Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Сравнительная оценка влияния различных остеопластических материалов на основе фосфатов кальция на заживление костных дефектов

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Гистоморфометрический анализ выявил отсутствие статистически значимого различия количества новообразованного костного вещества при имлантации гранул КГА и «Bio-Oss». Отмечен различный механизм формирования новообразованной костной ткани: у гранул КГА регенераторные процессы проходят как внутри гранул, так и по поверхности. Для «Bio-Oss» характерно отсутствие развитой капиллярной сети… Читать ещё >

Сравнительная оценка влияния различных остеопластических материалов на основе фосфатов кальция на заживление костных дефектов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Применение остеопластических материалов при заполнении костных дефектов челюстных костей
    • 1. 2. Карбонатгидроксиапатит как фактор структурно-функциональной организации костной ткани
      • 1. 2. 1. Резорбция гранул фосфатов кальция
      • 1. 2. 2. Пористость биокерамики
      • 1. 2. 3. Применение нанопорошков из карбонатгидроксиапатита
      • 1. 2. 4. Практическое применение биокерамики на основе КГА
      • 1. 2. 5. ИК-спектроскопия фосфатов кальция
    • 1. 3. Полисахарид хитозан в качестве матрикса для фосфатов кальция. Структура, свойства, применение в стоматологии. 30 1.3.1. Применение хитозана в хирургической стоматологии
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материал исследования
      • 2. 1. 1. Объект экспериментального исследования
      • 2. 1. 2. Синтетические керамические гранулы КГА
      • 2. 1. 3. Гранулы Bio-Oss spongiosa
      • 2. 1. 4. Хитозановые матриксы, модифицированные различными кислотами
      • 2. 1. 5. Хитозановый матрикс, содержащий гранулы КГА
    • 2. 2. Методы экспериментального исследования
      • 2. 2. 1. Рентгенофазовый анализ
      • 2. 2. 2. Рентгеноспектральный микроанализ
      • 2. 2. 3. Инфракрасная спектроскопия фосфатов кальция
      • 2. 2. 4. Определение растворимости гранул в изотоническом растворе in vitro
      • 2. 2. 5. Сканирующая электронная микроскопия. Подготовка пористых образцов
      • 2. 2. 6. Методика определения цитотоксичности хитозановых матриксов на культуре клеток фибробластов человека
    • 2. 3. Методы клинического исследования
      • 2. 3. 1. Распределение больных на группы
      • 2. 3. 2. Клинические критерии оценки больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей
      • 2. 3. 3. Методика оперативного лечения больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей
      • 2. 3. 4. Рентгенологическое обследование
      • 2. 3. 5. Определения кальция, фосфора и щелочной фосфатазы
    • 2. 4. Статистическая обработка данных
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ чАСТь
    • 3. 1. Структура и свойства гранул КГА в сравнении с Bio-Oss
      • 3. 1. 1. Фазовый анализ фосфатов кальция
      • 3. 1. 2. Содержание кальция и фосфора в гранулах КГА и Bio-Oss
      • 3. 1. 3. Инфракрасная спектроскопия исследуемых образцов
      • 3. 1. 4. Растворимость гранул в изотоническом растворе
      • 3. 1. 5. Поры и поверхность гранул фосфатов кальция
    • 3. 2. Структурно-функциональные характеристики хитозановых матриксов, модифицированных различными кислотами
      • 3. 2. 1. Фазовый состав матриксов
      • 3. 2. 2. Хитозан как депо минеральных элементов
      • 3. 2. 3. Особенности пористой поверхности хитозановых матриксов
    • 3. 3. Оценка хитозановых матриксов на жизнеспособность культуры клеток фибробластов человека
    • 3. 4. Динамика заживления экспериментально воспроизведенных костных дефектов при имплантации в них остеопластических материалов на основе модифицированного гидроксиапатита
    • 3. 5. Гистоморфометрический анализ исследуемых образцов. 96 КЛИНИЧЕСКАЯ ЧАСТ
    • 3. 6. Клиническое течение послеоперационного периода у больных при заполнении костных дефектов гранулами КГА в сравнении с Bio-Oss и кровяным сгустком
    • 3. 7. Рентгенологическое обследование при заполнении костных дефектов гранулами КГА в сравнении с гранулами Bio-Oss и кровяным сгустком
    • 3. 8. Уровень кальция, фосфора и щелочной фосфатазы в смешанной слюне больных в послеоперационном периоде
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Актуальность проблемы.

Лечение больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей занимает важное место в амбулаторной хирургической стоматологии. Больные данной категории составляют по мнению различных авторов от 4 до 10% от общего числа пациентов, обратившихся в отделение амбулаторной хирургиче.

53,62,67 ской стоматологии.

Однако образовавшаяся после удаления кисты костная полость далеко не всегда заполняется созревшей новообразованной костной тканью. По данным ли.

15 тературы, в 5% случаев костный дефект не восполняется костной тканью. Это диктует необходимость заполнения образующихся полостей материалами, которые стимулируют процессы остеогенеза и способствуют восстановлению функции зуба в кратчайшие сроки.

Процессы регенерации в костном дефекте под кровяным сгустком могут со.

51 провождаться осложнениями. Использование аутотрансплантата связано с нане сением дополнительной травмы и риском неконтролируемой резорбции.

Остеопластические материалы на основе гидроксиапатита являются основным видом фосфатно-кальциевой керамики, используемой в костно-пластической хирургии. Однако низкий уровень резорбции гидроксиапатита и, следовательно, замещение новообразованной костной тканью не позволяют добиться минимальных сроков остеогенеза. В настоящее время в хирургической стоматологической практике широко используется карбонатгидроксиапатит (КГА) животного происхождения «Bio-Oss» (Geistlich, Швейцария), получаемый из бычьей кости, который.

148,216,241,332 также обладает слабой кинетикой резорбции.

Замещение фосфатных и гидроксильных групп на крабонат-ион в структуре апатита помогают решить данную проблему. Создание синтетического КГА исключает некоторые отрицательные свойства, характерные для животного КГА, в.

327,348 том числе риска переноса прионов-носителей болезни Крейцфельдта-Якоба. На резорбцию керамических гранул КГА влияет концентрация карбонат-иона—чем выше его концентрация, тем выше растворимость. Это связано с большим радиусом карбонат-иона, что вызывает напряжение и деформации в кристаллической решетке апатита. Синтетический КГА входит в состав многих цементов, способствуя.

164 их лучшей резорбции.

Благодаря совместным разработкам «ИМЕТ им. А. А. Байкова РАН», ФГУ «МНИОИ им. П. А. Герцена Росмедтехнологий» и ФГУ «ЦНИИС и ЧЛХ Росмедтехнологий» были получены синтетические керамические гранулы КГА, которые прошли успешную клиническую апробацию в ведущих лечебных центрах г. Москвы и, в частности, в отделении амбулаторной хирургической стоматологии ФГУ «ЦНИИС и ЧЛХ Росмедтехнологий».

Воспроизмодимый синтез КГА позволил создать новое поколение керамических бифазных полифункциональных материалов (композитов, цементов), об.

57 ладающих выраженными остеопластическими свойствами. Основное внимание в нашей работе было уделено разработке и внедрению материала в клиническую практику, однако ввиду большого количества инструментальных и экспериментальных исследований клиническое изучения материала КГА с большой выборкой пациентов было несколько ограничено. Оценка динамики биохимических показателей смешанной слюны (свободный кальций, неорганический фосфор, щелочная фосфатаза) при лечении больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей позволила определить эффективность применяемых материалов и оценить их влияние на регенераторные процессы костной ткани.

Применение КГА в качестве наполнителей для различных матриксов-носителей, таких как коллаген, желатин, хитозан открывает перспективное направление в костной пластики. В настоящем исследовании мы применили хитозан (ХТЗ), армированный гранулами КГА при заполнении костных дефектов в эксперименте. Предпочтение отдано ХТЗ, т.к. это биосовместимый, хорошо резорбируе.

17,78 мый полисахарид, получаемый при деацетилировании хитина. Его используют в костно-пластической хирургии, пародонтологии, при обработке ран, как биореактивный гемостатический агент с антитромбогенными свойствами, а также в качестве стимулятора иммунной системы хозяина против вирусной и бактериальной.

11,12,19,22,23 инфекции. ХТЗ индуцирует цитокины, стимулирует остеогенез и ангиоге.

25,39,42,87,121 нез. Катионные свойства ХТЗ делают возможным его электростатическое взаимодействие с отрицательно-заряженными соединениями, что может служить в качестве механизма удержания клеток на субстрате, адгезии факторов роста и ци.

268 токинов в пределах искусственного матрикса. Поэтому разработка матриксов на основе хитозана является перспективным направлением для тканевой инженерии.

Цель.

Изучить и обосновать возможность и эффективность применения синтетических керамических гранул КГА в сравнении с ксеногенным апатитом «Bio-Oss» на основании клинико-лабораторных и экспериментальных данных.

Задачи исследования.

1. Исследовать структуру и свойства синтезированных гранул КГА и сравнить их с ксеногенным апатитом «Bio-Oss».

2. Изучить влияние на репаративный остеогенез гранул КГА и «Bio-Oss» в эксперименте.

3. Оценить влияние композита хитозан-КГА на заживление костных дефектов в эксперименте.

4. Внедрить в клиническую практику синтетические гранулы КГА для заполнения костных дефектов челюстных костей после цистэктомии.

5. Выявить динамику биохимических показателей слюны (кальций, фосфор, щелочная фосфатаза) при лечении больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей с заполнением костных дефектов керамическими гранулами КГА и «Bio-Oss».

Научная новизна.

Впервые в отечественной стоматологии разработан и внедрен в клиническую практику новый, не имеющий аналогов в России, остеопластический материал, обладающий выраженными остеопластическими свойствами—синтетические гранулы КГА.

Впервые проведена сравнительная оценка структурных особенностей гранул КГА и «Bio-Oss». Установлено, что пористая структура КГА способствует активной инвазии клеточных элементов внутрь гранул, стимулируя регенераторные процессы костной ткани. Структура «Bio-Oss» представлена плотно упакованными кристаллами и микропористой поверхностью, что замедляет остеорепаративные процессы.

Впервые изучено влияние хитозановых матриксов на культуре клеток фиб-робластов человека. Полученные материалы не оказывают токсического влияния на жизнеспособность клеток фибробластов человека и являются перспективными материалами для тканевой инженерии.

Впервые получен композит на основе хитозанового матрикса, содержащий гранулы КГА и установлено его стимулирующее влияние на регенерацию костной ткани.

Впервые на основании клинических и биохимических показателей выявлена эффективность синтетических керамических гранул КГА в качестве стимулятора репаративного остеогенеза.

Практическая значимость.

Исследована структура и свойства синтетических гранул КГА для определения показаний к применению в амбулаторной хирургической стоматологии.

При клинической апробации отечественный остеопластический материал КГА стимулировал регенерацию костной ткани, что повысило эффективность и сократило сроки лечения больных с периапикальными деструктивными процессами челюстных костей.

Керамические гранулы КГА превосходят ксеноимплантат «Bio-Oss» по безопасности, простоте получения, стерилизации и себестоимости.

Изучено влияние синтезированного композита хитозан-КГА на регенерацию костной ткани, что дает направление для дальнейших разработок в получении перспективных материалов для тканевой инженерии. Научные положения, выносимые на защиту.

1. Доказано, что керамические гранулы КГА и «Bio-Oss» имеют схожие спектральные, но различные структурные характеристики. По данным ИК-спектроскопии КГА и «Bio-Oss» имеют схожий процент замещения карбонат-групп (6 и 7 масс.% соответственно), для КГА характерна мезопористая поверхность и наличие больших внутренних полостей, для Bio-Oss—микропористая поверхность и плотная упаковка кристаллов.

2. Установлено, что композит хитозан-КГА стимулирует формирование новообразованной костной ткани: соединительнотканная компонента регенерата активнее образуется на хитозане, костная—на гранулах КГА.

3. Выявлено, что биохимические показатели смешанной слюны (свободный кальций, неорганический фосфор, щелочная фосфатаза) при имплантации гранул КГА в сравнении с «Bio-Oss» имеют схожие значения.

Форма внедрения.

Керамические гранулы КГА внедрены в клиническую практику отделения амбулаторной хирургической стоматологии ФГУ «ЦНИИС и ЧЛХ Росмедтехнологий».

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 20 научных работ, 10 — в журналах, рекомендованных ВАК для защиты диссертации.

Апробация работы.

Материалы диссертации доложены:

1. На XVIII Международном Менделеевском конгрессе по общей и прикладной химии—Москва, 2007 г. Работа выполнена при поддержке гранта РФФИ № 06−03−32 192.

2. На IX Ежегодном научном форуме «Стоматология — 2007» и юбилейной конференции, посвященной 45-летию ЦНИИ Стоматологии — Москва, 2007 г.

2 доклада].

3. На Международном форуме «Биотехнология—2008"—Москва, 2008 г. Доклад награжден медалью и дипломом.

4. На V Конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины"—Москва, 2008 г.

5. На IX Международной конференции «Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана» и Третьем съезде Российского хитинового общества — Ставрополь, 2008 г.

6. На 1-ом Международном конгрессе «Функциональные наноматериалы и высокочистые вещества» — Суздаль, 2008. При поддержке гранта Президента РФ МК-4047.2008.3.

7. На научно-практической конференции «Стоматология славянских государств» —Белгород, 2008.

8. На Международном конгрессе «International Bone-Tissue-Engineering Congress» — Hannover, Германия, 2008 г. [2 доклада]. При поддержке гранта.

РФФИ № 08−04−9 449.

9. На X Ежегодном научном форуме «Стоматология — 2008» — Москва, 2008 г.

Разработка и исследование материалов на основе хитозана с гранулами из карбонатгидроксиапатита выполнены по договору о научно-техническом сотрудничестве .№ 1/2008 с ИМЕТ РАН в рамках государственного контракта 02.513.12.3008 с Федеральным агентством по науке и инновациям.

Работа обсуждена на совместном заседании отделения амбулаторной хирургии ЦНИИС и ЧЛХ и кафедры усовершенствования врачей РМАПО.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация изложена на 160 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов собственных исследований, обсуждения, выводов и списка литературы, включающего 362 источника (128 отечественных и 234 зарубежных). В тексте содержится 115 рисунков и 27 таблиц.

ВЫВОДЫ.

1. Доказано, что синтетические гранулы КГА и «Bio-Oss» имеют сходные спектральные характеристики, но различную структуру. Для КГА отличительной особенностью является мезопористая поверхность, наличие гексагональных кристаллов и больших внутренних полостных образований. Для гранул «Bio-Oss» характерна микропористая поверхность, плотная упаковка кристаллов и наличие больших и малых сквозных отверстий.

2. Установлено, что концентрация ионов Са2+ в изотоническом растворе при исследовании растворимости у КГА к концу наблюдений выше по сравнению с «Bio-Oss», что влияет на регенераторные процессы и находит свое отражение в резорбции гранул и формировании костного матрикса.

3. Гистоморфометрический анализ выявил отсутствие статистически значимого различия количества новообразованного костного вещества при имлантации гранул КГА и «Bio-Oss». Отмечен различный механизм формирования новообразованной костной ткани: у гранул КГА регенераторные процессы проходят как внутри гранул, так и по поверхности. Для «Bio-Oss» характерно отсутствие развитой капиллярной сети, формирование костного матрикса только по поверхности гранул из-за внутренней плотной упаковки кристаллов и микропористой поверхности.

4. Выявлено, что композит хитозан-КГА по данным гистологических исследований обладает выраженными остеопластическими свойствами и стимулирует образование костного регенерата.

5. Установлено, что биохимические показатели свободного кальция, неорганического фосфора и щелочной фосфатазы смешанной слюны имеют сходные значения для материалов КГА и «Bio-Oss».

6. Заполнение костного дефекта после цистэктомии синтетическими гранулами КГА стимулирует новообразование костной ткани, что дает основания рекомендовать их для клинического использования.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Заполнение костного дефекта синтетическими керамическими гранулами КГА после цистэктомии целесообразно проводить на %, предварительно смочив их стерильным физиологическим раствором, что не допускает миграции гранул за пределы костного дефекта.

2. Благодаря простоте синтеза, стерилизацию синтетических керамических гранул КГА возможно проводить в сухожаровом стерилизаторе при температуре 180 °C и экспозиции 60 мин.

3. Для оценки сроков и характера остеорепаративных процессов в области костного дефекта при исследовании остеопластических свойств костно-пластичес-ких материалов рекомендуется изучать динамику биохимических показателей смешанной слюны (свободный кальций, неорганический фосфор, щелочная фосфатаза).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ш. Ю., Архипова М. Х. Использование новых биологически совместимых материалов при восстановлении дефектов челюсти // Стоматология. — 1999. — JJ3. — С.37−38.
  2. Ф.А. Экспериментально-клиническое обоснование применения препаратов группы Колапол при одонтогенных кистах и сложном удалении зубов у детей в условиях поликлиники: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М, 1998. — 16 с.
  3. В.А. Хирургическое лечение периапикальных деструктивных изменений с использованием остеопластических материалов на основе гидроксиапатита: Дисс.. канд. мед. наук. — М., 2000. — 160 с.
  4. В.Н., Гайворонский Н. В., Иорданишвили А. К. с соавт. Доклиническое изучение влияния животного полисахарида хонсурида на репаративный остеогенез челюстей // Стоматология. — 1994. — JJ2. — С.7−11.
  5. А.А. Возрастные особенности изменений биохимических маркеров костного ремоделирования у детей // Росс. педиатр. журн. — 2002. — JJ3. — С.7−12.
  6. С.М., Комлев В. С. Биокерамика на основе фосфатов кальция. М.: Изд. «Наука», 2005. — 204 с.
  7. В.М. Гидроксиапатит как субстрат для костной пластики: теоретические и практические аспекты проблемы // Стоматология. — 1996. — J№ 5. — С.7−12.
  8. М. Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей. (Эксперим.-клинич. исслед.): Дис.. канд. мед. наук. — М., 2004. — 145 с.
  9. Г. Н. Биотрансформация костных трансплантатов // Биоимплантология на пороге XXI века. Сб. тезисов симпозиума. — М., 2001. — С.39−40.
  10. В.Ю., Смирнов В. В., Баринов С. М. Спекание карбонатгидроксиапатитовой керамики с добавкой К2СО3 // Всероссийское совещание «Биокерамика в медицине». Сб. тезисов РАН. — М, 2006. — С.39−41.
  11. И., Сизых А., Сурков Е. Электронные и колебательные спектры хитозана // Хитин и хитозан. Материалы VIII Международной конференции. — Казань, 2006. — С.86−89.
  12. Е.В. Биология полости рта. М.: Изд. «НГМА», 2001. — 303 с.
  13. .Д. Хирургическое лечение больных с кистами челюстей с использованием биогенных пластических материалов на основе брефокости и гидроксиапатита: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М., 1990. — 24 с.
  14. Ю.С. Сравнительная оценка репаративной регенерации костной ткани при дефектах челюстей после удаления кистозных новообразований: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М., 1977. — 21 с.
  15. А.А., Савельев В. И., Калинин А. В. Применение костных морфогенетических белков в эксперименте и клинике // Травматология и ортопедия России. —2005. — Т.1. — J№ 34. — С.46−54.
  16. В., Немцев С. Сырьевые источники и способы получения хитина и хитозана // Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. Сб. тезисов конференции. — М., 2006. — С.7−23.
  17. А.В., Котова-Лапоминская Н.В. Применение остеозамещающего материала «Вносит СР-Элкор» в хирургической стоматологии: Учебно-методическое пособие. —СПб., 2004. —28 с.
  18. Ю.С., Большакова И. Н., Карапетян Г. Э. Аскорбат хитозана в мембранном диализе гнойных ран // Современные перспективы в исследованиях хитина и хитозана. Материалы VII Международной конференции. — М., 2003. — С.157−161.
  19. Д.В. Оценка эффективности различных методов хирургического лечения одонтогенных кист челюстей: Дисс.. канд. мед. наук. — СПб., 2003. — 127 с.
  20. А.И., Корнилаева Г. В., Каримов Э. В. Биологическая активность некоторых производных сульфата хитозана // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. Материалы VII Международной конференции. — М., 2003. — С. 165−167.
  21. Д.В., Авдиенко И. Д., Ванникова Г. Е. Антибактериальная активность низкомолекулярного хитозана // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. Материалы VII Международной конференции. — М., 2003. — С.233−239.
  22. В.Г., Иорданишвилли А. К. Современные представления о репаративном остеогенезе // Материалы VII Междунар. конф. челюстно-лицевых хирургов и стоматологов. — СПб., 2002. — С.40−41.
  23. Л., Косяков В. Сорбционные свойства хитина и его производных // Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. Сб. тезисов конференции. — М., 2006. — С.217−247.
  24. И.В., Чиркин А. А. Роль биохимических исследований слюны в диагностике заболеваний // Клин. лаб. диаг. — 1998. — J№ 6. — С.18−20.
  25. А.С., Топоркова А. К. Проблемы интеграции имплантатов в костную ткань (теоретические аспекты). М.: Изд. «Техносфера», 2007. — 128 с.
  26. А.С., Паникаровский В. В., Хамраев Т. К. с соавт. Сравнительное изучение двух способов введения гранул гидроксиапатита // Новое в техническом обеспечении стоматологии. Материалы конференции стоматологов. — Е-бург, 1992. — С.118−121.
  27. Л.А., Вадалян В. А., Лагунов В. Л. Использование препарата «Коллост» на амбулаторном хирургическом стоматологическом приеме // Материалы юбилейной сессии ЦНИИС «ЦНИИ Стоматологии 40 лет. История развития и перспективы». — М., 2002. — С.105.
  28. Н.М. Особенности изменений показателей костной регенерации при сочетан-ной травме // Казанский мед. журн. — 1993. — J№ 2. — С.114−116.
  29. А.Н., Гурин Н. А., Петрович Ю. А. Карбонатгидроксиапатит как фактор структурно-функциональной организации минерализованных тканей в норме и патологии. Перспективыприменениявкостно-пластическойхирургии // Стоматология.—2009.—Т.2.— С.76−79.
  30. А.Н., Федотов А. Ю. Синтетические гранулы карбонатгидроксиапатита, их влияние на регенерацию костной ткани // «Биотехнология-2008″. Сборник тезисов конференции —М., 2008. — С.405.
  31. О.Н., Добролеж О. В., Вербицкая Н. Б. Биоцидные свойства хитозана различной степени деполимеризации // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. Материалы VII Международной конференции. — М., 2003. — С.239−241.
  32. К.С., Слесаренко Н. А., Курдюмов С. Г. с соавт. Перспективы использования остеоиндуцирующих материалов для возмещения дефектов костей в ветеринарной практике // Росс. вет. журн. — 2005. — J№ 4. — С.16−19.
  33. И.М., Петрович Ю. А. Роль СО2 в механизме репаративной регенерации костной ткани (радиоизотопное исследование) // Патол. физиол. и экспер. терапия. — 1981. — № 3. — С.28−32.
  34. Н., Макаров В., Варламов В. Антикоагулянтная активность сульфатированных производных хитозана // Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. Сб. тезисов конференции. — М., 2006. — С.302−314.
  35. К.В. Применение имплантата коллапан-гель в детской костной патологии: Автореф дисс.. канд. мед. наук. — М., 2007. — 27 с.
  36. Г. Н. Применение биокомпозиционного материала „Биоимплант“ при хирургических стоматологических вмешательствах: Автореф. дис.. канд. мед. наук. — М., 2001. — 23 с.
  37. В.Е., Багиров Ш. Т. Содержание химических элементов в смешанной нести-мулированной слюне здорового человека // Стоматология. — 1991. — № 1. — С.14−17.
  38. М., Вихорева Г., Кеченьян А. с соавт. Свойства растворов и пленок солей хитозана с разными кислотами // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. Материалы VII международной конференции — М., 2003. С.307−311.
  39. В.П., Панкратов А. С. Остеорепарация посттравматических дефектов нижней челюстиподвоздействиемгидроксиапатитаультравысокойдисперсности // Стоматология. — 1999. — JJ1. — С.37−41.
  40. Н.Н., Далев П. Г., Лазарова Д. Л. Свойства, получение и практическое применение щелочной фосфатазы // Биохимия. — 1993. — J№ 7. — С.1009−1023.
  41. С.Ю., Гиллер Л. И., Ларионов Е. В. с соавт. Использование биокомпозиционных препаратов, содержащих сульфатированные гликозаминогликаны (сГАГ) при стоматологической имплантации // Новое в стоматологии. — 1999. — J№ 2. — С.66−67.
  42. А.К., Гололобов А. К. Посттравматическая остеорепарация и методы ее оптимизации // Амбулаторная хирургия. — 2002. — Т.2. — J№ 6. — С.15−18.
  43. В.С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагностике. М.: Изд. „МЕДпресс-информ“, 2004. — 920 с.
  44. И.С., Губайдулина Е. Я., Ценик Л. Н. Предраковые состояния, опухоли, опухолеподобные поражения и кисты лица, органов полости рта, челюстей и шеи. М.: Изд. „Медицина“, 1993. — С.128−129.
  45. .С. Жизнь костной ткани. М.: Изд. „Наука“, 1979. — 174 с.
  46. О.А. Применение биогенного композиционного материала на хирургическом этапе дентальной имплантации: Дисс.. канд. мед. наук. — М., 1994. — 127 с.
  47. Л.Д., Кнубовец Р. Г. Об изоморфизме фтор-гидроксила в апатите по данным инфракрасной спектроскопии // Записки Всесоюзного минералогического общества. Вторая сессия, часть 99. — 1970. — С.609−614.
  48. В.С., Фадеева И. В., Гурин А. Н. с соавт. Влияние содержания карбонат-групп в карбонатгидроксиапатитовойкерамикенаееповедениеinvivo // Неорганическиематериалы.— 2009. — Т.45. — J№ 3. — С.373−378.
  49. А.А., Белоус А. М., Панков Е. Я. Репаративная регенерация кости. М.: Изд. „Медицина“, 1972. —232 с.
  50. Е., Вортингтон П. (Kruger E., Worthington P.) Хирургическое лечение кист // Квинтэссенция. — 1991. — №>5/6. — С.381−395.
  51. О.Л. Формирование микроструктуры и свойств керамики на основе гидрокси-апатита и трикальцийфосфата: Автореф. дисс.. канд. тех. наук. — М., 2007. — 25 с.
  52. А.А., Григорьян А. С., Рабухина Н. А. с соавт. Хирургическая тактика и особенности операций имплантации при малом объеме костной ткани челюстей. Пособие для врачей. М.: Изд. „ГЭОТАР-МЕД“, 2003. — 16 с.
  53. И.В. Особенности клинического течения и лечения хронического верхушечного периодонтита у больных со вторичной иммунной недостаточностью: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М., 1993. — 18 с.
  54. С.Г. Гидроксиапол и колапол: применение в стоматологической хирургической практике // Военно-медицинский журнал. — 1997. — №"6. — С.48−49.
  55. С.Г., Воложин А. И., Истратнов Л. П. с соавт. Создание новых биосовместимых препаратов гидроксиапол и колапол // Третий Российский национальный конгресс „Человек и лекарство“. Тезисы докладов. — М., 1996. — С.31.
  56. Н.В., Тетерин ГА., Комарова Н. М. с соавт. Синтез и применение в стоматологии материалов на основе гидрокси- и карбонатапатитов //Вестник стоматологии. — 1995. —J№ 2. — С.89−93.
  57. Г. И. Морфологические и клинические аспекты репаративной регенерации опорных органов и тканей. М.: Изд. „Медицина“, 1996. — 208 с.
  58. А.Н. Хирургическое лечение околокорневых кист и хронического периодонтита с сохранением анатомической формы и функции зуба: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — Киев, 1990. — 22 с.
  59. В.К. Об особенностях минерализующей функции слюны // Стоматология. — 1983. — №№ 6. — С.5−8.
  60. В.К. Биологически активные синтетические кальцийфосфатсодержащие материалы для стоматологии // Стоматология. — 1996. — JJ5. — С.4−6.
  61. В.К., Воложин А. И., Андреев Ю. Н. с соавт. Применение новых препаратов —гидроксиапола и колапола в клинике // Стоматология. — 1995. — J№ 5. — С.69−71.
  62. В.Ф. Применение пористого минералонаполненного полилактида с мезенхи-мальными стромальными клетками костного мозга для стимуляции остеогенеза (экспериментальное исследование): Дисс.. канд. мед. наук. — М., 2008. — 117 с.
  63. А., Солнцев А., Большаков И. с соавт. Применение хитозана в лечении воспалительных заболеваний ротовой полости // Хитин и хитозан. Материалы VIII международной конференции. — М., 2006. — С.224−227.
  64. Ю.М., Чиркова Т. Д., Воложин А. И. Новый отечественный препа-ратгидроксиаполпри хирургическомлечении пародонтита // Зубоврачебный вестник.— 1993. — J№ 3. — С.19−22.
  65. И.Н., Петрович Ю. А., Сумароков Д. Д. Биохимия минерализованной ткани полости рта: Учебное пособие для студентов медицинских ВУЗов. — М., 2001. — С.22−67.
  66. МецлерД.Химическиереакциивживойклетке.Биохимия.М.:Изд."Мир», 1980.—Т.1. — 250 с.
  67. .И., Беневоленский Д. С., Тишенина Р. С. Биохимические показатели метаболических нарушений в костной ткани. Часть II. Образование кости // Клин. лаб. диаг. — 1999. — J№ 4. — С.11−17.
  68. Т., Шепель Т., Сахарова Т. Производство и применение хитина и хитозана // Тезисы доклада IV Всероссийской конференции. — 1995. — С.17−18.
  69. С.А. Морфологические основы применения биоматериалов в регенеративной хирургии: Автореф. дис.. док. мед. наук. — Уфа, 2000. — 49 с.
  70. В.Ю., Федяев И. М. Аспекты оптимизации репаративного остеогенеза при ранней дентальной имплантации. Монография. Самара: Изд. «Содружество», 2006. — 150 с.
  71. И.В., Зыкова Л. Д. Экспериментальное обоснование применения препаратов хитозана для лечения хронического периодонтита // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. Материалы VII международной конференции. — М., 2003. — С.184−185.
  72. А.А. Остеопластические материалы в современной пародонтоло-гии // Новое в стоматологии. — 1999. — JJ6. — С.39−52.
  73. А.С., Древаль А. С., Пылаев В. М. с соавт. Использование остеопластичес-ких материалов при лечении нагноившейся костной раны нижней челюсти в эксперименте // Росс. стом. журн. — 2000. — JJ5. — С.4−6.
  74. А.С. Лечение больных с переломами нижней челюсти с использованием «Остим 100» как стимулятора репаративного остеогенеза: Дисс.. канд. мед. наук. — М., 1994 — 169 с.
  75. А.В. Клинико-экспериментальное обоснование применения костноматрич-ных имплантатов при лечении воспалительных и деструктивных заболеваний челюсти: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — Ереван, 1999. — 20 с.
  76. А., Бондарь Ю., Мирсаев Т. Стоматологические материалы из хитозана и кар-боксиэтилхитозана // Хитин и хитозан. Материалы VIII международной конференции. —М., 2006. — С.233−236.
  77. Ю.А., Григорьянц Л. А., Гурин А. Н., Гурин А. Н. Хитозан: структура и свойства. Использование в медицине // Стоматология — 2008 — Т.87 — JJ4 — С.72−78.
  78. Ю.А., Гурин Н. А., Гурин А. Н., Буданова У. А. Структура и свойства системы RGD-пептидов и интегринов. Значение для костной ткани // Российский стоматологический журнал. — 2009. — JJ2. — в печати.
  79. Ю.А., Гурин А. Н., Гурин Н. А. с соавт. Перспективы применения в стоматологии полифункциональных биополимеров хитозана и альгината //Росс. стом. журн. — 2008. — J№ 2. — С.66−73.
  80. Ю.А., Гурин Н. А., Гурин А. Н. с оавт. RGD-пептиды и интегрины. Дизинтегрины. Их роль при остеопорозе // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. — 2009. — J№ 2. — в печати.
  81. Ю.А., Гурин А. Н., Комлев В. С. с соавт. Использование карбонатов в тканевой инженерии кости // Российский стоматологический журнал. — 2008. — J№ 5. — С.65−69.
  82. Ю.А., Дмитриев И. М. Включение 14С. карбоната в зубы и кости белых крыс, содержащихся на обычной и кариесогенной диете // Стоматология. — 1968. — J№ 5. — С.9−12.
  83. Ю.А., Киченко С. М. Влияние нарушения иннервации на активность щелочной и кислой фосфатаз кости при регенерации нижней челюсти после перелома // Стоматология. — 1987. — JJ3. — С.9−11.
  84. Ю.А., Ярема И. В., Киченко С. М., Гурин А. Н. Значение клеток крови фиброцитов при травме, развитии рубца и келоида // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. — 2008. — JJ4. — С.31−34.
  85. Л.В., Игнатов Г. Г., Анфалов В. В. О некоторых медико-биологических свойствах хитозана // Современные перспективы в использовании хитина и хитозана. Материалы VII Международной конференции. — М., 2003. — С.187−190.
  86. И.М., Григорьянц Л. А., Герчиков Л. Н., Гурин А. Н., Островский А. Д. Опыт клинического применения препарата Пародонтоцид при патологии слизистой оболочки рта // Стоматолог-практик. — 2008. — JJ1. — С.42−43.
  87. И.М., Лукичева Л. С., Дмитриева Н. А. Возможность использования гидроксиапатита ультравысокой дисперсности «Остим-100» при лечении хронического периодонтита // Клиническая стоматология. — 1999. — JJ4. — С.28−30.
  88. Н.А., Аржанцев А. П. Рентгенодиагностика в стоматологии. М.: Изд. «МИА», 1999. — 451 с.
  89. Н.В. Комплекс методов оценки состояния неспецифической резистентности организма по иммунологическим показателям слюны // Гигиена и санитария. — 1992. — J2. — С.67−69.
  90. Д.Д., Гуткин Д. В., Швырков М. Б. Зависимость остеоиндуктивной активности костного матрикса от массы и площади трансплантата // Стоматология. — 1991. — J2. — С.9−11.
  91. Л.М. Слюнные железы (биохимия, физиология, клинические аспекты). Томск: Изд. «НТЛ», 2002. — 124 с.
  92. Л.М., Непорада К. С. Биохимия органов полости рта: Учебное пособие для ВУЗов. — Полтава, 2007. — 89 с.
  93. Ю.Д. Развитие неорганической химии как фундаментальной основы создания новых поколений функциональных материалов //Успехи химии. —2004. — Т.73. — С.899−916.
  94. В.В. Исследование биосовместимости свойств имплантируемых материалов // Актуальные проблемы стоматологии. — 1998. — C.103−104.
  95. О.А., Лукиных Л. М. Динамика биохимических показателей слюны при лечении верхушечного периодонтита // Нижегородский мед. журн. — 2001. — JJ1. — С.60−63.
  96. Ю.Г. Сравнительная оценка некоторых методов заживления костных полостей после оперативных вмешательств по поводу одонтогенных кист (экспериментальное и клиническое исследование: Дис.. канд. мед. наук. — СПб (Л.)., 1972. — 251 с.
  97. Э.В., Десятниченко К. С., Докторов А. А. с соавт. Репаративные процессы в нижней челюсти кроликов при использовании остеопластического материала «Индост» пластины с мезенхимальными стромальными клетками // Cathedra. —2008. — Т.7. — J1 — С.16−20.
  98. Э.В. Анализ репаративных процессов в нижней челюсти при использовании модифицированных остеопластических материалов серии «Гапкол» с мезенхимальными стволовыми клетками: Дис.. канд. мед. наук. — М., 2008. — 135 с.
  99. И.П. Применение коллагеновой композиции в хирургическом лечении воспалительных заболеваний пародонта: Автореф. дис.. канд. мед. наук. — 1997. — 23 с.
  100. В.К. Обоснование использования биорезорбируемых средств при непосредственной и ранней отсроченной дентальной имплантации: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М, 2007. — 22 с.
  101. ., Искакбаев М. И. Опыт использования консервированных ксено- и аллобрефотрансплантатов в клинике // Брефопластика в травматологии и ортопедии. Сб. научн. Трудов (ЦИТО). — М., 1977. — С.37−38.
  102. Т.К. Применение гранулята керамики гидроксиапатита для замещения дефектов костной ткани челюсти // Автореф. дисс. канд. мед. наук. — М, 1995. — 23 с.
  103. Ю.И., Сажина Т. Г., Воложин А. И. Иммунный статус больных, перенесших реконструктивные операции на челюсти с использованием разных типов трансплантатов // Стоматология. — 1995. — J№ 1. — С.46−47.
  104. Г. И. Изучение анионных группировок в апатите методом ИК-спектроскопии: Дис.. канд. хим. наук. — 1981. — 145 с.
  105. С.Н. Противовирусные свойства хитозана // Хитин и хитозан. Получение, свойства, применение под ред. Кочеткова С. Н.: М.: Изд. «Наука», 2002. — С.327−339.
  106. В.Б., Петрович Ю. А. Естественная реактивность организма, лейкоцитарный индекс интоксикации и щелочная фосфатаза слюны в ранней диагностике воспалительных осложнений переломов нижней челюсти // Стоматология. — 1991. — J№ 3. — С.19−21.
  107. .В., Цирельникова Т. Г., Жуков В. А. Колебания активности щелочной фосфатазы и содержания фосфора в крови здоровых и больных язвенной болезнью // Клин. лаб. диаг. — 1995. — J№ 1. — С.12−13.
  108. С.А. Применение хитозана в лечении острых воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области: Дисс.. канд. мед. наук. — Тверь., 2002. — 196 с.
  109. И.В., Петрович Ю. А., Киченко С. М., Гурин А. Н. Перспективы использования уникального биополимера хитозана при местном лечении ран кожи в хирургии // Хирург. — 2008. — JJ4. — С.40−46.
  110. А.В., Осипян З. М., Кражан С. М. с соавт. Особенности остеоиндуктивно-го процесса при его стимуляции посредством введения гидроксиапатита // Актуальные вопросы медицины. Сб. тезисов. — Ставрополь, 1996. — С.9−10.
  111. А.В., Осипян З. М., Иванов И. В. с соавт. Зависимость интенсивности остеогенеза от степени интеграции имплантируемого гидроксиапатита // Актуальные вопросы медицины. Сб. тезисов. — Ставрополь, 1996. — С.11−12.
  112. С.М. Изменение репаративной регенерации кости после имплантации де-протеинизированной костной ткани и синтетического гидроксиапатита: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. — М., 1995. — 28 с.
  113. Anderson M., Dhert W., de Bruijn J. et al. Critical size defect in the goat’s os ilium. A model to evaluate bone grafts and substitutes // Clin. Orthop. — 1999. — Vol.364. — P.231−239.
  114. Allegrini S. Jr., Yoshimoto M., Salles M.B. Bone regeneration in rabbit sinus lifting associated with bovine BMP // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. —2004. — Vol.68. — JJ2. — P.127−131.
  115. Altankov G., Grinnell F., Groth T. Studies on the biocompatibility of materials: Fibroblast reorganization of substratum-bound fibronectin on surfaces varying in wettability // J. Biomed. Mater. Res. — 1996. — Vol.30. — P.385−391.
  116. Artzi Z., Givol N., Rohrer M.D. et al. Qualitative and quantitative expression of bovine bonemineralin experimentalbone defects. Part2:Morphometric analysis // J.Periodontol.— 2003. -Vol.74. — JJ8. — P.1153−1160.
  117. Artzi Z., Nemcovsky C.E., Tal H. Efficacy of porous bovine bone mineral in various types of osseous deficiencies: Clinical observations and literature review // Int. J Periodontics Restorative Dent. — 2001. — Vol.21. — JJ4. — P.395−405.
  118. Asikainen A.J., Noponen J., Lindqvist C. et al. Tyrosine-derived polycarbonate membrane in treating mandibular bone defects. An experimental study // J. R. Soc. Interface. — 2006. — Vol.3. — JJ.10. — P.629−635.
  119. Bakos D., Soldan M., Hernandez-Fuentes I. Hydroxyapatite-collagen-hyaluronic acid composite // Biomaterials. — 1999. — Vol. 20. — P. 191−195.
  120. Balasubramani M., Kumar T.R., Babu M. Skin substitutes: A review // Burns. — 2001. — Vol.27. — P.534−544.
  121. Baquey C., Barbie C., More N. et al. In vivo study of the biostability of a cellulose material // 4th World Biomaterials Congr. — Berlin, Germany — 1992. — P.365.
  122. Barbie C., Chauveaux D., Barthe X. et al. Biological behaviour of cellulosic materials after bone implantation: Preliminary results // Clin. Mater. — 1990. — Vol.5. — P.251−258.
  123. Barinov S., Komlev V. Calcium phosphate based bioceramics for bone tissue engineering. Switzerland: Trans Tech Publications Ltd. — 2008. — Vol.48. — Materials Science Foundations. — 162 p.
  124. Barralet J., Akao M., Aoki H. et al. Dissolution of dense carbonate apatite subcutaneously implanted in Wistar rats // J. Biomed. Mater. Res. — 2000. — Vol.49. — JJ2. — P.176−182.
  125. Barrias C.C., Ribeiro C.C., Sa Miranda M.C. et al. Effect of calcium phosphate addition to alginate microspheres: Modulation of enzyme release kinetics and impovement of osteoblastic cell adhesion // Key Eng. Mater. — 2005. — Vol.284. — P.689−692.
  126. Ben-nissan B. Natural bioceramics: from coral to bone and beyond // Current opinion in solid state and material science. — 2003. — Vol.7. — P.283−288.
  127. Benke D., Olah A., Mohler H. Protein-chemical analysis of Bio-Oss bone substitute and evidence on its carbonate content // Biomaterials. — 2001. — Vol.22. — P.1005−1012.
  128. Bhatnagar R.S., Qian J.J., Wedrychowska A. et al. Design of biomimetic habitats for tissue engineering with P-15, a synthetic peptide analogue of collagen // Tissue Eng. — 1999. — Vol.5. — P.53−65.
  129. Bruneval F., Donadio D., Parrinello M. Molecular dynamics study of the solvation of calcium carbonate in water // J. Phys. Chem. B. — 2007. — Vol.111. — JJ42. — P.12 219−12 227.
  130. Buettner H., Bartley G.B. Tissue breakdown and exposure associated with orbital hy-droxyapatite implants // Am. J. Ophthalmol. — 1992. — Vol.113. — P.669−673.
  131. Bumgardner J.D., Chesnutt B.M., Yuan Y. et al. The integration of chitosan-coated titanium in bone: An in vivo study in rabbits // Implant Dent. — 2007. — Vol.16. — JJ1. — P.66−79.
  132. Bumgardner J.D., Wiser R., Elder S.H. et al. Contact angle, protein adsorption and osteoblast precursor cell attachment to chitosan coatings bonded to titanium // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. — 2003. — Vol.14. — P.1401−1409.
  133. Burchardt H. The biology of bone graft repair // Clin. Orthop. Res. — 1983. — Vol.174. — P.28−42.
  134. Calvo M.S., Eyre R., Gundberg C.M. Molecular basis and clinical application of biological markers of bone turnover // Endocr. Rev. — 1996. — Vol.17. — J№ 4. — P.333−368.
  135. Campoccia D., Montanaro L., Arciola C.R. The significance of infection related to orthopedic devices and issues of antibiotic resistance // Biomaterials. — 2006. — Vol.27. — P.2331−2339.
  136. Chatelet C., Damour O., Domard A. Influence of the degree of acetylation on some biological properties of chitosan films // Biomaterials. — 2001. — Vol.22. — P.261−268.
  137. Chickerur N.S., Tung M.S., Brown W.E. A mechanism for incorporation of carbonate into apatite // Calcif. Tissue Int. — 1980. — Vol.32. — JJ1. — P.55−62.
  138. Cho B.C., Kim T.G., Yang J.D. et al. Effect of calcium sulfate-chitosan composite: Pellet on bone formation in bone defect //J. Craniofac. Surg. — 2005. — Vol.16. — JJ.2. — P.213−224.
  139. Cho B.C., Park J.W., Baik B.S. et al. The role of hyaluronic acid, chitosan, and calcium sulfate and their combined effect on early bony consolidation in distraction osteogenesis of a canine model // J. Craniofac. Surg. — 2002. — Vol.13. — P.783−793.
  140. Chowdhury E.H., Maruyama A., Kano A. et al. pH-sensing nano-crystals of carbonate apatite: Effects on intracellular delivery and release of DNA for efficient expression into mammalian cells // Gene. — 2006. — Vol.376. — P.87−94.
  141. Combes C., Rey C. Calcium carbonate biphasic cement concept to control cement resorption // Eur. Cells Matrer. — 2006. — Vol.11. — Suppl.1. — P.8.
  142. Coombes A.G., Meikle M.C. Resorbable synthetic polymers as replacements for bone graft // Clin. Mater. — 1994. — Vol.17. — JJ1. — P.35−67.
  143. Cortellini P., Maurizio S.T., Lang N.P. The simplified papilla preservation flap in the regenerative treatment of deep intrabony defects: Clinical outcomes and postoperative morbidity // J. Periodontol. — 2001. — Vol.72. — P.1702−1712.
  144. D’Ayala G.G., De Rosa A., Laurienzo P. et al. Development of a new calcium sulphate-based composite using alginate and chemically modified chitosan for bone regeneration // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2007. — Vol.81. — JJ.4. — P.811−820.
  145. De Biase P., Capanna R. Clinical applications of BMPs // Injury. — 2005. — Vol.36S. — P. S43-S46.
  146. De Taillac L.B., Fricain J.C., Barthe N. et al. Validation du cocept de materiaux hybrids a base de cellulose macroporeuse — application a l’odontologie // Les Cahiers de l’ADF. —2004. — Vol.16. — P.18−25.
  147. De Taillac L.B., Porte-Durrieu M.C., Labrugere C. et al. Grafting of RGD peptides to cellulose to enhance human osteoprogenitor cells adhesion and proliferation //Compos. Sci. Technol. — 2004. — Vol.64. — P.775−915.
  148. Deeb M., Holmes R.E. Tissue response to facial contour augmentation with dense and porous hydroxylapatite in rhesus monkeys // J. Oral Maxillofac. Surg. — 1989. — Vol.47. — JJ12. — P.1282−1289.
  149. Deutsch D., Pe’er E. Development of enamel in human fetal teeth // J. Dent. Res. — 1982. — Spec No. — P.1543−1551.
  150. Dietze S., Bayerlein T., Proff P. et al. The ultrastructural and processing properties of Straumann bone ceramic and Nanobone // Folia Morphol. — 2006. — Vol.65. — JJ1. — P.63−65.
  151. Dziedzic D.M., Savva I.H., Wilkinson D.S. et al. Osteoconduction on, and bonding to, calcium phosphate ceramic implants // Mater. Res. Soc. Symp. Proc. — 1996. — Vol.414. — P.147−156.
  152. Ding S.J. Preparation and properties of chitosan-calcium phosphate composites for bone repair // Dent. Mater. J. — 2006. — Vol.25. — JJ.4. — P.706−712.
  153. Doi Y., Shiburani T., Moriwaki Y. et al. Sintered carbonate apatites as bioresorbable bone substitutes // J. Biomed. Mater. Res. A. — 1998. — Vol.39. — P. 603−610.
  154. Doyle B.D., Csipo B.E.G., Blont E.R. Infrared spectroscopy of collagen and collagen-like polypeptides // Biopolymers. — 1975. — Vol.14. — P.937−957.
  155. Eastoe J. The amino acid composition of protein from oral tissue. The matrix proteins in dentinal and enamel from developing human deciduos teeth // Arch. Oral. Biol. — 1963. — Vol.8. — P.633−652.
  156. Eghtedari M., Kazemzadeh E.Sh. Beta-tricalcium phoshate granules as an alternative material for occular implantation // Iran J. Med. Sci. — 2006. — Vol.31. — JJ3. — P.159−164.
  157. Elbert D.L., Hubbell J.A. Conjugate addition reactions combined with free-radical cross-linking for the design ofmaterials for tissue engineering // Biomacromolecules.—2001.—Vol.2. — J2. — P.430−441.
  158. Elbert D.L., Hubbell J.A. Surface treatments of polymers for biocompatibility // Annu. Rev. Mater. Sci. — 1996. — Vol.26. — P.365−394.
  159. Erdemir E.O., Haliloglu S. The enzyme activity of alkaline phosphatase in gingival crevic-ular fluid of smokers and non-smokers with chronic periodontitis // Journal Of Hacettepe Faculty Of Dentistry. — 2006. — Vol.30. — JJ3. — P.25−32.
  160. Eune J.-J., Lee E.-S., Rim J.-S. et al. Changes of serum alkaline phosphatase after enucleation of cysts in the jaws // J. Kor. Oral. Maxillofac. Surg. — 2005. — Vol.31. — P.417−421.
  161. Fleet M.E. Infrared spectra of carbonate apatites: v2-region bands // Biomaterials. — 2009 Vol.30. — JJ7. — P.1287−1298.
  162. Frayssinet P., Rouquety N., Fages J. et al. The influence of sintering temperature on the proliferation of fibroblastic cells in contact with hydroxyapatite bioceramics // J. Biomed. Mater. Res. — 1997. — Vol.35. — P.337−347.
  163. Finisie M.R., Josue A., Favere V.T. et al. Synthesis of calcium-phosphate and chitosan bioceramics for bone regeneration // An. Acad. Bras. Cienc. — 2001. — Vol.73. — JJ.4. — P.525−532.
  164. Fu J., Ji J., Yuan W. et al. Construction of anti-adhesive and antibacterial multilayer films via layer-by-layer assembly of heparin and chitosan // Biomaterials. — 2005. — Vol.26. — P.6684−6692.
  165. Gang Z., Yubao L., Li Z. et al. The study of tri-phasic interactions in nano-hydroxyapatite-konjac glucomannan-chitosan composite // J. Mater. Sci. — 2007. — Vol.42. — P.2591−2597.
  166. Gerlier D., Thomasset N. Use of MTT colorimetric assay to measure cell activation // J. Immunol. Methods. — 1986. — Vol.94. — №>1−2. — P.57−63.
  167. Gibson I.R., Bonfield W. Novel synthesis and characterization of an AB-type carbonate-substituted hydroxyapatite // J. Biomed. Mater. Res. —2002. — Vol.59. — P.697−708.
  168. Gomez E., Matrin M., Arias J. et al. Clinical Applications of Norian SRS (calcium phosphate cement) in craniofacial reconstruction in children: Our experience at hospital La Paz since 2001 // J. Oral Maxillofac. Surg. — 2005. — Vol.63. — P.8−14.
  169. Goustin A.S., LeofE.B., Shipley G.D. et al. Growth factors and cancer // Cancer Res. — 1986. — Vol.46. — № 3. — P.1015−1029.
  170. Gross U., Muller-Mai C., Voigt C. The tissue response on cellulose cylinders after implantation in the distal femur of rabbits // 4th World Biomaterials Congr. — Berlin, Germany, 1992. — P.192.
  171. Guizzardi S., Montanari C., Migliaccio S. et al. Qualitative assessment of natural apatite in vitro and in vivo // Applied Biomaterials. — 2000. — Vol.53. — № 3. — P.227−234.
  172. Guillemin G., Meunier A., Dallant P. et al. Comparison of coral resorption and bone apposition with two natural corals of different porosities // J. Biomed. Mater. Res. — 1989. — Vol.23. — P.765−779.
  173. Gurin A.N., Fadeeva I.V., Smirnov VV., Gurin N.A., Barinov S.M., Komlev V.S. In vivo evaluation of carbonated hydroxyapatite scaffolds for bone tissue engineering // Tissue Engineering: Part A. — 2009. — Vol.15. — P. O11-O12.
  174. Gurin A.N., Fedotov A.Y. Carbonate hydroxyapatite synthetic granules and their influence on bone regeneration // Conference proceedings «Biotechnology. Water and foodstuffs"—2008. — P.405.
  175. Habibovic P., de Groot K. Osteoinductive biomaterials — properties and relevance in bone repair // J. Tissue Eng. Regen. Med. — 2007. — Vol.1. — P.25−32.
  176. Hallman M., Thor A. Bone substitutes and growth factors as an alternative-complement to autogenous bone for grafting in implant dentistry// Periodontology 2000. —2008. — Vol.47. — P.172−192.
  177. Harrison J., Melville A.J., Forsythe J.S. et al. Sintered hydroxylfluorapatites-IV: The effect of fluoride substitutions upon colonization of hydroxyapatites by mouse embryonic stem cells // Biomaterials. — 2004. — Vol.25. — P.4977−4986.
  178. Hempel U., Reinstorf A., Poppe M. et al. Proliferation and differentiation of osteoblasts on Biocement-D modified with collagen type I and citric acid // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. —2004. — Vol.71. — № 1. — P.130−143.
  179. Hench L.L., Paschall H.A. Direct chemical bond of bioactive glass-ceramic materials to bone and muscle // J. Biomed. Mater. Res. — 1973. — Vol.7. — № 3. — P.25−42.
  180. Hersel U., Dahmen C., Kessler H. RGD modified polymers: Biomaterials for stimulated cell adhesion and beyond // Biomaterials. — 2003. — Vol.24. — P.4385−4415.
  181. Hetrick E.M., Schoenfisch M.H. Reducing implant-related infections: Active release strategies // Chem. Soc. Rev. — 2006. — Vol.35. — P.780−789.
  182. Heux L., Brugnerotto J., Desbrieres J. et al. Solid state NMR for determination of degree of acetylation of chitin and chitosan // Biomacromolecules. — 2000. — Vol.1. — JJ4. — P.746−751.
  183. Hing K.A. Bone repair in the twenty-first century: biology, chemistry of engineering? // Phil. Trans. R. Soc. Long. A. — 2004. — Vol.362. — P.2821−2850.
  184. Hirano S., Zhang M., Nakagawa M. et al. Wet spun chitosan-collagen fibers, their chemical N-modifications and blood compatibility // Biomaterials. — 2000. — Vol.21. — P.997−1003.
  185. Ho M.H., Wang D.M., Hsieh H.J. et al. Preparation and characterization of RGD-immobi-lized chitosan scaffolds // Biomaterials. — 2005. — Vol.26. — P.3197−3206.
  186. Hsieh С.У., Tsai S.P., Wang D.M. et al. Preparation of gamma-PGA-chitosan composite tissue engineering matrices // Biomaterials. — 2005. — Vol.26. — JJ28. — Р.5617−5623.
  187. Hsu S.H., Whu S.W., Hsieh S.C. et al. Evaluation of chitosan-alginate-hyaluronate complexes modified by an RGD-containing protein as tissue-engineering scaffolds for cartilage regeneration // Artificial Organs. —2004. — Vol.28. — J"8. — P.693−703.
  188. Huffman E.W.D.J., Keil R.L. Determination of trace organic carbon and nitrogen in the presence of carbonates in anorganic bovine bone graft materials // Microchemical J. — 2003. — Vol.74. — P.249−256.
  189. Huh M.W., Kang I.K., Lee D.H. et al. Surface characterization and antibacterial activity of chitosan-grafted poly (ethylene terephthalate) prepared by plasma glow discharge // J. Appl. Polym. Sci. — 2001. — Vol.81. — P.2769−2778.
  190. John H.D., Wenz B. Histomorphometric analysis of natural mineral for maxillary sinus augmentation // Int. J. Oral Maxillofac. Implants. —2004. — Vol.19. — P.199−207.
  191. Jordan M., Schallhorn A., Wurm F.M. Transfecting mammalian cells: Optimization of critical parameters affecting calcium-phosphate precipitate formation // Nucleic. Acids. Res. — 1996. — Vol.24. — P.596−601.
  192. Jiang T., Abdel-Fattah W.I., Laurencin C.T. In vitro evaluation of chitosan-poly (lactic acid-glycolicacid)sinteredmicrospherescaffoldsforbonetissueengineering // Biomaterials.—2006.— Vol.27. — JJ28. — P.4894−4903.
  193. Ikada Y. Current problems and future trends of polymeric biomaterials for orthopaedic surgery // Nippon Seikeigeka Gakkai Zasshi. — 1996. — Vol.70. — JJ1. — P.28−39.
  194. Ikinci G., Senel S., Akincibay H. et al. Effect of chitosan on a periodontal pathogen Porphyromonas gingivalis // Int. J. of Pharmaceuticals. —2002. — Vol.235. — P.121−127.
  195. Inan5 B., El? in E.A., Ko? A. et al. Encapsulation and osteoinduction of human periodontal ligament fibroblasts in chitosan-hydroxyapatite microspheres // J. Bimed. Mater. Res. A. — 2007. — Vol.82. — JJ4. — P.917−926.
  196. Indovina A., Block M.S. Comparison of 3 bone substitutes in canine extraction sites // J. Oral Maxillofac. Surg. — 2002. — Vol.60. — P.53−58.
  197. Kawakami T., Antoh M., Hasegawa H. et al. Experimental study on osteoconductive properties of a chitosan-bonded hydroxyapatite self-hardening paste // Biomaterials. — 1992. — Vol.13. — P.759−763.
  198. Kim I.S., Park J.W., Kwon I.C. et al. Role of BMP, betaig-h3, and chitosan in early bony consolidationindistractionosteogenesisinadogmodel // Past.Reconstr.Surg.—2002.—Vol.109.— J6. — P.1966−1977.
  199. Kim I.Y., Seo S.J., Moon H.S. et al. ^^san and its derivatives for tissue engineering applications // Biotechnology Advances. — 2008. — Vol.26. — P.1−21.
  200. King G.N., Cochran D.L. Factors that modulate the effects of bone morphogenetic protein-induced periodontal regeneration: A critical review // J. Periodontol. — 2002. — Vol.73. — J8. — P.925−936.
  201. Komlev V.S., Barinov S.M. Porous hydroxyapatite ceramics of bi-modal pore size distribution // J. Mater. Sci.: Mater. Med. — 2002. — Vol.13. — P.295−299.
  202. Kroese-Deutman H.C., van der Dolder J., Spauwen P.H. et al. Influence of RGD-loaded titanium implants on bone formation in vivo // Tissue Engineering. —2005. — Vol.11. — P.1867−1875.
  203. Kubler A., Neugebauer J., Oh J.H. et al. Growth and proliferation of human osteoblasts on different bone graft substitutes. An in vitro study // Implant Dent. — 2004. — Vol.13. — P.171−179.
  204. Landy E., Celotti G., Logroscino G. et al. Carbonated hydroxyapatite as bone substitute // J. Europ. Cer. Soc. — 2003. — Vol.23. — P.2931−2937.
  205. Lane J.M., Tomin E., Bostrom M.P. Biosynthetic bone grafting // Clin. Orthop. — 1999. — Vol.367(suppl.). — P. S107-S117.
  206. Le Baron R.G., Athanasiou K.A. Extracellular Matrix Cell Adhesion Peptides: Functional Applications in Orthopedic Materials // Tissue Engineering. — 2000. — Vol.6. — JJ2. — P.85−103.
  207. Le Geros R.Z. Calcium phosphates in oral biology and medicine // Monogr. Oral Sci. — 1991.— Vol.15. — P.1−201.
  208. Le Geros R.Z., Trautz O.R., LeGeros J.P. et al. Apatite crystallites: effects of carbonate on morphology // Science. — 1967. — Vol.155. — .J3768. — P.1409−1411.
  209. Le Guehennec L., Goyenvalle E., Aguado E. et al. Small-animal models for testing macro-porousceramicbone substitutes // J. Biomed. Mater. Res. PartB:Appl. Biomater.—2005.—Vol.72B. — P.69−78.
  210. Le Guehennec L., Layrolle P., Daculsi G. A review of bioceramics and fibrin sealant // Europ. Cells Mater. — 2004. — Vol.8. — P.1−11.
  211. Li S.T. NuOss, a bone grafting material for oral surgery: A comparative study with Bio-Oss // PURGO Tissue Bank. URL: http://www.purgo.co.kr/data/NuOss%20comparison%20Abstract. doc (дата обращения 15.01.2009).
  212. Li T., Shi X.W., Du Y.M. et al. Quaternized chitosan-alginate nanoparticles for protein delivery // J. Biomed. Mater. Res. Part A. — 2007. — Vol.83. — JJ2. — P.383−390.
  213. Liao S., Wanga W., Uo M. A three-layered nano-carbonated hydroxyapatite/collagen/ PLGAcompositemembraneforguidedtissueregeneration // Biomaterials.—2005.—Vol.26.—JJ36.— P.7564−7571.
  214. Lin Y.H., Mi F.L., Chen C.T. et al. Preparation and characterization of nanoparticles shelled with chitosan for oral insulin delivery //Biomacromolecules. — 2007. — Vol.8. — JJl. — Р.146−152.
  215. Lindell J., Girard P. Muller N. et al. Calfection: A novel gene transfer method for suspen-tion cells // Biochim. Biophys. Acta. — 2004. — Vol.1676. — P.155−161.
  216. Linovitz R.J., Peppers T.A. Use of an advanced formulation of beta-tricalcium phosphate as a bone extender in interbody lumbar fusion // Orthopedics. —2002. — Vol.25. — P. s585-s589.
  217. Livingston T.L., Gordon S., Archambault M. et al. Mesenchymal stem cells combined with biphasiccalciumphosphateceramicspromoteboneregeneration // J. Mater. Sci. Mater. Med.—2003— Vol.14. — JJ3. — P.211−218.
  218. Livingston T.L., Daculsi G., El Kalay M. et al. Osteogenic activity of human mesenchymal stem cells in vivo on calcium phosphate ceramics // American Society for Artificial Internal Organs J. — 2000. — Vol.46. — JJ2. — P.238.
  219. Lopez-Lacomba J.L., Garcia-Cantalejo J.M., Sanz Casado J.V. et al. Use of rhBMP-2 ac-tivatedchitosanfilmstoimproveosseointegration // Biomacromolecules.—2006.—Vol.7.—JJ3.— P.792−798.
  220. Luchetti R. Corrective osteotomy of malunited distal radius fractures using carbonated hy-droxyapatite as an alternative to autogenous bone graft // J. Hand Surg. —2004. — Vol.29A. — P.825−834.
  221. Mackintosh E.E., Patel J.D., Marchant R.E. et al. Effects of biomaterial surface chemistry on the adhesion and biofilm formation of Staphylococcus epidermidis in vitro // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2006. — Vol.78. — P.836−842.
  222. Madihally S.V., Matthew H.W.T. Porous chitosan scaffold for tissue engineering // Biomaterials. — 1999. — Vol.20. — P.1133−1142.
  223. Maeda H., Kasuga T., Hench L.L. Preparation of poly (L-lactic acid)-polysiloxane-calcium carbonate hybrid membranes for guided bone regeneration//Biomaterials. —2006. — Vol.27. — P.1216−1222.
  224. Mah J., Hung J., Wang J. et al. The efficacy of various alloplastic bone grafts on the healing of rat calvarial defects // Europ. J. Orthodont. —2004. — Vol.26. — P.475−482.
  225. Maniukiewicz W., Modrzejewska Z., Massuger L. et al. X-ray powder diffraction study of hydrogel chitosan membranes // Acta Cryst. — 2006. — Vol. A62. — P. s235.
  226. Mann B.K., Tsai A.T., Scott-Bruden T. et al. Modification of surfaces with cell adhesion peptides alters extracellular matrix deposition // Biomaterials. — 1999. — Vol.20. — P.2281−2286.
  227. Martin H.J., Schulz K.H., Bumgardner J.D. et al. XPS study on the use of 3-aminopropyltri-ethoxysilane to bond chitosan to a titanium surface // Langmuir. —2007. — Vol.23. — JJ12. — P.6645−6651.
  228. Martson M., Viljanto J., Hurme T. et al. Biocompatibility of cellulose sponge with bone // Eur. Surg. Res. — 1998. — Vol.30. — P.426−432.
  229. Mathur K.K., Tatum S.A., Kellman R.M. Carbonated apatite and hydroxyapatite reconstruction // Arch. Facial. Plast. Surg. — 2003. — Vol.5. — JJ5. — P.379−383.
  230. Matsunaga T., Yanagiguchi K., Yamada S. et al. Chitosan monomer promotes tissue regeneration on dental pulp wounds // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2006. — Vol.76. — P.711−720.
  231. Melville A.J., Harrison J., Gross K.A. et al. Mouse embryonic stem cell colonization of carbonated apatite surfaces // Biomaterials. — 2006. — Vol.27. — P.615−622.
  232. Merry J.C., Gibson I.R., Best S.M. et al. Synthesis and characterization of carbonate hydroxyapatite // J. Mater. Sci. Mater. Med. — 1998. — Vol.9. — JJ12. — P.779−783.
  233. Metcalfe A.D., Ferguson M.W.J. Bioengineering skin using mechanisms of regeneration and repair // Biomaterials. — 2007. — Vol.28. — P.5100−5113.
  234. Mizutani Y., Hattori M., Okuyama M. et al. Carbonate-containing hydroxyapatite derived fromcalciumtripolyphosphategelwithurea // J. Mater. Sci. Mater. Med.—2005.—Vol. 16.—JJ8. — P.709−712.
  235. Midy V., Rey C., Bres E. et al. Basic fibroblast growth factor adsorption and release properties of calcium phosphate // J. Biomed. Mater. Res. — 1998. — Vol.41. — P.405−411.
  236. Mokbel N., Bou Serhal C., Matni G. et al. baling patterns of critical size bony defects in rat following bone graft // J. Oral Maxillofac. Surg. — 1998. — Vol.12. — № 2. — P.73−78.
  237. Mullins R.J., Richards C., Walker T. Allergic reactions to oral, surgical and topical bovine collagen: Anaphylactic risk for surgeons // Clinical & Experimental Ophtalmology — 2008 — Vol.24 — № 3 — P.257−260.
  238. Muzzarelli R., Biagini G. et al. Osteoconductive properties of methylpyrrolidinone chitosan in an animal model // Biomaterials. 1993. — Vol.14. — № 12. — P.925−929.
  239. Muzzarelli R., Baldassarre V. et al. Biological activity of chitosan: Ultrastructural study // Biomaterials. — 1988. — Vol.9. — № 5. — P.247−252.
  240. Murugan R., Ramakrishna S. Production of ultra-fine bioresorbable carbonates hydroxyapatite // Acta Biomaterialia. — 2006. — Vol.2. — P.201−206.
  241. Murugan R., Ramakrishna S., Panduranga R. Nanoporous hyroxy-carbonate apatite scaffolds made of natural bone // Materials Letters. — 2006. — Vol.60. — P.2844−2847.
  242. Murugan R., Sampath Kumar T.S., Yang F. et al. Hydroxyl carbonateapatite hybrid bone composites using carbonydrate polymer // J. Composite Materials. — 2005. — Vol.39. — № 13. — P.1159−1169.
  243. Murugan R., Ramakrishna S. Bioresorbable composite bone paste using polysaccharide based nano hydroxyapatite // Biomaterials. —2004. — Vol.25. — № 17. — P.3829−3835.
  244. Mussano F., Ciccone G., Baldi I. et al. Bone morphogenetic proteins and bone defects: a systematic review // Spine. — 2007. — Vol.32. — № 7. — P.824−830.
  245. Nilsson L.P., Granstrom G. Changes of serum alkaline phosphatase following mandibular osteotomy in the rat // J. Dent. Res. — 1987. — Vol.66. — № 6. — P.1195−1198.
  246. Neo M., Kotani S., Nakamura T. et al. A comparative study of ultrastructures of the inter-facesbetweenfourkindsofsurface-activeceramicandbone // J.Biomed.Mater.Res.— 1992.—Vol.26.— № 11. — P.1419−1432.
  247. Norton M.R., Odell E.W., Thompson I.D. et al. Efficacy of bovine bone mineral for alveolar augmentation: A human histologic study// Clin. Oral Impl. Res. —2003. — Vol.14. — № 6. — P.775−783.
  248. Ogawa K., Yui T., Okuyama K. Three D structures of chitosan // Int. J. Biol. Macromolecules. — 2004. — Vol.34. — № 1−2. — P.1−8.
  249. Okazaki K., Shimizu Y., Xu H. et al. Blood-filled spaces with and without deproteinized bone grafts in guided bone regeneration // Clin. Oral Impl. Res. — 2005. — Vol.16. — P.236−243.
  250. Olsson L.F., Sandin K., Odselius R. et al. In vitro formation of nanocrystalline carbonate apatite: A structural and morphological analogue of atherosclerotic plaques // Eur. J. Inorg. Chem. — 2007. — Vol.26. — P.4123−4127.
  251. Ong J.L., Hoppe C.A., Cardenas H.L. et al. Osteoblast precursor cell activity on HA surfaces of different treatments // J. Biomed. Mater. Res. — 1998. — Vol.29. — P.389−401.
  252. Orsini G., Traini T., Scarano A. Maxillary sinus augmentation with Bio-Oss particles: A light, scanning and transmission electron microscopy study in man // Inc. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. — 2005. — Vol.74B. — P.448−457.
  253. Pagnutti S., Maggi S., Di Stefano J. et al. An enzymatic deantigenation process allows achieving hysiological remodeling and even osteopromoting bone grafting materials // Biotechnol. & Biotechnol. Eq. — 2007. — Vol.21. — № 4. — P.491−495.
  254. Pang E.K., Paik J.W., Kim S.K. et al. Effects of chitosan on human periodontal ligament fibroblasts in vitro and on bone formation in rat calvarial defects // J. Periodontol. — 2005. — Vol.76. — № 9. — P.1526−1533.
  255. Park D.J., Choi B.H., Zhu S.J. et al. Injectable bone using chitosan-alginate gel-mesenchy-mal stem cells-BMP2 composites // J. Cranimaxillofac. Surg. — 2005. — Vol.33. — JJ1. — P.50−54.
  256. Park Y.J., Kim K.H., Lee J.Y. et al. Immobilization of bone morphogenetic protein-2 on a nanofibrous chitosan membrane for enhanced guided bone regeneration // Biotechnol. Appl. Biochem. — 2006. — Vol.43. — JJ1. — P.17−24.
  257. Park J.C., Han D.W., Suh H. A bone replaceable artificial bone substitute: Morphological and physiochemical characterization // Yonsei Medical Journal. —2000. — Vol. 41. — JJ4. — P.468−476.
  258. Park J.W., Jang J.H., Bae S.R. et al. Bone formation with various bone graft substitutes in critical-sized rat calvarial defect // Clin. Oral Impl. Res. — 2008. — Vol.20. — JJ4. — P.372−378.
  259. Pierschbacher M.D., Ruoslahti E. Influence of stereochemistry of the sequence Arg-Gly Asp-Xaa on binding specificity in cell adhesion// J. Biol. Chem. — 1987 — Vol.262. — P.17 294−17 298.
  260. Pierschbacher M.D., Ruoslahti E. Cell attachment activity of fibronectin can be duplicated by small synthetic fragments of the molecule // Nature. — 1984. — Vol.309. — P.30−33.
  261. Pommier J.C., Poustis J., Baquey C. et al. Biocompatible, hydrophilic material. Method of manufacture and uses of same: Fr. Pat. 8 610 331, 1986- Eur. Pat. 256 906 A1, 1987- US Pat. 4 904 258, 1990.
  262. Porter A., Patel N., Brooks R. et al. Effect of carbonate substitution on the ultrastructural characteristics of hydroxyapatite implants // J. Mater. Sci. Mater. Med. —2005. — Vol.16. — P.899−907.
  263. Qian J.J., Bhatnagar R.S. Enhanced cell attachment to anorganic bone mineral in the presence of a synthetic peptide related to collagen // J. Biomed. Mater. Res. — 1996. — Vol.31. — P.545−554.
  264. Qidwai H. Evaluation human adult mesemchymal stem cells and MG-63 cells on Vitoss, ChroOs granulat and ChronOs for use in bone tissue engineering: Thesis for degree of master of science. — Pittsburg, USA, 2004. — 68 p.
  265. Rabea E.I., Badawy M.E., Stevens C.V. et al. Chitosan as antimicrobial agent: Applications and mode of action // Biomacromolecules. — 2003. — Vol.4. — P. 1457−1465.
  266. Radin S.R., Ducheyne P. The effect of calcium phosphate ceramic composition and structure on in vitro behavior. II. Precipitation // J. Biomed. Mater. Res. — 1993. — Vol.27. — JJ1. — P.35−45.
  267. Redey S.A., Nardin M., Benache-Assolant D. et al. Behavior of human osteoblastic cells on stoichiometric hydroxyapatite and type A carbonate apatite: Role of surface energy // J. Biomed. Mater. Res. — 2000. — Vol.50. — P.353−364.
  268. Redey S.A., Razzouk S., Rey C. et al. Osteoclast adhesion and activity on synthetic hy-droxyapatite, carbonated hydroxyapatite, and natural calcium carbonate: Relationship to surface energies // J. Biomed. Mater. Res. — 1999. — Vol.45. — P.140−147.
  269. Rhee S.H., Tanaka J. Hydroxyapatite formation on cellulose cloth induced by citric acid // J. Mater. Sci. Mater. Med. — 2000. — Vol.11. — JJ7. — P.449−452.
  270. Rhee S.H., Tanaka J. Effect of citric acid on the nucleation of hydroxyapatite in a simulated body fluid // Biomaterials. — 1999. — Vol.20. — .J22. — P.2155−2160.
  271. Rodriguez A., Anastasou G.E., Lee H. et al. Maxillary sinus augmentation with deprotein-ized bovine bone and platelet rich plasma with simultaneous insertion of endosseous implants // J. Oral Maxillofac. Implants. — 2003. — Vol.61. — P.157−163.
  272. Rosa A.L., Beloti M.M., van Noort R. Osteoblastic differentiation of cultured rat bone marrow cells on hydroxyapatite with different surface topography // Dental Materials. — 2003. — Vol.19. — P.768−772.
  273. Rosen V BMP and BMP inhibitors in bone //Ann. N. Y Acad. Sci. —2006. —Vol.1068. — P.19−25.
  274. Ruhe P.Q., Boerman O.C., Russel F.G.M. et al. In vivo release of rhBMP-2 loaded porous calcium phosphate cement pretreated with albumin // J. Mater. Sci. Mater. Med. —2006. — Vol.17. — P.919−927.
  275. Samdancioglu S., Calis S., Sumnu M. Formulation and in vitro evaluation of bisphospho-nateloadedmicrospheresforimplantationinosteolysis // DrugDev.Ind.Pharm.—2006.—Vol.32.— J4. — P.473−481.
  276. Shanmugsundaram N., Ravichandran P., Reddy P. et al. Collagen-chitosan polymeric scaffold for the in vitro culture of human epidermoid carcinoma cells // Biomaterials. — 2001. — Vol.22. — P.1943−1951.
  277. Sartori S., Silvestri M., Forni F. et al. Ten-year follow-up in a maxillary sinus augmentation using anorganic bovine bone (Bio-Oss). A case report with histomorphometric evaluation // Clin. Oral Impl. Res. — 2003. — Vol.14. — P.369−372.
  278. Schaffner P., Dard M.M. Structure and function of RGD peptides involved in bone biology // Cell. Mol. Life Sci. — 2003. — Vol.60. — P.119−132.
  279. Schlegel K.A., Fichtner G., Schultze-Mosgau S. et al. Histologic findings in sinus augmentation with autogenous bone chips versus a bovine bone substitute // Int. J. Oral. Maxillofac. Implants. — 2003. — Vol.18. — JJ1. — P.53−58.
  280. Schneider G.B., Zaharias R., Seabold D. et al. Differentiation of preosteoblasts is affected by implant surface microtopographies // J. Biomed. Mater. Res. A. —2004. — Vol.69. — JJ3. — P.462−468.
  281. Schneiders W., Reinstorf A., Pompe A. et al. Effect of modification of hydroxyapatite-^llagen composites with sodium citrate, phosphoserine, phosphoserine-RGD-peptides and calcium carbonate on bone remodelling // Bone. — 2007. — Vol.40. — P.1048−1059.
  282. Schwartz Z., Weesner T., van Dijk S. et al. Ability of deproteinized cancellous bovine bone to induce new bone formation // J. Periodontol. — 2000. — Vol.71. — P. 1258−1269.
  283. Schwartz Z., Mellonig J.T., Carnes Jr.D.L. et al. Ability of commercial demineralized freeze-dried bone allograft to induce new bone formation // J. Periodontol. — 1996. — Vol.67. — JJ9. — P.918−926.
  284. Sculean A., Schwarz F., Chiantella G.C. et al. Five-year results of prospective, randomized, controlled study evaluating treatment of intrabony defects with a natural bone mineral and GTR // J. Clin. Periodontol. — 2007. — Vol.34. — P.72−77.
  285. Shen X., Tong H., Jiang T. et al. Homogeneous chitosan-carbonate apatite-citric acid nano-composites through a novel in situ precipitation method // Comp. Sci. Tech. — 2007. — Vol.67. — P.2238−2245.
  286. Shi Z., Neoh K.G., Kang E.T. et al. Bacterial adhesion and osteoblast function on titanium withsurface-graftedchitosanandimmobilizedRGDpeptide // J. Biomed. Mater. Res.PartA.—2008. — Vol.86. — JJ4. — P.865−872.
  287. Shigemasa Y., Matsura H., Sashiwa H. et al. Evaluation of different absorbance ratios from infrared spectroscopy for analyzing the degree of deacetylation in chitin // Int. J. Biol. Macromol. — 1996. — Vol.18. — JJ3. — P.237−242.
  288. Sionkowska M., Wisniewski J., Skopinska C. Molecular interactions in collagen and chitosan blends // Biomaterials. —2004. — Vol.25. — P.795−801.
  289. Smidsrod O., Draget K.I. Chemistry and physical properties of alginates // Carbohydr. Eur. — 1996. — Vol.14. — P.6−13.
  290. Smiler D.G. Comparison of anorganic bovine mineral with and without synthetic peptide in a sinus elevation: A Case Study // Implant Dent. — 2001. — Vol.10. — JJ2. — P.139−142.
  291. Sogal A., Tofe A.J. Risk assessment of bovine spongiform encephalopathy transmission throughbonegraftmaterialderivedfrombovineboneusedfordentalapplications // J.Periodontol.—1999.— Vol.70. — P.1053−1063.
  292. Stassen L.F.A., Hislpo W.S., Still D.M. et al. Use of anorganic bone in periapical defects followingapicalsurgery— aprospectivetrial // BritishJ.OralMaxillofac.Surg.— 1994.—Vol.32.— P.83−85.
  293. Stigtera M., Bezemera J., de Groot K. et al. Incorporation of different antibiotics into carbonated hydroxyapatite coatings on titanium implants, release and antibiotic efficacy // J. Control. Release. —2004. — Vol.99. — JJ1. — P.127−137.
  294. Susi H. Infrared spectra of biological macromolecules and related systems. In: Structure and stability of biological macromolecules ed. Timasheff S.N., Fasman G. — N.Y., 1969. — P.575−663.
  295. Tadic D., Epple M. A thorough physicochemical characterization of 14 calcium phosphate-based bone substitution materials in comparison to natural bone // Biomaterials. —2004. — Vol.25. — P.987−994.
  296. Teng S.H., Lee E.J., Wang P. et al. Functionally gradient chitosan-hydroxyapatite composite scaffolds for controlled drug release // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. — 2009.—ahead of print. — DOI: 10.1002/jbm.b.31 283.
  297. Tietmann C., Broseler F. Long-term clinical outcome after reconstruction of periodontal defects using bovine-derived xenograft: A retrospective cohort study // Perio. —2006. — Vol.3. — JJ2. — P.79−86.
  298. Traini T., Valentini P., Iezzi G. et al. A histological and histomorphometric evaluation of inorganic bovine bone retrieved 9 years after sinus augmentation procedure // J. Periodontol.—2007. — Vol.78. — P.955−961.
  299. Trisi P., Rao W., Rebaudi A. et al. Histologic effect of pure-phase beta-tricalcium phos-phateonboneregenerationinhumanartificialjawbonedefects // Int.J.PeriodonticsRestorativeDent.— 2003. — Vol.23. — P.69−77.
  300. Trung T.S., Thein-Han W.W., Qui N.T. et al. Functional characteristics of shrimp chitosan and its membranes as affected by the degree of deacetylation // Bioresource Technology. — 2006. — Vol.97. — JJ4. — P.659−663.
  301. Tsuruga E., Takita H., Itoh H. et al. Pore size of porous hydroxyapatite as the cell-substratum controls BMP-induced osteogenesis // J. Biochem. — 1997. — Vol.121. — P.317−324.
  302. Twu Y.K., Chang I.T., Ping C.C. Preparation of novel chitosan scaffolds by electrochemical process // Carbohydrate Polymers. — 2005. — Vol.62. — JJ2. — P.113−119.
  303. Urabe M., Kume A., Kiyotake T. et al. DNA-calcium phosphate mixed with media are stable and maintain high transfection efficiency // Anal. Biochem. — 2000. — Vol.278. — JJ1. — P.91−92.
  304. Valentini P., Abensur D., Densari D. et al. Histological evaluation of Bio-Oss in a sinus floorelevationandimplantationprocedure: Ahumancasereport // Clin. OralImplants.Res. — 1998. — Vol.9. — JJ59−64.
  305. Warnke P.H., Wiltfang J., Springer I. et al. Man as living bioreactor: Fate of an exogenously prepared customized tissue-engineered mandible // Biomaterials. — 2006. — Vol.27. — P.3163−3167.
  306. Weip N., Klee D., Hocker H. Konzept zur bioaktiven Ausrustung von Metallimplantatoberf// Achen. Biomaterialien. — 2001. — Vol.2. — P.81−86.
  307. Wenz B., Oesch B., Horst M. Analysis of the risk of transmitting bovine spongiform encephalopathy through bone grafts derived from bovine bone // Biomaterials. — 2001. — Vol.22. — P.1599−1606.
  308. Will R.G. The transmission of prions to humans //Acta Paediatr. — 1999. — Suppl.88. — P.28−32.
  309. Wobus A.M., Boheler K.R. Embryonic stem cells: Prospects for developmental biology and cell therapy // Physiol. Rev. — 2005. — Vol.85. — P.635−649.
  310. Wolff K.D., Swaid S., Nolte D. et al. Degradable injectable bone cement in maxillofacial surgery: Indications and clinical experience in 27 patients // J. Craniomaxillofac. Surg. — 2004. — Vol.32. — JJ2. — P.71−79.
  311. Xu H.H., Quinn J.B., Takagi S. et al. Processing and properties of strong and non-rigid calcium phosphate cement // J. Dent. Res. — 2002. — Vol.81. — JJ3. — P.219−224.
  312. Xu H.H., Takagi S., Sun L. et al. Development of a nonrigid, durable calcium phosphate cement for use in periodontal bone repair // J. Am. Dent. Assoc. — 2006. — Vol.137. — JJ8. — P.1131−1138.
  313. Ye S., Wang C., Liu X. et al. Multilayer nanocapsules of polysaccharide chitosan and alginate through layer-by-layer assembly directly on PS nanoparticles for release // Biomater. Sci. Polym. Ed. — 2005. — Vol.16. — JJ7. — P.909−923.
  314. Yaszemski M.J., Payne R.G., Hayes W.C. et al. Evolution of bone transplantation: Molecular, cellular and tissue strategies to engineer human bone // Biomaterials. — 1996. — Vol.17. — JJ2. — P.175−185.
  315. Yokoyama A., Yamamoto S., Kawasaki T. et al. Development of calcium phosphate cement using chitosan and citric acid for bone substitute materials // Biomaterials. —2002. — Vol.23. — J4. — P.1091−1101.
  316. Yoon S.T., Boden S.D. Osteoinductive molecules in orthopedics: Basic science and preclinical studies // Clin. Orthop. — 2002. — Vol.395. — P.33−43.
  317. Yoshida K., Bessho K., Fujimura K. et al. Enhancement by recombinant human bone morpho-genetic protein-2 of bone formation by means of porous hydroxyapatite in mandibular bone defects // J. Dent. Res. — 1999. — Vol.78. — J"9. — P.1505−1510.
  318. Young R.A., Elliott J.C. Atomic-scale bases several properties of apatites // Arch. Oral. Biol. — 1966. — Vol.11. — P.699−707.
Заполнить форму текущей работой