Экспрессия компонентов донервной серотонинергической системы в эмбриогенезе шпорцевых лягушек и морских ежей

Выводы.

• На ранних стадиях эмбрионального развития морских ежей экспрессируются гены, гомологичные компонентам систем синтеза (фенилаланин/триптофан гидроксилаза, AAAD), рецепции (HTR1A, HTR2B, HTR4 и рецептор серотонина неизвестного типа HTRX), обратного захвата (SERT) и деградации {МАОА) серотонина. Функциональная активность систем синтеза и обратного захвата серотонина подтверждена экспериментально.

• На ранних стадиях эмбрионального развития Xenopus экспрессируются гены следующих компонентов серотонинергической системы: ферменты синтеза ТРН2 и AAAD, везикулярный транспортер VMAT2, рецепторы серотонина HTR1E, HTR2C, HTR5 и HTR7, транспортер серотонина SERT.

• Уровень экспрессии мРНК компонентов донервной эмбриональной серотонинергической системы Xenopus в пуле материнской мРНК различается приблизительно на порядок в ряду VMAT2 > HTR7 > HTR1E > HTR5 > HTR2C, SERT. Экспрессия VMAT2, HTR1E и HTR2C уменьшается в процессе раннего развития, тогда как экспрессия HTR5, HTR7 и SERT на ранних стадиях развития держится на одном уровне.

• Экспрессия HTR1E, HTR2C, HTR7 и SERT не имеет выраженных различий вдоль анимально-вегетативной оси, тогда как экспрессия HTR5 и VMAT2 обладает выраженным анимально-вегетативным градиентом, причем HTR5 больше в вегетативной области, a VMAT2 — в анимальной. Экспрессия VMAT2 больше в эпителиальном слое клеток крыши бластоцеля, чем в субэпителиальном, тогда как экспрессия HTR1E, HTR2C, HTR5, HTR7 и SERT не различается между этими группами клеток.

• На стадии гаструлы мРНК НТЯ2С и УМАТ2 транслируются, тогда как мРНК #77? 7 не транслируется и полностью локализована в информосомах. мРНК НТЯ1Е, НТЯ2С и УМАТ2 имеет мотив, необходимый для трансляции во время созревания ооцитов.

• Ферменты синтеза серотонина экспрессируются как в ооцитах на ранних стадиях оогенеза, так и в фолликулярных оболочках, причем в ооцитах экспрессируется ТРН2, а в фолликулярных оболочкахТРН1.

1. Бузников Г. А., Григорьев Н. К. Эффект биогенных моноаминов и их антагонистов на кортикальный цитоплазматический слой у ранних зародышей морских ежей // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1990. Т. 26. С. 614−622.

2. Бузников Г. А., Манухин Б. Н. Влияние серотонина на эмбриональную моторику голожаберных моллюсков // Журнал общей биологии. 1960. Т. 21. № 5. С. 347−352.

3. Бузников Г. А., Подмарев В. И. Морские ежи Strongylocentrotus drobachiensis, S. nudus, S. intermedius II Объекты биологии развития. Москва: Наука, 1975.

4. Бузников Г. А., Шмуклер Ю. Б. Влияние препаратов-антимедиаторов на межклеточные связи у ранних зародышей морских ежей // Онтогенез. 1978. Т. 9. № 2. С. 173−178.

5. Бузников Г. А. Нейротрансмиттеры в эмбриогенезе / Москва: Наука, 1987.

6. Бузников Г. А. Низкомолекулярные регуляторы зародышевого развития / Москва: Наука, 1967.

7. Воронина A.C., Пшенникова Е. С. Выделение РНК из фиксированных формальдегидом рибонуклеопротеидов // Прикладная биохимия и микробиология. 2008. Т. 44. № 2. С. 241−245.

8. Григорьев Н. Г., Шмуклер Ю. Б. Изучение регуляции цитокинеза ранних зародышей морского ежа с помощью электрического пробоя клеточной мембраны // Доклады АН СССР. 1986. Т. 287. № 2. С. 463−466.

9. Григорьев Н. Г. Кортикальный слой цитоплазмы возможное место действия донервных трансмиттеров // Журнал эволюционой биохимии и физиологии. 1988. Т. 24. № 5. С. 625−629.

10. Звездина Н. Д., Мальченко Л. А., Фатеева В. И., Бродский В .Я. Сигнальные факторы самоорганизации ритма синтеза белка в культуре гепатоцитовганглиозиды и катехоламины функционируют независимо друг от друга // Онтогенез. 2008. Т. 39. № 3. С. 198−207.

11. Манухин Б. Н., Бузников Г. А. Новый биологический метод количественного определения серотонина // Физиологический журнал СССР. 1960. № 9. С. 1160−1163.

12. Манухин Б. Н., Бузников Г. А. Серотонин в эмбриогенезе морских беспозвоночных // Журнал общей биологии. 1963. Т. 24. № 1. С. 23−29.

13. Маркова Л. Н., Волина Е. В., Ковачевич Н. Гистохимическое выявление биогенных моноаминов у развивающихся зародышей морских ежей // Онтогенез. 1983. Т. 14. № 6. С. 641−644.

14. Мартынова Л. Е. Гаструляция у морского ежа ?1гоп%у1осегйШт <1гоеЪасЫет1 $ в норме и при обработке различными веществами // Онтогенез. 1981. Т. 12. С. 310−315.

15. Мартынова Л. Е., Белоусов Л. В. Влияние нейрофармакологических препаратов и колхицина на морфогенетические процессы в эмбриональных клетках амфибий // Онтогенез. 1978. Т. 9. № 4. С. 382 388.

16. Никишин Д. А., Семенова М. Н., Шмуклер Ю. Б. Экспрессия генов трансмиттерных рецепторов в раннем развитии морского ежа РагасеЫгоЫБ 1шсЬаб II Онтогенез. 2012. Т. 43. № 3. С. 212−216.

17. Ростомян М. А., Абрамян К. С., Бузников Г. А., Гусарева Э. В. Электронно-цитохимическое выявление аденилатциклазы у ранних эмбрионов морского ежа//Цитология. 1985. Т. 27. С. 877−881.

18. Садокова И. Е. Динамика содержания циклических нуклеотидов в развивающихся зародышах морского ежа 81гоп^у1осеЫгоШ8 ШегтесИт II Онтогенез. 1982. Т. 13. № 6. С. 435−440.

19. Шмуклер Ю. Б., Григорьев Н. Г., Бузников Г. А., Турпаев Т. М. Специфическое торможение делений дробления Xenopus laevis при микроинъекции пропранолола // Доклады АН СССР. 19 846. Т. 274. № 4. С. 994−997.

20. Шмуклер Ю. Б. Межклеточные взаимодействия у ранних зародышей морских ежей. III. Влияние нейрофармакологических препаратов на тип дробления половинных зародышей Scaphechinus mirabilis II Онтогенез. 1981. T. 12. № 4. С. 404−409.

21. Шмуклер Ю. Б. Специфическое связывание H3. 8-OH-DP AT ранними зародышами морского ежа Strongylocentrotus intermedius II Биологические мембраны. 1992. Т. 9. № 10−11. С. 1167−1169.

22. Шмуклер Ю. Б., Григорьев Н. Г., Московкин Г. Н. Адренорецептивные структуры в ранних зародышах шпорцевой лягушки {Xenopus laevis) II Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1988. Т. 24. № 5. С. 621−624.

23. Amireault P., Dube F. Serotonin and its antidepressant-sensitive transport in mouse cumulus-oocyte complexes and early embryos // Biology of reproduction. 2005a. V. 73. № 2. P. 358−365.

24. Amireault P., Dube F. Intracellular cAMP and calcium signaling by serotonin in mouse cumulus-oocyte complexes // Molecular Pharmacology. 20 056. V. 68. № 6. P. 1678−1687.

25. An S.S., Laudadio R.E., Lai J., Rogers R.A., Fredberg J.J. Stiffness changes in cultured airway smooth muscle cells // American journal of physiology. Cell physiology. 2002. V. 283. № 3. P. C792-C801.

26. Barlow L.A. and Truman J.W. Patterns of serotonin and SCP immunoreactivity during metamorphosis of the nervous system of the red abalone, Haliotis rufescens II Journal of neurobiology. 1992. V. 23. № 7. P. 829−844.

27. Basu B., Desai R., Balaji J., Chaerkady R., Sriram V., Maiti S., Panicker M.M. Serotonin in pre-implantation mouse embryos is localized to the mitochondria and can modulate mitochondrial potential // Reproduction. 2008. V. 135. № 5. P. 657−669.

28. Boadle-Biber M.C. Regulation of serotonin synthesis // Progress in biophysics and molecular biology. 1993. V. 60. № 1. P. 1−15.

29. Buznikov G.A., Shmukler Y.B. Possible role of «prenervous» neurotransmitters in cellular interactions of early embryogenesis: A hypothesis // Neurochemical research. 1981. V. 6. № 1. P. 55−68.

30. Buznikov G.A. Neurotransmitters in embryogenesis / New York: Chur, Academic Press, 1990.

31. Buznikov G.A. The biogenic monoamines as regulators of early (pre-nervous) embryogenesis: new data // Advances in experimental medicine and biology. 1991. V. 296. P. 33−48.

32. Buznikov G.A., Chudakova I.V., Zvezdina N.D. The role of neurohumours in early embryogenesis. I. Serotonin content of developing embryos of sea urchin and loach // Journal of embryology and experimental morphology. 1964. V. 12. № 4. P. 563−573.

33. Buznikov G.A., Lambert H.W., Lauder J.M. Serotonin and serotonin-like substances as regulators of early embryogenesis and morphogenesis // Cell and tissue research. 2001. V. 305. № 2. P. 177−186.

34. Buznikov G.A., Shmukler Y.B., Lauder J.M. From oocyte to neuron: do neurotransmitters function in the same way throughout development? // Cellular and molecular neurobiology. 1996. V. 16. № 5. P. 533−559.

35. Castrodad F.A., Renaud F.L., Ortiz J., Phillips D.M. Biogenic amines stimulate regeneration of cilia in Tetrahymena thermophila II The Journal of protozoology. 1988. V. 35. № 2. P. 260−264.

36. Cerda J., Reich G., Wallace R.A., Selman K. Serotonin inhibition of steroid-induced meiotic maturation in the teleost Fundulus heteroclitus: role of cyclic AMP and protein kinases // Molecular reproduction and development. 1998. V. 49. № 3. P. 333−341.

37. Chang T.H., Huang H.Y., Hsu J.B., Weng S.L., Horng J.T., Huang H.D. An enhanced computational platform for investigating the roles of regulatory RNA and for identifying functional RNA motifs // BMC Bioinformatics. 2013. V. 14(Suppl. 2). S4.

38. Cikos S., Fabian D., Makarevich A.V., Chrenek P., Koppel J. Biogenic monoamines in preimplantation development // Human reproduction. 2011. V. 26. № 9. P. 2296−2305.

39. Colas J.F., Launay J.M., Vonesch J.L., Hickel P., Maroteaux L. Serotonin synchronises convergent extension of ectoderm with morphogenetic gastrulation movements in Drosophila II Mechanisms of development. 1999a. V. 87. № 1−2. P. 77−91.

40. Colas J.F., Launay J.M., Maroteaux L. Maternal and zygotic control of serotonin biosynthesis are both necessary for Drosophila germband extension // Mechanisms of development. 1999b. V. 87. № 1−2. P. 67−76.

41. Coleman C.M., Neckameyer W.S. Serotonin synthesis by two distinct enzymes in Drosophila melanogaster II Archives of insect biochemistry and physiology. 2005. V. 59. № l.P. 12−31.

42. Conti M., Andersen C.B., Richard F., Mehats C., Chun S.Y., Horner K., Jin C., Tsafriri A. Role of cyclic nucleotide signaling in oocyte maturation // Molecular and Cellular Endocrinology. 2002. V. 187. № 1−2. P. 153−159.

43. Csaba G., Ubornyak L. Effects of hormones on the RNA-synthesis of Tetrahymena pyriformis II Comparative biochemistry and physiology. C, Comparative pharmacology and toxicology. 1981. V. 68C. № 2. P. 251−253.

44. Devic E., Paquereau L., Steinberg R., Caput D., Audigier Y. Early expression of a beta 1-adrenergic receptor and catecholamines in Xenopus oocytes and embryos // FEBS letters. 1997. V. 417. № 2. P. 184−190.•n I.

45. Doran S.A., Goldberg J.I. Roles of Ca and protein kinase C in the excitatory response to serotonin in embryonic molluscan ciliary cells // Canadian journal of physiology and pharmacology. 2006. V. 84. № 6. P. 635−646.

46. Driesch H. Entwicklungmechanische Studien. III. Die Vermiderung des Furchungsmaterials und ihre Folgen (Weiteres uber Theilbildungen) // Z. wiss. Zool. 1892. V. 55. № 1. P. 1−10.

47. Dube F., Amireault P. Local serotonergic signaling in mammalian follicles, oocytes and early embryos // Life sciences. 2007. V. 81. № 25−26. P. 16 271 637.

48. Emanuelsson H. Localization of serotonin in cleavage embryos of Ophryotrocha labronica La Greca and Bacci // Development Genes and Evolution. 1974. V. 175. № 4. P. 253−271.

49. Emanuelsson H., Carlberg M., Lowkvist B. Presence of serotonin in early chick embryos // Cell differentiation. 1988. V. 24. № 3. P. 191−199.

50. Fukumoto T., Kema I.P., Levin M. Serotonin signaling is a very early step in patterning of the left-right axis in chick and frog embryos // Current Biology. 2005a. V. 15. № 9. P. 794−803.

51. Fukumoto T., Blakely R.D., Levin M. Serotonin transporter function is a novel element of left-right patterning // J Dev Neurosci. 20 056. V. 27. P. 349−363.

52. Gerhardt C.C., van Heerikhuizen H. Functional characteristics of heterologously expressed 5-HT receptors // European journal of pharmacology. 1997. V. 334. № l.P. 1−23.

53. Gilbert S.F. Developmental Biology / Sinauer Associates, Sunderland, MA. Eighth edition: 2006.

54. Greenawalt J.W., Schnaitman C. An appraisal of the use of monoamine oxidase as an enzyme marker for the outer membrane of rat liver mitochondria // The Journal of cell biology. 1970. V. 46. № 1. P. 173−179.

55. Grieco D., Awedimento E.V., Gottesman M.E. A role for cAMP-dependent protein kinase in early embryonic divisions // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1994. V. 91. № 21. P. 9896−9900.

56. Grubbs R.D. Chemical Messenger Systems // Neuroscience in Medicine / book auth. Conn P.M. 2008.

57. Guilluy C., Eddahibi S., Agard C., Guignabert C., Izikki M., Tu L., Savale L.,.

58. Humbert M., Fadel E., Adnot S., Loirand G., Pacaud P. RhoA and Rho96kinase activation in human pulmonary hypertension: role of 5-HT signaling // American journal of respiratory and critical care medicine. 2009. V. 179. № 12. P. 1151−1158.

59. Gustafson T., Toneby M. On the role of serotonin and acetylcholine in sea urchin morphogenesis // Experimental Cell Research. 1970. V. 62. № 1. P. 102 117.

60. Hake, L.E., Richter J.D. CPEB is a specificity factor that mediates cytoplasmic polyadenylation during Xenopus oocyte maturation // Cell. 1994. V. 79. № 4. P. 617−627.

61. Hamdan F.F., Ungrin M.D., Abramovitz M., Ribeiro P. Characterization of a novel serotonin receptor from Caenorhabditis elegans: cloning and expression of two splice variants // J. Neurochem. 1999. V. 72. № 4. P. 1372−1383.

62. Harland R.M. In situ hybridization: an improved whole-mount method for Xenopus embryos // Methods in cell biology. 1991. V. 36. P. 685−695.

63. Heasman J. Patterning the early Xenopus embryo // Development. 2006. V. 133. № 7. P. 1205−1217.

64. Hinckley M., Vaccari S., Horner K., Chen R., Conti M. The G-protein-coupled receptors GPR3 and GPR12 are involved in cAMP signaling and maintenance of meiotic arrest in rodent oocytes // Developmental Biology. 2005. V. 287. № 2. P. 249−261.

65. Katow H., Shunsuke Yaguchi S., Kyozuka K. Serotonin stimulates Ca2+.j elevation in ciliary ectodermal cells of echinoplutei through a serotonin receptor cell network in the blastocoel // The Journal of Experimental Biology. 2007. V. 210. P. 403−412.

66. Kim M.J., Han J.K. The involvement of cAMP signaling pathway in axis specification in Xenopus embryos // Mechanisms of development. 1999. V. 89. № 1−2. P. 55−64.

67. Konig P., Krain B., Krasteva G., Kummer W. Serotonin increases cilia-driven particle transport via an acetylcholine-independent pathway in the mouse trachea // PLoS ONE. 2009. V. 4. № 3. P. e4938.

68. Malanga C.J., Poll K.A. Effects of the cilioexcitatory neurohumors dopamine and 5-hydroxytryptamine on cyclic AMP levels in the gill of the mussel mytilus edulis // Life Sciences. 1979. V. 25. № 4. P. 365−373.

69. McCauley D.W. Serotonin plays an early role in the metamorphosis of the hydrozoan Phialidium gregarium II Developmental biology. 1997. V. 190. № 2. P. 229−240.

70. McDevitt R.A., Neumaier J.F. Regulation of dorsal raphe nucleus function by serotonin autoreceptors: a behavioral perspective // Journal of chemical neuroanatomy. 2011. V. 41. № 4. P. 234−246.

71. Mercado C.P., Kilic F. Molecular mechanisms of SERT in platelets: regulation of plasma serotonin levels // Molecular Interventions. 2010. V. 10. № 4. P. 231−241.

72. Miyazaki S., Katayama Y., Swann K. Synergistic activation by serotonin and GTP analogue and inhibition by phorbol ester of cyclic Ca2+ rises in hamster eggs // The Journal of physiology. 1990. V. 426. P. 209−227.

73. Neilson L., Andalibi A., Kang D., Coutifaris C., Strauss J.F. 3rd, Stanton J.A., Green D.P. Molecular phenotype of the human oocyte by PCR-SAGE // Genomics. 2000. V. 63. № 1. P. 13−24.

74. Nieuwkoop P.D. The formation of the mesoderm in the urodelean amphibians. I. Induction by the endoderm // Wilhelm Roux Arch. EntwMech. Org. 1969. V. 162. P. 341−373.

75. Nikishin D.A., Kremnyov S.V., Konduktorova V.V., Shmukler Y.B. Expression of serotonergic system components during early Xenopus embryogenesis // The International journal of developmental biology. 2012. V. 56. № 5. P. 385 391.

76. Paynton B.V., Bachvarova R. Polyadenylation and deadenylation of maternal mRNAs during oocyte growth and maturation in the mouse // Molecular Reproduction and Development. 1994. V. 37. № 2. P. 172−180.

77. Peroutka S.J. 5-Hydroxytryptamine receptor subtypes // Serotonin receptors and their ligands / ed. Olivier B., van Wijngaarden I. and Soudijn W. Elsevier Science, 1997.

78. Pino G.D., Moessner R., Lesch K.P., Lauder J.M., Persico A.M. Roles for serotonin in neurodevelopment: more than just neural transmission // Current neuropharmacology. 2004. V. 2. № 4. P. 403−417.

79. Poenie M., Alderton J., Tsien R.Y., Steinhardt R.A. Changes of free calcium levels with stages of the cell division cycle // Nature. 1985. V. 315. № 6015. P. 147−149.

80. Radford H.E., Meijer H.A., de Moor C.H. Translational control by cytoplasmic polyadenylation in Xenopus oocytes // Biochimica et biophysica acta. 2008. V. 1779. № 4. P. 217−229.

81. Raymond J.R., Mukhin Y.V., Gelasco A., Turner J., Collinsworth G., Gettys T.W., Grewal J.S., Garnovskaya M.N. Multiplicity of mechanisms of serotonin receptor signal transduction // Pharmacology & Therapeutics. 2001. V. 92. № 2−3. P. 179−212.

82. Renaud F., Parisi E., Capasso A., De Prisco P. On the role of serotonin and 5-methoxy-tryptamine in the regulation of cell division in sea urchin eggs // Developmental Biology. 1983. V. 98. № 1. P. 37−46.

83. Riley L.A., Waguespack M.A., Denney R.M. Characterization and quantitation of monoamine oxidases A and B in mitochondria from human placenta // Molecular pharmacology. 1989. V. 36. № 1. P. 54−60.

84. Rudnick G., Clark J. From synapse to vesicle: the reuptake and storage of biogenic amine neurotransmitters // Biochimica et biophysica acta. 1993. V. 1144. № 3. P. 249−263.

85. Shi L., Javitch J.A. The binding site of aminergic G protein-coupled receptors: the transmembrane segments and second extracellular loop // Annual review of pharmacology and toxicology. 2002. V. 42. P. 437−467.

86. Shmukler Yu.B., Buznikov G.A. Functional coupling of neurotransmitters with second messengers during cleavage divisions: facts and hypotheses // Perspectives on developmental neurobiology. 1998. V. 5. № 4. P. 469−480.

87. Shmukler Yu.B., Tosti E. Serotonergic-induced ion currents in cleaving sea urchin embryos // Invertebrate Reproduction and Development. 2002. V. 42. № 1. P. 43−49.

88. Shmukler Yu.B. Possibility of membrane reception of neurotransmitter in sea urchin early embryos // Comparative biochemistry and physiology C Comparative pharmacology and toxicology. 1993. V. 106. № 1. P. 269−273.

89. Shmukler Yu.B., Silvestre F., Tosti E. 5-HT-receptive structures are localized in the interblastomere cleft of Paracentrotus lividus early embryos // Zygote. 2008. V. 16. № l.p. 79−86.

90. Sindelka R., Ferjentsik Z., Jonak J. Developmental expression profiles of Xenopus laevis reference genes // Developmental dynamics. 2006. V. 235. P. 754 758.

91. Sive H.L., Grainger R.M., Harland R.M. Early Development of Xenopus Laevis: A Laboratory Manual / Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2010.

92. Small D.H., Wurtman R.J. Association of serotonin, dopamine, or noradrenaline with an actin-like component in pheochromocytoma (PC 12) cells // Journal of neurochemistry. 1985a. V. 45. P. 825−831.

93. Small D.H., Wurtman R.J. Binding of 3H-serotonin to skeletal muscle actin // Journal of neurochemistry. 19 856. V. 45. P. 819−824.

94. Song B.H., Choi S.C., Han J.K. Local activation of protein kinase A inhibits morphogenetic movements during Xenopus gastrulation // Developmental dynamics. 2003. V. 227. № 1. P. 91−103.

95. Spirin A.S. Storage of messenger RNA in eukaryotes: envelopment with protein, translational barrier at 5' side, or conformational masking by 3' side? // Molecular reproduction and development. 1994. V. 38. № 1. P. 107−117.

96. Strieker S.A., Smythe T.L. 5-HT causes an increase in cAMP that stimulates, rather than inhibits, oocyte maturation in marine nemertean worms // Development. 2001. V. 128. № 8. P. 1415−1427.

97. Tadros W., Lipshitz H.D. The maternal-to-zygotic transition: a play in two acts // Development. 2009. V. 136. № 18. P. 3033−3042.

98. Tsugeno Y., Ito A. A key amino acid responsible for substrate selectivity of monoamine oxidase A and B // The Journal of biological chemistry. 1997. V. 272. № 22. P. 14 033−14 036.

99. Turlejski K. Evolutionary ancient roles of serotonin: long-lasting regulation of activity and development // Acta neurobiologiae experimentalis. 1999. V. 56. № 2. P. 619−636.

100. Tusnady G.E., Simon I. The HMMTOP transmembrane topology prediction server // Bioinformatics (Oxford, England). 2001. V. 17. № 9. P. 849−850.

101. Vacquier V.D., Mazia D. Twinning of sand dollar embryos by means of dithiothreitol. Roles of cell surface interactions and of the hyaline layer. // Experimental cell research. 19 686. V. 52. № 2. P. 459−468.

102. Vacquier V.D., Mazia D. Twinning of sand dollar embryos by means of dithiothreitol. The structural basis of blastomere interactions //Experimental cell research. 1968a. V. 52. № 2. P. 209−219.

103. Valenstein E.S. The discovery of chemical neurotransmitters // Brain and cognition. 2002. V. 49. № 1. P. 73−95.

104. Vesela J., Rehak P., Mihalik J., Czikkova S., Pokorny J., Koppel J. Expression of serotonin receptors in mouse oocytes and preimplantation embryos // Physiological research / Academia Scientiarum Bohemoslovaca. 2003. V. 52. № 2. P. 223−228.

105. Walther D.J., Peter J.U., Winter S., Holtje M., Paulmann N., Grohmann M.,.

106. Vowinckel J., Alamo-Bethencourt V., Wilhelm C.S., Ahnert-Hilger G., 102.

107. Bader M. Serotonylation of small GTPases is a signal transduction pathway that triggers platelet alpha-granule release // Cell. 20 036. V. 115. № 7. P. 851−862.

108. Walther D.J., Peter J.U., Bashammakh S., Hortnagl H., Voits M., Fink H., Bader M. Synthesis of serotonin by a second tryptophan hydroxylase isoform // Science. 2003a. V. 299. № 5603. P. 76.

109. Walther D.J., Bader M. A unique central tryptophan hydroxylase isoform // Biochemical pharmacology. 2003. V. 66. № 9. P. 1673−1680.

110. Wang J., Cao W.L., Liu X.J. Protein kinase A (PKA)-restrictive and PKA-permissive phases of oocyte maturation // Cell Cycle. 2006. V. 5. № 2. P. 213−217.

111. Watts S.W., Priestley J.R., Thompson J.M. Serotonylation of vascular proteins important to contraction // PLoS One. 2009. V. 4. № 5. P. e5682.