Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Современные возможности цитологического метода в исследовании плевральных и перитонеальных экссудатов

Диссертация: Современные возможности цитологического метода в исследовании плевральных и перитонеальных экссудатов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые в результате комплексного исследования экссудатов из серозных полостей с применением таких современных методик цитологической диагностики, как иммуноцитохимия и лазерная проточная цитофлуориметрия, стало возможным объективно охарактеризовать клеточный состав выпота, определить их роль и значение в уточнении характера жидкости. Современные высокотехнологичные методики обнаруживают… Читать ещё >

Современные возможности цитологического метода в исследовании плевральных и перитонеальных экссудатов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
  • Глава 2. Материал и методы
  • Глава 3. Цитологическое и иммуноцитохимическое исследование специфических экссудатов
    • 3. 1. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке молочной железы
    • 3. 2. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке легкого
    • 3. 3. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке желудка
    • 3. 4. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке яичников
    • 3. 5. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при колоректальном раке
    • 3. 6. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке эндометрия
    • 3. 7. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при раке печени и почек
    • 3. 8. Цитологическое и ИЦХ исследование экссудатов при мезотелиоме
    • 3. 9. Цитологическое и ИЦХ исследование при псевдомиксоме
    • 3. 10. Метастатическое поражение серозных оболочек при некоторых редких опухолях
  • Глава 4. Исследование экссудатов при невыявленном первичном очаге
  • Глава 5. Оптимизация исследования экссудатов применением некоторых новых методов исследования
    • 5. 1. Проточная цитофлуориметрия при исследовании экссудатов
    • 5. 2. Метод флуоресцентной иммуноцитохимии

Злокачественные заболевания довольно часто сопровождаются выпотом в плевральную и брюшную полости. У мужчин по частоте обнаружения опухолевых клеток в экссудатах первое место занимает рак легкого (49%), затем лейкозы и злокачественные лимфомы, включая лимфогранулематоз (21%), рак органов пищеварительного тракта (7%) и мочеполовой системы (6%). У женщин плевральные и перитонеальные экссудаты встречаются в 2 раза чаще, особенно при прогрессировании рака молочной железы (37−50%) и рака яичников (20%), у 8% больных развитие экссудата связано со злокачественными лимфомами и у 4% - с опухолями пищеварительного тракта.

С учетом гистологической структуры первичной опухоли выпоты в плевральную и брюшную полости диагностируют, главным образом, при метастазах железистого рака: у мужчин — в 66% и у женщин — в 82% наблюдений. При плоскоклеточном раке достаточно редко возникают метастатические экссудаты: при раке легкого — у 4% мужчин и у 2% женщинпри опухолях неэпителиальной природы — в 22% и 14% наблюдений соответственно (Глузман Д.Ф. и соавт., 2003).

Цитологическое исследование является единственным методом диагностики злокачественной природы экссудата. Достоверность цитологического исследования экссудатов по данным литературы составляет от 64 до 96% (Климанова З.Ф., 1965 г., Долгов В. В., Шабалова И. П. и соавт.,.

2006, Shidham V.B., Atkinson B.F., 2006). При диссеминации рака по серозному покрову клетки рака обнаруживаются в 95% наблюдений (Климанова З.Ф., 1965 г.). Отсутствие клеток опухоли в экссудативной жидкости при тщательном исследовании многочисленных препаратов (10−15) при неоднократных исследованиях с наибольшей долей вероятности позволяет отрицать диссеминацию опухоли.

Однако, несмотря на высокую достоверность в некоторых случаях существуют объективные трудности дифференциальной диагностики реактивно-воспалительных выпотов, метастатических поражений серозных оболочек и мезотелиомы. Многие авторы указывают, что причиной затруднений трактовки клеток как злокачественных являются, главным образом, мезотелиальные клетки. Пролиферирующие мезотелиальные клетки, подвергшиеся изменениям регенеративного или дегенеративного характера, располагаясь в виде пластов, симпластов, железисто-подобных структур и изредка в виде образований подобных сосочкам, весьма сходны со структурами, образующимися при раке. В жидкой среде все клетки, как опухолевые, так и не опухолевые, имеют тенденцию округляться, их специфические черты сглаживаются, и они становятся похожими друг на друга. Кроме того, можно ошибочно принять гистиоцит за клетку рака. Даже в крупных онкологических центрах частота ложноположительных результатов о наличии специфического экссудата составляет 3−5% (Глузман Д.Ф. и соавт., 2003).

Вместе с тем, даже при поздних стадиях заболевания опухолевые клетки удается обнаружить при исследовании экссудатов не у всех пациентов. Возможно, это связано с особенностями опухолевого процесса в каждом конкретном случае, или пределом цитологического метода с использованием обычных рутинных окрасок.

Трудно обнаружить клетки рака в экссудатах на ранних этапах метастазирования, а установление распространенности опухолевого процесса до появления его клинических признаков имеет большое значение для правильного выбора тактики лечения. Наличие единичных изолированных опухолевых клеток в экссудатах существенно ограничивает перспективу дальнейшего увеличения показателей выживаемости. До последнего времени поиск этих клеток осуществляли только традиционными методами световой микроскопии, которые в большинстве случаев оказываются малоэффективными.

Другим аспектом проблемы при исследовании экссудатов является установление первичного источника метастазирования опухоли. По данным ряда исследователей при использовании только цитоморфологических критериев на основании большого опыта это можно осуществить при раке молочной железы у 78% больных, при аденокарциноме легкого у 42% больных и при раке яичника — у 46% больных (Глузман Д.Ф. и соавт., 2003).

От решения этих вопросов во многом зависит выбор правильного лечения больного со злокачественной опухолью и благоприятный исход заболевания.

Эти сложности удается преодолеть с помощью современных иммуноморфологических методов, основанных на высокоспецифичной реакции антиген-антитело, которые позволяют установить локализацию в клетках разнообразных молекулярных структур и выяснить природу клеточных элементов. К ним относятся иммуноцитохимия (ИЦХ) с использованием в качестве метки пероксидазы хрена, лазерная проточная цитофлуориметрия (ПЦФ), флуоресцентная и конфокальной микроскопии с использованием в качестве метки флуоресцирующих красителей.

ИЦХ метод получил широкое распространение во всем мире. Благодаря достижениям ИЦХ, а также молекулярно-биологической техники сегодня можно выявлять так называемые микрометастазы или оккультные метастазы в лимфатических узлах, в крови и костном мозге. Появляющиеся в литературе данные указывают на то, что применение моноклональных антител (мкАТ) к белкам цитоскелета, органоспецифическим и опухолеассоциированным антигенам позволяет диагностировать опухолевые клетки в лимфоузлах и других биологических объектах с высокой степенью точности, а также при метастазировании без первичного очага при исследовании клеток метастаза предположить первичную локализацию опухолевого процесса.

Современная диагностика опухолей предусматривает обязательное применение наряду с классическими морфологическими методами ИЦХ метода.

Однако развитие его продолжается и сейчас. Постоянно появляются новые маркеры, применяемые для диагностики опухолей. Все это обуславливает все возрастающее внедрение их в практику. Вместе с тем, исследование экссудатов из серозных полостей с использованием ИЦХ является малоизученной областью. Выявление единичных опухолевых клеток и первичной локализации опухолевого процесса по ИЦХ исследовани разработано мало. При исследовании экссудатов практически не применяется метод лазерной ПЦФ, преимуществом которой является исследование большого количества клеток (более 10 ООО клеток в секунду), возможность их сортировки, одновременное изучение нескольких антигенных структур на одной клетке.

Недостаточная разрешенность и важная практическая значимость изложенных вопросов побудила нас посвятить настоящую работу изучению клеточных элементов в экссудатах из серозных полостей с применением, главным образом, ИЦХ метода. Работа построена на изучении и трактовке цитологической картины, результатов ИЦХ исследования, данных, полученных при использовании современных методов диагностики, таких как ПЦФ и флуоресцентной' микроскопии, а также анализе ошибок цитологической диагностики.

Цель и задачи исследования

.

Цель исследования — совершенствование цитологической диагностики плевральных и перитонеальных экссудатов с использованием современных иммуноморфологических методик для установления характера экссудата, выявления единичных опухолевых комплексов и определения первичной локализации опухоли.

В соответствии с поставленной целью предполагается решить следующие задачи:

1. Разработать дифференциально-диагностические цитологические и иммуноцитохимические критерии реактивного экссудата с пролиферацией клеток мезотелия и специфического метастатического экссудата.

2. Выявить морфологические и иммуноцитохимические особенности экссудатов при различной локализации первичной опухоли.

3. Уточнить возможности цитологического и иммуноцитохимического методов в определении гистогенеза первичной опухоли при невыявленном первичном очаге.

4. Изучить возможности иммуноцитохимического исследования в определении малочисленных опухолевых комплексов в экссудатах.

5. Определить значимость методик лазерной проточной цитофлуориметрии и флуоресцентной иммуноцитохимии при исследовании экссудатов. и.

Научная новизна исследования.

Впервые в результате комплексного исследования экссудатов из серозных полостей с применением таких современных методик цитологической диагностики, как иммуноцитохимия и лазерная проточная цитофлуориметрия, стало возможным объективно охарактеризовать клеточный состав выпота, определить их роль и значение в уточнении характера жидкости. Современные высокотехнологичные методики обнаруживают малочисленные опухолевые комплексы в экссудате на ранних этапах метастазирования, не выявляемые рутинным цитологическим исследованием, а также снижают гипердиагностику опухолевого процесса. Использование комплекса иммуноцитохимических маркеров позволяет уточнить источник метастазирования при неустановленном первичном опухолевом очаге. Показана высокая эффективность и быстрота флуоресцентной иммуноцитохимии экссудатов при срочных интраоперационных исследованиях с целью уточнения распространенности опухолевого процесса.

Практическая значимость.

Проведенное исследование позволило разработать и внедрить в клиническую практику иммуноморфологические методы исследования экссудатов, в том числе иммуноцитохимию иммунопероксидазным методом и флуоресцентную иммуноцитохимию, уточнить значимость лазерной проточной цитофлуориметрии при исследовании плевральных и перитонеальных эксудатов.

Выявление малочисленных опухолевых комплексов с помощью применяемых современных методов увеличивает на 15% число наблюдений с доказанной диссеминацией опухоли по серозным оболочкам, следовательно, более точно определяет истинную распространенность опухолевого процесса.

ИЦХ исследование экссудатов с целью выявления локализации первичной опухоли устанавливает ее гистогенез с достоверностью 93%, что предопределяет дальнейшее обследование и целенаправленное лечение пациентов.

Выводы:

1. Иммуноцитохимическое исследование плевральных и перитонеальных экссудатов в сложных диагностических случаях повышает результативность цитологического метода: чувствительность с 62% до 93% и специфичность с 95% до 99%. Методика в 79% подтверждает диссеминацию опухоли, заподозренную рутинным цитологическим исследованием, и в 7% позволяет избежать гипердиагностики опухолевого процесса.

2. Дифференциальная диагностика реактивных и метастатических экссудатов при аденогенном раке осуществляется надежным и чувствительным маркером — эпителиальным антигеном Вег-ЕР4: чувствительность его составляет 96%), специфичность — 99%.

3. При раке основных локализаций определена панель маркеров и частота их экспрессии в метастатических экссудатах: рак молочной железыСК7 (100%), РЭА (82%), РЭ (23%) — аденогенный рак легкого — СК7 (100%) и TTF1 (65%) — аденокарцинома желудка — СК7 (100%), РЭА (100%), СК20 (61%) — серозный рак яичников — СК7 (96%), СА125 (96%), WT1 (70%) — аденокарцинома толстой кишки — СК20 (100%), РЭА (100%).

4. При невыявленном первичном опухолевом очаге сочетание цитологического и иммуноцитохимического исследований с использованием широкой панели моноклональных антител в 93% устанавливает локализацию опухоли.

5. Иммуноцитохимическое исследование позволяет у 15% больных обнаружить малочисленные опухолевые комплексы, не выявленные при рутинном цитологическом исследовании.

6. Флуоресцентное иммуноцитохимическое исследование экссудатов с эпителиальным маркером Вег-ЕР4 высоко эффективно при срочной интраоперационной диагностике распространенности опухолевого процесса.

Практические рекомендации:

1. Достоверность цитологического исследования зависит, прежде всего, от правильной техники забора исследуемого материала. Вся эвакуированная жидкость используется для приготовления препаратов, при большом ее объеме — последняя порция не менее одного литра. Для предотвращения свертывания жидкости в нее необходимо добавить 5% цитрат натрия из расчета 5 мл на 100 мл жидкости. Перед приготовлением цитологических препаратов жидкость должна отстояться не менее часа.

2. В сложных диагностических наблюдениях для определения характера экссудата необходимо проведение иммуноцитохимического исследования с эпителиальным маркером Вег-ЕР4.

3. При невыявленном первичном очаге иммуноцитохимическое исследование с использованием широкой панели антител (7−10 маркеров) и достаточном количестве опухолевых клеток в жидкости (не менее 300) позволяет достоверно в 93% определить первичную локализацию опухоли.

4. Метод лазерной проточной цитофлуориметрии эффективен для диагностики в экссудатах аденогенного рака. Для корректной оценки результатов необходимо сочетать его с рутинным цитологическим и иммуноцитохимическими методами. Лазерная проточная цитофлуориметрия помогает дифференциальной диагностике реактивного экссудата с выраженной лимфоидной инфильтрацией и злокачественной лимфомы, а также установлению ее морфологического варианта.

5. При срочном интраоперационном исследовании экссудатов с целью исключения диссеминации аденогенного рака по серозным оболочкам показан высокоэффективный метод флуоресцентной иммуноцитохимии, не требующий значительных временных затрат.

6. При перстневидноклеточном раке желудка или пограничной опухоли яичников отсутствие при рутинном цитологическом исследовании экссудатов опухолевых клеток является показанием к проведению иммуноцитохимии флуоресцентным или иммунопероксидазным методами.

7. Иммуноцитохимическое исследование смывов из брюшной полости необходимо проводить, несмотря на относительно небольшой процент выявления единичных опухолевых комплексов: при раке желудка 33%, при раке ободочной кишки 16%, при раке прямой кишки 10%), потому что наличие свободных опухолевых клеток является признаком латентной перитонеальной диссеминации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. К.А., Гладунова З. Д., Никитина Н. И. К вопросу дифференциальной диагностики серозных и муцинозных опухолей яичников. // Лабораторное дело. 1986. — № 2. — С. 77- 79.
  2. М.Б. Мезотелиома плевры. Современная тактика лечения. // Вестник Московского онкологического общества. 2006. № 9. — С. 2−3.
  3. Г. И., Жученко А. П., Филон А. В., Калганов И. Д., Москалев А. И. Эффективность циторедуктивных операций у больных раком ободочной кишки с канцероматозом брюшины. // Российский онкологический журнал. -2008. -№ 4.-С. 17−21.
  4. Д.Ф., Скляренко JI.M., Надгорная В. А., Крячок И. А. Диагностическая иммуноцитохимия опухолей. Киев. — 2003.
  5. О.Г., Лазарев А. Ф., Богатырев В. Н., Базулина JI.M., Дороженко B.C. Цитологическое исследование плевральной жидкости в диагностике лимфом. // Российский онкологический журнал. 2008. — № 5. -С. 30−33.
  6. О.Г., Базулина Л. М., Лазарев А. Ф. Использование иммуноцитохимических исследований при изучении экссудатов из серозных полостей в практической работе лаборатории. // Клиническая лабораторная диагностика. -2008. № 1. — С. 20−22, 35−36.
  7. О.Г., Богатырев В. Н., Лазарев А. Ф., Базулина Л. М. Диагностика злокачественной мезотелиомы плевры с использованием иммуноцитохимических методов. // Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН. 2008.-Т. 19.-№ 1.-С. 29−33.
  8. О.Г., Лазарев А. Ф., Богатырев В. Н., Базулина Л. М. Дифференциальная диагностика заболеваний плевры на клеточном уровне. // Сибирский онкологический журнал. 2006. — № 3 (19). — С. 127−129.
  9. О.Г., Лазарев А. Ф., Базулина Л. М. Цитологическая характеристика рака желудка в плевральной жидкости. // Сибирский онкологический журнал. 2006. — № 3 (19). — С. 98.
  10. В.В., Шабалова И. П., Миронова И. И., Джангирова Т. В., Коротаев A.JI. Выпотные жидкости. Москва. — 2006.
  11. Е.Н. Клинико-молекулярные аспекты колоректального рака: этиопатогенез, профилактика, индивидуализация лечения. // Практическая онкология. — 2005. Т. 6. — № 2. — С. 65−70.
  12. А.И. Клинико-морфологическая диагностика опухолей яичников. Москва. — 2005.
  13. А.И. Некоторые проблемы клинической морфологии эпителиальных опухолей яичников. // Практическая онкология. 2000. — № 4. С 14−18.
  14. З.Ф. Цитоморфологическая характеристика экссудатов при новообразованиях брюшины и плевры. // Дисс. канд. мед. наук. -Москва.- 1965.
  15. З.Ф. О цитологической диагностике мезотелиом. // Вопросы онкологии. 1964. — Т. 10. — № 6. — С. 52−59.
  16. З.Ф. Дифференциально-диагностическое значение секреторной функции элементов новообразования в экссудате. // Лабораторное дело. 1974. — № 6. — С. 331−335.
  17. З.Ф. Изменения клеток мезотелиомы в плевральном экссудате. // Архив патологии. 1971. — № 2. — С. 54−58.
  18. З.Ф. О цитологической диагностике псевдомиксомы брюшины. // Лабораторное дело. 1964. — № 7. — С. 438−441.
  19. Н.В., Пробатова Н. А., Павловская А. И., Ковригина A.M., Шолохова Е.Н. MALT лимфома желудка — основы морфологического диагноза. // Современная онкология. — 2001. — Т.З. — № 4. — С. 5−7.
  20. Н.А., Смольянников А. В., Саркисов Д. С. Руководство по патолого-анатомической диагностике опухолей человека. 4-е изд. — Москва. — 1993.
  21. М.В. Возможности хирургического лечения больных раком желудка IV стадии. // Дисс. канд. мед. наук. Москва. — 2007.
  22. Е.Г., Батталова Г. Ю. Пограничные опухоли яичников. -Москва.- 2007.
  23. Е.Г., Тер-Арутюнянц С.А., Пирогов С. С. Псевдомиксома брюшины: современные взгляды на этиологию, биологическое поведение, лечение и его результаты. // Российский онкологический журнал. 2001. — № 3. — С. 47−51.
  24. М.А., Аничков Н. М. Атлас патологии опухолей человека. -Москва. 2007.
  25. С.В., Райхлин Н. Т. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека. Казань. — 2004.
  26. А.С. Руководство по цитологической диагностике опухолей человека. Москва. — 1976.
  27. П.Г., Терентьев А. А. Опухоли яичников: некоторые особенности эволюции, распространения и диагностики. // Вопросы онкологии. 2009. — Т. 55. — № 2. — С. 143−149.
  28. Н.А., Петровичев Н. Н. Возможности морфологической и иммуногистохимической диагностики при метастазах без выявленного первичного очага // Вестник Московского Онкологического общества. -2006.-№ 10.-С 4−6.
  29. В.Ю., Бердов Б. А. Влияние морфологического строения рака желудка на закономерности развития рецидивов и метастазов. // Вопросы онкологии. 2009. — Т. 55. — № 1. — С. 60−65.
  30. В.Ю., Бердов Б. А., Локтионова О. В. Закономерности развития рецидивов и метастазов перстневидноклеточного рака желудка после комбинированного и хирургического лечения. // Вопросы онкологии. -2007.- Т. 53. № 5. — С. 538−543.
  31. В.Ю., Бердов Б. А. Клинико-морфологические параллели у больных раком желудка. // Вопросы онкологии. 2009. — Т. 55. — № 2. — С. 165- 169.
  32. В.М. Циторедуктивные операции при метастатическом колоректальном раке. // Дисс. канд. мед. наук. Москва. — 2007.
  33. В.И., Вашакмадзе Л. А., Бутенко А. В., Пикин О. В., Ложкин М. В. Перитонеальная диссеминация при раке желудка: возможности лечения. // Российский онкологический журнал. 2001. — № 3. — С. 9−12.
  34. П.К., Петров А. С. Злокачественная мезотелиома плевры. // Практическая онкология. 2006. — Т. 7. — № 3. — С. 179−188.
  35. Afify A., Zhou H., Howell L., Paulino A. Diagnostic Utility of GLUT-1 Expression in the Cytologic Evaluation of Serous Fluids. // Acta Cytologica. —2005. Vol. 49(6). — P. 621−625.
  36. Alberti N., Serrano-Egea A., Garcia-Garcia E., Ballestin C., Perez-Barrios A., Lopez-Rios F., Pedro de Agustin. Primary Papillary Serous Carcinoma of the Peritoneum. // Acta Cytologica. 2007. — Vol. 51(2). — P. 203−206.
  37. Angelis M.D., Buley I.D., Heryet A., Gray W. Immunocytochemical Staining of Serous Effusions With the Monoclonal Antibody Ber-EP4. // Cytopathology. 2007. — V. 3 (2). — P. 111−117.
  38. Ascoli V., Carnovale-Scalzo C., Bosco D., Nardi F. Effusional cytology of well-differentiated papillary mesothelioma: a series of 7 cases. // Pathologica.2006.-V. 98.-360.
  39. Bedrossian C., Davidson В., Michael C. The Molecular Differentiation of Carcinoma of the Ovary and Peritoneal Mesothelioma. // Acta Cytologica. -2005.-Vol. 49(6).-P. 683.
  40. Bjorn R., Ben D., Hiep D. Flow cytometric immunophenotyping of serous effusions and peritoneal washing: comparison with immunocytochemistry and morphological findings. // Journal of Clinical Pathology. 2000. — Vol. 53 (7). -P. 513−517.
  41. Botsoli-Stergiou E., Mikou P., Petrakakou E.3 Balakitsas N., Fotiou S., Ioakim-Liossi A. Primary clear cell peritoneal adenocarcinoma — cytologic features: a case report. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 428.
  42. Bramwell M.E., Ghosh A.K., Smith W.D. Ca2 and Ca3 new monoclonal antibodies evaluated as tumor markers in serous effusions. // Cancer.- 1985.- V. 56. -P. 105.
  43. Cardozo L.L. Atlas of clinical cytology. Amsterdam. 1975.
  44. Chang D.K., Kim J.W., Kim B.K., Lee K.L., Song C.S., Han J.K., Song I.S. // World J. Gastroenterol. 2005. — V. 11. (Suppl. 42). — P. 6587−6592.
  45. Chen S.F. Nieh S. Immunocytochemistry is a useful diagnostic aid in body fluid cytology. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 462.
  46. Dabbs D.J. Diagnostic Immunohistochemistry. Edinburgh, 2006.
  47. Das D.K., Al-Juwaiser A., George S.S., Francis I.M. et al. Cytomorphological and immunocytochemical study of non-Hodgkins lymphoma in pleural effusion and ascitic fluid. // Cytopathology. 2007. — V. 18 (3). — P. 157−167.
  48. Dearnaley D.P., To A.C., Husain O.A. Immunocytochemistry staining of serous effusions. // Lancet. 1984. — V.2. — P. 39.
  49. Dejmek A., Naucler P., Smedjeback A., Hirano Т., Kato H. The diagnostic utility of TTF-1 and TA02 (napsin A) polypeptide in effusion cytologi. // Cytopathology. 2004. — V. 48. — P. 14.
  50. Dikmen G., Dikmen E., Kara M., Sahin E., Dogan P., Ozdemir N. Diagnostic implications of telomerase activity in pleural effusions. European respiratory Jornal. // 2003. Vol. 22. — P. 422−426.
  51. Economou V., Fotou M., Drouveli Т., Kotzia E. The diagnostic yield of pleural fluid cytology in patients with suspected malignant pleural effusions. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 403 -404.
  52. Epenetos A.A., Canti G., Taulor-Papadimitriou J. Antibodies for diagnosis of malignancy in serous effusions. // Lancet. 1982. — V. 2. — P. 1004.
  53. Esposito F., Fulciniti F., Griffo S., Boschi R., D Armiento F.P., Ferrante G., Vetrani A. Galectin-3 expression in benign and malignant mesothelial diseases. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 406.
  54. Ferfeli M., Meristoudis С., Markaki S., Kambitsis K., Arvaniti I., Roditi K.3 Hiotou K. Cytomorphologic features in peritoneal fluid and washings in borderline of the ovary. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 419.
  55. Gabariel Ch., Achten R., Drijkoningen M. Use of Liquid-Based Cytology in Serous Fluids. A Comparison with Conventional Cytopreparatory Techniques. // Acta Cytologica. 2004. — Vol. 48(6). — P. 825−831.
  56. Gabric S., Kern I. Two-color immunostainingn of pleural effusions with BerEP4 and CK56. // Cytopathology. 2004. — V. 15. (Suppl.2). — P. 15.
  57. Garcia-Ureta E., Perez Fomntan M., Rodriguez Carmona A. Peritoneal eosinophilia during peritoneal dialysis-related peritonitis. // Pathologica. 2006. -V. 98.-464.
  58. Gentili F., Lonardi S., Bercich L., Santin A., Facchetti F. Claudina 4: un pan-carcinoma marker utile nella diagnostica del mesotelioma. // Pathologica. -2006.-V. 98.-546.
  59. Gerbes A.L., Mezger J., Permanetter W., wilmanns W., Lamerz R. Tumor associated antigens in diagnosis of serous effusions. // Journal of clinical Pathology.-2008.-Vol. 41.-P. 633−643.
  60. Ghosh A.K., Mason D.J., Spriggs A.J. Immunocytochemical staining with monoclonal antibodies in cytologically negative serous effusions from patients with malignant disease. Journal of Clinical Pathologica. 1983. — V. 36. -P. 1150.
  61. Giarnieri E., Alderisio M., Mancini R., Falasca C., Ricci A., Mariotta S., Giovagnoli M.R. Tissue inhibitor of metalloproteinase 2 (TIMP-2) expression inadenocarcinoma pleural effusions. // Oncology Reports. 2008. — V. 19 (20). — P. 483−487.
  62. Gong Y., Sun X., Michael C.W., Attal S., Williamson B.A., Bedrossian C.W. Immunocytochemistry of serous effusion specimens: a comparison of ThinPrep vs cell block. // Diagn. Cytopathoiogy. 2003. — V. 28 (1). — P. 1−5.
  63. Gonlugur Т.Е., Gonlugur U. Transudates in Malignancy: Still a Role for Pleural Fluid. // Cancer Epidemiology Biomarkers & Prevention. 2008. — V. 37 (9).-P. 760−763.
  64. Gupta S., Haider K., Khan V.A., Sodhani P. Cell block as an adjunct to conventional Papanicolaou smear for diagnosis of cervical cancer in resource-imited settings. // Cytopathoiogy. 2007. — V. 18 (5). — P. 309−315.
  65. Han J., Kim M.-K., Nam S.-J., Yang J.-H. E-cadherin and Cytokeratin Subtype Profiling in Effusion Cytology. // J. Korean Med. Sci.- 2004. Vol. 19. -P 826−33.
  66. He D-N., Zhu H-S., Zhang K-H., Jin W-J., Zhu W-M., Li N., Li J-S. E-cadherin and calretinin as immunocytochemical markers to differentiate malignant from benign serous effusions. // World J. Gastroenterol. 2004. — V. 10 (16). — P. 2406−2408.
  67. Hu J.C., Brookings W., Aldridge M.C. A case of solid pseudopapillary tumour of the pancreas and malignant mesothelioma. // Journal of Gastrointestinal Cancer. 2007. — V.38 (2−4). — P. 71−73.
  68. Ioakin-Liossi A., Mikou P., Petrakakou E., Athanassiadou P. Primary Effusion Lymphoma. // Acta Cytologica. 2004. — Vol. 48(2). — P. 269−271.
  69. Jensen M.L., Johansen P. Immunocytochemical Staining of Serous Effusions: an Additional Method in the Routine Cytology Practice? // Cytopathology. Vol. 5 (2). — P. 93−103.
  70. Kandaraki C., Politi E., Apostolopoulos C., Kyritsi Th., Stoforou E., Argyrakos Т., Koutselini E. Diagnostic utility of HBME1, calretinin and CK56 in pleural effusions. // Cytopathology. 2004. — V. 15. (Suppl.2). — P. 15.
  71. Kobayashi M., Takeuchi t., Ohtsuki Y. Establishment of three novel human malignant pleural mesotehlioma cell lines: morphological and cytogenetical studies and EGFR mutation status. // Anticancer Research. 2008. — V. 28 (la). -P. 197−208.
  72. Koss' Diagnostic Cytology and Histopathologic Bases 2006.
  73. Lee W.-Y. Limitations of detection of malignancy in pleural effusions using ELISA- based TRAP assay: comparison with cytological examination. // Cytopathology. 2005. — Vol.16. — P. 227−232.
  74. Li R., Ni J., Bourne P., Yeh S. Cell Culture Block Array for Immunocytochemical Study of Protein Expression in Cultured Cells. // Applied1. munohistochemistry & Molecular Morphology. 2005. — Vol. 13 (1). — P. 8590.
  75. Legrand I., Galant C., Weynand B. Contribution of a panel of 6 antibodies to the diagnosis of atypical pleural fluid. // Pathologica. 2006. — V. 98 — № 5. P. 362.
  76. Linari A., Bussolati G. Evaluation of impact of immunocytochemical techniques in cytological diagnosis of neoplastic effusions. // Journal of Clinical Pathology. 1989. — V. 42. — P. 1184−1189.
  77. Mahmood S., Martines de Llano SR. Paget disease of the humerus mimicking metastatic disease in a patient with metastatic malignant mesothelioma on whole body F-18 FDG PET/CT. // Clinical Nuclear Medicine. 2008. — V. 33 (7).-P.-510−512.
  78. Mansy S.S. Agarose Cell Block: Innovated Technique for the Processing of Urine Cytology for Electron Microscopy Examination. // Ultrastructural Pathology. -2004. -V. 28 (1). P. 15−21.
  79. Mariani-Costantini R., Menard S., Clemente C.5 Tagliabue E., Rilke F. Immunocytochemical identification of breast carcinoma cells in effusions using a monoclinal antibody. // J. Clin. Pathol. 1982. -Vol. 35 (9). — P. 1037.
  80. McCluggage W.G., Anderson N.H., Patterson J., Stockford J., Manek S. SM047 immunoreactivity in peritoneal fluids. // Cytopathoiogy. 2003. -Vol.14.-P. 32.
  81. Narula A., Falzon M., Capitanio A. The Diagnostic pitfall of atypical glandular cells with psammoma bodies in peritoneal washing cytology. // Cytopathoiogy. -2008. Vol.19(Suppl.l)~ P. 57.
  82. Nieh S., Chen S.F. Study of human telomerase reserve transcriptase mRNA expression in fluid cytology by in situ hybridization with comparisons of conventional cytological findings. // Pathologica. 2006. — V. 98. — 436−448.
  83. Palaoro L.A., Blanco A.M., Gamboni M., Rocher A.E. Usefulness of ploidy, AgNOR and immunocytochemistry for differentiating benign and malignant cells in serous effusions. // Cytopathology. 2007. — V. 18. — P. 33−39.
  84. Pallesen G., Jepsen F.L., Hastrup J. Experience with the Oxford tumor marker (CA-1) in serous fluids. // Lancet. 1983. -V. 1. — P. 1326.
  85. Passebosc-Faure K., Li G., Lambert C., Cottier M. Evaluation of a panel of molecular markers for diagnosis of malignant serous effusions. // Clin. Cancer Res. 2005. — Vol. 11(19 Pt 1). — P. 6862−7.
  86. Pokieser W., Cassik P., Fischer G., Vesely M., Ulrich W., Peters-Engl C. Malignant pleural and pericardial effusion in invasive breast cancer: impact of the site of primary tumor // Breast Cancer Res. And Treat.- 2004. Vol.83(2). — P. 139−142.
  87. Politi Е., Kandaraki Ch., Apostolopoulou С., Kyritsi Th., Koutselini H. Immunocytochemical panel for distinguishing between carcinoma and reactive mesothelial cells in body cavity fluids. // Diagn. Cytopathol. 2005. — T. 32. — № 3.-P. 151−155.
  88. Psachoulia Ch., Mamali V., Kaladelfou E., Peristeropoulou P., Kardari M. Immunocytochemichal expression of GST-pi, HER-2neu, c-kit and Bax in malignant effusions. // Cytopathology. 2004. — V. 15. (Suppl.2). — P. 22.
  89. Psaropoulou P., Emmanouilidou A., Salemis N. A rare case of juvenile granulosa cell tumor first diagnosed in ascitic fluid cytology. // Pathologica. -2006.-V. 98.-380.
  90. Rodrigues G.N., Garcia T.A., Llanes G.L., Garcia M.J.M., Anqulo C.J., Berenquer S.A. Carcinoma renal metastasico a peritoneo. A proposito de un caso. // Arch. esp. urol. 2006. — V. 59 (Suppl. 9). — P. 919−922.
  91. Salet-van de Pol M., Grefte J., Tomassen M., Bulten J. Contribution of immunocytochemistry on AgarCyto cell blocks of ascites. // Cytopathology. -2004. V. 15. (Suppl.2). — P. 24.
  92. Sambit K., Pranab D., Puja R. Manual and Automated AgNOR Count in Differentiating Reactive Mesothelial from Metastatic Malignant Cells in Serous Effusions. // Analytical and Quantitative Cytology and Histology. 2003. -Vol.25.-№ 5.-P. 273−275.
  93. Santos G.C., Longatto-Filho A., Carvalho L., Neves J.I., Alves A.C. Immunocytochemical Study of Malignant Lymphoma in Serous Effusions. II Acta Cytologica. -2000. -V. 44. P. 539−542.
  94. Saran E. Cross, Yu-Sheng Jin, Jianyu Rao, James K. Gimzewski. Nanomechanical analysis of cells from cancer patients. // Nature nanotechnology.-2007.-Vol. 2.-P. 780−783.
  95. Schaner M.E., Davidson В., Skrede M., Reich R. et al. Variation in gene expression patterns in effusions and primary tumors from serous ovarian cancer patients. // Molecular Cancer. 2005. — Vol. 4. — P. 26.
  96. Sell S. Cancer carbohydrates identified by monoclonal antibodies. Journal Tumor Marker Oncology. 1990. — V. 10. — P. 209.
  97. Semczuk A., Skomra D., Rybojad P., Jeczen R., Rechberger T. Endometrial Carcinoma with Pleural Metastasis. // Acta Cytologica. 2006. — Vol. 50(6).-P. 697−699.
  98. Serio G., Scattone A., Musti M., Nenna R., Loizzi M., Marzullo A., Vurro L., Pollice I., Ponnella A. Significato prognostico di variabiliclinicopatologiche nel mesotelioma pleurico. // Pathologica. 2006. — V. 98. -547.
  99. Shidham V.B., Atkinson B.F. Cytopathologic diagnosis of serous Fluids. Elsevier Saunders, 2007.
  100. Sivertsen S., Berner A., Michael C., Bedrossian C., Davidson B. Cadherin Expression in Ovarian Carcinoma and Malignant Mesothelioma Cell Effusions. // Acta Cytologica. 2006. — Vol. 50(6). — P. 603−607.
  101. Sotiropoulou G., Plyta S., Delliou E., Panoussi A., Papagika A., Alexiadou A., Poulianou E., Kalargirou C.H. Difficulties in the diagnosis of malignant mesotheliomas in effusions. // Cytopathology. 2004. — V. 15. (Suppl.2).-P. 22.
  102. Szpak Ch.A., Johnston W.W., Lottich S.Ch. Patterns of reactivity of four novel monoclonal antibodies (B72.3, DF3, Bl. l and B6.2) with cells in human malignant and benign effusions. // Acta Cytologica. 1984. — Vol. 28. — P. 356.
  103. Takezawa C., Takahashi H., Fujishima Т., Shiratori M. et al. Assessment of differentiation in adenocarcinoma cells from pleural effusion by peripheral airway cell markers and their diagnostic values. // Lungcancer. V. 38 (3).-P. 273−281.
  104. Thunnissen F., Buchholtz R., Woutersen D., Arends J., Putten H. Clinical value of DNA image cytometry in effusions with atypia. // Diagn. Cytopathol- 1999.-21.-№ 2.-P. 112−116.
  105. To A., Dearnaley D.P. Ormerod M.G. Epitelial membrane antigen its use in the cytodiagnosis of malignancy in serous effusions. Journal of Clinical Pathologica. — 1982.- V. 78. — P. 43.
  106. To A., Coleman D.V., Dearnaley D.P. Use of antisera to epitelial membrane antigen for the cytodiagnosis of malignancy in serous effusions. Journal of Clinical Pathologica. 1981.- V. 34. — P. 545.
  107. Tsampra G., Gomousa-Michael M. Immunocytochemical profile of metastatic malignancy in effusions. A clue to the primary site. // Cytopathology. -2004. V. 15. (Suppl.2). — P. 17.
  108. Vacharadze K., Burkadze G., Turashvili G., Kiria N. Argyrophilic nucleolar organizer regions in benign and malignant mesothelial lesions. // Georg. Med. News. -2005.-№ 11.-P. 91−93.
  109. Van Zuylen-manders L., Van Der Have-Loonen M., Salet-Van De Pol M., Aliredjo R., Grefte J., Bulten J. Vacuolated cells in pleural effusions mimicking bening mesothelial cells or macrophages. // Pathologica. 2006. — V. 98.-361.
  110. Wang Zhen-ning, Xu Hui-maian, Jiang Li, Zhou Xin, Lu Chong, Zhang Xue. Expression of survivin mRNA in peritoneal lavage from patients with gastric carcinoma.//Chin. Med.J. ~2004.-Vol. 117. -№ 8. -P. 1210−1216.
  111. Wazir J.F., Martin-Bates E., Woodward G., Coleman D.V. Evaluation of Immunocytochemical Staining As A Method of Improving Diagnostic Accuracy in A Routine Cytopathology Laboratory. // Cytopathology. Vol. 2 (2). — P. 75−82.
  112. Windorfer M.5 Kohlberger P., Horvat R., Wiener H.G. Prognostic value of peritoneal washing cytometry in ovarian borderline tumors. // Pathologica. — 2006.-V. 98.-436−448.
  113. Wlute J., Patterson A., Anderson N. Desmin Expression in Body Cavity Fluid Immunocytochemistry. // Cytopathology. 2004. — V. 48. — P. 94.
  114. Woods J.C., Spriggs A.I., Harris H., McGree J.O.D. A new marker for cancer cells 3. Immunocytochemical detection of malignant cells in serous fluids with the CA-1 antibodi. // Lancet. 1982. — V.2. — P. 512.
  115. Wu G-P., Zhang S-S., Fang C-Q., Liu S-L., Wang E-N. Immunocytochemical panel for distinguishing carcinoma cells from reactive mesothelial cells in pleural effusions. // Cytopathology. V. 19 (4). — P. 212−217.
  116. Wu M., Yuan S., Szporn A., Gan L., Shtibans V., Burstein D. Immunocytochemical detection of XIAP in body cavity effusions and washes. // Modern Pathology.-2005.-V. 18. P. 1618−1622.
  117. Yat L.T., Winkler C.F. Immunocytochemical diagnosis of oat cell carcinoma in pleural effusions. // Acta Cytologica. 1984. — Vol. 28. — P. 425.
  118. Zachou K., Tzartza E., Skenteri A., Orologa A., Kostopoulou E., Boni K. Ascitic fluid, peritoneal washing and cul de sac aspiration cytology in womenunder the age of 40: a retrospective study. I I Cytopathoiogy. 2004. — V. 15. (Suppl.2). — P. 26.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!