Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние ионов металлов (Cu2+, Zn2+, Pb2+) на физиолого-биохимическое состояние высших водных растений

Диссертация: Влияние ионов металлов (Cu2+, Zn2+, Pb2+) на физиолого-биохимическое состояние высших водных растений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Еще более полувека назад, когда масштабы промышленного производства отличались от современных, В. И. Вернадский обратил внимание на человеческое общество, как на мощную «геологическую силу» планеты (Вернадский, 1989). В настоящий момент, стремительно нарастающая геохимическая деятельность человека создает техногенную миграцию элементов (Христофорова, 1989). Природная среда не справляется… Читать ещё >

Влияние ионов металлов (Cu2+, Zn2+, Pb2+) на физиолого-биохимическое состояние высших водных растений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Понятие тяжелые металлы. Основные источники их 11 > ' поступления в окружающую среду
    • 1. 2. Роль водных растений в биосфере. Экологические 14 особенности высшей водной растительности
    • 1. 3. Нарушение основных физиологических процессов растений 19 при влиянии ТМ
    • 1. 4. Липиды и их роль в растительном организме
    • 1. 5. Действие ТМ на функциональную активность мембран
    • 1. 6. Воздействие ТМ на липиды
    • 1. 7. Окислительный стресс и ТМ
    • 1. 8. Действие ТМ на липидный обмен
  • Глава 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследований
    • 2. 2. Постановка экспериментов
    • 2. 3. Определение массы
    • 2. 4. Определение содержания ТМ
    • 2. 5. Определение интенсивности фотосинтеза и содержания 58 пигментов
    • 2. 6. Определение проницаемости мембран
    • 2. 7. Выделение клеточных фракций
    • 2. 8. Экстракция липидов из тканей растений
    • 2. 9. Экстракция липидов из субклеточных фракций
    • 2. 10. Разделение и идентификация липидов
    • 2. 11. Количественное определение СЛ
    • 2. 12. Количественное определение ФJI
    • 2. 13. Количественное определение ГЛ
    • 2. 14. Количественное определение НЛ
    • 2. 15. Определение путей синтеза липидов и жирных кислот с 63 помощью радиоизотопов
    • 2. 16. Количественное определение ЖК
    • 2. 17. Статистика
  • Глава 3. ВЛИЯНИЕ ИОНОВ ТМ НА ФИЗИОЛОГО БИОХИМИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ ВОДНЫХ ПОГРУЖЕННЫХ РАСТЕНИЙ
    • 3. 1. Аккумуляция и элиминация ТМ водными погруженными 67 растениями
    • 3. 2. Влияние ионов ТМ на продуктивность водных погруженных 70 растений
    • 3. 3. Влияние ионов ТМ на процесс фотосинтеза водных погруженных растений
    • 3. 4. Влияние ионов ТМ на содержание фотосинтетических 78 пигментов водных погруженных растений
    • 3. 5. Влияние ионов ТМ на выход электролитов из клеток листьев 89 водных погруженных растений
    • 3. 6. Влияние ионов ТМ на содержание суммарных липидов 91 водных погруженных растений
    • 3. 7. Влияние ионов ТМ на состав и содержание фосфолипидов 94 водных погруженных растений
    • 3. 8. Влияние ионов ТМ на состав и содержание гликолипидов 102 водных погруженных растений
    • 3. 9. Влияние ионов ТМ на состав и содержание нейтральных 106 липидов водных погруженных растений
  • ЗЛО. Влияние ионов ТМ на состав жирных кислот водных погруженных растений
    • 3. 11. Влияние меди на состав, содержание и метаболизм липидов 120 субклеточных фракций водного погруженного растения Hydrilla verticillata (L.fil.) Royle
      • 3. 11. 1. Влияние меди на состав и содержание полярных липидов 121 клеточных фракций Н. verticillata
      • 3. 11. 2. Влияние меди на состав ЖК клеточных фракций Н. verticillata
      • 3. 11. 3. Влияние меди на включение 2−14С-ацетата натрия в полярные 129 липиды субклеточных фракций Н. verticillata ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ АФК — активные формы кислорода
  • БТШ — белки теплового шока
  • ГЛ — гликолипиды
  • ДАТ — диацилглицерин
  • ДГДГ — дигалактозилдиацилглицерин
  • ДГТС — диацилглицерилтриметилгомосерин
  • ДФГ — дифосфатидилглицерин
  • ЖК — жирные кислоты
  • ИН — индекс ненасыщенности
  • МГДГ — моногалактозилдиацилглицерин
  • HJI — нейтральные липиды
  • ОФ — общий неорганический фосфор
  • ПОЛ — перекисное окисление липидов
  • СЖК — свободные жирные кислоты
  • СЛ — суммарные липиды
  • СС — свободные стерины
  • СХДГ — сульфохиновозилдиацилглицерин
  • ТАГ — триацилглицерин
  • ТМ — тяжелые металлы
  • ТСХ — тонкослойная хроматография
  • ФГ — фосфатидилглицерин
  • ФИ — фосфатидилинозит
  • ФК — фосфатидная кислота
  • ФЛ — фосфолипиды
  • ФС I — фотосистема I
  • ФС II — фотосистема II
  • ФХ — фосфатидилхолин
  • ФЭ — фосфатидилэтаноламин
  • ЭС — эфиры стеринов

Актуальность темы

Еще более полувека назад, когда масштабы промышленного производства отличались от современных, В. И. Вернадский обратил внимание на человеческое общество, как на мощную «геологическую силу» планеты (Вернадский, 1989). В настоящий момент, стремительно нарастающая геохимическая деятельность человека создает техногенную миграцию элементов (Христофорова, 1989). Природная среда не справляется с возросшим потоком химических веществ, в результате чего происходит их чрезмерное накопление в биосфере.

По существу, все антропогенные воздействия — затрагивают ли они литосферу, атмосферу, почву или урбанизированную среду — так или иначе, выходят на гидросферу через атмосферные осадки, почвенный сток, миграцию подземных вод и другие процессы, связанные с круговоротом воды (Брагинский, 1998). Поэтому важнейшим показателем качества среды обитания является степень чистоты поверхностных вод и их компонентов.

Тяжелые металлы (ТМ) являются на сегодняшний день одними из самых распространенных и опасных загрязнителей окружающей среды (Немова, 2005; Прасад, 2003; Прохорова и др., 1998; Титов и др., 2007; Greger, 1999). В значительной мере это связано с биологической активностью многих из них (Будников, 1998). Медь и цинк в определенных концентрациях являются необходимыми элементами питания растений, но в больших количествах проявляют негативное влияние. Свинец считается условно необходимым элементом и его физиологическое значение исследовано не до конца.

Водные растения обладают способностью аккумулировать тяжелые металлы в достаточно больших количествах (Артамонов, 1986). В последние годы гидроботанические исследования получили большую направленность в сторону изучения экологических возможностей водной растительности и их сообществ, расширились экспериментальные исследования влияния макрофитов на качество вод, предложены новые типы водоохранных сооружений с использованием водной растительности (Матвеев и др., 2005). В последнее время, пресноводную растительность начинают применять в биоиндикации загрязнений, очистке вод, регуляции процессов водоема (Матвеев и др., 2005).

В то же время уровень современных исследований сводится к анализу содержания накопленных элементов растениями. В меньшей степени уделяется внимание физиологическому и биохимическому состоянию самих макрофитов. При изучении действия ионов металлов особое значение имеют молекулярные механизмы регуляции, так как физиологические реакции являются результатом каскада биохимических перестроек в клетках растений (Ипатова, 2005; Розенцвет, 2006; Чиркова, 2002).

По современным представлениям состояние мембранной системы, активность ферментных комплексов, определяющих жизнедеятельность организмов, зависят от состава и содержания липидов (Демидчик и др., 2001; Серегин и др., 2006; Kosyk et al., 2008; Rama Deli, Prasad, 1999). Липиды выполняют в организме множество функций, которые можно свести к 3 основным: структурной, запасной, регуляторной (Васьковский, 1997; Смирнов, 2007). Поэтому исследование влияния ионов металлов на липиды имеет значение в понимании механизмов регуляции, адаптации, устойчивости водных растений, как важного компонента многих пресных водоемов. Кроме того, интересным представляется исследование физиолого-биохимического состояния водных растений в период последействия ионов металлов. Это позволяет выявить молекулярные факторы восстановления растений от стресса, вызванного ТМ, имеет значение в прогнозировании экологических ситуаций при глобальном загрязнении биосферы планеты.

Цель исследования: Исследовать влияние ионов ТМ на физиолого-биохимическое состояние высших водных (погруженных) растений. Задачи исследования: 1. Выявить особенности аккумуляции и элиминации ионов ТМ высшими водными растениями.

2. Исследовать основные физиологические реакции (рост биомассы, интенсивность фотосинтеза) и содержание пигментов высших водных растений в ответ на воздействие ионов металлов, а также в период их последействия.

3. Определить качественные и количественные изменения липидов высших водных растений в ответ на действие/последействие ионов металлов.

4. Исследовать влияние ионов металлов на состав, содержание и метаболизм липидов субклеточных мембранных образований высших водных растений.

Научная новизна.

• Впервые проведено сравнительное исследование комплекса физиолого-биохимических показателей высших водных растений в условиях накопления металлов, а также их удаления из растений в постстрессовый период.

• Выявлены специфические реакции липидов клеток высших водных растений в ответ на действие различных ионов металлов.

• Обнаружены специфические реакции субклеточных мембранных систем (микросом, митохондрий и хлоропластов) на действие ионов отдельных металлов.

• Получены новые сведения о роли липидов в процессах адаптации и восстановления растений при воздействии/последействии ионов металлов.

Теоретическая значимость работы. Результаты диссертационной работы расширяют представления о механизмах влиянии ТМ на высшие водные растения и роли липидов в процессах адаптации и восстановления растительного организма.

Практическая значимость работы. Изучение накопительной способности макрофитов имеет практическое значение в деле фиторемедиации загрязненных территорий. Учитывая, что липиды представляют собой структуры, размер которых соответствует наночастицам, а их свойства отвечают требованиям, предъявляемым нанотехнологиями, то их изучение может иметь перспективы развития в области новых биотехнологий. Данные диссертационной работы могут быть использованы в учебном процессе при чтении курсов лекций по физиологии и экологии растений для студентов биологических факультетов ВУЗов.

Положения, выносимые на защиту.

• Аккумуляция и элиминация ТМ водными растениями зависит от особенностей вида растения, природы ТМ, их концентрации и продолжительности воздействия.

• ТМ у высших водных растений вызывают ряд физиологических изменений, таких как рост биомассы, интенсивность процесса фотосинтеза и содержание пигментов.

• Действие ТМ приводит к изменению соотношения липидных классов, индивидуальных липидов и жирных кислот. Направленность и степень изменчивости данных параметров зависят от вида растения, природы ТМ, их концентрации и продолжительности воздействия.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы были представлены на IX съезде Гидробиологического общества РАН (Тольятти, 2006), I конференции «Актуальные проблемы экологии Волжского бассейна» (Тольятти, 2006), международной конференции «Современная физиология растений: от молекул до экосистем» (Сыктывкар, 2007), международной научно-технической конференции «Синергетика природных, технических и социально-экономических систем» (Тольятти, 2007), 9-й конференции «Водные экосистемы, организмы, инновации» (Москва, 2007), международной конференции «Биология: теория, практика, эксперимент» (Саранск, 2008), международной научной конференции «Проблемы биоэкологии и пути их решения» (Саранск, 2008), международной конференции «Экологические проблемы бассейнов крупных рек» (Тольятти, 2008), 18 международном симпозиуме по липидам растений (Бордо, 2008), международной конференции «Липиды и оксилипины растений» (Казань, 2008), международной конференции «Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений» (Екатеринбург, 2008).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 14 работ, в том числе 3 статьи в центральных научных журналах, рекомендованных ВАК.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературных данных (глава 1), материалов и методов исследования (глава 2), результатов (глава 3) и их обсуждения, выводов, списка литературы. Библиографический указатель включает 290 источников. Работа изложена на 165 страницах, содержит 22 таблицы и 69 рисунков.

ВЫВОДЫ.

1. Установлено, что биоаккумуляционные свойства погруженных растений зависят от вида растений и природы ТМ. Отличительной особенностью является тот факт, что водные растения наряду с аккумуляцией ТМ, способны к их элиминации. Е. canadensis более всего аккумулировала медь, а Н. verticillata — свинец. Как правило, накопление ТМ растениями достигает порогового значения, после чего начинается процесс их элиминации. В период реабилитации цинк и свинец удалялись из тканей растений более интенсивно, чем медь.

2. На физиологическом уровне показано, что при одинаковых начальных концентрациях металлов, ионы меди полностью подавляли рост растений, а ионы цинка и свинца только замедляли рост. Все исследованные металлы снижали интенсивность фотосинтеза и содержание пигментов в период их воздействия. В постстрессовый период независимо от природы металлов процесс фотосинтеза усиливается.

3. Выявлены ответные реакции на действие ионов металлов, которые происходят как на уровне липидных групп (ФЛ, ГЛ, НЛ), так и отдельных молекул липидов. В зависимости от природы исследуемых металлов обнаружено разнонаправленное изменение в содержании отдельных липидных молекул (содержание ФХ, ФЭ снижалось при действие меди и увеличивалось при действии цинка и свинца) и жирных кислот (при действии меди возрастает доля насыщенных ЖК, при действии свинца и цинка — ненасыщенных).

4. На примере Н. verticillata выявлены изменения состава, содержания и метаболизма мембранных липидов отдельных субклеточных органелл. Под действием ионов меди усиливается синтез липидов во фракциях хлоропластов и нарушается во фракциях митохондрий и микросом.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Д., Балнокин Ю. В., Гавриленко В. Ф. и др. Физиология растений. — М.: Издательский центр Академия, 2005. 640 с.
  2. В. Ф. Биофизика мембран // Соросовский образовательный журнал, 1996.-№ 6.-С. 4−12.
  3. В.Ф., Смирнова Е. Ю., Шевченок Е. В. Липидные мембраны при фазовых превращениях. М.: Наука, 1992. — 136 с.
  4. В.Ф. Липидные поры: стабильность и проницаемость мембран // Соросовский образовательный журнал. 1998. — № 10. — С. 10−17.
  5. В.И. Растения и чистота природной среды. — М.: Наука, 1986. — 172 с.
  6. B.C. Физиолого-генетические аспекты устойчивости растений к тяжелым металлам. Аналитический обзор. Новосибирск, 1997. — 63 с.
  7. Л.Д. Биологические мембраны. -М.: Наука, 1975. 182 с.
  8. А.А. Матриксная функция биологических мембран // Соросовский образовательный журнал 2001. — № 7. — С. 2−8.
  9. Л.П. Принципы классификации и некоторые механизмы структурно-функциональных перестроек пресноводных экосистем в условиях антропогенного пресса // Гидробиологический журнал.- 1998. Т.34, № 6. — С. 72−93.
  10. Г. Биохимия природных пигментов. М.: Мир, 1986. — 422 с.
  11. Ю.П. Взаимодействие ДНК с биологически активными веществами (ионами металлов, красителями, лекарствами) // Соросовский образовательный журнал. 1998.-№ 10.-С. 18−24.
  12. Л.Г. Микроэлементы — благо и зло. М.: Знание, — 1984. — 144 С.
  13. Г. Г. Фотосинтез: физико-химический подход. М.: Едиториал УРСС, 2006.-224 с.
  14. В. А., Брехман И. И., Голотин В. Г., Кудряшов Ю. Б. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. — 148 с.
  15. Г. К. Тяжелые металлы в экологическом мониторинге водных систем // Соросовский образовательный журнал. 1998. — № 5. — С. 23−29.
  16. Е. Б., Храпова Н. Г. Перекисное окисление липидов мембран и природные антиоксидатны // Успехи химии. 1985. — Т. IV. — Вып. 9. — С. 15 401 558.
  17. В.Е. Липиды // Соросовский образовательный журнал. 1997. -№ 3.-С. 32−37.
  18. В.Е. Морские макрофиты. Систематика, биохимия, использование. // Соросовский образовательный журнал Т. 4. — № 7. — С. 51−57.
  19. А.Г. Биохимия триглицеридов. — М.: Наука, 1972. 307 с. /
  20. В.И. Биосфера и ноосфера. М.: Наука, 1989. — 261 с.
  21. Владимиров ЮА, Арчаков АИ. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М: Наука, 1972. — 252 с.
  22. В.Ф., Жигалова Т. В. Большой практикум по фотосинтезу. — М.: Академия, 2003. 256 с.
  23. Л.Д. Об адаптации водорослей. М.: МГУ, 1981. — 80 с.
  24. Р. Биомембраны: Молекулярная структура и функции. М.: Мир, 1997.-624 с.
  25. И.Д. Фитомасса макрофитов Куйбышевского водохранилища // Природн. ресурсы Волжско-Камского края. Казань, 1976. — С. 165−175.
  26. Н.А. Флуорометрический метод определения селена // Журнал аналитической химии. 1995. — Т. 50. — С. 492−497.
  27. М.Ю., Горбунова Е. А. Действие ионов кадмия на фотосинтез и замедленную люминесценцию хлорофилла цианобактерий Anabaena variabilis KUTZ // Физиология растений. 1993. — Т. 40. — № 5. — С. 760−763.
  28. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. М.: Мир, 1986. — Т 1. в 2-х томах. — С. 298−354.
  29. .З. Механизмы устойчивости растений к тяжелым металлам // Физиология и биохимия культурных растений. 1994. — Т. 26. — № 2. — С. 107 117.
  30. Н.А. О водообмене и состоянии воды растений // Водный режим растений в связи с разными экологическими условиями. Казань: Изд-во Казанского ун-та, 1978.-С. 293−309.
  31. М.С. Экология растений. М.: Высшая школа, 1983. — 190 с.
  32. В.В., Соколик А. И., Юрин В. М. Токсичность избытка меди и толерантность к нему растений // Успехи современной биологии. 2001. — Т. 121.-С.511 -525.
  33. Н.П., Калимова И. Б., Демченко К. Н. Влияние никеля на рост, полиферацию и дифференциацию клеток корневой меристемы проростков Triticum aestivum II Физиология растений 2005. — Т. 52. — № 2. — С. 250−258.
  34. Д.Г. Функциональная морфология клетки. М.: КДУ, 2005. — 320 с.
  35. В.Б., Быстрова Е. И., Серегин И. В. Сравнение тяжелых металлов на рост корня в связи с проблемой специфичности и избирательности их действия // Физиология растений. 2003. — Т. 50, № 3. — С. 445−454.
  36. А.Б., Гордон JI.X., Лыгин А. В. Роль структурных липидов в регуляции ионного транспорта растительных клеток // Цитология. 1997. — Т. 39. — № 4/5.-С. 285−293.
  37. В.И. Адаптация водных растений к стрессовым абиотическим факторам среды. — М.: Графикон-принт, 2005. 224 с.
  38. Кабата-Пендиас А., Пендиас X. Микроэлементы в почвах и растениях. — М.: Мир, 1989.-439 с.
  39. А.И., Красинцева В. В., Романова Г. И. Аккумуляция Fe, Mn, Zn, Си, и Сг у некоторых водных растений // Гидробиол. журнал. 1982. — Т. 18. — № 1. -С. 79−82.
  40. В.А., Баулин A.M., Гордиенко Т. В., Довыдьков С. А., Тихонов А. Н. Изменение фотосинтетического аппарата листьев бобов в зависимости от содержания тяжелых металлов в среде выращивании // Физиология растений. — 2001.-Т. 48, № 1.-С 47−54.
  41. В.А., Попов В. П., Руник В. Е. Влияние термофильносброженного осадка городских сточных вод на почву // Химизация сел. хоз-ва. — 1990. — № 2. -С. 51−52.
  42. В.М. Высшие водные растения континентальных водоемов СССР. -Л.: Наука, 1981.- 187 с.
  43. М. Техника липидологии. М.: Мир, 1975. — 323 с.
  44. К.А. Экология высших водных растений. — М.: Изд-во Моск. ун-та, 1982. 158 с.
  45. И.В. Химический состав и народно-хозяйственное значение промысловых макрофитов морей // Использование биологических ресурсов Мирового океана. -М.: Наука, 1980. С. 131−150.
  46. Е.Р., Шадрин Н. В. Участие мембранных липидов в адаптации Cladophora (Chlorophyta) к обитанию в мелководных озерах с различной соленостью // Ботанический журнал. 2003. — Т. 8. — № 5. — С. 38−44.
  47. В.Л. Биохимия растений. М.: Высш. шк., 1986. — 503 с.
  48. Е.М. Липиды клеточных мембран. Ленинград: Наука, 1981. — 340 с.
  49. А.В., Алексеева-Попова И.В. Действие ТМ на растения и механизмы металлоустойчивости // Растения в экстремальных условиях минерального питания. 1983. — С. 5−22.
  50. Л.А., Авксентьева О. А., Жмурко В. В., Садовниченко Ю. А. Биохимия растений. Ростов н/Д: Феникс, Харьков: Торсинг, 2004. — 224 С.
  51. Г. Г. Фотосинтез: физико-химический подход. М.: Едиториал УРСС.-2006.-224 с.
  52. В.В., Дмитриева Г. А., Физиология Растений. М.: Высшая школа, 2006.-810 с.
  53. О.Н. Белки теплового шока и устойчивость растений к стрессу // Соросовский образовательный журнал. — 1997а. — № 2. С. 5−13.
  54. О.Н. Хлоропласт и его полуавтономность в клетке // Соросовский образовательный журнал. 19 976. — № 7. — С.2−9.
  55. В.И. Обезвреживание ксенобиотиков // Соросовский образовательный журнал. 1999. -№ 1. — С. 8−12.
  56. А.Г., Экологические группы растений водоемов. Гидроботаника: Методология и методы. Материалы школы по гидроботанике. Рыбинск, 2003. — С. 5−22.
  57. С.В. Структурные изменения клеточных мембран. Л.: Наука, 1976. — 224 с.
  58. А. Основы биохимии. М.: Мир, 1985. — Т. 1−3.
  59. А.С., Башмаков Д. И., Кипайкина Н. В. Протекторная роль обработки тидиазуроном проростков огурца при действии тяжелых металлов и охлаждения // Физиология растений. 2003. — Т. 50. — № 3. — С. 346−348.
  60. Л.Ф., Смирнова Н. Н. Физиология высших водных растений. Киев: Наукова думка, 1988. — 186 с.
  61. И.В. Влияние никеля и меди на прорастание семян и формирование проростков черники // Физиология растений. 1999. — Т. 46. — № 3. — С. 500 502.
  62. М.Г., Некрасова Г. Ф., Безель В. С. Реакция гидрофитов на загрязнение среды тяжелыми металлами // Экология 2004. — № 4. — С. 266−272.
  63. В.И. Динамика растительности водоемов Средней Волги. — Куйбышев: Кн. Изд-во, 1990. 192 с.
  64. В.И., Соловьева В. В., Саксонов С. В. Экология водных растений: Учебное пособие. Издание 2-е, дополненное и переработанное. Самара: Изд-во Самарского научного центра РАН, 2005 — 282 с.
  65. М.Н. Активированный кислород и жизнедеятельность растений // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 9. — С. 20−26.
  66. Т.Ф. Распределение тяжелых металлов в высших водных растениях Угличского водохранилища // Экология. 1994. — № 1. — С. 16−21.
  67. Т.Ф. Тяжелые металлы в макрофитах Рыбинского водохранилища// Водные ресурсы. 1996. — Т.23. — № 2. — С.234 — 240.
  68. Т.Ф. Сезонные колебания уровней тяжелых металлов в различных органах сусака зонтичного (Butomus umbellatus L.) // Биология внутр. вод. — 1997.-№ 3.-С. 25−30.
  69. Т. Ф. Накопление тяжелых металлов различными видами высших растений // Тезисы докладов Всероссийской конференции по водным растениям «Гидроботаника 2000». Борок, 2000. — С. 188−189.
  70. Н.Н. Биохимические эффекты накопления ртути у рыб. М.: Наука, 2005.-С. 164.
  71. А.Н. Действие тяжелых металлов на корни растений. Поступление свинца, кадмия и цинка в корни, локализация металлов механизмы устойчивости растений // Биол. науки. 1989. — № 9. — С. 72−86.
  72. Д.Н., Новиков Ю. В., Зарубин Г. П. Научно-технический прогресс, природа и человек. М.: Наука, 1977. — 199 С.
  73. Е.М. Биогеохимическая оценка загрязнений тяжелыми металлами агроландшафтов восточного Подмосковья // Геохимическая экология и биогеохимическое изучение таксонов биосферы. М.: Наука, 2003. — С. 108−109.
  74. Г. В., Церенова О. А., Кочешкова Т. К., Новицкий Ю. И. Влияние переменного магнитного поля на состав и содержание липидов в проростках редиса // Физиология растений. 2006. — Т. 53. — № 1. — С. 83−93.
  75. В.А. ЕГ-АТФаза плазматической мембраны основная электрогенная система высших растений // Соросовский образовательный журнал. — 2000.- № 3. С. 28−32.
  76. В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. — 214 с.
  77. В.Г., Соловьева В. В. Флора прудов Среднего Поволжья // Самарская лука. Бюлл. 1993. № 4. — С. 172−190.
  78. В.Г., Щербаков А. В., Лапиров А. Г. Основные гидроботанические понятия и сопутствующие им термины. Гидроботаника: Методология и методы. Материалы школы по гидроботанике. — Рыбинск, 2003. — С 27−38.
  79. И.О., Обухов А. И. Цинк и кадмий в почвах и растениях городской среды // Цинк и кадмий в окружающей среде. — М.: Наука, 1992. — С. 144−159.
  80. А.С. Мир аквариума. Калининградское книжное издательство. 1994.-224 с.
  81. М.Н. Практическое использование растений для восстановления экосистем загрязненных металлами // Физиология растений. 2003. — Т. 50. — № 35.-С. 764−780.
  82. А.А. Кормовое значение водной и прибрежной растительности водохранилищ // Вестник сельхоз. наук. 1958. — № 6.
  83. Н.В., Матвеев Н. М., Павловский В. А. Аккумуляция тяжелых металлов дикорастущими и культурными растениями в лесостепном Поволжье.- Самара: Издательство «Самарский университет», 1998. — С. 4−14.
  84. П., Эверт Р., Айкхорн С. Современная ботаника. М.: Мир, 1990. — Т. 1.-С. 348.
  85. К. Металлические загрязнения пищевых продуктов. — М.: агропромиз-дат, 1985.- 184 с.
  86. О.А. Изучение особенностей аккумуляции ионов тяжелых металлов водными растениями и роли липидов в адаптации к тяжелым металлам // Изв. Самар. НЦ РАН. 2006. — Т.8. — № 3.
  87. О.А., Пономарева Е. Р., Мазепова Ю. Н., Конева Н. В. Липиды некоторых водных растений Среднего Поволжья // Химия природных соединений. — 1995.-С. 206−209.
  88. О.А., Саксонов С. В., Козлов В. Г., Конева Н. В. Эколого-биохимический подход к изучению липидов высших водных растений // Известия Самарского научного центра РАН. 2000. — Т. 2. — № 2. — С. 358−366.
  89. О.А., Саксонов С. В., Дембицкий В. М. Углеводороды, жирные кислоты и липиды пресноводных трав семейства Potamogetonaceae // Биохимия.- 2002. Т. 67, вып. 3. — С. 422−429.
  90. О.А., Козлов В. Г., Дембицкий В. М. Сравнительное исследование липидов четырех доминирующих видов растений и водорослей реки Шульган // Биохимия. 1999. — № 11. — С. 1527−1534.
  91. О.А., Мурзаева С. В., Гущина И. А. Роль мембранных липидов в устойчивости Potamogeton perfoliatus L. к избытку кадмия в воде // Изв. РАН. Сер. биол. 2004. — № 6.
  92. О. А. Резанка Т., Босенко Е. С., Ужамецкая Е. А., Дембицкий В. М. Жирные кислоты, фосфолипиды и бетаиновый липид ДГТС водного папоротника сальвиния плавающая // Химия природных соединений. 2005. — Т. 41. — С. 487−490.
  93. А.Б. Биофизические методы в экологическом мониторинге // Соросовский образовательный журнал. 2000. — № 4. — С. 7−13.
  94. А.Б. Первичные процессы фотосинтеза // Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 10. — С. 78−84.
  95. Э.В., Каракис К. Д., Сидоршина Е. И. Роль клеточных оболочек растений в поглощении и накоплении ионов металлов // Физиология и биохимия культурных растений. -1988. Т. 20. — С. 3−12.
  96. А.Б., Курганова Л. Н., Шекунов Ю. И. Интенсивность перекисного окисления липидов у Taraxacum officinale Wigg. И Vicia cracca L. в биотопах с разными уровнями загрязнения почв тяжелыми металлами // Экология. 2007.3. С. 191−197.
  97. А.П., Кудряшов М. А. Гидроботаника: Прибрежно-водная растительность. М.: Академия, 2005. — 240 с.
  98. И.В., Иванов В. Б. Физиологические аспекты токсического действия кадмия и свинца на высшие растения // Физиология растений. 2001. — Т. 48. — № 4.-С. 606−630.
  99. И.В., Кожевникова А. Д. Транспорт, распределение и токсическое действие стронция на рост проростков кукурузы // Физиология растений. — 2004. Т. 51, № 32. — С. 241−248.
  100. И.В., Кожевникова А. Д. Физиологическая роль никеля и его токсическое действие на высшие растения // Физиология растений. 2006. — Т. 53. — № 2.-С. 285−308.
  101. Н.Ф., Коузова Е. Д. Роль липидов при действии абсцизовой кислоты в колеоптилях кукурузы // Вестник Санкт-Петербургского университета. — Сер. З.-Вып. 1.-С. 86−92.I
  102. Л.П. Липиды в физиолого-биохимических адаптациях экотермных организмов к абиотическим и биотическим факторам среды. — М.: Наука, 2007. -182 с.
  103. И.В., Кожевникова А. Д., Казюмина Е. М., Иванов В. Б. Токсическое действие и распределение никеля в корнях кукурузы // Физиология растений. -2003. Т. 50. — № 5. — С. 793−800.
  104. Р.Б. Нарушение водного баланса растений под действием тяжелых металлов // Псъезд ВОФР. М.: 1992. — С. 195.
  105. Н.Е., Шеин И. В., Романова Л. И., Милютина И. Л., Кудашева Ф. Н., Вараксина Т. Н., Степень Р. А. Биохимические индикаторы стрессового состояния древесных растений. — Новосибирск: Наука. Сиб. предприятие РАН, 1997. — 176 с.
  106. И.А. Процессы деградации у растений // Соросовский образовательный журнал. 1996. — № 6. — С. 13−19.
  107. И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 2002. -294 с.
  108. ПО.Тахтаджян А. П. Вопросы эволюционной морфологии. — JL: Изд-во ленингр. Ун-та, 1954.-212 с.
  109. A.JI. Жизнь растений. М.: Просвещение, 1980. — Т. 5. — 430 с.
  110. С.С. Биотехнология обезвреживания сточных вод // Хим. и технол. Воды. -1995. 17, № 5. — С. 525−532
  111. А.Ф., Таланова В. В., Казнина Н. М., Лайдинен Г. Ф. Устойчивость растений к тяжелым металлам. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2007.- 172 с.
  112. Е.П., Терешина В. М., Меморская А. С., Хохлова Н. С. О различных механизмах биохимической адаптации мицелярных грибов к температурному стрессу: изменения в составе липидов // Микробиология. — 2000. Т. 69. — № 5. -С. 612−619.
  113. Н.К. Биоиндикация и мониторинг загрязнения морских вод тяжелыми металлами. Л.: Наука, 1989. — 192 с.
  114. В.П., Волков К. С., Кузнецов В. В. Адаптация к высоким концентрациям солей меди и цинка растений хрустальной травки и возможность их использования в целях фиторемедиации // Физиология растений. — 2005. — Т. 52. — № 6. С. 848−858.
  115. С.В. Липиды морских водорослей-макрофитов и трав.
  116. Структура. Распределение. Анализ. Владивосток: Дальнаука, 2003. — 233 с.
  117. П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация. Пер. с англ. М.: Мир, 1988.-568 с.
  118. Цыб А.Ф., Будагов Р. С., Замулаева И. А. и др. Радиация и патология. — М.: Высш. шк., 2005. 341 с.
  119. Т.В. Физиологические основы устойчивости растений. Учеб. пособие. СПб.: Изд-во С.-Петерб. Ун-та, 2002. — 244 с.
  120. Т.В. Клеточные мембраны и устойчивость растений к стрессовым воздействиям // Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 9. — С. 1217.
  121. И.С. Рост растений и его регуляция в онтогенезе. М.: Колос, 1992. — 594 с.
  122. И.Г., Григоркж И. А., Шведова О. Е. Устойчивость растений к водному и температурному стрессу. Киев: Наукова думка, 1989. — 224 с.
  123. Э. Хроматография в тонких слоях. Пер. с нем. М.: Мир, 1965.
  124. JI.B. Макрофиты в экологии водоема. — М.: Изд-во Института водныхпроблем РАН, 1992.-256 с.
  125. В. Яды в нашей пищи. М.: Мир, 1985. — 420 С.
  126. В.М. Основы ксенобиологии. Учебное пособие, 2002. С. 4−266.
  127. Н.С., Лопотун А. Г. Накопление микроэлементов и тяжелых металлов в растениях рыбоводных прудов // Водная токсикология. Гидробиологический журнал. 1993. — Т. 29, № 5. — С. 40−45.
  128. Ackman R.G., McLachlan J. Fatty acids in some Nova Scotia marine seaweeds: a survey for octadecapentaenoic and other biochemically novel fatty acids // Proc. N. S. 1 Inst. Sci. 1997. -V. 28. — № 1. — P. 47−64.
  129. Ali S., Jain S.K., Abdulla M., Athar M. Paraquat-induced damage by reactive oxygen species // Biochem. Mol. Biol. Int. 1996. — № 39. — P. 63−67.
  130. Arunachalam A., Maithani K., Pandiaraj S. Effect of zinc and cadmium on primary productivity of Hydrilla verticillata (L.fil.) Royle // Indian J. Plant Physiol. 1996. -V. 1. — № 1.- P. 49−51.
  131. Baker A. J. M., Brooks R. R. Terrestrial higher plants which hyperaccumulate metallic elements a review of their distribution, ecology and phytochemistry // Biorecovery. — 1989.-V. l.-P. 81−126.
  132. Barcelo J., Poschenrieder C. Plant water relations as affected by heavy metal stress // J. Plant Nutr. 1990. — V. 13. — P. 1−37.
  133. Baszynski Т., Wajda L., Krol M., Wolinska D., Krupa Z., Tukendorf A. Photosynthetic activities of cadmium treated tomato plants // Physiol. Plant. -1980. -V. 48.-P. 365−370.
  134. Berglund A., Quartacci M.F., Liljenberg C. Changes in plasma-membrane lipid composition: a strategy for acclimation to copper stress // Biochemical Society Trans.- 2000. V. 28. — P. 905−907.
  135. Bligh E.G., Dyer W.J. A rapid method of lipid extraction and purification // Can. J. Biochem. Physiol. 1959. — 37. — P. 911−917.
  136. Blumwald E., Aharon G.S., Apse M.P. Sodium transport in Plant cells // Biochim. Acta. -2000. V. 1465.-P. 140−151.
  137. Borochov A., Cho M.H., Boss W.F. Plasma membrane lipid metabolism of Petunia petals during senescence // Physiol. Plant. 1994. — № 90. — P. 279−284.
  138. Brune A., Urbach W., Dietz K.J. Compartmentation and transport of zinc in barley primary leaves as basic mechanisms involved in zinc tolerance // Plant Cell Environ.- 1994.-V. 17.-P. 153−162.
  139. Buart M.P., Arnold M. The heavy metal chemistry of atmospheric particulate matter emitted by Mount Etna volcano // Geophys. Res. Lett. 1978. — № 5. — P. 245−248.
  140. Buettner G.R. The pecking order of free radicals and antioxidants: lipid peroxidation, a-tocopherol and ascorbate // Arch. Biochem. Biophys. — 1993. — V. 300. -№ 2.-P. 535−543.
  141. Cadenas E. Free radicals, oxidative stress and antioxidants // Patholog. Physiol. Sig.- 1998. V. 296.-P. 237.
  142. Cakmak I., Welch R.M., Hart J., Norvell W.A., Ozturk L., Kochian L.V. Uptake and retranslocation of leaf-applied cadmium (109Cd) in diploid, tetraploid and hexaploid wheats // J. Exp. Bot. 2000. — V. 51. — № 343. — P. 221−226.
  143. Chaoui A., Mazhoudi S., Ghorbal M.H., Ferjani E.E. Cadmium and Zn induction of lipid peroxidation and effects of antioxidant enzyme activities in bean (Phaseolus vulgaris L.)// Plant Sci. 1997. — V.127. — P.139−147.
  144. Clemens S., Kim E.J., Neumann D., Schroeder J.J. Tolerance to toxic metals by a gene family phytochelatins synthases from plants and yeast // EMBO J. 1999. — V. 18.-P. 3325−3333.
  145. Cobbett C.S. Phytochelatins and their roles in heavy metal detoxification // Plant. Physiol. 2000. — V. 123. — P. 825−832.
  146. Costa G., Morel J.L. Cadmium uptake by Lupinus albus (L.): Cadmium excretion, a possible mechanism of cadmium tolerance // J. Plant Nutr. — 1993. V. 16. — P. 1921−1929.
  147. Costa G., Morel J.L. Efficiency of H±ATPase activity cadmium uptake by four cultivars lettuce // J. Plant Nutr. 1994. — V. 17. — P. 627−637.i о
  148. Demidchik V., Sokolik A., Yurin V. the effects of Cu Ion ion transport systems of the plant cell membranes // Plant Physiol. 1997. — V. — 114. — P. 1313 — 1325.
  149. De Vos C.H.R., Schat H., Vooijs R., Ernst W.H.O. Increased resistance to copper induced damage of the root cell plasmalemma in copper tolerant Silene cucubalus II Physiol Plant. 1991. — V. 82. — P. 523 -528.
  150. Dong C.Z., Mantillet J.L., Triantaphylides C. Effects of gamma irradiation on the plasma membranes of suspension cultured cells. Rapid irreversible inhibition of H4″ ATPase activity // Physiol. Plant. 1994. — № 90. — P. 301−312.
  151. Dunbabin J.S., Bowner K.H. Potential use of constructen wetlands for treatment of industrial wasterwaters containing mettals // Sci. Total. Environ. 1992. — V. 111.— № 2/3.-P. 56−60.
  152. Edwards J.C., Chapman D., Cramp W.A., Yatvin M.B. The effects of ionizing radiation on biomembrane structure and function // Prog. Biophys. Mol. Biol. 1984. -№ 43.-P. 71−93.
  153. Ernst W.H.O. Physiological and biochemical aspects of metal tolerance // Effects of air pollutants on plants. Cambridge ect. 1976. — P. 115−133.
  154. Ernst W.H.O., Verkleij J.A.C., Schat H. Metal tolerance in plants // Acta Bot. Neerl.- 1992.-V. 41.-P. 229−249.
  155. Guilizzoni P. The role of heavy metals and toxic materials in the physiological ecology of submersed macrophytes // Aguatic Botany. 1991. -Y.41. — P.87−109.
  156. Gleichman-Yerheyc E.G., Putten W.H., Yander L. Alvalwaterzuvering met helofytenfilters, een haalbaarheidsstudie // Tijdschr. Watervoorz. En. Alvalwater. -1992. V. 25. — № 3. — P. 56−60.
  157. Godbold D.L. Cadmium uptake in Norway spruce seedlings // Tree Physiol. 1991.- № 9. P. 349−357.94 161. Greger M., Ogren B. Direct and indirect effects of Cd on photosynthesis in sugarbeet//Physiol. Plant. 1991. — V. 83.-P. 129−135.
  158. Greger M. Metal Availability and Bioconcentration in Plants/ In: Prasad M.N.V., Hagemeyer J. eds. Heavy metal stress in plants // from molecules to ecosystems. Berlin: Springer, 1999. — P. 1−27.
  159. Grant C.A., Buckley W.T., Bailey L.D., Selles F. Cadmium accumulation in crops //Can. J. Plant Sci. 1998. — V. 78.-P. 1−17.
  160. Grunwald, C. Effect of free sterols, steryl esters and glycoside on membrane permeability. Plant Physiol. 1971. -P.653−655
  161. Guschina I.A., Harwood J.L. Effect on copper and lead on lipid metabolism in bryophytes and lichens // Biochem. Soci. Trans. 2000. — V. 28. — P. 910−912.
  162. Guschina I.A., Harwood J.L. Lipid metabolism in the moss Rhytidiadelphus squarrosus (Hedw.) Warnst. from lead-contaminated and non-contaminated populations // J. Exp. Bot. 2002. — V. 53. — № 368. — P. 445−463.
  163. Gussarsson M., Adalstainsson S., Jensen P., Asp. H. Cadmium and copper interactions on the accumulation and distribution of Cd and Cu in birch seedings // Plant Soil.-1995.-V. 171.-P. 185−187.
  164. Hadlington S. An interesting reed // Chem. Brit. — 1991. — 27, № 4. — P. 229.
  165. Hall J.L. Cellular mechanisms for heavy metal detoxification and tolerance // J. Exp. Bot.-2002.-Y. 53.- № 366.-P. 1−11.
  166. Hamer D.H. Metallothioneins // Annu. Rev. Biochem. 1986. — V. 55. — P. 913 951.
  167. Harris N.S., Taylor G.J. Remobilization of cadmium in maturing shoots of near isogenic lines of durum wheat that differ in grains cadmium accumulation // J. Exp. Bot. 2001. — V. 52. — № 360. — P. 1473−1481.
  168. Hart J.J., Welch R.M., Norvell W.A., Sullivan L.A., Kochian L.V. Characterization of cadmium binding, uptake and translocation in intact seedlings of bread and durum wheat cultivars // Plant Physiol. 1998. — V. 116. — P. 1413−1420.
  169. Harwood J.L., Russel N.J. Lipids in plants and microbes. London: George Allen & Unwin. Ltd. 1984. — 162 p.
  170. Hennessey T.M. Effects of membrane plant sterols on excitable cell functions // Сотр. Biochem. Physiol. 1992. — V. 101. -P. 1−8.
  171. Harwood J. L. What’s so special about plant lipids? //In: Harwood J. L. ed. Plant lipid biosynthesis. Fundamentals and agricultural application. Camridge: University Press.- 1998.-P. 1−28.
  172. Harwood J.L. The Lipid Handbook // Eds Gunstone F.D., Harwood J.L., Padley F.B. London: Chapman & Hall. 1994. — P. 200−204.
  173. Hernandez L.E., Cooke D.T. Modification of the root plasma membrane lipid composition of cadmium treated Pisum satiyum II J. Experim. Bot. 1997. — V. 48. -P. 1375- 1381.
  174. Hennessey T.M. Effects of membrane plant sterols on excitable cell function // Сотр. Biochem. Physiol. 1992.-V. 101.-P. 1−8.
  175. Horwith G., Droppa M., Oravecz A., Raskin V.I., Marder J.B. Formation of the photosynthetic apparatus during greening of cadmium-poisoned barley leaves // Planta. 1996. — V. 199. — P. 23 8−243.
  176. Hovmand M.F., Tjell J.C., Mosbaek H. Plant uptake of airborne cadmium // Environ. Pollut. Ser. A. 1983. -V. 30. -P. 27−32.
  177. Howlett N., Avery S.V. Induction of lipid peroxidation during heavy metal stress in Saccharomyces cerevisiae and influence of plasma membrane fatty acidunsaturation//Applied and Environmental Microbiology. 1997. — V.63. — № 8. — P. 2971−2979.
  178. Jemal F., Zarrouk M., Ghorbal M.H. Effect of cadmium on lipid composition of pepper // Biochemical Society Trans. 2000. — V. 28. — P. 907−909.
  179. Jones D., Kochian L.V. Aluminum interaction with plasma membrane lipids and enzyme metal binding and its potential role in Al cytotoxicity // FEBS Letters. — 1997. -V.400.-P.51−57.
  180. Jones A.L., Harwood J.L. Effects of heavy metals on lipid metabolism in marine algae // Biochem. Soc. Trans. 1988. — V. 16. -№ 3. — P. 275−278.
  181. Jones A.L., Harwood J.L. Lipid metabolism in the brown marine algae Fucus vesiculosus and Ascophyllum nodosum // Journal of Experimental Botany. — 1993. — V. 44.-P. 1203 -1210.
  182. Jones A.L., Harwood J.L. Comparative aspects of lipid metabolism in’marine algae // Biochem. Soc. Trans. 1987. — V. 15. — № 4. — P. 482.
  183. Kastori R., Petrovic M., Petrovic N. Effect of excess lead, cadmium, copper and zinc on water relations in sunflower // J. Plant. Nutr. 1992. — V. 15. — P. 2427−2439.
  184. Kennedy C.D., Gonsalves E.A.N. The action of the divalent Zn, cadmium, mercury, copper and lead on transroot potential and H+ efflux of excised roots // J. Exp. Bot. 1987. — V.38. — P. 800−817.
  185. Khurana N., Singh M.V., Chatterjee C. Copper stress alters physiology- and deteriorates seed quality of rapeseed // J. Plant. Nutr. 2006. — V. 29. — № 1. — P. 93 101.
  186. Kim S.U., Cheong Y.H., Seo D.C., Hur J.S., Heo J.S., Cho J.S. Characterisation of heavy metal tolerance and biosorption capacity of bacterium strain CPB4 {Bacillus spp.) // Water Sci. & Tech. 2007. — V. 55. — № 1−2. — P. 105−111.
  187. Kosyk O.I., Okanenko A.A., Taran N. Yu. Heavy metals caused lipid peroxidation and lipid modification in wheat. 18th international symposium on Plant lipids. Abstracts of contributions. Bordeaux, France, July 20−25th. — 2008. — P. 203.
  188. Krinsky N.I. Function. Basel and Stuttgart, Birkhauser. 1971. — P. 669−716.
  189. Krupa Z. Acyl lipids in the supramolecular chlorophyll protein complexes of photo-systems: isolation artifacts or integral components regulating their structure and functions? Acta Soc. Bot. Pol. 1988. — V.57. -P.401−418.
  190. Krupa Z., Baszynsky T. Acyl lipid composition of thylakoid membranes of cadmium-treated tomato plants// Acta Physiol Plant. 1989. — V. 11. — P. 111−116.
  191. Krupa Z., Baszynsky T. Some aspects of heavy metals toxicity towards photosynthetic apparatus-direct and indirect effects on light and dark reactions // Acta Plant Plant. — 1995. V. 17. -P.177−190.
  192. Krupa Z., Oquist G., Huner N.P.A. The influence of cadmium on primary photosystem II photochemistry in bean as revealed by chlorophyll a fluorescence — a preliminary study // Acta Physiol. Plant. 1992. — V. 14. — № 2. — P. 71−76.
  193. Larson R.A. The antioxidants of higher plants // Phytochem. 1988. — V. 89. — P. 111−122.
  194. Lasat M.M., Baker A.J.M., Kochian L.V. Physiological characterization of root Zn absorption and translocation to shoots in Zn hyperaccumulator and nonaccumulator species of Thlaspi // Plant Physiol. 1996. — V. 112. — P. 1715−1722.
  195. Lasat M.M. Phytoextraction of Toxic Metals // J. Environ. Qual. 2002. — V.31. -P. 109−120.
  196. Lewis S., Donkin M.E., Depledge M.H. Hsp70 expression in Enteromorpha intestinalis (Chlorophyta) exposed to environmental stressors // Aqua. Toxic. — 2001. -№ 51. -P.277−291.
  197. Lichtenthaler H.K. Chlorophyll and Carotinoids: Pigments of Photosyntethetic Biomembranes // Methods. Enzimol. 1987. — V. 148. — P. 331−382.
  198. Lindberg S. Szynkier K., Greger M. Aluminum effects on the transmembrane potential in cells of fibrous roots of sugarbeet // Physiol. Plantarum. -1991. V. 83. -P. 54−62.
  199. Lurie S., Ronen R., Lipsker Z., Aloni B. Effects of paclobutrazol and chilling temperatures on lipids, antioxidants and ATPase activity of plasma membrane isolated from green ball pepper fruits // Physiol. Plant. 1994. — № 91. — P. 593−598.
  200. Mansour M. M., Van Hasselt P. R., Kuiper P. J.C. Plasma membrane lipid alterations induced by NaCl in winter wheat roots // Physiol. Plant. 1994. — №. 92. -P. 473−478.
  201. Maksymiec W., Russa R., Urbanik-Sypniewska Т., Baszynski T. Changes in acyl lipid and fatty acid composition on thylakoids of copper non-tolerant spinach exposed to excess copper// Journal Plant Physiol. 1992. — V. 140. — P.52−55.
  202. Maksymiec W., Russa R., Urbanik-Sypniewska Т., Baszynski T. Effect of excess Cu on the photosynthetic apparatus of runner bean leaves treated at two different growth stages// Physiol. Plant. 1994. — V.91. — P. 715−721.
  203. Maksymiec W. Effects of copper on cellular processes in higher plants // Photosynthetica. 1997. — V.34. -№ 3. -P.321−342.
  204. Mai Tarun K., Adorjan P., Corbett A. Effect of copper on growth of an aquatic macrophyte // Environ. Pollut. 2002. — V. 120. — № 2. — P. 307−311.
  205. Marechal E., Block M.A., Dome A.J. et al. Lipid synthesis and metabolism in the plastid envelope // Physiol. Plant. 1997. — V.100. — № 1. — P. 105−120.
  206. Maxwell K., Johnson G.N. Chlorophyll fluorescence a practical guide // J. Exp. Bot., 2000. — V. 51. — № 345. — P. 659−668.
  207. Mazhoudi S., Chaoui A., Ghorbal M.H., Ferjani E.E. Response of antioxidant enzymes to excess copper in tomato {Lycopersicum esculentum Mill) // Plant Sci. — 1997.-V. 127.-P. 129−137.
  208. Mehta S.K., Tripathi B.N., Gaur J.P. Influence of PH, culture age and cations on adsorption and uptake of Ni by Chlorella vulgaris II Eur. J. Protistol. 2000. — V. 36. -P. 443−450.
  209. Meharg A.A. The role of the plasmalemma in metal tolerance in angiosperms// Physiologia plantarum. 1993. — V.88. -P.191−198.
  210. Meharg A.A. Mechanisms of plant resistance to metal and metalloid ions and potential biotechnological applications // Plant. Soil. 2005. — V. 274. — P. 163−174.
  211. Mishra S., Sanwal G.G. Changes in lipid composition of Brassica siliqua upon infection by Cuscuta/П. Plant. Physiol. 1995. -№ 146. -P. 303−317.
  212. Molas J. Changes in morphological and anatomical structure of cabbage outer leaves and in ultrastructure of their chloroplasts caused by an in vitro excess of nickel // Photosynthetica. -1997. V. 34. — № 4. — P. 513−522.
  213. Molas J. Changes of chloroplast ultrastructure and total chlorophyll concentration in cabbage leaves caused by excess of organic Ni (II) complex // Environ. Exp. Botany. -2002.-V.47.-P. 115−126.
  214. Murthy S.D., Sabat S.C., Mohanty P. Multiple Effects of Mercuiy on Photoelectron Transport Activities of Cyanobacterium Spirulina platensis II Proceedings of the international congress of plant physiol. New Delhi, India. 1988. — P. 1241−1245.
  215. Nguyen X., Mazliak P. Chilling injury induction is accompanied by galactolipid degradation in tomato pericarp // Plant. Physiol. Biochem. 1990. — №. 28. — P. 283 291.
  216. Navari-Izzon F., Quartacci M.F., Izzo R., Pinzino C. Degradation of membrane lipid components and antioxidant levels in Hordeum vulgare exposed to long-term fumigation with SO2 11 Physiol. Plant. 1992. — № 84. -P. 73−79.
  217. Neumann D., Lichtenberger O., Gunther D., Tschiersch K., Nover L. Heat-shock proteins induce heavy-metal tolerance in higher plants // Planta. 1994. — № 194. -P. 360−367.
  218. Neumann D., Nieden U.Z., Lichtenberger O., Leopold I. How does Armeria maritima tolerate high heavy metal concentrations? // J. Plant Physiol. — 1995. — № 146.-P. 704−717.
  219. Nouairi I., Ben Ammar W., Ben Youssef N., Ben Miled Daoud D., Habib Ghorbal M., Zarrouk M. Comparative study of cadmium effects on membrane lipid composition of Brassica juncea and Brassica napus leaves // Plant Science. 2006. -V. 170.-P. 511−519.
  220. Okamoto K., Suzuki M., Fukami M., Toda S., Fuwa K. Uptake of heavy metals by a copper-tolerant fungus Penicillum ochrochloron II Agric. Biol. Chem. — 1977. — V. 41.-P. 17−22.
  221. Ouzounidou G. The use of photoacoastic spectroscopy in assessing leaf photosynthesis under copper stress: correlation of energy storage to photosystem II fluorescence parameters and redox change of P700 // Plant Sci. 1996. — V. 113. — P. 229−237.
  222. Peeler T.C., Thomson G.A. Jr. Effects of light on phospholipids metabolism in Dunaliella salina II Physiol. Plant. 1990. — № 78. — P. 324−330.
  223. Petit C.M., Van de Geijn S.C. In vivo measurement of cadmium transport and accumulation in the stems of intact tomato plants // Planta. 1978. — V. 138. — № 2. -P. 137−143.
  224. Prasad M.N.V. Trace metals. Plant ecophysiology. New York, 1997. — P. 207−249.
  225. Prasad M.N.V. Metal-biomolecule complexes in plants: Occurrence, functions, and applications // Analusis Magazine. 1998. — V. 26. — № 6. — P. 25−28.
  226. Prasad M.N.V. Cadmium toxicity and tolerance in vascular plants // Environ. Exp. Bot -1995.-V. 35.-P. 525−545.
  227. Prasad M.N.V., Malec P., Waloszek A., Bojko M., Strzalka K. Physyological responses of Lemna trisulca L. to cadmium and copper bioaccumulation // Plant Sci. 2001. -V. 161. — P. 881−889.
  228. Puckett K.J. The effect of heavy metals on some aspects of lichen physiology // Can. J. Bot. 1976. -V. 54. — P. 2695−2703.
  229. Rai L.C., Mallick N., Singh J.B., Kumar H.D. Physiological and biochemical characteristics of a copper tolerant and a wild-type strain of Anabaena doliolum // J. Plant Physiol. 1991. -V. 138. — P. 68−74.
  230. Rai U.N., Gupta M., Tripathi R.D., Chandra P. Cadmium regulated nitrate reductase activity in Hydrilla verticillata (L.fil.) Royle // Water, air and soil pollution. 1998. -V. 106.-P. 171−177.
  231. Rama Deli S., Prasad M.N.V. Heavy metal stress in plants/ From molecules to ecosystems. Berlin: Springer, 1999.-P. 99−117.
  232. Rashid A., Bernier M., Pazdernick L., Carpentier R. Interaction of Zn2+ with the donor side of Photosystem II // Photosyn. Research. 1991. — № 30. — P. 123−130.
  233. Razin S., Cosenza B.J., Tourtellotte M.E. Variations in Mycoplasma morphology induced by long-chain fatty acids // J. Gen. Microbiol. 1966. — № 42. — P. 139−145.
  234. Rauser W.E. Structure and function of metal chelators prodused by plants // Cell Biochem. Biophys. 1999. -V. 31. — P. 19−48.
  235. Romanowska E., Igamberdiev A.V., Parys E., Gardestrom P. Stimulation of respiration by Pb in detached leaves and mitochondria of C3 and C4 plants // Physiol. Plant. 2002. — V. 116.-№ 2.-P. 148−154.
  236. Ros R., Morales A., Segura J., Picazo I. In vivo and in vitro effect of nickel and cadmium on the plasmalemma ATP-ase from rice {Oryza sativa L.) shoots and roots // Plant Sci. 1992. — V. 83. — P. 1−6.
  237. Samson G., Popovic R. Inhibitory effects of mercury on photosystem II photochemistry in Dunaliella tertiolecta under in vivo conditions // J. Photoch. and Photobiol. 1990. -№ 5. — P. 303−310.
  238. Sandalio I.M., Dalurzo H.C., Gomes M., Romero-Puertas M.C., Del Rio I.A. Cadmium-induced changes in the growth and oxidative metabolism of pea plants // J. Exp. Bot. 2001. -V. 52 -№ 364. — P. 2115−2126.
  239. Sarret G., Saumitov-Laprade P., Bert V., Proux O., Hazemann J.L., Traverse A.S., Marcus M.A., Manceau A. Forms of zinc accumulated in the hyperaccumulator Arabidopsis halleri И Plant. Physiol. 2002. — V. 130. — P. 1815−1826.
  240. Schuetzenduebel A., Polle A. Plant Responses to Abiotic Stresses: Heavy Metal-Induced Oxidative Stress and Protection by Mycorrhization // J. Exp. Bot. 2002. — V. 53. — P. 13 511 365.
  241. Sheoran I.S., Singal H.R., Singh R. Effect of cadmium and nickel on photosynthetic carbon reduction cycle in pigeon pea (Cajanus cajan L.) // Photosynth.Res. 1990. — V.23. — P.345−351.
  242. Siedlecka A., Krupa Z. Cd/Fe interaction in higher plants its consequences for the photosynthetic apparatus // Photosynthetica. — 1999. — V. 36. — № 3. — P. 321−331.
  243. Silver S., Misra Т.К. Plasmid-mediated heavy metal resistances // Annu.Rev. Microbiology. 1988. — V.42. — P. 717 — 743.
  244. Smilde K.W., Van Luit В., Van Driel W. The extraction by soil and absorption by plants of applied zinc and cadmium // Plant. Soil. 1992. — V. 143. — P. 233−238.
  245. Smith K.L., Bryan G.W., Harwood J.L. Changes in the lipid metabolism of Fucus serratus and Fucus vesiculosus caused by copper // Biochim. Biophys. Acta, 1984. -V. 796. -№ l.-P. 119−122.
  246. Smith K.L., Bryan G.W., Harwood J.L. Changes in endogenous fatty acids and lipid synthesis associated whith copper pollution in Fuccus spp. // Journal of Experimental Bptany. 1985. — V.63. — P. 663 -669.
  247. Stefanov K., Kimenov G., Popova I., Pancheva Т., Metodiev M., Andreev St., Popov S. Lipid and sterol changes in plants and invertebrates caused by environmental pollution // Bulgarian chemical communications. 1992. -V. 25.- № З.-Р. 391−399.
  248. Stefanov К., Popova I., Kamburova E., Pancheva Т., Kimenov G., Kuleva L., Popov S. Lipid and sterol changes in zea mays caused by lead ions // Phytochemistry.- 1993. V.33. -№ 1. -P.47−51.
  249. Stefanov S., Pandev S,.D., Seizova K., Tyankova L.A., Popov S. Effect of leag on the lipid metyabolism in spinach leaves and thylakoid membranes // Biol Plant. — 1995.-V.37.-P. 251 -256.
  250. Strange J., Macnair M.R. Evidence for a role for the cell membrane in copper tolerance of Mimulus guttatus Fisher ex DC // New Phytol. 1991. — № 119. — P. 383−388.
  251. Siedlecka A., Krupa Z. Interaction between cadmium and iron and its effects on photosynthetic capacity of primary leaves of Phaseolus vulgaris II Plant. Physiol. Biochem. 1996. -V. 35. — P. 951−957.
  252. Skorzynska E., Baszynski T. The changes in PSII complex polypeptides under cadmium treatment are they of direct or indirect nature? // Acta Physiol. Plant. -1993.-V. 15. -№ 4. — P. 263−269.
  253. Skorzynska E., Urbanik-Sypniewska Т., Russa R., Baszynski T. Galactolipase activity in Cd- treated runner bean plants// J. Plant Physiol. 1991. — V. 138. — P.454−459.
  254. Skorzynska — Polit E., Baszynski T. Photochemical activity of primary leaves in cadmium stressed {Phaseolus coccineus) depends on their growth stages // Acta Soc. Bot.Pol. 1995. — V.64. — P.273−279.
  255. St-Cyr L., Campbell P.G.C. Trance metals in submerged plants of the St. Lawrence River // Canada J. Botany. 1993. — V.72. — P.429−439.
  256. Stobart A.K., Griffiths W.T., Ameen-Bukhuri I., Sherwood R.P. The effect of Cd2+ on the biosynthesis of chlorophyll in leaves of barley // Physiol. Plant. 1985. — V. 63.-P. 293−298.
  257. Strzalka K., Widomska J. Polar carotenoids as stabilizers in lipid membrane // Materials of International Conference «Bioecological problems and means of solution». Saransk, 2008. — P. 27.
  258. Suzuki N., Koizumi N., Sano H. Screening in cadmium-responsive genes in Arabidopsis thallana II Plant. Cell Environ. 2001. — V. 24. — № 11. — P. 1177−1188.
  259. Taylor G.J. Current topics in plant biochemistry and physiology. Missuri, 1991. — 57 p.
  260. Tampo Y., Yonaha M. Effects of membrane charges and hydroperoxides on Fe (II)-supported lipid peroxidation in liposomes // Lipids. 1996. — V. 31. — № 10. — P. 1029−1038.
  261. Teige M., Huchzermeyer В., Schultz G. Inhibition of Chloroplast ATPsynthase/ATPase is a Primary Effect of Heavy Metal Toxicity in Spinach Plants //Bioch. Physiol. Pflanzen. 1990. -№ 186. — P. 165−168.
  262. Toppi L.S., Gabbrielli R. Response to cadmium in higher plants // Env. and Experimental Botany. 1999. — V.41. -P.105−130.
  263. Tukendorf A., Baszinsky T. The in vivo effect of cadmium on photochemical activities in chloroplasts of runner bean plants // Acta. Physiol. Plant. 1991. — № 13. -P. 81−87.
  264. Verkleij J.A.C., Schat H. Yeavy metal tolerance in plants: evolutionary aspects. Florida: CRC Press Inc. 1990. — 179 p.
  265. Vassilev A., Kerin V., Atanassov P. Effect of cadmium pollution of soil upon productivity and seedling qualities of two winter barley cultivars // Bulg. J. Agric. Sci. 1996. — V. 2. — P. 333−340.
  266. Vassilev A., Lordanov I. Reductive analysis of factors limiting growth of cadmium-treated plants // Bulg. J. Plant. Physiol. 1997. — V. 23. — № 3−4. — P. 114−133.
  267. Vassilev A., Lidon F., Scotty P., Da Graca M., lordanov I. Cadmium-induced changes in chloroplast lipids and photosystem activities in barley plants // Biol. Plant. -2004.-V. 48.-№ l.-P. 153−156.
  268. Vaskovsky V.E., Latyshev N.A. Modified Jungnickel s reagent for detecting phospholipids and other phosphorus compounds on thin-layer chromatograms // J. Chromatogr. 1975. — V. 115. — № 1. — P. 246−249.
  269. Vierling E. The roles of heat shock proteins in plants // Annual Review of Plant Phys. and Plant Mol. Biol. 1991. — V. 42. — P. 579−620.
  270. Wagner G J. Accumulation of cadmium in crop plants and consequences to human health//Adv. Agron. 1993. — V.51.-P. 173−212.
  271. Wise R.R., Naylor A.W. Chilling induced photoperoxidation. The peroxidative destruction of lipids during chilling injury // Plant. Physiol. 1987. — №. 83. — P. 272−277.
  272. Williams C., David D. Some effect of the distribution of cadmium and phosphate in root zone on cadmium content of plants // Austral. J. Soil. Res. 1977. — V. 15. — № 1.-P. 59−64.
  273. Williams M., Harwood J. L. Effects of carbon dioxide concentration and temperature on lipid synthesis by young wheat leaves // Phytochemistry. 1997. — V. 45.-№ 2.-P. 243−250.
  274. F.P., Schmidt R. & Heinz E. Chilling sensitivity of Arabidopsis thaliana with genetically engineered membrane lipids // EMBO Journal. 1992 —№ 11. — P. 4685−4692.
  275. Xu Y., Siegenthaler P.A. Effect of non-chilling temperatures and light intensity during growth of squash cotyledons on the composition of thylakoid membrane lipids and fatty acids // Plant Cell Physiol. 1996. — № 37. — P. 471−479.
  276. Yang X.E., Long X.X., Ye H.B., Calvert D.V., Stoffella P.J. Cadmium Tolerance and hyperaccumulation in new Zn-hyperaccumulating plant species // Plant Soil. -2004.-V. 259. P. 181−189.
  277. Yaneva I.A., Vunkova-Radeva R.V., Stefanova K.L., Tsenov A.S., Petrova T.P., Petkov G.O. Changes in lipid composition of winter wheat leaves under low temperature stress: effect of molybdenum supply // Biol. Plant. 1995. — № 37. — P. 561−566.165 К/
  278. Yu В. Cellular defenses against darrag6"from reactive oxygen species I I Physiol. Rev. 1994. — V. 74. — P. 139−162.
  279. Zwaizek J .J., Blake J J. Effects of preconditioning on electrolyte leakage and lipid composition in black spruce (Picea mariana) stresses with polyethyleneglycol // Physiol. Plant. 1990. — № 79. — P. 71−77.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!