Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Молекулярно-биологические свойства изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных на территории России в период с 2005 по 2011 гг

Диссертация: Молекулярно-биологические свойства изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных на территории России в период с 2005 по 2011 гг
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Преобладание изолятов генетической группы Массачусетс, возможно связано с применением па птицефабриках РФ преимущественно вакцин на основе штаммов данного генотипа (Ма5, И52, II120). Так же можно объяснить распространение изолятов генотипа 793 В и С274, гак как в последние годы вакцины па основе штаммов 4/91 и 1)274 часто используются для профилактики ИБК в России и европейских странах. Кроме… Читать ещё >

Молекулярно-биологические свойства изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных на территории России в период с 2005 по 2011 гг (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Характеристика вируса ИБК
      • 1. 1. 1. Распространение вируса ИБК в мире
      • 1. 1. 2. Структура и свойства вируса ИБК
      • 1. 1. 3. Устойчивость к физико-химическим факторам
      • 1. 1. 4. Изменчивость вируса ИБК
    • 1. 2. Диагностика ипфекциониого бронхита кур
      • 1. 2. 1. Молекулярные методы диагностики
      • 1. 2. 2. Серологические методы диагностики
      • 1. 2. 3. Выделение вируса ИБК
      • 1. 2. 4. Постановка биопробы
    • 1. 3. Тинирование вируса ИБК
    • 1. 4. Патогенез инфекционного бронхита кур
    • 1. 5. Источники и пути передачи инфекции
    • 1. 6. Профилактика ИБК

Актуальность темы

Инфекционный бронхит кур (ИБК) -высококоитагиозное заболевание, которое поражает птиц всех возрастов в хозяйствах мясного и яичного направлений и широко распространено во многих странах. Возбудителем заболевания является РИК-содержащий вирус семейства Coronaviridae, рода Coronavirus. При развитии заболевания поражаются респираторные органы, почки, а также репродуктивные органы кур. Экономические потери связаны со снижением прироста массы тела у цыплят-бройлеров, снижением яичной продуктивности, ухудшением качества яиц у несушек и родительского поголовья 11, 4, 50].

Как и другие РИК-содержащие вирусы, вирус ИБК может быстро мутировать. Давление со стороны иммунной системы хозяина на гетерогенную популяцию вируса, приводит к преимущественному отбору и закреплению тех или иных вариантов вируса. В результате, вирусный геном быстро эволюционирует, порождая широкий спектр штаммов и подтипов [49, 119]. Изменения в геноме вируса ИБК происходят в результате накопления точечных мутаций, инсерций и делений, а также рекомбинации.

Профилактика ИБК значительно осложняется антигенной гетерогенностью его возбудителя. Известно большое количество серотинов, при этом иммунитет, приобретенный к одному серотипу, часто не обеспечивает перекрестной защиты от заражения вирусом других серотинов.

Степень разработанности проблемы. Изучение ИБК в России начато в 1960;е гг. Первые работы посвящены вопросам ассоциированного течения ИБК и бактериальных инфекций, а также определению типовой принадлежности штаммов вируса ИБК, выделенных на птицефабриках России, с помощью перекрестной реакции нейтрализации на КЭ |9|.

Вопросам диагностики ИБК, основанной на молекулярных методах, посвящен ряд работ зарубежных и отечественных авторов. В России в 199 798 годах были разработаны методы штаммовой дифференциации вируса ИБК на основе ПЦР и секвепировапия вариабельной области гена SI 11 1 ]. С использованием данных методик показано разнообразие генетических групп вируса ИНК на птицефабриках России в период с 1997 по 2004 гг. Описаны биологические свойства изолята «Таганрогский» генотипа 793 В, «Щелковский» генотипа Массачусетс и изолята «Калужский», отличного по нуклеотидпому составу от известных вакцинных штаммов более чем на 20% |8,25|.

В работах зарубежных авторов описано широкое распространение в мире изолятов вируса ИНК генетической группы ОХ. Для дальнейшей оптимизации средств профилактики заболевания изучены биологические свойства ряда изолятов вируса ИНК данного генотипа [57, 87, 97]. Для России проблема появления и распространения изолятов вируса генотипа ОХ также актуальна, но недостаточно изучена. Высокая изменчивость вируса и скорость распространения вновь появившихся вариантов обусловливают необходимость разработки чувствительного и специфичного метода О’Г-ПЦР-РВ для выявления генома вируса ИНК, постоянного мониторинга циркулирующих изолятов вируса, а также изучения их биологических свойств.

Цель и задачи исследования

Целью данной работы являлось изучение молскулярно-биологических свойств изолятов вируса ИНК, выявленных на 'территории РФ в период с 2005 но 2011 гг.

Для достижения цели были поставлены задачи:

1. разработать метод выявления генома вируса ИНК в О’Г-ГИ 1. Р-РВ;

2. провести филогенетический анализ изолятов вируса ИНК, выявленных на территории РФ в период с 2005 по 201 1 гг.;

3. выделить изоляты вируса ИНК;

4. изучить молекулярно-биологические свойства изолята вируса ИНК генотипа С>Х;

5. изучить молекулярно-гепстическис свойства рскомбинантпых вирусов ИНК.

Научная новизна исследования. Разработан метод для выявления генома вируса ИБК в ОТ-1ЩР-РВ.

Определена нуклеотидпая последовательность фрагмента гена S1 и создан банк данных 169 изолятов вируса ИБК, выявленных у кур из хозяйств России в 2005;2011 гг.

Впервые в России выявлена и подтверждена клонированием и секвепированием естественная рекомбинация гена S1 вируса ИБК.

Практическая значимость исследования. В результате исследования 1445 проб патологического материала методами ОТ-ШДР-РВ и ОТ-ПЦР установлено преобладание на птицефабриках РФ изолятов вируса ИБК генотипов Массачусетс, 793 В, QX и D274.

Выделенные изоляты вируса ИБК генотипа QX могут быть использованы в ФГБУ «ВНИИЗЖ» для разработки диагностических наборов и в качестве компонента полиштамных вакцин против ИБК.

Соответствие диссертации паспорту научной специальности. В соответствии с формулой специальность 03.02.02 «Вирусология» представляет собой область науки, занимающуюся исследованием вирусов, их происхождения, состава, строения, генетики, морфологии, механизмов размножения, аспектов взаимоотношений с клеточными организмами, проблемами противовирусного иммунитета, патогенности вирусов, разработкой мер и средств предупреждения, диагностики и лечения вызываемых вирусами заболеваний. В диссертации разработаны методические указания по выявлению генома вируса инфекционного бронхита кур с использованием ОТ-ИЦР-РВ, приведены результаты исследований по выявлению и штаммовой дифференциации изолятов вируса ИБК, выявленных на территории России и стран ближнего зарубежья в период с 2005 по 2011 гг., а также описаны биологические свойства изолята IBV08−10 генотипа QX. Результаты научного исследования соответствуют пунктам 4, 6, 8, 10 паспорта специальности.

Апробация работы. Результаты диссертационной работы представлены и обсуждены на V и VII Международных ветеринарных конгрессах по птицеводству (г. Москва, 2009 и 2011 г. г.), на научно-практических семинарах специалистов птицехозяйств России (Владимир, 2011 и 2012 гг.), на 6-ой Всероссийской научно-практической конференции с международным участием (г. Москва, 2007 г.), на семинаре для главных зоотехников и главных ветеринарных врачей птицеводческих хозяйств России и стран СНГ (г. Сергиев Посад, 2012 г.), на Международной научно-практической конференции молодых ученых «Достижения молодых ученых — в ветеринарную практику» (г. Владимир, 2012 г.), на заседаниях ученого совета ФГБУ «ВПИИЗЖ» в период с 2005 по 2011 гг.

Публикации научных исследований. По теме диссертационной работы опубликовано 10 научных статей, в том числе 3 статьи в изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки Российской Федерации.

Основные положении, выносимые на защиту:

— метод ОТ-ПЦР-РВ для выявления генома вируса ИБК в пробах патологического материала;

— сравнительный анализ первичной структуры гена S1 изолятов вируса ИБК, выявленных на территории России и стран ближнего зарубежья в период с 2005 по 2011 гг.;

— молекулярпо-биологические свойства изолята IBV08−10 вируса ИБК генотипа QX;

— молекуляриогенетические свойства рекомбипаитпых форм вируса.

ИБК.

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа изложена на 116 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, результаты собственных исследований и их обсуждение, заключение, выводы и приложение.

Список литературы

включает 25 отечественных и 168 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 17 таблицами и 20 рисунками.

5. ВЫВОДЫ.

1. Разработан специфичный метод ОТ-ПЦР-РВ для выявления фрагмента генома вируса ИБК, аналитическая чувствительность которого составила 1,0 ^ ЭИД50/мл вируса (13 геномных эквивалентов вируса ИЫ< на реакцию).

2. В результате исследования 1445 проб патологического материала из 300 хозяйств России и стран ближнего зарубежья выявлено 169 изолятов вируса ИБК генотипов Массачусетс (29%), 793 В (21%), рХ (16%,), 0274 (12%>), В1648 (3%), Иа1у-02 (2%), Арканзас (1%), а также вариантные изоляты вируса с уникальной первичной структурой гена 81(11%).

3. Вариабельность фрагмента гена 81 внутри генетических групп Массачусетс, 793 В, (ЗХ, 0274, В1648, Иа1у-02, Арканзас не превышала 4,8%, 10%, 7,1%о, 5,8%, 8,7%о, 3,9%, 8,1%), соответственно. Вариантные изоляты отличались от всех известных вакцинных штаммов более чем на 20%> и не были отнесены ни к одной генетической группе.

4. Выделены 8 изолятов вируса ИБК генотипа С>Х. Изолят 1ВУ08−10 обладал цилиостатическим и эмбриопатическим действиями, однако при экспериментальном заражении птицы разных возрастов, иммунных и неиммупных к вирусу ИБК клинических признаков и патологоапатомических изменений не вызывал.

5. Впервые в РФ выявлены, выделены и охарактеризованы рекомбипантиые формы вируса ИБК. Для всех выявленных рекомбипаитных форм определены точки рекомбинации на участке 300−470 и.п. гена 81.

6. Установлено, что на территории РФ в 2005;2011 гг. по сравнению с данными за период 1998;2004 гг. сократилось количество изолятов вируса ИБК генотипа Массачусетс па 13%, вариантных изолятов — на 21%, и возросло количество изолятов вируса ИБК генотипа 793 В па 10%, — на 14%.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

В результате проведенных исследований разработаны следующие нормативные документы:

Методические указания по выявлению генома вируса инфекционного бронхита кур с использованием полимеразпой цепной реакции в режиме реального времени";

Депонирован в Коллекции штаммов микроорганизмов ОБТК ФГБУ «ВНИИЗЖ» штамм Шт08−10 вируса инфекционного бронхита кур (ИБК).

4.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проведенных исследований был разработан метод ОТ-ПЦР-РВ для выявления генома вируса ИБК с использованием системы праймеров и флуоресцентно-меченого олигопуклеотидиого зонда, выбранных для амплификации фрагмента нетранслируемой области генома вируса (иТИ). Специфичность разработанного метода была продемонстрирована с использованием вакцинных штаммов и изолятов вируса ИБК генотипов Массачусетс, 793 В, ОХ, Е) 274, а также вариантного изолята вируса (имеющего более 20% нуклеотидпых отличий от известных вакцинных штаммов) и проб, содержащих другие инфекционные агенты птиц.

В 2005;2011 гг. методами ОТ-ШДР и секвепировапия было исследовано 1445 проб патологического материала от птиц из 300 п тицефабрик России и некоторых стран ближнего зарубежья. Геном вируса ИБК выявили более чем в 35% проб как от вакцинированной, 'так и от нсвакцинировапной птицы разных пород и возрастов. Для гепотипироваиия выявленных изолятов вируса ИБК использовали сравнительный анализ фрагмента гена Б1 длиной 500 н.п. (позиция на геноме 112−653 п.и. относительно штамма Н120), кодирующего поверхностный гликопротеин.

При анализе нуклеотидпых последовательностей фрагментов гена 81 169 изолятов, выявленных в период с 2005 по 2011 гг., было установлено, что на птицефабриках РФ и ближнего зарубежья преобладали изоляты вируса ИБК генотипов Массачусетс (29% от общего числа выявленных изолятов вируса ИБК), 793 В (21%), дХ (16%) и 13 274 (12%). Кроме того, были выявлены изоляты генетических групп В1648, 11а1у-02, Арканзас, вариан тные изоляты, имеющие более 20% нуклеотидпых отличий от всех вакцинных штаммов и пе относящиеся ни к одной генетической группе, а также рекомбинантные формы вируса ИБК.

Преобладание изолятов генетической группы Массачусетс, возможно связано с применением па птицефабриках РФ преимущественно вакцин на основе штаммов данного генотипа (Ма5, И52, II120). Так же можно объяснить распространение изолятов генотипа 793 В и С274, гак как в последние годы вакцины па основе штаммов 4/91 и 1)274 часто используются для профилактики ИБК в России и европейских странах. Кроме того, быстрому распространению изолятов европейских генотипов способствует импорт инкубационного яйца и племенной птицы из стран Европы. Изоляты вируса, генетически близкие штамму ОХ, который был выделен и охарактеризован в Китае в конце 1990;х годов, быстро распространились за последнее десятилетие па птицефабриках России, стран Азии и Европы. Возможно, этому способствовали не только экономические связи, но и способность вируса ИБК бессимптомно инфицировать диких перелетных птиц.

За исследуемый период на территории России выявлены 19 вариантных изолятов с уникальной первичной структурой гена Б1, имеющих более 20% пуклеотидиых отличий от известных вакцинных штаммов и не относящихся ни к одному генотипу. Большинство из них были выявлены в пробах патологического материала, отобранных от кур в возрасте от нескольких до 100 педель. Подобные изоляты преобладали на птицефабриках РФ с 19 982 004 гг. Возможно, это связано с интенсивным развитием птицеводства и укрупнением птицефабрик в то время. За исследуемый период времени (2005;2011 гг.) число выявлений подобных изолятов значительно снизилось.

За период с 2005 по 2011 гг. возросло количество случаев выявления изолятов вируса ИБК генотипа ОХ па птицефабриках России и стран ближнего зарубежья. Изоляты данной группы были обнаружены на птицефабриках Южного (Краснодарский край, Ростовская область), Центрального (Курская, Ивановская, Тверская, Воронежская, Белгородская области) и Приволжского (Самарская область) Федеральных округов России. Поэтому одной из задач данной работы были выделение и изучение биологических свойств вируса ИБК генотипа ОХ.

Для изучения биологических свойств с использованием С11Фэмбрионов кур выделены 8 изолятов вируса ИБК генетической груши, I ОХ. Были изучены биологические свойства изолята 1ВУ08−10 генотипа ОХ, выделенного от бройлеров птицефабрики Тверской области в 2010 году. Исследуемый изолят обладал цилиостатичсским действием, вызывая атрофию ресничек ТОК через 72 часа после инфицирования, и эмбриопатическим действием, характерным для вируса ИБК. Титр инфекционной акт ивности составил 6,4 ^ ЭИД50/мл. Патогеипость изолята 1ВУ08−10 определяли путем постановки биопробы на цыплятах разных возрастов (7, 21 и 52 сут.), иммунных и нсиммунных к вирусу ИБК. В результате проведенных экспериментов было показано, что изолят 1ВУ08−10 вируса ИБК генотипа ОХ не вызывал у птиц клинических признаков и патологоанатомических изменений, за исключением непродолжительного цилиостаза и легких респираторных расстройств, хотя геном вируса выявляли в пробах внутренних органов (трахея, легкие, почки, кишечник) и ротоголоточпых смывах методом ОТ-ПЦР-РВ на протяжении 28 суток (длительность каждого опыта) после заражения.

Впервые в России и на территории стран ближнего зарубежья, начиная с 2009 года, были выявлены четыре естественных рекомбинанта вируса ИБК (1ВУ02−09 в 2009 году, 1ВУ01−10, 1ВУ03−10 в начале 2010 года и 1ВУ27−11 в октябре 2011 года), родительскими формами которых предположительно были вакцинные штаммы и изоляты вируса ИБК четырех генотипов (Массачусетс, ОХ, 793 В, 1)274) в различных сочетаниях.

Сравнительный анализ пуклеотидпой последовательности гена 81 всех четырех рекомбипаптов вируса ИБК показал, что рекомбинация происходила на участке гена 300−470 н.п.

С использованием СПФ-эмбриоиов кур были выделены два рекомбинанта: 1ВУ02−09, родительскими формами которого были вакцинный штамм Н120 и изолят генотипа ОХ, и 1ВУ27−11, появившийся в результате естественной рекомбинации двух изолятов, принадлежащих к генотипам.

Массачусетс и 793 В. Оба рекомбипанта проявляли цилиостатичсское и эмбриопатическос действия, характерные для вируса ИБК. Титр инфекционной активности для изолятов 1ВУ02−09 и 1ВУ27−11 составил 6,0 и 6,1 ?g ЭИД50/мл, соответственно.

В результате анализа иуклеотидиых последовательностей фрагмента гена 81 изолятов, выявленных с 2005 по 201 1 гг., была показана длительная циркуляция изолятов вируса ИНК в хозяйствах. Так, на одной из птицефабрик Саратовской области идентичные по иуклеотидпому составу изоляты выявляли в течение 5 лет. Кроме того, были описаны случаи совместной циркуляции в хозяйстве разных изолятов, принадлежащих к одной или нескольким генетическим фупнам вируса ИБК.

По данным за период с 1998 по 2004 гг. основная часть выявленных изолятов ИБК на территории РФ относилась к генотипу Массачусетс и к вариантным изолятам, эндемичным для России [23, 153). Полученные нами результаты позволяют сделать вывод о том, что в настоящее время ситуация изменилась. Хотя генотип Массачусетс в целом остается преобладающим, уменьшилось число выявлений вариантных изолятов вируса ИБК, увеличилось количество случаев выявления изолятов генотипов С^Х и 793 В, появились единичные случаи выявления изолятов генотипа Арканзас и рекомбинантных форм вируса. Вышесказанное свидетельствует о постоянном изменении вируса ИБК и возможности его быстрого распространения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .Я. Инфекционный бронхит кур: монография. Минск: техпопринт, 2003. — 133 с.
  2. Г. А. Общие проблемы птицеводства // VI-й международный ветеринарный конгресс по птицеводству. М., 2010.
  3. Г. А. Птицеводство России на пороге экспорта // Ценовик. -2011,-№ 5.-С. 6−8.
  4. Вирусные болезни животных / В.II. Сюрин, A.5I. Самуйленко, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина. М.:ВПИТИБП, 1998.-С. 183−198.
  5. Н.К., Чистова 3.51., Сюрин В.II. Об антигенных вариантах вируса инфекционного бронхита птиц // Вирусные болезни с.-х животных: материалы 1-й Межвузов, вет. вирусолог. копф.-М., 1970. -Ч. 2.-С. 121−122.
  6. Е.В., Шубин В. А. Смешанное течение вирусного бронхита и респираторного микоплазмоза у цыплят // Актуальные, вопр. ветеринар, вирусологии.: материалы III Всесоюз. ветеринар, вирусолог, копф. M., 1967. — Ч. 2. — С. 201−202.
  7. Изучение иммунобиологических свойств вариантных полевых штаммов вируса инфекционного бронхита кур, выделенных на территории Российской Федерации / C.B. Фролов, Ю. А. Бочков, Г. В. Батчепко и др. // Сб. науч. тр. ВГНКИ. М, 2005. — Т. 65. — С. 108 119.
  8. Индикация генома вируса инфекционного бронхита кур с помощью полимеразпой цепной реакции / Бочков Ю. А., Дрыгип В. В., Борисов A.B. и др. // Совр. аспекты вет. патологии ж-ных: Докл. конф. -Владимир, 1998. С. 173−183.
  9. Методические указания по выделению и идентификации полевых изолятов вируса инфекционного бронхита птиц / Г. В. Батчепко, Ю. А. Бочков, H.H. Луговская и др.| // ФГУ «ВНИИЗЖ». Владимир, 2002. -21 с.
  10. Методические указания по приготовлению и поддержанию трахеальпой органной культуры куриных эмбрионов и цыплят / O.A. Чупина, C.B. Фролов, В. И. Диев, A.B. Борисов // ФГУ «ВНИИЗЖ». -Владимир, 2006. 4 с.
  11. З.Г. Одновременное течение инфекционного бронхита кур и пуллороза // Актуальные, вопр. ветеринар, вирусологии: тез. докл. 1У Всесоюз. вирусолог, копф. Владимир, 1976. — С. 200−201.
  12. Основы общей ветеринарной вирусологии / Б. В. Горький |и др. 2-е изд.-М.: Колос, 1978.-192 с.
  13. В. II. Ветеринарная вирусология. 2-е изд., перераб. и доп. -М.: Агропромиздат, 1991.-431 с.
  14. В. П. Руководство по ветеринарной вирусологии. М.: Колос, 1966.-686 с.
  15. В.II., Белоусова Р. В., Фомина II.В. Инфекционный бронхит кур // Диагностика вирусных болезней живо тных. М., 1991. — С. 235−258.
  16. А.Б. Инфекционный бронхит кур. Л.: Колос, 1976. — 64 с.
  17. Филогенетический анализ изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных в России / Ю. А. Бочков, A.B. Борисов, Л. О. Щербакова, В. В. Дрыгин // Аграрная Россия. 2002. — № 2. — С. 11−16.
  18. А.Б. Новый взгляд па рекомбинацию РНК // Молекулярная биология. 1999. — N 6. — С. 985−996.
  19. O.A. Протективпые особенности изолята «Щелковский» вируса инфекционного бронхита кур / Ветеринарная патология. 2006. — № 4, 19 — С.123−125
  20. A «new» strain of infectious bronchitis virus infecting domestic fowl in Great Britain / R.E. Gough, C.J. Randall, M. Dagless |et al. // The Veterinary Record. 1992. — Vol. 130. — P. 493−494.
  21. A «novel» infectious bronchitis strain infecting broiler chickens in Italy / T. Capua, R.E. Gough, M. Mancini et al.| // Zentralblatt fur Veterinarmedizin Reihe. В 1994. — Bd, 41. — S. 83−89.
  22. A new typing method for the avian infectious bronchitis virus using polymerase chain reaction and restriction enzyme fragment polymorphism /
  23. Z. Lin, A. Kato, Y. Kudou |ct al.| // Archives. Virology. 1991. — Vol. 1 16. -P. 19−31.
  24. A survey of the prevalence of infectious bronchitis virus type 4/91 in Iran / M.R. Seyii Abad Shapouri, M. Mayahi, K. Assasi, S. Charkhkar // Acta Veterinaria Ilungarica. 2004. — Vol. 52. — P. 163−166.
  25. Ahmed Z., Naeem K., Ilameed A. Detection and seroprcvalcnce of infectious bronchitis virus strains in commercialpoultry in Pakistan // Poultry Science.-2007.-Vol. 86.-P. 1329−1335.
  26. An emerging recombinant cluster of nephropathogenic strains of avian infectious bronchitis virus in Korea / Т.П. Lim, Il.J. Lee, D.II. Lee ct al. j // Infect. Genet. Evol. 2011. — Vol. 11, № 3. — P. 678−685.
  27. Analyses of hypervariable region in the 31 non-coding end of the infectious bronchitis virus genome / Л.К. Williams, L. Wang, L.W. Sneed jet al.| // Virus Research. 1993. — Vol. 28. — P. 19−27.
  28. Antibodies to avian infectious bronchitis virus in Pakistani chickens / М.Л. Muneer, J.A. Newman, S.M. Goyal, M. Ajmal // Poultry Science. 1987. -Vol. 66.-P. 765−767.
  29. Antigenic and molecular characterization of isolates of the Italy 02 infectious bronchitis virus genotype / R. Dolz, J. Pujols, G. Ordonez ct al.| // Avian Pathology. 2006. — Vol. 35. — P. 77−85.
  30. Antigenic and S-l genomic characterization of the Delaware variant serotype of infectious bronchitis virus / J. Gelb, C. L Keeler, W. A Nix et al.| // Avian Diseases. 1997. — Vol. 41. — P. 661 -669.
  31. Antigenic differentiation of avian bronchitis virus variant strains employing monoclonal antibodies / G. Koch, L. Ilartog, A. Kant et al. j // Israel J. of
  32. Veterinary Medicine. 1986. — Vol. 42. — P. 89−97.
  33. Antigenic domains on the peplomer protein of avian infectious bronchitis virus: correlation with biological functions / G. Koch, L. Hartog, A. Kant, D.J. van Roozelaar // J. of General Virology. 1990. — Vol. 71. — P. 19 291 935.
  34. Avian infectious bronchitis virus: isolation of an apparently new variant in Italy / A. Zanella, R. Coaro, G. Fabris jet al.) // Veterinary Record. 2000. -Vol. 146. — P. 191−193.
  35. Avian infectious bronchitis: characterization of new isolates from Italy / A. Zanella, A. Lavazza, R. Marchi |et al. J // Avian Diseases. 2003. — Vol. 47. -P. 180−185.
  36. Bhattacharjee P. S., Jones R.C. Susceptibility of organ cultures from chicken tissues for strains of infectious bronchitis virus isolated from the intestine // Avian Pathology. 1997. — Vol. 26. — P. 553−563.
  37. Bhattacharjee P. S., Naylor C.J., Jones R.C. A simple method for fluorescence staining of tracheal organ cultures for the rapid identification of infectious bronchitis virus // Avian Pathology. 1994. — Vol. 23. — P. 471 480.
  38. Braune M.O., Gentry R.F. Standardization of the fluorescent antibody technique for the detection of avian respiratory viruses // Avian Diseases. -1965.-Vol. 9.-P. 535−545.
  39. Callison S.A., Jackwood M.W., Hilt D.A. Molecular characterization ofinfectious bronchitis virus isolates foreign to the United States and comparison with United States isolates // Avian Diseases. 2001. — Vol. 45. -P. 492−499.
  40. Cavanagh D., Davis P.J., Mockett A.P. Amino acids within hypervariable region SI of avian coronavirus IBV (Massachusets serotype) spike glycoprotein are associated with neutralizing epitops // Virus Research.1988.-Vol. 1 l.-P. 141−150.
  41. Cavanagh D., Ellis M.M., Cook J.K.A. Relationship between sequence variation in the SI spike protein of infectious bronchitis virus and the extent of cross-protection in vivo // Avian Pathology. 1997. — Vol. 26. — P. 63−74.
  42. Cavanagh, D. Coronaviruses in poultry and other birds // Avian Pathology. -2005.-Vol. 34.-P. 439−448.
  43. Cavanagh, D., Naqi S. Infectious bronchitis // Diseases of Poultry. 11th ed. -Ames, Iowa, 2003.-P. 101−119.
  44. Characterisation of an infectious bronchitis virus isolated from vaccinated broiler breeder Hocks / D. Parsons, M.M. Ellis, D. Cavanagh, J.K.A. Cook // Veterinary Record. 1992. — Vol. 31. — P. 408−41 1.
  45. Characterisation of strains of infectious bronchitis virus isolated in Chile / A. Cubillos, J. Ulloa, V. Cubillos |et al. // Avian Pathology. 1991. — Vol. 120.-P. 85−99.
  46. Characterization of a new genotype and serotype of infectious bronchitis virus in Western Africa / M.E. Ducatez, A.M. Martin, A.A. Owoade et al. // J. of General Virology. 2009. — Vol. 90. — P. 2679−2685.
  47. Characterization of infectious bronchitis virus using monoclonal antibodies / P.O. Wainright, P. Villegas, M. Brugh, P.D. Kukert // Avian Diseases.1989.-Vol. 33.-P. 482−490.
  48. Characterization of infectious bronchitis viruses isolated from outbreaks of disease in commercial ilocks in Brazil / J. Di Fabio, L.I. Rossini, S.J. Orbell et al.. // Avian Diseases. 2000. — Vol. 44. — P. 582−589.
  49. Characterization of new variants of avian infectious bronchitis virus in
  50. Tunisia / II. Bourogaa, K. Milcd, L. Gribaa |ct al.| // Avian Diseases.2009.-Vol. 53.-P. 426−433.
  51. Characterization of three infectious bronchitis virus isolates from China associated with proventriculus in vaccinated chickens / L. Yu, Y. Jiang, S. I-Ow et al.. // Avian Diseases. 2001. — Vol. 45. — P. 416−424.
  52. Chen H.W., Huang Y.P., Wang C.H. Identification of intertypic recombinant infectious bronchitis viruses from slaughtered chickens // Poultry Science.2010.-Vol. 89, № 3,-P. 439−446.
  53. Chousalkar KL.K., Chectham B.F., Roberts J.R. Detection of infectious bronchitis virus strain N1/88 from the oviduct and feces of experimentally infected vaccinated and unvaccinated hens // Poultry Science. 2010. — Vol. 89, № 8.-P. 1603−1608.
  54. Chousalkara K.K., Checthamb B.F., Roberts J.R. LNA probe-based realtime RT-PCR for the detection of infectious bronchitis virus from the oviduct of unvaccinated and vaccinated laying hens // J. of Virological Methods. 2009. — Vol. 155. — P. 67−71.
  55. Cloning and sequencing of the gene encoding the spike protein of the coronavirus IBV / M.M. Binns, M.K. Boursnell, D. Cavanagh et al. // J. General Virology 1985. — Vol. 66, № 4. — P. 719−726.
  56. Colwell W.M., Lukert P.D. Effects of avian infectious bronchitis virus (IBV) on tracheal organ cultures // Avian Diseases. 1969. — Vol. 13. — P. 888−894.
  57. Comparison of the pathogenicity of QX-like, M41 and 793/B infectious bronchitis strains from different pathological conditions / Z. Benyeda, T. Mato, T. Suveges et al. // Avian Pathology. 2009. — Vol. 38. — P. 449 456.
  58. Comparison of the spike precursor sequences of coronavirus IBV strains M4I and 6/82 with that of IBV Beaudette / M.M. Binns, M. R Boursnell, P.M. Tomley, D.K. Brown // J. General Virology. 1986. — Vol. 67, № 12. -P. 2825−2831.
  59. Cook J.K.A. The classification of new serotypes of infectious bronchitis virus isolated from poultry flocks in Britain between 1981 and 1983 // Avian Pathology. 1984.-Vol. 13.-P. 733−741.
  60. Cook J.K.A., Darbyshire J.II., Peters R.W. The use of chicken tracheal organ cultures for the isolation and assay of avian infectious bronchitis virus //Archives of Virology. 1976,-Vol. 50.-P. 109−118.
  61. Cook J.K.A., Muggins M.B. Newly isolated serotypes of infectious bronchitis virus: their role in disease // Avian Pathology. 1986. — Vol. 15. -P. 129−138.
  62. Cowen B.S., Hitchner S.B. Serotyping of avian infectious bronchitis viruses by the virus-neutralization test // Avian Disease. 1975. — Vol. 19, № 3. — P. 583−595.
  63. Darbyshire J.H., Cook J.K.A., Peters R.W. Comparative growth kinetic studies on avain infectious bronchitis virus in different systems // J. of Comparative Pathology. 1975. — Vol. 85. — P. 623−630.
  64. Darbyshire J.H., Cook J.K.A., Peters R.W. Growth comparisons of avian infectious bronchitis virus strains in organ cultures of chicken tissues // Archives of Virology. 1978.-Vol. 56. — P. 317−325.
  65. Darbyshire J.II., Cook J.K.A., Peters R.W. Organ culture studies on efficiency of infection with chicken tissues with avian infectious bronchitis virus // British J. of Experimental Pathology. 1976. — Vol. 57. — P. 443 454.
  66. Davelaar F.G., Kouwenhoven B., Burger A.G. Occurrence and significance of infectious bronchitis virus variant strains in egg and broiler production in the Netherlands // Veterinary Quarterly. 1984. — Vol. 6. — P. 114−120.
  67. Detection of IBV antigen by enzyme immunoassay: application for diagnostic purposes / W.G. Hesselink, C. Schrier, E. Jagt, J. Hocks // Proceedings of the I International Symposium on Infectious Bronchitis. -Rauischholzhausen, Germany, 1988. P. 54.
  68. Development and evaluation of a real-time Taqman RT-PCR assay for the detection of infectious bronchitis virus from infected chickens / S.A. Callison, D.A. Hilt, T.O. Boynton jet al. // Archives Virology. 2007. -Vol. 152, № 1,-P. 41−58.
  69. Dhinakar Raj G., Jones R.C. An in vitro comparison of the virulence of seven strains of infectious bronchitis virus using tracheal and oviduct cultures // Avian Pathology. 1996. — Vol. 25, — P. 649−662.
  70. Efficace of infectious bronchitis virus vaccine against heterologous challenge / M.A. Muneer, J.A. Newman, D.A. Halvorson et al. // Recearch in Veterinary Science. 1988, — Vol. 45, № 1,-P. 22−27.
  71. Eid A.A.M. Infectious bronchitis virus infection in Egypt // Proceedings of the International Symposium on Infectious Bronchitis and Pneumovirus Infections in Poultry. Rauischholzhausen, Germany, 1998. — P. 145−156.
  72. El-Houadfi M., Jones R.C. Isolation of avian infectious bronchitis viruses in Morocco including an enterotropic variant // Veterinary Record. 1985. -Vol. 116.-P. 445.
  73. Emergence of a nephropathogenic avian infectious bronchitis virus with a novel genotype in India / J. Bayry, M.S. Goudar, P.K. Nighot |et al.| // J. of Clinical Microbiology.-2005.-Vol. 43.-P. 916−918.
  74. Enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of infectious bronchitis virus (IBV) antigen with monoclonal antibody / II. Nagano, M. Tsuchimoto, T. Ilohdatsu ct al. // Japanese J. of Veterinary Science. -1990.-Vol. 52.-P. 657−659.
  75. Epidemiological classification of infectious bronchitis virus isolated in Korea between 1986 and 1997 / C.S. Song, Y.J. Lee, J.11. Kim et al.| // Avian Pathology. 1998. — Vol. 27. — P. 409−416.
  76. Evaluation of the protection conferred by commercial vaccines against the California 99 isolate of infectious bronchitis virus / I.R. Alvarado, P. Villcgas, J. El-Attrache, T.P. Brown // Avian Diseases. 2003. — Vol. 47. -P.1298−1304.
  77. Evidence of circulation of a Chinese strain of infectious bronchitis virus (QXIBV) in Italy / M.S. Beato, C. De Battisti, C. Terregino et al. // Veterinary Record. 2005. — Vol. 156. — P. 720.
  78. Evolution of infectious bronchitis virus in Taiwan: characterisation of RNA recombination in the nuclcocapsid gene / S.M. Kuo, C. I I. Wang, M. I I. 1 Iou |et al. | // Veterinary Microbiology. 2010. — Vol. 144. — P. 293−302.
  79. Existence of avian infectious bronchitis virus with a European-prevalent 4/91 genotype in Japan / M. Mase, T. Inoue, S. Yamaguchi, T. Imada // J. of Veterinary Medical Science. 2008. — Vol. 70. — P. 1341 -1344.
  80. Gelb J., Wolff J.B., Moran C.A. Variant serotypes of infectious bronchitis virus isolated from commercial layer and broiler chickens // Avian Diseases.- 1991.-Vol. 35.-P. 82−87.
  81. Genetic diversity of avian infectious bronchitis virus isolates in ICorea between 2003 and 2006 / E.IC. Lee, W.J. Jcon, Y.J. Lee |et al.| // Avian Diseases. 2008. — Vol. 52. — P. 332−337.
  82. Genetic grouping of avain infectious bronchitis virus isolated in Brazil based on RT-PCR/RFLP analysis of the SI gene / M.F.S. Montassier, L. Brentano, II.J. Montassier, L.J. Richtzenhain // Pesquisa Veterinaria Brasileira. 2008. -Vol. 28.-P. 190−194.
  83. Genetic grouping of nephropathogenic avian infectious bronchitis virus isolated in Morocco / M. HI-Bouqdaoui, R.A. Mhand, H. Bouayoune, M.M. Lnnaji // International Journal of Poultry Science. 2005. — Vol. 4. — P. 721 727.
  84. Genetic recombination with poliovirus type 1. Studies of crosses between a normal horse serum-resistant mutant and several guanidinc-resistant mutants of the same strain / N. Ledinko et al. // Virology. 1963. -Vol. 20. — P. 107−119.
  85. Gillette K.G. Plaque formation by infectious bronchitis virus in chicken embryo kidney cell cultures // Avian Diseases. 1973. — Vol. 17. — P. 369 378.
  86. Ilidalgo II., Gallardo R., Rosende S. Isolation of infectious bronchitis virus from broiler chickens in Chile // Avian Diseases. 1976. — Vol. 20. — P.601.603.
  87. Hidalgo II., Gallardo R., Toro II. Antigenic and pathogenic properties of three isolates of infectious bronchitis virus obtained from vaccinated chickens//J. of Veterinary Medicine. 1986.-Vol. 33.-P. 26−35.
  88. Hipo’lito O. Isolamento e identificaca o do virus da bronquite infecciosa das galinhas no Brasil // Arquivo Escuela Vcterinaria Universidade de Minas Gerais.- 1957.-Vol. 10.-P. 131−151.
  89. I litchner S.B., White P.G. Growth curve studies of chick embryo-propagated infectious bronchitis virus // Poultry Science. 1955. — Vol. 34. — P. 590 594.
  90. Ilitchner S.B., Winterfield R.W., Applcton G.S. Infectious bronchitis virus types-incidence in the United States. // Avian Diseases. 1966. — Vol. 10. -P. 98−102.
  91. Holmes K.V., Doller E.W., Bchnre J.N. Analysis of the function of coronavirus glycoproteins by differential inhibition of synthesis with tunicamycin//Adv. Exp. Med. Biol. 1981.-Vol. 142.-P. 133−142.
  92. Holmes K.V., Doller E.W., Sturman L.S. Tunicamycin resistant glycosylation of a coronavirus glycoprotein: demonstration of a novel type of viral glycoprotein // Virology. -181, — Vol. 1 15. P. 334−344.
  93. Hopkins S.R. Serological comparisons of strains of infectious bronchitis virus using plaque-purified isolants // Avian Diseases 1974. — Vol. 18. — P. 231−239.
  94. Huang Y.P., Wang C.H. Development of attenuated vaccine from Taiwanese infectious bronchitis virus strains // Vaccine. 2006. — Vol. 24. — P. 785 791.
  95. Identification of a novel nephropathogenic infectious bronchitis virus in Israel / R. Meir, E. Rosenblut, S. Perl |ct al.| // Avian Diseases. 2004. -Vol. 48.-P. 635−641.
  96. Ignjatovic J., Ashton I Detection and differentiation of avian infectious bronchitis viruses using a monoclonal antibodybased EL1SA // Avian
  97. Ignjatovic J., Sapats S. Avian infectious bronchitis virus // Revue Sci. Tech. -2000.-Vol. 19.-P. 493−508.
  98. Incidence, characterisation and prophylaxis of nephropathogenic avian infectious bronchitis viruses / G. Meulemans, M.C. Carlicr, M. Gonze |ct al.| // Veterinary Record. 1987. — Vol. 120. — P. 205−206.
  99. Isolation and identification of glandular stomach type IBV (QX IBV) in chickens / W. Yu Dong, W. Yong Lin, Z. Zi Chun et al.| // Chinese J. of Animal Quarantine. 1998. — Vol. 15. — P. 1−3.
  100. Isolation of «variant» strains of infectious bronchitis virus from vaccinated chickens in Great Britain / R.E. Gough, W.J. Cox, E. Gutierrez et al.| // Veterinary Record. 1996. — Vol. 139. — P. 552.
  101. Isolation of 4/91 type of infectious bronchitis virus as a new variant in Japan and efficacy of vaccination against 4/91 type field isolate / Y. Shimazaki, T. I-Ioriuchi, M. l larada jet al.| // Avian Diseases. 2008. — Vol. 52. — P. 618 622.
  102. Isolation of avian infectious bronchitis coronavirus from domestic peafowl (Pavo cristatus) and Leal (Anas)./ S. Liu, J. Chen, J. Chen |el al) // J. of General Virology. 2005. — Vol. 86. — P. 719−725.
  103. Isolation of new stains of IBV from broiler chickens in Poland / Z. Minta, P. Bugajek, E. Karpinska et al. j // International Symposium on Infectious Bronchitis and Pneumovirus Infections in Poultry. Rauischholzhausen, Germany, 1998.-P. 180−188.
  104. Isolation, characterisation and preliminary cross-protection studies with a new pathogenic avian infectious bronchitis virus (strain PL-84 084) / J.P. Picault, P. Drouin, M. Guittet |et al. // Avian Pathology. 1986. — Vol. 15. -P. 367−383.
  105. Jackwood M.W., I lilt D.A., Brown T.P. Attenuation, safety, and efficacy of an infectious bronchitis virus GA98 serotype vaccine // Avian Diseases. -2003, — Vol.47. P. 627−632.
  106. Johnson R.B., Marquardt W.W. Strains of infectious bronchitis virus on the Delmarva peninsula and in Arkansas // Avian Diseases. 1976. — Vol. 20. -P. 382−386.
  107. Jones R.C. Use of a combined fluorescent antibody-trachea 1 organ culture method for the study of infectious bronchitis virus // Proceedings of the Vth World’s Veterinary Poultry Association Conference. Munich, West Germany, 1973. — P. 66−69.
  108. Khatchikian D., Orlich M., Rott R. Increased viral pathogenicity after insertion of a 28S ribosomal RNA sequence into the haemagglutinin gene of an influenza virus // Nature. 1989.-Vol. 13.-P. 156−157.
  109. Kottier S.A., Cavanagh D., Britton P. Experimental evidence of recombination in coronavirus infectious bronchitis virus // Virology. 1995. -Vol. 10.-P. 569−580.
  110. Ladman B.S., Loupos A.B., Gelb J. Infectious bronchitis virus SI gene sequence comparison is a better predictor of challenge of immunity in chickens than serotyping by virus neutralization // Avian Pathology. 2006. -Vol. 35.-P. 127−133.
  111. Lee C.W., Jackwood M.W. Origin and evolution of Georgia 98 (GA98), a new serotype of avian infectious bronchitis virus // Virus Research. 2001. -Vol. 28, 80 № 1−2. -P. 33−39.
  112. Lee S.K., Sung H.W., Kwon H.M. SI glycoprotein gene analysis of infectious bronchitis viruses isolated in Korea // Archives of Virology. -2004.-Vol. 149.-P. 481−494.
  113. Liao C. L, Lai M.M. RNA recombination in a coronavirus: recombination between viral genomic RNA and transfected RNA fragments // J Virology. -1992. Vol. 66, № 10. — P. 6117−6124.
  114. Location of the amino acid differences in the SI spike glycoprotein subunit of closely related serotypes of infectious bronchitis virus / D. Cavanagh, P.J. Davis, J.K.A. Cook ct al.| // Avian Pathology. 1992. — Vol. 21. — P. 3343.
  115. Lohr J.E. Diagnosis of infectious bronchitis (IB) by examination of tracheal mucus for IB-precipitating antigens // Avian Diseases. 1981. — Vol. 25. -P. 1058−1064.
  116. Lohr J.E. Serologic differences between strains of infectious bronchitis virus from New Zealand, Australia, and the United States // Avian Diseases. -1976.-Vol. 20.-P. 478−482.
  117. Lohr J.E. Studies on avian infectious bronchitis virus in New Zealand. I. Serotypes // New Zealand Veterinary J. 1977. — Vol. 25. — P. 48−51.
  118. Lohr, J.E. Infectious bronchitis in New Zealand, Asia, East Europe // Proceedings of the 1st International Symposium on Infectious Bronchitis. -Rauischholzhausen, Germany, 1988. P. 70−75.
  119. Longitudinal studies of infectious bronchitis virus and avian pneumovirus in broilers using type-specific polymerase chain reactions / D. Cavanagh, K. Mawditt, P. Britton, C.J. Naylor // Avian Pathology. 1999. — Vol. 28. — P. 593−605.
  120. Lucio B., Ilitchner S.B. Differentiation of avian infectious bronchitis virus serotypes by immunofluorescence // Avian Diseases. 1970. — Vol. 14. — P. 9−24.
  121. Lukcrt P.D. Comparative sensitivities of embryonating chicken’s eggs and primary chicken embryo kidney and liver cell cultures to infectious bronchitis virus // Avian Diseases. 1965. — Vol. 9. — P. 308−316.
  122. Lulcert P.D. Differentiation and detection of infectious bronchitis virus subtypes by immunofluorescence // Avian Diseases. 1969. — Vol. 13. — P. 847−852.
  123. Lukcrt, P.D. Immunofluorescence of avian infectious bronchitis virus in primary chicken embryo kidney, liver, lung and fibroblast cell cultures // Archives fur Virusforschung. 1966. — Vol. 19. — P. 265−272.
  124. McFarlane R., Verma R. Sequence analysis of the gene coding for the SI glycoprotein of infectious bronchitis virus (IBV) strains from New Zealand // Virus Genes. 2008. — Vol. 37. — P. 351−357.
  125. McKinlcy E.T., Hilt D.A., Jackwood M.W. Avian Coronavirus infectious bronchitis attenuated live vaccines undergo selection of subpopulations and mutations following vaccination // Vaccine. 2008. — Vol. 26, № 10. — P. 1274−1284.
  126. Mockett A.P.A., Cavanagh D., Brown T.D. Monoclonal antibodies to the SI spike and membrane proteins of avian infectious bronchitis Coronavirusstrain Massachusetts M41 // J. of General Virology. 1984. — Vol. 65. — P. 2281−2286.
  127. Mohanty S.B., DeVolt II.M., Faber J. Ii A fluorescent antibody study of infectious bronchitis virus // Poultry Science. 1964. — Vol. 43. — P. 179 182.
  128. Molecular and serologic characterization, pathogenicity, and protection studies with infectious bronchitis virus field isolates from California / M.W. Jackwood, D.A. Hilt, S.M. Williams jet al. // Avian Diseases. 2007. -Vol. 51.-P. 527−533.
  129. Molecular characterization of avian infectious bronchitis virus strains from outbreaks in Argentina (2001−2008) / A. Rimondi, M.I. Craig, A. Vagnozzi |et al.| //Avian Pathology. 2009. — Vol. 38. — P. 149−153.
  130. Molecular characterization of infectious bronchitis virus strains isolated from the enteric contents of Brazilian laying hens and broilers / L.Y. Villarreal, P.L. Brandao, J.L. Chacon ct al. j // Avian Diseases. 2007. -Vol. 51.-P. 974−978.
  131. Molecular epidemiology and evolution of avian infectious bronchitis virus in Spain over a fourteen-year period / R. Dolz, J. Pujols, G. Ordonez et al. // Virology. 2008. — Vol. 374. — P. 50−59.
  132. Molecular epidemiology of avian infectious bronchitis in Brazil from 2007 to 2008 in breeders, broilers, and layers / L.Y. Villarreal, T.L. Sandri, S.P. Souza | et al. | // Avian Diseases. 2010. — Vol. 54. — P. 894−898.
  133. Molecular epizootiology of avian infectious bronchitis in Russia / Y.A. Bochkov, G.V. Batchenko, L.O. Shcherbakova ct al.| // Avian Pathology. -2006.-Vol. 35.-P. 379−393.
  134. Morlcy A.J., Thomson D.IC. Swollen-head syndrome in broiler chickens // Avian Diseases. 1984. — Vol. 28. — P. 238−243.
  135. Naqi S.A., Karaca K., Bauman B. A monoclonal antibodybased antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay for identification of infectious bronchitis virus serotypes // Avian Pathology. 1993. — Vol. 22. — P. 555 564.
  136. Naturally occurring recombination between distant strains of infectious bronchitis virus / K. Mardani, A.H. Noormohammadi, J. Ignjatovic, G.F. Browning//Archives Virology. 2010. — Vol. 155.-P. 1581−1586.
  137. Orchitis in roosters with reduced fertility associated with avian infectious bronchitis virus and avian metapneumovirus infections / L.Y. Villarreal, P.H. Brandao, J.L. Chacon et al. // Avian Diseases. 2007. — Vol. 51. — P. 900 904.
  138. Pathogenicity of Australian strains of avian infectious bronchitis virus / J. Ignjatovic, D.F. Ashton, R. Reece |et al. // J. of Comparative Pathology. -2002.-Vol. 126.-P. 115−123.
  139. Pensaert M., Lambrechts C. Vaccination of chickens against a Belgian nephropathogenic strain of infectious bronchitis virus B1648 using attenuated homologous and heterologous strains // Avian Pathology. 1994. -Vol. 23.-P. 631−641.
  140. Peters R.W., Darbyshire J.II., Cook J.K.A. The susceptibility of chicken kidney and oviduct organ cultures to a vaccine strain of avian infectious bronchitis virus // Research in Veterinary Science. 1979. — Vol. 26. — P. 38−40.
  141. Phylogenetic analysis of avian infectious bronchitis virus strains isolated in
  142. Japan / M. Masc, IC. Tsukamoto, K. Imai, S. Yamaguchi //Archives of Virology.-2004.-Vol. 149.-P. 2069−2078.
  143. Present status of infectious bronchitis in Egypt / A. Sheble, M.Z. Sabry, F.G. Davelaar et al.| // J. of the Egyptian Veterinary Medical Association. -1986.-Vol. 46.-P. 393−41 1.
  144. Pringle C.R. Evidence of genetic recombination in foot-and-mouth disease virus // Virology. 1965. — Vol. 25. — P. 48−54.
  145. Protection afforded infectious bronchitis virus-vaccinated sentinel chickens raised in a commercial environment / J. Gelb, J.K. Rosenberger, P.A. Erics |et al. 1 //Avian Diseases. 1989.-Vol. 33. — P. 764−769.
  146. Protection of chickens after live and inactivated virus vaccination against challenge with nephropathogenic infectious bronchitis virus PA/Wolgcmuth/98 / B.S. Eadman, C.R. Pope, A.F. Ziegler et al. j // Avian Disease. 2002. — Vol. 46, № 4. — P. 938−944.
  147. Protection of chickens against renal damage caused by a nephropathogenic infectious bronchitis virus / J.K.A. Cook, J. Chesher, W. Baxcndale |ct al. j // Avian Pathology. 2001. — Vol. 30. — P. 423−426.
  148. Purchase II.G., Cunningham C. I I., Burmester B.R. Genetic differences among chicken embryos in response to inoculation with an isolate of infectious bronchitis virus // Avian Diseases. 1966. — Vol. 10. — P. 162 172.
  149. Rapid heat-treatment attenuation of infectious bronchitis virus / M.W.
  150. Jackwood, D.A. I lilt, U.S. Sellers et al. // Avian Pathology. 2010. — Vol. 39.-P. 227−233.
  151. Recombination in Avian Gamma-Coronavirus Infectious Bronchitis Virus Sharmi / W. Thor, D. A. ililt, J. C. Kissinger (et al. // Viruses. 201 1. -Vol.3, № 9.-P. 1777−1799.
  152. Roussan D.A., Totanji W.S., Khawaldeh G.Y. Molecular subtype of infectious bronchitis virus in broiler flocks in Jordan // Poultry Science. -2008.-Vol. 87.-P. 661−664.
  153. SI and N gene analysis of avian infectious bronchitis viruses in Taiwan / Y.P. Huang, I I.C. Lee, M.C. Cheng, C. I I. Wang // Avian Diseases. 2004. -Vol. 48.-P. 581−589.
  154. SI gene characteristics and efficacy of vaccination against infectious bronchitis virus field isolates from the United States and Israel (1996 to 2000) / J. Gelb, Y. Weisman, B.S. Ladman, R. Meir // Avian Pathology.2005.-Vol. 34.-P. 194−203.
  155. SI gene sequence analysis of a ncphropathogenic strain of avian infectious bronchitis virus in Egypt / A.S. Abdel-Moncim, M.F. Ll-Kady, B.S. Ladman, J. Gelb // Virology J. 2006. — Vol. 3. — P. 78.
  156. Schalk A.F., Hawn M.C. An apparently new respiratory disease of baby chicks//J. Am. Vet. Med. Assoc. 1931.-Vol. 78.-P. 413−422.
  157. Sequence evidence for RNA recombination in field isolates of avian coronavirus infectious bronchitis virus / J.G. Kusters, E.J. Jager, H.G.M. Nicsters, B.A.M. van der Zeijst // Vaccine. 1990. — Vol. 8. — P. 605−608.
  158. Serotypes of avian infectious bronchitis virus isolates from field cases in Japan / M. Doi, T. Yamakami, H. Koimaru el al.. // Avian Diseases. 1982. — Vol. 26.-P. 946−956.
  159. Stern D.F., Kennedy S.l. Coronavirus multiplication strategy. 1. Identification and characterization of virus specified RNA // J. Virology. -1980,-Vol. 34. P. 665−674.
  160. Studies on avian bronchitis virus (IBV). Propagation of IBV in several cultured cells / K. Otsuki, K. Noro, II. Yamamoto, M. Tsubokura // Archives of Virology. 1979. -Vol. 60. — P. 115−122.
  161. The isolation and characterisation of six avian infectious bronchitis viruses isolated in Morocco / M. El-Houadfi, R.C. Jones, J.K.A. Cook, A.G. Ambali //Avian Pathology. 1986.-Vol. 15.-P. 93−105.
  162. Wang C.H., Huang Y.C. Relationship between serotypes and genotypes based on the hypervariable region of the SI gene of infectious bronchitis virus // Archives of Virology. 2000. — Vol. 145. — P. 291−300.
  163. Wang C. IL, Tsai C.T. Genetic grouping for the isolates of avian infectious bronchitis virus in Taiwan // Archives of Virology. 1996. — Vol. 141. — P. 1677−1688.
  164. Wang L., Junker D., Hock L. Evolutionary implications of genetic variations in the SI gene of infectious bronchitis virus // Virus Research. 1994. -Vol.34. -P.327−338.
  165. Worthington K.J., Currie R.J., Jones R.C. A reverse transcriptase-polymerase chain reaction survey of infectious bronchitis virus genotypes in Western Europe from 2002 to 2006 // Avian Pathology. 2008. — Vol. 37. -P. 247−257.
  166. Yagyu K., Ohla S. Dclcction of infectious bronchitis virus antigen from experimentally infected chickens by indirect immunofluorescent assay with monoclonal antibody // Avian Diseases. 1990. — Vol. 34. — P. 246−252.
  167. Yagyu K., Ohta S. Enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of infectious bronchitis virus antigens // Japanese J. of Veterinary Science. -1987.-Vol. 49.-P. 757−763.
  168. Zulperi Z.M., Omar A.R., Arshad S.S. Sequence and phylogenctic analysis of SI, S2, M, and N genes of infectious bronchitis virus isolates from Malaysia // Virus Genes. 2009. — Vol. 38. — P. 383−391.
  169. Zwaagstra K.A., Van der Zciist B.A., Kusters J.G. Rapid detection and identification of avian infectious bronchitis virus // J. Clin. Microbiology. -1992.-Vol. 30, № 1.-P. 79−84.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!