Экологические аспекты бактериального восстановления сульфатов

Выводы.

1. Обоснована прямыми полевыми измерениями и лабораторными экспериментами существовавшая теоретическая концепция, по которой СВБ проводят восстановление сульфатов за счет донора водорода — доступного органического вещества даже при наличии в среде молекулярного водорода. Подтверждение этой концепции позволяет рассматривать СВБ как первичных деструкторов органического вещества и производить расчеты разрушенного органического вещества по продуктам сульфатредукции. Показано, что повышенное давление, аналогичное глубинному морскому, не оказывает существенного влияния на скорость сульфатредукции.

2. Впервые изучено распределение интенсивности сульфатредукции в донных осадках с применением статистической обработки. При этом показано, что определяющим фактором в распределении интенсивности сульфатредукции является не измеряемая суммарная концентрация органического вещества, как это трактовалось прежде, а его некоторая составляющая. В связи с этим, в дополнение к известной прежде (Леин, 1983) качественной зависимости скорости сульфатредукции в поверхностных илах от глубины моря определено уравнение этой зависимости: I = K/D, где I — скорость сульфатредукции, D — глубина моря, а К — эмпирические коэффициенты. Определены значения К для участков Черного моря и Индийского океанакорреляция расчетных и реальных значений превышает 0,99. Показано, что эта закономерность не описывает скорость сульфатредукции на устьевых станциях рек, впадающих в моря.

3. Обнаружен и измерен процесс сульфатредукции в кислородном слое воды непосредственно над анаэробной зоной. Процесс подтвержден присутствием СВБ и восстановлением радиоактивно меченого сульфата. При наличии кислорода процесс сульфатредукции может идти без накопления сероводорода. Одним из продуктов в этих условиях является тиосульфат. Впервые для целых клеток СВБ показано образование и возможность накопления промежуточных продуктов сульфатредукции, в частности — тиосульфата, который ранее рассматривали только в качестве промежуточного продукта в процессах окисления сероводорода.

4. Создано устройство для создания градиента ЕЬ. и измерено влияние величины ОВП на интенсивность образования сероводорода различными СВБ. Впервые определены оптимальные величины ЕЙ для представителей разных родов.

5. Исследовано воздействие геофизических факторов на СВБ. При этом впервые обнаружен новый тип магнитных внутриклеточных некристаллических включений или магниточувствительных структур (МЧС). Показано образование МЧС у СВБ (ЪетЦот1сгоЫит ЬасиШит) и широкое распространение МЧС среди прокариот. Предложены к обсуждению четыре возможные функции МЧС: магнитная ориентация клеток, привлечение магниточувствительных соединений к клеткам, депо железа в клетке, стимуляция магнитным полем лизиса клеток с формированием нанноклеток.

6. При исследованиях действия геофизических факторов показана и изучена ответная реакция бактериальных клеток на стрессовые физические воздействия, приводящая к формированию мелких клеточных образований (нанноформ и нанноклеток). Показано, что, в отличие от известных миниклеток сходных размеров, нанноклетки могут содержать генетический материал, достаточный, чтобы в благоприятных условиях реверсировать в исходную форму.

7. Создан банк СВБ в системе Всероссийской коллекции микроорганизмов, снабжающий отечественные и иностранные организации штаммамисоздана рабочая коллекция для прикладного скрининга. Выделен и описан новый вид СВБ: Оехи1/оЬас (егшт тасеяШ, способный к автотрофному росту.

8. Проведены широкомасштабные исследования жирнокислотного состава СВБ, позволяющие вести диагностику несколько широко распространенных родов этой физиологической группы по жирнокислотному составу биомассы. Показана неправомочность использования жирной кислоты iso 17:1 в качестве специфического маркера для рода Desulfoyibriio. Экспериментальными исследованиями показана неприемлемость количественного и таксонометрического анализов СВБ in situ по жирнокислотным маркерам в связи с отсутствием узкой специфичности для отдельных родов и вариациями содержаний в зависимости от используемых субстратов.

9. Разработан экспресс-метод диагностического группирования культур СВБ, содержащих цитохром, по измеряемым пикам цитохрома С.

10. Проведен скрининг СВБ для очистки сточных вод от растворенных металлов, в результате которого селектированы промышленные штаммы, нашедшие прикладное применение в индустрии. Разработаны способы биоремедиации сточных вод, загрязненных тяжелыми металлами.

Список публикаций по теме диссертации.

1. Горленко В. М., Вайнштейн М. Б., Качалкин В. И. 1975. Микробиология озера Могильного. Микробиологические процессы. В кн.: Реликтовое озеро Могильное (ред. В. И. Гуревич, Р.Я. Цееб), с.188−197. Л, Наука.

2. Gorlenko V.M., Vainstein М.В., Kachalkin V.l. 1978. Microbiological characteristic of Lake Mogilnoe. Arch.Hydrobiol. V.81 (4), p.475−492.

3. Вайнштейн М. Б. 1978. Учет политионатов — дополнение к радиоизотопной (S) методике. Информ. бюл. ИБВВ АН СССР, № 37, с.8−10.

4. Горленко В. М., Чеботарев E.H., Вайнштейн М. Б. 1980. Бактерии круговорота серы и железа в низкосульфатном меромиктическом озере Кузнечиха. Микробиология. Т.49 (5), с.804−812.

5. Вайнштейн М. Б., Матросов А. Г., Баскунов Б. П., Зякун A.M., Иванов МЗ. 1980. О тиосульфате как промежуточном продукте бактериальной сульфатредукции. Микробиология. Т.49 (6), с.855−858.

6. Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. 1981. Темновое окисление тиосульфата пурпурными серными бактериями Ectothiorhodospira shaposhnikovii. Микробиология. Т.50 (6), с.960−963.

7. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. 1982. Влияние давления на интенсивность сульфатредукции иловой микрофлоры. Всес.конф." Анаэробные микроорганизмы". Тез.докл., с.48−50. Пущино, НЦБИ.

8. Леин А. Ю., Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Кашпарова Е. В., Матросов А. Г., Бондарь В. А., Иванов М. В. 1982. Биогеохимия анаэробного диагенеза современных осадков Балтийского моря. Геохимия. № 3, с.428−440.

9. Токарев В. Г., Ривкина Е. М., Горлатов С. М., Вайнштейн М. Б. 1982. Биогеохимические процессы в осадках юго-западного шельфа Каспийского моря. 5-ая Всес. школа морской геологии «Геология морей и океанов», т.1. Тез.докл., с. 123. Геленджик, ИОАН.

10. Артемьев В. Е., Демина J1. JL, Вайнштейн М. Б. 1982. Органическое вещество и микроэлементы в водах эстуария р. Кубань и юго-восточной части Азовского моря. Океанология. № 5, с.764−769.

11. Иванов М. В., Вайнштейн М. Б., Гальченко В. Ф., Горлатов С. Н., Леин А. Ю. 1984. Распространение и геохимическая деятельность бактерий в осадках. В кн.: «Нефтегазогенетич. исследования Болгарского сектора Черного моря» (ред. Геодекян A.A., Троцюк В. Я., Монахов И.Б.), с.150−180. София, БАН.

12. Вайнштейн М. Б., Леин А. Ю., Никитин В. А. 1985. Устройство для культивирования микроорганизмов. Авторское свидетельство SU 1 154 326.

13. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Леин А. Ю. 1985. Современные процессы восстановления сульфатов в осадках Индийского океана. В кн.: «Геохимия диагенеза осадков Индийского океана» (ред. И. И. Волков, А.Г. Розанов), с.45−52. М, ИОАН.

14. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б. 1985. Распространение различных физиологических групп микроорганизмов в донных отложениях Индийского океана. В кн.: «Геохимия диагенеза осадков Индийского океана» (ред. И. И. Волков, А.Г. Розанов), с.25−33. М, ИОАН.

15. Вайнштейн М. Б., Токарев В. Г., Шакола В. А., Леин А. Ю., Иванов М. В. 1985. Геохимическая деятельность сульфатвосстанавливающих бактерий в осадках западной части Черного моря. Геохимия, № 7, с. 1032−1044.

16. Ривкина Е. М., Горлатов С. Н., Токарев В. Г., Вайнштейн М. Б., Гальченко В. Ф. 1985. Биогеохимические процесс в донных осадках юго-западного шельфа Каспийского моря. Геохимия, № 10, с.1477−1486.

17. Намсараев Б. Б., Лухиойо M., Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. 1986. Общая численность микроорганизмов в современных донных осадках Черного моря. Микробиология. Т. 5 5 (5), с.846−850.

18. Леин А. Ю., Вайнштейн М. Б., Шакола В. А., Романкевич Е. А. 1986. Скорость биогеохимических процессов в мелководных осадках Болгарского шельфа Черного моря. Геохимия. № 10, с.1477−1486.

19. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. 1987. Влияние окислительно-восстановительного потенциала среды на интенсивность образования сероводорода сульфатредуцирующими бактериями. Микробиология. Т.56 (1), с.31−35.

20. Вайнштейн М. Б., Леин А. Ю., Намсараев Б. Б., Романкевич Е. А., Шакола В. А. 1987. Микрофлора и скорость редукционных процессов в донных осадках Болгарского шельфа. В кн.: «Биогеохимические исследования Болгарского шельфа» (ред. Е.А. Романкевич), с. 107−117. М, ИОАН.

21. Иванов М. В., Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Большаков A.M. 1988. Способ определения скорости биогенного образования газообразных углеводородов. Авторское свидетельство SU 1 410 663.

22. Vainshtein М.В., Gogotova G.I. 1988. The reduction potential of media for bacterial diagnostic. 6-th Int. Congress of Culture Coll. Abstr. p. 58−59. USA, WFCC.

23. Вайнштейн М. Б., Лауринавичус K.C. Учет и культивирование анаэробных бактерий. Пущино, НЦБИ, 1988, 63 с.

24. Вайнштейн М. Б., Никитин В. А., Дриняев В. А., Еремина Л. Е. 1989. Влияние окислительно-восстановительного потенциала среды на образование гентомицина. Антибиотики и химиотерапия. № 1, с.16−19.

25. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Большаков A.M. 1989. Учет микрофлоры, образующей углеводородные газы. Прикладная биохимия и микробиология. № 5, с.707−714.

26. Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. 1989. Описание сульфатредуцирующей бактерии, способной к автотрофному росту: Desulfobacterium macestii sp. nov. Микробиология. T.58 (1), c.76−80.

27. Самаркин B.A., Вайнштейн М. Б., Горлатов С. Н. 1990. Процессы сульфатредукции и метаногенеза в сульфидных водах Сочинского месторождения. 9-й Международный симп. по биогеохимии окружающей среды, с. 195. М, ВОНЦ АМН СССР.

28. Леин А. Ю., Иванов М. В., Вайнштейн М. Б. 1990. Баланс сероводорода в глубоководной части Черного моря. Микробиология. Т.59 (4), с.656−665.

29. Vainshtein М., Hippe Н., Kroppenstedt R.M. 1992. Cellular fatty acid composition of Desulfovibrio species and its use in classification of sulphate-reducing bacteria. Systematic and Applied Microbiology. V.15 (4), p.554−566.

30. Vainshtein M., Hippe H., Kroppenstedt R.M. 1992. Cellular fatty acids of sulfate-reducing bacteria: use for classification. Abstr. FEMS Symposium «Conference on taxonomy and automated identification of bacteria», p.47. Prague, Charles University.

31. Lein A.Y., Ivanov M.V., Vainshtein M.B. 1992. The hydrogen sulphide balance in the Black Sea. Mitteilungen d. Geologisch-Palaeontologischen Institut d. Universitaet Hamburg. H.72, p.165−180.

32. Вайнштейн М. Б., Никитина М. Г. 1992. Списки питательных сред. В кн.: «ИБФМ РАН. ВКМ. Каталог культур микроорганизмов» (Ред. Л. В. Калакуцкий, М.В. Фатеева), с. 230−248. Пущино-Москва, ВИНИТИ.

33. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. 1992. Сульфатвосстанавливающие бактерии в вечно-мерзлых почвах. Сборник трудов 1-ой Междунар. конф. по криопедологии, с.243−247. Пущино, НЦБИ.

34. Губин В. Е., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. 1994. Штамм Desulfovibrio desulfuricans ВКМ В-1732 D для осаждения металлов. Патент России RU 2 017 814.

35. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. 1994. Штамм бактерий Desulfomicrobium bacuialum, используемый для очистки сточных вод от ионов тяжелых металлов. Патент России RU 2 039 815.

36. Vainshtein M., Gogotova G., Hippe H. 1994. A sulfate-reducing bacterium from permafrost. In: «Viable Microorganisms in Permafrost» (Ed.D.Gilichinsky), p.68−74. Pushchino, Pushchino Research Centre.

37. Вайнштейн M.Б., Гоготова Г. И., Хиппе X. 1995. Сульфатвосстанавливающая бактерия из вечной мерзлоты. Микробиология. Т.64 (4), с. 514−518.

38. Hippe H., Vainshtein M., Kroppenstedt R.M. 1995. Cellular fatty acid composition and taxonomic significance in the genus Desulfotomaculum. Abstr. VAAM (26−29.03.1995). Biospectrum, Sonderausgabe, p.91.

39. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн M.Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. 1995. Штамм бактерий Desulfovibrio vulgaris, используемый для очистки сточных вод от ионов тяжелых металлов. Патент России RU 2 055 817.

40. Вайнштейн М. Б. 1996. Сульфатвосстанавливающие бактерии водоемов: экология и кластерирование. Прикладная биохимия и микробиология. Т.32 (1), с.125−132.

41. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. 1996. Использование спектральных характеристик цитохрома С в группировании сульфат-восстанавливающих бактерий. Микробиология. Т.65 (2), с. 160−164.

42. Вайнштейн М. Б., Сузина Н. Е., Кудряшова Е. Б., Сорокин В. В. 1996. Новый тип магниточувствительных включений в бактериальных / архебактериальных клетках. 4-й междунар. Симп. «Корреляции биологических и физикохимических процессов с космическими и гелио-геофизическими факторами», с. 54. Пущино, НЦБИ.

43. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. 1996. Штамм бактерий Desulfovibrio vulgaris ЭГАСТ-1, используемый для очистки сточных вод от ионов тяжелых металлов. Патент России RU 2 128 219.

44. Смирнова Г. Ф., Баглай С. В., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко А. С. 1997. Штамм бактерий Desulfbulbus propionicus «ЭГАСТ-2», используемый для очистки сточных вод от тяжелых металлов. Патент России RU 2 128 220.

45. Vainshtein М.В., Suzina N.E., Sorokin V.V. 1997. A new type of magnet-sensitive inclusions in cells of photosynthetic purple bacteria. Systematic and Applied Microbiology. V.20 (2), p.182−186.

46. Vainshtein M., Kudryashova E., Suzina N., Ariskina E., Voronkov V. 1998. Formation of bacterial nanocells. Proceedings of SPIE. V.3441, p.95−104.

47. Vainshtein M., Kudryashova E., Suzina N., Ariskina E., Sorokin V. 1998. Functions of non-crystal magnetosomes in bacteria. Proceedings of SPIE. V.3441, p.280−288.

48. Вайнштейн М. Б., Сузина H.E., Кудряшова Е. Б., Арискина Е. В., Сорокин В. В. 1998. К биоразнообразию магнитотактных бактерий. Микробиология. Т.67 (6), с. 807−814.

49. Смирнова Г. Ф., Баглай С. В., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко А. С. 1998. Штамм бактерий Desulfomicrobium apsheronum ВКМ В-2012 ЭГАСТ-3, используемый для очистки сточных вод от тяжелых металлов. Патент России RU 2 131 852.

50. Смирнова Г. Ф., Баглай С. В., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко А. С. 1998. Штамм бактерий Desulfovibrio sp. «ЭГАСТ-4», используемый для очистки сточных вод от ионов металлов. Патент России RU 2 135 422.

51. Вайнштейн М. Б., Кудряшова Е. Б. 2000. О наннобактериях. Микробиология. Т.69 (2), с.163−174.

52. Щербакова В. А., Вайнштейн М. Б. 2000. Образование метана сульфатвосстанавливаю-щей бактерией Desulfosarcina variabilis. Микробиология. Т.69 (3), с.341−344.

Заключение

.

Проблема бактериального восстановления сульфатов в анаэробных зонах водоемов оставалась в числе наиболее актуальных проблем водной микробиологии и биогеохимии. Развитие этого направления было усложнено неизбежными методическими трудностями, которые возникают при работе с анаэробными микроорганизмами, а также недостаточной изученностью самих микробиологических процессов, протекающих в бескислородной среде морей. Важность данного направления водной микробиологии очевидна, поскольку продолжающийся рост антропогенной эвтрофикации и загрязнения водоемов ведет к ухудшению их кислородного режима и к возрастанию доли анаэробных процессов в общей деструкции органического вещества.

В качестве основного ключа при решении поставленных задач был избран анализ скорости бактериального восстановления сульфатов in situ или в условиях, близких к условиям водоема. Такая стратегия в совокупности с многообразием исследованных биотопов позволила оценить зависимость интенсивности и механизмов процесса от экологических условий, в частности — от многих конкретных абиотических факторов.

Полученный массив новых данных и, что представляется более важным, выведенные из этих данных закономерности существенно расширяют сложившиеся представления о масштабах протекания бактериального восстановления сульфатов. Представленные сведения формируют новые представления о направленности процесса в экстремальных условиях (например: в аэробной зоне). Несмотря на разносторонний подход к одному выделяемому процессу — или именно благодаря этой разносторонностивозможен пусть не абсолютно количественный, но реалистичный экологический прогноз.

Особого внимания заслуживают абиотические факторы, роль которых мало изучена в экологии бактерий. Описаны новый тип магнитных включений в бактериальных клетках, и формирование мелких производных («нанноклеток») из подвергаемых физическому воздействию бактериальных клеток. Сравнение и сопоставление этих абиотических факторов с традиционно изучаемыми логично и уместно.

1. Алекин O.A., Семенов А. Д., Скопинцев Б. А. Руководство по химическому анализу вод суши.//Л, Гидрометеоиздат. 1973. 269 с.

2. Алексеев Ф. А., Войтов Г. И., Лебедев B.C., Несмелова З. Н. Метан. // М, Недра. 1978. 310 с.

3. Артемьев В. Е., Демина Л. Л., Вайнштейн М. Б. Органическое вещество и микроэлементы в водах эстуария р. Кубань и юго-восточной части Азовского моря. // Океанология. 1982. № 5. С.764−769.

4. Багаева Т. В. Способность сульфатвосстанавливающих бактерий различных таксономических групп к синтезу внеклеточных углеводородов. // Микробиология. 1997. Т.66. С.796−799.

5. Беляев С. С. Метанобразующие бактерии и их роль в биогеохимическом цикле углерода. // Диссертация на соискание ученой степени доктора биологических наук. Пущино, ИБФМ АН СССР. 1985. 296 с.

6. Беляев С. С., Иванов М. В. Радиоизотопный метод определения интенсивности бактериального метанобразования. // Микробиология. 1975. Т.44. С.166−168.

7. Боуден Ф. Биохимические функции молибдена. // В кн. «Методы и достижения бионеорганической химии», с.260−331. М, Мир. 1978.

8. Вайнштейн М. Б. Тионовые бактерии и их роль в круговороте серы в озерах. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. // Борок, ИБВВ АН СССР. 1976. 157 с.

9. Вайнштейн М. Б. Окисление сероводорода тионовыми бактериями. // Микробиология. Т.46 (1). 1977. С.1146−1116.

10. Вайнштейн М. Б. Определение политионатов: дополнение к радиоизотопной (35 S) методике. // Информ бюлл. ИБВВ АН СССР. 1978. № 37. С.8−10.

11. Вайнштейн М. Б. Сульфатвосстанавливающие бактерии водоемов: экология и кластерирование. // Прикладная биохимия и микробиология. 1996. Т.32 (1). С.125−132.

12. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. Влияние давления на интенсивность сульфатредукции у иловой микрофлоры. // Тез. докл. Симп. «Анаэробные микроорганизмы», с.48−50. Пущино, НЦБИ. 1982.

13. Вайнштейн М. Б., ГоготоваГ.И. Влияние окислительно-восстановительного потенциала среды на образование серововодорода сульфатвосстанавливающими бактериями. // Микробиология. 1987. Т.56 (1). С.31−35.

14. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И. Сульфатвосстанавливающие бактерии в вечно-мерзлых почвах. // Сборник трудов 1-ой Междунар. конф. по криопедологии, с. 243 247. Пущино, НЦБИ. 1992.

15. Вайнштейн М. Б., Кудряшова Е. Б. О наннобактериях. // Микробиология. 2000. Т.69 (2). С.163−174.

16. Вайнштейн М. Б., Лауринавичус К. С. Учет и культивирование анаэробных бактерий. // Пущино, НЦБИ. 1988, 63 с.

17. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б. Распространение различных физиологических групп микроорганизмов в донных отложениях Индийского океана. // В кн. «Геохимия диагенеза осадков Индийского океана», с.25−33. М, ИОАН. 1985.

18. Вайнштейн М. Б., Никитина М. Г. Списки питательных сред. // В кн.:"ИБФМ РАН. ВКМ. Каталог культур микроорганизмов" (Ред.Л. В. Калакуцкий, М.В.Фатеева), с. 230.

19. Пущино-Москва, ВИНИТИ. 1992.

20. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование спектральных характеристик цитохрома С в группировании сульфатвосстанавливающих бактерий. // Микробиология. 1996. Т.65 (2). С. 160−164.

21. Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Хиппе X. Сульфатвосстанавливающая бактерия из вечной мерзлоты.//Микробиология. 1995. Т.64 (4). С.514−518.

22. Вайнштейн М. Б., Леин А. Ю., Никитин В. А. Устройство для культивирования микроорганизмов.//Авторское свидетельство SU 1 154 326.1985 а.

23. Вайнштейн М. Б., Леин А. Ю., Намсараев Б. Б., Романкевич Е. А., Шакола В. А. Микрофлора и скорость редукционных процессов в донных осадках Болгарского шельфа. // В кн. «Биогеохимические исследования Болгарского шельфа», с. 107−117. М, ИОАН. 1987.

24. Вайнштейн М. Б., Матросов А. Г., Баскунов Б. П., Зякун A.M., Иванов М. В. Тиосульфат как промежуточный продукт бактериальной сульфатредукции. // Микробиология. 1981. Т.49 (6). С.855−858.

25. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Большаков A.M. Учет микрофлоры, образующей углеводородные газы. // Прикладная биохимия и микробиология. 1989 б. № 5. С.707−714.

26. Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Леин А. Ю. Современные процессы восстановления сульфатов в осадках Индийского океана. // В кн. «Геохимия диагенеза осадков Индийского океана», с.45−52. М, ИОАН. 1985.

27. Вайнштейн М. Б., Никитин В. А., Дриняев В. А., Еремина Л. Е. Влияние окислительно-восстановительного потенциала среды на образование гентамицина. // Антибиотики и химиотерапия. 1989 а. № 1. С. 16−19.

28. Вайнштейн М. Б., Сузина Н. Е., Кудряшова Е. Б., Арискина Е. В., Сорокин В. В. К разнообразию магнитотактных бактерий. // Микробиология. 1998. Т.67 (6). С.807−814.

29. Вайнштейн М. Б., Токарев В. Г., Шакола В. А., Леин А. Ю., Иванов М. В. Геохимическая деятельность сульфатвосстанавливающих бактерий в осадках западной части Черного моря.//Геохимия. 1985. № 7. С. 1032−1044.

30. Вебер В. В., Туркельтауб Н. М. Образование газообразных углеводородов в современных морских осадках. // В кн. «Вопросы седиментологии», с.9−16. М, Гостоптехиздат. 1960.

31. Верховцева Н. В. Бактериальное образование магнетита и магнитотаксис. // Успехи микробиологии. 1993. Т.25. С.51−79.

32. Верховцева Н. В. Трансформация соединений железа гетеротрофными бактериями. // Микробиология. 1995. Т.64. С.473−478.

33. Вершинин A.B., Розанов А. Г. К вопросу об измерении Eh с помощью платинового электрода и об оценке окислительно-восстановительных условий в морских средах. // Геохимия. 1982. № 1. С.121−128.

34. Волков И. И. Геохимия серы в осадках океана. // М, Наука. 1984. 272 с.

35. Волков И. И., Жабина H.H. Методы определения различных соединений серы в морских осадках. // В кн. «Химический анализ морских осадков», с.5−27. М, Наука. 1980.

36. Волков И. И., Жабина H.H., Демидова Т. П., Соколов B.C. Окислительно-восстановительные процессы в осадках зоны Перуанского апвеллинга. // В кн. «Геохимическая деятельность микроорганизмов в осадках Тихого океана», с.92−134. Пущино, НЦБИ. 1981.

37. Волков И. И., Жабина H.H., Соколов B.C., Демидова Т. П., Морозов A.A., Пушкина З. В. Соединения серы в осадках Аравийской части Индийского океана. // Геохимия. 1981. Вып.10. С.1569−1590.

38. Волков И. И., Розанов А. Г., Жабина H.H., Фомина JI.C. Соединения серы в осадках Калифорнийского залива и прилегающей части Тихого океана. // В кн. «Биогеохимия диагенеза осадков океана», с. 136−170. М, Наука. 1976.

39. Волынский Н. П. Тиосерная кислота. Политионаты. Реакция Вакенродера. // М, Наука. 1971.79 с.

40. Геодекян A.A., Троцюк В. Я., Берлин Ю. М., Пиляк B. JL Генетические закономерности нефтегазоносности акваторий. // М, Недра. 1980. 269 с.

41. Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. Темновое окисление тиосульфата пурпурными серными бактериями Ectothiorhodospira shaposhnikovii. II Микробиология. 1981. Т.50 (6). С.960−963.

42. Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. Описание сульфатредуцирующей бактерии, способной к автотрофному росту: Desulfobacterium macestii sp.nov. II Микробиология. 1989. T.58 (1). C.76−80.

43. Горленко B.M., Вайнштейн М. Б., Качалкин В. И. Микробиология озера Могильного. Микробиологические процессы. //В кн. «Реликтовое озеро Могильное», с. 188−197. JI, Наука. 1975.

44. Горленко В. М., Дубинина Г. И., Кузнецов С. И. Экология водных микроорганизмов. // М, Наука. 1977. 288 с.

45. Горленко В. М., Чеботарев E.H., Вайнштейн М. Б. Бактерии круговорота серы и железа в низкосульфатном меромиктическом озере Кузнечиха. // Микробиология. 1980. Т.49 (5). С.804−812.

46. Громов Б. В. Строение бактерий. // Л, ЛГУ. 1985. 190 с.

47. Громов Б. В., Павленко Г. В. Экология бактерий. // Л, ЛГУ. 1989. 248 с.

48. Жоров В. А., Еремеев В. Н., Богуславский С. Г., Калашникова Ю. С. Особенности распределения и пространственно-временная изменчивость поля сероводорода в Черном море. // Геохимия. 1984. № 3. С.421−429.

49. Иванов М. В. Использование изотопов для исследования процесса сульфатредукции в озере Беловодь. //Микробиология. 1956. Т.25 (3). С.305−309.

50. Иванов M.B. Роль микробиологических процессов в генезисе месторождений серы. // М, Наука. 1964. 368 с.

51. Иванов М. В. Распространение и геохимическая активность сульфатредуцирующих бактерий. // В кн. «Глобальный биогеохимический цикл серы и влияние на него деятельности человека», с.322−335. М, Наука. 1983.

52. Иванов М. В., Леин А. Ю., Кашпарова Е. В. Интенсивность образования и диагенетического преобразования восстановленных соединений серы в осадках Тихого океана. // В кн. «Биогеохимия диагенеза осадков океана», с. 171−178. М, Наука. 1976.

53. Иванов М. В., Вайнштейн М. Б., Гальченко В. Ф., Горлатов С. Н., Леин А. Ю. Распространение и геохимическая деятельность бактерий в осадках. // В кн. «Нефтегазогенетич. исследования Болгарского сектора Черного моря», с. 150−180. София, БАН. 1984.

54. Иванов М. В., Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Самаркин В. А., Большаков A.M. Способ определения скорости биогенного образования газообразных углеводородов. // Авторское свидетельство SU 1 410 663. 1988.

55. Иванов М. В., Камаева С. С., Чурилин B.C., Сапожникова Г. А., Могильницкий Г. М., Зиневич A.M., Федосеев В. М. Способ определения интенсивности биогенной сульфатредукции почв и грунтов. // Авторское свидетельство SU 1 096 582. 1984.

56. Иванова А. Е. Углеводородокисляющие и сульфатвосстанавливающие бактерии высокотемпературных нефтяных пластов. // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. М, ИНМИ РАН. 1998. 198 с.

57. Илялетдинов А. Н. Очистка промышленных сточных вод от металлов. // В кн.: «Биотехнология металлов», гл. 7.1, с.352−364. М, Центр международных проектов ГКНТ. 1989.

58. Иорданский А. Катастрофа становится привычной. // Химия и жизнь. 1976. № 9. С.48−49.

59. Каравайко Г. И., Кузнецов С. И., Голомзик А. И. Роль микроорганизмов в выщелачивании из металлов из руд. // М, Наука. 1972. 248 с.

60. Кондратьева E.H. Хемолитотрофы и метилотрофы. // М, МГУ. 1983. 171 с.

61. Красильников H.A., Дуда В. И. Общая характеристика бактерий и актиномицетов. // В кн.: «Жизнь растений», т.1, с. 181. М, Просвещение. 1974.

62. Кужиновский A.A. Участие микроорганизмов в процессах деструкции органического вещества в шельфовой зоне Черного моря. // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. М, ИНМИ РАН. 1992. 204 с.

63. Кузнецов С. И. Микрофлора озер и ее геохимическая деятельность. // Л, Наука. 1970. 440 с.

64. Кузнецов С. И., Дубинина Г. А. Методы изучения водных микроорганизмов. // М, Наука. 1989. 287 с.

65. Кузнецов С. И., Саралов А. И., Назина Т. Н. Микробиологические процессы круговорота углерода и азота в озерах. // М, Наука. 1985. 213 с.

66. Леин А. Ю. Биогеохимия серы в осадочном цикле пород. // Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора геолого-минералогических наук. М, ГЕОХИ АН СССР. 1983.36 с.

67. Леин А. Ю., Иванов М. В., Вайнштейн М. Б. Баланс сероводорода в глубоководной части Черного моря.//Микробиология. 1990. Т.59 (4). С.656−665.

68. Леин А. Ю., Вайнштейн М. Б., Намсараев Б. Б., Кашпарова Е. В., Матросов А. Г., Бондарь В. А., Иванов М. В. Биогеохимия анаэробного диагенеза современных осадков Балтийского моря. // Геохимия. 1982. № 3. С.428−440.

69. Леин А. Ю., Вайнштейн М. Б., Шакола В. А., Романкевич Е. А. Скорость биогеохимических процессов в мелководных осадках Болгарского шельфа Черного моря.//Геохимия. 1986. № 10. С.1477−1486.

70. Маркиз Р., Мацумура П. Жизнь микробов в условиях повышенного давления. // В кн. «Жизнь микробов в экстремальных условиях», с.124−185. М, Мир. 1981.

71. Намсараев Б. Б. Микробная деструкция органического вещества в анаэробных зонах водоемов. // Диссертация на соискание ученой степени доктора биологических наук. М, ИНМИ РАН. 1992. 251 с.

72. Намсараев Б. Б., Лухиойо М., Гоготова Г. И., Вайнштейн М. Б. Общая численность микроорганизмов в современных донных осадках Черного моря. // Микробиология. 1986. Т.55 (5). С.846−850.

73. Павлович С. А. Магнитное поле как экологический фактор изменения микроорганизмов. // В кн. «Физико-математические и биологические проблемы воздействий электромагнитных полей и ионизации воздуха», т.2, с.122−130. М, Наука. 1975.

74. Павлович С. А. Магниточувствительность и магнитосеисорность микроорганизмов. // Минск, Беларусь. 1981. 172 с.

75. Прозоровский C.B., Кац JI.H., Каган Г. Я. L-формы бактерий. Механизм образования, структура, роль в патологии. // М, Медицина. 1981. 237 с.

76. Работнова И.JI. Роль физико-химических условий (pH и rlh) в жизнедеятельности микроорганизмов.//М, Издательство АН СССР. 1957. 257 с.

77. Резников A.A., Муликовская Е. П., Соколов И. В. Методы анализа природных вод. // М, Наука. 1970. 328 с.

78. Реймерс Н. Ф. Популярный биологический словарь.//М, Наука. 1991.

79. Ривкина Е. М., Горлатов С. Н., Токарев В. Г., Вайнштейн М. Б., Гальченко В. Ф. Биогеохимические процесс в донных осадках юго-западного шельфа Каспийского моря. // Геохимия. 1985. № 10. С.1477−1486.

80. Розанов А. Г., Мищенко В. В., Яшкичев В. И. «Пневмопресс» установка для получения иловых вод.//Океанология. 1978. Т.48. С.353−357.

81. Розанова Е. П., Кузнецов С. И. Микрофлора нефтяных месторождений. // М, Наука. 1974. 197 с.

82. Розанова Е. П., Назина Т. Н. Мезофильная палочковидная бесспоровая бактерия, восстанавливающая сульфаты. // Микробиология. 1976. Т.45 (5). С.825−830.

83. Розанова Е. П., Назина Т. Н. Сульфатвосстанавливающие бактерии (систематика и метаболизм). // Успехи микробиологии. 1989. С.191−226. М, Наука.

84. Розанова Е. П., Назина Т. Н., Галушко A.C. Выделение нового рода сульфатвосстанавливающих бактерий и описание нового вида этого рода Desulfomicrobium apsheronum gen.nov., sp. nov. II Микробиология. 1988. T.57 (4). С.634−641.

85. Романенко В. И., Кузнецов С. И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство.//J1, Наука. 1974. 194 с.

86. Самаркин В. А., Вайнштейн М. Б., Горлатов С. Н. Процессы сульфатредукции и метаногенеза в сульфидных водах Сочинского месторождения. // Тез. докл. 9-й Международный симп. по биогеохимии окружающей среды, с. 195. М, ВОНЦ АМН СССР. 1990.

87. Саралов Л. И., Дзюбан А. Н., Вайнштейн М. Б. Фиксация молекулярного азота в меромиктических озерах Марийской АССР. // В кн.: «Микробиологические и химические процессы деструкции органического вещества в водоемах», с.95−114. Л, Наука. 1979.

88. Скопинцев Б. А. Формирование современного химического состава вод Черного моря. //J1, Гидрометеоиздат. 1975. 338 с.

89. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Штамм бактерий Desulfomicrobium baculatum для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 039 815. 1994.

90. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование штамма бактерий Desulfovibrio vulgaris для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 055 817. 1995.

91. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование штамма бактерий Desulfovibrio vulgaris «ЭГАСТ-1» для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 128 219. 1996.

92. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование штамма бактерий Desulfbulbus propionicus «ЭГАСТ-2» для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 128 220. 1997.

93. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование штамма бактерий Desulfomicrobium apsheronum ВКМ М-2012 «ЭГАСТ-3» для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 131 852. 1998 а.

94. Смирнова Г. Ф., Баглай C.B., Вайнштейн М. Б., Гоготова Г. И., Галушко A.C. Использование штамма бактерий Desulfovibrio sp. «ЭГАСТ-4» для удаления ионов тяжелых металлов из сточных вод. // Патент России RU 2 135 422. 1998 б.

95. Сорокин Ю. И. О роли углекислоты и ацетата в биосинтезе у сульфатредуцирующих бактерий. // ДАН СССР. 1966 а. Т. 168 (1). С. 199−201.

96. Сорокин Ю. И. Источники энергии и углерода для биосинтеза у сульфатредуцирующих бактерий. // Микробиология. 1966 б. Т.35 (5). С.761−765.

97. Сорокин Ю. И. Исследование конструктивного обмена сульфатредуцирующих бактерий с помощью 14 С. // Микробиология. 1966 в. Т.35 (6). С.967−977.

98. Сорокин Ю. И. О механизме химического и биологического окисления сульфидов натрия, кальция и железа. // Микробиология. 1970. Т.39. С.253−258.

99. Сорокин Ю. И. Черное море. // М, Наука. 1982. 217с.

100. Терентьев A.A. Органический анализ. // М, МГУ. 1966. 407 с.

101. Тимаков В. Д., Каган Г .Я. L-формы бактерий и семейство Mycoplasmataceae в патологии. // М, Медицина. 1973. 392 с.

102. Троцюк В. Я. Прогноз нефтегазоносности акваторий. // М, Недра. 1982. 200 с.

103. Устинов В. И., Гриненко В. А. Прецизионный масс-спектрометрический метод определения изотопного состава серы. // М, Наука. 1965. 96 с.

104. Чеботарев Е. Н. Микробиологическое образование сероводорода в пресных карстовых озерах Большой Кичиер и Черный Кичиер. // Микробиология. 1974. Т.43 (6). С.1101−1106.

105. Чеботарев Е. Н., Матросов А. Г., Кудрявцева А. И., Зякун A.M., Иванов М. В. Фракционирование стабильных изотопов серы при микробиологических процессах в Славянских озерах. // Микробиология. 1975. Т.44 (2). С.304−308.

106. Чернощеков К .А., Лепехин А. В. Материализация идей А. Л. Чижевского в эпидемиологии и микробиологии. // Томск, Сибирский медицинский институт. 1993. 273 с.

107. Щербакова В. А., Вайнштейн М. Б. Образование метана сульфатвосстанав-ливающей бактерией Desulfosarcina variabilis. // Микробиология. 2000. Т.69 (3). С.341−344.

108. Abdollahi Н., Wimpenny J.W.T. Effect of oxygen on the growth of Desulfovibrio desulfuricans. II J. gen. Microbiol. 1990. V.136. P. 1025−1030.

109. Akerman K.K., Kuronen I., Kajander E.O. Scanning electron microscopy of nanobacteria Novel biofilm producing organisms in blood. // Scanning. 1993. V.15 (III). P.90−91.

110. Andersen S.T., Jorgensen B.B. Sulfate reduction and the fomation of the 35S-labeled FeS, FeS2, and S° in coastal marine sediments. // Limnol. Oceanogr. 1989. V.34. P.793−806.

111. Anderson J.I.W., Heffernan W.P. Isolation and characterization of filterable marine bacteria.//J. Bacteriol. 1965. V.90.P.1713−1718.

112. Andreesen J.R., Ljungdahl L.G. Formiate dehydrogenase of thermoaceticum: incorporation of selenium-75, and the effects of selenite, molybdate, and tungstate on the enzyme. // J. Bacteriol. 1973. V. l 16 (2). P.867−873.

113. Badziong W., Thauer R.K. Growth yields and growth rates of Desulfovibrio vulgaris (Marburg) growing on hydrogen plus sulfate and hydrogen plus thiosulfate as the sole energy sources. // Arch. Microbiol. 1978. V. l 17 (2). P.209−214.

114. Badziong W., Thauer R.K. Vectorial electron transport in Desulfovibrio vulgaris (Marburg) growing on hydrogen plus sulfate as sole energy source. // Arch. Microbiol. 1980. V.125 (2). P.167−174.

115. Badziong W., Thauer R.K., Zeikus J.G. Isolation and characterization of Desulfovibrio growing on hydrogen plus sulfate as the sole energy source. // Arch. Microbiol. 1978. V. l 16 (1). P.41−49.

116. Bae H.C., Cota-Robles E.H., Casida L.E., Jr. Microflora of soil as viewed by transmission electron mnicroscopy. // Appl. Microbiol. 1972. V.23. P.637−648.

117. Bak F., Widdel F. Anaerobic degradation of indolic compounds by sulfate-reducing enrichment cultures, and description of Desulfobacterium indolicum gen. nov., sp. nov. II Arch. Microbiol. 1986 a. V.146 (2). P. 170−176.

118. Bak F., Widdel F. Anaerobic degradation of phenol and phenol derivatives by Desulfobacteriumphenolicum sp.nov. II Arch. Microbiol. 1986 b. V.146 (2). P.177−180.

119. Balba M.T., Nedwell D.B. Microbial metabolism of acetate, propionate and butyrate in anoxic sediment from the colne point saltmarsh. // J. Gen. Microbiol. 1982. V. l28 (7).1. P.1415−1422.

120. Balch W.E., Fox G.E., Magrum L.J., Woese C.R., Wolfe R.S. Methanogens: reevaluation of a unique biological group. // Microbiol. Rev. 1979. V.43. P.260−296.

121. Banat I.M., Lindstrom B.E., Nedwell D.B., Balba H.T. Evidence for coexistence of two distinct functional groups of sulfate-reducing bacteria in salt marsh sediments. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.42 (6). P.985−992.

122. Banat I.M., Nedwell D.B. Inhibition of sulphate reduction in anoxic marine sediment by group VI anions. // Estuar. Coast Shelf. Sc. 1984. V.18 (3). P.361−366.

123. Bazylinski D.A., Frankel R.B., Jannasch H.W. Anaerobic magnetite production by a marine magnetotactic bacterium. // Nature. 1988. V.334. P.518−519.

124. Beech I.B. The potential use of atomic force microscopy for studying corrosion of metals in the presence of bacterial biofilms An overview. // Intern. Biodeterioration & Biodegradation. 1996. V.37 (3−4). P.141−149.

125. Bjorklund M., Ciftcioglu N., Kajander E.O. Extraordinary survival of nanobacteria under extreme conditions. // SPIE Proceedings. 1998. V.3441. P.123−129.

126. Blakemore R.P. Magnetotactic bacteria. // Science. 1975. V.190. P.377−379.

127. Boivin J. Control of microbiologically influenced corrosion in oil transmission pipelines. //Materials Performance. 1997. V.36 (7). P.53−55.

128. Bradford, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. // Anal. Biochem. 1976. V.72. P.248−254.

129. Britigan B.E., Hayek M.B., Doebbeling B.N., Fick R.B. Jr. Transferrin and lactoferrin undergo proteolytic cleavage in the Pseudomonas aeruginosa infected lungs of patients with cystic fibrosis. // Infect. Immun. 1993. V.61. P.5049−5055.

130. Butlin K.R., Adams M.E. Autotrophic growth of sulphate-reducing bacteria. // Nature. 1947. V.160.P.154.

131. Butlin K.R., Adams M.E., Thomas M. The isolation and cultivation of sulphate-reducing bacteria.//J. Gen. Microbiol. 1949. V.3 (1). P.46−59.

132. Cammack R., Patil D., Aguirre R., Hatchikian E.C. Redox properties of the ESR-detectable nickel in hydrogenase from Desulfovibrio gigas. IIFEBS Lett. 1982. V.142. P.289−292.

133. Campaignolle X., Caumette P., Dabosi F., Crolet J.L. The role of thiosulfate on the microbially induced pitting of carbon steel. // Rev. Metallurgie Cahiers Inform. Techn. 1996. V.93 (12). P.1579−1588.

134. Campaignolle X., Crolet J.L. Method for studying stabilization of localized corrosion on carbon steel by sulfate-reducing bacteria. // Corrosion. 1997. V.53 (6). P.440−447.

135. Canfield D.E. Sulfate reduction in deep-sea sediments. // Am. J. Sci. 1991. V.291. P.177−188.

136. Canfield D.E., Raiswell R., Westrich J.T., Reaves C.M., Berner R.A. The use of the chromium reduction in the analysis of reduced inorganic sulfur in sediments and shales. // Chem. Geol. 1986. V.54 P.149−155.

137. Canfield D.E., DesMarais D.J. Aerobic sulfate reduction in microbial mats. // Science. 1991. V.251 (5000). P.1471−1473.

138. Chambers L. A., Trudinger P.A. Are thiosulfate and trithionate intermediates in dissimilatory sulfate reduction? // J. Bacteriol. 1975. V.123 (1). P.36−40.

139. Chen K.J., Morris J.C. Kinetics of oxidation of aqueous sulfide by O2. // Environm. Sci. Technol. 1972. V.6. P.529−537.

140. Christensen D. Determination of substrates oxidizied by sulfate reduction in intact cores of marine sediments. // Limnol. Oceanography. 1984. V.29. P. 189−192.

141. Christensen B., Torsvik T., Lien T. Immunomagnetically captured thermophilic sulfate-reducing bacteria from North Sea Oil field waters. // Appl. Envir. Microbiol. 1992.V.58 (4). P.1244−1248.

142. Ciftcioglu N., Bjorklund M., Kajander E.O. Stone formation and calcification by nanobacteria in the human body. // SPIE Proceedings. 1998. V.3441. P. 105−111.

143. Clegg C.D., van Elsas J.D., Anderson J.M., Lappin Scott H.M. Survival of parental and genetically modified derivatives of a soil isolated Pseudomonas fluorescens under nutrient-limiting conditions. // J. Appl. Bacteriol. 1996. V.81. P.19−26.

144. Cline, J. D. Spectrophotometric determination of hydrogen sulfide in natural waters. // Limnol. Oceanogr. 1969. V.14. P.444−458.

145. Collins M.D., Widdel F. Respiratory quinones of sulphate-reducing and sulphur-reducing bacteria: a systematic investigation. // Syst. Appl. Microbiol. 1986. V.8 (1). P.8−18.

146. Cord-Ruvisch R., Widdel F. Corroding iron as a hydrogen source for sulfate reduction in growing cultures of sulfate-reducing bacteria. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1986. V.25.1. P. 169−174.

147. Costello J.A. Cathodic depolarization by sulphate-reducing bacteria. // S.A.J.SCI. 1974. V.70. P.202−240.

148. Crisogono V., McKenzie J. A. Microbial mediation of modern dolomite precipitation and diagenesis under anoxic conditions (Lagoa Vermelha, Rio de Janereiro, Brazil). // Sediment. Res. 1997. V.67. P.378−390.

149. Cypionca H., Widdel F., Pfennig N. Survival of sulfate-reducing bacteria after oxygen-stress, and growth in sulfate-free oxygen-sulfide gradient. // FEMS Microbiol. Ecol. 1985. V.31. P.39−45.

150. Defranca F.P., Lutterbach M.T.S. Variation in sessile microflora during biofilm formation on AISI-304 stainless steel coupons. // J. Industr. Microbiol. 1996. V.17 (1). P.6−10.

151. Delong E.F., Frankel R.B., Bazylinsky D.A. Multiple evolutionary origins of magnetotaxis in bacteria. // Science. 1993. V. 259 (5096). P.803−806.

152. Dienes L., Weinberger H. The L-forms of bacteria. // Bacteriol. Rev. 1951. V.15. P.245−288.

153. Dienes L. Morphology and reproductive processes of bacteria with defective cell wall. // In: «Microbial Protoplasts, Spheroplasts and L-Forms», p.74−93. Baltimore, Williams & Wilkins. 1967.

154. Dilling W., Cypionka H. Aerobic respiration in the sulfate-reducing bacteria. // FEMS Microbiol. Lett. 1990. V.71. P.123−128.

155. Dunn J.R., Fuller M., Zoeger J., Dobson J., Heller F., Hammann J., Caine E., Moskowitz B.M. Magnetic material in the human hippocampus. // Brain Research Bulletin. 1995. V.6. P. 149−153.

156. Eerolen E., Lehtonen O.P. Optimal data processing procedure for automating bacterial identification by gas-liquid chromatography of cellular fatty acids. // J.Clin. Microbiol. 1988. V.26. P.1745−1753.

157. Englert G.E., Muller I.L. The corrosion behaviour of mild steel and type 304 stainless steel in media from an anaerobic biodigestor. // Intern. Biodeterioration Biodegradation. 1996. V.37 (3−4). P.173−180.

158. Enos D.G., Taylor S.R. Influence of sulfate-reducing bacteria on alloy 625 and austenitic stainless steel weldments.// Corrosion. 1996. V.52 (11). P.831−842.

159. Fauque G.D. Ecology of sulfate-reducing bacteria. // In: «Sulfate-reducing Bacteria», p.217−241. New York, Plenum Press. 1995.

160. Feugeas F., Ehret G., Cornet A. Electron microprobe and characterization of biofilms on steel. // J. Physique IV. 1996. V.6 (4). P.931−937.

161. Feugeas F., Magnin J.P., Cornet A., Rameau J.J. Microbiologically influenced corrosion: Biofilm influence on steel corrosion, recent techniques and results. // J. Physique III. 1997. V.7(3). P.631−663.

162. Florianovich G.M., Reformatskaya I.I. On the passivation and repassivation potentials of metals. // Protect. Metals. 1997. V.33 (4). P.303−311.

163. Folk R.L. Bacteria and nannobacteria revealed in hardgrounds, calcite cements, native sulfur, sulfide minerals, and travertines. // Proc. Geol. Soc. Amer. Ann. Meeting, p. 104. 1992.

164. Folk R.L. SEM imaging of bacteria and nannobacteria in carbonate sediments and rocks. // J. Sediment. Petrol. 1993. V.63. P.990−999.

165. Folk R.L. Interaction between bacteria, nannobacteria and mineral precepitation in hot springs of Central Italy. // Geogr. Phys. Quat. 1994. V.48. P.233−246.

166. Folk R.L. In defense of nannobacteria. // Science. 1996. V.274 (5291). P.1288.

167. Folk R.L. Nannobacteria: surely not figments, but what under heaven are they? NaturalSCIENCE. 1997. V.l. Art.3 (http://naturalscience.com).

168. Folk L. Nannobacteria in the natural environment and in medicine. // Alpe Adria Microbiol. Journal. 1998. V.7. P.87−95.

169. Folk R.L., Lynch F.L. Nannobacteria are alive on Earth as well as Mars. // SPIE Proceedings. 1997 a. V.3111. P.406−419.

170. Folk R.L., Lynch F.L. The possible role of nannobacteria (dwarf bacteria) in clay mineral diagenesis and the importance of careful sample preparation. // J. Sed. Res. 1997 b. V.67. P.597−603.

171. Folk R.L., Noble P.J., Gelato G., McLean R.J.C. Precipitation of opal-CT lepispheres, chalcedony, and chert nodules by nannobacteria (dwarf bacteria). // Proc. Geol. Soc. Amer. Ann. Meeting, Abs. A-305. 1995.

172. Fossing H., Jorgensen B.B. Measurement of bacterial sulfate reduction in sediments: evaluation of a single-step chromium reduction method. // Biogeochemistry. 1989. V.8. P .205−222.

173. Frankel R.B., Blakemore R.P., Torres de Araujo F.F., Esquivel D.M.S., Danon J. Magnetotactic bacteria at geomagnetic equator. // Science. 1981. V.212. P.1269−1270.

174. Frankel R.B. Magnetic guidance of organisms. // Annu. Rev. Biophys. Bioeng. 1984. V.13. P.85−10.

175. Fukui M., Takii S. Survival of sulfate-reducing bacteria in oxic surface sediment of a saltwater lake. // FEMS Microbiol. Ecol. 1990. V.73. P.317−322.

176. Gibson, G. R. Physiology and ecology of the sulfate-reducing bacteria. // J. Appl. Bacteriol. 1990. V.l. P.769−797.

177. Gorby Y.A., Beveridge T.J., Blakemore R.P. Characterization of the bacterial magnetosome membrane. // J. Bacteriol. 1988. V.170. P. 833−841.

178. Gorlenko V.M., Vainshtein M.B., Kachalkin V.I. Microbiological characteristic of the Lake Mogilnoe. // Arch.Hydrobiol. 1978. V.81 (4). P.475−492.

179. Grabke H.J. The role of nitrogen in the corrosion of iron and steels. // ISIJ Intern. 1996. V.36 (7). P.777−786.

180. Grobe S., Prinz W., Schoneich H.G., Wingender J. Influence of sulfate-reducing bacteria on cathodic protection. // Werkstoffe u. Korrosion-Materials a. Corrosion. 1996. V.47 (8). P.413−424.

181. Guezennec J.G., Therene M. A study of the influence of cathodic protection on the growth of sulfate-reducing bacteria in marine sediments by electrochemical techniques. // In: «Microbial Corrosion», p.256−265. Amsterdam, Elsevier Science. 1988.

182. Guezennec J., Dowling N., Bullen J., White D.C. Relationship between bacterial colonization and cathodic current density associated with mild steel surfaces. // Biofouling. 1994. V.8. P.133−146.

183. Hagenauer A., Hippe H., Rainey F.A. Desulfotomaculum aeronauticum sp. nov., a sporeforming, thiosulfate-reducing bacterium from corroded aluminium alloy in an aircraft. //Syst. Appl. Microbiol. 1997. V.20 (1). P.65−71.

184. Hamilton W.A. Sulphate-reducing bacteria and anaerobic corrosion. // Ann. Rev. Microbiol. 1985. V.39.P.195−217.

185. Hanke M., Katz J. An electrolytic method for controlling oxidation-reduction potential and its application in the study of anaerobiosis. // Arch. Biochem. 1943. V.2 (2). P.183−200.

186. Hardy J.A. Utilization of cathodic hydrogen by sulphate-reducing bacteria. // Br. Corros. J. 1983. V.18. P.190−193.

187. Hardy J.A., Hamilton W.A. The oxygen tolerance of sulfate-reducing bacteria isolated from North Sea waters. // Current Microbiol. 1985. V.6. P.259−262.

188. Himmelreich R., Hilbert H., Plagens H., Pirkl E., Li B.C., Herrmann R. Complete sequence analysis of the genome of the bacterium Mycoplasma pneumoniae. II Nucleic Acid Res. 1996. V.24. P.4420−4449.

189. Hippe H., Vainshtein M., Kroppenstedt R.M. Cellular fatty acid composition and taxonomic significance in the genus Desulfotomaculum. II Abstr. VAAM (26−29.03.1995). Biospectrum, Sonderausgabe, p.91. 1995.

190. Hood M.A., MacDonnel M.T. Distribution of ultramicrobacteria in a gulf coast estuary and induction of ultramicrobacteria. // Microb. Ecol. 1987. V.14. P.113−127.

191. Imhoff-Stuckle D., Pfennig N. Isolation and characterization of a nicotinic acid-degradating sulfate-reducing bacterium, Desulfococcus niacini sp.nov. II Arch. Microbiol. 1983. Y.136 (3). P.194−198.

192. Ingvorsen K., Zeikus J.G., Brock T.D. Dynamics of bacterial sulfate reduction in a eutrophic lake. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.42 (6). P. 1029−1036.

193. Jayaraman A., Cheng E.T., Earthman J.C., Wood T.K. Axenic aerobic biofilms inhibit corrosion of SAE1018 steel through oxygen depletion. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997. V.48 (1). P. l 1−17.

194. Jayaraman A., Earthman J.C., Wood T.K. Corrosion inhibition by aerobic biofilms on SAE 1018 steel. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997. V.47 (1). P.62−68.

195. Jones B., Renaut R.W. Formation of silica oncoids around geysers and hot springs at El Tatio, northern Chile.//Sedimentology. 1997. V.44. P.287−304.

196. Jorgensen B.B. Bacterial sulfate reduction within reduced micro-niches of oxidized marine sediments. // Marine Biol. 1977. V.41 (1). P.7−17.

197. Jorgensen B .B. A comparison of methods for the quantification of bacterial sulphate reduction in coastal marine sediment. // Geomicrobiol. J. 1978. V. 1. P. 11 -64.

198. Jorgensen B.B. Mineralization of organic matter in the sea bed the role of sulfate reduction.//Nature. 1982. V.296 (5858). P.643−645.

199. Jorgensen B.B. A thiosulfate shunt in the sulfur cycle of marine sediments. // Science.1990. V.240. P.152−154.

200. Jorgensen B.B. Sulfate reduction and thiosulfate transformation in a cyanobacterial mat during a dial oxygen cycle. // FEMS. Microbiol. Ecol. 1994. V.13. P.303−312.

201. Jorgensen B.B., Bak F. Pathways and microbiology of thiosulfate transformations and sulfate reduction in a marine sediment (Kattegat, Denmark). // Appl. Environ. Microbiol.1991. V.57. P.847−856.

202. Jorgensen B.B., Fenchel T. The sulphur cycle of a marine sediment model system. // Marine Biol. 1974. V.24. P. 189−201.

203. Jorgensen B., Kuenen J.G., Cohen Y. Microbial transformations of sulfur compounds in a stratified lake (Solar Lake, Sinai). // Limnol. Oceanogr. 1979. V.24 (5). P.799−822.

204. Kajander E.O. Culture and detection method for sterile-filterable autonomously replicating biological particles. //US Patent № 5 135 851. 1992.

205. Kajander E.O., Tahvanainen E., Kuronen I., Ciftcioglu N. Comparison of Staphylococci and novel bacteria-like particles from blood. // Zentralbl. Bacteriol. 1994. V.26 (Suppl.).1. P.147−149.

206. Kajander E.O., Kuronen I., Akerman K., Pelttari A., Cifitcioglu N. Nanobacteria from blood, the smallest culturable autonomously replicating agent on Earth. // SPIE Proceedings. 1997. V.3111. P.420−428.

207. Kajander E.O., Bjorklund M., Ciftcioglu N. Mineralization by nanobacteria. // SPIE Proceedings. 1998. V. 3441. P.86−94.

208. Khosrovi B., Miller J.D.A. A comparison of the growth of Desulfovibrio vulgaris under a hydrogen and under an inert atmosphere. // Plant Soil. 1975. V.43 (1). P.171−187.

209. Khosrovi B., Macpherson R., Miller J.D.A. Some observations on growth and hydrogen uptake by Desulfovibrio vulgaris. II Arch. Microbiol. 1971. V.80 (4). P.324−337.

210. Kikuchi Y., Tomoto K., Okayama C., Matsuda F., Nishimura M., Sakane T., Kanelco Y. Microbially influenced corrosion of stainless steel welds. // J. Japan Inst. Metals. 1997. V.61 (6). P.486−493.

211. King R.A., Miller J.D.A. Corrosion by sulphate-reducing bacteria.//Nature. 1971. V.233. P.491−492.

212. Klienenberger E. The natural occurence of pleuropneumonia-like organisms, its apparent symbiosis with StreptobaciUus moniliformis and other bacteria. // J. Pathol. Bacteriol. 1935. V.40. P.93−107.

213. Klienenberger-Nobel E. Origin, development and significance of L-forms in bacterial cultures.//J. gen. Microbiol. 1949. V.3. P.434−443.

214. Klienenberger-Nobel E. Filterable forms of bacteria. // Bacteriol. Rev. 1951. V. 15. P.73−103.

215. Kobayashi K., Tachibana S., Ishimoto M. Intermediary formation of trithionate in sulfite reduction by a sulfate-reducing bacterium. // J. Biochem. 1969. V.65 (1). P. 155−157.

216. Kuykendall L.D., Roy M.D., A’Neil J.J., Devine T.E. Fatty acids, antibiotic resistance, and deoxyribonucleic acid homology groups of Bradyrhizobium japonicum. II Int. J. System. Bact. 1988. V.18.P.358−361.

217. Legrand L., Tranchant A., Messina R. Aluminium behaviour and stability in A1C13/DMS0(2) electrolyte. //Electrochim. Acta. 1996. V.41 (17). P.2715−2720.

218. Lein A.Y., Ivanov M.V., Vainshtein M.B. The hydrogen sulphide balance in the Black Sea. // Mitteilungen d. Geologisch-Palaeontologischen Institut d. Universitaet Hamburg. 1992. H.72. P. 165−180.

219. Litwin C.M., Young S.P. Role of iron in regulation of virulence genes. // Clin. Microbiol. Rev. 1993. V.6. P. 137−149.

220. Lovley D.R., Klug M.J. Sulfate reducers can outcomplete methanogens at freshwater sulfate concentrations. // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V.45 (1). P. 187−192.

221. Lupton F.s., Conrad R., Zeikus J.G. Physiological function of hydrogen metabolism during growth of sulfidogenic bacteria on organic substrates. // J. Bacteriol. 1984. V.159 (3). P.843−849.

222. MacDonell M.T., Hood M.A. Isolation and characterization of ultramicrobacteria from a Gulf Coast estuary. // Appl. Environ. Microbiol. 1982. V.43. P.566−571.

223. Madigan M.T., Martinko J.M., Parker J. Brock Biology of Microorganisms. // New York, Prentice Hall. 1997.

224. Maeda M., Taga N. Comparisons of cell size and bacteria from four marine localities. // LaMer. 1983. V.21. P.207−210.

225. Mancuso C.A., Franzmann P.D., Burton H.R., Nichols P.D. Microbial community structure and biomass estimates of methanogenic antarctic lake ecosystem as determined by phospholipid analyses. // Microbiol. Ecol. 1990. V.19. P.73−95.

226. Mann S., Sparks N.H.C., Blakemore R.P. Ultrastructure and characterization of anisotropic magnetic inclusions in magnetotactic bacteria. // Proc.R.Soc.London. 1987. V. B 231. P.469−476.

227. Marquis R.E. High pressure microbial physiology.//Adv. Microbial. Physiol. 1976. V.14. P.159−241.

228. McCafferty E., Natishan P.M., Hubler G.K. Pitting behavior of aluminum ion implanted with nitrogen. // Corrosion. 1997. V.53 (7). P.556−561.

229. Mechalas B.J., Rittenberg S.C. Energy coupling in Desulfovibrio desulfuricans. // J. Bacteriol. 1960. V.80 (4). P.501−507.

230. Mendelson N.H. Assymetrical cell division and production od deoxyribonucleic acidless bacteria. // J. Bacteriol. 1972. V. l 12. P.298−300.

231. Mietzner T.A., Morse S.A. The role of iron-binding proteins in the survival of pathogenic bacteria. // Ann. Rev. Nutr. 1994. V.14. P.471−493.

232. Miller L.T. A single derivatization method for bacterial fatty acid methyl esters including hydroxy acids. // J. Clin. Microbiol. 1982. V.16. P.584−586.

233. Morita R.Y. Bioavailability of energy and starvation survival in nature. // Can. J. Microbiol. 1988. V.34. P.436−441.

234. Motamedi M., Karland O., Pedersen K. Survival of sulfate reducing bacteria at different water activities in compacted bentonite. // FEMS Microbiol. Lett. 1996. V.141 (1). P.83−87.

235. Moyer C.L., Morita R.Y. Effect of growth rate and starvation-survival on the viability and stability of a psychrophilic marine bacterium. // Appl. Environ. Microbiol. 1989 a. V.55. P. l 122−1127.

236. Moyer C.L., Morita R.Y. Effect of growth rate and starvation-survival on cellular DNA, RNA, and protein of a psychrophilic marinebacterium. // Appl. Environ. Microbiol. 1989 b. Y.55. P.2710−2716.

237. Mushegian A.R., Koonin E.V. A minimal gene set for cellular life derived by comparison of complete bacterial genomes. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V.93. P. 10 268−10 273.

238. Nilsen R.K., Beeder J., Thorstenson T., Torsvik T. Distribution of thermophilic marine sulfate reducers in North Sea oil field waters and oil reservoirs. // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62 (5). P.1793−1798.

239. Nilsen R.K., Torsvik T., Lien T. Desulfotomaculum thermocisternum sp. nov., a sulfate reducer isolated from a hot North Sea oil reservoir. // Intern. J. Syst. Bacteriol. 1996. V.46 (2). P.397−402.

240. Niviere V., Forget N., Gayda J.P., Hatchikian E.C. Characterization of the soluble hydrogenase from Desulfovibrio africanus. // BBRes. Com. 1986. V.139 (2). P.658−665.

241. Nogueira F.S., Lins de Barros H.G.P. Study of the motion of magnetotactic bacteria. // Biophys. J. 1995. V.4. P.13−21.

242. Novitsky J.A., Morita R.Y. Morphological characterization of small cells resulting from nutrient starvation in a psychrophilic marine vibrio. // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V.32. P.635−641.

243. Novitsky J.A., Morita R.Y. Survival of a psychrophilic marine vibrio under long-term nutrient starvation. // Appl. Environ. Microbiol. 1977. V.33. P.635−641.

244. Odom J.M. Peck H.D., Jr. Hydrogen cycling as a general mechanism for energy coupling in the sulfate-reducing bacteria, Desulfovibrio sp. II FEMS Microbiol. Lett. 1981. V. 12 (1). P.47−50.

245. Odom J.M., Peck H.D., Jr. Hydrogenase, electron-transfer proteins, and energy coupling in the sulfate-reducing bacteria. // Ann. Rev. Microbiol. 1984. V.38. P.551−592.

246. O’Donnell A.G. Numerical analyses of chemotaxonomic data. // In: «Computer Assisted Bacterial Systematics», p.403−414. London, Academic Press. 1985.

247. Oesch S., Heimgartner P. Environmental effects on metallic materials Results of an outdoor exposure programme running in Switzerland. // Materials Corros. 1996. V.47 (8). P.425−438.

248. Oremland, R. S. Microbial formation of ethane in anoxic estuarine sediments. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.42. P. 122−129.

249. Oremland R.S., Capone D.G. Use of the specific inhibitors in biogeochemistry and microbial ecology. // Adv. Microbial Ecol. 1988. V.10. P. 285−383.

250. Oremland R.S., Silverman M.P. Microbial sulfate reduction measured by an automated electric impedance technique. // Geomicrobiological J. 1979. V. l (4). P.355−372.

251. Oremland R.S., Taylor B.F. Sulfate reduction and methanogenesis in marine sediments. // Geochim. Cosmochim. Acta. 1978. V.42 (2). P.209−214.

252. Oremland R.S., Whiticar M.J., Strohmaier F.E., Kiene R. Bacterial ethane formation from reduced, ethylated compounds in anoxic sediments. // Geochim. Cosmochim. Acta. 1988. V.52 (7). P.1895−1904.

253. Pachmayer F. Vorkommen und Bestimmung von Schwefelverbindungen in Mineralwasser. // Ph.D. Dissertation Thesis. Munchen, University of Munchen. 1966. 24 p.

254. Peck H.D., Jr. The ATP-dependent reduction of sulfate with hydrogen in extracts of Desulfovibrio desulfuricans. // Proc. Nat. Acad. Sc. USA. 1959. V.45 (5). P.701−708.

255. Pedone V.A., Folk R.L. Formation of aragonite cement by nannobacteria in the Great Salt Lake, Utah. // Geology. 1996. V.24. P.763−765.

256. Pfennig N., Widdel F. The bacteria of the sulphur cycle. // Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1982. V. B 298. P.433−441.

257. Phillips L.E., Lappin Scott H.M. Enrichment and characterisation of sulfate-reducing bacteria from sandstone rock cores from the UK Continental shelf. // FEMS Microbiol. Rev. 1997. V.20 (3−4). P.415−423.

258. Postgate J.R. A diagnostic reaction of Desulfovibrio desulphuricans. II Nature. 1959. V.183 (4659). P.481−482.

259. Postgate J. The economic activities of sulohate-reducing bacteria. // Progr. Industr. Microbiol. 1960. V.2. P.47.

260. Postgate J.R. Methane as a minor product of pyruvate metabolism by sulfate reducing and other bacteria. // J. gen. Microbiol. 1969. V.57 (3). P.293−302.

261. Postgate J.R. The sulphate-reducing bacteria. (1-st ed.) // Cambridge, Cambridge University Press. 1979. 123 p.

262. Postgate J.R. The sulphate-reducing bacteria. (2-nd ed.) // Cambridge, Cambridge University Press. 1984. 208 p.

263. Psenner R., Loferer M. Nannobacteria: size limits and evidence. // Science. 1997. V.276 (5320). P.1776−1777.

264. Ramus J. In vivo molybdate inhibition of sulfate transfer to Porphyridium capsular polysaccharide.//Plant Physiol. 1974. V.54 (6). P.945−949.

265. Reeve J.N., Mendelson N.H., Coyne S.J., Hallock G., Cole R.M. Minicells of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1973. V. l 14. P.860−873.

266. Rieder R., CammackR., Hall D.O. Purification and properties of the soluble hydrogenase from Desulfovibrio desulfuricans (strain Norway 4). // Eur. J. Biochem. 1984. V.145 (3). P.637−643.

267. Rosnes J.T., Torsvik T., Lien T. Spore-forming thermophilic sulfate-reducing bacteria isolated from North Sea oil field waters. // Appl. Envir. Microbiol. 1991. V.57 (8). P.2302−2307.

268. Sadiq M., Hussain G. Drinking water quality in Saudi Arabia An overview. // Arab. J. Science Engin. 1997. V.22 (1C). P.153−164.

269. Salvarezza M., de Mele M.F.L., Videla H. Mechanisms of the microbial corrosion of aluminium alloys. // Corrosion. 1983. V.39 (1). P.26−32.

270. Schaschl N. Biocorrosion of metals. // Materials Performance. 1980. V.19. P.9−12.

271. Schauder R., Eikmanns B. Acetate oxidation to CO2 in anaerobic bacteria via a novel pathway not involving reactions of the citric acid cycle. // Arch. Microbiol. 1986. V.145 (2). P. 162−172.

272. Scherer P.A., Bochem H.-P. Ultrastructural investigation of 12 Methanosarcinae and related species growing on methanol for occurence of polyphosphate-like inclusions. // Can. J. Microbiol. 1983. Y.28 (9). P. l 190−1199.

273. Schut F., Gottschal J.C., Prins R.A. Isolation and characterisation of the marine ultramicrobacterium Sphingomonas sp. strain RB2256. // FEMS Microbiol. Rev. 1997. V.20. P.363−369.

274. Schwarz J.R., Yaynos A. A., Colwell R.R. Metabolic activities of the intestinal microflora of a deep-sea vertebrate. // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V.31. P. 46−48.

275. Shadley J.R., Shirazi S.A., Dayalan E., Ismail M., Rybicki E.F. Erosion-corrosion of a carbon steel elbow in a carbon dioxide environment. // Corrosion. 1996. V.52 (9). P.714−723.

276. Sieburth J.M. Contrary habitats for redox-specific processes: methanogenesis in oxic waters and oxidation in anoxic waters. // In: «Microbes in the Sea», p. 11−38. Chichester, Ellis Horwood Ltd. 1987.

277. Siegel L.M., Murphy M.J., Kamin H. Siroheme: Methods of isolation and characterization. // In: «Methods in Enzymology», v.52, p.436−447. New York, Acad. Press. 1978.

278. Skyring G.W., Jones H.E., Goodchild D. The taxonomy of some new isolates of dissimilatory sulfate-reducing bacteria. //Can. J. Microbiol. 1977. V.23 (10). P.1415−1425.

279. Sleutr U.B., Sara M., Kupcu Z., Messner P. Structural and chemical characterization of S-layers of selected strains of Bacillus stearothermophilus and Desulfotomaculum nigrificans. II Arch. Microbiol. 1986. V.146 (1). P.19−24.

280. Smith R.L., Klug M.J. Reduction of sulfur compounds in the sediments of a eutrophic lake basin. //Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.41 (5). P.1230−1237.

281. Sorensen J., Christensen D., Jorgensen B.B. Volatile fatty acids and hydrogen as substrates for sulfate-reducing bacteria in anaerobic marine sediment. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.42 (1). P.5−11.

282. Sorokin Ju.I. The bacterial population and the processes of hydrogen sulphide oxidation in the Black Sea. // J. Cons. Intern. Explor. Mer. 1972. V.34 (3). P.423−454.

283. Spencer B. The ultramicro determination of inorganic sulphate. // Biochem. J. 1960. V.75 (3). P.435−440.

284. Spring S., Schleifer K.-H. Diversity of magnetotactic bacteria. // System. Appl. Microbiol. 1995. V.18.P.147−153.

285. Stolz J.F. Magnetosomes. // J. gen. Microbiol. 1993. V.139. P.1663−1670.

286. Suidan M.T., Steed V., Blackert R. Development of a sulfate-reducing bioprocess to remove heavy metals from acid mine drainage. // Department of Civil and Environmental Engineering, University of Cincinnati. Confirmed Project. 1997.

287. Torrella F., Morita R.Y. Microcultural study of bacterial size changes and microcolony and ultramicrocolony formation by heterotrophic bacteria in seawater. // Appl. Environ. Microbiol. 1981. V.41. P.518−527.

288. Torsvik V., Sorheim R., Goksoyr J. Total bacterial diversity in soil and sediment communities a review. // J. Industr. Microbiol. 1996. V. 17. P. 170−178.

289. Trudinger P.A. Carbon monoxide-reacting pigment from Desulfotomaculum nigrificans and its possible relevance to sulfite reduction. // J. Bacteriol. 1970. V.104. P. 158−170.

290. Tsuji K., Yagi T. Significance of hydrogen burst from growing cultures of Desulfovibrio vulgaris, Miyazki, and the role of hydrogenase and cytochrome C3 in energy production system.//Arch. Microbiol. 1980. V. 125 (1−2). P.35−42.

291. Tudor T., Hashimoto T., Conti S.F. Presence of nuclear bodies in some minicells of Escherichia coli. II J. Bacteriol. 1969. V.98 (1). P.298−299.

292. Tuttle J.H., Dugan P.R., Randies Ch.U. Microbial sulfate reduction and its potential utility as an acid mine water pollution abantement procedure. // Appl. Microbiol. 1969. V.17 (2). P.297−304.

293. Vainshtein M.B., Gogotova G.I. The reduction potential of media for bacterial diagnostic. // Abstr. of 6-th Int. Congress of Culture Coll., p.58−59. University of Maryland (USA), WFCC. 1988.

294. Vainshtein M., Gogotova G., Hippe H. A sulfate-reducing bacterium from permafrost. // In: «Viable Microorganisms in Permafrost», p.68−74. Pushchino, Pushchino Research Centre. 1994.

295. Vainshtein M., Hippe H., Kroppenstedt R.M. Cellular fatty acid composition of Desulfovibrio species and its use in classification of sulphate-reducing bacteria. // System. Appl. Microbiol. 1992 a. V. 15 (4). P.554−566.

296. Vainshtein M., Hippe H., Kroppenstedt R.M. Cellular fatty acids of sulfate-reducing bacteria: use for classification. // Abstr. FEMS Symposium «Conference on taxonomy and automated identification of bacteria», p.47. Prague, Charles University. 1992 b.

297. Vainshtein M.B., Suzina N.E., Sorokin V.V. A new type of magnet-sensitive inclusions in cells of photosynthetic purple bacteria. // System. Appl. Microbiol. 1997. V.20 (2). P. 182 186.

298. Vainshtein M., Kudryashova E., Suzina N., Ariskina E., Sorokin V. Functions of non-crystal magnetosomes in bacteria. // Proceedings of SPIE. 1998. V.3441. P.280−288.

299. Yoordouw G. Minireview the genus Desulfovibrio: the centennial. // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V.61. P.2813−2819.

300. Voordouw G. Effect of nitrate injection on the microbial community in an oil field as monitored by reverse sample genome probing. // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V.63 (5). P.1785−1793.

301. Washizu N., Masuda H. AFM observation of iron-oxidizing bacteria on surfaces of corroded metals. // J. Japan Inst. Metals. 1997. V.61 (6). P.481−485.

302. Weathers L.J., Parkin G.F., Alvarez P.J. Utilization of cathodic hydrogen as electron donor for chloroform cometabolism by a mixed, methanogenic culture. // Environ. Science Technology. 1997. V.31 (3). P.880−885.

303. Weinberg E.D. Role of iron in sudden infant death syndrome. // J. Trace Elem. Exp. Med. 1994. V.7. P.47−51.

304. Weinberg E.D., Weinberg G.A. The role of iron in infection. // Current Opinion in Infectious Diseases. 1995. V.8. P.164−169.

305. Widdel F. Anaerober Abbau von Fettsauren und Benzoesaure durch neu isolierte Arten sulfatreduzierender Bakterien. // Dissertation. Georg-August-Universitat zu Gottingen. Lindhorst/Schaumburg-Lippe, Gottingen. 1980.

306. Widdel F., Pfennig N. Dissimilatory sulfateor sulfur-reducing bacteria. // In: «Bergey's Manual of Systematic Bacteriology», v. l, p.663−679. Baltimore-London, Williams & Wilkins. 1984.

307. Wilson L.G., Bandurski R.S. Enzymatic reaction involving sulfate, sulfite, selenate, and molybdate. // J. Biol. Chem. 1958. V.233 (4). P.975−981.

308. Winfrey M.R., Ward D.M. Substrates for sulfate reduction and methane production in intertidal sediments. // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V.45 (1). P.193−199.

309. Wolin M.J., Miller T.L. Molybdate and sulfide inhibit H2 and increase formate production from glucose by Ruminococcus albus. II Arch. Microbiol. 1980. V.124 (2−3). P.137−142.

310. Wolz C., Hohloch K., Ocaktan A., Poole K., Evans R.W., Rochel N., Albrecht-Gary A.M., Abdallah M.A., Doring G. Iron release from transferrin by pyoverdin and elastase from Pseudomonas aeruginosa. II Infect. Immun. 1994. V.62. P.4021−4027.

311. Wooldridge K.G., Williams P.H. Iron uptake mechanisms of pathogenic bacteria. // FEMS Microbiol. Rev. 1993. V.12. P.325−348.

312. Yang S.T., Okos M.R. Kinetic study mathematical modelling of methanogenesis of acetate using pure cultures of methanogenes. // Biotechn. Bioeng. 1987. V.30. P.661−667.

313. Zheng X.G., Young D.J. Sulphide formation after pre-oxidation of chromia formers. // Corrosion Science. 1996. V.38 (11). P. 1877−1897.

314. Zhou J., Davey M.E., Figueras J.B., Rivkina E., Gilichinsky D., Tiedje J.M. Phylogenetic diversity of a bacterial community determined from Siberian tundra soil DNA. //Microbiology. 1997. V.143. P.3913−3919.

315. Zinkevich V., Bogdarina I., Kang H., Hill M.A.W., Tapper R., Beech I.B. Characterisation of exopolymers produced by different isolates of marine sulphate-reducing bacteria. // Intern. Biodeteriation Biodegradation. 1996. V.37 (3−4). P.163−172.

316. ZoBell C.E. Ecology of sulfate-reducing bacteria. // Prod.Month. 1958. V.22. P.12−29.