Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Молекулярные биомаркеры антиоксидантной системы и биотрансформации загрязняющих веществ у рыб и моллюсков из импактных районов залива Петра Великого: Японское море

Диссертация: Молекулярные биомаркеры антиоксидантной системы и биотрансформации загрязняющих веществ у рыб и моллюсков из импактных районов залива Петра Великого: Японское море
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Глутатион-8-трансфераза как специфический маркер II фазы биотрансформации органических поллютантов весьма показательна в отношении степени влияния неблагоприятных факторов и глубины адаптивных перестроек метаболизма. У камбалы из Амурского залива активность фермента была достоверно повышена в июне по сравнению с рыбами из Уссурийского залива, а в летний период коррелировала с объемом стока реки… Читать ещё >

Молекулярные биомаркеры антиоксидантной системы и биотрансформации загрязняющих веществ у рыб и моллюсков из импактных районов залива Петра Великого: Японское море (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Современное экологическое состояние залива Петра Великого
    • 1. 2. Биотрансформация и детоксикация загрязняющих веществ у морских организмов
      • 1. 2. 1. Монооксигеназная система морских рыб и двустворчатых моллюсков
      • 1. 2. 2. Вторая фаза биотрансформации токсикантов
      • 1. 2. 3. Антиоксидантная система морских организмов
    • 1. 3. Сезонные изменения молекулярных биомаркеров у гидробионтов
    • 1. 4. Использование молекулярных биомаркеров в мониторинге функционального состояния водных организмов
  • ГЛАВА 2. РАЙОН РАБОТ. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Район работ
    • 2. 2. Объекты исследования
    • 2. 3. Методы исследования
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ БИОМАРКЕРЫ У ПОЛОСАТОЙ КАМБАЛЫ
      • 3. 1. 1. Сезонная динамика биохимических показателей в печени полосатой камбалы
      • 3. 1. 2. Возрастная динамика биохимических показателей в печени полосатой камбалы
      • 3. 1. 3. Пространственная вариабельность молекулярных биомаркеров у полосатой камбалы из Амурского залива
      • 3. 1. 4. Активность антиоксидантной системы и биотрансформации поллютантов у полосатой камбалы из Амурского и Уссурийского заливов
    • 3. 2. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ БИОМАРКЕРЫ МИДИИ ГРЕЯ
      • 3. 2. 1. Биохимические показатели состояния мидии Грея из разных районов Амурского залива
      • 3. 2. 2. Биохимические показатели состояния мидии Грея из разных районов Уссурийского залива
    • 3. 3. МЕЖГОДОВАЯ ДИНАМИКА МОЛЕКУЛЯРНЫХ БИОМАРКЕРОВ У
  • ПОЛОСАТОЙ КАМБАЛЫ И МИДИИ ГРЕЯ

В настоящее время оценка качества морской среды в условиях антропогенного загрязнения, как правило, проводится химико-аналитическими методами. Однако этот подход, в связи с расширением списка поллютантов и увеличением стоимости аналитической аппаратуры, является достаточно трудоемким и дорогостоящим. Кроме того, результаты химических анализов говорят о качестве морской воды непосредственно в момент её отбора и могут значительно изменяться в связи с переносом водных масс. Биологические методы оценки качества водной среды (биотестирование) менее затратны, чем химико-аналитические, однако они дают информацию, главным образом, о последствиях загрязнения и, как правило, не указывают на причину.

Мониторинг состояния биоты в условиях загрязнения состоит из нескольких уровней, которые определяются структурой организации биологических систем (Израэль, Цыбань, 1981). На субклеточном уровне проводится изучение состояния внутриклеточных и генетических структур. На тканевом, органном и организменном уровнях — физиолого-биохимических и морфологических характеристик гидробионтов. На популяционном и биоценотическом уровнях базируется экологический мониторинг, контролирующий изменения состояния соответствующих сообществ гидробионтов.

Важным аспектом проблемы является влияние загрязнения на организм на субклеточном уровне, поскольку молекулярные эффекты являются основой неблагоприятных последствий для организмов в будущем (Walker, 1995). Химический стресс в биологических системах в настоящее время определяют с помощью молекулярных биомаркеров — «количественных показателей, измеряемых в полостных жидкостях, клетках или тканях, которые на биохимическом или клеточном уроне указывают на присутствие токсиканта и/или величину ответной реакции организма» (McCarty, Shugart, 1990). В основе изучения биомаркеров лежит использование известных биохимических и физиологических реакций, которые предшествуют видимым организменным и популяционным изменениям, т. е. являются индикаторами первых стадий токсичности и патологии (Anderson et al., 2003). Такие реакции поддаются точному измерению и обеспечивают получение достоверной информации о воздействии поллютантов на организм. Изменение биомаркеров не всегда предполагает ухудшение состояния особей, как считалось ранее (Livingstone et al., 1988). В современных исследованиях биомаркеры являются в первую очередь инструментом прогнозирования состояния биоты под влиянием тех или иных факторов среды (Лукьянова, 2001).

Морские организмы, обитающие в импактных акваториях, реагируют на большое разнообразие различных факторов, определяющих качество воды, суммируют эффекты одновременного действия смеси различных загрязняющих веществ (Христофорова, 1989). Поэтому изучение биохимических маркеров должно включать характеристику фундаментальных механизмов регуляции ответных реакций на молекулярном уровне (Wu et al., 2005). Для этого необходимо изучать как биохимический статус организмов, обитающих в условиях повышенной антропогенной нагрузки, так и динамику соотношения процессов перекисного окисления липидов и антиокислительной активности в разные сезоны у животных различных экологических групп (Garcia et al., 2000). При этом для каждой конкретной акватории принципиально важно использовать в качестве биоиндикаторов аборигенных представителей фауны, учитывая необходимость обеспечения «экологического соответствия» состояния экосистемы состоянию ее биоты, которая является ее частью (Холодкевич, 2007).

Рыбы и моллюски признаны удобными и репрезентативными объектами для биомониторинга с использованием молекулярных биомаркеров (Goldberg, 1986; Bright et al., 2002; Немова, Высоцкая, 2004; Бельчева, Челомин, 2006). Кроме того, многие виды являются объектами промысла и используются в пищу человеком, и изучение влияния загрязнения на их метаболизм имеет практическое значение.

Целью работы являлась оценка молекулярных биомаркеров антиоксидантной системы и биотрансформации загрязняющих веществ у полосатой камбалы Liopsetta pinnifasciata и мидии Грея Crenomytilus. grayanus из прибрежных акваторий залива Петра Великого с разным уровнем антропогенного воздействия.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить активность антиоксидантных ферментов, величину показателей биотрансформации и уровень перекисного окисления липидов в печени полосатой камбалы в годовом репродуктивном цикле. Исследовать половые и возрастные изменения этих показателей.

2. Провести сравнительный анализ указанных биохимических маркеров у полосатой камбалы из разных акваторий залива Петра Великого Японского моря.

3. Изучить активность антиоксидантных ферментов, величину показателей биотрансформации и уровень перекисного окисления липидов в органах мидии Грея из районов залива Петра Великого с разным уровнем антропогенной нагрузки.

4. Оценить межгодовую динамику молекулярных биомаркеров у рыб и моллюсков. Установить наиболее информативный показатель для оценки состояния гидробионтов при антропогенном загрязнении водоемов.

Научная новизна:

Впервые исследованы биохимические показатели биотрансформации и окислительного стресса у полосатой камбалы в заливе Петра Великого. Показана пригодность этого вида в качестве регионального индикатора для биохимического мониторинга прибрежных акваторий. У мидии Грея, традиционного биоиндикатора загрязнения прибрежных вод, выявлены адаптивные изменения биохимических показателей в отдельных районах в разные сезоны. Установлена межгодовая динамика исследованных биомаркеров у рыб и моллюсков.

Практическая значимость.

Молекулярные биомаркеры являются наиболее ранними индикаторами токсичности и экологического неблагополучия, поэтому результаты могут быть использованы для научного обоснования ПДК загрязняющих веществ для рыбохозяйственных акваторий, для оценки и прогноза состояния популяций промысловых видов, а также при комплексной экотоксикологической характеристике прибрежных акваторий.

Защищаемые положения.

1. Исследованные молекулярные биомаркеры антиоксидантной системы и биотрансформации как индикаторы биологического эффекта загрязняющих веществ дают адекватную информацию о состоянии индикаторных видов рыб и моллюсков в импактных районах залива Петра Великого.

2. Глутатион-Б-трансфераза как специфический биомаркер 2-й фазы биотрансформации проявляет высокую чувствительность и незначительную индивидуальную вариабельность у региональных индикаторных видов рыб и двустворчатых моллюсков — L. pinnifasciata и С. grayanus, что позволяет использовать активность этого фермента в мониторинге состояния гидробионтов в морских прибрежных экосистемах.

Апробация работы. Результаты и основные положения работы были представлены и обсуждены на XIV ежегодной рабочей встрече North Pacific Marine Science Organization (PICES) (Владивосток, 2005) — Международной конференции «Современные проблемы водной токсикологии» (Борок, 2005) — Международных научных чтениях «Приморские зори» (Владивосток, 2005; 2007) — Чтениях, посвященных 200-летию МОИП «Биотехнология, экология, охрана окружающей среды» (Москва, 2005) — SETAC Asia/Pacific (Пекин, 2006) — Международной научно-практической конференции «Экологические проблемы использования прибрежных морских акваторий» (Владивосток,.

2006) — Международной конференции молодых ученых PICES/ICES «New Frontiers in Marine Science» (Балтимор, 2007) — Научной конференции с участием стран СНГ «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2004; 2007).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 16 работ.

Структура и объем работы: Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов и их обсуждения, заключения, выводов. Список цитируемой литературы включает 225 источников, в том числе 138 иностранных. Общий объем работы 128 страниц. Диссертация иллюстрирована 9 таблицами и 28 рисункам.

выводы.

1. Определен диапазон вариабельности молекулярных бимаркеров антиоксидантной системы и биотрансформации поллютантов в печени полосатой камбалы L. pinnifasciata. Индивидуальные различия величины исследованных биохимических показателей у полосатой камбалы невелики и составляют для выборки из 12 рыб не более 10%. Наибольшая изменчивость отмечена для концентрации восстановленного глутатиона.

2. Достоверных различий биохимических параметров у самок и самцов полосатой камбалы, а также у особей разных размерно-весовых групп не выявлено, за исключением активности супероксиддисмутазы. Активность этого фермента повышена у самцов по сравнению с самками, и у молодых рыб по сравнению со взрослыми. Эта закономерность более выражена в летний период.

3. Значения биохимических показателей у полосатой камбалы из Амурского залива в начале лета достоверно выше, чем у рыб из Уссурийского залива, что свидетельствует о более активных процессах биотрансформации поллютантов и нейтрализации свободных радикалов. В конце лета данные параметры у рыб из двух заливов не различаются.

4. Выявлены различия биохимических показателей у мидий из отдельных районов залива Петра Великого, отличающихся по уровню антропогенного загрязнения. В импактных районах у моллюсков наблюдается увеличение активности глутатион-8-трансферазы и снижение антиоксидантного потенциала.

5. Межгодовая динамика активности глутатион-8-трансферазы и содержания восстановленного глутатиона у мидий из условно фонового района о-ва Рейнеке указывает на возрастание интенсивности процессов биотрансформации вследствие увеличения загрязненности среды обитания моллюсков.

6. Совокупность исследованных молекулярных биомаркеров позволяет получить объективную информацию о состоянии индикаторных видов рыб и моллюсков организмов в импактных районах. Активность глутатион-S-трансферазы может быть использована как наиболее информативный показатель для оценки влияния комплексного загрязнения на организмы в морских прибрежных экосистемах.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Успешность адаптации организмов к тому или иному воздействию можно оценить по способности особей существовать в измененной среде с сохранением уровня жизнедеятельности и поддержанием гомеостаза основных функций организма, в том числе репродуктивных (Adams et al., 2001).

Молекулярные биомаркеры окислительного стресса и процессов биотрансформации отражают изменение состояния метаболизма животных под влиянием различных факторов. Несмотря на то, что эти реакции видоспецифичны и зависят от характера воздействия, они неоднократно доказали свою эффективность для биоиндикации и биомониторинга функционального состояния организмов при антропогенном загрязнении морских и пресных вод (Addison, 1996; Goks0yr et al., 1996; Wu et al., 2005).

Использованный нами набор биомаркеров позволяет оценить активность защитных метаболических реакций у региональных индикаторных видов гидробионтов в прибрежных акваториях. Выявлены различия показателей биотрансформации и окислительного стресса у рыб и моллюсков из акваторий с различной степенью загрязнения. Активность каталазы в большинстве случаев достоверно не различалась у животных с разных станций, отобранных в один сезон, но в мае у мидий из б. Лазурная отмечено ее снижение. Содержание восстановленного глутатиона также было снижено у мидий из б. Лазурная, а его повышение у моллюсков из б. Перевозная совпадало со снижением концентрации кислорода в воде. У рыб этот показатель характеризовался выраженной сезонной динамикой с резкими колебаниями в летние месяцы. Уровень МДА у мидий из разных акваторий достоверно не различался, тогда как у камбалы из Амурского залива весной был повышен по сравнению с рыбами из Уссурийского залива. Сезонная динамика этого биомаркера у рыб проявлялась в повышении его содержания в мае и снижении в сентябре. У мидий этот показатель снижался к осени во всех районах исследования. Активность СОД при сходной сезонной динамике была выше у самцов полосатой камбалы по сравнению с самками и у молодых рыб по сравнению с взрослыми. Динамическое равновесие этих показателей свидетельствует о высоких адаптивных возможностях гидробионтов, подверженных круглогодичному влиянию комплексного загрязнения среды.

Глутатион-8-трансфераза как специфический маркер II фазы биотрансформации органических поллютантов весьма показательна в отношении степени влияния неблагоприятных факторов и глубины адаптивных перестроек метаболизма. У камбалы из Амурского залива активность фермента была достоверно повышена в июне по сравнению с рыбами из Уссурийского залива, а в летний период коррелировала с объемом стока реки Раздольная, выносящей в залив значительную долю сточных вод. У мидий активность TST соответствовала концентрации нефтяных углеводородов в воде и донных отложениях Амурского залива, и с содержанием ХОП в органах моллюсков. При этом активность была минимальной у мидий из акватории о-ва Рейнеке. К концу лета активность этого фермента как у рыб, так и у моллюсков из разных акваторий достоверно не различалась.

Отражением продолжающегося загрязнения прибрежных районов зал. Петра Великого является достоверное увеличение активности глутатион-S-трансферазы у мидий, собранных вблизи о-ва Рейнеке в период с 2004 по 2007 г. Хотя эта акватория долгое время считалась фоновой, данное обстоятельство свидетельствует о «напряжении» метаболических процессов у индикаторных видов, реагирующих на изменение состояния среды обитания.

Достоверные различия в величине параметров у животных из внутренних бухт залива Петра Великого выявлены только весной и в первой половине лета. Близкие значения показателей у моллюсков с разных станций, а также у камбал из Амурского и Уссурийского заливов в августе-сентябре свидетельствуют о сходном состоянии метаболизма гидробионтов в этот период. При этом уровень перекисного окисления липидов снижается, что свидетельствует об эффективности защитных механизмов гидробионтов при воздействии хронического загрязнения.

Таким образом, за четыре года исследований выявлены адаптивные изменения активности системы биотрансформации и антиоксидантной защиты гидробионтов в разные сезоны, связанные с изменениями физиологического состояния и качества среды. При этом повышение активности TST у мидий в течение ряда лет указывает на увеличение загрязненности среды их обитания.

Определение молекулярных биомаркеров является важной частью экотоксикологического мониторинга прибрежных акваторий, включающего химический анализ содержания загрязняющих веществ и физиолого-биохимические исследования состояния биоты. Их использование позволит дать комплексную оценку и прогнозировать качество водных экосистем.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .И., Оксенгендлер Г. И. Человек и противоокислительные вещества. Л.: Наука, 1985. 230 с.
  2. А.В., Кусакин О. Г. Таксономический каталог биоты залива Петра Великого Японского моря. Владивосток: Дальнаука, 1998. 167 с.
  3. И.С., Яковлев Ю. М., Евсеев Г. А. и др. Атлас промысловых беспозвоночных и водорослей Дальнего Востока России. Владивосток: Аванте, 2001. 192 с.
  4. А.И. Микросомальное окисление. М.: Наука, 1985. 327 с.
  5. Атлас двустворчатых моллюсков дальневосточных морей России. /Сост. Явнов С. В. // Атласы промысловых и перспективных для промысла гидробионтов дальневосточных морей России. Владивосток: Дюма, 2000. 168 с.
  6. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Усп. совр. биол. 1991. Т. 111, № 6. С. 923−931.
  7. М.Г. Литий и рубидий в компонентах экосистемы залива Петра Великого. Автореферат. канд. биол. наук, Владивосток: изд-во ДВГУ. 2007. 20 с.
  8. М.Д., Лукьянова О. Н. Хлорированные углеводороды в гидробионтах залива Посьета Японского моря // Изв. ТИНРО. 2006. Т. 145. С. 271−278.
  9. М.Д., Лукьянова О. Н., Черняев А. П. и др. Стойкие хлорорганические пестициды в водных экосистемах Дальнего Востока
  10. России // Использование и охрана природных ресурсов в России. 2007. Т. 2 С. 31−35.
  11. JI.C., Дегтярева В. А. Санитарно-микробиологическое состояние морской воды пляжных зон города Владивостока // Мат. междунар. конф. «Экологические проблемы использования прибрежных морских акваторий». Владивосток, 2006, С. 28−29.
  12. М.А. Загрязнение залива Петра Великого Японского моря и его биологические последствия // Биол. моря. 2000. Т. 26. № 3. С. 149−159.
  13. М.А., Жадан П. М., Латыпова Е. В. Многолетние изменения в состоянии гонад морского ежа Strongylocentrotus intermedins из Амурского залива Японского моря // Экология. 2001. Т. 32. № 5. С. 358−364.
  14. М.А., Сясина И. Г., Жадан П. М. ДДТ и гексахлорциклогексан в донных осадках и печени камбалы Pleuronectes pinnifasciatus из Амурского залива (залив Петра Великого, Японское море) // Экология. 2005. № 1. С. 6468.
  15. А.Н., Измятинский Д. В., Соломатов С. Ф. Основные результаты исследований рыб морского прибрежного комплекса Приморья // Изв. ТИНРО. 2004. Т. 138. С.168−190.
  16. А.Н., Швыдкий Г. В. Сезонное распределение полосатой камбалы в заливе Петра Великого // Биол. моря. 1993. № 4. с.52−57.
  17. А.Н., Швыдкий Г. В. Распределение камбал (Pleuronectidae) в заливе Петра Великого в период гидрологического лета (июль-сентябрь) // Изв. ТИНРО. 2000. Т. 127. С. 122−136.
  18. Ю.А., Азизова О. А., Деев А. И. и др. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники. Сер. «Биофизика». 1991. Т. 29. 249 с.
  19. Д.И., Регулев В. Н., Регулев Т. Н. и др. Роль старейшего хозяйства марикультуры в восстановлении запасов приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis (Jay, 1856) в заливе Посьета Японского моря // Биол. моря. 2005. — Т. 31, № 3. — С. 207−212.
  20. Гайко J1.A. Особенности гидрометеорологического режима прибрежной зоны залива Петра Великого (Японское море). Владивосток: Дальнаука, 2005. 151 с.
  21. Ю.А. Изменение компонентов среды и биоты залива Восток Японского моря в условиях антропогенного воздействия. Автореферат. канд. биол. наук, Владивосток: изд-во ДВГУ. 2003. 18 с.
  22. А.В., Козловская В. И. Гепатосоматический индекс и биохимический состав печени леща Abramis brama Шекснинсого Плеса Рыбинского водохранилища при различных уровнях накопления органических токсикантов // Вопр. ихтиол. 2001. Т. 41, № 2. С. 249−252.
  23. В.Е., Щетков С. Ю. Распределение рыб в прибрежных биотопах залива Петра Великого Японского моря в летний период // Биол. моря. 1992. № 3−4. С. 26−32.
  24. В.А., Сергеев А. Ф., Сойфер В. Н. Локальный источник радиоактивного загрязнения морской среды в прибрежной зоне залива Петра Великого // Состояние морских экосистем, находящихся под влиянием речного стока. Владивосток: Дальнаука, 2005. С. 246−258.
  25. Л.Ф. Ферменты биотрансформации ксенобиотиков в химическом канцерогенезе. Новосибирск, 2000. 84 с.
  26. С.М. Гаметогенез у некоторых морских двустворчатых моллюсков // Моллюски. Пути, методы и итоги их изучения. Л.: Наука, 1971. С. 51−52.
  27. Н.В. Реакция антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков на воздействие повреждающих факторов среды. Автореферат. канд. биол. наук, Владивосток: «Дальприбор». 2006. 21 с.
  28. Долговременная программа охраны природы и рационального использования природных ресурсов Приморского края до 2005 г. Экологическая программа. Часть 2. Владивосток: Дальнаука. 1992. 276 с.
  29. В.Б. Состояние интерреналовой железы рыб как показатель качества морской среды // Мат. Междунар. Конф. «Экологические проблемы использования прибрежных морских акваторий». Владивосток, 2006. С. 5658.
  30. В.Б., Черкасова И. В. Аномалии оогенеза у полосатой камбалы Pleuronectes pinnifasciatus из Амурского залива Японского моря // Изв. РАН. Сер.биол. 2007, № 5. С. 591−597.
  31. В.Р. Продолжительность жизни двустворчатых моллюсков Японского и Охотского морей // Биол. моря. 1980. № 6. С. 3−12.
  32. Ю.И., Юрасов Г. И. Водные массы северо-западной части Японского моря //Метеорол. и гидрол. 1995. № 8. С. 50−57.
  33. Ю.А., Цыбань А. В. Проблемы мониторинга экологических последствий загрязнения океана. Л.: Гидрометиздат, 1981. 58 с.
  34. Использование планктона для оценки состояния прибрежных экосистем Амурского залива Японского моря / Отчет НИР ТИНРО-Центра № 25 267. Архив ТИНРО. Владивосток, 2004. 54 с.
  35. Информационный бюллетень о состоянии поверхностных водных объектов, водохозяйственных систем и сооружений на территории Приморского края за 2006 год / Владивосток, 2007.
  36. Касьянов B. JL, Медведева JI.A., Яковлев С. Н., Яковлев Ю. М. Размножение иглокожих и двустворчатых моллюсков. М.: Наука, 1980. 182 с.
  37. Кесельман M. JL, Милютина Н. П., Кузнецова Л. Я., Ракитский В. Н. Свободнорадикальные процессы в механизме действия и диагностике пестицидной интоксикации ихтиофауны. Ростов-на-Дону: Гефест, 1997. 120 с.
  38. В.Л. Оценка последствий сброса грунта по биологическим показателям в районах дампинга в Японском море // Итоги исследований в связи со сбросом отходов в море. М.-Л.: Гидрометиздат, 1988. С. 137−141.
  39. Л.Т., Симоконь М. В. Тенденции изменения химико-экологической ситуации в прибрежных акваториях Приморья. Токсичные элементы в донных отложениях и гидробионтах // Изв. ТИНРО. 2004. Т. 137. С. 310−320.
  40. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Успехи соврем, биологии. 1989. Т. 107. С. 179−194.
  41. М.А., Иванова Л. И., Майорова И. Г., Токарев B.C. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. № 1. С. 16−19.
  42. В.Н. Исследования макрофитобентоса у побережья Приморья // Изв. ТИНРО. 2005. Т. 141. С. 355−364.
  43. Лоция северо-западного берега Японского моря. Л.: ГУНИО МО, 1984.316 с.
  44. О.Н. Молекулярные биомаркеры. Владивосток: изд-во ДВГАЭУ. 2001. 196 с.
  45. О.Н., Боярова М. Д., Черняев А. П., Барабанщиков Е. И., Алешко С. А. Стойкие хлорорганические пестициды в водных экосистемах Дальнего Востока России // Использование и охрана природных ресурсов в России. 2007. Т. 2. С. 31−35.
  46. О.Н., Черкашнн С. А., Надточнй В. А. Биоиндикация состояния морских экосистем на различных уровнях биологической организации // Науков1 записки. Сер1я бюлопя. 2005. Т. 27. С. 139−141.
  47. В.А., Тихомирова Е. А., Круц А. А. Океанографический режим вод залива Петра Великого (Японское море) // Изв. ТИНРО. 2005. Т. 140. С. 130−169.
  48. В.В., Вавилин В. А., Зенков Н. К., Меныцикова Е. Б. Активированные кислородные метаболиты в монооксигеназных реакциях // Бюллетень СО РАМН. 2005. № 4. С. 7−12.
  49. В.В., Цырлов И. Б. Индукция ферментов метаболизма ксенобиотиков. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1981. 240 с.
  50. Е.Б., Ланкин В. З., Зенков Н. К. и др. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. М.: Слово, 2006. 556 с.
  51. О.Г., Миловидова Н. Ю., Щекатурина Т. Л. и др. Биологические аспекты нефтяного загрязнения морей. Киев: Наук. Думка, 1988. 284 с.
  52. П.А. Треска и камбалы дальневосточных морей СССР: Изв.ТИНРО. 1953. Т.40. 288 с.
  53. В.А., Будникова Л. Л., Безруков Р. Г. Макрозообентос залива Петра Великого (Японское море): состав, распределение, ресурсы // Изв. ТИНРО. 2005. Т. 140. С. 170−195.
  54. Н.Н., Высоцкая Р. У. Биохимическая индикация состояния рыб. М.: Наука, 2004. 215 с.
  55. Л.В. Воздействие сточных вод контролируемых выпусков на экологическое состояние Амурского залива: Автореферат. канд. биол. наук. Владивосток: изд-во ТИНРО. 2005. 19 с.
  56. Л.С., Руднева И. И., Шевченко Н. Ф. Использование биомаркеров для оценки состояния черноморской спикары Spicara flexuosa (Centracanthidae) //Вопр. ихтиол. 2000а. Т. 40. № 6. С. 810−815.
  57. Jl.C., Руднева И. И., Шевченко Н. Ф. Ответные реакции морского ерша Scorpena porcus (Scorpaenidae) на антропогенное загрязнение // Вопр. ихтиол. 20 006. Т. 40. № 1 С. 75−78.
  58. А.А. Эколого-экономическая оценка воздействия береговых источников загрязнения на природную среду и биоресурсы залива Петра Великого. Владивосток: изд-во ТИНРО. 2001, 193 с.
  59. А.А., Нигматулина Л. В. Оценка антропогенного сброса в Уссурийский залив (зал. Петра Великого, Японское море) // Изв. ТИНРО. 2003. Т. 133. С. 256−263.
  60. Е.В., Мощенко А. В., Лишавская Т. С. Влияние загрязнения донных отложений на видовой состав и обилие двустворчатых моллюсков в заливе Петра Великого Японского моря // Биол. моря. 2004. Т. 30. № 1. С. 3945.
  61. Особенности биологии и состояние запасов некоторых донных беспозвоночных прибрежных вод Приморья / Отчет НИР № 25 598. Архив ТИНРО. Владивосток, 2005. 236 с.
  62. Оценка уровней содержания металлов и металлоидов в отдельных видах рыб и моллюсков из залива Петра Великого в связи с условиями обитания / Отчет НИР ТИНРО-Центра № 25 801. Архив ТИНРО. Владивосток, 2004. 54 с.
  63. С.А. Нефть и экология континентального шельфа. М.: Изд-во ВНИРО, 2001. 247 с.
  64. Перцева-Остроумова Т. А. Размножение и развитие дальневосточных камбал // Тр. ИО АН СССР. 1961. Т. 62. 486 с.
  65. Н.Б., Лосинская Л. Ф. Биологическая роль супероксиддисмутазы // Укр. биохим. журн. 1989. Т. 61, № 2. С. 14−27.
  66. У. Роль свободнорадикальных реакций в биологических системах //В кн. Свободные радикалы в биологии. М.: Мир, 1979. С. 3−13.
  67. .В., Жариков В. В., Дубейковский JI.B. Основы подводного ландшафтоведения (Управление морскими экосистемами). Владивосток: Дальнаука, 2000. 360 с.
  68. И.И. Эколого-физиологические особенности антиоксидантной системы рыб и процессов перекисного окисления липидов // Успехи соврем, биол. 2003. Т. 123, № 4. С.391−400.
  69. Н.И., Аникиев В. В., Дударев О. В. Изменчивость стратификации вод в северной части Амурского залива Японского моря в летний период // Состояние морских экосистем, находящихся под влиянием речного стока. Владивосток: Дальнаука, 2005. С. 41−52.
  70. О.А., Старобогатов Я. И. Систематическое положение мидии Грея // В кн. Биология мидии Грея. М.: Наука, 1983. С. 4−5.
  71. В.В. Тиоловые антиоксиданты в молекулярных механизмах неспецифмческой реакции организма на экстремальное воздействие (Обзор) // Вопр. мед. химии. 1988. № 6. С. 2−11.
  72. И.В., Крысин А. П., Хлебникова Т. Б. и др. Роль фенольных антиоксидантов в повышении устойчивости органических систем к свободно-радикальному окислению: Аналит. обзор/ СО РАН, ГПНТБ. Новосибирск, 1997. Сер. Экология. № 46. 68 с.
  73. А.В., Макаров Ю. Н. Культивируемые беспозвоночные. Пищевые беспозвоночные. Киев: Наук, думка, 1990. 264 с.
  74. С.В. Биоэлектронный мониторинг уровня токсичности природных и сточных вод в реальном времени // Экол. химия. Т. 16, № 4. 2007. С. 223−232.
  75. Н.К. Биоиндикация и биомониторинг загрязнения морских вод тяжелыми металлами. JL: Наука, 1989. 192 с.
  76. В.П., Бельчева Н. Н., Захарцев М. В. Биохимические механизмы толерантности мидии к тяжелым металлам // Биол. моря. 1998. Т. 24, № 5. С. 319−325.
  77. С.А. Использование мизид для биоиндикации состояния экосистем залива Петра Великого (Японское море) // Науков1 записки. Серия: Бюлопя. Спещальний випуск «Пдроеколопя». 2005. Т. 27, № 4. С. 260−262.
  78. А.П. Распределение нефтяных углеводородов в воде и донных отложениях Амурского залива (Японское море) // Изв. ТИНРО. 2005. Т. 140. С. 240−244.
  79. А.П., Лукьянова О. Н., Черкашин С. А. Распределение нефтяных углеводородов и оценка состояния биоты в Амурском заливе (Японское море) // Экол. химия. Т. 15, № 1. 2006. С. 28−38.
  80. Экотоксикологическая оценка состояния Уссурийского залива (Японское море) / Отчет НИР № 25 857. Архив ТИНРО. Владивосток, 2006. 94 с.
  81. Г. И., Яричин В. Г. Течения Японского моря. Владивосток: ДВО АН СССР, 1991. 176 с.
  82. В.М. Основы ксенобиологии: Учеб. пособие. Минск: Новое знание, 2002. 267 с.
  83. Л.Б. О повышении точности определения активности глутатионредуктазы эритроцитов // Лаб. дело. 1989. № 4. С. 19−21.
  84. Adams S.M. Biomarker/bioindicator response profiles of organisms can help differentiate between sources of anthropogenic stressors in aquatic ecosystems // Biomarkers. 2001. Vol. 6. № 1. P. 33−44.
  85. Addison R.F. The use of biological effects monitoring in studies of marine pollution // Environ. Res. 1996. Vol. 4. P. 225−237.
  86. Allen R.G., Balin A.K. Oxidative influence on development and differentiation: an overview of a trace radical theory of development // Free Radical Biol. Med. 1989. Vol. 6. P. 390−661.
  87. Almeida E.A., Bainy A.C.D., Dafre A.L. et al. Oxidative stress in digestive gland and gill of the brown mussel {Perna perna) exposed to air and re-submersed // J. Experiment. Mar. Biol. Ecol. 2005. Vol. 318. P. 21−30.
  88. Anderson M.J., Cacela D., Beltman D. et al. Biochemical and toxicopathic biomarkers assessed in smallmouth bass recovered from a polychlorinated biphenyl-contaminated river // Biomarkers. 2003. V.8. P. 371−393.
  89. Arukwe A., Goksoyr A. Changes in three hepatic cytochrome P450 subfamilies during a reproductive cycle in turbot ('Scophthalmus maximus L.) II J. Experiment. Zool. 1997. Vol. 277. P. 313−325.
  90. Bacanskas L.R., Whitaker J., Di Giulio R.T. Oxidative stress in two populations of killifish (Fundulus heteroclitus) with differing contaminant exposure histories // Mar. Environ. Res. 2004. Vol. 58. P. 597−601.
  91. Baldwin W.S., Leblanc G.A. In vivo biotransformation of testosterone by phase I and II detoxication enzymes and their modulation by 20-hydroxyecdysone in Daphnia magna II Aquat. Toxicol. 1994. Vol. 29. P. 103−117.
  92. Belan T.A., Tkalin A.V., Lishavskaya T.S. The present status of bottom ecosystems of Peter the Great Bay (the Sea of Japan) // Pacific Oceanography. 2003. Vol. l.P. 158−167.
  93. Borg D.C., Schaich K.M. Cytotoxicity from coupled redox cycling of autooxidizing xenobiotics and metals // Israel J. Chem. 1984. Vol. 24. P. 38−53.
  94. Bresler V., Bissinger V., Abelson A. et al. Marine molluscs and fish as biomarkers of pollution stress in littoral regions of the Red Sea, Mediterranean Sea and North Sea//Helgol. Mar. Res. 1999. Vol. 53. P. 219−243.
  95. M., Dworschak P.C., Stachowitsch M. (Eds.) The Vienna school of marine biology: A tribute to Jorg Ott. Wein: Facultas Universitatsverlag, 2002. P. 89−100.
  96. Broeg K., Westernhagen H.V., Zander S. et al. The «Bioeffect assessment index» (BAI). A concept for the quantification of effects of marine pollution by an integrated biomarker approach //Mar. Pollut. Bull. 2005. Vol. 50. P. 495−503.
  97. Buet A., Banas D., Vollaire Y. et al. Biomarker responses in European eel {Anguilla anguilla) exposed to persistent organic pollutants. A field study in the Vaccares lagoon (Camargue, France) // Chemosphere. 2006. Vol. 65. P. 18 461 858.
  98. Cajaraville M.P., Orbea A., Marigomez I., Cancio I. Peroxisome proliferation in the digestive epithelium of mussels exposed to the water accommodated fraction of three oils // Сотр. Biochem. Physiol. 1997. Vol. 117C. P. 233−242.
  99. Canesi L., Viarengo A. Age-related differences in glutathione metabolism in mussel tissues {Mytilus edulis L.) // Сотр. Biochem. Physiol. 1997. Vol. 116B, № 2. P. 217−221.
  100. Cheung C.C.C., Zheng G.J., Li A.M.Y. et al. Relationships between tissue concentrations of polycyclic aromatic hydrocarbons and antioxidative responses of marine mussels Perna viridis II Aquat. Toxicol. 2001. Vol. 52. P. 189−203.
  101. Collier Т.К., Krone C.A., Krahn M.M. et al. Petroleum exposure and associated biochemical effects in subtidal fish after the Exxon Valdez oil spill // American Fisheries Society Symposium 18. 1996. P. 671−683.
  102. Conney A.H. Induction of microsomal enzymes by foreign chemicals and carcinogenesis by polycyclic aromatic hydrocarbons // Cancer Res. 1982. Vol. 42. P. 4875−4917.
  103. Den Besten P.J. Cytochrome P450 monooxygenase system in ehinoderms // Сотр. Biochem. Physiol. 1998. Vol. 121C. P. 139−146.
  104. Di Giulio R.T., Habig C., Gallagher E.P. Effect of Black Rock Harbor sediments on indices of biotransformation, oxidative stress, and DNA integrity in channel catfish //Aquat. Toxicol. 1993. Vol. 26. P. 1−22.
  105. Di Giulio R.T., Washburn P.C., Wenning R.J. et al. Biochemical responses in aquatic animals: a review of determinants of oxidative stress // Environ. Toxicol. Chem. 1989. Vol. 8. P. 1103−1123.
  106. Environmental contaminant exposure from consumption of fish: exposures and health consequences in the 21st century. Edited by Anderson H.A., Wolff M.S. // Environ. Res. 2005. Vol. 97, № 2. P. 124−226.
  107. Fitzgerald J.P. Comparative analysis of superoxide dismutase activities in a range of temperate in tropical teleost fish // Сотр. Biochem. Physiol. 1992. Vol. 101B.P. 111−114.
  108. Fitzpatrick P.J., O’Halloran J., Sheehan D., Walsh A.R. Assessment of glutathione-S-transferase and related proteins in the gill and digestive gland of
  109. Mytilns edulis (L.) as potential organic pollution biomarkers // Biomarkers. 1997. Vol. 2. P. 51−56.
  110. Forlin L., Lemaire P., Livingstone D.R. Comparative studies of hepatic xenobiotic metabolizing and antioxidant enzymes in different fish species // Mar. Environ. Res. 1995. Vol. 39. P. 201−204.
  111. Gabryelak Т., Piatkowska M., Leyko W., Peres G. Seasonal variations in the activities of peroxide metabolism enzymes in erythrocytes of freshwater fish species // Сотр. Biochem. Physiol. 1983. Vol. 75C. P. 383−385.
  112. Gallagher E.P., Gross T.S., Sheehy K.M. Decreased glutathione-S-transferase expression and activity and altered sex steroids in Lake Apopka brown bullheads (Ameriurus nebulosus) // Aquat. Toxicol. 2001. Vol. 55. P. 223−237.
  113. Garcia L.M., Porte C., Albaiges J. Organochlorinated pollutants and xenobiotic metabolizing enzymes in W. Mediterranean mesopelagic fish // Mar. Pollut. Bull. 2000. V.40. P. 764−768.
  114. Geracitano L.A., Monserrat J.M., Bianchini A. Oxidative stress in Laeoneris acuta (Polychaeta, Nereididae): environmental and seasonal effects // Mar. Environ. Res. 2004. Vol. 58. P. 625−630.
  115. Glutathione, redused (GSH). Monograph // Alternat. Med. Res. 2001. Vol. 6. P. 601−607.
  116. Goksoyr A., Beyer J., Egaas E. et al. Biomarker responses in flounder {Platichthys flesus) and their use in pollution monitoring // Mar. Pollut. Bull. 1996. Vol. 33. P. 36−45.
  117. Goldberg E.D. The Mussel watch concept // Environ, monitoring and assessment. 1986. Vol. 7. P. 101−125.
  118. Greenberg C.G., Gaddock P.R. Rapid single-step membrane protein assay // Clin. Chem. 1982. Vol. 28. № 7. P. 1725−1726.
  119. Guengerich F.P., Liebler D.C. Enzymatic activation of chemicals to toxic metabolites // Crit. Rev. Toxicol. 1985. Vol.14. P. 259−307.
  120. Gul S., Belge-Kurutas E., Yildiz E. et al. Pollution correlated modifications of liver antioxidant systems and histopathology of fish (Cyprinidae) living in Seyhan Dam Lake, Turkey // Environ. Internat. 2004. Vol. 30. P. 605−609.
  121. Habig W.H., Pabst M.J., Jacoby W.B. Glutathion-S-transpherase: the first step in mercapture acid formation // J. Biol. Chem. 1974. Vol. 249. P. 7130−7139.
  122. Halliwell В., Gutteridge J. M. C. Iron and free radical reactions: two aspects of antioxidant protection // Trends Biochem. Sciences. 1986. Vol. 11. P. 372−375.
  123. Hanson-Painton O., Griffin M.J., Tang J. Involvement of a cytosolic carrier protein in the microsomal metabolism of benzoa. pyrene in rat liver // Cancer Res. 1983. Vol. 43. P. 4198−4206.
  124. Holdway D.A., Brennan S.E., Ahokas J.T. Use of hepatic MFO and blood enzyme biomarkers in sand flathead (Platycephalus bassensis) as indicators of pollution in Port Phillip Bay, Australia // Mar. Pollut. Bull. 1994. Vol. 28. P. 683 695.
  125. Hylland K. Polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH) ecotoxicology in marine ecosystems // J. Toxicol. Environ. Health. 2006. Vol. 69A. P. 109−123.
  126. Jakoby W.B. The glutathione-S-transferases: a group of multi-functional detoxification proteins // Adv. Enzymol. 1978. Vol. 46. P. 383−414.
  127. Jewett S.C., Dean T.A., Woodin B.R. et al. Exposure to hydrocarbons 10 years after the Exxon Valdez oil spill: evidence from cytochrome P4501A expression and biliary FACs in nearshore demersal fishes // Mar. Environ. Res. 2002. V. 54. P. 21−48.
  128. Ketterer В., Meyer D.J. Gluthathione transferases: A possible role in the detoxication and repair of DNA and lipid hydroperoxides // Mutat. Res. /Fund. Mol. Mech. of Mutagen. 1989. Vol. 214. P. 33−40.
  129. Kirby M.F., Neall P., Tylor T. EROD activity measured in flatfish from the area of the Sea Empress oil spill // Chemosphere. 1999. Vol. 38. P. 2929−2949.
  130. Kleinow K.M., Melancon M.J., Lech J.J. Biotransformation and induction: Implications for toxicity, bioaccumulation and monitoring of environmental xenobiotics in fish // Environ. Health Perspect. 1987. Vol. 71. P. 105−119.
  131. Kopecka J., Pempkowiak J. Temporal and spatial variations of selected biomarker activities in flounder (Platichthys flesus) collected in the Baltic proper // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2008. Vol. 70. P. 379−391.
  132. Macdonald J.A., Montgomery J.C., Wells R.M.G. Comparative physiology of Antarctic fish//Adv. Mar. Biol. 1987. Vol. 24. P. 321−388.
  133. Machala M., Petrivalsky M., Nezveda K. et al. Responses of carp hepatopancreatic 7-ethoxyresorufin-O-deethylase and glutathione-dependent enzymes to organic pollutants A field study // Environ. Toxicol. Chem. 1997 Vol. 16. P. 1410−1416.
  134. Manduzio H., Rocher В., Durand F. et al. The point about oxidative stress in molluscs // Invertebr. Surviv. J. 2005. Vol. 2. P. 91−104.
  135. Manodori L., Gambaro A., Piazza R. et al. PCBs and PAHs in sea-surface microlayer and sub-surface water samples of the Venice Lagoon (Italy) // Mar. Pollut. Bull. 2006. Vol. 52. P. 184−192.
  136. Mansuy D. The great diversity of reactions catalyzed by cycohromes P450 // Сотр. Biochem. Physiol. 1998. Vol. 121C. P. 5−14.
  137. Marnett L.J. Lipid peroxidation—DNA damage by malondialdehyde // Mutat. Res. 1999. Vol. 424. P. 83−95.
  138. Martinez-Lara E., Toribio F., Lopez-Barea J., Barcena J.A. Glutathione-S-transferase isoenzyme patterns in the gilthead seabream {Sparus aurata) exposed to environmental contaminants // Сотр. Biochem. Physiol. 1996. Vol. 113C. P. 215−220.
  139. McFarland V.A., Inouye L.S., Lutz C.H. et al. Biomarkers of oxidative stress and genotoxicity in livers of field-collected brown bullhead, Ameiurus nebulosus // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1999. Vol. 37. P. 236−241.
  140. Meister A., Anderson M.E. Glutathione // Annu. Rev. Biochem. 1983. Vol. 52? № l.P. 711−760.
  141. Meyer J.N., Di Giulio R.T. Heritable adaptation and fitness costs in killifish {Fundulus heteroclitus) inhabiting a polluted estuary // Ecol. Applicat. 2003. Vol. 13. P. 490−503.
  142. Meyer J.N., Smith J.D., Winston G.W., Di Giulio R.T. Antioxidant defenses in killifish {Fundulus heteroclitus) exposed to contaminated sediments and model prooxidants: short-term and heritable responses // Aquat. Toxicol. 2003. Vol. 65. P. 377−395.
  143. Moore M.N., Livingstone D.R., Widdows J. et al. Molecular', cellular and physiological effects of oil-derived hydrocarbons on mollusks and their use in impact assessment //Trans. R. Soc. Lond. 1987. Vol. B316. P. 603−623.
  144. Moron M.S., Pepierre J.W., Monnervick B. Level of glutathione, glutathione reductase and glutathione-S-transferase activities in rat lung and liver // Biochem. Biophys. Acta. 1979. Vol. 582. P. 67−78.
  145. Nagai Т., Inada J., Hamada M., Kai N. et al. Distribution of glutathione peroxidase activity in fish // Fish Sci. 1999. Vol. 65, № 4. P. 665−666.
  146. Napierska D., Podolska M. Biomarkers of contaminant exposure: results of a field study with flounder {Platichthys flesus) from the southern Baltic Sea // Mar. Pollut. Bull. 2005. Vol. 50. P. 758−767.
  147. Narbonne J.F., Aarab N., Clerandeau C. et al. Scale of classification based on biochemical markers in mussels: application to pollution monitoring in Mediterranean coasts and temporal trends // Biomarkers. 2005. Vol. 10. P. 58−71.
  148. Narbonne J.F., Garrigues P., Ribera D. et al. Mixed-function oxygenase enzymes as tools for pollution monitoring: Field studies on the French coast of the Mediterranean sea//Сотр. Biochem. Physiol. 1991. Vol. 100C. P. 37−42.
  149. Nemoto N., Gelboin H. Assay and properties of glutathione-S-benzo (a)pyrene-4,5-oxide transferase // Arch. Biochem. Biophys. 1975. Vol. 170. P. 739−742.
  150. Nesto N., Romano S., Moschino V. et al. Bioaccumulation and biomarker responses of trace metals and micro-organic pollutants in mussels and fish from the Lagoon of Venice, Italy // Mar. Pollut. Bull. 2007. Vol. 55. P. 469−484.
  151. Nusetti O. A., Marcano L., Zapata E. et al. Immunologic answers and of anti-rust enzymes in the oyster pearl Pinctada imbricata (molusca pteridae) exposed at levels subletales of fuel oil № 6 // Interciencia. 2004. Vol. 29. P. 324 328.
  152. Otto D.M.E., Moon T.W. Endogenous antioxidant systems of two teleost fish, the rainbow trout and the black bullhead, and the effect of age // Fish Physiol. Biochem. 1996. Vol. 15, № 4. P. 349−358.
  153. Paoletti F., Aldinucci D., Mocali A., Caparrini A. A sensitive spectrophotometric method for the determination of superoxide dismutase activity in tissue extracts // Analyt. Biochem. 1986. Vol. 154. № 2. P. 536−541.
  154. Pena-Llopis S., Репа J.B., Sancho E. et al. Glutathoine-dependent resistance of the European eel Anguilla angnilla to the herbicide molinate // Chemosphere.2001. Vol. 45. P. 671−681.
  155. Percy M.E. Catalase: an old enzyme with a new role? A review // Can. J. Biochem. Cell. Biol. 1984. Vol. 62. P. 1006−1014.
  156. Porte C., Sole M., Albaiges J., Livingstone D.R. Responses of mixed-function oxygenase and antioxidase enzyme system of Mytilus sp. to organic pollution // Сотр. Biochem. Physiol. 1991. Vol. 100C. P. 183−186.
  157. Porter N.A., Nolon Y., Ramdas L. Cyclic peroxides and thiobarbituric assay // Biochem. Biophys. Acta. 1976. Vol. 441. P. 506−512
  158. Regoli F. Trace metals and antioxidant enzymes in gills and digestive gland of the Mediterranean mussel Mytilus galloprovincialis II Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1998. Vol. 34. P. 48−63.
  159. Regoli F., Nigro M., Bertoli E. et al. Defences against oxidative stress in the Antarctic scallop Adamussium colbecki and effects of acute exposure to metals // Hydrobiologia. 1997. Vol. 355. P. 139−144.
  160. Regoli F., Nigro M., Orlando E. Lysosomal and antioxidant responses to metals in the Antarctic scallop Adamussium colbecki I I Aquat. Toxicol. 1998. Vol. 40. P. 594−601.
  161. Ritchie W., O’Sullivan M. The environmental impact of the wreck of the Braer. Edinburgh: The Scottish Office, 1994. 207 p.
  162. Ronisz D., Larsson D.G.J., Forlin L. Seasonal variations in the activities of selected hepatic biotransformation and antioxidant enzymes in eelpout {Zoarces viviparus) II Сотр. Biochem. Physiol. 1999. Vol. 124C, № 3. P. 271−279.
  163. Rudneva I.I. Blood antioxidant system of Black Sea elasmobranch and teleosts // Сотр. Biochem. Physiol., 1997. Vol. 118C. P. 255−260.
  164. Ruus A., Sandvik M., Ugland K., Skaare J. Factors influencing activities of biotransformation enzymes, concentrations and compositional patterns of organochlorine contaminants in members of a marine food web // Aquat. Toxicol.2002. Vol. 61. P. 73−87.
  165. Salinas A.E., Wong M.G. Glutathione S-transferases a review // Curr. Med. Chem. 1999. Vol. 4. P. 279−309.
  166. Sheehan D., Power A. Effects of seasonality on xenobiotic and antioxidant defence mechanisms of bivalve mollusks // Сотр. Biochem. Physiol. 1999. Vol. 123C.P. 193−199.
  167. Shulkin V.M., Kavun V.Ya., Presley B.J. Metal concentrations in mussels Crenomytilus grayanus and oyster Crassostrea gigas in relation to contamination of ambient sediments//Environ. Internat. 2003. Vol. 29. P. 493−502.
  168. Sole M., Kopecka J., Garcia de la Parra L.M. Seasonal variations of selected biomarkers in sand gobies Pomatoschistus minutus from the Guadalquivir Estuary, southwest Spain//Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2006. Vol. 50. P. 249−255.
  169. Sole M., Porte C., Albaigёs J. Mixed-function oxygenase system components and antioxidant enzymes in different marine bivalves: Its relation with contaminant body burdens // Aquat. Toxicol. 1994. Vol. 30. P. 271−283.
  170. Sole M., Porte C., Biosca X. et al. Effects of the Aegean Sea oil spill on biotransformation enzymes, oxidative stress and DNA-adducts in digestive gland of the mussel {Mytilus edulus L.) // Сотр. Biochem. Phsiol. 1996. Vol. 113C. P. 257−265.
  171. Sole M., Raldua D., Barcelo D., Porte C. Long-term exposure effects in vitellogenin, sex hormones, and biotransformation enzymes in female carp in relation to a sewage treatment works // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2003. Vol. 56. P. 373−380.
  172. Stien X., Percic Ph., Gnassia-Barelli M. et al. Evaluation of biomarkers in caged fishes and mussels to assess the quality of waters in a bay of the NW Mediterranean Sea//Environ. Pollution. 1998. Vol. 99. P. 339−345.
  173. Thomas P., Rahman S., Kummer J., Khan I. Neuroendocrine changes associated with reproductive dysfunction in Atlantic croaker after exposure to hypoxia // Soc. Environ. Toxicol. Chem. Baltimore, MD. 2005. 59 P.
  174. Tkalin A.V., Belan T.A., Shapovalov E.N. The state of the marine environment near Vladivostok, Russia // Mar. Pollut. Bull. 1993. Vol. 26. P. 418 422.
  175. Tkalin A.V., Lishavskaya T.S., Hills J.W. Organochlorine pesticides in mussels and bottom sediments from Peter the Great Bay near Vladivostok // Ocean Res. 1997. Vol. 19. P. 115−119.
  176. Tkalin A.V., Presley B.J., Booth P.N. Spatial and temporal variations of trace metals in bottom sediments of Peter the Great Bay, the Sea of Japan // Environ. Pollut. 1996. Vol. 92. P. 73−78.
  177. Van der Oost R., Beyer J., Vermeulen N.P.E. Fish bioaccumulation and biomarkers in environmental risk assessment: A review // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2003. Vol. 13. P. 57−149.
  178. Van der Oost R., Goks0yr A., Celander M. et al. Biomonitoring of aquatic pollution with feral eel {Anguilla anguilla) II. Biomarkers: pollution-induced biochemical responses // Aquat. Toxicol. 1996. Vol. 36. P. 189−222.
  179. Van Veld P.A., Lee R.F. Intestinal glutathione-S-transferase activity in flounder Platichthys flesus collected from contaminated and reference sites // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. Vol. 46. P. 61−63.
  180. Vidal M., Basseres A., Narbonne J. Seasonal variations of pollution biomarkers in two populations of Corbicula fluminea (Muller) // Сотр. Biochem. Physiol. 2002. Vol. 131C. P. 133−151.
  181. Walker C.H. Biochemical biomarkers in ecotoxicology some recent developments // Sci. Total Environ. 1995. Vol. 171. P. 189−195.
  182. Webb D., Gagnon M.M., Rose Т.Н. Interannual variability in fish biomarkers in a contaminated temperate urban estuary // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2005. Vol. 62. P. 53−65.
  183. Wenning R.J., Di Giulio R.T., Gallagher E.P. Oxidant-mediated biochemical effects of paraquat in the ribbed mussel, Geukensia demissa II Aquat. Toxicol. 1988. Vol. 12. P. 157−170.
  184. Whyte J.J., Jung R.E., Schmitt C.J., Tillitt D.E. Ethoxiresorufm-O-deethylase (EROD) activity in fish as a biomarker of chemical exposure // Crit. Rev. Toxicol. 2000. Vol. 30. 570 p.
  185. Willett K.L., McDonald S.J., Steinberg M.A. et al. Biomarker sensitivity for polynuclear aromatic hydrocarbon contamination in two marine fish species collected in Galveston Bay, Texas // Environ. Toxicol. Chem. 1997. Vol. 16. P. 1472−1479.
  186. Wolf C.R. Cytochrome P450s: polymorphic multigene families involved in carcinogen activation // Trends Genet. 1986. Vol. 2. P. 202−214.
  187. Wu R., Zhou В., Woo N., Lam P. Aquatic hypoxia is an endocrine disruptor and impairs fish reproduction // Environ. Sci. Technol. 2003. Vol. 37. P. 11 371 141.
  188. Wu R., Siu W., Shin P. Induction, adaptation and recovery of biological responses: Implications for environmental monitoring // Mar. Pollut. Bull. 2005. Vol. 51. P. 623−634.
  189. Zaccaron da Silva A., Zanette J., Ferreira J.F. et al. Effects of salinity on biomarker responses in Crassostrea rhizophorae (Mollusca, Bivalvia) exposed to diesel oil // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2005. Vol. 62. P. 376−382.
  190. Zhang J.F., Shen H., Xu T.L. et al. Effects of long-term exposure of low-level diesel oil on the antioxidant defense system of fish // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2003. Vol. 71. P. 234−239.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!