Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию цитокинов, стрессовых белков и оксида азота в клетках иммунной системы мышей

Диссертация: Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию цитокинов, стрессовых белков и оксида азота в клетках иммунной системы мышей
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Дозовые зависимости изменений активности клеток иммунной системы при воздействии иизкоиитепсивпого лазерного света были также выявлены при облучении изолированных клеток мышей-самцов NMRI. Так, облучая популяцию Т лимфоцитов и макрофагов in vitro, мы показали, что при дозах, не превышающих 6><10″ Дж/см, наблюдается стимуляция продукции ФНО-а, ИЛ-2, ИЛ-6, ИФН-у, оксида азота (N0), БТШ70… Читать ещё >

Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию цитокинов, стрессовых белков и оксида азота в клетках иммунной системы мышей (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений и обозначений
  • ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Физические характеристики лазерного излучения
    • 1. 2. Особенности действия НИЛИ на биологические объекты
    • 1. 3. Биологические эффекты низкоинтенсивного лазерного света
    • 1. 4. Возможные молекулярно-клеточные механизмы действия НИЛИ
    • 1. 5. Действие НИЛИ на иммунную систему человека и животных
    • 1. 6. Применение низкоинтенсивного лазерного излучения в терапии
    • 2. Цитокины, защитные белки, оксид азота, а также естественнее киллерные клетки как основные участники реакции организма на воздействие внешних факторов
      • 2. 1. Фактор некроза опухолей
        • 2. 1. 1. Функции ФНО в организме
      • 2. 2. Интерлейкины
        • 2. 2. 1. Интерлекин
        • 2. 2. 2. Интерлейкин
        • 2. 2. 3. Интерлейкин
      • 2. 3. Интерферон
      • 2. 4. Оксид азота (N0)
      • 2. 5. Белки теплового шока
      • 5. 6. Естественные киллерные клетки (ЕКК)
  • ЧАСТЬ II. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
    • 1. Материалы и методы исследования
  • ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Влияние НИЛИ на изолированные иммунокомпетентные клетки
      • 3. 1. 1. Влияние НИЛ И на секрецию N0 перитонеальными макрофагами
      • 3. 1. 2. Влияние НИЛИ на цитотоксическую активность естественных киллерных клеток селезёнки
      • 3. 1. 3. Влияние НИЛИ на продукцию ИФН-у и ФНО-а перитонеальными макрофагами
      • 3. 1. 4. Продукция ИЛ-6 перитонеальными макрофагами и лимфоцитами селезёнки
      • 3. 1. 5. Продукция ИЛ-2 и ИЛ-3 лимфоцитами селезёнки
      • 3. 1. 6. Продукция БТШ70 и БТШ90 лимфоцитами селезёнки
    • 3. 2. Влияние НИЛИ на показатели клеточного иммунитета здоровых животных
      • 3. 2. 1. Динамика изменения иммунологических показателей мышей после однократного облучения НИЛИ
        • 3. 2. 1. 1. Продукция ИЛ-2 Т-лимфоцитами и содержание этого цитокина в сыворотке крови
        • 3. 2. 1. 2. Продукция ФНО-а перитонеальными макрофагами и Т-лимфоцитами селезенки
        • 3. 2. 1. 3. Продукция NO перитонеальными макрофагами
        • 3. 2. 1. 4. Продукция БТШ70 лимфоцитами селезёнки
      • 3. 2. 2. Влияние длительного фракционированного облучения НИЛИ на состояние иммунной системы мышей
        • 3. 2. 2. 1. Количество иммунокомпетентных клеток
        • 3. 2. 2. 2. Продукция ИЛ-2 Т-лимфоцитами селезёнки и содержание ИЛ-2 в сыворотке крови
        • 3. 2. 2. 3. Продукция ФНО перитонеальными макрофагами Т- лимфоцитами, и содержание ФНО в сыворотке крови
        • 3. 2. 2. 4. Секреция оксида азота перитонеальными макрофагами
        • 3. 2. 2. 5. Продукция БТШ 70 лимфоцитами селезёнки
      • 3. 2. 3. Влияние НИЛИ на животных с экспериментальными опухолями
      • 3. 2. 3. Влияние НИЛИ на животных с экспериментальными опухолями
        • 3. 2. 3. 2. Влияние однократного действия НИЛИ на опухоленосителей
        • 3. 2. 3. 2. 1. Динамика изменения иммунологических показателей организма опухоленосителей после однократного воздействия НИЛИ
        • 3. 2. 3. 3. Влияние хронического облучения НИЛИ на организм опухоленосителей
        • 3. 2. 3. 3. 1. Влияние НИЛИ на количество иммунокомпетентных клеток
        • 3. 2. 3. 3. 2. Влияние НИЛИ на продукцию ИЛ-2 Т-клетками и его концентрацию в сыворотке крови
        • 3. 2. 3. 3. 3. Влияние НИЛИ на продукцию ФНО макрофагами и Т-лимфоцитами
        • 3. 2. 3. 3. 4. Влияние НИЛИ на секрецию оксида азота
        • 3. 2. 3. 3. 5. Влияние НИЛИ на активность ЕКК
        • 3. 2. 3. 3. 6. Влияние НИЛИ на продукцию белков теплового шока в иммунокомпетентных клетках
        • 3. 2. 3. 3. 7. Влияние НИЛИ на размер опухоли и среднюю продолжительность жизни мышей-опухоленосителей

Исследования закономерностей воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на живой организм относятся к одной из приоритетных областей отечественной науки (Артюхов и др., 2001; Владимиров и др., 2004; Karu et. al., 2005). Большой поток работ в этой области был вызван двумя причинами: во-первых, прорывом в технологических разработках, и, во-вторых, довольно успешными примерами использования лазерного излучения в различных областях медицины. При этом во многих случаях лазерная терапия не была подкреплена серьезными фундаментальными исследованиями, а успехи в прикладных областях во многом определялись интуицией практикующих врачей. Тем не менее, параллельно с внедрением лазерной терапии в медицинскую практику проводились исследования по выяснению первичных механизмов взаимодействия лазерного света с живой материей, и наиболее заметный вклад в решение этой проблемы был внесен представителями школы Ю. В. Владимирова, который сформулировал три гипотезы о механизмах действия низкоинтенсивного лазерного света (Владимиров, 1994).

Большое количество работ по изучению биологических эффектов лазерного излучения было проведено с использованием гелий-неоновых лазеров с длиной волны 632,8 нм. Имеется ряд сообщений, приводящих убедительные доказательства иммуностимулирующей активности низкоинтенсивного лазерного облучения (Kipshidze et. al., 2001; Dube et. al., 2003). Это свойство низкоинтенсивного лазерного света обусловило привлекательность его использования в терапии широкого спектра патологий, которые связаны с иммунодепрессией, например, многие хронические инфекционные заболевания, воспаления, а также злокачественный рост (Москвин и Буйлин, 2000; Genot & Klastersky, 2005). Несмотря на широкое применение лазерной терапии, пока не установлена общепринятая концепция, касающаяся первичных механизмов взаимодействия лазерного света с биологическими объектами. Кроме того, имеются проблемы, связанные с определением безопасного уровня интенсивности лазерного излучения при его использовании в клинике. Безусловно, большие дозы лазерного излучеиия, используемого для формирования тепловых эффектов, вызывают иммуносупрессию. Например, высокоинтенсивное лазерное излучение с дозой 37,8 Дж/см2 вызывало резкое угнетение активности иммунокомпетентных клеток, экспонированных in vitro, которое выражалось в подавлении продукции ряда цитокинов (Funk et. al., 1993). Имеются предположения о том, что дозы лазерного излучения, используемые для терапевтических целей, не должны превышать 10 Дж/см2 (Klebanov et. al., 1998; Владимиров Ю. А., 1994). Однако есть основания полагать, что в некоторых случаях рекомендованные терапевтические дозы могут также вызывать неблагоприятные побочные эффекты, связанные с высокой чувствительностью клеток иммунной системы к внешним воздействиям.

В настоящее время назрела явная необходимость выяснения чувствительности ключевых звеньев системы клеточного иммунитета животных к воздействию слабого лазерного излучения, причем такое исследование должно быть проведено с использованием различных моделей. Среди основных целей настоящей работы было исследование зависимостей «доза-эффект» для активности клеток иммунной системы, определяемой по секреции ряда цитокинов (ИЛ-2, ИЛ-3, ИЛ-6, ИФН-у, ФНО-а), оксида азота (N0), активности естественных киллерных клеток (ЕКК) и экспрессии белков теплового шока (БТШ70 и БТШ90) — как при воздействии на клетки in vitro сверхслабого лазерного излучения, так и при облучении организма in vivo. Для получения более исчерпывающих сведений о характере взаимодействия лазерного излучения с живой клеткой считали целесообразным провести сравнительное исследование ответов клетки в нормальных условиях и при патологии. При использовании животных моделей было необходимо выяснить зависимость эффектов от области аппликации лазерного света на поверхности тела. Кроме того, выяснение чувствительности иммунокомпетентных клеток к воздействию лазерного излучения в дозах, которые на несколько порядков ниже рекомендуемых терапевтических доз, поможет обратить более направленное внимание на проблему безопасности лазерной терапии.

Цель и основные задачи исследования. Цель настоящей работы состояла в исследовании иммунотропных эффектов малых доз низкоинтенсивного лазерного излучения (НИЛИ) (Х=632,8 нм, 1=0,2 мВт/см) при воздействии на изолированные лимфоидные клетки in vitro, а также при воздействии in vivo на здоровых животных и на мышей с экспериментальными опухолями, В соответствии с выбранной целью были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать зависимости «доза-эффект» для активности клеток иммунной системы, определяемой по секреции ряда цитокинов (ИЛ-2, ИЛ-3, ИЛ-6, ИФН-у, ФНО-а), оксида азота (N0), активности естественных киллерных клеток (ЕКК) и экспрессии белков теплового шока (БТШ70 и БТШ90) — как при воздействии на клетки in vitro сверхслабого лазерного излучения, так и при облучении организма in vivo.

2. Исследовать зависимость иммунотропных эффектов НИЛИ in vivo от локализации экспонированного участка кожи здоровых мышей и животных-опухоленосителей.

3. Исследовать влияние НИЛИ на скорость опухолевого роста и продолжительность жизни животных-опухоленосителей.

выводы.

1. Клетки иммунной системы обладают высокой чувствительностью к действию сверхслабого излучения гелий-неонового лазера, при этом ответы клеток сопровождаются дисбалансом продукции цитокинов (ФНО-а, ИЛ-2, ИЛ-3, ИЛ-6, ИФН-у), оксида азота и повышением продукции белков теплового шока (БТШ70) в диапазоне доз падающего излучения 10″ 3 Дж/см2 — 3,6×10'2 Дж/см2, что указывает на стрессовый характер ответа.

2. В диапазоне сверхмалых доз (10 Дж/см — 10' Дж/см), которые на несколько порядков ниже рекомендуемых терапевтических, экспериментами in vivo и in vitro доказана зависимость эффектов НИЛИ от дозы, при этом относительно небольшие дозы излучения вызывают стимуляцию активности клетокнапротив, повышение дозы приводит к иммуносупрессии. Это доказано путем оценки уровней продукции цитокинов, оксида азота, белков теплового шока и активности естественных киллерных клеток.

3. При облучении целого организма мыши эффекты сверхмалых доз лазерного излучения зависят не только от дозы, но и от локализации облучаемого участка кожи. В диапазоне сверхнизких доз более эффективным для модуляции активности иммунокомпетентных клеток оказалось облучение проекции зоны тимусаклеточные ответы проявлялись быстрее и были более выраженными в сравнении с экспозицией поверхности кожи задней конечности.

4. Продолжительное (в течение 30 дней) фракционированное облучение мышей-опухоленосителей лазерным светом не оказывало противоопухолевого эффекта: более того, было обнаружено увеличение размеров опухоли и тенденция к снижению продолжительности жизни облученных опухоленосителей по сравнению с необлучёнными.

5. Доказано, что низкоинтенсивный красный лазерный свет является весьма эффективным иммуномодулирующим инструментом, который следует использовать очень осторожно при проведении лазерной терапии. Результаты настоящей работы указывают на необходимость тщательного мониторинга иммунного статуса организма при использовании лазерного света в медицинской практике: очевидна необходимость индивидуального подхода и предварительной оценки состояния системы клеточного иммунитета пациентов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проведенной работы было показано, что низкоинтенсивное лазерное облучение способно вызывать не только стимуляцию клеток иммунной системы, но при определенных условиях приводить к угнетению их активности. Например, активность естественных киллерных клеток (ЕКК), являющихся важной составляющей неспецифической иммунной защиты, можно было регулировать, изменяя дозу воздействия низкоинтенсивным красным светом, а также локализацию облучаемого участка тела. В этом случае фракционированное облучение зоны тимуса малой дозой приводило к подавлению активности ЕКК, а облучение в том же режиме поверхности кожи в области задней лапы, напротив, стимулировало активность этих клеток. Подобные же закономерности ответа клеток на пролонгированное повторяющееся каждые третьи сутки воздействие in vivo светом гелий-неонового лазера мы обнаружили при исследовании продукции цитокинов, оксида азота и белков теплового шока у здоровых животных.

Что же касается использования фракционированного режима облучения лазерным светом животных с экспериментальными опухолями, то нам не удалось обнаружить его лечебного эффекта. Действительно, при облучении опухоленосителей не было выявлено ни снижения уровня дисбаланса клеточного иммунитета, вызванного опухолевым ростом, ни торможения роста злокачественных новообразований, ни сколько-нибудь заметного увеличения продолжительности жизни животных. Тем не менее, такой экспериментальный результат не отменяет самой возможности применения лазерной терапии при злокачественном росте, но указывает на то, что использованный режим с постепенным увеличением кумулятивной дозы не является оптимальным. Действительно, в работе показано, что если была применена только однократная экспозицию in vivo, то в течение нескольких суток после воздействия лазерным светом наблюдали стимуляцию противоопухолевого иммунитета.

Показанная стимуляция ключевых звеньев клеточного иммунитета при воздействии сверхслабых доз лазерного света и возникновение противоположного эффекта (угнетения) при возрастании дозы, отражает механизм возникновения и последующего снижения (при накоплении дозы) уровня адаптивного ответа лимфоидных клеток. Такая закономерность позволяет сделать вывод о стрессовой реакции клеток на сверхслабое лазерное излучение. Действительно, в работе впервые было обнаружено, что низкоинтенсивное лазерное излучение вызывает экспрессию индуцибельных форм белков теплового шока, БТШ70 и.

БТШ90, являющихся главными маркерами клеточного стресса. Известно, что индуцибельные формы белков теплового шока, продуцируемые при действии целого ряда повреждающих факторов, таких как высокая температура, ионизирующая и неионизирующая радиация, нейротоксины, тяжелые металлы являются главным внутриклеточным фактором защиты от этих воздействий.

Дозовые зависимости изменений активности клеток иммунной системы при воздействии иизкоиитепсивпого лазерного света были также выявлены при облучении изолированных клеток мышей-самцов NMRI. Так, облучая популяцию Т лимфоцитов и макрофагов in vitro, мы показали, что при дозах, не превышающих 6><10″ Дж/см, наблюдается стимуляция продукции ФНО-а, ИЛ-2, ИЛ-6, ИФН-у, оксида азота (N0), БТШ70 и активности ЕКК. Увеличение дозы облучения приводило, в основном, к угнетению секреторной активности макрофагов и Т лимфоцитов, а также к подавлению цитотоксической активности ЕКК. Таким образом, при воздействии in vivo и in vitro лазерным светом чрезвычайно низкой интенсивности было отмечено общее свойство низкоинтенсивиого лазерного света: несмотря на то, что в работе использовали диапазон очень низких доз излучения, внутри этого диапазона проявлялись дозозависимые эффекты действия на лимфоидные клетки. Это указывает на то, что в отличие от других видов неионизирующих излучений, например низкоинтеисивпых ЭМИ КВЧ и ЭМИ СВЧ, лазерный свет является более действенным и тонким инструментом, способным модулировать активность функционирования лимфоидных клеток, и, следовательно, вызывать заметные изменения иммунного статуса животных. Результаты данной работы имеют прямое отношение к проблеме безопасности лазерной терапии, при использовании которой следует учитывать, что незначительное изменение дозы лазерного излучения может изменить знак воздействия и лечебный эффект не будет достигнут. Это указывает на необходимость проведения тщательного параллельного мониторинга активности главных регуляторных систем организма, в том числе состояния иммунной системы, в процессе проведения лазерной терапии. Кроме того, необходимы дальнейшие исследования по уточнению норм безопасности при использовании терапевтических доз лазерного излучения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. G.M. & Billings R.E. Cytokine toxicity and induction of NO synthase activity in cultured mouse hepatocytes. // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1993, Vol. 119. P. 100−107.
  2. B.B. & Natarajan K. TNF: Developments during the last decade. // Eur. Cytokine Netw. 1996. Vol. 7 (2). P. 93−124.
  3. Aglietta M., Pasquino P., Sanavio F. et al. Granulocyte-macrophage colony stimulating factor and interleukin 3: target cells and kinetics of response in vivo. // Stem Cells. 1993. Vol. 11. Suppl.2. P. 83−87.
  4. H., Srivastova R.C., Agarwal R., Mukhtar H. // Biochem and Biophys. Res. Communs. 1997. V. 232. P. 328.
  5. Akashi K. et al. IL-4 suppresses the spontaneous growth of chronic myelomonocytic leukemia cells // Shibuya T, Harada M, Takamatsu Y, Uike N, Eto T, Niho Y — J. Clin. Invest. 199l.V. 88. P. 223.
  6. Alexiades-Armenakas M., Laser-mediated photodynamic therapy. Clin. Dermatol. 2006. V. 24(1). P. 16−25.
  7. Al-Ramadi B.K., Meissler J.J.Jr., Huang D., Eisenstein Т.К. Immunosuppression induced by nitric oxide and its inhibition by interleukin-4. // Eur. J. Immunol. 1992. Vol. 22. P. 2249−2254.
  8. Amato R.J., Morgan M., Rawat A. Phase I/II study of thalidomide in combination with interleukin-2 in patients with metastatic renal cell carcinoma. // Cancer. 2006. Feb 10- Epub ahead of print. PMID: 16 475 152 [PubMed as supplied by publisher],
  9. Amento E.P., Ehsani N., Palmer H., Libby P. Cytokines and growth factors positively and negatively regulate interstitial collagen gene expression in human vascular smooth muscle cells. // Arteriolscl. Thromb. 1991. Vol. 11 (5). P. 12 231 230.
  10. W.P., Mittal C.K., Katsuki S., Murad F. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. V. 74. P. 3203.
  11. E., Stalla G.K. // Neuroimmunomodulation. 1996. V. 3. P. 28.
  12. Azem A., Oppliger W., Lustig A. et al. The mitochondrial hsp70chaperone system, effect of adenine nucleotides, peptide substrate, and mGrpE on the oligomeric state of mhsp70. // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. P. 20 901−20 906.
  13. Barlozzari Т., Reynolds C.W., Herberman R.B. In vivo role of natural killer cells: Involvement of large granular lymphocytes in the clearance of tumor cells in anti-asialo GM1-treated rats. // J. Immunol. 1983. V. 131. P. 1024−1027.
  14. Basford J.R. Low-energy laser therapy: controversies and new research findings. // Lasers Surg. Med. 1989. № 1. P. 1−5.
  15. Berk B.C., Abe J.I., Min W. et al. Endothelial atheroprotective and antiinflammatory mechanisms. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2001. Vol. 947. P. 93−109.
  16. Bernardy P., Scorrano L., Colonna R., Petronilli V., Di Lisa F. Mitochondria and cell death. Mechanistic aspects and metodological issues. // Eur. Jorn. Biochem. 1999. Vol. 264. № 3. P. 687−701.
  17. Beutler В., Cemari A. The biology of cachectin/TNF a primary mediator of the host response // Ann. Rev. Biochem. 1989. V. 7. P. 625−655.
  18. Beutler В., Cemari A. The biology of cachectin/TNF a primary mediator of the host response // Ann. Rev. Biochem. 1989. V. 7. P. 625−655.
  19. Beutler В., Cerami A. Tumor necrosis, cachexia, shock, and inflammation: a common mediator //Ann. Rev. Biochem. 1988. Vol.57. P. 505−518.
  20. M. & Farnia P. Proinflammatory cytokines can significantly induce human mononuclear phagocytes to produce nitric oxide by a cell maturation-dependent process. // Immunol. Lett. 1995. Vol. 48. P. 59−64.
  21. D.S., Snyder S.H. // Annu. Rev. Biochem. 1994. V. 63. P. 175−195.
  22. Brennan F.M., Maini R.N., Feldmann M. TNF alpha a pivotal role in rheumatoid arthritis? // Br. J. Rheumatol. 1992. Vol. 31(5). P. 293−298.
  23. Brooks C.G., Kuribayashi K., Sale G.E., Henney C.S. Characterization of five cloned murine cell lines showing high cytolytic activity against YAC-1 cells. // J. Immunol. 1982. V. 128. P. 2326.
  24. Brosseau L., Welch V., Wells G., Tugwell P., de Bie R., Gam A., Harman K" Shea В., Morin M. Low level laser therapy for osteoarthritis and rheumatoid arthritis: a metaanalysis. // J. Rheumatol. 2000. V. 27(8). 1961−1969.
  25. Brown C.R., Martin R.L., Hansen W.J., Beckman R.P., Welch W.J. The constitutive and stress-inducible forms of hsp70 exhibit functional similarities and interact with one another in an ATP-dependent facion. // J. Cell. Biol. 1993. V. 120 P. 1101−1112.
  26. Brown G.C. Nitric oxide and mitochondrial respiration // Biochem. Biophys. Acta. 1999. Vol. 1411. P. 351−369.
  27. Burdach S., Levitt L. T cell regulated hematopoiesis-molecular interactions in hematopoietic control by CD2 and interleukin 2. // Behring. Inst. Mitt. 1988. V. (83). P. 56−67.
  28. Burduli N.M., Gutnova S.K. State of humoral immunity and phagocytic activity of neutrophils in patients with ulcer and effect of low-intensity laser therapy. // Eksp Klin Gastroenterol. 2004- V. (4). P. 29−32.
  29. Burger D. Cell contact-mediated signaling of monocytes by stimulated T cells: a major pathway for cytokine induction. // Eur Cytokine Netw. 2000. V. 11(3). P. 346−53.
  30. R., Fleming I. // Ann. Med. 1995. Vol. 27 P. 331−340.
  31. L., Giardino L., Cecatelli S. //Neuro Report. 1993. V. 4. P. 627−630.
  32. Carson W.E., Haldar S, Baiocchi R.A., Croce C.M., and Caligiuri M.A. The c-kit ligand suppresses apoptosis of human natural killer cells through the up-regulation of bcl-2. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1994. V. 91. P. 7553−7557.
  33. Castro D.J., Saxton R.E., Soudant J. The concept of laser hpototeraphy. // Otolaringol. Clin. North. Am. 1996. Vol. 29. № 6. P. 1011−1029.
  34. Chen S., Smith D.F., Hop as an adaptor protein in the Hsp70 and Hsp90 mashinery. // J. Biol. Chem. 1998. V.273. P. 35 194−35 200.
  35. Chhatwal V.J.S., Ngoi S.S., Chan S.T.F., Chia Y.W., Moochhala S.M. // Carcinogenesis. 1994. V. 15. P. 2081.
  36. Cohen L., David В., Cavaillon J.M. Interleukin 3 enhances cytokine production by LPS-stimulated macrophages. // Immunol. Lett. 1991. Vol. 28. P. 121−126.
  37. Colotta F., Re F., Polentarutti N. et al. Modulation of granulocyte survival and programmed cell death by cytokines and bacterial products. // Blood. 1992. Vol. 80. P. 2012−2020.
  38. Corral-Baques M.I., Rigau Т., Rivera M., Rodriguez J.E., Rigau J. Effect of 655-nm diode laser on dog sperm motility. // Lasers Med Sci. 2005. V. 20 (1) P. 28−34.
  39. R.M. & Schrader J.W. Frequency of mast cell precursors in normal tissues determined by an in vitro assay: antigen induces parallel increases in the frequency of P cell precursors and mast cells. // J. Immunol. 1983. Vol. 131 (2). P. 923−928.
  40. M., Savino W. // Advances Neuroimmunol. 1996. V. 6
  41. De Vree W.J., Essers M.C., De Bruijn H.S., Star W.M., Koster G.F., Sluiter V. Evidence for an important role of neutrofils in efficiecy of photodynamyc theraphy in vivo. //Cancer Res. 1996. Vol. 56. № 13. P. 2908−2911.
  42. D., Adanrio F.D. // Int. J. Immunopharmacol. 1991. Vol. 13. № 7. P. 943 954.
  43. M.R., Calderon C.L., Lopez D.M. // J. Exptl Med. 1996. V. 183. P. 1323.
  44. Dionetto P., D’Ovido M., Franz S. Treatment of Herpes Zoster whith LLLT and magneto theraphy. // Laser therahpy. 1994. Vol. 6. № 1. P. 35.
  45. Dix R.D., Cousins S.W. Interleukin-2 immunotherapy and AIDS-related cytomegalovirus retinitis.Curr. HIV Res. 2004. V. 2(4). P. 333−342.
  46. Dong Z., Staroselsky A.H., Qi X., Xie K., Filder I.J. // Cancer Res. 1994. V. 54. P. 789.
  47. Dougherty Т.J., Gomer С.J., Henderson B.W., Jori G., Kessel D., Korbelik M., Moan J., Peng Q. Photodynamic theraphy // J. Natl. Cancer Inst. 1998. Vol. 90. № 12. P. 889−905.
  48. Doyama K., Fujiwara H., Fukumoto M. et al. Tumor necrosis factor is expressed in cardiac tissue of patients with heart failure. // Int. J. Cardiol. 1996. Vol. 54. P.217−225.
  49. J.C., Pellat C., Henry Y. // J. Biol. Chem. 1991. V. 266. P. 10 162.
  50. Dube A., Bansal H., Gupta P.K. Modulation of macrophage structure and function by low level He-Ne laser irradiation. // Photochem Photobiol Sci. 2003. V. 2(8). P. 851−855.
  51. Ehrlich L.A., Chung H.Y., Ghobrial I., Choi S.J., Morandi F., Colla S., Rizzoli V., Roodman G.D., Giuliani N. IL-3 is a potential inhibitor of osteoblast differentiation in multiple myeloma. // Blood. 2005. V. 106(4). P. 1407−1414.
  52. Eigler A. et al. Exogenous and endogenous nitric oxide attenuates tumor necrosis factor synthesis in the murine macrophage cell line RAW 264.7 // Moeller J., Endres S.- J Immun. 1995. V. 154. 8. P. 4048−4054.
  53. Evans S., Matthews W., Perry R., Fracker D., Norton J., Pass H.I. Effect of photodynamic therapy on tumor necrosis factor production by murine macrophages. // J. Natl. Cancer Inst. 1990. Vol. 82. № 1. P. 34−39.
  54. Farago K. Low power laser in dermatology. // Laser Theraphy. 1994. Vol. 6. № 1.
  55. Fast D.J., Lynch R.C. Leu R.W. Interferon-gamma, but not interferon-alpha beta, synergizes with tumor necrosis factor-alpha and lipid A in the induction of nitric oxide production by murine L929 cells. // J. Interferon Res. 1993. Vol.13. P. 271−278.
  56. Ferencik M. Handbook of Immunochemistry. // Alfa-Verlag. 1993. 519 p.
  57. Fingar V.H., Wieman T.J., Doak K.W. Role of thromboxane and prostacicline release on photodynamic theraphy induced tumor destruction. // Cancer Research. 1990. Vol. 50. № 9. P. 2599−2603.
  58. Fink A.L. Chaperone-mediated protein folding. // Physiol. Rev. 1999. V. 79. P. 425−449.
  59. Fisher A.M., Murphree A.L., Gomer C.J. Clinical and preclinical photodynamyc therapy. // Lasers Surg. Med. 1995. Vol. 17. № 1. P. 2−31.
  60. Fong Y., Tracey K.J., Moldawer L.L. et al. Antibodies to cachectin/tumor necrosis factor reduce interleukin 1 beta and interleukin 6 appearance during lethal bacteremia. //J. Exp. Med. 1989. Vol. 170. P. 1627−1633.
  61. R.M. // Bact. Rev. 1977. V. 41. P. 543.
  62. R.F., Zavadzki J.V. // Nature. 1980. V. 288. P. 373.
  63. Furlong В., Henderson A.H., Lewis M.J., Smith J.A. Endothelium-derived relaxing factor inhibits in vitro platelet aggregation. // Brit. J. Pharmacol. 1987. Vol. 90. P. 687−692.
  64. J., Hovanessian A.G. // Bull. Inst. Pasteur. 1984. V. 82. P. 283.
  65. Galeazzi M., Gasbarrini G., Ghirardello A., Grandemange S., Hoffman H.M., Manna R., Podswiadek M., Punzi L., Sebastiani G.D., Touitou I., Doria A. Autoinflammatory syndromes. // Clin. Exp. Rheumatol. 2006. V. 24. P. 79−85.
  66. Genot M.T., Klastersky J. Low-level laser for prevention and therapy of oral mucositis induced by chemotherapy or radiotherapy. // Curr. Opin. Oncol. 2005. V. 17(3). P. 236−240.
  67. Giese A.C. Photosensitization of organisms with special reference to natural photosensitizers // F. Hillenkampf, R. Pratesi, С Sacchi (Eds.), Lasers in Biology and Medicine. New York. Plenum Press, 1980. P. 299−314.
  68. Girotti A. Lipid hydroperoxide generation, turnover and effector action in biologycal systems.//J. Lipid Res. 1998. Vol. 39. № 8. P. 1529−1542.
  69. Gollnick S.O., Liu X., Owczarczak В., Musser D.A. Henderson B.W. Altered expression of interleukin 6 and interleukin 10 as a result of photodynamic theraphy in vivo. И Cancer Res. 1997. Vol. 57. № 18. P. 3904−3909.
  70. Gollnick S.O., Vaughan L., Henderson B.W. Generation of effective antitumor vaccines using photodynamic theraphy.// Cancer Res. 2002. Vol. 62. № 6. P. 1604−1608.
  71. Gomer C.J., Luna M., Ferrario A., Wong S., Fisher A.M., Rucker N. Cellular targets and molecular responses associated with photodynamic therapy. // J. Clin, laser Med. Surg. 1996. Vol. 14. № 5. P. 315−321.
  72. Gorelik E., Heberman R. Role of natural killer (NK) cells in control of tumor growth and metastatic spread. // Cancer Immunology. 1986. P. 151.
  73. Graier W.F., Sturek M" Kukovetz W.R. // Endothelium. 1994. Vol. 1. P. 126−132.
  74. Gulsoy M., Ozer G.H., Bozkulak 0., Tabakoglu H.O., Aktas E., Deniz G., Ertan C. //J Photochem Photobiol B. 2005. Dec 30- Epub ahead of print.
  75. Habtemariam S. Natural inhibitors of tumour necrosis factor-alpha production, secretion and function // Planta Med. 2000. V. 66. 4. P. 303−313.
  76. Hamblin M.R., Newman E.L. On the mechanism of the tumor-localising effect in photodynamic theraphy. // J. Photochem. Photobil. B. 1994. Vol. 23. № 1. P.3−8.
  77. Hartl F.U., Hayer-Hartl M. Molecular chaperones in the cytosol: from nascet chain to folded protein. // Science. 2002. V. 295. P. 1852−1858.
  78. Hartmann P., Franzen C., Rubbert A., Rogowski J., Kailus M., Salzberger B. Blockade of TNF does not alter oxygen burst and phagocytosis of human neutrophils in patients with rheumatoid arthritis. // Immunobiology. 2005. V. 209(9). P. 669−679.
  79. Hawkins D.H., Abrahamse H. The role of laser fluence in cell viability, proliferation, and membrane integrity of wounded human skin fibroblasts following helium-neon laser irradiation. // Lasers Surg Med. 2006. V. 38(1) P. 74−83.
  80. Heberman R.B. et al. Natural cytotoxic reactivity of mouse lymphoid cells against syngenic and allogenic tumours, I: distribution of reactivity and specificity. // Int. J. Cancer. 1976. V. 16. P. 216−229.
  81. Hemvani N., Chitnis D.S., Bhagwanani N.S. Helium-neon and nitrogen laser irradiation accelerates the phagocytic activity of human monocytes. // Photomed. Laser Surg. 2005. V. 23(6) P. 571−574.
  82. Henderson B.W., Dougherty T.J. How does photodynamic theraphy work? // Photochem. Photobiol. 1992. Vol. 55. № 1. P. 145−147.
  83. Henderson B.W., Sitnik-Busch T.M., Vaughan L.A. Potentiation of photodynamic theraphy antitumor activity in mice by nitric oxide syntase inhibition is fluence rate dependent. // Photochem. Photobiol. 1999. Vol. 70. № 1. P. 64−71.
  84. Herbert K.E., Bhusate L.L., Scott D.L. et al. Effect of laser light at 820 nm on adenosine nucleotide levels in human lymphocytes // Laser Life Sci. 1989. Vol. 46. P. 37−46.
  85. Herman S., Kalechman Y., Gafter U., Sredni В., Malik Z. Photofrin 2 induces cytokine secretion by mouse spleen sells and human peripheryal mononuclear cells. // Immunopharmacology. 1996. Vol. 31. № 2−3. P. 195−204.
  86. Hesla J.S., Preutthipan S., Muguire M.P., Chang T.S.K., Wallach E.E., Dharmarajan A.M. // Fertil. Steril. 1997. V. 67. P. 548.
  87. Hussain N., Das Т., Ram L.S., Sumasri K. Persistent choroidal thickening despite photodynamic therapy for circumscribed choroidal hemangioma. // Ophthalmic Surg Lasers Imaging. 2006. V. 37(1). P. 76−78.
  88. L.J. // FASEB Journal. 1989. Vol. 3. P. 31−36.
  89. L.J., Wood K.S., Byrns R.E. // Circulation. 1986. V. 74. P. 287.
  90. Ihle J.N., Keller J., Henderson L. et al. Procedures for the purification of interleukin-3 to homogenity. // J. Immunol. 1982. Vol. 129 (6). P. 2431−2436.
  91. Jaattela M. Heat shock proteins as sellular lifeguards. // Ann. Med. 1999. V. 31. P. 261−271.
  92. Jaworowski A., Maslin C.L., Wesselingh S.L. The use of growth factors and cytokines to treat opportunistic infections in HIV-1 disease. // Sex Health. 2004. V. 1(3): P. 161−74.
  93. Jordan M.L., Rominski В., Jaquinsgersti A., et al. // Surgery. 1995. Vol. 118. P. 138−146.
  94. Jori G. Photosentizied prosesses in vivo: proposed phototerapeutic applications. // Photochem. Photobiol. 1990/ Vol. 52. № 2. P. 49−43.
  95. Kalra J., Kumar P., Mantha S.V., Prasad K. An increased chemiluminescence by activated polymorphonuclear (PMN) leukocytes in prevented by oxygen free radical scavengers // Clin. Chem. 1994. V. 40. № 6. P. 1125−1129.
  96. Kandolf-Sekulovic L., Kataranovski M., Pavlovic M.D. Immunomodulatory effects of low-intensity near-infrared laser irradiation on contact hypersensitivity reaction. // Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2003. V. 19(4). P. 203−212.
  97. K., Hanson M., Kiessling R. // Immunol. Today. 1991. Vol. 12. № 10. P. 343−345.
  98. Karu T.I. Effect of Visible Radiation on Cultured Cells. // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1990. Vol. 52. P. 1089 1098.
  99. Karu T.I. Primary and secondary mechanisms of action of visible-to-near IR radiation on cells. // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1999. Vol. 49. P. 1−17.
  100. Karu T.I. The Science of low Power Laser Theraphy. / Gordon and Breach. London. 1998.
  101. Karu T.I., Kalendo G.S., Letorhov V.S. Control of RNA synthesis rate in tumor cells HeLa by action of low-intensity visible light of cooper laser. // Lett. II Nuovo Cimento. 1981. Vol. 32. P. 55−59.
  102. Karu T.I., L. Pyatibrat, G. Kalendo. Irradiation with He-Ne-laser increases ATP level in cells cultivated in vitro. //J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1995. Vol. 27. P. 219−223.
  103. Karu T.I., Photobiology of low-power laser theraphy. Harwood Acad. Publ. Chur. London, 1989.
  104. Karu T.I., Pyatibrat L.V., AfanasyevaN.I. Cellular effects of low power laser therapy can be mediated by nitric oxide. // Lasers Surg. Med. 2005 V. 36(4). P. 307 314.
  105. Kassak P., Sikurova L., Kvasnicka P., Bryszewska M. The response of Na (+)/K (+)-ATPase of human erythrocytes to green laser light treatment. // Physiol Res. 2005. May 24- Epub ahead of print.
  106. Katschinski D.M. et al. Role of tumor necrosis factor a in hyperthermia-induced apoptosis of human leukemia cells // Robins H.I., Schad M., Frede S., Fandrey J.- Cancer Res. 1999. V. 59. P. 3404−3410.
  107. Kawase I., Urdal D.L., Brooks C.G., Henney C.S. Selective depletion of NK cell activity in vitro and its effect on the growth of NK sensitive and NK resistant tumor cell variants. // Int. J. Can. 1982. V. 29. P. 567.
  108. Kemmotsu O., Saito Y., Enya T. et al., He-Ne-laser irradiation accelerates healing and reduces pain in the acute phase of Herpes Zoster. // Laser Theraphy. 1994. Vol. 6. № l.P. 44.
  109. Kimber I, Cumberbatch M. Stimulation of Langerhans cell migration by tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha). // J Invest Dermatol. 1992. V. 99. 5. P. 48−50.
  110. P.E. & Calis K.A. Recombinant interleukin-2: a biological response modifier. // Clin. Pharm. 1991. Vol. 10 (2). P. l 10−128.
  111. Kirichuk V.F., Mareev O.V., Diudina OIu. Changes in platelet function in children with acute or chronic tonsillitis. // Vestn. Otorinolaringol. 2004. V. (5). P. 13−16.
  112. Kishimoto T. The biology of IL-6 // Blood. 1989. V. 74. № 1. P. 1−10.
  113. Kisich K.O. et al. Specific inhibition of macrophage TNF-alpha expression by in vivo ribozyme treatment // Malone R.W., Feldstein P.A., Erickson K.L.- J Immun. -1999. V.163.P. 2008−2016.
  114. Klebanoff S.I. in: Peroxidases in Chemistry and Biology / Evers J., Evers K.E., Grisham M.B. (Eds.) CRC Press Boca Raton, Ann Arbor, Boston. 1991.
  115. Klebanoff S.J., Vadas M.A., Harlan J.M. et al. Stimulation of neutrophils by tumor necrosis factor. // J. Immunol. 1986. Vol. 136. P. 4220−4225.
  116. R.G. Moncada S. // Nat. Med. 1994. Vol. 298. Pt. 2. P. 249−258.
  117. Kobayashi D., Watanabe N., Yamauchi N. et al. Protein kinase С inhibitors augment tumor-necrosis-factor-induced apoptosis in normal human diploid cells. // Chemotherapy. 1997. Vol. 43 (6). P. 415−423.
  118. H. & Kolb-Bachofen V. Nitric oxide: a pathogenetic factor in autoimmunity. // Immunol. Today. 1992. Vol. 13. P. 157−160.
  119. Koller MD., Targeted therapy in rheumatoid arthritis. // Wien. Med. Wochenschr. 2006. V. (1−2). P. 53−60.
  120. Korbelik M., Cecic I. Contribution of mieloid and lymphoid host cells curative outcome of mouse sarcoma tratement by photodynamic therapy. // Cancer Lett. 1999. Vol. 137. № 1. P. 91−98.
  121. Korbelik M., Krosl G. Enhanced macrophage cytotoxicity against tumor cells treated with phptodynamic therapy. // Photochem. Photobiol. 1994. Vol. 60. P. 497−502.
  122. Korbelik M., Parkins C., Shilbuya H., Cecic I., Strafford M.R.L., Chaplin D.J. Nitryc oxide production by tumor tissue: impact on the response to photodynamic theraphy. // Br.J. Cancer. 2000. Vol. 82. № 11. P. 1835−1843.
  123. S., Ribarov S.R. // Lung. 1995. Vol. 173. P. 255−263.
  124. Kroncke K. D., Fehsel K., Kolb-Bachofen V. // Biol. Chem. Hoppe-Seyler.1995. Vol. 376. P. 327−343.
  125. Krosl G., Korbelik M., Dougherty G.J. Induction of immune cell infiltration into murine SCCV1I tumor photoforin-based photodynamyc theraphy. // Br. J.Cancer. 1995 Vol. 71. № 3. P. 549−555.
  126. Kumaraguru U., Gierynska M, Norman S., Bruce B.D., and Rouse B.T. // J. Virol. 2002 V. 76.136−141.
  127. Lam M., Oleinick N., Nieminen A. Photodynamic theraphy induced apoptosis in epidermoid carcinoma cells. Reactive oxigen spcies and mitochondrial inner membrane permeabilization. // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. № 50. P. 47 379−47 386.
  128. Lanier L.L. The relationship of CD16 (Leu-11) and Leu-19 (NKH-1) antigen expression on human peripheral blood NK cells and cytotoxic T lymphocytes. // J. Immunol. 1986. V. 136. P. 4480−4486.
  129. Lazutka J.R. Genetic toxicity of cytokines. // Mutat. Res. 1996. Vol. 361 (2−3). P. 95−105.
  130. Lee J.Y., Sullivan K.E. Gamma interferon and lipopolysaccharide interact at the level of transcription to induce tumor necrosis factor alpha expression // Infection and Immunity. 2001. V. 69.5. P. 2847−2852.
  131. A.M. & Lefer D.J. Endothelial dysfunction in myocardial ischemia and reperfusion: role of oxygen-derived free radicals. // Basic Res. Cardiol. 1991. Vol. 86. Suppl.2. P. 109−116.
  132. Leibson P.J. Signal transduction during natural-killer-cell activation: inside the mind of a killer. // Immunity. V. 1997. P. 655−661.
  133. Leskovar P., Zanon R., Nachabor F. et al. // Dtsch. Z. Onkol. 1993. Bd 25. № 1. S. 12−18.
  134. Li C.-B. et al. Cloning and expression of murine lymphotoxin cDNA // Gray P.W., Lin P.-F., McGrath K.M., Ruddle F.H. and Ruddle N.H.- J.Immunol. 1987. V.138. P. 4496−4501.
  135. Li C.-B. et al. Cloning and expression of murine lymphotoxin cDNA // Gray P.W., Lin P.-F., McGrath K.M., Ruddle F.H. and Ruddle N.H.- J.Immunol. 1987. V.138. P. 4496−4501.
  136. A. & Mertelsmann R. Interleukin-3: structure and function. // Cancer Invest. 1993. Vol. 11(5). P. 609−623.
  137. Lindquist S. Craig E.A. The heat shock proteins. Annu. Rev. Genet. 1988. V. 22. P. 631−677.
  138. Liu J., Marino M.W., Wong G. et al. TNF is a potent anti-inflammatory cytokine in autoimmune-mediated demyelination. //Nat. Med. 1998. Vol. 4. P.78−83.
  139. Lloyds D., Brindle N.P.J., Hallett M.B. Priming of human neutrophils by tumour necrosis factor-a and substance P is associated with tyrosine phosphorylation // Immunology. 1995. V. 84. № 2. P. 220−226.
  140. Lubart R., Friedmann H., Levinshal Т., Lavie R., Breitbart H. Effect of light on calcium transport in bull sperm cells. J Photochem Photobiol B. 1992 Sep 15- 15(4), P. 337−41.
  141. Luksiene Z. Photodynamic therapy: mechanism of action and ways to improve the efficiency of treatment. // Medicina (Kaunas). 2003. V. 39(12). P. 1137−50.
  142. Lynch D.H., Haddad S., King V.G., Ott M.J., Straight R.C., Jolles C.J. Systemic immunosupression indused by photodynamic therapy (PDT) is adoptively transferred by macrophages // Photochem. Photobiol. 1989. V. 49. P. 453−458.
  143. Lysov N.A. Intravascular laser theraphy of acute thrombophlebitis of lover extremities // The first world congress for electricity and magnetism in biology and medicine. Florida. 1992. P. 89.
  144. C., Handwerker H.O., Neundorfer В., Birklein F. // Mechanical hyperalgesia in complex regional pain syndrome: a role for TNF-alpha? // Neurology. 2005. V. 65(2). P. 311−313.
  145. Mann-Chandler M.N., Kashyap M., Wright H.V., Norozian F., Barnstein B.O., Gingras S., Parganas E., Ryan J.J. IFN-gamma induces apoptosis in developing mast cells. // J. Immunol. 2005. V. 175(5). P. 3000−3005.
  146. Maranda E, Robak T. Biology and clinical pharmacology of tumor necrosis factor alpha // Merkuriusz Lek. 1997. V. 2.12. P. 355−358.
  147. Marietta M.A.//J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 12 231−12 234.
  148. Marietta M.A., Yoon P. S., Iyengar R. et al. Macrophage oxidation of L-arginine to nitrite and nitrate: nitric oxide is an intermediate. // Biochemistry. 1988. Vol. 27 (24). P. 8706−8711.
  149. Mauel J., Corradin S.B., Buchmuller-Rouiller Y. Nitrogen and oxygen metabolites and the killing of Leishmania by activated murine macrophages. // Res, Immunol, 1991, Vol. 142 (7). P. 577−580.
  150. McCann S., Kimura M., Karanth S. et al. Role of nitric oxide in the neuroendocrine responses to cytokines. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1998. Vol. 840. P. 174−184.
  151. McKelvey T.G., Hollwarth M.E., Granger D.N. et al. Mechanisms of conversion of xanthine dehydrogenase to xanthine oxidase in ischemic rat liver and kidney. // Am. J. Physiol. 1988. Vol. 254. 5 Pt .1. P. G753-G760.
  152. Mills C.D. Molecular basis of «suppressor» macrophages. Arginine metabolism via the nitric oxide synthetase pathway. // J. Immunol. 1991. Vol. 146 (8). P. 27 192 723.
  153. Mills C.D. Molecular basis of «suppressor» macrophages. Arginine metabolism via the nitric oxide synthetase pathway. // J. Immunol. 1991. Vol. 146 (8). P. 27 192 723.
  154. Milojevic M., Kuruc V. Low power laser biostimulation in the treatment of bronchial asthma. // Med Pregl. 2003. V. 56(9−10) P. 413−418.
  155. Minamikawa Т., Sriratana A. Chloromethyl-X-rosamine (Mito Tracker Red) photosensitises mitochondria and induses apoptosis in intact human cells. // J. Cell. Sci. 1999. Vol. 112. Pt 4. P. 2419−2430.
  156. C.K. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1993. V. 193. P. 126−132.
  157. Moore J.V., West C.M., Whitehurst C. the biology of photodynamic theraphy. // Phys. Med. Biol. 1997. Vol. 42. № 5. P. 913−935.
  158. Moore К. C. Laser theraphy in post herpetic neuralgia. // Laser Theraphy. 1996. Vol. 8. № l.P. 48.
  159. Moore K.C. Post herpetic neuralgia as a complication of malignant disease and its treatement using a GaAlAs diode laser. // Laser Theraphy. 1996. Vol. 8. № 1. P. 49
  160. Morreta A., Bottino C., Vitale M., Pende D., Cantoni C., Mingari MC., Biassoni R., Morreta L. Activating receptors and coreceptors involved in human natural-killer-cell-mediated cytolysis. //Annu. Rev. Immunol. 2001. V. 19. P. 197−223.
  161. Morris C.F., Young I.G., Hapel A.J. Molecular and cellular biology of interleukin-3. // Immunol. Ser. 1990. Vol. 49. P. 177−214.
  162. Mui A.L., Kay R.J., Humphries R.K., Krystal G. Ligand-induced phosphorylation of the murine interleukin 3 receptor signals its cleavage. // Proc. Natl. Acad.Sci. USA. 1992. Vol. 89. P. 10 812−10 816.
  163. Murell A.C., Francis M.J.O., Bromely L. Modulation of fibroblast proliferation by oxygen free radicals. // Biochem. J. 1990. Vol. 265. P. 659−665.
  164. Murray J., Barbara J.A.J., Dunkley S.A. et al. Regulation of neutrophil apoptosis by tumor necrosis factor-alpha: requirement for TNFR55 and TNFR75 for induction of apoptosis in vitro. // Blood. 1997. Vol. 90. P. 2772−2783.
  165. Myint Y.Y., Miyakawa K., Naito M. et al. Granulocyte/macrophage colony-stimulating factor and interleukin-3 correct osteopetrosis in mice with osteopetrosis mutation. // Amer. J. Pathol. 1999. V.154 (2). P. 553−566.
  166. R. & Oppengeim J. Radioprotection with cytokine-learning from nature to cope with radiation damage. // Cancer Cells. 1991. Vol. 3. P. 391−396.
  167. Niemeyer C.M., Sieff C.A., Smith B.R., Ault K.A., and Nathan D.G. Hematopoesis in vitro coexists with natural killer lymphocytes. // Blood. 1989. V. 74. № 7. P. 2376−2382.
  168. Okabe S. et al. New TNF-alpha releasing inhibitors, geraniin and corilagin, in leaves of Acer nikoense, Megusurino-ki // Suganuma M, Imayoshi Y, Taniguchi S, Yoshida T, Fujiki H.- Biol Pharm Bull. 2001. V.24. P. l 145−1148.
  169. Ottawa Panel. Ottawa Panel Evidence-Based Clinical Practice Guidelines for Electrotherapy and Thermotherapy Interventions in the Management of Rheumatoid Arthritis in Adults. // Phys. Ther. 2004. V. 84(11). P. 1016−1043.
  170. Palacios M., Knowles R.G., Moncada S. Enhancers of nonspecific immunity induce nitric oxide synthase: induction does not correlate with toxicity or adjuvancy. // Eur. J. Immunol. 1992. Vol. 22 (9). P. 2303−2307.
  171. Palmer R.M., Ferrige A.G., Moncada S. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor. // Nature. 1987. Vol. 327 (6122). P. 524−526.
  172. Pass H.I. Photodynamic theraphy in oncology: mecanisms and clinical use. // J. Natl. Cancer Inst. 1993. Vol. 85. № 6. P. 443−456
  173. Petrek M., Hubacek J., Ordeltova M. Immunomodulatory effects of laser therapy in the treatment of chronic tonsillitis. // Acta. Univ. Palacki. Olomuc. Fac. Med. 1991. V. 129 P. 119−126.
  174. Petrov A.V. Effect of low intensity helium-neon laser and decimeter electromagnetic irradiation on functional indices of immune cells in patients with rheumatoid arthritis. // Lik Sprava. 2004 V.(2) P. 30−35.
  175. Pfister H. et al. Lipopolysaccharide synergizes with tumour necrosis factor-alpha in cytotoxicity assays // Hennet T, Jungi TW.- Immunology. 1992. V. 77.3. P. 473−476.
  176. Pirozhkov A., Dozmorov I., Petrov R. The growth of hemopoietic stem cells is inhibited by natural killers only in the nonsyngeneic microenvironment. // Transplantation. 1995. V. 58. № 3. P. 345−349.
  177. Ponomarenko G.N., Obrezan A.G., Stupnitskii A.A., Tishakov A.Y., Kostin N.A. Genetic determinants of efficiency of magnetic laser therapy of essential hypertension. // Bull. Exp. Biol. Med. 2005. V. 139(3):300−304.
  178. Porter AG. Human tumour necrosis factors-alpha and -beta: differences in their structure, expression and biological properties // Microbiol Immunol. 1990. V. 2. 4. P. 193−199.
  179. Przepiorka D., Srivastava P.K. Heat shock protein-peptide complexes as immunotherapy for human cancer // Mol. Med. Today. 1998. V. 11. P. 478−484.
  180. Puggioni A., Kalra M., Carmo M., Mozes G., Gloviczki P, Endovenous laser therapy and radiofrequency ablation of the great saphenous vein: analysis of early efficacy and complications. // J. Vase. Surg. 2005. V. 42(3). P. 488−493.
  181. Puzanov I.J., Williams N.S., Schatzle J., SivakumarP.V., Bennett M., Kumar V. Ontogeny of NK cells and the bone marrow microenvironment: where does IL15 fit in? //Res.Immunol. 1997. V. 148. № 3.P. 195−201.
  182. Quin В., Selman S.H., Payene K.M., Keck R.W., Metzger D.W. Enhanced skin allograft survival after photodynamyc therapy. Association with limphocyte inactivation and macrophage stimulation. // Transplantation. 1993. Vol. 56. № 6 P. 1481−1486.
  183. Rajaram N., Tatake R.J., Advani S.H., Gandal S.G. Natural killer and lymphokine activated killer cell functions in Hodgkin’s disease. // Cancer Immunol. Immunother. 1990. V. 31. P. 44−48.
  184. Raulet D.H. Development and tolerance of natural killer cells. // Current Opinion in Immunology. 1999. V. 11. P. 129−134.
  185. Redlich C.A. et al. IL-11 enhances survival and decreases TNF production after radiation-induced thoracic injury // Gao X., Rockwell S., Kelley M., Elias J.A.- J Immunol. 1996. V.157.4. P. 1705−1710.
  186. M.C. & Stewart C.C. Inhibitory role of interleukin-6 in macrophage proliferation. // J. Leukoc. Biol. 1992. Vol.52. P.125−127.
  187. Rier S.E. et al. Increased tumor necrosis factor -production by peripheral blood leukocytes from TCDD-exposed rhesus monkeys // Сое C.L., Lemieux A.M., Martin D.C., Morris R., Lucier G. W, Clark G.C.- Toxicol. Sci. 2001. V.60. P. 327−337.
  188. Ritossa F. A new puffing pattern induced by temperature shock and DNP in Drosophila// Experientia. 1962. V. 18. P. 571−573.
  189. Robb R.J. Interleukin-2: the molecule and its function. // Immunol. Today. 1984. Vol. 5. P. 203−209.
  190. Sanchez-Garcia J., Torres A., Herrera C., Alvarez M.A. Cell cycle kinetic changes induced by interleukin-3 and interleukin-6 during ex vivo expansion of mobilized peripheral blood CD34 cells. // Haematologica. 2006. V. 91(1). V. 121 124.
  191. Schwartz J.L. et al. Molecular and biochemical reprogramming of oncogenesis trough the activity of prooxidants and antioxidants // Antoniades D.Z., Zhao S.- Ann. NY. Acad. Sci. 1993. V. 278. P. 262−278.
  192. Shacter E, Weitzman SA. Chronic inflammation and cancer // Oncology. 2002. V. 16. P. 217−226.
  193. Sharp F.R., Massa S.M., Swasnson R.A. Heat-shock protein protection. // Trends Neurosci. 1999. V. 22. P. 97−99.
  194. W.Q., Zhang X.P., Zhao G. Wolin M.S., Sessa W., Hintze Т.Н. // Med. Sci. Sports Exer. 1995. V. 27. P. 1125−1134.
  195. Shibata M., Takekawa M. Increased Serum concentration of circulating soluble receptor for IL-2 // Oncology. 1999. Vol. 56. P. 54−58.
  196. Shresta S., Pham C. T.N., Thomas D.A., Graubert T.A., Ley T.J. How do cytotoxic lymphocytes kill their targets? // Current Opinion in Immunology. 1998. V. 10. P. 581−587.
  197. Siegal F.P., Kadowaki N., Shodel M. et al. The nature of the pricipal type I interferon-producing cells in human blood. // Science. 1999. V. 284. P. 1846.
  198. Simkin G.O. Tao J.S., Levy J.G. Hunt D.W. IL-10 contributes to inhibition of contact hypersensitivity in mice treated with photodynamic theraphy. // J. Immunol. 2000. Vol. 164. № 5. P. 2457−2462.
  199. Simmer S., Braksma Y., Kleinman Y. Low power laser theraphy in cutaneous immunological disorders. // Laser Theraphy. 1994. Vol. 8. № 1. P. 69−70.
  200. J.M. & Vane J.R. Endothelium-derived relaxing factor reduces platelet adhesion to bovine endothelial cells. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. Vol. 85 (8). P. 2800−2804.
  201. Snyder S.H. Nitric oxide: first in a new class of neurotransmitters. // Science. 1992. Vol. 257 (5069). P. 494−496.
  202. Spikes J.D. Photosensitization // Smith K.S. (Ed.). The science of photobiology, 2nd edn. New York. Plenum Press, 1989. P. 79−111.
  203. P.K. // Nat. Rev. Immunol. 2002. V. 2. 185−194.
  204. C.A., Chrousos G.P. // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1996. Vol. 771. P. 1−18.
  205. Tadmori W., Lee H.-K., Clark S.C., Choi Y.S. Human В cell proliferation in response to IL-4 is associated with enhanced production of В cell-derived growth factors. // J. Immunol. 1989. Vol. 112(3). P. 826−832.
  206. G.W., Andrews D.F. 3rd, Lilly M.B. et al. Effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor and interleukin-3 on interleukin-8 production by human neutrophils and monocytes. // Blood. 1993. Vol. 81 (2). P. 357−364.
  207. Titheradge A.M. Nitric oxide in septic shock. // Biochem. Biophys. Acta. 1999. Vol. 1411. P. 437−455.
  208. Togashi H., Uehara M., Ikeda H., Inokuchi T. Fractionated photodynamic therapy for a human oral squamous cell carcinoma xenograft. // Oral Oncol. 2006. Feb 6- Epub ahead of print. PMID: 16 466 960 [PubMed as supplied by publisher].
  209. Trinchieri G. Natural killer cells wear different hats: effector cells of innate resistance and regulatory cells adaptive immunity and of hematopoiesis. // Semin. Immunol. 1995. V. 7. № 2. P. 83−88.
  210. Trinchieri G., Natsumoto-Kobayashi M., Clark S.C., Seehra J., London L., and Perussia B. Response of resting human peripheral blood natural killer cells to interleukin 2. // J. Exp. Med. 1984. V. 160. № 4. P. 1147−1169.
  211. Ueda H., Yamazaki M. Induction of tumor necrosis factor-alpha in solid tumor region by the orally administered synthetic muramyl dipeptide analogue, romurtide // Int Immunopharmacol. 2001. V.l. 1. P. 97−104.
  212. Ueda H., Yamazaki M. Induction of tumor necrosis factor-alpha in solid tumor region by the orally administered synthetic muramyl dipeptide analogue, romurtide // Int Immunopharmacol. 2001. V.l. 1. P. 97−104.
  213. Utsumi Т., Klostergaard J., Akimaru K. et al. Modulation of TNF-alpha-priming and stimulation-dependent superoxide generation in human neutrophils by protein kinase inhibitors. // Arch. Biochem. Biophys. 1992. P. 271−278Л
  214. Vacca R.A., Marra E., Quagliariello E., Greco M. Increase of both transcription and translation activities following separate irradiation of the in vitro system components with He-Ne laser. // Biochem Biophys Res Commun. 1994. V. 203(2). P. 991−997.
  215. Vanhatalo S., Soinila S. U J. Chem. Neuroanat. 1995. V. 8. P. 165−173.
  216. Vassali P. The pathophysiology of tumor necrosis factor // Annu. Rev. Immunol.1991. V. 10. P. 411−452.
  217. Vassalli P. The pathophysiology of tumor necrosis factors. // Annu. Rev. Immunol.1992. Vol. 10. P. 411−452.
  218. Vitreshchak T.V., Poleshchuk V.V., Piradov M.A. Plasma levels of mediator amino acids in patients with Parkinson disease. // Biomed. Khim. 2004. V. 50(1). P. 9299.
  219. G. & Strober W. Predominant role of tumor necrosis factor-alpha in human monocyte IL-10 synthesis. // J. Immunol. 1993. Vol. 151 (12). P. 6853−6861.
  220. Ward C., Chilvers E.R., Lawson M.F. et al. NF-kappaB activation is a critical regulator of human granulocyte apoptosis in vitro. // J. Biol. Chem. 1999. Vol. 274. P. 4309−4318.
  221. Welner R., Hastings W., Hill B.L., Pelsue S.C. Hyperactivation and proliferation of lymphocytes from the spleens of flaky skin (fsn) mutant mice. // Autoimmunity. 2004. V. 37(3). P. 227−235.
  222. Whiteside T.L., Herberman R.B. Characteristics of natural killer cells and lymphokine-activated killer cells. Their role the biology and treatment of human cancer. // Human Cancer Immunol. 1990. V. 10. P. 663−704.
  223. Whiteside T.L., Herberman R.B. Role of human natural killer cells in health and desease. // Clin Diag Lab Immunol. 1994. V. 1. P. 125−133
  224. Wilder L.S. Neuroendocrine-immune system interaction and autoimmunity. // Annu. Rev. Immunol.1995. Vol. 13. P. 307−338.
  225. Wilson M.T., Torres J., Cooper C.E., Sharpe M.A. Interactions of cytochrome-o oxidase with nitric oxide: reactions of the 'turnover' intermediates // Biochem. Soc. transaction. 1997. Vol. 25. P. 905−909.
  226. Yamamoto M., Nagano Т., Okura I., Arakane K., Urano Y., Matsumoto K. Production of singlet oxygen on irradiation of a photodynamic therapy agent, zinc-coproporphyrin III, with low host toxicity. // Biometals. 2003. V. 16(4) P. 591−597.
  227. Yamashita K., Takahashi A., Kobayashi S. et al. Caspases mediate tumor necrosis factor-alpha-induced neutrophil apoptosis and downregulation of reactive oxygen production. // Blood. 1999. Vol. 93. P. 674−685.
  228. Yamazaki M. TNF-alpha // To Kagaku Ryoho. 1994. V.21. P.2679−2687.
  229. Yamazaki M. TNF-alpha. // To Kagaku Ryoho. 1994. V.21. P. 2679−2687.
  230. Yarilin A.A., Belyakov I.M. Cytokines in the thymus: production and biological effects. // Curr Med Chem. 2004. V. 11(4). 447−464.
  231. Yenari M.A. et al. The neuroprotective potencial of heat shock protein 70 (HSP 70) // Giffard R.M., Sapolsky R.M., Steinberg G.K.- Mol. Med. Today. 1999. V.5. P. 525 531.
  232. Yu W.H. Retorri V. // Neuroimmunomodulation. 1997. V. 4. P. 98.
  233. Yu YYL., Kumar V., Bennett M. Murine natural killer cells and marrow graft rejection. //Annu. Rev. Immunol. 1993. V. 10. P. 189−213.
  234. Yuo A., Kitagawa S., Suzuki I. et al. Tumor necrosis factor as an activator of human granulocytes. Potentiation of the metabolisms triggered by the Ca2+mobilizing agonists. //J. Immunol. 1989. Vol. 142. P. 1678−1684.
  235. M. & Tracey K.J. Tumor necrosis factor. In: Thompson A.W., er. The cytokine handbook, 3rd ed. New York. Academic press, 1998. P.515−548.
  236. О.Ю., Михайлов B.A. Опыт использования иммуиомодулирующего воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения при лечении больных аутоиммунными заболеваниями. // Актуальные вопросы физиотерапии: Тез. докл. М. 1998. С. 28−30.
  237. А.В., Пальмииа Н. П. В кн.: Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. С. 84.
  238. Г. Я., Кочетков В. Д., Парфенова JI.A. Лазеропунктура в комплексном лечении постинсультных спастических гемипарезов. / Всесоюзн. конф. по применению лазеров в медицине. Красноярск. 1983. С.161−163.
  239. Н.И., Кару Т. Й., Тифлова О. А. Оксидазы bd bo в качестве первичных фотоакцепторов при воздействии низкоинтенсивного видимого (лазерного) излучения на клетку Escherichia coli II Докл. АН. 1995. № 345. С. 404 406.
  240. И.М., Касымов А. Х., Козлов В. И. и др. Морфологические основы низкоитенсивной лазеротерапии. Ташкент: Изд-во им. Ибн Сины, 1991.223 с.
  241. И.М., Мавлян-Ходжаев Р.Ш. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы фагоцитоза. // Новые достижения лазерной медицины: Тез. докл. СПб. 1993. С. 238 239.
  242. В.П., Яковенко И. В., Кокин Г. С. Применение пизкоиитенсивного лазерного излучения для лечения повреждённых нервов / Низкоинтенсивное лазерное излучение в медицинской практике: Тез. докл. Хабаровск. 1990. С. 31.
  243. Г. Г., Осипов А. Н. Фотохимические реакции нитрозилгемоглобина под действием низкоэнергетического лазерного излучения. // Биохимия. 1997. Т. 62. № 6. С. 774 780.
  244. Г. Е. Бриль А.Г. // Лазерная медицина. 1997. Т.1. № 1. С. 39−42.
  245. Г. Е., Панина Н. П. Итоги 10-тилетних исследований влияния излучения гелий-неонового лазера на геном клетки // Применение лазеров в медицине и биологии. Материалы конф. Харьков. 2000. С. 6.
  246. Г. Е., Петросян В. И., Синицын Н. И. Поддержание структуры водного матрикса один из ключевых механизмов действия низкоинтенсивного лазерного излучения. // Лазеры в медицине и экологии: Тез. докл. Москва — Самара, 1998. С. 13−14.
  247. В.А. Низкоинтенсивная лазеротерапия в оториноларингологии: Информационно-методический сборник. М. ТОО «Фирма «Техника», 1996.104 с.
  248. Е.Б., Конрадов А. А., Мальцева Е. Л. // Биофизика. 2004. Т. 49. С. 551−564.
  249. A.M., Захарова Л. А. Цитокины в сочетанной регуляции боли и иммунитета. // Успехи современной биологии. 2000. Т. 120. 2. С. 174−189.
  250. A.M., Захарова Л. А. Цитокины в сочетанной регуляции боли и иммунитета. //Успехи современной биологии. 2000 Т. 120. № 2. С. 174−189.
  251. Н.Е., Сысоева Г. М., Даниленко Е. Д. Иммунологические аспекты фотодинамической терапии. // Медицинская иммунология. 2003. Т. 5. № 5−6. С. 507−518.
  252. Т.В., Михайлова В, В., Пирадов М. А., Полещук В. В., Стволинский С. Л., Болдырев А. А. Лазерная модификация крови in vitro и in vivo у пациентов с болезнью Паркинсона. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 2003. Т. 3. № 5. С. 508−511.
  253. Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будущее. // Соросовский образовательный журнал. № 12.1999
  254. Ю.А., Клебанов Г. И., Борисенко Г. Г., Осипов А. Н. Молекулярно-клеточные механизмы действия низкоинтенсивного лазерного излучения. // Биофизика. 2004. Т 49. вып. 2. С. 339−350.
  255. Владимиров.Ю.А. // Эфферентная медицина. М.: ИБМХ РАН, 1994. С. 51−67.
  256. А.И., Клевцов В. А., Смирнов В. М. Эффект торможения химического канцерогенеза при использовании низкоэнергетического лазерного излучения в сочетании с интерфероном // Вопросы онкологии. 2001. Т. 47. № 1. С. 73−77.
  257. А.И., Клевцов В. А., Смирнов В. М. Эффект торможения химического канцерогенеза при использовании низкоэнергетического лазерного излучения в сочетании с интерфероном // Вопросы онкологии. 2001 Т. 47. № 1. С. 73−77.
  258. А.Н., Овчинников E.JI., Бакуцкий В. Н., Труфанов JI.A. Биологические аспекты взаимодействия магнитного поля и лазерного излучения с биологической тканью. // Лазеры в клинике и эксперименте. Самара. 1990. С. 1316.
  259. К.Ш., Арзуманян Г. М. Радиозащитное действие лазерного излучения с длиной волны 532 нм. // Радиобиология.1996. Т. 36. № 5. С. 39 43.
  260. Н.Ф., Шишко Е. Д., Янин Ю. В. Новые данные по фоточувствителыюсти живой клетки и механизму лазерной биостимуляции // Доклады академии наук СССР. 1983. Т.273. № 1. С.224 227.
  261. О.В. // Иммуномодулирующие эффекты низкоинтенсивных электромагнитных волн СВЧ-диапазона. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических паук. Пущино. 2002.22 с.
  262. Е.А., Азизова О. А., Владимиров Ю. А. Реактивация супероксиддисмутазы излучением He-Ne-лазсра // Биофизика. 1988. Т. 33. № 4. С. 717−719.
  263. В.П. Полупроводниковые лазеры: Минск: Университетское, 1988.-304 с.
  264. И.С., Мейлихов Е. З., ред. Физические величины (справочник). М.: Энергоатомиздат, 1991 С. 895
  265. Н.Д., Зубкова С. М., Лапрун И. Б., Макеева Н. С. Физико-химические механизмы биологического действия лазерного излучения // Успехи совр. биологии. 1987. Т. 103. № 1. С.31−43.
  266. А.В., Котов А. Ю., Симбирцев А. С. Диагностическая ценность исследования уровней цитокинов в клинической практике. // цитокины и воспаление. 2003. № 3. С. 20−35.
  267. В.Я. Использование гелий-неонового лазерного излучения в комплексном лечении больных острым средним отитом. Автореф. дисс. канд. мед. наук. Киев 1989.
  268. И.Ф., Ежов В. В. Дозозависимые эффекты лазеротерапии в практике курортного лечения рецидивирующего бронхита у детей. // Применение лазеров в медицине и биологии: Тез. докл. Харьков. 1998. С. 71.
  269. .В. О применении малой мощности гелий-неонового лазера при остром и хроническом тозиллите. // Журн. ушн., нос. и горл. бол. 1973. № 4. С. 2225.
  270. В.Д., Клячин В. М., Пьянков З. А. и др. Опыт применения низкоинтенсивного лазера для лечения опоясывающего лишая. // Деп. во ВНИИМИ МЗ СССР. Пермь. 1986 № 11. С. 184−186.
  271. .Н., Лысов Н. А., Лазерное излучение в экспериментальной и клинической ангиологии. Самара. 1996.168 с.
  272. З.Г. Цитокины. // Практическая онкология. 2003. Т. 4. № 3. С.131−139.
  273. К.В., Грунина Е. А., Отрицательные эффекты низкоинтенсивной лазерной терапии при ревматоидном артрите // Тер. арх. 1996. № 5 С.22−24.
  274. Н.К., Ланкин В. З., Меныцикова Е. Б. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты. // М.: МАИК «Наука / Интерпериодика». 2001. 343 с.
  275. С.Г., Окулов В. Б. Молекулярные механизмы действия фактора некроза опухолей, а и трансформирующего фактора роста Р в процессе ответа макрофага на активацию. // Иммунология. 2001. Т. 5. С. 18−22.
  276. О.Л., Антонюк В. А. Воронцова Г. М. Лазерное излучение малой мощности в терапии нейродерматозов // 4-й Всероссийский съезд дерматовенерологов: Тез. докл. Краснодар. 1976 С. 184−186.
  277. З.Г. Цитокины и их использование в онкологии. // Int. J. Reabilitation. 1997. № 6. С. 47−56.
  278. Х.Э., Насретдинов Т. Х., Купин В. И. и др., Применение гелий-неонового лазера при рецидивирующих гнойных средних отитах. / Межд. симп. по лазерной хирургии и медицине. Ч. 2. Самарканд, 1988 С. 231−233.
  279. М.А., Комисарова Н. Г., Климова Л. И. Дискретно-динамический анализ иммунного статуса больных нейродермитом, получавших лазеротерапию // Вестн. дерматол. 1988. № 3. С. 44−51.
  280. М.А., Комиссарова Н. Г. Нестерова И.В. Корригирующее влияние лазеротерапии на функциональные дефекты нейтрофильных лейкоцитов у больных нейродермитом. //Вестн. дерматол. 1986. № 1. С. 14−17.
  281. Т.Й., Афанасьева Н. И. Цитохром-с-оксидаза как первичный фотоакцептор при лазерном воздействии света видимого и ближнего ИК-диапазона на культуру клеток. // Докл. АН. 1995. Вып. 342. С. 693−695.
  282. Т.Й., Афанасьева Н. И., Кольяков С. Ф., Пятибрат JT.B. Изменения спектра поглощения монослоя живых клеток после низкоинтенсивного лазерного облучения. //Докл. АН. 1998. Вып. 360. С. 267−270.
  283. Кац В.А., Литвин Т. Д., Назаров Ш. Б., Ряжский Г. Г., Странадко Е. Ф., Ягубов А. С., Градюшко А. Т., Иванов А. В. Фотодинамическая терапия // Вопр. Онкол. 1992. Т. 38. № 12. С.1403−1412.
  284. Г. И., Максина А. Г., Крейнина М. В., Дайняк Б. А. и др. Изменение физического состояния мембран в процессе стимуляции полиморфноядерных лейкоцитов крови. //Биол. мембраны. 1990. Т. 7. № 3. С. 281−286.
  285. Г. И., Рогаткин Д. А., Терщенко С. Г. Измерение поверхностной флуоресценции эндогенных порфиринов в процессе лазеротерапии язв желудка и двенадцатиперстной кишки. // Биофизика 2004. Т. 49. Вып. 5. С. 941−947
  286. Г. И., Чичук Т. В., Владимиров Ю. А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на пероксидацию мембранных липидов и концентрацию ионов кальция в цитозоле фагоцитов //Биол. мембраны. 2001. Т. 18. № 1. С. 42−50.
  287. В.М., Кривенко З. Ф. Эффективность лазеротерапии и её влияние на динамику показателей микроциркуляции при ограниченной склеродермии. // Применение лазеров в хирургии и медицине. М: 1989 № 2. С. 199−200.
  288. А. И. Попов Г. К. Механизм действия лазерного облучения на тканевом и клеточном уровнях // Вестник РАН. 2000. № 2. С. 41 43.
  289. В. И., Буйлин В. А., Самойлов Н. Т., Марков И, И. Основы лазерной физио-рефлексотерапии. Самара Киев, 1993. 216 с.
  290. JT.A., Щепеткин И. А. Механизмы терапевтического действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Сибирский медицинский журнал. 1996. № 1. С. 49−51.
  291. Криваткин C. J1. Сравнительная характеристика результатов фотохимиотерапии с наружным применением псоберана у больных псориазом. // Вестн. дерматол.1988. № 3. С. 58−62.
  292. А.С., Мостовников В. А., Хохлов И. В., Сердеченко Н. С. Терапевтическая эффективность низкоинтенсивного лазерного излучеиия. Минск: Наука и техника, 1986. С. 231.
  293. В.П. Интерфероны как средство иммуномодуляции. // иммунология. 1987. №.4. С. 30−34.
  294. Н.А., Калия O.J1. Фотокаталитическая генерация активных форм кислорода в биологических средах в методе фотодинамической терапии. // Российский химический журнал. 1998. Т. 42. № 5. С. 36−49.
  295. В.И., Сорокин A.M. Влияние лазерного излучения неповреждающей интенсивности на систему иммунитета. // Советская медицина. 1985. № 7. С. 8 -12.
  296. А.А., Аникин В. В., Соболева Н. П. Эффективность низкоинтенсивного лазерного излучения в лечении ринокардиального синдрома у детей с хроническим аденоидитом. //Лазерная медицина 1997. Т. 1. Вып. 2. С. 1518.
  297. А.С., Пальчун В. Т. Наш опыт применения высоко- и низкоинтенсивных лазеров в оториноларингологии. / Новое в лазерной медицине и хирургии. Тез. докл. М. 1991. вып. 2. С. 176−179.
  298. В.М., Зайцева Д. Г., Щербин Д. Г. Внутримолекулярная динамика и функциональная активность белков // Биофизика. 2000. Т. 45. Вып. 6. С. 965 -989.
  299. Е.Б., Маати М., Розанов В. В. Иммунодефицит и лазеро-магнитная терапия. // Применение лазеров в медицине и биологии: Тез. докл. Харьков. 1998. С. 87.
  300. В.Д., Макаренко А. И. применение лазерной рефлексотерапии в лечении атопического дерматита у детей // Всесоюзн. конф по применению лазеров в медицине: Тез. докл. М. 1984. С. 153−154.
  301. И.Ю., Манухина Е. Б. Стресс, адаптация и оксид азота. // Биохимия. 1998. Т. 63. Вып. 7. С. 992−1006
  302. .А., Гужова И. В. Белки стресса в эукариотической клетке. // Цитология 2000. Т. 42. № 4. С. 323−339.
  303. Н.В. Цитокины и аллергия. // Иммунология. 1999. № 5. С. 5−9.
  304. В.И., Архипов Т. С., Ибрагимов Е. К. Лазерное облучение селезенки и тимуса у больных язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки // Новое в лазерной медицине и хирургии: Тез. докл. М.: 1990. Ч. 1.С. 214 -215.
  305. А.А., Кончугова Т. В., Кульчицакя Д. Б. Клииико-экспериментальные предпосылки физиотерапевтического использования лазерного излучения. // Вопросы курортологии 1992. № 2. С. 11 -14.
  306. Р.И., Скопинов С. А. Структурная альтерация биологических жидкостей и их моделей при информационных воздействиях // Действие электромагнитного излучения на биологические объекты и лазерная медицина: Тез. докл. Владивосток, 1989. С. 6 41.
  307. И.А., Быков В. Л. Применение лазерного излучения, фотосенсибилизаторов, гипертермии, криовоздействия и гипергликемии в комплексном лечении больных с опухолями глотки. // Журн, ушн., нос. и горл, бол. 1989. № 4. С. 61 66.
  308. Н.В., Кротов Ю. А. «Закрытая» санирующая хирургия с лазерной терапией в раннем послеоперационном периоде у больных хроническим гнойным эпимезотимпанитом. // Вестн. отринолар. 1991. № 5. С. 31−36.
  309. С.В., Буйлин В. А., ред. Низкоинтепсивная лазерная терапия. М.: ТОО «Фирма «Техника», 2000 724 с.
  310. А.Н. Экспериментально-клиническое обоснование применения различных видов лазерных излучений в оториноларингологии: Автореф. дисс. д-ра мед. наук. М. 2000.
  311. Насонов E. JL, Самсонов М. Ю., Беленков Ю. Н., Фукс Д. Иммунопатология застойной сердечной недостаточности: роль цитокинов. // Кардиология. 1999. № 3. С.66−73.
  312. В.Я., Котов С. В., Виноградов М. Ю. Интраспинальная лазеротерапия в лечении острого миелополирадикулоневрита. / Низкоинтенсивное лазерное излучение в медицинской практике: Тез. докл. Хабаровск. 1990. С. 117−118.
  313. Т.Д. Лазерная коррекция нарушений местной клеточной защиты при бронхиальной астме у детей. // Новые направления лазерной медицины: Тез. докл. М: 1996. С. 193.
  314. И.Р., Ильченко В. А. Карандашов В.Н. и др. Лечение гормонорезистенотной бронхиальной астмы экстракорпоральным облучением крови гелий-неоновым лазером. // Новые достижения лазерной медицины: Тез. докл., С-Петербург. 1993.
  315. С.Д. Лазеры в клинической медицине. / Ред. М.: Медицина, 1996. 432 с.
  316. М.С. Лазерная медицина и оториноларингология. //Актуальные проблемы современной ринологии. Тез. докл. М. 1997. С.25−28.
  317. М.С., Лопотко А.И, Низкоэнергетическое лазерное излучение в ринологии. // Российская ринология. 1995. № 3−4. С. 42−48.
  318. О.А., Фесенко Е. Е. Свойства жидкой воды в электрических и магнитных полях // Биофизика. 2000. Т. 45. Вып. 3. С. 389 398.
  319. Л.И. Иммунологическая оценка применения низкоэнергетического лазера «Узор» в противорецидивном лечении полипозного риносинусита // Российская ринология. 1994. Приложение 2. С. 46−47.
  320. Н.А., Климова Л. А., Безчинская М. Я. и др. Применение низкоиитенсивного лазерного излучения для лечения хронического тонзиллита, хронического фарингита и ринита: Методические рекомендации. М. 1988.24с.
  321. С.Я., Коноплянников А. Г., Иванников А. И., Скворцов В. Г. Биология окиси азота. // Усп. совр. биол. 1999. Т. 119. № 4. С. 380−395.
  322. А.А., Жижина Н. А. Лазеры в стоматологии // Лазеры в клинической медицине. Руководство для врачей. Ред. С. Д. Плетнев. М.: Медицина, 1996. С. 283−303.
  323. В.П. Цикл окиси азота в организме млекопитающих. // Усп. биол. химии. T.XXXV. 1995. С. 198−228.
  324. А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. // Москва: «Мир». 2000. 592 с.
  325. Е.Г. Оценка терапевтической эффективности превентивной лазеротерапии детей с поллинозами. // Актуальные вопросы лазерной медицины и операционной эндоскопии. Видное. 1994. С. 346−347.
  326. Е., Coshland R.E. // Science. 1992. V.258. P. 1862.
  327. Т.Б., Власова П. И. Лечение простого рецидивирующего герпеса кожи при помощи лучей гелий-неонового лазера. // Всесоюзн. конф. по применению лазеров в медицине. М., 1984. С. 148−149.
  328. А.С. Интерлейкин-2 и рецепторный комплекс интерлейкина-2 в регуляции иммунитета//Иммунология. 1998. № 6. С. 3−8.
  329. Л.Ф., Маркелова Е. В. Цитокинотерапия рекомбинантным интерлейкином 2 больных хроническим вирусным гепетитом С. // Цитокины и воспаление. 2002. Т.1. № 4. С. 38−41.
  330. O.K. Достижения лазерной хирургии и пробемы лазерной медицины. 4.1. // Применение лазеров в хирургии и медицине. М.: 1989. С 3−5.
  331. В.В. Фазотонный гомеостаз и врачевание. Самара. 1994. С. 256.
  332. А.А., Негода В. В., Островский О. В., Конан К. Мембранотропное действие низкоэнергетического лазерного облучения крови. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1998. Т. 126. № 10. С. 412 416.
  333. . Е.Ф., Скобелкин O.K., Ворожцов Г. Н., Миронов А. Ф., Маркичев Н. А., Рябов М. В. Пятилетний опыт клинического применения фотодинамической терапии. // Рос. хим. журн. 1998 № 4. С. 13−18.
  334. В.Е., Шафран М. Г. Исследование кинетических свойств и теплоустойчивости миелопероксидазы лейкоцитов белых мышей // Биохимия. 1976. Т. 41. № 9. С. 1609−1614.
  335. И.Н. Адсорбция гематопорфиринов на плоской бислойной мембране // Биологические мембраны. 1997. Т. 14. № 3. С. 310 323.
  336. Т.Н., Шелудько Я. С., Овчинникова О. В. и др. Прогностическое значение исследования IL-4, IFN, и IgE в конденсате выдыхаемого воздуха при бронхиальной астме и аллергическом рините у детей. // Цитокины и воспаление. 2002. Т. 1. № 4. С. 38−41.
  337. В.Н. Лазеротерапия при заболеваниях полости носа и околоносовых пазух. //Российская ринология. 1998. № 2. С. 28.
  338. В.И., Байдаков И. П., Груздев С. А. Гипотензивный эффект различных методов лазерной терапии у больных гипертонической болезнью. // Актуальные вопросы лазерной медицины и операционной эндоскопии: Тез. докл. Москва -Видное. 1994. С. 363−364.
  339. Ю.К., Тупикин Г. В., Алиханов Б. А., Киценко Л. С. Синдром вторичного обострения («Лазерная болезнь») проблема лазерной медицины. // Новые достижения лазерной медицины: Тез. докл. С-Петербург. 1993. С.549−550.
  340. Н.Н. Роль рецептора цитокинов gpl30 в росте и дифференцировке нормальных и опухолевых гемопоэтических клеток. // Гематол. и трасфузиол. 2001. Т. 46. С. 9−14.
  341. Ф.Ф., Сибиряк С. В., Музофалова Н.А, // Российский онкологический журнал. 2001. № 4. С. 27 30.
  342. И.С. и Шейкин Ю. А. Эндотелиальные клетки и цитокины. // Мед. иммунология. 2001. Т.З. № 4. С.499−514.
  343. P.M., Чувиров Г. Н., Маркова Т. П. Роль макрофагов в патогенезе ВИЧ-инфекции. // Иммунология. 1995. № 3. С. 10−17.
  344. В.М., Александров М. Т., Бажанов Н. Н. и др. Иммуномодулирующее действие низкоинтенсивного лазерного воздействия при лечении гнойных заболеваний у детей. // Новые направления лазерной медицины: Тез. докл. М: 1996. С. 341 342.
  345. В.Б., Корольчук Н. Э. Сочетанные методические подходы лечения низкоинтенсивным лазерным излучением в кардиологии // Перспективные направления лазерной медицины: Тез. докл. Москва Одесса. 1992. С. 392−394.
  346. А. Н. Зенгер В.Г., Исаев В. М. и др. Лазеротерапия и лазерохирургия при болезни Меньера: Метод рекомендации. М. МОНИКИ, 1996. 7с.
  347. В.М., Леонова Г. Н., Дроздов А. Л., Юсупов В. Н. Биологические модели и физические механизмы лазерной терапии. Владивосток: Дальнаука, 2002.157 с.
  348. В.А., Костров В. А., Китаева Н. Д. и др. Сравнительное влияние на гемореологию наружной и внутренней ГНЛ терапии у больных гипертонической болезнью. // Новое в лазерной медицине и хирургии: Тез. докл. М. 1990. С. 135−136.
  349. A.M., Шендалев В. Н., Наседкин А. Н. Применение гелий-неонового лазера в детской ларингологии // Тез. докл. Междунар. симпозиума. Самарканд, 1988. С. 239.
  350. И.А., Удут В. В., Карпов А. Б. Влияние излучения He-Ne лазера на хемилюминесценцию нейтрофилов человека // Радиобиология. 1993. Т. 33. № 3. С. 377 382.
  351. Р.И. Современные представления о молекулярных механизмах канцерогенеза и опухолевой прогрессии как основа для разработки новых методов терапии злокачественных новообразований // Рос. Онкол. Журнал. 2000 Т. 6. С. 42−50.
  352. А.А. Система цитокинов и принципы ее функционирования в норме и патологии. // Иммунология. 1997. № 5. С. 7−14.
  353. Gibbs B.F., Zillikens D., Grabbe J. Nerve growth factor influences IgE-mediated human basophil activation: functional properties and intracellular mechanisms compared with IL-3. // Int. Immunopharmacol. 2005. 5(4). 735−747.
  354. Skurkovich В., Skurkovich S. Inhibition of IFN-gamma as a method of treatment of various autoimmune diseases, including skin diseases. Ernst Schering Res Found Workshop. 2006. V. (56) P. 1−27.
  355. Strehl В., Seifert U., Kruger E., Heink S» Kuckelkorn U., Kloetzel P.M. Interferon-gamma, the functional plasticity of the ubiquitin-proteasome system, and MHC class I antigen processing. // Immunol. Rev. 2005. V. 207. P. 19−30.
  356. Al-Qattan K.K., Thomson M., Al-Mutawa'a S., Al-Hajeri D., Drobiova H., Ali M. Nitric oxide mediates the blood-pressure lowering effect of garlic in the rat two-kidney, one-clip model of hypertension. // J. Nutr. 2006. V. 136(3). P. 774S-776S.
  357. Quintero M., Brennan P.A., Thomas G.J., Moncada S. Nitric oxide is a factor in the stabilization of hypoxia-inducible factor-1 alpha in cancer: role of free radical formation. // Cancer Res. 2006. V. 66(2). P. 770−774.
  358. Yu L.B., Dong X.S., Sun W.Z., Zhao D.L., Yang Y. Effect of a nitric oxide synthase inhibitor NG-nitro-L-arginine methyl ester on invasion of human colorectal cancer cell line SL-174T. // World J. Gastroenterol. 2005. V. l 1(40). P. 6385−6388.
  359. Williams E.L., Djamgoz M.B. Nitric oxide and metastatic cell behaviour. // Bioessays. 2005 V. 27(12) P.1228−38.
  360. Lechner M., Lirk P., Rieder J. Inducible nitric oxide synthase (iNOS) in tumor biology: the two sides of the same coin. // Semin. Cancer Biol. 2005. V. 15(4). P.277−89.
  361. Hoos A., Levey D.L. Vaccination with heat shock protein-peptide complexes: from basic science to clinical applications. // Expert Rev Vaccines. 2003. V. 2(3). P. 369−379.
  362. Milani V., Noessner E., Ghose S., Kuppner M., Ahrens В., Scharner A., Gastpar R., Issels R.D. Heat shock protein 70: role in antigen presentation and immune stimulation. // Int. J. Hyperthermia. 2002. V. 18(6). P. 563−575.
  363. Wysocki L.J. and Sato V.L. Proc. // Natl. Acad. Sci. USA. 1978. V. 75. P. 28 442 848.
  364. М.П., Спиранде И. В., Зедгенидзе M.C., Ляхов В. В., Фукс Б. Б. Новая высокочувствительная техника тестирования нормальных киллеров. // Иммунология. 1981. № 3. С. 88−90.
  365. Beckham J.T., Mackanos М.А., Crooke С., Takahashi Т., O’Connell-Rodwell С., Contag С.Н., Jansen E.D. // Photochem. Photobiol. Sci. 2004. V. 79. P. 76−85.
  366. Kumaraguru U., Gierynska M, Norman S., Bruce B.D., Rouse B.T. // J. Virol. 2002. V. 76. P. 136−141.
  367. Craig E.A., Welssman, J.S., Horwicht A.L. // Cell. 1994. V. 78. P. 365−372.
  368. Yu H.S., Chang K.L., Yu C.L., Chen J.W., Chen G.S. Low-energy helium-neon laser irradiation stimulates interleukin-1 alpha and interleukin-8 release from cultured human keratinocytes. //Journal of Investigative Dermatology. 1996. V. 107. P. 593−596.
  369. D., Masini E., Bello M.G., Bigazzi M., Sacchi T.B. // Cancer Res. 1995. V. 55. № 22. P. 5272−5275.
  370. В.П. // International Journal on Immunoreabilitation. 2000. T. 2. № l.C. 37−47.
  371. K., Jaatela M., Wissing D., Burcart V., Kolb H. // FEBS. 1996. V. 391. P. 185−188.
  372. K.A., Giaccia A.J., Killender M., Anderson R.L. // The Journal of Biological Chemistry. 1998. V. 273. N. 27. P. 17 147−171 753.
  373. И.О., Богомолова H.B., Брилль Т. Е., Колоколов Г. Р. // Вестник ОГУ. 2003. Т. 5. С. 121−124.
  374. Jekins D., Charles I G., Thomsen L.L., Moss D. K., Holmes L.S., Baylis S.A., Rhodes P., Westmore K., Emson P.C., Moncada S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V 92. P. 4392−4396.
  375. H.K., Ланкин B.3., Меньшикова Е. Б. / М.: МАИК «Наука / Интерпериодика». 2001. 343 с.
  376. В.Ф., Дмитриев А. А., Дайхес Н. А., Иванов А. В., Давидов Х. Ш., Перекосова Ю. В., Лаптев В. П. // Вестник оториноларингологии. 1990. Т.5. С. 3−8.
  377. Chen W.R., Zhu W.G., Dynlacht J.R., Liu H., Nordquist R.E. // Int J Cancer. 1999. V. 81. № 5. P. 808−812.
  378. Chen W.R., Carubelli R, Liu H., Nordquist R.E. // Mol Biotechnol. 2003. V. 25. № 1. P. 45−52.
  379. K. // Front Med Biol Eng. 1999. V. 9. № 4. P. 275−284.
  380. M.B. //Лазерная терапия. 1995. № 2−3. С. 22−26.
  381. Funk J.O., Kruse A., Neustock P., Kirchner H. Helium-neon laser irradiation induces effects on cytokine production at the protein and mRNA level. // Exp. Dermatol. 1993. V. 2. P. 75−83.
  382. Gunter E., Walter L. Genetic aspects of the Hsp70 multigene family in vertebrates. // Experientia. 1994. V. 50. P. 987−1001.
  383. Flaherty K.M., Deluca-Flaherty C., McKay D.B. Three-dimentional structure of the ATP-ase fragment of a 70 К heat-shock cognate protein. // Nature.346: 623−628.
  384. Sriram M., Osipiuk J., Freeman В., Morimoto R., Jochimiak A. Human Hsp70 moilecular chaperone binds two calcium ions withing the ATP-ase domain. // Structure. 1997. V. 5. P. 403−414.
  385. Pelham H.R.B. Speculations on the function of major heat shock and glucose-regulated proteins. // Cell. V. 46. P. 959−961.
  386. Grenert J. P., Sullivan W.P., Fadden P., et al. The ammo-terminal domain of heat shock protein 90 (HSP90) that binds geldanamycin is an ATP/ADP switch domain that regulates HSP90 conformation. // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. P. 23 843−23 850.
  387. Obermann W.M., Sondermann H., Russo A.A. et al. In vivo function of Hsp90 is dependent of ATP binding and ATP hydrolysis. // J. Cell. Biol. 1998. V. 143. P. 901 910.
  388. Young J.C., Shneider C., Harti F.U. In vitro evidence that hsp90 contains two independent chaperone sites. FEBS Lett. 1997. V. 418. P. 139−143.
  389. Kato K., Hasegawa K., Goto S., Inaguma Y. Dissociation as a result of phoshporylation of an aggregated form of the small stress protein, hsp27. // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. P. 11 274−11 278.
  390. Wearsh P.A., Voglino L., Nicchitta C.V. Structural transitions accompanyingthe activation of peptide binding to the endoplasmic reticulum Hsp90 chaperone GRP94. // Biochemistry. 1994. V. 37. P. 5709−5719.
  391. Lindquist S. The heat shock response. // Ann. Rev. Biochem. 1986. V. 55. P. 1151−1191.
  392. Feder M.E., Hofmann G.E. Evolutionary and ecological physiology of heat shock proteins and heat shock response: a comprehensive bibliography. http://www.annurev.org/sup/material.htm
  393. R.I. Tissieres A., Georgopoulos C. (Eds). The biology of heat shock proteins and molecular chaperones. Cold Spring Harbor Lab. Press. 1994. 610 p.
  394. Vigh L., Literati P.N., Nolwerda D.A. et al. Bimoclomol: a nontoxic hydroxylamine derivative with stress protein-inducing activity and cytoprotective effects. //Nat. Med. 1997. V. 3. P. 1150−1154.
  395. Han L., Lin H., Head M., et al. Application of magnetic fild induced heat shock protein70 forpresurgical cytoprotection. //J. Cell. Biochem. 1998. V. 71. P. 577−583.
  396. N., Nikolaychik V., Keelan M.H., Shankar L.R., Khanna A., Kornowski R., Leon M., Moses J. // Lasers Surg. Med. 2001. V. 28. P. 355−364.
  397. Klebanov G. I, Teselkin Yu.O., Babenkova I.V.,. Bashkueva T. Yu, Chichuk T.V., Vladimirov Yu.A. // Gen. Physiol. Biophys. 1998. V. 17. P. 365−376.
  398. J.O., Kruse A., Neustock P., Kirchner H. // Exp Dermatol. 1993. V. 2. P. 75−83.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!