Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Биотехнологические приемы расширения исходного материала для селекции люпина

Диссертация: Биотехнологические приемы расширения исходного материала для селекции люпина
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация результатов НИР. Основные положения диссертационной работы докладывались и обсуждались ежегодно на Ученом совете Всероссийского научно-исследовательского института люпина (1989;1995 гг.), научно-практической конференции «Ускорение научно-технического процесса в агропромышленном комплексе Брянской области» (Брянск, 1992), межрегиональной научно-практической конференции «Биологический… Читать ещё >

Биотехнологические приемы расширения исходного материала для селекции люпина (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Методы культуры ткани в селекции растений
    • 1. 2. Культивирование изолированных тканей и клеток растений. д
    • 1. 3. Методы получения новых форм растений.^ ^
      • 1. 3. 1. Мутационная изменчивость
      • 1. 3. 2. Сомаклональная изменчивость и клеточная селекция
      • 1. 3. 3. Использование гаплоидов в селекции. lg
      • 1. 3. 4. Использование методов генетической инженерии
    • 1. 4. Практическое значение клонального микроразмножения
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ. 3 РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Культура верхушечных и пазушных почек
      • 3. 1. 1. Пролиферация верхушечных и пазушных меристем.^у
      • 3. 1. 2. Оптимизация метода укоренения побегов
      • 3. 1. 3. Адаптация к естественным почвенным условиям
    • 3. 2. Культура незрелых зародышей
    • 3. 3. Трансформация люпина с помощью агробактерий. ол
  • выводы

Актуальность темы

Длительное время селекция была ориентирована на увеличение уборочного индекса — отношения полезной массы урожая к общей массе, при практически неизменной величине чистого фотосинтеза. Но при этом снижалась экологическая устойчивость сортов и агроценозов. Необходимость переориентации селекции вытекает из реалий современного сельского хозяйства:

— уменьшение генетического разнообразия и, как следствие, снижение приспособленности агроценозов, их уязвимости по отношению к абиотическим, биотическим и антропогенным стрессам;

— дефицит энергоресурсов и возрастание цены пищевой калории;

— загрязнение агроландшафта и сельскохозяйственной продукции (Жученко, 1994, 2001; Кильчевский, Хотылева, 1999; Лихачев, Артюхов, 2002).

Повышению результативности селекционного процесса должно способствовать совершенствование его технологии. В этом плане большое значение имеет качественно новое изучение генофонда культурных растений, направленное на выявление генетических источников и доноров селектируемых признаков. Для этого необходимо расширение исследований по всем направлениям, имеющим отношение к селекции, и особенно по частной генетике и биотехнологии, как в целях создания нового исходного материала, так и для выявления морфологических, физиологических, биохимических и т. д. маркеров селектируемых признаков.

В этой связи нами проведены исследования возможностей использования биотехнологических приемов в расширении генофонда исходного материала люпина — культуры, обладающей огромным биологическим и экономическим потенциалом.

Новые разработки, в которых используются культуры клеток и тканей, а также методы генной инженерии значительно сокращают затраты времени и труда на создание новых исходных форм для селекции. Техника рекомби-нантных ДНК и ее последовательное применение в селекции растений способствует преодолению барьеров, препятствующих межвидовому скрещиванию, что особенно актуально для люпина. Она позволяет увеличить генетическое разнообразие, которое существенно пострадало из-за широкого распространения ограниченного числа высокопродуктивных сортов.

Быстрое внедрение нового сорта в практику сдерживается невозможностью получения большого количества семян или посадочного материала для вегетативного размножения в течение одного сезона. Это препятствие устраняется с помощью биотехнологии, которая предлагает селекционерам эффективный и быстрый метод микроразмножения растений.

Цель работы — изучить способность разных видов люпина к клональ-ному микроразмножению и генетической трансформации.

В соответствии с целью работы были поставлены следующие задачи:

— оценить разные органы растений люпина по способности к каллусообразованию и регенерации;

— изучить морфои ризогенез в разных условиях культивирования;

— экспериментально подобрать наиболее эффективные питательные среды для клонального размножения разных видов люпина;

— установить возможность использования культуры незрелых зародышей в сохранении ценных генотипов люпина;

— получить растения-регенеранты из различных органов люпина;

— отработать методику генетической трансформации клеток люпина с помощью агробактерий.

Научная новизна. Выявлены особенности пролиферации верхушечных и пазушных почек при культивировании in vitro 16 перспективных сортов и сор-тообразцов желтого, 10 сортов узколистного, 4 сортов белого, а также многоли-стного люпина. Установлена зависимость умножения и развития побегов от количественного состава среды, содержания гормонов и режима пассирования. Определены наиболее эффективные среды для корнеобразования разных видов люпина. Предложены схемы для регенерации растений из незрелых зародышей желтого, узколистного и белого люпина. Впервые получена каллусная ткань узколистного люпина, трансформированная с помощью Agrobacterium tumefaciens (рВЬНЬЗД) и приобретшая в результате трансформации устойчивость к кана-мицину.

Практическая значимость результатов исследования. Предложены схемы регенерации растений из незрелых зародышей узколистного, желтого и белого люпина. Разработаны условия для этапа адаптации растений-регенерантов к культивированию in vivo. Доказана возможность использования методов генетической трансформации тканей люпина с помощью агробактерий при создании принципиально нового исходного материала. Часть полученных регенерантов узколистного (АТ-Д-2-Г/1) и желтого люпина (Искорость) используется в селекционных программах.

Обоснованность выводов и достоверность результатов исследований подтверждается достаточным объемом экспериментального материала, собранного и обработанного с использованием современных методов исследований и ЭВМ, получением из каллусов растений-регенерантов и генетически измененных форм, использованием их в селекционных программах.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Видовая и сортовая специфичность реакции люпина на разные питательные среды и другие условия культивирования in vitro.

2. Схемы и условия клонального микроразмножения разных видов люпина.

3. Эффективность корнеобразования и адаптации к естественным условиям культивируемых видов люпина.

4. Способность люпина к генетической трансформации с помощью Agro-bacterium tumefaciens (pBLHL3A).

Личный вклад автора. Разработка программы и методики исследований, получение, обработка, анализ и обобщение экспериментального материала, формулирование общих выводов по результатам выполненной работы, подготовка докладов и статей, оформление диссертации выполнены самостоятельно.

Апробация результатов НИР. Основные положения диссертационной работы докладывались и обсуждались ежегодно на Ученом совете Всероссийского научно-исследовательского института люпина (1989;1995 гг.), научно-практической конференции «Ускорение научно-технического процесса в агропромышленном комплексе Брянской области» (Брянск, 1992), межрегиональной научно-практической конференции «Биологический и экономический потенциал люпина и пути его реализации» (Брянск, 1997), Саввичев-ских научных чтениях (Брянск: БГСХА, 2003, 2004), на научной конференции «Вклад ученых и специалистов в национальную экономику» (Брянск: БГИТА, 2004).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 8 печатных работ.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 124 страницах машинописного текста, состоит из введения, трех глав, выводов, практических рекомендаций, списка использованных источников и приложений. Она иллюстрирована 29 таблицами, 22 рисунками, список использованных источников включает 216 наименований, в том числе 133 на иностранных языках.

ВЫВОДЫ.

1. Показана видовая, сортовая и генотипическая специфичность тканей люпина в культуре in vitro.

2. Коэффициент умножения побегов в культуре верхушечных и пазушных почек зависит от количественного и качественного состава питательной среды: на бедных по составу средах Уайта, Готре, Миллера — происходит развитие побегов без пролиферации, тогда как на средах MS и В5 на одной почке развивается до 15 побегов в течение месяца.

3. Добавление гибберреловой кислоты благоприятно сказывается на развитии побегов и дальнейшем укоренении при микроклональном размножении люпина.

4. Высокие концентрации гормонов, а также повышение содержания сахарозы и азота приводит к потере морфогенетического потенциала и появлению витрифицированных побегов.

5. Для культуры ткани люпина предпочтительным является постепенное изменение концентраций гормонов и сокращение периодичности пассирования с четырех до трех, а для белого — до двух недель.

6. Предложены схемы ведения культуры верхушечных и пазушных почек и культуры незрелых зародышей трех видов люпина в условиях in vitro.

7. Получены регенеранты люпинов желтого (Искорость) и узколистного (АТ-Д-2-Г/1), которые могут служить потенциальными источниками высокой семенной продуктивности.

8. Получены вирулентные для люпина штаммы Agrobacterium tumefaciens А281, А277, несущие плазмиду рВЬНЬЗА, кодирующую устойчивость к антибиотику канамицину и несущую ген запасного белка ячменя — гордеина.

9. Получена каллусная культура, устойчивая к канамицину в концентрации 100 мг/л, что свидетельствует об успешной генетической трансформации клеток люпина.

Практические рекомендации.

1. Рекомендуется использовать разработанные нами схемы и условия клонального микроразмножения и адаптации к естественным условиям выращивания.

2. Для гарантированного сохранения наиболее ценных генотипов люпина предлагается использовать культуру незрелых зародышей, для чего предложены схемы эффективного получения полноценных растений трех агрономически важных видов люпина — узколистного, желтого и белого.

3. В целях создания принципиально нового исходного материала для селекции люпина использовать клональное микроразмножение и генетическую трансформацию, обеспечивающие выделение и сохранение наиболее ценных форм.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.И. Биотехнология в растениеводстве. Новосибирск, 1993. -242с.
  2. Н.В. Микроклональное размножение как способ сохранения редких и исчезающих видов растений. -http://vvww.ib.komisc.rU/t/ru/ir/vt/02−56/061 .html (ЮКВ) 03.08.2002
  3. С.В., Уваров В. Н. Каллусогенез и регенерация растений в культуре пыльников гороха. Достижения науки и техники АПК. — 2004. — № 2. -С.2−3.
  4. В.В., Бабоша А. В. Использование веществ с антистрессовой активностью при оздоровлении картофеля от вирусов методом апикальной меристемы. // Биотехнология. 2002. — № 3. — С. 42−44.
  5. Я.А., Величко Н. А. Влияние элементов минерального питания на рост каллусной ткани и синтез алкалоидов в культуре ткани катаранту-са розового. //Биотехнология. 2003. — № 1. — С.53−62.
  6. A.M. Сомаклональная изменчивость и биотехнологические методы в селекции злаковых культур // Физиол. и биохим. культурн. раст. 1991. -т.23. -3. — С.222−232.
  7. Бондаренко Е. Д, Киссель Н. И. Биотехнология. Культура клеток и тка-Hefi.http://vet.kharkov.ua/journals/shbioll2002
  8. Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: Учеб. пособие. М.:ФБК ПРЕСС, 1999. — 160с.
  9. Р.Г. Использование культуры тканей растений в сельскохорзяй-ственной науке и практике // С.-х. биология. XIV. 1979. — № 3. — С.306−315.
  10. Р.Г. Клеточные технологии в сельскохозяйственной науке и практике // Основы сельскохозяйственной биотехнологии. М., 1990. — С. 154−235.
  11. Р.Г. Культура изолированных органов и тканей и физиология морфогенеза растений. -М.гНаука, 1964. -294с.
  12. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. М.:Наука, 1975.
  13. Н.А. Культивирование эфедры односемянной в условиях in vitro // Биотехнология. 2002. — № 5. — С. 59−64.
  14. М.Ветчинникова (Конина) JI.B. | 13 Kb |http://insteco.krc.karelia.ru/HP/vetchinnikova/18.09.2003.
  15. Л.И., Вечерко Н. А. Особенности биологии развития и селекции фрезии в условиях закрытого грунта Юго-Восточного Казахстана// Депонированные научные работы.- Алматы. 1996. — Вып.1. Деп. в КазгосИН-ТИ.
  16. В. Лаборатория клеточной инженерии. http://www.agrobiotech.ru/departments%20informatiol 04.03.2002 | 6 Kb.
  17. Г. А., Приходько Н. И. Использование культуры зародышей in vitro для получения межвидовых гибридов томатов // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции ВНИИ растениеводства. 1980. — Т.63, № 3. — С.64−74.
  18. А.К., Мунтян М. А., Маликова Н. И., Созинов А. А. Регенерация растений различных генотипов пшеницы Triticum aestivum L in vitroZ/Докл. АН СССР. 1984. — 278. — № 5. — С.1231−1235.
  19. X., Цоглауэр К., Гоффман Б., Пинкер И. Влияние ауксина и красного света на корнеобразование у побегов березы in vitro / Культура клеток растений и биотехнология. М.:Наука, 1986.-С. 106−110.
  20. B.C., Волощук С. И. Наследование в ряду поколений некоторых признаков в расщепляющихся гибридных популяциях озимой пшеницы при мутагенезе in vitro // Докл. РАСХН. 2002. — № 4. — С.9−13.
  21. Е.А., Долгих Ю. И., Бирюков В. В. Отбор солеустойчивых газонных трав с помощью методов биотехнологии // Биотехнология.- 2003. -№ 5. -С. 11−15.
  22. Ю.Ю., Сытник, К.М. Клеточная инженерия растений. Киев: На-ук.думка, 1984.-345с.
  23. А.Э., Погребняк Н. Я., Банникова М. А. Особенности культивирования in vitro и трансформации сахарной свеклы //Физиол. и биохим. культ, раст. 2002. — 34. — № 5. — С. 394−405.
  24. Р., Ботстайн Д., Рот Дж. Методы генетической инженерии. Генетика бактерий. -М.:Мир, 1984. 176с.
  25. М.И. Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур. Авто-реф.дис. канд. с.-х. наук. Орел, 2003. — 26с.
  26. М.И. Клональное микроразмножение черной и красной смородины // Селекция и сортоизучение черной смородины. Мичуринск, 1988.- С.141−143.
  27. М.И., Джигадло Е. Н. Размножение вишни методом верхушечных меристем // Улучшение сортимента и прогрессивные приемы возделывания плодовых и ягодных культур. -Приокское кн. изд-во, Тула, 1988.- С.65−68.
  28. Р. А. Биотехнология растений: культура клеток. -М.:Агропромиздат, 1989.-280с.
  29. .А. Методика полевого опыта /с основами статистической обработки результатов исследований/: Учебник для студентов сельскохозяйственных вузов по агрономическим специальностям. Изд. 4-е перераб. и доп.-М.:Колос, 1979.-416с.
  30. О.И. Гормоны и размножение клеток. -М.:Наука, 1965. 165с.
  31. А.А. Адаптивная система селекции растений (эколого-генетическая основа). В двух томах. М.: Изд-во РУДН, 2001. — 1490с.
  32. Е.В. ВНИИС им. И. В. Мичурина история и перспективы http://urojai.nm.ru/arh/a-38.htmll 26.09.2003 | 63 Kb
  33. М.М. Влияние экстрактов родиолы розовой на развитие экс-плантов родиолы розовой и иремельской в условиях in vitro// Биотехнология.-2002. № 6.-С. 52−56.
  34. Е.А. Морфофизиологические особенности пробирочных растений, каллусной ткани и суспензионной культуры картофеля, обусловленные действием экзометабиолитов гриба Rhizoctonia solani // Биотехнология. 2003. — № 3. — С. 36−41.
  35. Е.А. Получение растений-регенерантов после клеточной селекции моркови на устойчивость к патогенному грибу Alternaria radicina М., Dr. et Е. // Биотехнология. 2003. — № 2. — С. 65−68.
  36. Е.А., Родин Н. В. Биотехнологические методы при культивировании in vitro некоторых древесных и кустарниковых пород.:Учеб. пос. -М.: МГУЛ, 2001.- 162с.
  37. Ф.Л., Сорнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев, 1980.
  38. Н.В., Аветисов В. А. Клональное размножение растений в культуре ткани: Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1980. -С. 116−121.
  39. А.В., Хотылева JI.B. Экологическая селекция растений. -Минск: «Тэхналопя», 1997. 372с.
  40. .Н. Изучение влияния Р-индолилуксусной кислоты на синтез ДНК в проростках ясменя методом радиоавтографии и цитофотомет-рии//Половой процесс и эмбриогенез растений: Тез. докл. всесоюз. симп. -М., 1973. С.21−22.
  41. Л.Г., Стрибная JI.A. Регенерация растений из листовых эксплан-тов пшеницы. Физиология растений. — 2003. — 50. — № 3. — С.410−414.
  42. М.М., Голышкин JI.B., Нагорнюк М. В. Микроразмножение люпина в культуре in vitro: Тез.докл. Междунар. конф.:Биология культи-вир. клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. -ч.2.
  43. В.И., Яговенко Т. В. Изучение наследуемых изменений белков люпина желтого и узколистного в культуре тканей in vitro //Докл. Росс. Акад.с.-х. наук. 1997. — № 6. — С. 10−12
  44. Э.В., Хотылева JI.B, Анохина В. А. Культура тканей и микро-клональное размножение люпина желтого: Тез.докл. Междунар. конф. «Биология культивир. клеток и биотехнология. Новосибирск, 198 8. -ч.1, С.156−157.
  45. В.Ф., Алпатова JI.K. Роль фитогормонов в изменчивости числа хромосом в культурах тканей Haplopappus gracilis // Докл. АН СССР. -1979. 245. — № 4. — С. 967−970.
  46. Г. А., Панфиткина Т. И. Применение искусственной культуры зародышей при отдаленной гибридизации моравской рябины // Бюлл. научн. информ. центр, ген. лаб. им. Мичурина. 1976. — № 23. — С.3−6.
  47. Е.Н., 2003: http://hbc.bas-net.by/cbg/strukture.php
  48. Кучеренко J1.А. Подходы к разработке технологии массовой регенерации растений in vitro: Биология культивируемых клеток и биотехнология. -М.: Наука, 1991. С.232−235.
  49. Н.В. Выделение и культивирование протопластов пяти видов семейства бобовых // Физ. раст. 1989. — 36. — № 4. с. 821−824.
  50. .С., Артюхов А. И. Роль сорта и семян в стабилизации региональных экосистем. Брянск: Изд-во БГСХА, 2002. — 46с.
  51. Л.А. Биотехнология высших растений. С-Пб.:Изд-во С-Петерб.ун-та, 2003. — 228с.
  52. Л.А., Забелина Е. К. Каллусо- и побегообразование у различных форм гороха Pisum sativum в условиях in vitro //Генетика. — 1988. — XXIV. 9. — С.1632−1640.
  53. О.С., Буторина А. К. Генетическая инженерия лесных древесных растений //Генетика. 2003. — т.39. — № 3. — С. 309−317.
  54. Н.Н. Регуляторы роста. М.:Наука, 1987, — 728с.
  55. И.Г., Леонова И. Н., Салина Е. А., Чураев Р. Н., Мардамшин А. Г. Влияние генома и типа специализации тканей экспланта на способность каллусной ткани борца северного к длительному культивированию in vitro // Биотехнология. 2002. — № 2. — С. 37−41.
  56. В.К., Вечерко Н. А., 2003. http://ncbrk.by.ru/n2/Art2l l. htm
  57. Л.А., Тимофеева М. Я. Молекулярная биология процессов развития. М.:Наука, 1977.
  58. JI.A., Исаева НА. Каллусообразование и особенности органогенеза в культуре тканей межвидовых и межродовых гибридов ячменя // Физиол. раст. 1982. — Т.29. — № 3. — С.557−563.
  59. .П. Практикум по биохимии растений.-М.гКолос, 1985 -417с.
  60. Е.Б., Золова О. Э. Бурьянова Н.Я., Борисова В.Н., В.А.Быков, Бурьянов Я. И. Анализ трансгенных растений табака, содержащих ген поверхностного антигена вируса гепатита В //Генетика. — 2003. т.39. — № 1. — С.51−56.
  61. Л.Е. Новая селективная среда с ионами бария альтернативная система для отбора солеустойчивых клеточных линий //Биотехнология. -2002.- № 2.-С. 47−51.
  62. В.А. Биотехнология растений. Киев: Наукова Думка, 1990.
  63. Д.Н. Особенности клонального микроразмножения и ускорение селекции новых ремонтантных форм малины. Автореф. дис. канд.с.-х.наук. Брянск, 2004. — 20с.
  64. A.M. Рост и метаболизм корней в стерильной культуре. -М.:Наука, 1970.-252с.
  65. Д.У. Статистические методы в применении к исследованиям в сельском хозяйстве и биологии. Перев. с англ. В. В. Перегудова. -М.:Сельхозгиз, 1961.-502с.
  66. С.Е., Зайцева Г. В., Туркин В. В., Козловцева Л. В., Фетисова Е. М., Белоусова И. М., Украинцев А. Д. Влияние условий культивирования клеток воробейника краснокорневого с метилжасмонатом на выход шиконина // Биотехнология. 2003. — № 4. — С. 63−69.
  67. М.Ф., Бутенко Р. Г., Моисеева И. Е. Применение культуры ткани для преодоления барьера несовместимости видов и бесплодия межвидовых гибридов //Генетика. 1972. — Т.8. — № 1. — С. 38−45.
  68. И.Б., Тимии Н. И., Юрьева Н. А., Дмитриева Н. Н. Применение метода изолированных зародышей в межвидовой гибридизации лука // Тр. ВНИИ сел. и семен. овощ, культур. —1982. Т. 15. — С. 57−65.
  69. О.Н., Бузовкина И. С. Лутова Л.А. Возможности агробактери-альной трансформации в генной инженерии растений //Вестн. С.-Петербург.ун-та, Сер.З. 1999. — № 4. — С. 72−81.
  70. Харченко П.Н. http:// www.agrobiotech.ru /departments%20information /kharchenko.htm (6КБ) 04.03.2002
  71. Ю.В. Проблемы генетической трансформации растений. Методические подходы (обзор). Сельскохозяйственная биология.- 2004.- № I.- С.26−40/
  72. М.И., Курбанова И. В., Соловьева Г. К. Агробактериальная трансформация неповрежденных растений //Физиол. раст. 2002. — 49. № 6. -С.898−903.
  73. Н.А., Тюкавин Г. Б. Особенности мофрогенетических изменений в культивируемых in vitro пыльниках моркови // Биотехнология, 2002. -№ 5.-С. 65−69.
  74. Г. Н., Сирант JI.B., Труханов В. А. Прямая регенерация растений из мезофильных клеток растения. // Цит. и генет., 1989. т.23. — № 1. -С.68−69
  75. Т.В. Расширение спектра исходного материала для селекции люпина с использованием методов культуры тканей. Авто-реф.дис.канд.биол. наук. -М., 1998. 18с.
  76. Abe Т., Futsahara Y. Genotipic variability for callus formation and plant regeneration in rice (Oryza sativa L.)//Theor. and Appl. Genet. 1986. -V.72. -N.l. -P.3−10.
  77. Ahn B.J., Huang F.H., King J.W. Regeneration of bermudagrass cultivars and evidens of somatic embriogenesis// Crop Sci. 1987. — 27. — N3. — P.594−597.
  78. Ahn B.J., Huang F.H., King J.W. Regeneration of bermudagrass cultivars and evidence of somatic embryogenesis// Crop Sci., 1987,27. P.594−597
  79. A1-Atabee J.S., Power J.B. Control of vitrification and in vitro flowering of plantlets regenerated from callus of Dimorphotheca aurantiaca (Composita). //J. PI ant Physiol. 1990. — 136, 6. — P. 705 — 709.
  80. Ammirato P.V. Embryogenesis // Handbook of plant cell culture. New York, London: Macmillan, 1983,-V.l.-P. 82−123.
  81. Aparecida F.J., Cameiro V.M.L., Geraldi J.O., Appozzato-da-Gloria B. Anatomical study of somatic embryogenesis in Glycine max (L) Merric // Braz. Arch.Biol. and Technol. 2002. — 45. — № 3. — C. 277 — 286.
  82. Arcioni S., Pezzotti M., Damiani F. In vitro selection of alfalfa plants resistant to Fusarim oxysporum f. sp. medicaginis // Theor.Appl.Genet. 1987. — 74. -P.700−705.
  83. Bajaj Y.P.S., Reinert J. and Heberle E. Factors enhancing in vitro production of haploid plants in anthers and isolated microspores. In R.J.Gautheret ed., La culture des tissus et des cellules des vegetaux, 47−58, Masson. Paris and New York., 1979.
  84. Baruah A., Bordoloi D.N. High frequency plant regeneration of Cymbopogon martinii (Roxb.) Wats by somatic embryogenesis and organogenesis. //Plant Cell Rep.- 1989.- 8.-483−485
  85. Bayer E.V., Barra M. Interspecific crossing L. polyphyllus x L. mutabilis: Proc. 6th Int. Lupin Conf., 1990, Chile. 138
  86. Benvenuto E. Plante geneticamente modificate: «Novel products» al servizio della medicina // Rend. Acad, naz.sci. XL Man.Sci.fis.e.nator. 2001. — 23, № 1. — p.2. — P.559−562.
  87. Bhansali R.R. Somatic embryogenesis and regeneration of plantlets in pomegranate// Annals of Botany. 1990. — 66. — P.249−253.
  88. Bhansali R.R., Driver J.A., Durzan D.J. Rapid multiplication of adventitious somatic embryos in peach and nectarin by secondary embryogenesis // Plant Cell Rep. 1990. — 9. — P.280−284
  89. Birnboim H.C., Doly J. Nucleic Acids Res., 1979. 7. — P. 1513. Цит. по кн.: п.р.Харди К. Плазмиды. Методы. -М.:Мир, 1990.-С. 14.
  90. Catlin D.W. The effect of antibiotics on the inhibition of callus induction and plant regeneration from cotyledons of sugarbeet (Beta vulgaris L.) // Plant Cell Rep. 1990. — 9. — C. 285 — 288.
  91. Charest P.J., Halbrook L.A. et.al. Agrobacterium-mediated transformation of thin cell laier from Brassica napus L. //Theor.and Appl.Genet. 1988. — 75. — 3. — P.438−446.
  92. H.K., Мок M.C., Mok D.W.S. Somatic embryogenesis and shoot organogenesis from intershecific hibrids//Plant Sci. 1987. -48. — P. 181−188.
  93. Chen T.H.H., Marowitch J. Screening of Medicago falcata germplasm for in vitro regeneration // J. Plant Physiol. 1987. — 128. — N3. — P.271−277
  94. Chuang M.J., Chang W.C. Embryoid formation and plant regeneration in callus cultures derived from vegetative tissues of Disosma pleintha (Mance) Woodson // J. Plant Physiol.- 1987. 128. — N3. — P.279−283
  95. Chung W.W. A novel approach for efficient plant regeneration from tissue culture of Cassava// Plant Cell Rep. 1990. — 8. — 11.-P. 639−642.
  96. Cirinova В., Sladky Z. A study of the regeneration capacity of oak {Quercus robur L.) II Scr.fac.sci.natur.UJEP brun. 1987.- 17.- N3−4. — C. 103−110
  97. Cousins Y.L., Lyon B.R., Liewellin D.J. Transformation of an cotton culti-var: prospects for cotton improvement through genetic ingeneering //Aust.J.Plant Physiol. -1991. 18. — P.481 -494.
  98. Doley W.P., Saunders J.W. Hormone-free medium will support callus production and subsequent shoot regeneration from whole plant leaf explants in some sugarbeet (Beta vulgaris L.) populations // Plant Cell Rep., 1989. 8. -№ 4. -P. 222−225.
  99. Duak M. and Brown D.C.W. Pattern of direct and indirect embryogenesis from mesophyll protoplsts of Medicago sativa // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1987. — 9. — P.121−130.
  100. Durbin R.D. Nicotiana procedures for experimental use, USDH, SEA.// Technical Bulletin, 1979, N.1586.- P. 1358−1359.
  101. Durzan D.J., Gupta P.K. Biotechnology of somatic embryogenesis and plantlet regeneration in loblolly pine // Biotechnology. 1987. — N5. — P.147−151.
  102. Ellis D.D., Lazaroff W.R., Roberts D.R., Flinn B.S., Webb D. T The effect of antibiotics on elongation and and bud formation from embryogenic tissue of Picea glauca // Can.J.Forest.res. 1989.- 19. — № 19. — P. 1343−1346.
  103. Evans D.A., Sharp W.R., Flick C.E. Ctll culture methods for crop improvement // Handbook of plant cell culture. New York, 1981.
  104. Finer J.J., McMullen M.D. Transformation of cotton (Gossipium hirsutum L.) via particle bombardment // Plant Cell Rep. 1990. — 8.-P.586−589.
  105. Fitter M.S., Krikorian A.D. Plant protoplasts. Calbiochem-Boehring. -Hoechst, 1980.
  106. Franks Т., Birch R.G. Gene transfer into intact sugarcane cells using micro-projectile bombardment // Aust.J.Plant Physiol. 1991. — 18. — P. 471−480.
  107. Freytag A.H., Anand S.C., Rao-Arelli A.P., Owens L.D. An improved medium for adventitious shoot formation and callus induction in Beta vulgaris L. in vitro // Plant Cell Rep. 1988. — 7. — 30−34.
  108. Fujii J.A.A., Slade D.T., Redenbaugh K., Walker K.A. Artificial seeds for plant propagation. //Tibtech., 1987. 5. -P.335−339.
  109. Fujii J.A.A., Slade D.T., Redenbaugh K., Walker K.A. Artificial seeds for plant propagation// Tibtech. 1987. — 5. -P.335−339.
  110. Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K. Nutrient requirement of suspension cultures of sybean root cells// Experimental Cell Resources. 1968. — 50. — P. 151−158.
  111. Gamborg O.L., Shiluk J.P., Shamin E.A. Plant tissue culture ethods and application in Agriculture. — Academic Press. New York, 1981.
  112. Gladstones J.S. More important problems in Lupinus angustifolius breeding: Proc. of 5th Int. Lupin conf., July, 5−8, 1988, Poznan, Poland. P. 15−24.
  113. Gladstones L.S. Prospects for interspecific hybridization of L. atlanticus with L. cosentini // Theor. and Appl. Genet. 1985. — N.2. — P.71.
  114. Gosch-Wackerle G., Avivi L., Galun E. Induction, culture and differentiation of callus from immature rachises, seeds and embryos of Triticum// Z.Pflanzenphysiol. 1979. — 91. — N.3. — P.267−278.
  115. Gould J., Devey M., Hasegava O., Ulian E.C., Peterson G., Smith R. Transformation of Zea mays L. using Agrobacterium tumefaciens and the shoot apex //Plant Physiol. 1991. — 95. — P.426−434.
  116. Grimes H.G., Hodges Т.К. The inorganic N03*:NH4+ ratio influences plant regeneration and auxin sensitivity in primary callus derived from immature embryos of Indica rice (Orisa sativa L.)// J. Plant Physiol. 1990. — 136. — P.362−367.
  117. Haccius D. Questions of unicellular origin of non-zigotic embryos in callus cultures// Phytomorfology. 1978. — 28. — 78−81.
  118. Hammatt N., Davey M.R. Somatic embryogenesis and plant regeneration from cultured zygotic embryos of soybean (Glycine max L. Merr.). J. Plant Physiol.- 1987.- 128.- N3.-219−226.
  119. Hammatt N., Davey M.R. Somatic embryogenesis and plant regeneration from cultured zygotic embryos of soybean (Glycine max L. Merr.) // J. Plant Physiol. 1987.- 128.-N3.-C.219−226.
  120. Hanischten C.Ch.H. Regeneration and characterization of plants transformed Rhi-plasmids //Theor. and Applied Genetics, 1988. 75. — 3. — P. 452−460.
  121. Holdgate D.P. Propagation of ornamentals by tissue culture // Appllied and Fundamental Aspects of plant cell, tissue and organ culture. Ed. J. Reinhert and J.P.S.Bojaj, Berlin, Heidelberg and New York: Springer-Ver lag. -1975.
  122. Howell E.C., Stewart C.E., Evans P.K. Tissue culture and plant regentration of Indigofera potaninii // J. Plant Physiol. 1987. — 128. — N3. — P. 259−269.
  123. Hu C.U. and Wang P.J. Handbook of plant cell culture, V.l. New York. 1983.
  124. Jansen M.A.K., Booij H., Schel J.H.N., de Vries S. C. Calcium increases the yield of somatic embryos in carrot embryogenic suspension cultures // Plant Cell Rep., 1990. 9. — P.221−223.
  125. Johansson L.B., Calleberg E., Gedin A. Correlations between activated charcoal, Fe-EDTA and other organic media ingredients in cultured anthers of Anemone canadiensis // Physiol.Plant., 1990. 80. — P.243−249.
  126. Juned S.A., Jackson M.T., Ford-Lloid B.V. Genetic variation in potato cv. Record: evidence from in vitro regeneration ability //Ann. of Bot. 1991.-67. -P. 199−203
  127. Kao H.M., Keller W.A., Gleddie S., Brown G.G. Efficient plant regeneration from hypocotyl protoplasts of broccoli (Brassica oleracea L. ssp. italica Plenck) // Plant Cell Reports 1990.-9.-P. 311−315.
  128. Kim Joo Hang, La Motte C.E., Hack E. Plant regeneration in vitro from primary leaf nodes of soybean (Glycine max.) seedlings // J. Plant Physiol. 1990. — 136,6.-P.664−669.
  129. Kyte L. Plant from test tubes. N.Y., 1988.-285p.
  130. Laemmli F. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage. V.4.//Nature. 1970. — 227. — P. 680−685.
  131. Lag Sanchez-Gras M.S., Segura J. In vitro propagation of Sideritis angusti-folia // J. Plant Physiol.- 1987. 130. — N1. — P.93−99.
  132. Lulsdorf M.M., Rempel H., Jackson J.A., Baliski D.S., Hobbs S.L.A. Optimizing the production of transformed pea (Pisum sativum L.), callus using disarmed Agrobacterium tumefaciens strains // Plant Cell Rep.-1991. 9. -P.479−483.
  133. M.A.Rahim, P.D.Scalligari. Multiple shoot regeneration in Lupinus mutabi-lis sweet: Proc. 8th International Lupin Conference, California, 1996. — P. 354.
  134. Maheswaran G. and Williams E.G. Direct secondary somatic embryogenesis from immature sexual embryos of Trifolium repens cultured in vitro // Annals of Botany. 1986. — 57. — P.109−117.
  135. Makunda R., Kester D.E. Micropropagation of cherry rootstocks: II. Invigo-ration and enhanced rooting of «46−1 Mazzard» by co-culture with «Colt» // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1988.- 113(1). — P.150−159
  136. Matthiss A.G., Torrey J.C. Factors limiting the stimulation of polyploid mitosis in intact pea roots and excised root segments// Bot.Gaz. 1969. -130. -P.62−69.
  137. McLaughlin J., Karnovsky D.F. Controlling vitrification in Larix decidua via culture media manipulation // Can. J. Forest Res. 1989. -19. — N10. -P.1334−1337.
  138. McWilliam A.A., Smith S.M. and Street H.E. The origin and developments of embryoids in suspension cultures of carrot (Daucus carota) // Annals of Botany. 1974 — 38. — P.243−250.
  139. Meijer E.J.M., Brown D.C.W. A novel system for rapid high frequency somatic embryogenesis in Medicago falcata// Physiol.Plant. 1987. — 69. — P. 591−596
  140. Miller C., Skoog F., Saltra M., Strong F. Kinetin, a cell division factor from deoxyribonucleic acid // J. Amer. Chem. Soc. 1955. — V.77. — N. 10. — P. 13 921 399.
  141. Miller R.M., Kaul V., Hutchinson J.F., Richards D. Adventitious Shoot regeneration in carnalion (Dianthus caryophyllus) from axillary bud explants // Ann. ofBot. 1991. — 67. -P.35−42.
  142. Murashige T. Manipulation of organ culture in plant tissue cultures // Botanical Bull.Acad.Sinica. -1977. -N.18.-P.1−24.
  143. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures // Ann.Rev.Plant Physiol.-1974.-25.-P. 135−166
  144. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum 1962. — 15.-473−479.
  145. Nadolska-Orczyk A. Somatic embryogenesis of agriculturally important lupin species (Lupinus angustifolius, L. albus, L. mutabilis)// Plant Cell Tissue and Organ Culture -1992.-28. P. 19−25.
  146. Nadolska-Orczyk A., Orczyk W. Study of the factors influencing Agrobacte-rium -mediated transformation of pea (Pisum sativum L.) // Mol. Breed. -2000.-6. № 2.-P.l85−194.
  147. Ohta Y. High-efficiency genetic transformation of maize by a mixture of pollen and exogenous DNA // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1986. — V.83. -715−719.
  148. Ormerad A., Kaligari P.D.S. Receiving of the embryos from gaploids of lupine albus//Proc. 8th Int. Lupin Conf., 1993. P.258.
  149. Orshinsky B.R., McGregor L.J., JohnsonG.I.E., Hucl P., Kartha K.K. Improved embryoid induction and green shoot regeneration from wheat anther cultured in medium with maltose // Plant Cell Reports. 1990. — N.9. — 365 — 369.
  150. Parrot W.A., Dryden G., Vogt S., Hildebrandt D., Collins G.B., Williams E.G. Optimization of somatic embryogenesis and embryo germination in soy-bean//In vitro cell developm.Biol. 1988.-24. — 8. — P.817−820.
  151. Perez-Bermudes P., Falko J.M., Segura J. Morphogenesis in root tip meris-tem cultures of Digitalis obscura L. // J. Plant Physiol. -1987. 130. -N.l. — P. 87−91.
  152. Plarre W. Mutacion selection // Proc. of 6th Int. Lupin Conf., Chile, 1990-P.340−345.
  153. Podima E., Rybczynski J.J. Somatic embryogenesis in immature embryo culture of Lupinus albus // 6th Int. Lupin Conf., Chile, 1990- P. 143
  154. Power C.J. Organogenesis from Helianthus annuus ibreds and hybrids from the cotyledons of zygotic embryos // Amer.J.Bot. 1987. — 74. — P. 497−503
  155. Prado E. Introduction of somatic embryo development //Plant Sci. Lett.-1990.-67.- 1.-P.73−82.
  156. Querci M., Lupotto E. Effect of hormonal balance during leaf-disc infection of Nicotiana plumbaginifolia with Agrobacterium tumefaciens nopaline strain C58 // G.Bot.Ital. 1988. — 122 .- № 3−4. — C.237−247.
  157. Rahim M.A., Scalligari P.D. Multiple shoot regeneration in Lupinus mutabi-lis sweet. // Proc. of 8th Int. Lupin Conf., California, 1996. — P.26.
  158. Reisch B. Genetic variability in regenerated plants//Handbook of plant cell culture. New York, London: Macmillan, 1983. — V. 1. -P.748−769.
  159. Reustle Gotz. Okologischer mit Gentechnik? //Dtsch. Weinmag. 2002. -№ 11. — C.32−34.
  160. Rollier M. Introduction des biotechnologies dans le selection// C.r.Acad.agr.Fr. 1988. — 74. — 7. — P.29−32.
  161. Rybczynski J.J., Podyma E. Preliminary studies of plant regeneration via somatic embryogenesis induced on immature cotyledons of white lupin (Luri-nus albus L.) II Genetica Polonica. 1993. — 34. — 237−247.
  162. Sator C. Studies on shoot regeneration of lupins (Lupinus spp.) //Plant Cell Rep. 1985. -4. — N3.-P.126−128
  163. Saxena P.K., Gill R., Rashid A. Optimal conditions for plant regeneration from mesophyll protoplasts of eggplant (Solanum melongena L.) // Sci.hort. (Neth).- 1987.-N3−4.- P. 185−191.
  164. Schafer-Menuhr A. Embryo culture of Lupin species // Proc. of 4th Int. Lupin Conf., W.Australia. 1986. — P.26.
  165. Schafer-Menuhr A. A modern breeding methods // Proc. of 6th Int. Lupin conf., Chile, 1990. P. 335−336.
  166. Schafer-Menuhr A., Busman A., Czerwinski E. Embryo rescue of interspecific hybrids // Proc. of 5lh Int. Lupin conf., July, 5−8, 1988, Poznan, Poland. P. 424−428.
  167. Sears C.G., Decard E.L. Tissue culture variability in wheat: callus induction and plant regeneration//Crop Sci. 1982.-22. — P.546−550.
  168. Sellars R.M., Southward G.M., Phillips G.C. Adventitious Somatic Em-bruogenesis from cultured immature zygotic embryos of Peanut and Soybean // Crop Sci. 1990.-90.-408−414.
  169. Selva E., Stouffs В., Briquet H. In vitro propagation of Vicia faba L. by mi* crocutting and multiple shoot induction. // Plant Cell, Tissue and Organ Cult.1989.- 18.-2.-P. 167−179.
  170. Sharma H.S., Gill B.S. Effect of embryo age and culture media on plant growth and vernalization responce in Winter wheat //Euphytica. 1982. -31.-P. 629−634.
  171. Sheerman S. A rapid transformation method for Solanum //Plant Cell Rep.- 1988.-7.- 1.-P.13−17.
  172. R.U., Hildebrandt A.C. / Medium and techniques for induction and growth of monocotiledonous and dicotiledonous plant cell cultures // Can.J.Bot.- 1972.-50.- P. 199−204.
  173. Singh B.D. Variation in chromosome number and structure in plant cells during in vitro culture // Plant Tissue and Cell culture Application to crop im-provement:Proc.Int.Symp.01omoue, Czechoslovakia, Sept. 24−29, 1984. Prague, 1984.-P. 305−314.
  174. Smith D.L. Krikorian A.D. Release of somatic embryogenic potential from excised zygotic embryos of carrot and maintenance of proembryonic cultures in hormone-free medium //Amer.J.Bot. -1989. 76. — 12. — P. 1832−1843
  175. Smith D.L., Krikorian A.D. Growth and maintenance of an embryogenic cell culture of Daylily (Hemerocallus) on gormon free medium // Ann.Bot. -1991. -67. P.443−449
  176. Smith R.G. Inorganic carbon sources: effect of culture media on plant growth // Crop Sci. 1991. — 98. — P. 114−119.
  177. Sroga G.E. Callus and suspension culture of Lupinus angustifolius cv. Tur-cus//Plant Sci.Letttrs. 1983.-V.32, N.l.-P. 183−192.
  178. Sroga G.E. Studies on morfogenetic ability of callus cultures of Lupinus spp. / 4th Intern. Lupin conf., Geraldton, Western Australia, 15−22 Aug., 1986
  179. Sroga G.E. Plant regenereration of two Lupinus spp. from callus cultures via organogenesis //Plant Sci. 1987. — 5. — V.l. -245−249
  180. Tomes Dwight Т., Weissinger Arthur, Sanford John C., Klein Theodore M. Stable transformation of plant cells: Пат: 6 258 999, США, МПК7 A01H 5/00, A01H 1/00 / Pioneer Hi-Bred International Inc/ N 08/442 522 Заявл. 16.05.95. Опубл. 10.07.01. НПК 800/300.1
  181. Stamp J.A., Henshaw G.G. Somatic embryogenesis from clonal leaf tissues of cassava //Ann. Bot. (USA), 1987. 59. — N4. — P. 445−450
  182. Sticklen M.B., Rumpho M.E., Kenedy R.A. Somatic embryogenesis in rice seedlings // J. Plant Physiol. 1987. — 83. — N4. -P. 75.
  183. Stiekema Introduction of forein genes into potato cultivar //Plant Cell Rep., 1988. — 7.-№ 1. P. 47−51.
  184. Tisserat В., Esan E.B., Murashige T. Somatic embryogenesis in angiosperms // Horticultural Rev. 1977. — N. 1. — P. 1 -78.
  185. Tulecke W. Somatic embryogenesis in woody perennails. In Cell and Tissue culture in Forestry. Vol.2, eds. J.M.Bonga and D. J Durzan, Martinus Nijhoff Publisher, 1987- Boston, pp. 61−91
  186. Vincent J.M. A manual for the practical study of root nodule bacteria. -Blackwell scientific publications, Oxford & Edinburg, England, 1970.
  187. Von Aderkas P., Bonga J.M. Formation of haploid embryoids of Larix de-cidua: early embryogenesis // Amer.J.Bot. 1988. — v.75. — N.5. — 690−700.
  188. Vuillaum E., Hoff T. Development in vitro d’embryosis immatures de Lupinus albus L. et de Lupinus mutabilis Sweet par culture de gouses, d’ovules on d’enbryons isoles//Agronomie. 1986. — 6. — № 10. — P.925 — 930
  189. Wan G., Sorensen E.L., Liang G.H. The effect of kinetin on callus characters in alfalfa (Medicago sativa L.)//Euphytica. 1988. — 39. — № 3. — P.249−254.
  190. Wang L., Huang В., He M., Hao S. Somatic embryogenesis and its hormo-w nal regulation in tissue cultures of Freesia refracta // Ann. of Bot., 1990. 651. C.271−276.
  191. Wang L., Huang В., He M., Hao S. Somatic embryogenesis and its hormonal regulation in tissue cultures of Freesia refracta // Ann. of Bot., 1990. 65 -C.271−276.
  192. Weed R., Koorneef M., Zabel P. A simple, nondestructive spraying assay for the detection of an active kanamycin resistance gene in transgenic tomato plants //Theor. and Appl. Genet. 1989. — 78,№ 2. — С. 169−172.
  193. Wenzel G., Bolik M., Deimling S. Breeding for disease resistant crop plants by cell culture techniques // Plant tissue and cell culture. New York: A.R.Liss, 1987. — P.343−358.
  194. White Ph.R. Plant Tissue cultures: a preliminary report of result obtained in the culturing of certain plant meristems // Arch.exptl.Zellforsch. 1932-Bd.l2-P.602−620.
  195. Wright M.S. Plant regeneration by organogenesis in Glycine max.//Plant Cell Rep., 1986.-5.- 150−154.
  196. Yang Y.M., He D.G., Scott R.J. Establishment of embryogenic suspension cultures of wheat by continuous callus selection. Aust.J.Plant Physiol., 1991. — 18.-445−452.
  197. Yeoman M.M. Plant cell culture technology // Botanical monographs. Planttissue culture. Blackwell Sci.-Publ.-1986.-V.23.1.-P.373.
  198. Zgagacz S.E., Rybcznski J.J. Assestment of present status of in vitro culture of lupin. (Rewies). In: Proceedings of 8th International Lupin Conference, 11−16,May, 1996.
  199. Zgagacz S.E., Rybcznski J.J. Regeneration potential of lupins in in vitro culture conditions. (Rewies). In: Proceedings of First All-Poland Lupin Conference, Poznan 29−30,11,1993, 39−53.
  200. Zhan X., Jones D.A., Kerr A. Regeneration of flax plants transformed by
  201. Agrobacterium rhizogenes // Plant Mol.Biol., 1988. 11,5. -P.551−559.
  202. Zhou H., Konzak S.F. Improvement of anther culture methods for haploid production in wheat //Crop Sci. 1989. — 29. — N3. — P. 817 — 821.
  203. Ziauddin A., Simion E., Kasha K.J. Improwed plant regeneration from shed microspore culture in barley (Hordeum vulgare L. cv. igr)//Plant Cell Rep. -1990. 9. — N.2. — P.69−72.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!