Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Некоторые общие закономерности действия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий

Диссертация: Некоторые общие закономерности действия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Необходимо отметить, что появление оптических квантовых генераторов открыло широкие возможности для проведения исследований по биологическому воздействию широкого спектра электромагнитных излучений. Лазеры представляют собой удобный инструмент для осуществления оптического воздействия на живую материю. Лазерное излучение с высокой спектральной мощностью в необходимом спектральном диапазоне легко… Читать ещё >

Некоторые общие закономерности действия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. Действие ионизирующих излучений на биологические объекты
    • 2. Действие УФ излучения на биологические объекты
    • 3. Действие излучений видимой области на биологические объекты
    • 4. Действие ИК излучения на биологические объекты
  • ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 1. Штаммы
    • 2. Среды
    • 3. Источники излучений
    • 4. Определение радиочувствительности
    • 5. Комбинированное облучение
    • 6. Определение частоты мутирования
    • 7. Регистрация времени задержки первого деления клеток
    • 8. Статистическая обработка данных
  • ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ
    • 1. Действие ионизирующих излучений с разными ЛПЭ на клетки бактерий Escherichia coil К
    • 2. Действие лазерных излучений видимого диапазона на клетки бактерий E. coliK-12 разных генотипов
    • 3. Фоторадиационные воздействия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий E. coliK
      • 3. 1. Предварительное и последующее лазерное облучение
      • 3. 2. Одновременное облучение клеток бактерий Е. coli К-12 лазерным излучением с длиной волны бЗЗнм и альфа -частицами
    • 4. Действие лазерного УФ излучения на клетки бактерий E. coli К
    • 5. Действие лазерного ИК излучения на клетки бактерий Е. coli К-12 разных генотипов
  • ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ
  • выводы

Актуальность проблемы.

Начиная с первых минут своего существования все живые организмы подвергаются воздействию разных видов излучений и поэтому исследование воздействия этих излучений на живые организмы представляет большой интерес. Мир лучистой энергии, в котором живет человечество, включает лучи разных физических характеристик и различного физического действия: инфракрасные, видимые, ультрафиолетовые, рентгеновы и у — лучи, корпускулярные частицы в виде протонов, электронов, тяжелых ионов и других, которые до Земли не доходят, так как поглощаются ее атмосферой.

Космическая радиация является одной из существующих компонентов так называемого естественного радиоактивного фона, составляя примерно 1/3 его часть. Остальные 2/3 ионизирующего излучения естественного радиационного фона приходятся за счет излучений радиоактивных веществ, находящихся на Земле.

Известно, что человек находящийся в средних широтах на уровне моря, подвергается воздействию отдельных видов лучистой энергии в следующих л количествах: инфракрасной радиации около 0,5−0,7 кал /см .минвидимого Л света — порядка 20 000−30 000 лк или около 0,4 кал /см .минультрафиолетовой л радиации — около 50−60 мкал /см .мин, и наконец, радиоактивных излучений в пределах 100−118 мрад/год или 30−60 мкрад/ч. Поэтому защита живых организмов от повреждающего действия этих излучений является одной из актуальных и чрезвычайно сложных проблем в современной биологии и радиобиологии, в частности. Оценка радиационной опасности космического излучения представляет сложную и многогранную задачу. Трудности ее решения, обусловлены с одной стороны, отсутствием достаточно полных данных о стохастических и нестохастических эффектах, обусловленных отдельными видами космического излучения, а с другой стороны, чрезвычайно высокими материальными затратами. Это особенно касается излучений видимого и инфракрасного диапазонов светового спектра (область от 0,38-Юмкм) (рис.1). Литературных данных по действию этих излучений на биологические объекты мало, они не систематизированы, выполнены на различных биологических объектах, что существенно затрудняет их анализ, механизмы их воздействия непонятны. Между тем, именно такого характера сведения необходимы для разработки и обеспечевания допустимых уровней воздействия различных видов излучения на организм человека. В первую очередь такие сведения необходимы для специалистов, разрабатывающих соответствующие нормативно-технические документы по обеспечению радиационной безопасности населения в целом и космонавтов, при длительных воздействиях в относительно низких дозах.

Кроме того, актуальность изучения биологических эффектов, обусловленных • воздействием электромагнитных излучений различных спектральных диапазонов, определяется широким кругом научных и практических задач в таких областях науки как общая радиобиология, фотобиология, радиология, микробиология, генетика, радиационная гигиена, лазерная медицина и др.

Необходимо отметить, что появление оптических квантовых генераторов открыло широкие возможности для проведения исследований по биологическому воздействию широкого спектра электромагнитных излучений. Лазеры представляют собой удобный инструмент для осуществления оптического воздействия на живую материю. Лазерное излучение с высокой спектральной мощностью в необходимом спектральном диапазоне легко доставить в нужную часть организма с помощью волоконных световодов. Современные лазерные установки дают возможность получить оптическое излучение нужного спектрального диапазона, варьировать мощностью излучения, частотой повторения импульсов, их длительностью, размером сечения лазерного пучка и т. д. Лазерное излучение может использоваться как для стимулирования жизненно важных процессов в клетках и организмах, так и для их подавления. Последствия таких воздействий исследуются различными методами современной биологии и медицины. Поэтому, начиная с 1965 года, начался буквально шквал работ по исследованию действия лазерного излучения на различные биологические объекты. В конце 60-х годов в СССР зародилось и в дальнейшем получило широкое применение лазеров в медицине [14, 25, 45, 247]. Сейчас трудно найти такую область медицины, где не применялись бы лазерные установки. Лазеры широко используются также в различных областях науки и техники, и в связи с этим, значительно увеличилось количество людей работающих с лазерами. В настоящее время, исследования биологического действия лазерных излучений разных длин волн представляют научный интерес не только как фундаментальные и прикладные исследования, но и как фактор воздействия, требующего обеспечения безопасности людей работающих с лазерами. Важнейшими областями таких исследований, на наш взгляд, являются исследования по летальному, мутагенному и канцерогенному действию лазерных излучений. О способности УФ света оказывать на клетки летальное, мутагенное и канцерогенное воздействие известно давно, чего нельзя сказать об излучениях видимого и инфракрасного диапазонов. Долгое время считалось, что эти излучения могут оказать летальное и мутагенное воздействия на биологические объекты только по механизму фотодинамического эффекта. Результаты исследований последних лет, в частности экспериментальные материалы полученные нами, показали, что видимый свет разных длин волн, а также инфракрасное излучение способны оказать летальное воздействие на различные биологические объекты также путем прямого фотовозбуждения, без присутствия фотосенсибилизаторов.

Большой интерес для обеспечения радиационной безопасности людей и, в частности, космонавтов при длительных космических полетах представляют также исследования по фоторадиационным воздействиям. В ллитературе данных по комбинированным и одновременным облучениям биологических объектов ионизирующими излучениями и излучениями в диапазоне оптических частот очень мало. Исключение составляют исследования с использованием широкого спектра УФ излучения. Это проблема имеет особое значение в тех случаях, когда биологический объект оказывается в естественном комбинированном поле излучений с различными физическими свойствами.

Нам представляется, что одним из путей понимания механизмов биологического воздействия излучений различных спектральных областей (в том числе и лазерных излучений) является поиск общих закономерностей действия всего спектра электромагнитных излучений на биологические объекты. Сопоставление эффектов ионизирующего излучения и света с различной длиной волны существенно расширит границы наших представлений о механизмах, лежащих в основе реакции клеток на воздействие излучений. Для этого необходимо проведение систематических исследований действия ионизирующих и оптических излучений на одном определенном биологическом объекте. Прежде всего, необходимо детально исследовать воздействие излучений видимого и инфракрасного диапазонов (рис.1) на биологические объекты, поскольку, как уже отмечалось выше, о воздействии излучений именно этих спектральных областей на биологические объекты известно очень мало.

Цель и задачи исследования

.

Целью данной работы являлось выявление общих закономерностей действия на клетки бактерий ионизирующих излучений и лазерных излучений различных спектральных областей. При выполнении работы было необходимо решить следующие задачи:

— исследовать радиобиологическое действие гамма лучей и альфа-частиц на клетки бактерий E. coli К-12 разных генотипов;

— исследовать • биологическое действие лазерных излучений видимой (633 нм, 532 нм), ультрафиолетовой (270 нм, 216 нм) и инфракрасной (1220 — 1320 нм) областей на клетки E. coli К-12 разных генотипов;

— определить зависимости биологического действия лазерных излучений различных спектральных областей на клетки E. coli К-12 от дозы и мощности дозы облучения;

— изучить последовательное и одновременное действия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий E. coli К-12 разных генотипов;

— проверить предположение о том, что при биологическом действии на бактерии E. coli видимого излучения первичными фоторецепторами являются клеточные цитохромы, входящие в дыхательную систему этих клеток.

— сопоставить результаты по действию ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий E. coli К-12 разных генотипов с целью выявления общих закономерностей их действия.

Научная новизна и практическое значение работы.

1. Впервые показано, что лазерные излучения видимой спектральной области (532 нм и 633 нм) оказывают на клетки бактерий E. coli К-12 разных генотипов летальное и мутагенное воздействия.

2. Установлено, что облучение клеток бактерий E. coli К-12 лазерным излучением с. длиной, волны 633 нм приводит к задержке первого после облучения деления клеток: время задержки зависит от дозы облучения.

3. Кривые частоты мутирования клеток бактерий (1ас+ -> 1ас* мутации) в случаях их облучения видимым (532 и 633 нм) и УФ (270 и 216 нм) излучениями имеют одинаковую форму.

4. Показано, что эффективность воздействия всех исследованных видов лазерных излучений на клетки бактерий E. coli К-12 генетически детерминирована — зависит от репарационного генотипа клеток.

5. Впервые проведены эксперименты по последовательному и одновременному облучению клеток бактерий E. coli К-12 лазерным излучением с длиной волны бЗЗнм и ионизирующими излучениями, показывающие, что результаты фоторадиационных воздействий зависят от варианта комбинации, дозы каждого вида излучения и временного интервала между этими облучениями.

6. Впервые установлено, что предварительное, последующее и одновременное с ионизирующим излучением облучения клеток бактерий E. coli К-12 разных генотипов лазерными излучениями видимого диапазона (633 и 532 нм) снижают повреждающие действия ионизирующих излучений.

7. Впервые показано, что лазерные излучения ближней инфракрасной области света (1220 — 1320 нм) оказывают на клетки бактерий летальное воздействие, которое максимально эффективно при длине волны излучения 1270нм (соответствующему главному максимуму поглощения молекулярного кислорода). Эффективность лазерного воздействия зависит от мощности дозы и генотипа клеток.

8. Впервые выявлены некоторые общие закономерности действия ионизирующих и лазерных излучений на клетки бактерий.

Результаты проведенных исследований важны для обеспечения радиационной безопасности людей, представляют большой научный интерес для понимания механизмов и закономерностей действия электромагнитных излучений видимой и ИК областей спектра. Полученные результаты могут быть использованы в лазерной медицине, радиационной защите, микробиологии, в области космической биологи и медицины и других областях народного хозяйства. Они также могут быть использованы при разработке вопросов санитарно-гигиенического нормирования для лиц, работающих с лазерами в профессиональных условиях.

ВЫВОДЫ.

1. Впервые показано, что чувствительность клеток к лазерному излучению видимой области (532 нм и 633 нм) в ряде исследованных штаммов бактерий Е. соН К-12 уменьшается в следующем порядке: радиочувствительные мутанты, дикий тип, суперрезистентный мутант, т. е. чувствительность клеток изученных нами штаммов Е. соН К-12 к редкоионизирующим и лазерным излучениям описываются сходной по направленности картиной. Кривые выживания клеток бактерий состоят из двух участков: участка малых доз и участка больших доз. На участке малых доз летальный эффект лазерного излучения не обнаруживается. На участке больших доз с увеличением дозы облучения выживаемость клеток снижается (экспозиционные дозы лазерного облучения порядка 104 мДж/см).

2. Облучение клеток бактерий Е. соН К-12 лазерным излучением с длиной волны 633 нм приводит к задержке первого после облучения деления клеток: время задержки зависит от дозы облучения. Контрольные клетки, так же, как.

Л ч и клетки, облученные лазерным излучением в дозе 1,3−10 мДж/см, делятся через 1,5 часа, в то время как клетки, подвергнутые лазерному воздействию в большей дозе (3,2−10 мДж/см, 16−10 мДж/см и.

32−10 мДж/см) делятся только через 2,5 ч. Этот результат представляет большой интерес в связи с тем, что деление клетки не задерживается более, чем на 2,5 ч., а этот срок соответствует сумме времен, необходимой для осуществления медленной репарации клеток бактерий и лаг-фазы. Заслуживает внимания тот факт, что при данных дозах лазерной экспозиции, приводящих к задержке деления клеток, летальный и мутагенный эффекты облучения не наблюдаются.

3. Проведено сравнение частоты мутирования клеток бактерий E. coli К-12 (1ас+ -" lac" мутации) в случаях их облучения видимым (532 и 633 нм) и УФ (270 и 216 нм) излучениями. Показано, что во всех исследованных случаях кривые частоты мутирования имеют одинаковую форму. В области малых доз наблюдается пик частоты мутирования, далее кривая идет на спад, а при больших дозах облучения снова наблюдается рост частоты мутирования. Такая схожесть может свидетельствовать в пользу того, что при индуцированном этими излучениями мутагенезе характер кривой частоты мутирования определяется не первичными фоторецепторами и не конкретными фотоповреждениями, приводящими к возникновению мутаций, а какими-то общими для всех случаев явлениями. Можно предположить, что кривые частоты мутирования клеток бактерий E. coli, полученные нами при действии на них видимого и УФ излучений, состоят из двух компонент: компоненты радиочувствительных филаментов (область малых доз) и компоненты нормальных клеток (большие дозы облучения).

4. Впервые продемонстрировано, что эффективность летального воздействия лазерного излучения ближней инфракрасной области (1220 — 1320 нм) зависит от мощности дозы лазерного излучения, генотипа клеток и максимально эффективна при длине волны излучения 1270 нм. Эта длина волны соответствует одному из максимумов поглощения молекулярного кислорода.

5. Результаты фоторадиационных воздействий комбинированного облучениия клеток бактерий Е. соИ К-12 лазерным излучением с длиной волны 633 нм и ионизирующими излучениями зависят от варианта комбинации и дозы каждого вида излучения, входящего в использованные комбинации излучений. При нелетальных дозах предварительного и последующего лазерного облучения наблюдается антагонистическая реакция клеток на фоторадиационное воздействие, однако, величина модификации радиационного поражения клеток в случае последующего лазерного облучения больше, чем в случае предварительного облучения. При использовании летальных доз последующего лазерного облучения поражения клеток, вызываемые ионизирующим и лазерным излучениями суммируются, т. е. наблюдается аддитивная реакция клеток на облучение.

6. Впервые показано, что нелетальные дозы излучения гелий-неонового лазера оказывают на клетки бактерий Е. соН К-12 радиозащитное влияние при их облучении рентгеновскими лучами и, а частицами, как при предварительном, так и при последующем лазерном воздействии. Радиозащитное действие лазерного излучения проявляется в определенном, довольно узком интервале экспозиционных доз с максимальной л эффективностью при плотности энергии 8−10 мДж/см независимо от генотипа клеток и мощности лазера. Эффективность радиозащитного действия лазерного излучения для клеток всех исследованных штаммов бактерий при последующем лазерном облучении больше, чем при предварительном.

7. Радиозащитное действие излучения гелий-неонового лазера наблюдается также в проведенных впервые исследованиях по одновременному облучению клеток бактерий E. coli К-12 излучением лазера и ачастицами. При одновременном лазерном (бЗЗнм) и, а — облучении клеток бактерий радиозащитный эффект лазерного излучения наблюдается как при нелетальных, так и при. летальных его дозах.

8. Многие известные радиозащитные вещества вводятся в организм только перед облучением, введение протекторов в пострадиационный период неэффективно. В. случае же лазерного облучения защитный эффект наблюдается как при предварительном, так и при последующем лазерном облучении. Кроме того, защитный эффект радиопротекторов зависит от ЛПЭ ионизирующих излучений: многие протекторы эффективно защищают клетки от поражающего действия рентгеновских лучей, но при особлучении тех же клеток оказываются неэффективными. Радиозащитный эффект лазерного облучения клеток, в отличие от химических протекторов, универсален: лазерная обработка эффективна для всех исследованных штаммов бактерий E. coli К-12, для случаев предварительного и последующего лазерного облучения, при использовании как редкоионизирующих, так и плотноионизирующих излучений. Все эти свойства являются преимуществами применения лазерной обработки клеток в целях получения радиозащитного эффекта по сравнению с химическими протекторами. Кроме того, известно, что получение радиопротекторов, эффективных после радиационного поражения биологических объектов является одной из актуальных задач радиационной защиты.

9. Радиозащитное действие излучения гелий-неонового лазера на клетки бактерий Е. соИ К-12 разных генотипов (после их облучения рентгеновскими лучами или, а — частицами) наблюдается во временном интервале до четырех часов пострадиационного выдерживания клеток при комнатной температуре, на поверхности «голодного» агара. Это характерно для всех исследованных штаммов бактерий. Однако необходимо отметить, что эффективность радиозащитного действия лазерного излучения зависит от интервала времени между двумя видами облучений: максимальный радиозащитный эффект для всех исследованных штаммов наблюдался в течение первого часа пострадиационного выдерживания клеток, а дальше постепенно уменьшается.

Ю.Исследования по летальному, мутагенному и радиозащитному действию лазерного излучения с длиной волны 532 нм показали, что это излучение способно оказать на клетки бактерий Е. соИ К-12 такое же биологическое воздействие, как и излучение с длиной волны 633 нм. Этот факт свидетельствует в пользу существующего в научной литературе предположения о том, что клеточные цитохромы, входящие в дыхательную систему клеток бактерий E. coli, могут являться первичными фоторецепторами при воздействии на них оптического излучения видимого диапазона.

11 .Использованный при проведении исследований подход поиска общих закономерностей действия всего спектра электромагнитных излучений на биологические объекты и сопоставление эффектов ионизирующего излучения и света с различной длиной волны позволили существенно расширить границы наших знаний о реакции клеток бактерий E. coli К-12 на воздействие лазерных (оптических) излучений. Существующие ранее литературные данные по действию видимого и инфракрасного лазерных излучений на биологические объекты касались только их стимулирующего влияния на различные метаболические процессы. Это, вероятно, было связано с тем, что самыми доступными для проведения биологических экспериментов оказались низкоинтенсивные лазеры, а для получения летального и мутагенного эффекта с их помощью нужны были очень длительные лазерные экспозиции.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Полученные данные по летальному и мутагенному действию лазерного излучения с длиной волны 633 нм очень важны для лазерной терапии. Эти данные указывают на то, что при проведении терапии с помощью этог лазера обязательно необходимо установить и строго придерживаться предписанной дозы облучения (с учетом индивидуальной чувствительности пациента), т.к. повышение дозы облучения может привести к негативным последствиям.

2. Лазерное излучение с длиной волны 216 нм, которое обладает очень высоким мутагенным воздействием, можно использовать в микробиологии для селекции штаммов бактерий с различными генетическими свойствами, необходимыми в различных областях науки и народного хозяйства.

3. Приобретение бактериями резистентности по отношению к антибиотикам уже давно стало серьезной проблемой современной медицины. В связи с этим рассматриваются возможности применения других методов для достижения бактерицидного действия. Инфракрасное лазерное излучение, с длиной волны 1270 нм, подходит для применения как бактерицидное средство в медицине, различных областях техники и народного хозяйства. Это излучение может быть использовано в качестве метода защиты от микроорганизмов также в условиях космического полета. Известно, что свойство микробов, обитающих на космических аппаратах, вызывать разрушающее действие, которое ухудшает качество материалов, применяемых для обеспечения безопасности космических полетов, и даже приводит к неисправности бортовых приборов, стало одним из актуальных проблем космической биологии.

4. Лазерное излучение с длиной волны 1270 нм можно использовать в фотодинамической терапии опухолей. Очевидным преимуществом этого излучения является то, что при его использовании нет необходимости использовать фотосенсибилизаторы, что обычно делается при использовании излучений других длин волн. 5. Излучение гелий-неонового лазера можно использовать в радиационной защите как радиозащитное средство, т.к. в научной литературе есть данные о радиозащитном действии этого излучения на животных и человека, а проведенные нами исследования показывают его универсальность. Излучение с длиной волны 633 нм можно также использовать в медицинской радиологии для обработки (или профилактики образования) ожогов кожи пациентов, которые нередко наблюдаются при радиотерапии. кожи пациентов, которые нередко наблюдаются при радиотерапии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.К., Григорьева Л. Н., Пархоменко И. М. Действие лазерного излучения на клетки китайского хомячка, культивируемые in vitro. -Радиобиология, 1980, т. XX1., вып. 1, с. 40−43.
  2. К.Г., Красавин Е. А., Козубек С.Б Нямсамбуу А. Роль репарации ДНК в биологической эффективности ионизирующих излучений разного качества. Сообщение ОИЯИ, Р19−83−728, Дубна, 1983. — 12с.
  3. Ш. Проблемы мутагенеза: Пер с английского под ред. Н. И. Шапиро. М.: Мир, 1978, — 432с.
  4. Н.И., Кару Т. Й., Тифлова O.A. Оксидазы bd и b0 в качестве первичных фотоакцептров при воздействии низкоинтенсивного видимого монохроматического излучения на клетку Esccherichia coli. Доклады академии наук, 1995, т.345, № 3, с. 404−406.
  5. Х.А., Двухквантовая фотохимия. М.: Наука, 1978, -236с.
  6. Бак 3. Химическая защита от ионизирующей радиации.- М.: Атомиздат, 1968.- 263с.
  7. Г. В. Поражение репродуктивной способности клеток человека в культуре ткани при действии ионизирующей радиации с различной линейной потерей энергии, В кн.: Первичные и начальные процессы биологического действия радиации. М.: 1963. — с. 140.
  8. В., Корогодин В. И. Сравнительный анализ пострадиационного восстановления диплоидных дрожжей при действии альфа и гамма-лучей.-Докл. АН СССР, 1961, т. 138, № 5, с. 1208−1216.
  9. A.B., Красавин E.A. Закономерности мутагенного действия излучений с различной ЛПЭ на клетки Bacillus Subtilis. Радиационная биология, радиоэкология, 1997, вып. З, т.37, с. 408- 412.
  10. Н.В. Влияние гелий-неонового лазера в разных режимах облучения на клетки раговицы после действия ионизирующей радиации. -Докл. АН СССР, 1984, т. 279, № 2, с. 499−501.
  11. Э.А. и Фонг Чонг Тхун. О репарабильности повреждений, вызванных альфа облучением у бактерий. — Материалы науч. Конференции инст. Цитологии АН СССР, посвящ. 50- летию Великой Октябрьской социалистической революции, 1967, с. 22−25 .
  12. Н. Д., Миронов Г. П. Флавин зависимое потребление кислорода в митохондриях при освещении. — Биофизика, 1982, 27, № 3, с. 537 538.
  13. К.Ш., Симонян Н. В., Авакян Ц. М., Авакян Г. М. Зависимость радиозащитного действия гелий-неонового лазерного излучения на клетки бактерий от интервала времени между двумя видами облучения. Радиобиология, 1987, т. 27, № 5, с. 708−711.
  14. Н.Д., Бецкий О. В., Голант М. Б. Использование когерентйых волн в медицине и биологии. «МИС — РТ" — 1998 г., Сборник № 22, с. 1−12.
  15. . Н.П. Проблемы радиационной генетики. М. Госатомиздат, 1961, — с. 468.
  16. Н.П., Сидоров Б.н., Соколов Н.Н Физико-химические и структурные основы биологических явлений. Изд-во АН СССР.: 1961, — с. 142.
  17. В.П., Кару Т.Й.Б Литвинов Ю. О. Фотобиологический эффект излучения полупроводникового лазера в ближней ИК области.-Квантовая электроника, 1987, т.14, № 11, с. 2135−2135.
  18. В.Д. Репарация ДНК и ее биологическое значение. -Ленинград: Наука, 1979.- 312с.
  19. Жестянников • В. Д. Основные факторы, определяющие радиочувствительность делящихся клеток. Радиобиология, инф. Бюллет., 1965, № 8, с. 33−41.
  20. В.Д. Восстановление и радиорезистентноость клетки. Ленинград : — Наука, 1968.- 288с.
  21. В.Д. О специфичности механизмов репарации бактериальной клетки, поврежденной ультрафиолетовыми и рентгеновскими лучами. Цитология, 1966, т.8, № 3, с. 404−411.
  22. Г. Б. Молекулярная биофизика /Под редакцией Франка- М.: Наука, 1965.- С. 137−149.
  23. В.И., Лысцов В. Н. Основы микродозиметрии. М.: Атомиздат, 1979. — 36с.
  24. Т.Й. Фотобиология низкоинтенсивной лазерной терапии. -Итоги науки и техники. Физические основы лазерной и пучковой технологии. 1989, том 4, с. 44−84. '
  25. Т.Й., Календо Г. С., Летохов B.C. и др. Зависимость биологического действия низкоинтенсивного видимого света на клетки HeLa от когерентности, дозы, длины волны и режима облучения I. Квантовая электроника, 1982, т.9, № 9, с. 1761−1767.
  26. Т.Й., Календо Г. С., Летохов В.С и др. Зависимость биологического действия низкоинтенсивного видимого света на клетки HeLa от когерентности, дозы, длины волны и режима облучения. II. Квантовая электроника, 1983, т. 10, № 9, с. 1771−1775.
  27. Т.Й. Фотобиология регуляции метаболизма клетки низкоинтенсивным видимым светом. — Сообщение НИ центра по технологическим лазерам АН СССР, Троицк, 1985, № 8, с. 1−54.
  28. Т.Й., Афанасьева Н. И. Цитохром оксидаза как первичный фотоакцептор при лазерном воздействии света видимого и ближнего ИК -диапазона на культуру клеток. Доклады Академии Наук, 1995, т.342, № 5, с. 693−695.
  29. Т.Й., Рябых Т. П., Антонов С. Н. Различные эффекты• непрерывного и импульсного лазерного излучения (X = 632,8 нм) на окислительный метаболизм спленоцитов. Доклады академии наук, 1995, т. 345, с. 407−409.
  30. Т.Й., Пятибрат Л. Б., Тифлова О., Никогосян Д. П. Исследование летального и мутагенного воздействия пикосекундных лазеров с длиной волны 532 нм. — Радиобиология, 1988, тю28, с. 499−503.
  31. Т.Й., Календо Г. С., Летохов B.C. и др. Действиеультракоротких импульсов УФ лазерного излучения на опухолевые клетки HeLa. Квантовая электроника, 1981, т, 8, № 12, с.2540−2545.
  32. Ю.П. Сборник трудов по агрономической физике., 1962, Вып. 9, с. 75−80.
  33. Ю.П. Сборник трудов по агрономической физике., 1962, Вып. 9, с. 81−82.
  34. Л.П., Бурцева С. А., Разумовский П. Н. Действие лазерного излучения на синтез липидов в дрожжах. — Биофизика, 1982, том. 27, № 3, с. 554−555.
  35. О.В., Кандиано Е. С., Малавиа Г. Природа SOS ответа клеток E.coli К-12 (uvr А) облученных разными дозами УФ.- Радиационная биология, радиоэкология, 2000, Янв. Февр., 40(1), е. 4−10.
  36. C.B., Лыскова Т. И., Прокопова Э. И. Стимуляция дыхания р дрожжей видимым светом. Изв. АН СССР, 1970, № 6, с. 51−56.
  37. C.B., Волотовский И. Д. Фотобиология Минск: Изд-во БГУ им. Ленина, 1979. -229с.
  38. В.И. Некоторые закономерности пострадиационных изменений покоящихся дрожжевых клеток. Биофизика, 1958, т. З, № 6, с. 704 718.
  39. В.И., Красавин Е. А. Факторы, определяющие различия в биологической эффективности ионизирующих излучений с разными физическими характеристиками. Радиобиология, 1982, т.22, № 6, с. 727−738.
  40. В.И. Действие ионизирующих излучений на клетки, В кн.: Основы радиационной биологии. М. Наука, 1964, с.82−126.
  41. В.И., Билуши В., Маркова Л. И. и Шехтман Я.Л. Восстановление жизнеспособности дрожжевых клеток разной плоидности, пораженных альфа-частицами. Радиобиология, 1963, т. 3, № 1, с. 39−48.
  42. В.И. Проблемы пострадиационного восстановления. -М.: Атомиздат, 1966. 391с.
  43. В.Н. Лазер в лечении ран. Саратов: Изд-во СГУ, 1980.178с.
  44. Е.А. Проблема ОБЭ и репарация ДНК. М.: Энергоатомиздат, 1989, — 193с.
  45. Е.А., Козубек С. Мутагенное действие излучений с разной ЛПЭ. -М. Энёргоатомиздат, 1991, 183с.
  46. A.A. (мл). Синглетный молекулярный кислород и первичные механизмы фотодинамического действия оптического излучения.
  47. Итоги науки и техники. Современные проблемы лазерной физики, 1990, том 3, с. 63- 135.
  48. A.A. (мл). Фотолюминесценция синглетного кислорода в растворах хлорофиллов и феофитинов.- Биофизика, 1977, т.22, № 5, с. 927−928.
  49. A.A. (мл), Каган В.Е. Генерация и тушение синглетного кислорода ретиналями.- Докл. АН СССР, 1978, т.242, № 1, с. 229 232.
  50. A.A. (мл). Люминесценция синглетного кислорода при переносе энергий от фотовозбужденных пигментов в растворе. Известия АН СССР, серия физическая, 1978, т. 42, № 2, с. 343−347.
  51. A.A. (мл). Люминесценция синглетного кислорода в растворах фотосенсибилизаторов.- Журнал прикладной спектроскопии, 1980, т.22, вып. 5, с. 852−856.
  52. A.A. (мл). Фотосенсибилизированная люминесценция синглетного кислорода в водных растворах.- Биофизика, 1979, т. 24, вып. 4, с. 747−748.
  53. А.М. Структурно-метаболическая гипотеза в радиобиологии. М.: Наука, 1970. — 302с.56а. Кузин А. М. Стимулирующее действие ионизирующего излучения на биологические процессы. — М.: Атомиздат, 1977.- 287с.
  54. И.Б. Влияние лазерного излучения на радиочувствительность крыс. — Радиобиология, 1978, т.18, № 4, с.628−630.
  55. Р.В. Радиобиология. М: ИЛ, 1955, — 275с.
  56. Ли Д. Е. Действие радиации на живые клетки. М: Госатомиздат, 1963. с. 287.
  57. А. Н., Маянский Д.Н Очерки о нейтрофиле и микрофаге. -Новосибирск: Наука, 1983.- 175с.
  58. Дж. Эксперименты в молекулярной генетике.- М. Мир, 1976. -с.52.
  59. М.Н., Скворцов В. Г., Соколов В. А. Фотобиологические аспекты радиационного поражения клеток. М.: Энергоиздат, 1985. — 150с.
  60. М.Н. Генетический контроль радиочувствительности бактерий! -М.: Атомиздат, 1974. 152 с.
  61. Д.Н. Двухквантовая фотоника нуклеиновых кислот. -Итоги наки и техники, физические основы лазерной и пучковой технологии. 1989, т. 4, с. 85−171.
  62. В.Г., Полит П. Влияние мощности дозы облучения на выживаемость и восстановление дрожжевых клеток. Радиобиология, т. 9, № 4, с. 492−498.
  63. С.И. в кн: Повреждение и репарация ДНК. Пущино, 1980, с.114−128.
  64. М.Ф., Зубкова С. М., Лапрун И. Б. и др. Влияние лазерного излучения на регенерационные процессы в условиях действия ионизирующей радиацию-Докл. АН СССР, 1984, т. 279, № 6, с. 1504- 1507.
  65. Л.Б., Еремеева О. В., Фрайкин Г. Я., Швинка Ю. Э. О существовании у микроорганизмов фотохромной системы регуляции. Докл. АН СССР, 1973, 210i № 4, с. 971−974.
  66. .И., Гераськин С. А. Генетические основы радиорезистентности и эволюция. Москва, Энергоатомиздат, 1993,.-209 с.
  67. Дж. Практическая физика. М., 1971. — 246с.
  68. М.Н., Мирзаев М.Н.б Плеханова Н. Ю. и др. Проблемы фитоэнергетики растений повышенной урожайности. Львов, 1984. — 170с.
  69. .И., Моставников В. А., Рубинов А. Н., Хохлов В. Н. Регулирование функциональной активности клеток человека с помощью лазерного излучения. Докл. АН СССР, 1977, тю 236, № 4, с. 1007−1010.
  70. М.А., Усманский С. Р. Радиация и живая клетка. 1971, М.: Атомиздат, 96 с.
  71. О.А., Кару Т. Й., Фузиков Н. П., Карбишева Г. М. Летальное и мутагенное действие излучения ХеС1 лазера на клетки бактерий Escherichia coli. Радиобиология, 1987, том 27, № 3, с. 705−708.
  72. О., Кару Т. Действие красного и далекого красного низкоинтенсивного лазерного излучения на рост Escherichia coli.-Микробиология, 1987, т. 56, с. 393−397.
  73. ., Амиртаев К. Г., Красавин Е. А., Козубек С. Выявление lac» мутантов бактерий Eschericia coli методом глубинного посева. Сообщения ОИЯИ, Дубна, 1987, Р19−87−813.
  74. Ю.В. Математическая физика для биологов и медиков. М., Наука, 1963.-417 с.
  75. П.Д., Старцев Г. А., Шабалов В. В., Насыров Ю. С. О мутагенном действии лазерного облучения на семена Arabidopsis Thaliana (L) HEYNA.- Докл. AHCCCP, 1970, т. 2, с. 455−461.
  76. Г. Я., Верхотуров В. Н., Рубин Л. Б. Действие видимого света на клетки дрожжей. Вестн. МГУ, сер биол., 1973, 4, с.51−55.
  77. Г. Я., Бурчуладзе Т. Г., Поспелов М. Е., Рубин Л. Б. Механизм фотоинактивации дрожжевых клеток видимым светом. Докл. АН СССР, 1986, 291, № 6., с. 1502−1504.
  78. К.Г. Проблемы количественной радиобиологии: Пер с английского под редю В. И. Корогодина. М., Госатомиздат, 1967.- 335с.
  79. Л.Н., Землянухин А. А. Исследование воздействия видимого света на клетки дрожжей. Науч. Докл. Высшей шк. Биол. Науки., 1970, № 7, с.37−39.
  80. В.В., Добровинская О. Р., Эйдус JI.X., Корыстов Ю. Н. Межклеточные взаимодействия интерфазной гибели облученных тимоцитов. Исследование природы медиатора взаимодействия облученных тимоцитов.- Радиобиология, 1992, т.32, вып.1, с. 50−55.
  81. JI.X., Корыстов Ю. Н. Кислород в радиобиологии. М.: Энергоатомиздат, 1984. 276с.
  82. X.JI. О едином механизме инициации различных эффектов малых доз ионизирующих излучений.- Радиационная биология. Радиоэкология, 1996, т.36, вып.6, с. 874−882.
  83. С.П. Радиобиология человека и животных. Изд-во М, «Высшая школа 1977. -368с.
  84. С.П. Отечественная радиобиология. История и люди. -РАДЭКОН, Москва, 1997. 103 с.
  85. Alexander P. Quantitative differences between action of a and X- rays on lymphoma cells in vitro. — Brit. J. Radiol., 1962, v.35, № 42, p. 351−369.
  86. Amundson S.A., Chen D.J. Ionizing radiation-induced mutations of human cells with different DNA repair capacities. Adv. Space Res., 1996, 18(1−2), p. 119−126.
  87. Antushevic A.E., Bubnov V.P., Boiko B.N., Smirnova O.M., Petrov A.S., Reznikov L.L., Voskresensky M.A. Radioprotective effects of low intensity laser radiation. — All — union Symposium on Low — intensity Lasers in Medicine, 1991, Obninsk, Russia.
  88. Arends M.J., Morris R.G., amd Wyllie A.H. Apoptoses. The role of the endonuclease. American Journal of Photology, 1990, v. 136, № 3, March, p. 593 -608
  89. Arzumanyan G. M, Voskanyan K., S., Krasavin E.A.and Rzyanina A.V. Lethal and mutagenic effects of gamma-rays and alpha-particles on yeast cells. Abstracts of the 29-th Meeting of the European Society for Radiation Biology. 1998, Capri, Italy.
  90. Auerbach C. Mutation Research. Chapman & Hall, London, 1976.265p.
  91. Averbeck D. Mechanisms of repair and radiation- induced mutagenesis in higher eukaryotes. Cancer Radiother, 2000, Sep-Oct- 4(5), p.335−354.
  92. Azzam E.I., Raaphorst G.P. and Mitchel R.E. Radiation induced adaptive response for protection against micronucleus formation and neoplastic transformation in CH310T½ mouse embryo cells. Radiat. Res., 1994, v. 138 (Suppl), S28-S31.
  93. Baranovski Z., Hrebendo B., Cieslawska M., Division of Physarum mitochondria during starvation. Cell Biol. Int. Rep., 1991, v. 15, p. 197−204.
  94. Barandsen G.W. The influence of oxygen on damage to the proliferative capacity of cultured human cells produced by radiations of different LET. In: Cellular radiation biology. Baltimore, 1965, p. 331−335.
  95. Barendsen G.W. Effects of single and repeated low doses of ionizing radiations on the proliferative capasity of human cells in culture. — In Cellular radiation biology. Baltimore, 1965, p.469−473.
  96. Bermudez D., Carrasco F., Diaf F., Perez-de Vargas I. Germ cell DNA quantification after IR laser radiation. Andrologia, 1991, Jul-Aug, 23(4), p. 303 307.
  97. Bernstain C. Deoxyribonucleic acid repair in bacteriophage. -Microbiol. Rev., 1981, 45, p. 72−98.
  98. Billen D., Hewitt R.R., Lapthisopon T., Achey P.M. DNA repair replication after ultraviolet light or X-ray exposure of bacteria J. Bacterid., 1967, v. 94., № 5, p. 1538−2545.
  99. Black H.S., Okotie-Eboh G., and Gergus J. Immunobiology of lipid-modulated UV-carcinogenesis. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  100. Bloomfield V.A., Grothers D.M., Tinoco J. Physical chemistry of nucleic acids. N.Y., Haprer Row, 1974, r 297p.
  101. Boothman D.A., Meyers M., Odergard E. And Wang M. Altered G| checkpoint control determines adaptive survival responses to ionizing radiation.-Mutation Res., 1996, v.3 58, p. 171 -183.
  102. Bosi A. and Oliveri G. Variability of the adaptive response to ionizing radiation in humans. Mutation Res., 1989, v.211, p.13−17.
  103. Boussac A., Kuhl H., Rogner M., Rutherford A.W. Effect of near-infrared light on the S2-state of the manganese complex of photosaystem II from Synechococcus elongatus. -Biochemistry, 1998, Jun 23, 37(25), p. 8995−9000.
  104. Bresller S.E. The mechanism and the kinetics of reparation mutagenesis. Genetika, 1976, № 12, p. 153−160.
  105. Brockrath R., Ruiz-Rubio M. And Bridges B.A. Specificity of mutation by UV light and delayed photoreversal in umuC-defective Escherichia coli. K-12, a targeting intermediate at pyrimidine dimers. J.Bacteriol., 1977, 169, p. 1410−1416.
  106. Castellani A., Jagger J., Setlow R.B. Overlap of photoreactivation and liquid holding recovery in Escherichia coli B. Science, 1964, v. 143, № 3611, p. 1170−1171.
  107. Chandraskhar D, Van Houten B In vivo formation and repair of cyclobutane pyrimidine dimmers and 6−4 photoproducts measured at the gene and nucleotide level in Escherichia coli. Mutation Res., 2000, May30- 450 (1−2): p. 1940.
  108. Chandraskher D., Van Houten B. In vivo formation and repair of pyrimidine dimers and 6−4 photoproducts measured at the gene and nucleoted level in Escherichia coli. Mutat Res, 2000, May 30, 450(1−2): p.19−40.
  109. Cox C.J., Pearson G.J., Palmer G. Preliminary in vivo investigation of the effects of pulsed Nd: YAG laser radiation on enamel and dentine. Biomaterials, 1994, 15(14), p. 1145−1151.
  110. D’Aoust J.G., Martin W.G., Giroux J and Schneider H. Protection from visible light damage to enzyme and transport in Escherichia coli. Photochem. Photobiol., 1980, 31, p.» 471−478.
  111. Daniels L.L., Quickenden T.I. Does low-intensity HE-Ne laser radiation produce a photobiological growth response in Escherichia coli? -Photochemistry and Photobiology, 1994, 60(5), p. 481−485.
  112. Danno K., Sugie N. Effects of near-infrared radiation on the epidermal proliferation and cutaneous immune function in mice. Photodermatol Photoimunol Photomed, 1996, Dec, 12(6), p. 233−236.
  113. Danno K., Horio T., Immamura S. Infrared radiation suppresses ' ultraviolet B induced sunbraun — cell formation. — Arch. Dermatol. Res, 1992, v.284 (2), p.92−94.
  114. Defais M., Fauquet P., Rodman M. And Errera M. Ultravioletreactivation and ultraviolet mutagenesis of A,-phages in different genetic systems.-Virology., 1971, 43, p. 495−503.
  115. Dewey D.L., Haynes R.H. Heavy ion inactivation of Micrococcus radioaurans. Nature, 1966, v.209, № 5018, p.49−52.
  116. Djouadi F., Bastin J., Gilbert T., Rotig A., Rustin P., Marlet B. Mitochondrial biogenesis and development of respiratory chine enzymes in kidney cells: role of glucocorticoids. Am. J. Physiol., 1994, v. 267, p. 245−254.
  117. Dolling J.A., Boreham D.R., Bahen M.E., Mitchel R.E. Role of Rad9-dependent cell-cycle checkpoints in the adaptive response to ionizing radiation inyeasts Saccharomyces cerevisiae. Int. J. Radiat. Biol., 2000, Sep- 76(9), p. 12 731 279.
  118. Donnelly C.E. and Walker G. groE mutations of Escherichia coli are defective in umu DC dependent UV mutagenesis. Journal of Bacteriology, 1975, 11, p. 6117−6125.
  119. Duella R., Robinson F and Bedford J. Nonrandom Degradation of DNA in human leukemic cells during radiation — induced apoptoses. Canser Research, 1999, v. 59, August 1, p. 3712 — 3718.
  120. Duviau V., Beck I., Maurette M.T., Oliveros E. Reactivity of aminoacids and dipeptedes with singlet oxygen ('02 ('Ag)) in methanol and water. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  121. Edmunds L.N. Blue light photoreception in the inhibition and synchronization of growth and transport in the yeast Saccharomyces. — Blue Light Sindrome, Senger, M., Ed. Springer-Verlage, Berlin, 1980, 584 p.
  122. Epel B. and Butler W.L. cytochrome a3: destruction by light. Science, 1969, v.166, p. 621−623.
  123. Evens H.H., DeMarine D.M. Ionizing radiation -induced mutagenesis: radiation studies in Neurospora predictive for results in mammalian cells. Mutat. Res, 1999, Sep- 437(2), p.135−150.
  124. Fedoseeva G.E., Karu T.I., Lyapunova T.S., Pomoshnikova N.A., and Maeissel M.N. The activation of yeast metabolism with He-Ne laser radiation. I. Protein synthesis in various cultures. Lasers Life Sci, 1988, v. 5, p.27−32.
  125. Foote Christopher Mechanisms of photosensitized oxidation. Science, 1968, 29 November, vol. 162, p. 963- 970.
  126. Franklin W.A., Doetsch P.W. and Haseltine W.A. Structural determination of the ultraviolet light-induced thymine-cytosine pyrimidine-pyramidone 6−4. photo-product. Nucleic Acid Res., 1985, 16, p. 5317−5325.
  127. Frederic J. Effects de differentes longueurs d’oude du spectre visible sur des cellules vivantes cultivees in vitro. C.R. Soc. Biol., 1954, v.148, p.1678−1685.
  128. Friedberg E.C. DNA Repair. (Ed.) W.H.Freeman, New York, 1985.364p.
  129. Gamaleya N.F. Laser biomedical research in the USSR.- Laser Application in Medicine and Biology, v.3, Wolbarsht M.L., (Ed.) Plenum, New -York, 1977. -147p.
  130. Glickman B.W., Schaaper R.M., Haseltine W.A., Dunn R.L. and Brash D.E. The C-C 6−4. UV photoproduct is mutagenic in Escherichia coli.- Proc. Natl. Acad. Sci.USA., 1986,83, p.'6945−6949.
  131. Gow A.M., McDonald A.V., Pearson G.J., Setchel D.J. An in vitro investigation of the temperature rises produced in dentine by Nd: YAG laser light with and without water-cooling. -Eur. J. Prosthordont Restor Dent, 1999, Jun-sept, 7(2), p.71−77.
  132. Greppin H., Gouda S. Schorer E. Visible light action on Pseudomonas Fluorescence. Arch. Sei., 1965, v. 18, p. 646−648.
  133. Greppin H., and Gouda S. Lumisynthese chez Pseudomonas fluoressscens et sa nature adaptive. Arch.Sci., 1965, v. 18, p. 642−647.
  134. Gouda S and Schorer E. Action de la lumiere sur les colonies Pseudomonas fluoressscens. Mig, Arch. Sei, 1965, v. 18, p. 646−652.
  135. Gronqvist A., Wistrom J., Axner O., Monsten T.J. Bactericidal effect of pulsed 1,064 nm Nd: YAG laser light on Staphylococcus epidermidis is photothermal origin: an in vivo study. Lasers Surg. Med., 2000, 27(4), p. 336−340.
  136. Gudas L.G., Pardee A.B. Model for regulation of Escherichia coli DNA repair functions (rec A", lex «mutants).- Proc. Nat. Acad. Sei. USA, 1975, v. 72, № 6, p.2330−2334.
  137. Gurzadyan G.G., Ispiryan R.K. and Voskanyan K.Sh. Two-quantum photoprocesses in DNA under picosecond laser UV irradiation at 216 and 270 nm. -Photochem. Photobiol. B. Biology: 1991,11, p. 269−275.
  138. Gurzadyan G.G. and Ispiryan R.K. Efficiency of laser proteolysis of nucleic acids at 216 nm. Proc. Inc. Conf. On Lasers in the Life Sciences, 1990, June 20−23, China.
  139. Hall J., Angele S. Radiation, DNA damage and cancer. Mol. Med. Today, 1999, Apr (4), p. 157−164.
  140. Hamblin M.R., Soukos N.S. and Hasan T. Selective photoinactivation of gram positive and gram negative bacteria while sparing mammalian cells. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  141. P.V. & Gerutti P.A. Formation of products of the 5−6 dihydroxy dihydrotymine type by ultraviolet light in HeLa cells. -Biochemistry, 1977, 16, 12, p. 2791−2795.
  142. Harm W., Stein W. Zur dentung von maxima and sattigungs effecten bei dosis-effect-kurven fur strahleninduzierte mutation. Naturforchung., 1974, 115, p. 85−105.
  143. Harrison D.E. The regulation of respiration rate in growing bacteria. -Adv. Microb. Physiol., 1976, v. 14, p.243−249.
  144. Hatab M.A., Wittaker P.A. Isolating and characterization of respiration-deficient mutants from photogenic yeast Candida albicans. Ant. Van. Leewenhoek, 1992, v.61, p.207−219.
  145. Havawalt P.C. Normal replication of DNA after repair replication in bacteria. Nature, 1967, v. 214, № 5085, p. 269−270.
  146. Hei Т.К., Zhu L.X., Vannais D., WaLDREN C. A. Molecular analysis of mutagenesis by high LET radiation. Adv. Space Res., 1994, Oct- 14(10), p.355−361.
  147. Honigsman H. Sunlight theories and strategies for preventation of skin cancer. -Abstracts of the7-th Congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  148. Howard S.P., Park S.J., Coleman C.N. and Proce B.D. Suramin increases p53 protein levels but not activate the p53 —dependent Gj checkpoint. Clin. cancer Res. 1996, v.2, p. 269−276.
  149. Howard-Flanders P., Simson E., Hteriot L. The excision of thymine dimers from DNA filament formation and sensitivity to ultraviolet in E. coli K-12 -Mutation Res., 1974, 1,3, p. 219−225.
  150. Ikushima T. Radio-adaptive response: characterization of a cytogenic repair induced by low-level ionizing radiation in cultured Chines hamster cells. -Mutation Res., 1989, v.227, p. 241 -246.
  151. Ingledew W.T., and Poole R.K. The respiratory chines of Escherichia coli.-Microbiol. Rev., 1984, v. 48, p. 222- 229.
  152. Isildar M., Bakale G. Comparative lethal effects of uv and ionizing radiation in Ames tester strain of Salmonella. Radiat. Res., 1985, Sept- 103(3), p. 461−465.
  153. Itoh Т., Murakami H., Orihashi K., Sueda Т., Matsuura Y. The protective effect of low power He-NE laser against erythrocyte damage caused by artificial heart-lung machines. Hiroshima J. Med. Sci., 1996, Mar- 45(1), p. 15−22.
  154. Jagger J. Photoprotection from ultraviolet killing in Escherichia coli B. -J. Rad. Res., 1960, v. 19, № 4, p. 521−539.
  155. Jagger J., Wise V.C., Stafford R.S. Delay in growth and division induced by near ultraviolet radiation in Escherichia coli B and its role on photoprotection and liquid holding recovery. Photochem. Photobiol., 1964, v.3 № 1, p. 11 — 24.
  156. Jagger J. Photoreactivation and photaprotection. Photochem and Photobiol, 1964, v.3, № 3, p.451−461.
  157. Jagger J. Near- uv radiation effects on microorganisms.- Photochem. Photobiol., 1981, v.34, p.761−768.
  158. Jagger J, Stafford R. Evidence for two mechanisms of photoreactivation in Eschericia coli B. Biophys. J., v. 5, N. l, p. 75−88.
  159. Joiner M.CC. Induced radioresistance: An overview and historical perspective. Int. J. Radiat. Biol., 1994, v.65, p. 79−84.
  160. Joyce K.M., Downes C.S., Hannigan B.M. Radioadaptation in Indian muntjac fibroblast cells induced by low intensity laser irradiation. -Mutation Res., 1999, Sep 13, v. 435 (1), p. 35−42.
  161. Kada T., Brun E., Marcovich H. Comparasion de l’induction de mutants prototrophes per les rayons- X et UV cher „Escherichia coli“ B/r try». -Ann. Inst. Pasteur., 1960, v.99, № 4, p. 761−768.
  162. Kanofsky Jeffrey R. Quenching of singlet oxygen by human red cell ghosts. Photochemistry and Photobiology, 1991, vol. 53, № 1, p. 93−99.
  163. Karu T. Photobiology of low-power laser effects. Health Physics. 56 1989, p. 692−704.
  164. Karu t., Pyatebrat L., Kalendo G. Irradiation with He-Ne laser increases ATP level in cells cultivated in vitro. Journal of Photochemistry and Photobiology, B. Biology, 1995, Mar., 27(3), p. 219−229.
  165. Karu Т., Tiplova O., Esenalev R., Letokhov V. Two different mechanisms of low-intensity laser photobiological effects on Escherichia coli. -Journal of Photochemistry and Photobiology. B. Biology, 1994, 24(3), p.155−161.
  166. Karu T.I., Letokov V.S., Lobko V.V. Biostimulation of HeLa cells by low-intensity visible light. IV. Dicromatic irradiation. II Nuovo Cimento D5, 1985a, p.483−496.
  167. Karu T. Primary and secondary mechanisms of action of visible to near -IR radiation on cells. Photochem Photobiol B, 1999, Mar, 49(1), p. 1−17.
  168. Karu T.I., Kalendo G.S., Letokhov V.S., and Lobko V.V. Biostimulation of HeLa cells by low intensity visible light. II Stimilation of DNA and RNA synthesis in a wide spectral range. U Nuovo Cimento D, 1984, v.48, p. 222−228.
  169. Karu T. The Science of Low Power Laser Therapy. Gordon and Breach Sci, Publ., London, 1998, — 214p.
  170. Karu T.I., Bakeeva L.E., Manteifel V.M. Could monochromatic light of visible spectral region have genetic effects? Photobiology 1999, 1-th Internet conference of the European Society for Photobiology.
  171. Kearns David R. Physical and Chemical properties of singlet molecular oxygen. Chemiccal Reviwes, 1971, v.71, № 4, p. 395 — 427.
  172. Kelland L.R., Moss S.H., Davis D.J.G. An action spectrum for ultraviolet radiation induced membrane damage in E. coli K-12. — Photochem. Photobiol., 1983, v. 37, № 3,'p. 301−306.
  173. Keiner A. Effect of visible light on the recovery of Streptomyces grieus conidia from ultraviolet irradiation injury. Proct.Nat.Acad.Sci, USA, 1949, v.35, № 2, p.73−79.
  174. Keyin M., Allen James M., and Hannigan M. B. Radioadaption in an Indian Muntjac Fibroblasts cell line conditioned with low intensity laser irradiation. -Abstracts of the 7-th congress of the European Socaty for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  175. Kiefer J., Schreiber A., Gutermut F, Koch S, Schmidt P. Mutation induction by different tips of radiation at the Hprt locus.- Mutat Res, 1999, Dec 17- 431 (2), p. 429−448
  176. Kifer J, Stoll U., Scheinder E. Mutation induction by heavy ions. Adv. Space Res. 1994, Oct- 14(10), p. 257−265.
  177. Kim I.G., Oh T.J. SOS induction of the recA gene by UV-, gammairradiation and mitomicin C mediated by poliamnes in Escherichia coli K-12. -Toxocol Lett., 2000, Jul 27, 116 91−2), p.143−149.
  178. Kjeldstand B. Different photoinactivation mechanisms in Propionebacterium acnes for near ultraviolet and visible light. — Photochem. Photobiol., 1987, v.46, p. 363−647.
  179. Kochevar E.I. and Buckly L.A. Photochemistry of DNA using 193 nm excimer laser radiation. Photochem. Photobiol., 1971, 51, p. 527−532.
  180. Kochevar I. E., Lynch M.C., Zhuang S., Lambert Ch. Singlet oxygen, but not oxidizing radicals, induced apoptoses in HL-60 cells. Photochemistry and photobiology, 2000, v.72, Iss. 4, p. 542−546.
  181. Kohli R., Kumar Gupta P., and Dube A. Helium-neon laser preirradiation induces protection against UVC radiation in wild -type E. coli strain K 12 AB 1157. Radiation Research, 2000, v. 153, № 2, p. 181−185.
  182. Kolari P.J., Airaksinen O. Poor penetration of infrared and heliumOneon low power laser light into the dermal tissue. Acupuncture & Electr-Therapeutics Research, 1993, 18(1), p. 17−21.
  183. Kolesnikova A.I., Kubasova T., Konoplyannikov A.G., Koteles G.J. Cellular alterations upon IR (890 nm) exposure, in vivo. Phatol Oncol Res, 1998, v. 4(1), p. 22−26.
  184. Konig K., Liang H., Berns M.W., Tromberg B.J. Cell damages by near -IR microbeams. Nature, 1995, v.377, 7 September, p.20−21.
  185. Korystov Yu. N., Dobroviinskaya O.R., Shaposhnikova V.V., Eidus L.Kh.- Radiation Res., 1993, v. 134, p. 301−306.
  186. Krinsky I., Grey T. And Postgate J. Cellular damage initiated by visible light in the survival of vegetative microbes. Cambridge University Press, Cambridge, 1976, — 209 p. •
  187. Kuluncsics Z., Pedriz D., Sage E. Distribution of DNA photolesions induced by UVA radiation and other ultraviolet wavelengths.- Abstracts of the 7-th congress of the European Socaty for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  188. Kunz B.A. an
  189. Langhoff H., Wolf V., Heise H, Schulz U., Gross G. P53 dependent apoptosis induced by UV radiation. -Abstracts of the7-th Congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  190. Large C., Teixeria Pc, Leito AC Non coherent visible and infrared radiation increase survival to UV (254 nm) in Escherichia coli K12. J.- Photochem Photobiol, B, 200, Feb- 54(2−3), p. 155−161.
  191. Lengly R.E., Palayoor S.T., Coleman C.N. and E.A. Bump. Modification of radiation induced apoptosis. Radiation Res., 1993, v. 136, p. 320−326.
  192. Lijima K., Shimoyama N., Shimoyama M., Mizuguchi T., Tamura K. Do low- power lasers change phase transition temperature of dipalmitoyl phosphatidycholine (DPPC) membrane? J. Clin. Laser Med Surg, 1993, Aug- 11(4), p.191−195.
  193. Little J.B. Radiation carcinogenesis. Carcinogenesis, 2000, Mar, 21(3), p. 397−404.
  194. Liu H., Hewitt S.R., Hays J.D. Antagonism of ultraviolet-light mutagenesis by the methyl-directed mismatch-repair system of Esherichia coli.-Genetics, 2000, Feb, 154 (2), p. 503−512
  195. Liu H., Hewitt S.R., Hays J.B. Antagonism of ultraviolet light mutagenesis by the methyl-directed mismatch-repair system of Escherichia coli. -Genetics, 2000, Feb, 154(2), p.503−512.
  196. Lock B.R., and Stribunskie L. Dual modes of death induced by etoposide in human epithelial tumor cells allow Bcl-2 to inhibit apoptosis without affecting clonogenic survival. Cancer Res., 1996, v. 56, p. 4006−4012.
  197. Lonskaya I. A, Afanasev V.N., Pechatnikov V.A., Dolgachev I.A., Nokolaeva N.N. Thymcyte apoptosis induced and suppress by UV radiation. -Abstracts of the7-th Congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  198. Lubart R., Fredman H., Levinshal T., Lavie R., Breitbart H. Effect of light on calcium transport in bull sperm cells. Journal of Photochemistry and Photobiology, B. 1992, Sept 15, 15(4), p.334−341.
  199. Large C., Teixeria P., Leito A.C. Non -coherent visible and infrared radiation increase survival to UV (254 nm) in Escherichia coli K12. J. Photochem Photobiol B 200, Feb- 54(2−3), p. 155−161.
  200. Lyman J.T., Haynes R.H. Recovery of yeast after exposure to densely ionizing radiation. Rad. Res., 1967, suppl.7, p. 222−230.
  201. Lyman J.T., Haynes R.H., Tobias C.A. Recovery of yeast following heavy ion irradiation. Rad.'Res., 1963, v. 19, № 1, p. 237−243.
  202. Mackemess S.A.-H., Surplus S.L. Jordan B.R. and Thomas B. Role of membrane damage in the effects of ultraviolet-B (UV-B) radiation on photosynthetic genes. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  203. Macmillan J.D., Maxvell W.A., Chichester C.O. Lethal photosensitization of microorganisms with light from a continuous wave gas laser. -Photochem. Photobiol., 1966, v.45, p.555−559.
  204. Markowska A., Robuflat P., Gottardo G., Mazzochi G., Nussdofer G.G. Age- dependent changes in the function and morphology of rat adrenal zone fisiculta. -Histol.- Histopathol., 1994, v.9, p.297−220.
  205. Martignioni K.D., Haselbacher I. Inactivation of bacteriophage lambda by combined X-ray and uv — light exposure. Inter. J. Radiat. Biol., 1979, v. 35, p. 441−447.
  206. Matheson I.B.C. and Lee John. Chemical reaction rates of amino acids with singlet oxygen. Photochemistry and Photobiology, 1979, vol. 29, p. 879−881.
  207. Matheson I.B.C. and Lightner D.A. Oxodipyrromethenes as reactive singlet acceptors. Measurment of their chemical reaction rates by laser flash photollysus technique. Photochemistry and Photobiology, 1979, vol. 29, p. 933−935.
  208. Matheson I.B. The absolute value of the reaction rate constant of bilirubin with singlet oxygen in D20. Photochemistry and Photobiology, 1978, vol.29, p. 875- 878.
  209. McCuff P., Bell E. The effect of laser energy radiation on bacteria. -Med. Biol. Illus., 1966, v.16, p. 191−194. '
  210. McGregor W.G. DNA replication, and UV mutagenesis- J Investing Dermatol Symp Proc, 1999, Sept- 4(1), p. 1−5.
  211. McKelevey V.J., Keegan A.L., Allen J.A. Induction of DNA damage by low level laser irradiation in Friend mouse erythroleukemia cells.- Mutation Res., 1992, v.271, p. 131−38.
  212. McLaren A.D., Shugar D., Photochemistry of protein and nucleic acids. Oxford, Pergamon Press, 1964, — 364p.
  213. Meezava H., Vatsuura T., Suzuke K. Killing of bacteriophage Tj by irradiation in a dry state with synchrotron orbital radiation. Monochromatic 122-nm and 254-nm light. J. Radiat. Res., 1980, v. 21, p.126−136.
  214. Miguel A.G. and Tyrrell R.M. Induction of oxygen-dependent lethal damage by monochromatic UVB (313) radiation: strand breakage, repair and cell death. Carcinogenesis, 1983,4, p. 375−380.
  215. Miller M. J., and Gennis R.B. The purification and characterization of the cytochrome d terminal oxidase complex in the Escherichia coli aerobic respiratory chain. J. Biol. Chem., 1983, v.258, p.9159−9164.
  216. Mitchel D.L., Haipek C.A. and Clarkson J.M. 6−4. photoproducts are removed from the DNA of UV- irradiated mammalian cells more efficiently than cyclobutane pyrimidine dymers.- Mutat. Res., 1984, 143, p. 109−112.
  217. Mitra Gopa. Detection of apoptotic cells using the apoptosis detection system, fluorescein. Promega Notes Magazine, 1996, № 57, p. 10−17.
  218. Miyabe I, Zhang Q.M., Kano Y., Yonei S. Histidine-like protein HU is requed for rec A gene-dependent DNA perair and SOS induction pathways in UV-irradiated Escherichia coli. Int J. Radiat Biol, 2000, Jan, 76 (1), p. 43−49
  219. Moor A.C.E. Signaling pathways in cell death and survival after photodinamic therapy.'- Journal of Photochemistry and Photobiology D: Biology, 2000, v.57, p. 1−13.
  220. Mortimer R., Brustad T. and Cormack D. Influence of linear energy transfer and oxygen tension on the effectiveness of ionizing radiations for induction of mutations and lethality in Saccharomyces cerevisiae. Radiation Res., 1965, V. 26, p. 465−482.
  221. Mount D.W. and Kosel C. Ultraviolet light-induced mutation in UV-resistant, thermosensitive derivatives of lex A-srain of Escherichia coli K-12. Mole. Gen. Genet., 1975, 136, p. 95−106.
  222. Moyes C.D., Mathieu-Castello O.A., Tsushuya N., Flibrun C., Handsford R.G. Mitochondrial biogenesis during cell differentiation. — Am. J. Phys., 1997, v.272, p. 1345−1351.
  223. Myasnik M. N., Morozov I.I. The phenomenon of photoreactivation in bacteria E. coli irradiated by ionizing radiation. Inter. J. Radiat. Biol., 1977, v.31, p. 95−98.
  224. Miyabe I, Zhang Q.M., Kano Y., Yonei S. Histidine-like protein HU is requed for rec A gene-dependent DNA perair and SOS induction pathways in UV-irradiated Escherichia coli. Int J. Radiat Biol, 2000, Jan, 76 (1), p. 43−49
  225. Moor A.C.E. Signaling pathways in cell death and survival after photodinamic therapy. Journal of Photochemistry and Photobiology D: Biology, 2000, v.57,p. 1−13.
  226. Mortimer R., Brustad T. and Cormack D. Influence of linear energy transfer and oxygen tension on the effectiveness of ionizing radiations for induction of mutations and lethality in Saccharomyces cerevisiae. Radiation Res., 1965, V. 26, p. 465−482.
  227. Mount D.W. and Kosel C. Ultraviolet light-induced mutation in UV-resistant, thermosensitive derivatives of lex A-srain of Escherichia coli K-12. Mole. Gen. Genet., 1975, 136, p. 95−106.
  228. Moyes C.D., Mathieu-Castello O.A., Tsushuya N., Flibrun C., Handsford R.G. Mitochondrial biogenesis during cell differentiation. Am. J. Phys., 1997, v.272, p. 1345−1351. •
  229. Myasnik M. N., Morozov I.I. The phenomenon of photoreactivation in bacteria E. coliirradiated by ionizing radiation. Inter. J. Radiat. Biol., 1977, v.31, p. 95−98.
  230. Myasnik M.N., Morosov I.I., Derevyanko R.I. The photoreactivable component in the mutagenic action of ionizing radiation. Inter. J. Radiat. Biol., 1980, v. 37, p.85−88.
  231. Nazova T., Yanamoto T. and Natano M. Infrared magnetic circular dichroizm of mioglobin derivatives. Biochem. Biophys. Acta., 1976, v.477, p. 2835.
  232. Nelson G.A., Schubert W. W., Marshal T.M., Benton E.R. and Bentron E.V. Radiation effects in Caenorhabditis elegans, mutagenesis by high and low LET ionizing radiation., Mutation Res., 1989, V.212, p. 181−192.
  233. Nitzan Y., Ashkenaze H., and Balzam-Sudakevitz A. Photoinactivation of Acinetobacter Baumannii by various photosensitizers in different environments. -Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  234. Nondback K., Auerbach C. Advances in Radiobiology. Ed. G.C. Hekesey, 1957.-234 p.
  235. Okuda A. Inhibition of the uv-ionizing radiation synergism in Escherichia coli B/r by liquid holding between the two irradiations. Photochem. Photobiol., 1973, v. 18, p. 335 -337.
  236. Oliviery G., Bodycote J. and Wolff S. Adaptive response of human lymphocytes to low concentration of radioactive thymidine. Science, 1984, v.223, p. 594−597.
  237. Oshiro T., Calderhead R. G- Low Level Laser Therapy: A practical Introduction.- Chichester- New-york, 1988. -180 p.
  238. Pandey S., Walker P.R., and Sikorska M. Separate pools of endonuclease activity are responsible for unternucleosomal and high molecular mass DNA fragmentation during apoptosis.- Biochem. Cell Biol. 1994, v.72, p. 625−629.
  239. Parado C., Carrillo de Albornoz F., Perez de Vargas I A quantitative investigation of microvascular changes in the thyroid gland after infrared (IR) laser radiation. Histol Histopopathol, 1999, Oct, 14(4), p. 1067−1071.
  240. Passarella.S. Helium-neon laser biosystem interaction: experimental data with no orthodox explanation. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  241. Patric M.H., Haynes R.H. Dark recovery phenomena in yeast. II. Conditions that modify the recovery process. Rad. Res., 1964, v.23, № 4, p. 564 579.
  242. Peak M.J., Peak J.G., Moehring M.P. and Webb R.B. Ultraviolet actio spectra for DNA dimer induction, lethality, and mutagenesis on the UVB region. Photochem. Photobiol., 1984,40, p. 613−620.
  243. Peack T.T., Johnson R. and Rasumussen D. A system f mutationmesearement in mammalian cells: Application to y irradiation. Proc.Nat.Acad.Sci.USA, 1997, v.94, February, p. 1218- 1223.
  244. Philip A., O’Brien, James A. Houghton. Photoreactivation and excision repair of UV induced pyrimidine dimers in the unicellular cyanobactrium Gleocapsa Alpiccola (Synechocystis 6308). Hhotochem. Photobiol., 1982, v. 35, № 3, p. 359 364.
  245. Pimenova M.N., Grichyshkina N.N., Asova L.G., Semenova E.V., Melnikova S.I. Practice of Microbiology. Prod. Moscow University, 1983, p. 137 139.
  246. Polard E.C., Person S., Rader M. And Fluke D.J. Relation of ultraviolet light mutagenesis to a radiation-damage inducible system in Escherichia coli. -Radiation Res., 1989, 72, p. 519−532.
  247. Poole R.K., Scott R.I., and Chance B. Low-temperature spectral and kinetic properties in Escherichia coli K-12 grown at lowed oxygen tension.-Biochem. Biophys. Acta, 1980, v.591, p.471−477.
  248. Poole R.K. Is energy metabolism in the prokaryotic cell cycle manifestly caused to a clock? Cell Cycle Clocks, Edmund L.N., Ed., Marcel Dekker, New York, 1984, — 326 p.
  249. Protic-Sabejic M., Tuteja N., Munson P.J., Hauser J., Kramer K.H. and Dixon K. UV light-induced cyclobutane- pyrimidine dimers are mutagenic in mammalian cells. Mol. Cell. Biol., 1986,6, p. 3349−3356.
  250. Puck T.T., Johnson R., and Rasumussen. A system for mutation measurement in mammalian cells: Application to y irradiation. Proc.Nat.Acad.Sci. USA, 1997, v.94, February, p. 1218−1223.
  251. Ranby B. and Rabek J.F. Singlet Oxygen. Wiley Interscience. Chichester, 1979, — 247p. .
  252. Reinke V. And Lozano G. Different activation of p53 targets in cells treated with ultraviolet radiation that undergo both apoptosis and growth arrest. -Radiation Research, 1197, v. 148, p. l 15−122.
  253. Reznikov L.L., Reznikov L.Ya. Murzin A.G. On a possible model for investigation of low-intensity laser radiation. — In: Model systems in medical and biochemical study. Ed. V.A. Dadaly, Leningrad, LSGMI, 1989, p.91−94.
  254. Reznikov L.L., Khaycev N.V., Petrov I.P., Vasilev A.G. On the problem of the mechanism of low-power laser irradiation. III Scientific Conference on Vital Problems of Sanitary Chemistry and Toxicology. 1992, St. Petersburg, Russia.
  255. Roberts R.B., Aldous E. Recovery from ultraviolet irradiation in E. coli. J. Bacteriol., 1949, v. 57, p.363−368.
  256. Romanova N.A., Brovka L.Tu. Sepul’ved-Bessera M.A., Ugarova N.N. Change in adenine nucleotide poll in E. coli 1257 bacterial cells under the low intensity He-Ne laser. Biokhimia, 1993, Mar., 58(3), p.376−384.
  257. Rossetti V. Variations of serum corticosterone and brain lactate in rats following He-Ne laser irradiation or simulated experiment. Abstracts of the 7-th congress of the European Sociaty for photobiology. 1997, Stresa, Italy.
  258. Roudyk S.N., Losev A.P.and Aghion J. Photosensitization of1 Ag 02 by chlorophylls, pheophytins and metal- substated chlorophylls. Abstracts of the 7-th congress of the European Society for Photobiology, 1997, Stresa, Italy.
  259. Rounds D.E. and Olson R.S. The effect of intense visible light on cellular respiration. Life Sci., 1967, v.6, p. 359−366.
  260. Rounds D.E., Olson R.S. and Johnson F.M. The effect of laser on cellular respiration Z. Zellforsch, 1968, v.87, p. 193−201.
  261. Salet C., Passarella S., Quagliarello E. Effects of selective irradiation on mammalian mitochondria. — Photochem. Photobiol., 1987, v.45, p.433−438.
  262. Samson L. And Cairns J. A new pathway for DNA repair in E.coli. -Nature, 1977, v. 267, p.281−283.
  263. Sankaranarayanan K., van Duyn A., Loos and Natarayan Adaptive response of human lymphocytes to low level radiation from radioisotopes or X-rays. — Mutation Res., 1989, v.211, p.7−12.
  264. Schwartz j. L., Jordan R., Juan Sun, Hongbau Ma, Hseib A.W. Dose-dependent changes in the spectrum of mutations induced by ionizing radiation. -Radiation Res., 2000, v. 153, p.312−317.
  265. Schwartz J. L., Jordan R., Juan Sun, Hongbau Ma, Hseib A.W. Dose-dependent changes in the spectrum of mutations induced by ionizing radiation. -Radiation Res., 2000, v. 153, p.312−317.
  266. Senger H. The effect of blue light on plants and microorganisms.-Photochem, Photobiology, 1982, 35, p.911−916.
  267. Sentman C.L., Shutter J.R.,.Hockenbery D., Kanagava O, Korsmayer S.J. Bcl-2 inhibits multiple forms of apoptosis bur not negative selection in thymocytes. Cell, 1991, v. 67, p. 879−888.
  268. Setlow R.B., Setlow J.K. Annual Review in Biophysics and Bioengineering / Ed. M.F. Morales, W. A. Hagins, L. Stryetr, W.S. Yamato-Palo Alto: — Annual Reviews Inc., 1972, 1, p. 293−346.
  269. Shadley J.D. and Dai G. Cytogenetic and survival adaptive responses in Gj phase human lymphocytes. Mutation Res. 1992, v.265, p.273−281.
  270. Shafirovich V, Dourondin A., Luneva N.P., Kirigin F., Geocinov N.E. Multiphoton near-infrared femtosecond laser puse-induced DNA damage with and without the photosensitizer proflavine. Photochem. Photobiol, 1999, Mar, 69(3), p. 265−274.
  271. Shimmamura S., Masumuizu T, Nakai Y., Uramays K., Shimazaki J., Bissen-biyajiama H., Kohno M., Tsubota K. Excimer laser-induced (UV) hydroxyl radical formation and keratocyte death in vitro. Invest Opthalmolol Vis Sci, 1999, May, 40(6), p. 1245−1249.
  272. Shindle A., Schindl M., Pernerstorfer-Schon H., Schindl L. Low -intensity laser therapy: a review. — J. Investig. Med., 2000, Sep- 48 (5), p. 312 326.
  273. Shiroya T., McElroy D.E., Sutherland B.M. An action spectrum of photoreactivating enzyme from sea urchin eggs. Photochem. Photobiol., 1984, v. 40, № 6, p. 749−751.
  274. Smith K.C., Martignoni K.D. Protection of Escherichia coli cells against the lethal effects of ultraviolet and X irradiation by prior X -irradiation: A genetic and physiological study. — Photochem. Photobiol., 1976, v. 24, p.515−523.
  275. Somose Z. Radiation response of cell organelles. Micron, 2000, Apr, 31(2), p. 165−181.
  276. Stouthammer A.H. and Battenhaussen C.W. Influence of 2,4-dinitrophenol on the maximum specific growth rate and the respiration rate of chemostst cultures of Paracoccus denitrificans. FEMS Microbiol. Lett., 1981, v. 10, p.33−42.
  277. Sucorg L, Shengli Y., and Dong Y. Biological effects of N2 laser on bacterium. Proc.Conf. Lasers Electro-Optics Int.Quant.Electron.Conf., 1990, Anacheim, CA.
  278. Sutherland J.C., and Griffin K.F. Absorption spectrum of DNA for wavelengths greater than 300 nm. Radiat. Res., 1981, v.86, p. 399−40.
  279. Theiler R. Effect of infrared and visible light on 2-azidoanthraqunone in the QA binding site of photosynthetic reaction centers. An unusual mode of activation of photoaffinity label. Biol Chem Hoppe Seyler, 1986, Dec, 367(12), p. 1197−1207.
  280. Thower A.H., Houghton P.E. Effect of laser irradiation on the growth and development of fetal mouse limbs in an in vitro model Lasers Surg. Med., 1999, 24(4), p. 285−295.
  281. Tiphlova O. and Karu T. Action of low-intensity laser radiation on Escherichia coli. Critical Reviews in Biomedical Engineering., 1991, 18, Issue 6, p. 387−411.
  282. Tsai J.C., Kao M.C. J. The biological effects of low laser irradiation on cultivated rat glial and glioma cells. J. Clin. Laser Med. Surg. 1991, Feb 9(1), p. 3541.
  283. Tyrell R.M. Radiation synergism and antagonism. Photichem. PhotobioK Rev., 1978, v. 3, p. 35−113.
  284. Vacca R.A., Marra E., Quagliarello E., Greco M. Activation of mitochondrial DNA replication by He-Ne laser irradiation. Biochemical & Biophysical Research Communications. 1993, Sept. 15,195(2), p. 704−709.
  285. Van Breugel H. H, Bar P.R. Power density and exposure time of He-Ne laser irradiation are more important than total energy dose in photo-biomodulation of human fibroblasts in vitro. Lasers in Surgery & Medicine, 1992, 12(5), p.528−537.
  286. Van Brugel H.H., Bar P.R. He-Ne laser irradiation affects prilifereation of cultured rat Scwann cells in a dose-dependent manner. Journal of Neurucytology, 1993, Mar, 22(3), p. 185−190.
  287. Vega Nunez E., Alvarez A.M., Menendez-Hurtado A., Santos A., Perez-Castillo A. Neuronal mitochondrial morphology and transmembrane potential are severely alliterated by hypotirosim during brain development. — Endocrinology, 1997, v.138, p. 3771−3778.
  288. Vellejo C.G., Lopez M., Ochoa P., Manzanares M., Garesse R. mitochondrial differentiation during the early development of the brine shrimp Artemia tranciscana- Biochem. J., 1996, v.314, p.505−510.
  289. Villarino A., Bouvet O, Regnault B., Delautre S., Grimont P.A. Cellular activities in ultra-violet killed Escherichia coli. Int J Food Microbiol, 2000, Apr, 55(1−3), P.245−247.
  290. Vinicombe D.A., Moss S.H., Davis D.J.G. Photoreactivation of -radiation damage in Escherichia coli as evidence of the nature of oxygen -enhancement effect. Inter.J. Rad. Biol., 1978, v.33, № 5, p. 483−492.
  291. Walker P.R., and Sikorska M. Endonuclease activities, cromatin structure, and DNA degradation in apoptosis. Biochem. Cell Biol. 1994, v. 72, p.615−623.
  292. Webb R.B., Brown M.S. Oxygen dependence of sensitization to 254-nm radiation by prior exposure to 365-nm radiation in strains of Eschereichia coli K-12 differing in DNA repair capability. Radiat Res., 1979, v. 80, p. 82−91.
  293. Webb R.B., and Brown N.S. Sensitivity of strains of E. coli differing in repair capability to far UV, near UV and visible radiations.- Photochem. Photobiolo., 1976, p.425−429.
  294. Webber B.B. and Serres F.J. Induction kinetics and genetic analysis of X-rey -induced mutations in the AD-3 region of Neurospora Crassa.- Genetics, 1965, v.53, p.430−437.
  295. William C. Dewey, Clifton C. Ling, Raymond E. Meyn. Radiation induced apoptosis: relevance to radiotherapy. Int. J. Radiation Biol. Phys. 1995, V.33, № 4, p. 781−796.
  296. Witkin E.M., Wermundsen I.E. Targeted and untargeted mutagenesis by various inducers of SOS function in Escherichia coli. Gold Spring Harbor symp. Quant. Biol., 1979,43, p. 881−886.
  297. Witkin E.M. Ultraviolet mutagenesis and inducible DNA repair in Escherichia coli.- Bacterioi. Rev., 1976,40, p. 869−907.
  298. Witkin E.M. Radiation-induced mutations and their repair. Science, 1966, 152, p. 1345−1353.
  299. Witkin E.M. Ultraviolet mutagenesis and the SOS response in Escherichia coli. A personal perspective. Envorinmental and Molecular Mutagenesis., 1971, 14, sup. 6, p. 13−34.
  300. Wolf S. Faila Memoral Lecture: IS radiation all bad? The search for adaptation. Radiat.Res., 1992, v. 131, p. 117−123.
  301. Wood R.D., Skopet T.R. and Hutchinson F. Changes in DNA base sequence induced by targeted mutagenesis of lambda phage DNA by ultraviolet light. J. Mol. Boil., 1984, 173, p. 273−291.
  302. Wylle A.H. Cell death in biology and photilogy / Eds. J.D. Bowen, R.A. Lokshin, N.Y. London: Champan and Hall, 1981. — 357p.
  303. Xiang Yang. A study of the mutagenic effect of such physical factors as laser on E. coli and of the auxotrophic analysis.- Proc. Inc. Conf. On Lasers in the Life Sciences, 1990, June 20−23, China.
  304. Yin D.X. and Schimke R.T. SCL-2 expression delays drug induced apoptosis but not increase clonogenic survival after drug treatment in HeLa cells. -Cancer Res., 1995, v.55, p. 4922−4928.
  305. Yonishrouach E., Resnitzky D., Lotem J., Sachs L., Kimchi A., Oren M. Wild type p53 induces apoptosis of myeloid leukemia cells that is inhibited by interleukin. Nature, 1991, v. 352, p. 345−347.
  306. Yosuke Ejima, Tsugio Shiroya. Photoreactivation associated with morphological abnormality in sea urchin embryos induce by ultraviolet irradiated sperm. Photochem. Photobiol., 2000, v. 35, № 2, p. 175−180.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!