Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Экологические аспекты биохимии вторичных метаболитов растений картофеля в условиях Лесостепи

Диссертация: Экологические аспекты биохимии вторичных метаболитов растений картофеля в условиях Лесостепи
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

С помощью биологической масс-спектрометрии изучены в сравнительном аспекте направление и характер влияния факторов окружающей среды на количественные и качественные параметры вторичных метаболитов растений картофеля различных сортов, характерных для Лесостепной зоны и обладающих токсическими свойствами по отношению к человеку и отвечающих за уровень резистентности к болезням и вредителям… Читать ещё >

Экологические аспекты биохимии вторичных метаболитов растений картофеля в условиях Лесостепи (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Цель и задачи исследований
  • Научная новизна работы
  • Теоретическая и практическая значимость работы
  • Апробация результатов исследований
  • Основные положения, выносимые на защиту
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Вторичные метаболиты растений. Общая характеристика, биохимия, физиология, экология, токсикология
  • Вторичный обмен растений в условиях стресса
    • 1. 2. Вторичные метаболиты растений картофеля Solanum tuberosum L. Значение для селекции, пищевой промышленности и токсикологии продуктов питания
      • 1. 1. 1. Стероидные гликоалкалоиды (СГА). Общая характеристика
      • 1. 1. 2. Токсичность СГА для человека и сельскохозяйственных животных
        • 1. 1. 3. 1. Влияние факторов окружающей среды на качественные и количественные параметры СГА растений картофеля
        • 1. 1. 3. 1. 1. Погодно-климатические условия
        • 1. 1. 3. 1. 2. Тип почв и удобрения
        • 1. 1. 3. 1. 3. Пестициды и регуляторы роста
        • 1. 1. 3. 1. 4. Техногенные загрязнения
        • 1. 1. 3. 1. 5. Воздействие на растения картофеля насекомых-вредителей, фитопатогенов, бактерий и нематод
      • 1. 1. 2. Фенольные соединения. Флавоны и антоцианы

      1.3. Современные методы анализа вторичных метаболитов растений картофеля (мягкоионизационные виды биологической масс-спектрометрии: плазменно-десорбционная (PDMS), «электрораспылительная» (ESI-MS) и лазерная (MALDI-MS).

      Глава 2. Материалы, объекты и методы исследований.

      2.1. Место проведения исследований.

      2.2. Методика лабораторных исследований.

      Результаты исследований.

      Глава 3. Разработка новых методических подходов в области аналитической биохимии вторичных метаболитов растений картофеля.

      3.1. Определение СГА и других вторичных метаболитов методами мягкоионизационной масс-спектрометрии.

      3.2. Масс-спектрометрический метод исследования активности ферментов, участвующих в обмене СГА растений картофеля.

      Глава 4. Исследование направления и характера влияния факторов окружающей среды на количественные и качественные параметры вторичных метаболитов и параметры активности ферментов гидролитической деструкции СГА растений картофеля различных сортов.

      4.1. Погодно-климатические условия.

      4.1.1. Исследование эколого-биохимических параметров картофеля различных сортов и групп спелости в локальных условиях (опытное поле СДАУ и агрофирма «Косовщинское»,

      1994−1999 гг.).

      4.1.1.1. Содержание СГА в клубнях картофеля как функция от погод но-климатических условий.

      4.1.1.2. Динамика изменения содержания суммарной фракции

      СГА и ее составляющих в клубнях и листьях картофеля.

      4.1.1.2.1. Характеристика «минорных» СГА растений картофеля различных сортов.

      4.1.1.3. Качественные и количественные параметры вторичных метаболитов растений картофеля и их изменения под действием факторов окружающей среды.

      4.1.1.4. Отношение а-чаконин/а-соланин (Ч: С) и его вариабельность у разных сортов картофеля. Связь показателя Ч: С с уровнем резистентности картофеля по отношению к фитопатогенам и другим стрессорным факторам окружающей среды.

      4.1.1.5. Активность гидролитических ферментов тканей растений картофеля: сортовые и эколого-биохимические аспекты.

      Глава 5. Исследование эколого-биохимических параметров картофеля различных сортов в условиях Лесостепной зоны Украины, 1991−2000 гг.

      5.1. Типы почв.

      5.2. Фитопатогены и насекомые-вредители.

      5.3. Ксенобиотики.

      5.3.1. Техногенные загрязнители (радионуклиды, тяжелые металлы, оксиды серы, фториды).

      5.3.2. Пестициды.

      5.3.2.1. Гербициды.

      5.4.2.2. Инсектициды.

      5.4.2.3. Фунгициды.

      Глава 6. Метод оценки физиологического состояния растений картофеля в агроэкологических системах, основанный на изучении реактивности ферментативных систем гидролитической деструкции СГА.

      Глава 7. Прогнозирование потенциальной токсичности сортов и гибридов картофеля, выращиваемых в условиях Лесостепной зоны, на основе связей между качественными и количественными параметрами вторичных метаболитов растений картофеля, генотипом растений и воздействием факторов окружающей среды.

      7.1 Прогнозирование уровней резистентности к вредителям сортов и гибридов картофеля, выращиваемых в условиях

      Лесостепи.

      7.2. Математическая модель прогнозирования содержания вторичных метаболитов в клубнях картофеля различных сортов, культивируемых в условиях Лесостепной зоны.

      Глава 8. Мероприятия по оптимизации технологий получения экологически безопасной продукции в подвергнутых действию ксенобиотиков агроэкосистемах и предупреждению биоценотического загрязнения последних.

Изучение изменений эколого-биохимических характеристик сельскохозяйственных растений вследствие повышающегося с каждым годом «давления» на агроэкологические системы ксенобиотиков техногенного происхождения, фитопатогенов и вредителей приобретает в последнее время особую актуальность (Хочачка П., Сомеро Дж., 1989 [170]- Ильинская Л. И. и др., 1991 [77]- Журавская А. Н. и др., 1995 [66]- Костюк А. Н., Михеев А. Н., 1997 [86]- Пересыпкина Т. М. и др., 1997 [129]- Высочина Г. И, 1999 [40]- Полякова Л. В., 1999 [135- 136]- Van Gelder W.M.J., 1990 [504]- Harborne J.B., 1999 [317]- Barnola L.F., 1997 [197]- Agelopoulos N.G. et al., 2000 [186]- Boiler Т., 1998 [211]- Williams C.A. etal., 2000 [519]).

Обусловлено это тем, что совокупность разнообразных абиотических и биотических факторов окружающей среды (погодно-климатические условия, влажность, воздействие излучений различных длин волн, насекомые вредители, фитопатогены, метаболиты культурных и сорных растений, входящие в состав агрофитоценозов, ксенобиотики различной химической природы, в том числе и радионуклиды) прямо или опосредованно влияет на параметры метаболизма растений, определяя в свою очередь биологические характеристики последних в составе конкретных агроэкологических систем и, в конечном счете, качество продукции растениеводства (Гончарик М.Н., 1962 [46]- Барбье М, 1978 [11]- Урманцев Ю. А., Гудков Н. М., 1986 [159]- Журавская А. Н. и др., 1995 [66]- Косаювська I.B., 1998 [85]- Agelopoulos N.G. et al, 2000 [186]- Barz W., Hosel W, 1979 [199]- Levitt J, 1980 [367]- Kuc J., 1990 [356]- Jadhav S.J. et al, 1991 [339]- Friedman M, McDonald G. M, 1997 [288]- Bowers M.D. et al, 1998 [220]- Sembdner G, Parthier B, 1999 [462]- Williams C.A. et al, 2000 [519]). Главенствующая роль в столь сложном комплексном показателе, как качество продукции растениеводства, принадлежит, по мнению ведущих исследователей, химическим факторам, определяющим степень токсичности продукции для потребителя (Сидоренко

Г. И., Кутепов Е. Н., 1994 [149]- Friedman М. et al., 1992 [282]- Phillips B.J. et al., 1996 [433]). Такими химическими факторами являются вторичные метаболиты растений (фенольные соединения, алкалоиды, терпены, пигменты, воска) сдвиги биохимических параметров которых могут существенно изменять качественные показатели продукции растениеводства, а также косвенно влиять на стандартные технологии выращивания сельскохозяйственных культур в силу необходимости модифицирования последних вследствие индуцированного изменениями биохимических показателей вторичного обмена варьирования показателей пластичности растений и уровней их резистентности к действию факторов окружающей среды (Лархер В. 1978 [95]- Лукнер М, 1979 [100]- Харборн Дж., 1985 [168]- Бриттон Г., 1986 [23]- Запрометов М. Н., 1992 [70]- Власенко М. Ю., 1994 [35]- Полякова Л. В., 1999 [135, 136]- Sinden S.L., Webb R.E., 1984 [470]- Friedman М., McDonald G.M., 1997 [288]- Romeo J.T. et al., 1998 [457]).

Вторичные метаболиты растений являются, с одной стороны, своеобразными «биосенсорными» веществами, отражающими как природу, так и степень выраженности действия факторов окружающей среды, что позволяет использовать их в системах агроэкологического мониторинга (Остроумов С.А., 1986 [128]- Костюк А. Н., Михеев А. Н., 1997 [86]- Вайшля О. Б. и др., 1999 [26]- Высочина Г. И., 1999 [40]) и, с другой стороны, защитными антистрессорными компонентами, способными модифицировать метаболизм организма растения, приспосабливая его к изменившимся вследствие действия указанных факторов к условиям конкретных агроэкологических систем, зон выращивания и сезонов вегетации (Веселова Т.В. и др., 1993 [30]- Шохина Н. К. и др, 1999 [176]- Osman S.F. et al., 1979 [413]- Van Gelder W.M.J., 1990 [504]- 1991 [505]- Lyon G.D., 1989 [376]- Takabayashi J. et al., 1994 [489]- Friedman M., McDonald G. M, 1997 [288]- Hammerschmidt R., 1999 [313]- Hamouz K. et al., 1999 [314]).

Таким образом, разработка теоретических и экспериментальных подходов к построению концепции биомониторинга состояния фитоагроэкосистем на основе биохимических показателей вторичного обмена растений с целью: а) повышения качества продукции растениеводства и пищевой безопасностиб) экологизации земледелия посредством снижения пестицидной нагрузки вследствие использования сортов растений с оптимизированным для конкретных природно-климатических условий, характерных для данного региона техногенных ксенобиотиков и типов почв, набором вторичных метаболитовв) проведения селекции на повышение уровня резистентности к абиотическим стрессорным факторам, вредителям и болезням с учетом особенностей вторичного обмена растений, имеет долговременные перспективы и весьма актуальна в аспекте современной тенденции к экологизации растениеводства на основе постепенного вытеснения преобладающих в настоящее время пестицидов и биорегуляторов-продуктов химического синтеза их аналогами естественного происхождения.

Особую значимость исследованиям в области экологической биохимии вторичных метаболитов сельскохозяйственных культур придает их непосредственная связь с актуальными проблемами пищевой химии и биотехнологии XXI века, имеющими ключевое значение для устойчивого развития человечества и объединяющими усилия аграриев, биологов и экологов на решение вопросов рационального природопользования: определением долговременного и интегрального риска, связанного с потреблением с пищей биологически активных компонентов растительного происхождения и разработкой научных основ защиты населения от последних (WHO Principles for the safety., 1987 [517]).

Цель и задачи исследований

Целью работы является изучение характера влияния абиотических и биотических факторов окружающей среды, в том числе и ксенобиотиков техногенного происхождения, на обмен вторичных метаболитов растений картофеля разных сортов, культивируемых в условиях Лесостепной зоны, с последующей разработкой методов прогнозирования уровней накопления токсичных метаболитов в клубнях и мероприятий по оптимизации технологий получения экологически безопасного картофеля в подвергнутых действию ксенобиотиков агроэкосистемах.

Для выполнения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Разработать новые методические подходы в области аналитической биохимии вторичных метаболитов растений картофеля, используя современные физико-химические методы, в частности биологическую мягкоионизационную масс-спектрометрию.

2. Исследовать динамику вторичных метаболитов растений картофеля районированных в Лесостепной зоне сортов, гибридов и дикорастущих видов в разные периоды онтогенетического развития и характер их связи с качественными показателями клубней.

3. С помощью новейших методов биологической масс-спектрометрии изучить в сравнительном аспекте направление и характер действия следующих факторов окружающей среды: а) ксенобиотиков (пестицидов, техногенных загрязнений, характерных для Лесостепной зоны, в т. ч. радионуклидов) — б) типов почвв) погодно-климатических условийг) фитопатогенов и насекомых-вредителей на количественные и качественные параметры вторичных метаболитов растений картофеля различных сортов.

4. На основе биологической масс-спектрометрии разработать новый физико-химический метод исследования активности ферментов растений картофеля, участвующих в метаболизме вторичных метаболитов, на примере ферментов гидролитической деструкции стероидных гликоалкалоидов (СГА).

5. Определить характер вызванных действием абиотических и биотических факторов окружающей среды изменений параметров активности ферментов и гидролитической деструкции СГА, а также установить, могут ли изменения указанных параметров служить индикаторами наличия и выраженности «стрессовых условий» для растений картофеля, культивируемых в конкретных условиях.

6. Разработать метод оценки физиологического состояния растений картофеля в агроэкологических системах на основе масс-спектрометрического исследования реактивности ферментативных систем гидролитической деструкции СГА.

7. На основании эколого-биохимических параметров провести подбор сортов картофеля, оптимальных для выращивания в Лесостепной зоне на загрязненных техногенными ксенобиотиками территориях.

1. Разработать математическую модель, на основании которой можно прогнозировать уровень накопления токсичных вторичных метаболитов в клубнях растений картофеля различных сортов, культивируемых в Лесостепной зоне.

Научная новизна работы заключается в следующих положениях:

— впервые разработаны и теоретически обоснованы новые методические подходы к определению вторичных метаболитов картофеля, влияющих на качественные показатели и токсичность клубней, а также уровни резистентности растений к болезням и вредителям, на основе новейшего физико-химического метода анализа — биологической мягкоионизационной масс-спектрометрии;

— впервые с помощью биологической масс-спектрометрии проведено комплексное исследование направления и характера влияния абиотических и биотических факторов окружающей среды, в том числе и ксенобиотиков техногенного происхождения, на количественные и качественные параметры вторичных метаболитов растений картофеля;

— доказано, что вторичные метаболиты картофеля, вариабельные в аспектах как сорта, так и индивидуального растения, являются биосенсорными" соединениями, чувствительными к факторам окружающей среды и отражающими как природу, так и степень выраженности влияния негативных факторов окружающей среды;

— проведена количественная оценка и ранжирование уровней воздействия факторов окружающей среды, интенсифицирующих процессы накопления токсичных вторичных метаболитов в клубнях растений картофеля различных сортов, выращиваемых в условиях Лесостепной зоны;

— предложены методы для проведения прогнозирования содержания вторичных метаболитов в клубнях картофеля и уровней их потенциальной токсичности на основе моделирования вторичного обмена в системах «растение фитострессорные факторы окружающей среды»;

— предложены критерии оптимизации качественных показателей продовольственного картофеля на основе биохимических параметров вторичного обмена растений;

— разработаны принципиально новые физико-химические методы для определения in vitro уровней резистентности сортов картофеля к абиотическим и биотическим факторам окружающей среды (техногенные ксенобиотики, фитопатогены, насекомые-вредители, пестициды), а также экотоксикологической оценки физиологического состояния растений картофеля в условиях агроэкосистемы;

— выдвинута концепция биоиндикации состояния фитоагроэкосистем на основе данных о качественных и количественных параметрах вторичного обмена растений картофеля, позволяющая улучшить качественные показатели клубней и снизить пестицидную нагрузку на агроэкосистемы.

Актуальность работы. Картофелеводство является одной из важнейших отраслей растениеводства, спрос на высококачественную и экологически безопасную продукцию которой повышается с каждым годом. Технологии выращивания картофеля хорошо разработаны и остаются практически неизменными на протяжении последних десятилетий. В то же время, до сих пор существуют значительные пробелы в знаниях в области биохимии и физиологии растений картофеля, в частности вторичного обмена. Поскольку именно вторичные метаболиты картофеля, и в частности стероидные гликоалкалоиды, ответственны за органолептические показатели продукции картофелеводства, уровни резистентности растений по отношению к вредителям и болезням, а также являются мощными токсинами естественного происхождения, широкомасштабные исследования биохимии вторичных метаболитов растений картофеля различных сортов, выращиваемых в условиях конкретных агроэкосистем, представляются весьма перспективными, в особенности если в качестве рабочего метода использовать новые высокоинформативные методы физико-химического анализа. Особую актуальность данному направлению придает явно недостаточная изученность связей между вторичным обменом растений и воздействием абиотических и биотических факторов окружающей среды, являющихся предметом исследования новейшего раздела экологической науки — экологической биохимии. Фундаментальные аспекты данного исследования, таким образом, заключаются в изучении компонентов и моделировании системы «абиотические и биотические факторы окружающей среды — растениевторичные метаболиты», в то время, как практическая значимость работы — прогнозирование потенциальной токсичности продукции картофелеводства для потребителя и научно-обоснованный выборе сортов картофеля, оптимизированных для условий агроэкологических систем, почвенно-климатических условий, технологий выращивания и систем защиты от вредителей и болезней.

Теоретическая и практическая значимость работы

В диссертационной работе впервые изучены и теоретически обоснованы особенности вторичного обмена растений картофеля в условиях Лесостепной зоныхарактер зависимости параметров вторичного обмена от действия абиотических/биотических факторов окружающей среды в конкретных агроэкологических системахразработаны методические вопросы определения вторичных метаболитов и некоторых пестицидов на основе использования новейших методов биологической масс-спектрометрииразработан комплекс мероприятий по оптимизации технологий получения экологически чистого картофеля в подвергнутых действию ксенобиотиков агроэкосистемах и предупреждению их биоценотического загрязнения.

Полученные в рамках диссертационной работы результаты могут быть использованы: в разработке мероприятий по получению высококачественного продовольственного картофеля с использованием экологически чистых технологий;

— отборе межвидовых гибридов (S. tuberosum х дикорастущие виды рода Solarium) растений картофеля в качестве исходного материала для дальнейшего использования в селекциипрогнозировании уровней резистентности растений картофеля различных сортов и перспективных гибридов по отношению к фитопатогенам и вредителям в условиях Лесостепной зоныоценке качественных параметров продовольственного картофеля в пищевой и перерабатывающей промышленностимогут быть использованы в учебном процессе в курсах общей экологии и агроэкологии, физиологии и биохимии сельскохозяйственных растений, селекции и семеноводства, фитопатологии и иммунитета растений, технологии переработки продукции растениеводства.

Результаты исследований использованы при выполнении научно-исследовательской работы в Институте проблем картофелеводства СевероВосточного региона Украины в составе СДАУ (директор д.с.-х.н., проф., Н.Д.Гончаров) по темам «Создать новые сорта картофеля, пригодные для изготовления высококачественных продуктов переработки и сберечь их генетический потенциал современными методами семеноводства», номер государственной регистрации 0195V010235 (1995;1997 г. г.) — «Создать интенсивные сорта картофеля и разработать современные технологии производства, хранения и углубленной переработки», номер государственной регистрации 0198V003633 (1998;2000 г. г.), работе в рамках проекта «Мягкоионизационная масс-спектрометрия в агробиологии» (грант Международного Научного Фонда № QSU084219, 1998 г.- руководитель к.б.н., Чиванов В.Д.).

Апробация результатов исследований

Основные результаты диссертационной работы доложены на научно-практической конференции «Механизмы рыночного регулирования агропромышленного производства», (Сумы, 1993) — научной конференции «Шляхи шдвшцення продуктивное^ якост1 сшьськогосподарсько'1 продукцп», (Сумы, 1993) — конференции «Науков1 основи ведения картоплярства Укра’ши в ринкових умовах» (Немешаево, 1996) — V Международной научно-методической конференции «Современные технологии, экономика и экология в промышленности, на транспорте и в сельском хозяйстве» (Алушта, 1998) — международной конференции, посвященной 90-летию со дня основания Института растениеводства им. В. Я. Юрьева УААН «Науков! основи стабЫзацп виробництва продукцп рослинництва» (Харьков, 1999) — научно-практической конференции «Новое в семеноводстве картофеля» (Минск, 2000) — второй международной конференции «Экономические проблемы производства и потребления экологически чистой продукции (ЭП-2001)» (Сумы, 2001), Международной научно-практической конференции «Агроэкологические проблемы современности» (Курск, 2001), I Московской международной конференции «Крахмал и крахмалосодержащие источники» (Москва, 2001), на годичных научных конференциях Сумского Государственного аграрного университета и Института проблем картофелеводства Северо-Восточного региона Украины в составе СГАУ (Сумы, 1995;2000) — 5th International Beijing Conference and Exhibition on

Instrumental Analysis (China, 1993) — 14th International Mass Spectrometry Conference (Finland, 1997) — II International Symposium on Plant Biotechnology (Institute of Cell Biology and Genetic Engineering NASU, Kyiv, 1998) — 15th International Mass Spectrometry Conference, (Barcelone, 2000) — 5th International Solanaceae Conference (The Netherland, 2000) — Conference «Molecular genetics, genetics of microorganisms and higher eucaryotes» (Institute of Molecular Biology and Genetics NASU, 2001, Kyiv).

Публикация результатов работы.

По материалам диссертации имеется 49 публикаций в специализированных изданиях РАН, Украинской академии аграрных наук, зарубежных реферируемых изданиях, трудах и сборниках тезисов международных конференций и симпозиумов, НИИ и ВУЗов стран СНГ, в том числе методическая рекомендация, рекомендованная к внедрению научно-методическим советом Министерства Аграрной политики Украины: Ч1ванов В.Д., Чернявська Т. О. Токсичш метаболии рослин картошп: еколого-бюх1м1чш аспекта. — Суми, 2001.-103 с. и коллективная монография: Царенко О. М., Ч1ванов В.Д., Срьоменко B.I., Бордунова О. Г., Суходуб Л. Ф. Використання м’якоюшзацшно!' мас-cneKTpoMeTpi'i в анал1тичнш 6ioxiMii сшьськогосподарського спрямування.-Суми: Козацкий вал, 2001. — 203 с. Авторское свидетельство «Мас-спектрометричний cnoci6 прогнозування ефективност1 фунгщщцв щодо хвороб картошп», 7А01С21/00, № 2 000 063 550 от 20.06.2000 г. (Украина).

Основные положения, выносимые на защиту

1. Теоретическое и экспериментальное обоснование роли вторичных метаболитов как «стрессовых» веществ растений картофеля.

2. Концепция локальных агроэкологических систем в растениеводстве «абиотические и биотические факторы окружающей среды —> растение —» продукция растениеводства", включающая вторичные метаболиты растений

17 в качестве важнейших факторов, определяющих уровни резистентности и качественные показатели растений.

3. Направленность и степень проявления изменений качественных и количественных параметров синтезируемых в растениях картофеля различных сортов вторичных метаболитов, индуцируемых абиотическими и биотическими факторами окружающей среды, как неспецифическими, так и характерными для Лесостепной зоны.

4. Уровни активности ферментативной деструкции вторичных метаболитов как биоиндикаторные показатели стресса растений картофеля, выращиваемых в условиях определенных агроэкосистем.

5. Метод оценки физиологического состояния растений картофеля в агроэкосистемах на основе биохимических параметров вторичного обмена.

6. Математическая модель прогнозирования содержанки вторичных метаболитов в клубнях картофеля различных сортов, выращиваемых в условиях Лесостепной зоны.

Объем и структура работы. Диссертационная работа изложена на 356 страницах компьютерного набора, иллюстрирована 36 таблицами, 66 рисунками и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, их анализа и обсуждения, выводов, предложений производству, списка использованной литературы из 539 источников, в том числе 356 зарубежных.

ВЫВОДЫ

1. Результаты исследований, проведенных в 1991;2001 гг., свидетельствуют о том, что абиотические и биотические факторы окружающей среды, в частности ксенобиотики техногенного происхождения, оказывают выраженное влияние на обмен вторичных метаболитов растений картофеля разных сортов, культивируемых в условиях Лесостепной зоны.

2. Развиты представления о роли вторичных метаболитов растений картофеля, с одной стороны, как веществ-«биосенсоров», отражающих как природу, так и степень выраженности влияния негативных факторов окружающей среды, так, с другой стороны, защитных «антистрессорных» компонентов, способных модифицировать обмен веществ растений и адаптировать их, таким образом, к изменившимся вследствие действия указанных факторов условиям конкретных агроэкологических систем.

3. Выдвинута концепция биоиндикации состояния фитоагроэкосистем на основе данных о качественных/количественных параметрах вторичного обмена растений картофеля, позволяющая: а) повысить качественные показатели продукции растениеводстваб) снизить пестицидную нагрузку, посредством культивирования сортов, характеризующихся определенными наборами вторичных метаболитов, оптимальных для процессов адаптирования растений картофеля в условиях Лесостепной зоны, в) проводить селекцию на повышение уровня резистентности к абиотическим стрессорным факторам, фитопатогенам и вредителям с учетом особенностей вторичного обмена растений.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Характерной приметой XXI столетия является взрывообразное расширение использования в традиционных, досконально изученных поколениями отечественных и зарубежных ученых, областях сельскохозяйственной науки, в частности, растениеводстве, новейших парадигм экологии, вычислительного моделирования, физико-химических методов исследования. Последнее обусловлено воздействием нескольких факторов, значение которых увеличивается в геометрической прогрессии. Во-первых, современное растениеводство находится под мощнейшим влиянием стрессорных абиотических и биотических факторов окружающей среды, в первую очередь, ксенобиотиков техногенного происхождения (радионуклиды, пестициды, тяжелые металлы, атмосферные поллютанты и т. д.). Во-вторых, всемерное расширение интенсивных технологий выращивания основных сельскохозяйственных культур, обеспечиваемое, с одной стороны, увеличением ксенобиотической «нагрузки» (минеральные удобрения, пестициды, регуляторы роста), а с другой, использованием новых интенсивных высокопродуктивных сортов растений, отличающихся зачастую пониженными в сравнении с традиционными сортами показателями резистентности по отношению к распространенным фитопатогенам и насекомым-вредителям, а также трансгенных технологий, приводит к существенному изменению показателей не только основного (белки, липиды, углеводы), но и вторичного метаболизма культивируемых в условиях отдельных агроэкосистем растений. В то же время, многие вторичные метаболиты, к числу которых принадлежат и стероидные гликоалкалоиды

СГА) растений картофеля, представляют собой группу потенциально небезопасных веществ, могущих оказать неблагоприятное воздействие на организм человека. Характерно, что обмен вторичных метаболитов растений отличается крайней лабильностью и чутко «откликается» на воздействие фитострессорных факторов окружающей среды различного генезиса, в том числе и антропогенных, посредством оперативных изменений количественного/качественного состава указанных метаболитов. Наконец, в третьих, именно вторичным метаболитам принадлежит существенная, а то и определяющая роль в обеспечении многих показателей качества растениеводческой продукции, поскольку в группе вторичных метаболитов имеются модификаторы вкуса, токсичные вещества, канцерогены, мутагены и т. п., биологическая активность которых в норме пренебрежимо мала в силу нахождения в растениях в следовых количествах. В то же время, повышение содержания (или изменение стехиометрического соотношения) вторичных метаболитов в растениях, полученных в рамках агроэкосистем, подвергшихся воздействию негативных факторов окружающей среды, представляет потенциальную опасность в токсикологическом аспекте.

Приведенное явилось основанием для усиления роли современных физико-химических методов исследования, предоставляющих информацию качественного и количественного характера о вторичных метаболитахвычислительных методов, позволяющих моделировать процессы биосинтеза и деструкции вторичных метаболитов в тканях растений в процессе онтогенетического развития растений конкретных сортов и возможные механизмы токсического действия указанных метаболитов на организмы млекопитающих, а также развитию основополагающих агроэкологических концепций, позволяющих моделировать взаимоотношения в системах типа «абиотические/биотические факторы окружающей среды (I) растение (II) продукция растениеводства (III)».

Настоящее исследование, посвященное исследованию вторичных метаболитов растений картофеля различных сортов, культивируемых в условиях Лесостепной зоны, проведено в соответствии с одним из базовых направлений современной агроэкологии, заключающемся в детальном изучении общих и специфических биохимических механизмов онтогенетической адаптации культурных растений с участием вторичных метаболитов в целях проведения комплексной оценки их функционального состояния в различных агроэкосистемах и создания предпосылок для получения экологически чистой продукции картофелеводства.

Теоретическим основанием данного исследования (в биохимическом аспекте) явился разнообразный фактический материал, подтверждающий то факт, что, во-первых, каждому виду (а, возможно, и сорту) растений присущ определенный, генетически обусловленный тип обмена веществ, в результате чего растение синтезирует свойственные ему соединения, являющиеся его биохимическим признаком «маркером», и, во-вторых, факторы окружающей среды оказывают выраженное влияние на биохимический состав растений и в первую очередь на вторичный обмен.

Для разрешения поставленных задач разработаны новые методические подходы в области аналитической биохимии вторичных метаболитов растений картофеля, а также некоторых пестицидов, с использованием современного физико-химического метода исследования — биологической мягкоионизационной масс-спектрометрии (МИ-МС). Впервые внедрен в практику нетрудоемкий и высокочувствительный физико-химический метод исследования, позволяющий определять в тканях растений картофеля основные продукты вторичного обмена, влияющие на качественные показатели последнего, его токсичность для млекопитающих, а также уровень резистентности к болезням и вредителям.

С помощью биологической масс-спектрометрии изучены в сравнительном аспекте направление и характер влияния факторов окружающей среды на количественные и качественные параметры вторичных метаболитов растений картофеля различных сортов, характерных для Лесостепной зоны и обладающих токсическими свойствами по отношению к человеку и отвечающих за уровень резистентности к болезням и вредителям. Проведена классификация районированных сортов картофеля исходя из биохимических параметров вторичного обмена (рис. 66). На основании данных о качественных/количественных параметрах вторичного обмена растений картофеля построена концепция биоиндикации состояния фитоагроэкосистем, позволяющая: а) повысить качественные показатели продукции растениеводстваб) совершенствовать меры по экологизации земледелия посредством снижения пестицидной нагрузки вследствие использования сортов растений с оптимизированным для конкретных природно-климатических условий, характерных для данного региона техногенных ксенобиотиков и типов грунтов, набором вторичных метаболитовв) проводить селекцию на повышение уровня резистентности к абиотическим стрессорным факторам, вредителям и болезням с учетом особенностей вторичного обмена растений. Весьма перспективным представляется разработанный автором метод экотоксикологической оценки состояния растений картофеля в агроэкологических системах на основе масс-спектрометрического исследования реактивности ферментативных систем гидролитической деструкции стероидных гликоалкалоидов (СГА) картофеля.

Новые методические подходы апробированы в лабораторных и производственных условиях, одобрены НТС Министерства аграрной политики Украины, защищены авторским свидетельством и используются при разработке и внедрении комплексных планов развития растениеводства Лесостепной зоны в аспекте предотвращения ксенобиотического и биоценотического загрязнения агроэкологических системразработке мероприятий по получению высококачественного продовольственного

Рис. 66. Схема биохимической ответной реакции растений картофеля разноустойчивых сортов на воздействие абиотических и биотических стрессорных факторов окружающей средьв аспекте метаболизма стероидных гликоалкалоидов (СГА) картофеля с использованием экологически чистых технологийотборе межвидовых гибридов (S.tuberosum х дикорастущие виды рода Solarium) растений картофеля в качестве исходного материала для дальнейшего использования в селекционном процессепрогнозировании уровней резистентности растений картофеля различных сортов и перспективных гибридов по отношению к фитопатогенам и вредителям в условиях Лесостепной зоныоценке качественных параметров продовольственного картофеля в пищевой и перерабатывающей промышленности.

Если практическая значимость работы, состоящая, по сути, в прогнозировании потенциальной токсичности продукции картофелеводства для потребителя и научно-обоснованном выборе сортов картофеля, оптимизированных для условий конкретных агроэкологических систем, сезонов вегетации, технологий выращивания и т. д., вряд ли может вызвать сомнения, то фундаментальные аспекты исследования представляются не столь самоочевидными в силу не разработанности темы, находящейся в самом начале развития.

Как уже указывалось, в последнее время активно развиваются представления о том, что ни один отдельно взятый биохимический фактор (Fb) не может быть ответственным всецело за, например, физиологические адаптационные реакции растений (Rod), оптимизирующие уровень жизнедеятельности последних в условиях агроэкосистем. Ответственными за указанные реакции являются временные комплексы «кластеры» биохимических факторов, обусловленные сочетанием абиотических/биотических воздействий окружающей среды, характерных для конкретной агроэкосистемы в определенный момент времени (Rad= Fb +. Ft]). Отслеживание во времени, в нашем случае на протяжении вегетационных сезонов, образования, модификации и деструкции указанных биохимических «кластеров» и установление их связей с факторами окружающей среды является весьма актуальным в теоретическом плане, но требует серьезного повышения уровня методического обеспечения в плане разработки новых методов для быстрого получения обширного и разнообразного массива биохимических параметров, характеризующих отдельное растение в определенные моменты времени. Конечной целью данного направления является разработка компьютерного комплекса, сопряженного с датчиками биохимического статуса растения в условиях агроэкосистем для оперативного отслеживания реакции растения на непрерывно изменяющиеся условия окружающей среды. Первой работой в этой области исследования явилась работа У. Ресснера и сотр. (Roessner U. et al., 2001 [455]), показавших перспективность применения компьютерной обработки разнообразной и на первый взгляд разрозненной биохимической информации для характеристики трансгенных и обычных сортов картофеля. Авторы применили комплекс «масс-спектрометр+мощный компьютер» в целях получения недостижимой с помощью классических методических подходов информации о связях между кластерами различных биохимических параметров растений и направленностью и степенями проявления физиологических процессов в растениях, например устойчивостью к водным, температурным и солевым стрессам, уровнями резистентности к вредителям и фитопатогенам и т. д.

Создание аналогичных отечественных компьютерных комплексов представляется автору чрезвычайно перспективным, поскольку позволит в перспективе прогнозировать параметры качества продукции растениеводства и уровни резистентности растений различных сортов к вредителям и болезням в условиях различающихся агроэкосистем, сезонов вегетации, ксенобиотической нагрузки и т. д.

Показать весь текст

Список литературы

  1. P.M. Изучение последствий аварии на Чернобыльской АЭС // Радиобиология.-1993,-Т.ЗЗ, № 1 .-С.З-14.
  2. Ю.В. Тяжелые металлы в почвах и растениях.-М.: ВО «Агропромиздат», 1987.-142 с.
  3. Ю.Г. Моделирование биологических систем.-К.: Наукова думка, 1977.-260 с.
  4. И.Б. Экспресс-оценка эмбриотокси-ческих свойств веществ в культуре предымплантационных зародышей // Гигиена и санитария.-1992.-№ 5−6.-С.68−69.
  5. А.Х., Заичкина С. И., Рузиева З. Х., Ганасси Е. Э. Исследование защитного действия природного препарата антоциана (пеларгонидин-3,5-диглюкозид)//Радиобиология.-1993.-Т.ЗЗ, № 3.-С.433−435.
  6. Л.С., Головко Э. А. Биологическая активность сапонинов // Физиология и биохимия культ, растений.-1998.-Т.30, № 2.-С.112−123.
  7. Баш О.Л., Демюв О. Т. Морфолопчна i бюх1м1чна мшливють Ceratodon purpureus (Hedw.) Brid. 11 Укр. ботан. журн.-1998.-Т.55, № 5.-С.499−504.
  8. И.Т., Бобейко В. А., Слепцова Т. Г., Кинтя П. К. Концентрация а-томатина в растениях томатов в зависимости от генотипа и условий среды / Изв. АН МССР. Сер.биол. и хим. наук. 1988. — № 6. — С.22−24.
  9. В.А. Биологическое действие растительных фенольных соединений.-Киев: Наукова думка, 1976.-260 с.
  10. М. Введение в химическую экологию. М.: Мир, 1978. -246 с.
  11. Баян дина И. И. Изменчивость содержания биологически активных веществ у интродукционных популяций зверобоя продырявленного в сравнении с сортом Золотодолинским // Сибирский экологический журнал.-1999.-№ 3.-С.219−225.
  12. В.П., Фендюр Л. М., Пересипкша Т. М. Вплив аерогенного забруднення навколишнього середовища на вмют пролшу в листках декоративних квггкових рослин // Укр. ботан. журн.-1995.-Т.52, № 6.-С.839−844.
  13. Дж., Мансфильд Дж. Фитоалексины.-К.: Наукова думка, 1983.-320 с.
  14. Л.Н. Клеточный цикл и образование алкалоидов в растениях // Биол. науки.- 1988, — № 7.-С. 17−20.
  15. Биофизика: Практикум / Под. ред.П. Г. Богача.-К: Вища школа, 1983.-150 с.
  16. Биологически активные вещества лекарственных растений // Георгиевский В. П., Комиссаренко Н. Ф., Дмитрук С.Е.-Новосибирск: Наука, Сиб. отд-ние, 1990.-333 с.
  17. Биохимия фенольных соединений // Под ред. Д.Харборна.-М.: Мир, 1968.- 451 с.
  18. А.В. Биохимическая эволюция цветковых растений.-М.: Наука, 1966.-327 с.
  19. А., Шутый Л. Фенольные соединения растительного происхождения.-М.: Мир, 1971.-175 с.
  20. Бленда В. П, Осипчук А. А, Положенець В. М, 1ващенко I.B. Вивчення pcmi фенольних сполук у стшкоси картоши проти мокро!" гнил1 // Картоплярство, — 1995. Вип.26.-С.100−102.
  21. Ботанико-фармакогностический словарь: Справочное пособие // Под ред. К. Ф. Блиновой, Г. П. Яковлева М.: Высшая школа, 1990.-272 с.
  22. Г. Биохимия природных пигментов.-М.: Мир, 1986.-422с.
  23. К.З. Пути создания высокопродуктивных сортов, устойчивых к ряду патогенов // Перспективы развития научных исследований по картофелеводству (Сб. тез. научн. конф, Самохваловичи, 34 августа 1993).-Минск, 1993.-С.20−22.
  24. Н.И. Иммунитет растений к инфекционным заболеваниям.-М.: Наука, 1986.-520 с.
  25. Вайшля О. Б, Лапина Г. В, Москвитина Н. С. О возможности использования физиолого-биохимических показателей листьев осины (.Populus tremula L.) в ранней биоиндикации состояния экосистем // Сибирский экологический журнал,-1999.-№ 3.-С.261−269.
  26. И.М. Действие излучений на растения.-М.: Изд-во АН СССР, 1962, — 224 с.
  27. Ватти К. А, Тихомирова М. М. Адаптация и мутагенез // Радиационный мутагенез и его роль в эволюции и селекции.-М.: Наука, 1987.-С.127−142.
  28. Веселова Т. В, Веселовский В. А, Власенко В. В, Мацкивский В. И, Пеньков Ф. М, Чернавский Д. С. Вариабельность как тест перехода клетки в состояние стресса в условиях интоксикации // Физиология растений.-1990.-Т.37, № 4.-С.733−738.
  29. Веселова Т. В, Веселовский В. А, Чернавский Д. С. Стресс у растений (Биофизический подход).-М.: Изд-во Моск. ун-та, 1993.-144 с.
  30. Веселовский И. А, Бойко Е. С. Химический состав и вкус картофеля // Картофель и овощи. 1972. — № 6. — С. 15−16.
  31. Вечер А. С, Василькевич О. К, Решетников В. Н, Боярышина J1.B. О содержании соланина в важнейших и новых сортах картофеля БССР // ДАН БССР.- 1967. T. l 1, N4. — С. 362 — 363.
  32. Вшшченко А. Н, Коцюбинська Н. П. BioxiMinm аспекта адаптащ"1 рослин до антропогенних чинниюв довюлля // Тез. Украшського 6ioxiMi4Horo з’Тзду (вересень, 1997).-Кшв, 1997.-T.III.-С.86−87.
  33. В1тенко В. А, Осипчук А. А, Кучко А. А. Селекщя i насшництво картошп. К.: Урожай, 1988.-264 с.
  34. М.Ю. Коротю пщсумки та завдання досл1джень i3 ф1зюлоги та 6ioxiMii картошп. Картоплярство. — 1994. — Вип.25. — С. 14.
  35. П.А. Научные исследования и задачи по проблеме «Биологическая роль микроэлементов в жизни растений, животных и человека // Микроэлементы в жизни растений, животных и человека.- К.: Наукова думка, 1964. 324 с.
  36. Власюк П. А, Власенко Н. Е, Мицко В. Н. Химический состав картофеля и пути улучшения его качества. К.: Наукова думка, 1979. — 195 с.
  37. Влияние загрязнений воздуха на растительность. Причины. Воздействие. Ответные меры // Под ред. Х. Г. Десслера. М.: Лесная промышленность, 1981. — 184 с.
  38. Волхонская Т. А, Шкель Н. М, Триль В. М. Фенольные соединения Pentaphylloides fruticosa (L). O. Schwarz в природе и в культуре // Сибирский экологический журнал.-1999.-№ 3.-С.231−236.
  39. Т.П. Биохимические подходы к познанию биоразнообразия растительного мира // Сибирский экологический журнал.-1999.-№ 3.-С.207−211.
  40. В.Ф., Ладыгина М. Е., Хандобина Л. М. Большой практикум по физиологии растений. Фотосинтез. Дыхание.-М.: Высшая школа, 1975.-392 с.
  41. М.М. Б1ялапчный i экалапчный асабл1васц. бульбы // Ф1з1ялопя i 61ях1м1я бульбы. М1нск. — 1979. — С. 19−44.
  42. Н.Ф. Природопользование. Москва: Мысль, 1990. — 364с.
  43. П.А. Пути и перспективы развития физиологии жаро- и засухоустойчивости культурных растений // Сельськохозяйственная биология. 1983.-№ 1.-С. 15−24.
  44. Гомеостаз на различных уровнях организации биосистем.-Новосибирск: Наука, 1991.-232 с.
  45. М.Н. Влияние экологических условий на физиологию культурных растений. Минск: АН БССР, 1962.-382 с.
  46. Н.В. Влияние хронического облучения аварийными выпадениями ЧАЭС на важнейшие функциональные системы растительного организма // Сб. материалов науч. семинара „Экология АЭС“, Одесса, 4−8 октября 1993 г.-М., 1993.-С.59−60.
  47. Н.В., Мацко В. П., Богданов А. П. Оценка биологических последствий радиоактивного загрязнения растений в Белорусской части зоны Чернобыльской АЭС // Сб. материалов науч. семинара „Экология АЭС“, Одесса, 1−10 июня 1991 г.-М., 1992.-С.202−208.
  48. Л.Е. Потенциал естественного генофонда картофеля для селекции // Перспективы развития научных исследований по картофелеводству (Сб. тез. научн. конф., Самохваловичи, 3−4 августа 1993).-Мн, 1993.-С.51.
  49. М.В. Болезни растений и внешняя среда. М.: Изд-во МОИП, 1950, — 119 с.
  50. С.О. Биохимия растений.-Львов: Вища школа, 1975.280 с.
  51. Н.И., Сорокина А. А. Роль геохимических факторов среды в продуцировании растениями биологически активных веществ // Биологическая роль микроэлементов.- М.: Наука, 1983. 238 с.
  52. Д.М. Радиобиология растений. К.: Наукова думка, 1989.-384 с.
  53. Д.М., Коломиец К. Д., Кутлахмедов Ю. А. и др. Антропогенная радионуклидная аномалия и растения.-К.: Лыбидь, 1991.-158 с.
  54. И.Н. Клеточные механизмы пострадиационного восстановления растений. К.: Наукова думка, 1985. — 222 с.
  55. П.И. Возрастные изменения растений и их значение в растениеводстве.-М.: Наука, 1969.-210 с.
  56. . Дж. Защитные механизмы растений.-М.: Колос, 1985.-125 с.
  57. Действие ионизирующей радиации на агробиоценоз // Д. А. Криволуцкий, Ф. А. Тихомиров, Е. А. Федоров и др. М.: Наука, 1988. -240 с.
  58. С.А. Радиоморфозы у растений природной флоры в связи с аварией на Чернобыльской АЭС // Респ. научно-практ. конф. по радиобиологии и радиоэкологии: Тез. докл.- Минск, 1990.-С.189.
  59. Дозиметрическая паспортизация населенных пунктов Украины, подвергшихся радиоактивному загрязнению после Чернобыльской аварии (Сборник 5.).-Киев: Минздрав Украины, 1995.-312 с.226 228
  60. Дричко В. Ф, Писаченко Э. П. Фоновые концентрации Ra, Th и 40К в пахотных почвах и сельскохозяйственных растениях // Экология. -1984. № 2. — С.47−52.
  61. В.И. Гормональний статус, показатели обмена веществ и резистентности у крупного рогатого скота разных пород в онтогенезе.-Дисс.. докт. биол. наук (03.00.13-физиология).-Боровск, 2001.-380 с.
  62. Жунгиету Г. И, Жунгиету И. И. Химическая экология высших растений. Кишинев: Штиинца, 1991. — 200 с.
  63. Журавская А. Н, Кершенгольц Б. М, Курилюк Т. Т, Щербакова Т. М. Энзимологические механизмы адаптации растений к условиям повышенного естественного радиационного фона // Радиационная биология. Радиоэкология.- 1995.-Т.35, № 3.-С.349−355.
  64. А.А. Адаптивный потенциал культурных растений. -Кишинев: Штиинца, 1988. 768 с.
  65. Загальнодозиметрична паспортизащя населених пунктт Укра’ши, яю зазнали радюактивного забруднення теля ЧорнобильськоУ аварп (36ipKa 6.).-Киев: Мшздоров Укра’ши, 1997.-104 с.
  66. М.Н. О функциональной роли фенольных соединений в растениях // Физиология растений.-1992.-Т.39, № 6.-С. 11 971 207.
  67. М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях.-М.: Наука, 1993.-380 с.
  68. М.В. Онтогенез и популяция. Стабильность развития и популяционная изменчивость // Экология.-2001.-№ 3.-С. 164−168.
  69. М.И. Полярографическое определение кислорода в исследованиях по фотосинтезу и дыханию.-JI.: Наука, 1986.-140 с.
  70. Зоз Н.Н., Морозова И. С., Серова Р. Я., Серебряный A.M. Генетическая детерминация способности к адаптивному ответу у растений на примере различных сортов пшеницы // Радиационная биология. Радиоэкология,-1997.-Т.37, № 3.- С. 399−403.
  71. В.Г., Авдей О. В. Резистентность Phytophthora infestans (Mont.) de Вагу к системным фунгицидам // Международный аграрный журнал,-1999.-№ 6.-С.20−22.
  72. А.В., Хотылева Л. В. Генотип и среда в селекции растений. Минск: Наука и техника, 1989. — 191 с.
  73. П.К. Строение и биологическая активность стероидных гликозидов ряда спиростанаи фуростана.-Кишинев: Штиинца, 1987.-141 с.
  74. П.М. Экологические аспекты применения пестицидов в условиях радиоактивного загрязнения почв // Защита растений. Минск.-1998.-Вып.22.-С.63−74.
  75. В.А., Агеец В. Ю., Шмигельская И. Д., Ивашкевич И.И.137
  76. Оценка зависимости коэффициента перехода Cs из почвы в картофель от содержания в почве 137Cs и элементов минерального питания растений // Радиац. биол. Радиоэкол.-1999.-Т.39, № 6.-С.675−682.
  77. О.М., Колядко И. И. Эколого-биохимическая вариабельность сортов и гибридов картофеля // Перспективы развития научных исследований по картофелеводству (Сб. тез. научн. конф., Самохваловичи, 3−4 августа 1993).-Минск, 1993.-С.81−82.
  78. I.B. Стрес рослин: специф1чш та неспециф1чш реакцн адаптацшного синдрому//Укр. бот. журн.-1998.-Т.5, № 6.-С.584−587.
  79. А.Н., Михеев А. Н. Проблема фенотипического стресса и адаптации у растений // Физиология и биохимия культ, растений. 1997. -Т.29, № 2. — С.81−92.
  80. В.П., Юров С. С., Мозговой Е. Г., Кузин A.M. Радиационный гормезис при действии на биоту радона // Радиац. Биология. Сер. Радиоэкология. 1993. — 1993. -Т.ЗЗ, № 2/5. — С.641−644.
  81. A.M. Значение для биоты природных уровней атомной радиации // Успехи совр. биологии.-1995.-Т.115, № 2.-133−140.
  82. A.M. Природный радиоактивный фон и его значение для биосферы Земли.-М.: Наука, 1991.-116 с.
  83. Кукушкина JI, Ромеро И, Петухов В, Дорошенко А, Хромова Л. Экспресс-методы для тестирования картофеля in vitro и in vivo II Межд. с.-х. журнал.-1999.-N 5.- С.58−60.
  84. Кучко А. А, Мицько В. М. Ф1зюлопчш основи формування врожаю i якосп картошп. Дов1ра, 1997.-168 с.
  85. Кучко А. А, Власенко М. Ю, Мицько В. М. Ф1зюлопя та бюх1м1я картошп.- К.: Дов1ра, 1998.-335 с.
  86. Г. Екологична адаптация и пазарно преструктуриране на растениевъдството-фактор за устойчиво земледелие // Почвозн, агрохим. и екол.-1998.-Т.ЗЗ, № 5.-С.43−45.
  87. Лазурьевский Г. В, Кинтя П. К, Пухальская Е. Ч. и др. Стероидные гликозиды, строение и химическая активность // Химико-фармацевтический журнал.-1977.-№ 6.-С. 19−28.
  88. В. Экология растений.-М.: Мир, 1978.-384 с.
  89. Летучие биологически-активные соединения биогенного происхождения // Ред. М. М. Телитченко, А. Х. Тамбиев. М.: Изд-во МГУ, 1971.-216 с.
  90. Э. Физиология растений.-М.: Мир, 1976.- 580 с.
  91. Литвинович А. В, Павлова О. Ю. Миграция фтора в техногенно-загрязненных почвах аридной зоны // Доклады Россельхозакадемии.-2000.-№ 2.-С.33−34.
  92. М.Я. Биосинтез и метаболизм алкалоидов в растениях. -М.: Наука, 1981.-171 с.
  93. М. Вторичный метаболизм у микроорганизмов, растений и животных.-М.: Мир, 1979.-550 с.
  94. З.М. Вплив стероТдних ппкозщцв на реал1зацпо генетичного потенщалу сорту картопля Льв1в'янка, оздоровленого методом культури ашкальних меристем // Картоплярство. 1995. Вип.26.-С.65−71.
  95. О.Ю. Использование тканевых и клеточных культур в селекции на устойчивость к фитопатогенам // Селекция и семеноводство.-1990.-№ 4.-С.59−62.
  96. Ф.З. Адаптация, профилактика, стресс.- М.: Наука, 1981, — 278 с.
  97. Ф.З. Концепция долговременной адаптации.- М.: Дело, 1993.- 138 с.
  98. Л.В., Озерецковская О. Л. Фитоалексины.-М.: Наука, 1973.-174 с.
  99. Л.В., Озерецковская О. Л. Как растения защищаются от болезней.-М.: Наука, 1985.-192 с.
  100. Л.В., Тектониди И. П. Основы биохимии и технологии хранения картофеля. М.: Колос, 1972. — 206 с.
  101. Методические рекомендации по проведению исследований с картофелем // Под ред. Н. А. Пика. К.: УкрНИИКХ, 1983. — 216 с.
  102. Методические указания по оценке селекционного материала картофеля на устойчивость к фитофторозу, ризоктониозу, бактериальным болезням и механическим повреждениям.-М.: ВАСХНИИЛ, 1980.-34 с.
  103. Методы биохимического анализа растений / А. И. Ермаков, В. В. Арасимович, Н. П. Ярош, Ю. В. Перуанский, Г. А. Луковникова,
  104. М.И.Иконникова // Под ред. А. И. Ермакова.-З-е изд., перераб. и доп.- Д.: Агропромиздат, 1987.-430 с.
  105. Методы определения токсичности и опасности химических веществ (токсикометрия) / Под ред. И. В. Саноцкого.- М.: Медицина, 1970.344 с.
  106. В.Г. Флавоноиды в онтогенезе растений и их практическое использование.-Новосибирск: Наука, Сиб. отд-ние, 1978.-255 с.
  107. .М., Наумова Л. Г., Злобин Ю. А. Состояние и тенденции развития современной агроэкологии // Итоги науки и техники. Сер. растениеводство. -М.: ВИНИТИ, 1991.- Т. 10.- 185 с.
  108. О.А. Роль биоразнообразия вредных организмов как следствие внедрения сортов интенсивного типа (на примере грибов рода Fusarium) II Пр-во экол. безопасной продукции растениеводства.-1998.-Вып.4.-С.26−32.
  109. А.В. Агроэкологизация сельскохозяйственного землепользования в условиях техногенного загрязнения // Аграрная наука.-2000.-№ 6.-С.11.
  110. А. А., Мухамбетова Л. Х. Математическое моделирование зависимости изменений реакций метаболизма от воздействия факторов окружащей среды // Гигиена и санитария.-1992.-№ 2.-С.64−66.
  111. И.В., Антомонов М. Ю., Раецкая Е. В., Голенкова Л. Г., Непокупная Е. И., Майстренко З. Ю. Математическое моделирование влияния химических загрязнителей на качество сельскохозяйственных культур // Гигиена и санитария.-2000.-№ 4.-С.8−10.
  112. В.И., Мицко В. Н. Гликоалкалоиды картофеля // Физиология и биохимия культ, растений.-1972.-Т.4, № 5.-С.492−498.
  113. В.И., Мицко В. Н. Гликоалкалоиды картофеля.-М.: ВНИИТЭИСХ, 1975.-328 с.
  114. Ю.А. Земледелие как фактор возникновения и разрешения экологических проблем // Аграрная наука.-2000.-№ 6.-С.12−13.
  115. Ю.П. Экология.-М.: Мир, 1986.- Т.1. -328 е.- Т.2.- 376 с.
  116. O.JI. Клеточные и молекулярные механизмы иммунитета картофеля // Регуляция роста и развития картофеля.-М.: ВО „Агропромиздат“, 1990.-С. 131−138.
  117. Озерецковская O. JI, Давыдова М. А, Васюкова Н. И, Метлицкий JI.B. Гликоалкалоиды в здоровом и поврежденном клубне картофеля // ДАН СССР. Сер.биол.- 1971.-Т.196, № 5. С. 1470−1474.
  118. Озерецковская O. JI, Чалова Л. И. Молекулярные и генетические механизмы взаимоотношений между микроорганизмами и растениями. -Пущино, 1989.-С. 178−194.
  119. С.А. Введение в биохимическую экологию.- М.: Изд-во МГУ, 1986. -176 с.
  120. Пересипкша Т. М, Дубова О. В, Фендюр Л. М. Ф1зюлого-6ioxiMi4Hi особливост1 рослин в умовах промислового середовища // Укр. ботан. журн.-1997.-Т.54, № 5.-С.469−473.
  121. В.В. Адаптивные реакции растения. Физико-химический аспект. -К.: Вища школа, 1981. 184 с.
  122. .П. Биохимия сельскохозяйственных растений.-М.: Сельхозиздат, 1966.-380 с.
  123. Полевич О. В, Шперер А. В, Бутенко В. В. Исследование миграции тяжелых токсичных металлов в почвенно-растительном покровесельскохозяйственных угодий // Вестн. Харьковского ун-та.-1998.-№ 402.-С.179−181.
  124. В.М., Иващенко И. М., Бленда В. П. Влияние фенольных соединений на устойчивость клубней картофеля к мокрой бактериальной гнили // Физиология и биохимия культ, растений. 1995.-Т.27, № 4. -С.303−308.
  125. .М. Грунти Сумсько!» област1 // Стан природного середовища та проблеми його охорони на Сумщиш. Книга I. / шд. ред К. К. Карпенко та т.- Суми, 1996.- С.21−32.
  126. Полякова J1.B., Майстренко Г. Г., Крогулевич Р. Е. Изменчивость флавоноидов в популяциях люцерны в связи с селективным давлением отбора при засолении // Сибирский экологический журнал.-1999.-№ 3.-С.251−256.
  127. К., Ромеро И., Кукушкина JI. Оценка сортов на устойчивость к фитофторозу // Межд. с.-х. журнал.-1999.-N 5, — С.60−62.
  128. Г. С., Бузмаков В. В. Производство биологически чистой продукции растениеводства // Аграрная наука.-1999.-№ 12.-С.12−14.
  129. С.М. Биохимия картофеля.-M.-JI.: Изд-во АН СССР, 1947.-226 с.
  130. З.Н., Абдукаримов Д. Т., Ермоленко Л. Г. Биогеохимическая среда и прогнозирование продуктов сельского хозяйства // Сб. тез. V Всесоюзного биохимического съезда.-М.: Наука, 1986.-Т.З.-С.224−225.
  131. JT.B., Сидорова Т. М., Чигрин В. В. Гликозидазная активность листьев пшеницы и устойчивость к ржавчине // Физиология растений.-1983.-Т.30, № 2.-С.384−394.
  132. Ю.С. Прогнозирование безвредных уровней и содержание химических веществ в воздухе рабочей зоны.-М.: Медицина, 1986.-С.44−62.
  133. .А., Арциховская Е. В., Аксенова В. А. Биохимия и физиология иммунитета растений.-М.: Высшая школа, 1975.-320 с.
  134. В.Н. Действие ионизирующего излучения на целостный растительный организм. -М.: Энергоатомиздат, 1981. 120 с.
  135. Сельскохозяйственная радиоэкология // Под ред. Р. М. Алексахина, Н. А. Корнеева. М.: Экология, 1992. — 400 с.
  136. Сельскохозяйственные экосистемы // Под ред. Л. О. Карпачевский. М.: Агропромиздат, 1987.- 223 с.
  137. М.Г., Туржова Е. Б. Способ экспресс-оценки химических веществ с использованием биотестирования // Гигиена и санитария.-1992.-№ 5−6.-С.71 -72.
  138. B.C. Реакция картофеля на острое и хроническое воздействие радиации // Селекция и семеноводство картофеля.-Вып.ХХ1.-М.: НИИКХ, 1975.- С.42−48.
  139. Г. И., Кутепов Е. Н. Приоритетные направления научных исследований по проблеме оценки и прогнозирования влияния факторов риска на здоровье населения // Гигиена и санитария.-1994.-№ 8.-С.3−5.
  140. В.А., Кирюхин В. П. Иследования гликоалкалоидов картофеля // Селекция и семеноводство картофеля. 1975.- N 21.- С. 5−11.
  141. В.Т. Приспособление клеток к неблагоприятным факторам. Характеристика адаптивных ответов // Биополимеры и клетка. -1990.-Т.6, № 4.-С.32−42.
  142. Д.М. Концепция действия малых доз ионизирующих излучений на клетки и ее возможные приложения к трактовке медико-биологических последствий // Радиобиология. 1992. — Т.32, № 3. -С.З 82−400.
  143. А.Г. Агроэкологические основы почвозащитного земледелия.-К.: Урожай, 1994.- 320 с.
  144. С. Растительные «хамелеоны» // Наука и жизнь.-1989.-№ 5.-С.68.
  145. Туржова Е. Б, Сороколетова Е. Ф, Попов В. Б, Архангельская И. Б. Экспресс-оценка химических веществ с использованием комплекса краткосрочных биологических тестов // Гигиена и санитария.-1993.-№ 3.-С.63−64.
  146. Г. В. Механизмы адаптации растений к стрессам // Физиология и биохимия культ, растений. 1979. — Т. 11, № 2. — С.99−107.
  147. Урманцев Ю. А, Гудков Н. М. Проблема специфичности и неспецифичности ответной реакции растений на повреждающее воздействие //Журн. общ. биологии. 1986. -Т.47, № 3. — С.337−349.
  148. B.C., Стружко B.C. Содержание фенольных соединений в условиях антропогенной радионуклидной аномалии // Физиология и биохимия культурных растений.-1996.-Т.28, N4.-C.273−281.
  149. С.И., Трофимяк Т. Б., Блюм Я. Б. Механизмы формирования устойчивости растений к тяжелым металлам // Успехи совр. биологии.-1995 .-Т. 115, № 3 .-С261 -275.
  150. Физиология сельскохозяйственных растений // Под ред. Б. А. Рубина и др. Т. 12 — Физиология картофеля и корнеплодов. М.: Изд-во МГУ, 1971.-375 с.
  151. Физиолого-биохимические и биофизические методы диагностики степени устойчивости растений к патогенам и другим факторам // Под ред. М. Е. Ладыгиной и др.-М.: Изд-во МГУ, 1992.-96 с.
  152. Физиология и биохимия сельскохозяйственных растений // Ред. Н. Н. Третьяков.-М.: Колос, 1998.-639 с.
  153. Ф1зюлопя та 6ioxiMin картошп // А. А. Кучко, М. Ю. Власенко, В. М. Мицько. К.: Дов1ра, 1998. — 335 с.
  154. Дж. Введение в экологическую биохимию.-М.: Мир, 1985.-312 с.
  155. В.В., Бергер В. Я. Некоторые аспекты изучения фенотипических адаптаций // Журн. общей биологии.-1975.-Т.36, № 1.-С.11−25.
  156. П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация.- М.: Мир, 1988.-568 с.
  157. П.П. Биохимическая индикация радиационного воздействия (к метаболическим последствиям аварии на Чернобыльской АЭС) // Влияние низких доз ионизирующей радиации и других факторов / Под ред. М. И. Руднева.-К: Наукова думка, 1994.-С.84−110.
  158. В.В., Розум Л. В., Жигалкина Т. Е., Сидорова Т. М., Запрометов М. Н. Активность гидролитических ферментов у устойчивых и восприимчивых сортов пшеницы при заражении стеблевой ржавчиной // Физиология растений.-1988.-Т.35, № 4.-С.781−787.
  159. Ч1ванов В.Д., Кабанець В. М., Чернявська Т. О., Калшкевич О. М. Мас-спектрометричний cnoci6 прогнозування ефективноси фунгщщцв щодо хвороб картошп: Пат. УкраТни МПК 7 А01С21/00.-№ 2 000 063 550 от 20.06.2000 г.
  160. Н.К., Высочина Г. И., Долгих А. П. Внутри- и межпопуляционная изменчивость содержания биологически активных веществ в растениях Artemisia dracunculus L. 11 Сибирский экологический журнал.-1999.-№ 3.-C.257−260.
  161. Шпаар Д, Шуманн П. Выращивание картофеля. М.: Россельхозакадемия, 1997. — 246 с.
  162. Экспрессные методы определения токсичности и опасности химических веществ / Заугольников С. Д, Кочанов М. М, Лойт А. О, Ставчанский И. И. Л.: Медицина, 1978.- 184 с.
  163. Т.П., Караваев В.А, Солнцев М. К. Особенности метаболизма двух сортов огурца, различающихся по устойчивости к мучнистой росе // Физиология растений.-1993.-Т.40, № 2.-С.218−224.
  164. А.Г. Гомеостаз и его значение в онтогенезе растений // Сельскохозяйственная биология.-1983.-№ 1.-С.25−34.
  165. Якимчук Р. А, Моргун В. В, Логвиненко В. Ф. Генетические последствия радионуклидного загрязнения зоны отчуждения через 13 лет после аварии на Чернобыльской АЭС // Физиология и биохимия культ, растений.-2001.-Т.ЗЗ, № 8.-С.226−231.
  166. О.Н. Инвайронментализм идеология будущего? // Наука в России.- 1994.-№ 2.-С.82−88.
  167. Ahmed S. S, Miiller К. Seasonal changes and the effect of nitrogen-and potash-fertilization on the solanine and a-chaconine content in various parts of the potato plant // Z. Pflanzenernaehr. Bodenkd.-1979.-Jg.l42.-S.275−279.
  168. Abdell D. C, Sporns P. Rapid quantitation of potato glycoalkaloids by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry // Journal of Agricultural and Food Chemistry.-1996.-V.44.- P.2292−2296.
  169. Agelopoulos N.G., Chamberlain К., Pickett J.A. Factors affecting volatile emissions of intact potato plants, Solanum tuberosum: variability quantities and stability of ratios // J. Chem. Ecol.-2000.-V.26, № 2.-P.497−511.
  170. Ahman I., Tuvesson S., Johansson M. Does indole alkaloid gramine confer resistance in barley to aphid Rhopalosiphum padil II J. Chem. Ecol.-2000.-V.26, №l.-P.233−255.
  171. Aldous C.N., Sharma R.P., Salunkhe D.K. Effects of a-chaconine on brain biogenic amines, electroencephalogram, cardiac rates and respiratory response in rats // J. Food Safety.- 1980.-V.2.-P.20−33.
  172. Alkaloids Biochemistry, Ecology, and Medicinal Applications // Eds. M.F.Roberts, M.Wink.- New-York-London: Plenum Press, 1998. — 486 p.
  173. Allen E.H., Kuc J. Steroid alkaloids in the disease resistance of white potato tubers // Phytopathology.-1964.-V.54.-P.886.
  174. Allen E.H., Kuc J. a-Solanine and a-chaconine as fungitoxic compounds in extracts of Irish potato tubers // Phytopathology.-1968.-V.58.-P.776−781.
  175. Ave D.A., Gregory P., Tingey W.M. Aphid repellent sesquiterpenes in glandular trichomes of Solanum berthaultii and S. tuberosum // Entomol. Ex. Appl.-1987.-V.44.-P.131−138.
  176. Azim A., Shaikh H.A., Ahmad R. Effect of feeding grened potatoes on different visceral organs and blood plasma of rabbits // J. Sci. Food Agric.-1982.-V.33.-P. 1275−1279.
  177. Baker D.C., Keeler R.F., Gaffield W. Mechanisms of death in Syrian hamsters gavaged potato sprout material // Toxicologic Pathol.-1988.-V.16.-P.333−339.
  178. Baker D.C., Keeler R.F., Gaffield W. Toxicosis from Steroidal Alkaloids of Solanum Species / Handbook of Natural Toxins.-V.6. Toxicology of Plant and Fungal Toxins // Eds. R.F.Keeler R.F., A.T.Tu.-N.Y. et al.: Marcel Dekker, 1991.-P.71−82.
  179. Bamberg J, Love S, Corsini D, Deahl K. Fine Screening Potato Germplasm for High Leaf and Low Tuber Glycoalkaloids // Abstracts of the 85th Annual Meeting of the Potato Asociation of America (PAA 2001).- (April 22−26, 2001, Florida).- Th.62.
  180. Barnola L. F, Cedeno A, Hasegawa M. Intraindividual variations of volatile terpene contents in Pinus caribaea needles and its possible relationship to Atta laevigata herbivory// Biochem. Systemat. Ecol.-1997.-V.25, № 8.-P.707−716.
  181. Barofsky D.E. Mass spectrometric analyses in agriculture and natural product research // Amenag. et nature.-1999.-№ 134.-P.432−439.
  182. Barz W, Hosel W. The Flavonoids.-London: Chapman and Hall, 1975.-916 p.
  183. Becchi M, Fraisse D. Fast Atom Bombardment and Fast Atom Bombardment Colission-activated Dissociation / Mass-analysed Ion Kinetic Energy Analysis of C-Glycosidic Flavonoids // Biomedical and Environmental Mass Spectrometry.-1989.-V. 18.-P. 122−130.
  184. Belknap W. R, Rickey T. M, Rockhold D.R. Blackspot bruise dependent changes in enzyme activity and gene expression in Lemhi Russet potato // Am. Potato J.-1990.-V.67.-P.253−265.
  185. Bergenstrahle A, Borga P, Johnsson L.M.V. Sterol composition and synthesis in potato tuber discs in relation to glycoalkaloid synthesis // Phytochemistry.-1995.-V.41, N 1.-P.155−161.
  186. Bergers W.W.A. Investigation of the content of phenolic and alkaloidal compounds of gamma irradiation potatoes during storage // Food Chem.-1981.-V.6.-P.47−61.
  187. Bhuva V. S, Parnell A. The effect of site and genotype on the glycoalkaloid content of first and second early potato varieties //J. Natl. Inst. Agric. Bot.-1983.-V.16.-P.229−230.
  188. Bintcliffe E.J.B., Clydesdale A., Draper S.R. Effects of genotype, site and season on the glycoalkaloid content of potato tubers // J. Natl. Inst. Agric. Bot.-1982.-V.16.-P.86−91.
  189. Biochemistry of Plant Secondary Metabolism // Annual Plant Reviews, Vol. 2. Ed. M. Wink.- Sheffield: Academic Press, 1999. 358 p.
  190. Blankemeyer J.Т., Stringer B.K., Rayburn J.R., Bantle J.A., Friedman M. Effect of potato glycoalkaloids a-chaconine and a-solanine on membrane potential of frog embryos // J. Agric. Food Chem.-1992.-V.40.-P.2022−2026.
  191. Blankemeyer J.T., Atherton R., Friedman M. Effect of potato glycoalkaloids a-chaconine and a-solanine on sodium active transport in frog skin // J. Agric. Food Chem.-l995.-V.43.-P.636−639.
  192. Boira H., Blanquer A. Environmental factors affecting chemical variability of essential oils in Thymus piperella L. // Biochem. Systemat. Ecology.-1998.-V.26.-P.811−822.
  193. Boiler T. Hydrolytic enzymes in plant disease resistance / Plant-microbe interactions, molecular and genetic perspectives.-V.2 / Eds. T. Kosuge, E.W.Nester.-New York: Macmillan, 1987.- P.385−413.
  194. Boiler T. Induction of hydrolases as a defense reaction against pathogens // Cellular and Molecular Biology of Plant Stress / Eds. J.L.Key, T.S.Kosuge.-New York: Alan R. Riss, 1998-P.247−262.
  195. Bolshakova M.A., Musatenko L.I., Nevo E., Sytnikl K.M., Pavlicek Т., Beharav A. Environmental abiotic factors effects on the phytohormonal level in leaves of some woody plants // Укр.биохим.журн.-1998.-Т.55, № 6.-С.578−584.
  196. Bolter С.J., Dicke M., Van Loon J.J.A., Visser J.H., Posthumus M.A. Attraction of Colorado potato beetle to herbivore-damaged plants during herbivory and after its termination//!. Chem. Ecol.-1997.-V.23.-P. 1003−1023.
  197. Bolwell J.P., Wojtaszek P. Mechanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defence a broad perspective // Physiol. Mol. Plant Pathology.-1998.-V.51 .-P. 127−147.
  198. Bomer A., Mattis H. Der Solaningehalt der Kartoffeln // Z. Unters. Nahr. Genussm. Gebrauchsgegenstaende.-1924.-V.47.-P.97−127.
  199. Bors J., Fendrich I., Niemann E.G. Strahlenbelastung von Nutzpflanzen // Landwirtschaft-Angewandte Wiessensch. 1979. — H.219.- S. l-158.
  200. Bossi R., Seiden P., Andersen S.M., Jacobsen C.S., Streibig J.C. Analysis of metsulfuron-methyl in soil by liquid chromatography/tandem mass spectrometry. Application to a field dissipation study // J. Agr. and Food Chem.-1999.-V.47, N10.-P.4462−4468
  201. Bostock R.M., Nuckles E., Henfling J.W.D.M., Kuc J.A. Effects of potato tuber age and storage on sesquiterpenoid stress metabolite accumulation, and responce to abscisic and arachidonic acids // Phythopathology.-1983.-V.73.-P.435−438.
  202. Bowers M.D. Variation in iridoid glycosides in a population of Plantago patagonica Jacq. (Plantaginaceae) in Colorado // Biochem. Systems. Ecol.-1996.-V.24.-P.207−210.
  203. Bowers M.D., Collinge S.K., Gamble S.E., Schmitt J. Effect of genotype, habitat, seasonal variation on iridoid glycoside content of Plantago lanceolata (Plantaginaceae) and the implications for insect herbivores // Oecologia.-l 998.-V.91 .-P.201 -207.
  204. Bowers M.D., Stamp N.E. Chemical variation within and between individuals of Plantago lanceolata (Plantaginaceae) // J. Chem. Ecol.-1992.-V.18.-P.-985−995.
  205. Bowyer P., Clarke B.R., Lunness P., Daniels M.J., Osbourn A.E. Host Range of a Plant Pathogenic Fungus Determined by a Saponin Detoxifying Enzyme // Science.-1995.-V.267.-20 January.-P.371−373.
  206. Brown C.R., Wrolstad R., Clevidence B. Genetic Variation in Potato with High Levels of Red and Blue Anthocyanins // Abstracts of the 85th Annual
  207. Meeting of the Potato Asociation of America (PAA 2001).- (April 22−26, 2001, Florida).- Th.66.
  208. Brown M.S., McDonald G.M., Friedman M. Sampling leaves of young potato (Solarium tuberosum) plants for glycoalkaloids analysis // J. Agr. Food Chem.-1999.-V.47, № 6.-P.2331−2334.
  209. Bushway R.J., Bureau J.L., McGann D.F. a-Chaconine and a-Solanine Content of Potato Peel Products // J. Food Sci.-1983.-V.48.-P.84−86.
  210. Bushway R.J., Ponnampalam R. a-Chaconine and a-Solanine Content of Potato Products and Their Stability During Several Modes of Cooking // J. Agric. Food Chem.-1981.-V.29.-P.814−817.
  211. Bushway R.J., Savage S.A., Ferguson B.S. Inhibition of Acetyl Cholinesterase by Solanaceous Glycoalkaloid and Alkaloids // Am. Potato J.-1987.-V.64.-P.409−413.
  212. Caddie L.S., Stelzig D.A., Harper K.L., Young R.J. Thin-layer chromatographic system for identification and quantification of potato tuber glycoalkaloids // J. Agric. Food Chem.-1978.-V.26.-P. 1453−1454.
  213. Camire M.E., Zhao J., Dougherty M.P., Bushway R.J. In vitro binding of benzo (a)pyrene by extruded potato peel // J. Agric. Food Chem.-1995.-V.43.-P.970−973.
  214. Castoria L., Fanelli C., Fabbri A.A., Passi S. Metabolism of arachidonic acid involved in its eliciting activity in potato tuber // Physiol. Mol. Plant Pathology.-1992.-V.41 .-P. 127−137.
  215. Cham B.E., Wilson L. HPLC of glycoalkaloids from Solanum sodomaeum II Planta Med.-1987.-P.59−62.
  216. Cham B.E., Daunter B. Solasodine glycosides. Selective cytotoxicity for cancer cells and inhibition of cytotoxicity by rhamnose in mice with Sarcoma 180 // Cancer Lett.-1990.-V.55.-P.221−225.
  217. Cham B. E, Daunter B, Evans R.A. Topical treatment of malignant and premalignant skin lesions by very low concentrations of a standart mixture (ВЕС) of solasodine glycosides // Cancer Lett.- 1991.-V.59.-P.55−58.
  218. Chaube S. J, Swinyard C.A. Teratological and toxicological studies of alkaloidal and phenolic compounds from Solanum tuberosum L. // Toxicol. Appl. Pharmacol.-1976.-V.36.-P.227−237.
  219. Chazi V, Matthess D.P. Quantitative inhibitory effect of steroidal alkaloids: relative involvement of aglycones and sugar moieties on lettuce seed radicle elongation // Bot.Ganz. 1990. — V. 151, № 1. — P. 38−40.
  220. Chong-Ren Yang, Osamu Tanaka Advances in Plant Glycosides, Chemistry and Biology // Studies in Plant Science.-V.6.- Amsterdam: Elsevier Scince B. V, 1999. -428 p.
  221. Cieslik E, Praznik E. Changes of glycoalakaloid content in potato tubers of selected varieties during vegetation and storage // Pol. J. Food Nutrit. Sc.-1998.-V.7, N3.- P.417−422.
  222. Claringbold W.D.B, Few J. D, Brace C. J, Renwick J.H. The disposition and metabolism of H.-solasodine in man and Syrian hamster // J. Steroid Biochem.-l 980.-V. 13.-P.889−895.
  223. Coakley S. M, Scherm H, Chakraborty S. Climate change and plant disease management // Annu. Rev. Phytopathol.-l 999.-V.37.-P.399−426.
  224. Coelho R. M, De Sousa M. C, Sarragiotto M.H. Steroidal alkaloid glycosides from Solanum orbignianum II Phytochemistry.-1998.-V.49, № 3.-P.893−897.
  225. Colon L. T, Budding D.J. Resistance to late blight (Phytophthora infestans) in ten wild Solanum species // Euphytica.-1988.-V.37.-P.77−86.
  226. Cortes F., Domingues J., Mateos S. et al. Evidence for adaptive response to radiation damage in plant cells conditioned with X-rays or incorporated tritium// Int. J. Radiat. Biol.-1990.-V.57, № 3.-P.537−548.
  227. Coxon D.T. Methodology for glycoalkaloid analysis // American Potato J.-1984.-V.61 .-P. 169−183.
  228. Creelman R.A., Mullet J.E. Biosynthesis and action of jasmonates in plants // Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant Mol. Biol.-1997.-V.48.-P.355−381.
  229. Cronk T.C., Kuhn G.D., McArdle F.J. The influence of stage of maturity, level of nitrogen fertilization and storage on the concentration of solanine in tubers of three potato cultivars // Bull. Environ. Contam. Toxicol.-1974.-V.l 1,-P.163−168.
  230. Cullis C.A. Molecular aspects of the environmental induction of heritable changes in flax // Heredity.-1977.-V.38.-P.129−154.
  231. Dale M.F.B., Griffiths D.W., Bain H, Todd D. Glycoalkaloid Increase in Solanum tuberosum on Exposure to Light // Ann. Appl. Biol. 1993. -V.123. -P.411−418.
  232. Dale M.F.B., Griffiths W., Bain H. Glycoalkaloids in potatoes-shedding light on an important problem // Asp.Appl.Biol. 1992.-V.33.-P.221−227.
  233. Dale M.F.B., Griffiths W., Bain H., Todd D., Goodman B.A. The effect of gamma irradiation on glycoalkaloid and chlorophyll synthesis in seven potato cultivars // J.Sci. Food agric. 1997.-V.75.-P.141−147.
  234. Dao L., Friedman M. Chlorophyll, chlorogenic acid, glycoalkaloid, and protease inhibitor content of fresh and green potatoes // J.Agric.Food Chem.-1994.-V.42.-P.633−639.
  235. Dao L, Friedman M. Comparison of glycoalkaloid content of fresh and freeze-dried potato leaves determined by HPLC and colorimetry // J. Agric. Food Chem.-1996.-V.44.-P.2287−2291.
  236. Davies A.M.C, Blincow P.J. Glycoalkaloid Content of Potatoes and Potato Products Sold in the UK // J.Sci. Food Agric. 1984. — V.35. — P.535−537.
  237. De Maine M. J, Bain H, Joyce J.A.L. Changes in the tuber glycoalkaloid content of potato cultivars on exposure to light // J. Agric. Sci. Camb.-1988.-V.l 1.-P.57−58.
  238. Deahl K.A. Study of tie relationship of lateblight resistance to glycoalkaloid content in fifteen potato clones // Amer. Potato J. 1973. -V.50. -P. 248−249.
  239. Dean B. B, Jackowiak N, Nagle M, Pavek J, Corsini D. Blackspot pigment development of resistant and susceptible Solanum tuberosum L. genotypes at harvest and during storage measured by three methods of evaluation // Am. Potato J.-1993.-V.70.-P.201−217.
  240. Dickens J.C. Sexual maturation and temporal variation of neural responses in adult Colorado potato beetles to volatiles emitted by potato plants // J. Chem. Ecol.-2000.-V.26, № 5.-P.1265−1279.
  241. Drager B. Identification and quantification of calystegines, polyhydroxyl nortropane alkaloids // Phytochem. Anal.-1995.-V.6.-P.31−37.
  242. Driedger D.R., Sporns P. Glycoalkaloid concentration in by-products of potato extraction as measured by matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry // J. Food Processing and Preservation.-1999.-V.23, N5.-P.377−390.
  243. Duan G.M. Inhibition of potato glycoalkaloids to human blood cholinesterase // Chinese Biochem. J.-1994.-V.10.-P.575−578.
  244. Dwelle R.B., Kleinkopf G.E., Pavek J.J. Stomatal conductance and gross photosynthesis of potato (Solarium tuberosum L.) as influenced by irradiance temperature and growth stage // Potato Res.-1981-V.24.-P.49−59.
  245. Eanes W.F. Analysis of selection on enzyme polymorphisme // Annu. Rev. Ecol. Syst.-1999.-V.30.-P.301−326.
  246. Edwards E.J., Cobb A.H. Improved high-performance liquid chromatographic method for the analysis of potato Solarium tuberosum) glycoalkaloids // J. Agric. Food Chem.-1996.-V.44.-P.2705−2709.
  247. Edwards E.J., Cobb A.H. The accumulation of glycoalkaloids and chlorophyll in stored tubers /Proceedings of the European Association of Potato research 13 Trien. Conference, Veldhoven, The Netherlands, Abstract Conference Paper, 1996.-P.41−42.
  248. Edwards E.J., Saint R.E., Cobb A.H. Is there a link between greening and light-enhanced glycoalkaloid accumulation in potato {Solarium tuberosum L.) tubers // J.Sci. Food Argic.-1998.-V.76.-P.327−333.
  249. Entig В., Legrand M. Developments in Plant Pathology / Mechanisms of Plant Defense Responses. -V.2.- Dordrecht, Netherlands: Kluwer Academic, 1993.-458 p.
  250. Ernst W.H.O. Effects of air pollutants in plants.-Cambridge: University press, 1976.-115 p.
  251. Evans S., Buchanan R., Hoffman A. et al. Structural characterization of a glycoalkaloids at the femtomole level by means of four sector tandem mass spectrometry and scanning-array detection. // Organic Mass Spectrometry -1993.-V.28.-P. 289−290.
  252. Faini F., Labbe C., Coll J. Seasonal changes in chemical composition of epicuticular waxes from the leaves of Baccaris linearis II Biochem. Syst. Ecol.-1999.-V.27.-P.673−679.
  253. Fang W.-C., Kao C.H. Enhanced peroxidase activity in rice leaves in responce to excess iron, copper and zinc // Plant Sci.-2000.-V.158.-P.71−76.
  254. Fewell A.M., Roddick J.G. Interactive Antifungal Activity of the Glycoalkaloids a-Solanine and a-Chaconine // Phytochemistry.-1993.-V.33.-P.323−328.
  255. Fewell A.M., Roddick J.G., Weissenberg M. Interaction Between the Glycoalkaloids Solasonine and Solamargine in relation to Inhibition of Fungal Growth // Phytochemistry. 1994. V.37, N.4. — P. 1007−1011.
  256. Fitzpatrick T.J., Herb S.F., Osman S.F., McDermott J.A. Potato Glycoalkaloids. Increases and Variations of Ratios in Aged Slices Over Prolonged Storage // Am. Potato J.-1977.-V.54.-P.539−544.
  257. Friedman M., Rayburn J.R., Bantle J.A. Developmental toxicology of potato alkaloids in the frog embryo teratogenesis assay Xenopus (FETAX) // Food Chem. Toxicol.-1991.-V.29.-P.537−547.
  258. Friedman M., Rayburn J.R., Bantle J.A. Structural relationships and developmental toxicity of Solanum alkaloids in the frog embryo teratogenesis assay -Xenopus И J. Agric. Food Chem. -1992.-V.40.-P. 1617−1624.
  259. Friedman M., Dao L. Distribution of Glycoalkaloids in Potato Plants and Commercial Potato Products // J.Agric.Food Chem.-1992.-V.40.-P.419−423.
  260. Friedman M., Henika P.R. Absence of Genotoxicity of Potato Alkaloids a-Chaconine, a-Solanine and Solanidine in the Ames Salmonella and Adult and Foetal Erythrocyte Micronucleus Assays // Food Chem. Toxicol.-1992,-V.30.-P.689−694.
  261. Friedman M., McDonald G., Haddon W.F. Kinetics of Acid-Catalyzed Hydrolysis of Potato Glycoalkaloids of a-Chaconine and a-Solanine // J. Agric. Food Chem. 1993. — V.41. — P.1397−1406.
  262. Friedman M., Henika P., Mackey B.E. Feeding of potato, tomato, and eggplant alkaloids affects food consumption and body and liver weights in mice // J. Nutr.-1996.-V. 126.-P.989−999.
  263. Friedman M. Chemistry, Biochemistry, and Dietary Role of Potato Polyphenols. A review // J. Agric. and Food Chemistry.-1997.-V.45, № 5.-P.1523−1540.
  264. Friedman M., McDonald G.M. Potato Glycoalkaloids: Chemistry, Analysis, Safety, and Plant Physiology // Critical Reviews in Plant Sciences.-1997.-V.16, № 1.-P.55−132.
  265. Gaffield W, Keeler R.F. Induction of terata in hamsters by solanidane alkaloids derived from Solanum tuberosum II Chem. Res. Toxicol.-1996.-V.9.-P.426−433.
  266. Garcia-Plazaola J. I, Artetxe U, Becerril J.M. Diurnal changes in antioxidant and carotenoid composition in the Mediterranean schlerophyll tree Quercus ilex (L) during winter // Plant Sci.-1999.-V.143.-P.125−133.
  267. Gatz C. Chemical control of gene expression // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant. Mol. Biol.-1997.-V.48.-P.89−108.
  268. Gibson R. W, Pickett J.A. Wild potato repels aphids by release of aphid alarm pheromone // Nature.-1983.-V.302.-P.608−609.
  269. Giusti M. M, Wrolstad R.E. Characterization of red radish anthocyanins // J. Food Sci.-1996.-V.61, № 2.-P.322−326.
  270. Gosselin B, Mondy N. I, Evans W.D. Effect of method of irrigation on the total glycoalkaloid and nitrate-nitrogen content of Rosa potatoes // American Potato J.-1988.-V.65.-P.99−103.
  271. Gregory P, Sinden S. L, Osman S. F, Tingey W. M, Chessin D.A. Glycoalkaloids of Wild, Tuber-Bearing Solanum Species // J. Agric. and Food Chem.-1981.-V.29.-P.212−215.
  272. Griffiths D. W, Dale M.F.B, Bain H. The Effect of Cultivar, Maturity and Storage on Photo-Induced Changes in the Total Glycoalkaloid and Chlorophyll
  273. Contents of Potatoes (Solanum tuberosum) II Plant Science. 1994. -V.98. -P.103−109.
  274. Griffiths D.W., Bain H., Dale M.F.B. Photo-induced changes in the total chlorogenic acid content of potato (Solanum tuberosum L.) tubers // J.Sci.Food Agric.-1995.-V.68.-P.105−110.
  275. Griffiths D.W., Bain H., Deighton N., Robertson G.W., Finlay M., Dale B. Photo-induced synthesis of tomatidenol-based glycoalkaloids in Solanum phureja tubers // Phytochemistry.-2000.-V.53.-P.739−745.
  276. Groen K., Pereboom-De Fauw D.P.K.H., Besamusca P., Beekhof P.K., Speijers G.J.A., Derks H.J.G.M. Bioavailability and Disposition of 3h-Solanine in Rat and Hamster // Xenobiotica.-l993.-V.23.-P.995−1005.
  277. Gsik A. Accumulation of proline and pattern of a-amino acids in sugar beet plants in response to osmotic, water and salt stress // Environ Experim. Botany.-1996.-V.36, №l.-P.29−38.
  278. Gull D.D., Isenberg F.M. Light burn and off-flavour Development in Potato Tubers Exposed to fluorescent Light // Proc. Am. Soc. Hort. Sci.-1958.-V.71.-P.446.
  279. Gull D.D., Isenberg F.M. Chlorophyll and solanine content and distribution in four varieties of potato tubers // J.Am.Soc.Hort.Sci. I960.- V.75.-P.545−556.
  280. Gunter C., Vasquez A., Gonzalez G. et al. Effect of Solanum glycoalkaloids on potato aphid Macrosiphum euphorbidae: Part II // J. Chem. Ecology.-2000.-V.26, № 5.-P.l 113−1121.
  281. Guseva A.R., Paseshnichenko V.A. Enzymic degradation of potato glycoalkaloids // Biochemistry (Russ.).-1957.-V.22.-P.792−799.
  282. Haase N.U. Glycoalkaloide-einpotentielles Risiko beim Kartoffelverzehr? // Veroff. Arbeitsgemeinsch. Kartoffelforsch. Detmold, 1998. — Bd.20.- S.9−20.
  283. Habeeb A, Butool F. Evaluation of nematocidal properties of some members of the family Solanaceae II Bioresourse Technol.-1996.-V.57.-P.95−97.
  284. Hadacek F, Greger H. Testing of Antifugal Natural products: Methodologies, Comparability of Results and Assay Choice // Phytochemical Analysis.-2000.-V. 11 .-P. 137−147.
  285. Hahn M.G. Microbial elicitors and their receptors in plants // Annu. Rev. Phytopathol.-1996.-V.34.-P.387−412.
  286. Hall R.L. Toxicological burdens and the shifting burden of toxicology // Food Technol. 1992.-V.46, N3. — P. 109−114.
  287. Halverson L. J, Stacey G. Signal Exchange in Plant-Microbe Interactions // Microbiological Reviews.-1986.-V.50, № 2.-P.193−225.
  288. Hammerschmidt R. Phytoalexins: What have we learned after 60 years? // Annu. Rev. Phytopathol.-1999.-V.37.-P.285−306.
  289. Hamouz K, Cepl J, Vokal B, Lachman J. Influence of locality and way of cultivation on the nitrate and glycoalkaloid content in potato tubers // Rostl. Vyroba.-1999.-V.45, № 11.-P.495−501.
  290. Harborne J.B. Plant polyphenols: 1. Anthocyanin production in the cultivated potato // Biochem.J.-1960.-V.74.-P.262−269.
  291. Harborne J.B. Introduction to ecological biochemistry.- N.Y. et al.: Academic Press, 1993.- 452 p.
  292. Harborne J.B. Recent advances in chemical ecology // Nat.Prod.Rep.-1999.-V. 16.-P.509−523.
  293. Harvey M. H, McMillan M, Morgan M.R.A, Chan H.W.S. Solanidine is Present in Sera of Healthy Individuals in Amounts Dependent on Their Dietary Potato Consumption //Hum.Toxicol.-1985.-V.4.-P.187−194.
  294. Harvey M. H, Morris B. A, McMillan M, Marks V. Potato Steroidal alkaloids and neural tube defects: serum concentrations fail to demonstrate a causal relation // Hum. Toxicol.-1986.-V.5.-P.249−253.
  295. Hathway D.E. Molecular Mechanisms of Herbicide Selectivity Oxford University Press: Oxford, 1989.-214 p.
  296. Hazel W.J. Relationship of Potato Leaf Sterols to Development of Potato Late Blight Caused by Phytophthora infestans on U.S. Potato Clones and Breeding Lines // Plant Disease.-1988.-V.72, № 3-P.203−205.
  297. Heather R., Hammerschmidt R. Alkaloid resistance and determinats of pathogenicity of Fusarium sambucinum in potato: Abstr. Can. Phythopathol. Soc. Annu. Meet., Winnipeg, July, 1997 // Can. J. Plant Pathol.-1998.-V.20, № 1,-P.128.
  298. Hellenas K.-E. A Simplified Procedure for Quantification of Potato Glycoalkaloid in Tuber Extracts by HPLC: Comparison with ELISA and a Colorimetric Method // J.Sci. Food Agric.-1986.-V.37.-P.776−782.
  299. Hellenas K.-E. Glycoalkaloids in Potato Tubers Aspects on Analysis, Occurence and Toxicology.- Ph.D. Thesis, Swedish University of Agricultural Sciences, Uppsala, Sweden.- 1994.- 114 p.
  300. Hellenas K.E., Branzell C., Johnsson H., Slanina P. High levels of glycoalkaloids in the established Swedish potato variety Magnum Bonum // J.Sci. Food Agric.-1995.-V.68.-P.249−255.
  301. Hellenas K.E., Branzell C., Johnsson H., Slanina P. Glycoalkaloid content of early potato varieties // J. Sci. Food Agric.-1995.-V.67.-P. 125−128.
  302. Herbert V. Folate and neural tube defects // Nutrition Today.- 1992.-Nov./Dec.- P.30−33.
  303. H gedalB.D., M lgaard P. HPLC analysis of the seasonal and diurnal variation of iridoids in cultivars of Antirrhinum majus II Bichem. Systemat. Ecol.-2000.-V.28.-P.949−962.
  304. Hopkins J. The glycoalkaloids: naturally of interest (but a hot potato) // Food Chem.Toxicol. -1995.-V.4.-P.323−339.
  305. Houben R. J, Brunt K. Determination of Glycoalkaloids in Potato Tubers by Reversed-phase High-performance Liquid Chromatography // J. Chromatogr.-1994.-V.661 .-P. 169−174.
  306. Hung C, Murray J. R, Ohmann S. M, Tong C.B.S. Anthocyanin accumulation during potato tuber development // J.Amer.Soc.Hort.Sci.-1997.-V. 122, N 1.-P.20−23.
  307. Jadhav S. J, Salunkhe D.K. Enzymatic glycosylation of solanidine // J. Food Sci.-1973.-V.38.-P. 1099−1100.
  308. Jadhav S. J, Salunkhe D. K, Wyse R. E, Dalvi R.R. Solanum alkaloids: biosynthesis and inhibition by chemicals // J. Food Sci.- 1973.-V.38.-P.453−455.
  309. Jadhav S. J, Salunkhe D.K. Effects of certain chemicals on photoinduction of chlorophyll and glycoalkaloid synthesis and on sprouting of potato tubers // Can. Inst. Food Sci. Technol. J.-1974.-V.7.-P.178−182.
  310. Jadhav S. J, Salunkhe D.K. Formation and control of chlorophyll and glycoalkaloids in tubers of Solanum tuberosum L. and evaluation of glycoalkaloid toxicity // Adv. Food Res.-1975.-V.21.-P.307−354.
  311. Jadhav S. J, Sharma R. D, Salunkhe D.K. Naturally occuring toxic alkaloids in food // Crit. Rev. Toxicol.-1981.-V.9.-P.21−104.
  312. Jadhav S. J, Kumar A, Chavan J.K. Glycoalkaloids / Potato: Production, Processing, Products // Eds. D.K.Salunkhe, S.S.Kadam, S.J.Jadhav.-Boca Raton, FL: CRC Press, 1991.-P.203−245.
  313. Jadhav S.J., Mazza G., Desai U.T. Postharvest handling and storage / Potato: Production, Processing, Products // Eds. D.K.Salunkhe, S.S.Kadam, S.J.Jadhav.- Boca Raton, FL: CRC Press, 1991.-P.69−109.
  314. Johns Т., Osman S.F. Glycoalkaloids of the Solanum x ajanhuiri domestication complex from western Bolivia // Am. J. Bot.-1985.-V.72.-P.914−916.
  315. Johnston K.A., Pearce R.S. Biochemical and bioassay analysis of resistance of potato (Solanum tuberosum L.) cultivars to attack by the slug Doroceras reticulum (Muller) // Ann. Appl. Biol.-1994.-V.124.-P. 109−131.
  316. Jonasson Т., Olsson K. The influence of glycoalkaloids, chlorogenic acid and sugars on the susceptibility of potato tubers to wireworm // Potato Res.-1994.-V.37.-P.205−216.
  317. Jones P.G., Fenwick G.R. The Glycoalkaloid Content of Some Edible Solanaceous Fruits and Potato Products // J.Sci.Food Agric.-1981.-V.32.-P.419−421.
  318. Kaaber L. Glycoalkaloids, green discoloration and taste development during storage of some potato varieties (Solanum tuberosum L.) // Norw. J. Agric.Sci.-1993 .-V.7.-P.221 -229.
  319. Kaiser W.M., Weiner H., Huber S.C. Nitrate reductase in higher plants: A case study for transduction of environmental stimuli into control of catalytic activity // Physiol. Plantarum.-1999.-V.105, № 2.-P.385−390.
  320. Keiner R., Drager B. Calystegine distribution in potato (Solanum tuberosum) tubers and plants // Plant Sci.-2000.-V.150.-P. 171−179.
  321. Kessman H., Edwards R., Geno P.W., Dixon R.A. Stress responses in alfalfa (Medicago sativa L.). V. Constitutive and elisitor-induced accumulation of isoflavonoid conjugates in cell suspension cultures // Plant Physiol.-1990.-V.94, № 1.-P.227−232.
  322. Keukens E.A.J, De Vrije T, Fabrie C.H.J.P, Demel R. A, Jongen W.M.F, De Kruiff B. Dual specificity of sterol-mediated glycoalkaloid induced membrane disruption // Biochim. et Biophys. Acta. 1992. -V.l 110. — P. 127−136.
  323. Keukens E.A.J, De Vrije T, Van Den Boom C, De Waard P, Plasman H. H, Thiel F, Chupin V, Jongen W.M.F, De Kruiff B. Molecular Basis of Glycoalkaloid Induced Membrane Disruption // Biochim. et Biophys. Acta. -1995. -V.1240. P.216−228.
  324. Knowles N. R, Knowles L.O. Correlations Between Electrolyte Leakage and Degree of Saturation of Polar Lipids from Aged Potato (Solanum tuberosum L.) Tuber Tissue // Annals of Botany.-1989.-V.63.-P.331−338.
  325. Kolbe H, Stephan-Beckmann S. Development, growth and chemical composition of the potato crop (Solanum tuberosum L.). I. Leaf and stem // Potato Res.-1997.-V.40.-P.l 11−129.
  326. Kolbe H, Stephan-Beckmann S. Development, growth and chemical composition of the potato crop (Solanum tuberosum L.). II. Tuber and whole plant // Potato Research. 1997. — V.40. — P. 135−136.
  327. Kozokue N, Kozokue E, Mizuno S. Glycoalkaloids in Potato Plants and Tubers // HortScience.-1987.-V.22.-P.294−296.
  328. Kozokue N, Mizuno S. Studies on Glycoalkaloids of Potatoes. (Part IV). Changes of Glycoalkaloid Content in Four Parts of a Sprouted Potato Tuber and in Potato Tubers During Storage // J. Jpn. Soc. Hort. Sci.-1989.-V.58.- P.231−235.
  329. Kuc J. Compounds from plants that regulate or participate in disease resistance / Bioactive Compounds From Plants (Ciba Foundation Symposium 154).-Chichester et al.: John Wiley & Sons, 1990.-P.213−228.
  330. Kuzano G, Takahashi A, Sugiyama K, Nozoe S. Antifungal properties of Solanum alkaloids // Chem. Pharm. Bull.-1987.-V.35.-P.4862−4867.
  331. Lammerink P. Total glycoalkaloid content of new potato cultivars // N. Z. J. Exp. Agric.-1985.-V.13.-P.413−414.
  332. Lampitt L.H., Bushill J.H., Rooke H.S., Jackson E.M. Solanine. Glycoside of the Potato. II. Its Distribution in the Potato Plant // J.Soc.Chem.Ind.-1943.-V.62.-P.48−51.
  333. Langenheim J.H. Higher plant terpenoids: A phytocentric overview of their ecological role // J. Chem. Ecol.-1994.-V.20--P.1223−1280.
  334. Laurilla J., Laakso I., Valkonen J.P.T., Hiltunen R., Pehu E. Formation of parental-type and novel glycoalkaloids in somatic hybrids between Solanum brevudens and S. tuberosum II Plant Sci.-1996.-V.l 18.-P.145−155.
  335. Lavintman N., Tandecarz J., Cardini C.E. Enzymatic glycosylation of steroid alkaloids on potato tuber // Plant Sci. Lett.-1977.-V.8.-P.65−70.
  336. Lawton M.A., Lamb C.J. Transcriptional activation of plant defense genes by fungal elicitor, wounding, and infection // Mol. Cell. Biol.-1987.-V.7.-P.335−341.
  337. Lazarov K., Werman M.J. Hypocholesterolaemic effect of potato peel as a dietary fiber source // Med. Sci. Res.-1996.-V.24.-P.581−582.
  338. Lebot V., Levesque J. Genetic control of kavalactone chemotypes in Piper methysticaum cultivars // Phytochemistry.-1996.-V.43, N2.-P.397−403.
  339. Lepage M. The lipid components of white potato tubers {Solanum tuberosum) II Lipids.-1968.-V.3.-P.477−481.
  340. Levitt J. Responses of plants to environmental stresses.-V.l.-London-New York: Academic Press Inc., 1980.-498 p.
  341. Lewis C.E. Biochemistry and regulation of anthocyanin synthesis in potato and other tuber-bearing Solanum species // Ph.D. thesis, Dept. of Plant&Plant Microbial Science, Univ. of Canterbury, Christchurch, New Zealand.-1996.
  342. Lewis C.E., Walker J.R.L., Lancaster J.E., Sutton K.H. Determination of anthocyanins, flavonoids and phenolic acids in potatoes. 1. Coloured cultivars of Solanum tuberosum L. 11 J.Sc. Food Agr. 1998. — V.77, N1. — P. 45−57.
  343. Lewosz J., Holubovska M., Urbaniak A., Treder K. Activity of nitrate reductase in potato leaves as an indicator of tolerance to herbicides and abiotic stress // Beitr. Zuchtungsforsch.-1998.-Jg.4, H.2.-S. 109−116.
  344. Liljegren D.R. Glucosylation of solasodine by extracts from Solanum laciniatum II Phytochemistry.-1971.-V.10.-P.3061−3064.
  345. Locci R., Kuc J. Steroid alkaloids as compounds produced by potato tubers under stress // Phytopathology.-1967.-V.57.-P. 1272−1273.
  346. Luckey T.D. Hormesis with ionizing radiation.-New York: Boca Raton CRC Press, 1980.-169 p.
  347. Luescher-Mattli M., Marti E. Microcalorimetric investigations of the binding of flavonoids to synthetic and natural membranes // Thermochim. acta.-1985.-V.85.-P.501−504.
  348. Lydon J., Duke S.O. The role of pesticides on host allelopathy and their effects on allelopathic compounds // Pesticide interactions in crop production: Beneficial and deleterious effects / Ed. By J.Altman.-Boca Raton: CRC Press, 1993, — P.37−56.
  349. Lyon G.D. The biochemical basis of resistance of potatoes to soft rot Erwinia spp. a review // Plant Pathol.-1989.-V.38.-P.313−339.
  350. Macfarlane R.D. et al. 2,2Cf-Plasma Desorption Mass Spectrometry. II A Perspective of New Directions // Biol. Mass Spectrometry.-1994.-V.23.-P. 117−130.
  351. Madamanchi N.R., Kuc J.A. The Fungal Spore and Disease Initiation in Plants and Animals / Eds. G.T.Cole, Hoch H.C.-New-York-London: Plenum Publ. Co., 1991.-P.347−352.
  352. Maga J.A. Total and individual glycoalkaloid composition of stored potato slices // J. Food Process. Preserv.-1981.-V.5.-P.23−28.
  353. Maga J.A. Glycoalkaloids in Solanaceae II In: Food Rev.Int.-1994.-V.10, № 4.-P.385−418.
  354. McCollum G. D, Sinden S.L. Inheritance study of tuber glycoalkaloids in a wild potato, Solanum chacoense Bitter // American Potato J.-1979.-V.56.-P.95−115.
  355. McKee R.K. Factors affecting the toxicity of solanine and related alkaloids to Fusarium coeruleum II J. Gen. Microbiol.-1959.-V.20.-P.686−696.
  356. McMillan M, Thompson J.C. An Outbreak of Suspected Solanine Poisoning in Schoolboys: Examination of Criteria of Solanine Poisoning // Q.J.Med.-1979.-V.48 .-P.227−243.
  357. Mendelson J. Roundap: the world’s biggest-selling herbicide // Ecologyst.-1998.-V.28, № 5.-P.270−278.
  358. Mendgen K, Hahn M, Deising H. Morphogenesis and mechanisms of penetration by plant pathogenic fungi // Annu. Rev. Phytopathol.-1996.-V.34.-P.367−386.
  359. Mock K. K, Davey M, Stevenson M. P, Cottrell J.S. The integration of mass spectrometry into the biochemistry laboratory // Biochem. Soc. Transaction.-1991 .-V. 19.-P.948−953.
  360. Modern Fungicides and Antifungal Compounds II / Eds. H. Lyr, P.E.Russell, H.W.Dehne, H.D.Sisler. Andover, England: Intercept Publishers, 1999.-505 p.
  361. Mondy N. I, Leja M, Gosselin B. Changes in total phenolic, total glycoalkaloid, and ascorbic acid content of potatoes as a result of bruising // J. Food Sci.-1987.-V.52.-P.631−635.
  362. Mondy N.I., Gosselin В. Effect of Peeling on Total Phenols, Total Glycoalkaloids, Discoloration and Flavor of Cooked Potatoes // J. Food Sci.-1988.-V.53.-P.756−759.
  363. Moorby J. The physiology of growth and tuber yield // Potato Crop: The Scientific Basis for Improvement // Ed. P.M.Harris.-New York: Wiley, 1978.-P.153−194.
  364. Morgan M.R.A, McNerney R, Matthew J. A, Coxon D. T, Chan H.W.-S. An Enzyme Linked Immunosorbent Assay for the Total Glycoalkaloids in Potato Tubers // J.Sci. Food Agric.-1983.-V.34.-P.593−598.
  365. Morris S. C, Lee Т.Н. The Toxicity and Teratogenicity of Solanaceae Glycoalkaloids, Particularly Those of the Potato (Solanum tuberosum): A Review //Food Technol. Aust.-1984.-V.36.-P.l 18−124.
  366. Morris S. C, Petermann J.B. Genetic and environmental effects on levels of glycoalkaloids in cultivars of potato (Solanum tuberosum L.) // Food Chem.-1985.-V.18.-P.271−282.
  367. Mozzetti C, Ferraris L, Tamietti G, Matta A. Variation in enzyme activities in leaves and cell suspensions as markers of incompatibility in different Phytophthora -pepper interactions // Physiol. Mol. Plant Pathology.-1995.-V.46.-P.95−107.
  368. Munshi C. B, Mondy N.I. Effect of soil applications of molybdenum on the biochemical composition of Katahdin potatoes: nitrate nitrogen and total glycoalkaloids // J. Agric. Food Chem.-1988.-V.36.-P.688−690.
  369. Nair P.M., Behere A. G, Ramaswamy N.K. Glycoalkaloids of Solanum tuberosum Linn // J.Sci.ind.Res. -1981.-V.40.-P.529−535.
  370. Naito К., Umemura Y., Mori M., Sumida Т., Okada Т., Takamatsu N, Okawa Y., Hayashi K., Saito N., Honda T. Acylated pelargonidin glycosides from a red potato // Phytochemistry.-1998.-V.47, № 1 .-P. 109−112.
  371. Nakagawa H., Kurihara D., Chiba Y., Sato Т., Ogura N. Effect of storage temperature of potato tubers on sprouting, respiration rate, sugar content, and polyphenol oxidase activity // Nippon Nogeikagaku Kaishi.-1995.-V.69.-P.325−330.
  372. Neafsey P.J. Longevity hormesis. A review // Mech. Ageing and Develop.-1990.-V.51, №i .p. 1 -31.
  373. Nemeth E., Tarjan G., Bernath J. Essential oil composition of Achillea crizhmifolia W. et К. I. Identification of chemovarieties grown in wild populations // J.Ess.Oil.Res.-1993 .-V.5, N4.-P.349−357.
  374. Nishie K., Norred W.P., Swain A.P. Pharmacology and Toxicology of Chaconine and Tomatine // Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol.-1975.-V. 13.-P.657−668.
  375. Olivieri F., Godoy A.V., Escande A., Casalongue C.A. Analysis of intercellular washing fluids of potato tubers and detection of increased proteolytic activity upon fungal infection // Physiol. Plantarum.-1998.-V.104, № 2.-P.232−238.
  376. Olsson K. The influence of genotype on the effects of impact damage on the accumulation of glycoalkaloids in potato tubers // Potato Res.-1986.-V.29.-P.l-12.
  377. Olsson L.C., Veit M., Weissenbock G., Bornman J.F. Differential flavonoid response to enchanced UV/B radiation in Brassica napus II Phytochemistry.-1999.-V.38, № 3.-P.910−917.
  378. Orians C. M, Griffiths M. E, Roche B. M, Fritz R.S. Phenolic glycosides and condensed tannins in Salix sericea, S. eriocephala and their F1 hybrids: not all hybrids are created equal // Biochem. Syst. Ecol.-2000.-V.28.-P.619−632.
  379. Osbourn A. Antimicrobial Phytoprotectants and Fungal Pathogens: A Commentary // Fungal Genetics and Biology.-1999-V.26.-P. 163−168.
  380. Osbourn A, Bowyer P, Lunness P, Clarke B, Daniels M. Fungal Pathogens of Oat Rots and Tomato Leaves Employ Closely related Enzymes to Detoxify Different Host Plant Saponins // Molecular Plant-Microbe Interactions. -1995.-V.8, N 6.-P.971−978.
  381. Osman S. F, Herb S. F, Fitzpatrick T. J, Schmiediche P. Glycoalkaloid Composition of Wild and Cultivated Tuber-Bearing Solanum Species of Potential Value in Potato Breeding Programs // J. Agric. Food Chem.1978. V.26, N5. — P. 1246−1248.
  382. Osman S. F, Sinden S.L. Analysis of mixtures of solanidine and demissidine glycoalkaloids containing identical carbohydrate units // J. Agric. Food Chem.-1977.-V.25.-P.955−957.
  383. Osman S. F, Zacharius R. M, Kalan E. B, Fitzpatrick T. J, Krulick S. Stress metabolites of the potato and other Solanaceous plants // J. Food Prot.1979.-V.42.-P.502−507.
  384. Osman S. F, Johns T. A, Price K.R. Sisunine, a glycoalkaloid found in hybrids between Solanum acaule and Solanum x ajanhuiri II Phytochemistry.-1986.-V.25.-P.967−968.
  385. Papadopoulou K, Melton RE, Leggett M, Daniels M. J, Osbourn A.E. Compromised disease resistance in saponin-deficient plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1999.-V.96, N 22.-P.12 923−12 928.
  386. Papathanasiou F, Mitchell S. H, Harvey B.M.R. Variation in Glycoalkaloid Concentration of Potato Tubers Harvested From Mature Plants // J. Sci. Food Agric. 1999. — V.79. — P.32−36.
  387. Papathanasiou F, Mitchell S. H, Watson S, Harvey B.M.R. Effect of Environmental Stress During Tuber Development on Accumulation of Glycoalkaloids in Potato (Solanum tuberosum L.) // J. Sci. Food Agric. 1999. -V.79. — P. l-8.
  388. Parnell A, Bhuva V. S, Bintcliffe E.J.B. The Glycoalkaloid Content of Potato Varieties // J. Natl. Inst. Agric. Bot.-1984.- V.16.-P.535−541.
  389. Patil B.C., Salunkhe D. K, Singh B. Metabolism of Solanine and Chlorophyll in Potato Tubers as Affected by Light and Specific Chemicals // J. Food Sci.-1971.-V.36.-P.474−476.
  390. Patil B.C., Sharma R. P, Salunkhe D. K, Salunkhe K. Evaluation of Solanine Toxicity//Food Cosmet. Toxicol.-1972.-V.10.-P.395−398.
  391. Paseshnichenko V. A, Guseva A.R. Quantitative determination of potato glycoalkaloids and their preparative separation // Biochemistry (Russ.).-1956.-V.21.-P.606−611.
  392. Pelletier Y, Clark C. L, Embleton J, King R.R. The chemical nature of the resistance to the Colorado potato beetle of wild Solanum species: preliminary results // Abstracts of the Northeast Potato Technology Forum 2001. -Canada.- 2001.-P. 137−141.
  393. Percival G. C, Harrison J.A.C, Dixon G.R. The influence of temperature on light enhanced glycoalkaloid synthesis in potato // Ann. App. Biol.-1993.-V.123.-P. 141−153.
  394. Percival G. C, Dixon G. R, Sword A. Glycoalkaloid concentration of potato tubers following continuous illumination // J.Sci.Food Agric.-1994.-V.66.-P.139−144.
  395. Percival G, Dixon G.R. Glycoalkaloid Concentrations in Aerial Tubers of Potato (Solanum tuberosum L.) // J. Sci. Food Agric. 1996. — V.70. -P.439−448.
  396. Percival G.C., Dixon G.R., Sword A. Glycoalkaloid concentration of potato tubers following exposure to daylight // J.Sci. Food Agric.-1996.-V.71.-P.59−63.
  397. Percival G.C., Dixon G.R. Glycoalkaloids / In: Handbook of Plant and Fungal Toxicants // Ed. J.P.Felix D’Mello. Boca Raton: CRC Press, 1997. -P.19−35.
  398. Percival G.C., Karim M.S., Dixon G.R. Influence of Light-Enhanced Gycoalkaloids on Resistance of Potato Tubers to Fusarium sulphureum and Fusarium solani var. coeruleum II Plant Pathology. 1998. — V.47. — P.665−670.
  399. Percival G.C., Karim M.S., Dixon G.R. Light-Induced Bio-Control of Potato Storage Pathogens In Vitro //Potato Research. 1998. — V.41. — P. 143−153.
  400. Percival G.C. The Influence of Light Upon Glycoalkaloid and Chlorophyll Accumulation in Potato Tubers {Solanum tuberosum L.) // Plant Science. 1999. — V. 145. — P.99−107.
  401. Petersen H.W. Steroidal Glycoalkaloids in Tuber-Bearing Solanum Species. Ph.D. Thesis.- Royal Danish School of Pharmacy, Copengagen, Denmark, 1993.-75 p.
  402. Petersen H.W., Molgaard P., Nyman U., Olsen C.E. Chemotaxonomy of the tuber-bearing Solanum species subsection Potato {Solanaceae) II Biochem. Systemat. Ecol.-1993.-V.21.- P.629−644.
  403. Phillips B.J., Hughes J.A., Phillips J.C., Walters D.G., Anderson D., Tahourdin C.S.M.A. A Study of Toxic Hazard that Might be Associated with the Consumption of Green Potato Tops // Food Chem. Toxicol.-1996.-V.34.-P.439−448.
  404. Pietta P., Facino R.M., Carini M., Mauri P. Thermospray liquid chromatography-mass spectrometry of flavonol glycosides from medicinal plants // J. Chromatogr. A. -1994.-V.661.-P.121−126.
  405. Pipperger H., Porzel A. Steroidal alkaloid glycosides from Solanum suaveolens //Phytochemistry.-1997.-V.46, № 7.-P.1279−1282.
  406. Prasad M.N.V., Hagemeyer F. Heavy Metal Stress in Plants: From Molecules to Ecosystems. Berlin: Springer-Verlag, 1999.- 401 p.
  407. Price K.R., Mellon F.A., Self R., Fenwick G.R., Osman S.F. Fast bombardment mass spectrometry of Solanum glycoalkaloids and its potential for mixture analysis // Biomed. Mass Spectrom.-1985.-V.12.- P.79−85.
  408. Ramaswamy N.K., Behere A.G., Nair P.M. A novel pathway for the synthesis of solanidine in the isolated chloroplasts from greening potatoes // Eur. J. Biochem. 1976.-V.67.-P.275−282.
  409. Ray H., Hammerschmidt R. Responses of potato tuber to infection by Fusarium sambucinum II Physiol, and Mol. Plant Pathology.-1998.-V.53.-P.81−92.
  410. Rayburn J.R., Bantle J.A., Friedman M. Role of Carbohydrate Side Chains of Potato Glycoalkaloids in Developmental Toxicity // J. Agric. Food Sci.-1994.-V.42.-P.1511−1515.
  411. Rayburn J.R., Bantle J.A., Quails C.W. Jr., Friedman M. Glucose-6-phosphate and NADP protect Frog Embryos Against Developmental Toxicity Induced by a-Chaconine // Food Chem Toxicol.-1995.-V.33.-P. 1021−1025.
  412. Rayburn J.R., Friedman M., Bantle J.A. Synergism of potato glycoalkaloids a-chaconine and a-solanine in the developmental toxicity in Xenopus embryos//Food Chem. Toxicol.-1995.-V.33.-P.1013−1019.
  413. Reeve R.M., Hautala E., Weaver M.L. Anatomy and compositional variation within the potatoes. 2. Phenolics, enzymes and other minor components // Am. Potato J.-1969.-V.46.-P.374−386.
  414. Renwick J.H. Hypothesis: Anencephaly and Spina Bifida Are Usually Preventable by Avoidance of a Specific But Unidentified Substance Present in Certain Potato Tubers // Br.J.Prev.Soc.Med.-1972.-V.26.-P.67−88.
  415. Renwick J.H. Our Ascorbate Defense Against Solanaceae II Solanaceae: Biology and Systematics / Ed. by G. D’Arcy.-N.Y.: Columbia University Press, 1986.-P.569−576.
  416. Review for Phytochemistry of Handbook of Functional Plant Ecology // Ed. F.I. Pugnaire, F. Valladares. New York: Marcel Dekker, Inc., 1999.- 912 p.
  417. Roddick J.G. Complex formation between solanaceous steroidal glycoalkaloids and free sterols in vitro II Phytochemistry.-1979.-V.18.-P. 14 671 470.
  418. Roddick J. G, Melchers G. Steroidal glycoalkaloid content of potato, tomato and their somatic hybrids // Theor. Appl. Genet. 1985. -V.80.- P.655−660.
  419. Roddick J. G, Rijnenberg A.L. Effect of Steroidal Glycoalkaloids of the Potato on the Permeability of Liposome Membranes // Physiol. Plant. -1986.-V.68.-P.436−440.
  420. Roddick J. G, Rijnenberg A.L. Synergistic interaction between the potato glycoalkaloids a-solanine and a-chaconine in relation to lysis of phospholipid/sterol liposomes // Phytochemistry. 1987. — V.26. — P.1325−1328.
  421. Roddick J. G, Rijnenberg A. L, Osman S.F. Synergistic Interaction Between Potato Glycoalkaloids a-Solanine and a-Chaconine in Relation to Destabilization of Cell Membranes: Ecological Implications // J.Chem.Ecol.-1988.-V. 14.-P.889−902.
  422. Roddick J.G. The Acetylcholinesterase-inhibitory Activity of Steroidal Glycoalkaloids and Their Aglycones // Phytochemistry.-1989.-V.28.-P.2631−2634.
  423. Roddick J. G, Rijnenberg A. L, Weissenberg M. Membrane-disrupting Properties of the Steroidal Glycoalkaloids Solasonine and Solamargine // Phytochemistry.-1990.-V.29.-P. 1513−1518.
  424. Roddick J. Potato toxins-the right to know? // Potato Business World.-1999.- V.7, Nl.-P.60.
  425. Roessner U, Luedemann A, Brust D, Fiehn O, Linke T, Willmitzer L, Fernie A.R. Metabolic Pro filling Allows Comprehensive Phenotyping of
  426. Genetically or Environmentally Modified Plant Systems // The Plant Cell. -2001.-V.13.-P.11−29.
  427. Rodriguez-Saona L. E, Giusti M. M, Wrolstad R.E. Color and Pigment Stability of Red Radish and Red-Fleshed Potato Anthocyanins in Juice Model Systems // J. Food Sci.-1999.-V.64, N3.-P.453−456.
  428. Romeo J. T, Downum K. R, Verpoorte R. Phytochemical Signals and Plant-Microbe Interactions // Recent Advances in Phytochemistry.-V.32.- New-York-London: Plenum Press, 1998.- 254 p.
  429. Sagredo B, Lafta A, Casper H, Lorezen J. Identification and Genetic Location of a Novel Potato Alkaloid// Abstracts of the 85th Annual Meeting of the Potato Asociation of America (PAA 2001).- (April 22−26, 2001, Florida).- Th.63.
  430. Salunkhe D. K, Kadam S.S. Potato Production, Processing and Products.- FL, Boca Raton: CRC Press, 1991.-298 p.
  431. Sanford L. L, Deahl K. L, Sinden S.L. Glycoalkaloid content in foliage of hybrid and backross populations from a S. tuberosum x S. chacoense II Potato Journal.-1994. V.71. — № 4. — P.225−236.
  432. Schlosser E. Interaction of Saponins with Cholesterol, Lecithin and Albumin // Can. J. Physiol.-1969.-V.47.-P.487−490.
  433. Sembdner G, Parthier B. The biochemistry and the physiological and molecular action of jasmonates // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.-1993.-V.44.-P.569−589.
  434. Sharma R. P, Salunkhe D.K. Solanum Glycoalkaloids // In: Toxicant of Plant Origin. Vol.1. Alkaloids / Ed. P.R.Cheeke.- FL, Boca Raton: CRC Press, 1989, P.179−236.
  435. Shih M, Kuc J. Incorporation of 14C from Acetate and Mevalonate into Rishitin and Steroid Glycoalkaloids by Potato Tuber Slices Inoculated with Phytophthora infestans II Phytopathology.-1974.-V.63.-P.826−829.
  436. Shlojima Kenji, Arai Yoko, Ageta Hiroyiki Seasonal fluctuation of triterpenoid constituents from dried leaflets of Dryopteris crassirhizoma II Phytochemistry.-1990.-V.29, № 4.-P. 1079−1082.
  437. Silhavy D, Szentesi A, Banfalvi Z. Solanum chacoense lines with different alkaloid contents: a potential source of genes involved in leptine synthesis // Acta Agronomica Hungarica.-1996.-V.44.-P.l 13−120.
  438. Sinden S. L, Webb R.E. Effect of Variety and Location on the Glycoalkaloid Content of Potatoes //Am. Potato J.-1972.-V.49.-P.334−338.
  439. Sinden S. L, Webb R.E. Effect of Environment on Glycoalkaloid Content of Six Potato Varieties at 39 locations // U.S. Dep. Agric. Tech. Bull.-1974.-P.1472.
  440. Sinden S. L, Deahl K. L, Aulenbach B.B. Effect of glycoalkaloids and phenolics on potato flavour// J. Food Sci.-1976.-V.41.-P.520−523.
  441. Sinden S. L, Sanford L. L, Webb R.R. Genetic and environmental control of potato glycoalkaloids //Am.Potato J.-1984.-V.61.-P.141−156.
  442. Sinden S. L, Sanford L. L, Deahl K.L. Segregation of leptine glycoalkaloids in Solanum chacoense Bitter // J. Agric. Food Chem.-1986.-V.34,-P.372−377.
  443. Sizer C. E, Maga J. A, Craven C.J. Total Glycoalkaloids in Potatoes and Potato Chips // J. Agric. Food Chem.-1980.-V.28.-P.578−579.
  444. Slanina P. Solanine (glycoalkaloids) in potatoes: toxicological evaluation // Food Chem. Toxicol.-1990.-V.28.-P.759−761.
  445. Slanina P. Assessment of Health-Risks related to Glycoalkaloids («solanine») in Potatoes: a Nordic View // Var F6da.-1990.-V.43, Suppl.l.-P.l-14.
  446. Smedsgaard J, Frisvad J.C. Using direct electrospray mass spectrometry in taxonomy and secondary metabolite profiling of crude fungal extracts // J. Microbiol. Meth.-1996.-V.25.-P.5−17.
  447. Smith D.B. Profiles and biological activity of potato glycoalkaloids // Ph.D. Thesis, University of Exeter, 1998.-128 p.
  448. Smith D.B., Roddick J.G., Jones J.L. Potato glycoalkaloids: Some unanswered questions // Trends in Food Science & Technology.-1996.-V.7, N4.-P.126−131.
  449. Solanaceae: Biology and Systematics // Ed.G. D’Arcy Columbia University Press, New York, 1986.- 576 p.
  450. Stevens L.H., Davelaar E. Isolation and characterization of blackspot pigments from potato tubers // Phytochemistry.-1996-V.42.-P.941−947.
  451. Stobiecki M. Application of mass spectrometry for identification and structural studies of flavonoid glycosides. Review // Phytochemistry.-2000.-V.54.-P.237−256.
  452. Styszko L., Ochanovicz T. Relacje pomiedzu ciemnieniem miazszu bulw surowych i gotovanych a odpornoscia odmian ziemniaka na niektore patogeny // Post. Ochr. Rosl.-1999.-V.38, № 2.-P.515−517.
  453. Sundqvist B.U.R. Modern Mass Spectrometry in Biological Sciences. N.Y.: Marcel Dekker, 1993.- P. 144 — 263.
  454. Swaaij A.C. Effect of growth conditions on glycoalkaloid in potato tubers // Potato Research, 1992. V.35, N1. — P.68−69.
  455. Swain A.P. et al. Enzymatic-hydrolysis of Alfa-Chaconine and Alfa-Solanine // Phytochemistry. 1978.- V.17.- P.800.
  456. Swinyard C.A., Chaube S. Are Potatoes Teratogenic for Experimental Animals? // Teratology.-1973.-V.8.-P.349−357.
  457. Szafranek В., Malinski E., Szafranek J. The sesquiterpene composition of leaf cuticular neutral lipids of ten Polish varieties of Solanum tuberosum L. // J. Sc. Food Agr. -1998. V.76, N4. — P.588−592.
  458. Tai G.C.C., Levy D., Coleman W.K. Path analysis of genotype-environment interactions of potatoes exposed to increasing warm-climate constraints // Euphytica.-1994.-V.75.-P.49−61.
  459. Takabayashi J., Dicke M., Posthumus M.A. Volatile herbivore-induced terpenoids in plant-mite interactions: Variation caused by biotic and abiotic factors // J. Chem. Biol.-1994.-V.20.-P. 1329−1354.
  460. The Biochemistry and Physiology of Plant Disease // Eds. R.N.Goodman, Z. Kiraly, K.R.Wood. Columbia.: University of Missouri Press, 1986.-462 p.
  461. Thompson A., Scott N. Metribuzin Sensitivity and Model Evaluation // Abstracts of the 85th Annual Meeting of the Potato Asociation of America (PAA 2001).- (April 22−26, 2001, Florida).- Th.45.
  462. Thorne H.V., Clarke G.F., Skuce R. The Inactivation of Herpes Simplex Virus by Some Solanaceae Glycoalkaloids // Antiviral Res.-1985.-V.5.-P.335−343.
  463. Tomiyama K., Okamoto H. Effect of pre-inoculational heat-treatment on the membrane potential change of potato cell induced by infection with Phytophthora infestans II Physiological and Molecular Plant Pathology.-1989.-V.35.-P.191−201.
  464. Toyoda M., Rausch W.D., Inoue K., Ohno Y., Fujiyama Y., Takagi K., Saito Y. Comparison of Solanaceous glycoalkaloids evoked Ca influx in different types of cultured cells // Toxicol. Vitro. 1991, — V.5, N.4.-P.347−351.
  465. Tulloch A.P. In: Chemistry and Biochemistry of Natural Waxes// Ed. P.E. Kolattukudy. -Amsterdam: Elsevier, 1976. P.235−287.
  466. Uppal D.S. Varietal and environmental effect on the glycoalkaloid content of potato (Solanum tuberosum L.) // Plant Foods Hum. Nutr.-1987.-V.37.-P.333−340.
  467. Vallejo R.P., Ercegovich C.D. Analysis of potato for glycoalkaloid content by radioimmunoassay (RIA) // Methods and Standards for Environmemtal
  468. Measurements, Publication 519, National Bureau of Standards, Washington, D.C., 1978.-P.333−340.
  469. Van Gelder W.M.J. Determination of the total C27-steroidal alkaloid composition of Solanum species by high-resolution gas chromatography // J.Chromatogr.-1985.-V.331.-P.285−293.
  470. Van Gelder W.M.J. Plant breeding as a tool for improving product quality // Bedrijfsontwikkeling.-1985.-V.16.-P.474−478.
  471. Van Gelder W.M.J., Dellaert L.M.W. Alkaloids in potatoes // Prophyta.-1988.-V.425.-P.236−238.
  472. Van Gelder W.M.J., Vinke J.H., Scheffer J.J.C. Steroidal glycoalkaloids in tubers and leaves of Solanum species used in potato breeding // Euphytica.-1988.-V.48.-P. 147−158.
  473. Van Gelder W.M.J. Steroidal Glycoalkaloids in Solanum Species: Consequences for Potato Breeding and Food Safety.-Ph.D. Thesis, University of Wageningen, Holland, 1989.-184 p.
  474. Van Gelder W.M.J. Chemistry, Toxicology and Occurence of Steroidal Glycoalkaloids: Potential Contaminants of the Potato / Poisonous Plants Containing Edible Plants // Ed. A.-F. Rizk.-Boca Raton, Florida: CRC Press, 1990.-P.117−156.
  475. Van Gelder W.M.J, Scheffer J.J.C. Transmission of steroidal glycoalkaloids from Solanum vernei to the cultivated potato // Phytochemistry.1991.-V.30.-P. 165−168.
  476. Van Swaaij A.C. Effect of growth conditions on glycoalkaloid accumulation in potato tubers // Potato Res.-1992.-V.68.-P.68−69.
  477. Varns J.L. Biochemical response and its control in the Irish potato tuber (, Solanum tuberosum L.) Phytophthora infestans interactions // Ph.D. Thesis.-Purdue University, 1970.-148 p.
  478. Varns J. L, Kuc J, Williams D.B. Terpenoid accumulation as a biochemical response of the potato tuber to Phytophthora infestans II Phytopathology.-1971 .-V.61 .-P. 174−177.
  479. Vaughan J.G. Biochemical characterization of cultivated species, cultivars, and their wild relations // Biochemical Aspects of Crop Improvement / Boca Raton: CRC Press, 1990, — P.38−57.
  480. Weidenborner M, Hindorf H, Jha Hem Chandra, Tsotsonos Prodromos Antifungal activity of flavonoids against storage fungi of the genus Aspergillus II Phytochemistry.-1990.-V.29, № 4.-P.l 103−1105.
  481. Wierenda J. M, Hollingworth R.M. Inhibition of insect acetylcholinesterase by the potato glycoalkaloid a-chaconine // Natural Toxins.1992.-V.l.-P.96−99.
  482. Weissbecker B, Van Loon J.J.A, Posthumus M. A, Bouwmeester H. J, Dicke M. Identification of volatile potato sesquiterpenoids and their olfactory detection by the two-spotted stinkbug Perillus bioculatus II J. Chem. Ecol.-2000.-V.26, № 6, — P.1443−1445.
  483. Weltring K.-M, Wessels J, Geyer R. Metabolism of the potato saponins a-chaconine and a-solanine by Gibberella pilicaris II Phytochemistry.-1997.-V.46, № 6.-P.1005−1009.
  484. Weltring K.-M, Wessels J, Pauli G.F. Metabolism of the tomato saponin a-tomatine by Gibberella pulicaris II Phytochemistry.-1998.-V.48, № 8,-P.1321−1328.
  485. WHO Principles for the Safety Assessment of Food Additives and Contaminants in Food.-World Health Organization.-Geneva, Switzerland, 1987.400 p.
  486. Wiens J.J. Polymorphism in systematics and comparative biology // Annu. Rev. Ecol. Syst.-1999.-V.30.-P.327−362.
  487. Williams C. A, Harborne J. B, Greenham J. Geographical variation in the surface flavonoids of Pulcaria dysenterica II Biochem. Syst. Ecol.-2000,-V.28.-V.28.-P.679−687.
  488. Wilson J. M, Frank J.S. The effect of systemic pesticides on total glycoalkaloid content of potato tubers at harvest // Am. Potato J.-1975.-V.52.-P.179−184.
  489. Wiltshire J.J.J, Cobb H.H. A review on the physiology of potato tuber dormancy//Ann. Appl. Biol.-1996.-V.129.-P.553−569.
  490. Winchester R. V, Thomas A. C, Brodrick H.T. Reduction of Greening in Potatoes by Gamma Irradiation // Agroplantae.-1976.-V.8.-P.95−96.
  491. Wolf M. J, Duggar B.M. Estimation and physiological role of solanine in the potato // J. Agric. Res.-1946.-V.73.-P.l-32.
  492. Wood F. A, Young D.A. TGA in Potatoes // Canada Department of Agriculture Publication N.1533, Department of Agriculture, Ottawa, Ontario, Canada.
  493. Woolfe J.A. Glycoalkaloids, proteinase inhibitors and lectins // Ed. J.A.Woolfe / The Potato in the Human Diet. Cambridge University Press, Cambridge, 1987. -P. 162.
  494. Woolhouse H.W. Ecological aspects of the mineral nutrition of plants.-Oxford: Blackwell Sci. Publ, 1959.-357 p.
  495. Wu M. T, Salunkhe D.K. Control of chlorophyll and solanine synthesis and sprouting of potato tubers by hot paraffin wax // J. Food Sci.-1972,-V.37.-P.629−630.
  496. Wiinsch A. Spatial distribution of glycoalkaloids of different potato varieties throughout the tuber // Chem. Mikrobiol. Technol. Lebensm.-1989.-V. 12.-P.69−74.
  497. Wiinsch A, Munzert M. Effect of storage and cultivar on the distribution of glycoalkaloids in potato tuber // Potato Res.-1994.-V.37.-P.3−10.
  498. Zacharius R. M, Kalan E. B, Osman S. F, Herb S.F. Solanidine in potato (Solanum tuberosum) tuber tissue disrupted by Erwinia atroseptica and by Phytophthora infestans II Physiol. Plant Pathol.-1975.-V.6.-P.301−305.
  499. Zhao J, Camre M. E, Bushway R. J, Bushway A.A. Glycoalkaloid content and in vitro glycoalkaloid solubility of extruded potato peels // J. Agric. Food Chem.-1994.-V.42.-P.2570−2573.
  500. Ziegler R, Schandrel S. H, Markakis P. Gamma Irradiation and Enriched CO2 Atmospheric Storage Effect on the Light Induced Greening of Potatoes // J. Food Sci.-1968.-V.33.-P.533−535.
  501. Zitnak A. The Occurrence and Distrubution of Free Alkaloid Solanidine in Netted Gem Potatoes // Can. J. Biochem. Physiol.-1961.-V.39.-P.1257−1265.
  502. Zitnak A, Johnston G.R. Glycoalkaloid content of B5141−6 potatoes //Am. Potato J.-1970.-V.47.-P.256−260.
  503. Zitnak A. Photounduction of glycoalkaloids in cured potatoes // Am. Potato J.-1981.-V.58.-P.415−421.
  504. Zitnak A, Filadelfi M.A. Estimation of Taste Thresholds of Three Potato Glycoalkaloids // J. Can. Inst. Fod Sci. Technol.-1985.-V.18.-P.337−339.356
  505. Zitnak A, Filadelfi-Keszi M.A. Isolation of (32-Chaconine, a potato Bitterness Factor// J. Food Biochem.-1988.-V.12.-P.183−190.
  506. Zobel M, Schilling J. Behaviour of solanine in potatoes with various preparation methods // Z.Lebensm. Unters. Forsch.-1964.-V.124.-P.327−333.
  507. Zwenger C, Kind A. On solanine and its cleavage products // Ann. Chem. Pharm.-1961 .-V. 118.-P. 129−151.
  508. Weltring K.-M., Wessels J., Geyer R. Metabolism of the potato saponins a-chaconine and a-solanine by Gibberella pilicaris II Phytochemistry.-1997.-V.46, № 6.-P. 1005−1009.
  509. Weltring K.-M., Wessels J., Pauli G.F. Metabolism of the tomato saponin a-tomatine by Gibberella pulicaris II Phytochemistry.-1998.-V.48, № 8.-P.1321−1328.
  510. WHO Principles for the Safety Assessment of Food Additives and Contaminants in Food.-World Health Organization.-Geneva, Switzerland, 1987.400 p.
  511. Wiens J.J. Polymorphism in systematics and comparative biology // Annu. Rev. Ecol. Syst.-1999.-V.30.-P.327−362.
  512. Williams C.A., Harborne J.B., Greenham J. Geographical variation in the surface flavonoids of Pulcaria dysenterica II Biochem. Syst. Ecol.-2000.-V.28.-V.28.-P.679−687.
  513. Wilson J.M., Frank J.S. The effect of systemic pesticides on total glycoalkaloid content of potato tubers at harvest // Am. Potato J.-1975.-V.52.-P.179−184.
  514. Wiltshire J.J.J., Cobb H.H. A review on the physiology of potato tuber dormancy//Ann. Appl. Biol.-1996.-V.129.-P.553−569.
  515. Winchester R.V., Thomas A.C., Brodrick H.T. Reduction of Greening in Potatoes by Gamma Irradiation // Agroplantae.-1976.-V.8.-P.95−96.
  516. Wolf M.J., Duggar B.M. Estimation and physiological role of solanine in the potato // J. Agric. Res.-1946.-V.73.-P.l-32.
  517. Wood F.A., Young D.A. TGA in Potatoes // Canada Department of Agriculture Publication N.1533, Department of Agriculture, Ottawa, Ontario, Canada.
  518. Woolfe J.A. Glycoalkaloids, proteinase inhibitors and lectins // Ed. J.A.Woolfe / The Potato in the Human Diet. Cambridge University Press, Cambridge, 1987. -P. 162.
  519. Woolhouse H.W. Ecological aspects of the mineral nutrition of plants.-Oxford: Blackwell Sci. Publ., 1959.-357 p.
  520. Wu M.T., Salunkhe D.K. Control of chlorophyll and solanine synthesis and sprouting of potato tubers by hot paraffin wax // J. Food Sci.-1972.-V.37.-P.629−630.
  521. Wtinsch A. Spatial distribution of glycoalkaloids of different potato varieties throughout the tuber // Chem. Mikrobiol. Technol. Lebensm.-1989.-V. 12.-P.69−74.
  522. Wtinsch A., Munzert M. Effect of storage and cultivar on the distribution of glycoalkaloids in potato tuber // Potato Res.-1994.-V.37.-P.3−10.
  523. Zacharius R.M., Kalan E.B., Osman S.F., Herb S.F. Solanidine in potato (Solanum tuberosum) tuber tissue disrupted by Erwinia atroseptica and by Phytophthora infestans II Physiol. Plant Pathol.-1975.-V.6.-P.301−305.
  524. Zhao J., Camre M.E., Bushway R.J., Bushway A.A. Glycoalkaloid content and in vitro glycoalkaloid solubility of extruded potato peels // J. Agric. Food Chem.-1994.-V.42.-P.2570−2573.
  525. Ziegler R., Schandrel S.H., Markakis P. Gamma Irradiation and Enriched CO2 Atmospheric Storage Effect on the Light Induced Greening of Potatoes // J. Food Sci.-1968.-V.33.-P.533−535.
  526. Zitnak A. The Occurrence and Distrubution of Free Alkaloid Solanidine in Netted Gem Potatoes // Can. J. Biochem. Physiol.-1961.-V.39.-P.1257−1265.
  527. Zitnak A., Johnston G.R. Glycoalkaloid content of B5141−6 potatoes // Am. Potato J.-1970.-V.47.-P.256−260.
  528. Zitnak A. Photounduction of glycoalkaloids in cured potatoes // Am. Potato J.-1981 .-V.58.-P.415−421.
  529. Zitnak A., Filadelfi M.A. Estimation of Taste Thresholds of Three Potato Glycoalkaloids // J. Can. Inst. Fod Sci. Technol.-1985.-V.18.-P.337−339.
  530. Zitnak A, Filadelfi-Keszi M.A. Isolation of (32-Chaconine, a potato Bitterness Factor // J. Food Biochem.-1988.-V. 12.-P. 183−190.
  531. Zobel M, Schilling J. Behaviour of solanine in potatoes with various preparation methods // Z.Lebensm. Unters. Forsch.-1964.-V.124.-P.327−333.
  532. Zwenger C, Kind A. On solanine and its cleavage products // Ann. Chem. Pharm.-1961 .-V. 118.-P. 129−151.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!