Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Молекулярно-цитогенетическая характеристика прицентромерного гетерохроматина у близкородственных видов подгруппы Melanogaster рода Drosophila (Diptera)

Диссертация: Молекулярно-цитогенетическая характеристика прицентромерного гетерохроматина у близкородственных видов подгруппы Melanogaster рода Drosophila (Diptera)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

К настоящему времени накоплен огромный фактический, материал, касающийся структуры, локализации, количества гетерохроматииа у самых различных видов животных и растений. Появляется или уже функционирует множество проектов по определению нуклеотидной последовательности ДНК гетерохроматииамногих видов, от инфузорий до человека (Haupt et al., 2001; Carvalho, 2002; Smith et al-, 2007). Однако… Читать ещё >

Молекулярно-цитогенетическая характеристика прицентромерного гетерохроматина у близкородственных видов подгруппы Melanogaster рода Drosophila (Diptera) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Оогенез Вгозоркйа и политенные хромосомы трофоцитов яичников
    • 1. 2. Межвидовые различия взаимного расположения политенных хромосом трофоцитов яичников в подгруппе melanogaster
    • 1. 3. Гетерохроматин
      • 1. 3. 1. Исторический очерк изучения гетерохроматина
      • 1. 3. 2. Цитологические характеристики гетерохроматина и его функции
      • 1. 3. 3. Гетерохроматин политенных хромосом ОгозоркИа
      • 1. 3. 4. Молекулярно-генетическое строение гетерохроматина
      • 1. 3. 5. Роль гетерохроматина в образовании пространственной структуры ядра
    • 1. 4. Характеристика повторенных последовательностей ДНК
  • ПгозоркИа
    • 1. 4. 1. Тандемноорганизованные повторенные последовательности
    • 1. 4. 2. Диспергированные повторяющиеся последовательности
      • 1. 4. 2. 1. Классы и семейства МГЭ ОгояоркПа
      • 1. 4. 2. 2. Распределение МГЭ у, А melanogaster и других видов подгруппы melanogaster
    • 1. 5. Гены, расположенные в районах гетерохроматина
    • 1. 6. Эволюционное изменение размера генома в подгруппе melanogaster
      • 1. 6. 1. Тенденции и механизмы изменения размера генома эукариот
      • 1. 6. 2. Сценарии изменения размера генома в подгруппе melanogaster
    • 1. 7. Филогения подгруппы melanogaster
      • 1. 7. 1. Существующие схемы филогении подгруппы melanogaster
      • 1. 7. 2. Схема филогении подгруппы melanogaster на основе теории системных мутаций
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объекты исследования'
    • 2. 2. Приготовление препаратов политенных хромосом
    • 2. 3. Микродиссекция хромоцентра D. огепа и амплификация ДНК хромоцентра
    • 2. 4. Флуоресцентная in situ гибридизация
    • 2. 5. Клонирование фрагментов ДНК-минибиблиотеки
    • 2. 6. Секвенирование и анализ in si lie о последовательностей минибиблиотеки
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 71 3.1 Получение районоспецифичной библиотеки ДНК хромоцентра первичных политенных хромосом трофоцитов яичников D. огепа
    • 3. 1. 1. Анализ состава ДНК хромоцентра первичных политенных хромосом трофоцитов D. огепа
      • 3. 1. 1. 1. Анализ фрагментов на наличие гомологии друг с другом
      • 3. 1. 1. 2. Анализ фрагментов минибиблиотеки на наличие внутренних тандемных повторов
      • 3. 1. 1. 3. Анализ фрагментов минибиблиотеки ДНК «Dorel» на наличие гомологии с известными повторенными последовательностями из геномов различных видов Drosophila
      • 3. 1. 1. 4. Анализ фрагментов минибиблиотеки ДНК хромоцентра D. огепа на наличие гомологии с известными уникальными последовательностями из геномов различных видов Drosophila
      • 3. 1. 2. Распределение последовательностей ДНК из хромоцентра трофоцитов D. огепа на первичных политенных хромосомах трофоцитов у близкородственных видов подгруппы melanogaster
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота м.п.н. — миллион пар нуклеотидов
  • МГЭ — мобильные генетические элементы мкг — микрограмм мкл — микролитр мкМ — микромоль/литр мМ — миллимоль/литр мтДНК — митохондриальная ДНК п.н. — пар нуклеотидов п.о. — пар оснований
  • ПЦР — полимеразная цепная реакция рДНК — рибосомальная ДНК
  • РНК — рибонуклеиновая кислота рРНК — рибосомальная РЕПС т.п.н. — тысяч пар нуклеотидов тРНК — транспортная РНК
  • DOP-ПЦР — полимеразная цепная реакция с частично вырожденным праймером FISH — флуоресцентная in situ гибридизация
  • LTR-ретротранспозоны — ретротранспозоны с длинными концевыми повторами

Актуальность работы.

Хроматин определяют: как комплекс геномной ДНК, гистоновых и негистоновых белков и РНК. Различают, два типа хроматина — эухроматии и гетерохроматин. Если' в состав эухроматпна входят преимущественно-уникальныеи умеренноповторенные последовательности, то гетерохроматинсодержит в основном повторенную ДНК.

К настоящему времени накоплен огромный фактический, материал, касающийся структуры, локализации, количества гетерохроматииа у самых различных видов животных и растений. Появляется или уже функционирует множество проектов по определению нуклеотидной последовательности ДНК гетерохроматииамногих видов, от инфузорий до человека (Haupt et al., 2001; Carvalho, 2002; Smith et al-, 2007). Однако однозначной точки зрения* относительно функционального значения гетерохроматшia до сих пор не существует. Среди целого ряда проблем, связанных с изучением гетерохроматиианаибольшее значение, в общебиологическом смысле, представляют проблемы, затрагивающие эволюционную роль гетерохроматинаего возможное участие в процессах видообразования:. Гетерохроматин обладает высокой эволюционной лабильностью, как на цитогенетическом, так и на молекулярном, уровне. Наоснове этого выдвинуто предположение о том, что преобразования гетерохроматииа могут играть роль, в эволюции геномовВидообразование может происходить засчет, изменения? количества, гетерохроматииа, а также перераспределениях его по хромосомам (Корочкин, 1983; Стегний, 1991; Корочкин, 2002). Поэтому в. данном контексте представляется актуальными изучение гетерохроматииа у филогенетически близких видов. Удобным: объектом для. этой цели являются виды Drosophila подгруппы melanogaster. В целом подгруппа melanogaster включает два комплекса: комплекс «melanogaster» (D. melanogaster, D. simulans, D. sechellia, ?>. mauritiana) и комплекс «yakiiba» (D. orena, D. erecta, D. teissieri, D. yakuba, D. santomea)^ (Ashbumer, 1989; Lachaise et al., 2000). Ранее была предложена схема эволюционных взаимоотношений в подгруппе melanogaster, основанная на особенностях архитектуры ядер трофоцитов яичников, а также с учетом литературных данных (Стегний, Вассерлауф, 1994) — Согласно ей и некоторым другим филогенетическим схемам (Доувер и др., 1986; Саленко, 2007), D. огепа являетсяанцестральным видом: для всейшодгруппы.

Для многих видовданной подгруппы (D. melanogaster, D. simulans, D. sechellia, Derecta, D: yakuba) полностью или' частично известна нуклеотидная последовательность ДНК эухроматина (Clark et al., 2007). Наиболее полные данные: о последовательностях ДНК эухроматина и гетерохроматина к, настоящему моменту опубликованы только^ для D. melanogaster (Clark et al., 2007). Среди видов этой подгруппы особняком стоит вид D. огепа, геном которого значительно больше, чем геномы всех остальных видов" подгруппы, в основном за. счет повышенного содержанияповторенной ДНК гетерохроматина (Boulesteix et al-, 2006): Известно, что гетерохроматин в ядрах трофоцитов яичников Drosophila представлен в гораздо большей степени, чем в ядрах клеток слюнных желез- (Mal'ceva, Zhimulev, 1993) — В связи с этим, изучение состава ДНК хромоцентра трофоцитов D: огепа может дать общее представление об организации последовательностейДНК гетерохроматинау этого вида. В! то время как другие видыг подгруппы melanogaster интенсивноизучаются, вид D. огепа остается практически не изученным, данные о последовательностях его генома отсутствуют в литературе. В связи с этим огромное значение представляет изучение молекулярного состава^^ДНК хромоцентра трофоцитов Dогепа.

В- 1979 г. был выявлен новый видоспецифичный признакпространственная организация политенных хромосом генеративной ткани малярийных комаров (Стегний, 1979). Позднее, видоспецифичность в архитектонике политенных хромосом генеративной ткани была выявлена в подгруппе melanogaster и группе virilis. (Вассерлауф, Стегний, 1991; Вассерлауф, Стегний, 1992; Вассерлауф, Стегний, Ананьина, 1996). Обнаруженный феномен реорганизации архитектуры интерфазного ядра в генеративных клетках, которая, вероятно, происходит при видообразовании-был назван системной мутацией (Стегний, 1993). Известно, что гетерохроматин определяет пространственную организацию хромосом в интерфазном ядре. Приизменениях гетсрохроматина, связанных: с его количеством, структурой? и его? межхромосомным, перераспределением, вероятно, может происходить изменение' пространственной ориентации1 хромосом в клетках, генеративной: ткани:. Неизвестно какие именно изменения на уровне последовательностей ДНК, ответственны за преобразования структуры гетерохроматииа и пространственной! организации генома в подгруппе melanogaster. Для ответа на этот вопроснеобходимо* изучение и сравнение состава ДНК районов прицентромерного гетерохроматииа. .

Цель ипзадачи работы:

Цель работы: охарактеризовать состав ДНК хромоцентра трофоцитов яичников Z). огепаи исследовать распределение последовательностей ДНК из хромоцентра наг первичных, политенных хромосомах трофоцитов у близкородственных видов подгруппы melanogaster pojd.Drosophila.

Задачи:

1. Провестимикродиссекцию.' хромоцентра^ первичных политенных. хромосом трофоцитовяичников D. arena и создать районоспецифичную библиотеку ДНК.

2. Осуществить клонирование в плазмидном векторе фрагментов ДНК районоспецифичной библиотеки хромоцентра первичных политенных хромосом трофоцитов яичниковD: огепа и? определить нуклеотидную последовательность этих фрагментов;

3. Провести поиск гомологии фрагментов районоспецифичной библиотеки ДНК с известными повторяющимися и уникальными последовательностями из геномов разных видов1 Drosophila при помощи программ «RepeatMasker», «BLAST» и проанализировать фрагменты на наличие внутренних тандемных повторов при помощи программы «Tandem Repeats Finder».

4. Осуществить флуоресцентную in situ гибридизацию зонда на основе районоспецифичной библиотеки ДНК на первичные политенные хромосомы трофоцитов видов подгруппы melanogaster рода Drosophila.

Научная новизна работы.

Впервые был изучен молекулярный состав *ДНК хромоцентра трофоцитов D. огепа. В результате анализа нуклеотидной последовательности клонов в составе минибиблиотеки. ДНК хромоцентра D. огепа были обнаружены разнообразные повторяющиеся последовательности ДНК (представители различных классов МГЭ, среди которых преобладали LTR-ретротранспозоны и LINE-элементыминисателлиты и другие различающиеся по нуклеотидной-последовательности повторы), а также последовательности гомологичные генам.

In situ гибридизация ДНК-зонда из хромоцентра трофоцитов D. огепа с первичными политенными хромосомами трофоцитов видов подгруппы melanogaster и анализ состава ДНК хромоцентра позволили установить, что хромоцентр трофоцитов D. огепа и прицентромерный гетерохроматин видов данной подгруппы (D. erecta, D. teissieri, D. yakuba, D. santomea, D. simulans, D. melanogaster, D. sechellia, D. mauritiand) содержат консервативные последовательности ДНК, среди которых преобладают разные типы повторов, но также встречаются последовательности гомологичные генам.

Показано, что ДНК из хромоцентра D. огепа консервативна в плане своего распределения преимущественно в прицентромерных районах всех хромосом у видов подгруппы melanogaster, несмотря на различия во взаимном расположении хромосом в трофоцитах у этих видов.

Показано, что у D. огепа хромоцентр трофоцитов не подвергается деконденсации в ядрах с ретикулярной структурой и сохраняет свое компактное: состояние, в, то время когда происходит дезинтеграция всех хромосом и ядро приобретает ретикулярную (сетчатую)'структуру.

Положения, выносимые на защиту.

1). Установлено, что в состав ДНК хромоцентраполитенных, хромосомтрофоцитов D. огепа входят: диспергированные повторы- (представители: разных классов МГЭ) — тандемиые повторы-. последовательности"гомологичные: генам. 2). Показано-, что.*' районоспецифичнаяд ДНК из) хромоцентрш Dогепаь консервативна в плане: своей локализации в прицеитромерных районах хромосом X, 2 и 3 трофоцитов яичников всех видов подцуутт melanogaster.

Практическаячзначимость работы!

Полученная районоспецифичная библиотека- «Dorel», а также клопы минибиблиотеки ДНК из хромоцентра Z). огепа являются, ценным материалом для проведения дальнейших исследований гетерохроматина у видов подгруппы melanogaster, и, возможно, у других видов Drosophila. Нуклеотидные последовательности-клонов минибиблиотеки опубликованы в электронношбазе: данных «GenBank» (индексы доступа с-НМ594 089 по НМ594 162).

Полученные результаты могут бы ть использованы при чтении лекций по ряду биологических дисциплин.

Апробация результатов работы.

Результаты исследований были представлены на IV международной конференции: по кариосистематике беспозвоночных животных «KARYO-IV», Санкт-Петербург (2006), на VII: Межрегиональном совещанииэнтомологов Сибири и Дальнего Востока (в рамках Сибирской зоологической конференции) «Энтомологические исследования, в Северной Азии», Новосибирск (2006) — на Международной молодежной научно-методическойконференции «Проблемы молекулярной и клеточной' биологии», Томск (2007), на Международной конференции, посвященнойпамяти A.A. Прокофьевой-Бельговской,.

Хромосома 2009″, Новосибирск (2009), на V Съезде Вавиловского общества генетиков и селекционеров, посвященному 200-летию со дня рождения Чарльза Дарвина, «ВОГиС», Москва (2009).

Вклад автора.

Основные результаты настоящего исследования получены автором самостоятельно. Микродиссекция и DOP-ПЦР проводились совместно с д.б.н. Н: Б. Рубцовым и к.б.н. Т. В. Карамышевой. Секвенирование и анализ последовательностей ДНК in silico — с к.б.н. Е. А. Елисафенко и м.н.с. Т. А. Шелковниковой.

Структура и объем работы Диссертация состоит из списка сокращений, введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов и обсуждения, заключения, выводов, списка использованной литературы, в который входит 188 ссылок. Работа изложена на 119 страницах, содержит 19 рисунков и 7 таблиц.

Публикации.

По-теме диссертации опубликовано 8 работ, из них три публикации сделаны в журналах рецензируемых ВАК.

1. Вассерлауф И. Э., Митренина Е. Ю., Усов К. Е., Стегний В. Н. Сравнительный анализ динамики архитектуры хромосом и ядрышка трофоцитов яичников на протяжении эндоцикла Drosophila santomea и-D. yakuba II Тезисы IV международной конференции по кариосистематике беспозвоночных животных. Спб: Изд-во Зоологического института РАН, 2006. С. 53.

2. Усов К. Е., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Изучение взаимного расположения первичных политенных хромосом трофоцитов яичников в линиях Drosophila simulans II Энтомологические исследования в Северной Азии. Материалы VII Межрегионального совещания энтомологов Сибири и и.

Дальнего Востока (в рамках Сибирской зоологической конференции). Новосибирск, 2006. — 443с.

3. Усов К. Е., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Архитектура ядер трофоцитов яичников Drosophila santomea и D. yakuba на разных стадиях эндорепликации // Вестник ТГУ. Томск: Изд-во Том. Ун-та, 2007. С. 212−216.

4. Шелковникова Т. А., Усов К. Е., Стегний В. Н. Перераспределение прицентромерного гетерохроматина у видов" подгруппы. Drosophila melanogaster в процессе эволюции // Проблемы молекулярной и. клеточной биологии. Сборник материалов Международной молодежной научно-методической конференции 9−12 мая. Томск. 2007 г. С. 187−188.

5. Вассерлауф И. Э., Усов К. Е., Митренина Е. Ю., Стегний-В.Н. Изучение видовых особенностей взаимного расположенияпервичных политенных хромосом, в ядрах трофоцитов яичников у видов D. yakuba burla и D. santomea lachaise, hariy подгруппы «melanogaster» рода Drosophila (Sophophora) // Вестник ТГУ (Биология) № 3(4). Томск: Изд-во Том. Ун-та, 2008. С. 78−87.

6. Усов, К.Е., Шелковникова Т. А., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Молекулярно-цитогенетический' анализ* прицентромерного гетерохроматина хромосом трофоцитов яичников у видов, подгруппы Drosophila melanogaster H Цитология. 2008. Т.50. № 12. С. 1044−1049.

7. Усов К. Е., Шелковникова Т. А., Стегний В. Н. Перераспределение ДНК хромоцентра политенных хромосом трофоцитов Drosophila orena в < процессе филогенеза подгруппы Drosophila melanogaster II Материалы международной конференции «Хромосома 2009». Новосибирск. 2009. С. 158.

8. Усов К. Е., Шелковникова Т. А., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Сравнительный анализ распределения ДНК хромоцентра политенных хромосом трофоцитов яичников Drosophila orena у видов подгруппы melanogaster рода Drosophila И Материалы V съезда Вавиловского общества генетиков и селекционеров «ВОГиС». Москва. 2009. С. 268.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Г. 1 Оогенез Drosophila и политенные хромосомы трофоцитов яичников =.

В зависимости от пространственных, отношенийрастущего. ооцита с другими клеткамш оогенез1- может быть подразделен надиффузный, при котором ооциты образуются в Любом участке тела животного, — и локализованный, прикотором развитие ооцита происходит в гонадах., Локализованный оогенез в свою очередь делится, на: солитарный (ооцит растет безвспомогательных клеток), фолликулярный (ооцит развивается внутри фолликулярного эпителия)^ нутриментарныш (рост* ооцита сопровождается питающими клетками — трофоцитами-. представляющими собой абортивные половые клетки) (Айзенштадт, 1984). Трофоциты достигли высокой степени развития у насекомых.

Для Diptera характерны мероистические нолптрофные яичники, то есть имеется то или иное количество питающих клеток. У кровососущих комаров их семь, у высших двукрылых — пятнадцать. У дрозофилы ооцит и 15 питающих клеток возникают в результате четырехмитотических делений оогониальной клетки, при этом формируется 16-клеточная циста, или яйцевая камера, в которой клетки сообщаются друг с другом при похмощи сложной системы цитоплазматических мостиков, так называемых кольцевых каналов (Жимулев, 1992). •.

Питающие клетки имеют общее происхождение с ооцитом: они также являются зародышевыми клетками" (оогониями), иногда даже в их ядрах наблюдается стадиям букета (до диплотены), но затем они целиком или только их цитоплазма поглощаются яйцевой клеткой (Хвостова, 1980) — Они снабжают ооциты главным образом, рРНК и не участвуют в-вителлогенезе.

Впервые полиплоидизацию трофоцитов. у дрозофилы обнаружили Пайнтер и Рейндорп (Painter, Reindorp, 1939). Они описали клетки с ядрами различных размеров: ядра оогониев-5 мкм в диаметре, а самые крупные ядра трофоцитов 40 мкм. В некоторых ядрах с диаметром 8 мкм отмечалась характерная сетчатая структура покоящегося ядра, но в большинстве ядер выявлены 6 агрегатов с различной степенью конденсации и окраски: начиная' с плохо заметных нитей и кончаятеорошо окрашенными хромосомами, похожими на метафазные. Эти 6 агрегатов соответствуют 3 парам крупных хромосом дрозофилы, маленькие хромосомы^ 4 ясно не видны. В агрегатах можно сосчитать приблизительно по 8 нитей. В ядрах этого «диаметра наблюдаются все стадии — от покоящегося ядра до метафазы. Хромосомы проходят все стадии ядерного цикла: спирализуются, расщепляются, деспирализуются, но ни веретена деления, ни расхождения! хромосом не обнаружено (Хвостова, 1980). Таким образом, Пайнтер и Рейндорп оценили плоидность питающих клеток (512п) и рассматривали ее как результат эндомитоза. Однако впоследствии было предложено1 рассматривать это явление как политенный цикл (Бродский, Урываева, 1981).

В процессе развития трофоцитов у Drosophila можно выделить два сменяющих друг друга типа политенных хромосом: первичные (Bier, 1958) и вторичные (Bier, 1958; Ribbert, 1979). Первичные политенные хромосомы представляют собой сложные структуры, состоящие из пучков хромонем, удерживаемых вместе за счет конъюгации центромерных районов каждой хроматиды. Эти хромосомы укорочены, не имеют рисунка дисков.

После расщепления первичных политенных хромосом могут сформироваться эндополиплоидные ядра, либо вторичные политенные хромосомы.

У Drosophila отсутствуют хорошо развитые политенные хромосомы в трофоцитах яичников, однако у самок D. melanogaster гомозиготных по fsи о/^/-мутациям, связанных с образованием опухолей в яичниках, в трофоцитах яичников (так называемых псевдопитающих клетках) развиваются вторичные политенные хромосомы (Bier, 1958; Ribbert, 1979) с четким рисунком дисков.

Таким образом, у Drosophila на разных стадиях эндомитоза происходит изменение морфологии политенных хромосом трофоцитов яичников: на ранних стадиях эндомитоза формируются «удлиненные» политенные хромосомы, затем они постепенно утолщаются и укорачиваются и на более поздних стадиях эндомитоза ядра трофоцитов приобретают ретикулярную (сетчатую) структуру.

Несмотря на то, что первичные политенные хромосомы не относятся к классическим, тем не менее, они пригодны для анализа их взаимного расположения в ядре. Показано, что организация первичных политенных хромосом внутри ядра обнаруживает межвидовые различия у видов подгруппы melanogaster (Стегний, 1993).

100 выводы.

1. Показано, что хромоцентр первичных политенных хромосом трофоцитов D. огепа имеет типичный для гетерохроматина состав ДНК: образован повторенными последовательностями (диспергированными повторамипредставителями LTR-ретротранспозонов, LINE-элементов, ДНК-транспозоновтандемными повторами), а также последовательностями-гомологичными генам.

2. Установлено, что существуют последовательности ДНК, общие для хромоцентра трофоцитов яичников D. огепа и прицентромерныхрайонов хромосом X, 2 и 3 трофоцитов яичников всех видов подгруппы melanogaster и субтеломерного, района хромосомы 3 D. erecta. Выяснено, что этими консервативными последовательностями являются преимущественно различные повторенные последовательности ДНК, а также последовательности гомологичные генам.

3. Показано, что, несмотря на межвидовые различия во взаимном расположении первичных политенных хромосом трофоцитов у видов подгруппы melanogaster, распределение районоспецифичной ДНК консервативно в плане её локализации преимущественно в прицентромерных районах хромосом.

4. Обнаружено, что у D. огепа в ядрах трофоцитов с ретикулярной структурой районоспецифичная ДНК-проба распределяется преимущественно в пределах локальной территории в пространстве ядра, в то время как у всех остальных видов подгруппы melanogaster проба распределяется диффузно по всему ядру. Эти данные свидетельствуют о том, что хромоцентр трофоцитов D. огепа не деконденсируется в ядрах с ретикулярной структурой'.

Благодарности.

Автор выражает искреннюю благодарность д.б.н., профессору В. Н. Стегнию, за предоставление возможности работать над интересной научной проблемой в области эволюционной цитогенетики Drosophila, а также за общее руководство, помощь и моральную поддержку на всех этапах работы. Автор также благодарит сотрудников лаборатории эволюционной цитогенетики НИИ Биологии и Биофизики при ТомГУ м.н.с. Шелковникову Т. А., к.б.н. Вассерлауф И. Э., м.н.с. Артемова Г. Н., м.н.с. Сайджафарову А. О., м.н.с. НемировичДанченко Н.М. за методическую помощь и полезное обсуждение работы. Также автор выражает благодарность всем сотрудникам кафедры цитологии и генетики ТГУ за полезное обсуждение работы и моральную поддержку.

Автор выражает глубокую благодарность д.б.н., профессору Н. Б. Рубцову и к.б.н. Т. В. Карамышевой (ИЦиГ СО РАН г. Новосибирск) за помощь в постановке методической части работы — микродиссекция политенных хромосом и флуоресцентная in situ гибридизацияк.б.н. Е. А. Елисафенко (ИЦиГ СО РАН г. Новосибирск) за помощь в анализе последовательностей ДНК in silico.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате настоящего исследования установлено, что локальный хромоцентр первичных политенных хромосом трофоцитов' яичников D. огепа имеет типичныйдлягетерохроматина состав ДНК — повторенные последовательности: а) Диспергированные повторы (МГЭ). Среди обнаруженных МГЭ в составе библиотеки «Dorel» преобладали представители различных семейств LTR-ретротранспозонов. Также были выявлены МГЭ, которые принадлежат к группе LINE-элементов. Кроме того, были обнаружены такие представители ДНК-транспозонов как гелитроны (Helitrons) и полинтоны (.Polintons). Необходимо отметить, что в результате настоящей работы для генома!), огепа впервые описано разнообразие МГЭ. б) Тандемные повторы. В составе библиотеки ДНК хромоцентра D. огепа при помощи программы «Tandem Repeats Finder» найдено четыре минисателлита, а с помощью программы. «RepeatMasker» обнаружены — сателлит (SAR), простой повтор (TATATG)n и Т-богатый повтор низкой сложности. Кроме того, четыре фрагмента библиотеки «Dorel» оказались гомологичны участкам нескольких аннотированных генов, принадлежащих разным видам подгруппы melanogaster. Среди этих генов наиболее изученными являются DIP1 и Vulcan, которые первоначально были обнаружены в геноме D. melanogaster. Впоследствии ортологи DIP1 и Vulcan были найдены у позвоночных и беспозвоночных животных.

Показано, что у восьми видов подгруппы melanogaster — D. erecta, D. teissieri, D. yakuba, D. santomea, D. simulans, D. melanogaster, D. sechellia, D. mauritiana — прицентромерный гетерохроматин характеризуется частичным сходством состава ДНК с составом ДНК хромоцентра D. огепа. Общим компонентом хромоцентра трофоцитов D. огепа и прицентромерного гетерохроматина всех хромосом у видов D. erecta, D. teissieri, D. yakuba, D. santomea, D. simulans, D. melanogaster, D. sechellia, D. mauritiana являются повторенные последовательности ДНК и последовательности, гомологичные генам.

Показано, что только у ?). огепа в ядрах трофоцитов с ретикулярной структурой районоспецифичная ДНК распределялась в пределах локальной территории в пространстве ядра, для остальных же видов было характерно диффузное распределение по всему ядру. Это указывает на то, что хромоцентр трофоцитов В. огепа не подвергается деконденсации в ядрах с ретикулярной структурой.

Установлено, что ДНК из хромоцентра трофоцитов ?). огепа консервативна в плане своего распределения преимущественно в прицентромерных районах хромосом у всех видов подгруппы melanogaster (рисунок 19). Существует гипотеза, согласно которой перераспределение последовательностей ДНК гетерохроматина по геному может вызвать реорганизацию архитектуры ядер клеток генеративной ткани, что, вероятно, сопровождает видообразование. Консерватизм распределения районоспецифичной ДНК (преимущественно в прицентромерных районах хромосом) и наличие сильной гомологии последовательностей в геномах всех видов подгруппы melanogaster свидетельствует, вероятно, о том, что эволюционные преобразования генома, давшие начало видам данной подгруппы, не привели к кардинальному, перераспределению ДНК гетерохроматина по геному. Возможно, что видоспецифичность архитектуры ядер генеративных клеток у разных видов определяется тонкими различиями в структуре гетерохроматина.

D. orena.

D. teissieri.

Рисунок 19 — Схема распределения последовательностей ДНК хромоцентра трофоцитов D. огепа на политенных хромосомах трофоцитов близкородственных видов подгруппы melanogaster. Красным цветом изображена локализация последовательностей ДНК из хромоцентра трофоцитов D. огепа в прицентромерных районах хромосом XL, 2, 3 у всех видов подгруппы melanogaster и в субтеломерном районе хромосомы 3 D. erectaCh — хромоцентрСтрелками указаны филогенетические отношения в подгруппе melanogaster по: Стегний, Вассерлауф, 1994.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.Б. Цитология оогенеза // М.: Издательство Наука. 1984. 348с. ч
  2. В .Я., Урываева И. В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка // М.: Издательство Наука.1981. 259с.
  3. И.Э., Стегний В. Н. Видоспецифичные особенности архитектоники первично политенных хромосом трофоцитов у Drosophila огепа, Drosophila erecta, Drosophila teissieri, Drosophila yakuba II Генетика. 1992. T.28. № 3. С. 198−200.
  4. И.Э., Стегний В. Н., Ананьина Т. В. Взаимное расположение ' первичных политенных хромосом яичников у 12 видов группы «virilis"рода Drosophila (, Sophophora) //Генетика. 1996. Т.32. № 6. С. 750−754.
  5. И.Э., Стегний В. Н. Межвидовые отличия коориентации первично политенных хромосом трофоцитов у Drosophila melanogaster, Drosophila simulans, Drosophila mauritiana И Генетика. 1991. T.27. № 7. С. 1169−1172.
  6. М.В. Петельно-доменная организация генов в эукариотических хромосомах // Молекулярная биология. 1995. Т. 29. № 5. С. 965−982.
  7. М.В. Структурно-функциональная организация ДНК в интерфазном ядре. Структурный аспект // Молекулярная биология. 1988а. Т. 22. № 1. С. 10−16.
  8. А.Д., Кикнадзе И. И. О связи политенных хромосом с мембраной ядра//Цитология. 1970. Т. 12. № 7. С. 919−921.
  9. P.M., Джонджуров Л. П. Прочно связанная с матриксом ДНК, вероятно, играет важную роль в организации центромер хромосом // Молекулярная биология. 2000. Т. 34. № 1. С. 137−142.
  10. П.Доувер Г., Браун С., Коэн Э., Даллас Дж., Стрэтчен Т., Трик М. Динамика эволюции генома и дифференцировка видов // в кн.: Эволюция генома. М.: Мир. 1986. С. 329−356.
  11. И.Ф. Гетерохроматин и эффект положения гена // Новосибирск: Издательство Наука. 1993. 490с.
  12. И.Ф. Политенные хромосомы: морфология и структура // Новосибирск: Издательство Наука, Сиб. отд-е. 1992. 480с.
  13. И.И., Сиирин М. Т., Филиппова М. А. Изменение массы прицентромерного гетерохроматина — один из важных путей эволюции- у хирономид//Цитология. 1991. Т. 33. № 12. С. 90−98.
  14. . Л.И. Биология индивидуального развития // М.: Издательство МГУ. 2002. 264с.
  15. Л.И. Эволюционное значение генетических подвижных элементов. Гипотеза//Цитология и генетика. 1983. Т. 17. С. 67−78.
  16. И.Б., Подгорная О. И. Роль белков ядерного матрикса в формировании гетерохроматина//Цитология. 1999. Т. 41. № 7. С. 562−573.
  17. Т., Фрич. Э., Сэмбрук Д. Молекулярное клонирование // М.: Издательство Мир. 1984. 480с.
  18. Г. Е., Ченцов Ю. С. Расположение и ультраструктура' теломерных участков хромосом в интерфазных ядрах клеток Allium fistulosum 11 Цитология. 1973. Т.15. С. 643−649.
  19. Прокофьева-Бельговская A.A. Гетерохроматические районы хромосом // М.: Издательство Наука. 1986. 430с.
  20. Н.Б. и др. Микроклонирование и характеристика ДНК из районов прицентромерного гетерохроматина политенных хромосом Drosophila melanogaster // Генетика. 1999. Т.35. № 1. С. 55−61.
  21. В.Б. Полиморфизм эндогенного ретровируса МДГ4 (gypsy) в линиях рода Drosophila подгруппы melanogaster. Автореф. дис.. канд. биол. наук. М., 2007.-24с.
  22. В.Н. Архитектоника, генома, системные мутации и эволюция // Новосибирск: Издательство НГУ. 1993. 110с.
  23. В.Н. Популяционнаяггенетика и эволюция малярийных комаров // Томск: Издательство Томского университета. 1991. 136с.
  24. В.Н. Реорганизация структуры интерфазных ядер в онто- и филогенезе малярийных комаров // Докл. АН СССР. 1979. Т. 249. № 5. С. 1231−1234.
  25. В.Н., Вассерлауф И. Э. Видовая архитектоника хромосом генеративной ткани и проблема филогенетических отношений, в подгруппе „melanogaster“ рода Drosophila (Sophophora) II Генетика. 1994. Т.30. № 4. С. 478−483.
  26. В.Н., Шарахова М. В. Системная реорганизация архитектоники1 политенных хромосом^ в онто- и филогенезе малярийных комаров. Структурные особенности зон- прикрепления, хромосом ю ядерной оболочке //Генетика. 1991. Т. 27. № 5: С. 828−835.
  27. УсовТС.Е., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Архитектура ядер трофоцитов яичников Drosophila santomea и D. yakuba на разных стадиях эндорепликации // Вестник ТГУ. Томск: Издательство ТГУ. 2007. № 299. С. 212−216.
  28. К.Е., Шелковникова Т. А., Вассерлауф И. Э., Стегний В. Н. Молекулярно-цитогенетический анализ прицентромерного гетерохроматина хромосом трофоцитов яичников у видов подгруппы Drosophila melanogaster II Цитология. 2008. Т.50. № 12. С. 1044−1049.
  29. C.JI. Структура ядер в слюнных железах некоторых видов Drosophila // Биол. журнал. 1938. Т. 7. С. 703−736.
  30. В.В. Эндомитоз в питающих клетках насекомых в связи с ролью материнского генотипа в организации яйца // Проблемы генетики висследованиях В. В. Хвостовой // Новосибирск: Издательство Наука. 1980. С. 23−36.
  31. Abad J.P. et al. Dodecasatellite: a conserved G+C rich satellite from the centromeric heterochromatin of Drosophila melanogaster II Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P. 4663−4667.
  32. Adams M.D. et al. The genome sequence of Drosophila melanogaster .// Science. 2000. V. 287. P. 2185−2195.
  33. Ananiev E.V., Barsky V.E., Ilyin U.V., Ryzic M.V. The arrangement of transposable elements in the polytene chromosomes of Drosophila melanogaster II Chromosoma. 1984. V. 90. P. 336−377.
  34. Ashburner M. Drosophila: A Laboratory Handbook. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1989. P. 1167−1190.
  35. Baiborodin S.I. et al. A molecular and cytogenetic analysis of 20p7 fragment DNA from the proximal-heterochromatin of Drosophila melanogaster II Gene. V. 134. № 2. P. 175−181.
  36. Baricheva E. et al. DNA from Drosophila melanogaster |3-heterochromatin binds specifically to nuclear lamins in vitro and the nuclear envelope in situ II
  37. Gene. 1996. V. 171. P. 171−176.
  38. Belmont A.S. et al. Lamin В distribution and association with peripheral chromatin revealed by optical sectioning and electron microscopy tomography // J. Cell Biol. 1993. V. 123. № 6. P. 1671−1685.
  39. Bennetzen J.L., Kellogg E.A. Do plants have a one-way ticket to genomic obesity?//Plant Cell. 1997. № 9. p. 1509−1514.
  40. Benson G. Tandem Repeats Finder: a programme to analyze DNA sequences //Nucleic acids research. 1999. V.27. № 2. P. 573−580.
  41. Berghella L., Dimitri P. The heterochromatic rolled gene of Drosophila melanogaster is extensively polytenized and transcriptionally active in the salivary gland chromocenter// Genetics. 1996. V. 144. P. 117−125.
  42. Bi’emont C., Cizeron G. Distribution of transposable elements in Drosophila species I I Genetica. 1999. V. 105. P. 43−62.
  43. Biemont C. et al. Population dynamics of the copia, mdgl, mdg3, gypsy, and P transposable elements in- a natural population of Drosophila melanogaster '// Genet- Res. 1994. V. 63. P. 197−212.
  44. Bier, K. Endomitose und- polytanie in den Nahrzellenkernen von Calliphora erythrocephala
  45. Bonneton F., Wegnez M. Developmental variability of metallothionein Mtn gene expression, in the: species of the Drosophila melanogaster subgroup // Dev. Genet. 1995. № 16. P. 253−263.
  46. Boulesteix Mi, Weiss M., Biemont C. Differences in’Genome Size Between Closely Related Species: The Drosophila melanogaster. Species Subgroup // Mol: Bioli .Evol: 2006. V. 23- № 1. P. 162−167.
  47. Bowem NJl, McDonald5 J-F. Drosophila achromatic ETR. retrotransposons- are much younger than the host species in which they reside // Genome Research. 2001. V. 11. № 9. P. 1527−1540.
  48. Brun M.E. et al. Juxtacentromeric region of human chromosome 21: a boundary between centromeric. heterochromatin and euchromatic chromosome' arms // Gene. 2003. V. 312. P. 41−50.
  49. Brutlag D.L. Molecular, arrangement and evolution of heterochromalic DNA // Ann- Rev, Genet. T980. V. 14. P: 121−144. '
  50. Caccone A., Moriyama E.N., Gleason J.M. et al. A molecular phylogeny for the Drosophila melanogaster subgroup and the problem of polymorphism: data //Molecular biology and evolution. 1996. № 13. P: 1224−1232.
  51. Carvalho A.B. Origin and evolution of the Drosophila Y chromosome // Curr. Opin. Genet. Dev. 2002. № 12. P. 664−668.
  52. Carvalho C. et al. Chromosomal G-dark bands determine the spatial organization of centromeric heterochromatin in the nucleus // Mol. Biol. Cell. 2001. V. 12. № 11. P. 3653−3572.
  53. Cizeron G. et al. Distribution of the retrotransposable element 412 in Drosophila species //Mol. Biol. Evol. 1998. V. 15. P. 1589−1599.
  54. Clark A.G., Eisen M.B., Smith D.R., Bergman C.M. et al. Evolution of genes and genomes on the Drosophila phylogeny // Nature. 2007. V. 450. № 8. P. 203−218.
  55. Comings D.E. Arrangement of chromatin in the nucleus // Hum. Genet. 1980. V. 53. № 2. P. 131−143.
  56. Cordeiro M., Wheeler L., Lee C.S., Kastritsis C.D., Richardson R.H. Heterochromatic chromosomes and satellite DNAs of Drosophila nasutoides 11 Chromosoma. 1975. V. 51. P. 65−73.
  57. Corradini N., Rossi F., Giordano E. et al. Drosophila melanogaster as a model for studying protein-encoding genes that are resident in constitutive heterochromatin//Heredity. 2007. V. 98. P. 3−12.
  58. Cremer T., Cremer C. Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells // Nat. Rev. Genet. 2001. V. 2. № 4. P. 292−301.
  59. Csink A.K., Henikoff S. Something from nothing: the evolution and utility of satellite repeats // Trends Genet. 1998. V. 14. P. 200−204.
  60. Dej K.J., Spradling A.C. The endocycle controls nurse cell polytene chromosome structure during Drosophila oogenesis // Development. 1999. V. 126. P. 293−303.
  61. Demerec M. Unstable genes // Bot. Rev. 1935. № 1. P. 233−248.
  62. Dernburg A.F., Sedat J.W., Hawley R.S. Direct evidence of a role for heterochromatin in meiotic chromosome segregation // Cell. 1996. V. 86. P. 135−146.
  63. Devos K.M., Brown J.K.M., Bennetzen- J.L. Genome- size reduction through illegitimate recombinations counteracts, genome expansion? in Arabidopsis // Genome Res. 2002. № 12. P. 1075−1079.
  64. Dimitri P., Junakovic N., Area B. Colonization of heterochromatic genes by transposable elements in Drosophila II Mol: Biol: Evoli 2003. V: 20: P: 503−512.: .: ¦ '¦ •.¦,¦ ' :¦-/¦
  65. Eickbush T. H, Malik- H.S., Evolution of retrotransposons. Mobile- DNA II // American- Society of Microbiology Press, Washington, D.C. 2002. P. 11 111 144.
  66. Eissenberg J.C., Reuter G. Cellular Mechanism for Targeting Heterochromatin Formation in Drosophila (Chapter 1) // International Review of Cell and Molecular Biology. 2009- V. 273. P. 1−47.
  67. Elgin S.C., Grewal S. I: Heterochromatin: silence is golden // Curr. Biol. 2003.1. V. 13. № 23. P: 895−898. ,
  68. Elgin S.C.R. Heterochromatin' and gene regulation in Drosophila II Curr. Opin. Genet. Dev. 1996. V. 6. P. 193−202.
  69. Endow S., Gall J-S. Differential' replication of satellite DNA in polyploid tissues of Drosophila virilis II Chromosoma. 1975. V. 50. P. 175−192.
  70. Felice B.D., Wilson R.R., Mondola P., Matrone G., Damiano S., Garbi C., Nezi L., Su T.T. Characterization of DIPl, a novel nuclear protein1 in
  71. Drosophila melanogaster II Biochemical and Biophysical Research Communications. 2003. V. 307. P. 224−228.
  72. Finnegan D.J. Eukaryotic transposable elements and- genome evolution // Trends Genet. 1989. № 5. P. 103−107.
  73. Gates J., Thummel C.S. An enhancer trap-screen for. ecdysone-inducible genes, required for Drosophila adult leg morphogenesis // Genetics. 2000: V. 156. P. — 1765−1776.
  74. Gatti M., Bonaccorsi S., Pimpinelli S. Looking at Drosophila mitotic chromosomes //Methods Cell Biol. 1994. V. 44. P. 371−391.
  75. Gatti M., Pimpinelli S. Functional elements in Drosophila melanogaster Iieterochromatin // Annu. Rev. Genet. 1992. V. 26. P. 239−275:
  76. Gentile K.L., Burke W.D., Eickbush Т-Н. Multiple lineages of R1 retrotransposable elements can coexist in the rDNA loci of Drosophila И Mol. Biol. Evol- 2001, V. 18v P. 235−245.
  77. Gerasimova Т.Н. et al. A chromatin insulator determines the nuclear localization of DNA//Mol. Cell. 2000. V. 6. № 5. P. 1025−1035.
  78. Getzenberg R.H. et al. Nuclear structure and the three-dimensional organization of DNA // J. Cell Biochem. 1991. V. 47. № 4. P: 289−299:
  79. Gregory T.R., Hebert P.D. The modulation of DNA content: proximate causes. and ultimate consequences//Genome Res. 1999- № 9. P: 317−324.
  80. Grewal S.I., Elgin S.C.R. Heterochromatin: new possibilities for the inheritance of structure 11 Curr. Opin. Genet. Dev. 2002. № 12. P. 178−187.
  81. Haupt W. et al. The centromere 1 (CEN1) region of Arabidopsis thaliana: architecture and functional impact of chromatin // Plant J. 2001. V. 27. P. 285 296.
  82. Heitz E. Das heterochromatin der moose // Jb. wiss. Bot. 1928. V. 69. S. 6281.
  83. Heitz E. Uber a- und ?-heterochromatin sowie konstanz und bau der Chromosomen bei Drosophila II Biol. Zentr-Bl. 1934. V. 54. S. 588−609.
  84. Henikoff S. Heterochromatin, function in complex genomes II Biochimica et Biophysica Acta. 2000. № 1470i P. 01−08.
  85. Henikoff S. Near the edge of a1 chromosomes „black hole“ // Trends Genet. 2002. V 8. № 4. P. 165−167.
  86. Henikoff S.5 Ahmad K., Platero S., Steensel B. Heterochromatic deposition of centromeric histone H3-like proteins // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 2000. V. 97. № 2. P. 716−721.
  87. Hennig W. Heterochromatin// Chromosoma. 1999. V. 108. № 1. P. 1−9.
  88. Hochstrasser M., Sedat J.W. Three-dimensional organization of Drosophila melanogaster interphase nuclei. I. Tissue-specific aspects of polytene nuclear architecture // J^ Cell Biol. 1987. V.104. P. 1455−1470.
  89. Hood M.E. Repeat-induced point mutation and the population structure of transposable elements in Microbotryum violaceum // Genetics. 2005. V. 170. P. 1081−1089.
  90. Horvath J.E., Schwartz S., Eichler E.E. The mosaic structure of human pericentromeric DNA: a strategy for characterizing complex regions of the human genome // Genome Res. 2000. № 10. P. 839−852.
  91. Hoskins R.A., Smith C. D., Carlson J.W. Heterochromatic sequences in a Drosophila whole-genome shotgun assembly // Genome Biology. 2002. V.3. № 12. R0085. l-R0085.16.
  92. Jeffs P. S., Holmes E.C., Ashburner M. The molecular evolution of the alcohol dehydrogenase and alcohol dehydrogenase-related genes in the Drosophila melanogaster species subgroup // Mol. Biol. Evol. 1994. V. 11. P. 287−304.
  93. Jurka J. Repbase Update: a database and an electronic journal of repetitive elements // Trends in Genetics. 2000. V. 16. № 9. P. 418−420.
  94. Kaminker J.S. et al. The transposable elements of the Drosophila melanogaster euchromatin: a genomics perspective // Genome Biology. 2002. V. 3. № 12. R0084. l-R0084.20.
  95. Kapitonov V.V., Jurka J. Helitrons on a roll: eukaryotic rolling-circle transposons // Trends in Genetics. 2007. V. 23. № 10. P. 521−529.
  96. Kapitonov V.V., Jurka J. Molecular paleontology of transposable elements in the Drosophila melanogaster genome 11 PNAS. 2003. V. 100. № 11. P. 6569−6574.
  97. Kapitonov V.V., Jurka J. Rolling-circle transposons in eukaryotes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P. 8714−8719.
  98. Kapitonov V.Y., Jurka J. Self-synthesizing DNA transposons in eukaryotes // PNAS. 2006. V.103. № 12. P. 4540−4545.
  99. Kidwell M.G. Transposable elements and the evolution of genome size in eukaryotes // Genetica. 2002. V. 115. P. 49−63.
  100. Kidwell M.G., Lisch D.R. Transposable elements and host genome evolution //TREE. 2000. V. 15. № 3. P. 95−99.
  101. Ko W.Y., David R.M., Akashi H. Molecular phylogeny of the Drosophila melanogaster species subgroup // Jour. Mol. Evol. 2003. V.57. № 5. P. 562−573.
  102. Koryakov D.E. et al. Alpha and beta heterochromatin in polytene chromosome 2 of Drosophila melanogaster II Chromosoma. 1996. V. 105. P. 310−319.
  103. Koryakov D.E., Zhimulev I.F., Dimitri P. Cytogenetic Analysis of the Third Chromosome Heterochromatin of Drosophila melanogaster II Genetics. 2002. V. 160. P. 509−517.
  104. Kuln R.M., Clarke- L., Carbon J. Clustered tRNA genes in Schizosaccharomyces pombe centromeric DNA sequence repeats // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. V. 88. P: 1306−1310.
  105. Kumekawa N. et al. The size and sequence organization of the centromeric region of Arabidopsis thaliana chromosome 5 // DNA Res. 2000. V. 7. P. 315−321.
  106. Lachaise D., Benassi V. Evolutionary novelties in islands: Drosophila santomea, a new melanogaster sister species from Sao Tome // Evolution. 2000. P. 1487−1495.
  107. Lachaise D., Cariou M: L., David J.R. Historical Biogeography of the Drosophila melanogaster species subgroup // Evol Biol. 1988. V. 22. P. 159 225.
  108. Lachaise D., David J.R., Lemeunier F. et al. The reproductive relationships of Drosophila sechellia with D. mauritiana, D. simulans and D. melanogaster from the Afrotropical region // Evolution. 1986. V. 40. P. 262 271.
  109. Lachotia S.C., Jacob J. EM autoradiographic studies on polytene nuclei of Drosophila melanogaster. II. Organization and transcriptase activity of the chromocentre I I Exp. Cell Res. 1974. V. 86. P. 253−263.
  110. Leach T. J, Chotkowski H.L., Wotring M.G., Dilwith R.L., Glaser R.L. Replication of Heterochromatin and Structure of Polytene Chromosomes // Molecular and Cellular Biology. 2000. V. 20. № 17. P. 6308−6316.
  111. Lemeunier F., Ashburner M. Relationships within the melanogaster species subgroup of the genus Drosophila {Sophophora): IV. The chromosome of two new species 11 Chromosoma. 1984. V. 89. P. 343−351.
  112. Lohe A.R., Hilliker A.G. Return of the II-word (heterochromatin) II Cuit. Opin. Genet. Dev. 1995. V. 5. № 6 P. 746−755.
  113. Lohe: A.R., Roberts- P.A. Evolution of DNA in. heterochromatin: the Drosophila melanogaster sibling species ¦ subgroup as a resource // Genetica. 2000: ?.109: P. 125−130:
  114. LozovskayaiE.R. etal: Genome size as a mutation-selection-drift process //GenesiGenet: Syst. 1999: V. 74- PI 201−207.
  115. Luderus M.E. et al. Binding of matrix attachment regions to lamin B1 //. Cell: 1992: V. 70: P: 949959: — ,
  116. Mal’ceva N.I., Zhimulev I.F. Extent of polyteny: in- the- pericentric.. heterochromatin^ of polytene chromosomes of pseudonurse cells of otu (ovariantumor) mutants of Drosophila melanogaster II Mol: Gen. Genet. 1993. V. 240. P. 273−276.
  117. Marshall W.F. et al. Specific interactions of chromatin with the nuclear envelope: positional determination, within the nucleus in Drosophila melanogaster II MoL Biol: Cell. 1996. V. 7. № 5- P. 825−842:
  118. Matsuo Y., Inomata N. Evolution of the amylase isozymes in the Drosophila melanogaster species- subgroup // Biochemical genetic. 1999. V. 37. P. 289−300.
  119. Matzke M.A. et al. A 41−42 bp tandemly repeated sequence isolated from nuclear envelopes of chicken erytrocytes is located- predominantly on microchromosomes // Chromosoma. 1990. V. 99. P. 131−137.
  120. Miklos G.L.G., Yamomoto M., Davies J., Pirrotta V. Microcloning reveals high frequency of repetitive sequences characteristic of chromosome 4 and heterochromatin of Drosophila melanogaster // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 2051−2055.
  121. Moritz, K.B., Roth, G.E. Complexity of germline and somatic DNA in Ascaris //Nature. 1976. Y. 259. P. 55−57.
  122. Moriyama E.N., Petrov D.A., Haiti D.L. Genome size and intron size in Drosophila // Mol. Biol. Evol. 1998. V. 15. P. 770−773.
  123. Moschetti R., Caggese C., Barsanti P., Caizzi R. Intra- and interspecies variation among Bari-1 elements of the melanogaster species group // Genetics. 1998. V.150. P. 239−250.
  124. Nabirochkin S. et al. Scaffold Attachment Region Co-Localizes with the gypsy Retrotransposon Insulator Sequense // J. Biol. Chem. 1998. V. 23. P. 247−273.
  125. Nagaki K et al., Sequencing of a rice centromere uncovers active genes // Nat. Genet. 2004. V. 36. P. 138−145.
  126. O’Grady P.M., Baker R.H., Durando C.M. et al. Polytene chromosomes as indicators of phylogeny in several species groups of Drosophila U Evolutionary Biology. 2001. V. 1. № 6.
  127. Paddy M.R. et al. Interphase nuclear envelope lamins form a discontinuous network that interacts with only a fraction of the chromatin in the nuclear periphery // Cell. 1990. V. 62. № 1. P. 89−106.
  128. Painter T.S., Reindorp E.C. Endomitosis in the nurse cells of the ovary of Drosophila melanogaster II Chromosoma. 1939. Bd. 1. S. 276−283.
  129. Parsch J. Selective constraints on intron evolution in Drosophila II Genetics. 2003. V. 165. P. 1843−1851.
  130. Petrov D.A. Evolution of genome size: new approaches to an old problem // Trends in Genetics. 2001. V.17. № 1. P.23−28.
  131. Pimpinelli S. Transposable elements are stable structural components of Drosophila melanogaster heterochromatin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 3804−3808.
  132. Pimpinelli S., Wakimoto B.T. Expanding the boundaries of heterochromatin // Genetica. 2003. V. 117. P. 111−116.
  133. Pinsker W., Haring E., Hagemann S., Miller W.J. The evolutionary life histoiy of P transposons: from horizontal invaders to domesticated neogenes // Chromosoma. 2001. V. 110. P. 148−158.
  134. Plasterk R.H., Izsvak Z., Ivies Z. Resident aliens: the Tcl/mariner superfamily of transposable elements // Trends Genet. 1999. V. 15. P. 326−332.
  135. Plath K et al. Role of Histone H3 Lysine 27 Methylation in X Inactivation // Science. 2003. V. 300. № 5616. P. 131−135
  136. Plath K et al. Xist RNA and the mechanism of X chromosome inactivation // Annu. Rev. Genet. 2002. V. 36. P. 233−278.
  137. Plohl M., Luchetti A., Mestrovic N., Mantovani B. Satellite DNAs between selfishness and functionality: Structure, genomics and evolution of tandem repeats in centromeric (hetero)chromatin // Gene. 2008. V. 409. P. 7282.
  138. Poulter R.T., Goodwin T.J., Butler M.I. Vertebrate helentrons and other novel Helitrons II Gene. 2003. V. 313. P. 201−212.
  139. Pritham E.J., Putliwala T., Feschotte C. Mavericks, a novel class of giant transposable elements widespread in eukaryotes and related to DNA viruses // Gene. 2006. P. 1016−1025.
  140. Pyrpasopoulou A. et al. The lamin B receptor (LBR) provides essential chromatin docking sites at the nuclear envelope // EMBO J. 1996. V. 15. № 24. P. 7108−7119.
  141. Redi C.A., Garagna S., Zacharias H., Zuccotti M., Capanna E. The other chromatin //Chromosoma. 2001. V. 110. № 3. P. 136−147.
  142. Ribbert D. Chromomeres and puffing in experimentally induced polytene chromosomes of Calliphora erythrocephala I I Chromosoma. 1979. V. 74. P. 269−298.
  143. Ritossa F.M., Spiegelman S. Localization of DNA complementary to ribosomal RNA in the nucleolus organizer region of D. melanogaster // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1965. V. 53. P. 737−745.
  144. Schlotterer C., Hauser M.T., Haeseler. A., Tautz D. Comparative evolutionary analysis of rDNA ITS regions in Drosophila II Mol. Biol. Evol. 1994. V. 11. P. 513−522.
  145. Schmidt T., Heslop-Harrison J.S. Genomes, genes and junk: the large-scale organization of plant chromosomes // Trends in plant science perspectives. 1998. V. 3. № 5. P. 195−199.
  146. Schueler M.G. et al. Genomic and genetic definition of a functional human centromere // Science. 2001. V. 294. P. 109−115.
  147. Schulze S.R. et al. Heterochromatic Genes in Drosophila: A Comparative Analysis of Two Genes // Genetics. 2006. V.173. P. 1433−1445.
  148. Shao H., Tu Z. Expanding the diversity of the IS630-Tcl-mariner superfamily: discovery of a unique DD37E transposon and reclassification of the DD37D and DD39D transposons // Genetics. 2001. V. 159. P. 1103−1115.
  149. Sherwood S.W., Patton J.L. Genome evolution in pocket gophers (genus Thomomys). II. Variation in cellular DNA content // Chromosoma. 1982. V. 85. P. 163−179.
  150. Shirasu K., Schulman A.H., Lahaye T., Schulze-Lefert P. A contiguous 66-kb barley DNA sequence provides evidence for reversible genome expansion // Genome Res. 2000. V. 10. P. 908−915.
  151. Smith C.D. et al. The Release 5.1 Annotation of Drosophila melanogaster Heterochromatin// Science. 2007. V. 316. P. 1586−1591.
  152. Smith Ch.D., Edgar R.C. et al. Improved repeat identification and masking in Dipterans II Gene. 2007. V. 389. P. 1−9.
  153. Strachan T. et al. Modes and rates of change of complex DNA families of Drosophila // J. Mol. Biol. 1982. V. 158. P. 37−54.
  154. Strausbaugh L.D. et al. High density of an SAR-associated motif differentiates heterochromatin from euchromatin // J. Theor. Biol. 1996. V. 183. № 2. P. 159−167.
  155. Sun X. et al. Sequence analysis of a functional Drosophila centromere // Genome Res. 2003. V. 13. P. 182−194.
  156. Takano-Shimizu T. Local changes in GC/AT substitution biases and in crossover frequencies on Drosophila chromosomes // Mol. Biol. Evol. 2000. V. 18. P. 678−687.
  157. Takano-Shimizu T. Local recombination and mutation1 effects on molecular evolution in Drosophila II Genetics. 1999. V. 153. P. 1285−1296.
  158. The Arabidopsis Genome Initiative: Analysis of the genome sequence of the flowering plant Arabidopsis thaliana II Nature. 2000. V. 408. P. 796−815.
  159. Thompson-Stewart D. A transposable element can drive the concerted evolution of tandemly repetitious DNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 9042−9046.
  160. Traverse K.L., Pardue M.L. Studies of He-T DNA sequences in the pericentric regions of Drosophila chromosomes // Chromosoma. 1989. V. 97. P. 261−271.
  161. Ugarkovic D., Plohl M. Variation in satellite DNA profiles causes and effects // The EMBO Journal. 2002. V. 21. P. 5955−5959.
  162. Vaury C., Bucheton A., Pelisson A. The (3-heterochromatic sequences flanking the /- elements are themselves defective transposable elements // Chromosoma. 1989. V. 98: № 3. P. 215−224. •
  163. Volff J. N-, Hornung U., Schartl M. Fish retroposons related' to the-Penelope element of Drosophila virilis define a new. group of retrotransposable- elements //Mol. Genet. Genomics. 2001. V. 265. P. 711−720. .
  164. Wang S-. et al: Analysis of repetitive1 DNA^ distribution» patterhsvini the Tribolium castaneuim genome // Genome1 Biology. 20 081. V. 9. № 3. R61.11. R61.14.
  165. Weiler K.S., Wakimoto B.T. Heterochromatin and gene expression in Drosophila II Annu., Rev. Genet. 1995. V., 29: P. 577−605.
  166. Wilder J., Hollocher H. Mobile' elements- andr the genesis of microsatellites. in Dipterans // Mol: Biol. Evol. 2001. V. 18. № 3. P. 384−392.
  167. Yang J.W. et al. Human minichromosomes with minimal centromeres // Hum. Mol. Genet. 2000. V. 9. P. 1891−1902.
  168. Yasuhara J.C., DeCrease G.H., Wakimoto B.T. Evolution of heterochromatic genes of Drosophila II PNAS. 2005. V. 102. № 31. P: 1 095 810 963.
  169. Yasuhara J.C., Wakimoto B.T. Oxymoron no more the expanding world of heterochromatic genes // Trends in Genetics. 2006. V. 22. № 6. P. 330−338.
  170. Zhang P., Spradling A.C. Thq Drosophila salivary gland chromocenter contains highly politenized subdomains of mitotic heterochromatin // Genetics. 1995. V. 139. P. 659−670.1. M19 '
  171. Zhimulev I.F., Belyaeva E.S. Intercalary heterochromatin and genetic silencing // BioEssays. 2003. V. 25. P. 1040−1051.
  172. Zink D., Cremer T. Chromosome dynamics in nuclei of living cells // Curr. Biol. 1998. V. 8. P. 321−324.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!