Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Особенности размножения Ribes aureum Pursh и Vaccinium Uliginosum L. в культуре IN VITRO

Диссертация: Особенности размножения Ribes aureum Pursh и Vaccinium Uliginosum L. в культуре IN VITRO
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Практическая и теоретическая ценность. На основании полученных результатов предложены технологии ускоренного размножения и адаптации смородины золотистой и голубики топяной, создана коллекция этих растений in vitro. Работа в лабораторных условиях дает возможность планировать выпуск посадочного материала к определенному сроку. Применение разработанных элементов технологий позволяет более успешно… Читать ещё >

Особенности размножения Ribes aureum Pursh и Vaccinium Uliginosum L. в культуре IN VITRO (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. Состояние изучения проблемы (обзор литературы)
    • 1. 1. Использование методов биотехнологии в системе сохранения и воспроизводства ценных генотипов растений
      • 1. 1. 1. Микроразмножение путем активации развития меристем
      • 1. 1. 2. Микроразмножение путем индукции адвентивных почек тканями экспланта
      • 1. 1. 3. Основные стадии микроразмножения
    • 1. 2. Факторы, влияющие на процессы микроразмножения в культуре in vitro
    • 1. 3. Идентификация ягодных культур на основе молекулярно-генетических маркеров
    • 1. 4. Микроразмножение представителей подсемейства Vaccinioideae Arnott
    • 1. 5. Микроразмножение представителей семейства Grossulariaceae DC
  • ГЛАВА 2. Материалы и методы исследования
  • ГЛАВА 3. Электрофоретическое изучение водосолерастворимой фракции белков семян Ribes aureum и Vaccinium uliginosum
  • ГЛАВА 4. Основные стадии размножения сортов Ribes aureum и Vaccinium uliginosum в культуре in vitro
    • 4. 1. Введение эксплантов в культуру in vitro
    • 4. 2. Особенности этапа собственно размножения
    • 4. 3. Укоренение побегов in vitro
  • ГЛАВА 5. Адаптация растений-регенерантов к условиям выращивания ex vitro
  • ГЛАВА 6. Экономическая эффективность применения метода микроразмножения Ribes aureum и Vaccinium uliginosum
  • ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы. В настоящее время особую актуальность имеют исследования по разработке методов сохранения растений, ареалы и численность которых резко снижается, а' также для уникальных форм, сортов и генотипов растений, расширяющих и улучшающих сортимент возделываемых растений. В связи с прогрессом селекции и появлением большого количества новых сортов, имеющих сложное генетическое происхождение, технологии выращивания посадочного материала требуют усовершенствования (Соловьева, 2005).

Одними из новых и перспективных ягодных культур для Западной Сибири являются смородина золотистая (Ribes aureum Pursh), и голубика топяная (Vaccinium uliginosum L.). Смородина золотистая представляет интерес в связи с поздним, по сравнению с другимивидами смородины, созреванием плодов, жарой засухоустойчивостью, она практически не поражается болезнями и редко повреждается вредителями (Ягудина, 1976). Голубика топяная, широко распространенная на территории Западной Сибири, хорошо зарекомендовала себя в условиях интродукции (Снакина, 2007). Сорта североамериканской голубики щитковой (V. corymbosum L.), имеющие огромный спрос на мировом потребительском рынке, в Сибири недостаточно зимостойки. Одной из особенностей многих перспективных сортов R. aureum и V. uliginosum является их невысокая способность к воспроизводству при традиционных способах размножения. Применение современных методов вегетативного размножения, таких как клональное микроразмножение, оправдано и экономически эффективно, особенно в отношении ягодных культур (Ruzic, Lazic, 2006). Использование методов размножения in vitro является оптимальным решением задачи как для размножения растений с нарушенным процессом воспроизводства, так и для массового размножения ценных генотипов растений (Высоцкий, 1998; Бутенко, 1999).

Широкому использованию методов клонального микроразмножения для многих видов, сортов и форм растений препятствует то, что морфогенетический потенциал и регенерационная способность культивируемых тканей часто строго зависят от генотипа и условий культивирования. В связи с этим, возникает необходимость идентификации растительного материала, отражающая происхождение и индивидуальные особенности генотипа, степень сходства и различия отдельных генотипов растений (Окунева, 1998).

Таким образом, при решении задачи сохранения, воспроизводства и рационального использования коллекционного фонда особое значение приобретает вопрос всестороннего изучения биологических особенностей растений как исходной базы для репродукции.

Цель и задачи исследований. Цель данной работы — выявить особенности размножения сортов Ribes aureum^ и Vaccinium uliginosum в культуре пазушных почек in vitro и дать оценку эффективности данного метода. В соответствии с этим были поставлены следующие задачи:

— провести идентификацию сортов Ribes aureum и Vaccinium uliginosum с помощью анализа водосолерастворимой фракции белков семян;

— разработать эффективные методы получения стерильной культуры эксплантов;

— определить влияние возраста экспланта на микроразмножение Ribes aureum', оптимизировать состав питательных сред на всех этапах культивирования;

— исследовать особенности влияния регуляторов роста и физиологически активных добавок питательной среды на процессы микроразмножения эксплантов на всех этапах культивирования;

— разработать методы адаптации растений-регенерантов к условиям ex vitro-,.

— дать экономическую оценку эффективности метода клонального микроразмножения.

Научная новизна. Впервые предложен метод выявления особенностей культивирования эксплантов в зависимости от генотипа растений с использованием метода белковых маркеров, и на основе этого предложен способ оптимизации процесса микроразмножения. Разработаны эффективные приемы получения асептической культуры первичныхэксплантов. Показано, что в культуре in vitro почки от зрелых растений смородины золотистой реювенилизируются. Изучена реакция эксплантов на экзогенные регуляторы роста и физиологически активные добавки питательной среды. Показана возможность успешной адаптации растений-регенерантов на гидропонной установке «Минивит». Проведена оценка экономической эффективности метода микроразмножения 4 сортов Ribes aureum и 4 сортов Vaccinium uliginosum и показана его рентабельность.

Защищаемые положения.

1. Использование предварительной < идентификациисортовRibes aureum методом белковых маркеров позволяет выявить специфику их культивирования in vitro.

2. Увеличение коэффициента размножения сортов. Vaccinium uliginosum достигается применением двухстадийного этапа собственно размножения.

Практическая и теоретическая ценность. На основании полученных результатов предложены технологии ускоренного размножения и адаптации смородины золотистой и голубики топяной, создана коллекция этих растений in vitro. Работа в лабораторных условиях дает возможность планировать выпуск посадочного материала к определенному сроку. Применение разработанных элементов технологий позволяет более успешно решать проблему ускоренного> размножения ценных сортов и форм и сохранить ценный растительный материал.

Показана возможность использования метода белковых маркеров для выявления особенностей культивирования эксплантов в зависимости от генотипа растения. Это позволяет сгруппировать сорта и работать с одним из представителей данной группы для изучения сортовой специфичности в отношении требований к условиям культивирования.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на II Научно-практической конференции в рамках Третьего Фестиваля науки в городе Москве и Биотехнологической выставки-ярмарки «РосБиоТех» «Перспективы развития инноваций в биологии (г. Москва, 2008), на Молодежной Всероссийской школе-семинаре «Современные фундаментальные проблемы физиологии и биотехнологии растений и микроорганизмов» (г. Томск, 2008), на XXXV научной конференции студентов, магистрантов, аспирантов и учащихся лицейных классов «Дни молодежной науки в Алтайском государственном университете» (Барнаул, 2008), на форуме о биологических и экологических проблемах в лесном хозяйстве г. Хэйхэ провинции Хэйлунцзян (г. Хэйхэ, 2009), на Всероссийской конференции с международным участием «Ботанические сады и актуальные проблемы интродукции растений на современном этапе» (Томск, 2010), экспонировались на 2-й Биотехнологической выставке-ярмарке «РосБиоТех-2008» (г. Москва, 2008), на Международной выставке-конгрессе «Высокие технологии. Инновации. Инвестиции» (г. Санкт-Петербург, 2009).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 научных работ, в том числе 3 статьи в журналах, рекомендованных ВАК.

Структура и объем диссертации

Диссертация1 изложена на 165 страницах машинописного текста, состоит из введения, списка сокращений, 6 глав, выводов, списка литературысодержит 33 рисунка и 18 таблиц.

Список литературы

включает 303 работы, в том числе 170 — на иностранных языках.

ВЫВОДЫ.

1. Показана возможность выявления специфики культивирования in vitro сортов R. aureum с помощью белковых маркеров. Все сорта R. аигеит по сходным позициям полипептидов разделены на 4 группы.

2. Для стерилизации пазушных почек эффективно использовать 0,1% раствора сулемы в сочетании с предварительной обработкой эксплантов 70% этиловым спиртом (для R. аигеит) и 0,2% раствора сулемы (для V. uliginosum).

3. В культуре in vitro пазушные почки от зрелых растений R. аигеит реювенилизируются, что позволяет наиболее полно использовать морфогенетический потенциал данной культуры.

4. На этапе собственно размножения сортов R. аигеит оптимальной является питательная среда МС, дополненная БАП (5 мкМ), ГК3 (5 мкМ), глютатионом (200 мг/л) и 3% глюкозой. На этапе укоренения — V-г МС, дополненная 3 мкМ ИУК.

5. Наибольший коэффициент размножения сортов V. uliginosum получен при двухстадийном приеме размножения: выращивание пазушных почек в течение 2-х недель на среде Андерсона с высокой концентрацией ИПА (20 мкМ), а затем на той же среде с пониженной концентрацией цитокининов (5 мкМ). Лучший индуктор ризогенеза для сортов юрковской группы — ИУК, для иксинской — ИПК.

6. Показатели роста и развития эксплантов сортов R. аигеит и V. uliginosum in vitro зависят, в первую очередь, от генетических особенностей.

7. Для адаптации растений к условиям ex vitro эффективным является использование гидропонной установки «Минивит 0,35», что обеспечило 100% адаптацию регенерантов V. uliginosum и 90% - регенерантов R. аигеит.

8. Разработанные приемы показали возможность ускоренного размножения и сохранения сортов R. аигеит и V. uliginosum в культуре пазушных почек in vitro.

9. Использование метода размножения in vitro повышает рентабельность производства саженцев сортов V. uliginosum в 2,3 раза, а для сортов R. аигеит является единственным экономически эффективным способом размножения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М. А. Изменчивость и специфичность электрофоретических спектров полипептидов семян в комплексе близкородственных видов Hedysarum L.: Автореф. диссер. к.б.н. Новосибирск, 2003. 16с.
  2. О.В. Морфогенетический потенциал рода пырейник (Elymus L.) и возможности его использования в интродукции и селекции: Автореф. диссер.д.б.н. Новосибирск, 1997. 24с.
  3. А., Умаров З. М. Влияние фитогормонов и витаминов на рост недозрелых гибридных зародышей хлопчатника in vitro II Узбекский биологический журнал. 1988. № 2. С.17−19.
  4. О.Н. Влияние возраста маточных растений на регенерационную способность крыжовника // Известия ТСХА. 2006. Вып. 4. С. 47−57.
  5. О.Н. Эффективность размножения красной смородины и крыжовника in vitro при обработке маточных растений ретардантами // Известия ТСХА. 2004. № 1. С. 62−71.
  6. М.С., Стахеева Т. С., Васильева О. Г. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов голубики щитковой (Vaccinium corymbosum L.) // Междунар. конф. «Проблемы дендр. на ребеже XXI века». М., 1999. С. 7−8.
  7. И.Н., Шашилова Л. И., Якупова И. А. Использование полиморфизма запасных белков семян для выявления спонтанных внутри- и межвидовых гибридов у салата // Доклады РАСХН. 2006. № 3. С. 15−17.
  8. Г. П. Способ клонального микроразмножения смородины иiантиоксидант для клонального микроразмножения смородины: Пат. № 94 007 611/13- Заявл. 01.03.1994- Опубл. 27.05.1997.
  9. А.Ш., Байбурина Р. К. Размножение Lespedeza bicolor Turcz. в культуре in vitro II Растительные ресурсы. 2003. Вып. 1. С. 115−124.
  10. A.A., Павлова Е. Е. Особенности микроклонального размножения представителей подсемейства брусничные // IX Междунар. конф. «Биология клеток растений in vitro и биотехнология». 2008. С.52−53.
  11. С.И., Хачунова С. С., Шамова Н. М. Культура in vitro пазушных почек винограда // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. Т.1. С. 147.
  12. Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 160с.
  13. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Изд-во «Наука», 1964. 342с.
  14. Р.Г. Культура тканей и клеток растений. М., 1971. 45с.
  15. О.Г. Биолого-морфологические основы клонального микроразмножения некоторых представителей рода Rododendron L.// Автореф. диссер. к.б.н., 2009. 20с.
  16. H.A. Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений: монография. Барнаул: Изд-во Алт. Унта, 2004. 205с.
  17. H.A., Таварткиладзе O.K. Микроразмножение Stevia rebaudiana Bert. // Современные тенденции развития промышленного садоводства:
  18. Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 75-летию образования НИИ садоводства Сибири имени М. А, Лисавенко. Барнаул, 2008. С. 349−354.
  19. , H.A., Таварткиладзе O.K., Бородулина И. Д., Эрст A.A. Адаптация растений-регенрантов с использованием гидропоники // Известия АлтГУ. Барнаул, 2008. № 3 (55). С.7−10.
  20. , H.A., Таварткиладзе O.K., Эрст A.A., Горбунов А. Б., Новикова Т. И. Микроразмножение голубики // IX Международная конференция: Биология клеток растений in vitro и биотехнология (8−12 сентября 2008, Звенигород). М., 2008. С. 72−73.
  21. H.A., Таварткиладзе O.K., Эрст A.A., Горбунов А. Б. Ускоренное размножение голубики топяной in vitro II Вестник Алтайского государственного аграрного университета. Барнаул, 2008. № 6 (44). С.21−25.
  22. О.Н. Криосохранение in vitro верхушек побегов рябины // IX Международная конференция: Биология клеток растений in vitro и биотехнология (8−12 сентября 2008, Звенигород). М., 2008. С. 80−81.
  23. В. А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений: Автореф. дисер.. д. с.-х. н. М., 1998. 44 с.
  24. В.А. Морфогенез и клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология. М., 1986. С. 91−102.
  25. И.П., Губарева Н. К., Конарев В. Г. Выделение, фракционирование и идентификация белков, используемых в геномном анализе культурных растений // Тр. по прикл. бот., ген. и сел. 1973. Т. 52, вып 1. С. 249−281.
  26. К.З., Рекославская Н. И., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей й клеток растений. Новосибирск, 1990. 243 с.
  27. Генетический подход к биохимии растений / пер. с англ. С. А. Гостимского, Г. П. Мирошниченко, под ред. Э. А. Хавкина, З. Б. Шаминой М. «Агропромиздат», 1990. С. 245−267.
  28. Т.С., Родькин О. Н., Реуцкий В. Г. Условия микроклонирования формируют специфический культуральный фенотип // VII Междунар. Конф. «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда»: Тез.докл. М., 1997. С. 413.
  29. Е.А. Электрофоретический анализ некоторых видов сем. Grossulariaceae DC. Методом белкового маркирования // Вестник ОГУ. 2008. № 87. С. 14−16.
  30. Госреестр. Сорта растений. М., 2007. Т. 1. С. 168−169.
  31. Н.М. Микроклональное размножение персика // Достижения науки и техники АПК. 2003. № 10. С. 45−46.
  32. В.И., Крючкова В. А. Роль этиоляции при микроклональном размножении растений // Доклады ТСХА. 2001. № 273. С. 298−301.
  33. В.И., Медведев В. А. Способ получения посадочного материала земляники в культуре ткани: Пат. 4 862 536/13- Заяв. 23.08.1990- Опубл. 15.02.1994.
  34. Е.А. Влияние поверхностно-стерилизующего вещества иодида ртути (Hgl2) на экспланты ежевики при микроклонировании // Материалы. 2001. С. 42−43.
  35. Н.П. Испытание питательных сред при клональном микроразмножении винограда // Виноградство и виноделие СССР. 1990. № 3. С.61−65.
  36. Т.Д. Ресурсы брусники и клюквы в природных популяциях таежной зоны России и перспективы культивирования // Вестник Тверского гос. университета. Серия: Биология и экология. 2008. № 10. С. 147−154.
  37. М.М. Клональное микроразмножение Rhodiola rosea L. и R. iremelica Boriss. in vitro II Растительные ресурсы. 1998. Т. 34, вып. 1. С. 12−23.
  38. Ф.Л. Технология микроклонального размножения растений. Киев: «Науково думка», 1992. С. 137−190.
  39. Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова думка, 1980. 320 с.
  40. Н.В., Аветисов В. А. Клональное размножение растений в культуре тканей // Культура клеток растений. М.:Наука, 1981.- С.137−149.
  41. Н.В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение растений. М.- «Наука», 1983. С. 38−39.
  42. В.И. Рост растений. М.: Колос, 1984. С. 17−18.
  43. Е.Д., Бленда В. Ф. Регенерация черешнево-вишневых гибридов микрочеренками в культуре ткани // Физиол. и биохим. культур, растений. 1984. Т. 16, № 2. С. 131−135.
  44. A.B., Чемерис A.B., Вахитов В. А. Морфогенез Hippophae rhamnoides L. в культуре in vitro II Растительные ресурсы. 2003. Т. 39, вып. 1. С. 107 121.
  45. Е.В. Оздоровление смородины черной от сокопереносимых вирусов методом суховоздушной термотерапии в культуре in vitro // Известия Национ. акад. наук Беларуси. Серия аграрных наук. 2004. № 1. С. 23−28.
  46. A.B. Всероссийский НИИ растениеводства и его вклад в развитие сельскохозяйственной науки и селекции страны // Сельскохозяйственная биология. 1994. Т. 3. С. 13−75.
  47. A.B. Использование молекулярных маркеров в работе с генетическими ресурсами растений // Сельскохозяйственная биология. 1998. Т. 5. С. 3−25.
  48. A.B., Хорева В. И. Биохимичекие исследования генетических ресурсов в ВИРе // Цитология и генетика. 2000. Т. 34, № 2. С. 91−104.
  49. В.Г. Белки как генетические маркеры в решении актуальных проблем растениеводства // Физиол. и биохим. культур, растений. 1987. Т. 19, № 4. С. 315−321.
  50. В.Г. Белки растений как генетические маркеры. М.: Колос, 1983. 320с.
  51. В.Г. Морфогенез и молекулярно-биологический анализ растений.1. Спб., ВИР, 1998. 370с.
  52. В.Г. Принцип белковых маркеров в генетическом анализе исходного и селекционного материала // Физиология растений в помощь селекции. -М., 1974. 242−269
  53. О.В., Митрофанова И. В. Особенности клонального микроразмножения двух сортов миниатюрных роз // Бюл. Гос. Никит, ботан. сада. 2002. N 86. С. 38−40, 73.
  54. О.Н., Шишкина E.JI. Использование цитокинов для регенерации микропобегов Feijoa sellowiana Berg, в условиях in vitro II Бюл. Гос. Никит, ботан. сада. 2002. № 86. С. 55−57, 75.
  55. И.И., Яцына A.A. Корнеобразование в культуре in vitro Betula ' pendula Roth. II Сб. науч. тр. 1999. № 50. С. 222−227.
  56. В.М., Васильева О. Г., Загоскина Н. В. Образование фенольных соединений в растениях рода Rhododendron L., полученных методом клонального микроразмножения ,// Материалы междунар. конф.
  57. Современная физиология: от молекулы до экосистем". Сыктывкар, 2007. С. 19−21.
  58. И.М., Высоцкий В. А. Рентабельность клонального микроразмножения винограда и ягодных кустарников // Матер, конференции «Современные достижения биотехнологии в виноградарстве и других отраслях сельсьского «хозяйства», Новочеркасск. 2005. С. 25−28.
  59. E.H. Введение в стерильную культуру интродуцированных видов рододендронов // Междунар. конф. «Микробиология и биотехнология на рубеже 21 столетия»: Сб. материалов. Минск, 2000. С. 176−177.
  60. E.H. Морфогенез интродуцированных сортов Vaccinium vitis-idea L. в асептической культуре // Плодоводство. 2004. Т. 15. С. 199−202.
  61. Т.Н., Фесенко И. Н., Павлонская Н. Е. Изменчивость гречихи татарской (Fagopirum tataricum Gaertn.) по белкам семян, выявляемая электрофорезом в ПААГ // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2007. № 3. С. 93−97.
  62. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. — 352 с.
  63. В.А., Деменко В. Н., Долгов C.B. Потенциальные возможности адвентивного органогенеза у различных сортов груши // Известия ТСХА. 2004. Вып. 4. С. 81−87.
  64. Леонтьева-Орлова Л. А. Способ размножения смородины in vitro: Пат. № 4 931 106/13- Заяв. 25.04.1991- Опуб. 20.07.1995.
  65. H.A., Ветчинкина Е. М., Горбунов Ю. Н., Молканова О. И. Сохранение растений в генетических банках in vitro: преимущества и недостатки // Бюлл. глав, ботан. сада. 2008. Вып. 194. С. 141−149.
  66. В.А., Лунькова В. М., Исачкин A.B., Ханжиян И. И. Изучение закономерностей наследования способности к регенерации придаточных корней у зеленых черенков гибридов яблони Fi // Известия ТСХА. 2005. Вып. 4. С. 74−82.
  67. О.В., Пронина И. Н. Размножение яблони и груши in vitro // Достижения науки и техники АПК. 2009. № 2. С. 15−17.
  68. М.Д., Кляченко О. Л., Смирнова A.B., Лобко Ю. В. Морфогенез in vitro изолированных апексов магнолии {Magnolia Kobus Thunb) // Актуальные проблемы генетики. 2003. С. 158−159.
  69. Молекулярно-биологические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции. Теоретические основы селекции. Том 1. / под ред. В. Г. Конарева. М., Колос, 1993,447с.
  70. Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. И., Прокофьев М. И. Основы сельскохозяйственной биотехнологии. М.: «Агропромиздат», 1990. С. 221−222.
  71. A.JI. Влияние света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре in vitro: Автороф. диссер. .к.б.н. 2002. 19с.
  72. М.Ю., Бурдаева JI.M. Микроклональное размножение дуба черешчатого (Quercus robur L.) // 4-й Съезд О-ва физиологов раст. России. Междунар. конф. «Физиол. раст. наука 3-го тысячелетия», Москва, 4−9 окт. 1999. С. 650.
  73. И.Б. Особенности вегетативного размножения сортовой сирени.: Автореф. диссер.к.б.н. М., 1998. 21с.
  74. B.C., Юхимук А. Н., Филипеня B.JL, Спиридович Е. В. Применение биоанализатора Agilent 2100 в работах по молекулярно-генетической паспортизации биологических объектов // Вест. Укр. тов-ва генетиков и селекционеров. 2008. Т. 6, № 2 С. 269−274.
  75. И.А. Особенности микроклонального размножения шиповника и декоративных сортов рода Rosa L.: Автореф. диссер.. .к.с.-х.н. 2007. 25с.
  76. В.В. Физиология целостности растительного организма // Физиология растений. 2001. Т. 48, № 4. С. 631−643.
  77. Ф.Я., Высоцкий В. А., Тарашвили З. Т. Методические указания по клональному микроразмножению черной и красной смородины. М., 1986. 15с.
  78. О.В. Идентификация сортов косточковых культур с помощью ПЦР -анализа: автореф. диссер.. к.с.-х.н. 2007. 18с.
  79. Д.Н. Дикие родичи плодовых растений сем. Rosaceae Карельского и Ижорского флористических районов и проблема их сохранения in situ: автореф. диссер. к. б. н. 2004. 16с.
  80. B.C., Санкин JI.C. Селекция смородины золотистой в Сибири // материалы научно-практич. конф.: «Состояние и перспективы развития сибирского садоводства». Барнаул, 2007. С. 294−300.
  81. B.C., Санкин JI.C. Сорта смородины золотистой // Помология. Смородина. Крыжовник. Орел: ВНИИСПК, 2009. Т. 4. С. 295−309.
  82. JI.C., Салыкова B.C. Отчет о научно-исследовательской работе. Барнаул: НИИСС им. М. А. Лисавенко, 2007. С. 25−32.
  83. A.M., Бондаренко П. Е., Шевчук Н. С. Клональное микроразмножение подвоев и сортов плодовых культур // V Междунар. конф. «Биология культивируемых клеток и биотехнология»: Тез.докл. Новосибирск, 1988. Т.2. С. 346.
  84. Сельскохозяйственная биотехнология / под ред. B.C. Шевелуха. М.: Высш. шк., 2003. С. 77−133.
  85. В.Ф., Арефьева Л. П., Новожилова O.A., Прусаков А. Н., Тимощенко A.C. Ginkgo biloba: биохимическая характеристика белков семян и оценка филогенетических отношений с голосеменными // Ботанический журнал. 2006. Т. 91, № 7. С. 1001−1014.
  86. О.Ю., Максимов В. М. Действие тяжелых металлов на микроорганизмы //Успехи микробиологии. 1985. 20, № 2. С.36−39.
  87. Е.А., Кутас E.H. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов голубики высокой и брусники обыкновеннойв культуре in vitro в связи с генотипами // Вести АН Беларуси. Серия: биологические науки. Минск, 1998. № 3. С.5−9.
  88. Е.А., Кутас E.H. Клональное микроразмножение новых плодово-ягодных растений. Мн.: Навука i тэх! ка, 1996. 246с.
  89. В.А., Латыпов С. А., Перчуляк Л. П. Оптимизация питательной среды для побегообразования в культуре клеток томатов // Культура клеток растений и биотехнология. М., 1986. С. 128−132.
  90. Т.И. Интродукция голубики топяной (Vaccinium uliginosum L.) в Западной Сибире: Автореф. диссер.к. б. н. Новосибирск, 2007. 16с.
  91. A.A. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции. М.: Наука, 1985.
  92. A.A., Попереля Ф. А. Полиморфизм глиадина и возможности его использования. Растительные белки и их биосинтез. М.: Наука, 1975. С. 65−76.
  93. A.A., Попереля Ф. А., Стаханова А. И. Использование электрофореза глиадинов в селекции на качество. Вестник сельскохозяйственной науки. 1974. Т. 7. С. 99−108.
  94. А.Е. Научные основы размножения ягодных культур в Западной Сибири : Дис. д. с.-х. н. Новосибирск, 2005. 24с.
  95. Т.С., Васильева О. Г. Размножение интродуцированных рододендронов методом in vitro II Проблемы дендрологии на рубеже XXI века. 1999. С. 339−341.
  96. Т.С., Митрашенкова В. М., Горбунов Ю. Н. Особенности микроклонального размножения малораспространенных ягодных культур семейства Vacciniaceae // Сб. науч. тр. 2003. № 67. 76−80, 378−379.
  97. С.А., Глотова Л. В., Теслюк Н. И. Применение кукурузного крахмала в культуре винограда in vitro II Виноград и вино России. 2000. № 3. С. 4849.
  98. О.Ю., Приходько Ю. Н. Эффективность различных методов оздоровления смородины от вирусов // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. тр. 1995. Т. 2. С. 193−198.
  99. Е.Р., Маслова Ю. И., Шишова М. Ф. Фитогормоны водорослей // Физиология растения. 2007. Т. 54, № 2. С. 186−194.
  100. З.Т. Ускоренное размножение черной и красной смородины методом in vitro: Автореф. диссер. к. с.-х. н. М., 1985. 23с.
  101. Н.И., Стрыгина О. В. Микроклональное размножение малины // Садоводство и виноградарство. 1990. № 8. С.26−29.
  102. Г. Б. Стевия простой способ клонального микроразмножения in vitro и адаптации in vivo II Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда: тез. докл. VII международ, конф. (25−28 ноября 1997 г.). М., 1997. С. 471.
  103. М.Т. Клональное микроразмножение садовых культур на безагаровой среде // Садаводство и виноградарство. 2000. № 5−6. С. 20−21.
  104. М.Т., Высоцкий В. А. Регенерационная способность эксплантов рода Rubus в зависимости от длительности культивирования in vitro // Сельскохозяйственная биология. 1995. № 1. С. 85−89.
  105. М.Т. Клональное микроразмножение садовых культур на безагаровой среде // Садоводство и виноградрство. 2000. № 5−6. С. 20−21.
  106. И.П. Витрификация у эксплантов сосны обыкновенной {Pinns sylvestris L.) в культуре in vitro II Вестник КрасГАУ. 2009. № 8. С. 85−88.
  107. Р.П., Долгих Ю. И., Гужов Ю. Л. Выбор оптимальных сред для массовой регенерации растений сахарного тростника из каллусной культуры // Физиология растений. 1996. Вып.43, № 1. С. 111−118.
  108. H.H. Культура соматических тканей сорго // Селекция, семеновод., технол. воздел, перераб. сорго. 1999. С.82−83.
  109. JI., Спасеноски М. Можности за регенерация на домати от котиледони на различии медиуми // Год. зб. биол. / Прир. мат. фак. Унив., Скоп. 1995. 48. С. 7−19.
  110. М.Х., Бутенко Р. Г., Кулаева О. Н. Терминология роста и развития высших растений. М.: Наука, 1982. 96 с.
  111. A.A. Клональное микроразмножение садовых растений. Автореф.к. с.-х.н. М., 2003. 25с.
  112. Д.Г. Совершенствование технологии размножения редких садовых растений в культуре in vitro и оценка их потенциала устойчивости к абиотическим стрессорам: Автореф. диссер.к.с.-х.н. 2008. 23с.
  113. .Ю., Полещук С. В., Горбатенко И. Ю., Ванюшин Б. Ф. Действие антиоксидантов на рост и развитие растений // Изв. РАН. Сер. биол. -1999. № 1.С. 30−38.
  114. A.A., Вечернина H.A., Санкин Л. С., Салыкова B.C., Ершова И. В. Размножение смородины золотистой in vitro // Китайско-российский форум о биологических и экологических проблемах в лесном хозяйстве г. Хэйхэ КНР. Хэйхэ, 2009. С. 71−75.
  115. A.A. Вечернина H.A. Введение в культуру in vitro смородины золотистой // IX Международная конференция: Биология клеток растений in vitro и биотехнология (8−12 сентября 2008, Звенигород). М., 2008. С. 450−451.
  116. A.A., Вечернина H.A. Размножение смородины золотистой in vitro II Вестник Алтайского государственного аграрного университета. Барнаул, 2008. № 4 (42). С.10−14.
  117. A.A., Вечернина H.A. Особенности размножения голубики топяной in vitro II Международная научно-методическая дистанционная конференция: Актуальные проблемы размножения ягодных культур и пути их решения. — Мичуринск, 2010. — С. 310−314.
  118. A.A., Вечернина H.A. Микроразмножение новых перспективных сортов Vaccinium uliginosum L. II Вестник Харьковского национального аграрного университета. Сер. Биологическая. Харьков, 2010. — Вып. 2 (20).-С. 96−103.
  119. С.И. Смородина. Ташкент: ФАН, 1976. С. 16−18. Яковлев А. П., Ходасевич Л. В. Опытное выращивание Vaccinium uliginosum L. на выработанных торфяниках севера Белоруссии // Растительные ресурсы. 1998. Т. 34, вып. 2. С. 23−29.
  120. Agrawal V., Prakash S., Gupta S.C. Effective protocol for in vitro shoot production through nodal expiants of Simmondsia chinensis II Biol, plant. 2002. V. 45, N 3. P. 449−453.
  121. Ajithkumar D., Seeni S. Rapin clonal multiplication through in vitro axillary shoot proliferation of Aegle marmelos (L.) Corr., a medicinal tree // Plant Cell Repts. 1998. V. 17, N5. P. 422−426.
  122. Anderson W.C. Propagation of rhododendrons by tissue culture. I. Development of a culture medium for multiplication of shoots // Combined proceedings of international plant propagators society 25. 1975. 129−133.
  123. Andersson W.S. A revised tissue culture medium for shoot multiplication of rhododendron//Amer. Soc. Hort. Sci. 1984. V. 109. P. 343−347.
  124. Andersson W.S. Mass propagation by tissue culture: principls and techniques // Proceedings of confer. On nursery production of fruit plants through tissue culture-applications and feasibility. Maryland. 1980. P. 1−10.
  125. Arapetyan E., Bilinska I. Antibiotics help plants in struggle with bacteria and fungi // Bulg. J. Plant Physiol. 1998. P. 223.
  126. Arena M.E. Adventitious shoot induction from leaf expiants of Ribes magellanicum cultured in vitro // Sci. Hort. 1997. V. 72, № 1. P. 73−79.
  127. Areskeviciute J., Paulauskas A., Cesoniene L., Daubaras R. genetic characterization of wild cranberry {Vaccinium oxycoccos) from Cepkeliai reserve by the RAPD method. Biologija. 2006. № 1. P. 5−7.
  128. Autran J.C., Bourdet A. L’identification des varietes de ble: etablissement d’un tableau general de determination fonde sur le diagramme electrophoretique des gliadines du grain. Ann. Amelior. Plantes. 1975. V. 25, № 3. P. 227−301.
  129. Babu K.N. Anu A., Remashree A.B., Praveen K. Micropropagation of curry leaf tree // Plant Cell, Tiss., Org. Cult. 2000. V. 61, N 3. P. 199−203.
  130. Baburaj S., Ravichandran P., Selvapandian M. In vitro adventitious shoot formation from leaf cultures of Clerodendrum inerme (L) Gaertn. // Indian J. Exp. Biol. 2000. V. 38, N 12. P. 1274−1276.
  131. Baraldi R., Rossi F., Lereari B. In vitro shoot development of Prunus CF 655−2- interaction between light and benzyladenine // Physiol. Plant. 1988. V.74. P. 440−443.
  132. Baruah A., Sarms D., Saud J., Singh R.S. In vitro regeneration of Hypericum patulum Thunb. // Indian J. Exp. Biol. 2001. V. 39, № 9. P. 947−949.
  133. Bennett I. J., McDavid D. A. J., McComb J. A. The influence of ammonium nitrate, pH and indole butyric acid on root induction and survival in soil of micropropagated eucalyptus globulus // Biol, plant. 2003. V. 47, № 3. P. 355 360.
  134. Bhatt I.D., Dhar U. Micropropagation of Indian wild strawberry // Plant Cell, Tiss., Org. Cult. 2000. V. 60. P.83−88.
  135. Bhattacharya K., Sengupta L., Sharma N. Effect of some growth regulators on callusing in Dalbergia sissoo // Bionature. 1990. V. 10, № 1−2. P. 19−22.
  136. Bhojwani S., Millina K., Cohen D. In vitro propagation of Pyrus purifolia II Sei.
  137. Hort. (Neth.) 1984. V. 23, № 3. P.247−254.
  138. Borad V.P., Barvt D.M., Macwan S.J., Mehta A.R. Regeneration of plantlets in Sapindus trifoliatus L. // Indian J. Exp. Biol. 2001. V. 39, № 12. P. 1288−1292.
  139. Bousselmame Farah, Kenny Lahcen, Chlyah Hassan. Optimisation des conditions de culture pour l’enracinement in vitro de l’arganier (Argania spinosa L.) // C. r. Acad. sei. Ser. 3. 2001. V. 324, № 11. P. 995−1000.
  140. Brissette L., Tremblay L., Lord D. Micropropagation of lowbush blueberry from mature field-grown plants // HortScience. 1990. V. 25. P. 349−351.
  141. Bruederle L.P., Vorsa N., Ballington J.R. Population genetic structure in diploid blueberry Vaccinium section Cyanococcus (ericaceae) // Amer. Jour, of bot. 1991. V. 78. № 2. P. 230−237.
  142. Busby A.L., Himeirick D.V. Propagation of blackberries (Rubus spp.) by stem cuttings using various IBA formulation // Acta Horticult. 1999. V. 505. P. 327 332.
  143. Bushuk W., Zillman R. Wheat cultivar identification by gliadin electrophoregrams. I. Apparatus, method and nomenclature // Can. J. Plant Sci. 1978. V. 58. P. 505−515.
  144. Calamar A., de Klerk G.J. Effect of sucrose on adventitious root regeneration in apple // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2002. V. 70. P. 207−212.
  145. Cao X., Hammerschlag F.A., Douglass L. A two pretreatment significantly enchances shoot organogenesis from leaf explants of highbush blueberry cv. «Bluecrop» //HortScience. 2002. V. 37. P. 819−821.
  146. Cassells A.C. Pathogen and microbial contamination management in micropropagation. 1997. 370 p.
  147. Chand S., Singh A.K. In vitro propagation of Bombax ceiba L. (Silkcotton) // Silvae genet. 1999. V. 48, № 6. P. 313−317.
  148. Chandler C.K., Draper A.D. Effectof zeatin and 2iP onshoot proliferation of three highbush blueberry clones in vitro 11 HortScience. 1986. V. 21. P. 1065−1066.
  149. H. Цито-гистологическое исследование на адвентивных почках дифференцирующихся из кончиков адвентивных корней Trichosanthes kirilowii II Acta bot. yunnanica. 2001. 23, № 4. P.488−492.
  150. Cieslinska M., Zawadzka Ию Preliminary results of investigation on elimination of viruses from apple, pear and raspberry using thermotherapy and chemotherapy in vitro II Phytopathol. Pol. 1999. V. 17. P. 41−48.
  151. Clapa D., A1 F. The use of zeatin as growth regulator for the micropropagation of some highbush blueberry (Vaccinium corymbosum) cultivars // Bui. Univ. Esti. agr. Esi med. vet., Cluj-Napoca. Ser. Hort. 2006. V. 63. P. 400.
  152. Cohen D. Application of micropropagation methods for blueberries and tamarilles // Combined proceedings of international plant propagators society. 1980. V. 30. 144−146.
  153. Cohen D., Elliott D. Micropropagation methods for blueberries and tamarilles // Combined proceedings of international plant propagators society. 1979. V. 29. 177−179.
  154. Cooke R.J. Modern methods for cultivar verification and the transgenic plant challenge. Abstracts of 25th International Seed Testing Congress (Pretoria, April 15−24, 1998), ISTA, Zurich. 1998. P. 9−10.
  155. Cooke R.J. The standartizaton of electrophoresis methods for variety identification. In: Biochemical Identification of varieties (Materials III International Symposium ISTA, Leningrad, USSR, 1978). 1988. P. 14−27.
  156. Dahleen L.S. Improved plant regeneration from barley callus cultures by increased cooper levels // Plant Cell, Tissue and organ Cult. 1995. V. 43, № 3. P.267−269.
  157. Debnath S.C. In vitro culture of lowbush blueberry (Vaccinium angustifolium Ait.) // Proceedings of the ninth North American blueberry research and extension workers conference. 2004. V. 3, № 1−2. P. 393−407.
  158. Dias M.C., Almeida R., Romano A. Rapid clonal multiplication of Lavandula viridis L’Her through in vitro axillary shoot proliferation // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2002. V. 68, № 1. P. 99−102.
  159. Doina C., Fira Al. The use of zeatin as growth regulator for the micropropagation of some highbush blueberry {Vaccinium corymbosum) // Bui. Univ. esti. agr. esi med. vet., Cluj-Napoca ser. Hort. 2006. P. 400.
  160. Durkovic J. Regeneration of Acer caudatifolium Hayata plantlets from juvenile explants // Plant Cell Repts. 2003. V. 21, № 11. P. 1060−1064.
  161. Dutt M., Van Aman M., Gray D.J. Liquid culture for rapid in vitro propagation of Vitis II In Vitro Cell, and Dev. Biol. Anim. 2004. V. 40. P. 561 A.
  162. Eccher T., Noe N. Comparison between 2iP and zeatin in the micropropagation of highblush blueberry (Vaccinium corymbosum) // Acta Horticulturae. 1989. V. 241. P. 185−190.
  163. Eugenio P., Antonio D. In vitro propagation of Pelecyphora aselliformis Ehrenberg and P. strobiliformis Werdermann (Cactaceae) // In Vitro Cell, and Dev. Biol. Plant. 2002. V. 38, № 1. P. 73−78.
  164. Evert R.F., Esau K. Plant anatomy: meristems, cells and tissues of plant body. 2006. P. 152.
  165. Fang Y., Smith M.A.L., Pepin M.-F. Benzyl adenine restores anthocyanin pigmentation in suspension cultures of wild Vaccinium pahalae II Plant Cell, Tiss. And Org. Cult. 1998. V. 54, № 2. P. 113−122.
  166. Finn C.E., Luby J.J., Rosen C.J., Ascher P.D. Evaluation in vitro of blueberry germplasm for higher pH tolerance // J. American Society for Hortic. Sci. -1991. V. 116. P. 312−316.
  167. Fogaca C. M., Fett-Neto A. G. Role of auxin and its modulators in the adventitious rooting of Eucalyptus species differing in // Plant Growth Regul. 2005. N 1. P. 1−10.
  168. Frett J .J., Smagula J.M. In vitro shoot production of lowbush blueberry // Canadian Journal of Plan Sciences. 1983. V. 63. P. 467−472.
  169. Fujiwara K., Kozai T., Watanabe I. Development of a photoautotrophic tissue system for shoots and/or plantlets at rooting and acclimatization stage // Acta Hortic. 1988. V. 230. P. 153−158.
  170. Gajdosova A., Ostrolucka M.G., Libiakova G., Ondruskova E. Protocol for microprppagation of Vaccinium vitis-idaea L. // Protocol for micropropagation of woody trees and fruits. 2007. P. 445−464.
  171. Galletta G.J., Ballington J.R. Blueberries, cranberries, and lingooberries // Fruit Breeding. V. II: Vine and Small Fruits Crops. 1996. P. 1−107.
  172. Gautheret R.J. Introduction on problems des cultures in vitro de vegetaux ligneux // Bull. Soc. Bot. Fr./ Actual. Bot. 1983. № 2. P.5−10.
  173. George E.F. Sherrington P.D. Plant propagation by tissue culture. England, 1984. 320p.
  174. Girija S., Ganapathi A., Vengadesan G. Micropropagation of Crossandra infudibuliformis (L.) Nees // Sci. Hort. 1999.V. 83, N 3−4. P. 331−337.
  175. Gonzalez M.V., Lopes M., Valdes A.E., Ordas R.J. Micripropagation of three berry fruit species using nodal segments from field-grown plants // Ann. Appl. Biol. 2000. V. 137, № l.P. 73−78.
  176. Gorbunov A. Bog blueberry a new horticultural crop // Materials of international conference «Wild berry culture: an exchange of western and eastern experiences». Tartu, 1998. P.54−60.
  177. Grant N.J. Adventitious shoot development from wild cherry (Prunus avium L.) leaves / /New Forests. 2000. V. 20, № 3. P. 287−295.
  178. Grout J.M., Read P.E. Influence of stock plant propagation method on tissue culture and leaf-bud propagation of «Northblue» blueberry // Journal of the American Society for Horticultural Science. 1986. V. 111. P. 368−371.
  179. Grout J.M., Read P.E., Wildung D.K. Influence of tissue culture and leaf-bud propagation on the growth habit of «Northblue» blueberry // J. Amer. Society for Hortic. Sci. 1986. V. 111. P. 372−375.
  180. Hazarika B.N. Acclimatization of aseptically cultured Citrus plants for in vivo conditions: Ph D thesis. Guwahati, India, 1999.
  181. Hortic. Sci. 1968. V. 43. P. 289−292. Kancherla S.L., Bhalla P.L. In vitro propagation of pandoreas // HortScience. 2001.
  182. V. 36, № 2. P. 348−350. Karhu S. Enhancement of micropropagation of Lonicera and Malus by exogenous factors // Turun yliopiston julk. A2. 1996. V. 88. P. 1−42.
  183. Kataeva N.V., Butenko R.G. Clonal microprppagation of apple trees // Acta Hort. 1987. V. 12. P. 585−588.
  184. Kevers C., Franck T., Strasser R. J., Dommes J., Gaspar T. Hyperhydricity of micropropagated shoots: A typically stress-induced change of physiological state // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2004. V. 77, № 2 P. 181−191.
  185. Knop W. Quantitative Untersuchungen uber die Ernahrungsprozesse der Pflanzen/ Landwirte in den Vereinigten Stagten. 1865. V. 7 P. 93−107.
  186. Kollarova-Sadlonova, Lux A., Liskova D., Henselova M., Kakoniova D., Masarovicova E. K. Rooting, root growth and root morphology of two Karwinskia species in vivo and in vitro II Biol. Sec. Bot. 2003. V. 58, № 1, 2003. P. 89−94.
  187. Koroch A.R., Juliani Jr. H.H., Juliani H. R, Trippi V.S. Micropropagation and acclimatization of Hedeoma multiflorum II Plant Cell, Tiss. And Org. Cult. 1997. V. 48. P. 213−217.
  188. Krebs S.L., Hancock J.F. Tetrasomic inheritance of isoenzyme markers in the highbush blueberry, Vaccinium corymbosum L. // heredity. 1989. № 63. P. 1118.
  189. Kubalakova M., Tejklova E., Griga M. Some factors affecting root formation on in vitro regenerated pea shoots // Biol, plant. 1988. V. 30, № 3. P.179−184.
  190. Kutas E. Morphogenesis of introduced varieties of Vaccinium vitis-idaea in aceptic culture // Forestry Studies XXX. 1998. P. 87−93.
  191. Maity S.K., De K.K., Kundu A.K. In vitro propagation of Mussaenda erythrophylla Schum and Thom cv. scarlet through multiple shoot regeneration // Indian J. Exp. Biol. 2001. V. 39, № 11. P. 1188−1190.
  192. Makunga N. P., Jager A. K., van Staden J. Improved in vitro rooting and hyperhydricity in regenerating tissues of Thapsia garganica L.// Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2006. V. 86, № 1. P. 77−86.
  193. Marcotrigiano M.S. McGlew S.P. A two-stage micropropagation system for cranberry II J. American Society for Hortic. Sci. 1991. V. 116. P. 911−916.
  194. Marks T.R., Ford Y.-Y., Cameron R.W.F., Goodwin C., Myers P.E., Judd H.L. A role for polar auxin transport in rhizogenesis // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2002. V. 70, № 2. P. 189−198.
  195. Matsuoka M., Terauchi T., Kobayashi M., Shoda M., Nakano H. Isolation of protoplasts from suspension culture and subsequent shoot regeneration in sugarcane // JARQ: Jap. Agr. Res. Quart. 1996. V. 30, № 1. P.21−26.
  196. Matthys-Rochon E., Piola F., Deunff E., Mol R., Dumas C. In vitro development of maize immature embryos: a tool for embryogenesis analysis // J. Exp. Bot. -1998. V. 49, № 322. P. 839−845.
  197. McCown B.H. Recalcitrance of woody and herbaceous perennial plants dealing with genetic predetermination // In Vitro Cell and Devel. Biol. 2000. V. 36. P. 149−154.
  198. Modgil M., Sharma D.R., Bhadrwaj S.V. Micropropagation of apple cv. Tydeman’s Early Worcester // Sci. hort. 1999. V. 81, № 2. P. 179−188.
  199. Morrison S., Smagula J.M., Litten W. Morphology, growth and rhizome development of Vaccinium angustifolium seedling, rooted softwood cuttings, and micropropagated plantlets // HortScience. 2000. V. 35. P. 738−741.
  200. Murashige T. Clonal crops through tissue culture // Plant tissue culture and its bio-technological application. 1976. P.392−403.
  201. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures // Ann. Rew. Plant Physiol. 1974. V. 25, № 2. P. 136−166.
  202. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue culture // Physiol. Plant. 1962. V. 15, № 2. P. 473−497.
  203. Mythili J.B., Thomas P. Influence of ammonium to nitrate nitrogen ratio in different basal media on callusing response of capsicum (Capsicum annuum L. grossum Sendt.) anthers // Indian J. Exp. Biol. 1999. V. 37, № 3. P.314−316.
  204. Mythili P.K., Madhavi A., Reddy V.D., Seetharama N. Efficient regeneration of pearl millet (Pennisetum glaucum (L.) R. Br) from shoot tip cultures // Indian J. Exp. Biol. 2001. V. 39, № 12. P. 1274−1279.
  205. Noda-Jimenez A.L., Alvarez-Olivera P.A., Junco-Cruz L., Garcia-Lopez M., Sotolongo-Sospedra R. Propagation clonal in vitro de Eucalyptus pellita II Rev. Chapingo. Ser. Cienc. forest, y ambient. 2000. V. 6, № 1. P. 29−33.
  206. Noe N., Eccher T. Influence of irradiance on in vitro growth and proliferation of Vaccinium corybosum (highbush blueberry) and subsequent rooting in vivo II Physiol. Plant. 1994. V. 91. P. 273−275.
  207. Noe N., Eccher T., Del Signore T., Montoldi A. Grown and proliferation in vitro of Vaccinium corymbosum under different irradiance and radiation spectral composition//Biol. Plant. 1998. V. 41. P. 161−167.
  208. Normah M.N., Nor-Azza A.B., Aliudin R. Factors affecting in vitro shoot proliferation and ex vitro establishment of mangosteen // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1995. V. 43, № 3. P. 291−294.
  209. Orlikowska T. Micropropagation of highbush blueberry // Fruit Science reports. 1986. V. 13. P. 105−115.
  210. Osborn T.B. The vegetable proteins. 2nd ed. L.: Longmans. Green and Co. 1924. 130p.
  211. Palacios N., Christou P., Leech M.J. Regeneration of Lonicera tatarica plants via adventitious organogenesis from cultured stem explants // Plant Cell Reports. 2002. V. 20, № 9. P. 808−813.
  212. Pasqua G., Manes F., Monacelli B., Natale L., Anselmi S. Effect of the culture medium pH and ion uptake in in vitro vegetative organogenesis in thin cell layers of tobacco II Plant. Sci. 2002.V. 162, № 6. P. 947−955.
  213. Pavingerova D., Briza J., Prenerova E. Odvozeni primarnich kultur z kvetnich pupenu rododendrounu // Rostl. Vyroba. 2000. V. 46, № 6. P. 281−283.
  214. Powell C.L., BatesP.M. Ericoid mycorrhizas stimulate fruit yield of blueberry // HortScience. 1981. V. 16. P. 655−666.
  215. Preil W., Engelhardt M. Meristem culture of azaleas {Rododendron simsii) // Acta Hort., 1977. V. 78. 203−208.
  216. Preil W., Engelhardt M. Meristem culture of azaleas (Rododendron simsii) II Acta Hort. 1977. V. 78. 203−208.
  217. Pua E., Chong C. Requirement for sorbitol (D-glucitol) as carbon source for in vitro propagation of Malus robusta № 5 // Can. J. Bot. -1984. V. 62, № 7. P. 26−29.
  218. Purohit V.K., Tamta S., Chandra S., Vyas P., Man S., Nandi Sh. K. In vitro multiplication of Quercus luecotrichophora and Q. glauca: Impotent Himalayan oaks // Plant Cell, Tiss., Org. Cult. 2002. V. 69, № 2. P. 121−133.
  219. Quoirin M., Lepoivre P. Etude de milieux adaptes aux cultures in vitro de Prunus 11 Acta Hortic. 1977. V. 78. P. 437−442.
  220. Rao P. S., Raghava R.N.V. Propagation of sandalwood (Santalum album Linn.) using tissue and organ culture technique // Plant cell cult. Crop. Improv. Int. Symp. (Calcutta) / New-York: London. 1983. P. l 19−124.
  221. Ravishankar R., Jagadish C. In vitro regeneration of plantlets from shoot callus of mature trees of Dalbergia latifolia II Plant Cell, Tiss., Org. Cult. 1988. V. 13. P. 77−83.
  222. Read DJ. The biology of myccorrhiza in the Ericales // Canadian J. of Botany. 1983. V.61.P. 985−1004.
  223. Reed B.M. The effect of cold hardening and cooling rate on the survival of apical meristems of Vacinium species frozen in liquid nitrogen I I Cryo-Letters. 1989. V. 10. P. 315−322.
  224. Reed B.M., Abdelnour-Esquivel A. The use of zeatin to initiate in vitro cultures of Vaccinium species and cultivars // HortScience. 1991. V. 26. P. 1320−1322.
  225. Reyes V.l., Hubstenberger J., Barrow J. In vitro mass clonal propagation and hyperhydricity reversal of four-wing saltbush (Atriplex canescens (Pursh) Nutt.) // In Vitro Cell, and Dev. Biol. 2004. V. 40. P. 551 A.
  226. Richardson J. Influences of media, mist pH and micronutrients on propagation of «Tifblue» rabbiteye blueberries (Vaccinium ashei Reade) and florida «16−29» peaches {Prunuspersica Batsch): M.S. 1985. 34 p.
  227. Roy S.K., Islam M.S., Hadiuzzaman S. Micropropagation of Elaeocarpus robustus Roxb.// Plant Cell Repts. 1998. V. 17, № 10 P. 810−813.
  228. Roy S.K., Rahman S.L., Datta P.C. In vitro propagation of Mitragyna parvifolia Korth. //Plant Cell, Tiss., Org. Cult. 1988. V. 12. P.75−80.
  229. Rowland L.J., Hammerschlag F.A. Vaccinium spp. Bluberry // Biotechnology of fruit and crops. Trowbridge, 2005. P. 221−246.
  230. Ruzic D., Lazic T. Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black current cultivars // Agric. Consp. Sci. 2006. V. 71, № 4. P. 149−153.
  231. Sahay N.S., Varma A. A biological approach towards increasing the rates of survival of micropropagated plants // Curr. Sci. 2000. V. 78. P. 126−129.
  232. Selby C., Harney B.M.R. The influence of natural and in vitro bud flushing on adventitious bud production in sitca spruce (Piceae sitchensis (Bong.) Carr.) bud and needle cultures 11 New Phytol. 1985. V. 100. P. 549−562.
  233. Selvapandiyn A., Subramani J., Bhatt P.N., Mehta A.R. A simple method for direct transplantation of cultured plants to the field // Plant Sci. 1988. V. 56. P. 81−83.
  234. Sha Valli Khan P. S., Prakash E., Rao K.R. In vitro micropropagation of an endemic fruit tree Syzygium alternifolium (Wight) walp // Plant Cell Repts. 1997. V.16, № 5. P. 325−328.
  235. Sharma S.K., Ramamurthy V. Micropropagation of 4-year-old Eucalyptus tereticornis trees II Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 511−518.
  236. Sharon M., Shankar P. C. Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf primordial of Phoenix dactylifera cv. yakubi II Indian J. Exp. Biol. 1998. V. 36, № 5. P.526−529.
  237. Shibli R.A., Smith M.A.L., Kushad M. Headspace ethylene accumulation effects on secondary metabolite production in Vactinium pahalae cell culture // Plant Growth Regulation. 1997. V. 23, № 3. P. 201−205.
  238. Singh S. K, Shymal M.M. Effect of media and physical factors on in vitro rooting in roses//Hortic. J. 2001. V. 14. P. 91−97.
  239. Smagula J.M., Litten W. Effect of ericoid mycorrhizae isolates on growth and development of lowbush blueberry tissue culture plantlets // Acta Horticulture. 1989. V. 241. P. 110−114.
  240. Smith E.F., Roberts A.V., Mottley, Denness S. The preparation in vitro of chrysanthemum for transplantation to soil. 4. The effect of eleven growth retardant on wilting // Plant Cell, Tiss. And Org. Cult. 1991. V. 27. P. 309−313.
  241. Somers P.W. In vitro propagation of black walnut (Juglans nigra L.) / P.W. Somers, J.W. Van Sambeek, J.E. Preece, G. Gaffney, O. Myers // Proc. 7th N. Amer. For. Biol. Workshop., 1982. P. 224−230.
  242. Somers P.W., Van Sambeek J.W., Preece J.E., Gaffney G., Myers O. In vitro propagation of black walnut {Juglans nigra L.) // Proc. 7th N. Amer. For. Biol. Workshop. 1982. P. 224−230.
  243. Song G.-Q., Sink K.C. Blueberry (Vaccinium corymbosum L.) / Agrobacterium protocols. 2006. V. 2. P. 264−272.
  244. Stafford A., Warren G. Natural products and metabolites from plant and plant tissuecultures // Plant Cell and Tissue Cultured. 1991. P. 124−150.
  245. Suri S.S., Jain S., Ramawat K.G. Plantlet regeneration and bulbil formation in vitro from leaf and stem explants of Curculigo orchioides an endangered medicinal plant// Sci. hort. (Neth.). 1999. 79, № 1−2. P.127−134.
  246. Tahir M., Stasolla C. Shoot apical development during in vitro embryogenesis // Canadian J. of Botany. 2006. V. 84, № 11. P. 1650−1659.
  247. Tahir M., Stasolla C. Shoot apical development during in vitro embryogenesis // Canadian J. of Botany. 2006. V. 84, № 11. P. 1650−1659.
  248. Takayama S., Misawa M. Differentiation of Lilium bulbscales grown in vitro: Effect of various cultural conditions // Physiol. Plant. 1979. V. 46. P.184−190.
  249. Tang W., Newton R. J., Outhavong V. Exogenously added polyamines recover browning tissues into normal callus cultures and improve plant regeneration in pine //Physiol, plant. 2004. V. 122, № 3. P. 386.
  250. Tetsumura Т., Matsumoto Y., Sato M., Honsho Ch., Yamashita K., Komatsu H., Sugimoto Y., Kunitake H. Evaluation of basal media for micropropagation of four highbush blueberry // Sci. Hortic. 2008. V. 119, № 1. P. 72−74.
  251. Tsao C.W.V., Reed В. M. Gelling agents, silver nitrate and sequestrene iron influence adventitious shoot and callusformation from Rubus leaves // In Vitro Cell, and Dev. Biol. Plant. 2002. V. 38, № 1. P. 29−32.
  252. Tyulenev V.M., Zhukova N.V., Naftaliev P.M. Clonal micropropagation of disease-free plants of black currant (in Russian) // Byul. Nauch. Tsentr. Ord. Trud. Krasn. Znam. Genet. Lab. I.V. Michurina. 1987. V.45. P. 41−43.
  253. Vater G., Arena M. In vitro propagation of Rubus geoides II New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science. 2005. V. 33. P. 277−281.
  254. Vechernina N., Tavartkiladze O., Terekhoh S., Chernykh E., Novikova Т., Gorbunov A. Micropropagation of Vaccinium L. // Культура брусничных ягодников. Минск, 2005. С. 137−140.
  255. Venkateswarlu В., Mukhopadhyay J., Sreenivasan E., Kumar V. M.
  256. Micropropagation of Paulownia fortuneii through in vitro axillary shoot proliferation I I Indian J. Exp. Biol. 2001. V. 39, № 6. P. 594−599.
  257. Wainwright H., Flegmann A. Studies of the micropropagation of Ribes species // ActaHort. 1986. V. 183. P. 315−322.
  258. Wang S.Y., Steffens G.L. Effect of paclobutrazol on water stress induced abscisic acid in apple seedlinds leaves // Plant Physiol. 1987. V.84. P. 1051−1054.
  259. Wilson D., Nayar N.K. In vitro propagation of rose cv. Folklore // J. Trop. Agr. 1998. V. 36, № 1−2. P. 12−17.
  260. Res. 2003. V. 14, № 3. P. 213−216. Zimmerman R.H. Factors affecting in vitro propagation of apple cuttings // Acta
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!