Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Прооксидантно-антиоксидантное равновесие у растений при воздействии гипертермии и экзогенных фитогормонов

Диссертация: Прооксидантно-антиоксидантное равновесие у растений при воздействии гипертермии и экзогенных фитогормонов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Kosakivska, Maidebura, 1994; Полевой и др., 1997; Веселов и др., 1998; Шакирова, Безрукова, 1998; Ракитина и др., 2001; Шакирова, 2001). Известно, что ИУК может изменять внутриклеточный окислительно-восстановительный потенциал (Jones, 1994; Bilang, Sturm, 1995), который, в свою очередь, играет важную роль в регуляции генной активности (Константинов и др., 2001), а АБК способна влиять… Читать ещё >

Прооксидантно-антиоксидантное равновесие у растений при воздействии гипертермии и экзогенных фитогормонов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений
  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Современные представления о стрессе и его особенности у растений. Ю
    • 1. 2. Перекисный гомеостаз растений
    • 1. 2. Роль и механизмы участия фитогормонов в развитии стресса
  • 2. Объект и методы исследований
    • 2. 1. Объект исследований и постановка опытов
    • 2. 1. Методы анализов
      • 2. 2. 1. Получение общеклеточной фракции ферментов
      • 2. 2. 2. Определение диеновых конъюгатов
      • 2. 2. 3. Определение гидроперекисей
      • 2. 2. 4. Определение активности супероксиддисмутазы
      • 2. 2. 5. Спектрофометрическое определение активности каталазы
      • 2. 2. 6. Определение активности глутатионредуктазы
      • 2. 2. 7. Спектрофометрическое определение активности глутатионтрансферазы
      • 2. 2. 8. Определение содержания белка
      • 2. 2. 9. Выделение, суммарной РНК из листьев гороха
      • 2. 2. 10. Электрофорез и иммобилизация РНК
      • 2. 2. 11. Амплификация и выделение рекомбинантной плазмидной ДНК
      • 2. 2. 12. Рестрикция и электрофорез плазмидной ДНК
      • 2. 2. 13. Нозерн-блот-гибридизация
      • 2. 2. 14. Статистическая обработка данных
  • 3. Результаты и их обсуждение
    • 3. 1. Состояние прооксидантно-антиоксидантного равновесия в клетках листьев гороха при воздействии на растения теплового шока
    • 3. 2. Влияние экзогенных фитогормонов (ИУК и АБК) на перекисный гомеостаз листьев гороха
    • 3. 3. Изменение состояния прооксидантно-антиоксидантной системы при совместном действии теплового шока и экзогенных ИУК и АБК
    • 3. 4. Влияние теплового шока и фитогормонов на экспрессию генов супероксиддисмутазы и глутатионтрансферазы

В природе растения постоянно подвергаются неблагоприятным воздействиям окружающей среды. Выяснение механизмов, обеспечивающих выживание растений в экстремальных условиях, в том числе при действии повышенной температуры, имеет существенное теоретическое и практическое значения. Несмотря на все многообразие физиологических реакций растительного организма на различные типы стрессовых воздействий, в своей основе они являются достаточно сходными друг другу, что позволяет предполагать наличие общих принципов и механизмов адаптации (Пахомова, 1995; Тарчевский, 2000; Акимова и др., 2001; Борисова и др., 2001; Ракитина и др., 2001; Шакирова, 2001). Формирование защитного ответа обеспечивается изменением метаболизма клетки и активацией генетического аппарата. Одной из реакций на неблагоприятные условия является интенсификация перекис-ного окисления липидов биомембран, вызванная повышением продукции активных форм кислорода, что может приводить при сильных воздействиях к значительным нарушениям внутриклеточного гомеостаза. Ограничение процессов пероксидации и поддержание структурно-функционального состояния мембранных липидов осуществляется за счет работы антиоксидантной системы защиты, ключевую роль в которой играют специализированные ферменты. Смещение прооксидантно-антиоксидантного равновесия наблюдается в ответ на действие факторов различной природы и считается одним из важнейших звеньев в развитии стрессового ответа (Барабой, 1991; Массагопе е.а., 1995; Alscher е.а., 1997; Курганова и др., 1999). Вероятно, формирование этой защитной реакции происходит при участии фитогормонов, так как они являются важнейшими регуляторами жизнедеятельности растений и при различных внешних воздействиях наблюдается изменение фитогормонального баланса, а именно, уменьшается содержание соединений стимулирующего действия (ауксины, цитокинины, гиббереллины) и увеличивается — ингибирую-щих рост (АБК, этилен, жасмоновая кислота) (Полевой, 1982; Кузнецов и др., 6.

1992; Kosakivska, Maidebura, 1994; Полевой и др., 1997; Веселов и др., 1998; Шакирова, Безрукова, 1998; Ракитина и др., 2001; Шакирова, 2001). Известно, что ИУК может изменять внутриклеточный окислительно-восстановительный потенциал (Jones, 1994; Bilang, Sturm, 1995), который, в свою очередь, играет важную роль в регуляции генной активности (Константинов и др., 2001), а АБК способна влиять на липоксигеназную и суперок-сидсинтазную системы (Тарчевский и др., 2001). Однако в целом вопрос о гормональной регуляции прооксидантно-антиоксидантного равновесия мало исследован. Недостаточно изучены и механизмы формирования раннего ответа антиоксидантной системы на высокотемпературное воздействие при коротких экспозициях. Важным этапом формирования защитной стресс-реакции является изменение работы генома, в том числе индукция синтеза защитных белков. К настоящему времени показана активация экспрессии генов антиоксидантных ферментов при действии на растения различных биотических и абиотических факторов, а именно засухи, гербицидов, фитопато-генов, пониженной температуры (Bowler е.а., 1989; Marrs, 1996; Scandalios, 1997; Stevens е.а., 1997; Bueno е.а., 1998). Вместе с тем, влияние температурного шока на активность генов антиоксидантных ферментов изучено недостаточно. Таким образом, исследование развития быстрой реакции проокси-дантно — антиоксидантной системы растений в условиях повышенной температуры и участия в этих процессах фитогормонов и генома представляет значительный интерес.

Цель и задачи исследования

.

Цель данной работы состояла в изучении быстрых ответных реакций прооксидантно-антиоксидантной системы растений при воздействии гипертермии и экзогенных фитогормонов, а так же роли в этих процессах экспрессии генов антиоксидантных ферментов.

Для достижения сформулированной цели были поставлены следующие задачи: 7.

1. Исследовать изменения в прооксидантно-антиоксидантном равновесии в клетках листьев гороха при коротких экспозициях теплового шока.

2. Определить влияние экзогенных ИУК и АБК на уровень липоперок-сидации и активность антиоксидантных ферментов.

3. Оценить влияние совместного действия теплового шока и экзогенных ИУК и АБК на прооксидантно-антиоксидантную систему растений.

4. Исследовать экспрессию генов ферментов антиоксидантной защиты — супероксиддисмутазы и глутатионтрансферазы при действии гипертермии и фитогормонов.

Основные положения, выносимые на защиту:

• Тепловой шок вызывает быстрое усиление липопероксидации, что влечет за собой активацию ферментативной антиоксидантной защиты и по-следущее возвращение уровня ПОЛ к исходным значениям.

• Влияние экзогенных ИУК и АБК на уровень перекисного окисления липидов и активность антиоксидантных ферментов во многом зависит от концентрации и продолжительности действия фитогормона.

• Фитогормоны (ИУК и АБК) являются одним из факторов, участвующих в формировании ответной антиоксидантной реакции на гипертермию, при этом экзогенная АБК вызывает менее существенные изменения в динамике ответа на тепловой шок, чем экзогенная ИУК.

• Повышение антиоксидантной защиты растений при тепловом шоке связано с увеличением экспрессии генов СОД и ГТ.

Научная новизна.

В работе впервые установлено, что при кратковременных экспозициях теплового шока в клетках листьев растений происходит «всплеск» уровня продуктов перекисного окисления липидов: диеновых конъюгатов и гидроперекисей, приводящий к быстрой активации общеклеточного пула ферментов антиоксидантной защиты. 8.

Впервые определено действие разных концентраций экзогенных ИУК и АБК на прооксидантно-антиоксидантную систему растений гороха. Показано, что изменения уровня ПОЛ и активности антиоксидантных ферментов происходили уже в первые 15−30 минут цосле обработки, причем эти фито-гормоны в наиболее высоких из использовавшихся концентрациях (100 мкМ ИУК и 10 мкМ АБК) оказывали стрессирующее влияние на растенияв наименьших концентрациях (1 мкМ ИУК и 0.1 мкМ АБК) влияние этих фитогормонов имело взаимопротивоположный характер: экзогенная ИУК оказывала прооксидантный эффект, а АБК проявляла себя как антиоксидант.

Показано, что фитогормоны могут не только воздействовать на пере-кисный гомеостаз клеток растений при обычной температуре (22 °С), но и оказывать влияние на развитие антиоксидантного ответа при тепловом шоке (42°С).

Впервые обнаружена быстрая активация экспрессии генов супероксид-дисмутазы и глутатионтрансферазы гороха при тепловом шоке, а также показано участие в регулировании этих процессов экзогенных фитогормонов.

Теоретическая и практическая значимость.

Полученные результаты важны для понимания механизмов формирования защитных реакций растительного организма на неблагоприятные воздействия и дополняют существующие теоретические предпосылки для разработки практических методов повышения устойчивости растений. Показано участие ИУК и АБК в регуляции ответа антиоксидантной системы, что позволяет клетке противостоять неблагоприятному воздействию повышенной температуры. Основные выводы и результаты работы могут быть использованы в учебном процессе на биологическом факультете Нижегородского госуниверситета при чтении спецкурсов: «Регуляция метаболизма», «Геном растений», «Рост и развитие растений» и «Экологическая биохимия». 9.

Апробация работы.

Основные положения работы были доложены на IV-м съезде общества физиологов pacfений России (Москва, ИФР, 1999), на Международных конференциях по фундаментальным наукам среди студентов и аспирантов «Ло-моносов-99» и «Ломоносов-2000» (Москва, МГУ, 1999, 2000), на 6-й и 7-й Нижегородских сессиях молодых ученых (Нижний Новгород, 2001, 2002), на 2-ой Международной научной конференции студентов и молодых ученых «Актуальные проблемы современной науки» (Самара, 2001), на Международном симпозиуме «Plant under environmental stress» (Москва, ИФР, 2001), на Международной конференции «Биологические ресурсы и устойчивое развитие» (Пущино, 2001), на Международной конференции «Актуальные вопросы экологической физиологии растений в XXI веке» (Сыктывкар 2001), на 6-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология — наука 21го века» (Пущино, 2002), на третьем съезде биохимического общества (Санкт-Петербург, 2002).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано и принято к печати 19 работ.

Структура и объем диссертации

.

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы (348 работ, в том числе 159 иностранных), приложения. Работа изложена на 163 страницах, содержит 25 рисунков и 5 таблиц.

ВЫВОДЫ.

1. При воздействии на растения гороха теплового шока уже в первые 15−30 минут происходит значительное повышение содержания промежуточных продуктов перекисного окисления липидов. В ответ на увеличение ПОЛ активируется ферментативная система антиоксидантной защиты клетки, что в свою очередь, приводит к восстановлению уровня липопероксида-ции. В начале возрастает активность глутатионзависимых ферментов: глу-татионредуктазы и глутатионтрансферазы, а после 30 минут действия гипертермии на фоне снижения их активности основную АО-роль выполняет супероксиддисмутаза.

2. Фитогормоны ИУК и АБК по-разному влияют на перекисный гомеостаз листьев гороха, при этом характер их действия во многом зависит от концентрации. Экзогенная ИУК (1 мкМ и 100 мкМ) оказывает в основном прооксидантный эффект, увеличивая уровень ПОЛ, снижая активность СОД и, при длительных экспозициях, каталазы. АБК (0.1 мкМ), напротив, уменьшает уровень липопероксидации, повышая активности СОД и глутатионтрансферазы.

3. Экзогенные ИУК и АБК при совместном действии с повышенной температурой изменяют развитие ответа прооксидантно-антиоксидантной системы. Экзогенная 1 мкМ ИУК влияет на данную реакцию более существенно: не происходит повышения содержания диеновых конъюгатов, значительной активации СОД, активность глутатионзависимых ферментов достигает максимальных значений лишь к 60 минутам. В случае одновременного влияния экзегенной 0.1 мкМ АБК и гипертермии наблюдается более ранняя (через 15 минут) активация СОД, а динамики активностей каталазы и глутатионтрансферазы являются сходными с таковыми при действии только теплового шока.

4. При влиянии на растения гипертермии быстро усиливается экспрессия генов антиоксидантных ферментов супероксиддисмутазы и глутатионтрансферазы, чем достигается дополнительное повышение антиоксидантной защиты при тепловом шоке.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Обобщая полученные результаты, можно заключить, что при тепловом шоке в растениях происходит быстрое смещение состояния прооксидантно-антиоксидантной системы в сторону усиления перекисного окисления липидов. Кратковременный «всплеск» содержания промежуточных продуктов ПОЛ, по всей видимости, является необходимым и важным для активации АО-ферментов клетки, в частности глутатионсвязанных ферментов — глута-тионредутазы и глутатионтрансферазы. Повышение активности СОД, вероятно, в наибольшей степени способствует снижению липопероксидации при тепловом шоке. Известно, что развитие свободно-радикальных процессов при гипертермии сопровождается повышением содержания в тканях эндогенных фитогормонов (ИУК и АБК) (Веселов и др., 2000). Это указывает на возможное участие фитогормонов в регуляции прооксидантно-фнтиоксидантного равновесия при тепловом шоке. Проведенные нами исследования показали, что введение экзогенных ИУК и АБК изменяли как интенсивность ПОЛ, так и активности антиоксидантных ферментов. При этом ИУК и АБК, по-разному влияли на содержание продуктов ПОЛ и АО-защиту растений. ИУК является прооксидантом и участвует в регуляции активности глутатионзависимых ферментов. АБК, напротив, способствует уменьшению липопероксидации, активации СОД и снижению активности каталазы. Полученные данные позволяют говорить о том, что ИУК и АБК выполняют разную функциональную роль в формировании ПОЛ<=>АО равновесия. Дополнительная защита клетки в условиях теплового шока, согласно нашим данным, достигается за счет активации экспрессии генов супероксиддисмутазы и глутатионтрансферазы, что также происходит при участии фитогормонов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Г., Радюк М. С. исследование ультраструктуры хлоропластов из листьев фасоли {Phaseolus vulgare L.), обработанных 5-аминолевулиновой кислотов и 2,2'-дипиридилом // ДАН БССР.-1989.-Т.ЗЗ, № 5.-С.471−475.
  2. А.А. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Успехи современной биологии.-1991.-Т. 111, № 5.-С.722−734.
  3. В.Г., Клечковская Е. А., Молодченкова О. О., Вовчук С. В. Изменение протеиназно-ингибиторной системы озимой пшеницы под действием салициловой кислоты и Fusarium II Физиология растений.-2000.-Т.47,№ 2.-С. 210−215.
  4. Т.В., Балагурова Н. И., Титов А. Ф. Влияние локального нагрева на тепло, холодо- и солеустойчивость клеток листа и корня растений // Физиология растений.- 1999.-Т. 46, № 1.-С.119−123.
  5. Т.В., Балагурова Н. И., Титов А. Ф., Мешкова Е. А. Повышение теплоустойчивости листьев при локальном прогреве проростков // Физиология растений.-2001.-Т. 48, № 4.-С. 584−588.
  6. А.В. Роль липидов и перекисного окисления в биологической и функциональной активности ДНК // В сб.: Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М.: Наука, 1981.- С.3−14.
  7. А.В., Пальмина Н. П. Роль липидов в функциональной активности и биосинтезе ДНК в нрмальных и опухолевых клетках // В сб.:Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982.-С.84−99.
  8. Д.С., Матвеева Н. П., Старостенко Н. В., Ермаков Н. П. Нарушения развития мужского гаметофита табака при локальном нагреве тканей спорофита // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 5.-С.725−730.
  9. В.Ф. Биофизика мембран // Соросовский образовательный журнал.-1996, № 6.-С. 4−12.125
  10. Н.И., Акимова Т. В., Титов А. Ф. Влияние локального охлаждения проростков огурца и пшеницы на различные виды устойчивости листа и корня // Физиология растений.- 2001.-Т.48, № 1.-С 113−118.
  11. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Успехи современной биологии.-1991.-Т. 111, № 6.-С.923−932.
  12. В.А., Брехман Н. Н., Голотин В. Г., Кудряшов Ю. Б. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. 148 с.
  13. М.А. Роль шаперонинов в сворачивании белка. Новая модель строения Gro EL/Gro ES-комплекса // Биохимия.-1997.-Т.62, № 4.-С.489−498.
  14. А.Е., Молотковский Ю. Г. Исследование Са2+ статирующих механизмов в протопластах мезофила гороха с помощью фура 2 и индо 1 // Физиология растений.-1991.-Т.З8, № 2.-С.262−272.
  15. Г. И., Шеламова Н. А. Синтез и распад макромолекул в условиях стресса // Успехи современной биологии.-1992.-Т.112, № 2.-С.281−287.
  16. П.Борисова Т. А., Бугадже С. М., Мешкова Н. В., Власов П. В. Тепловой шок повышает устойчивость к УФ-Б облучению. 1 .Рост, развитие и водообес-печенность тканей // Физиология растений.-2001.-Т.48, № 4.-С.589−595.
  17. Т.А., Бугадже С. М., Ракитин В. Ю. Власов ВП., Кузнецов Вл.В. Тепловой шок повышает устойчивость растений к УФ-облучению. 2. Выделение этилена и С02 // Физиология растений.-2001.-Т.48, № 5.-С.733−738.
  18. А.Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы.-Л.: Наука.-1987.-232 с.126
  19. Е.Б., Архипова Г. А., Голощанов А. Н., Молочкина Е. М., Хохлов А. П. Мембранные липиды как переносчики информации // В сб.: Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М. Наука, 1982.-С.74−82.
  20. Е.Б., Крашаков С. А., Храпова Н. Г. Роль токоферолов в перок-сидном окислении липидов мембран // Биологические мембраны.-1998,-Т.15, № 2.-С.137−163.
  21. Э.А., Федина А. Б., Кулаева О. Н. Сравнительное изучение влияния салициловой кислоты и (2'-5')-олигоаденилатов на синтез белка в листьях табака при тепловом шоке // Физиология растений.- 1999.-Т.46, № З.-С. 16−22.
  22. Н.Г., Буше Н., Карпантье Р. Последействие кратковременного теплового шока на фотохимические реакции в листьях ячменя // Физиология растений.-1997. Т.44, № 4. — С. 605−612.
  23. JI.C. Супероксиддисмутаза //В сб.: Белки и пептиды.-М.:Наука.-1995.-Т.1.-С. 89−95.
  24. А.П. Математическая модель возможного триггера обратимого включения режима стресса у растений // Физиология растений. 2001. — Т. 48, № 1. — С.124−131.
  25. А.П., Курганова JI.H., Ручкова О. В. Влияние теплового шока на цитоплазмотическую белоксинтезирующую систему листьев гороха Pisum sativum L. //Биохимия.-1997.-Т.62, № 5.-С. 569−573.
  26. А.П., Лобов В. П., Олюнина Л. Н. Изменение в содержании фитогормонов в ответной реакции растений при тепловом шоке и в период его последствия // Физиология растений.-1998.-Т.45, № 5.-С.709−715.
  27. Т.В., Веселовский В. А., Чернавский Д. С. Стресс у растений.- М.: Изд-во МГУ, 1993.-144 с.
  28. В.А., Веселова Т. В., Чернавский Д. С. Стресс растения. Биофизический подход // Физиология растений. 1993. — Т. 40, № 4. — С. 553 -557.
  29. Ю. А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. 252 с.
  30. Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Со-росовский образовательный журнал.-2000.-Т. 6, № 12.-С.13−19.
  31. Ю.А., Азизова О. А., Деев А. И., Козлов А. В., Осинов А. Н., Рощупкин Д. И. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники. Сер."Биофизика".-М.: ВИНИТИ, 1991.-Т.6.-251 с.
  32. В.К. Реакция генома клетки на температурный стресс // В сб.: Рост и устойчивость растений. Наука. Сибирское отделение.-1989.-С. 154 163.
  33. В.К., Боровский Г. Б. Роль стрессовых белков в клетке при гипертермии // Успехи современной биологии.-1994.-Т.114, № 1.-С.85−95.
  34. И.Г., Упоров И. В., Чубаров Т. А., Фечина В. А., Мареева Е. А., Лагримини Л. М. Влияние рН на стабильность анионной пероксидазы табака и ее взаимодействие с перекисью водорода // Биохимия. 1998. — Т. 63,№ 5.-С. 708−715.
  35. И.А., Клюбин И. В. Перекись водорода как сигнальная молекула // Цитология.-1996.-Т.З8, № 12.-С. 1233−1247.
  36. П.А. Физиология жаро- и засухоустойчивости растений. М.: Наука, 1982. — 280 с128
  37. Э.Г., Ларионова В. Б., Зубрихина Г. Н., Кормош Н. Г., Давыдова Г. В., Лактионов К. П. Роль глутатионзависимых пероксидаз регуляции утилизации пероксидов в злокачественных опухолях // Биохимия.- 2001.-Т. 66, № 2.- С. 273−278.
  38. А.Н., Тарчевский И. А. Липоксигеназная сигнальная система // Физиология растений 1999. — Т.46, № 1. — С. 132−142.
  39. Ю.В., Мерхис А. И., Улявичене P.P., Жяменас И. А., Максимов Г. Б. ИУК связываюшие свойства плазмолеммы колеоптилей пшеницы // Физиология растений.-1992.-Т.39, № 6.-С.249−257.
  40. Л.Ф. Цитохром Ь5 и токоферол обеспечивают функционирование липидно-радикальных циклов и преобразование энергии в мембранах // Биохимия. 1998. — Т. 63, № 10. — С.1447−1450.
  41. Е.Е. Некоторые особенности функционирования ферментативной антиоксидантной защиты плазмы крови человека // Биохимия. 1993. -Т. 58, № 2.-С. 268−273.
  42. Е.Е. Роль супероксидного анион-радикала и супероксиддисму-тазы в тканях организма // Успехи современной биологии.-1989.-Т. 108, № 1(4).-С.З-19.-у,
  43. Ю.В., Дмитриев А. П., Гроздинский Д. М. Роль Са как вторичного мессенджера в индукции синтеза фитоалексинов в культуре клеток Allium сера L. // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 3.-С.385−391.
  44. Э.В., Безуглов В. В. Липиды как биоэффекторы. Введение // Биохимия.-1998.-Т. 63, № 1-С. 3−5.
  45. Д.П., Каравайко Н. Н., Кулаева О. Н. Влияние теплового шока и картолина-2 на рост проростков ячменя и содержание в них фитогормонов // ДАН СССР.-1992.-T.323, № 2.-С. 362−365.
  46. А. Н., Литвинчук А. В., Метелица Д. И. Операционная стабильность каталазы и ее конъюгатов с альдегиддекстранами и супероксиддис-мутазой // Биохимия, 1996. Т. 61, вып. 4. С.518−526.129
  47. С.Ш., Полимбекова С. Н., Насимбеков Н. О., Искаков Б. К. Обнаружение в зародышах пшеницы новой малой РНК, индуцируемой тепловым шоком // Биохимия.-1996.-Т.43, № 6.-С.837−839.
  48. О.М., Чайлахян JI.M. Сф-каналы растительных клеток и их регуляция // Успехи современной биологии -1994.-Т. 114, № 5.-С 608−617.
  49. . И. Восстановление кислорода в хлоропластах и аскорбатный цикл //Биохимия.-1998.-Т.63, № 2.-С. 165−170.
  50. И.И. Эстафетные механизмы в процессах перекисного окисления липидов в биологических мембранах // Успехи биологической химии.-1984.-Т. 25, № 2.-С.110−124.
  51. В.А., Мернин А. Б., Киселёв О. И. Молекулярные шапероны, новые белки новые функции // Молекулярная биология.-1991.-Т.25, № 4.-С.869−882.130
  52. Л.И., Горенбург Е. В., Чаленко Г. И., Озерцовская О. Л. Участие метилжасмоната в индуцировании устойчивости картофеля к возбудителю фитофтороза // Физиология растений.-1996.-Т.43, № 5.-С.713−720.
  53. Л.Н., Переход Е. А., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Романенко Е. Н., Зиновьева С. В., Озерецковская О. Л. Активность липоксигенызы в растениях с индуцированной устойчивостью // Физиология растений.-2000.-Т. 47, № 4.-С. 516−523.
  54. Ю.Е., Балахнина Т. И., Заркжевский Т. А. Действме почвенной гипоксии на активацию кислорода и систему защиты от окислительной деструкции в корнях и листьях ячменя // Физиология растений.-1994.-Т.41, № 4.-С.583−588.
  55. А.В., Мкртчан Н.И. Fe-супероксиддисмутаза из Pseudomonas aeruginosa II Биохимия.-1996.-Т.61, № 8.-С.1408−1414.
  56. Ф.Г., Тарчевский И. А., Мурсалимова Н. У., Гречкин А. Н. Влияние продукта липоксигеназного метаболизма 12-гидроксидодеценовой кислоты на фосфорилирование белков растения // Физиология растений.-1999.-Т. 46, № 1.-С. 148−152.
  57. М.В., Лукаш А. И., Гуськов Е. П. Роль низкомолекулярных антиок-сидантов при окислительном стрессе // Успехи современной биологии.-1993.-Т.113, № 4.-С.456−471.
  58. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин Е. Н. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. — М.: Наука, 1989. — 184 с.
  59. Г. И., Капитанов А. Б., Теселкин Ю. А., Бабенкова И. В., Жамба-лова Б.А., Любицкий О. Б., Нестерова О. А., Васильева О. В., Попов И. Н., 131
  60. Г., Владимиров Ю. А. Антиоксидантные свойства ликопина // Биологические мембраны.-1998.-Т.15, № 2.- С.227−237.
  61. А.В., Побежимова Т. П., Войников В. К. Характеристика белков низкотемпературного стресса растений // Физиология растений.-2000.-Т.47, № 4.-С.624−630.
  62. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Успехи современной биологии.-1989.-Т. 107, № 2.-С.179−194.
  63. Ю.Е., Виленский С. А., Сысоев Л.А Защитное действие ингибиторов биосинтеза белка на растительные клетки при потенциально летальном осмотическом стрессе // Физиология и биохимия культурных растений.- 1991.-Т.23, № 4.-С. 375−381.
  64. Ю.Е., Трунова Т. И. Особенности метаболизма и защитные функции углеводов растений в условиях стресса // Физиология и биохимия культурных растений.-1992.-Т.24, № 6.-С. 523−533.
  65. Ю.М., Луценко Г. Н., Подсосонный В. А., Зыкова В. В. Исследование ПОЛ в растительных митохондриях, в связи с проблемой теплового стресса // В сб.: Стрессовые белки растений. Наука. Сибирское отделение, 1989.-С.88−108.
  66. Ю.М., Тарасенков В. И., Рогозин И. Б. Редокс-модуляция активности ДНК-полимеразы 1 из митохондрий моркови (Daucus carota) 11 Доклады академии наук.-2001.-Т. 377, № 2.-С. 263−265.
  67. А.А. Синглетный кислород: механизмы образования и пути дезактивации в биологических системах // Биофизика.-1994.-Т.39, № 2.-С. 236−250.
  68. Г. Р., Усманов И. Ю., Гюли-Заде В.З., Фаттахутдинов Э. Г., Весел ов С. Ю. Взаимодействие пространственно разобщенных органов рас132тений. Соотношение электрических и гормональных сигналов // ДАН СССР.-1990.-Т.310, № 6.-С.1511−1514.
  69. В.В., Пустовойтова Т. Н., Яценко И. А., Борисова Н. Н., Жолкевич В. Н. Стрессорные белки и фитогормоны при адаптации растений Cucumis sativus L. к почвенной засухе // ДАН СССР.-1992.-Т.322, № 1.-С.204−207.
  70. В.В., Старостенко Н. В. Синтез БТШ и их вклад в выживание интактных растений огурца при гипертермии // Физиология растений.-1994.-Т.41, № 3.-С.347−380.
  71. В.В., Хадыров Б. Т., Шевякова Н. И., Ракитин В. Ю. Индукция тепловым шоком солеустойчивости хлопчатника, участие полиаминов, этилена и пролина // Физиология растений.-1991.-Т.З8, № 6.-С.1203−1210.
  72. В.В., Черепнёва Г. Н. Использование метода дот-гибридизации для изучения относительного содержания транскриптов растительных генов // Физиология растений.-1991.-Т.З8, № 4.-С.805−815.
  73. Вл.В., Шевякова Н. И. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция // Физиология растений. 1999. — Т .46, №.2. — С. 321−336.
  74. А.И., Морозова Р. П., Николенко И. А., Корниец Г. В., Холодова Ю. Д. Влияние витамина Дз и экдистерона на свободнорадикальное окисление липидов // Биохимия.-1997.-Т.62, № 6.-С.712−715
  75. О.Н. Этилен в жизни растений // Соросовский образовательный журнал.-1998.-Т. 4, № 11.- С.78−84.
  76. О.Н., Федина А. Б., Самохвалова Н. И., Бурханова Э. А., Хохлова В. А., Порфирова С. А., Коф Э.М., Кефели В. И., Феличкина О. А. Синтез БТШ у ацетобулярии // В сб.: Стрессовые белки растений. Наука. Сибирское отделение, 1989.-С.59−70.
  77. В.И. Активные формы кислорода и оксидативная модификация макромолекул: польза, вред и защита // Соросовский образовательный журнал.-1999.-№ 1.-С. 2−7.
  78. JI. Н., Веселов А. П., Гончарова Т. А., Синицына Ю. В. Пере-кисное окисление липидов и антиоксидантная система защиты в хлоро-пластах гороха при тепловом шоке // Физиология растестений.-1997.-Т. 44, № 5.-С. 725−730.
  79. .А. Абсцизовая кислота возможный природный антиоксидант растений // Физиология и биохимия культурных растений.-1991.-Т.23, № 4.-С. 414−415.
  80. Э.П. Механизм передачи гормонального сигнала абсцизовой кислоты через плазмалемму растительной клетки // Биологические мем-браны.-2000.-Т. 17, № 6.- С.565−576.
  81. Э.П., Проценко М. Н. Биохимические механизмы передачи внешних сигналов через плазмалемму растительной клетки при регуляции покоя и устойчивости // Биохимия.-2002.-Т.67, № 2.-С. 181−193.
  82. В.П., Гайворонская Л. М., Аверьянов А. А. Возможное участие активных форм кислорода в двойной индукции противоинфекционных реакций растения // Физиология растений.-2000.-Т.47, № 1.-С. 160−162.134
  83. А.В., Иванова М. В., Красновид Н. И. Взаимодействие природных полигидрокси-1,4-нафтохинонов с супероксидными анион-радикалами // Биохимия.-1999.-Т.64, № 11.-С.1507−1513.
  84. Е.Л., Вартанян Л. С. Супероксиддисмутаза: определение активности по ингибированию фотосенсибилизированной хемилюминисценции глицилтриптофана // Биохимия.-2000.-Т. 65, № 5.-С. 704−708.
  85. Д.А. Десатуразы жирных кислот: адаптивная экспресия и принципы регуляции // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 2.-С. 528−540.
  86. А.С., Исайкина Е. Е. Кальциевый статус и холодовое повреждение проростков кукурузы // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 3.-С.392−396.
  87. А.С., Левина Е. Е. Влияние экзогенных модификаторов перекис-ного окисления на холодовое повреждение листьев огурца // Физиология растений.-1997.-Т. 44, № з.с. 397−403.
  88. М.И., Каменцева И. Е. Структурная и функциональная термостабильность ферредоксин-НАДФ-редуктазы из листьев огурца и дыни // Физиология растений.-1996.-Т.43, № З.-С. 462−466.
  89. Е.В., Маркин Н. В., Усатов А. В., Гуськов Е. П. Реакции му-тантных линий подсолнечника на тепловой шок // Физиология растений.-2001. Т.48, № 6.-С.906−910.
  90. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. Методы генетической инженерии.-М.: Мир, 1984.-479 с.
  91. И.В., Батов А. Ю., Мошков А. В., Максимов Г. Б., Медведев С. С. Кальций- транспортирующие системы плазмолеммы колеоптилей кукурузы // Физиология растений.-1995.-Т. 42, № 2.-С.262−267.
  92. Д.Н., Перс И., Хоффманн П. Изменение светочувствительности фотосинтеза растений табака, трансформированных антисмысловым135геном глютамат-1-семиальдегид аминотрансферазы //Физиология растений.-1999.-Т.46, № 4.-С. 543−549.
  93. С.С., Батов А. Ю., Мошков А. В., Маркова И. В. Роль ионных каналов в трансдукции ауксинового сигнала // Физиология растений.-1999.- Т.46, № 5.-С. 711−717.
  94. Е.И. Принцип регуляции скорости процесса повреждения клетки и реакция защитного торможения метаболизма (РЗТМ) // Журнал общей, биологии.-1985.-Т. 46, № 2.-С. 174−189.
  95. Е.И., Анев В. Н. Обратимый выход К+ из клетки как защитная реакция на неблагоприятные воздействия // Журнал общей биологии -1991.-Т. 52, № 1. С. 14−26.
  96. Е.И., Ефремова JI.K. Влияние экзогенных фитогормонов на устойчивость растительных клеток к нагреву и 2,4-Д // Физиология расте-ний.-1990.-Т.37, № З.-С. 561−567.
  97. Е.Б., Зенков Н. К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных и окислительных процессов // Успехи современной биологии.-1993.-Т.133, № 3.-С.286−296.
  98. Л.Н. Роль фитогормонов в устойчивости древесных растений к стрессам // Успехи современой биологии.-1992.-Т.112.-№ 5−6.- С. 745 757.
  99. М. Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Физиология растений, 1989. Т. 6. 168 с.
  100. М.Н. Активированный кислород и жизнедеятельность растений // Соросовский образовательный журнал.-1999.-№ 9.-С. 20−26.
  101. В.М., Ляхович В. В. Дисмутаза О ': физикохимические свойства, каталитический механизм и биологическое значение // Успехи современной биологии.-1976.-Т.82, № 3(6).-С.338−356.
  102. К., Палич Е. Стабильность и авторегуляторные свойства ци-топлазматической окислительно-восстановительной системы GSH/GSSG у136растений пшеницы при воздействии умеренного водного дефицита // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 4.- С.517−522.
  103. Г. С., Данилина Е. Э. Эндогенные химические сигналы растений и животных. Сравнительный анализ // Успехи современной биологии.-1996.-T.il 6, № 5.-С. 533−550.
  104. Д.Н., Александров В. Я. Реакция живого вещества на внешние воздействия. М., Л.: Изд — во АН СССР, 1940. — 156 с.
  105. Г. В., Суворова Т. А. Изменение липидного состава мембранных фракций проростков озимой пшеници при низкотемпературной адаптации // Физиология растений.-1994.-Т.41, № 4 С. 539−545.
  106. В.А. Функциональные аспекты биоэлектрогенеза у высших растений // LIX Тимирязевские чтения. Н. Новгород, 1998. Изд-во ННГУ. 45 с.
  107. В.А., Калинин В. А., Пятыгин С. С., Орлова О.В., Абрамова
  108. H.Н. Увеличение потенциалчувствительности АТФазной активности плазмалеммы при холодовом закаливании проростков пшеницы // Физиология растений.- 1999.- Т.46, № 1.- С.153−158.
  109. В.А., Пятыгин С. С., Крауз В. О., Худяков В. А., Абрамова С. С. Активация электрогенного I-Г-насоса плазмотических мембран при адаптации клеток высшего растения к низкой положительной температуре // Физиология растений.-1994.-Т.41, № 4.-С.488−493.
  110. О.В., Пятыгин С. С., Опритов В. А., Калинин В. А. Стабилизирующая роль АТФ-зависимого Н^-насоса в электрогенезе плазмалеммы клеток Cucurbito реро // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 6.- С. 909 914.
  111. А.Н., Азизова О. А., Владимиров Ю. А. Активные формы кислорода и их роль в организме // Успехи биологической химии.-1990.-Т.31, № 1.-С.25−32.137
  112. В.М. Основные положения современной теории стресса и неспецифический адаптационный синдром у растений // Цитология.-1995.-Т.35, № ½.-С.66−91.
  113. В.М., Гордон J1.X. Изменение физиологического состояния клеток корней пшеницы в процессе адаптивного старения // Физиология растений.-1984.-Т.31, № 6.-С. 1162−1169.
  114. В.М., Пахомов Д. В. Неспецифический адаптационный синдром отсеченных корней // Успехи современной биологии.- 1992.-Т.112, № 3.-С.398−409.
  115. В.М., Чернов И. А. Некоторые особенности индуктивной фазы неспецифического адаптационного синдрома растений // Физиология растений.- 1996.-Т.43, № 6.-С.705−715.
  116. И.Н., Селиванкина С. Ю. Кальций, фосфолипид-зависимая протеинкиназа из листьев ячменя. Выделение, кросс-реактивность и свойства фермента // Физиология растений.-1994.-Т. 41, № З.-С. 359−366.
  117. А.В. О регуляторной роли активных форм кислорода // Биохимия. 1998. — Т. 63, № 9. — С. 1307−1308.
  118. А.В. Роль кислородных радикалов, образующихся при функционировании мембранных редокс-цепей, в повреждении ядерной ДНК // Биохимия. 1996. — Т. 61, № 1. — С. 65−71.
  119. А.В., Столяров С. Д. Окислительный стресс как критерий оценки окружающей среды // Известия АН СССР. Сер. биологич.-1994, № 4.-С. 588−594
  120. Н.А. Биометрия. М.: Изд — во МГУ, 1970. — 367 с.138
  121. Методы биохимического анализа растений" под редакцией В. В. Полевого. Изд-во ЛГУ. 1978, 166 с.
  122. А.В., Танкелюн О. В., Полевой В. В. Быстрая дистанционная передача сигнала о локальном стрессовом воздействии у проростков кукурузы // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 5.-С.645−651.
  123. В.В. Механизм действия ауксина и его роль в системах регуляции и интеграции у растений // Вестн. СпбГУ.-1998.-Вып.2, № 10.-С.34−41.
  124. В.В. Фитогормоны.-Л.: Изд-во ЛГУ, 1982.-248 с.
  125. В.В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений.-Л.: Изд-во ЛГУ, 1991.-240 с.
  126. Н.С., Жаныбекова С. Ш., Ли А.В., Искаков Б. К. Действие теплового шока на систему малых цитоплазматических РНК высших растений // Физиология растений.-1996.-Т.43, № 6.-С.837−839.
  127. Г. А., Конев В. В. Влияние перекисного окисления липидов на синтез ДНК в клетках асцитной карциномы Эрлиха // Биохимия.-1984.-Т.49,№ 7.-С.1199−1202.
  128. С.С., Опритов В. А., Абрамова Н. Н., Воденеев В. А. Первичная электрическая реакция клеток высшего растения на комбинированное действие стресс-факторов различной природы // Физиология растений.-1999.-Т.46, № 4.-С. 610−617.
  129. Т.Я., Власов П. В., Ракитина В. Ю. Гормональные аспекты различной устойчивости мутантов Arabidopsis thaliana к ультрофиалето-вой радиации // Физиология растений.- 2001.-Т. 48, № З.-С. 414−420.
  130. Н.И. Адаптационные изменения в белковом и аминокислотном обмене у растений в условиях водного стресса // В сб.: СтрессовыеIбелки растений. Наука. Сибирское отделение.-1989.-С.113−132.
  131. В.Г., Опритов В. А., Лобов С.А, Тараканов С. А., Худяков В. А. Модификация устойчивости фотосинтезирующих клеток к охлаждению и139прогреву после раздражения корней раствором КС1 // Физиология растений.-1999.-Т.46, № 5 -С.790−798.
  132. В.Г., Опритов В. А., Федулина С. Б. Преадаптация тканей стебля Cucurbito реро к повреждающему действию низких температур, индуцированная потенциалом действия // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 4.-С.499−510.
  133. Г. А. Международный симпозиум «Ауксины и цитокинины в развитии растений» (Прага, 26−30 июля 1999 г.) // Физиология растений, 2000.-Т.47, №.1.- С.-166−169.
  134. JI.A., Стальная И. Д. Метод определения гидроререкисей липидов с помощью тиоцианата аммония // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. -С. 63−65
  135. В.В., Меньшикова Е. В. Хемочувствительность пыльцы к озону и пероксидам // Физиология растений.-2001.-Т.48, № 1.-С.89−99.
  136. А.В. Роль митохондрий в синтезе стрессовых белков растений // В сб.: Стрессовые белки растений. Наука. Сибирское отделение, 1989.-С.77−88.
  137. В.Д., Лагунова Е. М., Бешта О. Е., Китамов А. В. Индуцированное CN" разрушение ядер в клетках листьев гороха // Биохимия.-2000.-Т.85,№ 1.-С.817−824.
  138. Г. На уровне целого организма.-М.: Наука, 1972.-122 с.
  139. А. М., Крашенинникова Г. А., Вахнина Л. В. Этиленообра-зующий фермент растений // Биохимия,-1995.-Т.60, № 7.-С.1005−1014.140
  140. Н.Ф., Полевой В. В. Изменение фосфорилирования фосфо-липидов под действием ауксина // Физиология растений.-1995.-Т.42, № 5.-С.661−671.
  141. В.П. О биохимических механизмах эволюции и роли кислорода//Биохимия.-1998.-Т.63, № 11.-С.1570−1585.
  142. Г. В., Красных Т. А., Октябрьский О. Н. Роль глутатиона при ответе Escherichia coli на осмотический шок // Биохимия.-2001.-Т.66, № 9.-С. 1195−1201.
  143. И.Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. — С. 63−64.
  144. А.П. О криозащитной роли аминокислот в растениях // Физиология и биохимия культурных растений.-1992.-Т.24, № 6.-С.560−569.
  145. В.А., Стражевская П. Б. ДНК-связанные липиды: состав и возможные функции // Биохимия.-1993.-Т.58, № 8.-С.1154−1175.
  146. В.А., Стражевская П. Б. Структурные и функциональные аспекты ядерных липидов нормальных и опухолевых клеток // Биохимия.-2000.-Т.65, № 5.-С.620−643.
  147. О.В., Полевой В. В. Индуцируемое ауксином повышение протеинкиназной активности микросомальной фракции клеток колеопти-лей кукурузы // Физиология растений.- 1996.-Т.43, № 2.-С. 201−207.
  148. И. А. Регуляторная роль деградации биополимеров и липидов // Физиология растений.-1992.- Т.39, № 6.-С. 1215−1223
  149. И.А. Сигнальные системы клеток растений.-М.: Наука.-2002.-293 с.
  150. И.А. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие // Физиология растений.-2000.-Т. 47, № 2.-С. 321−331.141
  151. И.А., Максютова Н. И., Яковлева В. Г. Влияние жасмоно-вой, салициловой и абсцизовой кислоты на включение 14 С.- лейцина в белки листьев гороха // Биохимия.-2001.-Т.66, № 1.-С. 87−91
  152. И.А., Максютова Н. И., Яковлева В. Г., Гречкин А. Н. Янтарная кислота миметик салициловой кислоты // Физиоллогия растений.-1999.-Т.46, № 1.-0.23−28.
  153. И.Р., Фаркутдинов Р. Г., Митриченко А. Н., Иванов И. И., Весе-лов С.Ю., Вальке Р. Л., Кудоярова Г. Р. Реакция трансформированных ipt-геном растений табака на повышенную температуру // Физиология расте-ний.-2000.-Т.47, № З.-С. 416−419.
  154. Г. Н., Жизневская Г. Я., Измайлов С. Ф. Каталазная активность клубеньковых бобовых с уреидным типом азотного обмена // Физиология растений.-2001.-Т. 47, № 6.-С.821−828.
  155. М.С., Андреев И. М., Кузнецов В. В. Са как внутриклеточный регулятор биосинтеза БТШ 96 и термотолерантности клеток растений при гипертермии // Физиология растений.-1997.-Т.44, № 4.-С.511−516.
  156. М.С., Клычников О. И., Носов А. В., Бабаков А. В. Активация дополнительных сайтов связывания фузикокцина на плазматической мембране при осмотическом стрессе // Физиология растений.-1999.-Т.46, № 1.-С.9−15
  157. М.И. Супероксиддисмутаза: свойства и функции // Успехи современной биологии.-1976.-Т.82, № 3(6).-С. 338−356.
  158. Г. В. Механизмы адаптации растений к стрессам // Физиология и биохимия культурных растений.-1979.-Т. 11, № 2.-С. 99.-107.
  159. Ю.А., Гудсков Н. Л. Проблема специфичности и неспецифичности ответных реакций на повреждающие воздействия // Журнал общей биологии.-1986.-Т. 48, № з.с. 337−349.
  160. О.Л., Мело Ф. Р. Осмопротекторы: ответ растений на осмотический стресс // Физиология растений.-2000.-Т.47, № 1.-С. 152−159.142
  161. И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность кислорода // Свободные радикалы биологии. Сб.науч.тр./ Под ред. А. И. Иванова.-М, 1979.-Т.1.-С.272−308.
  162. М.Г., Берри А. В., Кован C.JL, Харфам Н. В. Дж., Хемсли Р. Дж., Мошков И. Е., Новикова Т. В., Смит А. Д., Холл М. А. Восприятие этилена и передача гормонального сигнала в высших растениях // Физиология рас-тений.-1996.-Т.43, № 1.-С.22−30.
  163. А.А., Застрижная О. М., Климов В. В. Фотоингибирование субхлоропластных препаратов фотосистемы II после воздействия отрицательной температуры // Физиология растений.-1997.-Т.44,№ 2 С.198−204.
  164. П.Г. О взаимозаменяемости природных и синтетических анти-оксидантов // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. Сб. научн.тр./Под ред. А. И. Журавлёва.-М, 1982.-С.59−63.
  165. С., Чаба И., Секей И. Роль супероксиддисмутазы в окислительных процессах клетки и метод определения её в биологических материалах // Лабораторное дело.-1985.-Вып. 11.-С.578−681.
  166. В.В., Зоринянц С. Д., Смолянская Н. И., Бабаков А. В. Регуляция Н+ -насоса в плазматических мембран растений при осмотическом стрессе: роль белков 14−3-3 // Физиология растений.-2001.-Т.48, № 3.-С.325−333.
  167. Е.П. Роль абсцизовой кислоты в морозоустойчивости растений к криоконсервации культур in vitro //Физиол. раст. 1999. — Т. 46, № 5. — С. 823−829.
  168. Г., Кун И., Би Ю, Лян X. Возможное участие активных форм кислорода в индукции цианорезстентного пути на начальной стадии старения каллуса табака // Физиология растений.~2001.-Т.48, № 5.-С.684−691.
  169. Т.В., Новицкая Л. О., Блохина О. Б. Перкисное окисление липидов и активность антиоксидантных систем при аноксии у растений с разной устойчивостью к недостатку кислорода // Физиология растений.-1998.-Т.45, № 1.-С.65−73.143
  170. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа.: Гилем, 2001. 161 с.
  171. Ф.М., Безрукова М. В. Изменение содержания АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под воздействием 2,4-эпибрассионелида и засоления // Физиология растений.-1998.-Т.45, № 3.-С.451−455.
  172. Ф.М., Безрукова М. В., Шаяхметов И. Ф. Влияние теплового стресса на динамику накопления АБК и лектина каллуса пшеницы // Физиология растений.-1995.-Т.42, № 5.-С.700−702.
  173. В.Е., Буболо JI.C., Каменцева И. Е. Теплоустойчивость клеток и образование ГТШ в клетках листьев пшеницы // Физиология растений, 1996.-Т.43,№ 1.-С. 87−93.
  174. М.Ф., Инге-Вечтомова Н.И., Выхвалов К. А., Рудашевская С. Л., Полевой В. В. Ауксин-зависимый транспорт К и Са через мембрану везикул плазмалеммы клеток колеоптилей кукурузы // Физиология рас-тений.-1998.-Т.45, № 1.-С.79−85.
  175. .Ю., Смирнова Е. Г., Ягужинский Л. С., Ванюшин Б. Ф. Необходимость образования супероксида для развития этиолированных проростков пшеницы // Биохимия.-2000.-Т.65, № 12.- С. 1612−1617.
  176. Т.А., Бондаренко Т. И., Милютина Н. П., Михайлова И. Н. Регуляция дельта-сон инициирующим пептидом свободнорадикальных процессов в тканях крыс при холодовом стрессе // Биохимия.-2001.-Т.66, № 6.-С.780−789.
  177. Abel S., Theologis A. Early genes and auxin action // Plant Physiology.-1996.-Vol.lll.-P. 9−17.
  178. Allen G.J., Schrader J.J. Ciclic ADP-ribose and ABA signal transduction // Trends in plant science.-1998.-V.3, № 4.-P.123−125.144
  179. Alscher R.G., Donahue J.L., Cramer C.L. Reactive oxygen species and antioxidants: relationships in green cells // Physiol. Plant.- 1997.-Vol.100.-P. 224 233.
  180. Amstad P.A., Krupitza G., Cerutti P.A. Mechanism of c-fos induction by active oxigen II Cancer. Res.-1992.-V.52.-P.3952−3960.
  181. Anderson M. D., Chen Z., Klessig D. F. Possible involvement of lipid peroxidation in salicylic acid-mediated induction of PR-1 gene expression // Phy-tochem. 1998. — V. 47, № 6. — P. 555−566.
  182. Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygens and dissipation of excess photons // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.-1999.-Vol.50.-P.601−639.
  183. Ballas N., Wong L.M., Ke M., Theologis A. Two auxin-responsive domains interact positively to induce expression of the early indoleacetic acdid-inducible gene PS-IAA4/5 II Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1995.-V.92.- P. 3483−3487.
  184. Barbier-Brygoo H., Ephritikhine G., Klambt D., Ghislain M., Guem J. Functional evidence for en auxin receptor at the plasmalemma of tobacco mesophyll protoplasts // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1989.-V.86.- P. 891−895.
  185. Barbier-Brygoo H., Joyard J., Pugin A., Ranjeva R. Intracellular compart-mentation and plant cell signaling // Tr. Plant Sci.-1997.-V.2, № 6.- P. 214−222.
  186. Basu U., Good A.G., Taylor G.J. Transgenic brassica napus plants overex-pressing aluminium-induced mitochondrial manganese superoxide dismutase145cDNA are risistant to aluminium // Plant, Cell & Environment.-2001.-V.24(12).-P. 1269−1278.
  187. Baudouin E., Charpenteau M., Ranjeva R., Ranty B. Involvement of active oxygen species in the regulation of a tobacco defence gene by phorbol ester // Plant Science. 1999. — V. 142. — P. 67−72.
  188. Becana M., Moran J.F., Iturbe-Ormaexte I. Iron-dependent oxygen free radical generation in plants subjected to environmental stress: toxicity and antioxidant protection // Plant Soil. 1998. — V. 201. — P. 137−147.
  189. Beligini M.V., Lamattina L. Is nitric oxide toxic or protective // Trends in plant science.-1999.-V.4, № 8.-P.299.
  190. Bilang J., Macdonald H., King P., Sturm A. A soluble auxin binding protein from Hyasciamus muticus is a glutathione S-transferase // Plant Physiol. -1993.-V. 102.-P. 29−34.
  191. Bilang J., Sturm A. Cloning and characterisation of glutathione S-transferase that can be photolabeled with 5-azido-indole-3-acetic acid // Plant Physiol.-1995.-V.109.-P. 253−260.
  192. Blumwald E., Aharon G.S., Lam B. G-H. Early signal transduction pathways in plant-pathogen interactions // Trends in Plant Sciens.-1998.-V.3, № 9.-P. 342−346.
  193. Bowler C., Flliote Т., Lt Loose M., Van Montagu M., Inse D. The induction of magnese superoxide dismutase in response to stress in Nicotiana plumbanipholia // EMBO.-1989.-V.8.-P.31−38.
  194. Bowler C., Fluhr R. The role of calcium and activated oxygens as signals for controlling cross-tolerance // Trends in Plant Science.-2000.-V.6, № 6.-P.241−244.
  195. Bray E.A. Drought- and ABA induced changes in polypeptide and mRNA accumulated in tomato leaves // Plant Physiol.-1988. — V. 88. — P.1210−1214.
  196. Breusegem F.V., Vranova E., Dat J.F., Inse D The role of active oxigen species in plant signsl trnsduction // Plant Science.-2001 .-V. 161 .-P.405−414.146
  197. Bueno P., Piqueras A., Kurepa J., Sovoure A., Verbruggen N., Van Montagu M., Inze D. Expression of antioxidant enzymes in response to abscisic acid and high osmoticum in tobacco BY-2 cell cultures // Plant Sci.-1998.-V.138.-P. 2734.
  198. Burke J.I., Oliver M.J. Differential temperature sensitivity of pea superoxid dismutases // Plant Physiol.- 1992.-V.100.-P. 1595−1598.
  199. Camp W.V., Montagu M.V., Inze D. H2 02 and NO: redox signals in de-sease resistance // Trends Plant Sci. 1998. — V. 3, № 9. — P. 330−334.
  200. Casano L.M., Zapata J.M., Martin M., Sabater B. Chlororespiration and poising of cyclic electron transport. Plastoquinone as electron transporter between thylakoid NADH dehydrogenase andperoxidase // J. Biol. Chem.-2000.-V.275, №.2.-P.942−948.
  201. Chaloupkova K., Smart C.C. The abscisic acid induction of a novel peroxidase is antagonized by cytokinin in Spirodela polyrrhiza L. // Plant Physiol. -1994.-V.105.-P. 497−507.
  202. О 4218. Chen W. P., Li P. H. Chilling-induced Ca overload enhances production ofactive oxigen species in maize (Zea mais L.) cultured cell: the effect of abscisicacid treatment // Plant Cell & Envir.-2001.-V.24, № 8.- P. 791−800.
  203. Chernikova Т., Robinson J.M., Lee E.H., Mulchi C.L. Ozone tolerance and antioxidant enzyme activity in soybean cultivars // Photosynthesis Research.-2000.-V.64.- P. 15−26.
  204. Cohen C.K., Norvell W.A., Kochian L.V. Induction of the root cell plasma membrane ferric reductase // Plant physiology.-1997.- V. l 14.- P. 1061−1069.
  205. Colorado P., Gregoria N., Rodrigues D. Corvengent effect of stress and ABA on gene expression during germination of chik-pea seeds // J. Plant. Physiol.-1995.-V.l46, № 4.-P.535−540.
  206. Conconi A.M., Browse J.A., Ryal C.A. Intracellular levels of free linolenic and linoleic acid increase in tomato leaves in response to wounding // Plant Physiol.-1996.- V. 111.- P. 797−803.147
  207. Corpas F.J., Barroso J.B., del Rio L.A. Peroxisomes as a source of reactive oxygen species and nitric oxide signal molecules in plant cells // Trends Plant Sci.-2001.-V.8, № 4.-P. 145−150.
  208. Corpas F.J., Palma J.M., Sandalio L.M., Lopes-Huertas F., Romero-Puertas M.C. Barroso J.B., Del-Rio L.A. Purification of catalase from pea leaf peroxisomes identification of fife defferent isoforms // Free Radic Res.-1999.-V.31-P. 235−241.
  209. Creelman R.A., Mullet J.E. Jasmonic acid distribution and action in plants: regulation during development and response to biotic and abiotic stress // Proc. Natl. Acat. Sci. USA.-1995.-V.92.- P. 4114−4119.
  210. Crone D., Roeda J., Martin K.L., Hamilton D.A., Mascarenhas J.P. The differential expression of a heat shock promoter in floral and reproductive tissues // Plant, Cell & Environment.-2001.-V.24(8).-P.864−874.
  211. Culter A., Krochko J. Formation and breakdown of ABA // The Plant Journal.- 1998.- V. 15, №. 4.- P. 563−568.
  212. Dat J., Vanderabeele S., Vranova E., Van Montagu M., Inse D., Van Bre-segem F. Dual action of the active oxigen species during plant stress responses // CMLS Cell Mol. Life Sci.-2000.-V.57.-P.779−795.
  213. Dat J.F., Lopez-Delgado H., Foyer C.H., Scott I.M. Parallel changes in H202 production and catalase during thermotolerance induced by salicilic acid or heat acclimation in mustard seedlings // Plant Physiol.-1998.-V. 116.-P. 1351−1357.
  214. Dixit V., Pandey V., Shyam R. Differential antioxidative responses to cadmium in roots an leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Azad) // J. Exp.Bot.-2001.-V.52(358)-P.1101−1109.
  215. Edwards R., Dixon D.P., Walbot V. Plant glutathione S-tansferases: enzymes with multiple functions in sickness and in health // Trends Plant Sci. -2000.-V.3, № 6.-P.193−198 148
  216. Feldwisch J., Lammerty M., Yfrtmann E., Feldwisch J., Palme K., Lastorff В., Jaenicke L. Purification and characterization of cAMP-binding protein of Volvox carterif. nagariensis II Eur. J. Biochem.-1995.-V.228 (2). P. 480−489.
  217. Filek M., Baczek R., Niewiadomska E., Pilipowicz M., Koscielniak J. Effect of high temperature treatment of Vicia faba roots on the oxidative stress enzymes in leaves // Acta Biochimica Polonica. 1997. — V. 44, № 2. — P. 315−322.
  218. Finkel T. Redox-dependent signal transduction // FEBS Lett. 2000. — V. 476. — P. 52−54.
  219. Flury Т., Wfgner E., Kreuz K. An inducible glutatione S-transferase in soubean hypocotyl is lokalicid in the apoplast // Plant Physiology.-1996.-V.112.-P.1185−1190.
  220. Fu j., Huang B. Involvement of antioxidants and lipid peroxidation in the adaptation of two cool-season grasses to localized drougtht stress // Environmental and Experimental Botany.-2001V. 45.- P. 105−114.
  221. Gazaryan I.G., Chubar T.A., Mareeva E.A., Lagrimini L.M., Van Huystee R.B., Thorneley R.N.F. Aerobic oxidation of indole-3-acetic acid catalised by anionic and cationic peanut peroxidase // Phytochemistry.-1999.-V.51.- P. 175 186.
  222. Gazaryan I.G., Lagrimini L.M. Tobaco anionic peroxidase overexpressed in transgenic plants: aerobic oxidation of indole-3-acetic acid // Phytochemistry.-1996.-V.42, № 5, — P. 1271−1278.
  223. Genoud Т., Metraux J.-P. Crosstalk in plant cell signaling: structure and function of the genetic network // Trends in plant science.-1999.-V.4,№ 12.-P.503−507.
  224. Giannopolitis G.N., Ries S.K. Superoxide dismutases 1. Occurence in higher plants // Plant Physiology.-1977.-V.59.-P.309−314.
  225. Godber B.L.J., Doel J.J., Sapkota G.P., Blake D.R., Stevens C.R., Eisenthal R., Harrison R. NO fulfills reduction of nitrite to nitric oxide catalyzed by xanthine oxidoreductase // J. Biol. Chem. 2000. — V. 275, № 11. — P. 7757−7763.149
  226. Gong M., van der Luit A.H., Knight M.R., Trewavas A.J. Heat-shock-induced changes in intracellular Ca level in tobacco seedlings in relation to termotolerance // Plant Physiol.- 1998 V. 116. — P.429−437.
  227. Gronwald J/W., Plaisance K.L. Isolation and characterisation of gluthatione S-transferase isozymes from sorgum // Plant Physiology.-1998.-V. 112.-P.877−892.
  228. Guan L., Scandalios J. G Effect of the plant growth regulation abscisic acid and high osmoticum on the developmental expression of the maize catalase genes // Physiologia Plantarum.-1998.-V.104.-P. 413−422.
  229. Guan L., Scandalios J.G. Two structurally similar maize cytosolic superoxide dismutase genes, Sod4 and Sod4A, respond differentially to abscisic acid and high osmoticum // Planp Physiology.-1998.-V. 117.-P. 217−224.
  230. Guan L.M., Scandalios J.G. Hydrogen peroxide-mediated catalase gene expression in response to wounding // Free Radical Biol. Med.-2000.-V. 28, № 8. -P.1182−1190.
  231. Guilfoyle T.J. Aux/IAA proteins and auxin signal transduction // Trends in plant science.-1998.-V.3,№ 6.-C.205−207.
  232. Guilfoyle T.J., Ulmasov Т., Hagen G. The ARF family of transcription factors and their role in plant hormone responsive transcription // Cell Mol. Life Sci.-1998. V. 54. — P. 619−627.
  233. Guller G., Dodle A.D. Effect of singlet oxigen generating substances on the ascorbic acid and glutathione content in pea leaves // Plant Science.-2000.-V.154.-P.127−133.
  234. Habig W.H., Pabst M.V., Jacobi W.B. Glutation S-transferases // J. Biological Chem.-1974.-V.249.- P.7130−7135.150
  235. Hansen H., Grossmann К. Auxin-induced ethylene triggers abscisic acid biosynthesis and growth inhibition //Plant Physiol.-2000.-V.124.- P. 1437−1448.
  236. Havaux M. Carotenoids as membrane stabilisers in chloroplasts // Trends in Plant Science.-1998, — V.3, № 4.- P. 147−151.
  237. Hegedus A., Erdei S., Horvat G. Comparative studies of H2C>2 detoxifying enzymes in green and greening garley seedlings under cadmium stress // Plant Science.-2001.-V. 160.-P. 1085−1093.
  238. Herouart D., Van Montagu M., Inze D. Developmental and environmental regulation of Nicotiana plumbaginifolia cytosolic Cu/Zu superoxide dismutases promoter in transgenic tobacco // Plant Physiology.-1994.- V.104.- P. 873−880.
  239. Hidalgo E., Ding H., Demple B. Redox signal transduction via iron-sulfur clusters in the SoxR transcription activator // TIBS.-1997.-V.22.-P.207−210.
  240. Horemans N., Foyer C.H., Asard H. Transport and action of ascorbate at the plant plasma membrane // Trends in Plant Science.-2000.-V.6, № 6.- P.263−267
  241. Hwang J.-U, Lee Y. Abscisic acid induced actin reorganisation in guart cell of draylaver is mediated by cytosolic calcium leves and by protein kinase and protein phosphatase activities // Plant Physiology.-2001.-V. 125.-P.2120−2128.
  242. Iawata J., Tanaka U. Glutathionereductases «positive» spectrophotometre as-sayes // Colled. Cresh. Chem. Commun. 1977. — V.42, № 3. — P. 1086- 1089.
  243. Iturbe-Ormaetxe I., Escuredo P.R., Arrese-Igor С., Becana M. Oxidative damage in Pea plants exposed to water deficit or paraquat // Plant Physiol. -1998.-V. 116.-P.173−181.
  244. Jansen M.A.K., Gaba V., Greenberg B.M. Higher plants and UV-B radiation: balancing damage, repair and acclimation // Trends in Plant Science.-1998.- V.3, № 4.- P. 131−135.151
  245. Jiang Y., Huang B. Effects of caltium on antioxidant activities and water relations associated with heat tolerance in two cool-season grasses // J. Of Experimental Botany. -2001-V. 52, № 355. P. 341−349.
  246. Jimenez A., Hernandez J.A., Pastori G., del Rio L.A., Sevilla F. Role of the ascorbate-glutathione cycle of mitochondria and peroxisomes in the senescence of pea leaves // Plant Physiology.-1998.-V. 118.-P. 1327−1335
  247. Jones A. M. Auxin-binding proteins // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.-1994.-V. 45.- P. 393−420.
  248. Joo J.H., Bae Y.S., Lee J.S. Role of auxin-induced reactive oxygen species in root grsviotropism // Plant Physiology.-2001.-V.126.-P. 1055−1066.
  249. Klambt D.A. View about the function of auxin-binding proteins of plasma memranes // Plant Mol. Biol.-1990.-V.14.-P. 1045.
  250. Kliebenstein D. J., Monde R. A., Last R. L. Superoxide dismutase in Arabi-dopsis: an eclectic enzyme family with disparate regulation and protein localization // Plant Physiol. 1998. — V. 118, № 2. — P. 637−650.
  251. Kolomiets M.V., Hannapel D.J., Chen H., Tymeson M., Gladon R.J. Lipoxygenase is involved in the control of potato tuber development // Plant Cell.-2001.-V. 13.-P.613−626.
  252. Kosakivska L.V., Maidebura E.V. ABA, LAA and cytocinin accumulanion under temperature stress by Triticum aestirum L. // Biol. Plant.-1994.-V.36.Suppl.-P.276.
  253. Kosenko E. A., Kaminsky Y. G., Stavrovskaya I. G., Sirota Kondrashova M. N Т. V. The stimulatory effect of negative air ions and hydrogen peroxide on the activity of superoxide dismutase // FEBS Letters.-1997.-V.410, № 2−3.- P. 309−312.
  254. Kurepa J., Herouart D., Van Montagu M., Inze D. Differential expression of Cu, Zn and Fe-superoxide dismutase genes of tobacco during development, oxidative stress and hormonal treatments // Plant Cell Physiology.-1997.-V.38. P. 463−470.152
  255. Leckie С.P., McAinsh M.R., Allen G.J., Sanders D., Hetherington A.M. Abscisic acid-induced stomatal closure mediated by cyclic ADP-ribose // Procl.Natl.Acad. Sci. USA.-1998.-V.95.-P.15 837−1584.
  256. Lee B.-H., Won S.-H., Lee H.-S., Miyao M, Chung W.-I., Kim I.-J., Jo J. Expression of the chloroplast-localized small heat shock protein by oxidative stress in rice // Gene. 2000. — V. 245. — P. 283−290.
  257. Lehmann J., Arzorn R., Leopold J., Wasternack C. Induction of specific proteins by metil jasmonate osmotic stress // Biol. Chem./ Hopple-Seyler.-1993.-V.384.-№ 8.-P.529.
  258. Lionev S.I., Fridovich I. How does superoxide dismutase protect against tumor necrosis factor: a hypothesis informed by effect of superoxide on «free» iron // Free Radical Biological &Medicine.-1997.-V.23, № 4.-P. 668−671.
  259. Lionev S.I., Fridovich I. On the role of bicarbonate in peroxidation catalyzed by Cu, Zn superoxide dismutase // free Radical Biologiy & Medicine.-1999.-V. 27, № 11/12.-P. 1444−1447.
  260. Loggini В., Scartazza A., Brugnoli E., Navari-Izzo F. Antioxidative defense system, pigment composition and photosynthetic efficiency in two wheat culti-vars subjected to drought // Plant Physiology.-1999.-V.119.- P. 1091−1099.
  261. Lowry O.N., Rosenbrough N.J., Tarr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem.-1951.-V.193,№l.-P.265−275.
  262. Luschnig C., Fink G.R. Two pieces of the auxin puzzle // Trend in plant science.-1 999.-V.4,№ 5 .-P. 162−164.
  263. Maccarrone M., Veldink G.A., Agro A.F., Vliegenthart J.F.G. Modulation of soybean lipoxygenase expression and membrane oxidation by water deficit // FEBS Letters.-1995.-V. 371.- P 223−226.
  264. MacDonald H. Auxin perception and signal transduction // Physiol. Plant. -1997. V.100, № 3. — P. 423−430.
  265. Marre M.T., Amicucci E., Zingarelli L., Abbergoni F., Marre E. The respiratory burst and electrolite laakade induced by sulfhydryl blockers in Egenia2+ densa leaves are assiciated with H2O2 production and dependent on Ca influx
  266. Plant Physiology.- 1998.- V.118.- P. 1379−1387.
  267. Marrs K.A. The functions and regulation of glutathione S-tansferases in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.- 1996. V. 47. — P. 127 158.
  268. Mc Gonigle В., Keeler S.J., Lau S-M.C., Koepple M.K., O’Keefe D.P. A genomic approach to the comporehensive analisis of the glutathione S-transferase gene family in soybean and maize // Plant Physiology.-2000.-V.124.-P.-1105−1120.
  269. Mehdy M.C. Active oxygen species in plant defense against pathogens // Plant Physiology 1994. — V. 105, № 2. — P. 467−472.
  270. Monk L.S., Fagerstedt R.V., Crawford R.M.M. Superoxide dismutase als an anaerobie polipeptide. A key factorin recovery from oxigtn deprivation in Iris pseudocorus? // Plant Physiologi.-1987.-V.85.-P.1016−1020.
  271. Moons A., Baur G., Prisen E., Montagu M.V., Strauten D.V.D. Molekular and physiological responses to abscisis acid and salts in roots of salt sensitire and salt-tolerant indica rise varieties // Plant Physiologi.-1995.-V.107,№l.-P.177−186.154
  272. Munnik Т., Irvine R. F., Musgrave A. Phospholipid signaling in plants // Biochem. Biophys. Acta. 1998. — V. 1389. — P. 222−272.
  273. Neill S.J., Burnett E.S. Regulation of gene expression during water deficit stress// J. Plant Growth Reg. 1999. — V. 40, № 15. — P. 250−252.
  274. Offer Т., Russo A., Samuni A. The pro-oxidative activity of SOD and ni-troxide SOD mimics // FASEB Journ. 2000. — V.14. — P. 1215−1223.
  275. Ohlsson A.B., Berlung T. Gibberellic acid induced changes in glutathione metabolism and antocianin content in plant tissue // Plant Cell, Tissue and Organ Culture.-2001 .-V.64.-P. 77−80.
  276. Orozco-Cardenas M.L., Narvaez-Vasquez J., Ryan C.A. Hydrogen peroxide acts as a second messenger for the induction of defense genes in tomato plants in response to wounding, systemin, and methyl jasmonate // Plant Cell. 2001. -V.13, № 1. — P.179−191.
  277. Orozco-Cardenas M.L., Ryan C.A. Hydrogen peroxide is generated systemi-cally in plant leaves by wounding and systemin via the octadecanoid pathway // Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1999-.V.96.-P.6553−6557.
  278. Pastori G., Mullineaux P., Foyer C. Post-transcriptional regulation prevents accumulation of glutatione reductase protein and activity in the bundle sheath cells of maze //Plant Physiology.- 2000.- V. 122.- P. 667−675.
  279. Patterson B. D., Payne L. A., Chen Yi-Zhu, Graham P. An inhibitor of cata-lase induced by cold in chilling-sensitive plants // Plant Physiology.-1984.- V. 76, № 4.-P. 1014−1018.155
  280. Perl-Trevis R., Galum E. The tomato Cu/Zn superoxid dismutase genes are developmentally regulated and respond to ligth and stress // Plant Mol. Biol.-1991 .-V. 17.-P.745−760.
  281. Polisensky D.H., Braam J. Gold-shok regulation of the arabidopsis THC genes and the effects modulating intracellular calcium levuls // Plant Physiology.-1996.-V. 14, № 4.-P. 1271 -1279.
  282. Polle A., Krings В., Rennenberg H. Superoxide dismutase activiti in needles of norwegian spruce trees (.Picea abies L.) // Plant Physiology.-1989.-V.90.-P.1310−1315.
  283. Porat R., Borochov A., Halery A.H. Polination inducid senescence in phalaenopsis petols. Relationship of ethylene sensivity to activity of GTP-vinding proteins and protein phosporylation // Physiol. Plant.-1994.-V.9, №.4.-P.679−684.
  284. Prakash T.R., Swamy P.M., Reddanna P. Characterization and behavior of 15-lipooxygenase during peanut cotyledonary senescence // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1990. — V. 172. — P. 462−470.
  285. Price A.H., Taylor A., Ryphey S.J., Griffiths A., Trewavas A.J., Knight M.R. Oxidative signals in tobacea inevease citosolic calcium // Plant cell.-1994.-V.6, № 9.-P.1301−1310.
  286. Ritchie S., Gilroy S. Abscisic acid signal transduction in the barley aleurone is mediated by phospholipase D activity // Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1998.-V .95 .-P.2697−2702.
  287. Rossini L., Jepson J., Greenland A.J., Gorla M.S. Characterisation of glutatione S-transferase isoforms in three maize inbred lines exhibiting oliferitial sensitivity to alaclor // Plant Physiologi.-1996.-V.l 12.-P.1595−1600.
  288. Ryter S.W., Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen ('02): a possible effector of eucaryotie gene expression // Free Rad. Biol. Med. 1998. — V. 24, № 9. — P. 1520−1534.
  289. Sabelli P.A. Northern blot analysis // Molecular biomethods handbook / ed. R. Rapley, J.M. Walker. -Totowa, New Jersey: Humana Press, 1998. P. 89−94.156
  290. Sairam R.K., Srivastava G.C. Induction of oxidative stress and antioxidant activity by hydrogen peroxide treatment in tolerant and susceptible wheat genotypes // Biologia plantarum 2000.- 43(3).-P. 381−386.
  291. Sanders D., Brownlee C., Harper J.F. Communicating with calcium // Plant Cell.-1999.- V. l 1.- P.691−706.
  292. Sankarapandi S., Zweier J.L. Evidence against the generation of free hy-droxyl radicals from the interaction of copper, zinc superoxide dismutase and hydrogen peroxide // J. Biol. Chem. — 1999. — V. 274, № 49. — P. 34 576−34 583.
  293. Scandalios J.G. Molecular genetics of superoxide dismutases in plants // Oxidative stress and the molecular biology of antioxidant defences / ed. J.G. Scandalios. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1997. — P. 527−568.
  294. Schafer F.Q., Buettner Redox environment of the cell as viewed trough the redox state of the glutathione disulfide/glutathione couple // Free Radical Biology & Medicine.-2001 .-V.30, № 1 l.-P.l 191−1212.
  295. Schaffer M.A., Fischer R.L. Analysis of mRNAs that accumulate in response to low temperature identifies a thiol protease gene in tomato // Plant Physiol. 1988. — V. 87. — P. 431−436.
  296. Schreck R., Rieber P., Bauerle P.A. Reactive oxygen intermediates as apparently widely used messengers in the activation of the NF-kappa В transcription faktor and HIV-I // EMBO J.-1991.-V.10.-P.2247−2258.157
  297. Scioli J.R., Zilinskas В. A. Cloning and characterization of a cDNA encoding the chloroplastic copper/zinc superoxide dismutase from pea // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1988. — V. 85. — P. 7661−7665.
  298. Sies Y. Glutathione and its role in cellular functions // Free Radical Biology & Medicine.- 1999.-V.119, № 9/10.-P.916−921.
  299. Stevens R.G., Creissen G.P., Millieaux P.M. Characterisation of pea cytoso-lic glutatione reductase cDNA expressed in transgenic tobacco // Planta.-2000.-V.211, № 4.-P.537−545.
  300. Stevens R.G., Creissen G.P., Millieaux P.M. Cloning and characterisation of ' a cytosolic glutatione reductase cDNA from pea (Pisum sativum L.) and its expression in resonse to stress // Plant Mol.Biol.- 1997.-V.35.- 641−654.
  301. Sun Y., Oberley L.W. Redox regulation of transcriptiolal activators // Bio-chem. J.-1999.-V.342.-P. 481−496.
  302. Suttle J. S. Cytokinin-induced ethylene biosynthesis in nonsenescing cotton leaves // Plant Physiol. 1986. — V. 82. — P. 930−935.
  303. Suzuki T.C., Krawitz D.C., Vierling E. The chloroplast small heat-shock protein oligomer is not phosphorilated and does not dissociate during heat stress in vivo // Plant Physiology.-1998.-V. 116.- P. 115−1161.
  304. Tjus S.E., Scheller H.V., Andersson В., Moller B.L. Active oxygen pro-dused during selective excitation of photosystem I is damaging not only to photosystem I, but also to photosystem II // Plant Physiology.-200l.-V. 125, № 4.-P.2007−2015.
  305. Tsang E.W., Bowler C., Herouart D., Van Camp W., Villarroel R., Genetello C., Van Montagu M., Inze D. Differential regulation of superoxide dismutases in plant exposed to environmental stress // Plant Cell.-199l.-V. 3.- P. 783−792.
  306. Ulmasov Т., Hagen G., Guilfoyle T.J. Activation and repression of transcription by auxin-response factors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. — V. 96. — P. 5844−5849.
  307. Ulmasov Т., Hagen G., Guilfoyle T.J. The soybean GH2/4 gene that encodes a glutathione S-transferase hos a promoter that is activated by a wide range of chemical agents // Plant Physiology.-1995.-V.108.-P. 919−927.
  308. Van Camp W., Van Montagu., Inse D. H202 and NO: redox signals in disease resistance // Trend in plant science.-1998.-V.3,№ 9.-P.330−334.
  309. Van Zee K., Chen F.Q., Hayes P.M., Close T. J., Chen T.H.H. Cold specific induction of a dehydrin gene family member in barley // Plant Physiol. -1995.-V. 108.-P. 1233 — 1239.
  310. Venis M.A., Napier R.M. Auxin receptor and auxin binding proteins // Crit. Rev. Plant Sci. 1995. — V.14, № 1. — P.27−47.
  311. Virant K.J., Cogala N. Effect of water stress on relaase of ethylene in germinating maize seeds (Zea mays L.) // Acta pharm.(Croat).-1995.-V.45.-N.2.Suppl.n.l.-P.391−394.
  312. Wang C., Jarlfors U., Hildebrand D.F. Regulation and subsellular localisation of auxin-induced lipoxygenases // Plant Science.-1999.-V.148.-P.147−153.159
  313. Weidner M., Fehling E. Heat modification of ribulose-l, 5-biphosphate carboxylase / oxygenase by temperature pretreatment of wheat seeding // Planta.-1985.- V.166.-P. 177−127.
  314. Wendehenne D., Pugin A., Klessing D.F., rg Durner J. Nitric oxide: comparative synthesis and signaling in animal and plant cells // Trends in Plant Science.-2001.-V.6,№ 4.-P.177−183.
  315. White D.A., Zilinscas B.A. Nucleotide sequence of a complementary DNA encoding pea cytolic copper/zinc superoxide dismutase // Plant Physiol.-1991.-V. 96.- 1391−1392.
  316. Willekens M., Chamnongpol S., Davey M., Schraudner M., Langebartels C., Van Montagu M., Inze O., Van Camp W. Catalase is a sink for H202 and is indispensable for stress defence in C3 plants // The EMBO J.-1997.-V.16.-P.4806−4816.
  317. Wingsli G., Karpinski S. Differential redox regulation by glutatione of glutatione reductase and Cu/Zn superoxide dismutase gene expression in Pinus sylvestris 1. nudles //Planta.-1996.-V.198.-P.151−157
  318. Wojtaszek P. Mehanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defence response // Acta Physiol. Plantarum. 1997. — V. 19, № 4. — P. 581−5892.
  319. Wong-Vega L., Burke J.J., Alien R.D. Isolation and sequience analysis of a cDNA that encodes pea manganese superoxide dismutase //. Plant Mol. Biol. -1991.-V. 17. -P. 1271−1274.
  320. Xiang C., Miao Z.H., Lam E. Coordinated activation of ж-7-type elements and a tobacco glutathione S-transferase gene by auxins, salicylic acid, methyl160jasmonate and hydrogen peroxide 11 Plant Mol. Biol. 1996. — V. 32. — P. 415 426.
  321. Zarembinski T, Theologis A. Ethilene biosintesis and action: a case of conservation // Plant Mol. Biol. 1994. — V. 26. — P. 1579−1597.
  322. Zhang X., Zhang L., Dong F., Gao J., Galbraith D.W., Song C.-P. Hydrogen peroxide is involved in abscisic acid-induced stomatal closure in Vicia faba II Plant Physiology.-200l.-V. 129.-P. 1438−1448.162
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!