Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние регуляторных пептидов на нейроиммунную систему белых крыс

Диссертация: Влияние регуляторных пептидов на нейроиммунную систему белых крыс
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Та сумма знаний, которая накоплена в настоящее время о закономерностях формирования, строения и функционирования этой системы во многом изменила наши представления о том, что можно считать гормоном и о том, что такое эндокринная клетка. Хотя перечень основных гормонов остается неизменным, многие исследователи относят вещества пептидного строения к местным, тканевым гормонам, действующим пара-или… Читать ещё >

Влияние регуляторных пептидов на нейроиммунную систему белых крыс (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. ВЗАИМООТНОШЕНИЯ МЕЖДУ НЕРВНОЙ И ИММУННОЙ СИСТЕМАМИ
    • 1. 1. Регуляторные пептиды как один из коммуникационных каналов интегративной системы
    • 1. 2. Участие системы регуляторных пептидов в формировании тканевого гомеостаза
      • 1. 2. 1. Семейство морфогенов
      • 1. 2. 2. Семейство опиоидов
      • 1. 2. 3. Семейство вазоактивных пептидов
    • 1. 3. Тимус — центральный орган иммунной системы
    • 1. 4. Иммуногенные зоны ЦНС
    • 1. 5. Системы и механизмы сохранения оптимального баланса регуляторных пептидов
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Характеристика исследуемых веществ
    • 2. 2. Постановка экспериментов
    • 2. 3. Гистологическая обработка материала
      • 2. 3. 1. Приготовление радиоавтографов
      • 2. 3. 2. Гистохимические окраски
      • 2. 3. 3. Приготовление клеточной суспензии тимуса
    • 2. 4. Количественный учет результатов экспериментов
      • 2. 4. 1. Определение пролиферативной активности клеток тимуса
      • 2. 4. 2. Измерения на компьютерном анализаторе изображений «Мекос Ц»
    • 2. 5. Статистическая обработка результатов
  • Глава 3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Изучение влияния регуляторных пептидов на пролиферативные процессы в тимусе белых крыс
      • 3. 1. 1. Состояние процессов пролиферации в тимусе при введении агониста ju-рецепторов опиоидного тетрапептида
      • 3. 1. 2. Состояние процессов пролиферации в тимусе при введении ЭТ
      • 3. 1. 3. Состояние пролиферативных процессов в тимусе при введении АР II
      • 3. 1. 4. Состояние процессов пролиферации в тимусе при введении АР-Н-6-ОН
      • 3. 1. 5. Состояние процессов пролиферации в тимусе при введении ПМГ в дозе 10 мкг/кг
      • 3. 1. 6. Состояние процессов пролиферации в тимусе при введении ПМГ в дозе 100 мкг/кг
      • 3. 1. 7. Влияние ПМГ на содерэн: ание цАМФ в тимусе
    • 3. 2. Морфометрическое исследование состояния нейронов иммуногенных зон лимбико-диэнцефальных структур ЦНС белых крыс на фоне введения ПМГ и его синтетических аналогов в дозе 100 мкг/кг
      • 3. 2. 1. Морфометрические параметры гиппокампа и гипоталямуса контрольных животных
      • 3. 2. 2. Морфометрические параметры гиппокампа и гипоталямуса после введения ПМГ
        • 3. 2. 2. 1. Состояние нейронов через 4 часа после однократного введения ПМГ
        • 3. 2. 2. 2. Состояние нейронов через 24 часа после однократного введения ПМГ
        • 3. 2. 2. 3. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса в режиме пятикратного введения ПМГ
      • 3. 2. 3. Морфометрические параметры гиппокампа и гипоталямуса после введения ПМГ-Arg
        • 3. 2. 3. 1. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 4 часа после однократного введения ПМГ-Arg
        • 3. 2. 3. 2. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 24 часа после однократного введения ПМГ-Arg
        • 3. 2. 3. 3. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса на фоне пятикратного воздействия ПМГ-Arg
      • 3. 2. 4. Морфометрические параметры гиппокампа и гипоталямуса после введения 5N
        • 3. 2. 4. 1. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 4 часа после однократного введения 5N
        • 3. 2. 4. 2. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 24 часа после однократного введения 5N
        • 3. 2. 4. 3. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса на фоне пятикратного воздействия 5N
      • 3. 2. 5. Морфометрические параметры гиппокампа и гипоталямуса после введения 6С
        • 3. 2. 5. 1. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 4 часа после однократного введения 6С
        • 3. 2. 5. 2. Параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса через 24 часа после однократного введения 6С
        • 3. 2. 5. 3. Морфометрические параметры нейронов гиппокампа и гипоталямуса на фоне пятикратного введения 6С
    • 3. 3. Изучение влияния ПМГ и его аналогов при внутрибрюшинном введении в дозе 100 мкг/кг на показатели активности ЗЯО в клетках тимуса белых крыс

Актуальность проблемы.

В последние десятилетия интерес многих исследователей привлекает не только функциональная морфология отдельных органов, тканей и клеток, но и механизмы содружественного действия и взаимного влияния органов иммунной, эндокринной и нервной систем. Общность происхождения и строения, взаимоконтролируемость и дублируемость многих параметров, закономерные и воспроизводимые в эксперименте ответные реакции одной системы при повреждениях другой, позволили сформулировать представление о нейро-иммуно-эндокринной системе [J.A. Miyan et al., 1998; И. Г. Акмаев, В. В. Гриневич, 2001; И. Г. Акмаев, В. Г. Сергеев, 2002]. Деятельность этой системы направлена на поддержание гомеостаза целостного организма в норме и при действии патологических факторов [В.Х. Хавинсон и соавт., 2002].

Та сумма знаний, которая накоплена в настоящее время о закономерностях формирования, строения и функционирования этой системы во многом изменила наши представления о том, что можно считать гормоном и о том, что такое эндокринная клетка [И.М. Кветной, И. Э. Ингель, 2000]. Хотя перечень основных гормонов остается неизменным, многие исследователи относят вещества пептидного строения к местным, тканевым гормонам, действующим пара-или аутокринно [И.П. Ашмарин, Е. П. Каразеева, 2003]. Помимо веществ пептидного характера, оксид азота принято рассматривать в качестве газовой гормональной субстанции [И.М. Кветной, И. Э. Ингель, 2000]. Одним из недостатков классических гормонов как терапевтических средств можно считать широкий спектр их биологической активности. Локальная система синтеза и метаболизма пептидных регуляторов позволяет сформулировать задачу создания лекарств избирательного действия.

Изучение морфогенетических свойств регуляторных пептидов отстает от функционального исследования этих веществ, что может быть связано с большей стабильностью структурных процессов по сравнению с функциональными. Вместе с тем, именно с появления и постепенного накопления морфологических изменений начинается болезнь, а выздоровление характеризуется длительным периодом восстановления измененной структуры клеток и тканей. Особый интерес в этом плане, на наш взгляд, привлекает ЦНС, нейроны которой, как известно, у взрослых млекопитающих не способны к клеточному делению и поэтому сохраняют биологическую (в том числе структурную) информацию в течение всей жизни индивида. Иммуноциты тимуса, несмотря на высокий пролиферативный потенциал, способны хранить и передавать информацию от поколения к поколению клеток. Поэтому любое вмешательство в деятельность данных систем может оказать долгосрочное воздействие на структуру и функцию этого многоуровневого каскада.

Вилочковая железа, в которой происходит образование и дифференци-ровка лимфоцитов, а также синтез пептидных регуляторов — тимопоэтина, ин-терлейкинов, цитокинов, натрийуретических пептидов, энкефалинов и т. д. — в настоящее время рассматривается как ключевой орган иммуно-эндокринной системы [А.А. Зозуля, Э. Д. Пацакова, 1986; P. Deschaux, М. Rouabhia, 1987; J.А. W. Savino et al., 1990; Miyan et al., 1998; B. Bodey et al., 2000; Y. Kinoshita, F. Hato, 2001].

Сочетанные изменения иммунной, нервной и эндокринной систем описано при различных заболеваниях — болезни Альцгеймера, амиотрофическом склерозе, болезни Паркинсона, сенильном слабоумии и др. [Н.И. Лисяный и со-авт., 2000; И. Д. Столяров, 2002].

Несмотря на тончайшие биологические механизмы регуляции в нейро-иммуно-эндокринной системе, многие ее регуляторы остались неизменными или сохраняют высокую степень гомологии у человека и, например, кишечнополостных, млекопитающих (ПМГ, эндотелины, ангиотензин и др.) [С.В. Королева, И. П. Ашмарин, 2000]. Возможно, модификация их структуры будет способствовать более прицельному действию на определенные клеточные популяции или внутриклеточные механизмы.

Таким образом, изучение морфогенетических свойств нейропептидов в нейро-иммуно-эндокринной системе остается актуальным и позволяет расширить наши сведения о более тонких механизмах регуляции морфогенеза различных звеньев этой системы.

Целью работы явилось изучение влияния ряда новых представителей ре-гуляторных пептидов и их синтетических аналогов на центральные органы нейроиммунной системы.

Достижение поставленной цели исследования планировалось осуществить с помощью решения следующих задач:

1. Изучить влияние агониста JJ.-OP тетрапептида А10, эндотелина-1, AP-II и его ациклического аналога на пролиферативные процессы в вилочковой железе половозрелых белых крыс.

2. Оценить воздействие ПМГ, его аргинин-содержащего аналога, 5N и 6С фрагментов на процессы клеточного деления и активность зон ядрышково-го организатора в тимусе половозрелых белых крыс, а также исследовать возможность реализации эффекта ПМГ с участием цАМФ.

3. Изучить эффекты введения ПМГ, его аргинин-содержащего аналога, 5N и 6С фрагментов на белоксинтетические процессы в нейронах гиппокампа и гипоталямуса половозрелых белых крыс.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Представители различных семейств нейропептидов способны изменять пролиферативные процессы в тимусе белых крыс. Системное введение агониста JJ.-OP тетрапептида, А 10 (10 мкг/кг), а также эндотелина-1 (10 мкг/кг) угнетает, а введение AP-II (10 мкг/кг) и ПМГ (100 мкг/кг) стимулирует пролиферацию тимоцитов половозрелых крыс.

2.

Введение

ПМГ, его Ag-содержащего аналога, а также 5N и 6С фрагментов ПМГ (100 мкг/кг) изменяет процессы синтеза белка в нейронах гиппокампа и гипоталямуса. Направленность эффекта зависит от кратности введения, локализации изучаемых процессов и химической структуры фрагментов ПМГ.

Научная новизна.

Впервые проведено комплексное гистофизиологическое исследование влияния новых представителей РП на центральные структуры нейроиммунной системы и показано их многообразное действие на пролиферативные процессы в тимусе, а также на белоксинтетические процессы в иммуногенных зонах гип-покампа и гипоталямуса. Впервые исследована зависимость изменений этих процессов от химической природы аналогов ПМГ.

Практическая значимость и внедрение результатов в практику Результаты исследования могут иметь значение при создании новых им-муномодулирующих препаратов. Возможно включение в лекционный курс при преподавании гистологии, патофизиологии и других дисциплин. Предполагаются публикации на региональном и федеральном уровне.

ВЫВОДЫ.

1. Внутрибрюшинное введение агониста ji-OP тетрапептида, А 10 (10 мкг/кг), а также эндотелина-1 (10 мкг/кг) угнетает пролиферацию тимоцитов половозрелых белых крыс.

2.

Введение

AP-II (10 мкг/кг) и его циклического аналога АР-Н-6-ОН (10 мкг/кг) стимулирует пролиферацию тимоцитов половозрелых белых крыс.

3.

Введение

ПМГ (100 мкг/кг) и Ag-ПМГ (100 мкг/кг) активирует синтез белка в различных популяциях тимоцитов.

Введение

ПМГ (100 мкг/кг) активирует пролиферативные процессы в тимусе, при этом концентрация цАМФ уменьшается.

4.

Введение

ПМГ и Ag-ПМГ увеличивает активность ЗЯО и содержание РНК в цитоплазме нейронов гиппокампа и гипоталамуса, что свидетельствует об активации синтеза белка.

5.

Введение

5Ы-фрагмента ПМГ не влияет на параметры ядрышка клеток тимуса и оказывает разнонаправленное действие на белоксинтетические процессы в нейронах. Эффект зависит от кратности введения и зоны ЦНС. При однократном введении в гиппокампе он уменьшает содержание нуклеиновых кислот и активность ЗЯО. В гипоталямусе через 24 часа в остром эксперименте и при пятикратном введении эти показатели изменяются в противоположную сторону.

6. Ведение 6С фрагмента ПМГ не влияет на параметры ядрышка клеток тимуса. В гипоталамусе через 4 часа после введения снижается количество РНК в цитоплазме нейронов, через 24 часа в гиппокампе снижается площадь ядрышек. Повторные инъекции пептида приводят к снижению площади ядрышек в гиппокампе и возрастанию количества нуклеиновых кислот в ядрышке.

7. В ряду изученных аналогов ПМГ наибольшей способностью изменять показатели пролиферативной активности вилочковой железы и белок-синтетические процессы в тимусе, поле h3 гиппокампа и дорсомедиальном ядре гипоталямуса обладают ПМГ и его аргинин-содержащий аналог.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В. Возможные принципы интеграции иммунной и нейроэндок-ринной системы //Иммунология.- 1996.- № 1.- С. 60−61.
  2. В.В. Интеграция иммунной и нервной систем. Новосибирск, 1991.- 167 с.
  3. И.Г. Нейроммуноэндокринология: факты и гипотезы // Пробл. эн-докринол.- 1997. Т. 43, № 1. — С. 3−9.
  4. И.Г., Гриневич В. В. От нейроэндокринологии к нейроиммуноэн-докринологии // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2001.- Т. 131, № 1. С. 22−32.
  5. И.Г., Сергеев В. Г. Нейроиммуноэндокринология жировой ткани // Усп. физиол. наук.- 2002.- Т. 33, № 2.- С. 3−16.
  6. Алликметс JL, Дитрих М. Морфологические изменения в надпочечниках при разрушении лимбических структур мозга // Труды по медицине. Тарту, 1965. вып. 178.-С. 111−116.
  7. И.П. Гипотеза о существовании новой высшей категории иерархии регуляторных пептидов // Нейрохимия.- 1987.-Т. 6, № 1.- С. 23−27.
  8. И.П. Гипотеза об антителах как новейших регуляторах физиологических функций, созданных эволюцией // Журн. эвол. биох. и физиол.-1989.-Т. 26, № 2.- С. 176−181.
  9. И.П., Каразеева Е. П. Новые роли высокостабильных олигопеп-тидов, нейротрофинов и модуляторов в регуляторном континууме // Усп. физиол. наук.- 2003.- Т. 34, № 1.- С. 14−19.
  10. Ашмарин И. П. Филогенетически древние регуляторные пептиды в новейших системах высших позвоночных // Журн. эвол. биох. и физиол.- 1986.- Т. 22, № 4. С. 369−375.
  11. А.Г. Единство и противоположность цитогенетический активности лимфоцитов и их антителообразующей функции при восстановительных процессах в органах // Бюл. эксперим. биол. и мед.- 1999, — Т. 128, № 11.- С. 484 490.
  12. А.Г. Клеточные и гуморальные факторы иммунитета как регуляторы восстановительного морфогенеза // Онтогенез.- 1989.- Т. 20, № 5.- С. 453 459.
  13. А.Г. Регенерация и система иммуногенеза.- М.: Медицина, 1985.256 с.
  14. А.Г., Юдина Н. В. Лимфоидные клетки как продуценты морфоге-нов при восстановительных процессах внутренних органов млекопитающих // Онтогенез.- 1992.- Т. 23, № 3.- С. 293−294.
  15. Е.Д., Черниговская Е. В., Данилова О. А., Бажанов И. А. Характеристика ядрышкового аппарата нейросекреторных клеток гипоталямуса у крыс разного возраста при острой иммобилизации животных // Цитология.- 1998.- Т. 40, № 4.- С. 248−255.
  16. П.В. Морфометрическая характеристика непирамидных нейронов поля СА1 гиппокампа мозга человека // Морфология.- 1993.- Т. 104, № 1−2.-С. 33−40.
  17. Л.Н., Коган М. Е., Леонтьева Т. А. и др. Получение изолированных клеток методом щелочной диссоциации фиксированных формалином тканей // Цитология.- 1975.-Т. 17, № 11.-С. 1330−1338.
  18. Г. А. Пептиды тимуса в регуляции иммунной системы // В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука, 1993.- С. 320−367.
  19. В.В., Баклаушев В. П., Чехонин В. П. Проницаемость гематоэн-цефалического барьера при болезни Паркинсона и экспериментальном паркинсонизме // В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука, 1993.- С. 23−24.
  20. М.В. Факторы роста и клеточные механизмы поведения доброкачественных и злокачественных опухолей и нормальных тканей // Усп. соврем, биологии.- 1991.- Т. 111, № 2.- С. 260−275.
  21. И.Н. Строение и развитие гипоталямуса человека.- Л.: Медицина, 1968.- 176 с.
  22. В.А., Барышников А. Ю. Молекулы клеточной адгезии человека // Усп. соврем, биологии.- 1994.- Т. 114, № 6.- С. 741−754.
  23. С.В., Никонов Е. А., Литвинов Е. Г. Метаболические маркеры активности нейронов // Морфология 1993 — Т. 104, № 1−2 — С. 132−139.
  24. О.П. Эндогенные пептидные лиганды бензодиазепиновых рецепторов // Усп. соврем, биологии.- 1992.- Т. 112, № 4.- С. 591−600.
  25. А.А., Вараксина Г. С., Масленникова Л. П. Влияние пептидного морфогена гидры на пролиферацию сперматогониев у приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis // Журн. эвол. биох. и физиол.- 2000.- Т. 36, № 1.- С. 6768.
  26. А.А., Виноградов В. А., Мотавкин П. А. и др. Локализация пептидного «морфогена гидры» в нейронах моста головного мозга человека // Арх. анат., гистол. и эмбриол.- 1987.- Т. 93, № 9, — С. 34−36.
  27. A.M., Захарова Л. А. Цитокины в сочетанной регуляции боли и иммунитета // Усп. современ. биол. 2000.- Т. 120, № 2.- С. 174−189.
  28. В.А., Дегтярь В. Г., Кривошеев О. Г. и др. Влияние нового пептидного морфогена гидры на метаболизм андрогенов в гонадах при половом созревании крыс // Пробл. эндокринол.- 1987.- Т. 33, № 3.- С. 66−70.
  29. П.А., Мурашев А. Н. Принцип «плюс-минус» взаимодействия и роль основных типов нейрогормональных взаимосвязей в осуществлении го-меостазиса и развития организма // Усп. соврем, биологии.- 1994.- Т. 114, № 2.-С. 171−182.
  30. А. Нейрохимия нейроэндокринной иммунной систем мозга- сигнальные молекулы // Нейрохимия.- 2001.- Т. 18, № 2.- С. 83−95.
  31. Е.А. Клинико-иммунологические сопоставления в системе мать-дитя в условиях высокой пренатальной отягощенности. Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Хабаровск, 1999.- 18 с.
  32. Е.А., Козлов В. К., Тимошин С. С. Влияние пептидного морфогена гидры на процессы клеточной пролиферации в тимусе новорожденных крысят, подвергнутых пренатальной гипоксии // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1997.- Т. 124, № 9.- С. 348−350.
  33. О.А. Система эндотелиновых пептидов: механизмы кардиоваскулярных патологий // Кардиология.- 2000.- № 6, — С. 290−303.
  34. О.А. Современные тенденции в исследовании физиологически активных пептидов // Усп. совр. биол.- 1996.- Т. 116, № 1.- С. 60−68.
  35. Е.Н. Влияние атриопептидов на пролиферативные процессы в эпителиальной ткани белых крыс. Автореф.. канд. мед. наук Владивосток, 1992, — 20 с.
  36. Е.Н., Тимошин С. С., Беспалова Ж. Д. Влияние атриопептидов на пролиферативные процессы в миокарде белых крыс на раннем этапе постнатального онтогенеза//Бюл. эксп. биол. и мед.- 1996. Т. 122, № 9.- С. 321−324.
  37. JI.A., Александрова Е. Н., Насонов E.J1. и др. Влияние атриального натрийуретического фактора на пролиферативный ответ и естесственную цито-токсичность лимфоцитов человека // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 1991.- Т. 111, № 5.-С. 518−520.
  38. Е.И., Хавинсон В. Х., Малинин В. В. и др. О роли водной среды в механизмах действия иммуноактивных пептидов в сверхмалых дозах // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 2003.- Т. 136, № 8.- С.173−178.
  39. Е.И., Ганнушкина И. В., Ченохин В. П. и др. К вопросу о механизмах развития воспалительной реакции в тканях мозга // «Неврология-Иммунология».- (мат.конф.), СПб.: 2001.- С. 63−64.
  40. Л.В., Гущин Г. В. Нейромедиаторные механизмы регуляции функций иммунной ситемы. В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.-СПб.: Наука, 1993.- С. 201−283.
  41. JI.B., Чейдо М. А., Альперина E.JT. Участие хвостатого ядра крыс в реализации иммуностимулирующего эффекта ДАГО // Рос. физиол. журн.-2000.- Т. 86, № 2.- С. 135−139.
  42. К.В., Захарова JI.A. Факторы, опосредующие иммуномодулирующие эффекты мет-энкефалина: влияние дозы митогена, стадий клеточной активации и времени влияния опиоида // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 1995.Т. CXIX, № 4.- С. 398−390.
  43. А.С., Патрашев Д. В., Огурцов С. И. Внутриклеточный рН на ранних стадиях апоптоза и некроза тимоцитов // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1999.- Т. 128, № 10.- С. 387−390.
  44. В.Е. Роль опиодных пептидов в поведении беспозвоночных // Журн. эвол. биох. и физиол.- 2001, — Т. 37, № 4.- С. 253−261.
  45. И.В., Охотин В. Е., Калиниченко С. Г., Мотавкин П. А. Нейрохимическая характеристика нейронов гиппокампальной формации человека // Морфология.- 1996.- Т. 110, № 6.- С. 49−54.
  46. О.И. Метод авторадиографии в изучении клеточных циклов.-М.: Наука, 1969.- 119 с.
  47. О.И., Терских В. В., Захаров А. В. Радиоавтография.- М.: Высшая школа.- 1977.- 246 с.
  48. Т.М., Титов С. А., Лукьянова JI.JI. Каскадные эффекты регуля-торных пептидов // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Сер. Физиология человека и животных.- 1991.- Т. 46.- 204 с.
  49. Е.А., Горбачева О. Н., Насонова E.JI. и др. Эндотелии. Физиологическая активность. Роль в сердечно-сосудистой патологии // Тер. архив.- 1990.-№ 8.- С. 140−144.
  50. А.А., Воронина O.JI. Общие химические особенности эндогенных нейропептидов // Нейрохим.- 1997.- Т. 14, № 3.- С. 263−272.
  51. А.А. Участие нейропептидов в иммуномодуляции //В кн.: Имму-нофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука.- 1993.- С. 579−591.
  52. А.А., Кост Н. В., Мешавкин В. Н. и др. Опиоиды в нейрохимических механизмах тревоги // Нейрохим.- 2000.- Т. 17, № 2.- С.157−159.
  53. А.А., Пацакова Э. Ф. Значение регуляторных пептидов в функционировании иммунной системы // Иммунология.- 1986.- № 2.- С. 10−14.
  54. К.А., Тухтаев К. Р. Органы иммунной системы (структурные ифункциональные аспекты).- Ташкент: Фан, 1987.- 184 с.
  55. В.Т., Карелин А. А. Пептидомика: новый подход к пониманию механизмов пептидной регуляции // Нейрохим.- 2002.- Т. 19, № 1.- С. 61−65.
  56. В.П. Иммуномодулирующие пептиды: роль пептидных фрагментов эндогенных и экзогенных белков в модуляции иммунных процессов // Усп. совр. биол.- 1994.- Т. 114, № 3.- С. 353−371.
  57. B.C., Фирсов А. А., Игнатьева О. И. и др. Изменения иммунных реакций при эпилептических приступах смешанного характера // «Неврология-Иммунология».- (мат.Конф.), СПб.: 2001.- С. 111−112.
  58. JI.B., Козлов А. Ю., Литвинова С. В., Шульговский В. В. Энке-фалиназные механизмы толерантности к анальгетическому действию опиоидов. Эффекты Д-аланина и налоксона // Вестн. РАМН. 1994. — № 10. — С. 19−24.
  59. И.М. «АПУД-система» // Усп. физиол. наук.- 1987, № 1.- С. 84 102.
  60. И.М., Ингель И. Э. Гормональная функция неэндокринных клеток: роль нового биологического феномена в регуляции гомеостаза // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2000.- Т. 130, № 11.- С. 483−487.
  61. М.Е., Белов JI.H., Леонтьева Т. А. Определение количества клеток в различных органах и тканях после щелочной диссоциации // Архив патологии.-1976.- № 1.- С. 77−80.
  62. Р.Г. Синхронизация и кооперативное взаимодействие в деятельности мозга // Журн. высш. нерв, деятел.- 1994.- Т. 44, № 6.- С. 909−924.
  63. Д.Э. Метод выявления ядрышек в ядрых клеток разных тканей // Архив анат., гистол. и эмбриол.- 1990.- Т. 99, № 12.- С. 58−60.
  64. Е.А. Иммунофизиология. СПб.: Наука, 1993.- 684 с.
  65. Е.А., Шхинек Э. К. Гормоны и иммунная система.- Л.: Наука, 1988.- 203 с.
  66. С.В., Ашмарин И. П. Путь функциональной классификации ре-гуляторных пептидов. Признаки дивергентной и конвергентной эволюции ре-гуляторных пептидов // Журн. эвол. биох. и физиол.- 2000. Т. 36, № 2.- С. 154 159.
  67. Р.И. Взаимодействие нейропептидов с другими нейрохимическими системами в интегративной деятельности головного мозга // Физиол. журн.- 1992.- Т. 78, № 9.- С. 15−20.
  68. Г. Н., Магаева С. В., Макаров С. В. Нейроиммунопатология. -М., 1997.- 283 с.
  69. М.М. Мозг животных . М.: Наука, 1985.- 148 с.
  70. О.А., Тимошин С. С., Рубина А. Ю. Влияние пептидного морфогена гидры, его аналога и фрагментов на синтез ДНК в эпителии и гладких миоцитах трахеи новорожденных белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.-2000.- Т. 129, № 6.- С. 646−649.
  71. О.А., Яценко Т. В., Тимошин С. С. и др. Влияние пептидного морфогена гидры на постгипоксические нарушения у крысят, подвергнутых пренатальной гипоксии // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1997.- Т. 123, № 3.- С. 269 272.
  72. В.А. Нейрогуморальные механизмы регуляции функций костного мозга как источника стволовых кроветворных клеток // В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука, 1993.- С. 294−319.
  73. Ли С.Е., Машанский В. Ф. Роль высокопроницаемых щелевых контактов в передаче информации в биологически активных микрозонах // Тихоокеанский мед. журн.- 2000.- № 4.-С. 105−107.
  74. Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. — М.: Мир, 1969.-645 с.
  75. Н.И., Руденко В. А., Маркова О. В. и др. Системные и регионарные нейроиммунные процессы при очаговых поражениях ЦНС // Физиол. чел.-2000.-Т. 26, № 1.- С. 92−99.
  76. М.С., Арцимович Н. Г. Сравнительные аспекты структуры и функции нейропептидов низших безпозвоночных // Журн. эвол. биох. и физиол. 1992.- № 1.- С. 84−91.
  77. А.В., Менджерицкий A.M. Свойства и механизмы реализации биологических эффектов пептида индуцирующего дельта-сон // Усп. соврем, биологии.- 1995.- Т. 115, № 6.- С. 729−739.
  78. С.В. Роль лимбических структур мозга в регуляции иммунологических реакций. В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука, 1993.- С. 137−148.
  79. Н.Н., Мамаева С. Е. Структура и функция ядрышкообразующих районов хромосом: молекулярные, цитологические и клинические аспекты // Цитология.- 1992.- Т. 34, № 10.- С. 3−25.
  80. Н.П., Тимошин С. С. Влияние эндотелина-1 и предсердного натрийуретического пептида-П на морфогенез сердца белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2002.- Т. 134, № 7.- С. 101−103.
  81. Н.П., Тимошин С. С., Мурзина Н. Б. и др. Влияние введения агониста ji-опиатных рецепторов тетрапептида, А 10 на синтез ДНК и содержание белка в миокарде белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2000.- Т. 130, № 12.- С.693−695.
  82. Л.В., Фан А., Баранова Н. Ю., Шугалей B.C. Влияние аргинина на свойства эритроцитарных мембран в условиях гипоксии // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1992 Т. 113, № 5.- С. 497−498.
  83. А.А. Участие эндогенных пептидов в развитии долговременной посттетанической потенциации // Известия АН. сер. биол.- 2002.- № 1.- С. 74−87.
  84. А.А., Павлинова Л. И. Участие эндогенных нейропептидов в регуляции функциональной пластичности мозга // Усп. физиол. наук.- 2001.- Т. 32, № 2.- С. 16−28
  85. П.А., Зуга М. В. Окись азота и ее значение в регуляции легочных функций // Морфология.- 1998.- Т. 114, № 5.- С. 99−111.
  86. П.А., Ломакин А. В. Локализация лей-энкефалина в стволе мозга животных и человека // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1990. — Т. 99, № 7. — С. 49−54.
  87. Н.Б., Хомичук А. Ю., Тимошин С. С. и др. Влияние пептидного морфогена гидры на уровень бета-эндорфина и некоторых гормонов крови и надпочечников белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1991.- Т. 112, № 10.- С. 433−435.
  88. В.М. Координация систем регулирования в антигенстимулиро-вании Т-клеток // Иммунология.- 1995.- № 1.- С. 7.
  89. А.П., Скабкин М. А., Рузанов П. В., Евдокимов В. М. Мажорные белки мРНП в структурной организации и функционировании мРНК в клетках эукариот // Молекул, биол.- 2001.- Т. 35, № 4.- С. 548−558.
  90. С.Н. Конструкция мозга.- Л.: Медицина, 1987.- 208 с.
  91. Н.В., Коржевский Д. Э., Смирнов Е. Б., Петрова Е. С. Ядрыш-ковый аппарат пролиферирующих и дифференцирующихся клеток неокортекса эмбриона человека в период формирования кортикальной пластинки // Морфология.- 1998.- Т. ИЗ, № 2.- С. 53−57.
  92. В.А., Сеульская Н. Б. Межклеточная интеграция в ЦНС // Рос. физиол. журн.- 2000.- Т. 86, № 7.- С. 801−810.
  93. В.Е., Дюйзен И. В., Калиниченко С. Г., Сулимов Г. Ю. ГАМКерги-ческие корзинчато-пирамидная и корзинчато-гранулярная системы гиппокампальной формации кошки // Бюл. эксперим. биол. и мед.- 1995.- Т. CXIX, № 6.-С. 644−646.
  94. М.А. Цитокины и их роль в механизмах клеточного взаимодействия // Арх. патол.- 1996.- Т. 58, № 6.- С. 3−7.
  95. М.А., Иванова А. А. Межклеточные взаимодействия М.: Медицина, 1995.- 224 с.
  96. Л.Ф., Фирстова Н. В., Митюшина Н. В. и др. Регуляторные пептиды и ферменты их обмена в молекулярных механизмах развития стресс-реакции // Нейрохимия.- 2000.- Т. 17, № 2.- С.83−92.
  97. С.А., Преображенский А. В., Сидоренко Б. А., Масенко В. П. Биохимия и физиология семейства эндотелинов // Кардиол.- 2000.- № 6.- С. 78−85.
  98. В.М., Медовый B.C., Козинец Г. И. Анализ клеточного изображения // Клин, лабор. диагн.- 1995.- № 3.- С. 40−43.
  99. О.Ю., Самсонова В. А., Мягкова М. А. и др. Иммуноглобулины, связывающие опиоидные пептиды у больных атопическим дерматитом и опийной наркоманией // Иммунология.- 1991.- № 2.- С. 42.
  100. Г. В., Салмаси Ж. М., Казимирский А. Н. и др. Изучение влияния медиаторов тканевого повреждения на экспрессию поверхностных антигенов лимфоцитами человека in vitro // Бюлл. эксперим. биол. и мед.-1995.- Т. CXIX, № 2.-С. 196−199.
  101. А.П. Морфофункциональные основы обеспечения нейрогумо-ральной регуляции функций иммунной системы // В кн.: Иммунофизиология под ред. Е. А. Корневой.- СПб.: Наука, 1993.- С. 37−66.
  102. С.Ф. Радиорецепторное исследование лигандов опиоидных рецепторов в клетках тимуса // Иммунология.- 1990.- № 6.- С. 14−16.
  103. М.И. Участие лигандов опиоидных рецепторов в регуляции клеточного деления в эпителиальных тканях организма. Автореф. дисс. докт. мед. наук, — Владивосток, 1998.- 47 с.
  104. Ю.М. Факторы роста, вторичные мессенджеры и онкогены // Усп. соврем, биологии.- 1991.- Т. 111, № 1.- С. 19−33.
  105. А.Ю. Синтез и исследование пептидного морфогена гидры и его структурных аналогов // Онтогенез. 1992.- Т. 23, № 3.- С. 311−313.
  106. О.А. Влияние эндотелина 1 на процессы синтеза ДНК в различных клеточных популяциях белых крыс. Автореф. дисс. канд. мед. наук.-Владивосток, 2002.-18 с.
  107. Е.Н., Сазонов О. А., Лебедько О. А. и др. Влияние эндотелина-1 на синтез ДНК в миокарде белых крыс на раннем этапе постнатального онтогенеза // Бюл. эксп. биол. и мед.- 2000.- Т. 130, № 12.- С. 623−626.
  108. А.Г. Генезис некоторых сигнальных систем и проблема происхождения полового процесса // Усп. совр. биологии.- 1994.- Т. 114, № 1.-С. 5268.
  109. М.Р., Этинген Л. Е. Иммунная система человека.- М.: Медицина, 1996.- 300 с.
  110. Я., Флерко Б., Меш Б., Халас Б. Гипоталямическая регуляция передней части гипофиза.- Будапешт, 1965.- 235 с.
  111. Д.А. Статистические методы в научных медицинских исследованиях. М.: Медицина, 1968.- 419 с.
  112. В.Е., Гордон Д. С., Гунин А. Г. Сочетание свойств макрофагов и клеток АПУД-серии в моноаминосодержащих премедуллярных клетках тимус-ной дольки//Морфология.- 1994.-Т. 106, № 1−3.- С. 159−163.
  113. Ю.Д., Черепнев Г. В., Каримова Ф. Г., Гараев Р. С. Влияние пи-римидиновых производных на аденилатциклазную систему регуляции иммуно-компетентных клеток in vitro // Бюл. экспер. биол. и мед.- 1998.- Т. 126, № 6.- С. 663−665.
  114. В.Д., Прум И. А., Виноградов В. А. и др. Влияние пептидногоморфогена гидры на содержание циклических нуклеотидов в тканях при их повреждении // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 1989.- Т. 108, № 10.- С. 486−487.
  115. Т.Н. Опиодные пептиды и нейрогормоны в регуляции высших нервных функций и иммунных реакций у обезьян // «Неврология-Иммунология».- (мат.Конф.), СПб.: 2001.-С. 249−250.
  116. И.Д., Петров A.M., Ивашкова Е. В., Вотинцев М. В. К вопросу о нейроиммунной терапии заболеваний нервной системы // Физиол. человека.-2002.- Т. 28, № 2.- С. 119−122.
  117. Г. Ю., Меркулова J1.M., Сергеева В. Е. и др. Реакция биоаминосо-держащих структур тимуса на введение растворимого антигена в конце индуктивной и в продуктивную фазу иммунного ответа // Иммунология. 2001.- № 1.-С. 15−18.
  118. КВ. Теоретическая физиология: развитие в научной школе П. К. Анохина // Вестн. РАМН.- 1994.- № 10.- С. 3−11.
  119. С.С., Сазонова Е. Н., Лебедько О. А. Кулаева В.В. Роль пептидного морфогена гидры в становлении гомеостаза белых крыс на раннем этапе постнатального онтогенеза // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1998.- Т. 126, № 12. С. 681−683.
  120. С.С., Сазонова Е. Н., Сазонов О. А., Рубина А. Ю. Влияние эндо-телеина-1 на синтез ДНК в различных клеточных популяциях новорожденных белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2000.- Т. 129, № 3.- С. 291−293.
  121. С.С., Яковенко И. Г., Березина Г. П. и др. Пептидный морфоген гидры ослабляет постстрессорные нарушения у белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1997.- Т. 124, № 10.- С. 392−395.
  122. М.И., Виноградов В. А., Беспалова Ж. Д. Даларгин пептидный препарат с цитопротективным действием // Бюлл. ВКНЦ СССР.- 1985.- № 2.- С. 7276.
  123. В.А., Грязева Н. И., Тендитник М. В. и др. Исследование иммунологических сдвигов и возможности комплексной коррекции нейроиммунных нарушений у мышей при хроническом социальном стрессе // «Неврология
  124. Иммунология».- (мат.Конф.), СПб.: 2001.-С. 270−272.
  125. Угол ев A.M. Концепция универсальных блоков и дальнейшее развитие учений о биосфере, экосистемах и биологических адаптациях // Журн. эвол. биохим. и физиол. 1990. — Т. 26, № 4. — С. 441−454.
  126. П.Е. Ранние гены в церебральных механизмах эмоционального стресса // Усп. физиол. наук.- 2000.- Т. 31, № 1.- С. 54−70.
  127. .С., Коростелев С. А. Взаимодействие нейроэндокринной и иммунной системы и роль опиодных пептидов в регуляции иммунного гомеостаза // Фармакол. и токсикол.- 1990.- Т. 53, № 1.- С. 10−16.
  128. И.А., Косиченко Л. П. Влияние болевых воздействий и вызываемых ими реакций на клеточное размножение в эпителии роговицы мышей // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 1956.- № 6.- С. 65−69.
  129. Н.А. Регуляция пролиферации кроветворных клеток.- М.: Медицина, 1977.-158 с.
  130. В.А., Казимирский А. Н., Ионина И. А. и др. Влияние пептидного морфогена гидры на структуру тканевых компонентов слоев миокарда крыс в ранние сроки развития гипертрофии сердца // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1993а.-Т. 115, № 3.- С. 307−309.
  131. И.Н. Избранные труды.- М.: Медицина, 1975.- 339 с.
  132. И.Н. Сравнительная анатомия коры большого мозга млекопитающих. Палеокортекс, архикортекс и межуточная кора.- М., 1949.- 403 с.
  133. М.Ю. Влияние синтетических аналогов дерморфина на пролиферативные процессы в эпителиальных тканях белых крыс. Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Владивосток, 1995.- 18с.
  134. М.Г., Хашаева 3. Х-М., Дриняев В. А. Каналообразующие свойства нейропептидного препарата абамектина в бислойных липидных мембранах
  135. Доклады акад. наук.- 2001.- Т. 378, № 6.- С. 832−836.
  136. JI.E., Хаспекова Л. Г., Лыжин А. А., Викторов И. В. Пластические перестройки ультраструктуры гиппокампа в органотипической культуре тканей // Морфология.- 2001.- Т. 119, № 3.- С. 35−39.
  137. В.Х., Кветной И. М., Ашмарин И. П. Пептидергическая регуляция гомеостаза // Усп. соврем, биол.- 2002.- Т. 122, № 2.- С. 190−203.
  138. P.M., Лесков В. П. Иммунитет и стресс // Рос. физиол. журн.-2001.-Т. 87, № 8.- С. 1060−1072.
  139. А.В. Современные представления о структуре и иммунобиологических свойствах протимозина // Иммуноллогия.- 2001.- № 2.- С. 4−11.
  140. А.Ю. Влияние пептидного морфогена гидры на пролиферативные процессы в эпителиальной ткани белых крыс. Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Владивосток, 1995.- 19 с.
  141. А.Ю., Тимошин С. С. Влияние ундекапептида морфогена гидры на процессы клеточного деления в эпителии роговицы и языка белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1990.- Т. 110, № 10.- С. 425−427.
  142. А.Ю., Тимошин С. С. Участие пептидного морфогена гидры в регуляции процессов пролиферации различных тканей белых крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1991.- Т. 112, № 9.- С. 307−309.
  143. А.Ю., Тимошин С. С., Орлов С. Н. и др. Пептидный морфоген гидры активирует Na/H обмен в эритроцитах человека // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 1991.-Т. 111, № 6.-С. 586−587.
  144. М.А., Идова Г. В. Дофаминергические механизмы в иммуностимулирующем эффекте ji-опиоидных рецепторов // Бюлл. эксп. биол. и мед.-1996.-№ 4.-Т. 121, С. 373−375.
  145. М.А., Идова Г. В., Девойно Л. В. Серотонинзависимая супрессия иммунологического ответа каппа-опиоидных рецепторов // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1993.- Т. CXVI, № 9.- С. 291−293.
  146. Э.Н. Волновая природа регуляции генной активности. Живая клетка как фотонная вычислительнная машина // Усп. соврем, биол.- 1994.- Т.114, № 6.- С. 659−678.
  147. И.Г. Влияние пептидного морфогена гидры на процессы пролиферации в различных видах эпителия белых крыс при иммобилизационном стрессе. Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Владивосток, 2002.- 19 с.
  148. А.А. Основы иммунологии.- М.: Медицина.- 1999.- 608 с.
  149. А.А., Беляков И. М. Тимус как орган эндокринной системы // Иммунология.- 1996.- № 1.- С. 4−10.
  150. А.А., Пинчук В. Г., Гриневич Ю. А. Структура тимуса и диффе-ринцировка Т-лимфоцитов.- Киев: Наукова Думка, 1991.- 248 с.
  151. Е.П. Структурные и функциональные исследования дерморфина^и его аналогов: Автореф. дис.. канд. хим. наук.- М., 1990.- 19с.
  152. Т.В. Влияние регуляторных пептидов на процессы синтеза ДНК в эпителиях белых крыс в раннем периоде постнатального онтогенеза. Автореф. Дисс. канд. мед. наук.- Владивосток, 1998.- 21 с.
  153. Agui Т., Kurihara М., Saavedra J.M. Multiple types of receptors for atrial natriuretic peptide // Eur. J. Pharmacol.- 1989.- Vol. 162, № 2.- P. 301−307.
  154. Ali Pedram, Mahnaz Razandi, Ren-Ming Hu, Ellis R. Levin. Astrocyte Progression from Gi to S Phase of the Cell Cycle Depends upon Multiple Protein Interaction// J. Biol. Chem.- 1998.- Vol. 273, № 22.- P. 13 966−13 972.
  155. Almeida F.A., Suzuki M., Scarborough R.M. et al. Clearance function of type С receptors of atrial natriuretic factor in rats // Am. J. Physiol.- 1989.- Vol. 256.-P. R469-R475.
  156. Begega A., Cuesta M., Rubio S. et al. Age-related changes of the nucleolar organizer regions without neuron loss in medial mamillary bodies (hypothalamus) in old rats // Mech. Ageing Dev.- 1999.- Vol. 108, № 2.- P. 113−125.
  157. Beinlich C.J., Vitkauskas K.J., Morgan H.E. Characterization of ventricular myocytes from the newborn pig heart // J. Mol. Cell. Cardiol.- 1998.- № 30, — P. 12 631 337.
  158. Blalock J.E. The syntax of immune-neuroendocrine communication // J. Immu-nol.Today.- 1994.-Vol. 15.-P. 504−511.
  159. Bodenmuller H., Escher E., Zachmann B. et al. Synthesis of new head activator analogues and their application for improved radioimmunoassay // Int. Pept. Protein. Res.- 1987.- Vol. 29, № 1.- P. 140−144.
  160. Bodey В., Bodey B. Jr, Siegel S.E., Kaiser H.E. The role of the reticulo-epithelial (RE) cell network in the immune-neuroendjcrine regulation of intrathymic lymphopoesis // Anticancer Res.- 2000. Vol. 20, № 3A.- P. 1871−1888.
  161. Cajal R.S. Studies on the Cerebral Cortex (Limbic Structure).- London, Lloyd-Luke, 1955.
  162. Carr D.J., Klimpel G.R. Enhancement of the generation of cytotoxic T cells by endogenous opiates // J. Neuroimmunol.- 1986.- Vol. 12, — P. 75−87.
  163. Chan P.K., Qi Y., Amley J., Koller C.A. Quantitation of the nucleophos-min/B23-translocation using imaging analysis // Cancer Lett.- 1996.- Vol. 100, № 1−2.-P. 191−197.
  164. Cuneo R.C., Espiner E.A., Nicholls M.G. et al. Renal, hemodynamic, and hormonal responses to atrial natriuretic peptide infusion in normal man and effect of sodium intake // J. Clin. Endocrinol. Metab.- 1986.- Vol. 63.- P. 946−952.
  165. Derenzini M., Trere D., Pession A. et al. Nucleolar function and size in cancer cells // Am. J. Pathol.- 1998.- Vol. 152, № 5.- P. 1291−1297.
  166. Deschaux P., Rouabhia M. The thymus. Key organ between endocrinologic and immunologic systems //Ann. NY Acad. Sci.- 1987.- Vol. 496.- P. 49−55.
  167. Dinarello C.A. Inflammatory cytokines: interleukin-1 and tumor necrosis factoras effector molecules in autoimmune diseases // Curr. Opin. Immunol.- 1991.- Vol. 3.-P. 941−948.
  168. Dunarello C.A., Renfer L., Wolff S.M. Human leucocytic pyrogen: Purification and development of radioimmunoassay // Proc.Nat.Acad.Sci. USA. 1977.- Vol. 74.-P .4624−4627.
  169. Dolan L.M., Douglas J.D. Atrial natriuretic polypeptide in the fetal rat: Ontogeny and characterisation // Pediatric Res.- 1987.- Vol. 22.- P. 115−117.
  170. Egozi Y., Kloog Y., Sokolovsky M. Acetylcholine rhythm in the preoptic area of the rat hypothalamus is synchronized with the estrous cycle // Brain Res. 1986.-Vol.383.- P. 310−313.
  171. Elferink Jan G.R., de Koster B.M. Endothelin induced activation of netrophil migration // Biochem.- 1994.- Vol. 48.- P. 865−873.
  172. Ernstrom U., Korbsson P., Soder O. Isolation of a thymocyte growth peptide from human thymus // Int. Arch. Allergy and Appl. Immunol.- 1988.- Vol. 85, № 4.-P. 434−440.
  173. Fenger U., Hofmann M., Galliot В., Schaller H.C. The role of the cAMF pathway in mediating the effect of head activator on nerve cell determination and differentiation in hydra // Mech. Dev.- 1994.- Vol. 47, № 2.- P. 115−125.
  174. Flynn T.G., de Bold M.L., de Bold A.J. The amino acid sequence of an atrial peptide with potent diuretic properties // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1983.-Vol. 117.-P. 859−865.
  175. Franke I., Buck F., Hampe W. Purification of a head activator receptor from hydra // Eur. J. Biochem.-1997.- Vol. 244, № 3.- P. 940−945.
  176. Fuentes E.J., Patcher R., Tsonis P.A. On the three-dimensional structure of the hydra activator neuropeptide // In vivo.- 1994.- Vol.8, № 2.- P. 199−205.
  177. Fuxe K., Tinner В., Stanes W. et al. Demonstration and nature of endothelin-3-like immunoreactivity in somatostatin and choline acetyltrasferase-immunoreactive nerve cells of the neostriatum of the rat // Neurosci. Lett.- 1991, — Vol. 123.- P. 107 111.
  178. Garcia-Moreno L.M., Conejo N.M., Pardo H.G. et al. Hippocampal AgNORactivity after chronic alcohol consumption and alcohol deprivation in rats // Physiol. Behav.- 2001.- Vol. 72, № 1−2.- P. 115−121.
  179. Geenen V., Cormann-Goffin N., Vandersmissen E. et al. Cryptocrine signaling in the thymus network. Implications for central T-cell tolerance of neuroendocrine functions // Ann.NY. Acad. Sci.- 1994.- Vol. 741.- P. 85−99.
  180. Giraldi A.A., Serels S., Autieri M. Endothelin-1 as a putative modulator of gene expression and cellular physiology in cultured human corporal smooth muscle cells // J. Urol.- 1998.-Vol. 160.-P. 1856−1918.
  181. Gonzalez-Gonzalez S., Diaz F., Vallejo G., Arias J.L. Functional sexual dimorphism of the nucleolar organizer regions in the tuberomamillary nucleus // Brain Res.- 1996.- Vol. 736, № 1−2.- P. 1−6.
  182. Gutkowska J., Nemer M. Structure, expression and function of atrial natriuretic factor in extraatrial tissues // Endocrine Reviews.- 1989.- Vol. 10, № 4.- P. 519−536.
  183. Hampe W., Riedel I.B., Lintzel J. et al. Ectodomain shedding, translocation and synthesis of SorLA are stimulated by its ligand head activator // J. Cell Sci.- 2000.-Vol. 113.- Pt. 24.- P. 4475−4485.
  184. Hampe W., Urny J., Franke I. et al. A head-activator binding protein is present in hydra in a soluble and a membrane-anchored form // Develop.- 1999.- Vol. 126.-P. 4077−4086.
  185. Hermans-Borgmeyer I., Hampe M., Schinke B. et al. Unique expression pattern of a novel mosaic receptor in the developing cerebral cortex // Mech. Dev.- 1998.-Vol. 70, № 1−2.- P. 65−76.
  186. Hyer J., Johansen M., Prasad A. et al. Induction of Purkinje fiber differentiation by coronary arterialization // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1999.- Vol. 96, № 2.-P. 13 214−13 218.
  187. Kinoshita Y., Hato F. Cellular and molecular interactions of thymus with endocrine organs and nervous system // Cell. Mol. Biol.- 2001.- Vol. 47, № 1.- P. 103−117.
  188. Kumpfmuller G., Rybakine V., Takahashi T. et al. Identification of an astacin matrix metalloprotease as target gene for Hydra foot activator peptides // Dev. Genes. Evol.- 1999.- Vol. 209, № 10.- P. 601−607.
  189. Kuno Т., Andbesen J.W., Kamisaki Y. et al. Co-purification of atrial natriuretic factor receptor and particulate guanylat cyclase from rate lung // J. Biol. Chem.-1986.-Vol. 161.-P. 5817−5823.
  190. Kurihara M., Castren E., Gutkind J.S., Saavedra J.M. Lower number of atrial natriuretic peptide receptors in thymocytes and spleen cells of spontaneously hypertensive rats // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1987.- Vol. 149, № 3.- P. 11 321 140.
  191. Kurihara M., Katamine S., Saavedra J.M. Atrial natriuretic peptide, ANP (99 126) receptors in rat thymocytes and spleen cells // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1987.- Vol. 145.- P. 789−796.
  192. Kurihara Y, Kurihara H, Maemura K. et al. Impaired development of the thyroid and thymus in endothelin-1 knockout mice // J. Cardiovasc. Pharmacol.- 1995.-Vol. 26, № 3, — P. S13-S16.
  193. Leitman D.C., Murad F. Atrial natriuretic factor receptor heterogeneity and stimulation of particulate guanylate cyclase and cyclic GMP accumulation // Endocrinol. Metab. Clin. NorthAm.- 1987.- Vol. 16, — P. 79−105.
  194. Linner K.M., Quist H.E., Sharp B.M. Met-enkephalin-containing peptides encoded by proenkephalin A mRNA expressed in activated murine thymocytes inhibit thymocyte proliferation // J. Immunol.- 1995.- Vol. 154, № 10.- P. 5049−5060.
  195. Lintzel J., Franke I., Riedel I.B. et al. Characterization of the VPS10 domain of SorLA/LRll as binding site for the neuropeptide HA // Biol. Chem.- 2002.- Vol. 383, № 11.-P. 1272−33.
  196. Lorente de No R. Studies on structure of cerebral cortex, contimanation of study of ammonic system // J. Psychol. Neurol.- 1934.- Vol. 46.- P. 113.
  197. Lowe D., Chang M.S., Hellmiss R. et al. Human atrial natriuretic peptide receptor a new paradigm for second messenger signal transduction // EMBO J.-1989.-Vol. 8, № 5.-P. 1377−1383.
  198. Lu W., Tang H., Fan M. et al. Research on nucleolar organizer regions of hippo-campal neuron in Alzheimer’s disease // Chin. Med. J. (Engl).- 1998.- Vol. Ill, № 3.-P. 282−284.
  199. Maestroni G.J., Conti A. Immuno-derived opioids as mediators of the immuno-enhancing and anti-stress action of melatonin // Acta Neurol (Napoli).- 1991(b).- Vol. 13, № 4,-P. 356−360.
  200. Malendowicz L. K, Macchi V., Brelinska R. et al. Endothelin-1 enhances thymocyte proliferation in monolaterally adrenalectomized rats with contralateral adrenocortical regeneration // Histol. Histopathol.- 1998 .- Vol. 13, № 3, — P. 721−725.
  201. Malendowicz L.K., Brelinska R., De Caro R. et al. Endothelin-1, acting via the A receptor subtype, stimulates thymocyte proliferation in the rats // Life Sci.- 1998.-Vol. 62.- P. 1959−1022.
  202. Marx J.L. New type of receptor found // Science.-1989.- Vol. 244.- P. 11 401 141.
  203. McCarthy L., Szabo I., Nitsche J.F. et al. Expression of functional mu-opioid receptors during T cell development // Neuroimmunol.- 2001.- Vol. 114, № 1−2.- P. 173−80.
  204. McEwen В., Biran C.A., Brunson K.W. et al. The role of adrenocorticoids as modulators of immune function in health and disease: neural, endocrine and immune interactions // Brain. Res. Rev. 1997.- Vol. 23.- P. 79−83.
  205. Miyan J.A., Broome C.S., Afan A.M. Coordinated host defense through an integration of the neural, immune and haemopoietic systems // Domest. Anim. Endocrinol. 1998. — Vol. 15, № 5.- P. 297−304.
  206. Montecucchi P.C., de Castiglione R. Amino acid composition and sequence of dermorphin, a novel opiatelike peptide from the skin of Phyllomedusa Sauvadei // Int.
  207. J. Peptide Protein Res.- 1981.- Vol. 17.- P. 275−283.
  208. Montecucchi P.C., de Castiglione R., Erspammer V. Identification of dermor-phin and Hyp-dermorphin in skin extracts of Brazilian frog phyllomedusa Zhdei // Int. J. Peptide Protein Res.- 1981.- Vol. 17, — P. 316−321.
  209. Murad F., Leitman D.C., Bennett B.M. et al Regulation of guanylate cyclase by atrial natriuretic factor and role of cyclic GMP in vasodilatation // Am. J. Med. Sci.-1987.- Vol. 294, № 3.- P. 139−143.
  210. Murayama Т., Nomura Y. The actions of NO in the central nervous system and in thymocytes // Jpn. J. Pharmacol.- 1998.- Vol. 76, № 2.- P. 129−139.
  211. Nance D.M., Rayson D. The effects of lesions in the lateral septal and hippo-campal areas on the humoral immune response of adult female rats // Brain. Behav. and Immun. 1987/- Vol. 1, № 4.-P.292−305.
  212. Negri L., Lattansi R., Melchiorri P. Production of antinociception by peripheral administration of Lys-7 dermorphin, a natural occurring peptide with high affinity for ц-opioid receptors // Brit. J. Pharmacol.- 1995.- Vol. 114, № 1.- P. 57−66.
  213. Negri L., Melchiorri P., Falconieri Erspamer G., Erspamer S. Radioimmunoassay of dermorphin-like peptides in mammalian tissues // Peptides.- 1981- Vol. 2, № 1.- P. 45−49.
  214. Neubauer K.N., Christians S., Hoffmeister S.A. et al. Characterization of two types of head activator receptor on hydra cells // Mech. Dev.- 1990.- Vol. 33, № 1.- P. 39−47.
  215. Pampusch M.S., Osinski M.A., Brown D.R., Murtaugh M.P. The porcine mu opioid receptor: molecular cloning and mRNA distribution in lymphoid tissues // J. Neuroimmunol.- 1998.- Vol. 90, № 2.- P. 192−198.
  216. Plotnikoff N.P., Mugro A.J., Faith R.E. Neuroimmunomodulation withenkephalins: effects on thymus and spleen weights in mice // Clin. Immunol.- 1984.-Vol. 32.- P. 52−56.
  217. Quach T.T., Duchemin A.M., Oliver А.Р. et al. Hydra head activator peptide has trophic activity for eukaryotic neurons // Brain. Res. Dev. Brain. Res- 1992.-Vol. 68, № 1.-P. 97−102.
  218. Roberge M., Escher E., Shaller H.C. Bodenmuller H. The hydra head activator in human blood circulation. Degradation of the synthetic peptide by plasma angioten-sin-converting enzyme // FEBS Lett.- 1984.- Vol. 173, № 2.- P. 307−313.
  219. Rose M. Gyrus limbicus anterior und Regioretrosplenialis // J. Psychol. Neurol.-1928.-Vol. 35.- P. 65.
  220. Roy S., Wang J.H., Balasubramanian S. et al. Role of hypothalamic-pituitary axis in morphine-induced alteration in thymic cell distribution using mu-opioid receptor knockout mice //Neuroimmunol.- 2001.- Vol. 116, № 2.-P. 147−155.
  221. Rubio S., Begega A., Santin L. J, Arias J.L. Changes in the nucleolar organizer regions in the tuberomammillar region after dehydration // Arch. Physiol. Biochem.-1997.- Vol. 105, № 6.- P. 560−565.
  222. Ry S.D., Andreassi M.G., Clerico A. et al. Endothelin-1, endothelin-1 receptors and cardiac natriuretic peptides faling human heart // Life Sci.- 2001.- Vol. 68, № 24. -P. 2715−2730.
  223. Schaller H.C. A neurohormone from hydra is also present in the rat brain // J.Neurochem.- 1975.-№ 25.-P. 187−188.
  224. Schaller H.C. Action of the head activator as growth hormone in hydra // Cell.
  225. Differ.- 1976.- № 5.- P. 1−11.
  226. Schaller H.C. Action of the head activator on the determination of interstitial cells in hydra // Cell. Differ.- 1976.- № 5.- P. 13−20.
  227. Schaller H.C. Hermans-Bodmeyer I., Hoffmeister S.A. Neuronal control of de-volpment in hydra // Int. J. Dev. Biol.- 1996.- Vol. 40, № 1.- P. 339−344.
  228. Schaller H.C. Isolation and characterization of a low-molecular weight substance activating head and bud formation // J. Embriol. Exp. Morphol.- 1973.- Vol. 29, № 1.- P. 27−38.
  229. Schaller H.C., Bodenmuller H. Isolation and amino acid sequence of a morpho-genetic peptide from hydra // Proc. Nat. Acad. Sci. USA Biol. Sci.- 1981.-Vol. 78, № 11.-p. 7000−7004.
  230. Schaller H.C., Bodenmuller H. Ninth Adolf Butenandt lecture. Role of the neuropeptide head activator for nerve function and devolpment // Biol. Chem. Hoppe. Seyler.- 1985.- Vol. 366, № 11.- P. 1003−1007.
  231. Schaller H.C., Druffel S., Augustin S., Dubel S. Head activator acts as an autocrine growth factor for NH15CA2 cells in the G2/ mitosis transition // EMBO. J.-1989.- Vol. 8, № 11.- P. 3311−3318.
  232. Schaller H.C., Hoffmeister S.A., Dubel S. Role of the neuropeptide head activator for growth and development in hydra and mammals // Development.-1989.-Vol. 107.- P. 99−107.
  233. Schaller H.C., Hofmann M., Javois L.C. Effect of head activator on proliferation, headspecific determination and differentiation of epithelial cells in hydra // Differentiation." 1990.- Vol. 43, № 3.- P. 157−164.
  234. Schaller H.C., Schilling E., Theilmann L. et al. Elevated levels of head activator in human brain tumors and in serum of patients with brain and other neurally derived tumors // J. Neurooncol.- 1988.- Vol. 6, № 3.- P. 251−258.
  235. Schluter K.D., Piper H.M. Regulation of growth in the adult cardiomyocytes // FASEB J.- 1999.-Vol. 13.-P. 517−539.
  236. Shahbazian A., Holzer P. Regulation of gunea pig intestinal peristalsis by endogenous endothelin acting at ET (B) receptors // Gastroenterology.- 2000.- Vol.119.-P. 80−88.
  237. Shinkai-Goromaru M., Samejima H., Takayanagi I. The significant role of en-dothelin-3 in potentiating electrically stimulated contraction in the rat sphincter // Gen. Pharmacol.- 1997.- Vol. 28.- P. 365−369.
  238. Shioda S., Kohara H., Nakai Y. TRH-axon terminals in synapsis with GRF-neurons in the arcuate nucleus of rat hypothalamus are revealed by double labeling immunocytochemistry // Brain Res.- 1987.- Vol. 402, № 2.- P. 355−358.
  239. Soder O. Thymocyte growth factor: a progression growth factor for cycling immature cortical thymocytes // Сотр. Immunol, and Infect. Diseases.- 1985.- Vol. 8, №¾.- P. 235−246.
  240. Spear K.L., Brown M.S., Olins G.M. et al. Analogues of atripeptid (103−125) amide having high binding selectivity // J. Med. Chem.- 1989.- Vol. 32.- P. 10 941 098.
  241. Stanimirovich D.B., Ball R., Mealing G. et al. The role of intracellular calcium and protein kinase С in endothelin-stimulated proliferation of rat type I astrocytes // Glia.- 1995.- Vol. 15.-P. 119−130.
  242. Teerlink J.R., Carteaux J-P., Sprecher V. et al. Role of endogenous endothelin in normal hemodynamic status of anesthetized dogs // Amer. J. Physiol.- 1995.- Vol. 268.- P. H432-H440.
  243. Teyler T.J. Gonadal steroids: effects on excitability of hippocampal cells // Science.- 1980.- Vol. 209.- P. 1017−1018.
  244. Throsby M., Yang Z., Lee D. et al. In vitro evidence for atrial natriuretic factor (5−28) production by macrophages of adult rat thymus // Endocrinology.- 1993.- Vol. 135, № 5.-P. 2184−2190.
  245. Vasan R.S., Seshadri S., Narula J. Atrial natriuretic peptide: an atavistic hormone // Int. J. Cardiol.- 1989.- Vol. 22.- P. 407−408.
  246. Vollmar A.M. Influence of atrial natriuretic peptide on thymocyte development in fetal thymic organ culture // J. Neuroimmunol.- 1997.- Vol. 78, № 1−2.- P. 90−96.
  247. Vollmar A.M., Schmidt K.N., Schulz R. Natriuretic peptide receptors on rat thymocytes: inhibition of proliferation by atrial natriuretic peptide // Endocrinology.-1996.-Vol. 137, № 5.-P. 1706−1713.
  248. Vollmar A.M., Schulz R. Evidence for the presence of ANP-precusor material in the rat thimus // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1988.- Vol. 155.- P. 700−708.
  249. Vollmar A.M., Wolf R., Schulz R. Co-expression of the natriuretic peptides (ANP, BNP, CNP) and their receptors in normal and acutely involuted rat thymus // J. Neuroimmunol.- 1995.- Vol. 57, № 1−2.- P. 117−127.
  250. Westly H.J., Kleiss A.J., Kelley K.W. et al. The postulated lymphoid-adrenal axis. A molecular approach // Ann. NY. Acad. Sci.- 1987.- Vol. 496.- P. 98−103.
  251. Wu H.L., Albrightson C., Nambi P. Selective inhibition of rat mesangial cell proliferation by a syntetic peptide derived from the sequence of the C2 region of PKCbeta // Peptides.- 1999.- Vol. 20.- P. 675−689.
  252. Xu D., Emoto N., Giaid A.A. et al. ECE-1: a membrane bound metalloprotease that catalyzes the proteolytic activation of big endothelin-1 // Cell.- 1994.- Vol. 78.-P. 473−485.
  253. Yan L., Fei K., Zhang J. et al. Identification and characterization of metallo-proteinase 2 (HMP2): a meprin-like astacin metalloproteinase that function in foot morphogenesis // Devel.- 2000.- Vol. 127.- P. 129−141.
  254. Yandle T.G., Richards A.M., Nicholls M.G. et al. Metabolic clearance rate and plasma half life of alpha-human atrial natriuretic peptide in man // Life Sci.- 1986.-Vol. 38, № 20.- P. 1827−1833.
  255. Yang Z., Krasnici N., Lucher T.F. Endothelin-1 potentiates human smooth muscle cell growth to PDGF: effects of ETA and ETB receptor blockade // Circulation.- 1999.-Vol. 100.-P. 5−13.
  256. Zeretzke S., Berking S. Analysis of a Hydra mutant which produces extra heads along its body axis // Int. J. Dev. Biol.- Vol. 1996, № 1.- P. 271S.
  257. Zhang L., Rogers T.J. Kappa-opioid regulation of thymocyte IL-7 receptor andfuT eft. ж jffi
  258. С-С chemokine receptor 2 expression // J. Immunol.- 2000.- Vol. 164, № 10.- P. 5088−5093.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!