Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Постнатальный морфогенез обонятельных луковиц белой крысы в норме и после химической деафферентации

Диссертация: Постнатальный морфогенез обонятельных луковиц белой крысы в норме и после химической деафферентации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Совокупная толщина клеточных слоев обонятельной луковицы деафферентированной крысы характеризовалась периодом интенсивного роста (5−30 сутки) и стабилизации (30−180 сутки). Клеточные слои деафферентированной обонятельной луковицы на протяжении наблюдения изменялась не одинаково. Наибольший рост характеризовал наружный плексиморфный слой, затем по мере убывания шли слой клеток зерен, слой… Читать ещё >

Постнатальный морфогенез обонятельных луковиц белой крысы в норме и после химической деафферентации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Значение обонятельной системы
    • 1. 2. Строение обонятельных луковиц
    • 1. 3. Развитие обонятельных луковиц
    • 1. 4. Химическая деафферентация
      • 1. 4. 1. Значение афферентной нервной системы
      • 1. 4. 2. Свойства капсаицина
      • 1. 4. 3. Последствия химической деафферентации
      • 1. 4. 4. Деафферентация обонятельных луковиц
  • Глава 2. Обоснование материалов и методов исследования
  • Глава 3. Постнатальный морфогенез обонятельных луковиц интактной белой крысы (результаты собственных исследований)
    • 3. 1. Постнатальные изменения морфометрических характеристик обонятельных луковиц
    • 3. 2. Преобразование ламинарной организации
    • 3. 3. Преобразование клубочков
    • 3. 4. Преобразование митральных клеток
    • 3. 5. Преобразование сосудистого русла

Чувство обоняния играет важную роль в жизни человека и животных, поскольку химическая коммуникация является наиболее древним, общим для всех видов животных и конкретным каналом получения информации. Каждый предмет или химическое соединение имеет определенный,. только ему свойственный, запах, чего нельзя сказать про цвет или вкус (Соколов В: К, Зйнкевич Э-ГБ, 1987).

Обоняние охватывает практически всестороны жизни животных-макросматиков. Оно играет важную, роль в пищевом, репродуктивном, социальном, территориальном и оборонительном поведении. Запахи возбуждают инстинкты, привычки, положительное или отрицательное отношение к новым предметам (Корытин С.А., 1978; Соколов В. Е., Зйнкевич-Э.П., 1978; Бахтин Е. К., 1982; Бахтин Е. К., Субботин М. Я., 1983; Макарчук Н. Е., Калуев А. В., 2000).

Большое значение в процессах восприятия! и обработки. сенсорного сигнала имеют обонятельные луковицы. Вопреки классической точке зрения об обонятельных луковицах, как о простом «передаточном звене» проводящих путей от обонятельного эпителия в мозг, существующие сегодня данные: позволяют говорить о важной роли луковиц в процессах первичной обработки, запоминания и эмоциональной оценки хемосенсорной информации. Повреждение обонятельных луковиц не только блокирует обонятельныйанализатор, но и приводит к. серьезным нарушениям поведения и всей эмоциональной сферы человека или животного (Шеперд Г., 1987; Калуев А. В^ Кирюхина Н. В-, 2003);

Традиционно считалось, что чувствительная иннервациявыполняет чисто «афферентную» функцию, воспринимая' изменения химических и физических параметров среды и передавая информацию вЦНС, что рефлекторно активирует эфферентную систему и тем самым обеспечивает поддержание гомеостаза. На сегодняшний день в результате экспериментов доказано, что чувствительные терминали выполняют кроме афферентной еще и вторую — местную эффекторную функцию. Благодаря применению методов перерезок и антидромной стимуляции чувствительных нервов были накоплены доказательства местной эффекторной функции афферентных нейронов в регуляции кровотока, проницаемости сосудов, трофических и иммунных процессов, активности вегетативных ганглиев (Permkumar L., 2001; Albutaihi I. et al., 2004; Demirbilek S. et al., 2004; Lo Y. et al., 2005).

Хирургическая невротомия не позволяет исключать эффекты оперативного вмешательства и проводить чистую деафферентацию, так как все периферические нервные стволы смешанные (Жукова Е.М., 2007). Решением послужило открытие селективной чувствительности афферентных нейронов к растительному алкалоиду капсаицину (Geppetti PI et al., 1988). В настоящее время перспективно использование капсаицина для создания моделей клинической денервации и исследования эффекторной функции афферентной нервной системы.

В последние десятилетия активно исследовалось влияние химической деафферентации на сосудистое русло (Спиридонов В.К. с соавт., 2004; Воробьева Н. Ф. с соавт. 2005; Anand Р., 2003; Chen S. et al., 2007), кожу и подкожную соединительную ткань, легкие, печень, лимфоидные органы (Спиридонов В. К., 1994; Воробьева Н. Ф. с соавт, 1997; Жукова Е. М., Воробьева Н. Ф., 1998; Жукова Е. М., 2000, 2003; Толочко 3. С., 2001, 2002; Толочко З. С., Спиридонов В. К., 2004), нейроны различных отделов нервной системы (Румянцева Т.А., Шилкин В. В., 2001; Румянцева Т. А., 2002; Воробьева О. Б., 2005 и др.). В доступной литературе сведений о влиянии нейротоксических доз капсаицина на обонятельную луковицу не обнаружено.

Таким образом, вышесказанное позволяет заключить, что обонятельные луковицы играют существенную роль в восприятии и обработке сенсорной информации. Их повреждение может вызвать серьезные нарушения в поведении животных и человека. В связи с этим и, учитывая недостаточность сведений по данному вопросу в литературе, анатомогистологическое исследование обонятельных луковиц белой крысы в норме и эксперименте, а также оценка степени обратимости этого процесса представляется актуальным.

Цель работы заключалась в выявлении закономерностей постнатальных морфологических преобразований обонятельных луковиц белой крысы в норме и в условиях химической деафферентации.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить возрастные преобразования ламинарной организации, клубочков и митральных нейроцитов обонятельных луковиц крысы в постнатальном онтогенезе.

2. Исследовать морфологические особенности и возрастные изменения сосудистого русла обонятельных луковиц белой крысы в раннем постнатальном онтогенезе.

3. Оценить секторальную асимметрию строения обонятельных луковиц крысы и ее возрастную динамику.

4. Выявить влияние химической деафферентации на морфометрические характеристики и состояние сосудистого русла обонятельных луковиц.

Научная новизна исследования. В результате исследования получены оригинальные данные о возрастных преобразованиях ламинарной организации, клубочков, митральных нейроцитов, а также формировании микроциркуляторного русла обонятельных луковиц белой крысы в постнатальном онтогенезе. Установлены общие закономерности постнатального развития обонятельной луковицы крысы и сроки достижения ими дефинитивного состояния.

Впервые показано, что в процессе развития темпы роста слоев обонятельных луковиц различны, в связи с этим меняется доля отдельных слоев в совокупной толщине исследуемого органа. Наибольший рост характерен для наружного плексиморфного слоя, в меньшей степени увеличивались толщина слоя клубочков, слоя клеток-зерен и внутреннего плексиморфного слоя, толщина слоя митральных клеток уменьшилась.

Впервые установлено, что в периферической зоне обонятельных луковиц плотность сосудов больше, чем в центральной. С возрастом неравномерность распределения сосудов в центральной и периферической зонах обонятельных луковиц усиливается.

В результате исследования выявлено, что обонятельные луковицы белой крысы имеют выраженное асимметричное строение. Асимметрия проявляется в различных значениях морфометрических показателей: толщины слоев, размеров и плотности клубочков, митральных клеток и сосудов в вентральном, дорсальном, медиальном и латеральном секторах обонятельных луковиц. Исключение составляет диаметр сосудов, который на всех участках обонятельных луковиц не различается.

В работе впервые оценено влияние химическойдеафферентации на морфометрические характеристики обонятельных луковиц белой крысы. Выявлено, что химическая деафферентация капсаицином вызывает' незначительные изменения размеров и ламинарного строения обонятельных луковиц. Существенные преобразования затрагивают тонкое строение органа: клубочки, нейроны и микроциркуляторное русло. Деафферентация вызывает изменение количества, и размеров" клубочков обонятельной луковицы крысы, приводит к патологическим изменениям митральных клеток и гибель части митральных нейроцитов. Выявлены качественные изменения и увеличение диаметра сосудов обонятельных луковиц деафферентированных животных.

Теоретическая и практическая значимость работы. В результате проведенного исследования получены нормативные возрастные характеристики ламинарной организации, клубочков, митральных нейроцитов и сосудистого русла обонятельных луковиц белой крысы в раннем постнатальном онтогенезе, которые могут служить основой для морфологических исследований органов и тканей в эксперименте. Установлено, что обонятельные луковицы имеют выраженное асимметричное строение, которое необходимо учитывать в экспериментальной и клинической работе. Показано, что данная схема введения нейротоксина может использоваться для моделирования состояния дефицита афферентной иннервации, в целях фундаментальных исследований структуры и функции органов, адаптивных возможностей организма в целом и отдельных его систем при воздействии различных факторов, а также механизмов действия лекарственных препаратов.

Полученные нормативные данные относительно строения и развития обонятельных луковиц используются в учебном процессе при подготовке специалистов на кафедре морфологии Ярославского государственного университета им. П. Г. Демидова и кафедре анатомии человека Ярославской государственной медицинской академии.

Апробация работы. Материалы исследования доложены на Пироговской студенческой научной конференции (Москва, 2001) — IV Международной конференции по функциональной нейроморфологии «Колосовские чтения" — (Санкт-Петербург, 2002) — III, Всероссийской конференции с международным участием, посвященной 175-летию со дня, рождения Ф: В. Овсянникова «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2003) — Международной* научнойконференции-«Гемореология. в макрои микроциркуляции» (Ярославль, 2005) — Всероссийской научной конференции «Актуальные вопросы эволюционной, возрастной и экологической морфологии» (Белгород, 2006) — Международных конференциях студентов, аспирантов, и. молодых ученых «Ломоносов» (Москва, 2007, 2008, 2010) — V Всероссийской конференции с международным участием, поев. 100-летию со дня рождения В. Н. Черниговского «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2007) — Международной НПК «Актуальные вопросы морфологии» (Гродно, 2008).

На защиту выносятся следующие положения:

1. Становление обонятельных луковиц наиболее интенсивно проходит в течение первого месяца жизни крыс, а морфологическая зрелость наступает к третьему месяцу.

2. Обонятельные луковицы белой крысы имеют выраженное асимметричное строение.

3. Неонатальная химическая деафферентация оказывает влияние на морфологическое строение обонятельных луковиц и их возрастные преобразования.

Выводы.

1. Постнатальное развитие обонятельных луковиц белой крысы характеризуется гетерохронным достижением дефинитивных значений ее морфометрических показателей. К десятым суткам заканчивается рост внутреннего плексиморфного слоя, к третьей неделе — слоя клеток-зерен, к концу второго месяца — слоя клубочков, к концу третьего месяца — наружного плексиморфного слоя. Толщина слоя митральных клеток уменьшается в течение первых трех месяцев жизни.

2. У новорожденных крыс обонятельные луковицы полностью не сформированы, морфологическая зрелость наступает к третьему месяцу, однако наличие клубочков свидетельствует о возможности тестирования, одорантов уже в первые дни жизни.

3. В периферической зоне обонятельных луковиц плотность сосудов микроциркуляторного русла больше, чем в центральной, тогда как диаметр сосудов на всех участках обонятельных луковиц не различается. С возрастом неравномерность распределения сосудов в центральной и периферической зонах обонятельных луковиц усиливается. Диаметр сосудов с возрастом уменьшается во всех зонах.

4. Установлено, что обонятельные луковицы белой крысы имеют выраженное асимметричное строение. Вентральный, дорсальный, медиальный и латеральный сектора обонятельных луковиц характеризуются различной толщиной слоев, размерами, и плотностью клубочков, митральных клеток и плотностью сосудов.

5. Неонатальная химическая деафферентация вызывает отклонения от нормального постнатального развития обонятельных луковиц белой крысы, наиболее выраженные в течение первого месяца жизни. У шестимесячных животных восстановление всех морфометрических показателей обонятельных луковиц не происходит.

6. Дефицит афферентной иннервации приводит к качественным и количественным изменениям следующих показателей обонятельных луковиц: уменьшение толщины отдельных слоев, уменьшение количества и размера клубочков, патологические изменения и гибель части митральных нейроцитов, изменение их ядерно-цитоплазматического отношения и количества ядрышек, патологические изменения микрососудов, уменьшение их плотности и увеличение диаметра.

4.6.

Заключение

.

После химической деафферентации постнатальное становление обонятельных луковиц белой крысы проходило следующим образом. Форма обонятельной луковицы с возрастом изменялась, форм-фактор увеличивался по 21 сутки жизни, с 21 по 60 уменьшался, что свидетельствует «вытягиванию» поперечного сечения обонятельной луковицы в дорсо-вентральном направлении. Площадь стандартного поперечного сечения обонятельной луковицы в условиях деафферентации на протяжении всего периода наблюдения увеличилась в 2,1 раза и достигла максимальных значений у трехмесячных животных. В динамике данного показателя можно выделить три периода: период интенсивного роста (с 5 по 21 сутки), период медленного роста (с 21 по 90-сутки) и период регресса (с 90 по 180-е сутки).

У 5-суточных деафферентированных животных на срезе обонятельных луковиц выявляются основные клеточные слои: волокон, клубочков, митральных клеток, клеток-зерен. С возрастомструктура обонятельных луковиц усложняется. У двухнедельных деафферентированных животных увеличивается количество рядов клубочков, они располагаются группами по 3−4, формируется капсула клубочков, уменьшается число рядов митральных клеток, приобретают характерную структуру наружный плексиморфный, внутренний плексиморфный и клеток-зерен, исчезает внутренняя полость.

Совокупная толщина клеточных слоев обонятельной луковицы деафферентированной крысы характеризовалась периодом интенсивного роста (5−30 сутки) и стабилизации (30−180 сутки). Клеточные слои деафферентированной обонятельной луковицы на протяжении наблюдения изменялась не одинаково. Наибольший рост характеризовал наружный плексиморфный слой, затем по мере убывания шли слой клеток зерен, слой клубочков, внутренний плексиморфный слой, толщина слоя митральных клеток уменьшалась. Вследствие неравномерного роста, доля слоев в совокупной толщине деафферентированной обонятельной луковицы на стандартном сечении изменялась. В обонятельной луковице 5-суточных деафферентированных крыс наибольшую долю занимал слой клеток-зерен, затем — слой клубочков, наружный плексиморфный слой, слой митральных клеток, а наименьшую — внутренний плексиморфный слой. У шестимесячных деафферентированных животных наибольшую долю также занимал слой клеток-зерен, затем — наружный плексиморфный слой, слой клубочков, внутренний плексиморфный слой, а наименьшую — слой митральных клеток.

Сроки становления слоев обонятельных луковиц деафферентированных крыс были различны. Толщина внутреннего плексиморфного слоя увеличивалась с 5 по" 21 сутки жизни животных, слоя клеток зерен — с 5 по 30-е, толщина слоя клубочков — с 5 по 30-е сутки, наружного плексиморфного слоя — с 5 по 60 сутки. Слой митральных клеток утончался с 10 суток до конца исследованного периода.

Размер клубочков увеличивается с 5 по 60 сутки жизни деафферентированных животных. Количество клубочков на срезе обонятельной луковицы деафферентированных крыс наиболее интенсивно растет с 5 по 30 сутки жизни и продолжает незначительно увеличиваться до трехмесячного возраста.

На протяжениивсего периода исследования у дефферентированных • животных выявляются патологически измененные митральные клетки, у молодых животных преобладали гипохромные нейроны с периферическим хроматолизом, а к концу исследования — гиперхромные «сморщенные» клетки с гиперхроматозом или пикнозом ядра. Размер митральных клеток был стабилен с 5 по 21 сутки и с 90 по 180-е сутки и уменьшался с 21 по 30-е и с 90 по 180-е сутки жизни деафферентированных крыс. Количество митральных клеток увеличивалось с 5 по 30 сутки.

Под влиянием деафферентации в обонятельной луковице выявляются патологически измененные сосуды, которые имеют неровные, вздутые контуры, активность щелочной фосфатазы их эндотелия стала неравномерной.

У деафферентированных крыс сохраняется зональное распределение сосудов в обонятельной луковице. Плотность сосудов в периферической зоне органа было выше, чем в центральной. Количество сосудов в перифериферической зоне обонятельной луковицы деафферентированной крысы значительно возросло с 5 по 30 сутки, менее быстрое увеличение количества сосудов продолжалось с 30 по 60-е сутки, затем данный показатель стабилизировался. Количество сосудов в центральной зоне увеличивалось с 5 по 21 сутки, а с трех недель до конца исследования уменьшалось. Диаметр сосудов обонятельной луковицы деафферентированных животных до двухмесячного возраста уменьшаетсяа с 60 по 90-е сутки увеличивается.

У деафферентированных животных сохраняется секторальная, асимметрия строения обонятельных луковиц. Она проявляется в различных значениях таких морфометрических показателей как толщина клеточных слоев, площадь и плотность клубочков, площадь, и плотность митральных клеток, плотность сосудов в медиальном, латеральном и дорсальном секторах обонятельных луковицТакой показатель как диаметр сосудов существенных различий в разных секторах не имеет. У 5 -суточных: животных минимальными значениями морфометрических показателей характеризуется дорсальный сектор, а максимальными — вентральныйа в ряде случаев также медиальный и латеральный секторыОтмечены неравномерные темпы роста секторов. Максимальными темпами роста, как правило, характеризуются латеральный и медиальный, минимальными — вентральный и дорсальный секторы. Благодаря неодинаковым темпам' роста различия между секторами обонятельной луковицы с возрастом увеличиваются (исключение составляют морфометрические показатели слоя митральных клеток). У шестимесячных животных максимальными значениями характеризуются медиальный и латеральный секторы, средними — вентральный, минимальнымидорсальный сектор.

Глава 5. Обсуждение результатов исследования.

Показать весь текст

Список литературы

  1. X. Физиология обоняния. Основы сенсорной физиологии. М.: Мир, 1984.-С. 274−255.
  2. Ю.И., Юрина H.A. Гистология. -М.: Медицина, 1989. С. 349 352.
  3. И.З. Лабораторные и дикие грызуны (содержание, разведение и использование в опытах). Ташкент: Фан, 1981. — 123 с.
  4. A.C., Куликов Г. А. Введение в физиологию сенсорных систем. — М.: Высшая школа, 1983. 247с.
  5. Е.К. Кто как нюхает // Химия и жизнь, 1982. № 1. — С.49.
  6. Е.К., Субботин М. Я. Орган обоняния. — Новосибирск, 1983. 232 с.
  7. Н.В., Нестерова И. В., Медвинская А. Н. Активация компенсаторных механизмов в мозге при бульбэктомии // Российск. Физиол. журн. 2004. — Т. — № - С. 199−200.
  8. A.A. Вкус и обоняние. М.-Л.: Изд. АН СССР, 1950 — 308 с.
  9. Я.А. Цитологические и молекулярные основы обонятельной рецепции. Эволюция органов чувств. Л.: Наука, 1971. — С. 151−178.
  10. Ю.Винников Я. А. Эволюция вкуса и обоняния // Успехи совр. биол. М.: Наука, 1976.-Т. 81. Вып. 1.-С. 355−364.
  11. И.Винников Я. А., Титова Л. К. Морфология органа обоняния.- М.: Медгиз, 1957.-290 с.
  12. О.В. Нейро-дистрофический процесс. М.: Медицина, 1978.
  13. И.Воробьева Н. Ф., Князев Г. Г., Лазарев В. А., В. К. Спиридонов В.К. Структурные изменения тканей белых крыс после введения капсаицина. // Морфология, 1997. Т. 111. № 2. С.59−63.
  14. Н.Ф., Спиридонов В. К., Никитенко Е. В. Морфологические особенности тканей печени при повреждении капсаицин-чувствительныхнейронов и индукции воспаления формалином и зимозаном. // Бюллетень СО РАМН, 2005. Т. 117. № 3. С.91−95.
  15. О.Б. Возрастные преобразования сократительной активности двенадцатиперстной кишки белой крысы в норме и при химической денервации: Автореферат дисс. кандидата биол. наук. Ярославль, 2005. -26 с.
  16. .Л., Глаголев В. П. Методика выключения обоняния у собак в хроническом эксперименте // Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова, 1975. Т. 61.-№ 1.-С. 162−165.
  17. П.П., Дукельская Н. М. Крыса. — М.: Советская наука, Медгиз, 1955.-С. 231−232.
  18. Гистология / Под ред. В. Г. Елисеева.- М.: Медицина, 1972.- С. 296−298.
  19. Е.В., Бобкова Н. В., Катков Ю. А., Отмахова H.A., Нестерова И. В. Поведенческие и биохимические последствия удаления обонятельных луковиц у мышей // Журнал ВНД, 1992. Т. 40. — С. 778−787.
  20. К.Г., Гусельников В. И. Электрофизиология обонятельного анализатора.- М.: Изд-во моек, ун-та, 1975. -256 с.
  21. В.И., Плетнев O.A. Обонятельный анализатор позвоночных: электрофизиологическое изучение реакций на запах. М.: МГУ, 1985. 171 с.
  22. Л.Г. Действие стирола на слизистую оболочку верхних дыхательных путей и обонятельный анализатор: Автореферат дисс. канд. биол. наук.-Киев, 1973.-21 с.
  23. И.Л. Морфология спинномозгового узла в норме и в условиях деафферентации у взрослой крысы: автореф. д.б.н., Н. Новгород, 2006.
  24. Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона. Л.: Медицина, 1965. -323 с.
  25. Е. М. Участие афферентных капсаицин- чувствительных нейронов в контроле гомеостаза венозной крови и биологических жидкостей// Успехи современного естествознания, 2003. № 4. — С. 45.
  26. Е. М. Роль капсаицин-чувствительных нейронов в регуляции клеточных реакций лимфоидной ткани- биологических жидкостей и капиллярно-венознои проницаемости. Автореф. дисс. д.б.н. Томск, 2007. -35с. ¦
  27. Е.М., Воробьева Ы. Ф. Некоторые, морфофункциональные параметры селезенки после капсаициновой блокады периферических- афферентных нейронов // Морфология, 1998. Т. 114. JV"6. С.44−46-
  28. Калу ев A.B., Кирюхина Н. В. Ассоциативное эмоционально-селективное «обоняние» при- аносмии- анализ^ и- перспективы терапии // Бехтеревские чтения,-Киров, 2003. -С. 203−209:
  29. Т.Р. Энзимохимическая характеристика: нейромышечного синапса икроножной мышцы деафферентированной белой крысы: Автореферат дисс. кандидата биол. наук. -Ярославль, 2000. -26 с.
  30. А.И., Соколов В. А., Быков К. А. Основы физиологии сенсорных систем. Л.: Изд-во Ленин градского ун-та. 1980. — С. 156−170.
  31. С.А. Запахи в жизни животных. — MI: Знание, 1978- 128 с.
  32. В.А. Запахи, их восприятие, воздействие, устранение. М.: Мир, 2006.-366 с.
  33. А.Н., Григорьева Т. И., Калуев A.B. Морфо-функциональные особенности организации обонятельного анализатора и проблема аксонального транспорта веществ // Нейронауки, 2006. Т. 2. -№ 4. — С. 18−28.
  34. A.B., Макарчук Н. Е., Рытикова JI.C. Экспериментальная аносмия у крыс как динамическая модель тревожно-депрессивного синдрома // XXX Всеросс: сов. Пробл. ВНД. СПб, 2000. — С. 275 — 276.
  35. С. А., Троицкая В. Т. К вопросу о корреляции между массой гонад и массой обонятельного мозга // Архив клинической и экспериментальной медицины, 2001-. — № 2. С. 187.
  36. Г. А. Курс патогистологической техники. JL: Медицина, 1969. — 423 с.
  37. В.А. Капсаицин физиологически активное вещество // Эксперимент, и клинич. фармакол., 1993. Т. 56. № 1. С. 67−69.
  38. А.Ф. Афферентный нейрон и нейродистрофические процессы. -М.: Медицина, 1973.- 190 с.
  39. А. Д., Поляков E.JI. Анатомия крысы (лабораторные животные). СПб.: изд-во «Лань», 2001. — 464 с.
  40. Е.В. Строение периферической части обонятельного анализатора у новорожденнеой крысы // Морфология, 1998. Т. 113. — № З.-С. 68−73.
  41. Основы сенсорной физиологии / Под. ред. Р. Шмидта. -М.: Мир, 1984. -287 с.
  42. В.Е. Изменение слизистой оболочки носа кроликов при хронической лучевой болезни, вызванной длительным введением радиоактивного железа (Fe59) // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. 1967. — № 6. — С. 33−36.
  43. В.Т., Гладышева О. С. Морфофункциональное исследование обонятельного органа мыши после воздействия сульфата цинка // Нейрофизиология. 1987. -Т. 19. -№ 6. — С. 796−802.
  44. B.C., Пажетнов C.B., Пажетнова С. И. Развитие реакций на сенсорную стимуляцию у бурого медведя в ранний постнатальный период // Зоологический журнал, 1998. Т. 77. — № 9. С. 31−37.
  45. В.И. К сравнительной морфологии межнейронных связей в системе обонятельного анализатора // Бюлл. эксп. биол. и мед. — 1966. Т. 62. № 9. -С. 99- 104.
  46. В.И. Развитие структурной организации обонятельного анализатора в онтогенезе // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1968. — Т. 66. № 10. -С. 105- 108.
  47. В.И. Материалы по изучению структурной организации обонятельного анализатора в онто- и филогенезе // Труды VII всесоюзного съезда анатомов, гистологов и эмбриологов. — Тбилиси, 1969. — С. 965−966.
  48. С.А., Дворецкий Д. П., Чернявская Г. В. Вазомоторные эффекты нейропептидов // Физиол. журнал им. И. М. Сеченова, 1995. Т.81, № 6. С. 29−47.
  49. С.А. Эффекторная функция афферентных нейронов // Материалы XVI сессии Академической школы-семинара имени A.M. Уголева «Современные проблемы физиологии и патологии пищеварения», 2001. Т. XI. № 4. С.44−51.
  50. И.И. Поиск пищи мышами при решении задачи на экстраполяцию после выключения обоняния сульфатом цинка // Журн. высшей нервной деятельности им. И. П. Павлова, 1986.- Т. 36.- вып. 4.- С. 680−689.
  51. В.В. Возрастные преобразования ядер спинного мозга и спинномозговых ганглиев в норме и в условиях химической деафферентации: Автореферат дисс. кандидата биол. наук. Ярославль, 2006.-19 с.
  52. Г. Е. О состоянии обонятельной функции у рабочих цинкового производства // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. 1971.-№ 4.-С. 17−21.
  53. Г. А. Развитие рецепторных клеток обонятельного органа у животных и человека // Системы органов чувств: Морфофункциональные аспекты эволюции. — JL: Наука, 1987. С.80−98.
  54. Р.Х. Наука о запахах. М.: Мир, 1966. — 224 с.
  55. А., Парсонс Т. Анатомия позвоночных. М.: Мир, 1992. — Т. 2. — С. 204−209.
  56. Ружинская Н. Н, Гдовский П. А. Ультраструктурная локализация ацетилхолинэстеразы в обонятельной луковице карпа // Журнал эвол. Биохимии и физиологии. 1992. Т28. -№ 6. С. 715−719.
  57. Т.А. Влияние химической денервации на нейроциты экстра- и интрамуральных ганглиев в постнатальном онтогенезе белой крысы: Автореферат дисс. доктора мед. наук. — Ярославль, 2002. 36 с.
  58. Т.А., Ковригина Т. Р., Филимонов В. И., Шилкин В. В., Воробьева О. Б. Влияние введения капсаицина на нейроциты спинномозговых ганглиев // Макро- и микроморфология. Саратов: Изд-во СГМУ, 1999.-Вып. 4.-С. 117−119.
  59. Т.А., Шилкин В. В. Энзимохимическая характеристика нейроцитов шейно-грудного узла симпатического ствола деафферентированной белой крысы // Морфология. 2001 .Т. 119, N 2. С. 25−28.
  60. C.B. Тайна запахов и звуков. Нос. М: ACT, 2005. — 274 с.
  61. C.B. Происхождение мозга. М.: Веди, 2005. — 367 с.
  62. Е.А., Андреева H.A., Дмитриева Т. Б. Чехонин В.П. Культивирование специализированных глиальных клеток (Olfactory Ensheathing Cells) обонятельного эпителия человека // Клеточные технологии в биологии и медицине. 2005. № 2. — С. 95−98.
  63. Х.М., Нуритдинов Э. Н., Ивазов Н. И. Вопросы физиологии сенсорных систем. Душанбе, 1988. — 93 с.
  64. В.Е., Зинкевич Э. П. Химическая сигнализация животных. М.: Знание, 1978.-63 с.
  65. B.K. Роль капсаицин-чувствительных афферентных нервов в регуляции углеводного обмена печени // Физиол. журнал им. И. М. Сеченова, 1994. Т.80, № 4. С. 101−106.
  66. В.К., Воробьева Н. Ф., Толочко З. С., Костина Н. Е., Хощенко О. М. Эффекторное действие стимуляции и повреждения капсаицин-чувствительных афферентных нейронов. // Бюллетень СО РАМН, 2004. Т. 112. № 2. С. 135−140.
  67. В.К., Жукова Е. М. Влияние блокады капсаицин-чувсвительных нервов на развитие экссудативной реакции при иммунном ответе и асептическом воспалении,// Бюл. эксперим. биолог, и мед., 1995.№ 10. С. 434−436.
  68. С.Л., Любимова З. В. Роль болевого компонента в организации вкусовой чувствительности // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1991. № 8. С.205−208.
  69. Ф.А., Решетняк Ю. А. К вопросу методики изучения обонятельного анализатора у рабочих металлургического производства // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. — 1970.- № 5. С.78−79.
  70. Г. Основы сенсорной физиологии, М., 1976. 520 с.
  71. В.Т., Гладышева О. С. Морфофункциональное исследование обонятельного органа мыши после воздействия сульфата цинка // Нейрофизиология.-. 1987.-Т. 19. № 6.- С. 796−802.
  72. З.С. Изменения проницаемости микрососудов кожи у нормальных и обработанных капсаицином крыс после разрушения мамилло-тегментальных путей // Физиол. журнал им. И. М. Сеченова, 2001. Т.87, № 1. С. 137−141.
  73. H.H. Пренатальный морфогенез структурных компонентов носовой полости млекопитающих: Автореферат дисс. доктора биол. наук. -Москва, 1998.-37 с.
  74. Л.И. Эмбриология человека: Атлас. М.: «Медицина», 1976. С.1−543.
  75. Н.Г., Байков Б. К. Применение нейрогистологических методов для изучения обонятельного анализатора в гигиенических исследованиях // Гигиена и санитария.- 1971. -№ 11.- С. 61−65.
  76. Физиология сенсорных систем. Л.: Наука, 1972. — Часть II. — С. 515−561.
  77. Физиология сенсорных систем / Под ред. A.G. Батуева. — Л:¡- Медицина, 1976.-339 с. .
  78. O.A. Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в: условиях химической десимпатизации и деафферентации: Автореферат дисс. кандидата биол. наук. — Ярославль, 2006.-22 с.
  79. .В. Анатомия, физиология и методы- исследования обонятельного анализатора у взрослых и детей. — М.: Мир, 1971. 51 с.
  80. Г. Нейробиология М-: Мир- 1987. — Т. 1. — G. 287−315.,
  81. Р. Основы сенсорной физиологии. М.: Мир, 1984.- 287 с.
  82. В.В. Основы нейрофизиологии. М.: Аспект Пресс, 2000. -277 с.
  83. H.E., Ярыгин В -Н. Патологические и приспособительные изменения нейрона. М.: Медицина. 1973. — 190 с.
  84. Akerman K.E., Gronblad M. Intracellular free (Ca) and (Na) in response to capsaicin in cultured dorsal root ganglion cells // Neurosci. Lett., 1992. Vol. 147.-№ 1.- P. 5−13.
  85. Albutaihi I. A.M., DeJongste M. J.L., Horst G. J. T. An Integrated Study of Heart Pain and Behavior in Freely Moving Rats (Using Fos as a Marker for Neuronal Activation) //Neurosignals, 2004. V.13. P. 207−226.
  86. Allison A.C., Warwik R.T.T. Quantitative observation on the olfactory system of the rabbit // Brain, 1949. V. 72. P. 186−197.
  87. Anand P. Capsaicin and menthol in the treatment of itch and pain: recently cloned receptors provide the key // Gut., 2003. V. 52. — P. 1233−1235.
  88. Andres K.H. Der Feinbau des Bulbus olfactorius der Ratte unter besonderer Berucksichtigung der synaptischen Verbindungen // Z. Zellforsch, microsk. Anat., 1965. № 65. S. 530−560.
  89. Arbuckle J. B., Docherty R. J. Expression of tetrodotoxin-resistant sodium channels in capsaicin-sensitive dorsal root ganglion neurons of adult rats // Neuroscience Letters, 1995. V 185. — № 1.-P. 70−73.
  90. Astic L., Saucier D. Anatomical mapping of the neuroepithelial projection to the olfactory bulb in the rat // Brain Res., 1986. Bull. 16. — P. 445−454.
  91. Bailey M.S., Puche A.C., Shipley M.T. Development of the olfactory bulb: evidence for glia-neuron interactions in glomerular formation // J.Comp. Neurol., 1999. V.415. N4. P. 423 — 448.
  92. Barnett S. C., Riddell J. S. Olfactory ensheathing cells (OECs) and the treatment of CNS injury: advantages and possible caveats // J. Anat., 2004. V. 204.-P. 57−67.
  93. Beirith A., Santos A. R. S., Calixto J. B. The role of neuropeptides and capsaicin-sensitive fibres in glutamate-induced nociception and paw oedema in mice // Brain research, 2003. V. 969. № 1−2. P. 110−116.
  94. Benson T.E., Ryugo D.K., Hings I.W. Effects of sensory deprivation on the developing mouse olfactory system- a light and electron microscopie, morphometric analisis // J. Neurosci., 1984.-№ 3.- P. 638−653.
  95. Brunjes, P. C. Unilateral odor deprivation: Time course of changes in laminar volume // Brain Research Bulletin, 1985.- № 14. P. 233−237.
  96. Brunjes P.C. Unilateral closing of nostril and development of olfactory system // Brain Res., 1994.- № 19. P. 146−160.
  97. Brunjes P.C., Borror M.J. Unilateral odor deprivation: differential effects due to time of treatment// Brain Res., 1983. Bull. 11, P.501−503.
  98. Buck L., Axel R. A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition // Cell., 1991. V. 65. — № 1. — P. 175 187.
  99. Chao T.I., Kasa P., Wolff J.R. Distribution of astroglia in glomeruli of the rat main olfactory bulb: exclusion from the sensory compartment of neuropil // J. Comp. Neurol., 1997.-V. 338.-P. 191−210.
  100. Clancy A.N., Schoenfeld T.A., Forbes W.B., Macrides F. The spatial organization of the peripheral olfactory system of the hamster. Part II: Receptor surfaces and odorant passageways within the nasal cavity // Brain Res., 1994. — Bull. 34.-P. 211−241.
  101. Constanzo R.M., O’connell R.J. Receptive fields of second-order neurons in the olfactory bulb of the hamster // Journal of General Physiology, 1980. — V. 76.-P. 53−68.
  102. Corotto F. S., Henegar J. A., Maruniak J. A. Neurogenesis persists in the subependymal layer of the adult mouse brain // Neurosci. Lett., 1993. — V. 149. P.111−114.
  103. Cumming D.M., Henning H.E., Brunjes P.C. Olfactory bulb recovery after early sensory deprivation // J Neurosci, 1997. V. 17. — P. 7433−7440.
  104. Dellovade T.L., Pfaff D.W., Schwanzel-Fukuda M. Olfactory bulb development is altered in small-eye (Sey) mice // J. Comp. Neurol. 1998. — V. 402. -№ 3.- P. 402−418.
  105. Demirbilek M., Ersoy O, Demirbilek S., Karaman A., Gurbuz N., Bayraktar N., Bayraktar M. Small-Dose Capsaicin Reduces Systemic Inflammatory Responses in Septic Rats // Anesth. Analg., 2004. V. 99. — № 5. — P. 15 011 507.
  106. Domek M.J., Blackman E.I., Kao J. Functional ablation of afferent nerves aggravates dextran sulphate sodium induced colonic damage in rats // J. Gastroenterol. Hepatol. — 1977. — Vol. 11. — № 12. — P. 698−702.
  107. Donnerer J., Amann R. Capsaizin-evoked neuropeptide release is not dependent on membrane potential changes // Neurosci. Lett., 1990, V. 117.' P. 331−334.
  108. Doucette Y.R., Kiernan I.A., Flumerfelt B.A. The (re-innervation of olfactory glomeruli following transection of primary olfactory axons in the central or periferal nervous system // J. Anat. -1983. № 1. -P. 137.
  109. Doucette Y.R. Olfactory ensheathing cells: Potential for glial cell transplantation into areas of CNS injury // Histol. Histolopathol., 1995. V. 10. — 503−507.
  110. Evans C, Baxi S, Neff R, Venkatesan P, Mendelowitz D Synaptic activation of cardiac vagal neurons by capsaicin sensitive and insensitive sensory neurons // Brain. Res., 2003 V.979. P. 210−215.
  111. Feron F., Perry C., Cochrane J. Autologous olfactory ensheathing cells transplantation in human spinal cord injury // Brain, 2005. — V. 128. — P. 29 512 960.
  112. Frazier EL, Brunjes PC. Unilateral odor deprivation: early postnatal, changes in olfactory bulb cell density and number // J Comp Neurol., 1988. V. 269. — P. 355−370.
  113. Friedrich R.W., Korsching S.I. Combinatorial and chemotopic odorant coding in the zebrafish olfactory bulb visualized by optical imaging // Neuron, 1997.-V. 18.-P. 737−752.
  114. Ganchrow J.R., Seltzer Z. The effect of neonatal treatment on gustatory behavior in the albino rat // Phisiol. Behav., 1992. Vol. 52. № 6. P. 1037−1042.
  115. George F, Sampol J. Circulating endothelial cells: a marker of vascular lesion//Nouv. Rev. Fr. Hematol., 1993 Jun-35(3):259−61.
  116. Grafe M.R., Leonard C. M. Developmental changes in the topographical distribution of cells contributing to the lateral olfactory tract // Brain Research, 1982. V.3. — P. 387−400.
  117. Graziadei G.A., Graziadei P.P. Neurogenesis and neuron regeneration in the olfactory system of mammals: II. Degeneration and reconstitution of the olfactorysensory neurons after axotomy // J. Neurocytol., 1979. V. 8. — P. 197 213
  118. Graziadei P.P., Graziadei G.A. Neurogenesis and neuron regeneration in the olfactory system of mammals. I. Morphological aspects of differentiation and structural organization of the olfactory epithelium. // J. Neurocytol. 1979- 8: 118.
  119. Graziadei P. P. S., Graziadei M.G.A. Neurogenesis and neuron regeneration in the olfactory system of mammals // J. Neurosci. -1980. № 2.- P. 145−162.
  120. Hinds J.W., Mcnelly N.A. Aging of the rat olfactory bulb: Growth and atrophy of constituent layers and changes in size and number of mitral cells // Journal of Comparative Neurology, 1977. V. 171. — P.345.368.
  121. Hiura A., Ishizuka H. Quantitative elektron-microscopic analyses of pulpal nerve fibres in the mouse lower incisor after neonatal capsaicin treatment // Arch. Oral Biol., 1992. Vol. 37. № 12. P. 1085−1090.
  122. Hatten, M. E. Central nervous system neuronal migration // Annu. Rev. Neurosci., 1999.-V. 22.-P. 511 -539.
  123. Holzer P. Capsaicin: cellular targets, mechanisms of action, and selectivity for thin sensory neurons // The Regulatory Peptide Lett., 1991. Vol.43. № 2. P. 143−201.
  124. Holzer P. Peptidergic sensory neurons on the control of vascular functions mechanisms and significance of the cutaneous and splanchnic vascular beds / P. Holzer // Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. — 1992. — Vol. 121. — P. 49 146.
  125. Holzer P. Neurogenic vasodilatation and plasma leakage in the skin // Gen Pharmacol., 1998.-V. 30.-P. 5−11.
  126. Johnson B. A., Leon M. Chemotopic odorant coding in a mammalian olfactory system // Journal of Comparative Neurology, 2007. V. 503. — P. 134.
  127. Jones N.L., Shabib S., Sherman P.M. Capsaicin as an inhibitor of the gastric pathogen Helicobacter pylori // FEMS Microbiol. Lett., 1997. V. 146. — P. 223−227.
  128. Kasowski H.J., Kim H., Gree C.A. Compartmental organization of the olfactory bulb glomerulus // J. Comp. Neurol., 1999. V. 407. — P. 261−274.
  129. Katkov Y.A., Otmakhova N.A., Gurevich E.V., Nesterova I.V., Bobkova N.V. Antidepressants suppress bulbectomy-induced augmentation of voluntary alcohol consumption in C57Bl/6j but not in DBA/2j mice // Physiol, and Behav., 1994.-V. 56.-P. 501−509.
  130. Katoh K., Koshimoto H., Tani A., Mori K. Coding of odor molecules by mitral/tufted cells in rabbit olfactory bulb. II. Aromatic compounds. // J Neurophysiol., 1993. V. 70. — P. 2161−2175.
  131. Kiyohara S., Tucker D., Activity of new receptors after transection of the primary olfactory nerve in pigeons // Phisiol. Behav., 1978.- № 6.- P. 987−994.
  132. Koenig H. An Autoradiographic Study of Nucleic Acid and Protein Turnover in the Mammalian Neuraxis // J. Biophys. Biochem. Cytol., 1958. -V. 25. -№ 4(6). -P. 785−792.
  133. Kornack D.R., Rakic P. Cell proliferation without neurogenesis in adult primate neocortex // Science, 2001. V. 294. — P. 2127−2130.
  134. Korol D.L., Brunjes P. S. Unilateral naves closure and vascular development in the rat olfactory bulb // Neuroscience, 1992. -№ 3. -P. 631−641.
  135. Laing D.G., Panhuber H. Neural and behavioural changes in rats following continuous exposure to an odour // Journal of Comparative Physiology, 1978. -V.124.-P. 259−265.
  136. Land L.J. Localized projection of olfactory nerves to rabbit olfactory bulb // Brain Research, 1973. V. 23. — P. 250−254.
  137. Lima C., Patas-Vital J., Escada P. Olfactory mucosa autografts in human spinal cord injury: a pilot clinical study. // J. Spinal Cord Med., 2006. V. 29. — P. 191−203.
  138. Liu W.L. Die Geterogenitat und postnatale Entwicklung der Glomeruli in Bulbus olfactorius von Albinoratten // Versammlung der Anatomischen Gesellschaft, Greifswald. 1998. № 27. S. 90−91.
  139. Livai O., Breer H., Strotmann J. Subzonal organization of olfactory sensory neurons projecting to distinct glomeruli within the mouse olfactory bulb // J. Comp. Neurol., 2003. V. 458. — P. 209−220.
  140. Lois C., Alvarez-Buy 11a A. Long-distance neuronal migration in the adult mammalian brain // Science, 1994. V. 264. — P. 1145−1148.
  141. Lotz M., Vaughan J.H., Crason D.A. Effect of neuropeptideson production of inflammatory cytokines by human monocytes // Science, 1988. V.241 P. 1218−1220.
  142. Luskin M.B. Restricted proliferation and migration of postnatally generated neurons derived from the forebrain subventricular zone // Neuron, 1993. № 11.-P. 173−189.
  143. Macrides F., Schneider S.P. Laminar organization of mitral and tufted cells in the main olfactory bulb of the adult hamster // Journal of Comparative Neurology, 1982. V. 208. — P. 419−430.
  144. Maggi C.A. Tachykinins and CGRP as co-transmitters released from peripheral endings of sensory nerves // Prog. Neurobiol., 1995, 45, P. 1−98.
  145. Mair R.G., Gellman R.L., Gesteland R.G. Postnatal proliferation and maturation of olfactory bulb neurons in the rat // Neuroscience. 1982. — № 12. -P. 3105−3116.
  146. Mapp, C.E., Chitano P., Fabbri L.M., Patacchini R., Santicioli P., Geppeti P., Maggi C.A. Evidence that toluene diisocyanate (TDI) activates the efferent function of capsaicin-sensitive primary afferents // Eur. J. Pharmacol., 1990, V.100, P.886−888.
  147. Marschner C. Qualitative und quantitative Untersuchungen am Bulbus olfactorius des Elefanten im Vergleich mit dem desMenschen und des Schweines // Acta Anatomica, 1970, № 75. S. 578−595.
  148. Maruniak J.A., Henegar J.R., Sweeney T.R. Effects of long-term unilateral naves closure on the olfactory epithelia of adult mice // Brain Res., 1990.- 526. № 1. P. 65−72.
  149. Matulionis D.H. Effects of the aging process on olfactory neuron plasticity // Olfact. and Endocrine Regul. Proc. 4th Eur. Chemorecept. Res. Organ. Symp., Essen, 11−15 Oct., 1981.-London, 1982.-P. 299−307.
  150. Mazelin L., Theodorou V., More J. Protective role of vagal afferents in experimentallyinduced colitis in rats // J. Auton. Nerv. Syst. — 1998. — Vol. 73. —№ 1.—P.38−45.
  151. Meisami E, Noushinfar E. Early olfactory deprivation and the mitral, cells of the olfactory bulb: a golgi study // Int. J. Dev. Neurosci., 1986. V. 4. — P. 431 444.
  152. Meisami E., Safari L. A quantitative study of the effects of early unilateral olfactory deprivation on the number and distribution of mitral and tufted cells and glomeruli in the rat olfactory bulb // Brain Res., 1981.- 221. № 1. P. 81 107.
  153. Meister M., Bonhoeffer T. Tuning and topography in an odor map on the rat olfactory bulb //J. Neurosci., 2001. -V. 21. P. 1351−1360.
  154. Mombaerts P., Wang F., Dulac C., Chao S.K., Nemes A., Mendelsohn M., Edmondson J., Axel A. Visualizing an olfactory sensory map // Cell, 1996. -V. 87.-P. 675−686.
  155. Mori K., Nagao H., Yoshihara Y. The olfactory bulb: coding and processing of odor molecule information // Science, 1999. V. 286. — P. 711−715.
  156. Nagy I., Rang H.P. Similarities and Differences between the Responses of Rat Sensory Neurons to Noxious Heat and Capsaicin // The Journal of Neuroscience, 1999, V19. — № 24. P. 10 647−10 655.
  157. Nikonov AA, Caprio J. Electrophysiological evidence for a chemotopy of biologically relevant odors in the olfactory bulb of the channel catfish // J. Neurophysiol., 2001. -V. 86. P. 1869−1876.
  158. Price J.L., Powell T.P.S. The mitral and short axon cells of the olfactory bulb //J. Cell. Sci., 1970. -V. 7,-P. 631−651.
  159. Ramer L., Au E., Richter M.W. Peripheral olfactory ensheathing. cells reduce- scar and cavity formation and promote regeneration after spinalcord injury // J.Comp.Neurol., 2004. V. 473. — P. 1−15,
  160. Ressler K. J, Sullivan S.L., Buck L.B. A zonal organization of odorant receptor gene expression in the olfactory epithelium // Cell., 1993. — V. 73. P. 597−609.
  161. Ressler K.J., Sullivan S.L., Buck L.B. Information coding in the olfactory system: evidence for a stereotyped and highly organized epitope map in the olfactory bulb // Cell., 1994. -V. 79. P. 1245−1255.
  162. Rosselli-Austin L., Altman J. The postnatal development of the main olfactory bulb of the rat // Journal of Developmental Physiology, 1979. V. 1. -P. 295−313.'
  163. Royet J. P., Distel H., Hudson R., Gervais R. A re-estimation of the number of glomeruli and mitral cells in the olfactory bulb of rabbit // Brain research, 1998. V. 788. — № 1−2. — P. 35−42.
  164. Sallivan S.L., Dryer L. Information processing in mammalian olfactory system // Journal of neurobiology. 1996. — V. 30. — № 1. — P. 20−36.
  165. Scardina, G.A., Carini, F., Valenza, V., Messina, P. Topical capsaicin application and axon reflex vasodilatation of the tongue: A videocapillaroscopic study // Methods Find Exp. Clin. Pharmacol., 2006, V. 28. № 10. P.707.
  166. Schoenfeld T.A., Clancy A.N., Forbes W.B., Macrides F. The spatial organization of the peripheral olfactory system of the hamster. I. Receptor neuron projections to the main olfactory bulb // Brain Res., 1994. Bull. 34. -P. 183−210.
  167. Schoenfeld T.A., Cleland T.A. The anatomical logic of smell // Trends. Neurosci., 2005. -V. 28.- P. 620−627.
  168. Serizawa S., Miyamichi K., Sakano H. One neuron-one receptor rule in the mouse olfactory system //Trends. Genet., 2004. V. 20. — P. 648−653.
  169. Slotnick B. M., Hersch S. A stereotaxic atlas of the rat olfactory system // Brain Research, 1980. V. 5, — P. 1−55.
  170. Stahl B., Distel H., Hudson R. Effects of revers nave occlusion of the development of the olfactory epithelium in the rabbit nasal septum // Cell. And Tissue Res., 1990.- № 2.- P. 275−281.
  171. Struble R.G., Beekman S.L., Fesser E., Nathan B.P. Volumetric and horseradich peroxidase tracing analysis of rat olfactory bulb following reversible olfactory nerve lesions // Chem. Senses, 2001. V. 26. — P. 971−981.
  172. Szallasi A., Blumberg P.M., Vanilloid (capsaicin) receptors and mechanisms. //Pharmacol. Rev., 1999. Vol. 51. № 2. P. 159−211.
  173. Takahashi Y.K., Kurosaki M., Hirono S., Mori K. Topographic representation of odorant molecular features in the rat olfactory bulb // J. Neurophysiol., 2004. V. 92. — P. 2413−2427.
  174. Taupin P., Gage F.H. Adult neurogenesis and neural stem cell of the central nervous system in mammals // Journal of Neuroscience Research, 2002. V. 69. — P. 745−749.
  175. Theiler K. The House Mouse: Atlas of Embryonic Development. New York: Springer-Verlag, 1989. — 178 p.
  176. Treolar H.B., Purcell A.L., Greer C.A. Glomerular formation in the developing rat olfactory bulb // J.Comp. Neurol., 1999. V. 413. — P. 289- 304.
  177. Treloar H.B., Feinstein P., Mombaerts P., Greer C.A. Specificity of glomerular targeting by olfactory sensory axons // J. Neurosci., 2002. V. 22. -P. 2469−2477.
  178. Tropepe V., Sibilia, M., Ciruna, B.G., Rossant J., Wagner E.F., Kooy D. Distinct Neural Stem Cells Proliferate in Response to EGF and FGF in the Developing Mouse Telencephalon // Developmental Biology, 1999. V. 208. — P. 166−188.
  179. Uchida N., Takahashi Y.K., Tanifuji M., Mori K. Odor maps in the mammalian olfactory bulb: domain organization and odorant structural features //Nat. Neurosci., 2000. V. 3. — P. 1035−1043.
  180. Valverde F. Building an olfactory glomerulus // J.Comp. Neurol., 1999. V. 425.-N4. -P. 419−422
  181. Vassar R, Chao S.K., Sitcheran R., Nuvez J.M., Vosshall L.B., Axel R. Topographic organization of sensory projections to the olfactory bulb // Cell., 1994.-V. 79- P. 981−991.
  182. Vizzard M.A. Increased expression of neuronal nitric oxide synthase in dorsal root ganglion neurons after systemic capsaicin administration // Neuroscience, 1995. V. 67. -№ 1. — P. 1−5.
  183. Wachowiak M., Cohen L.B. Correspondence between odorant-evoked patterns of receptor neuron input and intrinsic optical signals in the mouse olfactory bulb // J. Neurophysiol., 2003. V. 89. — P. 1623−1639.
  184. Webster H.H., Flores G., Marcotte E.R., Cecyre D., Quirion R., Lalit K. Srivastava L.K. Olfactory bulbectomy alters NMDA receptor levels in the rat prefrontal cortex // Synapse, 2000. V. 37. — P. 159−162.
  185. Webster D.B., Webster M. Neonatal sound deprivation affects brain stem auditory nuclei // Archives of Otolaryngology, 1977. V. 103, 392−396.
  186. Wiesel T.N., Hubel D.T. Effects of visual deprivation on morphology and physiology of cells in the cat’s lateral geniculate body // Journal of Neurophysiology, 1963. -V. 26. P. 978−993.
  187. Xue, Q., Jong B., Chen T., Schumacher M.A., Transcription of rat TRPV1 utilizes a dual promoter system that is positively regulated by nerve growth factor//Journal of Neurochemistry 2007. V. 101. № 1. P. 212−222.
  188. Zhang X., Firestein S. The olfactory receptor gene superfamily of the mouse //Nat. Neurosci., 2002. -V. 5. P.124−133.интактной крысы (мкм)
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!