибридного растения.

Впервые была предпринята попытка отбора генотипов ржи, способствующих образованию фертильных гамет у межродовых гибридов. Скрещиванием пшеницы с индивидуальными растениями ржи показано, что не все генотипы ржи приводят к нерасхождению хромосом в мейозе у полигаплоидов.

Используя для опыления пшеницы растение ржи (популяция № 2), от скрещивания с которым был получен фертильный полигаплоид с высокой частотой клеток с реституционными ядрами, удалось увеличить число фертильных полигаплоидов почти в три раза.

Следовательно, было показано, что один из путей преодоления стерильности межродовых гибридов — это отбор генотипов, обеспечивающих нерасхождение хромосом в мейозе полигаплоидов и создание на их основе популяции с высокой частотой генов нерасхождения.

Таким образом, получены убедительные доказательства того, что формирование жизнеспособных гамет у межродовых гибридов пшеницы генетически контролируемый признак.

Обнаружена корреляционная зависимость между нерасхождением и гомеологичным спариванием хромосом. Оказалось, что чем выше частота встречаемости клеток с реституционными ядрами, тем ниже уровень гомеологичной конъюгации хромосом (г=-0,78). Вследствие этого через фертильные гаметы полигаплоидов происходил отбор генов Р1″ 1, которые супрессировали спаривание хромосом в мейозе. Это оказало существенное влияние на стабилизацию кариотипов у самоопыленных гибридов АВЕ1Е2Х.

Данная комбинация скрещивания оказалась уникальной в том смысле, что жизнеспособными оказались гаметы с высоким уровнем анеуплоидии. Во втором поколении у гибридов обнаружены кариотипы с числом хромосом от 50 до 70. Кроме того, в Е2−4 поколениях этих гибридов обнаружено нарушение конъюгации гомологичных хромосом, которое вызвано, как мы полагаем, не только анеуплоидией, но и супрессирующим эффектом РЬ. генов.

Асинапсис гомологов привел к снижению уровня плоидности у гибридов данной комбинации скрещивания. Стабилизация их кариотипов, помимо декаплоидного, была направлена на октоплоидный и гексаплоидный уровни.

У гексаплоидных пшенично-пырейных полигаплоидов уровень анеуплоидии в гаметах был низким. Стабилизация кариотипов у гибридов ААВВББЕхЕгХ, полученных от однократного беккроссирования полигаплоидов АВБЕхЕгХ пшеницей, в 88% случаев направлена на октоплоидный уровень.

Для выяснения хромосомного состава пырейного генома у октоплоидных форм ППГ была проведена цитологическая идентификация хромосом пырея с помощью С-метода дифференциального окрашивания хромосом по Гимза. В кариотипе пырея было выделено тринадцать пар хромосом с теломерными и интеркалярными блоками гетерохроматина и восемь пар хромосом без блоков.

Показано, что кариотипы амфиплоидов Г45 содержат различное число хромосом пырея с гетерохроматиновыми блоками. Шестнадцать проанализированных кариотипов имели индивидуальный набор из хромосом пырея с блоками гетерохроматина.

Согласно полученным результатам, формирование генома пырея происходило не по геномному принципу, а путем межгеномного замещения хромосом. Вновь сформированный геном пырея у октоплоидных форм включал гомеологи всех трех его геномов.

В связи с современными данными по генетической регуляции конъюгации хромосом в мейозе пересмотрены существующие представления относительно бивалентного спаривания хромосом у пшенично-пырейных полигаплоидов. В обеих комбинациях скрещивания независимо от внешних условий обнаружен широкий размах изменчивости по этому признаку и достоверные различия между растениями. Повторный анализ подтвердил генетический контроль спаривания гомеологов.

Таким образом, установлено, что образование жизнеспособных гамет у межродовых гибридов генетически обусловленный признак. Вскрыты цитологические механизмы реституции у полигаплоидов и показана возможность отбора генотипов, приводящих к нерасхождению хромосом в мейозе. Показано, что.

161 целесообразен отбор генотипов среди родительских видов, участвующих в скрещивании, а также отбор полигаплоидов с фертильной пыльцой. Таким путем можно увеличить частоту фертильных гибридных растений и, тем самым, эффективность метода отдаленной гибридизации. Установлено, что гомеологичная конъюгация хромосом у пшенично-пырейных полигаплоидов определяется генотипом гибридного растения. Обнаружена отрицательная корреляционная зависимость между спариванием гомеологов и образованием МКП с реституционными ядрами. Обнаружено, что стабилизация кариотипов у самоопыленных гибридов АВЕ1Е2Х на трех уровнях плоидности происходит вследствие нарушения мейотического спаривания гомологичных хромосом. Асинапсис гомологов является следствием отбора генов РЪ. с супрессирующим эффектом через фертильные гаметы полигаплоидов. Преобразование геномной структуры у пшенично-пырейных гибридов происходило в результате межхромосомного замещения, в связи с чем геном пырея у октоплоидных амфиплоидов представляет сочетание хромосом из трех его геномов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Х.С., Ячевская Г. Л., Переладова Т. П. Изучение геномной структуры Agropyron intermedium (Host)Beauv.//Цитология и генетика. 1989. Т.23. С.15−22.
  2. Н.С., Бадаева Е. Д., Большева Н. Л., Зеленин А. В. Идентификация хромосом А- и D-геномов пшеницы с использованием замещений и перестроек между гомеологами у пшеницы и тритикале.//Докл.Акад.наук СССР. 1983. Т.273. С.994−996.
  3. Е.Д., Бадаев Н. С., Энно Т. М., Целлер Ф. Й. Замещения хромосом в потомстве гибридов Triticum aestivum х Т.timopheevii, устойчивых к бурой ржавчине и мучнистой росе. //Генетика. 1995. Т.31. С.89−92.
  4. Е.Д. Молекулярно-цитогенетическое изучение хромосомного полиморфизма Aegilops crassa.//Генетика. 1997. Т.33. С.635−643.
  5. Н. Я. Мейотическая мутация «Нередуцированные гаметы» у сахарной свеклы. //В кн: Цитогенетика сельскохозяйственных растений. 1989. Новосибирск. С. 1825.
  6. . А. Цитология пшенично-пырейных гибридов //Омск. 1935. 64 с.
  7. . А. Цитологическое исследование Tr.vulgare х A.glaucum.//Сер.биол.изд. АН СССР. 1938. Москва. С.597−62 6.
  8. Х.С., Ячевская Г. Л., Поляков. Изучение геномной структуры двух форм неполных пшенично-пырейных амфиплоидов (2п=56). //Генетика. 1994. Т.30. С.244−249.
  9. Г. Р. Геномный анализ пшенично-пырейных гибридов // Цитология. 1965. Т. 7. N 6. С. 734−737.
  10. И.Н., Ситникова Д. В. Три мейотические мутации, нарушающие расхождение хромосом в первом делении. //Генетика. 1980. Т.16. С.656−666.
  11. И.Н. Цитогенетический анализ неполных пшенично-пырейных амфидиплоидов (НППА) 2п=56 '//В кн: Цитогенетика гибридов, мутаций и эволюция кариотипа. // Новосибирск. 1977. С. 36−58.
  12. И.Н. Двойные мей-мутанты кукурузы и закономерности генного контроля мейоза. // Генетика. 1988. Т.24. С.1649−1657
  13. И.Н. Мейоз и гены. //В кн: Российская наука. Выстоять и возродиться.(Международный научный фонд. Российский фонд фундаментальных исследований). Москва. 1997. С.25−285.
  14. Г. Д. Полиплоидные гибриды Raphanus sativus L. х Brassica oleracea L. // Труды по прикл. -ботанике, генетике и селекции. 1927. № 17. Вып.З. С.305−410.
  15. JI.А., Щапова А. И. Хромосомный состав жизнеспособных гамет пшенично-ржаных гибридов Fi.//B кн: Цитогенетические аспкты генетики и селекции растений. 1991. Новосибирск. С.11−22.
  16. Г. А., Бенецкая Г. К. Цитологическое исследование константно-промежуточных ржано-пшеничных гибридов.//Тр.Всесоюзн. съезда генетики, селекции, семеноводства и плем. животноводства. Ленинград. 1930. Т.2. С. 345−349.
  17. В.Ф. Цитогенетические механизмы развития формообразовательного процесса у пшенично-пырейных гибридов в зависимости от геномной структуры пырея, участвующего в скрещивании.//В кн.: Проблемы отдаленной гибридизации. 1979. С.34−66.
  18. Э.Н. Мейотическая мутация диплоидной сахарной свеклы, приводящая к образованию нередуцированных гамет. //В кн: Индуцированный мутагенез и апомиксис. 1980. Новосибирск. С.102−107.
  19. О.М., Першина Л. А., Белова Л. И., Девяткина Э. П. Возможности восстановления фертильности у ячменно-пшеничных гибридов. //В кн: Особенности реконструкции генома и популяций высших растений. Новосибирск. 1993. С.49−63.
  20. И. Н. Цитологические механизмы образования диплоидных микроспор у гибридов злаков. //Цитология. 1988. Т.30. С.943−947.
  21. JI.A., Шумный В. К., Белова Л. И., Нумерова О. М. Межвидовая и межродовая гибридизация дикорастущего ячменя (Hordeum geniculatum All.). //Цитология и генетика. 1985. Т.9. С.492−433.
  22. Л.А., Шумный В. К., Нумерова О. М., Белова Л. И. Потомки ячменно-пшеничных гибридов Н.vulgare L. х T. aestivum L. от возвратных скрещиваний с пшеницей. //Цитология и генетика. 1987. Т.21. С.274−277.
  23. Т.А., Щапова А. И. Дифференциальная окраска хромосом пырея сизого. // Цитология. 1983. Т.XXV. С. 1423−1426.
  24. Т.А. Геномная структура 56 хромосомных пшенично-пырейных гибридов. //В кн.:Младежка конференция по генетика'84. София. 1985. С.71−75.
  25. Т.А. Преодоление стерильности у пшенично-ржаных гибридов первого поколения // Тезисы докл. 5-госъезда Всесоюзного общества генетиков и селекционеров имени Н. И. Вавилова. Москва. 1987. Т. 4. С. 144−145.
  26. Т. А. Генетическая регуляция конъюгации хромосом у пшенично-пырейных гибридов // Цитогенетика сельскохозяйственных растений. Новосибирск: ИЦиГ СО АН СССР. 1989а. С. 67−85.
  27. Т.А. Особенности мейоза фертильных пшенично-пырейных полигаплоидов // Тезисы докл. Всесоюзн. конф. «Частная генетика растений». Киев. 19 896. Т.2. С. 33−34.
  28. Потапова' Т.А., Щапова А. И. Мейоз у фертильных пшенично-пырейных полигаплоидов // Цитология. 1989. Т. 31. № 1. С. 108−110.
  29. Т.А., Щапова А. И., Кравцова JI.A. Преодоление стерильности межродовых гибридов. //В кн.: Характеристика гейома некоторых видов сельскохозяйственных растений. 1990. Новосибирск. С.170−178.
  30. Т.А., Щапова А. И. Стабилизация' кариотипов у пшенично-пырейных гибридов // Цитогенетические аспекты генетики и селекции растений. Новосибирск: ИЦиГ СО АН СССР. 1991. С. 22−36. '
  31. Т.А., Щапова А. И. 'Особенности стабилизации кариотипов пшенично-пырейных гибридов. //Тез. ДоклПроблемы эволюционной цитогенетики, селекции и интродукции/7, Томск. 1997. С. 45−4 6.
  32. Т.А., Щапова А. И. Генетическое разнообразие нерасхождения хромосом у отдаленных гибридов. //Тез.докл. Международной конф."Проблемы интродукции растений и отдаленной гибридизации." Москва. 1998. С.407−408.
  33. .В. Различия генотипов мягкой пшеницы по способности скрещиваться с рожью.//Сб.науч.тр.по прикл. ботанике, генетике и селекции ВНИИ растениеводства.1986. Т.99. С.39−42.
  34. П.Ф. Биологическая статистика. Минск. 1973.
  35. JI.A. Гены редукционного деления. // Тр.прикл. бот., ген., сел. 1933. Сер. II. № 5. С.5−75.
  36. В.И., Семенова Е. В., Любимова В. Ф. Дифференциальная окраска хромосом некоторых многолетних пшениц.//В кн.:Проблемы отдаленной гибридизации. М.: Наука. 1979. С. 85−93.
  37. Е.В., Семенова В. И. Введение мей-гена phi в 5б-хромосомные неполные пшенично-пырейные амфидиплоиды. //Тез.докл. Международной конференции. «Проблемы интродукции и отдаленной гибридизации». Москва. 1998. С.71−74.
  38. М.И. Роль отдельных хромосом пырея в наследовании хозяйственно-полезных признаков у пшенично-пырейных гибридов // Всесоюзное совещание по отдаленной гибридизации растений и животных: Тез. докл. -М.: ВАСХНИЛ. 1981. С. 157−159.
  39. Н.П., Петухов С. Н. Особенности микроспорогенеза у диплоидных форм картофеля в связи с формированием нередуцированной пыльцы. // Генетика.1987. Т.22. С.1622−1629.
  40. В.Г., Соснихина С. П. Генетика ржи // Ленинград. 1984. 264 с.
  41. С.П., Смирнов В. Г., Забирова Э. Р. Генетический контроль поведения хромосом в мейозе у инбредной линии диплоидной ржи (Secale cereale L.). Сообщение IV. Деление в тетрадах.//Генетика. 1980. Т.XVI. С.677−684.
  42. С.П., Федотова Ю. С., Смирнов В. Г., Михайлова Е. И., Богданов Ю. Ф. Изучение генетического контроля мейоза у ржи. //Генетика. 1994. Т.30. С.1043−1056.
  43. П.И. Изучение кариотипов некоторых форм трехвидовых тритикале с помощью метода дифференциальнойокраски хромосом. //Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. 197 9. Вып.2. С. 7 9−85.
  44. П .И., Щапова А. И. Обнаружение хромосом ржи в кариотипе мягкой пшеницы Мироновская 10 методом дифференциальной окраски. //Изв.СО АН СССР. Сер.биол. наук. 1978. Вып.1. С.71−75.
  45. И.А. Дифференциальная окраска метафазных хромосом ржи. //Вест. Ленинг. ун-та. 1974. Т.21. С.131−134.
  46. H.H. Злаки СССР. 1976. Ленинград.
  47. Н.В. Многолетняя пшеница. М.: Наука. 1978. 287 с.
  48. Н.В. Проблемы отдаленной гибридизации. //М.: Наука. 1979. 279 с.
  49. Н.В., Голубовская И. Н. Контроль формирования и функции митотического аппарата.//Цитология и генетика. 1981. № 1. С.77−87.
  50. Н.В., Козырева С. Е. Аномалии веретена деления, приводящие к формированию реституционных ядер в мейозе пшенично-ржаного гибрида. // Цитология. 1995. Т.37. С.775−783.
  51. Ф.М., Калинина Н. П., Усова Т. К., Богдевич И. Н. Цитологическое изучение пшенично-ржаных гибридов Fi.//Генетика. 1986. Т.22. С.2126−2134.
  52. Т.М. Индукция гомеологичной конъюгации хромосом у пшенично-ржаных гибридов, полученных с участием мутанта рИ.//Генетика. 1985. Т.21. С.288−294.
  53. А.Ф. Синтез трехвидовых пшенично-ржаных амфиплоидов.//Генетика. 1970. Т.6. № 6. С.23−35.
  54. А.И. Дифференциальная окраска хромосом растений. //В кн.: Половой процесс и эмбриогенез растений. Москва. 1973. С. 280.
  55. А.И. Дифференциальная окраска хромосом по Гимза и перспективы использования этого метода в цитогенетике растений.//В кн.: Цитогенетика гибридов, мутаций и, эволюция кариотипа. Новосибирск. 1977.С.213−231.
  56. А.И., Зарипова 3. Кариологический анализ пшенично-ржаных гексаплоидных гибридов Тг11:1са1е ААВВЯЯ х Тг1±1сит аеБ1:^ит Ь. ААВВБВ.//С.-х. биология, 1984. N 10. С. 92−94.
  57. А.И., Потапова Т. А., Кравцова Л. А. Причины отсутствия редукции числа хромосом в гаметах пшенично-ржаных полигаплоидов.//Цитология. 1987. Т. 29. N 7. С. 838−840.
  58. А.И., Потапова Т. А., Кравцова Л. А. Генетическая обусловленность нерасхождения хромосом в мейозе пшенично-ржаных полигаплоидов.//Генетика. 1987а. Т. 23. № 3. С. 473−481.
  59. А.И., Кравцова Л. А., Потапова Т. А. Стабилизация кариотипов пшенично-ржаных гибридов
  60. AABBDR.//Генетика. 19 876. Т.23, № 2. С. 1222−1229. об. Щапова А. И., Кравцова Л. А., Потапова Т. А. Закономерности преобразований геномной структуры пшенично-ржаных полигаплоидов ABDR.//Генетика. 1987 В. Т.23. № 2. С. 295−302.
  61. А.И., Потапова Т. А. Генетическая обусловленность образования реституционных ядер в мейозе полигаплоидов.//В кн.: Цитогенетика сельскохозяйственных растений. Новосибирск. 1989. С.4−18.
  62. А. И., Дударев А. Н., Гордей Г. М. Мейоз частично-фертильных пшенично-ржаных гибридов. //Цитология. 1989. Т.31. С.592−594.
  63. А.И., Кравцова Л. А. Цитогенетика пшенично-ржаных гибридов.- Новосибирск. 1990. 164 с.
  64. А.И., Потапова Т. А. Роль генов Ph в рекомбинации и фертильности полигаплоидов.//В кн: Генетика хозяйственно-ценных признаков высших растений. Новосибирск. 1990. С.108−117.
  65. А. И., Потапова Т. А., Рехметулин P.M. Цитологическое изучение мейоза пшенично-ржаных гибридов разных комбинаций скрещивания.//В кн.: Генетические основы признаков продуктивности растений. Новосибирск. 1992. С.122−127.
  66. А.И., Потапова Т. А., Кравцова Л. А. Реконструкция генома гексаплоидной пшеницы с помощью межродового замещения хромосом.//В кн.: Особенности реконструкции генома и популяций высших растений. Новосибирск. 1993. С.37−49.
  67. А.И., Потапова Т. А., Кравцова Л. А. Роль генотипа ржи в постгамной несовместимости и фертильности пшенично-ржаных гибридов.//Генетика. 1994. Т.30. С.373−376.
  68. А.И., Силкова О. Г., Кравцова Л. А. Тип деления унивалентных хромосом и его генетическая обусловленность. // Генетика. 1990. Т.26. С. 292−303.
  69. А. И., Силкова О. Г., Кравцова Л. А. Роль хромосом пятой гомеологичной группы пшеницы и ржи в регуляции эквационного деления унивалентов. // Генетика. 1995. Т.31. С.390−395.
  70. А.И., Кравцова Л. А., Потапова Т. А., Силкова О. Г. Роль хромосом ржи в генетическом контроле эквационного деления унивалентов. //Генетика. 1998. Т.34. С.1168−1170.
  71. В.П., Ячевская Г. Л. Изучение конъюгации хромосом у гибридов Fi от скрещивания Triticum aestivum (2п=42) с Agropyron intermedium (Host) Beauv. //Сб.науч.тр.НИИ Нечерноземн. Зоны. 1978. № 44. С.57−67.
  72. Г. Л. Уточнение генетической структуры неполных пшенично-пырейных амфидиплоидов (2п=56). //Совершенствование селекционно-генетических методов при выведении сортов зерновых и кормовых культур для Нечерноземья. М.:Колос. 1984. С. 94−102.
  73. Aragon-Alcaide L., Reader S., Miller Т., Moore G. Centromeric behaviour in wheat with high and low homoeologous chromosomal pairing. //Chromosoma. 1997, V.106. P.327−333.
  74. Avivi L. The effect of genes controlling different degrees of homoeologous pairing on quadrivalent frequency in induced autotetraploid lines of
  75. Triticum longissimum. // Can. J. Genet. Cytol. 1976. V. 18.. P. 357- 364.
  76. Badaev N.S., Badaeva E.D., Bolsheva N.L., Maximov N.G., Zelenin A.N. Cytogenetic investigation of hybrids produced by crossing of hexaploid Triticale with common wheat. //Theor. Appl. Genet. 1985. V.70. P.536−541.
  77. Badaeva E.D., Budashkina E.B., Badaev N.s., Kalinina N.P., Shkutina F.M. General features of chromosomes substitution in Triticum aestivum x T. timopheevii hybrids. //Theor. Appl. Genet. 1991. V.82. P.227−233.
  78. Badaeva E.D., Friebe B., Gill B.S. Genome differentiation in Aegilops. 1. Distribution of highly repetitive DNA sequences on chromosomes of diploid species. //Genome. 1996. V.39. P.293−306.
  79. Banks P.M., Xu S.J., Wang R.R.C., Larkin P.J. Vaying chromosome composition of 56-chromosome wheat-Thinopyrum intermedium partial amphiploids. //Genome. 1993. V.36. C.207−215.
  80. Berzonsky. W.A., Clements R.L., Lafever H.N. Identification of «Amigo» and «Kavkaz» translocation in Ohiosoft red winter wheats (Triticum aestivum L.). //Theor. Appl. Genet. 1991. V.81. P.629−634.
  81. Bijrol J.S., Sharma T.R. Triticum aestivum-Triticum araraticum hybrids and their cytology.//Wheat Inf.Serv. 1995. № 81. P.20−21.
  82. Cai X., Jones S.S., Murray T.D. Characterization of an Agropyron elongatume chromosome conferring resistance to cephalosporium stripe in common wheat. //Genome 1996. V.39. P.56−62.
  83. Carroll C.P., Borrill M. Tetraploid hybrids from crosses between diploid and tetraploid Dactylis and Their significance.//Genetica. 1965. V.36. P.65−81.
  84. Ceoloni C., Strans J., Feldman M. Effect of different doses of group 2 chromosomes in intergeneric wheat hybrids. // Canad. J. Genet. Cytol. 1986. V.28. 240−246.
  85. Charpentier A., Feldman M., Cauderon J. Chromosomal pairing of meiosis of Fx hybrid and backcross derivatives of Triticum aestivum x hexaploid Agropyron junceum. // Can. J. Genet. Cytol. 1986. V.28. P.1−6.
  86. Chen P.D., Tsujimoto H., Gill B.S. Transfer of Ph1 genes promoting homoe°Logous pairing from Triticum speltoides to common wheat. //Theor. Appl. Genet. 1994. V. 88. P.97−101.
  87. Conicella C., Genualdo G., Errico A., Frusciante L., Monti L.M. Meiotic restitution mechanisms and 2n pollen formation in a Solanum tuberosum dihaploid and in dihaploid x wild species hybrids. //Plant Breeding.1996. V.115. P.157−161.
  88. Cunado N., Cermeno M.C., Orellana J. Introductions between wheat, rye and Aeqilops ventricosa chromosomes on homologous and homoeologous pairing. // Heredity. 1986. V. 56. P.219−226.
  89. Darvey N.L., Gustafson J. P. Identification of rye chromosomes in wheat-rye addition lines and Triticale by heterochromatin bands.//Crop.Sci. 1975. V.15. P.239−243.
  90. Dover G.A., Riley R. Variation at two loci affecting homoeologous meiotic chromosome pairing in Triticum aestivum x Aegilops mutica hybrids. // Nature. 1972. V. 235. P. 61−62.
  91. Driscoll C.J. Genetic suppression of homoeologous chromosome pairing in hexaploid wheat. // Can. J. Genet.Cytol. 1972. V.14. P. 39−42.
  92. Dvorak J. The cytogenetic structure of a 56-chromosome derivative from a cross between Triticum aestivum and Agropyron elongatum (2n=70). // Can. J. Genet. 1976. V.18. P.271−279.
  93. Dvorak J. Effect of rye on homoeologous chromosome pairing in wheat x rye hybrids. // Can. J. Genet. Cytol. 1977. V.19. P. 549−556.
  94. Dvorak J. Homoeology between Agropyron elongatum chromosomes, and Triticum aestivum chromosomes // Can. J. Genet. Cytol. 1980. V. 22. P. 237−259.
  95. Dvorak J, Chromosome differentiation in polyploid spe>cies of Elytrigia with special reference to the evolution of diploid-like chromosome pairing in polyploid species. // Can.J.Genet.Cytol. 1981. V.23. P.287−303.
  96. Dvorak J. Chromosomal distribution of genes in diploid- Elytrigia elongata that promote or suppresspairing of wheat homoeologous chromosomes. //Genome. 1987. V.29. P.34−40.
  97. Eenink A.H. Matromorphy in Brassica oleracea L. Vll. recearch on products of microsporogenesis and gametogenesis from prickle pollinated plants. //Euphytica. 1975. V.24. P.45−52.
  98. Evans L.E. Genome construction within the Triticinae. l. The synthesis of hexaploid (2n=42) having chromosomes of Agropyron and Aegilops in addition to the A and B genomes of Triticum durum // Can. J. Genet. Cytol. 1964. V. 6. P. 19−28.
  99. Fedak G., Armstrong K.C. Intergeneric hybrids between Secale cereale (2x) and Thinopyrum intermedium (6x). //Can. J. Genet. Cytol. 1986. V.28. P.426−429.
  100. Fedak G., Jui P.Y. Chromosomes Chinese Spring wheat carrying genes for crossability with Berzes barley. //Can. J. Genet. Cytol. 1982. V.24. P.227−233.
  101. Feldman M. The effect of chromosome 5B, 5D and 5A on chromosomal pairing in Triticum aestivum.// Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1966. V.55. P.1447−1453.
  102. Feldman M., Mello-Sampayo T. Suppression of homoeologous pairing in hybrids of poliploid wheats x Triticum speltoides. // Can. J. Genet. Cytol. 1967. V.9. P.307−313.
  103. Forster B.P., Miller T.E. A 5b deficient hybrid between Triticum aestivum and Agropyron junceum. //Cereal. Rec. Comm. 1985. V.13. P.93−95.
  104. Friebe B., Mukai Y., Gill B.S., Cauderon J. C-banding and in situ hybridization analyses of Agropyron intermedium amphiploid and six derived chromosome addition lines. //Theor. Appl. Genet. 1992a. V.84. P.899−905.
  105. Friebe B., Zeller F.J., Mukai Y., Foster B.P., Bartol P., Mcintosh R.A. Characterization of rust-resistant wheat-Agropyron intermedium derivatives by C-banding in situ hybridization and isozyme analysis. //Theor. Appl. Genet. 1992b. V.83. P.775−782.
  106. Gaul H.A. A critical survey of genome analysis //Proc. I Intern. Wheat Genet. Symp. (1958). Winnipeg. Canada 1959. P. 194- 206.
  107. Gill B.S., Lam-Morgan L.N.W., Shepard J.F. An apparent meiotic mutation in a mesophyll cell protoclone of the Russet Burbank potato. //J.Heredity. 1985. V. 7 6. P.17−20.
  108. Giorgi B., Barbera F. Increase of homoeologous pairing in hybrids between T. turdigum L.var.durum and two tetraploid species of Aegilops: Ae. kotschyi and Ae.cylindrica. //Cereal. Rec. Comm. 1981. V.9. P.205−211.
  109. Gupta P.K. Homoeologous relationship between wheat and rye chromosomes. Present status. // Genetica. 1971.V.42. P.199−213.
  110. Gupta P.K., Fedak G. The inheritance of genetic variation in rye (Secale cereale) affecting homologous chromosome pairing in hybrids with bread wheat (Triticum aestivum). //Can.J.Genet.Cytol. 1986. V.28. P.844−851.
  111. Gupta P.K., Fedak G. Segregation in the pollen of F2 rye (Secale cereale) plants for induction of homoeologous chromosome pairing in hybrids with wheat (Triticum aestivum). //Genome. 1987. V.29. P.888−891.
  112. Gustafson J.P., Krolov K.D. A tentative identification of chromosomes present in tetraploid triticale based on heterochromatic banding patterns. //Can.J.Genet.Cytol., 1978. V.20. P.199−204.
  113. Hoglund M. Meiosis in Solanum phureja. //Hereditas. 1970. V.66. P.183−188.
  114. Hohmann U., Krolow K-W. Introduction of D-genome chromosomes from Aegilops squarrosa L. into tetraploid triticale (AB) (AB)RR (2n=28) .//Theor. Appl. Genet.1991. V. 82. C.777−783.
  115. Jahier J., Tanguy A.M. Cytological characterization of the Aegilops ventricosa chromosome 6MV added to wheat. //EWAC NEWSLETTER. 1998.(Proceeding of the 10th EWAC meeting. Viterbo. Italy). P.62−64.
  116. Jenkins B.C. Secale additions and substitutionsjto common wheat. //Hereditas. 1966. V.2. P.301−312.
  117. Johnston S.A., Ruhde R.W., Ehlenfeldt M.K., Hanneman R.E. Inheritance and microsporogenesis of a synapticmutant (sy-2) from Solanum commersonii Dun.
  118. Can.J.Genet.Cytol. 1986. V.28. P.520−525.
  119. Jung C., Lelley T., Robbelen G. Genetic interactions between wheat and rye genomes in Triticale. 1. Cytological results. // Theor. Appl. Genet. 1985. V.70. P.422−426.
  120. Koba T., Handa T., Shimada T. Efficient production of wheat-barley hybrids and preferential elimination of barley chromosomes.//Theor. Appl. Genet. 1991. V.81. P.285−292.
  121. Koba T., Takumi S., Shimada T. Isolation, identification and characterization of disomic and translocated barley chromosome addition lines of common wheat. //Euphytica 1997. V.97. P.289−296.
  122. Koebner R.M.D., Shephard K.W. Induction of recombination between rye chromosome 1R and wheat chromosomes. // Theor.Appl.Genet. 1985. V.71. P.208−215.
  123. Roller O.L., Zeller F.J. The homoeologous relationships of rye chromosomes 4R and 7R wih wheat chromosomes.//Genet.Res. 1976. V.28.P.117−188.
  124. Konvicka 0. Meiotische mechanismen zur generativen reproduction haploider pflanzen von Antirrbihum ma jus L. //Z.Pflanzenzuchtg. 1977. 78. S.31−44.
  125. Krolov K.D. Selection of 4x Triticale from thecross 6x Triticale x 2x-rye // Triticale studies and breeding. Leningrad. USSR. 1975. P7 114−122.13 6. Lam S-L. Origin and formation of unreduced gametes in the potato. //J Heredity. 1974. V.65. P.175−178.
  126. Landjeva S., Ganeva G. Transfer of Aegilops ovata chromosomes into bread wheat. //EWAC NEWSLETTER.1998.(Proceeding of the 10th EWAC meeting. Viterbo. Italy). P.29−33.
  127. Lelley T. Genetic control of pairing of rye chromosomes in Triticale.//Z. Pflanzenzuchtg. 1975. Bd.75. S.24−29.
  128. Lelley T. Effect of nulli tetrasomic combinations ofuwheat chromosomes on the pairing of rye chromosomes in Triticale. //Z. Pflanzenzuchtg. 1976a. Bd.77. S.89−99.
  129. Lelley T. Induction of homoeologous pairing in wheat by genes of rye suppressing chromosome 5B effect. // Can. J. Genet. Cytol. 1976b. V.18. N. P.485−489.
  130. Lelley T., Larter E.N. Meiotic regulation in Triticale: Interaction of the rye genotype and specific wheat chromosomes on meiotic pairing in the hybrid. // Can. J. Genet. Cytol. 1980. V.22. N.l. P. 1−6.
  131. Lelley T., Mahmoud A.A., Lein V. Genetic and cytology of unreduced gametes in cultivated rye (Secale cereale L.). // Genome. 1987. V. 29. P.635−638.
  132. Love R.M. Suneson C.A. Cytogenetics of certain Triticum-Agropyron hybrids and their fertile derivatives. // Am. J. Bot. 1945. V.32. N.8. P.451−456.
  133. Lu B-R. Dihaploids of Elymus from the interspesific crosses E. dolichatheruS x E. tubeticum and E. brevipes
  134. X E. panormitanus. // Theor. Appl. Genet. 1992. V. 83. P.997−1002.
  135. Lukaszewski A.J. Frequency of 1RS-IAS and 1RS-1BL translocations in Unites States wheats. //Crop Sci. 1990. V.30. P.1151−1153.
  136. Lukaszewski A.J., Apolinarska B. The chromosome constitution of hexaploid winter Triticales.//Canad. J.Genet.Cytol. 1981. V.23. P.281−285.
  137. Lukaszewski A.J., Gustafson J.P. Translocations and modifications of chromosomes in triticale x wheat hybrids. //Theor. Appl. Genet. 1983. V.71. P.742−749.
  138. Maan S.S., Sasakuma T. Fertility of amphihaploids in Triticinae // J. Heredity. 1977. V. 68. N 2. P. 87−94.
  139. Marais G.F., Marais A.S., Badenhorst P.C. Hybridization of Thinopyrum distichum and Secale cereale. //Plant Breeding. 1998. V.117. P.107−111.
  140. May C.E., Appels R. Rye chromosome translocations in hexaploid wheat: A re-evolution of the loss of heterochromatin from rye chromosomes. //Theor. Appl. Genet. 1980. V.56. P.17−23.
  141. McCoy T.J. The inheritance of 2n pollen Formation in diploid alfalfa Medico sativa. //Can.J.Genet.Cytol. 1982. V. 24. P.315−323.
  142. Mello-Sampayo T. Genetic requlation of meiotic chromosome pairing by chromosome 3D of Triticum aestivum. // Nature. New Biol. 1971. V.230. P. 22−23.
  143. A. 0., Peloquin S.J. The significance of 2n gametes in potato breeding.//Theor. Appl. Genet. 1977. V. 49. P.53−61.
  144. Mendiburu A.O., Peloquin S.J. Gene-centromere mapping by 4x-2x matings in potatoes. //Theor. Appl. Genet. 1979. V.54. P.177−180.
  145. Merker A. Chromosome composition of hexaploid triticale.//Hereditas. 1975. V.80. P.41−52.
  146. Merker A., Rogalska S. Additional evidence on spontaneous 1B/1R whaet-rye substitution line.//Cereal Res. Comm. 1984. V.12. P.13−17.
  147. Mettin D., Bluthner W.D., Schlegel G. Additional evidence on spontaneous 1B/1R wheat-rye substitution and translocations. //In:Proc. 4th Inter. Wheat Genet. Symp.1973. Colombia. P.179−184.
  148. Miller T.E., Chapman V. Aneuploids in bread wheat. // Genet. Res. 1976. V.28. N.l. P.37−45.
  149. Miller T.E., Reader S.M., Gale M.D. The effect of homoelogous group 3 chromosome on chromosome pairing and crossability in Triticum aestivum. // Can. J. Genet. Cytol. 1983. V.25 N.6. P. 634−641.
  150. Miller T.E., Reader S.M. The effect of increased dosage of wheat chromosomes on chromosome pairing and analysis of the chiasma frequencies of individual wheat bivalents. // Can. J. Genet. Cytol. 1985. V.27. N.4. P.421−425.
  151. Mok D.W.S., Peloquin S.J. The inheritance of three mechanisms of diplandroid formation in diploid potatoes. //Heredity. 1975a. V.35., P.295−302.
  152. Mok D.W.S., Peloquin S.J. Three mechanisms of 2n pollen formation in diploid potatoes. //Can.J.Genet.Cytol. 1975b. V.17. P.217−225.
  153. Molnar-Lang M., Line G. Identification of the chromosomes of different cereal genomes by genomic in situ hybridization.//EWAC NEWSLETTER. 1998.(Proceeding of the 10 th EWAC meeting. Viterbo. Italy)). P.91−95.
  154. Molnar-Lang M., Line G., Sutka J. Detection of barley chromosomes in wheat-barley hybrids and theirderivaives by genomic in situ hybridization. //Gene Transfer and Regulation. 1998. V.3. P.28−30.
  155. Motsny I.J., Simonenko V.K. The influence of Elymus sibiricus L. genome on the diploidization system of wheat. //Euphytica. 1996. V.91. C.189−193.
  156. Mujeeb-Kazi A., Bernard M. Cytogenetics of intergeneric Elymus canadensis x Triticum aestivum hybrids (n=5x=35, SHABD) and their backcross progenies with T.aestivum. //Z.Pflanzenuchtg. 1985. V.85. P.50−62.
  157. Mujeeb-Kazi A., Roldan S., Sun D.Y., Ter-Kuile N., Faroog S. Production and cytogenetics of Triticum aestivum L. hybrids with some rhizomatous Agropyron species. // Theor. Appl. Genet. 1989. V.77. P.162−168.
  158. Mujeeb-Kazi A., Sitch L.A., Fedak G. The range of chromosomal variations in intergeneric hybrids involving some Triticeae.//Cytologia. 1996. V.61. p.125−140.
  159. Muntzing A. Studies on the properties and the ways of production of rye-wheat amphidiploids // Hereditas. 1939. Bd. 25. № 3. S. 387−430.
  160. Nakajima G. Cytogenetical studies on intergeneric hybrids between Haynaldia and Secale. IV. External characteristics and meiosis in PMC’s of Secale fragila x Haynaldia villosa of F2 plants. // Jap.J.Genet. 1961. V.36. № 4. P. 129−136.
  161. Naranjo T., Lacadena J.R., Giraldez R. Interaction between wheat and rye genomes on homologous and homoeologous pairing.//Z. Pflanzenzuchtg. 1979. Bd.82. S. 289−305.
  162. Okamoto M. Asynaptic effect of chromosome V.//Wheat1.f.Serv. 1957. V.5. P.6. 179.0rellana J.M., Cermeno M.C., Lacadena J.R. Meiotic pairing in wheat-rye addition and substitution lines. // Can. J. Genet. Cytol. 1984. V.26. N.l. P. 2533.
  163. Pershina L.A., Numerova O.M., Belova L.I., Deyatkina E.P. Fertility in barley x wheat hybrids H. geniculatum All. X T. aestivum L., Their regenerants and hybrids progeny of backcrosses to T. aestivum L. //Cer. Res. Comm., 1988. V.16. P.157−163.
  164. Pienaar R.V. Genome relationships in Wheat x Agropyron distichum (Thunb) Beauv. hybrids. // Z. Pflanzenzuchtg. 1981. V.87. P.193−212.
  165. Pilch J. Rye chromosome constitution and the amount of telomeric heterochromatin of the widely and narrowly adapted CIMMIT hexaploid triticale.//Z Pflanzenzuchtg. 1981. Bd.87. S.58−68.
  166. Plourde A., Comean A., Fedak G., St-Pierre C.A. Production and cytogenetics of hybrids of Triticum aestivum x Leymus innovatus. //Theor. Appl. Genet. 1989. V. 78. P.436−444 .
  167. Pohler W., Schrader 0. Meiotic chromosome pairing in hybrids and a maternal haploid from the cross Hordeum chilense x Secale cereale. ////Arch.Zuchtungsforsch. Berlin. 1986. V.16. P.211−222.
  168. Ramanna M.S. A re-examination of the mechanisms of 2n gamete formation in potato and its implications for breeding. //Euphytica. 1979. V. 28. P.537−561.
  169. Rayburn A.L., Gill B.S. Molecular analysis of the D-genome of the Triticeae.//Theor. Appl. Genet. 1987. V.73. P.385−388.
  170. Riley R. Cytogenetics and plant breeding. //Genetics. 1965. V.3. P.681−688.
  171. Riley R., Chapman V. Effect of 5Bs in suppressing the expression of altered dosage of 5B1 on meiotic chromosome pairing in Triticum aestivum. // Nature. 1967. V.216. P. 60−67.
  172. Rogalska S. Identifiction of rye chromosomes in lines of hexaploid triticale.//Genetica polonica. 1977. V.18. P.317−324 .
  173. Rhoades M.M., Dempsey E. Induction of chromosome doubling at meiosis by the elongata gene in maize.// Genetics. 1966. V.54. P.505−521.
  174. Sears E.R. Genetic control of- chromosome pairingin wheat. // Annu. Rev. Genet. 1976. V.10. P. 31−51. 198. Sears E.R. An induced mutant with homoelogous pairing in common wheat.//Can. J. Genet. Cytol. 1977. V.19. P.585−593.
  175. Sears E.R. The transfer to wheat of interstitial segments of alien chromosomes. //Proc. 6-th. International Wheat Genetics Symposium. Kyoto. Japan. 1983. P.5−12.
  176. Sears E.R. Mutationsjin wheat that raisejthe level of meiotic chromosome pairing. //In:Gene manipulation in crop plants. Proc. 16-th Genet.Symp. Columbia. Missouri. USA. 1985. P.295−300.
  177. Sharma H.C., Gill B.C. New hibrids between Agropyron and wheat. 2. Production, morphology and cytogenetic analysis Fi hybrids and backross derivatives.//Theor., Appl. Genet. 1983. V. 66. P. 111−121.
  178. Sharma H.C., Gill B.C. The use of phi gene in direct genetic transfer and searchjfor Ph-like gene in poliploid Aegilops species. //Z. Pflanzenzuchtg. 1986. Bd. 96. S. l-7.
  179. Sharma H.C., Baenziger P. S. Production, morphology and cytogenetics analysis of Elymus caninus (Agropyron caninum) x Triticum aestivum Fi hybrids and backcross-1 derivatives. //Theor.Appl.Genet. 1986. V.71. P.750−756.
  180. Shchapova A.I., Potapova T.A., Kravtsova L.A. Variation in meiotic patterns and pollen fertility of the wheat-rye polyhaploids // Cereal Res. Comm. 1985. V.3. P. 125−132.
  181. Shchapova A.I., Potapova T.A., Kravtsova. L.A., Numerova O.M. Karyotype stabilization in intergeneric hybrids of the subtribe Triticinae. I. The effects of genome structure.// Theor. Appl. Genet., 1984. V.68. P.289−296.
  182. Sitch L.A., Snape J.W. An investigation into the genetic relationships between interspecificcrossability and chromosome pairing inwheat.//Cer.Res.Comm. 1986. V.14. P.69−75.
  183. Snape J.W., Chapman V., Moss J., Blanchard C.E., Miller T.E. The crossabilities of wheat varieties with Hordeum bulbosum. //Heredity. 1979. V.42. P/291−298.
  184. Stefani A. Unreduced gametes in the FI hybrids of the Triticum durum Desf. x Haynaldia villosa Schur. // Z. Pflanzenzuchtg. 1986. Bd. 96. S. 8−1.
  185. Stelly D.M., Peloquin S.J. Diploid female gametophyte formation in 24-chromosome potatoes: genetic evidence for the prevalence of the second meiotic division restitution mode. //Can.J.Genet.Cytol. 1986. V.28. P.101−108.
  186. Stringham G.R. A cytogenetic analysis of three asynaptic mutants in Brassica campestris. //Can.J.Genet.Cytol. 1970. V.12 P.743−749.
  187. Tang S., Zhuang J., Wen Y., Ai S.A., Li H., Xu J. Identification of introgressed segments conferring disease resistance in a tetrageneric hybrid of Triticum, Secale, Thinopyrum and Avena. //Genome. 1997.V.40. P.99−103.
  188. Tao Y.H., Hu H. Recombination of R-D chromosomes in pollen plants cultured from hybrid of 6x Triticale x common wheat. //Theor. Appl. Genet. 1989. V.77. P.899−904 .
  189. Taylor L.M. Variation patterns of parthenogenetic plants derived from unreduced embryo-sacs of Solanum tuberosum subspecies andigena (Juz.et Buk.) Hawkes. //Theor. Appl. Genet. 1978. V.52. P.241−249.
  190. Veilleux R.E., Lauer F.I. Variation for 2n pollen production in clones of Solanum phureja Juz. And Buk. //Theor. Appl. Genet. 1981. V.59. P.95−100.
  191. Veilleux R.E., McHale N.A., Lauer F.J. 2n gametes in diploid Solanum: Frequence and types of spindle abnormalities. //Can.J.Genet.Cytol. 1982. V.24. P.301−314.
  192. Viegas W.S., Mello-Sampayo T., Feldman M., Avivi L. Reduction of chromosome pairing by a spontaneous mutation on chromosomal arm 5DL of Triticumaestivum. // Can. J. Genet. Cytol. 1980. V.22 N. P.569−575.
  193. Vorsa N., Bingham E.T. Cytology of 2n pollen formation in diploid alfalfa, Medicago sativa. //Can.J.Genet.Cytol. 1979. V.21. P.525−530.
  194. Vosa C.G. The basis karyotype of rye (Secale cerele) analysed with Giemsa and fluorescence methods.//Heredity. 1974. V.33.P.403−408.
  195. Wagenaar E.B. Meiotic restitution and the origin of poliploidy. I. Influence of genotype on poliploid seedset in a Triticum crassum x T. turgidum hybrid.//Can. J. Genet. Cytol. 1968a. V.10. P. 836−843.
  196. Wagenaar E.B. Meiotic restitution and the origin of poliploidy. II. Prolonged duration of metaphase I as causal factor of restitution induction.// Can. J. Genet. Cytol. 1968b. V.10. P. 844−852.
  197. Wall A.M., Riley R., Chapman V. Wheat mutants permitting homoeologous meiotic chromosome pairing.// Genet.Res. 1971. V.18 P.311−328.
  198. Wang R.C., Liang G.H., Heyne E.G. Effectiveness of ph gene in inducing homoeologous chromosome pairing in Agrotricum. //Theor. Appl. Genet. 1977. V.51. P. 139 142.
  199. Wang R.R.C. Diploid perennial intergeneric hybrids in the tribe Triticeae. III. Hybrids among Secale montanum, Pseudoregneria spicata and Agropyron mongolicum. //Genome. 1987. V. 29. P.80−84.
  200. Watanabe K., Peloquin S.J. Occurence of 2n pollen and ps gene Frequencies in cultivated groups and their related wild species in tuber-bearing Solanumus.
  201. Yasumuro Y., Morris R., Sharma D.C., Schidt J.W. Induced pairing between a wheat (Triticum aestivum) and an Agropyron elongatum chromosome. //Can.J.Genet.Cytol. 1981. V.23.P.49−56/
  202. Zeller F.J., Fuchs E. Cytology and disease resistance of a 1A/1R and 1B/1R wheat rye translocations. // Z. Pflanzenzucht^. 1983. V.90. P. 285−296.
  203. Zhang X., Li Z., Chen S. Production and identification of three 4 Ag (4D) substitution lines of Triticum aestivum-Agropyron:relative transmission rate of alien chromosomes. //Theor. Appl. Genet. 1992. V.83. P.707−714.
  204. Zhang X., Dong Y., Wang R.R.C. Characterization of genomes and chromosomes in partial amphiploids of the hybrid Triticum aestivum x Thinopyrum ponticum by in situ hybridization, isozyme analysis and RAPD. //Genome. 1996. V.39. P.1062−1071.192
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!