Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Оценка и минимизация влияния низких доз техногенного радиационно-химического воздействия на млекопитающих

Диссертация: Оценка и минимизация влияния низких доз техногенного радиационно-химического воздействия на млекопитающих
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В результате модернизации конструкции газооптической схемы анализатора экологического газортутного анализатора ЭГРА-01 предел обнаружения ртути в водных растворах на анализаторах данного типа существенно снижен в 5 раз — с 0,05 до 0,01 мкг/дм3 и соответственно снижена нижняя граница диапазона измерений ртути в водных растворах в 5 раз с 0.5 до 0.1 мкг/дм. Это сделало возможным определять… Читать ещё >

Оценка и минимизация влияния низких доз техногенного радиационно-химического воздействия на млекопитающих (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Аналитический обзор
    • 1. 1. Мониторинг металлов-экотоксикамтов
      • 1. 1. 1. Мониторинг содержания тяжелых металлов биологических в пробах
  • Свинец
    • 1. 1. 2. Мониторинг металлов по биологическим показателям
  • Ртуть
    • 1. 2. 1. Масс-спектрометрия с индуктивно связанной плазмой (МС-ИСП)
    • 1. 2. 2. Атомно-абсорбционная и атомно-флуоресцентпая спектрометрии
    • 1. 2. 3. Метод инверсионнй вольтамперометрии (ИВА)
    • 1. 2. 4. Аппаратурное и метрологическое обеспечение выполнения измерений и контроль качества
    • 1. 3. 1. Генотоксические эффекты тяжелых металлов
    • 1. 3. 2. Нейротоксические эффекты тяжелых металлов
    • 1. 4. Реакции организмов при радиационн- химических воздействиях в низких дозах
    • 1. 4. 1. Генотоксические эффекты малых доз радиационно-химических воздействий
    • 1. 4. 2. Нейротоксические эффекты малых доз радиационно-химических воздействий
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Материалы и реактивы
    • 2. 3. Облучение животных
    • 2. 4. Методика измерения массовой концентрации общей ртути в пробах воды
      • 2. 4. 1. Материально-техническое обеспечение метода
      • 2. 4. 2. Подготовка к выполнению измерений
      • 2. 4. 3. Выполнение измерений
      • 2. 4. 4. Вычисление результатов измерений
      • 2. 4. 5. Контроль результатов измерений
    • 2. 5. Методика измерений массовой концентрации общей ртути в пробах крови и почках крые
      • 2. 5. 1. Материально-техническое обеспечение метода
      • 2. 5. 2. Подготовка к выполнению измерений
      • 2. 5. 4. Обработка результатов измерений
      • 2. 5. 5. Контроль результатов измерений
    • 2. 6. Методика измерений содержания свинца в пробах крови, почках и воде
      • 2. 6. 1. Материально-техническое обеспечение метода
      • 2. 6. 2. Подготовка к выполнению измерений
    • 2. 7. Определение концентрации ДНК в лизатах клеток крови
    • 2. 8. Двухпараметровый флуоресцентный анализ структуры ДНК нуклеоидов
    • 2. 9. Метод оценки естественной поведенческой активности животных
    • 2. 10. Статистическая обработка результатов
  • Глава 3. Результаты инструментального мониторинга тяжелых металлов и биотестирование при радиационно-химических воздействий в низких дозах
    • 3. 1. Результаты биомониторипга ртути и биотестирования радиационно
  • -ртутных воздействий в малых дозах
    • 3. 1. 1. Результаты определения концентрации ртути в крови и почках крыс
    • 3. 1. 2. Результаты биотестирования ранних эффектов и восстановления
    • 3. 1. 3. Изменения естественной поведенческой активности животных после радиационно-ртутных воздействий в малых дозах
    • 3. 1. 4. Отдаленные эффекты
    • 3. 2. Результаты биомониторинга свинца и биотсстирования радиациоппосвинцовых воздействий в малых дозах
    • 3. 2. 1. Результаты определения концентрации свинца в пище, крови и почках крыс
    • 3. 2. 2. Результаты биотестирования ранних эффектов и восстановления
    • 3. 2. 3. Изменение естественной поведенческой активности животных
    • 3. 2. 4. Отдаленные эффекты
  • Глава 4. Влияние минеральной воды на цитотоксические эффекты малых доз радиационно-ртутных воздействий
    • 4. 1. Результаты влияния минеральной воды на биомониторинг ртути при малых дозах радиационно-ртутных воздействий
    • 4. 2. Результаты влияния минеральной воды на показатели биотестирования малых доз радиационно-ртутных воздействий
  • Выводы

Проблема постепенного ухудшения экологической обстановки в отдельных странах, вследствие ослабления контроля в условиях рыночного производства, неизбежно ведет к обострению ситуации во всем мире. Болезнь Минамата в Японии (1956 г.), отравление метилртутью в Ираке (1971;72 гг.), Чернобыльская авария в СССР (1986 г.) — лишь незначительная часть списка известных экологических катастроф, которые сопровождались воздействиями ртути, радиации и свинца, и повлекли за собой массовые поражения людей, независимо от их профессиональной занятости. В настоящей работе рассматриваются непрофессиональные воздействия металлов-экотоксикантов на человека и животных в дозах, близких предельно допустимым. Такие величины воздействий обычно не вызывают беспокойства служб соответствующего контроля состояния окружающей среды (в частности, СЭС, радиационной безопасности), но в повседневной жизни они оказывают влияние на значительно большие контингента людей, чем вышеупомянутые катастрофы. Работы по изучению загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами, а также комбинированных повреждающих воздействий в России до настоящего времени были связаны, в основном, с исследованием проблем профессиональной вредности [1,2,3,4,5,6,7,8]. Оценки непрофессионального воздействия солей металлов-экотоксикантов в сочетании с облучением в малых дозах практически не проводилась. Однако, уровень концентраций тяжелых металлов в организмах людей, профессионально связанных с этими токсикантами, как правило значительно выше, чем при непрофессиональном контакте. В тоже время сочетанные непрофессиональные воздействия металлов-экотоксикантов и радиации на человека и животных в дозах, близких к предельно допустимым практически не изучены. Такие величины воздействий обычно не вызывают беспокойства служб соответствующего контроля состояния окружающей среды (в частности, СЭС, МЧС, радиационной безопасности), но в повседневной жизни значительная часть населения особенно в больших городах подвергается комбинированным радиационно-химическим воздействиям в низких дозах. В частности, по данным многолетних исследований в ряде регионов земного шара, в том числе и С.-Петербурге население подвергается воздействию техногенных источников ионизирующих излучений применяемых в медицинских целях 3 ежегодное флюорографическое обследование, рентгенодиагностика при заболеваниях отдельных органов), а также воздействию природных источников радиации в основном в южной части С.-Петербурга (Московском, Красносельском, Пушкинском, Гатчинском и др. районах) к которым следует отнести радон и его дочерние продукты распада в воздухе помещений. В этих районах близко к поверхности земли подходят диктионемовые сланцы с повышенным содержанием природного урана, что приводит к 10−100 кратным превышениям уровня радиации выше фонового. Кроме того через С.-Петербург проходит санкционированный транзит радиационных грузов. По результатам радиационного контроля на каждые 8 тыс. тонн радиационного груза отмечается один случай радиоактивного загрязнения. По имеющимся данным, уровень облучения жителей С. — Петербурга от основных источников ионизирующего излучения в 2−3 раза выше среднероссийского. [9]. Вместе с тем в С.-Петербурге средняя концентрация ртути в верхнем горизонте городских почв в 13 раз выше регионального фонового уровня. В городе происходят до 250 случаев в год аварийных разливов металлической ртути и как правило на территориях участков на которых была выполнена демеркуризация остается повышенное значение концентраций паров ртути, но ниже ПДК. Часто по неосторожности в помещениях бьются градусники и лампы дневного света содержащие ртуть и т. д. Результаты обработки более 3000 анализов мочи, крови, волос показали, что вероятные масштабы ртутной интоксикации населения С.-Петербурга весьма высоки: около 1 млн. человек нуждаются в специализированном медицинском обследовании, а около 200 тыс. человек — в лечении и реабилитации. [10]. В С. Петербурге среднее содержание свинца в почвах и природной воде в 8 раз выше регионального фонового уровня. В С.-Петербурге в районах оживленных автомагистралей весовое содержание свинца в воздухе может превышать ПДК в 100 и более раз [9]. Установлена корреляционная зависимость между соотношением уровня свинца в бензине, интенсивностью движения транспорта и концентрацией свинца в крови [11]. Ежегодное увеличение количества автотранспорта в С.-Петербурге, работающего на этилированном бензине, и свинцовые выбросы промышленных предприятий в виде различных соединений в атмосферу и водные объекты приводят к дальнейшему росту содержания свинца в крови у городского населения.

Известно, что неблагоприятные последствия свинцовых или ртутных воздействий (в частности, генотоксичность, которая определялась по числу микроядер в имплантируемых клетках мышиного эмбриона) могут быть в одних случаях усилены сопутствующими факторами — например, рентгеновским облучением [12,13,14], а в других — компенсированы сопутствующими добавками цинка, селена или кальция [15], что может быть важно с профилактической точки зрения.

Утвержденные в начале 1980;х годов Минздравом СССР методики анализа были ориентированы на повышенный уровень концентраций тяжелых металлов в крови для профессиональных условий и существовавший в те времена технический уровень оснащения лабораторий. Следовательно, такая задача как определение крайне низких концентраций металлов-экотоксикантов в диагностическом биоматериале для оценки их не профессионального, а повседневного воздействия на население является как актуальной, так и повой для лабораторных аналитических служб России. В связи с этим для осуществления инструментального мониторинга малых доз тяжелых металлов может представляться целесообразным разработка более чувствительных аналитических методов и отечественных приборов, которые вместе с тем должны осуществлять не единичный, а серийный анализ биологического материала. Однако, неизвестно, в каких случаях такой подход окажется информативным, т.к. на ведущее место в определении риска неблагоприятных последствий таких низкодозовых воздействий, выходит эффект сочетания действующих факторов. В связи с этим при оценке комбинированного радиациопно-химичсского воздействия в малых дозах наряду с инструментальным определением содержания токсикантов в организме, представляется актуальным параллельный сравнительный биомониторинг показателей крови. Работы проводились в рамках межинститутского плана НИР Института токсикологии МЗ РФ и ЦНИРРИ МЗ РФ № 024/072/001 по теме «Разработка научных основ медицинского обеспечения химической безопасности населения России».

Цель исследования состоит в установлении закономерностей пострадиационных изменений содержания металлов-экотоксикантов п показателей биотестирования после радиационно-химических воздействий в малых дозах на организмы экспериментальных животных.

Основные задачи работы. 1. Усовершенствовать конструкцию газооптической схемы экологического газортутного анализатора (ЭГРА-01) для снижения предела обнаружения ртути в жидких пробах. ф 2. Установить закономерности пострадиационных изменений содержания ртути и свинца в крови и почках экспериментальных животных, после однократного у-облучения в малых дозах при пролонгированном введении низких доз металлов-экотоксикантов с питьевой водой. 3. Определить изменения показателей биотестирования после радиационно-химических воздействий в низких дозах на экспериментальных животных.

4. Оценить эффекты питьевых минеральных вод на показатели мониторинга содержания металлов и биотестирования при низких дозах радиационно-химических воздействий в эксперименте. Научная новизна работы.

В настоящей работе впервые показана селективная аккумуляция металлов-экотоксикантов в организме животных после действия малых доз у-радиации.

Впервые на организме млекопитающих продемонстрировано, что показатели биотестирования, измененные в относительно ранние сроки после радиационно-химических воздействий в малых дозах, позволяют лучше прогнозировать отдаленные эффекты подведенного повреждения на организм животного, чем показатели мониторинга содержания металлов. Впервые установлено, что питьевые минеральные воды могут быть эффективными средствами предотвращения неблагоприятных последствий на организмы млекопитающих при радиационно-ртутных воздействиях в малых дозах.

Теоретическая и практическая значимость.

Результаты работы имеют основополагающее значение для оценки реакций организмов животных и человека в области малых доз радиационно-химических воздействий. Установлена практическая эффективность низкоминерализованных питьевых минеральных вод, как средства предотвращения неблагоприятных последствий при радиационно-ртутных воздействиях в малых дозах. Апробация работы.

Результаты исследования были доложены на 4-й международной конференции.

Радиационная безопасность: Экология — Атомная энергия", Санкт-Петербург, 2001 и 7-й международной конференции «Ионы металлов в биологии и медицине», Санкт-Петербург, 2002.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 160 страницах и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов собственных исследований и обсуждения, выводов и списка литературы (274 источников). Работа проиллюстрирована 9 рисунками и 11 таблицами.

выводы.

1. В результате модернизации конструкции газооптической схемы анализатора экологического газортутного анализатора ЭГРА-01 предел обнаружения ртути в водных растворах на анализаторах данного типа существенно снижен в 5 раз — с 0,05 до 0,01 мкг/дм3 и соответственно снижена нижняя граница диапазона измерений ртути в водных растворах в 5 раз с 0.5 до 0.1 мкг/дм. Это сделало возможным определять содержание экотоксиканта в 0,1 мл сыворотки крови прижизненно у мелких лабораторных животных, что ранее было невозможно сделать на других однотипных отечественных приборах. Разработаны и проходят опытную апробацию «Методические рекомендации по определению содержаний ртути в объектах окружающей среды и биологических материалах с использованием ЭГРА-01» MP 04.09.01 и «Методика выполнения измерений для ЭГРА-01 по определению массовой концентрации ртути в пробах воды» МВИ 0402−02. Таким образом, решена техническая задача — существенно снижен предел обнаружения экотоксиканта на отечественном анализаторе данного типа с точностью, не уступающей другим зарубежным и отечественным аналогам.

2. Установлено, что при хроническом введении с питьевой водой крысам солей ртути или свинца в низких концентрациях (0,7 мкг/л или 2,0 мг/л, соответственно) под действием общего однократного у-облучения в дозах 25 или 50 сГр увеличивается аккумуляция ртути в органе-мишени (почках) на 14,3 — 22,2% по сравнению с контролем, но не в крови экспериментальных животныхзначимой аккумуляции свинца после действия низких доз радиационно-свинцовых воздействий у подопытных животных отмечено не было.

3. В результате сочетанного действия хронического введения соли ртути в допустимой концентрации и у-облучения в дозе 25 сГр (но не 50 сГр) наблюдался генотоксический эффект — снижалось содержание ДНК в лейкоцитах крови крыс к концу острого периода пострадиационного восстановления, а через 3 месяца после облучения наблюдалось изменение естественной поведенческой активности животных: более чем в 2 раза возрастало время поиска пищи в лабиринте по сравнению с контролем. У крыс этой подопытной группы было зарегистрировано достоверное сокращение продолжительности жизни на 14,2+5,6% по сравнению с животными в группе интактного контроля.

4. После сочетанного действия хронического введения соли свинца в низкой концентрации и малых доз радиации генотоксический эффект в лейкоцитах периферической крови наблюдался лишь через 24 часа после у-облучения, при этом изменялись показатели структуры ДНК белых клеток крови, что могло свидетельствовать об активации репарационных процессов в этой клеточной популяции. К 30 суткам после облучения измерявшиеся биохимические и гематологические показатели нормализовались, а у подопытных крыс не наблюдалось достоверных отклонений показателей естественно поведенческой активности в сравнении с животными контрольной группы. Продолжительность жизни подопытных крыс не отличалась от величины аналогичного контрольного параметра.

5.

Введение

питьевых минеральных вод крысам, подвергнутым хроническому воздействию допустимых концентраций ртути и у-облучения в дозе 25 сГр, предотвращало аккумуляцию металла-токсиканта в почках животных и генетическую нестабильность в лейкоцитах крови, а также способствовало увеличению выживаемости крыс в течение 18 месяцев пострадиационного периода в 4,5 или 7,1 раза по сравнению с соответствующим контролем. Эти изменения являются свидетельством эффективности применения соответствующих минеральных вод как средства профилактики неблагоприятных последствий при радиационно-ртутном воздействии в малых дозах, причем они зависели от пола животных.

6. В случае комбинированного действия радиационных-химических факторов в низких дозах сложно прогнозировать модификацию токсического эффекта и отдаленные последствия — сокращение продолжительности жизни у млекопитающих, исходя только из данных инструментального определения содержания химического элемента в организме и физической дозиметрии. Поэтому целесообразно в таких случаях включать дополнительно показатели биотестирования токсичности (в частности, гематотоксичности и нестабильности генома) в программу оценки степени поражения организмов человека и животных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В., Тиунов JI.A., Васильев Г. А. Комбинированное действие промышленных ядов. / М.: Медицина.-1975.-256 с.
  2. И.В., Фоменко В. Н. Отдаленные последствия влияния химических соединений на организм. / М.:Медицина.-1979.-232с.
  3. И.М., Колесников B.C., Луковенко В. П. Тяжелые металлы во внешней среде. Современные гигиенические и токсикологические аспекты. / Минск: Навука i тэхника.-1994.-285 с.
  4. Bauchinger М., Schmid Е. Cytogenetic effects in lymphocytes of formaldehyde workers of a paper factory. // Mutat.Res.-1985.-v.158, N 1.-p. 195−199.
  5. Bogadi-Sare A., Brumen V., Turk R., Karacic V., Zavalic M. Genotoxic effects in workers exposed to benzene: with special reference to exposure biomarkers and confounding factors. // Ind.Health.- 1997.-v.35, N 2.-p.367−373.
  6. Lalic H., Radosevic-Stasic B. Cromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes in subjects occupationally exposed to ionizing radiation or chemical clastogens. // Folia Biologica.-2002.-v.48, N 3 .-p. 102−107.
  7. Rossner P., Cerna M., Bavorova H., Pastrorkova A., Okadlikova D. Monitoring of human exposure to occupational genotoxicants. // Centr.Eur.J.Public Health.-1995.-v.3,N2.-p.219−223.
  8. Sorsa M., Ojajarvi A., Salomaa S. Cytogenetic surveillance of workers exposed to genotoxic chemicals: preliminary experiences from a prospective cancer study in a cytogenetic cohort. //Teratog.Carcinog.Mutagen.-1990.-v.10, N 2.-p.215−221.
  9. Ю.Погарев С. Е., Рыжов В. В., Горький А. В. и др. 'Ртуть как приоритетный загрязнитель городской среды (на примере Санкт-Петербурга и Варшавы) / Тез.докл.З-й международн. конф. «Ртутная безопасность: экология города», Варшава, 2002, с.35−36.
  10. Y.V. Оценка риска нейротоксического воздействия свинца на развитие детей. // В кн. «Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика». Под ред. С. П. Нечипоренко. СПБ: «КАРО» 1999.-е 35−39.
  11. Streffer С., Muller W.-U. Radiation risk from combined exposures to ionizing radiation and chemicals.//Adv.Radiat.Biol.- 1984.-v.11.-p. 173−210.
  12. Muller W.-U., Streffer C. Risk to preimplantation mouse embryos of combinations of heavy metals and radiation. // Int.J.Radiat.Biol.-1987.-v.51, N 6.-p.997−1006.
  13. Muller W.-U., Streffer C., Fischer-Lahdo C. Enhancement of radiation effects by mercury in preimplantation mouse embryos in vitro. // Archiv Toxicol.-1985.-v.57.-p.114−118.
  14. Ballew C., Bowman B. Recommending calcium to reduce lead toxicity in children: a critical review. //Nutr. Rev.- 2001.-v.59, N l.-p.71−19.
  15. В. Яды в нашей пище. / М.: Мир, 1993, 189 с. 17.3игель X., Зигель Ф. ред. Некоторые вопросы токсичности металлов. М.: Мир. 1993,368с.
  16. В.Н., Хамитов Р. З., Будников Г. К. Эколого-аналитический материал супертоксикантов. М.: Химия, 1996. 319 с.
  17. Г. К. Тяжелые металлы в экологическом мониторинге водных систем. // Соросовский образоват. журн.-1998.- N 5.- с. 23−29.
  18. .А. К определению перечня приоритетных загрязняющих веществ в окружающей среде городов России. // Токсикологич.вестник.-2002.-№ 5.-С.6−12.
  19. Elinder C.-G., Friberg L., Kjellstrom Т., Nordberg G., Oberdoerster G. Biological monitoring of metals. Geneva: WHO.-1994.-78 p.
  20. Abe Т., Ohtsuka R., Hongo Т., Suzuki Т., Tohyama C., Nakamoto A., Akagi H., Akimichi T. High hair and urinary mercury levels fish eaters in the nonpolluted environment of Papua New Guinea. // Arch. Environ. Health.-1995- v.50, N 2.-p.367−373.
  21. Sherlock J.C., Hislop J.G., Newton D., Topping G., Whittle K. Elevation of mercury in human blood from controlled chronic ingestion of methylmercury in fish. // Human Toxicol.-1984.-v.3, N 1 -p. 117−131.
  22. World Health Organization. Environmental health criteria 101. Methylmercury.1990-
  23. Batzevich V.A. Hair trace element analysis in human ecology studies. // Sci. Total.Environ.-1995,-v. 16, N l.-p.89−98.
  24. Batista J., Schuhmacher M., Domingo J.L., Corbella J. Mercury in hair for child population from Tarragona Province, Spain. // Sci.Total.Environ.-1996.- v. 193, N 2.-p.l43−148.
  25. .В. ред. Реакции организма человека на воздействие опасных и вредных производственных факторов (метрологические аспекты). Справочник в 2-х т. / М.: Изд-во стандартов.-1991.-Т.2.-367 с.
  26. Г. А., Соболев М. Б., Ревич Б. А. Свинцовая опасность и здоровье населения: клиника, диагностика и лечение токсического действия. // В кн. Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика. СПб: Каро, 1999, с. 18−26.
  27. Environmental health criteria 101. Methylmercury. Geneva, International Programme on Chemical Safety, World Health Organization, 1990. Environmental health criteria 118. Inorganic mercury. Geneva, International Programme on Chemical Safety, WHO, 1991.
  28. Г. К. Определение следовых количеств веществ как проблема современной аналитической химии. // Соросовский образоват. журн.-2000-т.6, N-3-c.45−51.
  29. С.П. ред. Предупреждение отравлений свинцом у детей раннего возраста // В кн. Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика. СПб: Каро, 1999, с.50−66.
  30. Delves H.T., Campbell M.J. Measurement of total lead concentrations and lead isotope ration in whole blood by use of inductively coupled plasma source mass spectrometry. // J.Anal.At.Spectrom. 1988. — v.3, N 2.- p.343−348.
  31. Bakowska E. Determination of heavy metals in whole blood by ICP-MS. // Eur.Clin.Laboratory.- 2001.-v.20, N 6.-p.l0−12.
  32. Pruszkowski S., Neubauer K., Thomas R. An overview of clinical applications by inductively coupled plasma mass spectrometry. // Atomic Spectroscopy.-1998.-v. 19, N З.-p.l 11−115.
  33. R., Gray D.J., Туе D. Hydride generation ICP-MS (Hg-ICP-MS) for ultra-low level determination of mercury in biota. // Water Air Soil Pollut.-1995.-v.80.-p.1237−1245.
  34. NCCLS document C38 C38-P, control of pre-analytical variation in trace element determination- Proposed guideline (1994) — ISBN 1−56 238−262−4.
  35. Parsons P.J., Slavin W. A rapid Zeeman graphite furnace atomic absorption spectrometric method for the determination of lead in blood. // Spectrochim. Acta.-1993.-v.43, pt.B.-p.925−939.
  36. .А. Биомониторинг свинца как показатель свинцовой экспозиции. // В кн. Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика. П/ред. С. П. Нечипоренко. СПб: Каро, 1999, с. 76−85.
  37. Hatch W.R., Ott W.L. Determination of sub-microgram quantities of mercury by atomic absorption spectrophotometry. // Anal.Chem.-1968.-v.40.-p.2085−2087.
  38. Bourcier D.R., Sharma R.P. Drown D.B. A stationary cold vapor method for atomic absorption measurement of mercury in blood and urine used for exposure screening. //Am.Ind.Hyg.Assoc.J.-1982.-v.43.-p.329−332.
  39. Boitreau H.L., Pineau A., Mercury. // In McKenzie H.A., Smythe L.E. eds. Quantitative Trace Analysis of Biological Materials. Elsevier, Amsterdam, The Netherlands, pp.553−560.
  40. Popena E.A., Schmaeler M.A. Interaction of human polymerase p with ions of copper, lead, and cadmium. // Arch.Biochem.Biophys.-1919.-v. 196, N 1 .-p. 109−120.
  41. Lindquist O. Mercury in the Swedish environment. 3.: Measurement of environmental mercury. // Water Air Soil Polut.-1991.-v.55, N 1.-p. 19−22.
  42. Welz В., Melcker M. Decomposition of marine biological tissue for determination of arsenic, selenium, and mercury using hydride-generation and cold-vapor atomic absorption spectrometries. // Anal.Chem.-1985,-v.57, N 2.-p.427−431.
  43. Л.А., Кучмезов Д. О. Состояние и перспективы развития инструментальных средств и метрологического обеспечения измерений концентраций ртути / Сборник материалов 3 научно-технической конференции-СПб, 1999, 86−97 с.
  44. Методические указания по определению содержания ртути в объектах окружающей среды и биологических материалах МУК.4.1.005−4.1.008−94
  45. В.В., Гладков С. Ю. Состояние и перспективы развития аппаратуры для экологических газортутных измерений //Разведка и охрана недр 2002.-№ 12.-е. 50−52.
  46. С Семенов В. В., Гладков С. Ю. Аппаратура для экологических газортутных измерений //. РИА «Стандарты и Качество», прил. «Партнеры и конкуренты» -М. 2003.-№ 7.-е. 16−20.
  47. Методика определения массовой концентрации ртути в пробах воды с использованием ЭГРА-01 (МВИ 04−02−02)
  48. Методические рекомендации по определению содержаний ртути в объектах окружающей среды и биологических материалах с использованием ЭГРА-01 (MP 04.09.010)
  49. С.Е., Рыжов В. В., Машьянов Н. Р. Использование анализатора ртути РА-915+ при прямом определении ртути в биопробах. // В кн. «Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика». П/ред. С. П. Нечипоренко. СПб: «Каро».-1999.- с. 111−112.
  50. С.Е., Рыжов В. В., Машьянов Н. Р., Шолупов С. Е., Жарская В. Д. Новый метод определения ртути, получаемой человеком при воздействии её паров. // Экологич. химия.-2002.-т.11, № 4.-С.271−278.
  51. Magos L. Selective atomic absorption determination of inorganic mercury and methylmercuiy in indigested biological samples. //Analyst.-1971.-v.96.-p.847−853.
  52. Westoo G. Determination of methylmercuiy compounds in foodstuffs. // Acta Chem.Scand.-1967.-v.21 .-p. 1790−1800.
  53. Decart G., Baeyens W., Bradley D., Goeyns L. Determination of methylmercury in biological samples by semi-automated headspace analysis. // Anal.Chem.-1985.-v.57.-p.2788−2791.
  54. Bloom N.S. On the chemical form of mercury in edible fish and marine invertebrate tissue. // Can.J.Fish. Aquat.Sci.-1992.-v.49.-p. 1010−1017.
  55. Larsens P., Baeyens W. Improvement of the semiautomated headspace method for the determination of methylmercury in biological samples. // Anal.Chim. Acta.-1990.-v.228, N l.-p.93−99.
  56. Larsens P., Leemakers M., Baeyens W. Determination of methylmercury in fish by headspace-gas chromatigraphy with microwave-induced-plasma-detection. // Water Air Soil Pollut.-1991.-v.56, N l.-p.l03-l 15.
  57. Holak W. Determination of methylmercury in fish by high performance liquid chromatograpy. // Analyst.-1982.-v.107.-p. 1457.
  58. Horvat M. Determination of methylmercury in biological standard reference materials. // Water Air Soil Pollut.-1991.-v.56, N l.-p.95−102.
  59. May K.L., Stoeppler M., Reisinger K. Studies in the ratio totalmercury/methylmercury in the aquatic food chain. // Environ.Toxicol.Chem.-1987.-v.13, N l.-p.153−159.
  60. Schiutu M., Jean-Caurant F., Amiard J.C. Organomercury determination in biological reference materials: Application to a study on mercury speciation in marine mammals of the Faroe Islands. // Ecotoxicol.Environ.Saf.-1992.-v.24, N 1.-p.95−101.
  61. Gutierrez J., Travieso A.M., Pubillon E.S. Rapid determination of inorganic and methylmercury in fish. // Water Air Soil Pollut.-1993.-v.68, n 2.-p.315−323.
  62. Bloom N.S., Crecelius E.A. Determination of mercury in seawater at sub-nanogram per liter levels. // Mar.Chem.-1983.-v.14, N l.-p.49−59.
  63. В.В., Гладков С. Ю., Ахмадулина С. О. Современное аппаратурное и метрологическое обеспечение работ по контролю загрязнения ртутью окружающей среды // Разведка и охрана недр 2001.- № 9.- с.64−67.
  64. Р.К., Фомина О. С. Методические рекомендации выполнения метода потенциометрического инверсионного анализа биопроб на содержание тяжелых металлов. Методич. рекомендации утв. МЗ РФ, №-96/215, 1996.
  65. .А., Быков А. А., Ляпунов С. М., Прихожан И. Ф., Соболев М. Б., Опыт изучения воздействия свинца на состояние здоровья детей г. Белово. // Мед. труда и пром. экологии, 1998, N12, с.25−32.
  66. С.П. Радиобиология человека и животных. / М.: Высш.шк.-1988.-424 с.
  67. Elbert R.A., Anderson D.W. Mercury levels, reproduction, and hematology in western grebes from three California lakes, USA. // Environ.ToxicoI.Chem.-1998.• v.17, N 2.-p.210−213.
  68. Guyton A.C. Human Physiology and Mechanisms of Disease. / W. B. Saunders, Philadelphia, PA, USA, 1987.
  69. Muro L.A., Goer R.A. Chromosomal damage in experimental lead poisoning. // Arch. Pathol.-1969.-v.87, N 3.-p.660−663.
  70. Schwartz G., Lehnert G., Gebhart E. Chromosomenschaden bei beruflicher Bleiebelastung. // Dtsch.Med. Wochenschr.-1970.-Bd.95.-S. 1636−1641.9 91. Show M.M. Human chromosome damage by chemical agents. // Ann.Rev.Med.1970.-v.21 .-p.409−432.
  71. Gerber G.B., Leonard A., Jacquet P. Toxicity, mutagenicity and teratogenicity of lead. // Mutation Res.-1980.-v.76, N 1.-p. 115−141.
  72. И.М., Утко Н. А., Короленко Т. К., Мурадян Х. К. Влияние свинца на развитие окислительного стресса. // Токсикологич.вестник.-2002.-№ 3.-С.22−26.
  73. Yang J.L., Wang L.C., Chang C.Y. et al., Singlet oxygen is major species particippating in the induction of DNA strand breakage and 8-hydroxydeoxyguanosine adduct by lead acetate. // Environ.MoIec.Mutagen.-1999.-v.33,N 1 .-p. 194−201.
  74. Ariza M.E., Holliday J., Williams M.V. Mutagenic effect of mercury (II) in eukaryotic cells. // In vivo.-1994.-v.8, N 3.-p.559−564.
  75. Valverde M., Trejo C., Rojas E. Is the capacity of lead acetate and cadmium chloride to induce genotoxic damage due to direct DNA-metal interaction? // Mutagenesis.-2001 .-v. 16, N 2.-p.265−270.
  76. Jacquet P., Tachon P. Effects of long-term lead exposure on monkey leukocyte chromosomes.// Toxicol. Lett.-1981.-v.8,N 1.-p. 165−169.
  77. Tachi К, Nishimae S., Saito K. Cytegenetic effects of lead acetate on rat bone marrow cells. // Arch. Environ. Health.-1985.-v.40, N 2.-p.l44−147.
  78. Aly F.A.E. Potential mutagenic effect of lead acetate in mouse bone marrow and• culture mouse spleen cells. // Cytologia.-2002.-v/67, N 1 .-p. 1 -7.
  79. Najak B.N., Ray T.V., Persand, Nigli M. Relationship of embryo toxicity and genotoxicity of lead nitrate in mice. // Exp. Pathol.-1989.-v.36, N l.-p.65−73.
  80. Jacquet P., Leonard A., Gerber G.B., Cytogenetic investigations on mice treated with lead. //J.Toxicol. Environ. Health.-1977.-v.2.-p.619−624.
  81. Beckman L., Nordenson I., Interactions between some common genotoxic• agents.// Human Heredity.-1986.-v.36.-p.397−401.
  82. Hartwig A. Role of DNA repair inhibition in lead- and cadmium-induced genotoxicity. A review. // Environ. Health Perspect.-1994.-v.102, suppl.3.-p.45−50.
  83. Bauchinger M., Schmid E., Schmid D. Chromosomenanalise bei Verkehrspolizisten mit arhohter Bleilast. //Mutation Res.-1972.-v.16, N 2.-p.407−412.
  84. Forni A., Sciame A., Bertazzi R.A., Alessio L. Chromosome and biochemical studies in women occupationally exposed to lead. // Arch. Environ. Health.-1980.v.35,N2.-p.l39−146.
  85. Bauchinger M., Dresp J., Schmid E., Englert N., Krause C.H.R. Chromosome analyses of children after ecological lead exposure. // Mutation Res.- 1977.-v.56, N l.-p.75−80.
  86. Hogsted T.B., Kolnid A.-M., Mitelman F., Shutz A. Correlation between blood
  87. Ф lead and chromosomal aberrations. //Lancet.-1979.-v.2.-p.8136.
  88. Dalpra L., Tibilletti G., Nocera G., Giulotto L., Auriti V., Carnelli V., Simoni G. SCE analysis in children exposed to lead emisson from smelting plant. // Mutation Res.-1983.-v.120, N 2.-p.249−256.
  89. Black M.C., Ferrell J.R., Harning R.C., Martin L.K. Jr. DNA strand breakage in freshwater mussels (Anodonta grandis) exposed to lead in the laboratory and field. // Environ.Toxicol.Chem,-1996,-v. 15, N 5.-p.802−808.
  90. Winder C., Bonin T. The genotoxicity of lead. // Mutation Res.-1993.-v.285, N 1.-p. 117−124.
  91. Radic. Biol. Med.-1995.-v.18, N 2.-p.321−336.
  92. Benton M.J., Malott M.L., Trybula J., Dean D.M., Guttman S.J. Genetic effect of mercury contamination on aquatic shail population: allozume genotypes and DNA strand breakage. // Environ.Toxicol. Chem.-2002.-v.21, N 3.-p.584−589.
  93. Betti C., Davini Т., Burale R. Genotoxic activity of methylmercury chloride and • dimethylmercury in human lymphocytes. // Mutat. Res.-1992.-v.281, n 2.-255−260.
  94. Das S.K., Sharma A., Talukder G. Effects of mercury on cellular systems in mammals. A review. // Nucleus.-1982.-v.25, N 2.-p. 193−230.
  95. Tanno K., Fukazawa Т., Tajima S., Fujiki M. Effects of methylmercury on primary cultured rat hepatocytes: cell injury and inhibition of growth factor146stimulated DNA synthesis. // Bull.Environ. Contam.Toxicol.-1992.-v.49, N 2.-p.318−324.
  96. De Flora S., Beunicelli C., Bagnasco M. Genotoxicity of mercury compounds. A review. // Mutat.Res.-1994.-v.317, N l.-p.57−79.
  97. A.B., Есенин A.B. Мониторинг и оценка риска воздействие• свинца на человека и окружающую среду с использованием биосубстратов человека. //Токсикол. Вестник.-1996.-№ 6.-С.16−30.
  98. Г. П., Малышева Е. Н., Кузнецов С. В. Влияние введения свинца беременным крысам на головной мозг их потомства (отдаленные последствия). // Бюлл.эксперим.биол.мед.-2000.-т.129, № 1.-С.28−30.
  99. Needleman H.L., Schell A., Bellinger D. The long term effect of exposure to low doses of lead in childhood: an 11 years follow-up report. // N.Engl.J.Med.-1990.• v.322,N 1.-.83−88.
  100. Stokes L., Letz R., Gerr F., Kolczak M., McNeil F.E., Chettle D.R. Neurotoxicity in young adults 20 years after childhood exposure to lead: the Bunker Hill experience. // Occup.Environ.Med.-1998.-v.55, N 2.-p.507−516.
  101. Ehle F.H., Mc Kee D.C. Neuropsychological effet of lead in occupationally exposed workers: A critical review. // Crit. Rev. Toxicol.-1990.-v.20, N 2.-p.231−255.
  102. Wren C.D., Fisher K.L., Stokes K.L. Mercury levels in Ontario Canada mink and otter relative to food and environmental acidification. // Can.J.Zool.-1986.v.64.-p.2854−2850.
  103. Wren C.D., Fisher K.L., Stokes P.M. Levels of lead, cadmium and other elements in mink and otter from Ontario, Canada. // Environ.Pollut.-1988.-v.52.-p. 193−202.
  104. Houpt K.A., Essick L.A., Shaw E.B., Alo D.K., Gilmartin J.E., Gutenmann W.H., Litlman C.B., Lisk D.J. A tuna fish diet influences cat behavior. // J.Toxicol. Environ.Health.-1988.-v.24, N 1 .-p. 161 -172.
  105. Gunderson V.M., Grant-Webster K.S., Burbacher T.M., Mottet N.K. Visualrecognition memory dificits in methylmercury-exposed Macaca fascicularis infants. // Neurotxicol.Teratol.-1988.-v. 10, N 2.-p.373−379.
  106. Eaton R.D.P., Secord D.C., Hewitt P. An experimental assessment of the toxic potential of mercury in ringex-seal liver for adult laboratory cats.// Toxicol.Appl.Pharmacol.-1980.-v.55, N 2.-p.514−521.
  107. Wren C.D., Hunter D.B., Leatherland J.F., Stokes P.M. The effect of polychlorinated biphenyls and methylmercury, singly and in combination, on mink. I: Uptake and toxic responses. // Arch. Environ.Contam.Toxicol.-1987.-v.16, N 2.-p.441−447.
  108. Albrecht J., Matyia E. Glutamate: A potential mediator of inorganic mercury neurotoxicity. // Metab. Brain Dis.-1996,-v. 11, N 1 .-p. 175−184.
  109. Aschner M., Eberle N.B., Goderie S., Kimelberg H. K Methymercury uptake in rat primary astrocyte culturu: The role of the neutral amino acid transport system. // Brain Res.-1990.-v.531, N 2.-p.221−228.
  110. Clarkson T.W. Metal toxicity in the central nervous system. // Environ. Health Perspect.-1987.-v.75, N l.-p.59−64.
  111. Ornaghi F., Ferrini S., Prati M., Giavini E. The protective effects of N-acetyl-L-cysteine against methyl mercury embryo toxicity in mice. // Fundam.Appl.Toxicol.-1993.-v.2, N 2.-p.437−445.
  112. Yang M.G., Krawford K.S., Gareia J.D., Wang J.H.C., Lei K.Y. Deposition of mercury in fetal and maternal brain. // Proc.Soc.Exp.Biol.Med.-1972.-v.141.-p.1004−1007.
  113. Inouye M., Marao K., Kajiwara Y., Behavioral and neuropathological effects of prenatal methylmercury exposure in mice. // Neurotoxicol. Teratol.-1985.-v.7, N 2.-p.227−232.
  114. Shimai S., Satoh H. Behavioral teratology of methylmercury. // J.Toxicol.Sci.-1985.-v.10, N 1.-p. 199−216.
  115. Rice D.C. Effects of pre- plus postnatal exposure to methylmercury in the monkey on fixed interval and discrimination reversal performance. // Neurotoxicology.-1992,-v. 13, N 2.-p.443−452.
  116. Petruccioli L., TuriIIazzi P. Effect of methylmercury on acetylcholinesterase and serum cholinesterase activity in mankeys, Macaca fascicularis. // BuII.Environ.Contam. Toxicol.-1991.-v.46, N 4.-p.769−773.
  117. Axtell C.D., Myers G.J., Davidson P.W. Semiparametric modeling of age at achieving developmental milestones after prenatal exposure to methylmercury in the Seychelles child development study. // Environ. Health Perspect.-1998.-v.106, N 3.-p.559−564.
  118. Walker B. Neurotoxicity in human being. //J. Lab. Clin. Med.-2000.-v.136, N 3.-p.168−180.
  119. McRill C., Boyer L., Flood T.J., Ortega L., Mercury toxicity due to use of a cosmetic cream. // J.Occup.Environ.Med.-2000.-v.42, N l.-p.4−7.
  120. Bryant P.E., Warring R., Ahnstrom G. DNA repair kinetics after low doses of X-rays: A comparison of results obtained by the unwinding and nucleoid sedimentation methods. // Mutation Res.-1984.-v.131, N 1.-p. 19−26.
  121. Shugart L.R., McCarthy J.F., Jimenez B.D., Daniels J. Analysis of adductformation in the bluegill sunfish (Lepomis macrochirus) between benzoa. pyrene and DNA of the liver and hemoglobin of the erythrocyte. // Aquat.Toxicol.- 1986.-v.9,N2.-p.319−325.
  122. Myers-Schone L., Shugart L.R., Beauchamp J.J., Walton B.T. Comparison of two freshwater turtle species as monitors of radionuclide and chemical• contamination: DNA damage and residue analysis. // Environ.Toxicol.Chem.-1993.-v.12, N 5.-p. 1487−1496.
  123. Fridovich J. The biology of oxigen radicals. // Science.-1978.-v.201.-p.875−880.
  124. Shugart L.R. Quantitation of chemically induced damage to DNA of aquatic organisms by alkaline unwinding assaay. // Aquat.Toxicol.- 1988,-v. 13, N l.-p.43−52.• 160. Phillips D.H. Fifty years of benzoa.pyrene. // Nature.-1983.-v.303.-p.468−472.
  125. Kohn K.W. The significance of DNA-damage assays in toxicity andcarcinogenicity assessment. //Ann.NY Acad.Sci.-1983.-v.407.-p.l06-l 18.
  126. Ahnstrom G., Erixon K. Radiation induced strand breakage in DNA from mammalian calls. Strand separation ai alkaline solution. // Int.J.Radiat.Biol.-1973.-v.23.-p.285−289.
  127. С.Д., Кованько Е. Г., Ямшанов В. А. Изменения ДНК лейкоцитов крови при малых дозах радиационно-химических воздействий и сокращение продолжительности жизни животных. // Клинич.геронтология.-1999, а.-№ 3.-с.23−29.
  128. В.Н., Бахитова JI.M., Соболева JI.C., Шевченко В. А. Модификация гамма-излучений солями тяжелых металлов. // Изв. РАН Серия биологическая.-1996.-№ 4.-С.495−498.
  129. Snyder R.D., Davis G.F., Lachmann P.J. Inhibition by metals of X-ray and ultraviolet-induced DNA repair in human cells. // Biol. Trace Elem.Res.-1989.-v.21, N 2.-p.389−398.
  130. Frenkel G.D., Middleton C. Effect of lead acetate on DNA and RNA synthesisby intact HeLa cells, isolated nuclei and purified polymerases. // Biochem.Pharmacol.-1987.-v.36,N l.-p.265−268.
  131. Popena E.A., Schmaeler M.A. Interaction of human polymerase p with ions of copper, lead, and cadmium. //Arch.Biochem.Biophys.-1979.-v.196, N 1.-p. 109−120.
  132. Ivanov S. D Biological effects of environmental radiochemical influences. // In «100 years of X-rays and radioactivity», eds D.D.Sood et al., Bhabha Atomic Reseach Centre, Mumbai, India.-1996.-p.347−366.
  133. Ivanov S.D., Kovanko E.G. Early genotoxic effects and features of delayed consequences after low doses radiochemical exposures. // Toxicol.Lett.-1998.-v.95, suppl.l.-p.62.
  134. Sugg D.W., Chesser R.K., Brooks J.A., Grasman B.T. The association of DNA damage to concentrations of mercury and radiocesium in Largemouth bass. // Environ.Toxicol.Chem.-1995.-v.14, N 4.-p.661−668.
  135. Meyers-Schone L., Shugart L.R., Beauchamp J.J., Walton B.T. Comparison of two freshwater turtle species as monitors of radionuclide and chemical contamination: DNA damage and residue analysis.// Environ. Toxicol. Chem.-1993.- V.12, N 8.-P.1487−1496.
  136. В.П. Динамика патоморфологических изменений в головном мозге крыс в зависимости от дозы у-облучения. // Радиобиология.-1990.-t.30, № 3-С.378−384.
  137. Mameli О., Caria М.А., Melis F., Solinas A., Tavera C., Ibba A., Tocco M., Flore C., Randaccio F.S. Neurotoxic effects of lead at low concentrations. // Brain Res. Bull.-2001 .-v.55.-p.269−275.
  138. De Gennaro L.D. Lead and the developing nervous system. // Growth Development Aging.-2002.-v.66, N l.-p.43−50.
  139. В.П., Долгих А. П. Клинические аспекты действия малых доз ионизирующего излучения на человека (Общесоматические заболевания). // Мед.радиол.радиац.безопасность.-1998.-т.43, № 2.-с.28−43/
  140. А.А., Зайчик В. Е., Будагов Р. С. Изменения содержания некоторых химических элементов в крови животных в ранние сроки после воздействия на организм проникающей радиации. // Физическая медицина.-1992.-Т.2, № с.44−45.
  141. Р.С., Ашуров А. А., Зайчик В. Е. Микроэлементы крови как индикатор степени тяжести лучевых поражений. // Радиац.биология. Радиоэкология.-1 994.-t.34, вып. 1 .-с.49−53.
  142. Н.В. Особенности генетического действия малых доз радиации. // Научн. совет по проблемам радиобиологии. Инф. бюлл.-1976.-вып.19.-с.9−10.
  143. И.М., Колесников B.C., Луковенко В. П. Тяжелые металлы во внешней среде. Современные гигиенические и токсикологические аспекты. / Минск: Навука 1тэхника.-1994.-285 с.
  144. Environmental Health Criteria 165. / Inorganic Lead."-Geneva: WHO 1995.
  145. Sone J. Effects of zinc on absorbtion, distribution and excretion of lead, correlated with body copper distribution. // Acta Sch. Med. Univ., Gifu.-1989.-v.37,N2.-p. 192−222.
  146. Goyer R.A. Nutrition and metal toxicity.//Am.J.Clin.Nutr.-1995.-V.61, Suppl.-P.646S-650S.
  147. Г. Н., Савин B.A., Гуляев В. А., Вяйзенен Г. А., Токарь А. И. Ускорение выведения тяжелых металлов из организма животных. Под ред. Г. Н. Вяйзенена./Новгород.-1997.-295 с.
  148. Skalnyi A.V. Multi-element analysis of human samples in assessmeut of chemical pollution. // Abstr. EERO Symposium on Chemical Risk Assessment. M: 1994.-p.55.
  149. Hill C.H. Reversal of selenium to toxicity in chicks by mercury, copper, and cadmium. // J.Nutr.-1974.-v. 104-p.509−598.
  150. Parizek J., Kalonskova J., Babicky A., Benes J., Pavlik L. Interactions of selenium with mercury, cadmium, and other toxic metals. // Trace Elem.Metab.Anim.-1974-v.2, N 2-p. 119−131.
  151. Stoewsand G.S., Bache C.A., Lisk D.I., Dietary selenium protection of methylmercuiy intoxication of Japanese guail. // Bull.Environ.Contam.Toxicol.-1974.-v. 11, N 1.- p. 152−156.
  152. Nordberg G.F., Skerfving S. Biological monitoring, carcinogenicity and risk assessment of trace elements. // Scand.J. Work Environ. Health-1993.-v.19, suppl. 1.-p.1−139.
  153. Fergusson J.E. The Heavy Elements: Chemistry, Environmental Impact and
  154. Health Effects. Oxford: Pergaman Press 1990-
  155. Elsenhans В., Schuemann K., Forth W. Toxic metals: interactions with essential metals. // In Rowland J.R. ed. Nutrition, Toxicity and Cancer, Boca Raton: CRC Press.-199 l.-p.223−258.
  156. Nordberg G.F. Factors influencing metabolism and toxicity of metals: a• consensus report. // Environ. Health Perspect.-1978.-v.25, N 1 .-p.3−41.
  157. H.C. Действие металлов на клеточный геном, / В кн. «Физиология растительных организмов и роль металлов. М: МГУ.-1989.-е. 118−156.
  158. Alexander J. Risk assessment of selenium. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993.-v.19, suppl. 1.-p. 122−123.
  159. Gombs G.F.Jr. Essentiality and toxicity of selenium with respect torecommended dietary allowances and reference doses. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993,-v. 19, suppl. l.-p.l 19−121.
  160. Goyer R.A. Concluding remarks on the toxicity of essential metals. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993.-v. 19, suppl. l.-p.l39.
  161. Mc Clain C.J., McClain M.L., Boosals M.G., Hennig B. Zinc and the stress response
  162. Mertz W. Risk assessmend of essential elements. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993.-v. 19, suppl. l.-p.112.
  163. Prasad A.S. Essentiality and toxicity of zinc. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993.-v.19, suppl. 1.- p.134−136.
  164. Sandstead H.H. Zinc requirements, the recommended dietary allowance and the reference dose. // Scand.J.Work Environ.Health.-1993.-v.19, suppl. 1.-p. 128−131.
  165. Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. СанПиН 2.1.4.559−96.
  166. А.Б. Научно-методический подход, реализуемый в США при определении номенклатуры показателей качества питьевой воды в отношении химических загрязнений. // Экологич. вестник России.-1998.-№ 5.-с. 19−24.
  167. JI.P., Нейко Е. М., Ванджура И. П. Микроэлементы и атеросклероз. / М.: Наука.-1986.-221 с.
  168. Poo J.L., Romero R.R., Robles J. A. et al. Diagnostic value of the copper/zinc in digestive cancer: a case of control study. // Arch. Med. Res.-1997.-v.28, N 2.-p.259−263.
  169. Russanov Е.М., Kassabova Т.A., Konstantinova S.G. Effect of chronic copper loading on the activity of rat liver antioxidative enzymes. // Acta Physiol.Pharmacol.Bulg.-1986,-v. 12, N l.-p.51−57.
  170. Adiga P.R., Sastry K.S., Sarma P. S. The ifluence of iron and magnesium on the uptake of heavy metals in toxicities in Aspergillus niger. // Biochim.Biophys.Acta.-1962.-v.64, N 3.-p.546−548.
  171. Sastry K.S., Adiga P.R.Interrelationships in trace element metabolism in metal toxicities in Neurospora crassa. // Biochem.J.-1962.-v.85, N 3.-p.486−491.
  172. Bogden J.D., Genter S.B., Christakov S. et al. Dietary calcium modifies concentrations of lead and other metals and renal calcium binding in rats. // J.Nutr.-1992.-v.122.-p. 1351−1360.
  173. Bogden J.D., Loria D.B., Oleske J.M. Regarding dietary calcium to reduce lead toxicity.- Nutrit.Rev.-2001.-v.59, N 9.-p.307−308.
  174. С.Д., Кованько Е. Г., Ямшанов В. А., Сибирцев B.C. Влияние ионов металлов питьевых минеральных вод на биологические эффекты радиации. // Мат.научн.конф. „Актуальные вопросы медицинской радиологии“, СПб.: ЦНИРРИ.-1998.-с.370.
  175. Методика выполнения измерений массовой концентрации ртути в пробах воды на анализаторе ЭГРА-01» МВИ 04−02−02
  176. Методические рекомендации по определению содержаний ртути в объектах окружающей среды и биологических материалах с использованием ЭГРА-01 MP 04.09.01
  177. Методика выполнения измерений массовой концентрации общей ртути в пробах крови на анализаторе РА 915+ с приставкой РП-91 МВИ 03−07−2000
  178. Методика выполнения измерений массовой концентрации общей ртути методом пиролиза на анализаторе ртути РА 915+ с приставкой РП-91 МВИ 03−05−2000
  179. Методические указания по измерению содержания свинца в пробах крови, почках и воде методом (MP 96/215) потенциометрического инверсионного анализа с использованием ион-сканирующей системы «ISS- 820» (MP 96/215)
  180. Cook P.R., Brazell I.A. Shtctrofluorometric measurement of the binding of ethidium to superhelical DNA from cell nuclei. // Eur.J.Biochem.-1978.-v.84, N 2.-p.465−477.
  181. Barcellona M.L., Favilla R., von Berger J., Avitabile M., Ragusa M., Masotti L. DNA-46-diamidine-2-phenylindole interactions: A comparative study employing fluorescence and ultraviolet spectroscopy. // Arch.Biochem.Biophys.-1986.-v.250, N 1.-P.48−53.
  182. Brunk C.F., Jones K.C., James T.W. Assay for nanogram quantities of DNA in cellular homogenates. // Anal.Biochem.-1979.-v.92, N 2.-p.497−500.
  183. Bauer W., Vinograd J. The interaction of closed circular DNA with intercalative dyes. I. The superhelix density of SV40 DNA in the presence and absence of dye. // J.Molec.Biol.-1968.-v.33, N l.-p.l41−171.
  184. P.R., В raze 11 I.A. Supercoils in human DNA. // J. Cell Sci.-1975.-v.19, N 2.-p.261−279.
  185. Roots R., Kraft G., Gosschalk E. The formation of radiation-induced DNA breaks: The ratio of double-strand to single-strand breaks. // Int.J.Radiat.Oncol.Biol.Phys.-1985.-v.l 1, N 2.-p.259−265.
  186. Manzini G., Barcellona M.L., Avitabile M., Quadrifoglio F. Interaction of diamidino-2-phenylindole (DAPI) with natural and synthetic nucleic acids. // Nuclei Acids Res.-1983.-v.l 1, N 24.-p.8861−8876.
  187. Daxhelet G.A., Coene M.M., Hoet P.P., Cocito C.G. Spectrofluorometry of dyes with DNA’s of different base composition and conformation. // Anal.Biochem.-1989.-v.179, N 2.-p.403−410.
  188. LePecq J.-B., Paoletti C. A new fluorometric method for RNA and DNA determination. // Anal.Biochem.- 1966.-v.17, N 1 .-p. 100−107.
  189. В.П., Москалев O.C., Ильин Б. Н. Оценка работоспособности у лабораторных животных в условиях токсикологического эксперимента. // Гигиена санитария.-1989.-№ 6.-С.84−86.
  190. Н.А. Биометрия. МГУ.-1970.-368 с.
  191. Е.В., Генкин А. А. Применение критериев непараметрической статистики для оценки двух групп наблюдений в медико-биологических исследованиях.-М.:Медицина.-1969.-29 с.
  192. В.В., Иванов С. Д., Кованько Е. Г., Ямшанов В. А. Влияние малых доз радиации на токсическое действие низких концентраций ртути. Тез. докл. 4-й международн. конф. «Радиационная безопасность: экология -атомная энергия», СПб, 2001, с.350−351.
  193. Ozsahin M., Ozsahin H., Shi Y., Larsson В., Wurgler F.E., Crompton N.E. Rapid assay of intrinsic radiosensitivity based on apoptosis in human CD4 and CD8 T-lymphocytes.// Int.J.Radiation Oncology Biol.Phys.-1997.-V.38, N 2.-P.429−440.
  194. A.H., Маянский H.A., Заславская М. И., Поздеев Н. М., Плескова С. Н. Апоптоз нейтрофилов. // Иммунология.-1999.-№ 6.-С.11−19.
  195. Akgul С., Moulding D.A., Edwards S.W. Molecular control of neutrohil apoptosis. // FEBS Lett.-2001.-V.487, N 3.- P.318−322.
  196. Pechatnikov V.A., Afanasye V.N., Korol B.A., Korneev V.N., Rochev Yu.A., Umansky S.R. Flow cytometry analysis of DNA degradation in thymocytes of y-irradiated or hydrocortison treated rats.// Gen.Physiol.Biophys.-1986.-V.5.-P.273−284
  197. Miadokova E., Duhova V., Vlckova V., Sladkova L., Sucha V., Vlcek D. Genetic risk assessment of acid waste water containing heavy metals.// Gen.Physiol.Biophys.-1999.-V. 18, Focus issue.-P.92−98.
  198. Mildvan A.S., Loeb L.A. The role of metal ions in the mechanism of DNA and RNA synthesis. In: Metals ion in genetic information transfer. Eichhorn G.L., Marzilli L.G. eds. New York: Elsevier.-1981.-p.l03−123.
  199. Dhawan R., Dusenbery D.B., Williams P.L. A comparison of metal-induced lethality and behavioral responses in the nematode Caenorhabditis elegans. // Environ. Toxicol. Chem.-2000.-v.19, N 12.-p.3061−3067.
  200. Mercury. Environmental Health Criteria. V.l.-Geneva: WHO.-1976.-149 p.
  201. Stafford G.P., Haines T.A. Mercury contamination and growth rate in two piscivore populations.// Environ.Toxicol.Chem.-2001.-V.20, N 9.-P.2099−2101.
  202. H.B. Особенности генетического действия малых доз радиации. // Научн. совет по проблемам радиобиологии. Инф. бюлл.-1976.-вып.19.-с.9−10.
  203. В.В., Иванов С. Д., Кованько Е. Г. Влияние малых доз облучения на аккумуляцию низких концентраций свинца в организме и поведенческую активность животных. Москва: Токсикологический вестник, 2002, № 5,с.39
  204. В.В., Гннак А. И., Иванов С. Д. Изменение аккумуляции ртути в организме под влиянием малых доз радиации. Сб. Экология Энергетика Экономика. — СПб: Изд-во «Менделеев», 2003.- № 8, с. 42.
  205. С.Д. Пострадиационные реакции ДНК нуклеоидов лейкоцитов крови. Определение, закономерности, диагностическое и прогностическое значение. Дисс. д-ра.биол.наук. СПб.:ЦНИРРИ.-1992.-305 с.
  206. D.M., Chea D., Bowater R. // Quart. Rev. Biophys.-1996.-v.29, N 2.-p.203−225.
  207. Muller W.-U., Streffer C. Risk to preimplantation mouse embryos of combinations of heavy metals and radiation. // Int.J.Radiat.Biol.-1987.-v.51, N 6.-p.997−1006.
  208. Е.Г. Экотоксикологические исследования последствий техногенного загрязнения.// Токсикологич. вестник-1995.-№ 1.-е. 15−20.
  209. Leffler Р.Е., Nyholm N.E.I. Nephrotoxic effects in free-living bank voles in heavy metal polluted environment.// AMBIO.-1996.-v.25, N 6.- p.417−420.
  210. M.B., 1999. Нефротоксичкеский эффект свинца. В кн. «Свинец и здоровье детей: диагностика, лечение, профилактика» Под ред. С. П. Нечипоренко, СПб.: «Каро».-1999.-с.46−49.
  211. Н.В., Люблина Е. И., Розин М. А. Состояние неспецифически повышенной сопротивляемости. // Патол.физиол.эксперим.терапия.-1959.-№ 4.-е. 16−21.
  212. Н.С., Молодкина Н. И., Ермолаенко А. Е., Лобанова Е. А., Легостаева И. Л. Материалы о корректировке ПДК свинца в воздухе рабочей зоны. // Медлруда пром.экол.-1998.-№ 12.-С.18−24.
  213. Н.Ф. Экспериментальные данные о воздействии ионизирующего излучения и тяжелых металлов на организм. // Токсикологич. вестник.-1995.-№ 3.-С.21−24.
  214. Ю.И., Стежко В. А., Дмитруха Н. Н. и др. Зависимость изменения иммунных и биохимических механизмов поддержания гомеостаза от159материальной кумуляции свинца в организме (экспериментальное исследование)// Мед.труда.пром.экол.-2001.-№ 5.-с.11−17
  215. Jadhav A.L. Low level lead exposure and central dopamineergic mechanisms.// ToxicoI.Lett.-1998.-v.95, Suppl. 1 .-p. 127.
  216. Н.Ф. К проблеме оценки воздействия свинца на организм человека.// Мед. труда пром.экол.-1998.-№ 12.-c.l-4.
  217. В.В., Иванов С. Д., Кованько Е. Г., Ямшанов В. А. Влияние малых доз радиации на токсические эффекты низких концентраций ртути. Москва: Токсикологический вестник, 2002, № 4, с.34−39.
  218. Ivanov S.D., Semenov V.V., Kovanko E.G., Yamshanov V.A. Influence of low doses irradiation on accumulation of heavy metals in the organism and biological effects in rats.-In: «Metal Ions in Biology and Medicine», Paris, 2002, v.7, p.645−646.
  219. B.B., Гинак А. И., Иванов С. Д. Сравнение информативности мониторинга свинца и результаты биотестирования для оценки риска отдаленных последствий Сб. Экология Энергетика Экономика. — СПб: Изд-во «Менделеев», 2003.- № 8, с. 44.
  220. Stubblefield W.A., Brinkman S.F., Davies Р.Н., Garrison T.D., Hockett J.R., Mclntyre M.W. Effect of water hardness on the toxicity of manganese to developing brown trout (Salmo trutta). // Environ.Toxicol.Chem.-1997-v.16, N 10.-p.2082−2089
  221. Clemens S., Antosiewicz D.M., Ward J.M., Schachtman D.P., Schroder J.I. The plant cDNA LCT1 mediates the uptake of calcium and cadmium in yeast. // Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1998.-v.95, N 20.-p. 12 043−12 048.
  222. C.M., Любимова H.H., Никулина Л. А., Панова Л. Н., Королев Ю. Н. Пострадиационное восстановление печени при применении питьевых минеральных вод. // Радиац.биология. Радиоэкология.-1995.-т.35, № 6.-С.884−888.
  223. Ю.Н., Панова Л. Н., Никулина Л. А., Загорская Н. З. Действие сульфатной минеральной воды при общем радиационном облучении в эксперименте.// Вопр.курортологии.-1996.-№ 9.-С.25−28
  224. В.А., Грозовская В. А. Зависимость между содержанием фтора и кальция в пищевом рационе и устойчивостью животных к воздействию у-облучения.// Радиобиология. -1968,-т.У 11, вып.4.-с.429−433.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!