Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Взаимодействие гонадотропинов и биогенных аминов в контроле адаптации имаго дрозофилы к стрессирующим условиям (генетико-физиологические аспекты)

Диссертация: Взаимодействие гонадотропинов и биогенных аминов в контроле адаптации имаго дрозофилы к стрессирующим условиям (генетико-физиологические аспекты)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Адаптивным для популяции является полиморфизм как по базальному уровню стресс-связанных гормонов, так и по способности последних отвечать на стрессирующее воздействие. Различный базальный уровень ДА обеспечивает устойчивость к различным видам стресса и, следовательно, полиморфизм по этому признаку препятствует резкой потере численности при попадании популяции в неблагоприятные условия различной… Читать ещё >

Взаимодействие гонадотропинов и биогенных аминов в контроле адаптации имаго дрозофилы к стрессирующим условиям (генетико-физиологические аспекты) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Оогенез насекомых
    • 1. 2. Гонадотропины насекомых
      • 1. 2. 1. 20-гидроксиэкдизоп
      • 1. 2. 2. Ювеншъный гормон
    • 1. 3. Биогенные амины насекомых
      • 1. 3. 1. Функции биогенных аминов насекомых
      • 1. 3. 2. Метаболизм биогенных аминов у Drosophila
    • 1. 4. Механизмы адаптации насекомых
      • 1. 4. 1. Адаптация и приспособленность
      • 1. 4. 2. Стрессоры и стресс-ответ
      • 1. 4. 3. Нейроэндокриннан стресс-реакция
      • 1. 4. 4. Реакция теплового шока
      • 1. 4. 5. Стресс-ответ на уровне популяции

Проблема стресса, давно привлекавшая внимание биологов, становится особенно значимой в настоящее время в связи с непрерывно ухудшающейся экологической ситуацией в мире. Эффективным способом защиты организмов от стрессорных воздействий является нейроэндокринная стресс-реакция. Сходство в нейрохимических и физиологических изменениях у беспозвоночных и позвоночных в ответ на стрессорное воздействие свидетельствует о том, что реакция на стресс — это совокупность древних, сохраненных в эволюции механизмов (Rauschenbach et al., 1987; Jancovic-Hladni, 1991; Cymborovski, 1991; Rauschenbach, 1991; Neckameyer, Weinstein, 2005). Ряд компонентов стресс-реакции идентичен у млекопитающих и насекомых, разошедшихся в эволюции более 600 миллионов лет назад (обз.: Chernysh, 1991). Более того, некоторые из них задействованы в стресс-реакции даже у растений — так, уровни катехоламинов меняются у растений картофеля под действием разных стрсссирующих внешних факторов (Swiedrych et al. 2004).

Известно, что ряд гормонов, задействованных в стресс-реакции насекомых, также контролирует приспособленность, важнейшими компонентами которой являются способность оставить потомство и способность адаптироваться к неблагоприятным условиям (обзоры: Jancovic-Hladni, 1991; Cymborovski, 1991; Rauschenbach, 1991; Раушенбах, 1997). Изучение закономерностей взаимодействия этих гормонов в контроле репродуктивной функции и жизнеспособности насекомых в стрессирующих условиях является одной из актуальных задач современной биологии, поскольку выяснение этих закономерностей имеет существенное значение не только в теоретическом плане, но также может быть использовано при разработке новых, безопасных для человека, мер защиты от насекомых-вредителей и способов успешного разведения полезных насекомых. Такого рода исследования требуют возможности фармакологического изменения уровня гормонов и проведения генетических экспериментов, для чего максимально удобной моделью является дрозофила, как наиболее изученный объект с генетической точки зрения, и дающий возможность быстрого получения больших выборок экспериментальных насекомых.

Различные компоненты ответа насекомых на стрессирующее воздействие изучаются с начала 80-х годов прошлого века. Установлено, что в стресс-ответ вовлечены биогенные амины (октопамин (OA), дофамин (ДА), серотонин) и гонадотропины (ювенильный гормон (ЮГ) и экдистероиды) (Rauschenbach et al., 1980, 1984,1987,1993,1995аOrchard and Loughton, 1981; Cymborowski et al., 1982; Davenport and Evans, 1984; Woodring et al., 1988; Hirashima et al., 1993a, b, 2000a, bРаушенбах и.

I др., 2000а).

Механизм стресс-реакции детально исследован у имаго Drosophila virilis. Было показано, что уже через 15 мин после начала стрессирования (38°С) содержание ДА резко возрастает за счет его выброса из депо. Повышение содержания амина сопровождается падением активности первого фермента его синтеза, тирозингидроксилазы (ТГ) (Rauschenbach et al., 1993, 1995b). Такая же картина наблюдается в системе метаболизма OA (Sukhanova et al., 1997; Hirashima et al., 2000b). Система метаболизма ЮГ после 180 мин стрессирования отвечает падением деградации гормона (возможным повышением его титра) (Rauschenbach et al., 1995а). После 60 мин стрессирования (а возможно и ранее) начинает возрастать уровень 20-гидроксиэкдизона (20Э) (Раушенбах и др., 2000аHirashima et al., 2000а).

Изучение генетического контроля этих компонентов стресс-реакции у D. virilis (Rauschenbach et al., 1984, 1993, 1995a, b, 1997; Sukhanova et al., 1996, 1997; Гренбэк и др., 19 976- Хлебодарова и др. 19 986- Суханова и др., 1999, 2001) привело к заключению о существовании единого запускающего звена для всех компонентов стресс-реакции (Раушенбах и др., 20 006). В поисках такого центрального звена было исследовано взаимодействие нейроэндокринной стресс-реакции и клеточной реакции теплового шока. Оказалось, что хотя они взаимосвязаны и, по-видимому, находятся под общим контролем, последняя не является пусковым звеном стресс-реакции (Грунтенко и др., 1998; Хлебодарова и др., 1998; Раушенбах и др., 2001). Функционирование других компонентов реакции в качестве такого запускающего звена оставалось под вопросом.

Гонадотропная роль ЮГ и 20Э у насекомых давно не подвергается сомнению (обз.: Simonet et al., 2004), однако до сих пор не выработано единой точки зрения на вклад каждого из гормонов в контроль оогенеза даже у такого хорошо изученного вида, как D. melanogaster.

Неоднократно продемонстрировано, что метаболизм 20Э у самок насекомых регулируется ЮГ (обзоры: Bownes, 1989; Raikhel et al 2004). Показано также влияние 20Э на сиитез ЮГ in vitro (Watson et al., 1986; Granger et al., 1987; Whisenton et al., 1987). Однако влияет ли 20Э на метаболизм ЮГ in vivo и каков механизм взаимодействия этих гормонов в контроле размножения насекомых в нормальных и стрессирующих условиях не было исследовано.

В экспериментах in vitro показано, что экзогенные биогенные амины (OA и ДА) влияют на метаболизм гонадотропинов (ЮГ и 20Э) (Thompson et al., 1990; Woodring, Hoffmann, 1994; Rachinsky, 1994 Granger et al., 1996; Hirashima et al., 1999a), но существует ли такое взаимодействие in vivo и как оно влияет на репродуктивную функцию в нормальных и стрессирующих условиях не установлено.

Поскольку биогенные амины, OA и ДА, контролируют энергетический метаболизм насекомых (стимулируют превращение гликогена в трегалозу, окисление глюкозы и трегалозы, выделение липидов из жирового тела (Candy, 1979; Downer, 1979; Orchard et al., 1982; Woodring et al., 1989)), предполагали, что они должны играть роль в адаптации индивидуумов к неблагопрятным условиям (обз.: Раушенбах, Шумная, 1993). Однако данные, подтверждающие это предположение, отсутствовали.

Установлено, что стресс-реакция личинок насекомых носит адаптивный характер, помогая им осуществить метаморфоз в неблагоприятных условиях (Rauschenbach et al., 1987). Логично предположить, что стресс-реакция, обнаруженная у имаго дрозофилы, включающая в себя изменения в метаболизме биогенных аминов и гонадотропинов (Rauschenbach et al., 1993, 1995аHirashima et al., 2000a, b), также способствует адаптации. Это предположение нуждается в проверке.

Целью настоящей работы является выяснение механизмов взаимодействия стресс-связанных гормонов имаго дрозофилы (гонадотропинов — 20-гидроксиэкдизона и ювенильного гормона, и биогенных аминов — октопамина и дофамина) в контроле приспособленности (жизнеспособности в неблагоприятных условиях среды и плодовитости).

Для достижения этой цели были поставлены следующие конкретные задачи:

1. Исследовать взаимодействие стресс-связанных гормонов дрозофилы в нормальных «и стрессирующих условиях среды.

2. Выяснить, является ли один из стресс-связанных гормонов дрозофилы пусковым звеном для всех остальных.

3. Охарактеризовать течение оогенеза и гормональный статус самок дрозофилы при стрессовых воздействиях различной этимологии и при мутационном или фармакологическом изменении уровня стресс-связанных гормонов.

4. Проанализировать влияние стрессовых воздействий и измененных (в результате мутации или фармакологически) уровней каждого из стресс-связанных гормонов на плодовитость D. virilis и D. melanogaster.

5. Установить влияет ли взаиморегуляция стресс-связанных гормонов на приспособленность дрозофилы.

6. Выяснить роль стресс-связанных гормонов в обеспечении адаптации дрозофилы на индивидуальном и популяционном уровнях.

Научная новизна. В работе впервые показано, что биогенные амины регулируют in vivo метаболизм ЮГ у самок дрозофилы: (1) мутации, изменяющие содержание OA и.

ДА у D. melanogaster, вызывают изменения в уровне деградации ЮГ у самок, но не у самцов- (2) экспериментальное изменение уровня ДА и OA также вызывает у самок, но не у самцов D. virilis и D. melanogaster изменения в уровне деградации ЮГ. Причем ДА ингибирует деградацию гормона у молодых самок и стимулирует ее у половозрелыхOA ингибирует деградацию ЮГ у тех и других.

Впервые обнаружено, что в регуляции титра ЮГ дофамином существует обратная связь: (1) экспериментальное повышение титра ЮГ вызывает резкое снижение уровня ДА у молодых самок дрозофилы (D. virilis и D. melanogaster) и его повышение у половозрелых- (2) снижение титра ЮГ в результате мутации повышает уровень ДА у молодых самок D. melanogaster.

Впервые in vivo продемонстрировано, что биогенные амины регулируют титр 20Э у самок дрозофилы: мутация, лишающая D. melanogaster OA (TphnW8), резко снижает уровень 20Э, а экспериментальное повышение содержания OA повышает уровень гормона у молодых самок D. virilisповышение содержания ДА также вызывает возрастание уровня 20Э у молодых самок D. virilis.

Впервые установлено, что 20Э регулирует in vivo метаболизм ЮГ и осуществляет это опосредованно через систему метаболизма ДА: (1) экспериментальное повышение титра 20Э увеличивает уровень ДА у молодых самок D. virilis и D. melanogaster и снижает его у половозрелых, вызывая тем самым сниженние деградации ЮГ у тех и других- (2) резкое падение титра 20Э, вызываемое у D. melanogaster мутацией ecdysonless1 при рестриктивной температуре, напротив, снижает уровень ДА у молодых самок и повышает у половозрелых, приводя к резкому повышению деградации ЮГ у тех и других.

Впервые получены данные, свидетельствующие, что синтез и деградацция ЮГ у дрозофилы находятся в противофазе и под общим контролем: (1) мутация apterous56^ D. melanogaster, вызывающая драматическое снижение синтеза ЮГ резко повышает деградацию гормона- (2) экспериментальное повышение титра ЮГ у самок D. virilis вызывает резкое снижение его деградации.

Впервые выяснено, что ни один из стресс-связанных гормонов дрозофилы не является пусковым звеном в развитии стресс-реакции.

Впервые установлено, что тепловой стресс и голодание вызывают у самок D. virilis однотипные изменения в процессе оогенеза: задержку созревания вителлогенических ооцитов и деградацию части из них вследствие повышения титра 20Э, и накопление зрелых ооцитов, вызываемое повышением уровня ЮГ.

Впервые показано, что экспериментальное повышение титра ЮГ у самок D. virilis вызывает остановку откладки яиц, но не снижает их плодовитость, тогда как экспериментальное повышение титра 20Э не приводит к остановке откладки яиц, но вызывает длительное снижение плодовитости.

Впервые обнаружено, что отклонения (повышение/снижение) в уровне биогенных аминов вызывают резко негативные изменения в репродуктивной функции самок, но не самцов, дрозофилы в нормальных условиях. Вместе с тем мутации, изменяющие содержание аминов, обеспечивают мутантным самкам преимущество в стрессирующих условиях, ускоряя выход репродуктивной системы из состояния стресса.

Впервые продемонстрировано, что нарушение баланса гонадотропинов, ЮГ и 20Э, приводит к снижению термоустойчивости самок и самцов дрозофилы.

Впервые получены свидетельства того, что мутации, вызывающие повышение базального уровня ДА, снижают жизнеспособность дрозофилы при тепловом стрессировании, однако повышают ее при голодании.

Впервые установлено, что длительная селекция D. melanogaster по половой активности самцов в плюс и минус направлениях приводит к изменениям в системах метаболизма ЮГ и OA у самок, а мутации, нарушающие ответ системы ЮГ на стрессор, приводя к снижению плодовитости в нормальных условиях, дают преимущество в оставлении потомства в стрессирующих условиях.

Впервые показано, что в природных популяциях D. melanogaster с высокой частотой встречаются мутантные самки с нарушенным ответом системы метаболизма ЮГ на действие стрессора.

Положения, выносимые на защиту.

1. У самок дрозофилы существует механизм взаиморегуляции стресс-связанных гормонов — биогенных аминов (ДА и OA) и гонадотропинов (ЮГ и 20Э). Наличие такого механизма позволяет сохранять баланс гонадотропинов в условиях, вызывающих изменения в уровне одного из них, и способствует адаптации на индивидуальном и популяционном уровнях.

2. Механизм ответа репродуктивной системы самок дрозофилы на различные стрессорные факторы универсален. Стрессирующие воздействия различной этимологии вызывают: замедление созревания вителлогенических ооцитов, деградацию части из них, накопление зрелых ооцитов, ингибирование экспрессии yolk protein генов, прекращение откладки яиц и снижение плодовитости в течение некоторого времени после ее возобновления. Для нормального течения оогенеза необходимо сохранение баланса гонадотропинов, ЮГ и 20Э.

3. Роль ЮГ и 20Э в регуляции оогенеза дрозофилы различна: завершающие стадии созревания ооцитов и процесс откладки яиц в норме и при стрессе регулируются ЮГ, а 20Э ответственен за развитие ооцитов на ранних вителлогенических стадиях и их деградацию при стрессе. Биогенные амины (ДА и OA) регулируют процесс оогенеза и плодовитость самок, но не самцов, дрозофилы, изменяя, как нейрогормоны, титр гонадотропинов. 4. Взаиморегуляция стресс-связанных гормонов дрозофилы в условиях стресса генетически детерминирована: мутация в системе метаболизма одного из этих гормонов (ДА, ОА, ЮГ и 20Э) изменяет стресс-реактивность всех остальных, хотя ни один из них не является пусковым звеном стресс-реакции.

Научно-практическая значимость работы. Полученные в работе данные развивают представления о механизмах взаимодействия стресс-связанных гормонов насекомых в контроле приспособленности и позволяют сделать выводы об адаптивности как самой стресс-реакции, так и полиморфизма по ней для популяций насекомых, что может быть использовано при разработке новых мер защиты от насекомых-вредителей и способов успешного разведения полезных насекомых.

Апробация работы. Результаты работы были доложены или представлены на 1, 2 и 3 съездах ВОГИС (Саратов, 1994; Санкт-Петербург, 2000; Москва 2004), на международных конференциях «Агробиология и биотехнология растений и животных» (Киев, 1997), «Современные концепции эволюционной генетики» (Новосибирск, 1997), «Адаптация организма к природным и экосоциальным условиям среды» (Бишкек,.

1998), «Генетическая и онтогенетическая психонейро-эндокринология» (Новосибирск,.

1999), «Молекулярно-генетические маркеры животных» (Киев, 1999), «Биоразнообразие и динамика экосистем Северной Евразии (Новосибирск, 2000), «Генетика и Селекция в Украине на Стыке тысячелетий» (Киев, 2001), «Биоинформатика регуляции и структуры генома» (Новосибирск, 2002) и «Эндокринная регуляция физиологических функций в норме и патологии» (Новосибирск, 2002), на VII, VIII и IX Международных конференциях по ювенильным гормонам (Иерусалим, 1999; Кингз Бич, 2004; Йорк, 2007), на XXX Всероссийском совещании по проблемам высшей нервной деятельности (Санкт-Петербург, 2000), на VI Восточноевропейской конференции международного общества нейробиологии беспозвоночных (Москва-Пущи но, 2000), VI Европейском симпозиуме по экофизиологии беспозвоночных (Санкт-Петербург, 2001), на XVII, XVIII Европейских конференциях по исследованиям на Drosophila (Эдинбург, 2001; Геттинген, 2003), на XV и XVI Международных симпозиумах по экдизону (Крит, 2002; Гснт 2006), на III Международной научной конференции молодых ученых «Актуальные вопросы современной биологии и биотехнологии» (Алматы, 2003), на XIII Международном совещании и VI школе по эволюционной физиологии (Санкт-Петербург, 2006) и на 2 Международном конгрессе по исследованию стресса (Будапешт, 2007).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 73 научных работы, из них статей — 41, в том числе в зарубежной печати — 13. Основные результаты получены автором самостоятельно. Ряд экспериментов выполнен с участием Хлебодаровой Т. М.,.

Адоньевой Н.В., Сухановой М. Ж. и Алексеева A.A., а также работавших под руководством автора Ченцовой H.A., Богомоловой Е. В. и Карповой Е.К.

ВЫВОДЫ.

1. Показано, что у самок Drosophila virilis и D. melanogaster существует механизм взаиморегуляции стресс-связанных гормонов (биогенных аминовдофамина и октопамина, и гонадотропинов — ювенильного гормона и 20-гидроксиэкдизона) в нормальных условиях среды: дофамин и октопамин регулируют метаболизм ювенильного гормона и, через него, титр 20-гидроксиэкдизонарегуляция метаболизма ювенильного гормона дофамином носит онтогенетический характер, и в ней существует обратная связьювенильный гормон регулирует титр 20-гидроксиэкдизона, и в этой регуляции есть обратная связь, опосредованная через систему метаболизма дофамина. У самцов подобный механизм не выявлен.

2. Продемонстрировано, что наличие механизма взаиморегуляции стресс-связанных гормонов повышает приспособленность: фармакологическое увеличение уровня дофамина или 20-гидроксиэкдизона у самок линии D. melanogster с мутацией, резко снижающей синтез ювенильного гормона, ускоряет их созревание и повышает плодовитость молодых особей.

3. Установлено наличие генетически детерминированного взаимодействия стресс-связанных гормонов дрозофилы в условиях стресса: мутация в системе метаболизма одного из них нарушает стресс-реактивность всех остальных, однако ни дофамин или октопамин, ни ювенильный гормон или 20-гидроксиэкдизон не являются пусковым звеном стресс-реакции дрозофилы.

4. Обнаружено, что механизм ответа репродуктивной системы дрозофилы на различные стрессорные факторы (высокую температуру, голодание) включает деградацию части ранних вителлогенических ооцитов (стадии 8, 9) — задержку прохождения ооцитов через стадию 10- накопление зрелых ооцитов 14 стадииингибирование экспрессии yolk protein геновпрекращение откладки яиц и снижение плодовитости в течение некоторого времени после ее возобновления.

5. Установлено, что завершающие стадии созревания ооцитов и процесс откладки яиц в норме и при стрессе регулируются у дрозофилы ювенильным гормоном, а за развитие ооцитов на ранних вителлогенических стадиях и деградацию ооцитов при стрессе ответственен 20-гидроксиэкдизон. Продемонстрировано, что биогенные амины регулируют процесс оогенеза и плодовитость самок, но не самцов, дрозофилы, изменяя, как нейрогормоны, титр гонадотропинов.

6. Обнаружено, что изменение базального уровня (уровня в нормальных условиях) дофамина снижает выживаемость особей D. virilis и D. melanogaster при высокой температуре, но повышает их жизнеспособность при голодании. Термоустойчивость мух так же зависит от базального уровня ювенильного гормона и 20-гидроксиэкдизона (снижается при их повышении), но не зависит от уровня октопамина.

7. Продемонстрировано, что изменения в приспособленности (жизнеспособности в условиях стресса и плодовитости), возникающие в результате мутаций или селекции по адаптивно значимым признакам, приводят к изменениям в системе метаболизма стресс-связанных гормонов, и наоборот, изменения в метаболизме последних приводят к изменениям в приспособленности дрозофилы.

8. Показано, что нарушение ответа системы метаболизма ювенильного гормона на действие стрессора приводит к снижению плодовитости самок Б. virUis и И. melanogaster в нормальных условиях, но дает им преимущество в оставлении потомства в стрессирующих условиях. Обнаружено, что особи, имеющие такие нарушения, с высокой частотой встречаются в природных популяциях И. melanogaster.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Основным итогом работы стало построение модели взаимоотношений стресс-связанных гормонов насекомых (биогенных аминов и гонадотропинов) в нормальных условиях среды и определение роли, которую эти взаимоотношения играют в контроле приспособленности.

При стрессе изменения, происходящие в этой системе взаимодействий, приводят к развитию универсальной реакции репродуктивной системы самок насекомых, способствующей адаптации на популяционном уровне. Так, задержка откладки яиц, вызываемая повышением титра ЮГ, позволяет популяции «переждать» кратковременные неблагоприятные условия без значительной потери потенциальной численности, а деградация части вителлогенических ооцитов и снижение плодовитости, вызываемое повышением титра 20Э позволяет уменьшить конкуренцию за пищевые ресурсы в следующем поколении, если неблагоприятные условия сохраняются длительное время.

Адаптивным для популяции является полиморфизм как по базальному уровню стресс-связанных гормонов, так и по способности последних отвечать на стрессирующее воздействие. Различный базальный уровень ДА обеспечивает устойчивость к различным видам стресса и, следовательно, полиморфизм по этому признаку препятствует резкой потере численности при попадании популяции в неблагоприятные условия различной этимологии. А наличие в популяции особей с мутациями, изменяющими ответ на стресс системы ЮГ, позволяет сохранять численность при существовании в условиях часто повторяющихся стрессовых воздействий, поскольку особи с такими нарушениями, хотя и имеют сниженную плодовитость, но продолжают откладывать яйца в условиях стресса.

Эта точка зрения хорошо согласуется с представлениями Северцова (1990) о том, что внутривидовая изменчивость является не столько материалом для эволюционных преобразований, сколько специальным механизмом, повышающим стабильность вида как системы: наличие двух или большего числа дискретных или плавно переходящих друг в друга генетически детерминированных морф обеспечивает популяциям возможность существования в колеблющихся условиях среды.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.В., Забанов С. А., Васильева J1.A., Ратнер В. А. Влияние теплового шока на транспозиции МГЭ Dm412 в трех изогенных линиях Drosophila melanogaster II Генетика. 1994. — Т. 30. — С. 212−217.
  2. Д.К., Бородин П. М. Влияние стресса на частоту кроссинговера во 2-ой хромосоме домовой мыши // Докл. Акад. Наук СССР. 1980. — Т. 253. — С. 727−729.
  3. Л.А., Бубенщикова Е. В., Ратнер В. А. Новое подтверждение явления индукции транспозиций МГЭ тяжелым тепловым шоком // Генетика. 1998. — Т. 34. — С. 1243−1250.
  4. Л.А., Ратнер В. А., Бубенщикова Е. В. Стрессовая индукция транспозиций ретротранспозонов дрозофилы: реальность явления, характерные особенности и возможная роль в быстрой эволюции // Генетика. -1997. Т. 33. -С. 1083−1093.
  5. В.П., Жученко A.A., Король А. Б. Эффективность сопряженного отбора по рекомбинации у дрозофилы // Генетика. 1990. — Т. 26. — № 11. — С. 19 421 952.
  6. Л.Г., Хлебодарова Т. М., Грунтенко Н. Е., Суханова М. Ж., Шумная Л. В., Анкилова И. А., Раушенбах И. Ю. Генетический контроль активности ДФФ-чувствительной эстеразы ювенильного гормона Drosophila virilis II Генетика. -1997а. Т. 33. — С. 920−923.
  7. Л.Г., Хлебодарова Т. М., Грунтенко Н. Е., Суханова М. Ж., Шумная Л. В., Раушенбах И. Ю. Генетический контроль ответа системы метаболизма ЮГ Drosophila virilis на стрессирующие воздействия // Генетика. 19 976. — Т. 33. — С. 202−204.
  8. Н.Е., Хлебодарова Т. М., Гренбэк Л. Г., Суханова М. Ж., Захаров И. К., Раушенбах И. Ю. Генетический контроль метаболизма ювенильного гормона у Drosophila melanogaster II Генетика. —1996. Т. 32. — С. 228−232.
  9. Н.Е., Хлебодарова Т. М., Анкилова И. А., Суханова М. Ж., Кайданов Л. З., Раушенбах И. Ю. Система деградации ювенильного гормона не играет роли в репродуктивной функции самцов Drosophila melanogaster II Докл. РАН. 1998. -Т. 359.-С. 428−429.
  10. Н.Е., Хлебодарова Т. М., Суханова М. Ж., Васенкова И. А., Раушенбах И. Ю. Нарушение синтеза белков теплового шока не препятствует нормальному развитию стресс-реакции у Drosophila melanogaster II Докл. РАН. 1998. — Т. 362. — С. 844−845.
  11. Н.Е., Захаренко Л. П., Раушенбах И. Ю. Ионизирующая радиация вызывает развитие стресс-реакции у Drosophila melanogaster II Докл. РАН. — 1998. -Т. 360.-С. 415−416.
  12. Гренбэк JL Г., Хлебодарова Т. М., Грунтенко H. Е., Суханова М. Ж., Шумная J1.
  13. B., Раушенбах И. Ю. Генетический контроль ответа системы метаболизма ЮГ Drosophila virilis на стрессирующие воздействия // Генетика. 1997. — Т. 33. — С. 202−204.
  14. М.Б., Денисенко О. М. Влияние /¿--мутации на экспрессию генов, индуцируемых тепловым шоком у Drosophila melanogaster. Сообщение III. Синтез белков, родственных БТШ70. // Генетика. 1990. — Т. 26. — С. 266−271.
  15. Е. Ю., Кутузова H. М., Филиппович Ю. Б. Сопоставление активности тирозиндекарбоксилазы в онтогенезе комнатных мух и тутового шелкопряда // Онтогенез. 1990. — Т. 21 — № 5. — С. 548−551.
  16. И.Ф. Хромомерная организация политенных хромосом. Новосибирск: Наука, 1994. — 565 с.
  17. С.А., Васильева J1.A., Ратнер В. А. Экспрессия количественного признака radius incompletus у дрозофилы и локализация мобильных элементов МДГ1 и copia II Генетика. 1990. — Т .26. — С. 1144−1153.
  18. С.А., Васильева Л. А., Ратнер В. А. Множественная индукция транспозиций МГЭ В104 у дрозофилы тяжелым тепловым шоком // Генетика. -1994.-Т. 30.-С. 218−224.
  19. А.Г. Стрессовые условия среды и генетическая изменчивость в популяциях животных // Генетика. -1999.-Т. 35.-С. 421−431.
  20. Л.З., Мыльников C.B., Иовлева О. В., Галкин А. П. Направленный характер генетических изменений при длительном отборе линий Drosophila melanogaster по адаптивно важным признакам // Генетика. 1994. — Т. 30. — № 8.1. C. 1085−1096.
  21. A.B. Проблемы изучения стрессорного поведения. Киев: КСФ, 1999. -134 с.
  22. Л.И. Некоторые аспекты проблемы генов-регуляторов в генетике развития // Онтогенез. -1982. Т. 13. — С. 211−220.
  23. Н.Д. Температурные адаптации. М.: Изд-во МГУ, 2000. — 205 с.
  24. В.А., Васильева JI.A. Мобильные генетические элементы и количественные признаки у дрозофилы: факты и гипотезы // Генетика. 1992. — Т. 28.-№ 11. — С. 15−27.
  25. В.А., Васильева JI.A. Роль мобильных генетических элементов (МГЭ) в микроэволюции // Генетика. -1992. Т. 28. — № 12. — С. 5−17.
  26. И.Ю. Нейроэндокринная регуляция развития насекомых в условиях стресса. Генетико-физиологические аспекты. Новосибирск: Наука, 1990. — 165 с.
  27. И.Ю. Стресс-реакция насекомых: механизм, генетический контроль, роль в адаптации // Генетика. 1997. — Т. 33. — С. 1110−1118.
  28. И.Ю., Голошейкина Л. Б., Корочкина Л. С., Корочкин Л. И. Возможная роль генетически контролируемых особенностей системы эстераз в устойчивости к действию высокой температуры у Drosophila virilis II Генетика. 1977. — Т. 13. -С. 1054−1063.
  29. И.Ю., Грунтенко Н. Е., Васенкова И. А., Хлебодарова Т.М., Суханова
  30. М.Ж., Корочкин Л. И. О некоторых закономерностях генетического контроля стресс-реакции Drosophila И Генетика. — 2001. Т. 37. — № 1. — С. 73−80.
  31. И.Ю., Лукашина Н. С. Стрессоподобная реакция насекомых на экстремальные воздействия // Журн. общ. биологии. -1984. Т. 45. — С. 536−544.
  32. И.Ю., Суханова М. Ж., Хирашима А., Суцугу Е., Куано Е. Роль системыэкдистероидов в регуляции размножения Drosophila в стрессирующих условиях среды // Докл. РАН. 2000а. — Т. 375. — № 4. — С. 568−570.
  33. И.Ю., Хлебодарова Т. М., Суханова М. Ж., Грунтенко Н. Е., Гренбэк Л. Г., Васенкова И. А. Единый генетический контоль различных звеньев стресс-реакции существует // Монография по трудам международной конференции
  34. Современные концепции эволюционной генетики" / ред. Шумный В. К., Маркель А. Л. Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 20 006. — С. 86−94.
  35. И.Ю., Шумная Л. В. Биогенные амины в реакции стресса у насекомых // Успехи совр. биол. 1993. — Т. 113. — С. 327—335.
  36. A.C. Внутривидовое разнообразие как причина эволюционной стабильности // Журн. Общ. Биол. 1990. — Т. 51. — С. 79 — 89.
  37. М.Ж., Васенкова И. А., Гренбэк Л. Г., Грунтенко Н. Е., Хлебодарова Т. М., Раушенбах И. Ю. Гены, регулирующие активность щелочной фосфатазы и тирозиндекарбоксилазы у Drosophila virilis сцеплены с хромосомой 6 // Генетика. -1999.-Т. 35.-С. 50−54.
  38. В.В. Приспособленность, экологическая устойчивость и эволюция диплоидных организмов // Генетика. 2000. — Т. 36. — С. 5−16.
  39. М.М., Ватта К. В., Мамок Л. А., Барабанова Л. В., Куцкова Ю. А. Механизмы, обеспечивающие устойчивость генетического материала клетки к стрессовым воздействиям // Генетика. 1994. — Т. 30. — С. 1097−1104.
  40. В.П. Физиология насекомых. М.: Высшая школа, 1988. — 299 с.
  41. Т.М., Анкилова И. А., Грунтенко Н. Е., Суханова М. Ж., Раушенбах И. Ю. Нарушения в стресс-реакции Drosophila коррелируют с изменениями в хит-шок ответе // Докл. РАН. 1998а. — Т. 361. — С. 184−186.
  42. И.И. Проблемы дарвинизма. М.: Советская наука, 1946. — 428 с.
  43. И.И. Факторы эволюции :Теория стабилизирующего отбора. 2-е, перераб. и доп. изд. М.: Наука, 1968. — 451 с.
  44. Abravaya К., Myers M., Murphy S., Morimoto R. The human heat shock protein hsp70 interacts with HSF, the transcription factor that regulates heat shock gene expression.// Genes Dev. 1992. — V. 6. — P. 1153—1164.
  45. Abu-Hakima R., Davey K.G. Two actions of juvenile hormone on the follicle cells of Rhodniusprolixus Stal. // Can. J. Zool. 1975. — V. 53. — P. 1187−1188.
  46. Adam G., Perrimon N., Noselli S. The retinoic-like juvenile hormone controls the looping of left-right asymmetric organs in Drosophila // Development. 2003. — V. 130. — P. 2397−2405.
  47. Adams T.S. The role of juvenile hormone in house-fly ovarian follicle morphogenesis // J. Insect Physiol. 1974. — V. 20. — P. 263−276.
  48. Adams T.S. The role of ovarian hormones in maintaining cyclical egg production in insects // Advances in Invertebrate Reproduction. / eds. Clark W.H. Jr., Adams T.S. -NY: Elsevier, 1980. V. 10. — P.109−125.
  49. Adams T.S., Kelly T.J., Woods C.W. Relationship between the corpus cardiacum-allatum complex and ovaries with haemolymph ecdysteroid profile in the Musca domestica // J. Insect Physiol. 1988. — V. 35. — P. 1105−1109.
  50. Agrahari M., Gadagkar R. Juvenile hormone accelerates ovarian development and does not affect age polyethism in the primitively eusocial wasp, Ropalidia marginata // J. Insect Physiol. 2003. — V. 49. — P. 217−222.
  51. Altaratz M., Applebaum Sh.W., Richard D.S., Gilbert L.I., Segal D. Regulation of juvenile hormone synthethis in wild-type and apterous mutant Drosophila // Mol. Cell. Endocrinol. -1991. V. 81. — P. 205−216.
  52. Andersen J.P., Schwartz A., Gransbergen J.B., Loeschcke V. Dopamine levels in the mosquito Aedes aegypti during adult development, following blood feeding and in response to heat stress // J. Insect Physiol. 2006. — V. 52. — P. 1163−1170.
  53. Andersen S.O. Sclerotization and tanning of the cuticle // Comparative Insect Physiology, Biochemistry and Pharmacology. New York: Pergamon, 1985. — V. 3. — P. 59−74.
  54. Andres A.J., Fletcher J.C., Karim F.D., Thummel C.S. Molecular analysis of the initiation of insect metamorphosis: A comparatyive study of Drosophila ecdysteroid-regulated transcription // Dev. Biol. 1993. — V. 160. — P. 388−404.
  55. Arakawa S., Gocoyne J.D., McCombie W.R., Urquhart D.A., Hall L.M., Fraser C.M., Venter J.C. Cloning, localization, and permanent expression of a D. melanogaster octopamine receptor. // Neuron. 1990. — V. 2. — P. 343−354.
  56. Aribi N., Quennedey A., Pitoizet N., Delbecque J.-P. Ecdysteroid Titres in a Tenebrionid Beetle, Zophobas Altratus: effects of grouping and isolation // J. Insect Physiol. 1997. — V. 43. — P. 815−821.
  57. Arnesen S.J., Olivo R.F. The effects of serotonin and octopamine on behavioral arousal in the crayfish. // Comp. Biochem. and Physiol. C. 1988. — V. 91. — P. 259−263.
  58. Ashburner M.C., Chihara C., Meltzer P., Richards G. On the temporal control of puffing activity in polytene chromosomes // Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1974. — V. 38. — P. 566−662.
  59. Ashburner M.C., Richards G. Sequential gene activation by ecdysone in politenes chromosomes of D. mealnogaster. III. Consequences of ecdysone withdrawal // Dev. Biol. 1976. — V. 54. — P. 203−225.
  60. Audit-Lamour C., Busson D. Oogenesis defects in the ecd-1 mutant of Drosophila melanogaster, deficient in ecdysteroid at high temperature // J. Insect Physiol. -1981. -V. 27. P. 829−837.
  61. Baehr J.C., Cassier P., Caussanel C., Porcheron P. Activity of corpora allata endocrine ballance and reproduction in female Labidura riparia (Dermaptera) // Cell Tissue Res. -1982. V. 225. — P. 267−282.
  62. Bainbridge S.P., Bownes M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster // Journal of Embryology and Experimental Morphology. -1981. V. 66. — P. 57−80.
  63. Bainton R.J., Tsai L.T.-Y., Singh C.M., Moore M.S., Neckameyer W.S., Heberlein U. Dopamine modulates acute responses to cocaine, nicotine and ethanol in Drosophila // Curr. Biol. 2000. — V. 10. — P. 197−194.
  64. Baker F.C., Lanzrein B., Miller C.A., Tsai L.W., Jamieson G.C., Schooley D.A. Detection of only JH III in several life-stages of Nauphoeta cinerea and Thermobia domestica // Life Sci. 1984. — V. 8. — P.1553−1560.
  65. Baler R., Zou J., Voellmy R. Evidence for a role of Hsp70 in the regulation of the heat shock response in mammalian cells // Cell Stress Chaperones. 1996. — V. 1. — P. 33−39.
  66. Banner S.E., Osborne R.H., Walker M.J., Cattel K.J. The pharmacology of the isolated foregut of the locust Schistocerca gregaria — III. Identification of an octopamine2 receptor // Comp. Biochem. Physiol. C. 1989. — V. 92. — C. P.333−336.
  67. Barber R.F., Downer R.G.H., Thompson R.G.H. Perturbation of phospholipid membranes by juvenile hormone // Biochem. Biophys. Acta. 1981. — V. 643. — P. 593 600.
  68. Barchuk A.R., Bitondi M.M.G., Simoes Z.L.P. Effects of juvenile hormone and ecdysone on the timing of vitellogenin appearance in hemolymph of queen and worker pupae of Apis mellifera // J. Insect Sci. 2002. — V. 2. — P. 1−8.
  69. Barnett T., Pachl C., Gergen J.P., Wensink P.C. The isolation and characterization of Drosophila yolk protein genes // Cell. 1980. — V. 21. — P. 729−738.
  70. Bazhan N.M., Makarova E.N., Yakovleva T.V. Food deprivation in pregnancy and reproduction in the water vole (Arvicola terrestris) // Journal of Mammalogy. 1996. -V. 11.-P. 1078−1084.
  71. Bean D.W., Beck S.D., Goodman W.G. Juvenile hormone esterases in diapause and nodiapause larvale of the European corn borer, Ostrinia nuhilalis // J. Insect Physiol. -1982. V. 28. — P. 485−492.
  72. Behrens W., Hoffmann K.H. Effect of exogenous ecdysteroids on reproduction in crickets, Gryllus bimaculatus // Int. J. Invert. Reprod. 1983. — V. 6. — P. 149−159.
  73. Belles X., Casas J., Messenguer A., Piulachs M.D. In vitro biosynthesis of JH III by the corpora allata of Blatella germanica (L.) adult females // Insect Biochem. 1987. — V. 17. — P. 1007−1010.
  74. Belyaev D.K., Borodin P.M. The influence of stress on variation and its role in evolution // Biologisches Zentralblatt. -1982. V. 100. — P. 705−714.
  75. Bender M., Imam F.B., Talbot W.S., Ganetzky B., Hogness D.S. Drosophila ecdysone receptor mutations reveal functional differences among receptor isoforms // Cell. -1997. V. 91. — P. 777−788.
  76. Benz G. The stimulation of oogenesis in Pieris brassicae by the juvenile hormone derivative farnesenic acid ethyl ester // Experientia. 1970. — V. 26. — P. 1012.
  77. Berger S.L., Meselson M. Production and cleavage of Drosophila hsp70 transcripts extending beyond the polyadenylation site // Nucleic Acids Res. -1994. V. 22. — P. 3218−3225.
  78. Bhaskaran G. Regulation of corpus allatum activity in last instar Manduca sexta larvae // Current Topics in Insect Endocrinology and Nutrition / eds. Bhaskaran G., Friedman S., Rodriguez J.G. New York: Plenum Press, 1981. P. 53−81.
  79. Bhaskaran G., Jones G., Jones D. Neuroendocrine regulation of corpus allatum activity in Manduca sexta: Sequential neurohormonal and nervous inhibition in the last larval instar // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1980. — V. 77. — P. 4407−4411.
  80. Bijlsma R., Loeschcke V. Introductory remarks: Environmental stress, adaptation and evolution // Stress, adaptation and evolution / Eds. Bijsma R., Loeschcke V. Basel: Birkhauser, 1997. — P. 13−17.
  81. Boehmler W., Obrecht-Pflumio S., Canfield V., Thisse C., Thisse B., Levenson R. Evolution and expression of D2 and D3 dopamine receptor genes in zebrafish. // Dev. Dyn. 2004. — V. 230. — P. 481193.
  82. Bollenbacher W.E., Goodman W., Vedeckis W.V., Gilbert L. The in vitro synthesis and secretion of a-ecdysone by the ring glands of the fly, Sacrophaga bullata // Steroids.1976. V. 27. — P. 309−324.
  83. Bollenbacher W.E., Smith S.L., Goodman W., Gilber L.I. Ecdysteroid titer during larval-pupal-adult development of tobacco hornworm, Manduca Sexta // Gen Comp Endocr. -1981. V. 44. — P. 302−306.
  84. Bollenbacher W.E., Smith S.L., Wielgus J.I., Gilbert L.I. Evidence for an a-ecdysone cytochrome P-450 mixed function oxidase in insect fat body mitochondria // Nature.1977.-V. 268.-P. 660−663.
  85. Bollenbacher W.E., Zvenko H., Kumaran A.K., Gilbert L.I. Changes in ecdysone content of the wax moth, Galleria mellonella: the role in the ovary // Gen. Comp. Endocrinol. 1978. — V. 34. — P. 169−179.
  86. Bonner J. Regulation of Drosophila heat-shock response // Heat shock from bacteria to man. New York, Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1982. — P. 147—153.
  87. Borovsky D., Carlson D.A., Hancock R.G., Rembold H., Van Handel E. De novo biosynthesis of juvenile hormone III and I by the accessory glands of the male mosquito // Insect Biochem. Mol. Biol. 1994a. — V. 24. — P. 437−444.
  88. Borovsky D., Carlson D.A., Ujvary I. in vivo and in vitro biosynthesis and metabolism of methyl farnesoate, juvenile hormone III, and juvenile hormone III acid in the mosquito Aedes aegypti // J. Med. Entomol. 1992. — V. 29. — P. 619−629.
  89. Borovsky D., Carlson D.A., Ujvary I., Prestwich G.D. Biosynthesis of (lOR)-juvenile hormone III from farnesoic acid by Aedes aegypti ovary // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1994b. — V. 2. — P. 75−90.
  90. Borovsky D., Thomas B.R., Carlson D.A., Whisenton L.R., Fuchs M.S. Juvenile hormone and 20-hydroxyecdysone as primary and secondary stimuli of vitellogenesis in Aedes aegypti // Arch. Insect Biochem. Physiol. -1985. V.-2. — P. 75−90.
  91. Borst D.W., Engelmann F. In vitro secretion of a-ecdysone by prothoracic glands of a hemimetabolous insect Leucophaea maderae (Blattaria) // J. Exp. Zool. -1974. V. 189.-P. 413−419.
  92. Bourgouin C., Lundgren S.E., Thomas J.B. Apterous is a Drosophila LIM domain gene required for the development of a subset of embryonic muscles // Neuron. -1992. V. 9. — P. 549−561.
  93. Bowers W.S., Evans P.H., Marsella P.A., Sonderlund D.M. Natural and synthetic allatoxins: suicide substrates for juvenile hormone biosynthesis // Science. 1982. — V. 217. — P. 647−648.
  94. Bownes M. The role of 20-OH-ecdysone in yolk polypeptide synthesis by male and female fat bodies of Drosophila melanogaster // J. Insect Physiol. 1982. — V. 28. — P. 317−328.
  95. Bownes M. Expression of genes coding for vitellogenin (yolk protein) // Annu. Rev. Entomol. 1986. — V. 31. — P. 507−531.
  96. Bownes M. The roles of juvenile hormone, ecdysone and the ovary in the control of Drosophila vitellogenesis //J. Insect Physiol. -1989. V. 35. — P. 409−413.
  97. Bownes M. The regulation of the yolk protein genes, a family of sex differentiation genes in Drosophila melanogaster // BioEssays. -1994. V. 16. — P. 745−752.
  98. Bownes M, Blair M. The effects of a sugar diet and hormones on the expression of the Drosophila yolk protein genes // J. Insect Physiol. 1986. — V. 32. — P. 493−501.
  99. Bownes M, Blair M., Kozma R., Dempster M. 20-hydroxyecdysone stimulates tissue specific yolk protein gene transcription in both male and female Drosophila // J. Embyol. Exp. Morphol. 1983. — V. 78. — P. 249−263.
  100. Bownes M, Dubendorfer A., Smith T. Ecdysteroids in adult males and females of Drosophila melanogaster // J. Insect Physiol. 1984. — V. 30. — P. 823−830.
  101. Bownes M, Nothiger R. Sex determining genes and vitellogenin synthesis in Drosophila melanogaster // Mol. Gen. Genet. -1981. V. 182. — P. 222−228.
  102. Bownes M., Rembold H. The titre of juvenile hormone during the pupal and adult stage of the life cycle of Drosophila melanogaster /'Eur. J. Biochem. 1987. — V. 164. — P. 709−712.
  103. M., Ronaldson E., Mauchiline D. 20-hydroxiecdysone, but not juvenile hormone, regulation of yolk protein gene expression can be mapped to cis-acting DNA sequences // Dev. Biol. 1996. — V. 173. — P. 475−489.
  104. Bownes M, Ronaldson E, Mauchiline D, Martinez A Regulation of vitellogenesis in Drosophila // International Journal of Insect Morphology and Embryology. 1993. — V. 22.-P. 249−367
  105. Bowser-Riley F., House C.R. The actions of some putative neurotransmitters on the cockroach salivary gland //J. Exp. Biol. -1976. V. 64. — P. 665−676.
  106. Bradley J.T., Masetti M., Cecchettini A., Giorgi F. Vitellogenesis in the allatectomized stick insect Carausius morosus (Br.) (Phasmatodea: Lonchodinae) // Comp. Biochem. Physiol. 1995. V.110B. P.255−266.
  107. Braunig P. Suboesophageal DUM neurons innervate the principal neuropiles of the locust brain // Proc. R. Doc. Lond. B. 1991. — V. 332. — P. 221−240.
  108. Bray S. J., Hirsh J. The Drosophila virilis dopa decarboxylase gene is developmentally regulated when integrated into Drosophila melanogaster // E M B O J. 1986. — V. 5. -P. 2305−2311.
  109. Brennan M.D., Weiner A.J., Goralski T, J., Mahowald A.P.The follicle cells are a major site of vitellogenin synthesis in Drosophila melanogaster // Dev Biol. — 1982. V. 89. -P. 225−236.
  110. Brown M.R., Graf R., Swiderek K.M., Fendley D., Stracker T.H. Champagne D.E., Lea A.O. Identification of a steroidogenic neurohormone in female mosquitoes // J. Biol. Chem. 1998. — V. 273. — P. 3967−3971.
  111. Brown C. S., Nestler C. Catecholamines and indolalkylamines // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut B. A., Gilbert L. 1. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 11. — P. 435−469.
  112. Brunet P. C. J. The metabolism of the aromatic amino acids concerned in the cross-linking of insect cuticle // Insect Biochem. 1980. — V. 10. — P. 467−500.
  113. Bubliy O.A., Loeschcke V., Imasheva A.G. Effect of stressful and nonstressful growth temperatures on variation of sternopleural bristle number in Drosophila melanogaster // Evolution Int. J. Org. Evolution. 2000. — V. 54. — P. 1444−1449.
  114. Budnik V, White K. Catecholamine-containing neurons in Drosophila melanogaster. Distribution and development // J. Comp. Neurol. 1988. — V. 268. — P. 400113.
  115. Buhrlen U., Emmerich H., Rembold H. Titer of juvenile hormone III in Drosophila hydei during metamorphosis determined by GC-MS-MIS // Z. Naturforsch. 1984. — V. 39c. — P. 1150−1154.
  116. Buschor J., Lanzrein B. Isolation and quantification of vitellogenin in the hemolymph of the ovoviviparous cockroach Nauphoeta cinerea // Comp. Biochem. Physiol. 1983. -V. 76B. — P.65−72.
  117. Buszczak M., Freeman M.R., Carlson J.R., Bender M., Cooley L., Segraves W.A. Ecdysone response genes govern egg chamber development during mid-oogenesis in Drosophila // Development. 1999. — V. 126. — P. 4581−4589.
  118. Buszczak M., Segraves W.A. Drosophila metamorphosis: the only way is USP? // Curr. Biol. -1998. V. 8. — P. R879-R882.
  119. Campbell P.M., Healy M.J., Oakeshott J.G. Characterisation of juvenile hormone esterase in Drosophila melanogaster // Insect Bochem. Mol. Biol. -1992. V. 22. — P. 665−677.
  120. Candy D.J. The regulation of locust flight muscle metabolism by octopamine and other compounds. // Insect Biochem. 1979. — V. 8. — P. 177−181.
  121. Capeila I.C.S., Hartfelder K. Juvenile-hormone-dependent interaction of actin and spectrin is crusial for polymorphic differentiation of the larval honey bee ovary // Cell Tissue Res. 2002. — V. 307. — P. 265−272.
  122. Carney G.E., Bender M. The Drosophila ecdysone receptor (EcR) gene is required maternally for normal oogenesis // Genetics. 2000. — V. 154. — P. 1203−1211.
  123. Chang E.S., O’Connor J.D. Arthropod molting hormones. // Methods of Hormone Radioimmunoassay, 2nd edn. / Eds Jaffe B.M., Behrman H.R. New York: Academic Press, 1979. — P. 797−814.
  124. Charlet M., Goltzene F., Hoffmann J.A. Experimental evidence for a neuroendocrine control of ecdysone biosynthesis in adult females of Locusta migratoria // J. Insect Physiol. 1979. — V. 25. — P. 463−466.
  125. Chen T.T., Couble P., De Lucca F.L., Wyatt G.R. Juvenile hormone control of vitellogenin synthesis in Locusta migratoria // The Juvenile Hormones / ed. Gilbert, L.I. New York: Plenum Press, 1976. — P. 505−529.
  126. Chen J.-H., Kabbouh M., Fisher M.J., Rees H.H. Induction of an activation pathway for ecdysteroids in larvae of the cotton leafworm, Spodoptera littoralis // Biochem. J. -1994a.-V. 301.-P. 89−95.
  127. Chen P. S., Stumm-Zollinger E., Aigaki T., Balmer J., Bienz M., Bohlen P. A male accessory gland peptide that regulates reproductive behavior of female D. melanogaster // Cell. 1988. — V. 54. — P. 291−298.
  128. Chen X., Reynolds E., Ranganayakulu G., O’Donnell J. A maternal product of the Punch locus of Drosophila melanogaster is required for precellular blastoderm nuclear divisions // J. Cell Sci. 1994b. — V. 107. — P. 3501−3513.
  129. Chernysh S.I. Neuroendocrine system in insect stress // In Hormones and metabolism in insect stress / Eds Ivanovic J., Jankovic-Hladni M. Boca Raton: CRC Press, 1991. -P. 69−98.
  130. Chino H., Sakurai S., Ohtaki T., lkekawa N., Miyazaki H., lshibashi M., Abuki H. Biosynthesis of a-ecdysone by prothoracic glands in vitro // Science. 1974. — V. 183. -P. 529−530.
  131. Chippindale A.K., Chu T.J.F., Rose M.R. Complex trade-offs and the evolution of starvation resistance in Drosophila melanogaster // Evolution. 1996. — V. 50. — P. 753 766.
  132. Chomczynski P., Sacchi N. Single step method of RNA isolation by acid guanidinum thiocyanate-phenol-chloroform extraction // Annal. Biochem. 1987. — V. 162. — P. 156 159.
  133. Christensen T.A., Carlson A.D. Symmetrically organized dorsal unpaired median (DUM) neurons and flash control in the male firefly, Photuris versicolar // J. Exp. Biol. -1981. V. 93. — P. 133−147.
  134. Civelli O., Bunzow J. R, Grandy D.K. Molecular diversity of the dopamine receptors. // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1993. — V. 33. — P. 281−307.
  135. Clements A.N., Boocock M.R. Ovarian development in mosquitoes: stages of growth and arrest, and follicular resorption // Physiol. Entomol. 1984. — V. 9. — P. 1−8.
  136. Cohan F.M., Hoffmann A.A. Uniform selection as a diversifying force in evolution: evidence from Droophila // Am. Nat. 1989. — V. 134. — P. 613−637.
  137. Cohen B., McGuffin E., Pfeifle C., Segal D., Cohen S.M. apterous-. A gene required for imaginal disc development in Drosophila encodes a member of the LIM family of developmental regulatory proteins // Genes Dev. 1992. — V. 6. — P. 715−729.
  138. Comas D., Piulachs M.D., Bellaes X. Fast induction of vitellogenin gene expression by juvenile hormone III in the cockroach Blatella germanica (L.) (Dictyoptera, Blattelidae) // Insect Biochem. Mol. Biol. 1999. — V. 29. — P. 821−827.
  139. Connat J.L., Delbecque J.P., Glitho I., Delachambre J. The onset of metamorphosis in Tenebrio molitor larvae (Insecta, Coleoptera) under grouped, isolated and starved conditions //J. Insect Physiol. 1991. — V. 37. — P. 653−662.
  140. Coschigano K.T., Wensink P.C. Sex-specific transcriptional regulation by the male and female doublesex proteins of Drosophila // Genes Dev. 1993. — V. 7. — P. 42−54.
  141. Craig E.A. Eukaryotic chaperonins: lubricating the folding of WD-repeat proteins // Curr. Biol. 2003. — V. 13. — P. R904- R905.
  142. Cusson M., Yu C.G., Carruthers K., Wyatt G.R., Tobe S.S., McNeil J.N. Regulation of vitellogenin production in armyworm moths, Pseudalettia unipuncta // J. Insect Physiol. 1994. — V. 40. — P. 129−136.
  143. Cymborovski B. Effect of cooling stress on endocrine events in Galleria mellonella // Endocrinological frontiers in physiological insect ecology / Eds Sehnal F., Zabza A., Denlinger D.L. Wroclaw: Univ. Press, 1988. — V. 1. — P. 203−212.
  144. Cymborowski B. Effect of cold sress on endocrine system in Galleria mellonella // Hormones and metabolism in insect stress / Eds Ivanovic J., Jankovic-Hladni M. Boca Raton: CRC Press, 1991. — P. 99−114.
  145. Dai J.D., Henrich V.C., Gilbert L.I. An ultrastructural analysis of the ecdysonelessl (3)ecdlts) ring gland during the third larval instar of Drosophila melanogaster // Cell Tissue Res. 1991. — V. 265. — P. 435−445.
  146. Davenport A.K., Evans P.D. Stress-induced changes in octopamine levels of insect hemolymph // Insect Biochem. 1984. — V. 14. — P. 135−150.
  147. Davey K.G. The female reproductive tract. // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 1. — P. 1−14.
  148. Davey K.G. Insect vitellogenesis: putting the Diptera in context // Perspectives in Comparative Endocrinology /Eds.: Davey K.G., Peter R.E., Tobe S.S. Ottawa: Natl. Res. Council Canada, 1994. — P. 299−303.
  149. Dean R.L., Bollenbacher W.E., Locke M., Smith S.L., Gilbert L.I. Haemolymph ecdysteroid levels and cellular events in the intermoult/moult sequence of Calpodes ethlius // J. Insect Physiol. -1980. V. 26. — P. 267−280.
  150. Deitsch K.W., Chen J.S., Raikhel A.S. Indirect control of yolk protein genes by 20-hydroxyecdysone in the fat body of the mosquito, Aedes aegypti // Insect Biochem. Mol. Biol. 1995. — V. 25. — P. 449−454.
  151. Delbecque J.-P., Delachambre J., Hirn M., De Reggi M. Abdominal production of ecdysterone and pupal-adult development in Tenebrio molitor (Insecta Coleoptera) // Gen. Comp. Endocrinol. 1978. — V. 35. — P. 436−444.
  152. Delbecque J-P., Weidner K, Hoffmann KH Alternative sites for ecdysteroid production in insects 11 Invertebr. Reprod. Dev. 1990. — V. 18. — P. 29−42.
  153. Delinger D.A., Tanaka S. Cycles of juvenile hormone esterase activity during the juvenile hormone-driven cycles of oxygen consumption in diapause of flesh flies // Experientia. 1989. — V. 45. — P. 474−476.
  154. Delisle J., Cusson M. Juvenile hormone biosynthesis, oocyte growth and vitellogenin accumulation in Choristoneura fumiferana and C. rosaceana: a comparative study // J. Insect Physiol. -1999. V 45. — P. 515−523.
  155. Dellavalle R.P., Petersen R., Lindquist S. Preferential deadenylation of Hsp70 mRNA plays a key role in regulating Hsp70 expression in Drosophila melanogaster // Mol. Cell. Biol. 1994. — V. 14. — P. 3646−3659.
  156. Deng W.-M., Bownes M. Two signalling pathways specify localised expression of the Broad-Complex in Drosophila eggshell patterning and morphogenesis // Development. -1997. V. 124. — P. 4639−4647.
  157. Denlinger D.L. Hormonal control of diapause // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 8. — P. 353−412.
  158. Dewhurst S.A., Crocer S.C., Ikeda K., McCaman R.E. Metabolism of biogenic amines in Drosophila nervous tissue // Comp. Biochem. Physiol. 1972. — V. 43. — P. 975−981.
  159. DiDomenico B., Bugaisky G., Lindquist S. The heat shock response is self-regulated at the both ranscriptional and posttranscriptional levels // Cell. 1982. — V. 31. — P. 593 603
  160. Ding D., Parkhurst S.M., Halsell S.R., Lipshitz H.D. Dynamic Hsp83 RNA localization during Drosophila oogenesis and embryogenesis // Mol. Cell Biol. 1993. — V. 6. — P. 3773−3781.
  161. Dhadialla T.S., Raikhel A.S. Endocrinology of mosquito vitellogenesis // Perspectives in comparative endocrinology / Eds. Davey K.G., Peter R.E., Tobe S.S. Ottawa: National Research Counsil of Canada, 1994. — P. 275−281.
  162. Do T., Sun Q., Beuve A., Kuzhikandathil E.V. Extracellular cAMP inhibits D (l) dopamine receptor expression in CAD catecholaminergic cells via A (2a) adenosine receptor. // J. Neurochem. 2007. — V. 101, — P. 619−631.
  163. Don-Wheeler G., Engelmann F. The biosynthesis and processing of vitellogenin in the fat bodies of females and males of the cocroach Leucophaea maderae I I Insect Biochem. Mol. Biol. 1997. — V. 27. — P. 901−918.
  164. Dorfman M., Arancibia S., Fiedler J.L., Lara H.E. Chronic intermittent cold stress activates ovarian sympathetic nerves and modifies ovarian follicular development in the rat // Biol. Reprod. 2003. — V. 68. — P .2038−2043.
  165. Downer R.G.H. Trehalose production in isolated fat body of the American cockroach, Periplaneta americana // Comp. Biochem. Physiol. C. 1979a. — V. 62. — P. 31−34.
  166. Downer R.G. H. Induction of hypertrehalosemia by excitation in Periplaneta americana // J. Insect Physiol. 1979b. — V. 25. — P. 59−63.
  167. Downer R. G. H., Hiripi L., Juhos S. Characterization of the tyraminergicsystem in the central nervous system of the locust, Locusta migratoria migratoriedes // Neurochem.
  168. Res. -1993. V. 18. — P. 1245−1248.
  169. Downer R.G.H., Orr G.L., Gole J.W., Orchard I. The role of octopamine and cyclic AMP in regulating hormone release from corpora cardiaca of the American cockroach // J. Insect Physiol. -1984. V. 30. — P. 457−462.
  170. Dudai Y. High-affinity octopamine receptors revealed in Drosophila by binding of H. octopamine //Neurosci. Lett. — 1982. — V. 28. — P. 163−167.
  171. Dudai Y., Zvi S. High-affinity H. octopamine binding sites in Drosophila melanogaster. interaction with ligand and relationship to octopamine receptor. // Comp. Biochem. Physiol. -1984. V. 77C. — P. 145−151.
  172. Duve H., Thorpe A., Yagi K.J., Yu C.G., Tobe S.S. Factors affecting the biosynthesis and release of juvenile hormone bisepoxide in the adult blowfly Calliphora vomitoria // J. Insect. Physiol. 1992. — V. 38. — P. 575−585.
  173. Dymond G.R., Evans P.D. Biogenic amines in the nervous system of the cockroach Periplaneta americana association with mushroom bodies and dorsal unpaired median neurones // Insect Biochem. 1979. — V. 9. — P. 535−545.
  174. Edwards G.C., Braun R.P., Wyatt G.R. Induction of vitellogenin synthesis in Locausta migratoria by the juvenile hormone analog, Pyriproxyfen // J. Insect Physiol. 1993. -V. 39. — P. 609−614.
  175. Edwards J.P., Rowlands D.G. Metabolism of a synthetic insect juvenile hormone (JH-I) during the development of Tribolium castaneum (Herbst) (Coleoptera, Tenebrionidae) // Pestic. Biochem. Physiol. 1977. — V. 7. — P. 194−201.
  176. Edwards J.P., Rowlands D.G. Metabolism of a synthetic insect juvenile hormone (JH-I) in two strains of the grain weevil, Sitephilus granaris // Insect. Biochem. 1978. — V. 8. -P. 23−28.
  177. Ejezie G.C., Davey K.G. Some effects of mating in female tsetse Glossina austeni // J. Exp. Zool. 1977. — V. 200. — P. 303−310.
  178. Elliot R.H., Gillot C. Histological changes in the ovary in relation to yolk deposition, allatectomy, and destruction of the median neurosecretory cells in Melanoplus sanguinipes // Can. J. Zool. 1976. — V. 54. — P. 185−192.
  179. Endo K. Relation between ovarian maturation and activity of the corpora allata in seasonal forms of the butterfly, Polygonia c-aureum L. // Develop. Growth Different. -1970. V. 11. — P. 297−304.
  180. Engelmann F. Endocrinal control of insect reproduction, a possible basis for insect control // Acta Phytopathologica Academiae Scientiarum Hungaricae. -1971. V. 6. -P. 211−217.
  181. Engelmann F. Ecdysteroids, juvemile hormone and vitellogenesis in the cocroach Leucophaea maderae // J. Insect Sci. 2002. — V. 2. — P. 152−160.
  182. Engelmann F., Mala J. The interactions between juvenile hormone (JH), lipophorin, vittelogenin, and JH esterases in two cocroach spesies // Insect Biochem. Mol. Biol. -2000. V. 30. — P. 793−803.
  183. Erber J., Kloppenburg P., Scheidler A. Neuromodulation by serotonin and octopamine in the honey-bee: behaviour, neuroanatomy and electrophysiology // Experientia. -1993. V. 49. — P. 1073−1083.
  184. Evans P.D. Biogenic amines in the insect nervous system // Adv. Insect Physiol. 1980.- V. 15. P. 317−322.
  185. Evans P.D. Octopamine // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon press, 1985. — V. 11.- P. 499−538.
  186. Evans P.D., O^Shea M. An octopaminergic neurone modulates neuromuscular transmission in the locust // Nature. 1978. — V. 270. — P. 257−259.
  187. Evgen’ev M.B., Zatsepina O.L., Titarenko H. Autoregulation of heat-shck system in Drosophila melanogaster. Analysis of heat-shock response in a temperature sensitive cell lethal mutant // FEBS Lett. 1985. — V. 188. — P. 286—290.
  188. Fang Fio, Xu Yio, Jones Dio, Jones G. Interactions of ultraspiracle with ecdysone receptor in the transduction of ecdysone- and juvenile hormone-signaling// FEBS Lett.- 2005. V. 272. — P. 1577−1589.
  189. Farkas R., Knopp J. Ecdysone-modulated response of Drosophila cytosolic malate dehydrogenase to juvenile hormone // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1997. — V. 35. -P. 71−83.
  190. Farkas R., Danis P., Medvedova L., Mechler B.M., Knopp J. Regulation of cytosolic malate dehydrogenase by juvenile hormone in Drosophila melanogaster // Cell. Biochem. Biophys. 2002. — V. 37. — P. 37−52.
  191. Feder M.E., Hofmann G.E. Heat-shock proteins, molecular chaperonoes, and the stress response // Annu. Rev. Physiol. 1999. — V. 61. — P. 243−282.
  192. Feder M., Parsell D., Lindquist S. Stress response and stress proteins // Cell Biology of Trauma. Boca Raton: CRC Press, 1995. — P. 177—191.
  193. Feng G., Hannan F., Reale V., Hon Y.Y., Kousky Ch.T. Cloning and functional characterization of a novel dopamine receptor from Drosophila melanogaster // J. Nurosci. 1996. — V. 16. — P. 3925−3933.
  194. Ferdig M.T., Taft A.S., Smartt C.T., Lowenberger C.A., Li J. Zhang J., Christensen B.M. Aedes aegypti dopa decarboxylase: gene structure and regulation. // Insect Mol. Biol. 2000. — V. 9. — P. 231−239.
  195. Feinsod F.M., Spielman A. Independently regulated juvenile hormone activity and vitellogenesis in mosquitoes // J. Insect Physiol. 1980. — V. 26. — P. 829−832.
  196. Feyereisen R., Durst F. Ecdysterone biosynthesis: a microsomal cytochrome P-450 linked ecdysone 20-monooxygenase from tissues of the African migratory locust // Eur J Biochem. 1978. — V. 88. — P. 37−47.
  197. Fields P.E., Woodring J.P. Octopamine mobilization of lipids and carbohydrates in the house cricket, Acheta domesticus // J. Insect Physiol. 1991. — V. 37. — P. 193−199.
  198. Fisher R.A. The gentical theory of natural selection. N.Y.: Dover Publ., Inc., 1958. -291 p.
  199. Fitzpatrick P.F. Tetrahydropterin-dependent amino acid hydroxylases // Annu. Rev. Biochem. 1999. — V. 68. — P. 355−381.
  200. Forbes V.E., Calow P. Responses of aquatic organisms to pollutant stress: theoretical and practical implications // Stress, Adaptation and Evolution / Eds. Bijlsma K, Loeschcke V. Basel: Birkhauser Verlag, 1997. — P. 25−41.
  201. Freeman M.R. Dobritsa, A., Gaines, P., Segraves, W.A., Carlson, J.R. The dare gene: steroid hormone production, olfactory behavior, and neural degeneration in Drosophila // Development. 1999. — V. 126. — P. 4591−4602.
  202. Friedel T., Feyereisen R., Mundall E.C., Tobe S.S. The allostatic effect of 20-hydroxyecdysone on the adult viviparous cockroach, Diplopterapunctata // J. Insect Physiol. 1980. — V. 26. — P. 695−670.
  203. Fristrom J.W., Logan W.R., Murphy C. The synthetic and minimal requirements for evagination of imaginai discs of Drosophila melanogaster in vitro // Dev. Biol. 1973. -V. 33. — P. 441−456.
  204. Gade G., Hoffmann K.H., Spring J.H. Hormonal regulation in insects: facts, gaps, and future directions // Physiol. Rev. -1997. V. 77. — P. 963−1032.
  205. Gailey D., Jackson F., Siegel R. Male courtship in Drosophila: The conditioned response to immatyre males and its genetic control // Genetics. -1982. V. 102. — P. 771−782.
  206. Garabedian M.J., Shirras A.D. Bownes M., Wensink P.C. The nucleotide sequence of the gene coding for Drosophila melanogaster yolk protein 3 // Gene. 1987. — V. 55. -P. 1−8.
  207. Garcia M.L.M., Mello R.P., Garcia E.S. Ecdysone, juvenile hormone and oogenesis in Rhodnius prolixus // J. Insect Physiol. 1979. — V. 25. — P. 695−700.
  208. Gao B, Biosca J, Craig EA, Greene LE, Eisenberg E. Uncoating of coatel vessicles by yeast hsp70 proteins // Journal of Biological Chemistry. -1991. V. 266. — P. 1 956 519 571.
  209. Garen A., Kauvar L., Lepesant J.-A. Roles of ecdysone in Drosophila development // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1977. — V. 74. — P. 5099−5103.
  210. Gavin J.A., Williamson J.H. Juvenile-hormone-induced vitellogenesis in apterous-4, a non-vitellogenic mutant in Drosophila melanogaster // J. Insect Physiol. 1976. — V. 22.- P. 1737−1742.
  211. Gebhardt M.D., Stearns S.C. Phenotypic plasticity for life-history characters in Drosophila melanogaster. Effect of the environment on genetic parametres 11 Genet. Res. 1992. — V. 60. — P. 87−101.
  212. German M.S., Wang J., Chadwich R.B., Rutter W.J. Synergistic activation of the insulin gene by a LIM-homeo domain protein and basic helix-loop-helix protein: Building a functional insulin minienhancer complex // Genes Dev. -1992. V. 6. — P. 2165−2176.
  213. Gersch M. Insect metamorphosis and the activation hormone // Amer. Zool. 1961. — V. 1. — P. 53−57.
  214. Gerstenlauer B., Hoffmann K.H. Ecdysteroids during ovarian development and embryogenesis in the cricket, Gryllus bimaculatus (Ensifera: Gryllidae) // Eur. J. Entomol. 1995. — V. 92. — P. 81−92.
  215. Gilbert L.I., Granger N.A., Roe R.M. The juvenile hormones: historical facts and speculations on future research directions // Insect Biochem. Mol. Biol. 2000. — V. 30.- P .617−644.
  216. Gingrich J.A. Caron M.G. Recent advances in the molecular biology of dopamine receptors // Ann. Rev. Neurosci. 1993. — V. 16. — P. 299−321.
  217. Giorgi F. In vitro induced pinocytotic activity by a juvenile hormone analogue in oocytes of Drosophila melanogaster // Cell Tissue Res. 1979. — V. 203. — P. 241−247.
  218. Glover J.R., Tkach J.M. Crowbars and ratchets: hsplOO chaperones as tools in reversing protein aggregation // Biochem. Cell Biol. 2001. — V. 79. — P. 557−568.
  219. Godlewski J., Wang S., Wilson T.G. Interaction of bHLH-PAS proteins involved in juvenile hormone reception in Drosophila // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2006. -V. 342.-P. 1305−1311.
  220. Goltzene F, Lagueux M, Charlet M, Hoffmann JA. The follicle cell epithelium of maturing ovaries of Locusta migratoria: a new biosynthetic tissue for ecdysone // Hoppe Seylers Z. Physiol. Chem. 1978. — V. 359. — P. 1427−1434.
  221. Goodman W.G., Chang E.S. Juvenile hormone cellular and haemolymph binding proteins // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon press, 1985. — V. 7. — P. 491−510.
  222. Goodman W., Gilbert L.I. The haemolymph titer of juvenile hormone binding protein and binding sites during the fourth larvae instar of Manduca sexta // Gen. Comp. Endocrinol. -1978. V. 35. — P .27−34.
  223. Goodman W.G., Granger N.A. The juvenile hormones // Comprehensive Molecular Insect Science/Eds. Gilbert L.I., Iatrou K., Gill S.S. Oxford: Elsevier/Pergamon, 2005. V. 3. — P. 319−409.
  224. Goodman W.G., Maxfield B., Park Y.C. Immunochemical similarities among the hemolymph juvenile hormone binding proteins // Experientia. 1991. — V. 47. — P. 945 948.
  225. Goto S.G., Kimura M.T. Heat and cold shock responses and temperature adaptations in subtropical and temperate species of Drosophila // J. Insect Physiol. 1998. — V. 44. — P. 1233−1239.
  226. Gotzes F., Balfanz S., Baumann A. Primary structure and functional characterization of a Drosophila dopamine receptor with high homology to human Dl/5 receptors // Receptors Channels. 1994. — V. 2. — P. 131−141.
  227. Granger N. A., Ebersohl R., Sparks T.C. Pharmacological characterization of dopamine receptors in the corpus allatum of Manduca sexta larvae // Insect Biochem. Mol. Biol. -2000. V. 30. — P. 755−766.
  228. Granger N.A., Sturgis S.L., Ebersohl R., Geng C., Sparks T.C. Dopaminergic control of corpora allata activity in the larval tobacco hornworm, Manduca sexta // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1996. — V. 32. — № 3−4. — P. 449−466.
  229. Granger N.A., Whisenton L.R., Janzen W.P., Bollenbacher W.E. Interendocrine control by 20-hydroxyecdysone of the coropora allata of Manduca sexta // Insect Biochem. -1987. V. 17. — P. 949−954.
  230. Grau V., Lafont R. Metabolism of Ecdysone and 20-hydroxyecdysone in adult Drosophila melanogaster // Insect Biochem. Mol. Biol. 1993.- V. 24. — P. 49−58.
  231. Gwadz R.W., Spielman A. Corpus allatum control of ovarian development in A. aegypti //J. Insect Physiol. 1973. — V. 19. — P. 1441−1448.
  232. Hagedorn H.H. Ecdysone a honadal hormone in insects // Advances in Invertebrate reproduction / Eds: Clark WH, Adams TS. Amsterdam: Elsevier/North Holland Biomedical Press, 1980. — P. 97−107.
  233. Hagedorn H.H. The role of ecdysteroids in redroduction // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology. New York: Pergamon Press, 1985. — V. 8. — P. 205−262
  234. Hagedorn H.H. The endocrinology of the adult female mosquito // Advances in Disease Vector Research. -1994. V. 10. — P. 109−148.
  235. Hagedorn H.H., Fallon A.M. Ovarian control of vitellogenin synthesis by the fat body in Aedes aegypti II Nature. 1973. — V. 244. — P. 103−105.
  236. Hagedorn H.H., O’Connor J.D., Fuchs M.S., Sage B., Schlaeger D.A., Bohm M.K. The ovary as a source of a-ecdysone in an adult mosquito // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. -1975. V. 72. — P. 3255−3259.
  237. Hammock B.D. Regulation of juvenile hormone titer: degradation // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds Kerkut G.A., Gilbert L.I. -Oxford: Pergamon Press, 1985. -V.l.- P. 431−472.
  238. Hammock B.D., Sparks T.C. A rapid assay for insect juvenile hormone esterase activity // Analyt. Biochem. 1977. — V. 82. — P. 573−579.
  239. Han K. A., Millar N. S" Grotewiel M. S., Davis R. L. DAMB, a novel dopamine receptor expressed specifically in Drosophila mushroom bodies // Neuron. 1996. — V. 16. — P. 1127−1135.
  240. Hanaoka K., Hagedorn H.H. Brain hormone control of ecdysone secretion by the ovary in a mosquito // Progress in ecdysone research / Ed. Hoffmann J.A. Amsterdam: Elsevier/North-Holland Biomedical Press, 1980. — P. 467−480.
  241. Hanaoka K., Ohnishi E. Changes in ecdysone titre during pupal-adult development in the silkworm, Bomyx mori I I J. Insect Physiol. 1974. — V. 20. — P. 2375−2384.
  242. Handler A. The roles of juvenile hormone and 20-OH-ecdysone during vitellogenesis in isolated abdomens of Drosophila melanogaster // J. Insect physiol. 1979. — V. 25. — P. 455−460.
  243. Handler A.M. Ecdysteroid titers during pupal and adult development in Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1982. — V. 93. — P. 73−82.
  244. Harris J.W., Woodring J. Effects of stress, age, season and source colony on the levels of octopamine, dopamine and serotonin in the honey bee (Apis mellifera L.) brain // J. Insect. Physiol. 1992. — V. 38. — P. 29−35.
  245. Harshman L.G., Casas J., Dietze E.C., Hammock B.D. Epoxide hydrolase activities in Drosophila melanogaster // Insect Biochem. 1991. — V. 21. — P. 887−894.
  246. Harshman L.G., Hoffmann A.A., Clark A.G. Selection for starvation resistance in Drosophila melanogaster: physiological correlates, enzyme activities and multiple stress responses // J. Evol. Biol. 1999a. — V. 12. — P. 370−379.
  247. Harshman L.G., Loeb A.M., Johnson B.A. Ecdysteroid titers in mated and unmated Drosophila melanogaster females // J. Insect Physiol. 1999b. — V. 45. — P. 571−577.
  248. Harshman L.G., Moore K.M., Sty M.A., Magwire M.M. Stress resistance and longevity in selected lines of Drosophila melanogaster // Neurobiol. Aging. 1999c. — V. 20. — P. 521−529.
  249. Harshman L.G., Schmid J.L. Evolution of starvation resistance in Drosophila melanogaster: aspects of metabolism and counter-impact selection // Evolution. 1998. — V. 52. — P. 1679−1685.
  250. Hartfelder K. Insect juvenile hormone: from 'status quo' to high society // Braz. J. Med. Biol. Res. 2000. — V. 33. — P. 157−177.
  251. Hayakawa Y. Juvenile hormone esterase activity repressive factor in the plasma of parazited insect larvae // J. Biol. Chem. 1990. — V. 265. — P. 10 813−10 816.
  252. Henrich V.C., Tucker R.L., Maroni G., Gilbert L.I. The ecdysoneless (ecdl, s) mutation disrupts ecdysteroid synthesis autonomously in the ring gland of Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1987. — V.120. — P. 50−55.
  253. Herman W.S., Baker J.F. Ecdyserone antagonism, mimicry, and synergism of juvenile hormone action on the monarch butterfly reproductive tract // J. Insect Physiol. 1976. -V. 22. — P. 643−648.
  254. Herman W.S., Bennet D.C. Regulation of oogenesis, female secific protein production, and male and famale reproductive gland development by juvenile hormone in the butterfly, Nymphalis antiopa // J. Comp. Physiol. 1975. — V. 99. — P. 321−338.
  255. Herman W.S., Dallman S.H. Endocrine biology of the painted lady batterfly, Vanessa cardui // J. Insect Physiol. -1981. V. 27. — P. 163−168.
  256. Herman W.S., Tatar M. Juvenile hormone regulation of longevity in the migratory monarch butterfly // Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2001. — V. 268. — P. 2509−2514.
  257. Hidon O., Fukami J. Presynaptic modulation by octopamine at a single neuromuscular junction in the mealworm (Tenebrio molitor) // J. Neurobiol. -1987. V. 18. — P. 315 326.
  258. Hillman R., Basu S., Lam L., Grapp T., Matusov E., Pendleton R. The Pathway for Catecholamine Biosynthesis in Adult Brain // Program and Abstracts. 41st Annual Drosophila Research Conference. Pittsburgh, 2000. — P. 758A.
  259. Hirn M, Hetru C, Lagueux M, Hoffmann JA. Prothoracic gland activity and blood titres of ecdysone and ecdysterone during the last larval instar of Locusta migratoria L. // J. Insect Physiol. 1979. — V. 25. — P. 255−261.
  260. Hirashima A., Eto M. Chemical-induced changes in the biogenic amine levels of Periplaneta americana L. // Pestic. Biochem. and Physiol. 1993a. — V. 46. — P. 131 140.
  261. Hirashima A., Eto M. Biogenic amines in Periplaneta americana L.: Accumulation of octopamine, synephrine and tyramine by stress // Biosci. Biotech. Biochem. 1993b. -V. 57. — P. 172−173.
  262. Hirashima A., Eto M. Effect of stress on levels of octopamine, dopamine and serotonin in the american cockroach (Periplaneta americana L. J // Comp. Biochem. Physiol. -1993c. V. 105C. — P. 279−284.
  263. Hirashima A., Nagano T., Eto M. Stress-induced changes in the biogenic amine levels and larval growth of Tribolium castaneum Herbst. // Biosci. Biotech. Biochem. 1993a. — V. 57. — P. 2085−2089.
  264. Hirashima A., Nagano T., Takeya R., Eto M. Effect of larval density on whole-body biogenic amine levels of Tribolium freemani Hinton. // Comparative Biochememical Physiology. 1993b. — V. 106C. — P. 457−461.
  265. Hirashima A., Nagano T., Eto M. Effect of various insecticides on the larval growth and biogenic amine levels of Tribolium castaneum Herbst. // Comp. Biochem. Physiol. -1994. V. 107C. — P. 393−398.
  266. Hirashima A., Raushenbach I.Yu., Sukhanova M. Jh. Ecdysteroids in stress responsive and nonresponsive Drosophila virilis lines under stress conditions // Biosci. Biotech. Biochem. 2000a. — V. 64. — P. 2657−2662.
  267. Hirashima A., Sukhanova M.Jh., Rauschenbach I. Yu. Biogenic amines in Drosophila virilis under stress conditions // Biosci. Biotech. Biochem. 2000b. — V. 64. — P. 26 252 630.
  268. Hirashima A., Sukhanova M.Jh., Rauschenbach I.Yu. Genetic control of biogenic amines system in Drosophila under normal and stress conditions // Biochem. Genet. -2000c. V. 38. — P. 167−180.
  269. Hiruma K., Riddiford L.M. Regulation of dopa decarboxylase gene expression in the larval epidermis of the tobacco hornworm by 20-hydroxyecdysone and juvenile hormone // Dev. Biol. 1990. — V. 138. — P. 214−224.
  270. Hiruma K., Riddiford L.M., Hopkins T.L., Morgan T.D. Roles of dopa decarboxylase and phenoloxidase in the melanization of the tobacco hornworm and their control by 20-hydroxyecdysone // Comp. Physiol. B. 1985. — V. 155. — P. 659−669.
  271. Hodgetts R.B., Konopka R.J. Tyrosine and catecholamine metabolism in wild-type Drosophila melanogaster and a mutant, ebony // J. Insect Physiol. 1973. — V. 19. — P. 1211−1220.
  272. Hodgets R.B., Sage B., O’Connor J.D. Ecdysteroid titers during postembryonic development of Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1977. — V. 60. — P. 310−317.
  273. Hodin J., Riddiford L.M. The ecdysone receptor and ultraspiracle regulate the timing and progression of ovarian metamorphosis during Drosophila metamorphosis // Dev. Genes Evol. 1998. — V. 208. — P. 304−317.
  274. Hoffmann A.A., Harshman L.G. Dessication and starvation resistance in Drosophila-. patterns of variation at the species, population and intrapopulation levels // Heredity. -1999. V. 83. — P. 637−643.
  275. Hoffman A.A., Merila J. Heritable variation and evolution under favourable and unfavourable conditions // Trends Ecol. Evol. 1999. — V. 14. — P. 96−101.
  276. Hoffmann A.A., Parsons P.A. An integrated approach to environmental stress tolerance and life-history variation: desiccation tolerance in Drosophila // Biol. J. Linn. Soc. -1989a.-V. 37.-P. 117−136.
  277. Hoffmann A.A., Parsons P.A. Selection for increased desiccation resistance in Drosophila melanogaster: additive genetic control and correlated responses for other stresses // Genetics. 1989b. — V. 122. — P. 837−845.
  278. Hoffmann A.A., Parsons P.A. Evolutionary Genetics and Environmental Stress. -Oxford: Oxford University Press, 1991. 296 p.
  279. Hoffmann A.A., Parsons P.A. Extreme environmental change and evolution. -Cambridge: Cambr. Univ. Press, 1997. 259 p.
  280. Hoffmann A. A., Sorensen J.G., Loeschcke V. Adaptation of Drosophila to temperature extremes: brining together quantitative and molecular approaches // J. Therm. Biol. -2003. V. 28. — P. 175−216.
  281. Hoffmann J.A., Koolman J., Beyler Ch. Role des glandes prothorciques dans la production d’ecdysone au cours du dernier stade larvaire de Locusta migratoria // C.R. Acad. Sci. Paris (d) -1975. V. 280. — P. 733−736.
  282. Hoffmann K.H., Sorge D. Vitellogenin levels in allatectomised female crickets, Gryllus himaculatus de Geer (Ensifera, Gryllidae) // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1996. — V. 32. — P. 549−558.
  283. Hoffmann K.H., Weidner K., Seidel M. Sites of ecdysteroid biosynthesis in female adults of Gryllus himaculatus (Ensifera, Gryllidae) // J. Comp. Physiol. B. 1992. — V. 162. — P. 731−739.
  284. Homyk TJr., Mclvor W. A mutation that causes muscle defects also affects catecholamine metabolism in Drosophila // J. Neurogenet. 1989. — V. 6. — P. 57−73.
  285. Homyk T.Jr., Sheppard D.E. Behavioral mutants of Drosophila melanogaster // Genetics. 1977. — V. 87. — P. 95−104.
  286. Hopkins T.L., Wirtz R.A. Dopa and tyrosine decarboxylase activity in tissues of Periplaneta americana in relation to cuticle formation and ecdysis // J. Insect Physiol. -1976.-V. 22.-P. 1167.
  287. Horn D.E.S. The ecdysones // Naturally occuring insecticides / Eds. Jacobson M., Grosley D.G. New York: Deyker Press, 1971. — P. 333−459.
  288. Horowitz N.H., Fling N. The autocatalytic production of tyrosinase in extracts of Drosophila melanogaster // Amino Acid Metabolism / Eds. McElroy W. D., Glass B. -Baltimore: Johns Hopkins Press, 1955. P. 207−218.
  289. Houry W.A. Chaperone-assisted protein folding in the cell cytoplasm // Curr. Protein Pept. Sci. 2001. — V. 2. — P. 227−244.
  290. Hovemann B.T., Ryseck R.-P., Walldorf U., Stoertkuhl K.F., Dietzel I.D., Dessen E. The Drosophila ebony gene is closely related to microbial peptide synthetases and shows specific cuticle and nervous system expression // Gene. -1998. V. 221. — P. 1−9.
  291. Hoyle G. Neuromuscular transmission in a primitive insect: Modulation by octopamine and catch-like tension // Comp. Biochem. Physiol. 1984. — V. 77C. — P. 219−232.
  292. Hoyle G., Coquhoun W., Williams W. Fine structure of an octopaminergic neuron and its terminals //J. Neurobiol. 1980. — V. 11. — P. 103−126.
  293. Hsiao T, Hsiao C, De Wilde J. Moulting hormone production in the isolated larval abdomen of Colorado beetle // Nature. 1975. — V. 255. — P. 727−728.
  294. Huet F., Ruiz G, Richards G. Puffs and PCR: The in vivo dynamicsof early gene expression during ecdysone responses in Drosophila // Development. 1993. — V. 118. -P. 613−627.
  295. Huet F., Ruiz C., Richards G. Puffs and PCR: Sequential gene activation by ecdysone in Drosophila melanogaster: the hierarchical equivalence of early and early late genes // Development. -1995. V. 121. — P. 1195−1204.
  296. Hung M.C., Wensink P.C. Sequence and structure conservation in yolk proteins and their genes // J. Mol. Biol. -1983. V. 164. — P. 481−492.
  297. Huybrechts R., De Loof A. Effect of ecdysterone on vitellogenin concentration in haemolymph of male and female Sarcophaga bullata // Int. J. Invert. Reprod. -1981. -V. 3. P. 157−168.
  298. Huybrechts R., De Loof A. Similarities in vitellogenin and control of vitellogenin synthesis within the genera Sarcophaga, Phorma, and Lucilia (Diptera) // Comp. Biochem. Physiol. B. -1982. V. 72. — P. 339−344.
  299. Ilenchuk T.T., Davey K.G. The development of responsiveness to juvenile hormone in the follicle cells of Rhodnius prolixus // Insect Biochem. 1987. — V. 17. — P. 525−529.
  300. Imasheva A.G., Loeschcke V., Zhivotovsky L.A., Lazebny O.E. Effects of extreme temperatures on phenotypic variation and developmental stability in Drosophila melanogaster and Drosophila buzzatii // Biol. J. Linn. Soc. 1997. — V. 61. — P. 117−126.
  301. Imasheva A.G., Bosenko D.V., Bubli O.A. Variation in morphological traits of Drosophila melanogaster (fruit fly) under nutritional stress // Heredity. 1999. — V. 82. — P. 187−192.
  302. Imasheva A.G., Loeschcke V., Zhivotovsky L.A., Lazebny O.E. Stress temperatures and quantitative variation in Drosophila melanogaster // Heredity. 1998. — V. 81. — P. 246−253.
  303. Isaac P.G., Bownes M. Ovarian and fat-body vitellogenin synthesis in Drosophila melanogaster // Eur. J. Biochem. 1982. — V. 23. P. 527−534.
  304. Isaac R.E., Muimo R., MacGregor A.N. N-acetylation of serotonin, octopamine and dopamine by adult Brugiapahangi // Mol. Biochem. Parasitol. -1990. V. 43. — P. 193 198.
  305. Ismail S.M., Satyanarayama K., Bradfield J.W., Dahm K.H., Bhaskaran G. Juvenile hormone acid: evidence for a hormonal function in induction of vitellogenin in larvae of Manduca sexta // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1998. — V. 37. — P. 305−314.
  306. Jaattela M. Heat shock proteins as cellular lifeguards // Ann. Med. 1999. — V. 31. — P. 261−271.
  307. Jallon J.-M. A few chemical words exchanged by Drosophila during courtship and mating // Behav. Genet. -1984. V. 14. — P. 441−478.
  308. Jankovic-Hladni M.I. Hormones and metabolism in insect stress (Historical survey) // Hormones and metabolism in insect stress / Eds Ivanovic J., Jankovic-Hladni M.I. -Boca Raton: CRS Press, 1991. P. 5−27.
  309. Jenkins N., Sgro C.M., Hoffmann A.A. Environmental stress and the expression of genetic variation // Stress, adaptation and evolution / Eds. Bijsma R., Loeschcke V. -Basel: Birkhauser, 1997. P. 79−96.
  310. Jesudason P., Anspaugh D.D., Roe R.M. Juvenile hormone metabolism in the plasma, integument, midgut, fat body, and brain during the last instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta (L.) // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1992. — V. 20. — P. 87−105.
  311. Johnson P., Rees H.H. The mechanism of C-20 hydroxylation of a-ecdysone in the desertr locust Schistocerca gregaria // Biochem. J. -1977. V. 168. — P. 513−520.
  312. Jones G., Sharp P. Ultraspiracle: an invertebrate nuclear receptor for juvenile hormones // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. — V. 94. — P. 13 499−13 503.
  313. Jowett T., Postlethwait J. The regulation of yolk polypeptide synthesis in Drosophila ovaries and fat body by 20-hydroxyecdysone and a juvenile hormone analog // Dev. Biol. -1980. V. 80. — P. 225−234.
  314. Jowett T., Postlethwait J. Hormonal regulation of synthesis of yolk proteins and a larvae serum protein (LSP) in Drosophila // Nature. -1981. V. 292. — P. 633−635.
  315. Judy K.J., Schooley D.A., Dunham L.L., Hall M.S., Bergot B.J., Siddall J.B. Isolation, structure and absolute configuration of a new natural insect juvenile hormone from Manduca sexta // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1973. — V. 70. — P. 1509−1513.
  316. Junacovic D., Di Franco C., Barsanti P., Palumbo G. Transpositions of copia-like elements can be induced by heat-shock // J. Mol. Evol. 1986. — V. 24. — P. 89−93.
  317. Kaatz H., Eichmuller S, Kreissl S Stimulatory effect of octopamine on juvenile hormone biosynthesis in honey bees (Apis mellifera): physiological and immunocytochemical evidence //J. Insect Physiol. -1994. V. 40. — P. 856−872.
  318. Kappler C., M. Kabbouh, C. Hetru. Characterisation of three hydroxylases involved in the final steps of biosynthesis of the steroid hormone ecdysone in Locusta migratoria (Insecta, Orthoptera) // J. Steroid Biochem. 1988. — V. 31.- № 6. — P. 891−898.
  319. Kataoka H., Toschi A., Li J.P., Carney R.L., Schooley D.A. Identification of an allatortopin from adult Manduca sexta // Science. 1989. — V. 243. — P. 1481−1483.
  320. Kawakami A., Kataoka H, Oka T, Mizoguchi A, Kimura-Kawakami M, Adachi T, Iwanri M, Nagasawa H, Suzuki A, Ishizaki H. Molecular cloning of the Bombyx mori prothoracicotropic hormone. // Science. 1990. — V. 247. — P. 1333−1335.
  321. Kempton L.R.C., Isaac R.E., Pillmoor J.B., Willis R.J. Octopamine N-acetyltransferase activity from the cattle tick, Boophilis microplus // Insect Biochem. Mol. Biol. -1992. -V. 22. P. 777−783.
  322. Kelley T.J. Endocrinology of vitellogenesis in Drosophila melanogaster I I Perspectives in Comparative Endocrinology / Eds Davey K.G., Tobe S.S., Peters R.P.- Ottawa: National Research Council of Canada, 1994. P. 282−290.
  323. King R.C. Ovarian development in Drosophila melanogaster. — New York: Academic Press, 1970. 270 p.
  324. King D.S., Bollenbacher W.E., Borst D.W., Vedeckis W.V., O’Connor J.D., Ittycheriah P.I., Gilbert L.I. The secretion of a-ecdysone by the prothoracic glands of Manduca sexta in vitro // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1974. — V. 71. — P. 793−796.
  325. Klages G., Emmerich H. Juvenile hormone metabolism nd juvenile hormone esterase titer in haemolymph and peripheral tissues of Drosophila hydei // J. Comp. Physiol. B. -1979. V. 132. — P. 319−325.
  326. Klages G., Emmerich H., Rembold H. Identification and titer of juvenile hormones in the fruitfly, Drosophila hydei // Regulation of Insect Development and Behavior / Eds.
  327. Segnal F., Zabza A., Menn J.J., Cymborovski B. Wroclaw, Poland: Wroc. Tech. Univ. Press, 1981.-P. 207−217.
  328. Klemm N. Monoamine-containing fibers in the foregut and salivary gland of the desert locust, Schistocerca gregaria Forskal. I I Comp. Biochem. Physiol. B. 1972. — V. 43A. -P. 207−211.
  329. Koelle M.R., Talbot W.S., Segraves W.A., Bender M.T., Cherbas P., Hogness D.S. The Drosophila EcR gene encodes an ecdysone receptor, a new member of the steroid receptor superfamily // Cell. 1991. — V. 67. — P.59−77.
  330. Koeppe J.K., Wellman S.E. Ovarian maturation in Leucophaea maderae-. juvenile hormone regulation of thymidine uptake into follicle cell DNAI I J. Insect Physiol. -1980. V. 26. — P. 219−228.
  331. Koning P.N.M., Vullings H.G.B., van Gemert W.M.J.B., De Leeuw R., Diederen J.H.B., Jansen W.F. Octopamine binding sites in the brain of Locusta migratoria. // J. Insect Physiol. — 1989. — V. 35. — P. 519−524.
  332. Konopova B., Jindra M. Juvenile hormone resistance gene Methoprene-tolerant controls entry into metamorphosis in the beetle Tribolium castaneum // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. — V. 104. — P. 10 488−10 493.
  333. Koolman J., Karlson P. Ecdysone oxidase, an enzyme from the blowfly Calliphora erythrocephala (Meigen) // Hoppe-Seyler's Z. Physiol. Chem. -1975. V. 356. — P. 1131−1138.
  334. Koolman J., Karlson P. Regulation of ecdysteroid titer: Degradation // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G.A., Gilbert L.I. -New York: Pergamon Press, 1985. V. 7. — P. 343−361.
  335. Kopec S. Studies on the necessity of the brain for the inception of insect metamorphosis // Biol. Bull. 1922. — V. 42. — P. 323−342.
  336. Kotaki T, Fujii H. Crowding inhibits pupation in Tribolium freemani: contact chemichal and mechanical stimuli are involved // Entomology and Experimental Applications. -1995. V. 74. — P. 145−149.
  337. Kozanek M., Jurani M., Somgyiova E. Influence of social stress of monoamine concentration in the central nervous system of the cockroach Nauphoeta cineria. // Acta Ent. Bohemos. 1986. — V. 83. — P. 171−179.
  338. Kozanek M., Jurani M., Somgyiova E. Effect of long-term stress on monoamine concentration in CNS of cockroach Nauphoeta cineria // Endocrinological frontiers in physiological insect ecology. Wroclaw: Wroclaw Univ. Press, 1988. — V. 1. — P. 161 167.
  339. Kozlova T., Thummel C.S. Steroid regulation of postembryonic development and reproduction in Drosophila // Trends Endocrinol Metab. 2000. — V. 11. — P. 276−280.
  340. Kozma R., Bownes, M. Identification and comparisons of the yolk polypeptides and the genes which code for them in D. melanogaster sibling species // Mol. Gen. Genet. -1986. V. 204. — P. 302−309.
  341. Kramer S.J., De Kort C.A. Juvenile hormone carrier lipoprotein (s) in the haemolymph of the Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata // Insect Biochem. 1978. — V. 8. — P. 87−92.
  342. Kramer K.J., Sanburg L.I., Kezdy F.J., Law J.H. The juvenile hormonebinding protein in the haemolymph of Manduca sexta // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1974. — V. 71. — P. 493−497.
  343. Kramer S., Staal G. In vitro studies on the mechanism of action of anti-juvenile hormone agents in larvae of Manduca sexta // Juvenile hormone biochemistry / Eds. Pratt G.E., Brooks G.T. Amsterdam: Elsevier, 1981. — P. 425−437.
  344. Kramer S.J., Toschi A., Miller C.A., Kataoka H., Quistad G.B., Li J.P., Carney R.L., Schooley D.A. Identification of an allatostatin from the tobacco hornworm Manduca sexta // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1991. V. 88. — P. 9458−9462.
  345. Krebs R.A., Feder M.E. Hsp70 and larval thermotolerance in Drosophila melanogaster. how much is enough and when is more too much? // J. Insect Physiol. 1998. — V. 44. -P. 1091−1101.
  346. Kregel K.C. Heat shock proteins: modifying factors in physiological stress responses and acquired thermotolerance // J. Appl. Physiol. 2002. — V. 92. — P. 2177−2186.
  347. Krueger R.R., Kramer K.J., Hopkins T.L., Speir R.D. N-P-alanyldopamine levels and synthesis in integument and other tissues of Manduca sexta (L) during the larvae-pupal transformation // Insect Biochem. 1989. — V. 19. — P. 169−175.
  348. Krueger R.R., Kramer K.J., Hopkins T.L., Speir R.D. N-alanyldopamine and N-acetyldopamine occurrence and synthesis in the central nervous system of Manduca sexta (L.) I I Insect Boichem. 1990. — V. 20. — P. 605−610.
  349. Kozlova T., Thummel C.S. Steroid regulation of postembryonic development and reproduction in Drosophila // Trends Endocrinol Metab. 2000. — V. 11. — P. 276−280.
  350. Kraminsky G.P., Clark W.C., Estelle M.A., Gietz R.D., Sage B.A., O’Connor J.D., Hodgets R.B. Induction of translatable mRNA for dopa decarboxilase in Drosophila: an early response to ecdysterone // Proc. Nat. Acad. Sci. 1980. — V. 77. — P. 4175−4179.
  351. Lafon-Cazal M., Baehr J.C. Octopaminergic control of corpora allata activity in an insect // Experentia. 1988. — V. 44. — P. 895−896.
  352. Lafont R. Understanding insect endocrine systems: molecular approaches // Entomologia Experimentalis et Applicata. 2000. — V. 97. — P. 123−136.
  353. Lagueux M., Hirn M., Hoffmann J.A. Ecdysone during development in Locusta migratoria // J Insect. Physiol. 1977. — V. 23. — P. 109−120.
  354. Laran E., Requena, J.M., Jimenez-Ruiz A., Lopez M.S., Alonso C. The heat shock protein hsp70 binds in vivo to subregions 2−48BC and 3−58D of the polythene chromosomes of Drosophila hidei // Chromosoma. 1990. — V. 99. — P. 315−320.
  355. Lassiter M.T., Apperson C.S., Crawford C.L., Roe R.M. Juvenile hormone metabolism during adult development of Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae) // J. Med. Entomol. 1994. — V. 31. — P. 586−593.
  356. Lassiter M.T., Apperson C.S., Roe R.M. Juvenile hormone metabolism during the fourth stadium and pupal stage of the southern house mosquito, Culex quinquefasciatus II J. Insect Physiol. 1995. — V. 41. — P. 869−876.
  357. Laverdure A.-M., Lagueux M., Hoffmann J.A. Ecdysone et developpment ovarien chez la femelle adulte de Tenebrio molitor I I Bull. Soc. Zool. France. 1977. — V. 102. P. 311−312.
  358. Lehman H.K., Klukas K.A., Gilchrist L.S., Mesce KA. Steroid regulation of octopamine expression during metamorphic development of the moth Manduca sexta // J. Comp. Neurol. 2000. — V. 424. — P. 283−296.
  359. Lessman C.A., Rollins L., Herman W.S. Effect of juvenile hormones I, II, and III on reproductive tract growth in male and female Monarch butterflies // Comp. Biochem. Physiol. 1982. — V. 71A. — P. 141−144.
  360. Li D., Duncan R.F. Transient acquired thermotolerance in Drosophila, correlated with rapid degradation of Hsp70 during recovery // Eur. J. Biochem. 1995. — V. 231. — P. 454−465.
  361. Li G. Induction of thermotolerance and enhanced heat-shock pritein synthesis in Chinese hamster fibroblasts by sodium arsenite and by ethanol // J. Cell. Physiol. -1983.-V. 115.-P. 116.
  362. Li H., Chaney S., Roberts I.J., Forte M., Hirsh J. Ectopic G-protein expression in dopamine and serotonin neurons blocks cocaine sensitization in Drosophila melanogaster // Curr. Biol. 2000. — V. 10. — P. 211−214.
  363. Li P., Shah S., Huang L., Carr A.L., Gao Y., Thisse C., Thisse B., Li L. Cloning and spatial and temporal expression of the zebrafish dopamine Di receptor // Dev. Dyn. -2007. V. 236. — P. 1339−1346.
  364. Lindquist S., Craig E.A. The heat-shock proteins // Annu. Rev. Genet. 1988. — V. 22. -P.631−677.
  365. Lindquist S. Autoregulation of the heat-shock response // Translational Regulation of Gene Expression 2 / Ed. Ilan. J. New York: Plenum Press, 1993. — P. 279—320.
  366. Linn C.E., Roelofs W.L. Modulatory effecs of cotopamine and serotonin on male sensitivity and periodicity of response to sex pheromone in the cabbage looper moth, Trichoplusia ni // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1986. — V. 3. — P.161−171.
  367. Liu Y., Belote J.M. Protein-protein interactions among components of the Drosophila primary sex determination signal // Mol. Gen. Genet. 1995. — V. 248. P. 182−189.
  368. Livingstone M.S. Two mutations in Drosophila diferentially affect the synthesis of octopamine, dopamine and serotonin by altering the activities of two different amino acid decarboxylases // Soc. Neurosci. Abs. 1981. — V. 7. — P. 351.
  369. Livingstone M. S., Tempel B. L. Genetic dissection of monoamine neurotransmitter synthethis in Drosophila. // Nature. -1983. V. 303. — P. 47.
  370. Lorenz M.W., Hoffmann K.H., Gade G. Juvenile hormone biosynthesis in larval and adult stick insects, Carausius morosus I I J. Insect Physiol. 1999. — V. 45. — P. 443−452.
  371. Lundell M. J., Hirsh J. Temporal and spatial development of serotonin and dopamine neurons in the Drosophila CNS // Develop. Biol. -1994. V. 165. — P. 385−396.
  372. Lutz E.M., Tyrer N.M. Immunohistochemical localization of serotonin and choline acetyltransferase in sensory neurones of the locust //J. Comp. Neurol. 1988. — V. 267. — P. 335−342.
  373. Ma M., Zhang J.-Z., Gong H., Gwadz R. Permissive action of juvenile hormone on vitellogenin production by the mosquito, Aedes aegypti // J. Insect Physiol. 1988. — V. 34. — P. 593−596.
  374. Maickel P., Cox R.H., Saillant J., Miller F.P. A method for the determination of serotonin and noradrenaline in discrete areas of rat brain // Int. J. Neuropharmacol. -1968. V. 7. — P. 275−278.
  375. Mala Y., Sehnal F., Kumaran A.K., Granger N. Effect of starvation, chilling and injury on endocrine gland function in Galleria mellonella // Arch. Insect Biochem. Physiol. -1987. -V. 4. P. 113−128.
  376. Malamud J.G., Mizisin A.P., Josephson R.K. The effects of octopamine on contraction kinetics and power output of a locust flight muscle // J. Comp. Physiol. A. 1988. — V. 162. — P. 827−835.
  377. Maniatis T., Fritch E. E., Sambrock J. Molecular cloning. A laboratory manual. Cold Spring Harbor, New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1982. — 477 p.
  378. Marin R., Demers M., Tanguay R.M. Cell-specific heat-shock induction of Hsp23 in the eye of Drosophila melanogaster // Cell Stress Chaperones. 1996. — V. 1. — P. 40−46.
  379. Marin R., Tanguay R.M. Stage-specific localization of the small heat shock protein Hsp27 during oogenesis in Drosophila melanogaster // Chromosoma. 1996. — V. 105. -P. 142−149.
  380. Maroy P., Dennis R., Beckers C., Sage B.A., O’Connor J.D. Demonstration of an ecdysteroid receptor in a cultured cell line of Drosophila melanogaster // Proc. Natl. Acad. Sci USA. 1978. — V. 75. — P. 6035−6038.
  381. Maroy P., Kaufmann G., Dubendorfer A. Embryonic ecdysteroids of Drosophila melanogaster // J. Insect Physiol. 1988. — V. 34. — P. 633−637.
  382. Martin D., Piulachs M.D., Belles X. Patterns of hemolymph vitellogenin and ovarian vitellin in the German cockroach, and the role of juvenile hormone // Physiol. Entomol. -1995. V. 20. — P. 59−65.
  383. Martinez T., Hagedorn H.H. Development of responsiveness to hormones after a blood meal in the mosquito Aedes aegypti // Insect Biochem. -1987. V. 17. — P. 1095−1098.
  384. Masler E.P., Fuchs M.S., Sage B., O’Connor J.D. Endocrine regulation of ovarian development in the autogenous mosguito, Aedes atropalpus // Gen. Comp. Endocrinol. -1980. V. 41. — P. 250−259.
  385. Maxwell R.A., Welch W.H., Schooley D.A. Juvenile hormone diol kinase. I. Purification, characterization, and substrate specificity of juvenile hormone-selective diol kinase from Manduca sexta // J. Biol. Chem. 2002b. — V. 277. — P. 21 874−21 881.
  386. McCaffery A.R., McCaffery V.A. Corpus allatum activity during overlapping cycles off oocyte growth in adult female Melanoplus sanguinipes // J. Insect Physiol. 1983. — V. 29. — P. 259−266.
  387. McCaman M.W., McCaman R.E., Lees G.J. Liquid cation exchange a basis for sensitive radiometric assays for aromatic amino acid decarboxylase // Analyt. Biochem. -1972. — V. 45. — P. 242−252.
  388. McClung C., Hirsh J. The trace amine tyramine is essential for sensitization to cocaine in Drosophila // Curr. Biol. 1999. — V. 9. — P. 853−860.
  389. McDonald J.F. Transposable elements: possible catalists of organismic evolution // Trends Ecol. Evol. -1995. V. 10. — P. 123−126.
  390. McMahon A., Geertman R., Sabban E. L. Rat dopamine-hydroxylase: molecular cloning and characterization of the cDNA and regulation of the mRNA by reserpine // J. Neurosci. Res. -1990. V. 25. — P. 395−404.
  391. Mercer A.R., Menzel R. The effects of biogenic amines on conditioned and unconditioned responses to olfactory stimuli in the honeybee, Apis mellifera // J. Comp. Physiol. 1982. — V. 145. — P. 363−368.
  392. Mesce K.A. Metamodulation of the biogenic amines: second-order modulation by steroid hormones and amine cocktail // Brain. Behav. Evol. 2002. — V. 60. — P. 339 349.
  393. Meyer A.S., Schneiderman H.A., Hanzmann E., Ko J.H. The two juvenile hormones from cecropia silk moth // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1968. — V. 60. — P. 853−860.
  394. Michaud S., Marin R., Westwood J.T., Tanguay R.M. Cell-specific expression and heat-shock induction of Hsps during spermatogenesis in Drosophila melanogaster // J. Cell Sci. -1997. V. 110. — P. 1989−1997.
  395. Milde J.J., Ziegler R., Wallstein M. Adipokinetic hormone stimulates neurones in the insect central nervous system // J. Exp. Biol. 1995. — V. 198. — P. 1307−1311.
  396. Minhas W., Gole J. W. D., Orr G. L., Downer R. G. H. Pharmacology of 3H. mianserin binding in the nerve cord of the American cockroach Periplaneta americana // Afch. Insect Biochem. Physiol. 1987. — V. 6. — P. 191−201.
  397. Missale C., Nash S. R., Robinson S. W., Jaber M., Caron M. G. Dopamine receptors: from structure to function //Physiol. Rev. -1998. V. 78. — P. 189−225.
  398. Mitchell M.J., Smith S.L. Ecdysone 20-monooxygenase activity throughout the life cycle of Drosophila melanogaster II Gen. Comp. Endocrinol. 1988. — V. 72. — P. 467 470.
  399. Mitsui T., Riddiford L.M., Bellamy G. Metabolism of juvenile hormone by the epidermis of the tobacco hornworm Manduca sexta I I Insect Biochem. 1979. — V. 9. -P. 637−643.
  400. Miura K., Oda M., Makita S., Chinzei Y. Characterization of the Drosophila Methoprene -tolerant gene product. Juvenile hormone binding and ligand-dependent gene regulation // FEBS Lett. 2005. — V. 272. — P. 1169−1178.
  401. Miura T., Koshikawa S., Matsumoto T. Winged presoldiers induced by a juvenile hormone analog in Zootermopsis nevadenis: implications for plasticity and evolution of caste differentiation in termites // J. Morph. 2003. — V. 257. — P. 22−32.
  402. Monastrioti M. Biogenic amine systems in the fruit fly Drosophila melanogaster I I Microscopy Research and Technique. 1999. — V. 45. — P. 106.-121.
  403. Monastirioti M. Distinct octopamine cell population residing in the CNS abdominal ganglion controls ovulation in Drosophila melanogaster. // Dev. Biol. 2003. — V. 264.- P. 38−49.
  404. Monastirioti M., Gorczyca M., Eckert M., Rapus J., White K., Budnik V. Octopamine immunoreactivity in the fruit fly Drosophila melanogaster // J. Comp. Neurol. 1995. -V. 356. — P. 275−287.
  405. Monastirioti M., Linn C.E., White K. Characterization of Drosophila Tyramine P-hydroxylase gene and isolation of mutant flies lacking octopamine // J. Neurosci. -1996. V. 16. — P. 3900−3911.
  406. Moobola S.M., Cupp E.W. Ovarian development in the stable fly, Stomoxys calcitrans, in the relation to diet and juvenile hormone control // Physiol. Entomol. 1978. — V. 3. -P. 317−321.
  407. Morgan T.D., Thomas B.R., Yonekura M. Czapla T.H., Kramer K. J, Hopkins T.L. Soluble tyrosinases from farate pupal integument of the tobacco hornworm, Manduca sexta (L.) // Insect Biochem. 1990. — V. 20. — P. 251 — 260.
  408. Morin J.P., Moreteau B., Petavy G., Imasheva A.G., David J.R. Body size and. developmental temperature in Drosophila simulans: comparison of reaction norms with sympatric Drosophila melanogaster // Genet. Sel. Evol. 1996. — V. 28. — P. 415−436.
  409. Morimoto R.I. Regulation of the heat shock transcriptional response: cross talk between a family of heat shock factors, molecular chaperones, and negative regulators // Genes Dev. -1998. V. 12. — P. 3788−3796.
  410. Moshitzky P., Applebaum S.W. Pathway and regulation of JHIII-Bisepoxide biosythesis in adult Drosophila melanogaster corpus allatum // Arch. Insect Biochem. Physiol. -1995. V. 30. — P. 225−237.
  411. Mumby S.M., Hammock B.D. Stability of epoxide containing juvenoids to dilute aqueous acid //J. Agric. Food Chem. 1979. — V. 27. — P. 1223−1228.
  412. Nadeau K., Das A., Walsh C.T. Hsp90 chaperonins possess ATPase activity and bind heat shock transcription factors and peptidyl prolyl isomerases // J. Biol. Chem. 1993.- V. 268. P. 1479−1487.
  413. Nagasawa H., Isogai A., Suzuki A. Purification and properties of the prothoracotropic hormone of the silkworm Bombyx mori // Dev. Grown Differ. 1979. — V. 21. — P. 2938.
  414. Nakakita H. Hormonal control of inhibition of pupation caused by crowding larvae of Tribolium freemani Hinton (Coleoptera: Tenebrionidae) // Appl. Entomol. Zool. 1990.- V. 25. P. 347−353.
  415. Nappi A.J., Vass E. Melanogenesis and the Generation of Cytotoxic molecules during insect cellular immune reaction // Pigment Cell Res. 1993. — V. 6. — P. 117−126.
  416. Nassel D.R. Serotonin and serotonin-immunoreactive neurons in the nervous system of insects // Prog. Neurobiol. 1988. — V. 30. — P. 1−85.
  417. Nassel D.R., Elekes K. Aminergic neurons in the brain of blowflies and Drosophila: dopamine- and tyrosine hydroxylase-immunoreactive neurons and their relationship with putative histaminergic neurons // Cell Tissue Res. 1992. — V. 267. — P. 147−167.
  418. Neckameyer W.S. Dopamine modulates female sexual receptivity in Drosophila melanogaster II J. Neurogenetics. 1998. — V. 12. — № 2. — P. 101−114.
  419. Neckameyer W.S. Multiple roles for dopamine in Drosophila development // Dev. Biol. 1996. — V. 176. — P. 209−219.
  420. Neckameyer W.S. Dopamine and mushroom bodies in Drosophila: experience-dependent and -independent aspects of sexual behavior // Learn Mem. 1998b. — V. 5. -P. 157−165.
  421. Neckameyer W.S., Weinstein J.S. Stress afeects dopaminergic signalling pathways in Drosophila melanogaster // Stress. 2005. — V. 8. — P. 117−131.
  422. Neckameyer W.S., White K. Drosophila tyrosine hydroxylase is encoded by the pale locus // J. Neurogenet. 1993. — V. 8. — P. 189−199.
  423. Newmyer S.L., Christensen A., Sever S. Auxilin-Dynamin interactions link the uncoating ATPase chaperone machinery with vesicle formation // Cell. 2003. — V. 4. -P. 929−940.
  424. Nigg H.N., Svoboda J.A., Thompson M.J., Dutky S.R., Kaplanis J.N., Robbins W.E. Ecdysone 20-hydroxylase from the midgut of the tobacco hornworm (Manduca sexta L.) // Experientia. 1976. — V. 32. — P. 438−439.
  425. Nijhout H.F. Insect hormones. Princeton, New Jersey: Princeton University Press, 1994. -260p.
  426. Nijhout M.M., Riddiford L.M. The control of egg maturation by juvenile hormone in the tobacco hornworm moth, Manduca sexta // Biol. Bull. -1974. V. 146. — P. 377 392.
  427. Nijhout M.M., Riddiford L.M. Juvenile hormone and ovarian growth in Manduca sexta // Int. J. Invert. Reprod. Develop. -1979. V. 1. — P. 209−219.
  428. Nowock J., Hammock B.D., Gilbert L.I. The binding protein as a modulator of juvenile hormone stability and uptake // The Juvenile Hormone / Ed. Gilbert L.I. N.Y.: Plenum Press, 1976. — P. 354−373.
  429. O’Connor D., Lis J. Two closely linked transcription units within the 63B heat shock puff locus of D. melanogaster display strikingly different regulation // Nucleic Acids Res. -1981. V. 9. — P. 5075—5092.
  430. O’Dell K.M.C. The effect of the inactive mutation on longevity, sex, rhythm and resistance to p-Cresol in Drosophila melanogaster // Heredity. 1993. — V. 70. — P. 393 399.
  431. O’Dell K.M.C., Burnet B. The effects of locomotor activity and reactivity of the hypoactive and inactive mutations of Drosophila melanogaster I I Heredity. 1988. — V. 61. — P. 199−207.
  432. O’Dell K., Coulon J.-F., David J.-C., Papin C., Fuzeau-Braesch S., Jallon J.-M. La mutation inactive produit une diminution marquee d’octopamine dans le cerveau de Drosophile // CR Acad Sci Paris. 1987. — V. 305. — P. 199−202.
  433. O’Dowd B.F. Structures of dopamine receptors // J. Neurochem. 1993. — V. 60. — P. 804−816.
  434. Oeh U., Hoffmann K.H., Lorenz M.W. Ecdysteroid release by the prothoracic gland of Gryllus bimaculatus (Ensifera: Gryllidae) during larval-adult development 11 J. Insect Physiol. -1998. V. 44. — P. 941−946.
  435. Ohnishi E. Tyrosinase activity during puparium formation in Drosophila melanogaster // Jpn. J. Zool. 1953. — V. 11. — P. 69−74.
  436. Orchard I. Tyrosine hydroxilase-like immunoreactivity in previously described catecholamine containing neurones in the ventral nerve cord of Rhodniusprolixan // J. Insect Physiol. -1990. V. 36. — P. 593−600.
  437. Orchard I. Octopamine in insects: Neurotransmitter, neurohormone, and neuromodulator// Can. J. Zool. 1982. — V. 60. — P. 659.
  438. Orchard I., Carlisle J. C., Loughton B. G., Gole J. W. D., Downer R. G. H. In vitro studies on the effects of octopamine on locust fat body // Gen. comp. Endocr. 1982. -V. 48. — P. 7−13.
  439. Orchard I., Lange A.B. Cockroach oviducts: the presence and release of octopamine and proclonin // J. Insect Physiol. 1987. — V. 33. — P. 265−268.
  440. Orchard I., Lange A.B. Dual role for octopamine in the control of haemolymph during flight in Locusta // Insect Locomotion / Eds: Gewecke M., Wendler G. Berlin: Parey, 1985.-P. 131−138.
  441. Orchard I., Lange A.B. Pharmacological profiles of octopamine receptors on the lateral oviducts of the locust Locusta migratoria // J. Insect Physiol. 1986. — V. 32. — P .741 745.
  442. Orchard I., Loughton B.G. Is octopamine a transmitter mediating hormone release in insects? // J. Neurobiol. 1981. — V. 12. — P. 143−153.
  443. Orchard I., Loughton B.G., Webb R.A. Octopamine and short term hyperlipaemia in the locust // Gen. Comp. Endocrinol. 1981. — V. 45. — P. 175−190.
  444. Orchard I., Loughton B.G. Is octopamine a transmitter mediating hormone release in insects? // J. Neurobiol. -1981. V. 12. — P. 143−153.
  445. Orchard I., Carlisle J. C., Loughton B. G., Gole J. W. D., Downer R. G. H. In vitro studies on the effects of octopamine on locust fat body // Gen. comp. Endocr. -1982. -V. 48. P. 7−13.
  446. Orchard I., Loughton B. G., Webb R. A. Octopamine and short-term hyperlipaemia in the locust // Gen. Comp. Endocrinol. -1981. V. 45. — P. 175−180.
  447. Oro A.E., McKeown M., Evans R.M. Relationship between the product of the Drosophila ultraspiracle locus and the vertebrate retinoid X receptor // Nature. -1990. -V. 347. P. 298−301.
  448. Orr G. L., Hollingworth R. M. Agonist-induced desensitization of an octopamine receptor // Insect Biochem. 1990. — V. 20. — P. 239−244.
  449. Orr N., Orr G. L., Hollingworth R. M. The sf9 cell line as a model for studying insect octopamine receptors // Insect Biochem. Molec. Biol. 1992. — V. 22. — P. 591−597.
  450. Osborn R.H. Insect neurotransmission: Neurotransmitters and their receptors // Pharmacol. Ther. 1996. — V. 69. — P.117−142.
  451. Pal C. Plasticity, memory and the adaptive landscape of the genotype // Proc. Royal Soc. London Series B. 1998. — V. 265. — P. 1319−1323.
  452. Pak M.D., Gilbert L.I. A developmental analysis of ecdysteroids during the metamorphosis of Drosophila melanogaster // J Liq Chrom. -1987. V. 10. — P. 25 912 611.
  453. Panchapakesan K., Lampert E.P., Granger N.A., Goodman W.G., Roe R.M. Biology and physiology of the white mutant of the tobacco hornworm, Manduca sexta (L.) // J. Insect Physiol. -1994. V. 40. — P. 423−429.
  454. Pannabecker T., Orchard I. Octopamine and cyclic AMP mediate release of adipokinetic hormone I and II from isolated locust neuroendocrine tissue // Mol. Cell. Endocrinol. -1986.-V. 48.-P. 153−159.
  455. Park C., Hwang J.S., Kang S.W., Lee B.H. Molecular characterization of a cDNA from the silk moth Bombix mori encoding Manduca sexta allatotropin peptide // Zool.Sci. -2002. V. 19. — P. 287−292.
  456. Parsell D., Lindquist S. The function of heat-shock proteins in stress tolerance: degradation and reactivation of damaged proteins //Annu. Rev. Genet. -1993. V. 27. -P. 437—496.
  457. Parsell D.A., Lindquist S. Heat Shock proteins and stress-tolerance // The Biology of Heat Shock Proteins and Molecular Chaperones. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1994. — P. 457—494.
  458. Parsons P.A. Evolutionary rates: effects of stress upon recombination // Biol. J. Linn. Soc. 1988. — V. 35. — P. 49−68.
  459. Parsons P.A. Stress-resistant genotypes, metabolic efficiency and interpreting evolutionary change // Stress, adaptation and evolution / Eds. Bijsma R., Loeschcke V. -Basel: Birkhauser, 1997. P. 291−306.
  460. Passier P. Vullings H.G., Diederen J.H., Van der Horst D.J. Modulatory effects of biogenic amines on adipokinetic hormone secretion from locust corpora cardiaca in vitro II Gen. Comp. Endocrinol. 1995. — V. 97. — P. 231−238.
  461. Pastor D., Piulachs M.D., Cassier P., Andre M., Belles X. In vivo and in vitro study of the action of dopamine on oocyte growth and juvenile hormone production in B1 attella germanica // C. R Acad. Sci. III. 1991. — V. 313. — P. 207−212.
  462. Pauli D., Tonka C.H., Tissieres A., Arrigo A.P. Tissue-specific expression of the heat shock protein HSP27 during Drosophila melanogaster development // J. Cell Biol. -1990. V. 111. — P. 817−828.
  463. Pener M.P. Hormonal effect on flight and migration // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 8. — P. 491−550.
  464. Perez M., Castillo-Marin N., Quesada-Allue L.A. P-Alanyl-dopamine synthase in Drosophila melanogaster and Ceratitus capitata melanic mutants // Dros. Inf. Serv. -1997. V. 80. — P. 39−41.
  465. Petersen R., Lindquist S. The Drosophila hsp70 message is rapidly degraded at normal temperatures and stabilised by heat shock// Gene. 1988. — V. 72. — P. 161—168.
  466. Pirvola U., Tuomisto L., Yamatodani A., Panula P. Distribution of histamine in the cockroach brain and visual system: an immunohistochemical and biochemical study // J. Comp. Neurol. -1988. V. 276. — P. 514−526.
  467. Postlethwait J., Bownes M., Jowett T. Sexual phenotype and vitellogenin synthesis in Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1980. — V. 79. — P. 379−387.
  468. Postlethwait J.H., Jones G.J. Endocrine controle of larval fat body histolisis in normal and mutant D. melanogaster I I J. Exp. Zool. 1978. — V. 203. — P. 207−214.
  469. Postlethwait J.H., Handler A.M. The roles of juvenile hormone and 20-hydroxyecdysone during vitellogenesis in isolated abdomens of Drosophila melanogaster //J. Insect Physiol. 1979. — V. 25. — P. 455−460.
  470. Postlethwait J., Handler A., Gray P. A genetic approach to the study of juvenile hormone control of vitellogenesis in Drosophila melanogaster // The juvenile hormones / Ed. Gilbert L. New York: Plenum Press, 1976. — P. 449−469.
  471. Postlethwait J.H., Parker J. Regulation of vitellogenesis in Drosophila // Molecular biology of invertebrate development / Eds O’Connor J. D., Alan R. New York: Liss Inc., 1987. — P. 29−42.
  472. Postlethwait J.H., Shirk P.D. Genetic and endocrine regulation of vitellogenesis in Drosophila // Amer. Zool. 1981. — V. 21. — P. 687−700.
  473. Pratt W.B. The role of heat shock proteins in regulating the function, folding, and trafficking of the glucocorticoid receptor // J. Biol. Chem. 1993. — V. 268. — P. 2 145 521 458.
  474. Pratt W.B., Toft D.O. Regulation of signaling protein function and trafficking by the hsp90/hsp70-based chaperone machinery // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2003. — V. 228. — P. lll-133.
  475. Prier K.R., Beckman O.H., Tublitz N.J. Modulating a modulator: Biogenic amines at subthreshold levels potentiate peptide-mediated cardioexcitation of the heart of the tobacco hawkmoth Manduca Sexta // J. Exp. Biol. 1994. — V. 197. — P. 377−391.
  476. Pszczolkowski M.A., Chiang A.-S. Effects of chilling stress on allatal growth and juvenile hormone synthesis in the cocroach, Diplopterapunctata // J. Insect Physiol. -2000. V. 46. — P. 923−931.
  477. Pursley S., Ashok M., Wilson T.G. Intracellular localization and tissue specificity of the Methoprene-tolerant (Met) gene product in Drosophila melanogaster // Insect Biochem. Mol. Biol. 2000. — V. 30. — P. 839−845.
  478. Rabindran SK, Wisniewski J, Li L, Li GC, Wu C. Interaction between heat shock factor and hsp70 is insufficient to suppress induction of DNA-binding activity in vivo // Mol. Cell. Biol. 1994. — V. 14. — P. 6552−6560.
  479. Rachinsky A. Octopamine and serotonin influence on corpora allata activity in honey bee (Apis mellifera) larvae // J. Insect Physiol. 1994. — V. 40. — P. 549−554.
  480. Rachinsky A., Hartfelder K. Corpora allata activity, a prime regulating element for caste-specific juvenile hormone titre in honey bee larvae, Apis mellifera carnica // J. Insect Physiol. -1990. V. 36. — P. 189−194.
  481. Rachinsky A., Tobe S.S., Feldlaufer M.F. Terminal steps in JH biosynthesis in the honey bee (Apis mellifera)-. developmental changes in sensivity to JH precursors and allatotropin // Insect Biochem. Mol. Biol. 2000. — V. 30. — P. 729−737.
  482. Raikhel A.S., Brown M.R., Belles X. Hormonal Control of Reproductive Processes // Comprehensive Molecular Insect Science / Eds. Gilbert L.I., Iatrou K., Gill S. Oxford: Elsevier Pergamon, 2004. — V. 3. — P. 433−491.
  483. Raikhel A.S., Lea A.O. Control of follicular epithelium development and vitelline envelope formation in the mosquito role og juvenile-hormone and 20-hydroxyecdysone // Tissue Cell. — 1991. — V. 23. — P. 577−591.
  484. Ramaswamy S.B., Shu S., Park Y.L., Zeng F. Dynamics of juvenile hormone-mediated gonadotropism in the Lepidoptera // Arch. Insect. Biochem. Physiol. 1997. — V. 35. — P. 539−558.
  485. Ramaswamy S.B., Mbata G.N., Cohen N.E. Necessity of juvenile hormone for horiogenesis in the moth, Heliothis virescens (Noctuidae) // Invert. Reprod. Develop. -1990. V. 17. — P. 27−33.
  486. Ramirez J.-M., Buschges A., Kittmann R. Octopaminergic modulation of the femoral chordotonal organ in the stick insect // J. Comp. Physiol. 1993. — V. 173. — P. 209−219.
  487. Ramirez J.-M., Orchard I. Octopaminergic modulation of the forewing stretch receptor in the locust Locusta migratoria // J. Exp. Biol. 1990. — V. 149. — P. 317−340.
  488. Rani M., Kanungo M.S. Expression of D2 dopamine receptor in the mouse brain. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2006. — V. 344. — P. 981−986.
  489. Ratner V.A., Zabanov S.A., Kolesnikova O.V., Vasilyeva L.A. Induction of mobile genetic element Dm-412 transposi-tions in Drosophila genome by heat shock treatment // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1992. — V. 89. — P. 5650−5654.
  490. Rauschenbach I.Yu.Changes in ecdisteroid and juvenile hormone under heat stress // Hormones and metabolism in insect stress / Eds. Ivanovic J., Jankovic-Hladni M. Boca Raton: CRS Press, 1991. — P. 115−148.
  491. Rauschenbach I.Yu., Lukashina N.S., Khlebodarova T.M., Korochkin L.I. Role of juvenile hormone esterase in Diptera (Drosophila virilis) metamorphosis // J. Insect Physiol. -1991. V. 37. — P. 541−548.
  492. Rauschenbach I.Yu., Lukashina N. S., Korochkin L. I. Genetic of esterases in Drosophila. VIII. The gene controlling the activity of JH-esterase in D. virilis // Biochem. Genet. -1984. V. 22. — P. 65−80.
  493. Rauschenbach I.Y., Lukashina N.S., Korochkin L.I. Role of pupal esterase in the regulation of metamorphosis of the D. virilis stocks differing in response to high temperature // Dev. Genet. 1980. — V. 1. — P. 295−310.
  494. Rauschenbach I.Y., Lukashina N.S., Maksimovsky L.F., Korochkin L.I. Stress-like reaction of Drosophila to adverse environmental factors // J. Comp. Physiol. B. 1987. -V. 157.-P. 519−531.
  495. Rauschenbach I.Yu., Schumnaja L. V., Chentsova N.A. Genetic control of phenol oxidase activity in D. virilis // Biochem. Genet. 1992. — V. 11. — P. 47−53.
  496. Rauschenbach I.Yu., Serova L.I., Timochina I S., Chentsova N.A., Schumnaja L.V. Analysis of differences in dopamine content between two lines of Drosophila virilis in response to heat stress // J. Insect Physiol. 1993. — V. 39. — № 9. — P. 761−767.
  497. Readio J., Chen M.H., Meola R. Juvenile hormone biosynthesis in diapausing and nondiapausing Culexpipiens (Diptera: Culicidae) // J. Med. Entomol. 1999. — V. 36. -P. 355−360.
  498. Redfern C.P.F., Bownes M. Pleiotropic effects of the 'ecdysoneless-1' mutation of Drosophila melanogaster // Mol. Gen. Genet. 1983. — V. 189. — P. 432−440.
  499. Rees H.H. Biosynthesis of ecdysone // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G., Gilbert T. New York: Pergamon Press, 1985. — V. 7. — P. 249−294.
  500. Rees H.H. Ecdysteroid biosynthesis and activation in relation to function // Eur. J. Entomol. 1995. — V. 92. — P. 9−39.
  501. Renucci M., Strambi C., Strambi A., Augier R., Charpin P. Ovaries and regulation of juvenile hormone titer in Acheta domesticus L. (Ortoptera) //Gen. Comp. Endocrinol. -1990. V. 78. — P. 137−149.
  502. Restifo L., White K. Molecular and genetic approaches to neurotransmitter and neuromodulator systems in Drosophila // Adv. Insect Physiol. 1990. — V. 22. — P. 115 219.
  503. Rewitz K.F., Rybczynski R., Warren J.T., Gilbert L.I. Developmental expression of Manduca shade, the P450 mediating the final step in molting hormone synthesis // Mol. Cell. Endocrinol. 2006. — V. 247. — P. 166−174.
  504. Richard D.S., Applebaum S.W., Gilbert L.I. Developmental regulation of juvenile hormone biosynthesis by the ring gland of Drosophila melanogaster // J. Insect. Physiol. 1989a. — V. 159. — P. 383−387.
  505. Richard D.S., Applebaum S.W., Gilbert L.I. Allatostatic regulation of juvenile hormone production in vitro by the ring gland of Drosophila melanogaster // Mol. Cell. Endocrinol. -1990. V. 68. — P. 153−161.
  506. Richard D.S., Gilbert L.I. Reversible juvenile hormone inhibition of ecdysteroid and juvenile hormone biosynthesis by the ring gland of Drosophia melanogaster // Experientia. -1991. V. 47. — P. 1063−1066.
  507. Richard D.S., Watkins N.L., Serafin R.B., Gilbert L.I. Ecdysteroids regulate yolk protein uptake by Drosophia melanogaster oocytes // J. Insect Physiol. 1998. — V. 44. -P. 637−644.
  508. Richards G. Ecdysteroids and puffing in Drosophila melanogaster // Progress in ecdysone research / Ed. Hoff man J.A. North Holland, Amsterdam and New York: Elsevier, 1980. — P. 363−378.
  509. Richards G. The radioimmune assay of ecdysteroid titres in Drosophila melanogaster // Mol. Cell. Endocr. 1981. — V. 21. — P. 181−197.
  510. Richards G. The ecdysone regulatory cascades in Drosophila // Adv. Dev. Biol. 1997. -V. 5.-P. 81−135.
  511. Riddiford L. Cellular and molecular actions of juvenile hormone 1. General considerations and premetamorphic actions // Adv. Insect Physiol. 1994. — V. 24. — P. 213−274.
  512. Riddiford L. Hormonal control of epidermal cell development // Amer. Zool. -1981. -V. 21. P. 751−762.
  513. Riddiford L.M. Hormonal control of sequential gene expression on insect epidermis // Biosynthesis, metabolism and mode action of invertebrate hormones / Eds. Hoffmann J., Porchet M. Berlin: Springer, 1984. — P. 265−272.
  514. Riddiford L.M. Interaction of ecdysteroids and juvenile hormone in the regulation of larval growth and metamorphosis of the tobacco hornworm // Progress in Ecdysone Research / Ed. Hoffmann J.A. Amsterdam: Elsevier, 1980. — P. 409130.
  515. Ringo J., Werczberger R., Altaratz M., Segal D. Female sexual receptivity and juvenile hormone synthesis are defective in mutants of the apterous gene of Drosophila melanogaster 11 Behav. Genet. -1991. V. 21. — P. 453−469.
  516. Ringo J., Werczberger R., Segal D. Male sexual signaling is defective in mutants of the apterous gene of Drosophila melanogaster // Behav. Genet. -1992. V. 22. — P. 469 487.
  517. Ritossa F. A new puffing pattern induced by temperature shock and DNP in Drosophila // Expcrientia. -1962. V. 18. — P. 571—573.
  518. Rizki R.M., Rizki T.M. Encapsulation of parasitoid eggs in phenoloxidase-deficient mutants of Drosophila melanogaster // J. Insect Physiol. 1990. — V. 36. — P. 523−529.
  519. Robb S., Cheek T. R., Hannan F.L., Hall L.M., Midgley J.M., Evans P.D. Agonist-specific coupling of a cloned Drosophila octopamine/tyramine receptor to multiple second messenger systems // EMBO J. 1994. — V. 13. — P. 1325−1330.
  520. Robbins W.E., Kaplanis J.N., Thompson M.J., Shortino T.J., Cohen C.F., Joyner S.C. Ecdysones and analogs: effects on development and reproduction of insects // Science. -1968. V. 161. — P. 1158−1159.
  521. Robertson H.A. The innervation of the salivary gland of the moth, Manduca sexta: evidence that dopamine is the transmitter // J. Exp. Biol. 1975. — V. 63. — P. 413−419.
  522. Roe R.M., Jesudason P., Venkatesh K., Kallapur V.L., Anspaugh D.D. Developmental role of juvenile hormone metabolism in Lepidoptera // Am. Zool. 1993. — V. 33. — P. 375−383.
  523. Roeder T., Gewecke M. Octopamine receptors in locus nervous tissue // Biochem. Pharmacol. 1990. — V. 39. — P. 1793−1797.
  524. Roeder T. Octopamine in invertebrates // Progr. Neurobiol. 1999. — V. 59. — P. 533 561.
  525. Roller H., Dahm K.H., Sweeley C.C., Trost B.M. The structure of the juvenile hormone // Angewandte Chemie. 1967. — V. 6. — P. 179−180.
  526. Romer F., Emmerich H., Nowock J. Biosynthesis of ecdysones in isolated prothoracic glands and oenocytes of Tenebrio molitor in vitro // J Insect Physiol. 1974. — V. 20. -P. 1975−1987.
  527. Rubenstein E.C., Kelly T.J., Schwartz M.B., Woods C.W. In vitro synthesis and secretion of ecdysteroids by Drosophila melanogaster ovaries // J Exp. Zool. 1982. -V. 223. — P. 305−308.
  528. Ruegg R.P., Orchard I, Davey K.G. 20-hydroxyecdysone as a modulator of electrical activity in neurosecretory cells of Rhodnius prolixux // J. Insect Physiol. 1982. — V. 28. — P. 243−248.
  529. Rutherford S.L., Zuker C.S. Protein folding and the regulation of signaling pathways // Cell. -1994. V. 79. — P. 1129−1132.
  530. Russel S., Ashburner M. Ecdysone-regulated chromosome puffing in Drosophila melanogaster // Metamorphosis: postembryonic reprogramming of gene expression in amphibian and insect cells / Ed. Gilbert L.I. Academic Press, 1996. P.109−173.
  531. Ryan M.T., Pfanner N. Hsp70 proteins in protein translocation // Adv. Protein Chem. -2001. V. 59. — P. 223−242.
  532. Sakurai S., Warren J.T., Gilbert L.I. Ecdysteroid synthesis and molting by the tobacco hornworm, Manduca sexta, in the absence of prothoracic glands // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1991. — V. 18. — P. 13−36.
  533. Samaranskaya M. Possible involement of adipokinetic hormone in the locust Shistocerca gregaria // J. Exp. Biol. 1976. — V. 65. — P. 415−425.
  534. Sanchez Y., Lindquist S. HSP104 required for induced thermotolerance // Science. -1990. V. 248. — P. 1112—1115.
  535. Sarup P., Sorensen J.G., Dimitrov K., Barker J.S.F., Loeschcke V. Variation in life history and stress related traits in Drosophila buzzatii collected along a climatic gradient in South-Eastern Australia // Heredity. 2006. — V. 96. — P. 479−486.
  536. Satyanarayana K., Bradfield J.Y., Bhaskaran G., Dahm K.H. Stimulation of vitellogenin production by methoprene in prepupae and pupae of Manduca sexta I I Arch. Insect Biochem. Physiol. 1994. — V. 25. — P. 21−37.
  537. Satyanarayana K., Yu J.H., Bhaskaran G., Dahm K.H., Meola R. Regulation of vitellogenin synthesis by juvenile hormone in the corn earworm, Helicoverpa zea // Invert. Reprod. Develop. 1992. — V. 21. — P. 169−178.
  538. Saudou F., Amlaiky N., Plassat J. L., Borrelli E., Hen R. Cloning and characterization of a D. melanogaster tyramine receptor // E M B O J. 1990. — V. 9. — P. 3611−3617.
  539. Saunders D.S., Richadrd D.S., Applebaum S.W., Ma M., Gilbert L.I. Photoperiodic diapause in Drosophila melanogaster involves a block to the juvenile hormone regulation of ovarian maturation // Gen. Comp. Endocrinol. 1990. — V. 79. — P. 174 184.
  540. Schafer S., Rehder V. Dopamine-like immunoreactivity in the brain and suboesophageal ganglia of the honey bee // J. Comp. Neurol. 1989. — V. 280. — P. 43−58.
  541. Scholnick S.B., Morgan B.A., Hirsh J. The cloned dopa decarboxylase gene in developmentally regulated when reintegrated into the Drosophila genome // Cell. -1983. V. 34. — P. 37−45.
  542. Schooley D.A., Baker F.C. Juvenile hormone biosynthesis // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 7. — P.363−389.
  543. Schwaerzel M., Monastirioti M., Scholz H., Friggi-Grelin F., Birman S., Heisenberg M. Dopamine and octopamine differentiate between aversive and appetitive olfactory memories in Drosophila // J. Neurosci. 2003. — V. 23. — P. 10 495−10 502.
  544. Schubiger M., Wade A.A., Carney G.E., Truman J.W., Bender M. Drosophila EcR-B ecdysone receptor isoforms are required for larval molting and for neuron remodeling during metamorphosis // Development. 1998. — V. 125. — P. 2053−2062.
  545. Sedlak B.J. Structure of endocrine glands // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 7. — P. 25−60.
  546. Segraves W. Ecdysone response in Drosophila // Hormones and growth factors in development and neoplasia / Eds. Dickson R.B., Salomon D.S. — N.Y.: Wiley-Liss, Inc., 1998. — P. 45−78.
  547. Selye H. The evolution of stress concept // Amer.Scient. 1973. — V. 61. — P. 692−699.
  548. Service P.M., Hutchinson E.W., Rose M.R. Multiple genetic mechanisms for the evolution of senescence in Drosophila melanogaster // Evolution. 1988. — V. 42. — P. 708−716.
  549. Shapiro A.B., Wheelock G.D., Hagedorn H.H., Baker F.C., Tsai L.W., Schooly D.A. Juvenile hormone and juvenile hormone esterase in adult females of the mosquito Aedes aegypti II J. Insect Physiol. 1986. — V. 32. — P. 867−885.
  550. Shemshedini L., Wilson T.G. Resistance to juvenile hormone and an insect growth regulator in Drosophila is associated with an altered cytosolic juvenile hormone binding protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — V. 87. — P. 2072−2076.
  551. Shemshedini L., Lanoue M., Wilson T.G. Evidence for a juvenile hormone receptor involved in protein synthesis in Drosophila melanogaster // J. Biol. chem. 1990. — V. 265. — P. 1913−1918.
  552. Shirk P.D., Bean D.W., Brookes V.J. Ecdysteroids control vitellogenesis and egg maturation in pharate and adult females of the Indianmeal moth, Plodia interpunctella // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1990. — V. 15. — P. 183−199.
  553. Shirk P.D., Zimowska G., Silhacek D.L., Shaaya E. Initiation of vitellogenesis in pharate adult females of the Indianmeal moth Plodia interpunctella // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1992. — V. 21. — P. 53−63.
  554. Shtorch A., Werczberger R., Segal D. Genetic and molecular studies of apterous: a gene implicated in juvenile hormone system of Drosophila // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1995. — V. 30. — P. 195−209.
  555. Simonet G., Poels J., Claeys I., Van Loy T., Franssens V., De Loof A., Vanden Broeck J. Neuroendocrinological and molecular aspects of Insect reproduction // J. Neuroendocrinol. 2004. V. 16. — P. 649−659.
  556. Slade M., Zibbit C.H. Metabolism of cecropia juvenile hormone in insects and mammals // Insect juvenile hormone / Eds. Menn J.J., Beroza M. New York: Academic Press, 1972. — P. 155−176.
  557. Slama K. Old concepts and new findings on hormonal control of morphogenesis in Dcrmestes // Colloque Internationaux C.N.R.S. No 251 Actualites sur les Hormones d’lnvertebres / Ed. Durchon M.M.- Paris: CNRS, 1975. — P. 499−506.
  558. Sliter, T.J., Gilbert, L.I. Developmental arrest and ecdysteroid deficiency resulting from mutations at the dre4 locus of Drosophila // Genetics. -1992. V. 130. — P. 555−568.
  559. Sliter T.J., Sedlak B.J., Baker F.C., Shooley D.A. Juvenile hormone in D. melanogaster. Identification and titer determination during development // Insect Biochem. 1987. -V. 17. — P. 161−165.
  560. Smagghe G., Degheele D. Action of the nonsteroidal ecdysteroid mimic RH 5849 on larval development and adult reproduction of insects of different orders // Invertebr. Reprod. Dev. -1994. V. 25. — P. 227−236.
  561. Smith S.L. Ecdysone 20-monooxygenase activity in adult female Aedes aegypti I I Ohio J Sci. -1983. V. 83. — P. 68−69.
  562. Smith S.L. Regulation of ecdysteroid titer: synthesis // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / Eds. Kerkut G.A., Gilbert L.I. Oxford: Pergamon Press, 1985. — V. 7. P.295−342.
  563. Smith S.L., Bollenbacher W.E., Cooper D.Y.Schleyer H., Wielgus J.J., Gilbert 1.1. Ecdysone 20-monooxygenase: characterization of an insect cytochrome P-450 dependent steroid hydroxylase // Mol. Cell. Endocrinol. -1979. V. 15. — P. 111−133.
  564. Smith W.A., Gilbert L.I., Bollenbacher W.E. Calcium cyclic AMP interaction in prothoracicotropic hormone stimulation of ecdysone synthesis // Mol. Cell. Endocrinol. -1985. V. 39. — P. 71−78.
  565. Smythe E., Warren G. The mechanism of receptor-mediated endocytosis // Eur. J. Biochem. 1991. — V. 202. — P. 689−699.
  566. Soller M., Bownes M., Kubli E. Mating and sex peptide stimulate the accumulation of yolk in oocytes of Drosophila melanogaster // Eur. J. Biochem. — 1997. V. 243. — P. 732−738.
  567. Soller M., Bownes M., Kubli E. Control of oocyte maturation in sexually mature Drosophila females // Dev. Biol. 1999. — V. 208. — P. 337−351.
  568. Solomon J.M., Rossi J.M., Golic K., McGarry T., Lindquist S. Changes in Hsp70 alter thermotolerance and heat-shock regulation in Drosophila II New Biologist. -1991. V. 3. — P. 1106−1120.
  569. Soltani N., Delachambre J., Delbecque J.P. Stage-specific effects of diflubenzuron on ecdysteroid titers during the development of Tenebrio molitor: evidence for a change in hormonal source // Gen. Comp. Endocrinol. 1989. — V. 76. — P. 350−356.
  570. S0rensen J.G., Norry F.M., Scannapieco A.C., Loeschcke V. Altitudinal variation for stress resistance traits and thermal adaptation in adult Drosophila buzzatii from the New World // J. Evol. Biol. 2005. — V. 18. — P. 829−837.
  571. Sparagana S.P., Bhaskaran G., Barrera P. Juvenile hormone acid methyltransferase activity in imaginal discs of Manduca sexta prepupae // Arch. Ins. Biochem. Physiol. -1985. V. 2. — P. 191−201.
  572. Spielman A., Gwards R.W., Anderson W.A. Ecdysone-initiated ovarian development in mosquitoes //J. Insect Physiol. -1971. V. 17. — P. 1807−1814.
  573. Spradling A.C. Developmental genetics of oogenesis // The development of Drosophila melanogaster / Eds. Bate M., Martines A. Cold Spring Harbor, New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1993. — V. 1. — P. l-70.
  574. Stay B. A review of the role of neurosecretion in the control of juvenile hormone synthesis: a tribute to Berta Scharrer // Insect Biochem. Mol. Biol. 2000. — V. 30. — P. 653−662.
  575. Stay B., Fairbairn S., Yu C.G. Role of allatostatins in the regulation of juvenile hormone synthesis // Arch. Insect. Biochem. Physiol. 1996. — V. 32. — P. 287−297.
  576. Stay B., Tobe S.S. Control of the corpora allata during a reproductive cycle in a viviparous cockroach // Am. Zool. -1981. V. 21. — P. 663−674.
  577. Stevenson P.A., Hofmann H.A., Schoch K., Schilberger K. The flight and flight responses of crickets depleted of biogenic amines // J. Neurobiol. 2000. — V. 43. — P. 107−120.
  578. Stevenson R.D. The relative importance of behavioral and physiological adjustments controlling body temperature in terrestrial ecotherms // Am. Naturalist. 1985. — V.126.- P.362−386.
  579. Strambi A., Strambi C., Cayre M. Hormonal control of reproduction and reproductive behavior in crickets // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1997. — V. 35. — P. 393−404.
  580. Strand D.J., McDonald J.F. Copia is transcriptionally responsive to environmental stress // Nucleic Acids Res. -1985. V. 13. — P. 4401−4410.
  581. Sugamori K.S., Demchyshyn L.L., McConkey F., Forte M.A., Niznik H.B. A primordial dopamine Dl-like adenylate cyclase-linked recep-tor from Drosophila melanogaster displaying poor affinity for benzaz-epines // FEBS Lett. 1995. — V. 362.- P.131−138.
  582. Sukhanova M.Z., Grenback L.G., Gruntenko N.E., Khlebodarova T.M., Rauschenbach I.Y. Alkaline phosphatase in Drosophila under heat stress // J. Insect Physiol. 1996. -V. 42. — № 2. — P. 161−165.
  583. Sukhanova MJh., Shumnaya L.V., Grenback L.G., Gruntenko N.E., Khlebodarova T.M., Rauschenbach, I.Y. Tyrosine decarboxylase and dopa decarboxylase in Drosophila virilis under heat stress // Biochem. Genet. 1997. — V. 35. — P. 91−103.
  584. Sun X., Song Q., Barrett B. Effect of Ecdysone agonists on vitellogenesis and the expression of EcR and USP in codling moth (Cydia pomonella) // Arch. Insect Biochem. Physiol. 2003. — V. 52. — P. 115−129.
  585. Svoboda J.A., Kaplanis J.N., Robbins W.E., Thompson M.J. Recent development in insect steroid metabolism // Ann. Rev. Entomol. -1975. V. 20. — P. 205−220.
  586. Sweidrich A, Lorene-Kukula K, Skirycz A, Szopa J. The catecholamine645. biosynthesis route in potato is affected by stress // Plant Physiol. Biochem. 2004. — V. 42. — P. 593−600.
  587. Talbot W.S., Swyryd E.A., Hogness D.S. Drosophila tissues with different metamorphic responses to ecdysone express different ecdysone receptor isoforms I I Cell. 1993. — V. 73. — P. 1323−1337.
  588. Tatar M., Kopelman A., Epstein D., Tu M.P., Yin C.M., Garofalo R.S. A mutant Drosophila insulin receptor homolog that extends life-span and impairs neuroendocrine function // Science. 2001. — V. 292. — P. 107−110.
  589. Tauchman S.J., Lorch J.M., Orth A.P., Goodman W.G. Effects of stress on the hemolymph juvenile hormone binding protein titers of Manduca sexta // Insect Biochem. Mol. Biol. 2007. — V. 37. — P. 847−854.
  590. Tautz D., Pfeifle C. A non-radioactive in situ hybridization method for the localization of specific RNAs in Drosophila embryos reveals translational control of the segmentation gene hunchback // Chromosoma. -1989. V. 98. — P. 81−85.
  591. Thomas B. R., Yonkeura M., Morgan T. D., Czapla T. H., Hopkins T. L., Kramer K. J. A trypsinsolubilized laccase from farat pupal integument of the tobacco hornworm, Manduca sexta. II Insect Biochem. 1989. — V. 19. — P. 611−622.
  592. Thomas H.E., Stunnenberg H.G., Stewart A.F. Heterodimerization of the Drosophila ecdysone receptor with retinoid X receptor and ultraspiracle // Nature. 1993. — V. 362. — P. 471−475.
  593. Thomsen E., Thomsen M. Production of specific protein secretion granules by the fat body cells of the blowfly Calliphora erythrocephala. Substitution of an ovarian key factor by P-ecdysone // Cell. Tissue Res. 1978. — V. 193. — P. 25−33.
  594. C.S. 1996. Flies on steroids Drosophila metamorphosis and the mechanisms of steroid hormone action // Trends. Genet. — V. 12. — P. 306−310.
  595. Tillman J.A., Seybold S. J, Jurenka R.A., Blomquist J. Insect pheromones an overview of biosynthesis and endocrine regulation // Ins. Biochem. Mol. Biol. -1999. — V. 29. — P. 481−514.
  596. Tobe S.S., Langley P.A. Reproductive physiology of Glossina // Annu. Rev. Entomol. -1978. V. 23. — P. 283−307.
  597. Tobe S.S., Bendena W.G. The regulation of juvenile hormone production in arthopods. Functional and evolutionary perspectives // Ann. NY Acad. Sci. -1999. V. 897. — P. 300−310.
  598. Tobe S.S., Pratt G.E. Corpus allatum activity in vitro during ovarian maturation in the desert locust Schistocerca gregaia // J. Exp. Biol. 1975. — V. 62. — P. 611−627.
  599. Tobe S.S., Stay B. Corpus allatum activity in vitro during the reproductive cycle of the viviparous cockroach, Diploptera punctata (Eschoscholtz) I I Gen. Comp. Endocrinol. -1977. V. 31. — P. 138−147.
  600. Tobe S.S., Stay B. Modulation of juvenile hormone synthesis by an analogue in the cockroach // Nature. 1979. — V. 281. — P. 481−482.
  601. Tobe S.S., Stay B. Structure and regulation of the corpus allatum // Adv. Insect. Physiol. 1985. — V. 18. — P. 305−432.
  602. Tompkins L. Effects of the apterous4 mutation on Drosophila melanogaster males' courtship // J. Neurogenet. 1990. — V. 6. — P. 221−227.
  603. Trowell S.C. High affinity juvenile hormone carrier proteins in the hemolymph of insects // Comp. Biochem. Physiol. B. -1992. V. 103. — P. 795−808.
  604. Truman J.W., Riddiford L.M. The morphostatic actions of juvenile hormone // Insect Biochem. Mol. Biol. 2007. — V. 37. — P. 761−770.
  605. Truesdell P.F., Koladich P.M., Kataoka H., Kojima K., Suzuki A. Molecular characterization of a cDNA from the true armyworm Pseudaletia unipuncta encoding
  606. Manduca Sexta allatotropin peptide // Inscet Biochem. Mol. Biol. 2000. — V. 30. — P. 691−702.
  607. Tsuchida K., Nagata M., Suzuki A. Hormonal control of ovarian development in the silkworm, Bombyx mori // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1987. — V. 5. — P. 167−177.
  608. Tu M.P., Kou R., O’Remus G., Yin C.-M., Stoffolano J.G. Allatotropic activity in the brain of female Phorma regina // J. Insect Physiol. 2002. — V. 48. — P. 733−741.
  609. Turner C., Wilson T.G. Molecular analysis of the Methoprene-tolerant gene region of Drosophila melanogaster // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1995. — V. 30. — P. 133 147.
  610. Uzzan A., Dudai Y. Aminergetic receptors in Drosophila melanogaster: Responsiveness of adenylate cyclase to putative neurotransmitters // J. Neurochem. -1982. V. 38. — P. 1542−1550.
  611. Valles A., White K. Serotonin-containing neurones in Drosophila melanogaster: development and distribution // J. Comp. Neurol. 1988. — V. 268. — P. 414−428.
  612. Vallone D., Picetti R., Borrelli E. Structure and function of dopamine receptors // Neurosci. Biobehav. Rev. 2000. — V. 24. — P. 125−132.
  613. Vass E., Nappi J. A., Carton Y. Alteration in the activities of tyrosinase, N-acetyltransferase, and tyrosine aminotransferase in immune reactive larvae of Drosophila melanogaster I I Dev. Comp. Immunol. 1993. — V. 17. — P. 109−118.
  614. Vazquez J., Pauli D., Tissieres A. Transcriptional regulation in Drosophila during heat shock: a nuclear run-on analysis // Chromosoma. 1993. — V. 102. — P. 233−248.
  615. Velazquez J., Sonoda S., Bugaisky J., Lindquist S. Is the major Drosophila heat shock proteins present in cell that have not been heat shocked? I I J. Cell. Biol. 1983. — V. 96. — P. 286—290.
  616. Wallace B.G. The biosynthesis of octopamine-characterization of a lobster tyramine (3-hydroxylase // J. Neurochem. 1976. — V. 26. — P. 761−770.
  617. Walter S., Buchner J. Molecular chaperones cellular machines for protein folding // Angew. Chem. Int. Ed. — 2002. — V. 41. — P. 1098−1113.
  618. Wang Z., Hayakawa Y., Downer R.G.H. Factors influencing cyclic AMP and diacyglycerol levels in fat body of Locusta migratoria // Insect Biochem. 1990. — V. 20. — P. 325−330.
  619. Watson R.D., Whisenton L.R., Bollenbacher W.E., Granger N.A. Interendocrine regulation of the corpora allata and prothoracic glands of Manduca sexta I I Insect Biochem. 1986. — V. 6. — P. 149−158.
  620. Weaver D.K., McFarlane J.E. The effect of larval density on growth and development of Tenebrio molitor // J. Insect Physiol. 1990. — V. 36. — P. 531−536.
  621. Weaver R.J., Edwards J.P. The role of the corpora allata and associated nerves in the regulation of ovarian cycles in the oviparous cockroach Periplaneta americana // J. Insect Physiol. -1990. V. 36. — P. 51−59.
  622. Webb T.J., Powls R., Rees H.H. Enzymes of ecdysteroid transformation and inactivation in the midgut of the cotton leafworm, Spodoptera littoralis: Properties and developmental profiles // Biochem. J. 1995. — V. 312. — P. 561−568.
  623. Weidner K., Clasz M., Rieck H., Hoffmann K.H. Development changes in ecdysteroid biosynthesis in vitro during adult life and embryogenesis in a cricket, Gryllus bimacidatus de Geer // Invertebr. Reprod. Dev. 1992. — V. 21. — P. 129−140.
  624. Weirich G.F., Bell R.A. Ecdysone 20-hydroxylation and 3-Epimerization in Larvae of the Gypsy Moth, Lymantria dispar L.: Tissue distribution and developmental changes // J. Insect Physiol. 1997. — V. 43. — P. 643−649.
  625. Weirich G.F., Thompson M.J., Svoboda J.A. Ecdysone oxidase and 3-oxoecdyseroid reductases in Manduca Sexta midgut: kinetic parameters // Arch. Insect. Biochem. Physiol. 1989. — V. 23. — P. 199−211.
  626. Welsh M.J., Gaestel M. Small heat-shock protein family: function in health and disease // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1998. — V. 851. — P. 28−35.
  627. Welte M.A., Tetrault J.M., Dellavalle R.P., Lindquist S.L. A new method for manipulating transgenes: engineering heat tolerance in a complex, multicellular organism // Curr. Biol. 1993. — V. 3. — P. 842−853.
  628. Wendt B., Homberg U. Immunohistochemistry of dopamine in the brain of the locust Schistocerca gregaria // J. Comp. Neurol. 1992. — V. 321. — P. 387−403.
  629. Whisenton L.R., Granger N.A., Bollenbacher W.E. Regulation of juvenile hormone biosynthesis by 20-hydroxyecdysone during the fourth larval instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta // Gen. Comp. Endocrionol. -1987. V. 66. — P. 62−70.
  630. Whitmore D., Gilbert L.I. Haemolymph lipoprotein transport of juvenile hormone // J. Insect Physiol. 1972. — V. 11. — P. 201−210.
  631. Wierenga J.M., Hollingworth R.M. Octopamine uptake and metabolism in the insect nervous system // J. Neurochem. 1990. — V. 54. — P. 479−489.
  632. Wigglesworth V.B. The principles of insect physiology. London: Methuen and Cold, 1970. -172 pp.
  633. Wilson T.G. A mosaic analysis of the apterous mutation in Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1981a. — V. 85. — P. 434−445.
  634. Wilson T.G. Expression of phenotypes in a temperature-sensitive allele of the apterous mutation in Drosophila melanogaster // Dev. Biol. 1981b. — V. 85. — P. 425−433.
  635. Wilson T.G., Ashok, M. Insecticide resistance resulting from an absence of target-site gene product // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1998. — V. 95. — P. 14 040−14 044.
  636. Wilson T.G., DeMoor S., Lei J. Juvenile hormone involvement in Drosophila melanogaster male reproduction as suggested by the Methoprene-tolerant27 mutant phenotype // Insect Biochem. Mol. Biol. 2003. — V. 33. — P. 1167−1175.
  637. Wilson T.G., Fabian J. A Drosophila melanogaster mutant resistant to a chemical analog of juvenile hormone // Dev. Biol. 1986. — V. 118. — P. 190−201.
  638. Wisniewski J.R., Muszynska-Pytel M., Kochman M. Juvenile hormone degradation in brain and corpora cardiaca-corpora allata complex during the last larval instar of Galleria mellonella // Experientia. 1986. — V. 42. — P. 167−168.
  639. Witz P., Amalaiky N., Plassat J-L., Maroteaux L., Borelli E., Hen R. Cloning and characterization of a Drosophila serotonin receptor that activates adenylate cyclase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — V. 87. — P. 8940−8944.
  640. Woodring J.P., McBride L.A., Fields P. The role of octopamine in handling and exercise-induces hyperglycaemia and hyperlipaemia in Acheta domesticus // J. Insect Physiol. 1989. — V. 41. — P. 613−617.
  641. Woodring J., Hoffmann K.H. The effects of octopamine, dopamine and serotonin on juvenile hormone synthesis, in vitro, in the cricket, Gryllus himaculatus // J. Insect Physiol. 1994. — V. 40. — P. 797−802.
  642. Woodring, J.P., Meier, O.W., Rose, R. Effect of development, photoperiod, and stress on octopamine levels in the house cricket, Acheta demosticus // J. Insect Physiol. -1988. V. 34. — P. 759−765.
  643. Wright J.E., Kaplanis J.N. Ecdysone and ecdysone-analogues: effects on fecundity of the stable fly, Stomoxys calcitrans // Ann. Entomol. Soc. Am. 1970. — V. 63. — P. 622 623.
  644. Wright T.R.F. Genetic of biogenic amines metabolism, sclerotisation and melanisation in Drosophila melanogaster // Adv Genet. -1987. V. 24. — P. 127−221.
  645. Wu S.-J., Zhang J.-Z., Ma M. Monitoring the effects of juvenile hormones and 20-hydroxyecdysone on yolk polipeptide production of Drosophila melanogaster with enzyme immuno-assay // Physiol. Ent. 1987. — V. 12. — P. 355−361.
  646. Wyatt J.R., Davey K.J. Cellular and molecular actions of juvenile hormone II. Roles of juvenile hormone in adult insects // Adv. Insect. Physiol. 1996. — V. 26. — P. 1−155.
  647. Xu Y, Fang F, Chu Y, Jones D, Jones G. Activation of transcription through the ligand-binding pocket of the orphan nuclear receptor ultraspiracle // Eur. J. Biochem. 2002. -V. 269. — P. 6026−6036.
  648. Yamamoto K., Chadarevian A., Pellegrini M. Juvenile hormone action mediated in male accessory glands of Drosophila by calcium and kinase C // Science. 1988. — V. 239. — P. 916−919.
  649. Yao T., Forman B.M., Jiang Z., Cherbas L., Chen J.D., McKeown M., Cherbas P., Evans R.M. Functional ecdysone receptor is the product of EcR and ultraspiracle genes // Nature. 1993. — V. 366. — P. 476−479.
  650. Yao T.-P., Segraves W.A., Oro A.E., McKeown M., Evans R.M. Drosophila ultraspiracle modulatesecdysone receptor function via heterodimer formation // Cell. -1992. V. 71. — P. 63−72.
  651. Yu S.J., Terrier L.C. A possible hormone epoxide hydrase in the house flies, flesh flies and blow flies // Insect Biochem. 1978a. — V. 8. — P. 349−352.
  652. Yu S.J., Terrier L.C. Metabolism of juvenile hormone I by microsomal oxidase, esterase and epoxide hydrase of Musca domestica and some comparisons with Phormia regina and Sarcophaga bullata // Res. Biochem. Physiol. 1978b. — V. 9. — P. 237−246.
  653. Yue L., Karr T.L., Nathan D.F., Swift H., Srinivasan S., Lindquist S. Genetic analysis of viable Hsp90 alleles reveals a critical role in Drosophila spermatogenesis // Genetics. 1999. — V. 151. — P. 1065−1079.
  654. Yund M.A., King D.S., Fristrom J.W. Ecdysteroid receptors in imaginal discs of Drosphila melanogaster // Proc. Natl. Acad. Sci USA. -1978. V. 75. — P. 6039−6043.
  655. Zhang J., McCracken A., Wyatt G.R. Properties and sequence of a female-specific, juvenile hormone-induced protein from locust hemolymph // J. Biol. Chem. 1993. — V. 268. — P. 3282−3288.
  656. Zhuchenko A.A., Korol A.B., Kovtukh L.P. Change of the crossing over frequency, in Drosophila melanogaster during selection for resistance to temperature fluctuations // Genetica. 1985. — V. 77. — P. 73−78.
  657. Zeng F., Shu S., Park Y.I., Ramaswamy S.B. Vitellogenin and egg production in the moth, Heliothis virescens // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1996. — V. 34. — P. 287 300.
  658. Zeng H., Jennings K.R., Loughton B.G. Pharmacological characterization of the locust air sac octopamine receptor // Pest. Biochem. Physiol. 1996b. — V. 55. — P. 218−225.
  659. Zeng H., Loughton B.G., Jennings K.R. Tissue specific transduction systems for octopamine in the locust (Locusta migratoria) // J. Insect Physiol. 1996c. — V. 42. — P. 765−769.
  660. Zera A. J., Zhang C. Evolutionary endocrinology of juvenile hormone esterase in Gryllus assimilis: direct and correlated responses to selection I I Genetics. — 1995. V. 141.-P. 1125−1134.
  661. Zhang B.G., Torkkeli P.H., French A.S. Octopamine selectively modifies the slow component of sensory adaptation in an insect mechanoreceptor // Brain Res. 1992. — V. 591. — P. 351−355.
  662. Zitnan D., Sehnal F., Bryant P.J. Neurons producing specific neuropeptides in the central nervous system of normal and pupariation-delayed Drosophila I I Dev. Biol. -1993. V. 156. — P. 117−135.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!