Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Биологические и технологические особенности вегетативных способов размножения в системе производства здорового посадочного материала

Диссертация: Биологические и технологические особенности вегетативных способов размножения в системе производства здорового посадочного материала
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Большую проблему в технологии микроклонального размножения создают физиологические расстройства — стекловидность, некроз верхушек, нефункциональная корневая и надземная системы. Как правило, избежать некоторые из них возможно уже на начальном этапе, получив единичный побег на средах, содержащих небольшие концентрации регуляторов роста. Однако, это трудно осуществить для ряда культур в связи… Читать ещё >

Биологические и технологические особенности вегетативных способов размножения в системе производства здорового посадочного материала (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Значение здорового посадочного материала и особенности его производства в современном садоводстве
    • 1. 2. Теоретические основы микроклонального размножения
      • 1. 2. 1. Влияние физиологически активных веществ на микроклональное размножение растений
    • 1. 3. Проблемы и возможности микроклонального размножения 31 1.3.1. Физиологические расстройства растений in vitro
    • 1. 4. Биологические основы ризогенеза садовых растений in vitro
      • 1. 4. 1. Адаптация растений к нестерильным условиям
    • 1. 5. Размножение супер-супер-элитного посадочного материала земляники и яблони
      • 1. 5. 1. Влияние внешних условий и физиологически активных веществ на размножение земляники
      • 1. 5. 2. Биологические и технологические аспекты выращивания супер-супер-элиты и супер-элиты яблони на клоновых подвоях
  • 2. Экспериментальная часть
    • 2. 1. Цель и задачи исследований
    • 2. 2. Объекты, методика и условия проведения исследований
    • 2. 3. Результаты исследований и обсуждение
      • 2. 3. 1. Проблемы основных этапов размножения растений in vitro
      • 2. 3. 2. Укоренение побегов in vitro — ключевой этап подготовки растений к нестерильным условиям
      • 2. 3. 3. Каллусогенез и адвентивный органогенез плодовых и ягодных растений
      • 2. 3. 4. Особенности хранения растений in vitro
      • 2. 3. 5. Адаптация растений к не стерильным условиям и их полевая продуктивность
      • 2. 3. 6. Размножение супер-супер-элитного материала земляники
      • 2. 3. 7. Размножение супер-супер-элитного материала яблони

Система производства здорового посадочного материала во многом является отражением потенциальных возможностей способов размножения садовых растений. В идеале плодоносящие насаждения желательно закладывать исходными здоровыми растениями. Однако, их высокая стоимость, необходимость использовать привитой посадочный материал, ювенилизация отодвигает такую систему на большую перспективу. Хотя она и возможна при создании сортов, сочетающих в себе характеристики клоновых подвоев и современных сортов при условии размножения растений на основе соматического эмбриогенеза (искусственные семена, Bio Industry, 1985). В начале 20-х годов прошлого века, когда основными способами получения исходных здоровых растений были визуальный отбор и тестирование на растительных индикаторах, количество получаемых исходных здоровых растений было незначительным, а себестоимость высокой. Удовлетворить потребность в здоровом посадочном материале можно было за счет большого числа этапов размножения (категорий посадочного материала), строгой пространственной изоляции, размножение посадочного материала в районах с малой инфекционной нагрузкой, отсутствием активных переносчиков инфекции, интенсивных обработок ядохимикатами.

Способность меристематических верхушек регенерировать на питательных средах 30−100% здоровых растений, особенно в сочетании с термотерапией, а также современные методы тестирования, такие как иммуноферментный анализ, полимерная цепная реакция, электрофорез, электронно-микроскопическая диагностика, дают основание утверждать, что создание здоровых исходных растений не является проблемой в системе производства здорового посадочного материала, хотя и требует соответствующего оборудования, трудовых и денежных затрат. Однако, технология «одна меристематическая верхушка — одно растение» не позволяло существенно сократить количество этапов размножения. И в этом случае вегетативное потомство здоровых исходных растений долгое время контактирует с нестерильной внешней средой, прежде чем попасть на плодоносящие насаждения. Сократить количество этапов размножения можно за счет увеличения числа здоровых исходных растений, либо увеличения коэффициента размножения растений в защищенном и открытом грунте. Существенное увеличение коэффициента размножения в открытом грунте невозможно в связи с определенными требованиями растений к внешним факторам. Некоторые интенсивные технологии размножения требуют больших затрат ручного труда (пикировка земляники, размножение малины корневыми черенками, и др.). Поэтому основное внимание следует уделить тиражированию исходных растений и эффективному использованию защищенного грунта. Увеличить количество здоровых исходных растений можно, если применять методику микроклонального размножения, которая исключает вероятность повторного перезаражения. Однако, промышленное использование данной методики требует очень тщательного учета состава питательных сред, условий выращивания, количества пассажей, биологических особенностей культуры и сорта.

В процессе микроклонального размножения возможны отклонения от сорта. Часто они носят характер длительных модификационных отклонений, но не исключено и возникновение стойких генетических изменений.

Большую проблему в технологии микроклонального размножения создают физиологические расстройства — стекловидность, некроз верхушек, нефункциональная корневая и надземная системы. Как правило, избежать некоторые из них возможно уже на начальном этапе, получив единичный побег на средах, содержащих небольшие концентрации регуляторов роста. Однако, это трудно осуществить для ряда культур в связи с отсутствием роста первичного экспланта при таких условиях. Очевидно, целесообразно испытание широкого ряда регуляторов роста, а также других факторов, например, физических, которыми часто пренебрегают (Pierik R.L. 1988). Микроклональное размножение позволяет создать систему производства здорового посадочного материала, которая может состоять только из этапа микроклонального размножения исходных здоровых растений и однократного размножения растений в закрытом и открытом грунте. Однако, каждый из этих этапов требует доработки или даже другого его решения. В настоящее время есть смысл сделать переоценку некоторых положений методики промышленного использования микроклонального размножения. Считают, что окончательный выход растений, размноженных in vitro, зависит от коэффициента размножения на этапе пролиферации и приживаемости их в нестерильных условиях. Поэтому основная масса работ посвящена этому разделу. Коэффициент размножения на этапе пролиферации побегов зависит от состава и концентрации регуляторов роста питательных сред.

Увеличение концентрации регуляторов роста часто отрицательно влияет на рост и развитие эксплантов и качество полученных растений. В то же время, если иметь достаточное количество жизнеспособных эксплантов на первом этапе, то это будет равносильно увеличению коэффициента размножения на этапе пролиферации боковых побегов. При таком подходе к методике размножения нет смысла стремиться получить большой коэффициент размножения за счет регуляторов роста и числа пассажей. Нужно отметить правильность утверждения о возможности производства растений in vitro в любое время года, однако, в этом нет необходимости, так как маточные растения для размножения в защищенном грунте требуются в конкретные сроки (март-май, август). В связи с этим возникает потребность в хранении растительного материала. Очевидно, что это направление может быть использовано для создания банка исходных здоровых растений.

Использование защищенного грунта при производстве здорового посадочного материала необходимо, так как позволяет влиять на рост и развитие растений, а также уменьшить вероятность их перезаражения. В условиях защищенного фунта растения лучше реагируют на регуляторы роста, которые необходимо применять с учетом биологических особенностей растений для увеличения коэффициента размножения. Однако, нужно учитывать, что в защищенном фунте получить достаточное количество, например, стандартной рассады невозможно, если применять технологию размножения земляники открытого фунта. Поэтому необходимы новые подходы к решению этой проблемы.

С открытием переноса вирусных заболеваний семенами плодовых растений возникла сложная технологическая и экономическая проблема производства маточных растений категории ССЭ и СЭ. Необходимость использовать на этих этапах оздоровленные клоновые подвои увеличивает стоимость маточных растений в два раза.

Решение поставленных проблем позволяет обосновать необходимость создания в стране нескольких центров по производству маточных растений высших категорий, которые, в свою очередь обеспечат закладку плодоносящих насаждений элитным посадочным материалом. Основные положения, выносимые на защиту. 1. Методы решения основных проблем микроклонального размножения: -математическое планирование определения солевого состава питательных сред;

— новые регуляторы для микроклонального размножения садовых растений- -влияние физических факторов на экспланты до введения в культуру и в процессе выращивания in vitro;

— определение причин гибели растений in vivo и способы повышения их устойчивости к стрессам;

— последействие выращивание растений in vitro на их способность к вегетативному размножению.

2.Биологически обоснованные сроки применения регуляторов роста, способы выращивания маточных растений и пикированных розеток земляники при производстве посадочного материала высших категорий качества.

3.Технология производства маточных растений яблони высших категорий качества на клоновых подвоях.

1 .обзор литературы.

Выводы.

1. В результате многолетних исследований (1973;2004) разработана система размножения исходных здоровых растений, ссэлитного материала, позволяющая обеспечить закладку плодоносящих насаждений элитным посадочным материалом.

2. Показано на большом количестве различных видов растений, что основные причины, снижающие эффективность микроклонального размножения связаны с этапом введения эксплантов в культуру, укоренением и адаптацией растений к нестерильным условиям. Характер развития эксплантов не зависит от жизненной формы растений и не коррелирует со способностью к вегетативному размножению традиционными способами. Гибель эксплантов в результате отсутствия роста, выделения фенолов, развития каллуса и стекловидности может быть уменьшина посредством предварительного воздействия на маточные растения и экспланты высокими и низкими температурами, дефолиацией, электростатическим полем, введением в питательную среду антиоксидантов (витамина Е, глицина). Негативные последствия отделения эксплантов от маточного растения можно ослабить, если использовать AgN03 и CuS04 в качестве стерилизующих веществ и располагать экспланты на питательной среде морфологически верхним концом.

3.Оптимальный солевой состав питательной среды для размножения видов и сортов в конкретных условиях может быть установлен в результате испытания макро, микроэлементов, кальция, хелата железа в концентрациях 1:½:1/3 во всех возможных комбинациях, с последующей детализацией содержания общего азота и соотношений NH4: N03. Экспланты груши (Лада, Чижовская) лучше развивались на среде, содержащей Уг макро, 1 микроэлементов, '/2−1/3 хлористого кальция, Уг хелата железа среды Мурасига и Скуга, экспланты вишни (Апухтинская) на среде Уг макро, Уг микроэлементов, 1/3 хлористого кальция, 1 хелата железа среды Кнопа.

Уменьшение в среде содержания обшего азота повышает регенерационную способность эксплантов земляники и крыжовника и снижает у вишни розоцветной. При равном соотношении аммиачного и нитратного азота приживаемость эксплантов земляники возрастает с увеличением общего азота. Если в среде преобладает аммиачный азот, то приживаемость снижается с увеличением содержания общего азота. Этап пролиферации побегов земляники необходимо проводить на среде М.С. с общей концентрацией азота 20 мМ при соотношении NH4: N03 1:2- роз при содержании общего азота 10,3−13,7 мМ и соотношении NH4: N03 1:2,1:3. 4. Приживаемость и рост растяжением эксплантов различных видов растений зависит от концентрации, типа и соотношения регуляторов роста. С уменьшением содержания 6БАП приживаемость эксплантов земляники, актинидии китайской увеличивается, тюльпанного дерева, магноли кобус, пиона древовидного уменьшается. Для культур, склонных к развитию каллуса и адвентивных побегов на первом этапе (земляника) необходимо использовать регуляторы роста, стимулирующие рост растяжением (гиббереллин с ретардантами, гумат натрия, нуклеопептиды). Сочетание амбиола с пике обеспечивает рост растяжением эксплантов лещины краснолистной. б. Начало пролиферации боковых побегов спуровых форм яблони зависит от их регенерационной способности на этапе введения в культуру. Максимальный коэффициент размножения хорошо вводимых в культуру форм яблони (267, 269) отмечен на 2−5 пассажах, плохо вводимых (275) — на 7 пассаже. Удаление верхушки побега и расположение его горизонтально на питательной среде увеличивает побегообразовательную способность клонового подвоя яблони 62- 396. Хранение в течение 4−5 недель пролиферирующих культур яблони при температуре +2+4°С после продолжитеьного культивироавания, с последущим выращиванием на среде, содержащей 0,01−0,1 мг/л 6БАП, увеличивает число продуктивных пассажей.

6. Слабо пролиферирующие спуровые формы (273) обеспечивают стабильный выход побегов, пригодных для укоренения до 10-го пассажа. Кратковременное выращивание конгломерата земляники на среде с гиббереллином и ССС, а груши — в условиях электростатического поля увеличивает длину побегов перед этапом укоренения.

7. Укоренение побегов земляники возможно на первом, робинии и вейгелы на втором пассаже, яблони и груши — после 5−10-го пассажа в зависимости от гормонального и солевого состава среды. Сокращение в среде М.С. макроэлементов на Уг или общего азота на '/2−1/3 увеличивает укоренямость побегов земляники и яблони.

8.Характер укоренения земляники зависит от используемых индукторов корнеобразования, их концентраций и сочетаний.

Введение

в питательную среду гумата натрия, крезацина, мивала, культара существено увеличивает укоренение, уменьшает развитие каллуса. Культар способствует развитию корневой системы непосредственно из меристематической верхушки размером 250−300мкм, при этом корни окрашены в зеленый цвет. Применение ПАВ (КЭП, Твин-40) повышает активность ИМК в 2 раза и уменьшало активность культара в 6 раз, что позволяет проводить этап укоренения при более низких концентрациях ауксинов. Совместное применение ИМК и AgN03 ускоряет начало корнеобразования у земляники.

9. Укоренение побегов яблони зависит от способа и продолжительности этиоляции, температурного режима и регуляторов роста. Этиоляция пролиферирующих культур при пониженных температурах в дальнейшем увеличивает укоренение побегов на среде с ИМК и уменьшает на среде с культаром и мивалом. Композиционная среда способствует укоренению побегов яблони после 4-го пассажа, увеличивала количество корней 2-го порядка, площадь листьев, стимулирует развитие надземной и корневой систем на среде с 6 БАП (бмг/л).

10. Структурная среда, состоящая из перлита и агара в соотношении 0,5−1:1 по объему, способствует получению хорошо развитой корневой системы земляники, позволяет уменьшить концетрацию агара в 3 раза. Гель образующая жидкость в сочетании с питательной средой (20−66% по объему) обеспечивала структуру среды, аналогичную контрольной (7 г/л агара), и не влияет отрицательно на укоренение побегов земяники.

11. Адаптация растений к нестерильным условиям зависит от культуры, регуляторов роста, времени перевода in vivo, структуры среды, способа укоренения, способности адаптировать существующие листья и корни и развивать новые. Использование крезацина, мивала, культара, каппилярных трубок и двойного покрытия сосудов обеспечивает частичную адаптацию in vitro, повышая жизнеспособность растений в нестерильных условиях.

12. Продолжительность хранения in vitro при пониженных положительных температурах зависит от сорта, состава среды и степени развития растений земляники. Использование в среде культара, 10% сахарозы, непродолжительного выращивания в условиях светокомнаты, увеличивает продолжительность хранения.

13.Способность земляники, яблони, груши к каллусогенезу и адвентивному органогенезу как начальному этапу размножения растений искусственными семенами зависит от сорта, состава питательной среды, типа экспланта и способа воздействия на него. Развитие эмбриогенного каллуса из пыльников земляники было возможным только при наличии в среде 6БАП и НУК в соотношении 10:1. Прямой эмбриогенез из пыльников земляники (сорт Фестивальная) был отмечен в варианте обработки бутонов температурой +5°С., из листовых дисков земляники и актинидии китайской в условиях электростатического поля, из условной корневой шейки земляники (сорт Сударушка) на питательной среде с 6БАП и мочевиной.

14. Продуктивность маточных растений земляники зависит от сорта, способа выращивания, регуляторов роста. Обработка растений гиббереллином в фазу выдвижения бутонов, цветения, начала образования усов и розеток увеличивает общий выход рассады за счет интенсивного образования листьев, рожков, усов, розеток и усов от розеток. Совместное применение гиббереллина с ретардантами существенно увеличивает выход стандартной рассады. Применение мульчпленки и систематического отделения розеток уменьшает коэффициент размножения. Двойное мульчирование увеличивает коэффициент размножения и выход стандартной рассады, улучшает качество корневой системы и облегчает уборку рассады.

15. Выращивание маточных растений земляники в контейнерах позволяет более эффективно использовать защищенный грунт без ухудшения фитосанитарного состояния ссэлитного материала земляники, а разработанная система удобрений (азота 3,75, фосфора 3,91, калия 6,43 г. д в./растение) — увеличить коэффициент размножения (1:68−125). Использование подтопляемой стеллажной теплицы уменьшает затраты на подкормки и обеспечивает выход розеток 1600 шт./м2 за 6 месяцев выращивания.

16. Двухлетний цикл использования горизонтально посаженных маточных растений клоновых подвоев яблони в защищенном грунте позволяет совместить на одном участке маточник клоновых подвоев, 1−2 поля питомника и получать 80−150 тыс./га ссэлитных растений яблони, сократив в 8 раз потребность в клоновых подвоях.

Рекомендации производству.

Для увеличения приживаемости и усиления роста эксплантов трудно-вводимых видов и сортов необходимо использовать маточные растения защищенного грунта, либо растения после термотерапии, или условия электоростатитечского поля (40квт/м). Провести ревизию макро, микроэлементов, кальция, хелата железа в наиболее подходящей стандартной среде в дозе 1:½:1/3 при всех возможных комбинациях. Экспланты растений, выделяющие фенолы, необходимо размещать морфологически верхним концом на питательной среде, а пробирки ставить таким образом, чтобы не нарушать полярность. Для уменьшения отрицательного действия продуктов окисления фенолов в питательную среду на этапе введения яблони в культуру необходимо добавить 1 мг/л витамина Е, клематесов 5−10 мг/л глицина.

Этап введения эксплантов земляники следует проводить на модифицированной среде М.С.(½ N, 440 мг/л хлористого кальция), в качестве регуляторов роста использовать: ГКЗ 1+ССС 0,1- ГКЗ 1+культар 1- ГКЗ 0,5+ 0,5 пикекрезацин 0,2 + ИМК 0,2- крезацин 0,5+мивал 0,2- гумат натрия 1 мг/лкрыжовника на модифицированной среде M.C.(¼N.+ 6БАП 0,5 мг/л+ ИМК 0,01 мг/л) — вишни на модифицированной среде Кнопа (½ макро,½микроэлементы, 1/3 хлористый кальций, 1 хелат железа +6БАП 1 мг/л+ ИМК 0,1 мг/л) — груши на модифицированной среде М.С.(½ макро, 1 микроэлементы, '/2−1/3 хлористого кальция, Уг хелата железа + 6БАП 1 мг/л+ ИМК 0,1−0,15 мг/л) — актинидии китайской на среде М.С.+ 6БАП 0,2−0,5 мг/л. Этап пролиферации земляники проводить на модифицированнорй среде М.С., содержащей 20 мМ азота при соотношении NH4: N03 1:2 + 6БАП 0,3 мг/л+ ИМК 0,2мг/л+ ГКЗ 0,1 мг/лроз на модифицированной среде М.С., содержащей 10,3−13,7 мМ азота при соотношении NH4: N03 1:2 + 6БАП 1,5 мг/л. Для увеличения количества боковых побегов яблони на этапе пролиферации у длинных побегов (>2.5см) при пересадках необходимо удалять верхушки и располагать горизонтально. После 6−10-го пассажа конгломераты необходимо поместить на месяц на хранение (+2+4°С), последующий пассаж провести на среде, содержащей 6БАП 0,01−0,1 мг/л. Перед укоренением in vitro конгломерат земляники необходимо пересадить на среду, содержащую ГКЗ 1мг/л+ССС 0,1 мг/л. Укоренение земляники проводить на структурной среде, содержащей рецептуру Фоссарда, или Уг макроэлементы М.С. с добавлением 0,1−0,3 мг/л культара- 2мг/л мивала- 1 мг/л мивала+ 0,5 мг/л крезацина- 0,1 мг/л ИМК+ 0,1 мг/л крезацина, при соотношении перлита и питательной среды с агаром (2−3 мг/л) 0,5−1:1 по объему. Укоренение побегов яблони следует проводить после 5−6-го пассажа на модифицированной среде M.C.(N4/5+ ИМК 2 мг/л). После 9- 10-го пассажа побеги пролифирирующих культур яблони, хранившиеся при температуре +2+4° С, необходимо укоренять на питательной среде, содержащей 0,5 мг/л ИМК, побеги не подвергнутые этиоляции на среде, содержащей культар 0,5 мг/л, мивал 1 мг/л. Укоренение побегов груши проводить на модифицированной питательной среде М.С.(½ макроэлементы+ 0,5 мг/л ИМК+ 0,5 м г/л крезацин) в условиях электростатического поля. Сосуды для укоренения побегов необходимо накрывать двойным покрытием (внутренний слой целлофан, внешний — термоусадочная пленка). После начала корнеобразования верхний слой удаляется постепенно в течение месяца. Перед посадкой растений в нестерильные условия их необходимо на месяц поместить в холодильник, а субстрат обработать эупареном (0,1%). Перед хранением земляники при пониженных температурах боковые побеги поместить на питательную среду Уг М. С., содержащеую 0,5 мг/л культара или 0,2- 0,5 мг/л ИМК, и 7 дней выращивать в условиях светокомнаты. Растения земляники, полученные in vitro, высаживать в защищенный грунт по мульчпленке, обработать гиббереллином (60 мг/л) в фазу выдвижения бутонов, цветения, начала образовыания усов и розеток. После заполнения междурядья розетками их засыпают торфом (3 см). При недостатке площади защищенного грунта, маточные растения высаживают в контейнеры, заполненные торфом с песком 3:1. При посадке поверхностно внести двойной суперфосфат 6 г/ растение, через 5−7 дней после посадки проводить внекорневые подкормки (5 раз за сезон): 27г/растение растворином (10:5:25), 2,4 г/растение мочевиной. Розетки пикировать в субстрат торф: песок, 2:1,или сфагновый торф, заправленный 1,5 кг/мЗ двойным суперфосфатом, 0,75 кг/мЗ калийной селитрой, 0,4 кг/мЗ аммиачной селитрой.

Клоновые подвои высотой 0,9−1,2 м высаживать в защищенный грунт по схеме 60×50×10 см горизонтально. Окулировку подвоев проводить в июле, выкопку маточных растений проводить в однолетнем возрасте. Не заокулированные подвои использовать для повторного цикла размножения и закладки суперэлитных маточников клоновых подвоев.

2.4.

Заключение

.

Организация и экономика производства здорового посадочного материала в стране.

Успехи современного садоводства в мире являются результатом решения трех основных проблем: создание сорта и подвоя, производство саженцев и механизации трудоемких процессов. Государственный реестр в нашей стране ежегодно пополняется новыми сортами, некоторые из них превосходят зарубежные аналаги по основным показателям. До последнего времени Россия входила в число мировых лидеров по площадям, занимаемых садовыми растениями, хотя и наблюдалась тенденция их уменьшения. Однако, Россия значительно отстает по урожайности даже от среднего мирового уровня. Ситуация складывается таким образом, что отечественный производитель вытеснен с российского рынка плодов и ягод, т. е. мы можем потерять садоводство как отрасль. Страна не получила ожидаемых положительных результатов от фермерских хозяйств, особенно в производстве плодов. Возможности приусадебного садоводства увеличить производство высокотоварной, конкурентно-способной продукции в больших масштабах весьма ограничены. В этом плане можно лишь рассчитовать на расширение объемов выращивания трудоемких культур — земляники, малины, вишни (Ермаков А.Е., 1999). Мировой опыт показывает, что высокотоварные и конкурентоспособные плоды можно получать лишь при условии промышленного выращивания. Вместе с тем в России имеются все возможности создания адаптивного, интесивного производства плодов и ягод, которое должно базироваться на организационнопроизводственных структурах всех форм собственности. Ученые — плодоводы страны выявили макро-и микрозоны промышленного производства плодов и ягод, создали модели крупных и мелких садоводческих предприятий. Для того чтобы, реализовать весь научый потенциал России в области садоводства в первую очередь необходимо реанимировать отрасль питомниководства.

Производство посадочного материала садовых растений требует создания в стране современной, самостоятельной отрасли, усовершенствования схемы производства здорового посадочного материала с учетом достижений в области биологии, физиологии, фитопатологии и плодоводства.

Современное садоводство промышленного типа характеризуется интенсивными насаждениями, быстрой ротацией генетически однородных сортов. Все это способствует быстрому распространению заболеваний при наличии очагов инфекции. В этой связи биологические особенности, товарные качества посадочного материала, отсутствие в нем инфекции во многом опредеделяют экономику отрасли садоводства.

Вегетативное размножение — основной способ размножения садовых растений. Поддерживая генетическую и физиологическую константность растений без существенного изменения наследственного потенциала, он позволяет распространять в больших масштабах определенный генотип. Несмотря на фенотипическую однородность сортовой популяции, в посадках постоянно поддерживается определенный уровень гетерогенности. Причиной этого могут быть климатические условия, способы размножения, продолжительность выращивания сорта, приводящие к появлению малопродуктивных клонов. Каждый сорт характеризуется определенной совокупностью полезных свойств, сохранение которых должно составить основное содержание питомниководческой работы. Вегетативно размноженные растения являются не только резерваторами желаемой наследственности, но и вирусов и других патогенов. Очевидно, что решением данной проблемы является создание источника здоровых растений, размножение их в условиях, исключающих реинфекцию, сокращение этапов размножения. Мировой опыт, а также существующие разработки в стране позволяют утверждать о возможности закладки промышленных плантаций плодовых и ягодных культур элитным посадочным материалом (Swartz H.J., 1981). Однако, для этого необходимо усовершенствовать сертификационную систему размножения садовых растений с применением современных форм кооперации, органичного сочетания интересов вузов, науки, производства.

Ежегодная потребность в здоровом посадочном материале плодовых и ягодных культур по экономическим районам России представлена в Федеральной программе «Возрождение садоводства России» (приложение). Такие потребности в посадочном материале различных категорий качества необходимы при использовании традиционных способов размножения. Для закладки промышленных насаждений земляники элитой, питомники должны ежегодно производить 825 000 тыс. штук рассады, что возможно при условии интенсивного использования микроклонального размножения. Потребность в растениях, выращенных in vitro, в свою очередь будет зависеть от технологии их размножения в защищенном грунте (табл.131).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.М. Получение безвирусной суперэлиты земляники методом культуры верхушечных меристем./Н.М.Абраменко // Вирусные болезни плодовых, ягодных культур и винограда в Молдавии. Кишинев. -Молдова, 1973. — вып. 2. — С. 25−50.
  2. Н. В. Некоторые особенности роста и плодоношения земляники в связи с обработкой растений регуляторами роста./ Н. В. Агафонов, Э. П. Соловей // Применение физиологически активных веществ в садоводстве. -1974.-С. 112−117.
  3. О.Н. Обоснование способов подготовки маточных растений ягодных кустарников к вегетативному размножению: /О.Н. Аладина/ -Дисс. докт. с.-х. наук: 06.01.07М., 2004. -481с.
  4. Л.В. Влияние условий культивирования in vitro на рост и развитие растений земляники садовой (Fragaria ananassa Duch.)/ Л. В. Алексеенко, О. Н. Высоцкая // Повышение эффективности садоводства в современных условиях. 2003. — № 1. — С. 159−162.
  5. Д. П. Производственный опыт и перспективы развития садоводства на слаборослых подвоях в Молдавии. -/Д.П.Андрющенко/ М.: Колос.-1966.-С. 23−30.
  6. В.И. Технология производства посадочного материала яблони в республике МолдоваЖИ.Бабук // Посадочный материал для интенсивных садов.-1994.-С. 11−12.
  7. В.К.- Размножение клоновых подвоев яблони отводками, зелеными и одревесневшими черенками./В.К.Бакун, М. Т. Тарасенко // Известия ТСХА.- 1985.-Вып. 1.-С. 113−115.
  8. В.И. Ростовая активность эндогенной ИУК в проростках озимой пшеницы при выращивании в условиях разной длины дня./В.И.Бавенко, С. Н. Бойко // С/х биология.- 1988.- № 5.- С. 33−36.
  9. О.О. Использование ингибиторов вирусов при оздоровлении земляники методом культуры верхушечных меристем./О.О.Белошапкина, В. А. Шмыгля // Известия ТСХА.- 1986.- Вып. 5.- С.116−118.
  10. Белошапкина 0.0. Использование биопрепаратов при клональном микроразмножении земляники./О.О.Белошапкина, И. В. Жаркова // Доклады ТСХА.- М. 2001, — Вып. 273.- Ч.2.- С. 284−289.
  11. Белошапкина 0.0. Биологические и технологические основы оздоровления посадочного материала земляники от вирусов./О.О.Белошапкина // М.- МСХА.- 2005.- С. 59−71.
  12. Л.Ю. Метод термотерапии для получения здоровых плодовых саженцев./Л.Ю.Богуш // Садоводство, виноградарство и виноделие Молдавии. 1986. — № 1.- С. 56−57.
  13. В.М. Процессы морфогенеза высших растений и их стохастическая модель./В.М.Бурень, Г. Н. Копылов // Теоретические и математические аспекты морфогенеза. М., 1987 — С. 224−239.
  14. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений./Р.Г.Бутенко / М., Наука.- 1964 С.
  15. Д.Б. Поверхностная активность гуминовых кислот одна из причин их стимулирующего действия на рост растений./ ДБ. Вахмистров // Физиология растений. — 1989. — Т. 36., вып. 5 — С. 980−981.
  16. А.П. Индукция систем гомостатирования при тепловом шоке и ее возможная роль в развитии состояния стресса у растений./А.П.Веселов // IV Съезд общества физиологов растений России. 1998. — Т.1.- С. 332−333
  17. В.Ф. Влияние гиббереллина на рост и урожайность ремонтантной земляники./В.Ф.Верзилов, А. А. Михтелева // Бюлл. Главного Ботанического сада. 1963- Вып. 51. — С. 93−97.
  18. В.Ф. Действие гиббереллина на репродуктивную сферу земляники./В.Ф.Верзилов, А. А. Михтелева // Фитогормоны в процессах роста и развития растений. М.: Наука — 1974 — С. 36−41.
  19. В.Н. Влияние меди на содержание р-ИУК и ее катаболизм в корнях растений./В.Н.Вонсавирене // IX Всесоюзная конференция по проблемам микроэлементов в биологии. 1981- С. 155−157.
  20. В.Н. Влияние меди и марганца на содержание р-ИУК в прорастающем картофелеЖН.Вонсатурене // Научные труды высших учебных заведений СССР. Биология 1985. — T.XI. — С. 87.
  21. Т.Г. Некоторые особенности роста и развития земляники на Сахалине: /Т.Г.Воронова/ Автореф. дисс. канд. с.-х. наук: 06.01.07-Сахалин., 1953.
  22. В.А. Культура изолированных стеблевых верхушек вишни./В.А.Высоцкий, Ю. Г. Попов, В. Г. Трушечкин // Физиология растений. 1976. -Т.23., вып. 3.- С. 513−518.
  23. В.А. Регенерация изолированных меристематических верхушек древесных растений in vitro./В.А.Высоцкий, Ю. Г. Попов, В. Г. Трушечкин // Плодоводство и ягодоводство Нечерноземной полосы,-1976, — T. IX- С. 89−100.
  24. В.А. Микроклональное размножение подвоев яблони./В.А.Высоцкий // Садоводство. 1983. — № 7.- С. 20−21.
  25. В.А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных культур: /В.А.Высоцкий/Дисс. докт. с.-х. наук:06.01.07. -М., 1998. с.
  26. К.З. Фитогормоны и клетки.-/К.З.Гамбург/ М.: Наука, 1970.
  27. X. Биотехнология культивирования клеток и биотехнологии растений.-/Х.Геринг/ М.: АН СССР.- 1991.
  28. Г. Ф. Земляника: прошлое, настоящее, будущее. /Г.Ф.Говорова, ДН. Говоров/ М.: 2004.-347с.
  29. И.В. Компания Твайфордплант лаборатория. -/И.В.Гринченко/-Посольство СССР в Великобритании. 1985.
  30. Т. Введение в биохимию растений. -/Э.Мерсер/-М.: Мир 1986.
  31. Э.И. Мутагенез в культуре ткани риса и получение на его основе нового исходного материала./Э.И.Давоян // Генетика. Т. 19., № 10 — 1983. -С. 1714−1719.
  32. Г. Гель-хромотография. -/Г.Детерман/М.: Мир 1970.
  33. К. Гормоны растений. Системный подход. -/К.Дерлинг/ М.: Мир.- 1985, — 304 с.
  34. Г. Н. К методике ускоренного укоренения побегов с.-х. растений./Г.Н.Еремеев // Труды прикладной ботаники, генетики и селекции.- 1933. Серия III. — № 3.- С. 273−283.
  35. Г. М. Ботаника. Сельхозиздадат.-/Г.М.Жуковский/ М.: 1938.
  36. Н.В. Клональное микроразмножение растений. /Н.В.Катаева, Р.Г.Бутенко/ М.: Наука. 1983 — 97с.
  37. Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони./Н.В.Катаева// Сельскохозяйственная биология М. — 1986. -Вып. 4.-С. 18−22.
  38. Н.В. и др. Культивирование клеток и биотехнология растений. -М.-1991.-с.
  39. И. Жизнь растений.-/И.Кернег/ 1896.
  40. В.И. О механизме действия ингибиторов роста./В.И.Кефели, Р. Х. Турецкая // Успехи современной биологии. 1964. — Т.57., № 1- С. 99−111.
  41. В.И. Участие фенольных соединений в ингибировании активности ауксинов и в подавлении роста побегов ивы./В.И.Кефели, Р. Х. Турецкая // Физиология растений.- 1966 Т. 12., № 4 — С. 1965
  42. Кефели В. И Онтогенез.-/В.И.Кефели, Р. Х. Турецкая., Э. М. Кох., Л.В.Буханова/М.: 1970.- 1,3
  43. В.И. Природные ингибиторы и фитогормоны.-/В.И.Кефели/ М.: Наука.-1974.-353с.
  44. В.И. Факторы регулирования роста и органообразованияЖИ.Кефели // Биология развития растений- М.: Наука, 1975 С.89−110.
  45. Л.С. Изучение биологических особенностей земляники в условиях Воронежской области: /Л.С.Кондаков/ Автореф. дисс.. канд. с.-х. наук: 06.01.07.-Воронеж, 1953.
  46. П. Вирусные болезни во ФранцииЛЪКорнуэ // Садоводство.-1968.-№ 3.-С. 45.
  47. Ю.С. Влияние способов подготовки рассады на рост и плодоношение земляники в условиях Московской области: /Ю.С.Коротков/-Автореф. дисс. канд. с.-х. наук 06.01.07М., 1956.
  48. И.В. Фитогормональная регуляция процессов адаптации у растений: роль абсцизовой кислоты в устойчивости к стрессам./И.В.Косяковская, Е. М. Майдебург // Физиология и биохимия культурных растений. 1989.-t.21., № 4 — С. 315−321.
  49. М.С. и др. Может ли салициловая кислота влиять на многоклеточный транспорт вируса табачной мозаики через изменение проводимости плазмодесм./М.С.Красавина и др. // Физиология растений-2002 Т.49, № 1.- С.7−17.
  50. А.Г. Влияние микроэлементов на урожай земляники./ А. Г. Кривоногова, А. А. Срослова // Труды Горьковского с.-х. института.-1974−1975.- Т.77.-С. 10−16.
  51. О.Н. Цитокинины, их структура и функции.- /О.Н.Кулаева/М.: Наука, 1973.
  52. А.Н. Клональное размножение цимбидиума./А.Н.Лавреньтева // Культура клеток растений и биотехнология.- Тез. докл. IV Всесоюзной конф. Кишинев. 1983.- с. 131.
  53. А.С. Рост и развитие растений. /А.С.Леопольд/М.: Мир 1968−489с.
  54. В.И. Рост растений- /В.И.Кефели/М.: Колос 1973 .
  55. Л.А. Корнеспецифические антигены на ранних этапах клеточной дифференциации в процессе индуцированного ризогенеза у черенков нута./Л.А.Марденов, Г. С. Ширфани // Физиология растений-1988, — Т.35, вып. 5.-С.
  56. Е.И. Влияние гиббереллина на рост и развитие садовой земляники./Е.И.Мелехов // Физиология растений. 1990- Т.37, вып. 3.-С. 561−567.
  57. Л.А. Влияние гиббереллина на рост и развитие садовой земляники: /Л.А.Михтелева/ Автореф. дисс. канд. с.-х. наук: 06.01.07-М., — 1972.
  58. МСХ Р. Ф. Федеральная программа возрождения садоводства России. -1995.-16 с.
  59. Мин. плодоовощ. хоз. СССР- Положения о производстве супер-суперэлитного, суперэлитного, элитного посадочного материала, закладкаи эксплуатация маточных насаждений плодовых и ягодных культур М.: Колос, 1984.
  60. Н.А. Молекулярные и клеточные механизмы морфогенеза в культуре клетокрастений.-/Н.А.Моисеева/М.: 1991-С. 166−185.
  61. Г. С. Гормоны растений гиббереллины-/Г.С.Муромцев, В.Н.Агнистикова/М.: Наука, 1973.
  62. П.Н. Роль перивискулярных волокон в образовании придаточных корней у зеленых черенков садовых растений./П.Н.Орлов, В. В. Фролов // ПлодоводствоТСХА- 1985.-вып. 6.-С. 102−115.
  63. А.П. Тормозящее действие ГК3, 2,4-Д и кумарина на процесс корнеобразования у листовых и стеблевых черенков фасоли./А.П.Панин // Физиология растений -1986 Т.ЗЗ., вып. 5, — С. 951−957.
  64. И.О. и др. О распространении вирусов в почвенных экосистемах./И.О.Папко и др. // ГБС РАН. Бюлл. ГБС.- 2002.- № 187.- С. 127−133.
  65. Л.Г. Некоторых вопросы выращивания посадочного материала земляники./Л.Г.Пехото// Научн. труды северо-западного НИИСХ 1970-№ 16.- С. 143−149.
  66. Л.Г. Земляника-/Л.Г.Пехото, К.А.Иванова/Лен. Изд.- 1975.
  67. В.В. Физиология растений. /В.В.Полевой/ М.: Высшая школа, 1989.-460С.
  68. С.А. Адаптация растений регенерантов земляники к неблагоприятным условиям./С.А.Поляков, С. П. Расторгуев, А.В.Верзилин
  69. Повышение эффективности садоводства в современных условиях. -2003.-№ 1.-С. 335−339.
  70. Ю.И. Термическое обеззараживание плодовых и ягодных растений от вирусовЛО.И.Помазков, И. С. Литвиненко, И. Л Зленко. // Плодоводство и ягодоводство Нечерноземной полосы. Сб. научн. тр-НИЗИСНП. 1972.- Т.4.- С.363−371.
  71. Ю.Г. Оздоровление и размножение плодовых и ягодных растений методом культуры меристематических верхушек./Ю.Г.Попов // Методические указания М.: — 1979.
  72. С.Н. Интенсификация садоводства и виноградарства-/С.Н.Пронин/М.: Колос.- 1983
  73. Л.Г. Основные закономерности развития земляники./Л.Г.Резниченко // Известия ТСХА 1958.- вып. 6 — С. 73−92.
  74. Д.А. Избранные труды по минеральному питанию растений-/Д.А.Сабинин/М.: Наука.- 1971.
  75. Е.З. Размножение клоновых подвоев плодовых культур зелеными черенками./Е.З.Савин // Садоводство и виноградарство 2001 — № 1.- С. 15−17.
  76. Э.Э. Методы получения элитного материала земляники и черной смородины.-/Э.Э.Савздарг/М.-Инф. Листок ГОСИНТИ 1970.
  77. Н.П. Проблемы производства сертифицированного посадочного материала яблоня в ЦЧР./Н.П.Семина// Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур 2001.- С. 87−88.
  78. В.А. Электронно-микроскопические исследования распространения палочковидных частиц вирусов табачной мозаики в вегетативной почке больного томата./В.А.Смирнов // Биофизика 1956-Т.З., вып. 2.-С. 252−256.
  79. A.M. Рост и метаболизм изолированных корней в стерильной культуре.-/А.М.Смирнов/ М.: Наука. 1970.- 454 с.
  80. Э.П. Влияние гиббереллина на развитие вегетативных органов земляники крупноплодной./Э.П.Соловей // Доклады ТСХА- 1972, — вып. 173.- С. 35−38.
  81. Союзплодопитомник. Технология производства безвирусного посадочного материала плодовых, ягодных культур и винограда. 1986−168с.
  82. О.Ю. Эффективность различных методов оздоровления смородины от вирусов./О.Ю.Суркова, Ю. Н. Приходько // Плодоводство и ягодоводство России. Сб. науч. тр. ВСТИСП 1995.- Т.1.- С. 193−198.
  83. Г. С. Клоновые подвои яблони в Горьковской области./Г.С.Сыроегина, В. Н. Землянов // Сб. Клоновые подвои плодовых культур в СССР.-Мичуринск.- 1981-С. 19−22.
  84. К.М. Мембранные механизмы регулирования ростовых процессов./К.М.Сытник // Успехи современной биологии- 1983 Т.95, вып. 1.-C.33−43.
  85. М.Т. Зеленое черенкование в практику питомниководства/М.Т.Тарасенко//Садоводство 1967-№ 5-С. 24−25.
  86. В.Г. Выращивание здорового посадочного материала земляники./В.Г.Трушечкин // Доклады ТСХА 1965 — вып. 102.- С. 381 387.
  87. В.Г. Выращивание здорового посадочного материала земляники.-/В.Г.Трушечкин, Ф.Я.Поликарпова/ М.: Колос 1972.
  88. В.Г. Современные тенденции в развитии ягодоводства./В.Г.Трушечкин // Новое в агротехнике ягодных культур.-М.: Колос, 1972.
  89. Д. Производство свободного от вирусов и микоплазмов посадочного материала плодовых растений./Д.Трифонов // Международныйс.х. журнал 1975-№ 7 -С57−59.
  90. М.Ф. Гумат натрия, как экзогенный регулятор фотосинтетических процессов./М.Ф.Трифонова // Эффективность азотных удобрений.- 1988.-С. 135−140.
  91. И.Г. Пути и методы создания, оздоровленных и устойчивых к вирусным заболевания форм вишни./И.Г.Тихонов // Повышение эффективности садоводства в современных условиях.- 2003- № 1- С. 144−149.
  92. Тхи Муой. Влияние индолил-уксусной кислоты на динамику активности цитокининов в листовых черенках фасоли при укоренении/Гхи Муой // Физиология растений.- 1984-Т.31, вып. 5 С. 909−913.
  93. А.А. Бензимидазолы, их регуляторные свойства и функции.-/А.А.Умаров/Ташкент. 1990.
  94. Р. Механизмы опыления, размножения и селекции растений.-/Р.Френкель, Э. Галун/ М.: Колос, 1982.-С.28.
  95. Фролова J1.B. Особенности популяции культивируемых клеток. // Культура клеток растений.-Л.В.Фролов/ М.: Наука, 1981- С. 5−16.
  96. Д. Вирусные и вирусоподобные болезни земляники./Д.Фултон, Д. Мак-Грю // Вирусные болезни ягодных культур и винограда, — М.: Колос, 1975.- С. 6−11.
  97. Н.Г. Фитогормоны. Очерки по физиологии гормональных явлений в растительном организме.-/Н.Г.Холодный/ Киев, АН УССР, 1938.
  98. Хон Б. Мобильность генома растений.-/Б.Хон, Э. Денис/ М.: Агропромиздат -1990.-271 с.
  99. М.Х. Фотопериодизм и гормональная регуляция цветения растений./М.Х.Чайлахян // Успехи современной биологии 1974 — Т.78, вып. 1, — С.92−106.
  100. М.Х. Автономный и индуцированный механизм регуляции цветения растений./М.Х.Чайлахян // Физиология растений.- 1975 Т.22, вып.6.- С. 1232−1265.
  101. М.Х. Терминология роста и развития высших растений-/Р.Г.Бутенко/ М.: Наука, 1982, — С. 96.
  102. Г. В. Размножение клюквы крупноплодной в культуре in vitro./r.B.4eKypoBa // Бюлл. Г БС. 1990.- вып. 157.- С. 90−95.
  103. Т.М. Методические рекомендации по массовому размножению орхидей.-/Т.М.Черевченко/Киев, 1982.
  104. А.В. Изучение вирусологического состояния семенных подвоев яблони./А.В.Черников // Промышленное производство оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур 2001.- С. 72−74.
  105. В.З. Морфогенез и условия образования вегетативных органов у садовой крупноплодной земляники. /В.З.Чирятьева / Автореф. дисс. канд. биол. наук: 06.01.04 -М.: 1966
  106. И.И. Разработка системы производства здорового посадочного материала земляники в Нечерноземной зоне./И.И.Чухляев/ Дисс. .канд. с.-х. наук: 06.01.07.- М., 1969.
  107. М.А. Современная технология возделывания земляники за рубежом.-/М.А.Шаталов/М.: 1975.-С. 60−69.
  108. В. С. И др. Сельскохозяйственная биотехнология-/В.С.Шевелуха/ М.1998.
  109. П.Г. Биологические основы агротехники плодоводства, —/П.Г.Шитт/М.: Госсельхозиздат, 1952,—159с.
  110. А.А. Клональное микроразмножение садовых растений./А.А.Шипунова/ Автореф. дисс.. канд.с.-х. наук.06.01.07-М., 2003.
  111. В.А. Эффективность оздоровления земляники от вирусов методом культуры апикальных меристем./ В. Ю. Минаев // Интегрированная защита растений М — 1985 — С.49−53.
  112. К. Анатомия растений.-/К.Эсау/ М.: Мир, 1965 563с.
  113. Abbott A. J. Hyperhydration in cultures shoots // Long Aston Report. -1982.-P.130.
  114. Abbott A. J. Practice and promise of micropropagation of Woody Species. // Acta Horticult. 1978. — V. 75. — P. 113−128.
  115. Abbott A. J. Culture of Mallus tissues in vitro multiplication of apples plants from isolated shoot apices.// Sci. Horticult. 1976. — № 4. — P. 183−185.
  116. F. В.// Planta. 1971. — T. 97 — P. 87−91.
  117. Adams A. N. The effect of goossberry vien bandins virus on the growth and yield of goossberry and red currant. // J. of Hort. Sci., 1979. — V. 54. — № 23. — P. 25.
  118. Aerts J. Einflues von viresinfection auf Ertrag bei Erdbeeren.// Der Erwerbeobetbau. 1972. — J g. 14. — № 5. — P. 65−67.122Alan M. Jones. Do we have the auxin reseptor yet. // Physiol. Plant. 1980. -V. 80.-P. 154−158.
  119. Aldreefen A. et. al. In vitro rhizogenesis of Rose sp. in different substrates.// Acta Hortic. 1984. — V. 150. — P. 315−323.
  120. Aldrufen A. Rooting and acclimatization of Pelargonium zonale plantlets.// Acta. Hortic. 1987. — V. 1. — № 212. — P. 361−366.
  121. Ake Finne. Micropropagation of Rubus sp.// J. of Agricult. Sci. in Vinland. -1986.-V. 58.-P. 193−196.
  122. Alajzy. C. Influence of microproprogation on the performance and quality of P22 root-stock in mather plantanion.// J. of fruit and ornament, plant research. -1994. V. 2. -№ 3.- P. 91−100.
  123. Aloni B. The possible involvement of gibberellins and calcium in tipburn of Chinese Cabboge: study intact plants and detached leaves.// Plant Growth Regulation. 1986. — № 4. — P. 3−11.
  124. Alvaro S. Effect of some Antioxidants on in vitro Rooting of Apple shoots.// Hort. Sci. 1984. — V. 25, — №.11. — P. 1435−1436.
  125. Alvarer R. Relation ship between IAA levels in apple rootstocks cultures in vitro and adventitious root formation in the presence of IBA.// Plant Physiol. -1989. V. 89. — № 2. — P. 439−443.
  126. Amitrani A. et. al. Influence of the moment of application of IBA and darkness on in vitro rooting of M27.// Agr. Med. Vol. 1989. — № 119. — P. 417 423.
  127. Anderson W. C. Rooting of tissue cultured rhododendrons. // The Inter. Plant. Propag. Soc. 1978. — V.28. — P. 135−139.
  128. Anderson H. M. Etiolation as an aid to rooting.// Comb. Proceed. Inter. Plant. Propagat. Soc. 1981. — V. 31. — P. 331−341.
  129. Strawberry propagation behaviour of tissue culture plants.//Grower.-1981.-V.31.-№ 2.-P66−68.
  130. Anderson H. M., Abbott A.J. Micro-propagation of strawberry plants in vitro effect of growth regulators on incidence of multiapex abnormality.// Sci. Hortcult. 1982. — № 16. — P. 331−341.
  131. H. М., Sally Е. Wiltshire. Strawberry Physiology.// Long Ashton Res. Station.-1982.-P. 13−15.
  132. Anderson H. M. How to micropropagation strawberries grow.// Grower. -1983.-V. 29.-№ 19.-P. 20−21.
  133. Anderson H. M. Runnerig of microporated Cambridge vigor strawbeery plant.// Yong Asht. Res. St. 1983. — P. 107−108.
  134. Anderson W.C. A. Revised Tissue culture medium for shoot multiplication of Rododendron.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1984. — V. 109. — №.3. — P. 343−347.
  135. Annemarie Sauer. F. et.al. Different Suitability for in vitro Propogation of Rose Cultivars.// Gartenbauwissenschaft. 1985. — V. 50. — № 3. — S. 133−138.
  136. Antonia H. et. al. Evidence by Gel Fitration for solubilization of NAA by nonionic surfactans Miceller.// Hort. Sci. 1980. — V. 25. — № 10. — P. 1302−1303.
  137. Arthur P. Carter. Research current and proposed projects.// Nurseryman and Garden Centre. — 1972. — V. 155. — № 2. — P. 38−39.
  138. Arney S. A. The effect of leaf primordia and auxin on leaf initiation ration strawberry.// Planta. 1968. — V. 82. — №. 2. — P. 235−244.
  139. Ascunia J. Feliciano. In vitro rooting of Schoots from Embryo cultured Peach seedlings.// Hort. Sci. — 1983.- V. 18. — № 5. — P. 705−706.
  140. Atkinson A. The effect of medium composition on the subsequent initial performance of micropropageted strawberry plants.// Acta Horticult. 1986. — V. 2. -P. 877−878.
  141. Atanassov A. Method for continuous bud formation in tissue cultures of suger beet.// Z. Planzenzucht. 1980. — V. 84. — № 1. — P. 23−29.
  142. Athanasis S. Light treatments to improve efficiency of in vitro propagation systems.// Hort. Sci. 1986. — V. 21. — № 3. — P. 819.
  143. Athanasious S. Economon Paul E. Read. Influence of Light Duration and Jrradiance on micropropagation of hardy deciduous Azalea.// J. Am. Soc. Hort. Sci.-1986.-V. 111.-№ 1.- P. 146−149.
  144. Athanasaous S. Economon Panl E. Read. Light quality control of shoot and root formation in vitro in petunia culture.// Hort. Sci. 1986 — V. 21 — № 3. — P. 761−819.
  145. Axmed H. L. Andrea M. Acta. Hortic. 1987. — V. 1. — № 212. — P. 99−106.
  146. Bailey J. S., Rossi A. W. Time digging and method storing of strawberry plants for spring planting.// Proc. Amer. Hort. Sci. 1964. — V. 84. — P. 319−326.
  147. Baleriola -Lucas C. Comparisons between non rooting initial cultures and rooting long term cultures.// Aust. Hort. Res.Let. — 1983. — № 55. — P. 75.
  148. Baumann G. Possibilities and limitations of producing virus free raspberries by tissue culture.// Obstban. — 1981. — V. 6. — № 3. — P. 88−89.
  149. Ballester A. Etiolation as a pretreatment for in vitro establishment and multiplication of mature chestnut.// Physiol. Plant. 1989. — V. 7. — № 3. — P. 395 400.
  150. Baolin Z. Stoltz L. P. Acclimatization systems for Euplorbia fulgens microcuttigs.// Hort. Sci. 1989. — V. 24. — № 6. — P. 1025−1026.
  151. Baolin Zhag L. P.// Hort. Sci. 1989. — V. 74. — № 6. — P. 1025−1026.
  152. Barlass W. J. R. et. al. Shoot Regeneration in vitro from native Australian fruitbearing Frus-quandons and Plum Bush.// AustJ. Bot. 1980. — V. 28. — P. 405−409.
  153. Bartoline G. The effects of regulators of ethylene synthesis on rooting of Olea European L. cuttings.// Acta Horticult. 1986. — V. 8. — P.179.
  154. Bartoline G. The effects of ethylene on rooting of Olea Eurapea L. cutting.// Growth regulators influing production. 1985. — P. 176.
  155. Batten D. J. et. al. Ethylene and adventious root formation in hypocotel segment of Etiolation mung bean.// Plantas. 1978. — V. 138. — P. 193−197.
  156. Bee X. X., Chen. W. L. The effect of activated charcoal an the adsorption of plant growth regulators in culture medium.// Acta Phytophysiol. Sci. 1988. — V. 14. № 4.-P. 401−405.
  157. Beyer M. Ethylene Modification of an Auxin Pulse in Catton stem sections.// Plant Phisiol. 1969. — V.44. — P. 1690−1694.
  158. Beech M. G. The effect of in vitro cytokinin concentration on the fruiting and growth of conventionally propagated strawberry runner progeny.// J. of Hort. Sci. -1988.-V. 63. -№ 1.-P. 77−81.
  159. Bengtson. C. Water stress, transpiration, kinetin and ABA.// Physiol Plant. -1979.-V. 45.-P. 183−188.
  160. Beattie D. How release fertilization aids container — growing tees.// Sci. inagricult. — 1981. — V.28. — № 4. — P.8.
  161. Bell H. K., Downes J. D. The relation of blossom removal to runners plant development, berry size and yield.// Quarterly bulletin. 1962. — V. 44. — № 4. — P. 619−624.
  162. Benne R. Verfahren den Jungpflanren vermerung von Erdbeeren in Havelobstanbaugebit.// Gartenbau. — 1972. — V. 19. — № 6. — S. 44−46.
  163. Biondi S. Polyamines and Ethylene in relation to adventitious root formation in Prunus avium shoot culture.// Physiol. Plant. 1990. — V. 78. — № 3. — P. 475 483.
  164. Bollimark Marie et. al. Variation in endogenous cytokinins content during adventitious root formation in pea cuttings.//J. Plant Physiol. 1988. — V. 132. -№ 3. — P. 262−265.
  165. Borena Borkowska. Uptake and translocation of Cu2 + is sour cherry shoots cultivated in vitro.// Sci Hort. 1989. V. 40. — P. 35−41.
  166. Bowden AM Comb. Proc. Jnter. Plant. Propag. Soc. 1985. — V. 34. — P.76−78.
  167. Boot M., Jr. 0. Verdonok. Physical propertice of peat and monlde by perlite and foam plastics in relation to ornamental plant growth.// Symposium on peat in horticulture. 1971. — V. 18. — P. 9−25.
  168. Boxus Ph., Quoirin M. La culture de meristemes apicoux de gulgues especes de Prunus.// Bull. Soc. Roy. Bot. Belg. 1974. — V. 107. — № 1. — P. 91−101.
  169. Boxus Ph. Rapid production of virus-free strawberry by in vitro culture // Acta Hort. 1976. — V. 66. — P. 35−38.
  170. Boxus Ph., Quoirin M., Laine J. M. Large scale propagation of strawberry plants from tissue culture.// Appl. and Fundam. Aspects. Plant Cell. Tissue and Organ Cult.-1977.- P. 130−143.
  171. Biondi S., Canciani L. Uptake and translocation of benryladenine by elm shoots cultured in vitro.// Can. J. Bot. 1984.- V. 62, — № 11. — P. 2385−2390.
  172. Bio Industry. 1985. V.2. — № 9. — P. 764−766.
  173. Blaich R. Studies on in vitro cultures of grape organs and meristems with the aim of selecting and preserwing genotypes.// Bull, de joiv. 1985. — V. 58. -№ 650/651.-P. 391−395.
  174. Blanke M. M., Belcher A. P. Stomata of apple leaves cultured in vitro.// Plant. Cell. Tissue and Organ Culture. 1989. — V. 19. — № 1. — P. 85−89.
  175. Blake T. J. Physiol Plant. 1983. — V. 57. — P. 210−216.
  176. Blatt C. R. Crouse D. W. Effect of gibberillic acid and nitrogen on the strawberry.// Hort. Sci. 1970. — V. 5. — № 5. — P. 437 — 438.
  177. Borkowska B. Micropropagation of sour cherry cultivar Shatten Morelli.// Fruit Sci. Report. — 1983. — V. 10. — № 2. — P. 59−66.
  178. Borkowska B. Dormancy of sour cherry plantlets propagated by in vitro culture technique.// Growth. Regue. in fruit product. 1985. — P. 20.
  179. Bowden A. Transferring tissue cultured plants in particular grevilleas to nursery environment.// Comb. Proc. Inter. Plant. Propagator’s Soc. — 1985. — V. 34.- P. 76−78.
  180. Briggs B. Commercial production of ericaeious plants by tissue culture.// Acta Hortic. 1988. — V.2. — № 212. — P. 644.
  181. Broome C. Zimmerman R. H. In vitro propagation of Blackberries.// Hort. Sci.- 1978.-V. 13,-№ 2.-P. 151−153.
  182. Broertyes С., Lock С. The use of irradiated soil in establishing in vitro adventitious plantlets of chrysanthemus.// Acta Botanic. Nederlandic. 1984. — V. 33. — № 3. — P. 375.
  183. Bressan P. H., Kim J. J. Factors Affecting in vitro Propogation of Rose.// J. Am. Soc. Hort. Sci. -1982.- V. 107. № 6. — P. 979−980.
  184. Brian K. A correlation of stem anatomy with differential rooting of etiolated and light-growth carpinus betulus cuttings.// Program and Abstracts. 1988. — P. 773.
  185. Brian С. H., Hicks G. Micropropagation of the Cold-hardy apple rootstock KSC-3.// Can. J. of Plant Sci. 1989. — V. 69. — № 2. — P. 555−564.
  186. Branke M. M. etal. Plant Cell Tissue and Organ Cultur. 1983. — V. 19. — № l.-P. 85−89.
  187. Bull. OEPP. Certification scheme for Malus, Pyrus and Cydonia. 2001. — V. 31.-№ 4.-P. 445−466.
  188. Cameron J. S. Gas exchange properties on micropropagated and conventionally propagated strawberry.//Hort. Sci. 1986. — V. 21. — № 3. — P. 774.
  189. Cameron J.S. The influence of micropropagation on yield components, dry matter partitioning and gas exchange characteristics of strawberry.// Sci. Hort. -1989. -№ 38.-P. 61−67.
  190. Cameron J. S. et.al. the field performance of strawberry nursery stock produced originally from runners or micropropogation.// Adv. Strawberry Prod. -1985.-№ 4.-P.56−58.
  191. Caldas R. A., Caldas L. S. Nitrate, Ammonium and kinetin Effects on Growth and Enzyme Activities of Paul’s Scarlet Rose Callus.// Physiol. Plant. 1976. — V. 37.-P. 111−116.
  192. Capellades M. Leaf water loss and ion content in the guard cells of tissue culture Rose multiflora.// J. Am. Soc. Hort sci. 1990. — V. 115. — № 1. — P. 141 145.
  193. Cardenas Lare. Alicia et.al. Potencial osmotica del medio de cultivocon differents components parala propagation in vitro.// Rev. fito teen. Мех. 2002. -V. 25. — № 2. — P. 213−217.
  194. Castelli M. Comparative response of standart and spur apple cultivars to growth regulators in the in vitro culture.// Acta Horticult. 1986. — V. 2. — № 178. -P. 875.
  195. Casper T. Vitrification of carnation in vitro changes in ethylene production, ACC level and capacity to concert ACC to ethylene.// Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1985. — V. 4. — № 3. — P. 215−223.
  196. Cantos M. Variacion del ph del substrato у conteuido de diversas nutricultus en explantos de especies lenosas cultivadas in vitro.// An. Edafoly agrotial. 1986. -V.45.-№ 11−12.-P. 1655−1668.
  197. Chu C. J. Effects of micropropagation techniques on guowth and development of miniature roses.// Hort. Sci. 1990. — V. 25. — № 3. — P. 138.
  198. Cheema G. S., Sharma D. P. In vitro propagation of apple.// Plant Cell Cult. Crop.-1981.-P. 1983.
  199. Chen W. The effect of activated Charcoal on the adsorption of plant growth regulators in culture medium.// Acta Phytophysiol. 1988. — V. 14. — № 4. — P. 401 405.
  200. Chris H. Bornman. Effect of rigiolity of gel medium on БАР induced adventitious bud formation and vitrification in vitro.// Physiol. Plant. 1989. — V. 61.-P. 505−512.
  201. Christopher H. et.al. Micropropagation of the Coldhardy apple root stock KSC 3.// Can. J. of Plant Sci. — 1989. — № 69. — P. 555−575.
  202. Christe С. B. Rapid propagation of Aspens and Silver poplars using tissue culture techniques.// The Inter. Plant. Prop. 1978. — V. 22. — P. 255−260.
  203. Christianson M. L. Organogenesis in vitro, as a Developmental Process.// Hort.Sci. 1988. — V. 23. — № 3. — P. 515−519.
  204. Cersani M., Leshen В., Sachs Т. Impaired polarity in abnormal plant development.//J. of Plant. Phisiol. 1986. — V. 123. — № 1.- P. 91−95.
  205. Clerjlau M., Rancillac. M. The position regarding strawberry decline in Franc.// Revue. Horticoll. 1983. — № 237. — P. 39−42.
  206. Cohen D. Micropropagation of tree fruits.// The Inter. Plant. Propagat. Sci. -1980.-V. 30.-P. 141.
  207. Coombes A. J. Effect of cooper on IAA oxidase.// Z. Pflanrenphysiol. -1976. — V. 80. — P. 236−242.
  208. W. В., Smith C. R. Soil moisture effect on the rooting and early development of strawberry runners.// J. Am. Soc.Hort.Sci. 1970. — V. 95. — № 4. -P. 417−419.
  209. Collins W. B. Greenhouse studies on organic matter, phosphorus, soil compaction and soil moisture as related to strawberry growth.// Diss, Abst. 1961.
  210. Comb J. A., Newton S. Propagation of kangaroo paws using tissue culture.//J. of Hort Sci. 1981. — V. 56. — № 2. — P. 181−183.
  211. Conner L. W. Comparative water loss from leaves of solanume leciniatum plants in vitro and in vivo.// Plant Sci. Letters. 1984. — V. 30. — № 3. — P. 241−246.
  212. Coore I. J. Some effects of light and nutrition on the growth strawberry.// J. Hort. Sci. 1969. — V. 44. — № 1. — P. 49−55.
  213. Colin R. Norton.// Hort Sci. 1986. — V. 21. — № 3. — P. 699.
  214. Collet G. F., Le. C. Y. Role of auxin during in vitro rhisogenesis of rose and apple trees.// Acta Hort. 1987. — V. 1. — № 212. — P. 273−280.
  215. Cronauer S. S., Krikorian A. D. Reinitiation of vegetative growth from aseptically terminal floral apex of banan.// Am. J. of Botan. 1985. — V. 72. — № 10. -P. 1598−1601.
  216. Curtbengtson J. et.al.// Physiol. Plant. 1975. — P. 183−188.
  217. Dalet F. Effect of IAA and IBA on the regrowth in greenhaus conditions of plantlets of Prunus avium rooted in vitro.// Comptes Rendes Academic a Agriculture de France. 1988. — V. 73. — № 6. — P. 95−102.
  218. Dannielly J. Fixation of C02 in tissue culture red raspberry prior to and after transfer to soil.// Plant Cell Tissue, Organ Culture. 1984. — V. 3. — P. 313−317.
  219. Darrow G. M. Development of runners and runner plants in the strawberry.// U. S. dep. of agr.tech.bull. 1929. — V. 122. — P. 1−28.
  220. Darrow G. M., Waldo G. Responses of strawberry varieties and species to duration of the daily light period.// U. S. D. A. Tech. bull.- 1934. V. — 453. — P. 31.
  221. Darrow G. M. Interrelation of temperature and photoperiodism in the production of fruit buds and runners in the strawberry .//Rep. fr. proc. am. soc. hort. sci. 1937. — V. 34. — P. 360−363.
  222. Darrow C. W. The morphology and physiology of the strawberry.// The strawberry. 1966. — P. 314−354.
  223. F. Т., Hartmann H. T. The physiological basis of adventition root formation.// Acta Horticut., International symposium on Vegetative Propagation of Woody Species. 1987. — № 227. — P. 113.
  224. Dayuan Wang. Tissue culture of Fruit crops in China.// Hort Sci. 1988. — V. 23.-№ 6.-P. 962−964.
  225. David L. Rayle et. al. Rapid Growth Responses in the Avens Coleoptile a comparison of the Action C02 and Auxin.// Plant. Growth Substances. 1972. — P. 44−51.
  226. David L. Smith et.al. Ethylene associated phase change from juvenile to mature phenotype of daylily.// Phisiol. Plant. — 1989. — V. 76. — P. 466−473.
  227. Davies D. R. Rapid propagation of roses in vitro.// Sci. Hort. 1980. — V. 13. — P. 385−389.
  228. P. С. et.al. A scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture.// Sci. Hortic. 1981. — V. 14. — № 4. — P. 335−345.
  229. Deleplangue H. An intelligent robotic system for in vitro plantlet production.// In Proceedings of the 5th Inter confer, on Robotvision and Sensory. Control. -1985.-P. 29−31.
  230. Dan hua Li., Meredith C. P. The Influence of explant origin on Tissue Browning and shoot Production in shoot Tip Cultures of Grapevine.// J. Am. Soc. Hort. Sci. — 1986. — V. 111. — № 6. — P. 972−975.
  231. Damino C. Nursery runner plant production, fruiting and behavious of micropropagated strawberry plant.// Ann. dell Istituto Sperimen perla Frutticol. -1982. -№ 13. -P. 69−78.
  232. Dattee M. Brenchard. In vitro culture and cell biotechnologies applied to plant breeding present state and perspectives.// Acta Horticult., 1986. — № 113. — P. 1728.
  233. Daniel D. R. Tissue culture approaches commercial production.// Amer. Nurseryman. 1988. — № 154. — P. 14−69.
  234. Dennis F. G., Bennett H. Effect of gibberellic acid and deflowering upon runner and inflorescence development in an everybearing strawberry.// J. Am. Soc.hort.sci. 1969. — V. 94. — № 5. — P. 534−537.
  235. Dennis F. G. et.al. Effects of photoperiod and ather factors upon flowering and runner development of tree strawberry cultivars.// J. Am. Soc.hort. Sci. 1970. — V. 95. — № 6. — P. 750−754.
  236. Dennis P., Stmart et.al. In vitro shoot proliferation of Pyrus calleriana from vegetative Buds.// Hort. Sci. 1989. — V. 24. — № 2. — P. 298−299.
  237. Desyardins J. Effect of C02 enrichment and high photosynthetic photon flux on development of autotrophy and growth of tissue cultured strawberry, raspberry and asparagus plant.//Acta Horticult. — 1988. — № 230. — P. 45−53.
  238. F. Т. The physiological basis of adventitious root formation.// Acta Hopticultural Inter. Symp. on Veget. Propagation of Woody species. 1989. -№ 227.-P. 113.
  239. Desjardins J. Gosselin A., Jelle S. Acclimatization of in vitro strawberry Plantlets in C02 enriched Envizoments and Supplementally Lighting.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1987. — V. 112. — № 5. — P. 846−851.
  240. Deoguatias J. M., Lutz. A. In vitro micrografting of shoot tips from juveniale and adult prunus avium and prunus persica.// Acta. Horticult. 1986. — № 193. — P. 139−146.
  241. Donnelly D. J., Vidaver W. E. Leaf anatomy of red raspberry transferred from culture to soil.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1984. — V. 109. — № 2. — P. 172−176.
  242. Donnelly D., Smith R., Muller F. In vitro culture of three rubus specias.// Acta Horticult. 1980. — № 112. — P. 69−75.
  243. Doolan D. W., Hennerby M. J., Moorgan J. V. Culture of micropropagated strawberry plants in nutrient film technique.// Acta. Horticult. 1983. — № 133. -P. 103−109.
  244. Druart P. In vitro promotion of root formation by apply shoots trough darkness effect on endogenous phenols and peroxidases.// Z. Pflanrenphysiol. 1982. — № 1085.-P. 429−436.
  245. Driver J. A. In vitro propagation of Paradox Walnut Rootstock.// Hort. Sci. -1984. V. 19. — № 4. — P. 507−509.
  246. Diane Cross G. C. Multiphlying miniatures rose.// HTY. 1982. — V. 192. -№ 1. — P. 18.
  247. Dieter Klambt. Plant Hormone Receptor. 1986.
  248. Dijck R. Van. Role of ethylene and cytokinins in the initiation of lateral shoot growth in bromeliads.// Plant Physiology. 1988. — V. 86. — № 3. — P. 836−840.
  249. Dollerel J., Novak F. J. Effect of plant tissue culture media on the frequency of somatic mutations in Tradeskantia stamen hairs.// Z. Pflanzenphysiol. 1984. -№ 144.-P. 51−58.
  250. Donnau A. et.al. Establishment of tissue culture Growth plants in the Greenhause environment.// Hort. Soc. 1978. — V. 91. — P. 235−237.
  251. Donnely D. J.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1984. — V. 109. — № 2. — P. 177−181.
  252. Donnelly D. J., Shelton F. E. Hydothode Structure of micropropagated Plantlets and Greenhause grown «Totem» strawberry Plants.//J. Am. Soc. Hort. Sci. 1987. — V. 112. — № 5. — P. 755−759.
  253. Dragent. K. J. et.al. Alginate based solid media for plant tissue culture.// Aplied Microbiology and Biotechnology. — 1989. — V. 31. — № 1. — P. 79−83.
  254. Drainerd E. et.al. Acclimatization of Aseptically cultured Apple Plants to Low Relative Humidity.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106. — № 4. — P. 515 518.
  255. Dunstan D. et.al. Propagation in vitro of apple rootstock M4: effect of phytohormonus on shoot guility.// Plant. Cell Tissue organ Culture. 1985. — V. 4. -№ 1.-P. 55−60.
  256. Duron M. In vitro propagation of the ornamental INRA Malus x Perpetu. Evereste.// Hort. Sci. 1984. — V. 22. — P. 133−178.
  257. Dubois L. A. Comparison of the plant habit of pot rosses propagated in vitro and cuttings.// Acta Horticult. 1988. — V. 2. — № 226. — P. 611−613.
  258. Edmonds J. Nursery stock an industry facing great difficulties.// Grower. -1982.-№ 18.-P. 78.
  259. Eduardo Leiger. et.al.// Plant Physiol. 1985. — V. 77. — P. 456−460.
  260. Eliasson I., Bollmark Marie. Ethylene as possible mediator of light induced inhibition or root growth.// Physiol Plant. — 1988. — V. 72. — № 2. — P. 605−609.
  261. Ellen Sutter.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1988. — V. 113. — № 2. — P. 234−238.
  262. Elmo M., Beyer I. The sequence of the effect of ethylene on transport uptake and decarboxylation of auxin.// Plant Physiol. 1969. — V. 44. — P. 1690−1694.
  263. Evans A., Sharp W. P. Plant regeneration from cell cultures.// Hort. Review. -1981.-V.3.-P. 214−314.
  264. Feucht W., Schmid P. et.al. large scale trial of raspberries propagated in vitro: 0.68% of off-types and enzyme pattern of atypical fruits.// Erwerbsobstbau.- 1985. V. 27. — № 7. — P. 167−169.
  265. Feucht Walter.// Mitt Klostereuburg. 1987. — V. 37. — № 1. — P. 16−20.
  266. Filiti N. et.al. In vitro rhizogenesis: histoanatomicul aspects on Prunus root stock.// Advans in Horticultural Sci. 1987. — V.l. — № 1. — P. 34−38.
  267. Fisichell M. et.al. Effects of carbon dioxide and oxyzen on somatic embryogenesis in guince.// XXV International Horticult. Congress Brussels. -1998.- P. 400.
  268. Flege I., Mc. Namare D. The elimination of strawberry leaf nematode Aphelenchoides fragaria from the English nuclear stock propagation schemen.// Plant Protection for Human Weefar. 1983. — № 2. — P. 878.
  269. Fouad H. Hormonal control of phenotypic behavior of tissue culture propagated strawberry.// Program and Abstract. 1988. — P. 757.
  270. Frinka D. Tissue cultured raspberry plant establishment.// Hort. Sci. — 1990.- V. 25. № 3. — P. 162.
  271. Frett 1.1., Smgula I. M. In vitro shoot production of low bush blue berry.// Can. J. Plant. Sci. 1983. — V. 63. — № 2. — P. 467−473.
  272. Fari M. Thin PVC foil covering TPFC an efficient method for cultural and preaclimatiration of in vitro plant culture.// Acta Horticult. 1987. — V. 1. — № 212. -P. 371−374.
  273. Farthing I. G. Propagation technigues for Ficus robusta.// Acta Horticult. -1988. V. 2. — № 226. — P. 489−498.
  274. Fabbri A. et.al. Anatomical observations on the roots of vegetatiely propagated Paradox planteets.// Rivistadi Frutticoltural di Ortofloriculture. 1985. -V. 47.-№ 11.-P. 43−46.
  275. Famus D. J. Futher evidence in support of interactive model in stomatol control.// J. of Ex. Bot. 1987. — V. 37. — № 178. — P. 657−665.
  276. Favre J. M. et.al. In vitro production of tendrils flower and berries in grapevine.// Annales del Amelioration des Plantees. 1979. — V. 29. — № 3. — P. 247−257.
  277. Frank A. et.al. Effects of selected putative inhibitors of ribonucleic acid or protein synthesis on adventitious formation.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106.-№ l.-P. 8−11.
  278. Franco Tognoni. Acidic Root Promoting Growth Inhibitors found in Piece and Chamae cyp aris.// J. Am. Hort. Sci. — 1972. — V. 97. — № 5. — P. 574−575.
  279. French С. I. Rooting of Rhododendron cutting as related to stem carbo -hydrate concentration.// Hort. Sci. 1990. — V. 25. — № 4. — P. 409−411.
  280. Frenkel Ch. et.al. Evidence for a nonmobile component regulating root initiation.// Hort. Sci. 1970. — V. 5/4. — P. 63.
  281. Fuchigami L. H., Cheng Т. V. Abaxial Transpiration and Water Loss in Aseptically cultured plum.// J. Am. Soc. Hort. Sic. 1981. — V. 106. — № 4. — P. 519−522.
  282. Fucks J., Chalutz E. Ethylene Biochemical Physiological and Applied Aspects.// Pepper Amer. Soc. Of Agric. Engineers. 1988. — V. 88. — P. 1026.
  283. Gad Alexander E. Rooting and subsequent vegetative growth of geranium cutting improved by 4-chlororesorcinol.// Jsr. J. Bot. 1987. — V. 36. — № 4. — P. 185−189.
  284. Gaggioli D. Orchard Response of micropropagated sour cherry and Apple cultivars.// Sci. Hort. 1989. — № 38. — P. 201−209.
  285. Gawel N. I. In vitro Propagation of Miscanthus sinensis.// Hort. Sci. 1980. -V.21.-№ 10.-P. 1291−1293.
  286. George Oki. Setting up a tissue culture system.// The Inter, plant, propogat. Soc.-1978.-V. 28.-P. 344.
  287. Geneve R. L. Root Formation in Cuttings of English Ivy treated with Paclobutrazol.// Hort. Sci. 1980. — V. 25. — № 6. — P. 709.
  288. Geoffrey Latham. The nuts and bolts of tissue culture.// Nurserymans Garden centre. 1982. — V. 170. — № 8. — P. 2−6.
  289. Gersani M. Impaired Polarity in Abnormal Plant Development.//1. Plant Physiol. 1986. — V. 123. — P. 91−95.
  290. Gliemoroth K., Schule D. In vitro culture von strauchberenobst zur Bereistellung gesumden Pflanzen materials.// Gartenbau. 1982. — V. 29. — № 7. -P. 213−215.
  291. Goodwin С. H. The role of auxin in leaf development.// Am. J. Botan. 1937. — V. 24. — № 1. — P. 43−51.
  292. Gordon J., Mc. Intyre. The role of nutrition in apical dominance.// Intergration of activity in the higher plant. 1977. — P. 251−273.
  293. Gront B. W. W., Mileam S. Photosynthetic development of micropropagation strawberry plantlets following transplantins.// Am. of Botan. 1985. — V. 55. — P. 129−131.
  294. Gront B. W. W. Photosynthesis of regenerated plantles in vitro and the stresses of transplantins.// Acta. Horticul. 1988. — V.230. — P. 129−135.
  295. Grewal S. In vitro Proliferation of shoot Apices of Eucaluptus citriodora Hoot.// Ind. Ixp. Biol. 1980. — V. 18. — P. 775.
  296. Gundy M. P. An alternative gelling agent for culture and studies of nematodes, bacterio, fungi and plant tissue.// J. of Nematology. 1988. — V. 20. -№ 3. — P. 478−485.
  297. Gupta P. K. et.al. Tissue culture of forest trees clonal propagation of mature trees of Eucalyptus citriodora Hock.// Plant Sci. Lett. 1981. — V. 20. — № 3. — P. 195−201.
  298. Guttridge С. C. Observation the shoot growth of the cultivated strawberry plants.// J. Hort. Sci. 1955. — V. 30. — № 1. — P. 1−11.
  299. Guttridge С. C. Further evidence for a growth-promoting and flower-inhibiting hormone in strawberry.// Am. Botan. 1959. — V. 23. — № 90. — P. 612 621.
  300. Hackett P. W. The influence of Auxin Catechol and Mithanolic Tissue cultured shoot Apicex of the juvenilea and Adult Forms Hedera helix.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1970. — V. 95. — № 4. — P. 398−402.
  301. Haffner V. Maturation of woody plants: a review of metabolic and genomic aspects.// Ann. Sci. For. 1991. — V. 48. — P. 615−630.
  302. Hammerschlag F. Factors Influencing in vitro multiplication and Rooting of the Plum Root Stock Myrobalan Prunus cerasifera.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1982. -V. 107.-№ 1.-P. 44−47.
  303. Handelmann W. Uber versuchezur rhohung der vermehrung von Erdbeerpflanzen.// Gartenbauwissenschaft. 1963. — V. 28. — № 3. — P. 453−462.
  304. Hayashi M., Nakayma M. An application of the acclimatization unit for growth of carnation explants and for rooting and acclimatization of the plantles.// Acta Horticult. 1988. — № 230. — P. 189−194.
  305. Hegedus P. Actions dephends sur les maltormations observeer oher les portegreffes de pommiers M26,0−3, cultives in vitro.// Rev. Can. Biol. Exp. -1983. -V. 42. -№ 1.-P. 33−38.
  306. Heuser C. W., Harker J. Tissue culture propagation daylilies.// Comb. Proc. Intemat. Plant Propagators Soc. 1976. — V. 26. — P. 269−272.
  307. Hetcher P. A. Physiol. Plantarum. 1988. — V. 73. — № 3. — P. 401−405.
  308. Hempel Т., Hempel M. Yong-term storage of garbera rooted in vitro.// Acta Horticult. 1987. — V.l. — № 212. — P. 360.
  309. Hedtrich T. Gewebekulturs Reistrauchbeerenobst und Resultate in der Paxis an Wendung.// Rheinische Monatsachenrift. 1983. — V. 71. — № 2. — P. 52−54.
  310. Hellen Longbottom, Tobutt K. R., Jones O. P. Propagation in vitro of fruit trees.// East. Mailing Res. St. 1979. — P. 184−185.
  311. Hicks G. S. Adventitious rooting of apple microcuttings in vitro: an anatomi study.// Can. J. of Botany. 1987. — V. 65. — № 9. — P. 1913−1920.
  312. Horticulture Industry. 1981. — P. 10−11.
  313. Howard В. H., Vasek J. Rejuvenation of pixy plum rootstock by micropropagation.// Rep. East. Mailing. Res. St. 1985. — P. 65.
  314. Hosoki T. et.al. In vitro propagation of herbaceous peony (Paeonia lactiflora) by longitudinal shoot split method.// Plant Cell Reports. — 1989. — V. 8. — № 4. -P. 243−246.
  315. Huetteman C. Thidiruron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture.// Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1983. — V. 33. — P. 105−119.
  316. Hussey G. In vitro propagation of Gladiolos by precocious axillary shoot formation.// Sci. Hort. 1977. — V. 6. — № 4. — P. 287−296.
  317. Hussey G. Tissue culture propagation and its application to some ornamentals.// Sci. Hort. 1977. — V. 28. — № 3. — P. 93−99.
  318. Hussey G. The Effect of interactions between growth regulators on plant Growth and yield.// Hormones and shoot production in tissue culture. 1979. — № 2. — P. 19−29.
  319. Jalour K. Studies of Nucleic Acids and Protein metabolism during Initiation of Adventitious Roots.// Planta. — 1971. — V. 97. — P. 16−27.
  320. James F. Harbage. Relation of ethylene to root development in Malus dome -stica microcuttings.// Programm and Abstract. 1988. — P. 776.
  321. James E., Hutchinson. Factors effecting shoot proliferation and root initiation in organ culture of the apple «Nother spy».// Sci. Hort. 1984. — V. 22. — P. 347 358.
  322. James D. J. et.al. The control of rhizogenesis in vitro in difficult to — root apple rootstocks.// Plant tissue culture. — 1982. — P. 187−198.
  323. James D. J. Addventitious root formation in vitro in apple rootstock (Malus pumila). I Factors affecting the light sensitive phas in M 9.// Physiol. Plant. -1983.-V. 57. -№ 1.-P. 149−153.
  324. James D. J. Adventitious root formation in vitro in apple rootstock (Maluspumila).II Uptake and distribution of IAA during auxin sensitive phase in M 9 and
  325. James D. et.al. Rapid in vitro rooting apple rootstock M 9.// Hort. Sci. 1979. -V. 54.-№ 4.-P. 308−311.
  326. James D. J. et.al. Micropropagation of Red Raspberry and the influence of phloroglucinol.// Sci. Hort. 1980. — V. 12. — № 4. — P.
  327. James F. Hartage. The influence of ph on auxin-induced adventitious root initiation in Malus domestica.// Hort Sci. 1990. — V. 25. — № 9. — P. 124.
  328. James D. J. The role of auxin and phloroglucinol in adventitions root formation in Rubus and Fragaria growth in vitro.// J. Hort.Sci. 1979. — V. 54. -№ 4.-P. 273−277.
  329. James D. J., Knight V. H., Thurbon I. J. Field performance of tissue cultured Rubus.// East. Mailing. Rec. St. — 1975. — P. 192.
  330. Jannl G. Das Virus problem in Rahman der Erdberpflanzenenvermehrung.// Bes. Obst. 1973. — Jg. 18. — № 5. — S. 70−73.
  331. В. С. et.al. the interaction between auxin and boron in adventitious root development.// New Physiol. 1984. — V. 97. — P. 197−204.
  332. Jean H. Gould et.al.// Plant Tissue organ Culture. 1985. — V. 4. — P. 29−42.
  333. Jennifer Crane. Medium overlages for Improved Hardening of Micropopagated Potatou.// Hort. Sci. 1990. — V. 27. — № 7. — P. 794−795.
  334. Jeanne Gunning. Yong term storage techniques for in vitro plant Germplasm.// The Int. plant. Prop. Soc. — 1985. — P. 199−205.
  335. Jones 0. P., Hadlow W. C. Juveile like character of apple trees produced by grafting scions and rootstocks, produced by micropropagation.//J. Hort. Sci. -1989.-V. 64.-№ 4.-P. 385−401.
  336. Joung M. I., Cameroun I. S. Influence of Growth Regulators and nitrogen form on micropopagation of Rabliteye blueberris.// Fruit Variet. J. 1985. — V. 39. -№ 1. — P. 16−18.
  337. Jshida M. In vitro propagation of Prunus japonica, a dwarfing root stock for peach tree.// J. of the Jap. Soc. for Hort. Sci. 1989. — V. 59. — № 1. — P. 49−54.
  338. Jile L., Hayward. Acclimatization of tissue culture devived Rose shoots to the Greenhouse environment.// Program and Abstract. — 1988. — P. 880.
  339. John Weir.// Professional Hortic. 1985. — V. 3. — P. 35−38.
  340. John 0., Fretty. In vitro shoot production of lowbush blueberry.// Can. J. Plant. Sci. 1983. — V. 63. — P. 467−482.
  341. John L. Griffis. How we have over come the problem of establishing plantlets in soil.// Am. Nurseryman. 1984. — V. 160. — № 8. — P. 73−76.
  342. Jones О. P. et.al. Propagation in vitro of M 26 apple rootstocks.// J. Hort. Sci. 1977. — V. 52. — № 2. — P. 235−238.
  343. Jrwin J. E., Chee Ph. D. The Role of micropropagation in commercialization of plant biotechnology.// Inter symposium for Horticult. 1988. — P. 11−15.
  344. Karno Jwaraki. Effect of Chilling Calcium Cyanamide and Bud scale Removal on Bud Break. Rooting and Inhibitor content of Buds of Zinfandel Grape.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1977. — V. 102. — № 5. — P. 584−588.
  345. Kakar R. K. et.al. Effect of exogenous amminoacid application on rhizogenesis in hypocotyls cuttings Phaseolus vulgaris.// Current Sci. 1988. — V. 57.-№ 2.-P. 82−84.
  346. Kartha К. K. Germoplasm preservation of coffee by in vitro culture of shoot aplical meristem.// Plant Sci. Letter. 1981. — V. 22. — P. 301−307.
  347. Keith C. Hansen Jaime E., et.al. In vitro propagation of peach. Acclimatization of micropropagated cherry rootstock Masto de Montanane.// Acta. Horticult. -1987. V. 2. — № 212. — P. 603−606.
  348. Kenneth W. Munde. Effect of Ethephon, Indol Butric Actel and treatment solution ph on Rooting and Ethylene Levels within Mung bean.// Plant Physiol. -1978.-V. 61.-P. 271−273.
  349. Kim E. Brainerd. Tips for Transplanting Tissue cultured Plants.// J. of Enviromental Horticult. 1983. — V. 1. — № 1. — P. 23−25.
  350. Kim K. Wetal. Effect of ABA and agar in preventing vertitication of carnation plantlets cultured in vitro.// J. of Korean Soc. for Hort. Sci. 1988. — V. 29. — № 3. -P. 208−215.
  351. Keyotty B. In vitro propagation of Japanese Pear Cultivars.// J. Japan. Soc. Hort. Sci. -1989. V. 58. — № 1. — P. 37−42.
  352. Knauss I. E. Contamination in plant tissue culture.// Proc. Fla. State. Hort. Sci. 1979. — V. 92. — P. 341−343.
  353. Knosh К. M., Sink К. C. Rooting enhancement of Rose hybrid for tissue culture propagation.// Sci. Hort. 1982. — V. 17. — № 4. — P.371−376.
  354. Ко. М. P. Gundy. An alternative gelling agent for culture and studies of nematodes, bacteric fungi and plant tissue.//1, of. Nematology. 1988. — V. 20. -№ 3. — P. 478−485.
  355. Kochta I., Button I. Stimulation of Rooting of Citrus Embryoids by GA3 and Adenin Sulphate.// Ann. Bot. 1974. — V. 38. — P. 785−802.
  356. Kononowier H. et.al. In vitro Propagation of vanilla planifolia.// Hort. Sci. -1984.-V. 19. -№ 1.-P. 58−59.
  357. Kopcewier I. The influence of red light on auxin level in coleoptiles of etiolated seed lights in two oat varieties.// Interact. Plant Symp. Occas. — 1985. -V. 175.-P. 47−48.
  358. Krishnamoorthy H. N. Effect of Ethrel, Auxin, and Mallic Hydrazide on the Rooting of Bean Hypocotyl Cuttings.// Z. Pflanzenphysiol. 1972. — Bd. 66. — S. 273.-276.
  359. Kwiaciarstwa I. Aplication of m- topolin for plant micropropagation.// Zeszyty naukewe Institutu sadow. 2000. — № 7. — P. 173−180.
  360. Larson R. A. African violet chimeras a practical use of micropropogation.// Growers Bulletin. 1985. — V. 29. — № 6. — P. 9−10.
  361. Lakso A. N. Carbondioxide enrichment for stimulation of growth of in vitro propagated grapevines after transfer from culture.// J. of. the Am. Soc. for Horticul. Sci. 1986. — V. 111. — № 4. — P. 634−638.
  362. Lee C. W., Thomas I. C. Propagation of desert milkweed by shoot tip cultured.// Hort. Sci. 1985. — V. 20. — № 3. — P. 263−264.
  363. Lennart Eliasson. Interaction of light and auxin in regulation of rooting in pea cutting.// Physiol. Plant. 1980. — V. 48. — P. 78−82.
  364. Leshem B. The effect of cytokinins on vertification in melon and carnation.// Ann of Botany. 1983. — V. 52. — № 3. — P. 413−415.
  365. Lennart E., Marie B. Ethylene as a possible mediator of light induced inhibition of root growth.// Physiol. Plant. — 1988. — V. 72. — № 3. — P. 605−609.
  366. Li A., Jarves В. C. Effect auxin and boron on nucleic acid metabolism and cell division during adventitious root regeneration.// New Physiol. 1988. — V. 108.-P. 383−391.
  367. Lis Balchin N. The use of antioxdidants as rooting: enhances in the Gerania.// J. of Hort Sci. — 1985. — V. 64. — № 5. — P. 617−623.
  368. Loreti F., Pisani P. L. Physiological and technical factors affecting rooting in woody species.// Proceed. XXI st. Inter. Hort. Cong. 1982. — P. 294−310.
  369. Luckwill L. C. The control of growth and fruit fullness of apple trees.// Physiology of tree crops. Sec. Long Agshton symp. 1969. — P. 237−254.
  370. Lungergan C. A., Janick I. Regulation of apple shoot proliferation and growth in vitro.// Horticult. Research. 1980. — V. 20. — № 1. — P. 19−24.
  371. Lyrene P. M. Juvenility and Production of Fastrooting Cuttings from Blueberry shoot cultures.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106. — № 3. — P. 396 398.
  372. Lydione Kyte./ Plant from tubes. 1989.
  373. Ma S. S., Wang S. 07/ Acta. Hortic.- 1977. № 78. — P. 209−215.
  374. Mac Robbie E. A. C. Control of ion fluxesin stomatol guard cells.// Botanica Acta. 1988. — V. 101. — № 2. — P. 140−148.
  375. Machinik. В., Orlikawska T. In vitro propagation of P 22 Malus clonal rootstock.// Fruit Sci. reports. 1981. — V. 8. — № 4. — P.
  376. Mahlstede I. p. An anatomical study of adventitious root development in stem of vaccinium corymbasum.// Botanical Garette. 1952. — V. 1/3. — № 13.
  377. Marino G. In vitro benzylaminopurine uptake two Japanese plum cultivar.// Acta Horticult. 1986. — V. 179. — P. 871−872.
  378. Marie-Clande Bon et.al. Roles of the Phenolic Compounds on micropropagation of juvenile and Malus Clone Seguoidendron giganthem.// Sci. Hort. 1988. — V. 34. — P. 283−291.
  379. Marietta Papuchatri P. In vitro Propagation of Hosta decorata «Thomas Hogs», using cultured shoot Tips.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106. — № 2.- P. 232−236.
  380. Marin I. A., Gella R. Acclimatization of the micropropagated cherry rootstock Masto de Montanane.// Acta. Horticult. 1987. — V. 2. — № 212. — P. 603−606.
  381. Margaret E. Norman. In vitro propagation of ornamental Rosaceous Plants. -1982.-P. 190−191.
  382. Martin C., et.al. Note sur les cultures de tissue de feverole (vicia faba L.) Bonturage, culture de cols, culture de meristemes.// Ann. Smelior. Plant. 1979. -V. 29. — № 3. — P. 277−287.
  383. Martinelle A. Propogazione sulaz ga scaledi due hidridi mandolox x psco Hansen 2168.// Terre. evita. 1984. — V. 26. — P 26−87.
  384. Malcoln M. There is Something new in Small Fruit Cultur.// Fruit Grower. -1982.-V. 102.-№ 5.-P. 20−56.
  385. Makato Kawase et.al. Role of Auxin in Root Premordium formation in Etiolaned Bean stems.//J. Am. Soc. Hort. Sci. 1980. — V. 105. — № 6. — P.898−902.
  386. Makund Ranjit et.al. Micropropagation of cherry rootstock.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1988. — V. 113. — № 1. — P. 146−149.
  387. Maliarcikova V. et.al. Meristem culture and micropropagate of small fruits -strawberry, raspberry, blackcurrant.// Plant. Tissue Cell Cult. 1984. — P. 535−536.
  388. Mamet. H. et.al. The effect of sampling time and of the nitrogen concentration of the medium on the in vitro development of apices removed from three Pelargonium species.// Comptes Rendus deM Academie des Sci. 1986. — V. 302. -№ 2. — P. 217−222.
  389. Marco Bustamante. Peroxiase and IAA-oxidase activities etiolated and light-growth Pistacia atlantice cuttings in relation to rooting.// Hort. Sci. 1986. — V. 21.- № 3. P. 768.
  390. Maria D., Serret et.al. Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1997. — V. 47. -P. 217−230.
  391. Manatu Katano. Propagation of Japanese Cherry by shoot-tip culture.// Fac. Agric. Kyushu Tokai Univ. 1987. — № 6. — P. 1−4.
  392. Marks T. P., Wilthire S. E. Micropropagation of hardy ornamentals.// Rep. East. Mailing. Res. St. 1985. — P. 73.
  393. Marcotrigiano M. The effect BA on the in vitro multiplication Rate and subsequent Field performance of tissue culture propagated strawberry plants.// Advances in strawberry production. — 1981. — V. 3. — P. 22−25.
  394. Marchant B. Acclimatizing plants produced by tissue culture.// Am. Nurseryman. 1982. — V. 156. — № 6. — P. 31−33.
  395. Martineau B. Effect of charcoal and Hormones on Anther Culture of Petunia and Nicotiana.// Z. Pflanzenphisiol. 1981. -V.102.- P. 109−116.
  396. Martin C., Carne M., Vernay R. Vegetative propagation in vitro of cultivated woody plants: the position regarding fruit trees, and general discussion.// 1983. -P. 303−306.
  397. Mary A. Hoiser. Developing a successful protocol for rooting in vitro de -rivel shoot of Castonea Dentata.// Hort. Sci. — 1986. — V. 21. — № 3. — P.803.
  398. Masuda T. et.al. Relationship between abnormal shoot formation and plant hormones.// Bull. Fruit trees Res. Stat. Ser. 1988. — V. 15. — P. 21−28.
  399. Mc. Coy Т. I. Cytogenetic analysis of plants regenerated from out tissue cultures high frequency of partial chromosome loss.// Can. J. Genet. Cytol. 1982. -V. 24.-P. 37−50.
  400. Mc. Coy Т. I. Chromosome stability in maize tissue cultures and sectoring in some regenerated plants.// Can. J. Genet. Cytol. 1982. — V. 24. — P. 559−565.
  401. Mc. Clelland, M. T. et.al. Response of woody plant microcuttings to in vitro and ex vitro rooting method.// Com. Proc. Inter. Plant. Propag. 1988. — V. 38. -P. 593−599.
  402. Mc. Comb I. A. Clonal propagation of woody plants using tissue culture with special reference to Apples.// The Inter Plant Propagator. 1978. — V. 28. — P.
  403. Meins F. Heritable variation in plant in plant cell culture.// Ann. Rev. Plant Physiol. 1983. — V. 34. — P. 327−346.
  404. Mc. Clelland M. Т., Smith M. A. Vessel Type, Closure and Explant orientation Influence in vitro performance of five woody species.// Hort. Sci. -1990. V. 25. — № 7. — P. 787−800.
  405. Mederes S. Factors affecting shoot tips and axillary bud growth and morphogenesis.// Acta Horticult. 1988. — V. 2. — № 212. — P. 619−624.
  406. Mehers 0., Meireson L. et.al. Ethylene production inhibitors can improve in vitro propagation of roses.// Meded. Fac. Landbouwensch. Rijksuniv. Gent. -1984. V. 49. — № 36. — P. 1139−1144.
  407. H. В., Bhapkar D. G. Antitransperants in Grop Plants Review.// J. Mahastraagris Univ. 1984. — V. 8. — № 3. — P. 208−214.
  408. Michael O. Mulline. Auxin and Ethylene in adventitious Root Formations in Phaslolus aurene.// Plant Growth substances. 1970. — P. 526−533.
  409. Mieko Mitsuhashi et.al. Morphological and Physiological characterization of IAA less — sensitive and IAA — sensitive phases in rooting of Azukio cuttings.// Plant and Cell Physiol. — 1969. — V. 10. — P. 867−874.
  410. Miller G. A. et.al. In vitro propagation of Nemaguard Peach Rootstock.// Hort Sci. 1982. — V. 17. — № 2. — P. 154.
  411. Mizzahi I. Physiological Aspects of Crop Productivity. 1980. — P. 125−136.
  412. Modgie M. et.al. Micropropagation of apple Tydeman’s Early Worcester.// Sci. Hort. 1999. — V. 81. — № 2. — P. 179−188.
  413. Morini S., Concetti S. In vitro propagation of PS, B2 peach rootstock.// Acta Horticult. 1985. — № 173. — P. 205−210.
  414. Moncalen P. et.al. Plant growth regulators as putative physiological markers of developmental stages in Prunus pertica.// Plant Growth Regulation. 2001.
  415. Moore I. N., Scott D. H. Effects of gibberellic acid and blossom removal on runners production of strawberry varieties.// Am. I. Soc. Hort. Sci. 1965. — V. 87. -№ 3.-P. 240−244.
  416. Morel G., Martin C. Querison de S Dahlias atteints d’une maladie a virus.// Compt. Rend. Acad. Sci. Paris. — 1952. — V. 235. — № 20. — P. 1324−1325.
  417. Morini S. et.al. In vitro propagation of grapevine.// Revista della Ortoflorofruticolture. 1985. — V. 69. — № 6. — P. 385−386.
  418. Mosella Ch. I. et.al. In vitro micropropagation of peach trees influence of certain phenolic compounds.// Comptes. Rendes. Hebdom. des Seances del Akadeemieds Sci. 1979. — V. 288. — № 6. — P. 567−570.
  419. Mosella Luis Ch. et.al. Les conditions du microborturage in vitro du Pecher (Prunus persica Batsch) influences combineles des substances de croissance at the diver composes phendigu.// Physiol Veg. 1980. — V. 18. — № 4. — P. 597−608.
  420. Mullen M. S. Enhanced capacity for adventitious root formation in apple microcutting by condition of culture.// Growth Regul. In fruit produc. 1985. — P. 189.
  421. Mullins M. G., Lucas C. Application of tissue culture to propagation and genetic improvement of Prunus.// Farmers News letter. 1984. — № 166. — P. 8−10.
  422. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures.// Ann. Rev. Plant Physiol. 1974. — V.25. — P. 135−166.
  423. Muriithi L. M. et.al. In vitro Propogation of Fig through shoot tip culture.// Hort. Sci. 1981. — V. 17. — № 1. — P. 86−87.
  424. Nases M. IAA distribution and auxin sensitivity in CCC treated bean hypocotyls.// Acta-biol. Sreged. 1987. — V.33. — № 4. — P. 9−15.
  425. Naumann W. D. Increased yields from micropropagated strawberry plants and their after-care.// Obstbau. 1981. — V. 6. — № 3. — P. 90−94.
  426. Nehre N. S. et.al. The influence of plant growth regulator concentrations and callus age on somaclonal variation in callus culture regenerants of strawberry.// Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1992. — V. 29. — P. 257−268.
  427. Nicholas I. R. The use of fluorescence microscopy to monitor root development in micropropagated explant.// J. of Hort. Sci. 1986. — V. 61. — № 4. -P. 417−421.
  428. Norris C. A. A pioneer in tissue culture propagation.// Am. Nurseryman. -1984.-V. 160.-№ 8.-P. 65−71.
  429. Norcini I. Changes in the level of auxin and indoleacetyaspartic acid during root formation in mung bean cutting.// Plant Physiol. 1988. — V. 86. — № 4. — P. 1236−1238.
  430. Norton C. R. Modified Gaseous anvironment micropropagation of plant.// Hort. Sci. 1986. — V.21. — № 3. — P. 699.
  431. Oriekowska T. Influence of agar brands on multiplication of apple rootstock and chem. and physic attributes of media.// J. of fruit and ornament plant research. 1993. -V. 1. — № 4.
  432. Overbeek V. Nomenclature of chemical plant regulators.// Plant phisiol. -1954. V. 29. — № 3. — P. 307−308.
  433. Pasgualetto P. L. et.al. Gelling Agent and Growth Regulators effects on shoot vitrification of «Cala» Apple in vitro.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1986. — V. 111. -№ 6. — P. 976−980.
  434. Paul M., Hasegawa. Factors Affecting shoot and Root Initiation from cultured Rose shoot tips.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1980. — V. 105. — № 2. — P. 216−220.
  435. Paul F. U., Buree G. Reversion of male-sterile T-cytoplasm maiz to male fertility in tissue culture.// Crop Sci. 1983. — V. 23. — № 3. — P. 584−588.
  436. Pierik R. L. M. Handicaps for the large scale commercial application of micropropagation.// Acta Horticult. 1988. — № 230. — P. 63−71.
  437. Picrik R. L. M. et.al. Gerbera plantlets from in vitro cultivated capitilum explants.// Sci. Hort. 1973. — V. 1. — № 2. — P. 117−119.
  438. Pierik R. L. M., Steegmans H. H. M. Freesia plantlets from flower-buds cultivated in vitro.// Neth J. Agric. Sci. 1975. — V. 23. — № 4. — P. 334−337.
  439. Pierik R. L. M., Steegmans H. H. M. Vegetative propogation of Freesia through the isolation of shoots in vitro.// Neth J. Agric. Sci. 1976. — V. 27. — № 4. -P. 274−277.
  440. Pierik R. L. M. et.al. Vegetative propogation of chimerical Yucca Elephantipes Regel in vitro.// Scientia Hort. 1983. — V. 21. — P. 267−272.
  441. Pirrich G. et.al. Improving explant yield for synthetic seed production in apple (M 26), Wellspur.// XXV International Horticult. Congress Brussels. 1998. — P. 403.
  442. Pliego-Alfare F. J. Development of in vitro rooting bioassay using juvenile stem cuttings of Persea americane Mill.// Hort Sci. 1988. — V. 63. — № 2. — P. 295 301.
  443. Poapst P. A. Root-differentiation properties of some glycoside and polycyclic phenolic comnoundies found in apple and pear fruits.// J. Hort. Sci. 1970. — V. 45.-№ 1.-P. 67−69.
  444. Podwyszyska M., Hempel M. The factors influencing acclimatization of Rose hybrida plants multiplied in vitro to greenhouse conditions.// Acta Hortic. 1988. -№ 226. -P. 639−642.
  445. Pocock S. Procedures and problems associated with the transfer of tissue-cultured plants.// Comb. Proc. Inter. Plant. Propagators Soc. 1984. — № 33. — P. 316−320.
  446. Porlingie I. G., Baynton D. Growth responses of the plant of the strawberry Fragaria chiloensis var. ananassa to gibberellic acid and to emironmental conditions.// Am. J. Hort. Sci. 1961. — V. 78. — № 3. — P. 261−269.
  447. Proft M. P. Implication of the container atmosphere during micropropogation of plant.// Meded. Vande facult. Landbauwensh. Rijksuniversitet Gent. 1985. -V. 50.-№ l.-P. 129−137.
  448. Pua E. C., Calvin Chay. In vitro propagation of Ottawa 3 apple rootstock.// Can. J. Plant Sci. 1989. — V. 69. — P. 183−188.
  449. Rajasekar R., Sharma V. S. Interaction between IBA, certain micronutrients and phenolic acids in relation to rooting of tea cuttings.// Sri. Lanka J. of Tea Sci. -1989.- V.58.-№ l.-P.25−30.
  450. Rancillae M et.al. In vitro rooting of cloned shoots in Pinus pinaster.// Physiol. Plant. 1982. — V. 56. — P. 97−101.
  451. Raphael Plus. IAA-induced adventitious root formation in green wood cutting of populas tremula and formation 2-indoline-3acetyeasparatic acid a new metabolite of exogeneo usly applied IAA.// Physiol. Plant. 1989. — V. 75. — P. 86−89.
  452. Raujut Mukunda. In vitro propagation of cherry rootstock clones in relation to physiological and anatomical aspects of adventitious root formation.// Plant Tissue. Cell. Cult. Apple. Crop. 1984.
  453. Raymon M. et.al. Elimination of Toxicity from Polyurethane Foam Plugs used for Plant culture.// Hort. Sci. 1985. — V. 20. — № 3. — P. 448−449.
  454. Raymond P. Commercial tissue culturing at Oglesty.// The Inter Plant Propag. 1978.-P. 28.
  455. Raviv M. et. al. Evidence for presence of native nonauxine rooting promoter in avocado (Persee americana).// Plant Growth Regul. 1986. — V. 4. — P. 95−102.
  456. Read P., Economon A. Stock plant influence on tissue culture success.// Acta Hortic. 1987. — V. 1. — № 212. — P. 111.
  457. Reiner I. Control of Morphogenesis in Plant Tissue culture by Hormones and Nitrogen Compounds.// Plant growth substrances. 1970. — P. 686−694.
  458. Revers C. Caspar. Plant Cell Tissue and organ Culture. 1985. — V. 4. — № 3. -P. 213−215.
  459. Reed В. M. Internal bacteria contamination of micropropagated hazelnut identification and antibiotic treatment.// Plant. Cell. Tissue and organ Culture. -1998.- V. 52.-P. 67−70.
  460. Richers U. et.al. Micropropagation of eingonberry (vaccinium vitis-idaea).// Erwerbsobstbau. 1989. — V. 31. — № 5. — P. 129−132.
  461. Ripley K. P. et.al. Micropropagation of Euphorbia lathyris.// Plant. Cell Tissue and Organ Culture. 1986. — V. 5. — № 3. — 213−218.
  462. Robert C. Hare. Indoleacetic oxidase. //The Botanical Review. 1964. — № 30. -P. 129−165.
  463. Robert L. Tichnor. Techniques for improving rooting during propagation.// Am. Nurseryman. 1982. — V. 155. — № 1. — P. 67−71.
  464. Robert P. Tripepi et.al. Incorporation of tritiated Thyamidine and uridine in to adventitious root initial cells of vigna radiata.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1982. — V. 108. — № 3. — P. 469−474.
  465. Robert L. et. al. Adventitious Root Initiation in De bladed Petioles from the Juvenile and Mature Phases of English Ivy.// J. Am. Soc. Hort. Sci. — 1988. — P. 629−635.
  466. Robert I. Javret. et.al. In vitro Active V. S. Field Gene bank Maintenance of sweet Potato Germplasm: Major Casts and Considerations.// Hort. Sci. 1990. -V. 25.-№ 2.-P. 141−146.
  467. Robert L. Target cells for pattern formation during adventitious rooting English IVY. Hort. Sci. 1980. — V. 25. — № 9. — P. 70.
  468. Roet S. Bokelmann. Vegetative propagation of chrysanthemum cinerariaefolium in vitro.// Sci. Hort. 1973. — № 1. — P. 120−122.
  469. Royle D. The British Columbian nusery production.// Grower. 1982. -№ 318.-P. 38.
  470. Roger T. After care procedures reguired for field survival of tissue culture propagated Acacia Kod.// The Int. plant propag. Soc. 1978. — V. 28. — P. 358.
  471. Roland Grouroos. Initiation of roots on hypocotyls cuttings of Pinus sylvesters with empaasis on direct rooting, root elongation and auxin uptake.// Can. J. for Res. 1988. — V. 18. — P. 1457−1462.
  472. Rom R. C., Dana M. N. Strawberry root growth studies in fine sandy soil.// Am. J. Soc. Hort. Sci. 1959.
  473. Romani Fausto et. al. La vetrificazione in germogli di M26 coltivate in vitro.// Annali. Fac. Agr. Univ. Perugia. 1987. — V. 10. — № 1. — P. 709−728.
  474. Rosati P. Genetic stability of micropropagated loganberry plants.// J. of Horticult. Sci. 1986. — V. 61. — № 1. — P. 33−41.
  475. Roos E. E. Genetic Changes in a Collection over Time.// Hort. Sci. 1980. -V. 23. — № 1. — P. 86−90.
  476. Roux I. M., Parisot E. M. Nutrition minerale de plants de fraisier micropropadala en acclimatition ex vitro.// Fruits. 1989. — V. 44. — № 5. — P. 275 279.
  477. Rugini E. Micropropagation of difficult propagate almond cultivar.// Plant Sci. Letter. 1982. — № 28. — P. 273−281.
  478. Rugini E. et.al. In vitro control of shoot virtification in almond and development of a technique to Eliminate apex necrosis and shoot base photo-axidation in pistachio.// Hort. Sci. 1986. — V. 21. — № 3. — P. 804.
  479. Reed В. M., Tranpraseet P. Detection and control of bacterial contaminants of plant tissue culture. A review of recent literature.// Plant Tissue Culture and Biotechnology. 1995. — V.l. — № 3. — P. 137−142.
  480. Ruves D. W. et.al. Effect of media and media ph in vitro propagation of «Nemagurd» peach root stock.// Hort. Sci. 1983. — V. 21. — P. 353−357.
  481. Sachner I. M. et.al. //Physiol. Plant. 1989. — V. 76. — P. 569−574.
  482. Safadi F. et.al. In vitro acclimatization of tobacco with polyethylene Glycol and salt.// Hort. Sci. -1990. V. 25. — № 11. — P. 1356.
  483. Sagee O. Rooting of cuttings from gibberelinn and 6 BAP treated citrus trees.// J. of Hort. Sci. 1980. — V. 65. — № 4. — P. 473−478.
  484. Saher S. et.al. Cellular location of oxidative stress and antioxidant enzymatic response in hyperhydrated carnation plants.// In vitro Cell and Dev. Biol. Anim. -2003. V. 39. — P. 53.
  485. Samartin A. et.al. Rooting of tissue cultured camellia S.// J. Hort. Sci. 1986. — V. 61. — № 1.- P. 113−120.
  486. Sancher L. et.al. Rower initiation as related to other organs in the strawberry plant.// Agrochimes. 1975. — V. 19. — P. 3−4.
  487. Sancher Cale. The relation between ethylene production and cell elongation during the initial growth period of chick pea seeds.// Physiol. Plant. — 1989. — V. 76. — P. 569−574.
  488. Saravon Arnold, et.al. Effect of agar concentration on growth and anatomy of adventitious shoot of Piced abies (L) karst.// Plant Cult. Tissue Cult. 1984. — V. 3.-P. 257−264.
  489. Sarma K. S. Effect of method of agar addition on post-autoclave ph of the tissue culture media.// Ann. of Botan. 1980. — V. 65. — № 1. — P. 37−40.
  490. Sauer A. et.al. Different suitability for in vitro propagation of rose cultivars.// Gartenbauwissenschaft. 1985. — V. 50. — № 3. — P. 133−138.
  491. Scwartz H. I. et.al. Field performance and phenotype stability of tissue culture- propagated strawberries.// J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106. — P. 667−673.
  492. Scott E. Hyndman. Stimulation of Root Initiation from cultured Rose shoots through the use Reduced Concentrations of Mineral salts.// Hort. Sci. 1982. — V. 17. -№ 1.-P. 82−83.
  493. Scott D. H. Tissue culture as in aid in the propagation of «Tribute» overbearing strawberry.// Advances in strawberry production. 1985. — № 4. — P. 59−60.
  494. Scott E. Sucrose and nitrogen regulation of adventitious root initiation from cultured rose shoot tip.// Hort. Sci. 1984. — V. 14. — P. 425.
  495. Selvapandijan A. et.al.// Plant. Sci. 1988. -V. 56. — № 1. — P. 81−83.
  496. Shinmuller D. et.al.// Planta. 1985. — V. 164. — P. 557−564.
  497. Short К. C. et.al. In vitro hardening of cultured cauliflower and chrysanthemum plantlets to humidity.// Acta Horticult. 1987. — V. 21. — № 1. — P. 329−334.
  498. Simmounds I. Direct rooting of Micropropagated M26 apple rootstock.// Sci. Hort. 1983. — № 21. — P. 233−241.
  499. Singh I. E. et.al. Response of strawberry to gibberellic acid.// Indian J. Hort. Sci.-1960.-V. 1.-№ 17.-P. 21−30.
  500. Skoog F., Miller С. O. Chemical regulation of growth and organ Formation in plant tissues cultured in vitro.// Sym. Soc. Exp. Biol. 1957. — V. 11. — P. 118 130.
  501. Smeets L. Influence of the temperature on runner production in five strawberry varieties.// Euphytica. 1956. — V.5. — № 1. — P. 13−15.
  502. Smeets L. Effect of temperature pretreatments on the foreign of strawberry plants.// Euphytica. 1966. — V. 15. — № 3. — P. 297−303.
  503. Smith С. Effects of autumn application of potassium gibberelatte on fruit prodaction of the strawberry.// Nature. 1960. — V. 182. — № 1876. — P. 620.
  504. Smith D. L. Ethylene associated phase change from juvenile to maturephenotype of daylily.// Phisiol. Plantarum. 1989. — V. 76. — P. 466−473.
  505. Snow R. The young leaf as the inhibiting organ.// New phytol. 1929. — V. 28,-№ 4.-P. 345−358.
  506. Sobczykiewier D. Mass production of raspberry plantlets through micropropagation and rooting them directly in sand peat mixture.// Fruit Sci. repost. 1982. — V. 11. — № 2. — P. 74−77.
  507. Sriskanderajah S. Micropropagation of Granny Smith apple-factors affecting root formation in vitro.//J. Hort. Sci. 1981. — V. 56. — № 1. — P. 71−76.
  508. Sriskouendarayah S., Mulling M. Induction of adventitious rooting in vitro indifficult to — propagate cultivars of apple.// Aus. Hort. Res. Lett. — 1983. — V. 55.-P. 73−74.
  509. Starck L. Migration of C14 assimilation in the clones of strawberry.// Bull. Dell. Acad. Foles. Sci. Ser. Boil. 1970. — V. 18. — № 9. — P. 591−598.
  510. Steed D. A. W. Micropropagation controlled environment facilities andequipment for weaning.// Acta Horticult. 1989. — № 245. — P. 424−428.
  511. Styer D. J. Bioreactor Technique for plant propagation.// Tissue Cult. Forest and Agr. Proc. 1984. — P. 117−130.
  512. Steet H. E./ Plant tissue and Cell Culture. 1975.
  513. Stonier T. Studies auxin protectors chlorogenic acid a low molecular weight auxin protector in sunflower.// Plant Cell and Environment. 1979. — V. — P. 7982.
  514. Susumu Kwraishi. Latent periods of cytokinin induced stomatal opering in the sunflower Leaf.// Plant and Cell Physiol. — 1981. — V. 25. — № 5. — P. 911−916.
  515. Sutter E. G. et.al. Use of Humidity tends and antitranspirants in the acclimatization of tissue cultured plants to the Greenhous.// Sci. Hort. 1984. — V. 23.-P. 303−312.
  516. Sutter E. G. Morphological, physical and chemical characteristics of epicuticular wax on ornamental plants regenerated in vitro.// Ann. of Botany. -1985.-V. 55. № 3. — P. 321−329.
  517. Suttle C. R. L. Micropropagation of deciduous tress.// Comb. Proc. Inter. Plant Propagat. 1984. — V. 33. — P. 46−49.
  518. Swartz H. I., Galletta I. et.al. Field Performance and Phenotypic stability of Tissue Culture-propagated Strawberries.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106.- № 5. P. 667−673.
  519. Swartz H. I. Field Performance and Phenotypic stability of Tissue-Culture propagated Thornless blackberries.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1983. — V. 108. — № 2.- P. 289−290.
  520. Takeno R. Endogenous gibberellin and cytokinin-like substances in cultured shoot tissues of apple Malus pumila С. V. Jonathan in relation to adventitious root formation.// Plant Growth Regulat. 1982. — V.l. — № 4. — P. 261−268.
  521. Takashi Harada et. al. Stades the Morphogenesis of asparagus organ formation in the in vitro culture of segments with a node excited from the shoots seedlings.// J. Fac. Agr. Hokkaido Univ. 1983. — V. 61. — № 3. — P. 295−306.
  522. Tetsushi Hidaka et.al. A simple Method for acclimatization of in vitro Plantlets of Citrus.// Bull. Fruit. Tree Res Stud. 1989. — № 16. — P. 29−40.
  523. Thomas M. et.al. Controlling vitrificution of petunia in vitro.// Programm and Abstract.- 1988.-P. 758.
  524. Thomas I. Banko. In vitro propagation of oxydendrum aboreum from mature trees.// Hort. Sci. 1989. — V. 24. — № 4. — P. 683−685.
  525. Thomson S. An Improved Medium for the in vitro Rooting of Harbrite Peach.// Fruit varieties. 1982. — V. 36. — № 1. — P. 15−17.
  526. Thuesen A. Yield of fruit from meristem propagated strawberry plants.// Tiddskrift for Planteave. 1974. — V. 82. — № 1. — P. 75−80.
  527. Tim D. Davies. et.al. Interaction between paclobutrazol, GA3 and IBA in adventitious root formation on bean hypocotyls cuttings.// Hort. Sci. 1986. — V. 21. -№ 3. — P. 774.
  528. Travers I. N., Starbuck C. J., Naterella N. I. Effects of culture medium on in vitro rooting of Antonovka 313 Apple.// Hort. Sci. 1985. — V. 20. — № 6. — P. 1051−1052.
  529. Turner I. W. Application of gibberillic acid to strawberry plants at different stages of development.// Nature. 1963. — V. 197. — № 1922. — P. 95−98.
  530. Uosuhainen M. Establishment of cultured with-out preconditioning.// Acta Hort. 1987. — V.l. — № 212. — P. 60.
  531. Ueno I. Flowering and vegetative growth of strawberry.// J. Jap. Soc. hort. Sci. 1962. — V. 31. — № 3. — P. 223−226.
  532. Valat C. The vine and in vitro techniques.// Progres Agricole et vitcola. -1986.-V. 103.-№ 11.-P. 286−287.
  533. Vasil I. K. Perspectives in Plant Cell and Tissue Culture.// International review of cytology. 1980.
  534. Valezo-Aracamo Carmen, Kame M. E. Effect of stage II duration on rooting .// In vitro Cell and Dev. Biol. Anim. 2003. — № 39. — P. 49.
  535. Varge M., Hunphries E. C. Root Formation on Petioles of Debauched Primary Leafles of Dwarf Bean pretreated with GA3, TIBA and Cytokinins.// Ann. Bot. -1974.-V. 38.-P. 803−807.
  536. Velarmoor Raja Gopa.// Phisiol Plant. 1980. — V. 48. — P. 144−149.
  537. Viemont et.al. Effect of the nutrient solution concentration on the transporting phas Erice plants raised in vitro.// Bull. De la Soc. Botan. De Franc. Letters Botanigues. 1985. — V. 132. — № 2. — P. 213−233.
  538. Vieiter A. M. et.al. Prevention of shoot-tip necrosis in shoot culture Chestnu and oak.// Scientia Hort. 1989. — V. 41. — № 1. — P. 151−159.
  539. Vieiter A. M. et.al. Anatomical and chemical stadies of vitrified shoots of chestnut regenerated in vitro.// Physiol. Plantarum. 1985. — V. 65. — № 2. — P. 177−184.
  540. Vieiter I. et.al. Endogenous cytokinins, as determined by the ELISA-test in normal and vitrified shoots chestnut regenerated in vitro.// Agricult. Mediter. -1988. V. 118. — № 4. — P. 301−304.
  541. Veiter A. et.al. Progress towards clonal propagation of Comellia japonice v. Alba Pene by tissue culture techniques.// J. of Hort. Sci. 1989. — V. 64. — № 5. -P. 605−610.
  542. Vieiter A., Vieiter L. Culture of chestnut shoot from buds in vitro.// J. of Hort. Sci. 1980. — V. 55. — № 1. — P. 83−84.
  543. Wainwright H. et.al. The influence of light on the micropropagation of blackcurrant.// J. of Hort. Cult. Sci. 1984. — V. 59. № 3. — P. 387−393.
  544. Wainwright H. et.al.// J. of Hort. Sci. 1985. — V. 60. — № 4. — P. 485−491.
  545. Wang S. L., Faust M. Effect of Growth Retardants on Root Formation and Polyamine Content in Apple Seedling.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1986. — V. 111. -№ 6. -P. 912−917.
  546. Ward G. C., Jones O. P. Malus stock scion interaction.// East Mailing Reseach Station.-1981.
  547. Whal C. Rajapahse et.al.// Hort. Sci. 1989. — V. 24. — № 6. — P. 988−1000. 571. White P. R. Hand book of plant tissue culture.// Jagues Cattellpress. — 1993. -V. 4.-P. 791−794.
  548. Wheelans K., Withers A. The I. B. PGR international data base on in vitro conservation.// Plant Genetic, Resources News letter. 1984. — № 60. — P. 33−38.
  549. Welander M. In vitro shoot and root formation in apple.// Ann of Botany. -1985. V. 55. — № 2. -P.
  550. Welander T. Micropropagation of Cordyline terminals cv. Aboom. A European cooperation project. 1988.
  551. Welander M. In vitro culture of raspberry for mass propagation.// Hort. Sci. -1985. V. 60. — № 4. — P. 493−498.
  552. Werner E. M., Boc A. A. In vitro propagation of Mailing 7 apple rootstock.// Hort. Sci. 1980. — V. 15. — P. 509−510.
  553. Wessels E. In vitro propagation of Actinidia Chinesis PI. cultivas Hayward.// Diciduous Fruit Grower. 1984. — V. 34. — № 2. — P. 453−457.
  554. Webster C. A., Jones 0. P. Micropropagation of the apple rootstock M9: effect of sustained subculture on apparent rejuvenation in vitro.// J. of Hort Sci. 1989. -V. 64.-№ 4.-P. 421−428.
  555. Wetzstein H. I.// Am. J. of Bot. 1982. — V. 69. — № 10. — P. 1579−1586.
  556. Williams R. R., Taji A. M. Auxin type, gel concentration, rooting and survival of Cheiranthere volubilisin in vitro.// Hort. Sci. 1989. — V. 24. — № 2. — P. 305 307.
  557. William R. R. Specifity and interaction among auxin. Light and ph in rooting of Australian woody species in vitro.// Hort. Sci. 1985. — V. 20. — № 6. — P. 10 521 053.
  558. Wilkins H. F. Influence of Light cutting Production and Rooting.// Proceed. XXI Inter. Hort. Congr. 1982. — P. 894−903.
  559. Wolfe D. E. Evalution of seven Media for micropropagation of Highbush Blueberry.// Hort. Sci. 1983. — V. 18. — № 5. — P. 703−705.
  560. Woo В. I. Influence of Photoperiod, Apical meristem and Explant orientation on Axillary Shoot Prolyferation of Apple Cultivars in vitro.// J. Am. Soc. Hort. Sci. 1987. — V. 112. — № 3. — P. 588−592.
  561. Zarikova E. L., Lilov D. Changes in free auxin in the shoots of grapevines with differend growth rates.// Fiziolog. Rasteniy. 1988. — V. 14. — № 2. — P. 2428.
  562. Zucckerelli G., Damiano C. Rapid propagation on vast scale of Daimasco 1869 rootstock by in vitro culture.// Annali dell Istituto sperimentale perla Frutticolture. 1978. — V. 1. — № 10.-P.
  563. Zhu Z. W. Method of in creasing the survival rate of loguat apices cultured in vitro.// Jiangsu Y. of Agricult. Sci. 1989. — V. 5. — № 2. — P. 26−30.
  564. Zimmerman R. Influence of Light on in vitro root character for woody plant microcuttings.// Hort Sci. 1990. — V. 25. — № 3. — P.
  565. Zimmerman T. W. et.al. Vitrification and solube carbohydrate levels in petunia leaves as influenced by media Gelrate and Sucrosse concentrations.// Plant. Cell. Reports. 1989. — V. 8. — № 6. — P. 358−360.
  566. Ziv M. et.al. Malfunction stomata in vitreous leaves of carnation plants propagated in vitro, implecations for harbering.// Plant Sci. Irish Rep. 1987. — V. 52.-№½.-P. 127−134.323
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!