Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Актинобактерии, развитие систематики на примере семейств порядка Actinomycetales

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Практическая значимость. В распоряжение исследователей предоставлен значительный массив новых актинобактерий с сопутствующей информацией таксономического, биохимического, физиологического и экологического характера. Данные по нуклеотидным последовательностям 16Б рРНК генов более 40 изученных. штаммов помещены в Базу данных Центра биотехнологической информации (http://www.ncbi.nlm.nih.gov… Читать ещё >

Актинобактерии, развитие систематики на примере семейств порядка Actinomycetales (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Состояние вопроса и актуальность проблемы
  • Цель и задачи исследования
  • Научная новизна работы
  • Практическая значимость
  • Апробация работы
  • Научные программы, в рамках которых выполнялись исследования и связь с планом научно-исследовательских работ Института
  • ПУБЛИКАЦИИ
  • БЛАГОДАРНОСТИ
  • ГЛАВА 1. Ранние системы классификации актиномицетов
    • 1. 1. Морфологические особенности — основной критерий выделения родов актиномицетов на начальном этапе развития системы группы
    • 1. 2. Хемотаксономическое направление в систематике (60−80 гг. XX в.)
  • ГЛАВА 2. Современная систематика актинобактерий основывается на принципах полифазной таксономии
    • 2. 1. Вид — основная таксономическая единица бактериальной классификации
    • 2. 2. Современные иерархические системы классификации актинобактерий
    • 2. 3. Характеристики актинобактерий, используемые в современной систематике
      • 2. 3. 1. Морфологические, культуральные и физиолого-биохимические признаки
      • 2. 3. 2. Хемотаксономические признаки
      • 2. 3. 3. Характеристики генома
  • ГЛАВА 3. Материалы и методы исследований
    • 3. 1. Объекты исследования
    • 3. 2. Методы
      • 3. 2. 1. О браб отка образцов и посевы
      • 3. 2. 2. Методы изучения морфологических и культуральных признаков
      • 3. 2. 3. Методы изучения физиолого-биохимических признаков
      • 3. 2. 4. Методы изучения хемотаксономических признаков
      • 3. 2. 5. Молекулярно-биологические методы
  • ГЛАВА 4. Систематика актиномицетов рода Promicromonospora (семейство
  • Promicromonosporaceae)
    • 4. 1. Род Promicromonospora входит в группу Корине- и нокардиоформных актиномицетов
    • 4. 2. Видовой состав рода Promicromonospora- новый вид Р. alba
    • 4. 3. Реклассификация Р. enterophila (Jager et al., 1983) как Oerskovia enterophila
  • ГЛАВА 5. Систематика актиномицетов семейства Microbacteriaceae
    • 5. 1. Agromyces: уточнение и дополнение диагноза рода
      • 5. 1. 1. Предложение новых видов — А. albus, А. cerinus, A. fucosus, А. hippuratus
    • 5. 2. Cryocola antiquus gen. nov., sp. nov. — новые род и вид из древних многолетнемерзлых отложений
    • 5. 3. Уточнение границ и таксономической структуры рода Clavibacter
      • 5. 3. 1. К истории систематики фигопатогенных бактерий рода Clavibacter
      • 5. 3. 2. Восстановление подвидов С/. michiganensis в статусе видов
      • 5. 3. 3. Clavibacter gallus sp. nov., Clavibacter desertorus sp. nov. и
  • Clavibacter roseus sp. nov
    • 5. 4. Новый род Rathayibacter и его видовой состав
      • 5. 4. 1. Новые комбинации — R. rathayi, R. tritici, R. iranicum
      • 5. 4. 2. Новые виды R. festucae и R. caricis
    • 5. 5. Изучение бактериоциногенных профилей штаммов родов
  • Clavibacter и Rathayibacter в таксономическом аспекте
    • 5. 6. Новый род Leifsonia и его видовой состав

    5.7. Р1аШЬас1ег: дифференциация от Rathayibacter и уточнение диагноза рода 102 5.7.1. Состав терминальных оксидаз дыхательной цепи как хемотаксономический признак актинобактерий родов Р1аШгЬас1ег и Rathayibacter.

    5.7.2. Три новых вида рода Plantibacter — P. agrosticola sp. nov., P. elymi sp. nov. и P. cousiniae sp. nov. Ill

    5.8. Новый род Agreia и видовой состав рода.

    5.9. Новые род и вид — Graminibacter agreoides gen. nov., sp. nov.

    5.10. Новые род и вид — Okibacterium fritillariae.

    5.11. Род Microbacterium.

    5.11.1. Microbacterium lavaterae sp. nov.

    5.12. Род Curtobacterium и его видовой состав.

    5.12.1. Новый вид из галлов на растениях — Curtobacterium calamagrosticola sp. nov.

    5.13. Frigoribacterium mesophilum sp. nov. и уточнение диагноза рода Frigoribacterium.

    ГЛАВА 6. Систематика актиномицетов рода Brevibaterium семейство Brevibateriaceae).

    6.1. Новые виды Brevibacterium permense sp. nov., В. antiquum sp. nov. и В. aurantiacum sp. nov., характеризующиеся оранжевой окраской колоний.

    ГЛАВА 7. Систематика актиномицетов рода Nocardiopsis (семейство Nocardiopsaceae)

    7.1. Новые виды Nocardiopsisprasina, N. trehalosi и подвид

    N. dassonvillei subsp. albirubida.

    7.2. Видоспецифичность состава и строения тейхоевых кислот у актиномицетов рода Nocardiopsis.

    ГЛАВА 8. Систематика актиномицетов рода Nocardioides (семейство Nocardioidaceae) 150 8.1. Уточнение границ и диагнозов известных видов рода Nocardioides, характеризующихся наличием мицелия.

    8. 2. Новый вид мицелиальных организмов — Nocardioides prauseri sp. nov.

    ГЛАВА 9. Систематика актиномицетов рода Glycomyces (семейство Glycomycetaceae).

    9.1. Новый вид Glycomyces tenuis.

    ГЛАВА 10. Систематика актиномицетов семейства Streptomycetaceae

    10.1. Состояние систематики группы к началу исследований.

    10.2. Citrinosporaplicata gen. nov., sp. nov. — новые род и вид семейства Streptomycetaceae.

    10.3. Изучение возможности использования строения тейхоевых кислот клеточных стенок для уточнения таксономической структуры рода Streptomyces.

    10.3.1. Группа видов «Streptoverticillium».

    10.3.2. Кластер-вид «Streptomyces violaceusniger».

    10.3.3. Кластер-вид «Streptomyces lavendulae».

    10.3.4. Кластер-вид «Streptomycesfulvissimus»

    10.3.5. Кластер-виды «Streptomycesgriseoviridis» и «S. luridus».

    ГЛАВА 11. Распространение тейхоевых кислот клеточных стенок у организмов различных таксонов порядка Actinomycetales.

    ГЛАВА 12. Ассоциации исследованных микроорганизмов с растениями и нематодами.

    12.1. Актинобактериально-нематодные комплексы.

    12.2. Clavibacter spp. — сапротрофы и эндофиты.

    12.3. Streptomyces spp. — возбудители паршы картофеля

Состояние вопроса и актуальность проблемы. Систематика микроорганизмов принадлежит к числу фундаментальных научных дисциплин, имеющих серьезное прикладное значение. Создание надежных систем классификации и идентификации бактерий актуально как для развития теоретических областей науки (среди них представления о биологическом разнообразии населяющих Землю живых организмов, их взаимоотношениях и эволюции, структуре сообществ и популяций и др.), так и для решения ряда конкретных проблем биотехнологии, медицины, сельского хозяйства, охраны окружающей среды.

Решение многих вопросов теории и практики требует точной идентификации микроорганизмов, входящих в микробные комплексы ненарушенных и антропогенных биоценозов. Необходимость развития систематики, детальной характеристики микроорганизмов и четкой дифференциации штаммов, в том числе близких таксонов, становятся в последнее время все более актуальными в связи с задачами мониторинга экосистем с использованием молекулярно-биологических методов, поиска суррогатных штаммов для изучения поведения в окружающей среде микроорганизмов с определенными свойствами, а также решением правовых проблем, касающихся вопросов защиты интеллектуальной собственности на штаммы (Kelley, 1995).

Представители порядка Actinomycetales (актиномицеты) выделяются среди других прокариот размерами и организацией генома, особенностями фенотипа, в т. ч., размерами и морфологией, и превосходят другие известные группы бактерий по способности синтезировать биологически активные соединения, в том числе антибиотики. Они являются продуцентами свыше половины из более 10 000 биологически активных соединений, зарегистрированных к настоящему времени (Anderson & Wellington, 2001).

С момента обнаружения — 70-е годы XIX в. (Harz, 1975; Trevisan, 1889) — и до середины 70-х гг. XX века к актиномицетам («лучистым грибкам») относили преимущественно мицелиальные Грам-положительные бактерии, имеющие внешнее морфологическое сходство с микроскопическими грибами (Waksman, 1959; Красильноков, 1970; Cross & Goodfellow, 1973). В силу ряда причин, среди которых можно назвать разнообразие морфологии, химического состава полимеров и молекул клетки и клеточной стенки, а также повышенный интерес к этой группе микробов со стороны биотехнологов, систематика этой группы организмов уже в домолекулярную эру таксономии оказалась одной из наиболее продвинутых в сравнении с большинством других групп прокариотных микроорганизмов (Goodfellow et al., 1984).

Термин «актинобактерии» появился в систематике группы в начале 80-х годов XX века, в начальный период перехода от классификации, учитывающей преимущественно морфологические и отдельные биохимические признаки, к системе на основе хемотаксономических характеристик и, особенно, данных по секвенированию 16S рРНК генов (Goodfellow et al., 1984). В частности, с использованием указанных методов было установлено, что ряд палочковидных и кокковидных Грам-положительных бактерий с высоким содержанием Г+Ц-пар в ДНК (роды Arthrobacter, Micrococcus, Microbacterium, Cellulomonas и др.) являются близкими родственниками «классических» мицелиальных актиномицетов. Подобные бактерии в 80-х годах рассматривались в составе порядка Actinomycetales как сборная группа надродового уровня, именуемая «актинобактерии» -вначале без придания этому термину формального таксономического и номенклатурного статуса (Goodfellow, 1989). В составе порядка выделялись также такие группы, как «нокардиоформы», «актинопланы», «актиномадуры», «стрептомицеты» и др. Эта схема, приведенная в Определителе Берги (Goodfellow, 1989), явилась первой системой актиномицетов и первым примером системы прокариот в целом, в которой удалось достичь определенного консенсуса между таксономической и филогенетической иерархиями. Она явилась первым прообразом последующей современной иерархической системы микроорганизмов упомянутой группы, объединяемых в настоящее время в класс.

АсйпоЬа^епааскеЬгапск й а1., 1997), и максимально учитывающей их вероятные филогенетические связи и фенотипические особенности.

Класс АсйпоЪаШпа к настоящему времени оказался в числе немногих естественных группировок, где таксономическая иерархия начинает вырисовываться на глубину Класс-Порядок-Подпорядок-Семейство-Подсемейство-Род-Вид-Подвид. В таком состоянии последняя интересна как сама по себе (не только как промежуточный итог прошлых, но и ориентир дальнейших исследований), так и в качестве примера возможности подобных построений в других группах бактерий.

Как создание основ этой системы, так и продолжающаяся ее эволюция является результатом усилий десятков исследователей многих стран. Эти усилия реализовались на фоне значительного расширения массивов привлекаемых к изучению культур (изолятов из разнообразных биотопов). В большинстве случаях требовался настойчивый поиск новых дифференцирующих признаков (особенно хемотаксономических на уровне род-вид), переосмысление возможностей ранее использованных, учет лавинообразно накапливающейся информации филогенетического характера, интеграция всех этих сведений с учетом принципов полифазной таксономии при описании новых и ревизии ранее известных таксонов.

С накоплением данных по нуклеотидным последовательностям 16Б рРНК у массивов известных и вновь выделенных микроорганизмов, была выявлена гетерогенность ряда ранее известных родов, следствием чего явилась необходимость их ревизии и описание новых родов. В систематике многих групп настоятельно заявляла о себе проблема дефицита фенотипических признаков, главным образом, хемотаксономических, позволяющих дифференцировать группы (таксоны), обособляющиеся филогенетически и/или на геномном уровне. Поиск решений побуждает обратиться к тем полимерам и молекулам клетки, которые еще не были исследованы в таксономическом аспекте.

Сложности систематики актинобактерий на уровне вида особенно остро выявились в наиболее многочисленном по видовому составу роде Б^ерЮтусея. Выявление геномовидов, поиск надежных признаков, дифференцирующих геномогруппы на фенотипическом уровне, и дальнейшая ревизия таксономической структуры рода являются актуальнейшими задачами систематики этих организмов в ближайшей перспективе.

В представленной работе на примере ряда родов семи семейств порядка Асйпотусе1а1е8 отражен основной вклад автора в развитие системы классификации актинобактерий.

Цель и задачи исследования

Общей целью настоящей работы было таксономическое исследование известных и вновь выделенных микроорганизмов ряда семейств порядка АсНпотусе1а1е$ и усовершенствование их систематики на основе принципов полифазной таксономии.

Среди основных задач исследований можно выделить следующие:

1. Выделение в чистую культуру новых массивов микроорганизмов из слабоизученных и не исследованных ранее биотопов.

2. Характеристика микроорганизмов по традиционно используемым в систематике актиномицетов фенотипическим признакам (культурально-морфологическим, хемотаксономическим, физиологическим) и предварительная идентификация новых изолятов.

3. Определение нуклеотидных последовательностей 16Б рРНК-генов и установление филогенетического положения микрооргагнизмоввыявление генотипов (геномовидов) среди фенотипически близких организмов на основе данных Ыер-ПЦР анализа и ДНК-ДНК гибридизации.

4. Исследование строения и распространения тейхоевых кислот и близких полимеров клеточных стенок у представителей различных таксонов и оценка возможности использования этих полимеров и их структурных компонентов в качестве хемотаксономических признаков. Изучение состава терминальных оксидаз у организмов семейства Microbacteriaceae и оценка возможности использования этого признака для разграничения филогенетически обособленных групп родового и видового уровней.

5. Анализ полученных данных, выявление и описание новых родов и видов и уточнение структуры и диагнозов ранее описанных таксонов на основе принципов полифазной таксономии.

Научная новизна работы. В разнообразных природных источниках впервые выявлены представители ряда новых групп бактерий, принадлежащих к порядку Actinomycetales (класс Actinobacteria). На основе согласующихся фенотипических и филогенетических данных предложено и описано семь новых родов — Agreia, Cryocola, Leifsonia, Rathayibacter, Okibacterium, Graminibacter (сем. Microbacteriaceae), Citrinospora (сем. Streptomycetaceae). Предложены уточненные и дополненные описания и ревизованы таксономические структуры родов Agromyces, Clavibacter, Curtobacterium, Frigoribacterium, Plantibacter (сем. Microbacteriaceae), Promicromonospora (сем. Promicromonosporaceae), Brevibacterium (сем. Brevibacteriaceae), Nocardioides (сем. Nocardioidaceae), Nocardiopsis (сем. Nocardiopsaceae), Glycomyces (сем. Glycomycetaceae), Streptomyces (сем. Streptomycetaceae).

Описано и реклассифицировано более 30 новых и ранее предложенных видов вышеперечисленных родов. Получены и включены в базы данных (NCIB) сведения по нуклеотидным последовательностям 16S рРНК гена более 40 изученных штаммов. Впервые изучено распространение тейхоевых кислот и других анионных полимеров клеточных стенок у более 250 организмов, представителей 23 семействпоказана возможность использования признака «наличие тейхоевых кислот» для дифференциации родов и высших таксонов актиномицетоввыявлена видоспецифичность вышеупомянутых полимеров для организмов всех исследовавшихся в этом плане родов (Agromyces, ВгеУ1Ьас (егшт, ~Ыосаг<�Иори1н, А! осагсИо1с1е.<-, СЛусотусея, Б^ерШтусез и др.).

Обнаружен и описан ряд новых полимеров клеточной стенки, среди нихпептидогликан Б-типа с двумя диаминокислотами (орнитином и ДАМК) — полисахарид, содержащий тивелозутейхоевые кислоты с не известными ранее основными цепями, содержащими эритрит и арабит. Впервые обнаружены природные полимеры дезокси-Б-2лмг/е/7о-0-гала/сшо-нон-2-улопиранозоновой кислоты (Кс1п), которые, возможно, играют определенную роль в процессе взаимодействия фитопатогенных актиномицетов и растения-хозяина. Впервые изучен состав терминальных оксидаз у представителей семейства М1сгоЬас1ег'шсеае (роды Р1аЫ1ЬаШг, Ок&аМегшт, Кшкау1Ьас1ег и др.) и показано, что тип цитохромоксидаз дифференцирует таксоны родового уровня, а хинолоксидазы могут использоваться для разграничения видов.

Получены новые сведения об экологии исследованных групп. Впервые описаны сапротрофные виды рода С1а1Ъасиг и выявлен ряд фитопатогенных организмов рода БКерЮтусез, филогенетически и фенотипически отличных от ранее известных возбудителей парши картофеля и корнеплодов. Обнаружены семь новых ассоциаций бактерий семейства МкгоЬаМепасеае и фитопатогенных галлообразующих нематод подсемейства Ап? шшпае, встречающихся в различных регионах России и стран мира.

Практическая значимость. В распоряжение исследователей предоставлен значительный массив новых актинобактерий с сопутствующей информацией таксономического, биохимического, физиологического и экологического характера. Данные по нуклеотидным последовательностям 16Б рРНК генов более 40 изученных. штаммов помещены в Базу данных Центра биотехнологической информации (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) и доступны специалистам и практикам. Уточнены диагнозы видов и родов и разработаны схемы идентификации микроорганизмов семейства Microbacteriaceae, включающего около половины известных фитопатогенных видов порядка Actinomycetrales. Таксономические предложения включены в авторитетные международные руководства и справочные издания (http ://www.isppweb .orghttp://www.isppweb.org/names sugarcane pathogen. asp) по микробиологии и фитопатологии и нашли отражение в ряде документов и рекомендаций, касающихся вопросов защиты растений. Усовершенствована система классификации актинобактерий семейств Microbacteriaceae, Promicromonosporaceae, Brevibacteriaceae, Nocardiopsaceae, Nocardioidacea, Glycomycetacea и Streptomycetacea, охватывающих массивы организмов, имеющих важное прикладное значение.

Введены в практику таксономии признаки, отражающие наличие и основные структурные компоненты тейхоевых кислот клеточных стенок актинобактерийпризнаки вошли в перечень «Минимальных стандартов описания новых таксонов» соответствующих групп организмов, публикуемых Международным Комитетом по систематике прокариот. Одним из важных с практической точки зрения результатов проведенной работы является предложение нового перспективного подхода к ревизии таксономической структуры наиболее многочисленного по видовому составу рода Streptomyces. Изучение полимеров клеточных стенок, в сочетании с исследованиями других характеристик генома и фенотипа, дает в руки микробиологов ценный инструмент для уточнения границ и диагнозов видов.

Разработан способ получениия 3,6-дидезокси-0-маннозы (тивелозы) на основе полисахарида, синтезируемого Agromyces cerinus subsp. cerinus (Патент России No 2 055 887, 1996). Создана представительная коллекция детально охарактеризованных бактерий, которые включены в фонд Всероссийской коллекции микроорганизмов, дубликаты многих штаммов переданы в национальные коллекции Бельгии, Германии, Франции, Японии, США и др. стран и могут быть использованы широким кругом специалистов в качестве объектов исследований в области микробиологии, экологии, фитопатологии, а также для поиска метаболитов, перспективных для биотехнологии.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на 7-ом (Прага, 1994) и 10-м (Париж, 2002) Международных конгрессах по бактериологии и прикладной микробиологииМеждународных симпозиумах по биологии актиномицетов (Мехико, 1982; Киото, 1987; Мадисон, 1991; Москва, 1994), 4-й Международной конференции коллекций культур (Брно, 1981), Международной конференции «Микробное разнообразие» (Пермь, 1996), Международных нематологических симпозиумах (Москва, 1997; Санкт-Петербург, 1999), Международном симпозиуме «Современные проблемы биохимии микроорганизмов и биотехнологии» (Пущино, 2000) — Симпозиуме ИНТАС «Микробные и клеточные системы в фармакологии, биотехнологии и окружающей среде» (Москва, 1999) — 1-м рабочем совещании микробиологов Поволжья (Саратов, 2000). Неоднократно докладывались на заседаниях Ученого Совета ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН, а также семинарах отдела Всероссийская коллекция микроорганизмов (1981;2003).

Научные программы, в рамках которых выполнялись исследования и связь с планом научно-исследовательских работ Института. Тема диссертационной работы является частью плановой темы Института (№ гос. per. 01.86.0 009 299) и соответствует темам АН СССР и РАН «Формирование ВКМ. Создание и поддержание в нарастающем объеме фонда культур ВКМ» (1981;2003 гг.), ГНТП СССР/Мин. Науки РФ «Новейшие методы биоинженерии» (1993;1997) — ГНТП РФ «Средства обеспечения исследований по физико-химической биологии и биотехнологии» (1992;1997) — ФЦНТП РФ «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития науки и техники», подпрограмма «Биологическое разнообразие» (1999;2001), темам целевых конкурсных грантов РФФИ 979.

04−49 087 «Систематика новых и редких актиномицетов, изолированных из растений" — 98−449 504 «Таксономическое разнообразие микромицетов и актинобактерий из древних биоценозов, находящихся в условиях естественной криоконсервации" — 00−04−49 074 «Актиномицеты микробных сообществ, ассоциированных с фитопатогенными галлообразующими нематодами подсемейства Anguininae" — 02−04−49 200 «Терминальные оксидазы дыхательной цепи как хемотаксономические признаки коринеформных актиномицетов», а также темам 2-х целевых конкурсных грантов ИНТ АС: 97−1571 «Тейхоевые кислоты клеточных стенок как хемотаксономические маркеры таксонов актиномицетов» и 00−2040 «Первичная структура тейхоевых кислот и других анионных полимеров клеточных стенок как критерий разграничения видов актиномицетов».

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 73 работы, включая 51 эксперментальную статью, 2 обзора, 3 главы в Международных руководствах (The ProkaryotesBergey’s Manual of Systematic Bacteriology), 1 патент, 14 тезисов докладов и сообщений на российских и международных симпозиумах и конференциях, а также раздел «Актиномицеты» Каталога культур ВКМ и его переизданий.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает глубокую признательность всем российским и зарубежным коллегам — соавторам публикаций, принимавшим участие в представленной работе на различных этапах ее выполнения: к.б.н. В. М. Аданину (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. В. Н. Акимову (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. Е. В. Арискиной (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. Е. Ю. Гавриш (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. J1. В. Дорофеевой (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. Е. И. Згурской (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.х.н. Н. Ф. Зеленковой (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), С. Г. Карасеву (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.ф.-м.н. А. В. Карпову (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. В. И. Краузовой (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. Т. Ф. Куимовой (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), м.н.с. В. В. Таран (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), м.н.с. В. Я. Лысанской (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. Н. Е Сузиной (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. С. М. Трутко (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), к.б.н. М. Г. Шляпникову (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН), д. г-м.н. Д. А. Гиличинскому (Институт физико-химических и биологических проблем почвоведения РАН), к.б.н. Т. Г. Добровольской (Факультет почвоведения МГУ), к.б.н. Л. В. Лысак (Факультет почвоведения МГУ), д.б.н. И. Б. Наумовой (Биологический факультет, МГУ), к.б.н. Г. М. Стрешинской (Биологический факультет, МГУ) — к.б.н. Н. В. Потехиной (Биологический факультет, МГУ), к.б.н. Ю. И. Козловой (Биологический факультет, МГУ), к.б.н. Е. М. Тульской (Биологический факультет, МГУ) — д.х.н. A.C. Шашкову (Институт органической химии им. Зелинского РАН), к.б.н. С. А. Субботину (Институт паразитологии РАН), доктору X. Оберройтер (Институт микробиологии Технического университета г. Мюнхена, Германия), профессору Р. Кроппетштедту (Немецкая коллекция микрооранизмов, Германия), доктору X. Праузеру (Немецкая коллекция микрооранизмов, Германия), проф. Э. Стакебрандту (Немецкая коллекция микрооранизмов, Германия), доктору М. Такеучи (Институту ферментации, Осака, Япония), проф. Д. Тиджи (Мичиганский Университет, США). Особую благодарность автор выражает своим наставникам и учителямчл.-корр. РАН Льву Владимировичу Калакуцкому, д.б.н. Нине Семеновне Агре и к.б.н. Инне Павловне Бабьевой.

ВЫВОДЫ.

1. Проведенные исследования выявили значительный массив не изученного ранее микробного разнообразия. Впервые выделены из различных, в том числе уникальных источников, включая вечномерзлые отложения возраста 1,8−3 млн. лет, растительные галлы, индуцированные фитопатогенными нематодами различных родов подсемейства Anguininae, и детально охарактеризованы актинобактерии, относящиеся к новым филогенетическим группам.

2. На основании согласующихся филогенетических и выявленных фенотипических характеристик описано семь новых родов — Agreia, Cryocola, Leifsonia, Rathayibacter, Okibacterium, Graminibacter и Citrinosporaвыявлено и реклассифицировано в соответствии с современными представлениями более 30 новых и ранее описанных видов. Уточнены и дополнены диагнозы родов Agromyces, Clavibacter, Frigoribacterium, Plantibacter, Kitasatospora, а также видов родов Brevibacterium, Curtobacterium, Nocardioides, Nocardiopsis, Promicromonospora — в связи с обнаружением у вновь выделенных и ранее известных микроорганизмов соответствующих таксонов значимых отличий от оригинальных описаний. Таксономические предложения позволили усовершенствовать структуру семейств Promicromonosporaceae, Microbacteriaceae, Brevibacteriaceae, Nocardiopsaceae, Nocardioidaceae, Streptomycetaceae.

3. Впервые исследованы анионные углеводсодержащие полимеры клеточных стенок у широкой выборки актинобактерий 23 семейств порядка с таксономической точки зрения и показана эффективность использования этих полимеров для решения таксономических задач. В числе наиболее значимых результатов — обнаружение корреляции между составом и структурой тейхоевых кислот с группировкой организмов по сходству ДНК. Последнее обстоятельство открывает новые возможности решения актуальной проблемы систематики по упорядочению таксономической структуры ряда родов актиномицетов, в их числе Streptomyces — наиболее многочисленного по видовому составу.

4. Обнаружены и описаны не известные ранее структуры полимеров (пептидогликана, тейхоевых кислот и других анионных фосфор-содержагцих полисахаридов), которые в документированных случаях являются химическими маркерами родов и видов, а также представляют интерес для понимания механизмов взаимодействия актинобактерий с другими организмами и внешней средой. Впервые (у фитопатогенных представителей рода Streptomyces) обнаружены природные полимеры 3-дезокси-В-г-шгдао-В-га/шктс>-нон-2-улопиранозоновой кислоты (Kdn).

5. Впервые изучен состав терминальных оксидаз у представителей семейства Microbacteriaceae и продемонстрирована возможность использования в практике таксономии признака «тип терминальных оксидаз». Показана ценность использования состава цитохромоксидаз для дифференциации таксонов актиномицетов на уровне рода и состава хинолоксидаз на уровне вида.

6. Обнаружено 7 новых ассоциаций бактерий семейства Microbacteriaceae и фитопатогенных галлообразующих нематод подсемейства Anguininae, встречающихся в различных регионах России и стран мира. Выявлен ряд фитопатогенных организмов рода Streptomyces, филогенетически и фенотипически отличных от ранее описанных возбудителей парши картофеля и корнеплодов. Впервые описаны сапротрофные виды рода Clavibacter.

7. Создана представительная коллекция детально охарактеризованных бактерий, которые вошли в фонд Всероссийской коллекции микроорганизмов. Дубликаты многих штаммов переданы в национальные коллекции Бельгии, Германии, Франции, Японии, США и других стран и могут быть использованы широким кругом специалистов в качестве объектов исследований в области микробиологии, экологии, фитопатологии, а.

Заключение

.

Проведенные исследования выявили значительный пласт не исследованного ранее микробного разнообразия. С учетом филогенетической обособленности и принадлежности организмов к отдельным геномовидам, согласующихся с выявленными особенностями фенотипа, предложен и описан ряд новых родов и видов. Уточнены диагнозы ранее известных родов — в связи с обнаружением у новых и ранее описанных их представителей значимых таксономических отличий от оригинальных диагнозов. Таксономические предложения позволили усовершенствовать структуру семейств Microbacteriaceae, Brevibateriaceae, Promicromonosporaceae, Nocardiopsaceae, Nocardioidacea, Streptomycetacea. Дополнен и обновлен арсенал методов и подходов, пригодных для дальнейшей работы по совершенствованию систематики актинобактерий.

Бактерии выявленных и описанных новых видов и родов в ряде случаев впервые изолированы из не исследовавшихся ранее уникальных биотопов (вечномерзлые отложения возраста 1,8−3 млн. лет, растительные галлы, индуцированные фитопатогенными нематодами некоторых родов подсемейства Anguininae). В других случаях (филлосфера растений или почва), представители новых таксонов по первому впечатлению могли быть отнесены к достаточно известным сборным группам. Ранее, однако, они не могли быть точно определены — в силу ограниченных возможностей доступных исследователям в тот или иной периоды систематики и методов идентификации изоляты, причислялись или могли быть причислены к «фенотипически сходным» ранее описанным родам (.Arthrobacter, Corynebacterium, Clavibacter, Nocardiopsis, Saccharothrix и др.) и видам (например, Nocardioides albus, Brevibacteriuum linens и др.). «Маскируясь» под известные таксоны, такие актинобактерии обычно не попадают в поле внимания микробиологов-систематиков, экологов или специалистов, ведущих поиск новых природных процессов или биологически активных соединений.

Получены новые сведения об экологии исследованных групп. Впервые описаны сапротрофные виды рода СШуШаМег и выявлен ряд фитопатогенных организмов рода З^ерЮтусея, филогенетически и фенотипически отличных от ранее известных возбудителей парши картофеля и корнеплодов. Выявлены новые ассоциации актиномицетов и фитопатогенных галлообразующих нематод подсемейства Аг^шшпае. Выяснение роли этих актиномицетов в фитопатогенных бактериально-нематодных комплексах и понимание их взаимодействия с нематодами, растениями и фагами — задачи будущих комплексных исследований микробиологов, молекулярных биологов, фитопатологов и нематологов. Сегодня, однако, ясно, что ткани растений без видимых признаков заболеваний — не стерильны. Вегетативные органы и семена, а также галлы, индуцированные различными нематодами подсемейства Агщшшпае на растенияхбогатый источник новых видов и родов актинобактерий.

В ходе проведенных исследований обнаружен ряд новых свойств микроорганизмов и компонентов их клеток, в том числе новые типы пептидогликана, а также тейхоевые кислоты с принципиально новыми основными цепями (включающими эритритфосфат, арабитфосфат, сахарофосфаты) и др. У группы фитопатогенных организмов рода Б^ерШтусез, возбудителей парши картофеля, наряду с тейхоевыми кислотами, описаны полимеры 3-дезокси-В-глмг/е/?о-В-галаятао-нон-2-улопиранозоновой кислоты (Кс1п) -ранее не известные в природе. Олигомеры и полимеры Кёп, обладающие адгезивными свойствами в отношении растительных тканей, несомненно, могут играть определенную роль в процессе инванзии фитопатогена в ткани растения-хозяина. Их дальнейшие исследования, наряду с изучением факторов патогенности и устойчивости, будут способствовать пониманию молекулярных основ механизмов взаимодействий фитопатогенных актиномицетов и растения-хозяина и разработке методов борьбы с возбудителями заболеваний растений.

Продемонстрирована перспективность изучения тейхоевых кислот и близких полимеров в таксономическом аспекте и эффективность использования особенностей их строения в классификации и идентификации актиномицетов на всех таксономических уровнях. Использование в практике систематики строения анионных углеводсодержащих полимеров клеточных стенок и их структурных элементов принадлежит к числу новых направлений в таксономии актинобактерий и микроорганизмов в целом. Показана возможность использования в практике идентификации актиномицетов ЯМР-спектров тейхоевых кислот.

Выявление корреляции между, структурами анионных полимеров клеточной стенки, генотипическими характеристиками и группировкой организмов по совокупности культуральных и физиологических признаков представителей рода Streptomyces открывает новый перспективный подход к решению сложнейшей задачи систематики актинобактерий — ревизии таксономической структуры этого наиболее многочисленного по видовому составу рода Дальнейшая реорганизация структуры рода, предполагающая комплексное исследование геномных и разносторонних фенотипических характеристик организмов и уточнение (определение) границ видов на основе полифазного подхода, несомненно будет происходить с учетом (и при использовании) особенностей структуры анионных полимеров клеточной стенки, которые составляют до 60% веса стенки и связаны с множеством функций клетки и популяции в целом, имеющих отношение к их жизнедеятельности и связи с окружающей средой.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.С. (1986). Систематика термофильных актиномицетов. Пущино, ОНТИ НЦБИ АН СССР, 132 с.
  2. Н.С., Гузева JI.H. (1975). • Новый род актиномицетов: Excellospora gen.nov. Микробиология 44:518−523.
  3. Н.С., Соколов А. А. и Соина B.C. (1972). Электронно-микроскопическое изучение спорообразования Micropolyspora viridinigra и Micropolyspora rubrobrunnea. Микробиология 41:854−858.
  4. В.К. (1989). Альтернативные оксидазы микроорганизмов. М.: Наука. 263 с.
  5. В.И. (1981). Почвенные нокардиоподобные организмы. Автореф. дисс.канд.биол.наук, Москва, ИНМИ АН СССР, 20 с.
  6. В. Б. (1996). Цитохром bd структура и свойства. Биохимия 61:786−799.
  7. Г. Ф., Преображенская Т. П., Кудрина Е. С., Блинов Н. О., Рябова И. Л., Свешникова М. А. (1957). Вопросы классификации актиномицетов-антагонистов. М.: Медгиз, 1957, 208 с.
  8. Г. Ф., Преображенская Т. П., Свешникова М. А., Терехова Л. П., Максимова Т. С. (1983). Определитель актиномицетов. Роды Streptomyces, Streptoverticilium, Chainia. М.: Наука. 245 с.
  9. , Т. Г. (2002). Структура бактериальных сообществ почв. М., ИКЦ «Академкнига», 282 с.
  10. О.Д., Терехова Л. П., Агре Н. С. (1980). Образование актиномицетами аспорогенных вторичных колний и свойства выделенных из них вариантов. Микробиология 49:976−981.
  11. Н. Ф. (1988). Итоги науки и техники. Серия хроматография, 6:146−147.
  12. Л. В. и Агре Н.С. (1977). Развитие актиномицетов. М., Наука. 285 с.
  13. Л.В. и Никитина Е.Т. (1976). К анализу явлений «естественной» изменчивости у актиномицетов. Yen. микробиол. 11:67−100.
  14. М. (1975). Техника липидологии. М: Мир. 322с.
  15. , Н. Д. и Круглов Ю.В. (2001). Динамика объема и структура почвенного бактериального комплекса в присутствии азобензена. Микробиология 70:552−557.
  16. Н. А. (1938). Лучистые грибки и родственные им организмы. М., Изд. АН СССР.
  17. H.A. (1941). Определитель лучистых грибков. М.: Изд. АН СССР.
  18. H.A. (1949). Определитель бактерий и актиномицетов. М.:Изд. АН СССР.
  19. Красильников Н.А.(1960). О принципах классификации актиномицетов. Сб.: Биология отдельных групп актиномицетов — продуцентов антибиотиков, вып.8, с.7−20. Труды инта микробиологии. М.: Изд. АН СССР.
  20. H.A. (1962). Новый род лучистых грибков- Actinopycnidium п. gen. в семействе Actinomycetaceae. Микробиология 31:250−253.
  21. H.A. (1970). Лучистые грибки. Высшие формы. М.: Наука, 535 с.
  22. H.A., Калакуцкий Л. В. и Кириллова Н.Ф. (1961). Новый род лучастых грибков Promicromonospora gen. nov. Изв. АН СССР, сер. биол. N 1: 107−112.
  23. H.A. и Юань Цзи-шэн. (1961). Actinosporangium новый род семейства Actinoplanaceae. Изв. АН. СССР, сер. биол. N 4:113−116.
  24. В.Д. (1973). Гомологические ряды наследственной изменчивости актиномицетов. Антибиотики 7:579−586.
  25. В.Д. (1975). Спонтанная изменчивость актиномицетов продуцентов антибиотиков и стабилизация их биосинтетической активности и таксономических свойств. Автореф. дисс.докт.биол.наук. ИНМИ АН СССР, Москва, 1975.
  26. , Э. и др. (1981). Эволюция. М., «Мир», 265с.
  27. Международный кодекс номенклатуры бактерий. М., «Наука», 1978, 207 с.
  28. Методы общей бактериологии. Под ред. Герхарда Ф. и др. Т. 3. М.:Мир. 1984. 536 с.
  29. Методы почвенной микробиологии и биохимии. Под ред. проф. Звягинцева Д. Г. М: МГУ. 1980. 224 с.
  30. И.Б. и Шашков A.C. (1997). Анионные полимеры в клеточной стенке грамположительных бактерий. Биохимия 62:809−840.
  31. O.A. (1982). Систематика нокардиоподобных и коринеподобных бактерий. Автореф. дисс. докт.биол.наук, ИМВ АН УССР, Киев, 49 с.
  32. O.A., Квасников Е. И. и Ногина Т.М. (1985). Нокардиоподобные и коринеподобные бактерии. Киев: Наукова думка. 334с.
  33. О.А., Степанюк В. В., Мельниченко П. А. и Ногина Т.М. (1982). Морфолого-структурные особенности клеток Brevibacterium ammoniagenes АТСС 6871 в цикле развития культуры. Микробиол. ж. 43 (2): 166−172.
  34. Е.Т., Казакова Г. Г. и Калакуцкий JI.B. (1971). Индукция особого типа развития у Actinomyces roseoflavus var. roseofungini на среде с фруктозой. Докл. АН СССР 196:448−451.
  35. Т.П., Кудрина Е. С., Свешникова М. А. и Максимова Т.С. (1959). Использование электронной микроскопии спор в систематике актиномицетов. Микробиология 28:623−627.
  36. Т.П., Кудрина Е. С., Максимова Т. С., Свешникова М. А. и Боярская Р.В. (1960а). Электронная микроскопия спор различных видов актиномицетов. Микробиология 29:51−55.
  37. Т.П., Кудрина Е. С., Свешникова М. А. и Максимова Т.С. (19 606). О диагностическом значении различных признаков для классификации представителей рода Actinomyces (Streptomyces). Микробиология 29:455−462.
  38. B.C., Агре Н. С. и Нестеренко О.А. (1979). Тонкое строение вегетативного мицелия и спор Nocardia spp. Изв. АНССС, сер. биол. № 2:300−306.
  39. Стрешинская Г. М, Наумова и И. Б. Панина J1. И. (1979). Химический состав клеточной стенки Steptomyces chrysomalus, образующего антибиотик аурантин. Микробиология 48: 814−819.
  40. , G., М. Goodfellow, and D. Е. Minnikin. (1985). Menaquinone composition in classification of Streptomyces and other sporoactinomycetes. J Gen Microbiol 131:1671−1679.
  41. Al-Tai A. M. and Ruan J. S. (1994). Nocardiopsis halophila sp. nov., a new halophilic actinomycete isolated from soil. Int JSyst Bacteriol 44:474−478.
  42. Altenburger P., Kampfer P., Akimov Y.N., Lubitz W. and Busse H.-J. (1997). Polyamine distribution in actinomycetes with group В peptidoglycan and species of the genera Brevibacterium, Corynebacterium and Tsukamurella. Int J Syst Bacteriol 47: 270−277.
  43. Amann R.I., Lin C., Key R., Montgomery L. and Stahl D.A. (1992) Diversity among fibrobacter isolates: towards a phylogenetic classifcation. Syst Appl Microbiol 15:23−31.
  44. Amann R.I., Ludwig W. and Schleifer K.H. (1995). Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation. Microbiol Rev 59:143−169.
  45. Anderson A. S. and Wellington E. M. H. (2001). The taxonomy of Streptomyces and related genera. Int JSyst Evol Microbiol 51: 797−814.
  46. Anderton, W.J. and S.G. Wilkinson (1980). Evidence for presence of a new class of teichoic acids in the cell wall of bacterium NCTC9742. J Gen Microbiol 118: 343−351.
  47. J. (1972). Teichoic acids in cell walls and membranes of bacteria. Essays Biochem 8: 35−77.
  48. J. (1988). The function of teichoic asids in walls and membranes of bacteria. In: The roots of modern biochemistry, pp. 223−229. Edited by Kleinkauf von Dohren, Jaenicke. Berlin-New-York: Walter de Gruyter and Co.
  49. Baddiley J.(2000). Teichoic acids in bacterial coaggregation. Microbiology 146:1257−1258.
  50. E. (1958). Development in the classification of actinomycetes. Giorn Microbiol 6:1027.
  51. Baldacci E. and Locci R. (1966). A tentative arrangement of the genera in Actinomycetales. Giorn Microbiol 14:131 -145.
  52. Baldacci E. and Locci R. (1970). Micromorphology of Actinomycetales and their genera. In: Actinomycetales Ed: H. Prauser. Jena: Gustav Fischer Verlag.
  53. Becker B., Lechevalier M.P., Gordon R.E. and Lechevalier H.A. (1964). Rapid differentiation between Nocardia and Streptomyces by paper chromatography of whole cell hydrolysates. Appl Microbiol 12: 421−423.
  54. B., Lechevalier M.P., Lechevalier H.A. (1965). Chemical composition of cell wall preparations from strains of various form genera and aerobic actinomycetes. Appl Microbiol 13:236−243.
  55. Behrendt, U., T. Muller, and W. Seyfarth. (1997). The influence of extensification in grassland management on the populations of micro-organisms in the phyllosphere of grasses. Microbiol Res 152:75−85.
  56. Funke et al. 1998) as Microbacterium resistens comb. nov. Int J Syst Evol Microbiol 51: 1267−1276.
  57. Belozersky A.N. and Spirin A.S. (1960). Chemistry of the nucleic acids of microorganisms. Nucleic Acids 3:147−185.
  58. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 1st Ed. (1923). Baltimore: Williams and Wilkins Co.
  59. Bergey’s Manual of determinative bacteriology, 8th ed., (1974). R.E.Buchanan, N.E.Gibbons (eds.). Baltimore: Williams and Wilkins Co.
  60. A.F. (1981). The Anguina-Corynebacteriurn association. In B.M. Zuckerman and R.A. Rohde (eds.) Plant Parasitic Nematodes, vol. Ill, pp. 303−323. New York, Academic Press.
  61. , A.F. (1985). The nature of the adhesion of Corynebacterium rathayi to the cuticle of the infective larva of Anguina agrostis. Int JParasitol 15: 301−308.
  62. Bird, A.F., and B.A. Stynes. (1981). The life cycle of Anguina agrostis: embryogenesis. Int J Parrasitol 11:23−33.
  63. S.G. (1980). DNA reassociation and base composition. In: Microbiological Classification and Identification, p. 11−26. Edited by Goodfellow M. and Board R.G. London: Academic Press.
  64. R.S. (1953). The Brevibacteriaceae fam. nov. of order Eubacteriales. Riasunti delle Communicazionne VI Congresso Internazionale di Microbiologia, Roma 1:13−21.
  65. Brennan N.M., Brown R., Goodfellow M., Ward A.C., Beresford T.P., Vancanneyt M., Cogan T.M. and Fox P.F. (2001). Microbacterium gubbeenense sp. nov., from the surface of a smear-ripened cheese. Int J Syst Evol Microbiol 51: 1969−1976.
  66. Brennan N.M., Ward A.C., Beresford T.P., Fox P.F., Goodfellow M. and Cogan T.M. (2002). Biodiversity of the bacterial flora on the surface of a smear cheese. Appl Environ Microbiol 68:820−830.
  67. Brocq-Rousseau D. (1904). Sur un Streptothrix. References Generale Botanique 16:219−230.
  68. , R.E. (1917). Studies in the nomenclature and classification of the bacteria. II. The primary subdivisions if the Schizomycetes. J Bacteriol 2:155−164.
  69. , R.E. (1918). Studies in the classification and nomenclature of the bacteria. VIII. The subgroups and genera of the Actinomycetales. J Bacteriol 2:403−406.
  70. Buchanan, R. E., and N. E. Gibson (Editors). (1974). Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 8th Ed., Baltimore: The Williams and Wilkins Co.,
  71. Busse H.-J. and Schumann P. (1999). Polyamine profiles within genera of the class Actinobacteria with LL-diaminopimelic acid in the peptidoglycan. Int J Syst Bacteriol 49: 179 184.
  72. Butler W.R. and Guthertz L.S. (2001). Mycolic acid analysis by high-performance liquid chromatography for identification of Mycobacterium species Clin Microbiol Rev 14:704- 726.
  73. W.P., Callan W. P., Huang H., Overman J.R., Shukitawa R., Tora J. (1981). Antibiotic produced by s new microbe, Catenuloplanes japonicus. Pat. USA 697 250.
  74. Carlotti A., Meugnier H., Pommier M.T., Villard J. and Freney J. (1993). Chemotaxonomy and molecular taxonomy of some coryneform clinical isolates. Zentralbl Bakteriol 278:23- 33.
  75. DSMZ-Catalogue of Strains, Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen (2001). German Collection of Microorganisms and Cell Cultures, Braunschweig, Germany.
  76. Carlson, R.R. and A.K. Vidaver. (1982). Taxonomy of Corynebacterium plant pathogens, including a new pathogen of wheat, based on Polyacrylamide gel electrophoresis of cellular proteins. Int J Syst Bacteriol 32: 315−326.
  77. Cavalier-Smith T. (2002). The neomuran origin of archaebacteria, the negibacterial root of the universal tree and bacterial megaclassification. IntJSyst Evol Microbiol 52:7−76.
  78. Chance B. and Williams G.R. (1955). Respiratory enzymes in oxidative phosphorylation. J Biol Chm 217:383−438.
  79. Chatelain, R. and L. Second. (1966). Taxonomie numerique de quelques Brevibacterium. Ann Inst Pasteur (Paris)., vol. 111, pp. 630−644.
  80. , P. R. (1995). Endogenous toxins and mycotoxins in forage grasses and their effects on livestock. JAnim Sei 73:909−918.
  81. , E. H. (1948). Appendix to suborder Eubacteriineae, pp. 692−693 In: R. S. Breeds, E. G. D. Murray and A. P. Hitchens (ed.), Bergey’s mannual of determinative bacteriology, 6th edn. Baltimore: Williams and Wilkins.
  82. F. (1875). Untersuchungen uber Bacterien. II. Beitr Biol Pflanz 1:186−188.
  83. , M.D. (1983). Cell wall peptidoglycan and lipid composition of the phytopathogen Corynebacterium rathayi (Smith). Syst Appl Microbiol 4: 193−195.
  84. M.D. (1985). Isoprenoid quinone analisis in bacterial classification and identification. Chemical methods in bacterial systematics 23: 267−287.
  85. M.D. (1987). Transfer of Brevibacterium ammoniagenes (Cooke and Keith) to the genus Corynebacterium as Corynebacterium ammoniagenes comb. nov. Int J Syst Bacteriol 37: 442−443.
  86. M.D. (1992). Genus Brevibacterium. In: The Prokaryotes. Vol. 2, pp. 1351−1354. Edited by A. Balows, H.G. Truper, M. Dworkin, W Harder, K.-H. Schleifer. New York: Springer Verlag.
  87. Collins, M.D. and Bradbury. J. F. (1986). Plant pathogenic species of Corynebacterium, pp. 1276−1284. In P.H.A. Sneath, N.S. Mair, M.E. Sharpe, and J.G. Holt (eds.), Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, vol.2, Baltimore: Williams and Wilkins.
  88. Collins M.D. and Kroppenstedt R.M. (1983). Lipid composition as a guide to the cclassification of some bacteria containing A4a type peptidoglycan (Schiefer and Kandier). System Appl Microbiol 4: 95−104.
  89. Collins M. D. and Jones D. (1981). Distribution of isoprenoid quinone structural types in bacteria and their taxonomic implications. Microbiol Rev 45: 316−354.
  90. Collins M. D. and Jones D. (1982). Taxonomic studies on Corynebacterium beticola (Abdou). JAppl Bacteriol. 52: 229−233.
  91. Collins M. D. and Kroppenstedt R.M. (1987). Structures of the partially saturated menaquinones of Glycomyces rutgersensis. FEMS Microbiol Lett 44:215−219.
  92. Collins M.D., Pirouz T., Goodfellow M. and Minnikin D. (1977). Distribution of menaquinones in actinomycetes and corynebacteria. J Gen Microbiol 100: 221−230.
  93. Collins M. D., Goodfellow M. and Minnikin D. E. (1980a). Fatty acid, isoprenoid quinone and polar lipid composition in the classification of Curtobacterium and related taxa J Gen Microbiol 118:29−37.
  94. Collins M.D., Jones D., Keddie R.M. and Sneath P.H.A. (1980b). Reclassification of Chromobacterium iodinum (Davis) in a redefined genus Brevibacterium (Breed) as Brevibacterium iodinum nom. fev., comb. nov. J Gen Microbiol 120:1−10.
  95. Collins, M.D., D. Jones and R.M. Kroppenstedt. (1981). Reclassification of Corynebacterium ilicis (Mandel, Guda and Litsky) in the genus Arthrobacter, as Arthrobacter ilicis comb. nov. Zentralbl Bakteriol Mikrobiol Hyg Abt I Orig C 2: 318−323.
  96. Collins M.D., Cockcroft S. and Wallbanks S. (1994). Phylogenetic analysis of a new LL-diaminopimelic acid-containing corineform bacterium from herbage, Nocardioides plantarum sp. nov. Int JSyst Bacteriol 44: 523−526.
  97. Collins M.D., Jones D., Keddie R.M., Kroppenstedt R.M. and Schleifer K.H. (1983b). Classification of some coryneform bacteria in a new genus Aureobacterium. Syst Appl Microbiol 4: 236−252.
  98. Collins M.D., Keddie R.M. and Kroppenstedt R.M. (1983 c). Lipid composition of Arthrobacter simplix, Arthrobacter tumescens and possibly related taxa. System Appl Microbiol 4: 18−26.
  99. Collins M.D., Farrow J.A.E., Goodfellow M and Minikin D.E. (1983d). Brevibacterium casei sp. nov. and Brevibacterium epidermidis sp. nov. Syst Appl Microbiol 4:388−395.
  100. M. D., Faulkner M., Keddie R.M. (1984). Menaquinone composition of some spore forming actinomycetes. System Appl Microbiol 5:20−29.
  101. Collins M. D., Kroppenstedt R. M., Tamaoka J., Komagata K. and Kinoshita T. (1988). Structures of the tetra hydrogenated menaquinones from Actinomadura angiospora, Faenia rectivirgula, and Saccharothrix australiensis. Curr Microbiol 17:275−279.
  102. Collins M.D., Dorschet M. and Stackebrandt E. (1989). Transfer of Pimelobacter tumescens to Terrabacter gen. nov. as Terrabacter tumescens comb. nov. and Pimelobacter jensenii to Nocardioides jensenii comb. nov. Int J Syst Bacteriol 39: 1−6.
  103. Collins M.D., Falsen E., Akervall E., Sjoden B. and Alvarez A. (1998). Corynebacterium kroppenstedtii sp. nov., a novel corynebacterium that does not contain mycolic acids. Int J Syst Bacteriol 48:1449−1454.
  104. Colquhoun J.A., Zulu J., Goodfellow M. Horikoshi K., Ward A.C. and Bull A.T. (2000). Rapid characterization of deep-sea actinomycetes for biotechnology screening programmes. Antonie vanLeeuwenhoek 11:359−367.
  105. Corsaro M.M., Evidente A., Lanzeta R., Lavermicocca P., Parrilli M. and Ummarino S. (2002). 5,7-Diamino-5,7,9-trideoxynon-2-ulosonic acid: a novel sugar from a phytopathogenic Pseudomonas lipopolysaccaride. Carbohydr Res, 337:955−959.
  106. J. N. (1955). A new genus and family of the Actinomycetales, with a revision of the genus Actinoplanes. JElisha Mitchell Sci Soc 71: 148−155.
  107. J. N. (1963). Some new genera and species of the Actinoplanaceae. J. Elisha Mitchell Sci. Soc. 79: 53−70.
  108. T. (1968). Thermophilic actinomycetes. J Appl Bact 31:36−53.
  109. Cross T., Lechevalier M.P. and Lechevalier H. (1963). A new genus of the Actinomycetales: Microellobosporia. J Gen Microbiol 31:421−429.
  110. Cross T. and Alderson G. (1988). What weight morphology in current actinomycete taxonomy? Biology of Actinomycetes'88. Y. Okami, T. Beppu, H. Ogawara (eds.), proceed, of 7th Int. Symp. On biology of Actinomycetes. p. 216−220.
  111. Cross T., and M. Goodfellow. (1973). Taxonomy and classification of actinomycetes, pp. 11 112. In Actinomycetales: Characteristics and Practical Importance, Edited by G. Sykes and F. A. Skinner. London: Acdemic Press.
  112. Crosti P., Malerba M. and Bianchetti R. (2001). Tunicamycin and brefeldin A induce in plant cells a programmed cell death showing apoptotic features. Protoplasma, 216: 31−38.
  113. Cui X. L., Mao P. H., Zeng M., Li W. J., Zhang L. P., Xu L. H., and Jiang C. L. (2001). Streptimonospora salina gen. nov., sp. nov., a new member of the family Nocardiopsaceae. lnt J Syst Evol Microbiol 51:3 5 7−3 63.
  114. Cummins C.S. and Harris H. (1958). Studies on the cell wall composition and taxonomy of Actinomycetales and related groups, J Gen Microbiol 18:173−189.
  115. C.S. (1962). Chemical composition and antigenic structure of cell walls of Corynebacterium, Mycobacterium, Nocardia, Actinomyces and Arthrobacter. J Gen Microbiol 28:35−50.
  116. Cummins C. S., Lelliott R. A. and Rogosa M. (1974). Genus Corynebacterium, pp. 602−617. In: R. E. Buchanan and N.E. Bibbons (ed.), Bergey’s mannual determinative bacteriology, 8th edn. Baltimore:. Williams and Wilkins.
  117. Cziharz B., Schleifer K.H. and Kandler O. (1971). A new type of peptide subunit in the murein oiArthrobacter strain J39. Biochemistry 10: 3574−3578.
  118. Davis M. J. and Augustin B. J. (1984). Occurrence in Florida of the bacterium that causes Bermuda grass stunting disease. Plant Disease 68:1095−1097.
  119. Davis M. J., Gillaspie A. Ci. Jr., Harris R. W., and Lawson R. H. (1980). Ratoon stunting disease of sugarcane: isolation of the causal bacterium. Science 210:1365−1367.
  120. Davison A.L. and Baddiley J. (1963). The distribution of teichoic acids in staphylococci. J Gen Microbiol 32:271−276.
  121. D.T. (1966). A membrane filter technique for detection of complementary DNA. Bichem Biophys Res Commun 23:641−646.
  122. Dias, F. F., and J. V. Bhat. (1962). A new levan producing bacterium, Corynebacterium laevaniformans. Antonie van Leeuwenhoek 28: 63−72.
  123. Dias, F. F., M. H. Bilimoria, and J. V. Bhat (1962). Corynebacterium barkeri nov. spec., a pectinolytic bacterium exhibiting a biotin-folic acid inter-relationship. J Ind Inst Sci, 44: 5967.
  124. Dolak L. A., Castle T. M. and Laborde A. L. (1980). 3-Trehalosamine, a new disaccharide antibiotic. JAntibiot (Tokyo) 33:690−694.
  125. Dolak L. A., T. M. Castle, and L. A. Laborde. (1981). Biologically pure culture of Nocardiopsis trehalosei sp. nov. US Pat. 4,306,028.
  126. L.A., Agre N.S., Kalakoutskii L.V., Krassilnikov N.A. (1968). Fine structure of spores in a thermophilic actinomycete, Micromonospora vulgaris. J Gen Appl Microbiol 3:295−303.
  127. L.A., Agre N.S., Kalakoutskii L.V., Krassilnikov N.A. (1969). Fine structure of sporulating huphae and spores in a thermophilic actinomycete, Micropolyspora rectivirgula. J Microscopie 8:845−854.
  128. W.J. (1942). On the generic name of the gram-positive bacterial plant pathogens. Trans Brit Mycol Soc 25:311 -314.
  129. Duxbury T., Gray T.R.G. (1977a). Structure and chemistry of walls of of cocci and cistits of Arthrobacter globiformis. ultural stydy of the growth of cystites, cocci and rods. J Gen Microbiol 103: 91−99.
  130. Duxbury T., Gray T.R.G. (1977b). A microcultural stydy of the growth of cystites, cocci and rods. J Gen Microbiol 103: 101−106.
  131. Elbeltagy A., Nishioka K., Suzuko H., Sato T., Sato Y., Morisaki H., Mistui H. and Minamisawa K. (2000). Isolation and characterization of endophytic bacteria from wild and traditionaly cultivated rice varieties. Soil Sci. Plant Nutr. 46:617−629.
  132. Endl J., Seidl P.H., Fiedler F. and Schleifer K.H. (1983). Chemical composition and structure of cell wall teichoic acids of staphylococci. Arch Microbiol 135: 215- 223.
  133. Endl J., Seidl P.H., Fiedler F. and Schleifer K.H. (1984). Determination of cell wall teichoic acid structure of staphylococci by rapid chemical and serological screening methods. Arch Microbiol. 137:272−80.
  134. G.L. (1968). Effetivita e misura della transmis-sione di Xanthomonas sesicatoiiae di Corynebacterium michiganense attraverso il seme del pomodora. Ind Conserve (Paoma) 43:15−22
  135. J.P. (2003). List of. bacterial names with standing in nomenclature. http://www.bacterio.cict.fr/
  136. Fiedler F., Schaffler M.J. and Stackebrandt E. (1981). Biochemical and nucleic acid hybridisation studies on Brevibacterium linens and related strains. Arch Microbiol 129: 85−93.
  137. Falcao de Morias J.O., Chaves Batista A. and Massa D.M.G. (1966). Elytrosporangium: a new genus of the Actinomycetaceae. Mycol Appl 30: 161−171.
  138. Fiedler F. and Bude A. (1989). Occurrence and chemistry of cell wall teichoic acids in the genus Brevibacterium. J Gen Microbiol 135: 2837−2848.
  139. Fischer A., Kroppenstedt R. M., and Stackebrandt E. (1983). Molecular-genetic and chemotaxonomic studies on Actinomadura and Nocardiopsis. J Gen Microbiol 129:34 333 446.
  140. H. (1974). Examination of Brevibacterium linens by electrophoretic zymogram technique. J Gen Microbiol 80: 197−207.
  141. Frankland, G. C., and P. F. Frankland. (1889). Ueber einige typische Mikroorganismen im Wasser und im Boden. Zerit Bakt Parasit Inf Med Mikrobiol Immunol 6:373−400.
  142. Funke G., Falsen E, and Barreau C. (1995). Primary identification of Microbacterium spp. encountered in clinical specimens as CDC coryneform group A-4 and A-5 bacteria. J Clin Microbiol 33:188−192.
  143. Funke, G., Graevenitz A. von, Clarridge J.E. Ill and Bernard K.A. (1997). Clinical microbiology of coryneform bacteria. Clin Microbiol Rev 10:125−159.
  144. Funke G., Lawson P.A., Nolte F.S., Weiss N. and Collins M.D. (1998). Aureobacterium resistens sp. nov., exhibiting vancomycin resistance and teicoplanin susceptibility. FEMS Microbiol Letter 158: 89−93.
  145. Frankland, G. C., and P. F. Frankland. (1889). Ueber einige typische Mikroorganismen im Wasser und im Boden. Zent Bakt Parasit Inf Med Mikrobiol Immunol 6:373−400.
  146. Glauert A.M. and Hopwood D.A. (1961). The fine structure of Streptomyces violaceoruber (S. coelicolor) III. The walls of the mycelium and spores. J Biophys Biochem Cytol 10:505 516.
  147. Gledhill W.E. and Casida L.E. (1969). Predominate catalase-negative soil bacteria. Ill Agromyces, gen.nov., microorganisms intermediary to Actinomyces and Nocardia. Appl Microbiol 18: 340−349.
  148. R. (1994). Characterisation and quantification of microbial systems using pyrolysis mass spectrometry: introducing neuralnetwork to analytical pyrolysis. Microbiol Europe 2:1622.
  149. M. (1989). The Actinomycetes I. Suprageneric classification of actinomycetes. In: Bergey’s manual of systematic bacteriology, vol. 4, p. 2333−2339. Edited by S.T.Williams, M. E. Sharpe and J. G. Holt. Baltimore: Williams and Wilkins.
  150. Goodfellow M. and Alderson G. (1977). The actinomycete genus Rhodococcus: a home for the 'rhodochrous' complex. J Gen Microbiol 100: 99−122.
  151. Goodfellow M. and Minnikin D.E. (1985). Introduction to chemosystematics. In: Chemical Methods in Bacterial Systematics. pp. 1−15. Edited by M. Goodfellow and D.E. Minnikin. London: Academic Press.
  152. Goodfellow M. and Cross T. (1984). The biology of the actinomycetes. In: The Biology of the Actinomyces, pp. 7−164. Edited by M. Goodfellow, M. Mordarski, S.T. Williams. London: Academic Press.
  153. Goodfellow M. and O’Donnell A.G. (1994). Roots of bacterial systematics. In: Handbook of new bacterial systematics. pp. 3−56. Edited by Goodfellow M. and O’Donnel A.G. London: Academic Press.
  154. Goodfellow M., Williams S.T. and Alderson G. (1986). Transfer of Chainia species to the genus Streptomyces with emended description of species. SystAppl Microbiol 8:55−60.
  155. Goodfellow M., Williams S.T. and Mordarski M. (1984). Introduction to and importance of actinomycetes. In: The biology of actinomycetes. pp. 1−6. Edited by Goodfellow, M., Mordarski M. and Williams S.T., London: Academic Press.
  156. Grimont P.A.D. (1988). Use of DNA Reassociation in bacterial classification. Can J Microbiol 34:541−546.
  157. Gross D.C. and Vidaver A.K. (1979). Bacteriocins of phytopathogenic Corynebacteriurn species. Can. J. Microbiol. 25:367−374.
  158. Groth I., Schuman P., Weiss N., Martin K. and Rainey F. (1996). Agrococcus jenensis gen. nov., sp. nov., a new genus of actinomycetes with diaminobutyric acid in the cell wall. Int J Syst Bacteriol 46: 234−239.
  159. Grund E. and Kroppenstedt R. M. (1990). Chemotaxonomy and numerical taxonomy of the genus Nocardiopsis Meyer 1976. Int J Syst Bad 40:5−11.
  160. Gruner E., Pfyffer G.E. and A. von Graevenitz (1993). Characterization of Brevibacterium spp. from clinical specimens. J Clin Microbiol 31:1408−1412.
  161. C. O. (1878). Actinomyces bovis, ein neuer Schimmel in den Geweben des Rundes. Deut Ztscht Thier med 5:125−140.
  162. Hasegawa T., Lechevalier M.P. and Lechevalier H.A. (1979). Phospholipid composition of motile actinomycetes. J Gen Appl Microbiol 29:209−213.
  163. Hatano K. and Nishii T. (2001). Taxonomic studies on Streptomyces violaceoruber group and related species based on gyrB sequences IFO Res Commun 20:83−91.
  164. A. (1957). Beitrage zur Morphologie und Systematik der thermophilen Actinomyceten. Arch Mikrobiol 26:373−414.
  165. Hiraishi A., Shin Y.K., Ueda Y. and Sugiyama J. (1994). Automated sequencing of PCR-amplified 16S rRNA on 'Hydronic' gels. J Microbiol Methods 19: 145−154.
  166. Hiraishi A. and Komagata K (1989). Effects of the growth medium composition on menaquinone homolog formation in Micrococcus luteus. J Gen Appl Microbiol 53:311−318.
  167. Hoare D.S. and Work E. (1956). Distribution and metabolism on the stereoisomers of diaminopimelic acid in certain bacteria. J Gen Microb 15:250−257.
  168. Hoare D.S. and Work E. (1957). The stereoisomers of diaminopimelic acid. 2. Their distribution in the bacterial order Actinomycerales and in certain Enterobacteriales. Biochem J 65:441−447.
  169. Hugenholtz P., Goebel B.M. and Pace N.R. (1998). Impact of culture-independent studies on the emerging phylogenetic view of bacterial diversity. JBacteriol 180:4765−4774.
  170. C.M. (1917). A bacterial disease of wheat in Punjab. Mem Dep Agric, India Bacteriol Ser 1:169−175.
  171. ICB database The Identification and Classification of Bacteria database at the Marine Biotechnology Institute, Japan, http://seasquirt.mbio.co.ip/icb/index.php
  172. Inoue Y. and Inoue S. (1999). Diversity in sialic and polysialic acid residues and related enzymes. Pure Appl. Chem. 71:789−800.
  173. Jacobs J.L. and Sundin G. W. (2001). Effect of solar UV-B radiation on a phyllosphere bacterial community. Appl Env Microbiol 67:5488−5496.
  174. K., Marialigeti K., Hauck M., Barabas G. (1983). Promicromonospora enterophila sp. nov., anew species ofmonospore catinomycetes. Int JSystBacteriol, 33: 525−531.
  175. H.L. (1934). Studies on saprophytic mycobacteria and corynebacteria. Proc Linn Soc NSW 59: 19−61.
  176. J.L. (1989). Nucleic acids in bacterial classification. In Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, vol. 4, pp. 8−11. Edited by P.H. Sneath, N.S. Mair, M.E. Sharp and J.G. Holt. Baltimore: Williams and Wilkins.
  177. , D. 1975. A numerical taxonomic study of coryneform and related bacteria. J Gen Microbiol 87: 52−96.
  178. Jones D. and Keddie R. (1986). The genus Brevibacterium, pp. 1301−1313. In Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, vol. 2, Edited by P.H. Sneath, N.S. Mair, M.E. Sharp and J.G. Holt. Baltimore: Williams and Wilkins.
  179. Jukes T.H. and Cantor C.R. (1969). Evolution of protein molecules, pp. 21−132. In Mammalian Protein Metabolism. Edited by Munro H.N. New York: Academic Press.
  180. P. (1994) Differentiation of Brevibacterium species by electrophoretic protein patterns. System Appl Microbiol 17:533−535.
  181. Kampfer P. and Kroppenstedt M. (1996). Numerical analysis of fatty acid patterns of coryneform bacteria and related taxa. Can J Microbiol 42: 989−1005.
  182. Kasai H., Tamura T. and Harayama S. (2000). Intrageneric relationships among Micromonospora species deduced from gyrB-based phylogeny and DNA relatedness. Int J Syst Evol Microbiol 50:127−134.
  183. Keddie R.M. and Cure G.L. (1977). Cell wall composition and distribution of free mycolic acids in named strains of coryneform bacteria and in isolates from various natural sources. J Appl Bacterial 42:229−252.
  184. Kim J. and Goodfellow M. (1999). Reclassification of Amycolatopsis rugosa Lechevalier et al. 1986 as Prauserella rugosa gen. nov., comb. nov. Int J Syst Bacteriol 49:507−512.
  185. Kimura M. and Ohta T. (1972). On the stochastic model for estimation of mutation distance between homologous proteins. JMol Evol 2: 87−90.
  186. King R. R., Lawrence C. H. and Clark M. C. (1991). Correlation of phytotoxin production with pathogenicity of Streptomyces scabies isolates from scab infected potato tubers. Am. Potato J 68:675−680.
  187. Kobayashi M., Mitsuishi Y. and Matsuda K. (1978). Pronounced hydrolysis of highly branched dextrans with a new type of dextranase. Biochem Biophys Res Commun 80:306−312.
  188. Komagata K. and Iizuka H. (1964). New species of Brevibacterium isolated from rice. JAgric Chem Soc Jpn 38:496−502.
  189. Korzybski T., Kowszyk-Gindifer Z. and Kurylowicz W. (1978). Antibiotics: origin, nature, and properties, vol. 1, pp. 773−774. Washington: Am. Soc. Microbiol.
  190. Kotani, S., T. Kato, T. Matsubara, M. Sakagoshi, and Y. Hirachi. (1972). Inducible enzyme degrading serologically active polysaccharides from mycobacterial and corynebacterial cells. Biken J15: l-15.
  191. E. L. (1991). Wheat and grass nematodes: Anguina, Subanguina, and related genera, pp.721−760. In: W. R. Nickle (ed.), Manual of agricultural nematology. New York: Marcel Dekker, Inc.
  192. Kroppenstedt R.M. and Kutzner H.J. (1981). Methods of the study of Streptomyces. Isolation, characterization, chemotaxonomy. In: Training course on runhing and management of culture collections. Brno, Czechoslovakia, B.5, pp. 1−40.
  193. R. M. (1985). Fatty acid and menaquinone analysis of actinomycetes and related organisms. Sos Appl Bacteriol Tech 20:173−197.
  194. Kroppenstedt R.M., Stackebrandt E. and Goodfellow M. (1990). Taxonomic revision of the actinomycete genera Actinomadura and Microtetraspora. Syst Appl Microbiol 13:148−160.
  195. Kusumoto K., Sakiyama M., Sakamoto J., Noguchi S. and Sone N. (2000). Menaquinol oxidase activity and primary structure of cytochrome bd from the amino-acid ermenting bacterium Corynebacterium glutamicum. Arch Microbiol 173:390- 397.
  196. D.P. (1987). Actinomycete taxonomy: generic characterization. Developments in Industrial Microbiology 28:115−121.
  197. D.P. (1992). DNA-DNA hybridization in the systematics of Streptomyces. Gene 115:249−253.
  198. D.P. (1993). DNA relatedness among strains of the Streptomyces lavendulae phenotypic cluster group. Int J System Bacteriol, 43:822−825.
  199. D.P. (1996). DNA relatedness among verticil-forming Streptomyces species (formerly Streptoverticillium species). Int J Syst Bacteriol 46:699−703.
  200. D.P. (1998). DNA relatedness among the Streptomyces fulvissimus and Streptomyces griseoviridis phenotypic cluster groups. Int J Syst Bacteriol 48:829−832.
  201. D.P. (2001). Crossiella gen. nov., a new genus related to Streptoalloteichus. Int J Syst Evol Microbiol 51:1575−1579.
  202. Labeda D. P. and R. M. Kroppenstedt. (2000). Phylogenetic analysis of Saccharothrix and related taxa: proposal for Actinosynnemataceae fam. nov. Int J Syst Ecol Microbiol 50: 331 336.
  203. Labeda D.P. and Lyons A. J. (1991a). Deoxyribonucleic acid relatedness among species of the «Streptomyces cyaneus» cluster. Syst. Appl. Microbiol. 14:158−164.
  204. Labeda D.P. and Lyons A. J. (1991b). The Streptomyces violaceusniger cluster is heterogeneous in DNA relatedness among strains: emendation of the descriptions of S. violaceusniger and S. hygroscopicus. Int J System Bacteriol 41:398−401.
  205. Labeda D. P, Testa R. T., Lechevalier M. P. and Lechevalier H. A. (1984). Saccharothrix: A new genus of the Actinomycetales related to Nocardiopsis. Int J Syst Bacteriol 34:426−431.
  206. Labeda D. R, Testa R. T., Lechevalier M. P. and Lechevalier H. A. (1985). Glycomyces, a new genus of the Actinomycetales. Int J Syst Bacteriol 35:417−421.
  207. Labeda D.P., Hatano K., Kroppenstedt R. M and Tamura T. (2001). Revival of the genus Lentzea and proposal for Lechevalieria gen. nov. Int J Syst Evol Microbiol 51:1045−1050.
  208. Leblond-Bourget N., Philippe H. and Decaris B. (1996). 16S rRNA and 16S to 23S internal transcribed spacer sequence analyses reveal inter- and intraspecific Bifidobacterium phylogeny. Int J Syst Bacteriol 46: 102−111.
  209. M.P. (1968). Identification of aerobic actinomycetes of clinical importance. J Lab Clin Med 71:934−944.
  210. H. (1989) A practical giude to generic identification of actinomycetes. In: Bergey’s manual of systematic bacteriology, vol. 4, p. 2344−47. Edited by S.T.Williams, M. E. Sharpe and J. G. Holt. Baltimore: Williams and Wilkins.
  211. Lechevalier H.A. and Lechevalier M.P. (1970a). A critical evaluation of the genera of aerobic actinomyeetes, p.393−405. In: H. Prauser (ed.), The Actinomycetales. Jena: Gustav Fischer Verlag.
  212. Lechevalier M. P. and Lechevalier H. A. (19 706). Composition of whole-cell hydrolysates as a criterion in the classification of aerobic actinomycetes, p. 311 -316. In: H. Prauser (ed.), The Actinomycetales. Jena: VEB-Fischer.
  213. Lechevalier M. P. and Lechevalier H. A. (1970c). Chemical composition as a criterion in the classification of aerobic actinomycetes. Int J Syst Bacteriol 20:435−443.
  214. Lechevalier M.P., Lechevalier H.A. and Holbert P.E. (1968). Sporichtya, un nouveaugenre de Streptomycetaceae. Ann Inst Pasteur 114:277−286.
  215. Lechevalier M.P., DeBievre C. and Lechevalier H.A. (1977). Chemotaxonomy of aerobic actinomycetes: phospholipid composition. Biochem Ecol Syst 5: 249−260.
  216. Lechevalier H.A., Solotorovsky M. and McDurmont C.I. (1961). A new genus of the Actinomycetales: Micropolyspora g.n. J Gen Microbiol 86:11−18.
  217. Lechevalier M.P., Stern A.E. and Lechevalier H.A. (1981). Phospholipids in the taxonomy of actinomycetes, In: Actinomycetes, pp. 111−116.
  218. Lechevalier M. P, Prauser H, Labeda D. P. and Ruan J. S. (1986). Two new genera of nocardioform actinomycetes: Amycolata gen. nov. and Amycolatopsis gen. nov. Int J Syst Bacteriol 36:29−37.
  219. Lederer E., Adam A., Ciorbaru R, Petit J.F. and Wietzerbin J. (1975). Cell walls of mycobacteria and related organisms- chemistry and immunostimulant properties. Molec Cell Biochem 7: 87- 104.
  220. Lednicka D., Mergaert J., Cnockaert M.C. and Swings J. (2000). Isolation and identification of cellulolytic bacteria involved in the degradation of natural cellulosic fibres. Syst Appl Microbiol 23:292−299.
  221. Lee, I.-M., Bartoszyk I. M. Gundersen-Rindal D. E. and Davis R. E. (1997a). Phylogeny and classification of bacteria in the genera Clavibacter and Rathayibacter on the basis of 16S rRNA gene sequence analyses. Appl Environ Microbiol 63:2631−2636.
  222. E. (1962). The bacterial flora of distilled and stored water. III. New species of genera Corynebacterium, Flavobacterium, Spirillum, and Pseudomonas. Int Bull Bacteriol Nomencl Taxon 12:161−170.
  223. Lehmann K. B. and Neumann R. (1896). Atlas und Grundriss der Bacteriologie. Munchen.
  224. Li, W.-J., Zhang, L.-P., Xu, P., Cui, X.-L., Xu, L.-H., Zhang, Z., Schumann, P., Stackebrandt E., and Jiang, C.-L. (2003). Agromyces aurantiacus sp. nov., isolated from a Chinese primeval forest. Int J Syst Evol Microbiol 53:303−307.
  225. Liegard H. and Landrieu M. (1911). Un cas de mycose conjonctivale. Ann Ocul 146:418−426.
  226. A. G. (1958). Two new species of Arthrobacter requiring respectively vitamin B12 and the terregens factor. Arch Mikrobiol 31:163−170.
  227. G.M. (1974). Addenum to Micromonosporaceae. In: R. E. Buchanan and N.E. Bibbons (ed.), pp. 685−868. Bergey’s Mannual of determinative bacteriology, 8th edn. Baltimore: Williams and Wilkins.
  228. Lupski J.R. and Weinstock G.M. (1992). Short, interspersed repetitive DNA sequences in prokaryotic genomes J Bacteriol. 174:4525−4529.
  229. , O. 1959. The occurrence of species of the genus Brevibacterium in insects. J Insect Pathol 1:34−42.
  230. J. (1994). Whole-organism fingerprinting. In: Handbook of new bacterial systematics. pp. 383−427. Edited by Goodfellow M. and O’Donnel A.G. London: Academic Press.
  231. Marmur J. and Doty P. (1962). Determination of the dase composition of deoxyribonucleic acid from its thermal denaturation temperature. J Mol Biol 5:109−118.
  232. Matsumae A.M., Ohtani M., Takeshima H., and Hata T. (1968). A new genus of the Actinomycetales: Kitasatoa gen. nov. J Antibiot (Tokyo) Ser A21:616−625.
  233. Matsuyama H., Kawasaki K., Yumoto I. and Shida O. (1999). Microbacterium kitamiense sp. nov., a new polysaccharide-producing bacterium isolated from the wastewater of a sugar-factory. Int J Syst Bacteriol 49:1353−1357.
  234. McBride M.E., Ellner K.M., Black H.S., Clarridge J.E. and Wolf J.E. (1993). A new Brevibacterium sp. isolated from infected genital hair of patients with white piedra. J Med Microbiol 39: 255−261.
  235. McCulloch L. (1925). Aplanobacter insidiosum n.sp. the cause of an alfalfa disease. Phytopathology 15: 496−497.
  236. J. (1976). Nocardiopsis, a new genus of the order Actinomycetales. Int J Syst Bacteriol 26:487−493.
  237. J. (1979). New species of the genus Actinomadura. Z Allgem Mikrobiol, 1979, 19:3744.
  238. Miller E.S., Woese C.R. and Brenner S. (1991). Description of the erythromycin-producing bacterium Arthrobacter sp. strain NRRL B-3381 as Aeromicrobium erythreum gen. nov., sp. nov. Int J Syst Bacteriol 41:363−368.
  239. Minnikin D.E., Alshamaony L. and Goodfellow M. (1975). Differentiation of Mycobacterium, Nocardia and related taxa by thin-layer chromatographic analysis of whole-cell methanolysates. J Gen Microbiol 88: 200−204.
  240. Miyajima K., Tanaka F., Takeuchi T. and Kuninaga S. (1998) Streptomyces turgidiscabies sp. nov. Int J Syst Bacteriol, 48: 495−502.
  241. Muhlenhoff, M., Eckhardt, M. & Gerardy-Schahn, R. (1998). Polysialic acid: three-dimensional structure, biosynthesis and function. Curr Opin Struct Biol, 8:558−564.
  242. Murray, R.G.E. et. al. (1990). Report of the Ad Hoc Commitee on Approches to Taxonomy within the Proteobacteria. Int JSyst Bacteriol 40:213−215.
  243. Murray R.G. and Stackebrandt, E. (1995). Taxonomic note: implementation of the provisional status Candidatus for incompletely described procaryotes. Int J Syst Bacteriol 45:186−187.
  244. Nakayama K., Kato A., Ueno Y., Minoda Y. and Komagata K. (1980). Studies on the metabolism of trichothecene mycotoxins. II. Metabolism of T-2 toxin with the soil bacteria. Proc Jpn Assoc Mycotoxicol 12:30−32.
  245. Nakazawa K. and Suzuki S. (1975). Purification of keratan sulfate-endogalactosidase and its action on keratan sulfates of different origin. J Biol Chem 250:912−917.
  246. Nakazawa K., Suzuki N. and Suzuki K. (1975). Sequential degradation of keratan sulfate by bacterial enzymes and purification of a sulfatase in the enzymatic system. J Biol Chem 250: 905−911.
  247. , I. B. (1988). The teichoic acids of actinomycetes. Microbiol Sci 5:275−279.
  248. NCBI National Centre for Biotechnology Information — http://www.ncbi.nlm.nih.gov/
  249. H. (1974). Key for classification and identification of 458 specials of the Streptomycetes included in the I.S.P. J Ferment Technol 52:78−92.
  250. Nonomura H. and Ohara Y. (1971). Distribution of actinomycetes in soil. X. New genus and species ofmonosporic actinomycetes. J Fernet Technol, 49:895−903.
  251. Oerskov J.(l923). Investigation into the morphology of the ray fungi. Copenhagen -Denmark: Levin and Munksgaard, p. 134−136.
  252. Olive D.M. and Bean P. (1999). Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms. J Clin Microbiol 37:1661- 1669.
  253. V. L. (1923). Aroma-producing microorganisms. JBacteriol 8:393−419.
  254. Omura S., Takahashi Y., IwaiY. and Tanaka H. (1982). Kitasatosporia, a new genus of the order Actinomycetales. JAntibiot 35:1013−1019.
  255. Omura S., Takahashi Y., IwaiY. and Tanaka H.(1983). Kitasatosporia, a new genus of the order Actinomycetales. VALIDATION LISTN0 11. Int JSyst Bacteriol, 33:672−674.
  256. Orla-Jensen S. (1919). The lactic acid bacteria. Copenhagen: Host and Son.
  257. Ozerskaya S. M. and A. N. Vasilenko. (1992). Package for cluster analysis on an IBM PC omputer. Binary, 4:33−34.
  258. Pagani H. and Parenti F. (1978). Kineosporia, a new genus of the order Actinomycetales.Int J Syst Bacteriol, 28:401−406.
  259. PanY.-B., Grisham M.P., Burner D.M., Jr. Damann K.E. and Wei Q. (1998). A polymerase chain reaction protocol for the detection of Clavibacter xyli subsp. xyli, the causal bacterium of sugarcane ratoon stunting disease. Plant Dis 82:285−290.
  260. Park Y.H., Yoon J.H. and Lee S.T. (1998). Application of multiplex PCR using species-specific primers within the 16S rRNA gene for rapid identification of Nocardioides strains. Int J Syst Bacteriol 48: 895−900.
  261. Pascual C. and Collins M.D. (1999). Brevibacterium avium sp. nov., isolated from poultry. Int J Syst Bacteriol 49:1527−1530.
  262. Pascual C., Collins M.D., Funke G. and Pitcher D.G. (1996). Phenotypic and genotypic characterization of two Brevibacterium strains from the human ear: description of Brevibacterium otitidis sp. nov. Med Microbiol Lett 5:113−123.
  263. Poole R.K. and Cook G.M. (2000). Redundacy of aerobic respiratory chains in bacteria? Routes, reasons and regulation. Advances Microbial Physiology 43:165−224.
  264. Potekhina N.Y., Tul’skaya E.M., Naumova I.B., Shashkov A.S., and Evtushenko L.I. (1993). Erythritolteichoic acid in the cell wall of Glycomyces tenuis YKM Ac-1250. Eur JBiochem 218:371−375.
  265. Prauser H., Lechevalier M.P. and Lechevalier H.A. (1970). Description of Oerskovia gen. n. to harbor Orskov’s motile Nocardia. Appl Microbiol, 19: 534−545.
  266. H. (1976). Nocardioides, a new genus of the order Actinomycetales. Int J Syst Bacteriol 26: 58−65.
  267. H. (1984). Nocardioides luteus spec. now. Z Allg Microbiol. 24: 647−648.
  268. H. (1989). Genus Nocardioides Prauser 1976, 61AL. In: Bergey’s Manuil of Systematic bacteriology, vol. 4, pp. 2371−2375. Edited by S.T. Williams, M.E. Sharpe and J.G. Holt. Baltimore: Williams and Wilkins.
  269. Prauser H., Schumann P., Rainey F.A., Kroppenstedt R.M. and Stackebrandt E. (1997). Terracoccus luteus gen. nov., sp. nov., an LL-diaminopimelic acid-containing coccoid actinomycete from soil. Int J Syst Bacteriol 47:1218−24.
  270. Preobrazhenskaya T.P., Sveshnikova M.A. and Terekhova L.P. (1977). Key for identification of the species of the genus Actinomadura. Biology of actinomycetes and related organisms 12:30−38.
  271. Pridham T.G. and Gottlieb D. (1948). The utilization of carbon compounds by some Actinomycetales as an aid for species determination. J Bacteriol 56: 107−114.
  272. Price P.C., Fisher J. M. and Kerr A. (1979a). Annual rye-grass toxicity: parasitism of Lolium rigidum by a seedgall forming nematode (Anguina sp.). Ann Appl Biol 91:359−369.
  273. Price P.C., Fisher J. M. and Kerr A. (1979b). On Anguina funesta n. sp., and its association with Corynebacterium sp., in infecting Lolium rigidum. Nematologica 25:76−85.
  274. Rademaker J.L.W., Hoste В., Louws F.J., Kersters K., Swingers J., Vauterin P. and Bruijn F.J. (2000). Comparison of AFLP and rep-PCR genomic fingerprinting with DNA-DNA homology studies: Xantomonas as model system Int J Syst Evol Bacteriol 50:665−677.
  275. Rainey F.A., Ehlers R.U. and Stackebrandt E. (1995). Inability of the polyphasic approach to systematics to determine the relatedness of the genera Xenorhabdus and Photorhabdus. Int JSyst Bacteriol 45:379−381.
  276. Rancourt J. and Lechevalier M. (1964). Electron microscopic study of the formation of spiny conidia in species of Streptomyces. Can J Microbiol 10:311−316.
  277. RDB Ribosomal Data Base Project, http://rdp.ci-ne.msu.edu.
  278. Rheims, H., Schumann P., Rohde M. and Stackebrandt E. (1998). Verrucosispora gifhornensis gen. nov., sp. nov., a new member of the actinobacterial family Micromonosporaceae. Int J Syst Bacteriol 48: 1119−1127.
  279. Reinert R.R., Schnitzler N., Haase G., Lutticken R., Fabry U., Schaal K.P. and Funke G. (1995). Recurrent bacteremia due to Brevibacterium casei in an immunocompromised patient. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 14:1082- 1085.
  280. I.T. (1987). Serological relationships between strains of coryneform bacteria responsible for annual ryegrass toxicity and other plant pathogenic corynebacteria. Int J Syst Bacteriol 37:153−159.
  281. Riley I. T. and Mc Kay A. C. (1990). Specificity of the adhesion of some plant pathogenic microorganisms to the cuticle of .the nematodes in the genus Anguina (Nematoda, pp. Anguinidae). Nematologica 36:90−103.
  282. Riley I. T. and Ophel K.M. (1992). Clavibacter toxicus sp. nov., the bacterium responsible for annyal ryegrass toxicity in Australia. Int J Syst Bacteriol 42:64−68.
  283. Riley I. T., Reardon T. B. and McKay A. C. (1988). Genetic analysis of plant pathogenic bacteria in the genus Clavibacter using allozyme electrophoresis. J Gen Microbiol 134:30 253 030.
  284. Rossello-Mora R. and Amann R. (2001). The species concept for prokaryotes. FEMS Microbiol Rev 25:39−67.
  285. K.A. (1954). On the host range and systematic position of the bacteria responsible for the yellow slime disease of wheat (Triticum vulgare Vill.) and cockfoot grass (Dactylis glomerata L.). Ann Appl Biol 41: 606−611.
  286. Saitou N. and Nei M. (1987). The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol Biol Evol 4: 406−425.
  287. Savelkoul P.H., Aarts H.J., de Haas J., Dijkshoorn L., Duim B., Otsen M., Rademaker J.L., Schouls L. and Lenstra JA. (1999). Amplified-fragment length polymorphism analysis: the state of an art. J Clin Microbiol. 37:3083−3091.
  288. , N.W. (1985). Problems with the pathovar concept, pp. 783−785. In: E.L. Civerolo et al. (eds.) Plant pathogenic bacteria: Proc. of the Sixth Intern, conf. on plant pathogenic bacteria, Maryland.
  289. , G. (1961). Corynebacterium iranicum sp. nov. on wheat (Triticum vulgare L.) in Iran, and a comparative study of it with C. tritici and C.rathayi. Entomol Phytopathol Appl 19:1−24.
  290. Schleifer K. H. and Kandier O. (1972). Peptidoglycan types of bacterial cell walls and their taxonomic implications. Bacteriol Rev 36: 407−477.
  291. Schleifer K. H. and Seidl P. H. (1985). Chemical composition and structure of murein. In Chemical Methods in Bacterial Systematics, pp. 201−219. Edited by M. Goodfellow and D.E. Minnikin. London: Academic Press.
  292. Schleifer K. H., Hayn I, Seidl H.P. and Firl F. (1983). Threo-?-hydroxy-ornithine: a natural constituent of the peptidoglycan of Corynebacterium species Co 112. Arch Microbiol 134:243−246.
  293. Schleifer K.H., Hammes W.P. and Kandier O. (1976). Effect of endogenous and exogenous factors on the primary structures of bacterial peptidoglycan Adv Microb Physiol 13: 245- 292.
  294. Schloter M., Lebuhn M., Heulin T. and Hartmann A. (2000). Ecology and evolution of bacterial microdiversity. FEMS Microbiol Rev 24:647−660.
  295. Schumann P., Rainey F.A., Burghardt J., Stackebrandt E. and Weiss N. (1999). Reclassification of Brevibacterium oxydans (Chatelain and Second 1966) as Microbacterium oxydans comb. nov. Int JSyst Bacteriol 49:175−177.
  296. H. (1983). Identification key for coryneform bacteria derived by numerical taxonomic studies. J Gen Microbiol 129:1433−1471.
  297. Shirling, E. B. and Gottlieb, D. (1969) Cooperative description of type strains of Streptomyces. IV. Species description from the second, third and fourth series. Int J Syst Bacteriol 19:391−512.
  298. Skartason J.B. and W.H. Burkholder. (1942). Classification and nomenclature of the pathogen causing bacterial ring rot of potatoes. Phytopathology 32: 439−441.
  299. Skerman V.B.D., McGowan V. and. Sneath P.H.A. (1980). Approved Lists of Bacterial Names. Int J Syst Bacteriol 30: 225−420.
  300. E. F. (1910). A new tomato disease of economic importance. Science (Washington) 31: 794−796.
  301. Southey J. F., Topham P. B. and Brown D. J. F. (1990). Taxonomy of some species of Anguina Scopoli, 1777 {sensu Brzeski, 1981) forming galls on Gramineae: value of diagnostic characters and present status of nominal species. Rev Nematol 13:127−142.
  302. Spiekermann A. and Kotthoff P. (1914). Untersuchunger uber die Kartoffelpflanze und ihre Krankheiten. Landhr Jb 46:659−732.
  303. Stackebrandt E. and Goebel B. M. (1994). Taxonomic note: a place for DNA-DNA reassociation ans 16S rRNA sequence analysis in the present species definition in bacteriology Int JSyst Bacteriol 44:846−849.
  304. Stackebrandt E. and Fiedler F.(1979). DNA-DNA homology studies among strains of Arthrobacter and Brevibacteriuum. Arch Microbiol 120:289−295.
  305. Stackebrandt E. and Kandier O. (1979). Taxonomy of the genus Cellulomonas, based on phenotypic characters and deoxyribonucleic acid deoxyribonucleic acid homology, and proposal of seven neotype strains. Int JSyst Bacteriol 29:273−282.
  306. Stackebrandt E. and Liesack W. (1994). Nucleic acids and Classification. In: Handbook of new bacterial systematics. pp. 152−194. Edited by Goodfellow M. and O’Donnel A.G. London: Academic Press.
  307. Stackebrandt E. and Woese C.R. (1981). Towards a phylogeny of the actinomycetes and related organisms. Curr Microbiol 5:197−202.
  308. Stackebrandt E. and Woese C.R. (1984). The phylogeny of prokaryotes. Microbiol Sei 1:117−122.
  309. Stackebrandt E., Rainey F.A. and Ward-Rainey N.L. (1997). Proposal for a new hierarchic classification system, Actinobacteria classis nov. Int J Syst Bacteriol 47:479−491.
  310. Stackebrandt E., Schumann J., Swiderski J. and Weiss N. (1999). Reclassification of Brevibacterium incertum (Breed 1953) as Desemzia incerta gen. nov., comb. nov. Int J Syst Bacteriol 49:185−188.
  311. Starr M. P, Mandel M. and Murata N. (1975). The phytopathogenic coryneform bacteria in the light of DNA base composition and. DNA-DNA segmental homology. J Gen Appl Microbiol, 21:13−26.
  312. , D. E. 1988. A study of the bacteria associated fatty acid profiling. Acta Horticulturae 225:39−46.
  313. , E. A. 1941. A study of the bacteria associated with thirty species of insects. J. Bacteriol 42:757−790.
  314. Sturz A. V., Christie B. R., Matheson B. G., and Nowak J. (1997). Biodiversity of endophytic bacteria which colonize red clover nodules, roots, stems and foliage and their influence on host growth. Biol Fertil Soils 25:13−19.
  315. Stynes B. A. and Bird A.F. (1980). Anguina agrostis, the vector of annual rye grass toxicity in Australia. Nematologica 26:475−490.
  316. Suput J., Lechevalier M.P. and Lechevalier H.A. (1967). Chemical composition of variants of aerobic actinomycetes. ApplMicrobiol 15:1356−1361.
  317. I.C. (1994). The lipoteichoic acids and lypoglycans of Gram-positive bacteria: a chemotaxonomic perspective. System Appl Microbiol 17: 467−480.
  318. Suzuki K. and Komagata K. (1983). Taxonomic significance of cellular fatty acid composition in some coryneform bacteria. Int JSyst Bacteriol 33:188−200.
  319. Suzuki K. and Komagata K. (1983). Pimelobacter gen. nov., a new genus of coryneform bacteria with LL-diaminopimelic acid in the cell wall. J Gen Appl Microbiol 29:59−71.
  320. Suzuki K., Goodfellow M. and O’Donnel A.G. (1994). Cell envelopes and classification. In: Handbook of new bacterial systematics. pp. 195−250. Edited by Goodfellow M. and O’Donnel A.G. London: Academic Press.
  321. Tabor C.W. and Tabor Y. (1985). Polyamines in microorganisms. Microbiol Rev 49:81−99.
  322. Takeuchi M. and Hatano K. (1998a). Union of the genera Microbacterium Orla-Jensen and Aureobacterium Collins et al. in a redefined genus Microbacterium. Int J Syst Bacteriol 48: 739−747.
  323. Takeuchi M. and Hatano K. (2001). Agromyces luteolus sp. nov., Agromyces rhizosphaerae sp. nov. and Agromyces bracchium sp. nov., from the mangrove rhizosphere. Int JSyst Evol. Microbiol 51:1529−1537.
  324. Takeuchi M. and Yokota A. (1994). Phylogenetic analysis of the genus Microbacterium based on 16S rRNA gene sequences. FEMS Microbiol Lett 124:11−16.
  325. Takeuchi M., Weiss N., Schumann P. and Yokota A. (1996). Leucobacter komagatae gen. nov., sp. nov., a new aerobic grampositive, nonsporulating rod with 2,4-diaminobutyric acid in the cell wall. Int J Syst Evol Microbiol 50:371−380.
  326. J. (1994). Determination of DNA dase composition. In: Chemical Methods in Prokaryotic Systematics, pp. 463−469. Edited by Goodfellow M. and O’Donnell A.G. Chichester: John Wiley and Sons.
  327. D.W. (1984). Motility and flagellation of cellulomonads. (1984). Int J Syst Bacteriol 34:218−219.
  328. Tille D., Prauser H., Szyba K. and Mordarski (1978). On the taxonomic position of the Nocardioides albus Prauser by DNA: DNA-hybridization. ZAllg Microbiol 18: 459−462.
  329. Thony-Mayer L. (1997). Biogenesis of respiratory cytochromes in bacteria Microbiol Mol Biol Rev 9:337−376.
  330. M. J. (1955). Chainia, a new genus of the Actinomycetales. Nature (London) 176:934−935.
  331. Thieman J.E., Pagani H. and Beretta G. (1968). A new genus of the Actinomycetales: Microtetraspora gen.nov. J Gen Microbiol 50:295−303.
  332. V. (1889). I genera e le speice delle Bacteriacee, Milan.
  333. Trutko S. M., Akimenko V. K., Suzina N. E., Anisimova L. A., Shlyapnikov M. G., Baskunov B. P., Duda V. I. and Boronin A.M.(2000) Involvement of the respiratory chain of gram-negative bacteria in the reduction of tellurite. Arch Microbiol 173:178−186.
  334. Uchida K. and Aida K. (1977). Acyl type of bacterial cell wall: its simple identification by colorimetric method. J Gen Appl Microbiol 23:249−260.
  335. Uchida K. and Aida K. (1979). Taxonomic significance of cell-wall acyl type in Corynebacterium-Mycobacterium-Nocardia group by a glycolate test. J Gen Appl Microbiol 25:169−183.
  336. Uchida K., Kudo T., Suzuki K.-I. and Nakase T. (1999). A new rapid method of glycolate test by diethyl ether extraction, which is applicable to a small amount of bacterial cells of less than one milligram J Gen Appl Microbiol 45:49−56.
  337. Ursing J.B., Rossello-Mora R.A., Garcia-Vaides E. and Lalucat J. (1995). Taxonomic note: a pragmatic approach to the nomenclature of phenotypically similar genomic groups. Int JSyst Bacteriol 45:604.
  338. Vandamme P., Pot B., Gillins M., De Vos P., Kersters K. and Swings J. (1996). Poliphasic taxonomy, a consensus approach to bacterial systematics. Microbiol Rev 60:407−438.
  339. Van de Peer Y. and De Wachter R. (1994). TREECON for Windows: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees for the Microsoft Windows environment. Comput Appl Biosci 10:569−570.
  340. M. (1996). DNA fingerprining techniques for microorganisms. Mol Biothechnol 6:115−142.
  341. Vauterin L., Swings J. and Kersters K. (1994). Protein electrophoresis and classification. In: Handbook of new bacterial systematics. pp. 251−281. Edited by Goodfellow M. and O’Donnel A.G. London: Academic Press.
  342. Versalovic J., Koeuth T. and Lupski J. R. (1991). Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and application to fingerprinting of bacterial genomes. Nucleic Acids Res 19:68 236 831.
  343. Versalovic J., Schneider M., de Bruijn F.J. and Lupski J.R. (1994). Genomic fingerprinting of bacteria using repetitive sequence-based polymerase chain reaction Meth Cell Mol Biol 5: 2540.
  344. A.K. (1982). The plant pathogenic corynebacteria. Ann. Rev. Microbiol. 36:495−517.
  345. Vidaver A.K. and Davis M.J. (1990). Coryneform Plant Pathogens, pp. 104−112. In N.W. Schaad (ed.). Laboratory guide for identification of plant pathogenic bacteria. American Phytopathological Society. St. Paul.
  346. Vidaver A.K. and Mandel M. (1974). Corynebacterium nebraskense, a new, orange-pigmented phytopathogenic species .Int J Syst Bacteriol 24: 482−485.
  347. Vogel P., Stynes B. A., Coackley W., Yeoh G. T. and Petterson D. S. (1982). Glycolipid toxins from parasitised annual ryegrass: a comparison with tunicamycin. Biochem Biophys Res Commun 105:835−840.
  348. Vos P., Hogers R., Bleeker M., Reijans M., Van de Lee T., Homes M., Frijters A., Pot J., Peleman J., Kuiper M., et al. (1995). AFLP: anew technique for DNA fingerprinting. Nucleic Acids Res 23:4407−4414.
  349. S. A. (1959). The Actinomycetes. Baltomore: Williams and Wilkins Co., 327 p.
  350. Waksman S.A. and Henrici A.T. (1943). The nomenclature and classification of the actinomycetes. J Bacteriol, 46:337−341.
  351. D.M. (1998). A natural species concept for prokaryotes. Curr Opin Microbiol 1:271 277.
  352. Ward D.M., Weller D. and Bateson M.M. (1990). 16S rRNA sequences reveal uncultured inhabitants af a well-studied thermal community. FEMS Microbiol Rev 75:105 116.
  353. Ward D.M., Ferris M.J., Nold S.C. and Bateson M.M. (1998). A natural view of microbial biodiversity within hot spring cyanobacterial mat communities. Microbiol Mol Biol Rev 62:1353−1370.
  354. Wauters G., Charlier J., Janssens M. and Delmee M. (2001). Brevibacterium paucivorans sp. nov., from human clinical specimens Int J Syst Evol Microbiol 51:1703−1707.
  355. Weisburg, W.G., Barns S.M., Pelletier D.A. and Lane D.J. (1991). 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J Bacteriol 173:697−703.
  356. Welsh J. and McClelland M. (1990). Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers. Nucl Acids Res 18: 7213−7218.
  357. Wenner T., Yirginie R., Decaris B. and Leblond P. (2002). Intragenomic and intraspecific polymorphism of the 16S-23S rDNA internally transcribed sequences of Streptomyces ambofaciens. Microbiol. 148:633−42.
  358. Williams J.G.K., Kubelic A.R., Livak K.J., Rafalski J.A. and Tingey S.V. (1990). DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers Nucl Acids Res 18: 6531−6535.
  359. Williams S.T., Goodfellow M., Alderson G., Wellington E.M.H, Sneath P.H.A. and Sackin M.J. (1983). Numerical classification of Streptomyces and related genera. J Gen Microbiol 129:1743−1813.
  360. Wieser M., Schumann P., Martin K, Altenburger P., Burghardt J, Lubitz W. and Busse H.-J. (1999). Agrococcus citreus sp. nov., isolated from a medieval wall painting of the chapel of Castle Herberstein (Austria). Int JSyst Bacteriol 49:1165−1170.
  361. Wildermuth H. and Hopwood D.A. (1970). Septation during sporulation in Streptomyces coelicolor. J Gen Microbiol 60:51−60.
  362. Williams S.T., Sharpies G.P. and Bradshaw R.M. (1973). Fine structure of the Actinomycetales. p. 113−127. In: G. Sykes, F.A.Skinner (eds.) Actinomycetales-. characteristics and practical importance. London: Academic Press.
  363. Witt D. and Stackebrandt E. (1990). Unification of the genera Streptoverticillium and Streptomyces, and amendation of Streptomyces Waksman and Henrici 1943, 339AL. Syst Appl Microbiol, 13:361−371.
  364. Witt D. and Stackebrandt E. (1991). Unification of the genera Streptoverticillium and Streptomyces, and amendation of Streptomyces Waksman and Henrici 1943, 339AL. VALIDATION LISTN0 38. Int J Syst Bacteriol, 41:456−457.
  365. Wolfram, T., G. Gruner, and H. Stolp. 1986. Nucleic acid hybridization of pink-pigmented facultative methylotrophs and pseudomonads. Int J Syst Bacteriol 36:24−28.
  366. Xie Q., Wang Y., Huang Y., Wu Y., Ba F. and Liu Z. (2002). Description of Lentzea flaviverrucosa sp. nov. and transfer of the type strain of Saccharothrix aerocolonigenes subsp. staurosporea to Lentzea albida. Int J Syst Evol Microbiol 52: 1815−1820.
  367. Yamada K. and Komagata K. (1969). Taxonomic studies on coryneform bacteria. I. Division of bacterial cells. J Gen Appl Microbiol 15:243−259.
  368. Yamada K. and Komagata K. (1972). Taxonomic studies on coryneform bacteria. J Gen Appl Microbiol 18: 417−431.
  369. T. (1965). Comparison of the cell wall comparison of morphologically distinct actinomycetes. J Bacteriol 89:444−453.
  370. Yamamoto S., Bouvet J.M. and Harayama S. (1999). Phylogenetic structure of the genus Acinetobacter based on gyrB sequences: comparison with the grouping by DNA-DNA hybridization. Int J Syst Bacteriol 49: 87−95.
  371. Yamamoto S. and Harayama S. (2000). Phylogeny of the genus Pseudomonas: intrageneric structure reconstructed from the nucleotide sequences of gyrB and rpoD genes. Microbiol 146:2385−2394.
  372. Yassin A. F., Galinski E. A., Wohlfahrth A., Jahnke K.-D., Schaal K. P. and Truper H.G. (1993). A new actinomycete species, Nocardiopsis lucentensis sp. nov. Int J Syst Bacteriol 43:266−271.
  373. Yokota A., Takeuchi M., Sakane T. and Weiss N. (1993a). Proposal of six new species in the genus Aureubacterium and transer of Flavobacterium as Aureobacterium esteraromaticum comb.nov. IntJSyst Bacteriol 43:555−564.
  374. Yokota A., Takeuchi M. and Weiss N. (1993b). Proposal of two new species in the genus Microbacterium: Microbacterium dextranoliticum sp. nov. and Microbacterium aurum sp. nov. Int J Syst Bacteriol 43:549−554.
  375. Yoon J.-H., Rhee S.-K., Lee J.-S., Park Y.-H. and Lee S.T. (1997). Nocardioides pyridinolyticus sp. nov., a pyridine-degrading bacterium isolated from the oxic zone of an oi shale column. Int J Syst Bacteriol 47: 933−938.
  376. Yoon J.-H., Cho Y.-G., Lee S. T., Suzuki K., Nakase T. and Park Y.-H. (1999). Nocardioides nitrophenolicus sp. nov., a p-nitrophenol-degrading bacterium. Int J Syst Bacteriol 49: 675 680.
  377. Yoon J.-H., Lee S. T. and Park Y.-H. (1998a). Inter- and intra-specific phylogenetic analysis of genus Nocardioides and related taxa based on 16S rDNA sequences. Int J Syst Bacteriol 48:187−194.
  378. Yoon J.-H., Lee S. T. and Park Y.-H. (1998b). Genetic analyses of the genus Nocardioides and related taxa based on 16S-23S rDNA internally transcribed spacer sequences. Int J Syst Bacteriol 48: 641−650.
  379. Young J. M., Saddler G. S., Takikawa Y., De Boer S. H., Vauterin L., Gardan L., Gvozdyak R. I. and Stead D. E. (1996). Names of Plant Pathogenic Bacteria, 1864−1995. International Society for Plant Pathology (ISPP). http://www.isppweb.org/nppb.htm
  380. Young J. M., Saddler G. S., Takikawa Y., De Boer S. H., Vauterin L., Gardan L., Gvozdyak R. I. and Stead D. E. (2000). New Names, 31 December 2000. International Society for Plant Pathology (ISPP). http://www.isppweb.org/nppbnew00.htm234
  381. Zhang Z., Wang Y. and Ruan J. (1997). A proposal to revive the genus Kitasatospora (Omura, Takahashi, Iwai, and Tanaka 1982). IntJSyst Bacteriol 47: 1048−1054.
  382. Zhang Z., Wang Y. and Ruan J. (1998). Reclassification of Thermomonospora and Microtetraspora. Int J Syst Bacteriol 48:411 -422.
  383. Zlamala C., Schumann P., Kampfer P., Valens M., Rossello-Mora R., Lubitz W. and Busse H.J. (2002). Microbacterium aerolatum sp. nov., isolated from the air in the 'Virgilkapelle' in Vienna. Int J Syst Evol Microbiol 52:1229−1234.
  384. ZoBell C. E. and Upman H.C. (1944). A list of marine bacteria including descriptions of sixty new species. Bull Scripps Inst Oceanogr Univ Calif (Itch. Ser.) 5:239−292.
  385. Actinomodura uncinata Микробиология, 1989, T.58, С. 1007−1013
  386. Agreia Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 51:2073−2079.
  387. Agreia bicolorata Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 51:2073−2079.
  388. Agromyces albus Int. J. Syst. Bacterid., 2003, 53:000−000.
  389. A. cerinus subsp. cerinus Int. J. Syst. Bacteriol., 1992, 42:635−641.
  390. A. cerinus subsp. nitratus Int. J. Syst. Bacteriol., 1992, 42:635−641.
  391. A. fucosus subsp. fucosus Int. J. Syst. Bacteriol., 1992, 42:635−641.
  392. A.fucosus subsp. hippuratus Int. J. Syst. Bacteriol., 1992, 42:635−641.
  393. A. hippuratus Int. J. Syst. Bacteriol., 2003 (представл. к печати)
  394. Amycolata alni Int J. Syst. Bacteriol. 1989. Y.39. P.72−77
  395. Clavibacter gallus Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  396. Clavibacter desertorus Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  397. Clavibacter insidiosus Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  398. Clavibacter michganensis Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  399. Clavibacter nebraskensis Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  400. Clavibacter roseus Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  401. Clavibacter tesselarius Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  402. Clavibacter sepedonicus Abstr. 7th Int. Congr. of Bacteriol. Appl. Microbiology Division. Prague. 1994. P. 233.
  403. Curtobacterium calamagrosticola Настоящая работа
  404. Chainia mongolica Изв. АН МНР. 1987. N3. С.37−40.
  405. Cryocola Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003 (submit.)
  406. Cryocola antiquus Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003 (submit.)
  407. Glycomyces tenuis Int. J. Syst. Bacteriol, 1991, 41:154−157.
  408. Graminibacter Настоящая работа
  409. Graminibacter agreoides Настоящая работа
  410. Frigoribacterium mesophilum Настоящая работа
  411. Leifsonia Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  412. Leifsonia poae Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  413. Leifsonia aquatica Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  414. Leifsonia xyli Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  415. Leifsonia xyli subsp. xyli Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  416. Leifsonia xyli subsp. cinodontis Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2000, 50:371−380.
  417. Nocardioides prauserii Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003 (submit.)
  418. Nocardiopsis tropica Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000, 50:73−81.
  419. Nocardiopsis trehalosi Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000, 50:73−81.
  420. Nocardiopsis dassonvillei subsp. albirubida Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000, 50:73−81.
  421. Okibacterium Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002, 52:987−993.
  422. Okibacterium fritillariae Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002, 52:987−993.
  423. Promicromonospora alba Автореф. Дисс. канд. биол. наук. Пущино. НЦБИ АН СССР. 1985.
  424. Pseudoamycolata Int. J. Syst. Bacteriol. 1989, 39:457−461
  425. Pseudoamycolata halophobica Int. J. Syst. Bacteriol. 1989, 39:457−461
  426. Rathayibacter Int. J. Syst. Bacteriol. 1993, 43:143−149.
  427. Rathayibacter iraniens Int. J. Syst. Bacteriol. 1993, 43:143−149.
  428. Rathayibacter tritici Int. J. Syst. Bacteriol. 1993, 43:143−149.
  429. Rathayibacter tritici Int. J. Syst. Bacteriol. 1993, 43:143−149.
  430. Rathayibacter carisis Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002, 52:1917−1923.
  431. Rathayibacter festucae Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002, 52:1917−1923.
  432. Saccharomonospora mesophilica Микробиология, 1990, 59:631−636.
  433. Agreia bicolorata ВКМ Ас-1804 (DSM 14 575, УКМ Ас-620, С IP)
  434. Agreiasp. ВКМ Ас-2052 (IFO 16 398)
  435. sp. ВКМ Ас-1783 (УКМ Ас-621)
  436. sp. ВКМ Ас-1786Т (УКМ Ас-622)
  437. Agromyces albus ВКМ Ас-1800Т (УКМ Ас-623)
  438. Agromyces cerinus subsp. cerinus ВКМ Ac-1340 (АТСС 51 762, DSM 8595)
  439. Agromyces cerinus subsp. nitratus BKM Ac-1351 (DSM 8596)
  440. Agromyces fucosus BKM Ac-1346 (DSM 8597)
  441. Agromyces hippuratus BKM Ac-1352 (DSM 8598)
  442. Brevibacterium sp. BKM Ac-2119 (УКМ Ac-412)
  443. Brevibacterium sp. BKM Ac-2118 (УКМ Ac-411)
  444. Brevibacterium sp. BKM Ac-2280 (УКМ Ac-413)
  445. Clavibacter gallus BKM Ac-2060 (IFO 16 405)
  446. Curtobacterium calamagrosticola Ac-1811 (IFO 16 396)
  447. Frigoribacterium mesophilum VKM Ac-1396 T (УКМ Ac-617)
  448. Glycomyces tenuis BKM Ac-1250 (ATCC 49 849- DSM 44 171- JCM 9087)
  449. Graminibacter agreoides BKM Ac-2058 (IFO 16 403)
  450. Microbacterium testaceum Ac-1781 (IFO 16 366)
  451. Nocardiopsis tropica BKM Ac-1457 (DSM 44 381)
  452. Okibacterium fritillariae Ac-2059 (IFO)
  453. Okibacterium fritillariae Ac-2062 (IFO)
  454. Plantibacter cousiniae VKM Ac-1787T (УКМ Ac-614)
  455. Plantibacter agrosticola VKM Ac-13 SOT (УКМ Ac-616)
  456. Plantibacter elymi VKM Ac-1784T (У KM Ac-615)
  457. Pseudonocardia alni BKM Ac-901 (DSM (44 104)
  458. Rathayibacter caricis VKM Ac-1799T (УКМ Ac-618)
  459. Rathayibacter festucae VKM Ac-1390T (УКМ Ac-619)
  460. Curtobacterium sp. BKM Ac-1376 (IFO 16 384)
  461. Curtobacterium sp. BKM Ac-1386 (IFO 16 385)
  462. Curtobacterium sp. BKM Ac-1387 (IFO 16 386)
  463. Curtobacterium sp. BKM Ac-1393 (IFO 16 387)
  464. Curtobacterium sp. BKM Ac-1395 (IFO 16 388)
  465. Curtobacterium sp. BKM Ac-1397 (IFO 16 389)
  466. Curtobacterium sp. BKM Ac -1399 «(IFO 16 390)
  467. Curtobacterium sp. BKM Ac -1794 (IFO 16 391)
  468. Curtobacterium sp. BKM Ac -1795 (IFO 16 392)
  469. Curtobacterium sp. BKM Ac -1796 „(IFO 16 393)
  470. Curtobacterium sp. Ac-1809 (IFO 16 395)
  471. Curtobacterium sp. Ac-2054 (IFO 16 399)
  472. Curtobacterium sp. Ac-2055 (IFO 16 400)
  473. Curtobacterium sp. Ac-2056 (IFO 16 401)
  474. Curtobacterium sp. Ac-2057 (IFO 16 402)
  475. Microbacterium sp. Ac-1389 (IFO 16 364)
  476. Microbacterium sp. Ac-1391 (IFO 16 365)
  477. Microbacterium sp. Ac-1782 (IFO 16 367)
  478. Microbacterium sp. Ac-1807 (IFO 16 368)
  479. Microbacterium sp. Ac-1808 (IFO 16 369)
  480. Microbacterium sp. Ac-1840 (IFO 16 397)
  481. Microbacterium sp. Ac-2011 (IFO 16 370)
  482. Microbacterium sp. Ac-2012 (IFO 16 371)
  483. Microbacterium sp. Ac-2013 (IFO 16 372)
  484. Microbacterium sp. Ac-2014 (IFO 16 373)
  485. Microbacterium sp. Ac-2015 (IFO 16 374)
  486. Microbacterium sp. Ac-2016 (IFO 16 375)
  487. Microbacterium sp. Ac-2047 (IFO 16 376)
  488. Microbacterium sp. Ac-2048 (IFO 16 377)
  489. Microbacterium sp. Ac-2049 (IFO 16 378)
  490. Microbacterium sp. Ac-2050 (IFO 16 379)
  491. Microbacterium sp. Ac-2051 (IFO 16 380)
  492. Microbacterium sp. Ac-2053 (IFO 16 381).
  493. Последовательности 16S рРНК-генов, определенные в ходе выполнения настоящей работы и депонированные в GenBank
  494. AF159363. Agreia bicolorata VKM Ac-1804
  495. AB042090. Agreia sp. VKM Ac-2052
  496. AF503917. Agromyces albus VKM Ac-1800
  497. AY277619. Agromyces cerinus subsp. nitratus VKM Ac-1351
  498. AY243344. Brevibacterium antiquum VKM Ac-2118
  499. AY243343. Brevibacterium permense VKM Ac-2280
  500. AY243345. Brevibacterium linens VKM Ac-2119
  501. AF505513. Cryocola antiquus VKM Ac-2070
  502. AB042093. Graminibacter agreoides VKM Ac-2058
  503. AFI 16 342. Leifsoniapoae VKM Ac-1401
  504. AFI59365. Rathayibacter festucae VKM Ac-1390
  505. AF159364. Rathayibacter caricis VKM Ac-1799
  506. AFI05972. Nocardiopsis trehalosi VKM Ac-942
  507. AFI05971. Nocardiopsis tropica VKM Ac-1457
  508. AB042097. Okibacterium fritillariae VKM Ac-2062
  509. AB042094. Okibacterium fritillariae VKM Ac-2059
  510. AB042089. Curtobacterium calamagrosticola VKM Ac-1811
  511. AB042095. Clavibacter gallus VKM Ac-2060
  512. AB042096. Microbacterium lavaterae VKM Ac-2061
  513. AB042086. Curtobacterium sp. VKM Ac-1376
  514. AB042087. Curtobacterium sp. VKM Ac-1387
  515. AB042088. Curtobacterium sp. VKM Ac-1809
  516. AB042091. Curtobacterium sp. VKM Ac-2056
  517. AB042092. Curtobacterium sp. VKM Ac-2057
  518. AB042070. Microbacterium sp. VKM Ac-13 89
  519. AB042071. Microbacterium sp. VKM Ac-1391
  520. AB042072. Microbacterium sp. VKM Ac-1781
  521. AB042073. Microbacterium sp. VKM Ac-1782
  522. AB042074. Microbacterium sp. VKM Ac-1807
  523. AB042075. Microbacterium sp. VKM Ac-1808
  524. AB042076. Microbacterium sp. VKM Ac-2011
  525. AB042077. Microbacterium sp. VKM Ac-2012
  526. AB042078. Microbacterium sp. VKM Ac-2013
  527. AB042079. Microbacterium sp. VKM Ac-2014
  528. AB042080. Microbacterium sp. VKM Ac-2015
  529. AB042081. Microbacterium sp. VKM Ac-2016
  530. AB042082. Microbacterium sp. VKM Ac-2047
  531. AB042083. Microbacterium sp. VKM Ac-2048
  532. AB042084. Microbacterium sp. VKM Ac-2050
  533. AB042085. Microbacterium sp. VKM Ac-20 511.CUS
  534. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS16S1. AF159363
  535. Agrevia bicolorata AF1593631. AF159363.1 GI: 120 605 511 486 bp ribosomal
  536. DNA linear BCT 12-DEC-2001 RNA gene, partial sequence.1. Agreia1. Aareiabicolorata bicolorata1. TITLE
  537. JOURNAL MEDLINE PUBMED REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441
  538. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Agreia.1 (bases 1 to 1486)
  539. Microorganisms, Pushchino, Moscow 142 292, Russia Location/Qualifiers 1. .1486organism="Agreia bicolorata“ /moltype="genomic DNA» /strain="VKM Ac-1804″ /dbxref="taxon:110 935″ <1. .>1486product="16S ribosomal RNA" 365 a 345 c 474 g 302 t
  540. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  541. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource
  542. AB042090 1505 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  543. Agreia sp. VKM Ac-2052 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence.1. AB 04 2 0 90 AB042 0 90.11. Agreia sp. Agreia sp.1. Gl: 110 226 801. VKM Ac-2052 VKM Ac-2052rRNA
  544. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  545. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  546. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  547. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  548. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS TITLE
  549. JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource
  550. AF503917. 1486 bp DNA linear BCT 02-MAY-2002
  551. Agromyces albus 16S ribosomal RNA gene, partial sequence. AF5039171. AF503917.1 GI:30 315 265
  552. Agromyces albus Agromyces albus
  553. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Agromyces. 1 (bases 1 to 1486)
  554. Evtushenko, L. and Tiedje, J. isolated from phyllosphere of AndrosacerRNA
  555. Dorofeeva, L., Krausova, V. Agromyces albus sp. nov., sp.
  556. Unpublished 2 (bases 1 to 1486) Evtushenko, L. Direct Submission
  557. AY277619. Agromyces cerinus. gi:31 158 518.1.nks1.CUS1. DEFINITION
  558. ACCESSION VERSION SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1465 bp cerinus subsp. nitratus partial sequence.
  559. DNA linear BCT 02-JUN-2002 strain IMET 11 532 16S ribosomal1. TITLE1. JOURNAL REFERENCE AUTHORS1. TITLE JOURNAL1. FEATURESrRNA1. BASE COUNT ORIGIN
  560. AY277619 Agromyces RNA gene, AY277 619
  561. AY277619.1 GI:31 158 518 Agromyces cerinus subsp. nitratus Agromyces cerinus subsp. nitratus
  562. Bacteria- Actinobacte’ria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Agromyces.1 (bases 1 to 1465)
  563. Ortiz-Martinez, A., Jurado, V., Gonzalez-delValle, M.A., Laiz, L., Gonzalez, J.M. and Saiz-Jimenez, C. Direct Submission
  564. AY243344 Brevibacterium antiquum1. CUS
  565. DEFINITION ACCESSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  566. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. Ac-2118bankit518086 1501 bp DNA linear BCT 23-FEB-2003
  567. Brevibacterium antiquum Ac-2118 16S rRNA gene, partial sequence. AY243344
  568. Brevibacterium antiquum Ac-2118 Brevibacterium antiquum Ac-2118
  569. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae.1 (bases 1 to 1501)
  570. Gavrish, E., Krausova, V., Plotnikova, E., Potechina, N. and Evtushenko, L.
  571. THREE NEW SPECIES AMONG BREVIBACTERIUM LINENS-LIKE STRAINS Unpublished2 (bases 1 to 1501) Evtushenko, L. Direct Submission
  572. AY243343 Brevibacterium permense BCT 23-FEB-2003
  573. DEFINITION Brevibacterium permense 16S rRNA gene, particular sequence. AY2433431. ACCESSION1. KEYWORDS1. SOURCE1. ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  574. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource
  575. Brevibacterium permense VKM Ac-2280 Brevibacterium permense VKM Ac-2280
  576. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae.1 (bases 1 to 1459)
  577. Gavrish, E., Krausova, V., Plotnikova, E., Potekhina, N. and Evtushenko, L.
  578. THREE NEW SPECIES AMONG BREVIBACTERIUM LINENS-LIKE STRAINS Unpublished2 (bases 1 to 1459) Gavrish, E. and Evtushenko, L. Direct Submission
  579. REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL12
  580. Brevibacterium linens BCT 23-FEB-2003
  581. Brevibacterium linens VKM Ac-2119 Brevibacterium linens VKM Ac-2119
  582. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Brevibacteriaceae- Brevibacterium.1 (bases 1 to 1459)
  583. Gavrish, E., Krausova, V., Plotnikova, E., Potekhina, N. Evtushenko, L. THREE NEW SPECIES AMONG BREVIBACTERIUM LINENS-LIKE STRAINS Unpublished2 (bases 1 to 1459) Gavrish, E. and Evtushenko,!. Direct Submission
  584. Submitted (23-FEB-2003) Ail-Russian Collection of Microorganisms, Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms Russian,
  585. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. TITLE
  586. JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  587. AF505513 1473 bp DNA linear BCT 02-MAY-2002
  588. Cryocola antiquus strain VKM Ac-2070 16S ribosomal RNA gene, partial sequence. AF5055131. AF505513.1 GI:30 315 270
  589. Cryocola antiquus Cryocola antiquus
  590. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Cryocola.1 (bases 1 to 1473)
  591. Gavrish, E., Karasev, S., Suzina, N., Gilichinsky, D., Tiedje, J. and Evtushenko, L.
  592. Cryocola antiquus gen. nov., sp. nov., novel actinobacteriaisolated from Siberian permafrost1. Unpublished2 (bases 1 to 1473) Evtushenko, L. Direct Submission
  593. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  594. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. RNA
  595. AB042093 1510 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  596. Grainibacter sp. VKM Ac-2058 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. AB0420931. AB042093.1 GI:11 022 683
  597. Graminibacter agreoides VKM Ac-2058 Graminibacter agreoides VKM Ac-2058
  598. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  599. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  600. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1510) Takeuchi, M. Direct Submission
  601. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honrnachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  602. AFI 16 342. Leifsonia poae .¦.gi:6 690 325.1.nks1.CUS
  603. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. TITLE
  604. JOURNAL MEDLINE PUBMED REFERENCE AUTHORS1. TITLE JOURNAL
  605. AF116342 1488 bp DNA linear BCT 12-JAN-20 001.ifsonia poae 16S ribosomal RNA, partial sequence.1. AF1163421. AF116342.1 GI:66 903 251.ifsonia poae Leifsonia poae
  606. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Leifsonia. 1 (bases 1 to 1488)
  607. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Subbotin, S.A., Cole, J.R. and Tiedje, J.M. Direct Submission
  608. Submitted (23-DEC-1998) VKM, All-Russian Collection of Microorganisms, Institute of Biochemistry and Physiology of
  609. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. TITLE nov. ,
  610. JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource
  611. AF159365 1271 bp DNA linear BCT 17-DEC-2002
  612. Rathayibacter festucae 16S ribosomal RNA gene, partial sequence. AF1593651. AF15 93 65.1 GI:8 886 074
  613. Rathayibacter festucae Rathayibacter festucae
  614. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Rathayibacter. 1 (bases 1 to 1271) Dorofeeva, L.V., Evtushenko, L. I Subbotin, S.A. and Tiedje, J.M. Rathayibacter caricis sp. nov.
  615. AF159364. Rathayibacter caricis. gi:8 886 073 J1. nks1.CUS
  616. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. TITLE nov. ,
  617. JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  618. AF159364. 1496 bp DNA linear BCT 17-DEC-2002
  619. Rathayibacter caricis 16S ribosomal RNA gene, partial sequence. AF1593641. AF159364.1 GI:888 6073
  620. Rathayibacter caricis Rathayibacter caricis
  621. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Rathayibacter.1 (bases 1 to 1496)
  622. Dorofeeva, L.V., Evtushenko, L.I., Krausova, V.I., Karpov, A.V., Subbotin, S.A. and Tiedje, J.M.
  623. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE1. ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. TITLE
  624. JOURNAL MEDLINE PUBMED REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  625. AF105972 1474 bp DNA linear BCT ll-FEB-2000 Nocardiopsis trehalosi 16S ribosomal RNA gene, partial sequence. AF1059721. AF105972.1 GI:6 539 642
  626. Nocardiopsis trehalosi Nocardiopsis trehalosi
  627. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Streptosporangineae- Nocardiopsaceae- Nocardiopsis.1 (bases 1 to 1474)
  628. Evtushenko, L.I., Taran, V.V., Akimov, V.N., Kroppenstedt, R.M., Tiedje, J.M. and Stackebrandt, E.
  629. DEFINITION ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS1. AF105971 1452 bp
  630. Nocardiopsis tropica 16S ribosomal AF1059711. AF105971.1 GI: 6 539 641
  631. DNA linear BCT ll-FEB-2000
  632. RNA gene, partial sequence.1. TITLE
  633. JOURNAL MEDLINE PUBMED REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  634. Nocardiopsis tropica Nocardiopsis tropica
  635. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Streptosporangineae- Nocardiopsaceae- Nocardiopsis.1 (bases 1 to 1452)
  636. Evtushenko, L.I., Taran, V.V., Akimov, V.N., Kroppenstedt, R.M., Tiedje, J.M. and Stackebrandt, E.
  637. AB042097. Okibacterium fritillariae .gi: 11 022 693.1.CUS AB042097 1506 bp DNA
  638. DEFINITION Okibacterium fritillariae VKM Ac-2062 gene partialsequence. AB0420971. AB042097.1 GI:110 226 931.nks
  639. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  640. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541
  641. Okibacterium fritillariae Okibacterium fritillariae
  642. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacterida Micrococcineae- Microbacteriaceae- Okibac1 (sites)
  643. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, Subbotin, A.S. and Takeuchi, M. Diversity and phylogeny of plant-nematode Unpublished2 (bases 1 to 1506) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  644. DEFINITION Okibacterium partialsequence. AB042094 AB042094.11 506 bp fritillariae VKM Ac1. DNA 2059 gene
  645. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  646. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Okibacterium.1 (sites)
  647. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  648. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1506) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  649. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  650. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  651. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.1510 bp DNA VKM Ac-1811 gene forrRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  652. AB04 208 9 Curtobacterium sequence. AB04 208 91. ABO42089.1 GI: 11 022 679
  653. Curtobacterium calamagrosticola VKM Ac-1811 Curtobact eriurri Ca lamagrosticola VKM Ac-1811
  654. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  655. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  656. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1510) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  657. Submitted (2l-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  658. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  659. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN161 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 15 011. ABO42095 1506 bp DNA
  660. Clavibacter gallus VKM Ac-2060 gene for sequence. ABO 420 95
  661. AB04 2 0 95.1 Gl-.11 022 685
  662. Clavibacter gallus VKM Ac-2060 Clavibacter gallus VKM Ac-2060
  663. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  664. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  665. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1506) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  666. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  667. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  668. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. AB042096 1505 bp
  669. Microbacterium lavaterae VKM Ac1. DNA 2061 genesequence. AB042096 AB042096.11. GI: 11 022 686
  670. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  671. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  672. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  673. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  674. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. RNA
  675. AB04 2 08 6 1505 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  676. Curtobacterium sp. VKM Ac-1376 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. ABO4208 61. AB04 208 6.1 GI:11 022 676
  677. Curtobacterium sp. VKM Ac-1376 Curtobacterium sp. VKM Ac-1376
  678. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  679. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  680. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  681. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  682. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  683. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  684. AB04 2 087 1503 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  685. Curtobacterium sp. VKM Ac-1387 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. AB 04 20 871. ABO42087 .1 GI:11 022 677
  686. Curtobacterium sp. VKM Ac-1387 Curtobacterium sp. VKM Ac-1387
  687. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  688. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  689. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1503) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  690. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  691. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE1. ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  692. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource
  693. ABO42088 Curtobacterium sequence. AB04 208 8 AB04 208 8.1 GI:
  694. Curtobacterium Curtobacteriumsp.15 0 4 bp DNA VKM Ac-18 0 9 gene for11022678sp.1. VKM Ac1. VKM Ac1809 -1809rRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  695. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  696. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  697. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1504) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  698. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  699. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  700. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.1504 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000 VKM Ac-2056 gene for 16S ribosomal RNA, partial1. RNA
  701. AB042091 Curtobacterium sequence. AB0420911. AB042 091.1 GI:11 022 681
  702. Curtobacterium sp. VKM Ac-2056 Curtobacterium sp. VKM Ac-2056
  703. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  704. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E. Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  705. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1504) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  706. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  707. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  708. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. AB042092 1506 bp DNA
  709. Curtobacterium sp. VKM Ac-2057 gene for 16S sequence. AB0420921. AB042092.1 GI:11 022 682
  710. Curtobacterium sp. VKM Ac-2057 Curtobacterium sp. VKM Ac-2057
  711. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Curtobacterium.1 (sites)
  712. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  713. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1506) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  714. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  715. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  716. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.1506 bp DNA VKM Ac-138 9 gene forrRNA1. BASE COUNT ORIGIN161 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  717. AB042070 Microbacterium sequence. AB042070
  718. AB04 207 0.1 GI: 11 022 660
  719. Microbacterium sp. VKM Ac-1389 Microbacterium sp. VKM Ac-1389
  720. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  721. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  722. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1506) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  723. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  724. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  725. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 10 811. ABO42071 1508 bp DNA
  726. Microbacterium sp. VKM Ac-1391 gene for sequence. AB0420711. AB042071.1 GI:11 022 661
  727. Microbacterium sp. VKM Ac-1391 Microbacterium sp. VKM Ac-1391
  728. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  729. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  730. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1508) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  731. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  732. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  733. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.1505 bp DNA VKM Ac-1781 gene for1. R’NA
  734. ABO42072 Microbacterium sequence. ABO42072
  735. AB04 2 07 2.1 GI: 11 022 662
  736. Microbacterium sp. VKM Ac-1781 Microbacterium sp. VKM Ac-1781
  737. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  738. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  739. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  740. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  741. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  742. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA
  743. AB042073 1504 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  744. Microbacterium sp. VKM Ac-1782 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. AB0420731. AB04 207 3.1 GI:11 022 663
  745. Microbacterium sp. VKM Ac-1782 Microbacterium sp. VKM Ac-1782
  746. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  747. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  748. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1504) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  749. Submitted (2l-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  750. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  751. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. ABO 4 2 07 4rRNA1509 bp DNA
  752. Microbacterium sp. VKM Ac-1807 gene for 16S ribosomal RNA, sequence. ABO420741. ABO42074.1 GI:11 022 664
  753. Microbacterium sp. VKM Ac-1807 Microbacterium sp. VKM Ac-1807
  754. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  755. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  756. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1509) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  757. Submitted (2l-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  758. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  759. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541
  760. ABO42075 1507 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  761. Microbacterium sp. VKM Ac-1808 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. ABO420751. AB042075.1 GI:11 022 665
  762. Microbacterium sp. VKM Ac-1808
  763. Microbacterium sp. VKM Ac-18 08
  764. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  765. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  766. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1507) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  767. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  768. Microbacterium sp. VKM Ac-2011 gene for 16S sequence. AB042076
  769. AB04 207 6. 1 GI: 11 022 666
  770. Microbacterium Microbacteriumsp. sp1. VKM AC'1. VKM Ac1. CUS1. DEFINITION
  771. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  772. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource-2011 -2011rRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  773. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  774. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  775. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  776. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  777. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  778. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.
  779. AB 04 2 07 7 Microbacterium sequence. AB04 2 077
  780. AB04 2 07 7.1 GI: 110 226 671 502 bp DNA VKM Ac-2012 gene for
  781. Microbacterium sp. Microbacterium sp.1. VKM Ac-2012 VKM Ac-2012rRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  782. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  783. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  784. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1502) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  785. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  786. Microbacterium sp. VKM Ac-2013 gene for sequence. AB0420781. AB04 207 8.1 GI:11 022 668
  787. Microbacterium sp. Microbacterium sp.1. VKM Ac1. VKM Ac1. CUS1. DEFINITION
  788. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  789. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource2013 2013rRNA
  790. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  791. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y. , Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  792. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1504) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  793. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  794. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  795. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  796. AB042079 1505 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  797. Microbacterium sp. VKM Ac-2014 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. ABO420791. AB 4 207 9.1 Gl:11 022 669
  798. Microbacterium sp. VKM Ac-2014 Microbacterium sp. VKM Ac-2014
  799. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  800. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  801. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  802. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  803. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  804. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcesp.
  805. AB042080 Microbacterium sequence. AB0420801. AB04 208 0.1 GI: 1 102 267 015 05 bp DNA VKM Ac-2015 gene forlinear BCT 25-OCT-2000 16S ribosomal RNA, partial
  806. Microbacterium sp. Microbacterium sp.1. VKM Ac-2015 VKM Ac-20 151. RNA
  807. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  808. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  809. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1505) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  810. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  811. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  812. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181
  813. ABO42081 1503 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  814. Microbacterium sp. VKM Ac-2016 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. ABO4 20 811. AB042081.1 GI:11 022 671
  815. Microbacterium sp. VKM Ac-2016 Microbacterium sp. VKM Ac-2016
  816. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  817. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  818. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1503) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  819. Submitted (2l-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  820. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  821. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961
  822. AB042082 1504 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  823. Microbacterium sp. VKM Ac-2047 gene for 16S ribosomal RNA, partial sequence. AB0420821. AB042082.1 GI:11 022 672
  824. Microbacterium sp. VKM Ac-2047 Microbacterium sp. VKM Ac-2047
  825. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  826. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  827. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1504) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  828. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  829. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  830. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1507 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  831. VKM Ac-2048 gene for 16S ribosornal RNA, partialrRNA1. ABO 4208 3
  832. Microbacterium sp sequence. AB0420831. AB042083.1 GI:11 022 673
  833. Microbacterium sp. VKM Ac-2048 Microbacterium sp. VKM Ac-2048
  834. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  835. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  836. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1507) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  837. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  838. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  839. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsource1. AB042084
  840. Microbacterium sp. sequence. AB0420841. AB042084.1 GI: 110 226 741 509 bp DNA linear BCT 25-OCT-2000
  841. VKM Ac-2050 gene for 16S ribosomal RNA, partial
  842. Microbacterium sp. Microbacterium sp.1. VKM Ac-2050 VKM Ac-2050rRNA1. BASE COUNT ORIGIN1 61 121 181 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 1321 1381 1441 1501
  843. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  844. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E. Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  845. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1509) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  846. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
  847. ACCESSION VERSION KEYWORDS SOURCE ORGANISM1. REFERENCE AUTHORS
  848. TITLE JOURNAL REFERENCE AUTHORS TITLE JOURNAL1. FEATURESsourcerRNA1. AB042085 1507 bp DNA
  849. Microbacterium sp. VKM Ac-2051 gene for sequence. AB 04 20 851. AB 42 085.1 GI:11 022 675
  850. Microbacterium sp. VKM Ac-2051 Microbacterium sp. VKM Ac-2051
  851. Bacteria- Actinobacteria- Actinobacteridae- Actinomycetales- Micrococcineae- Microbacteriaceae- Microbacterium.1 (sites)
  852. Evtushenko, L.I., Dorofeeva, L.V., Gavrish, E.Y., Gurina, L.V., Subbotin, A.S. and Takeuchi, M.
  853. Diversity and phylogeny of plant-nematode Microbacteriaceae Unpublished2 (bases 1 to 1507) Takeuchi, M.1. Direct Submission
  854. Submitted (21-APR-2000) Mariko Takeuchi, Institute for Fermentation, Osaka, Bacteria- 17−85, Juso-honmachi 2-chome, Yodogawa-ku, Osaka 532−8686, Japan
Заполнить форму текущей работой