Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние биологически активных соединений на развитие и морфологию колорадского жука Leptinotarsa decemlineata Say: Coleoptera: Chrysomelidae

Диссертация: Влияние биологически активных соединений на развитие и морфологию колорадского жука Leptinotarsa decemlineata Say: Coleoptera: Chrysomelidae
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Результаты исследований были представлены на Сибирской зоологической конференции (Всероссийской конференции, посвященной 60-летию Института систематики и экологии животных СО РАН) (Новосибирск, 2004), 4-ой Международной Ирано-Российской конференции «Agriculture and Natural Resources» (ShahreKord, Иран, 2004), 12-ой и 13-ой Конференциях иранских исследователей в Европе (IRCE… Читать ещё >

Влияние биологически активных соединений на развитие и морфологию колорадского жука Leptinotarsa decemlineata Say: Coleoptera: Chrysomelidae (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Влияние физиологически активных соединений на насекомых и их использование в ограничении численности вредных видов (обзор литературы)
    • 1. 1. Общие сведения о биологии колорадского жука
    • 1. 2. Физиологически активные вещества — регуляторы роста, развития и размножения насекомых
    • 1. 3. Прекоцены
    • 1. 4. Влияние биологически активных соединений на развитие колорадского жука
  • Глава 2. Материал и методы
    • 2. 1. Материал
    • 2. 2. Исследованные соединения
    • 2. 3. Процедура проведения опытов
    • 2. 4. Статистический анализ результатов
    • 2. 5. Светооптические исследования
    • 2. 6. Электронно-микроскопические исследования
  • Глава 3. Влияние биологически активных соединений на развитие колорадского жука
    • 3. 1. Влияние димилина на развитие колорадского жука
    • 3. 2. Влияние прекоцена I на развитие колорадского жука
    • 3. 3. Влияние прекоцена II на развитие колорадского жука
    • 3. 4. Влияние на личинок биологически активных соединений, поступивших с кормом
    • 3. 5. Сравнительный анализ влияния биологически активных соединений на развитие колорадского жука (обсуждение полученных результатов)
  • Глава 4. Влияние биологически активных соединений на строение и кутикулярные структуры колорадского жука
    • 4. 1. Димилин
    • 4. 2. Прекоцен I
    • 4. 3. Прекоцен II

Актуальность исследования. В последние десятилетия резко вырос интерес к биологически активным веществам — ювенильному гормону и его аналогам (ювеноидам), линочному гормону экдизону и его аналогам (экди-зоидам), ингибиторам синтеза хитина, соединениям с антиювенильной активностью (прекоценам), аналогам пептидных гормонов. Все эти соединения, получившие название регуляторов роста, развития и размножения насекомых, могут быть применены на определенной стадии развития насекомых, что приводит к нарушению их развития, размножения или изменению поведения. С открытием биологически активных соединений и их синтетических аналогов, получившим название регуляторов роста, развития и размножения насекомых, расшифровки их химической структуры и последующего синтеза препаратов, имитирующих гормональную активность этих соединений, появились перспективы использования биологически активных соединений в качестве альтернативы инсектицидам широкого спектра действия в интегрированных системах защиты сельскохозяйственных культур от насекомых-вредителей (Буров, Сазонов, 1987; Триселева, 1991; ЧернШ, 2004).

Особенно интенсивно стали развиваться исследования по возможному использованию регуляторов роста, развития и размножения насекомых в борьбе с насекомыми-вредителями после открытия соединений с гормональной и антигормональной активностью у растений (Bowers, 1976; Поливанова, 1991; Триселева, 2003). Эти соединения нарушают гормональный баланс у насекомых-фитофагов и способны подавлять их жизнедеятельность. Считается, что синтез растениями таких соединений связан с естественными механизмами их защиты от насекомых, и эти механизмы сформировались в процессе длительной сопряженной эволюции растений и насекомых. Поэтому идея использования биологически активных веществ в борьбе с насекомыми-вредителями, подсказанная самой природой, стала еще более притягательна.

В настоящее время основным требованием к средствам, применяемым в интегрированной борьбе с вредителями сельскохозяйственных культур, является не максимальная эффективность воздействия на объекты, а максимальная селективность действия (Буров и др., 1991). Высокая селективность действия большинства биологически активных соединений должна свести к минимуму нежелательные побочные эффекты в отношении нецелевых организмов, проявляющиеся при применении традиционных высокоэффективных пестицидов, к которым у насекомых вырабатывается резистентность (Рославцева, 1997).

Несмотря на интенсивные работы по выяснению теоретических вопросов механизма действия биологически активных соединений, а также практического применения таких соединений в практике защиты растений от насекомых-вредителей, многие вопросы остаются неясными. Многообразие ответных реакций насекомых на воздействие биологически активных соединений гормональной природы и изменчивость чувствительности насекомых к таким препаратам на разных стадиях развития сужают возможность экстраполяции имеющихся данных на многих насекомых, представляющих научный или практический интерес.

Выбор колорадского жука в качестве объекта настоящего исследования обусловлен несколькими обстоятельствами. Во-первых, колорадский жук как опасный вредитель картофеля во многих регионах мира, по-прежнему является экономически важным видом насекомых, применительно к которому дальнейшие поиски эффективных мер борьбы с ним вполне целесообразны. Во-вторых, к настоящему времени влияние биологически активных веществ на развитие и морфологию жука изучено недостаточно. Например, отсутствуют данные по влиянию на колорадского жука прекоценов, хорошо изученных на других насекомых. В-третьих, изучение влияния биологически активных веществ на колорадском жуке t должно пополнить наши знания по особенностям влияния этих соединений на Holometabola — насекомых с полным превращением.

Цель и задачи исследования

Цель настоящей работы — исследовать особенности влияния биологически активных соединений на развитие и морфологию колорадского жука как важнейшего вредителя пасленовых культур и представителя отдела насекомых с полным превращением (Holometabola). Для достижения этой цели необходимо было решить следующие задачи:

— изучить влияние биологически активных соединений (димилина, прекоцена-I и прекоцена-П) на развитие колорадского жука;

— получить данные по влиянию биологически активных соединений на кутикулярные структуры жука;

— изучить влияние димилина и прекоценов на развитие сенсорного аппарата личинок и имаго;

— изучить влияние биологически активных соединений на состояние пищеварительной системы.

Теоретическая практическая ценность работы. В результате проведенной работы показано, что прекоцены, подавляющие у насекомых синтез ювенильного гормона, не вызывают у колорадского жука уменьшения числа линек у личинок, но вызывают эффект протетелии — преждевременного формирования у личинок куколочных признаков. Впервые показано, что у насекомых с полным превращением (Holometabola) биологически активные соединения (димилин и прекоцены) вызывают подавление дифференцировки сенсилл, выражающееся в уменьшении их числа у личинок по сравнению с контрольными особями, а также в нарушении морфогенеза эпителиальных клеток, дифференцирующихся в сенсорные органы (формирование дополнительных сенсилл). Впервые показано, что у личинок колорадского жука, обработанных прекоценом I, происходит редукция рецепторных клеток, иннервирующих сенсиллы антенн и ротовых придатков. В отличие от личинок, все изученные биологически активные соединения не вызывают существенного сокращения численности сенсилл у имаго, что связано с особенностями морфогенеза Holometabola. У обработанных димилином и прекоценами личинок выявлены значительные деструктивные изменения в строении пищеварительной системы, затрагивающие как кутикулярные структуры, так и клетки эпителия. Выявлены особи, сочетавшие в себе признаки личинки и куколки, а также адультои-ды — имаго с куколочными признаками.

Результаты настоящего исследования могут рассматриваться как существенный вклад в разработку теоретических основ практического использования регуляторов роста, развития и размножения насекомых в практике защиты сельскохозяйственных культур от насекомых-вредителей.

Апробация работы. Результаты исследований были представлены на Сибирской зоологической конференции (Всероссийской конференции, посвященной 60-летию Института систематики и экологии животных СО РАН) (Новосибирск, 2004), 4-ой Международной Ирано-Российской конференции «Agriculture and Natural Resources» (ShahreKord, Иран, 2004), 12-ой и 13-ой Конференциях иранских исследователей в Европе (IRCE) (Великобритания, 2004 и 2005), Международной конференции «Актуальные проблемы экологической физиологии, биохимии и генетики животных» (Саранск, 2005), Международной конференции студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов-2005» (Москва, 2005), 9-ом Европейском симпозиуме по вкусу и обонянию насекомых «9th E.S.I.Т.О.» (Италия, 2005).

Публикации. Материалы диссертации опубликованы в 11-ти научных работах: 3 статьях и 8 тезисах докладов.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 242 страницах, иллюстрирована 424 рисунками. Текст диссертации состоит из введения, 6-ти глав, заключения, выводов и списка цитированной литературы. Последний содержит 254 название, из которых 75 — на русском языке.

выводы.

1. Обработка личинок II возраста колорадского жука димилином, преко-ценом-I и прекоценом-П вызывает увеличение продолжительности личиночного развития и увеличение смертности личинок, но не оказывает влияния на продолжительность развития куколок.

2. Наибольшая гибель личинок колорадского жука приходится на вторые сутки после их обработки димилином и прекоценами. Максимальная гибель наблюдается при поступлении этих соединений в организм личинок с кормом.

3. Выявлена зависимость между продолжительностью развития личинок, а также величиной их смертности и концентрацией димилина и прекоценов. Кратность обработок личинок этими биологически активными соединениями не оказывает существенного влияния на изученные жизненные параметры.

4. Прекоцены, подавляющие у насекомых синтез ювенильного гормона, не вызывают у колорадского жука уменьшения числа линек личинок, но вызывают эффект протетелии — преждевременного формирования у личинок кукол очных признаков.

5. Обработка личинок димилином и прекоценами вызывает разнообразные аномалии у личинок, куколок и имаго колорадского жука, выражающиеся в общей уродливости особей, уменьшении их размеров, нарушении сегментации тела, изменении пропорций его отделов, сильной деформации или полной редукции крыльев и надкрылий, сохранении старой кутикулы. Выявлены особи, сочетавшие в себе признаки личинки и куколки, а также адультоиды — имаго с кукол очными при.

6. Ойрабтжа личинок димилином, гидропреном и прекоценами приводит к нарушению формирования сенсорного аппарата антенн, максиллярных и лабиальных щупиков у личинок последующих возрастов. Аномалии выражаются в слиянии второго и третьего члеников антенн, разной степени деформации и редукции сенсорного аппарата: частичная или полная утрата сенсилл, формирование у некоторых особей дополнительных сенсилл, сохранение кутикулы предыдущего возраста, изменение расположения сенсилл.

7. Наиболее значительные изменения в хеморецепторном аппарате антенн и ротовых придатков наблюдаются после обработок личинок биологически активными соединениями на нескольких последовательных возрастах.

8. У имаго, развившихся из личинок, обработанных биологически активными соединениями, обнаружены деформация кутикулярных структур антенн и щупиков ротового аппарата, аномалии в развитии некоторых сенсилл. Вместе с тем, в отличие от личинок, биологически активные соединения не вызывают у имаго существенного сокращения численности сенсилл.

9. У обработанных димилином и прекоценами личинок выявлены значительные изменения в строении пищеварительной системы. Дегенеративные изменения выражаются в возникновении полостей между эпителиальными клетками средней кишки, редукции эпителиальных клеток, изменении структуры кутикулы, выстилающей задний отдел кишечника.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенным исследованием установлено, что изученные биологически активные вещества (димилин, прекоцен I и прекоцен И) в сублетальных дозах вызывают увеличение продолжительности развития колорадского жука главным образом за счет существенного увеличения продолжительности личиночной стадии (с 13.7 суток в контроле до 22.5 суток после обработки личинок прекоценом II). Однако димилин, прекоцен I и прекоцен II не оказывали влияния на продолжительность развития и массу куколок.

Нами показано, что обработка личинок колорадского жука прекоце-нами не вызывает преждевременный (прекоценовый) метаморфоз, а продолжительность преимагинального развития значительно увеличивается. Сходный эффект прекоценов и их аналогов выявлен и у других насекомых с полным превращением, в частности некоторых чешуекрылых и двукрылых.

Вместе с тем, у многих Hemimetabola прекоцены и их аналоги, хотя и вызывают замедление личиночного развития за счет увеличения продолжительности межлиночного периода, но они стимулируют преждевременное по стадии развития формирование имаго. Вероятно, что разное действие прекоценов на насекомых Hemimetabola и Holometabola связано со специфичностью действия прекоценов в отношении видов определенных отрядов насекомых и зависит от их метаболизма в организме насекомого.

Важной особенностью действия прекоценов на колорадского жука является их токсический эффект на протяжении всего личиночного развития. Поскольку для колорадского жука показана высокая чувствительность к прекоценам личинок младших возрастов, это обусловливает перспективность использования таких соединений в борьбе с этими вредителями пасленовых культур.

Нами показано, что среди всех исследованных биологически активных соединений наибольшей инсектицидной активностью на всем протяжении личиночного развития обладал димилин, особенно при оценке токсичности низких концентраций соединений. Различия в инсектицидной активности трех исследованных соединений (димилин, прекоцен I и прекоцен II) не наблюдаются при обработке личинок более высокими концентрациями соединений, порядка 50 мкг/особь. При этой дозе соединений, наносимых на насекомых, наблюдается и максимальная гибель личинок уже через сутки после обработки.

Изученные нами регуляторы роста и развития насекомых вызывают значительные аномалии в развитии личинок, куколок и имаго колорадского жука. В результате обработки личинок биологически активными соединениями получены особи с разнообразными морфологическими отклонениями: уродливые личинки и куколки, формы, промежуточные между личинками и куколками, а также адультоиды — имаго с признаками куколки. Такой эффект многие авторы трактуют как результат прекоценового метаморфоза. Однако его можно рассматривать и как прямое влияние биологически активных соединений на формообразование колорадского жука. Кроме того, некоторые обработанные биологически активными веществами личинки развивались до стадии куколки, однако процесс вылупления имаго был у них затруднен. После формирования имагинальных структур такие особи оставались в тонкой куколочной кутикуле.

До проведения настоящего исследования было известно, что многие регуляторы роста и развития насекомых оказывают существенное влияние на развитие хеморецепторного аппарата, что в конечном итоге вызывает нарушения хемокоммуникации и химической ориентации, что приводит к изменению полового поведения и миграционной активности таких насекомых.

Относительно колорадского жука и в целом насекомых с полным превращением (Holometabola) сведения по влиянию биологически активных соединений на развитие сенсорного аппарата полностью отсутствовали.

В настоящем исследовании было установлено, что влияние биологически активных соединений на развитие рецепторного аппарата антенн и щупиков ротового аппарата, что действие этих соединений на рецепторные структуры зависит от концентрации соединения. Выявлено также, что наиболее глубокие изменения в хеморецепторном аппарате ротовых придатков наблюдаются у личинок, обработанных димилином на нескольких последовательных возрастах. Сходное влияние на рецепторный аппарат оказывают и прекоцены, которые вызывают не только редукцию кутикулярных отделов сенсилл, но и редукцию нейронов, которые иннервируют эти сенсиллы.

Впервые для насекомых Holometabola показано, что биологически активные соединения вызывают подавление дифференцировки сенсилл, что приводит к уменьшению их числа по сравнению с контрольными особями, а также к нарушению морфогенеза эпителиальных клеток, дифференцирующихся в сенсорные органы, в результате чего формируются дополнительные сенсиллы.

Впервые для насекомых показано, что обработка личинок прекоценом I приводит к разрушению не только кутикулярных отделов, но и рецептор-ных клеток сенсилл, Естественно, что даже если такие особи выживут, у них будут нарушен процесс химического распознавания кормового растения или иных химических факторов окружающей среды.

Влияние биологически активных соединений на метаболические системы колорадского жука исследовалось на примере пищеварительной системы. Было выявлено влияние биологически активных соединений кутику-лярную выстилку передней и задней кишки, в виде формирования полостей и более рыхлом расположении слоев эндокутикулы. Значительные деструктивные изменения претерпевают клетки эпителия кишечника. Последние теряют свою структурную целостность и зачастую дегенерируют.

В средней кишке у обработанных биологически активными соединениями личинок наблюдалось истончение эпителиальных клеток, и происходила облитерация апикальных микроворсинок. Такие патологические изменения среднекишечного эпителия были наиболее характерными для особей, обработанных прекоценами.

Возможно, что с нарушением процесса гидролиза пищи, и утилизации продуктов пищеварения связано формирование карликовых личинок и имаго, размеры которых существенно меньше размеров контрольных особей.

Таким образом, Результаты настоящего исследования дают основание для проведения дальнейших исследований возможности практического использования регуляторов роста, развития и размножения насекомых для борьбы с колорадским жуком. Арсенал этих средств может быть расширен за счет недорогих и доступных аналогов наиболее эффективных биологически активных соединений.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. В., Поскряков А. В., Николенко А. Г. Влияние метопрена и не-реистоксинов на переносимость теплового шока в онтогенезе колорадского жука // Агрохимия. 2000. № 12. С. 58−61.
  2. В.Н. Синтетические аналоги гормонов // Гормональная регуляция развития насекомых. Труды Всес. энтомол. о-ва. JL: Наука, 1983. Т. 64. С. 128−139.
  3. В.Н. Методы испытаний гормональных препаратов (регуляторов роста, развития и размножения насекомых). Методические указания. JL: ВНИИЗР, 1983. 34 с.
  4. В.Н. Биологические предпосылки создания новых регуляторов роста и развития насекомых // Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. JL: ВИЗР, 1984. С. 5−14.
  5. В.Н., Сазонов А. П. Биологически активные вещества в защите растений. М.: Агропромиздат, 1987. 197 с.
  6. А.Ф., Пушина М. Я. Регуляторы роста и развития насекомых в качестве инсектицидов // Агрохимия. 1988. № 11, С. 119−136.
  7. В.П., Алешо Н. А. Синантропные тараканы. Биология, экология, контроль численности. М.: ЗАО «НКФ «РЭТ», 2003. 272 с.
  8. В.П., Путинцева JI.C., Ходаков П. Е. Медицинская дезинсекция: Основные принципы, средства и методы. Екатеринбург: Витар-Путиведь, 1999. 320 с.
  9. Ю.А. Основы общей и сельскохозяйственной экологии: методология, традиции, перспективы. М.: Мир, Колос: 2003.360 с.
  10. С.С. Словарь справочник по биологической защите растений от вредителей: Биология, экология, применение полезных насекомых и клещей: Учебное пособие. М.: Академия, 2003. 208 с.
  11. Т.А. Влияние некоторых физиологически активных веществ гормональной природы на диапаузу колорадского жука (Leptinotarsa decem-lineata Say) // Вопросы экологической физиологии беспозвоночных. М.: Наука, 1974. С. 176−187.
  12. О.И., Черний A.M., Тронь Н. М., Крыжановская Т. В. Эффективность новых аналогов природных миметиков ювенильных гормонов насекомых в природных условиях // Докл. АН Украины. 1994. Т. 16. С. 142 145.
  13. Колорадский картофельный жук, Leptinotarsa decemlineata Say: Филогения, морфология, экология, адаптация, естественные враги. М.: Наука, 1981. 377 с.
  14. И.Т., Сокольчик А. П. Результаты испытаний биопрепаратов в смеси с димилином против колорадского жука и других вредителей // Защита сельскохозяйственных растений в условиях применения интенсивных технологии. 1987. Минск. С. 97−99.
  15. М.Н. Регуляторы развития насекомых в медицинской дезинсекции // РЭТ-инфо. 2003. № 4. С. 18−22.
  16. Н.И., Чипищук М. Д., Вылегжанина Г. Ф., Бабий B.C. Аналоги ювенильного гормона (ФЮГ) в борьбе с колорадским жуком // Биологически активные вещества в защите растений. М.: Колос, 1979. С. 100−103.
  17. А., Когерман А. Аномалии в метаморфозе колорадского жука (Lepti-notarsa decemlineata Say), вызванные обработкой личинок последнего возраста аналогом ювенильного гормона // Известия АН ЭстССР. Биология. 1978. Т. 27. № 2. С. 110−116.
  18. Е.П. Возможность приобретения насекомыми устойчивости к горомоноподобным веществам // Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. Л.: ВИЗР, 1984. С. 15−25.
  19. Е.П., Архипов Г. Е. Использование димилина против капустной белянки Pieris brassicae L. // Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. Л.: ВИЗР, 1984. С. 23−33.
  20. Е.Н. Влияние прекоцена на эмбриональное развитие вредной черепашки (Eurygaster integriceps Puton, Insecta, Hemiptera) // Докл. АН СССР. 1982. Т. 263. № 2. С. 501−503.
  21. Е.Н. Физиологически активные вещества, нарушающие гормональный баланс у насекомых // Журнал общей биологии. 1984а. Т.45. № 1.С. 36−48.
  22. Е.Н. Индуцированный прекоценом II преждевременный метаморфоз в онтогенезе вредной черепашки Eurygaster integriceps II Онтогенез. 19 846. Т. 15. № 6. С. 626−633.
  23. Е.Н. Влияние прекоцена на развитие личинок вредной черепашки {Eurygaster integriceps) II Зоол. журн. 1985. Т. 54, вып. 6. С. 842−850.
  24. Е.Н. Возможности использования биологических особенностей действия растений, содержащих прекоцены, на оранжерейную белокрыл-ку (Trialeurodes vaporariorum Westw.) для подавления ее численности // ДАН СССР. 1991. Т. 316. № 6. С. 1501−1505.
  25. Е.Н. Специфика развития Myzus persicae (Homoptera, Aphididae) на растениях, синтезирующих ингибиторы ювенильного гормона насекомых прекоцены // Зоол. журн. 1997. Т. 76. № 7. С. 777−784.
  26. Е.Н., Ивашкевич О. П. Сенсорный аппарат антенн вредной черепашки при нарушении гормонального баланса // Зоол. журн. 1992. Т. 73. № 12. С. 38−42.
  27. Е.Н., Триселева Т. А. Нарушение развития прилежащих тел в онтогенезе Eurygaster integriceps Puton (Insecta, Heteroptera) под действием прекоцена 2 // Докл. АН СССР. 1984. Т. 293. № 1. С. 246−249.
  28. Е.Н., Триселева Т. А. Подавление развития Locusta migratoria при питании личинок растениями, содержащими прекоцены, и перспективы использования этих растений в биологическом контроле // ДАН СССР. 1989. Т. 306. № з. с. 755−758.
  29. Е.Н., Триселева Т. А. Влияние питания растениями, синтезирующими ингибитор ювенильного гормона, на кишечник личинок Locusta migratoria //Докл. РАН. 1994. Т. 338. № 6. С. 843−846.
  30. Е.Н., Триселева Т. А. Морфофизиологические и поведенческие эффекты дефицита ювенильного гормона в онтогенезе насекомых // Успехи совр. биол. 1992. Т. 112. Вып. 5−6. С. 774−784.
  31. Е.Н., Триселева Т. А. Подавление прекоценом II миграционного летного поведения у перезимовавших клопов Eurygaster integriceps Puton (Insecta, Heteroptera) // Докл. АН СССР. 1984. Т. 279. № 1. С. 247−250.
  32. Е.Н., Триселева Т. А., Ивашкевич О. П. Влияние дефицита ювенильного гормона, вызываемого прекоценом, на развитие мальпигиевых сосудов у вредной черепашки {Eurygaster integriceps) // Зоол. журн. 1985. Т. 64. № 9. С. 1342−1348.
  33. Е.Н., Широкова Е. А., Сегаль Г. М. Морфогенетический эффект некоторых хроменов на онтогенез вредной черепашки Eurygaster integriceps (Puton) II Докл. АН СССР. 1980. Т. 250. № 2. С. 454−457.
  34. А.Н. Влияние некоторых биологически активных веществ на диа-паузу хлопковой совки // Зоол. журн. 1970. Т. 19, вып. 8.
  35. Е.А., Корниенко Н. И., Цизин Ю. С. Действие ингибиторов развития на комаров Aedes aegypti L. и клопов Rhodnius prolixus Stal. Сообщение IV. Активность прекоценов // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. 1981. Т. 50. № 4. С. 46−51.
  36. Родионова JI.3. Опыт регуляции диапаузы у колорадского жука {Leptinotarsa decemlineata Say.) // Докл. АН СССР. 1962. Т. 145. № 6. С. 1377−1381.
  37. Г. И., Левинсон Л. Б. Микроскопическая техника. М.: Советская наука, 1957. 467 с.
  38. С.А. Резистентность членистоногих к инсектицидами (по материалам XX Международного энтомологического конгресса // Агрохимия. 1997. № 12. С. 50−57.
  39. С.А. О резистентности колорадского жука к инсектицидам // Агрохимия, 2001. № 8. С. 54−55.
  40. С.А. Мониторинг резистентности колорадского жука к инсектицидам // Агрохимия. 2005. № 2. С. 61−66.
  41. С.А., Михина Н. Г. О резистентности колорадского жука к инсектицидам // Защита и карантин растений. 2001. № 6. С. 27−28.
  42. А.П. Реактивация вредной черепашки с помощью аналогов ЮГ // Защита растений. 1971. № 9. С. 22−24.
  43. А.П., Праля И. И., Никулина Л. И. Результаты испытаний димилина на комплексе чешуекрылых вредителей яблони // Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. Л.: ВИЗР, 1984. С. 34−47.
  44. А.П., Каретникова И. Н. Стерилизующее действие дифторбензурона на примере американской белой бабочки // Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. Л.: ВИЗР, 1984. С. 54−58.
  45. В.Б. Влияние аналога ювенильного гормона на изменчивость у тлей (Homoptera, Aphididae) // Энтомол. обозрение. 1984. № 2. С. 231−235.
  46. Синицина Е. Е, Чайка С. Ю. рецепторные органы личинок жужелиц (Carabidae, Coleoptera) // Энтомол. обозр. 2003. Т. 82. № 2. С. 276−288.
  47. К. Гормональная регуляция морфогенеза у беспозвоночных, эволюционные аспекты // Журн. общ. биол. 1982. Т. 43. № 6. С. 805−822.
  48. Е.А. Влияние димилина ингибитора синтеза хитина на развитие летней капустной мухи Delia floralis II Регуляторы роста и развития насекомых в борьбе с сельскохозяйственными вредителями. Сборник научных трудов. Л.: ВИЗР, 1984. С. 58−64.
  49. К.П., Чайка С. Ю. Сенсорные органы личинок долгоносикообраз-ных жуков (Coleoptera, Curculionidae) в связи с проблемой классификации надсемейства// Энтомол. обозр. 2001. Т. 80, вып. 2. С. 294−307.
  50. Т.А. Характер изменения прилежащих тел у самок и самцов вредной черепашки (Eurygaster integriceps) под действием прекоцена 2 // Зоол. журн. 1990. Т.69. № 4. С. 145−148.
  51. Т.А. Некоторые аспекты действия ингибитора синтеза ювенильного гормона насекомых прекоцена // Автореф. дис. канд. биол. наук. М.: ИЭМЭЖ АН СССР. 1991. 24 с.
  52. Т.А. Влияние питания на разных растениях на эпителий кишечника Myzodes persicae и Trialeurodes vaporariorum II Зоол. журн. 1995. Т. 74. № 6. С. 76−83.
  53. Т.А. Влияние питания растениями, синтезирующими ингибитор ювенильного гормона, на нейроэндокринный комплекс Myzodes persicae Sulz и Trialeurodes vaporariorum Westw // Зоол. журн. 1999. Т. 78. № 9. С. С. 1068−1072.
  54. Т.А. Влияние растений, синтезирующих биологически активные вещества прекоцены, на насекомых // Известия АН. Серия биол. 2003. № з. С. 337−344.
  55. Р.С. К вопросу об управлении диапаузой колорадского жука (Leptinotarsa decemlineata Say.) // Докл. АН СССР. 1959. Т. 129. № 6. С.1445−1448.
  56. Р.С., Йирковский Г. Г. Экология и физиология колорадского жука. М.: Наука, 1976. 131 с.
  57. Ю.Б., Рославцева С. А., Кутузова Н. М., Барыбкина М. Н., Перегуда Т. А., Иванова Г. Б. Физиолого-биохимические основы действия средств борьбы с вредными членистоногими // Итоги науки и техники. Серия Энтомология. Т. 8. М.: ВИНИТИ, 1988. 193 с.
  58. В.К. Колорадский жук и меры борьбы с ним. Киев. 1956. 121 с.
  59. Р.И. Использование растений в борьбе с вредителями сельскохозяйственных культур // Обз. инф. Сер. 2. ВАСХНИЛ. ВНИИ инф. и техн.-эконом. исслед. агропром. комплекса. 1991. № 5. С. 32−42.
  60. Г. Н., Буров В. Н. Преждевременный метаморфоз личинок Locusta mi-gratoria, вызываемый прекоценом // Зоол. журн. 1983. Т. 62. № 10. С. 1497−1504.
  61. С.Ю., Томкович К. П. Сенсорные органы личинок жуков-долгоносиков (Coleoptera, Circulionidae) // Энтомол. обозр. 1997. Т. 76, вып. 3. С. 508 520.
  62. A.M. Регуляторы роста и развития насекомых // Защита растений. 1991. № 3. С. 19−23.
  63. A.M. Теоретические аспекты применения регуляторов жизнедеятельности насекомых в защите растений // Биологически активные вещества в защите растений. Международный симпозиум. Тез. докладов. Санкт-Петербург. 1999. С. 17−18.
  64. A.M. Биологичне обгрунтування застосування регулятор! в життед! яльност1 комах для обмеження ix чисельность Автореф. дис. доктора сшьскогосподарських наук. КиТв. 2004. 43 с.
  65. A.M., Устименко А. О. Застосування гормональних i бактер! альних препарат1 В для захисту картоши вщ колорадського жука // Захист I карантин рослин. М1жвщомчий тематичний науковий зб1рник. КиТв. 2000. Вип. 46. С. 141−147.
  66. A.M., Чайка В. Н., Бакланова О. В. Контроль численности колорадского жука и картофельной моли // Защита растений. 1994. № 5. С. 7−8.
  67. A.M., Чайка В. Н., Довженок Н. В., Гомелько А. П. Использование биологически активных веществ в защите растений // Теоретические и прикладные аспекты биотехнологий. Киев: УААН, 1991. С. 27−28.
  68. В.Б. Экологическая защита растений. Членистоногие в агроэкоси-стеме. Учебное пособие. М.: изд-во МГУ, 2001. 136 с.
  69. Л.И., Влияние аналогов ювенильного гормона на сперматогенез вредной черепашки {Eurygaster integriceps) в период преддиапаузы и становления диапаузы // Зоол. журн. 1981. Т. 60. № 8. С. 1198−1204.
  70. Л.И., Реутская О. Е., Буров В. Н. Физиологические механизмы псевдостерилизации насекомых, вызываемой ювеноидами // Энтомол. обозрение. 1983. Т. 62. № 2. С. 236−244.
  71. М., Атанасова П., Лавчиева-Начева Г. Исследование влияния ингибиторов синтиза хитина димилина и адсистина на колорадского жука {Leptinotarsa decemlineata Col.: Chrysomelidae) // Годишник на Софийския университет. 1992. Т. 83. С. 75−82.
  72. Aboulafia B.N., Penner М.Р., Staal G.B. Chemical allatectomy of late Locusta embryos by a synthetic precocene and its effect on hopper morphogenesis // J. Insect Physiol. 1984. Vol. 30. № 11. P. 839−852.
  73. AH I.F., Laszlo V. Chemosterilant action of precocene II on males of Dysdercus cingulatus subsequent to larval and adult treatment // Biochem. J. 1981. Vol. 80. P.
  74. Alrubeai H.F. Effects of precocenes I and II on the grasshopper Heteracris lit-toralis (Orthoptera: Acrididae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1986. Vol. 79. № 2. P. 341−343.
  75. Ammar I. M.A. Ovicidal and latent effects following egg-treatment with sub-lethal concentrations of certain IGRs alone and in mixture against the Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata Say // Z. angew. Entomol. 1984. Bd 97. N 5. S. 464−470.
  76. Asano S., Kuwano E., Eto M. Precocious metamorphosis induced by an anti-juvenile hormone compound applied to 3rd instar silkworm larvae, Bombyxmori L. (Lepidoptera: Bombycidae) // Appl. Entomol. and Zool. 1986. Vol. 21. № 2. P. 305−312.
  77. Asano S., Kuwano E., Eto M. Threshold size for precocious metamorphosis by an anti-juvenile hormone in silkworm larvae, Bombyx mori II Appl. Entomol. and Zool. 1987. Vol. 22. № 4. P. 424−433.
  78. Azambuja P.D., Bowers W.C., Ribeiro J.M.C., Garcia E.S. Antifeedant activity of precocenes and analogs on Rhodniusprolixus II Experientia. 1982. Vol. 38. N 9. P. 1054−1055.
  79. Azambuja P.D., Garcia E.S., Ribeiro J.M.C. Effects of ecdysone on the metamorphosis and ecdysis prevention induced by precocene I in Rhodnius prolixus II Gen. and Сотр. Endocrinol. 1981. Vol. 45. № 1. P. 100−104.
  80. Azambuja P.D., Garcia E.S., Furtado A.F. Action du precocene II sur le retard de la mue et de la metamorphose chez Rhodnius prolixus (Heteroptere) // C. r. Acad. Sci. 1981. T. 3. 292. № 22. P. 1173−1175.
  81. Barton A.E., Wing K.D., Le D.P., Slaweski R.A., Feyeresion R. Arylpyridyl-thiosemicarbazones: Anew class of anti-juvenile hormones active against Lepidoptera // Experientia. 1989. Vol. 45. № 6. P. 580−583.
  82. Becker B. Effects of 20-Hydroxy-ecdysone, juvenile hormone, dimilin, and captan on in vitro synthesis of peritrophic membranes in Calliphora erythrocephala И J. Insect Physiol. 1978. Vol. 10−11. P. 699−703.
  83. Belles X., Baldellou M., Messeguer A. Synergistic action of diethyl maleate on the morphogenetic and antigonadotropic activity of precocenes on the seed bug Oxycarenus lavaterae II Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1987. Vol. 4. № 2. P. 107−112.
  84. Belles X., Baldellou M. Effects of precocenes on Oxycarenus lavaterae (Heteroptera, Lygaeidae, Oxycareninae) // Regulation of insect reproduction. Pracha: Academia, 1982.
  85. Belles X., Baldellou M. Precocious metamorphosis induced by precocenes on Oxycarenus lavaterae II Entomol. exp. appl. 1983. Vol. 34. № 2. P.129−133.
  86. Bertuso A.G., Morooka S., Tojo S. Sensitive periods for wing development and precocious metamorphosis after precocene treatment of the brown planthopper, Nilaparvata lugens II J. Insect Physiol. 2002. Vol. 48. P.221−229.
  87. Binder B.F., Bowers W.S. Precocene II induced changes in midgut epithelial cellsthof the corn earworm, Heliothis zea II Proc. 18 Int. Congr. Entomol. Vancouver: Abstr. and Autor Index. 1988. P. 134.
  88. Binder B.F., Bowers W.S. Effects of precocene II on the nutritional physiology of last instar, Heliothis zea larvae // Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1992. Vol. 19. N4. P. 237−246.
  89. Binder B.F., Bowers W.S., Evans P.H. Insect anti-juvenile hormone and juvenile hormone activity from plants in the genus Nama II Experientia. 1991. Vol. 47. № 2. P. 199−201.
  90. Bitseh C., Bitseh D. Antigonadotropic, antiallatae effects of precocene II in the fire bat Zhermobia domesticue (Zhysamera: Lepismaidae) // J. Insect Physiol. 1984. Vol. 30. № 6, P. 463−470.
  91. Bowers W.S. Discovery of insect antiallatotropins // The juvenile hormones. N.Y.: Plenum Press, 1976. P. 737−742.
  92. Bowers W.S. How anti-juvenile hormones work // Amer. Zool. 1981. Vol. 21. № 3. P. 737−742.
  93. Bowers W.S. The search for 4-th generation pesticides // Natur. Prod. Innovative Pest. Manag. 1983. Oxford. P. 47−58.
  94. Bowers W.S., Aldrich J.R. In vivo inactivation of denervated corpora allata by precocene II in the bug, Oncopeltus fasciatus II Experientia. 1980. Vol. 36. № 3, P. 362−364.
  95. Bowers W.S., Bliekenstaff С.С. Hormonal termination of diapause in the alfalfa weevil // Science. 1966. Vol. 154. P. 1673−1674.
  96. Bowers W.S., Feldlaufer M.F. In vitro inactivation of Tenebrio molitor corpora al-lata by a synthetic precocene analog // Gen. and Сотр. Endocrinol. 1982. Vol. 47. P. 120−124.
  97. Bowers W.C., Ochta Т., Cleere G.S., Marsella P.A. Discovery of insect anti-juvenile hormones in plants // Science. 1976. Vol. 193. N 4253. P. 542−547.
  98. Bradley J.T., Haynis W. Precocene-induced effects on ovarian development in crickets // Сотр. Biochem. and Physiol. A. 1991. Vol. 16. № 98. P. 213−219.
  99. Brooks G.T., Pratt G.E., Jennings R.C. The action of precocene in milkweed bugs (Oncopeltus fasciatus) and locusts (Locusta migratoria) // Nature. 1979. Vol. 281. N5732. P. 570−572.
  100. Brown T.M., Brown A.W.A. Experimental induction of resistance to a juvenile hormone//J. Econ. Entomol. 1974. Vol. 67. N 6. P. 799−801.
  101. Cerf D.C., Georghiou G.P. Cross-resistance to juvenile hormone analogues in insecticide-resistant strains of Musca domestica // Pestic. Sci. 1978. N.5. P. 759 767.
  102. Chang F., Hsu C.L. Effect of precocene II on sex attractancy in the Mediterranean fruit fly Ceratiatus capitata II Ann. Entomol. Soc. Amer. 1982. Vol. 75. № 1. P. 38−42.
  103. Chang F., Hsu C.L., Jurd L., Williamson D.L. Effect of precocene and benzyl-1,3-benzodioxole derivatives on the sex attractancy in the Mediterranean fruit fly (Diptera: Tephritidae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1984. Vol. 77. № 2. P. 147−151.
  104. Chellayan S., Karnavar G.K. Influence of precocene-I on the development of vitel-logenic oocytes in Trogoderma granarium Everts (Coleoptera: Dermestidae) // Proc. Indian Acad. Sci. 1988. Vol. 97. № 5. P. 435−442.
  105. Chenevert R., Perron J.M., Raquin R., Robitallie M., Wang Y.K. Activity of pre-cocene analogs on Locusta migratoria migratoriodes (R and F) // Experientia. 1980. Vol. 36. N4. P. 379−380.
  106. Chenevert R., Perron J.M., Raquin R., Plante R. Morphogenetic effect of preco-cene I and II on Schistocerca gregaria (Forsk.) // Experientia. 1981. Vol. 37. № l.P. 32−34.
  107. Clarke L., Temple G.H.R., Vincent J.F.V. The effects of a chitin inhibitor Di-milin — on the production of peritrophic membrane in the locust, Locusta migratoria // J. Insect Physiol. 1977. Vol. 23. P. 241−246.
  108. Connin R.V., Iantz O.L., Bowers W.S. Termination of diapause in the cereal leaf beetle by hormones //J. Econ. Entomol. 1967. Vol. 60. № 6. P. 1752−1753.
  109. Das Y.T., Gupta A.P. Effects of three juvenile hormone analogs on the female German cockroach, Blatella germanica (L.) (Dictyoptera: Blattellidae) // Experientia. 1974. Vol. 30. № 9. P. 1093−1095.
  110. Deb D.C., Chakravorty S. Effect of precocene II, with or without juvenoid pre-treatment, on growth and differentiation of testis of Corcyra cephalonica (Stainton) // Indian J. Exp. Biol. 1982. Vol. 20. P. 742−747.
  111. Deb D.C., Chakravorty S. Juvenoid-induced effects on the growth and differentiation of testis in the rice moth Corcyra cephalonica II J. Insect Physiol. 1981. Vol. 27. № 6. P. 397−402.
  112. Delisle J. Cloutier C. Mcneil J.N. Precocene II-induces alate production in isolated and crowded alate and apterous virginoparae of the aphid, Macrosiphum eu-phorbiae И J. Insect Physiol. 1983. Vol. 29. № 6. P. 477−484.
  113. Demark J.J. Bennett G.M. Ovividal activity of chitin synthesis inhibitors when fed to adult German cockroaches (Dictyoptera: Blatellidae) // J. Med. Entomol. 1990. Vol. 27. № 4. P. 551−555.
  114. Denholm I., Rowland M.W. Tactics for managing pesticide resistence in arthropods: theory and practice // Annu. Rev. Entomol. 1992. Vol. 37. P. 91−112.
  115. Dillwith J.W. Mane S.D., Chippendale G.M. High affinity juvenile hormone binding protein of the haemolymph of the southwestern corn borer, Diatraea gran-diosella, characteristics and relation to diapause // Insect Biochem. 1985. Vol. 15. № 2. P. 233−246.
  116. Dyte C.E. Resistance to a synthetic juvenile hormone in a strain of the flour beetle Tribolium castaneum 11 Nature. 1972. N 238. P. 48−49.
  117. Doane J.F., Klingler J. Location of C02-receptive sensilla on the larvae of the wireworms Agriotes lineatus-obscurus and Limonius californicus II Ann. Ent. Soc. Amer. 1978. Vol. 71. P. 357−363.
  118. Dorn A. Precocene-unduced effects and possible role of juvenile hormone during embryogenesis of milkweed bug Oncopeltus fasciatus II Gen. and Сотр. Endocrinol. 1982. Vol. 46. № 1. P. 42−52.
  119. Edvards J.P., Menn J.J. The use of juvenoids in insect pest management // Chem. Pflanzenschutz. und Schadlings-bekamfungs. 1981. Berlin e.a., P. 185−215.
  120. Eid M.A.A., Salem M.S., Taha G.Z. Effects of precocene II on food consumption vitalizations and photolytic activity in Schistocerca gregaria II Biochem. Syst. and Ecol. 1988. Vol. 16. № 5. P. 509−514.
  121. Eid M.A.A., Salem M.S., Taha G.Z. Effects of precocene II on morphogenesis of the desert locust Schistocerca gregaria II Biochem. Syst. and Ecol. 1988. Vol. 16. № 5. P. 515−520.
  122. Ellis P.G. The mode of action of pro-allatocidins // Natur. Prod. Innovative Pest Manag. 1983. Oxford e.a. P. 323−353.
  123. Fagoonee I., Umrit G. Antigonadotropic hormones from the goatweed, Ageratum conezoides // Insect Sci. Appl. 1981. Vol. 1. N 4. P. 373−376.
  124. Farag A.I., Varjas L. The action of precocene II on the development and reproduction of the cotton stainer, Dysdercus cingulatus, following larval treatment // Acta Phytopathol. Acad. Sci. hung. 1981. Vol. 16. № 1−2. P. 223−231.
  125. Fluri P. Precocene II has no anti-juvenile hormone effects in adult honey bees // Experientia. 1983. Vol. 39. N 8. P. 919−920.
  126. Fonagy A., Darvas В., Kulcsar P. Varjas L. A prekocenek biologiai hatasa a rovarok egyedfejlodesere //Novenyvedelem. 1986. Vol. 22. № 7. P. 307.
  127. Fridman-cohen S., Staal G.B., Pener M.P. Quantitative studies on anti-allatin and lethal effects of a synthetic precocene in different larval instars of the desert locust // Entomol. Exp. et appl. 1984. Vol. 36. № 2. P. 115−124.
  128. Fu Y.L., Xiang X.F., Guan X.C. Effect of precocene II on sex attractancy in the moths of army worm Mythimna separate Walker // Act entomol. sin. 1986. Vol. 29. № l.P. 1−9.
  129. Goodman W.G., Trost J.T., Reiter C.T., Bean D.W., Carlson R.O. Hemolymph transport of the juvenile hormones // Biosynth., Metabolism and mode Act. Invertebrate Hormones. Berlin e. a. 1984. P. 426−437.
  130. Goodman W.G. Relative hemolymph juvenile hormone binding capacity during larval, pupal and adult development in Manduca sexta II Insect Biochem. 1985. Vol. 15. № 5. p. 557−564.
  131. Govindachari T.R. Chemical and biological investigations on Azadirachta indica (the neem tree) //Curr. Sci. (India). 1992. Vol. 63. N 3. P. 117−122.
  132. Hales D.F., Mittler Т.Е. Precocious metamorphosis of the aphid Myzus persicae induced by the precocene analogue 6-methoxy-7-ethoxy-2,2-dimethylchromene //J. Insect Physiol. 1981. Vol. 27. № 5. P. 333−337.
  133. Hales D.F., Mittler Т.Е. Precocen causes male determination in the aphid Myzus persicae И J. Insect Physiol. 1981. Vol. 29. N 7. P. 819−823.
  134. Hales D.F., Mittler Т.Е. Male production by aphids prenatally treated with precocene: prevention by short-term kinoprene treatment // Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1988. Vol. 7. № 1. P. 29−36.
  135. Hardie J. Precocenes and morph differentiation in female aphids // Popul. Struct., Genet, and Taxon. Aphids and Thysanoptera: Proc. Int. Symp. Bratislava. 1987. P. 145−157.
  136. Hardie J., Lees A.D. Endocrine control of polymorphism and polyphenism // Comprehensive Insect Physiology, Biochemistry and Pharmacology. Eds. C.A. Kerkut, L.J. Gilbert. Vol. 8. Oxford: Pergamon Press, 1985. P. 441−490.
  137. Haunerland N., Bowers W.S. Comparative studies on pharmacokinetics and metabolism of the anti-juvenile hormone precocene II // Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1985. Vol. 2. № 1. P. 55−63.
  138. Hebbalker D.S., Sharma R.N. Effects of age, sex, oogenetic cycles, body weight, juvenoids and precocene II on the oxygen consumption of red cotton bug Dys-dercus koenigii F. // Indian J. Exp. Biol. 1991. Vol. 29. № 10. P. 962−966.
  139. Hebbalker D.S., Sharma R.N. repression of mating behaviour by nymphal exposure to sublethal doses of juvenile hormone analogues in Dysercus koenigii Fabricius (Hemiptera: Pyrrhocoridae) // Curr. Sci. (India). 1980. Vol. 49. № 12. P. 457−459.
  140. Herbert E.W., Argauer R.J., Shimanuki H. The effects of an insect chitin synthesis inhibitor on honey bees // Apidologie. 1986. Vol. 17. № 1. P. 73−76.
  141. Hodkova M. Socha R. Comparison of effects of starvation and precocene II on the function for denervated corpus allatum in Dysdercus cingulatus females // Entomol. Acta entomol. bohemoslov. 1982. Vol. 79. № 2. P. 108−111.
  142. Jacob M. Prabhu V.K.K. Effects of two juvenile hormone analogues on embryonic neuroendocrine system of Dysdercus cingulatus (Heteroptera, pyrrhocoridae) // Entomon. 1979. Vol. 4. № 2. P. 205−208.
  143. King J.E. Bennett G.W. Comparative sterilizing and ovioothecae of the fenoxycarb and hydroprene in adults and oothecae of the German cockroach (Dictyoptera: Blatellidae) // J. Med. Entomol. 1990. Vol. 27. № 4. P. 642−645.
  144. Klingler J. Uber den Sites der CO2 Receptoren bei der Larve von Otiorrhynchus sulcatus //Ent. Exp. Appl. 1966. Vol. 9. P. 271−277.
  145. Kort C.A.D. de, Bergot B.J., Schooley D.A. The nature and titre of juvenile hormone in the Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata II J. Insect Physiol. 1982. Vol. 28. № 5. P. 471−474.
  146. Kort C.A.D. de, Khan M.A., Koopmanschap A.B. Juvenile hormone and the control of adult diapause in the Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata II Insect Biochem. 1987. Vol. 17. P. 985−988.
  147. Kozhanova N.I., Nemec V. Comapison on the effects of hydroprene and precocene II on oogenesis in the mealworm, Tenebrio molitor (Coleoptera, Tenebrioni-dae) // Acta entomol. bohemoslov. 1991. Vol. 88. № 5. P. 281−285.
  148. Kruze P.L.E. Effect of anti-juvenile hormone (precocene I) on the development of Locusta migratoria II Gen. Сотр. Endocrin. 1978. Vol. 36. P. 502−509.
  149. Kubo I., Matsumoto A., Matsumoto Т., Klocke J.A. New insect ecdysis inhibitory limonoid deacetylazadirachtinol isolated from Azadirachta indica (Meliaceae) oil II Tertahedron. 1986. Vol. 42. N 2. P. 486−496.
  150. Martinez C.T., Garcera Z.M.D., Lavador E.A. et al. Precocene induced changes in the neurosecretory cells of 2 heteropteran bugs // Juv. hormone biochemistry. N.-Y. 1981. P. 329−332.
  151. Mathai S., Nair V.S.K. Effects of precocene II on last instar larvae of Spodoptera mauritia (Lepidoptera: Noctuidae) // Curr. Sci. (India). 1983. Vol. 52. № 8. P. 376−377.
  152. Mathai S., Nair V.S.K. Treatment of larvae with repeated doses of precocene II induces precocious metamorphic changes in Spodoptera mauritia (Lepidoptera: Noctuidae) II Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1984. Vol. 1. № 2. P. 199 203.
  153. Matolin S. Effects d’un analogue de Г hormone juvenile surles embryons de trios orders d’insectes // Arch. zool. exp. et gen. 1971. Т. 112. № 3. P. 505−509.
  154. Mellaert H.van., Loof A. de, Jurd L. Insecticidal effects of a benzyl-1,3-benzodioxole chemosterilant with anti-juvenile hormone activity on the Colorado potato beetle // Meded Fac. landbouwwetensch. Rijksuniv. Gent. 1983. Vol. 48. N2. P. 303−307.
  155. Mellaert H.van., Theunis S., Loof A.D. Juvenile hormone binding proteins in Sar-cophaga bullata, haemolymph and vitellogenic ovaries // Insect Biochem. 1985. Vol. 15. № 5. P. 655−661.
  156. Mohanakumar D., Muraleedharan D. Precocene-II and the secretory rhythm of the median neurosecretory cells in the semilooper caterpillar, Achoea janata L. // Entomon. 1985. Vol. 10. № 2. P. 159−164.
  157. Mukhopadhyay В., Roychoudhury N., Chakravorty S. Development and pheno-typic changes in the green stink bug, Nezara viridula due to juvenoid and pre-cocene-II treatments //Zool. Anz. 1988. Bd. 220. № 5−6. S. 313−322.
  158. Mukherjee S.N., Ramachandran R. Effects of azadirachtin on the feeding, growth and development of Tribolium castaneum (Herbst) (Col., Tenebrionidae) // J. Appl. Entomol. 1989. Vol. 107. N2. P. 145−149.
  159. Muraleedharan D., Varghese A. Precocene-induced light and electron microscopic changes in the pars intercerebralis neurosecretory cells of the semilooper caterpillar Achoea janata Linn. // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. 1986. Vol. 52(B). № 4. P. 445−450.
  160. Mulder R., Gijwijt M.J. The laboratory evaluation of two promising new insecticides which interfere with cuticle deposition // Pestic. Sci. 1973. N 4. P. 437 445.
  161. Nair C.R.M., Prabhu V. Effects of precocene II on indirect flight muscle histolysis in Dysdercus cingulatus II Curr. Sci. (India). 1980. Vol. 49. № 20. P. 798−799.
  162. Nasiruddin M., Mordue A.J. The effect of azadirachtin on the midgut histology of the locusts, Schistocerca gregaria and Locusta migratoria II Tissue and Cell. 1993. Vol. 25. N 6. P. 875−884.
  163. Nemec V., Chen T.T., Wyatt G.R. Precocious adult locust, Locusta migratoria mi-gratoriodes induced by precocene // Acta entomol. bohemoslov. 1978. Vol. 75. N 4. P. 285−286.
  164. Nemec V., Kachovcova J., Peroutka M., Vesely V. Precocenes: possible means to control the bee mite, Varroa jacobsoni (Oudemans) // Folia parasitol. 1990. Vol. 37. № 2. P. 157−163.
  165. Ondracek J., Sazonov A.P., Reutskaja O.J. Covert effects of juvenoids on a field population of the sunn burg, Eurygaster integriceps (Heteroptera, Scutellidae) // Acta entomol. bohemoslov. 1981. Vol. 78. № 4. P. 231−242.
  166. Osman K.S.A., Schmidt G.H. Wirkung von precocene-III auf die hormonale steuerung der oogenese und larvensterblichkeit bei Aiolopus thalassinus Fabr. (Saltotoria: Acrididae) // Mitt. Dtsch. Ges. Allg. und angew. 1988. Bd 6. № 46. S. 347−363.
  167. Pener M.P., Orshan L., de Wilde J. Precocene II causes atrophy of corpora allata in Locusta migratoria//Nature. 1977. Vol. 272. P. 350−353.
  168. Peterson P. Purification and properties of the juvenile hormone carrier protein form the hemolymph of Manduca sexta // Meth. Enzymol. 1985. Vol. 111. Pt B. P. 482−487.
  169. Plulachs M.D., Cassier P., Belles X. Ultrastructural changes induced by precocene II and 3,4-dihydroprecocene II in the corpora allata of Blattella germanica II Cell and Tissue Res. 1989. Vol. 258. № 1. P. 91−99.
  170. Pradeep A.R., Nair V.S.K. Morphogenetic effects of precocene II in the brown planthopper Nilaparvata lugens Stal. (Homoptera- Delphacidae) // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. 1989. Vol. 55. № 5−6. P. 381−386.
  171. Rankin M.A. Effects of precocene I and II on flight behaviour on Oncopeltus fasciatus, the migratory milkweed bug // J. Insect Physiol. 1980. Vol. 26. N 1. P. 67−73.
  172. Rankin S.M. Rankin M.A. The hormonal control of migratory flight behavior in the convergent ladybird beetle Hippodermia convergens II Physiol. Entomol. 1980. Vol. 5. P. 175−182.
  173. Rembold H., Czoppelt С., Sharma G.K. Precocene II is not anti-juvenile hormone in the honey bee Apis mellifera И Z. Naturforsch. 1979. Bd 34. № 12. S. 1261 -1263.
  174. Rembold H., Forster H. Azadirachtin-artigen Verbindungen und ihre Verwendung in Insektenvernichtungsmitteln // Max-Planck-Ges. zur Forderung der Wissen-schaften. 1988. eV-N P3702175.3.
  175. Renucci M. Juvenile hormone degradation in nerve and fat body of female Acheta domesticus (Insecta, Orthoptera) // Сотр. Biochem. and Physiol. 1986. Vol. 84(A). № 1. P. 101−106.
  176. Retnakaran A., Grisdale D., Percy J. Regulation of juvenile hormone metabolism in the oleander hawkmoth, Deilephila nerii (L.) // Сотр. Biochem. and Physiol. 1985. Vol 82(A). № 1. P. 117−124.
  177. Rup P.J., Baniwal A. Responses of Zaprionus paravittiger (Drosophilidae: Dip-tera) to antijuvenile hormone, precocene. 11 Insect Sci. Appl. 1985. Vol. 6. № 6. P. 671−675.
  178. Rup P.J., Sohal S.K. Morphogenetic effects of precocene II on Lipaphis erysimi
  179. Homoptera, Aphididae) // Acta entomol. bohemoslov. 1989. Vol. 86. N 3. P. 172−178.
  180. Rup P.J., Sohal S.K. Morphogenetic effects of precocene II on Lipaphis erysimi (Homoptera, Aphididae) // Acta entomol. bohemoslov. 1997. Vol. 86. P. 172 178.
  181. Samaranayaka-Ramasamy M., Chaudhury M.F.B. Precocene treatment of the female tsetse fly Glossina morsitans morsitans sterilizes her female offspring // Experientia. 1981. Vol. 37. n 9. P. 1027−1029.
  182. Samaranayaka-Ramasamy M., Chaudhury M.F.B. Precocene-induced sterility in Fi generation of Glossina morsitans morsitans II J. Insect Physiol. 1982. Vol. 28. № 6. P. 559−569.
  183. Samui T.N., Deb D.C., Chakravorty S. Hydroprene induced changes in food consumption by the larva of Anomis sabulifera Guenee (Lepidoptera: Noctuidae) // Sci. and Cult. 1982. Vol. 48. N 10. P. 369−270.
  184. Santha P.C., Nair V.S.K. Age-dependent responses of last instar larvae of Spodoptera mauritia to precocene II. // Physiol. Entomol. 1986. Vol. 11. № 3. P. 335 341.
  185. Santha P.C., Nair V.S.K. Precocene-induced abnormalities in Fj generation of Spodoptera mauritia (Lepidoptera) // Zool. Anz. 1988. Bd. 220. № 1−2. S. 104 110.
  186. Santha P.C., Nair V.S.K. Precocene-induced changes in the cerebral neurosecretory cells of Spodoptera maurita Boisf (Lepidoptera, Noctuidae) // Zool. Anz. 1991. Bd 226. N 3−4. S. 163−170.
  187. Saxena B.P., Koul O., Tikku K., Atal C.K. A new insect chemosterilant isolated from Acorus calamus L. // Nature. 1977. Vol. 270. P. 512−513.
  188. Saxena R.C., Khan Z.R. New bioactive products: growth regulators, antifeedants, pheromones and other attractants // Rend. Acad. naz. sci. XL. 1988. N. 11. N 2. P. 303−317.
  189. Schanz M. Der Geruchsinn des Kartoffelkafers (Leptinotarsa decemlineata Say) // Z. vergl. Physiol. 1953. Bd 35. S. 353−379.
  190. Schooley D.A., Baker F.C., Tsai L.W., Miller C.A., Jamieson G.C. Juvenile hormones 0,1 and II exit only in Lepidoptera // Biosynth., Metabolism, and mode Act. Invertebrate Hormones. 1984. Berlin e. a. P. 373−383.
  191. Schooneveld H. Precocene-induced collapse and resorption of corpora allata in nymphs of Locusta migratoria // Experientia. 1979. Vol. 35. № 3/ P. 363−364.
  192. Schooneveld H., Otazo Sanchez A., Wilde J. de. Juvenile hormones induced break and termination of diapause in the Colorado potato beetle // J. Insect Physiol. 1977. Vol. 23. P. 689−696.
  193. Scott D.A., Zacharuk R.Y. Fine structure of the antennal sensory appendix in the larva of Ctenicera destructor (Brown) (Elateridae: Coleoptera) // Can. J. Zool. 1971. Vol. 49. N2. P. 199−210.
  194. Sehnal F., Skluhravy V. Effects of juvenoids on Leptinotarsa decemlineata (Col., Chrysomelidae) and consideration on their practical significance // Z. angew. Ent. 1976. Bd. 81. S. 401−412.
  195. Sen A., Mitchell B.K. Olfaction in the Colorado potato beetle: Ultrastructure of antennal sensilla in Leptinotarsa sp. // J. Biosci. 2001. Vol. 26. N 1. P. 233−246.
  196. Shalom U., Pener M.P. Endocrine manipulations and ontogenesis of male sexual behaviour in Locusta: studies on precocene-induced early adultiforms // Physiol. Entomol. 1986. Vol. 11. № 4. p. 441−452.
  197. Slama K., Hodkova M. Insect hormones and bioanalogues: their effect on respiratory metabolism in Dermestes vulpinus L. (Coleoptera) // Biol. Bull. 1975. Vol. 148. P. 320−332.
  198. Slama K., Romanuk M., Sorm F. Insect hormones and bioanalogues. Wien-New-York, 1974.
  199. Slama K., Williams C.M. Juvenile hormone activity for the bug Pyrrhocoris ap-terusll Proc. nat. Acad. Sci. (Amer.). 1965. Vol. 54. P. 154−159.
  200. K., Williams C.M. «Paper factor» and metamorphosis in Pyrrhocoris II Biol. Bull. Mar. Biol. Labor. Woods Hole. 1966. Vol. 130. P. 235−246.
  201. Srihari Т., Gahukar R.T. The influence of juvenile hormone on food consumption and growth in the last instar larvae of Pieris brassicae L. (Lepidoptera: Pieri-dae) // Bull. Soc. zool. France. 1975. T. 100. № 3. P. 327−333.
  202. Srivastava U.S., Kumar K. Precocene I and II induced metamorphosis in a noctuid moth, Spodoptera litura Fabr. // Proc. Nat. Acad. Sci. India. 1997. Vol. 67 (B). № 3−4. P. 213−226.
  203. Srivastava U.S., Kumar K. Juvenilizing effects of ethoxyprecocene in a lepidop-teran insect // Indian J. Exp. Biol. 1999. Vol. 37. N 4. P. 379−383.
  204. Srivastava U.S., Prasad S.S. Effect of a juvenoid on the development of compound eyes of Spodoptera litura Fabr. // Proc. Nat. Acad. Sci. India. 1982. Vol. 48. № 4. P. 459−475.
  205. Srivastava U.S., Prasad S.S. Sensitivity of the last and penultimate larval instars of papilio demoleus Linn, to a juvenoid // Proc. Nat. Acad. Sci. India. 1982. Vol. 52 (B). № 2. P. 234−245.
  206. Srivastava U.S., Srivastava R.S. Juvenoid-induced supernumerary larval instars in certain stored grain insects // Proc. Nat. Acad. Sci. India. 1983. Vol. 92. № 3. P. 263−276.
  207. Staal G.B. Anti juvenile hormone agents // Ann. Rev. Entomol. 1986. Vol. 31. P. 391−429.
  208. Suarez O., Otazo A., Portilla N., Barro P. Efecto del Hidropene, analogo de la hormona juvenile, sobre la ovoposition у conducta sexual de Corcyra cephalo-nica (Lepidoptera: Galleriidae) // Rev. biol. 1989. Vol. 3. P. 249−253.
  209. Sundaram K.M.S. Azadirachtin biopesticide: a review of studies conducted on its analytical chemistry, environmental behavior and biological effects // J. Environ. Sci. Health. 1996. Vol. 31. N 4. P. 913−948.
  210. Taylor Ch. Genetics and evolution of resistance to insecticides // Biol. J. Linn. Soc. 1986. Vol. 27. N2. P. 103−112.
  211. Unnithan G.C. Effect of precocenes on the sorghum shoofly, Atherigona soccata (Diptera, Miscidae) // Natur. Prod. Innovative pest Manag. 1983. Vol. Oxford e. A., P. 357−365.
  212. Unnithan G.C., Nair K.K., Bowers W.S. Precocene induced degeneration of the corpus allatum of adult females of the bug Oncopeltus fasciatus II J. Insect Physiol. 1977. Vol. 23. № 9, P. 1081−1094.
  213. Unnithan G.C., Nair K.K., Koolmen C.J. Effects of precocene II and juvenile hormone III on the action of neurosecretory A-cells in Oncopeltus fasciatus // Ex-perientia. 1978. Vol. 34. N 3. P. 411−412.
  214. Venet S., Fuzeau-Braesch S. Action du precocene II chez Gryllus bimaculatus (In-secta: Orthoptera) // C. R. Soc. Biol. 1982. T. 176. № 2. P. 133−139.
  215. Walker W.I. Mating behavior in Oneopeltus fasciatus Dallas.: effects of diet, pho-toperiod, juvenoids and precocene II // Physiol. Entom. 1978. Vol. 3. № 2. P. 147−155.
  216. Wegorek W. Stonka ziemniaczana (Leptinotarsa decemlineata Say) // Prace Nauk. Inst. Ochr. Roslin. 1959. Т. 1. N 2. S. 1−178.
  217. Werf W.V.D., Schooneveld H. Prothetelic development of Locusta migratoria caused by ingestion of precocenes and Ageratum foliage // Meded Fac. land-bouwwetensch. Rijksuniv. Gent. 1984. Vol. 49. N 3. P. 737−743.
  218. Wilde J. de. Insektenhormone und Insekbekampfiing // Z. angew. Entomol. 1975. Bd. 77. № 3. s. 279−286.
  219. Wilde J. de, Hille R., Lambers-Suverkropp K., Tol A. van. Responses to air flow and airborne plant odour in the Colorado beetle // Netherl. J. Plant Pathol. 1969. Vol. 75. P. 53−57.
  220. Wilde J. de, Lutke Schipholt I. J. Some effects of exogenous junenile hormone and mimetics on diapause in the Colorado potato beetle {Leptinotarsa decemlineata * Say.) // Zool. Jb. Abt. Physiol. 1974. Bd 78. S. 449−460.
  221. White R.A., Paim U., Seabrook W.D. Maxillary and labial sites of carbon dioxide-sensitive receptors of larval Orthosoma brunneum (Fors.)(Coleoptera, Ceram-bycidae)//J. Сотр. Physiol. 1974. Vol. 88. P. 235−246.
  222. Ye., Hiromu A., Makoto К. Сравнительные исследования прилежащих тел у нормальных гусениц Bombyx mori и гусениц с 3 линьками, вызванными обработкой антиювеноидом //J. Sericult. Sci. Jap. 1987. Vol. 56. № 3. P. 226−230 (яп.).
  223. Yin C.M., Zou B.X., Stoffolano J.G. Precocene II treatment inhibits terminal oocyte development but not vitellogenin synthesis and release in the black blowfly, Phormia regina Meigen // J. Insect Physiol. 1989. Vol. 35. № 6. P. 465 474.
  224. Yuhas D.A., Roe R.M., Sparks T.C., Hammond A.M.Jr. Purification and kinetics of juvenile hormone esterase from the cabbage looper, Trichoplusia ni (Hub-ner) // Insect Biochem. 1983. Vol. 13. № 2. P. 129−136.
  225. Zacharuk R.Y., Albert P.J., Bellamy F.W. Ultrastructure and function of digiti-form sensilla on the labial palp of a larval elaterid (Coleoptera) // Can. J. Zool. 1977. Vol. 55. P. 569−578.
  226. Zamorano G., Carrau M.D.T., Llavador Enguix A., Martinez Pardo R., Nunez Ca-chaza A. Precocene II induced sterility in four insect species // Juvenile hormone: Action, Agonism and Antagonism. Proc. 3 Int. Congr., Brighton. Amsterdam. 1981. P. 311−314.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!