Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Использование молекулярных маркеров для анализа полиморфизма генома перца и оптимизации селекционного процесса

Диссертация: Использование молекулярных маркеров для анализа полиморфизма генома перца и оптимизации селекционного процесса
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время в России интерес к культуре перца постоянно возрастает. В зелёных плодах перца содержится 150−270 мг % витамина С, а в красных плодах — до 480 мг %, что значительно превышает его содержание в других овощных растениях (Аникеенко, 1979, Лудилов, Гикало, Гиш, 1999). Перец по содержанию каротина (9−12 мг %) можно сравнить с морковью, также он занимает ведущее место среди овощных… Читать ещё >

Использование молекулярных маркеров для анализа полиморфизма генома перца и оптимизации селекционного процесса (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
    • 1. 1. Ботаническая характеристика перца (род Capsicum)
    • 1. 2. Классификация рода Capsicum
    • 1. 3. Генетика перца
    • 1. 4. Селекция на гетерозис
    • 1. 5. Комбинационная способность образцов
    • 1. 6. Технологии молекулярного маркирования в селекции
    • 1. 7. Применение молекулярных систем маркирования для идентификации генотипов перца
      • 1. 7. 1. Использование микросателлитных повторов для маркирования растительного генома
      • 1. 7. 2. Использование AFLP-метода для маркирования растительного генома
    • 1. 8. Углеводный обмен растений
      • 1. 8. 1. Ферменты углеводного обмена растений и кодирующие их гены
      • 1. 8. 2. Альфа-глюкан фосфорилазы растений
      • 1. 8. 3. Фермент сахарозосинтаза и его функции в растениях
      • 1. 8. 4. Гены сахарозосинтазы семейства Solanaceae
      • 1. 8. 5. Инвертазы растений
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Молекулярно-генетические методы
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Анализ генома сортов перца Capsicum аппиит и его близкородственных видов методом AFLP
      • 3. 1. 1. Подбор AFLP-комбинаций праймер/фермент, выявляющий внутри- и межвидовой полиморфизм у представителей Capsicum
      • 3. 1. 2. AFLP-анализ межвидового полиморфизма нуклеотидных последовательностей ДНК перцев
    • 3. 2. SSR анализ генома сортов перца Capsicum аппиит и близкородственных видов Capsicum
      • 3. 2. 1. Подбор микросателлитных локусов для проведения SSR анализа видов и сортов перца
      • 3. 2. 2. Оптимизация ПЦР для амплификации микросателлитных локусов перца
      • 3. 2. 3. Микросателлитный анализ сортов перца С. аппиит, а также близкородственных культурных видов C. frutescens, C. chinense, C. baccatum
        • 3. 2. 3. 1. Характеристика полиморфизма микросателлитного локуса СЗ
        • 3. 2. 3. 2. Характеристика полиморфизма микросателлитного локуса С 1а
        • 3. 2. 3. 3. Характеристика полиморфизма микросателлитного локуса С
        • 3. 2. 3. 4. Характеристика полиморфизма микросателлитного локуса С9а
      • 3. 2. 4. Сравнение частот встречаемости аллелей SSR локусов сортов перца С. аппиит и видов C. frutescens, C. chinense, C. baccatum
      • 3. 2. 5. Применение исследованных микросателлитных локусов для паспортизации сортов перца С. аппиит и видов C. frutescens, C. chinense, C. baccatum
    • 3. 3. Проведение предварительного сортоиспытания, расчет ОКС и СКС родительских линий
      • 3. 3. 1. Эффект гетерозиса по основным хозяйственно ценным признакам
    • 3. 4. Анализ полиморфизма генов углеводного обмена
      • 3. 4. 1. Анализ полиморфизма гена Stp
      • 3. 4. 2. Анализ полиморфизма гена Sus
      • 3. 4. 3. Анализ полиморфизма гена Ртп
  • ВЫВОДЫ
  • Рекомендации к практическому использованию в селекции

В настоящее время перец (род Capsicum) является одной из основных овощных культур. Перец был введен в культуру около 8 тыс. лет тому назад (Газепбуш, 1958), Центральная Америка — родина этого овощного растения. Перец стал выращиваться любителями в Европе после открытия Америки, а затем стал распространяться по всему свету и на данный момент занимает одно из первых мест среди овощных культур.

Культура перца возделывается почти во всех странах земного шара, там где позволяют климатические условия (от 55° ю.ш. до 55−56° с.ш.). Мировое товарное производство перца составляет более 27,55 млн. тонн (РАО, 2010).

В настоящее время в России интерес к культуре перца постоянно возрастает. В зелёных плодах перца содержится 150−270 мг % витамина С, а в красных плодах — до 480 мг %, что значительно превышает его содержание в других овощных растениях (Аникеенко, 1979, Лудилов, Гикало, Гиш, 1999). Перец по содержанию каротина (9−12 мг %) можно сравнить с морковью, также он занимает ведущее место среди овощных культур по содержанию витаминов группы В. Р-активные вещества — биофлавоноиды, придают плодам перца особую важность, это биологически активные вещества, они уменьшают проницаемость и повышают прочность капилляров при взаимодействии с витамином С (Лудилов, Лудилова, 1977). Также одним из важнейших биологически активных веществ, содержащихся в перце, является капсаицин, обеспечивающий горечь плодов. В остром перце содержится наибольшее его количество — до 1,9%. В перце также содержатся такие минеральные вещества, как калий, железо, магний, фосфор, цинк и кремний (Милованова, 1961).

Кроме того, плоды перца сладкого отличаются высокими вкусовыми качествами и пригодны для употребления в свежем виде, что обеспечивает устойчивый спрос на них в течение года.

В настоящее время многие селекционные проблемы связанные с выведением новых сортов, такие как например подбор родительских форм для скрещиваний, оценка однородности и размножение полученных перспективных линий, контроль наследования генетического материала, а также регистрация готового сорта решаются с помощью надежных, быстрых и высокоточных систем молекулярного маркирования ДНК, которые основываются на оценке геномого биоразнообразия.

В семеноводстве для определения степени гибридности при получении коммерческих гибридов, а также для контроля сортовой чистоты при размножении сортов отдельное значение приобретают молекулярные маркеры и разработанные на их основе молекулярно-генетические паспорта сортов.

В связи с введением в действие законов РФ «О селекционных достижениях» создание молекулярно-генетических паспортов для сортов сельскохозяйственных культур имеет особое значение, особенно для защиты прав селекционеров.

Вхождение России в ВТО и выход Российских семеноводческих компаний на зарубежный рынок ставит перед сортовой идентификацией следующие задачи — жесткое сортовое соответствие продаваемой продукции и защита прав отечественных семеноводческих компаний.

Молекулярная идентификация и разработка новых систем ДНК генотипирования особенно актуальна именно для овощных культур. Так как например, белковые маркеры, которые наиболее широко и эффективно применяются при сортовой идентификации злаковых культур, не могут быть использованы для идентификации овощных. Это объясняется тем, что запасные белки овощных культур, как правило, представленные альбуминовой и глобулиновой фракциями, значительно зависят от внешних факторов среды и поэтому такие белки не могут быть надежными маркерами для идентификации овощных культур.

На современном этапе с помощью современных методов молекулярного маркирования, таких как RAPD, SSAP, AFLP, SSR, ISSR, SNP и ряда других осуществляется оценка полиморфизма как всего генома, так и его отдельных функциональных участков. Полученные с помощью этих методов данные используются для разработки ДНК маркеров, которые применяются для генотипирования сортов и линий, идентификации ценных генотипов, а также для маркирования конкретных генов и локусов растений.

В последние годы в связи с тенденцией увеличения потребления перца, количество новых сортов ежегодно возрастает и проблема геномной идентификации становится особенно актуальной, но несмотря на это в России не проводилось целенаправленной научно-исследовательской работы по созданию систем молекулярного маркирования генотипов сортов перца отечественной селекции. Молекулярная идентификация сортов с помощью созданных маркерных систем могла бы стать основой Государственного реестра отечественных сортовых стандартов.

Все вышесказанное определяет актуальность разработки систем молекулярной идентификации геномов отечественных сортов перца и оценку их геномной вариабельности.

Исходя из этого целью исследования является разработка систем маркирования генома культурных видов Capsicum для оценки генетического полиморфизма и получения молекулярных маркеров для идентификации сортов перца отечественной селекции, а также для ускорения отдельных этапов селекционного процесса.

Для реализации поставленной цели выделены следующие задачи: 1) Используя молекулярные системы маркирования (мультилокусное AFLP маркирование, система микросателлитных SSR маркеров) определить уровни вариабельности генома образцов рода Capsicum, включающих сорта С. аптшт отечественной и зарубежной селекции, а также гибриды Fi;

2) Для каждого микросателлитного локуса определить аллельный состав и частоту встречаемости каждого аллеля у сортов перца отечественной и зарубежной селекции;

3) На основе определенных аллельных вариантов микросателлтиных локусов составить молекулярно-генетические паспорта анализируемых сортов;

4) По результатам молекулярно-генетического анализа подобрать родительские пары и провести скрещиванияопределить ОКС и СКС родительских форм и эффект гетерозиса у гибридных комбинаций;

5) Определить и проанализировать последовательности генов глюканфосфорилазы, инвертазы и сахарозосинтазы у перца, выявить уровень полиморфизма и аллельные варианты.

Научная новизна. Впервые с помощью молекулярных методов маркирования (SSR, AFLP) генома охарактеризовано генетическое разнообразие сортов Capsicum аппиит отечественной селекции, а также образцов родственных видов. С использованием отобранных SSR маркеров разработана система (минимальный набор локусов) для идентификации сортов перца и анализа гибридных комбинаций. Для каждого сортообразца получены индивидуальные SSR спектры, которые могут стать основой паспортизации сортов.

На основе систем AFLP и SSR маркирования впервые проведено молекулярное генотипирование сортов перца отечественной селекции.

Впервые были определены и проанализированы последовательности генов глюканфосфорилазы, инвертазы и сахарозосинтазы у перцев, определен уровень полиморфизма и аллельные варианты.

Практическая значимость. Результаты AFLP анализа позволяют обоснованно подходить к подбору родительских форм для скрещиваний, прогнозировать эффект гетерозиса и оптимизировать селекционный процесс за счет сокращения вовлекаемого в него селекционного материала.

Молекулярные микросателлитные маркеры и разработанные на их основе молекулярно-генетические паспорта сортов могут применяться для контроля сортовой чистоты и определения степени гибридности при получении коммерческих гибридов, а также обеспечивают защиту авторских прав селекционера.

Исследование вариабельности генов может быть использовано для выявления и маркирования аллельных вариантов ассоциированных с содержанием Сахаров в плодах и холодоустойчивостью.

ВЫВОДЫ.

1. Разработана система AFLP маркирования, позволившая оценить генетическое разнообразие представителей рода Capsicum:

— идентифицировано 956 полиморфных AFLP фрагмента, определены уровни межвидовой и внутривидовой вариабельности ДНК последовательностей перца.

— показано, что с помощью двух праймерных комбинаций можно дифференцировать генотипы всех 45 сортов и для каждого из них получены специфичные спектры фрагментов;

— для 24 сортов получены сортоспецифичные фрагменты, которые могут быть преобразованы в монолокусные SCAR маркеры;

— выявлены наиболее генетически родственные и отдаленные группы сортов для оптимизации селекционного процесса.

2. Методом SSR анализа четырех микросателлитных локусов у 45 сортов и видов рода Capsicum выявлено 19 аллельных вариантов, определены их точные размеры и нуклеотидные последовательности, частоты встречаемости и коэффициенты информативности.

3. Показана возможность использования разработанных систем микросателлитного и AFLP маркирования при подборе родительских пар для получения гибридов с высоким эффектом гетерозиса.

4. Для защиты авторских прав селекционера составлены молекулярно-генетические паспорта сортов перца сладкого, представленные сортоспецифичными формулами аллельных вариантов четырех микросателлитных локусов.

5. Определены и проанализированы последовательности функциональных участков генов альфа-глюканфосфорилазы, инвертазы и сахарозосинтазы у видов и сортов Capsicum, выявлен уровень полиморфизма нуклеотидных и аминокислотных последовательностей.

Рекомендации к практическому использованию в селекции.

1. Для получения гибридных комбинаций с высоким эффектом гетерозиса и оптимизации селекционного процесса использовать результаты АБЬР анализа (дендрограмма, генетические расстояния) при подборе родительских форм для скрещиваний.

2. Молекулярные маркеры и разработанные на их основе молекулярногенетические паспорта сортов применять для контроля сортовой чистоты при размножении сортов и определения степени гибридности при получении коммерческих гибридов, а также для защиты авторских прав селекционера.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.B. Перцы и баклажаны./ A.B. Алпатьев// М:1952. С. 80.
  2. A.B. Получение новых форм помидоров и сладкого перца при опылении смесью пыльцы. / A.B. Алпатьев, A.B. Бендерская// Агробиология.- 1964.-№ 6.
  3. А.П. Химический состав сладкого перца как исходный материал для селекции./ А.П. Аникеенко// Научные труды Майкопской опытной станции ВИР. в. 1(13).- 1979. С. 10−17.
  4. В.Ф. Методика опытного дела в овощеводстве и бахчеводстве./ В.Ф.Белик//М.: Агопромиздат, — 1992.- С. 319.
  5. Г. В. Гетерозис овощных культур./ Г. В. Боос, Г. В. Бадина, В.И. Буре-нин//Л.- 1990.-С.215.
  6. И. П. Оценка КС линий томата с генетическими маркерами./ И. П. Блащук//В кн.: Генетические и методические аспекты селекции с.-х. Растений и животных. Киев. — 1983. — С.8−10.
  7. С. Принципы и методы селекции растений./ С. Бороевич// М.- 1984. 344с.
  8. Д.Л. Сельскохозяйственная генетика./ Д.Л. Брюбейкер// Пер. E.H. Болотова. М. Колос. — 1966. — С.300.
  9. А.Р. Анализ наследования и формирования признаков при межвидовой гибридизации перца./ А. Р. Бухарова, А.Ф. Бухаров// Селекция и семеноводствоовощных культур. М. — 2003. — В. 38 — С. 125−140.
  10. Ю.Газенбуш О. В. Перец Capsicum Toum. l O.B. Газенбуш //Культурная флора СССР. М-Л. 1958. — Т.20 — С.394−487.
  11. В. Л. Перцы./ В. Л. Газенбуш//В кн.: культурная флора СССР,-1956.-Т. 20. С.394−484.
  12. Г. С. Перец./Г.С. Гикало//М.: Колос. 1982. — С. 119.
  13. Jl.И. Методы селекции томата для интенсивных технологий./ Л.И. Гусева/ЛСишинев. 1989.- С. 233.
  14. X. Овощеводство./X. Даскалов/ЛТловдив. 1958. — С. 1−502.
  15. X. Нови хетерозисни сортове пипер за оранжерейно, парниково и ранно полеко производство./ X. Даскалов, Т. Муртазов// Изв. И. Р. София. -1955. -№ 33. С.3−17.
  16. X. Нови хибридны сортове пипер за оранжерейно, парниково и ранно полско протзводство. / X. Даскалов, Д. Попова//Селскостоп. Миеъл. -1957. -№ 9. -С.561−563.
  17. X. Рщви хибридни сортове пипер/ X. Даскалов, Д. Попова// Ово-щарство и градинарство. Б. 1958. — С.38−42.
  18. X. Нови ранни гибридны сортове пиперы/ X. Даскалов, Д. Попова// Изв. ИР. София. 1960. — № 3. с. 185−186.
  19. С. П. Гетерозис у перца./ С. П. Дикий, Л. И. Студенцова, В. С. Аникеенко //Тр. По прикл. Бот., ген. и сел., 49, вып.2.-1973.
  20. .А. Методика полевого опыта. / Б.А. Доспехов//М.: Агропромиз-дат. 1985. — С.351.
  21. П.М. Мировой генофонд растений (мега и микрогеноцентры)./ П.М. Жуковский//В сб.: «Генетические основы селекции растений». М. -1971.-С.88
  22. A.A. Изменчивость и наследуемость хозяйственно-ценных признаков у томатов./ A.A. Жученко// Кишинев: Картя Молд. 1973. — С.157.
  23. С.И. Селекция тепличных сортов и гибридов томата./ С. И. Игнатова, Н. С. Горшкова, Е.И. Кондакова// В кн. Селекция и семеноводство овощных и бахчевых культур. М. 1989. — С.115−128.
  24. Н.В. Подбор родительских компонентов для получения гетерозисных гибридов томата./ Н.В. Курганская//В сб.: Селекции и семеноводства картофеля и овощебахчевых культур. Алма-Ата. 1979.1. С.74−81.
  25. В.А., Лудилова М. И. Содержание Р-активных веществ и витамина С в различных видах и сортах перца/ В. А. Лудилов, М. И. Лудилова // Бюллетень ВИР. 1977. — вып.74. — С.27−32.
  26. В.А. Культура перца на Северном Кавказе./ В. А. Лудилов, Г. С. Гикало, Р. А Гиш//Краснодар: КГАУ. 1999. — С.214.
  27. А. Н. Актуальные вопросы генетики и селекции томата./ А. Н. Лукьяненко, С. Ф. Гавриш// Картофель и овощи. 1982. — № 7.- С.37−39.
  28. В.П. Устойчивость гибридов первого поколения сладкого перца к болезням./ В. П. Марфутина // Тр. мол. учен, и аспирант, по сел. и Семенов, овощ, культ. М. 1969. — вып.2. — С.22−24.
  29. В.П. К вопросу выведения гетерозисных гибридов перца сладкого для Центрально-Черноземной зоны./ В.П. Марфутина//М. 1970. — Авто-реф. канд. с.-х. наук. — С.27.
  30. Л. Комбинативна способит в диаллелна кръетоска пипер (Capsicum аппиит L.)J Л. Милкова //Генетика и селекция (НРБ). 1979. — т. 12. — № 1. -С.62−67.
  31. Л.В. Биохимия перца. Биохимия овощных культур./ Л.В. Мило-ванова// М.-Л. -1961.
  32. О.Н. Баклажаны и перцы./Пышная O.II.//M. 2002. — С. 126.
  33. Руководство по апробации овощных культур и кормовых корнеплодов.// М. 1982.-С.46−65.
  34. .Г. Перцы и баклажаны./ Б.Г. Русанов//Л.:Агропромиздат. 1988. -С.72.
  35. РыжоваН.Н. Молекулярное маркирование линий и полученных на их основе сортов перца сладкого Capsicum аппиит L./ Рыжова H.H., Кочиева Е. З., Пышная О.Н.// Сельскохозяйственная биология. 2010. — № 3. — С.36−40.
  36. В.А. Новая гипотеза: ее научное и практическое значение./ В.А. Струнников//Вестник сельскохозяйственной науки. М. 1983. № 1(16). — С.34−40.
  37. О.Ю. Создание гибридов Fi перца сладкого с улучшенным биохимическим составом на стерильной основе./ О.Ю. Тимин//автореф.кан. с/х н. -М.2005, — С.24
  38. Н.В. Гетерозис. Теория и методы практического использования. О принципах и методах селекции растений на комбинационную способность./ Н. В. Турбин, Л.В. Хотылева//Минск, — 1967. С.59−111.
  39. Н.В. Гетерозис и генетический баланс. Гетерозис./ Н.В. Турбин// Минск. 1961.-С.3−34.
  40. Н.В. Генетика гетерозиса и методы селекции на комбинационную способность. Генетические основы селекции растений./ IIB. Турбин// М.-1971. -С.112−165.
  41. А.И. Перцы и баклажаны./ А.И. Филов//М.-Л.: Сельхозиздат.- 1956. -С.367.
  42. А. Проучване качеството на плодовете на някои хетерозисни сортове пипери./ А. Христова, Д. Попова// Селекостопанска наука. София. -№ 1.- 1963.
  43. И.А. Использование инбридинга в гетерозисной селекции. Цитологические и математические подходы к изучению биосистем./И.А. Шевцов// Доклады МОИП. М. 1986. — С.78−81.
  44. И.А. Применение инбридинга в селекции на гетерозис. Гетерозис (теория и практика)./И.А. Шевцов// Тез. докл. Харьков.-1988. С. 150−151.
  45. Г. Е. Изучение гетерозиса у перцев, баклажан и огурцов на Приаральской опытной станции./ Шмараев Г. Е., Курятникова P. А.//В кн.: Использование гетерозиса в овощеводстве. Крымская опытно-селекционная станция, ВИР. 1963.- С.225−228.
  46. Ahmed N. Inheritance studies in chili (Cspsicum annuum L.). / N. Ahmed // M. Sci. thesis, Punjab. Agr. Uni., Ludhiana.-1981.
  47. Ahmed N. Inheritance yield and yield attributing characters in pepper./ N. Ahmed, M.Y. Bhat, M.I. Tanki, G. Zargar //Capsicum and Eggplant Newsletter. 1994. -V13.-P.58−60.
  48. Ahmed N. Combining ability analisis for fruit yield and its component characters in sweet pepper {Capsicum annuum L.)./ N. Ahmed, S.H. Khan, M.I. Tanki// Capsicum and Eggplant Newsletter. 1997. — V. 16. — P.72−75.
  49. Ahmed N. Inheritance of earliness in red pepper (iCapsicum annuum L.). / N. Ahmed, M.I. Tanki, A.S. Gulzar// Capsicum and Eggplant Newsletter. 1993. -V.12. -P.53.
  50. Aktas H. Genetic diversity in some Turkish pepper (iCapsicum annuum L.) genotypes revealed by AFLP analyses./ H. Aktas, K. Abak, S. Sen-soy//African J. Biotechnol. -2009. V.8(18). -P.4378−4386.
  51. Angeli H.A. Csokros paprica nemesitese./ ILA. Angeli//Kert. Sroc. Poisk. Kusl., Brest.- 1964.-V. 1(28).
  52. Arcade A. Application of AFLP, RAPD and ISSR markers to genetic mapping of European and Japanese larch./ A. Arcade, F. Anselin, P. Faivre Rompant, M.C. Lasage, L.E. Paques, D. Prat //Theor Appl Genet 100.-2000. -P. 299−307.
  53. Arumuganathan K. Nuclear DNA content of some important plant species./ K. Arumuganathan, E.D. Earle// Plant Mol. Biol. Rep. 1991. — V.9. — P.208−218.
  54. Ashkenazi V. Development of micro satellite markers in potato and their use in phylogenetic and fingerprinting analyses./ V. Ashkenazi, E. Chani, U. Lavi, D. Levy, J. Ilillel, R.E. Veilleux//Genome. 2001. — V.44. — P. 50−62.
  55. Avigad G. Sucrose and other disaccharides./ G. Avigad//In Encyclopedia of Plant Physiology New Series, F.A. Loewus and W. Tanners, eds (Berlin: SpringerVerlag). 1982. — V.13A. -P.217−347.
  56. Baral J.B. An Updeted Synthesis of the Capsicum Genus/ J.B. Baral, P.W. Bosland //Capsicum and Eggplant Newsletter. -2002. -V.21. P. 11−21.
  57. Baudry E. Species and Recombination Effects on DNA Variability in the Tomato Genus./ E. Baudry, C. Kerdelhue, FI. Innan, W. Stephan // Genetics. 2001. -. V.158. P.1725−1735.
  58. Behera T. K Relative efficiency of DNA markers (RAPD, ISSR andAFLP) in detecting genetic diversity of bitter gourd (Momordica charantia L.)./ T.K. Behera, A.B.Gaikwad, A.K. Singh, J.E. Staub // J Sei Food Agric.- 2008a.- V. 88. P.733−737.
  59. Belletti P. Flow cytometric measurement of nuclear DNA content in Capsicum (Solanaceae)./ P. Belletti, C. Marzachi, S. Lanteri/ZPlant Syst. Evol. 1998. -V.209. -P.85−91.
  60. Betlach I. Vivi factoru urodnosti na ulkovy vynos plody Fi hybridy zelwninove papricy (C.aw?wz//w L.)./1. Betlach// Bull. Vyzk. Ustav. Zelin., 01omouc. -1965.
  61. Betlach I. Some results of the hybridization in Sweet pepper (C. annuum L.). /1. Betlach//Bull. Uctav. Zelin. Olomouc. 1966. — V.10.-P.99−112.
  62. Betlach I. The intensity of photosynthesis of heterotic combinations of sweet pepper./1. Betlach, Frydrych// Bull Univ. Ustav Zelin Olomouc. 1966. — P.99−112.
  63. Bosland P.W. Peppers: Vegetable and Spice Capsicums./ P.W. Bosland, E.J. Votava//Crops Production Science in Horticulture 12. CABI Publishing, Wallingford. 2000.
  64. Boswell V.R. Improvement and genetics of tomatoes, peppers, and eggplant./ V.R. Boswell//Yearbook of agriculture. In: U.S. Government Printing Office, Washington, D.C. 1937. — P. 176−206.
  65. Boukema I.W. Allelism of genes controlling resistance to TMV in Capsicum L./ I.W. Boukema// Euphvtica. 1980. — V.29. — P.433−439.
  66. Boukema I.W. Resistanse to TMV in Capsicum chacoense Hunz. is governed by an allele of the L-locus. / I.W. Boukema // Capsicum and Eggplant Newsletter. -1984.-V.3.-P.47−49.
  67. Brauer H.O. Untersuchungen uber Qualitat. Scigenschaften in Fj Hybriden von paprica (C. annum L.)./ H.O. Brauer// Zeitschr. Pflanzenzuchtung. 1962. — V.48.- P.21−27.
  68. Brauer H. O. Influencia de los progenifors sorbe la calidan de les hibridos Fi de chile, Capsicum annum L./ H.O. Brauer// Proc caribb. Reg. Amer. Soc. Hort. Sei.- 1963. -P.54−59.
  69. Caicedo A.L. Population structure and phylogeography of Solarium pimpinellifolium inferred from a nuclear gene./ A.L. Caicedo, B.A. Schaal //Mol. Ecol. 2004. — V. 13. — P. 1871−1882.
  70. Chaim B.A. QTL mapping of fruit-related traits in pepper (Capsicum annuum). A. Paran, R.C. Grube, M.K. Jahn, R. van Wijk, J. PeIeman.//Theor. Appl. Genet. -2001.-V.102.-P.1016- 1028.
  71. Chaim B.A. Linkage of the A locus for the presence of anthocyanin and fslO. 1, a major fruit-shape QTL in pepper. / B.A. Chaim, Y. Borovsky, W. De Jong, I. Paran //Theor. Appl. Genet. 2003. — V. 102. — P. 1016 — 1028.
  72. Chalukova M.S. Beta-orange mutant in pepper {Capsicum annuum L.)./ M.S. Chalukova, Daskolov, E. Lukarska, D. Baralieva//Capsicum Eggplant Nswl. -1993. V.12. -P.57−58.
  73. Chen X. A potato molecular function map for carbohydrate metabolism and transport./ X. Chen, F. Salamini, C. Gebhardt//Theor Appl Genet. 2001. — V.102. -P.284−295.
  74. Chengappa S. Cloning, expression and mapping of a second tomato sucrose synthase gene Sus 3./ S. Chengappa, N. Loader, R. Shields// Plant Phisiology. -1998. V. l 18. — P. 1533−1543.
  75. Choboczek E. Lancovv heterozyinia papryki atobkicg w porownania z admisnami standerdowyni w stielte dos wlasezen w C.S.R.S.N.R.D. Iw Polsce./ E. Choboczek, I. Karasinska, M. Mijvasova, H. Fajkowska/ZPocrn. Nauk Pol., Scr. A. 1966. -V.91. -P.229−328.
  76. Csillery G. Self-eliminating genes suitable for the purpose of hybrid seed production./ G. Csillery//Proc. 4th Eucarpia Meeting of Capsicum Working Group, Wageningen, the Netherlands. 1980b. P.27−28.
  77. Csillery G. New Capsicum mutants found on seedling, growth type, leaf, flower and fruit./ G. Csillery//Proc. 5th Eucarpia Meeting of Capsicum and Eggplant Working Group, Plovdiv. 1983. -P.127−130.
  78. Daskalov S. Investigation of induced mutants in Capsicum anmium L. III. Mutants in the variety Zlaten Medal/ S. Daskalov // Genet. Plant Breeding. 1973. -V.6.-P. 419−429.
  79. Daskalov S. Investigation on induced mutants in sweet pepper (Capsicum annuum L.)./ S. Daskalov// Proc. I st Meeting of the Capsicum Breeding and Genetics, Budapest, Hungary. 1974. -P.81−90.
  80. Daskalov S. Investigations on mutagenesis and heterosis in peppQr (Capsicum annuum L.). /S. Daskalov//D.Sc. Thesis. 1987 in Bulgarian.,
  81. Daskalov S. Updated Capsicum gene list. Capsicum and Eggplant./ S. Daskalov, J. Poulos//Newsletter. 1994. -V. 13. — P. 15−26.
  82. Deshpande R.B. Studies in Indian chillies. 3. The inheritance of some characters in Capsicum annuum L./ R.B. Deshpande// Indian Jour. Agr. Sci. 1933. — V.3. -P.219−300.
  83. Deshpande R.B. Studies in Indian chillies. 4. Inheritance of pungency in Capsicum annuum L. I R.B. Deshpande//Indian J. Agr. Sci. 1935. — V.5. — P.513−516.
  84. Doshi K.M. Expression of heterosis in Chilli (Capsicum annuum L.)/K.M. Doshi// Capsicum and eggplants Newsletter. 2000. — V.19. — P.66−67.
  85. Doshi K.M. Combining ability analysis for fresh fruit yield and its components over environments in chilli (Capsicum annuum L.)/ Doshi K.M., Shukla P.T.// Capsicum and eggplants Newsletter. 2000. — V.19. — P. 82−85.
  86. Draffehn A.M. Natural diversity of potato (Solanum tuberosum) invertases. / A.M. Draffehn, M. Sebastian, L. Li, C. Gebhardt//BMC Plant Biology. 2010. — V.10. -P.271−286.
  87. Edwards S. K Simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis./ S.K. Edwards, J.C. Thompson// Nucleic Acids Res. 1991. -V.19. — P. 1349.
  88. Erwin A.T. The Pepper./ A.T. Erwin//Jova Agric. Exp. Sta. Bull.-1932.- P.293.
  89. Eshbaugh W.H. The taxonomy of the genus Capsicum (Solanaceae)./ W.H. Eshbaugh// Phytologia. 1980. — V.47. — P.153−166.
  90. Eshbaugh W.H. Peppers: Histori and explatation of serendipitous new crop discovery./ W.H. Eshbaugh, J.E. Janickand//Simon New Crops. Wiley, New York. 1996.
  91. FAO Production year book. 2010. — P.256
  92. Fettke J. Eukaryotic starch degradation: integration of plastidial and cytosolic pathways./ J. Fettke, M. Hejazi, J. Smirnova, E. Hochel, M. Stage, M. Steup// Journal of Experimental Botany. 2009. — V.60 — P.2907−2922.
  93. Fu H. Sink- and vascular-associated sucrose synthase functions are encoded by different gene classes in potato./ Fu H., Park W. DV/The Plant Cell. 1995. — V.7. -P. 1369−1385.
  94. Fu FI. High-level tuber expression and sucrose inducibility of a potato Sus4 sucrose synthase gene require 5' and 3' flanking sequences and the leader intron./ H. Fu, S.Y. Kim, W.D. Park//Plant Cell. 1995. — V.7. — P. 1387−1394.
  95. Gaddagimath W.B. Genetics analysis of yield and components in chili (Capsicum annuum L.)/ W.B. Gaddagimath // Mysore J. Agr. Sci. 1988. -V.22. -P.51.
  96. Gill PI.S. Correlation path coefficient and multiple regression analysis in sweet pepper./ H.S. Gill, B.M. Asowa, P.C. Thakur, T.C. Thakur// Indian I. Agr. Sci. 1977. — V.47. — P.408−410.
  97. Gopalkrishmen T.R. Heterosis and combining ability analysis in chilli./ T.R. Gopalkrishmen//Indian I. Genet. 1987. — V.47(2). — P.205−209.
  98. Gopalakrishnan T.R. Inheritance of clusterness and fruit orientation in chilli {Capsicum annuum L.)./ T.R. Gopalakrishnan, P.K. Gopalakrishnan, K.V. Pe-ter//Indian J. Genetics. 1989. — V.49. -P.219−222.
  99. Greenleaf W.H. Inheritance of resistance to tobacco etch virus in Capsicum frutescens and in Capsicum annuum. I W.H. Greenleaf//Phytopathology.- 1956. -V.46. P.371−375.
  100. Greenleaf W.H. Pepper breeding./ W.H. Greenleaf// In: Mark J. Bassett (ed.). Breeding vegetable crops. AVI Publishing, Westport, Conn.- 1986. P. 67 134.
  101. Griffing B.A. Generalized treatment of the use of diallel in guantitative inheritance/B.A. Griffing//Heredity. -1956. V.10. — P. 31−50.
  102. Gustafsson A. Apomixis in Higher Plants: the mechanism of apomixis./ A. Gustafsson// In: Lunds Universitets Arsskrift. 1946. — P. 1−364.
  103. Hanggi E. Sucrose synthase expression pattern in young maize leaves: implications for phloem transport./ E. Hanggi, A.J. Fleming// Planta. 2001. -P.326−329.
  104. Herison C. Rustikawati and Sudarsono Cienetics of resistance against cucumber mosaic virus (CMV) in hot pepper (Capsicum annuum L.)./ C. Heri-son//Capsicum Eggplant Nswl. 2004. — V.23. — P. 113−116.
  105. Hiroaki E. Genetic diversity of the «peruvianum-complex» {Lycopersicon peruvianum L. Mill, and L. chilense Dun.) revealed by RAPD analysis./ E. Hiroaki, I. Hiroyuki, T. Tadashi, I. Shigeru//Euphytica.- 2000. V.116. -P.23−31.115. http://www.licor.com//
  106. Hurtado-Hernandez H. Inheritance of mature fruit colour in Capsicum annuum L./ H. Hurtado-Hernandez, P. Smith// Journal of Heredity. 1985. — V.76. -P.211−213.
  107. Jaccard P. Nouvelles rescherches sur la distribution florale./ P. Jaccard //Bull. Soc. Vaud. Sci. Nat. 1908. — V.44. — P.223−270.
  108. Ji X. Structure, evolution and expression of the two invertase gene families of rice./ X. Ji, W. Van den Ende, A. Van Laere// Molecular Evolution. 2005. -V.60. -P.615−634.
  109. Joshi S. Resalts of the combining ability studies in sweet pepper {Capsicum annuum L.)./ S. Joshi, B. Singh//Capsicum Newsletter. -1987. № 6. — P.49−50.
  110. Kamble C. Combining ability for earliness and productivity in sweet pepper (Capsicum annuum L.)./ C. Kamble, R. Mulge, M.B. Madalageri//Karnataka J. Agric. Sci. 2009. — V.22(l). — P. 151 -154.
  111. Kardolus J.P. The potential of AFLPs in biosystematics: a first application in Solanum taxonomy (Solanaceae)./ J.P. Kardolus, H.J. van Eck, R.G. van den Berg//Plant Systematics and Evolution 210. 1998. — P.87−103.
  112. Karp A. DNA markers, a global overview./ A. Karp, K.J. Edwards//In: Caetano-Anolles G. and Gresshoff P.M. (eds), DNA Markers, Protocols, Applications, and Overviews. Wiley-Liss, New York. 1997. -P.364.
  113. Kaul B.L. Heterosis and combining ability studies for some fruit characters in bell pepper (Capsicum annuum L.)./B.L. Kaul, P.P. Sharma// Vegetable Science. 1988. -V. 15. — P. 171−180.
  114. Kim K.S. Replication of coxsackievirus B3 in primary cell cultures generates novel viral genome deletions./ K.S. Kim, N.M. Chapman, S. Tracy//J. Virol. 2008. — V.82 (4). — P.2033−2037.
  115. Koch K.E. Sucrose metabolism: regulatory mechanisms and pivotal roles in sugar sensing and plant development./ K.E. Koch//Curr. Opin. Plant Biol. 2004. —V.7. -P.235−246.
  116. Kochieva E.Z. Assessment of genetic relationships in the genus Capsicum using different DNA marker systems./ E.Z. Kochieva, N.N. Ryzhova, W. van Dooijeweert //Eucarpia. 2004. — P.44−50.
  117. Kumar O.A. Ascorbic Acid Heterosis in Chili Peppers (Capsicum L.)./ O.A. Kumar, S.S. Tata// Journal of Phytology. 2010. — V.2. — № 2
  118. Legesse G. Combining ability study for green fruit yield and its components in hot pepper {Capsicum annuum L.). / G. Legesse//Acta Agronomica Hungarica. -2000. V.48(4). -P.373−380.
  119. Li L. Statistical epistasis between candidate gene alleles for complex tuber traits in an association mapping population of tetraploid potato./ L. Li, M.J. Paulo, F. van Eeuwijk, C. Gebhardt //Theor Appl Genet. 2010. — V. 121(7). — P. 13 031 310.
  120. Lippert L.F. Gene list for the pepper./ L.F. Lippert, B.O. Bergh, P.G. Smith.//J. Hered. 1965. -V.56. -P.30−34.
  121. Lippert L.F. Cytogenetics of the vegetable crops./ L.F. Lippert, P.G. Smith, B.O. Bergh// Garden pepper, Capsicum sp. Bot. Rev. 1966. — V.32. -P.24−55.
  122. Lippert L.F. Heterosis and combining ability in chilli peppers by diallel analysis./ L.F. Lippert//Corp. Sci. 1975. — V. 15. — № 3. — P.323.
  123. Martin J. A. Several types of sterility in Capsicum frutescens./ J. A. Martin, J.H. Crawford//Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. -1951. V.57. — P.335−338.
  124. Menendez C.M. Cold-sweetening in diploid potato. Mapping QTL and candidate genes./ C.M. Menendez, E. Ritter, R. Scha 'fer-Pregl, B. Walkemeier, A. Kalde, F. Salamini, C. Gebhardt //Genetics. -2002. V. 162. P. 1423−1434.
  125. Michna M. Work on paprika breeding./ M. Michna//In.: Roczniki wijzszej Szkoij Rolniczej wPoznanin. 1966. — V.29. — P. 169−175.
  126. Michna M. Zjawisko heterozii I rwato se efectu neterozyjnego u capsicum annum L./M. Michna/ZHowowla Roslin aklimatuz. Nasiennie two. 1963. — V.7. -P.531−581.
  127. Milcova L.I. Genetics of guantitative charactters in sweet pepper./L.I. Milcova//Acta Universities of Agriculture. Brno (Facultus Agronomics). 1986. -V.32(4).-P. 379−384.
  128. Milkova L.I. Combining ability in the pepper (Capsicum annuum L.)./L.I. Milcova// «Capsicum 77» 3 congres Eucarpia genet, et selec. Piment, AVIGNON-MONTPAVET. 1977. -P.171.
  129. Minamiyama Y. An SSR-based linkage map of Capsicum annuum./ Y. Minamiyama, M. Tsuro, M. Hira //Mol Breeding. 2006. — V.18. — P. 157−169.
  130. Miranda I.E.C. Diallel analysis in sweet pepper. I. Combining ability./ I.E.C. Miranda, C.P. De Costa, C.D. Cruz//Analise Brasileira deGenetica. 1988. -V.l 1(2).-P.431−440.
  131. Mishra R.S. Result of heterosis breeding in chili (Capsicum annuum L.)./ R.S. Mishra, R.E. Lotha, S.N. Mishra, P.K. Paul, H.N. Mishra//Capsicum Newsletter. -1988. V.7. — P.49−50.
  132. Mital R.K., Singh H. N. Genetics of yield and its components in tomato \ Indian J. Agr. Sc., 1978.- V. 48.- № 3, — P. 159−162.
  133. Moury B. A CAPS marker to assist selection of tomato spotted wilt virus (TSWV) resistance in pepper./ B. Moury, S. Pflieger, A. Blattes, V. Lefebvre, A. Palloix//Genome. 2000. — V.43. — P. 137−142.
  134. Odland, A.M. Porter. //Proc. Amer. Soc. Ilort. Sci. 1938. — V.36. -P.647−651.
  135. Panday S.C. Studies on heterosis in Chillies Capsicum annuum L./ S.C. Panday, M.L. Pandita, J. Dixit//Haryana J. Hort. Sci. 1981,-V.10. -P.l 16−121.
  136. Paran I. Variation in Capsicum annuum revealed by RAPD and AFLP markers./1. Paran, E. Aftergoot, C. Shifriss//Euphytica. 1998. -V.99. — P. 167−173.
  137. Patel I.A. Combining ability analysis for green fruit yield and yield components in chilli (Capsicum annuum L.)./1.A. Patel, M.R. Shukla, K.M. Doshi// Capsicum and Eggplant Newsletter. 1998. — № 17. — P.34−38.
  138. Pathak C.S. Male and female sterility in chilli pepper (Capsicum annuum L.)./ C.S. Pathak, D.P. Singh, A.A. Deshpande// Capsicum Nswl. 1983b. — V.2. -P.95−96.
  139. Payakhapaab S. Evaluation of heterosis and combining ability of yield components in Chillies./ S. Payakhapaab, D. Boonyakiat, M. Nikornpun//Journal of Agricultural Science. 2012. — V.4. — P. 154−161.
  140. Pearson O.H. Heterosis of vegetable crops./ O.H. Pearson//IN.: Heterosis. -1983. -P.181−225.
  141. Peterson P.A. Linkage of fruit shape and color genes in Capsicum.lP.A. Peterson//Genetics. -1959. V.44. -P.407−419.
  142. Pochard E. A major gene with quantitative effect on two different viruses, CMV and TMV./E. Pochard// Capsicum Nswl. 1982. — V.I.- P.56−58.
  143. Popova D. The effect of certain vitamins on the heterosis effect of F1 in peppers (C.annuum L.)./ D. Popova, I. Mihailov// C. R. Acad. Sci., Bulgaria. -1970. -V.3.
  144. Popovsky S. Molecular genetics of the y locus in pepper: its relation to capsanthin-capsorubin synthase and to fruit color./ S. Popovsky, I. Paran// Theor Appl Genet. 2000. -V.101. — P.86−89.
  145. Portis E. Effect of farmer’s seed selection on genetic variation of landrace population of pepper (C. annuum L.), grown in North-west Italy./ E. Portis, A. Acquadro, C. Comino, S. Lanteri//Genet. Res. Crop Evol.-2004. -V.51.-P.581−590.
  146. Raj put S. Reproducibility testing of RAPD and SSR markers in tomato./ S. Rajput, G.K.J. Wable, K.M. Sharma, P.D. Kubde, S.A. Mula//African J. Biotechnol. 2006. — V.5. — P. 108−112.
  147. Rao G.U. Polygalacturonase: A candidate gene for the soft flesh and deciduous fruit mutation in Capsicum. G.U. Rao, I. Paran//Plant Mol. Biol. -2003. -V.51. -P.135−141.
  148. Renganayaki K. Genetic diversity among Texas bluegrass genotypes (Poaa-rachnifera Torr.) revealed by AFLP and RAPD markers./ K. Renganayaki, J.C. Read, A.K. Fritz//Theor. Appl. Genet. 2001. — V. 102. — P. 1037−1045.
  149. Ruan Y.L. Suppression of sucrose synthase gene expression represses cotton fiber initiation, elongation and seed development./ Y.L. Ruan, D.J. Llewellyn, R.T. Furbank//Plant Cell. 2003. — V. 15. — P.952−964.
  150. Sanatombi K. DNA profiling of Capsicum landraces of Manipur./K. Sanatombi, S. Sen-Mandi, G.J. Sharma//SciHort. 2010. — V. 124. P.405−408.
  151. Sarwat M. Analysis of genetic diversity through AFLP, SAMPL, ISSR and RAPD markers in Tribulus terrestris./M. Sarwat, S. Das, P. S. Srivastava//A medicinal herb plant cell Reports. 2008. — V.27. — P.519 -528.
  152. Sato T. Intercellular localization of acid invertase in tomato fruit and molecular cloning of a cDNA for the enzyme./T. Sato, T. Iwatsubo, M. Takahashi// Plant Cell Physiology. 1993. — V.34. -P.263−269.
  153. Sensi E. DNA fingerprinting and genetic relatedness among cultivated of OleaeuropaeaL. estimated by AFLP analysis./ E. Sensi, R. Vignani, M. Scali, E. Masi, M. CrestiV/SciHort. 2003. — V.97. — P.379−388.
  154. Shifriss C. A male sterile (ms-2) gene in 'California Wonder1 pepper (C. annuum).! C. Shifriss, I. Rylski//HortScience.- 1972. V.7. -P.36.
  155. Shuh D.M. Gene transfer of multiple flowers and pubescent leaf from Capsicum chinense into Capsicum annuum backgrounds./ D.M. Shuh, J.F. Fontenot//J. Am. Soc. Hort. Sci. 1990. — V.115.-P.499−502.
  156. Singh A. Combining ability in chilli./A. Singh, H.N. Singh// Indian J. Genet. And Plant Breed. 1976. — V.36. — № 2. — P.201.
  157. Singh A. Genetic components for yield and its contributing fruits in chili {Capsicum annuum L.)./A. Singh, H.M. Singh//Haryana J. Hort. Sci. 1977. — V.6. -P.155−160.
  158. Singh A. Combining ability in chilli./A. Singh, FI.M. Singli//Indian J. Agr. Sci. 1978. — V.48. — № 1. — P. 29−34.
  159. Soh A.C. Heterosis and combining ability in diallel cross of chilli {Capsicum annuum L.)./A.C. Soh, T.C. Gap, K.M. Graham// Agr. Sci. 1976. — V.87. — № 2 -P.447−449.
  160. Soleimani V.D. AFLP and pedigreebased genetic diversity estimates in modern cultivars of durum wheat Triticum turgidum L. subsp. durum (Desf.) Husn./V.D. Soleimani, B.R. Baum, D.A. Johnson//Theor. Appl. Genet. 2002.104. -P.350−357.
  161. Smith P.G. Inheritance of brown and green mature color in peppers./ P.G. Smith//J. Hered. 1950. — V.41. -P.138−140.
  162. Sprague G.F. General use specific combining ability in single crosses of corn. / G.F. Sprague, L.A. Tatum//J. Amer. Soc. Agron. -1942. V.34. -P.923−931.
  163. Stewart C. The Pun I gene for pungency in pepper encodes a putative acyl-transferase./C. Stewart, B.C. Kang, K. Liu, M. Mazourek, S.L. Moore, E.Y. Yoo, B.D. Kim, I. Paran, M.M. Jahn//Plant J. 2005. — V.42. -P.675−688.
  164. Suthanthirapandian R. Combining ability for yield and yield components in chillies (Capsicum annuum L.)./ R. Suthanthirapandian, K.G. Shanmugavelu// South Indian Hort. V.40(4). — 1992. — P.202−206.
  165. Talhinhas P. AFLP, ISSR and RAPD markers reveal high levels of genetic diversity among Lupinus spp./P. Talhinhas, J. Neves-Martins, J. Leitao// Plant Breed. 2003. — V.122. — P.507−510.
  166. Tamiru M. Genetic diversity in yam germplasm from Ethiopia and their relatedness to the main cultivated Dioscorea species assessed by AFLP markers./ M. Tamiru, H.C. Becker, B.L. Maass//Crop Sci. 2007. — V.47. -P.1744−1753.
  167. Thakur M.R. Inheritance of ascorbic acid content in pepper./ M.R. Thakur, H.C. Brar// SABRO. 1975. — V.7. — P.225−229.
  168. Thakur P.C. Diallel analisis of some quantitative traits in sweet pepper./ P.C. Thakur, H.C. Gill, P.M. Bhagchndani//Indian J. Agric. Sci. 1981. — V.50. -P.811−817.
  169. Vos P. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting./ P. Vos, R. Hogers, M. Bleeker, M. Reijans, T. van de Lee, M. Homes, A. Frijters, J. Pot, J. Peleman, M. Kuiper, M. Zabeau//Nucleic Acids Research.- 1995. V.23. — P. 4407−4414.
  170. Walsh B.M. Phylogenetic relationships of Capsicum (Solanaceae) using DNA sequences from two noncoding regions: the chloroplast atpB-rbcL spacer region and nuclear waxy introns./ B.M. Walsh, S.B. Hoot// Int. J. Plant Sei. 2001.-V.162. -P. 1409−1418.
  171. Wang, F. Isolation and Sequencing of Tomato Fruit Sucrose Synthase cDNA Text. / F. Wang, A. C. Smith, M. Brenner // Plant Physiology 1993. — V. 103 -P. 1463−1464.
  172. Wang H. Advances in the heterosis breeding using the CMS lines./ H. Wang, D. Wang, Y. Li// J. Guangdong Agri. Sei. 2003. — V.5 — P. 16−18.
  173. Yuan J. Study of floral organ morphology and inheritance of a new functional male sterile pepper line./ J. Yuan, S. Li// Hereditas (Beijing). 2000. — V.22. -P.28−30.
  174. Zeeman, S.C. The diurnal metabolism of leaf starch Text. / S. C. Zeeman, S. M. Smith, A. M. Smith // Biochem 2007. — V. 401 — P. 13−28.
  175. Zrenner R. Evidence of the crucial role of sucrose synthase for sink strength using transgenic potato plants (Solanum tuberosum L.)./ R. Zrenner, M. Salanou-bat, L. Willmitzer, U. Sonnewald// Plant J. 1995. — V.7. — P.97−107.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!