Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Участие дыхательных путей в регуляции антиоксидантных систем у растений пшеницы

Диссертация: Участие дыхательных путей в регуляции антиоксидантных систем у растений пшеницы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Ward et al., 1991; Niki et al., 1998), проявляющее защитный эффект на растения при воздействии абиотических стрессовых факторов (Dat et al., 1998) — участвующее в увеличении содержания пролина (Pancheva et al., 1996; Shakirova et al., 2003), в активации МАР-киназного каскада (Conrath et al., 1997; Shirasu et al., 1997; Zhang, Klessig, 1997), обладающее свойством антиоксиданта (Norman et al… Читать ещё >

Участие дыхательных путей в регуляции антиоксидантных систем у растений пшеницы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений
  • Глава 1. Взаимодействие процессов фотосинтеза, дыхания и роста в целом растении
    • 1. 1. Соотношение интенсивности процессов фотосинтеза и дыхания при изменении условий среды
    • 1. 2. Биохимические пути дыхательного обмена растений
      • 1. 2. 1. Основные биохимические пути окисления глюкозы
      • 1. 2. 2. Цитохромная оксидаза
      • 1. 2. 3. Альтернативная оксидаза
  • Глава 2. Природные и синтетические регуляторы роста растений
    • 2. 1. 1. Салициловая кислота (СК)
    • 2. 1. 2. Рифтал
  • Глава 3. Растения в условиях стресса
    • 3. 1. Воздействие тяжелых металлов (ТМ) на растения
    • 3. 2. Влияние условий минерального питания на составляющие продукционного процесса растений
    • 3. 3. Роль прооксидантной и антиоксидантной системы при стрессах
  • Глава 4. Объекты и методы исследования
    • 4. 1. Объекты исследования
    • 4. 2. Условия выращивания растений
    • 4. 3. Морфо-физиологические характеристики и параметры продуктивности 46 4.4.0пределение интенсивности дыхания и функциональных составляющих дыхательного обмена
    • 4. 5. Определение активности пероксидазы и каталазы
      • 4. 5. 1. Определение активности гваяколпероксидазы
      • 4. 5. 2. Определение активности каталазы
    • 4. 6. Определение содержания малонового диальдегида
    • 4. 7. Определение концентраций фотосинтетических пигментов
    • 4. 8. Определение содержания перекиси водорода
    • 4. 9. Определение содержания меди в растениях
  • Глава 5. Результаты исследований и их обсуждение
    • 5. 1. Влияние салициловой кислоты на морфофизиологические показатели у растений Triticum aestivum L. в нормальных условиях
    • 5. 2. Влияние салициловой кислоты на биохимические показатели у растений в нормальных условиях
    • 5. 3. Влияние салициловой кислоты на морфофизиологические показатели у растений в условиях повышенной концентрации меди
    • 5. 4. Влияние салициловой кислоты на биохимические показатели у растений в условиях повышенной концентрации меди
    • 5. 5. Влияние Рифтала на морфофизиологические и биохимические показатели у растений Triticum aestivum L. в нормальных условиях и при дефиците элементов минерального питания

Функционирование растительных организмов неразрывно связано с потреблением и трансформацией энергии в процессах фотосинтеза и дыхания. В то же время хлоропласты и митохондрии являются основным местом постоянного образования активных форм кислорода (АФК) (Moller and Kristensen, 2004), которые с одной стороны являются продуктом нормального функционирования электрон-транспортных цепей (ЭТЦ) дыхания и фотосинтеза, а с другой представляют собой химически активные соединения, вызывающие деградацию липидов, белков, повреждающие ДНК, дезорганизующие цитоскелет и т. д. (Турпаев, 2002; Eva et al., 2002). Образование АФК значительно усиливается при патологических состояниях, в стрессовых условиях (Mitteler, 2002; Полесская и др., 2006). В процессе адаптации растений к изменениям условий среды может происходить смена соотношений путей дыхательного метаболизма за счет увеличения доли альтернативных путей дыхания (Меденцев и др., 1999; Шугаев, 1999; 2006). Изменение направления и величины соотношений альтернативных путей дыхательного метаболизма отражается на энергетической эффективности дыхательных затрат на адаптацию, оценка которых представляет собой сложную задачу (Семихатова, 1998; Рахманкулова и др., 2001; 2003).

Одним из наиболее эффективных путей повышения устойчивости сельскохозяйственных культур, их качества и урожайности является использование природных и синтетических регуляторов роста (Шакирова, 2001). В настоящее время достигнуты значительные успехи в понимании их метаболизма, молекулярного механизма их регуляторного действия (Lenton, 1998; Pilet, 1998; Кулаева, Кузнецов, 2002; Fu, Harberd, 2003). Однако остается невыясненным вопрос энергетического обеспечения их ростстимулирующего и протекторного эффекта.

Перспективным для практического использования регуляторов роста является салициловая кислота (СК) — эндогенное соединение фенольной природы (Shakirova et al., 2003), играющее особую сигнальную роль в индукции системной приобретенной устойчивости растений к инфекциям 5.

Ward et al., 1991; Niki et al., 1998), проявляющее защитный эффект на растения при воздействии абиотических стрессовых факторов (Dat et al., 1998) — участвующее в увеличении содержания пролина (Pancheva et al., 1996; Shakirova et al., 2003), в активации МАР-киназного каскада (Conrath et al., 1997; Shirasu et al., 1997; Zhang, Klessig, 1997), обладающее свойством антиоксиданта (Norman et al., 2004) и прооксиданта, являясь ингибитором каталазы (Медведев, 2004). Показано, что СК оказывает влияние на дыхательные пути, а именно является индуктором альтернативной оксидазы (АО), способствует отклонению потока электронов от цитохромного пути и разобщению окислительного фосфорилирования (Meeuse, 1975; Jorgensen et al., 1976; Maxwell et al., 1999). Однако есть данные, что активация АО под действием салицилата носит временный характер, который исчезает по мере исчерпания уровня СК в клетке (Norman et al., 2004). На интенсивность фотосинтеза действие СК также противоречиво (Pancheva et al., 1996; Molina et al., 1999; Sahu et al., 2002).

Из синтетических регуляторов роста практический интерес представляет препарат Рифтал, который разработан сотрудниками Башкирского государственного университета, НИТИГ и Саратовской аграрной академии. Рифтал оказывает ауксиноподобное ростстимулирующее воздействие на растения (Дорошева и др., 2001; Кудоярова и др., 2001) — увеличивает количество растворимых белков в семенах пшеницы и ячменя (Ямалеева и др., 2004) — ингибирует развитие фитопатогенных грибных инфекций (Монастырский, Талипов, 2003).

Соли металлов в окружающей среде являются мощным экологическим фактором, оказывающим влияние на физиолого-биохимические процессы в живых организмах. Как недостаток элементов минерального питания, так и избыток отдельных макрои микроэлементов может вызывать целый ряд негативных процессов, таких как нарушение дыхания, фотосинтеза, фиксации и ассимиляции некоторых главных питательных веществ (Ильин, 1985; Кабата-Пендиас, Пендиас, 1989; Демидчик и др., 2001; Singh et al., 2005).

Остается открытым вопрос как влияют благоприятные, ростстимулирующие и неблагоприятные, ростингибирующие условия на взаимосвязь процессов фотосинтеза и дыхания, задействованность цитохромного и альтернативного окислительных путей и их участие в антиоксидантном комплексе.

Цели и задачи исследования.

Цель данной работы заключалась в исследовании влияния природного и синтетического регуляторов роста на основные энерготрансформирующие процессы и про/антиоксидантный статус растений в норме и при стрессовых воздействиях (дефицит элементов минерального питания, токсическое содержание тяжелых металлов).

Для реализации цели были поставлены следующие задачи:

1) Исследовать влияние салициловой кислоты на морфофизиологические и биохимические показатели у пшеницы в нормальных условиях.

2) Исследовать влияние салициловой кислоты на морфофизиологические и биохимические показатели у пшеницы, выращенной в условиях токсической концентрации солей меди.

3) Исследовать влияние Рифтала на морфофизиологические и биохимические показатели у пшеницы в нормальных условиях и при дефиците элементов минерального питания.

Научная новизна.

Впервые проведена комплексная оценка вклада основных энерготрансформирующих процессов, про/антиоксидантной системы в реализации протекторного действия СК и Рифтала на растения пшеницы в условиях дефицита элементов минерального питания и воздействия ТМ. Показана важная роль альтернативного пути дыхания в передаче внутриклеточного сигнала.

Практическая значимость работы.

Изучение механизмов действия регуляторов роста на растительные организмы необходимы для эффективного управления устойчивостью и продуктивностью культурных растений. Знание их (механизмов) может служить теоретической основой для разработки эффективных технологий применения регуляторов роста с целью повышения устойчивости и продуктивности растений.

Выводы.

1) Предпосевная обработка 0,05 мМ салициловой кислотой или 0,05 мМ Рифталом оказывает ростстимулирующее действие на растения пшеницы. Происходит увеличение массы надземных и подземных частей растений.

2) При дефиците элементов минерального питания снижается масса всего растения, особенно надземной части (в 1,32 раза) и, в меньшей степени, подземной части растений. Рифтал в условиях стресса не влияет на массу надземных частей и стимулирует увеличение массы корней.

3) На среде с избыточным содержанием меди происходит торможение роста побегов и корней (в 1,2 раза). Анализ содержания меди в растениях показал, что основное количество металла накапливается в корнях.

4) Предпосевная обработка салициловой кислотой, дефицит элементов минерального питания и избыточное содержание в среде меди приводит к увеличению доли дыхательных затрат от гроссфотосинтеза (XR/Pg). Возрастание ER/Pg сопровождается увеличением доли альтернативного пути дыхания или в побегах, или в корнях исследуемых растений пшеницы.

5) Предпосевная обработка салициловой кислотой приводит к постепенному и последовательному (в течение 14 дней) возрастанию в побегах доли альтернативного пути дыхания, в корнях-цитохромного пути. Возрастание доли альтернативных путей дыхания в побегах приводит к снижению накопления Н2Ог и как следствие к уменьшению степени перекисного окисления липидов.

6) При дефиците элементов минерального питания наблюдается значительное возрастание дыхательных затрат на адаптацию (Ra), что сопровождается увеличением (в 2 раза) доли альтернативного пути дыхания. Предпосевная обработка ауксиноподобным регулятором роста Рифталом приводит к снижению доли Ra и альтернативного пути дыхания (в 1,7 раза), а также возрастанию содержания каротиноидов и снижению перекисного окисления липидов.

Заключение

.

Рис. 20. Схема защитного механизма салициловой кислоты (СК) (А) и Рифтала (В) с участием различных дыхательных путей. А. Протекторная роль СК Нормальные условия.

Побег.

СК.

Корень.

АПТ.

1 линия защиты в 1,5 pf.

АФК| (Н202).

2 линия защиты вЗр f С.

МДА1 каталаза) рост!

СК.

ЦП|.

АФКТ (Н202).

МДА4 пероксидаза).

Побег.

Стресс (Си) рост|.

Корень в 3,7 р в 1,48 р в 3 р в 1,23 р

В. Протекторная роль Рифтала нппмя.

2№i дефицит.

ЦП|.

АЩ.

Raj.

ЦП|.

АП| пероксидаза].

Каротиноиды|.

МДА1 каталазаТ.

Каротиноиды|.

МДА1.

Примечание: |-возрастание, |-снижение параметров.

Антиоксидантное действие СК проявилось как в нормальных, так и неблагоприятных внешних условиях (рис. 20, А). Влияние салицилата заключалось в индуцировании АО и альтернативного пути дыхания (первая линия защиты), что приводило к существенному снижению уровня Н202 (вследствие повышения активности каталазы) (вторая линия защиты). В результате уменьшалось содержание МДА. В корнях данный механизм не включался, не происходило усиления альтернативного пути. Возможно это связано с резким снижением содержания эндогенной СК (Norman et al., 2004). При этом происходила стимуляция цитохромного пути дыхания (энергетически более выгодного) и относительное возрастание содержания перекиси (рис.5). Однако здесь, по-видимому, включался другой антиоксидантный механизм, который связан с повышением активности гваяколпероксидазы, активность которой возросла в корнях (в 1,5 раза), что и привело к значительному (в 1,7 раза) снижению содержания МДА в корнях исследуемых растений (рис.5).

В ходе проведенных экспериментов выявлена протекторная роль СК при избыточном содержании ионов Си, а именно показано положительное стабилизирующее действие СК на энергетический баланс SR/Pg, т. е. доля дыхательных затрат от гроссфотосинтеза снижается. СК проявляет при действии ТМ выраженный антиоксидантный эффект, который связан с значительной (в 3,7 раза) активацией АО и альтернативного дыхания в побегах исследуемых растений. В корнях также происходило усиление альтернативного пути, но как следует из приведенных данных, индуктором в данном случае является медь. Именно в корнях происходит наибольшая аккумуляция солей этого металла. В результате действия СК, как в побегах, так и в корнях уровень МДА в условиях токсического содержания меди изменялось незначительно.

Таким образом показано, что альтернативный путь дыхания играет важную роль в передаче внутриклеточного сигнала при реализации антиоксидантной защиты растительной клетки и формировании про/антиоксидантного баланса.

Протекторная роль Рифтала в условиях дефицита элементов минерального питания проявлялась в перераспределении ассимилятов в корневую систему, снижении непроизводительных дыхательных затрат (Ra). Показана при действии препарата стимуляция антиоксидантного комплекса: возрастание активности пероксидазы (в нормальных условиях) и каталазы (при дефиците минерального питания), увеличения содержания каротиноидов и как следствие подавление накопления МДА (рис. 20, В).

Таким образом, при ростстимулирующих и ростингибирующих условиях у растений пшеницы имеют место как общие черты, характеризующие изменения в основных энерготрансформирующих процессах (возрастание IR/Pg, доли альтернативного пути дыхания), так и существенные различия, отражающие вариабельность, сложный и неоднозначный характер взаимосвязи альтернативных путей дыхания и антиоксидантых механизмов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.А., Рамазанова J1.X. Активность и изоферментный состав пероксидазы листьев бобов в связи с обезвоживанием // Доклады АН СССР. 1973. Т. 200. Вып. 1. С. 235−238.
  2. Н.Д., Кренделева Т. Е., Полесская О. Г. Взаимосвязь процесса усвоения азота и фотосинтеза в клетке листа Сз -растений // Физиология растений. 1996. Т. 43. С. 136−148.
  3. М.В., Сахабутдинова А. Р., Фатхутдинова Р. А., Шакирова Ф. М., Кильдиярова И. А. Влияние салициловой кислоты на содержание гормонов в корнях и рост проростков пшеницы при водном дефиците // Агрохимия. 2001. №. 2. С. 51−54.
  4. Брюханов A. JL, Нетрусов А. И. Каталаза и супероксиддисмутаза: распространение, свойства и физиологическая роль в клетках строгих анаэробов // Биохимия. 2004. Т. 69. С. 1170−1186.
  5. Брюханов A. JL, Несатый В. И., Нетрусов А. И. Очистка и свойства Fe-содержащей супероксиддисмутазы из Methanobrevibacter arboriphilus штамм az // Биохимия. 2006. Т. 71. Вып. 4. С. 546−553.
  6. Н.А., Красавина М. С. Салициловая кислота-один из регуляторов флоэмной разгрузки? // Тез. докл. 4 съезда ВОФР. М. 1999. С. 117.
  7. Н.Г., Егорова Е. А. Доказательства функционирования альтернативных путей электронного транспорта через ФС 1 в интактных листьях ячменя на слабом и умеренном белом свету // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 1. С. 5- 11.
  8. В.В. Регуляторы роста // Защита и карантин растений. 2004. №. 1. С. 24−26.
  9. Ю.Вахитов В. А., Шакирова Ф. М., Гилязетдинов Ш. Я. О механизмах действия природных регуляторов роста на растения пшеницы // Химия и технология применения регуляторов роста растений: Материалы конференции / Изд-е Башкирск. ун-та. Уфа, 2001. С. 3−19.
  10. С.В., Фархутдинов Р. Г., Веселов Д. С., Кудоярова Г. Р. Роль цитокининов в регуляции устьичной проводимости проростков пшеницы при быстром локальном изменении температуры // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 6. С. 857−862.
  11. У., Вольска Э. Влияние азота на продуктивность фотосинтеза. // Минеральное питание сельскохозяйственных культур, урожая и качество продукции. М.: Колос, 1989. С. 64−72.
  12. Л.Б. Механизмы координации ростового ответа проростков пшеницы при нарушении соотношения побег/корень // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 5. С. 763−768.
  13. Л.Б., Тимергалина JI.H., Веселов С. Ю., Кудоярова Г. Р. Влияние азотсодержащих солей на содержание цитокининов в изолированных листьях пшеницы // Физиология растений. 2007. Т. 54. №. 2. С. 217−222.
  14. В.Ф., Ладыгина М. Е., Хандобина Л. М. Определение количественных и качественных параметров дыхания // Большой практикум по физиологии растений / Под ред. Рубина Б.А.М: Высшая школа. 1975. С. 251.
  15. И.Г. Пероксидазы растений // Итоги науки и техники. 1992. Т. 36. С. 4−52.
  16. С.Г. Биологически активные.- М.: Мол. гвардия, 1988. -270 2.с.
  17. М.М., Недорезков В. Д. Химические средства защиты растений.-Уфа: Изд-во БГАУ, 2006.- 320 с.
  18. Е.Ю., Тарасенко В. И., Кобзев В. Ф., Константинов Ю. М. Дифференциальная экспрессия митохондриальных генов кукурузы при изменении редокс-состояния митохондрий // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 4. С. 518−524.
  19. К.Н. Темновое дыхание растений. Киев: Наукова думка, 1990. 136 с.
  20. Т.К., Семихатова О. А. Изучение дыхания как фактора продуктивности растения (на примере клевера красного) // Физиология и биохимия культ, растений. 1980. Т. 12. С. 1.
  21. Т.К. Количественное соотношение фотосинтеза и дыхания у травянистых растений // Ботан. журн. 1983. Т. 68. №. 6. С. 779−788.
  22. Т.К. Онтогенетические изменения дыхания в связи с продуктивностью картофеля // Физиологические основы продуктивности картофеля в Коми АССР. Сыктывкар, 1984. С. 50−61 (Тр. Коми филиала АН СССР, №. 64).
  23. Т.К. Система показателей в исследованиях роли дыхания в продукционном процессе растений // Физиология растений. 1985.Т. 32. С. 1004−1013.
  24. Т.К. Соотношение фотосинтеза и дыхания в продукционном процессе некоторых видов культурных растений // Фотосинтез и продукционный процесс. Свердловск. 1988. С. 118−124.
  25. Т.К. Дыхание растений (физиологические аспекты). СПб.: Наука, 1999.-204 с.
  26. Т.К., Добрых Е. В. Связь дыхания с содержанием азота в биомассе райграса однолетнего // Физиология растений. 1993. Т. 40. Вып. 2. С. 61−65.
  27. Т.К., Пыстина Н. В. Альтернативный путь дыхания в листьях Rhodiola rosea и Ajuga reptans: возможная физиологическая роль // Физиология растений. 2001.Т. 48. С. 846−853.
  28. А.В., Звягильская Р. А., Лабас Ю. А. Взаимосвязь между активными формами кислорода и кальцием в живых клетках // Биохимия. 2003. Т. 68. Вып. 10. С. 1318−1322.
  29. О.И., Колесниченко А. В., Побежимова Т. П., Зыкова В. В., Войников В. К. Механизмы и функции нефосфорилирующего транспорта электронов в дыхательной цепи митохондрий растений // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 3. С. 468−480.
  30. И.А., Романенко А. С., Владимирова С. В., Колесниченко А. В. Изменение активности пероксидазы при патогенезе кольцевой гнили картофеля // Физиология растений. 2004. Т. 51. С. 529−533.
  31. A.M., Гродзинский Д. М. Краткий справочник по физиологии растений. Киев: Наукова думка, 1973. 595 с.
  32. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. Т. 1. М.: Мир, 1986. 386 с.
  33. С.Р., Прасад М.Н. В. Антиокислительная активность растений Brassica juncea, подвергнутых действию высоких концентраций меди // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 2. С. 233−237.
  34. В.В., Соколик А. И., Юрин В. М. Токсичность избытка меди и толерантность к нему растений // Успехи современной биологии. 2001. Т. 121. №.5. С. 511−525.
  35. М.А., Дереча А. А., Коломиец В. А. Биопрепарат агат-25: в выигрыше и экономика, и экология // Защита растений. 1994. №. 3. С. 17.
  36. З.Н., Абрамова JI.M., Талипов Р. Ф. Влияние «Рифтала» на повышение всхожести семян и рост проростков видов семейства1.miaceae И Итоги биологических исследований. 2001. Вып. 7. С. 179 181.
  37. Е.Е. Биологическая роль супероксидного анион-радикала и супероксиддисмутазы в тканях организма // Успехи современной биологии. 1989. Т. 108. Вып. 1(4). С. 3−18.
  38. Р.П. Подготовка семян к посеву // Защита растений. 1993. №. 1. С. 46−47.
  39. М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука. 1993.272 с.
  40. Е.Ю., Гавриленко Е. Е., Бурдин К. С. Влияние ионов цинка и меди на фотосинтез и дыхание морских макроводорослей // Физиология растений. 1987. Т. 34. Вып. 2. С. 266−276.
  41. В.Б., Быстрова Е. И., Серегин И. В. Сравнение влияния тяжелых металлов на рост корня в связи с проблемой специфичности и избирательности их действия // Физиология растений. 2003. Т. 50. С. 445−454.
  42. М.Н., Семин Б. К., Иванов И. И. Роль в структурно-функциональной организации донорного участка фотосистемы // Успехи современной биологии. 1988. Т. 106. №. 3. С. 340−346.
  43. Э.Л., Семихатова О. А. Отношение дыхания к гроссфотосинтезу у растений Oxyria digyna в течение вегетационного периода в различных условиях произрастания // Ботанический журнал. 1987. Т. 72. №. 4. С. 489−496.
  44. В.А., Баулин A.M., Гордиенко Т. В., Довыдысов С. А., Тихонов А. Н. Изменения фотосинтетического аппарата листьев бобов в зависимости от содержания тяжелых металлов в среде выращивания // Физиология растений. 2001. Т. 48. №. 1. С. 47−54.
  45. Ю.Е., Акинина Г. Е., Мокроусов А. В. Индукция теплоустойчивости колеоптилей пшеницы ионами кальция и ее связь с окислительным стрессом // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 2. С. 227−232.
  46. М.А., Иванова Л. И., Майорова И. Г., Токарев В. Е. Метод определения активности каталазы // Лабораторное дело. 1988. №. 1. С. 16−19.
  47. С.Я., Голик К. Н., Левчук О. Н. Действие регуляторов роста на фотосинтез, дыхание и азотфиксацию у люцерны при различном обеспечении минеральным азотом // Физиология и биохимия культурных растений. 1999. Т. 31. №. 1. С. 53−59.
  48. Е.И. Взаимосвязь углеродного и азотного метаболизма как один из факторов регуляции продукционного процесса растений: Автореф. дис. докт. биол. наук. М. 1992. 44 с.
  49. Г. Р., Талипов Р. Ф., Веселова С. В. Влияние рифтала на рост растений пшеницы и салата и содержание в них гормонов // Химия и технология применения регуляторов роста растений. Мат-лы конф. Уфа. 2001. С. 109−110.
  50. Г. Г., Карпухина Н. И., Чиков В. И. Баланс ИУК в листе cucumis sativus в условиях декапитации. Роль фотосинтеза // Физиология растения. 1994. Т. 41. №. 3. С. 350−359.
  51. О.Н., Прокопцева О. С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов //Биохимия. 2004. Т. 69. Вып. 3. С. 293−310.
  52. О.Н. Новейшие достижения и перспективы в области изучения цитокининов / О. Н. Кулаева, В. В. Кузнецов // Физиология растений. 2002. Т. 49. №. 4. С. 626−640.
  53. В.В., Гордеева Л. В., Тостаева А. Г. Планриз- протравитель и фунгицид // Защита и карантин растений. 2003. №. 3. С. 19.
  54. Г. Л., Юдина О. С. Дыхание и его роль в продукционном процессе двух сортов яровой пшеницы // Физиология и биохимия культ, растений. 1982. Т. 14. №. 5. С. 491−497.
  55. А.С. Вклад окислительного стресса в развитие повреждения в листьях теплолюбивых растений. 1. Образование активированных форм кислорода при охлаждении растений // Физиология растений. 2002. Т. 49. №. 5. С. 697−702.
  56. А.С., Башмаков Д. И., Кипайкина Н. В. Протекторная роль обработки тиидиазуроном проростков огурца при действии тяжелых металлов и охлаждения // Физиология растений. 2003. Т. 50. С. 346−348.
  57. И.В. Влияние никеля и меди на прорастание семян и формирование проростков черники // Физиология растений. 1999. Т. 46. №. 3. С. 500−502.
  58. И.В., Черепанова Е. А. Про-/антиоксидантная система и устойчивость растений к патогенам // Успехи современной биологии. 2006. Т. 126. №.3. С. 250−261.
  59. .В., Айздайчер Н. А. Содержание фотосинтетических пигментов, рост и размер клеток микроводоросли Phaeodactylum tricornutum при загрязнении среды медью // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 3. С. 343−347.
  60. С.С. Физиология растений. СПб.: Изд-во СПГУ, 2004, — 336с.
  61. С.С., Маркова И. В. Участие салициловой кислоты в гравитропизме у растений // Доклады АН СССР. 1991. Т. 316. №. 4. С. 1014−1016.
  62. А.Г., Аринбасарова А. Ю., Акименко В. К. Регуляция и физиологическая роль цианидрезистентной оксидазы у грибов и растений // Биохимия. 1999. Т. 64. Вып. 11. С. 1457- 1472.
  63. Составители: Менликиев М. Я., Смирнов В. В., Ваньянц Г. М., Недорезков В. Д., Сорокулова И. Б. Фитоспорин-биологический препарат для защиты растений от болезней. Рекомендации по применению. Уфа-1999. 11с.
  64. Е.Б., Зенков Н. К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов // Успехи современной биологии. 1993. Т. 113. Вып. 4. С. 442−455.
  65. Ф.В., Гордон JI.X. Продукция супероксида и активность внеклеточной пероксидазы в растительных тканях при стрессе // Физиология растений. 2003. Т. 50. №. 3. С. 459−464.
  66. А.Т. Малый практикум по физиологии растений: Учебн. пособие. М.: Изд-во МГУ, 1994. С. 184.
  67. О.А., Талипов Р. Ф. Влияние биологически активных веществ на развитие и токсинообразование Fusarium Graminearum, поражающего пшеницу // Вестник Башкирского университета. 2003. №. 2. С. 22−24.
  68. И.А., Рахманкулова З. Ф. Соотношение фотосинтеза и составляющих дыхания у сахарной свеклы в вегетативную фазу роста // Физиология растений. 1990а. Т. 37. Вып. 3. С. 462−467.
  69. И.А., Рахманкулова З. Ф. Взаимосвязь между фотосинтезом и темновым модифицированным дыханием на свету у кукурузы // Физиология растений. 19 906. Т. 37. Вып. 3. С. 468−475.
  70. И.А., Шульгин И. А. Об адаптациях и архитектонике физиологических процессов в целом растении // Биол. науки. 1979. №. 12. С. 5−11.
  71. Регуляторы роста растений / К. З. Гамбург, О. Н. Кулаева, Г. С. Муромцев и др.- Под ред. Г. С. Муромцева.-М.: Колос, 1979.- 246 с.
  72. Г. С., Данилина Е. Э. Состояние исследований по регуляторам роста растений в России // Физиология растений. 1994. Т.41. №. 5. С. 779−787.
  73. JI.H. Агат- 25К на зерновых культурах // Защита и карантин растений. 2002. №. 1. С. 21−22.
  74. А.А., Попова В. В., Цоглин J1.H., Пронина Н. А. Влияние меди и цинка на рост Spirulina platensis и аккумуляция клетками тяжелых металлов // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 2. С. 259−265.
  75. В.В. Физиология растений: Учеб. для биол. спец. вузов. М.: Высш. шк., 1989.-464 с.
  76. О.Г., Глазунова М. А., Алехина Н. Д. Дыхание и фотосинтез растений пшеницы в связи с их ростом и азотным статусом в разныхусловиях снабжения азотом // Физиология растений. 1999. Т. 46. №. 2. С. 187−193.
  77. О.Г., Джибладзе Т. Г., Каширина Е. И., Алехина Н. Д., Бухов Н. Г. Фотосинтетическая Фиксация С02 вторым листом пшеницыв зависимости от условий азотного питания // Физиология растений. 2004. Т. 51. С. 366−372.
  78. О.Г., Каширина Е. И., Алехина Н. Д. Влияние солевого стресса на антиоксидантную систему растений в зависимости от условий азотного питания // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 2. С. 207−214.
  79. О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода: учебное пособие / О.Г. Полесская- Под ред. И. П. Ермакова.-Москва: КДУ, 2007.-140 е.: ил., табл.
  80. Т.Н. Стрессовые воздействия и изменение уровня регуляторов роста растений / Рост растений и дифференцировка. М.: Наука, 1981. С. 225−244.
  81. Н.В. Закономерности формирования продуктивности зерновых культур при изменении уровня углеродного и азотного питания в оптимальных и экстремальных условиях выращивания: Автореф. дис. д-рабиол. наук. М. 1997. 45 с.
  82. З.Ф. Взаимосвязь дыхания и фотосинтеза в норме и при стрессе у разных видов растений // Вестник Башкирского университета. 2001. №. 2. С. 68−70.
  83. З.Ф. Энергетический баланс целого растения в норме и при неблагоприятных внешних условиях // Журнал общей биологии.2002.Т. 63. №. 3. С. 239−248.
  84. З.Ф., Мукминова Г. Х., Усманов И. Ю. Оценка адаптационных затрат на основе анализа изменений роста и составляющих дыхания у растений с разной устойчивостью к водному стрессу // Вестник Башкирского университета. 2001. №. 2. С. 71−73.
  85. З.Ф., Рамазанова Г. А., Мустафина А. Р., Усманов И. Ю. Оценка дыхательных затрат на адаптацию у растений с разной устойчивочтью к дефициту и избытку элементов минерального питания // Физиология растений. 2001. Т. 48. №. 5. С. 753- 759.
  86. З.Ф., Рамазанова Г. А., Усманов И. Ю. Рост и дыхание растений разных адаптивных групп при дефиците элементов минерального питания //Физиология растений. 2001. Т. 48. №. 1. С. 7580.
  87. З.Ф., Усманов И. Ю. Морфофизиологические параметры проростков пшеницы устойчивых и высокопродуктивных сортов в норме и при стрессе // Физиология растений. 2000. Т. 47. №. 4. С. 608 613.
  88. З.Ф., Федяев В. В., Подашевка О. А., Усманов И. Ю. Альтернативные пути дыхания и вторичный метаболизм у растений с разными типами адаптивных «стратегий» при дефиците минерального питания // Физиология растений. 2003. Т. 50. №. 2. С. 231- 237.
  89. ЮО.Романов Г. А. Рецепторы фитогормонов // Физиология растений. 2002. Т. 49. №. 4. С. 615−625.
  90. А.К. Физиолого-биохимические признаки и молекулярные механизмы адаптации растений к повышенной концентрации С02 в атмосфере // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 1. С. 129−145.
  91. Ю2.Роньжина Е. С. Аттрагирующий эффект цитокинина в изолированных листьях вызван не структурными перестройками флоэмы // Физиология растений. 2002. Т. 49. №. 1. С. 87−97.
  92. ЮЗ.Роньжина Е. С. Регуляция цитокининами деления и растяжения клеток мезофилла в онтогенезе листа Cucurbita реро // Физиология растений. 2003. Т. 50. №. 5. С. 722−732.
  93. Ю4.Роньжина Е. С., Мокроносов А. Т. Донорно-акцепторные отношения и участие цитокининов в регуляции транспорта и распределения органических веществ в растениях // Физиология растений. 1994. Т. 41. №. 3. С. 448−459.
  94. .А., Ладыгина М. Е. Физиология и биохимия дыхания растений. М.: Изд-во МГУ. 1974. 512 с.
  95. Юб.Рубин Б. А., Четверикова Е. П. Роль окислительных процессов в устойчивости капусты к Botrytis cinerea. В сб.: Биохимия плодов и овощей, 3. 1955. Изд. АН СССР, М, С. 43−78.
  96. И.М. Пероксидазы-стрессовые белки растений // Успехи современной биологии. 1989. Т. 107. №. 3. С. 406−417.
  97. В.Д., Киселевский Д. Б., Синицын С. В., Шестак А. А., Лагунова Е. М., Несов А. В. Н202 усиливает CN-индуцированный апоптоз в листьях гороха // Биохимия. 2006. Т. 71. Вып. 4. С. 481−492.
  98. Ю9.Скулачев В. П. Снижение внутриклеточной концентрации 02 как особая функция дыхательных систем клетки // Биохимия. 1994. Т. 59. С. 910−912.
  99. О.А. Дыхание поддержания и адаптация растений // Физиология растений. 1995.Т. 42. №. 2. С. 312−319.
  100. О.А. Оценка адаптационной способности растения на основании исследований темнового дыхания // Физиология растений. 1998. Т. 45. С. 142−148.
  101. Семихатова О. А, Чулановская М. В. Манометрические методы изучения дыхания и фотосинтеза растений. М.-Л.: Наука, 1965. 168 с.
  102. Н.М., Филиппович И. И. О характере изменений активности ферментов дыхания в процессе стадийного развития растений. Докл. АН СССР. 1951. Т. 76. №. 3. С. 443−446.
  103. Пб.Смирнова Т. А., Коломийцева Г. Я., Прусов А. Н., Ванюшин Б. Ф. Содержание цинка и меди в развивающемся и стареющем колеоптиле108проростков пшеницы // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 4. С. 597 603.
  104. В.В., Титов А. Ф., Боева Н. П. Влияние возрастающих концентраций тяжелых металлов на рост проростков ячменя и пшеницы // Физиология растений. 2001. Т. 48. №. 1. С. 119−123.
  105. Р.Ф., Вакулин И. В., Шаяхметов В. В. Опыт использования стимулятора роста сельскохозяйственных культур «Рифтал» // Химия и технология применения регуляторов роста растений: Материалы конференции / Изд-е Башкирск. ун-та. Уфа, 2001. С. 20−26.
  106. И. А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г. Влияние салициловой кислоты на синтез белков в проростках гороха // Физиология растений. 1996. Т. 43. №. 5. С. 667- 670.
  107. И.А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г., Гречкин А. Н. Янтарная кислота-миметик салициловой кислоты // Физиология растений. 1999. Т. 46. №. 1. С. 23−25.
  108. Е.А., Кочетов А. В., Шумный В. К. Молекулярные механизмы системной устойчивости растений к вирусным инфекциям и способы повышения вирусоустойчивости путем трансгенеза // Успехи современной биологии. 2007. Т. 127. №. 1. С. 13−24.
  109. К.Т. Активные формы кислорода и регуляция экспрессии генов // Биохимия. 2002. Т. 67. Вып. 3. С. 339−352.
  110. И.Ю., Рахманкулова З. Ф., Кулагин А. Ю. Экологическая физиология растений: Учебник, — М.: Логос, 2001. С. 115.
  111. С.А., Тихомиров А. А., Волкова Э. К., Алехина Е. Б., Заворуева Е. Н. Фотосинтез и дыхание растений на красном и белом свету // Физиология растений. 1997. Т. 44. №. 3. С. 367−372.
  112. JI. Ингибиторы ферменотов и метаболизма. Общие принципы торможения. М.: Мир. 1966. 863 с.
  113. Ф.З. Фотосинтез. Методические указания к лабораторно-практическим занятиям по физиологии растений для студентов биологического факультета. Уфа, 1987. 32 с.
  114. Е.О., Каримова Ф. Г., Тарчевский И. А. Влияние брассинолида на тирозиновое фосфорилирование белков листьев гороха // Биохимия. 2006. Т. 71. Вып. 4. С. 525−532.
  115. Фитогормоны и рост растений. Ответственный ред. академик Цицин Н. В. Изд-во «Наука». М.: 1978. С. 140.
  116. Э.Е., Варакина Н. Н. Гексозомонофосфатный путь распада глюкозы в растущих клетках корня и колеоптиля кукурузы // Физиология растений. 1969. Т. 16. №. 6. С. 1064−1073.
  117. В.П., Волков К. С., Кузнецов Вл. В. Адаптация к высоким концентрациям солей меди и цинка растений хрустальной травки и возможность их использования в целях фиторемедиации // Физиология растений. 2005. Т. 52. №. 6. С. 848−858.
  118. П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир. 1977. 399 с.
  119. А.А., Цоглин Л. Н., Маркелова А. Г., Зорин С. Н., Мазо В. К., Пронина Н. А. Способность Spirulina platensis к накоплению марганца и его распределение в клетке // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 6. С. 903−909.
  120. Т.В., Соколовская Е. Л., Хазова И. В. Активность иизоферментный состав пероксидазы корней растений в зависимости от условий временного анаэробиоза // Физиология растений. 1973. Т. 20. Вып. 6. С. 1236−1241.
  121. С.Н., Слободская Г. А. Количественные соотношения дыхания на свету и в темноте у листьев Сз -растений // Физиология растений. 1985. Т. 32. Вып. 2. С. 292−297.
  122. Ф.М. Антистрессовая активность брассиностероидов -нового класса фитогормонов. Уфа. 2001. Мат-лы конфер. 143 с.
  123. Ф.М., Безрукова М. В. Изменение содержания АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида и засоления //Физиология растений. 1998. Т. 45. №. 3. С. 451−455.
  124. Ф.М., Безрукова М. В., Сахабутдинова А. Р. Влияние салициловой кислоты на урожайность яровой пшеницы и баланс фитогормонов в растениях в онтогенезе // Агрохимия. 2000. №. 5. С. 52−56.
  125. Ф.М., Сахабутдинова А. Р. Сигнальная регуляция устойчивости растений к патогенам // Успехи современной биологии. 2003. Т. 123. №. 6. С. 563−572.
  126. А.Г., Соколова С. В. Смена путей митохондриального окисления в период начального формирования клубней картофеля // Физиология растений. 2001. Т. 48. №. 1. С. 55−61.
  127. Нб.Шугаев А. Г., Шугаева Н. А., Выскребенцева Э. И. Цианид- и ротенон-резистентное дыхание митохондрий корнеплода сахарной свеклы в ходе онтогенеза// Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 4. С. 503−510.
  128. Н.А., Выскребенцева Э. И., Орехова С. О., Шугаев А. Г. Влияние водного дефицита на дыхание проводящих пучков листового черешка сахарной свеклы // Физиология растений. 2007. Т. 54. №. 3. С. 373−380.
  129. У.Б. Влияние препарата «Рифтал» на рост растений пшеницы в условиях башкирского Зауралья // Химия и технология применения регуляторов роста растений: Материалы конференции / Изд-е Башкирск. ун-та. Уфа, 2001. С. 137−139.
  130. У.Б., Ахметшин А. И., Аюпов 3.3., Талипов Р. Ф., Алтыншина Н. С., Васильева В. В. Экологизация химической защиты ярового ячменя от сорных растений. Сборник статей Уфа: РИО БашГУ, 2003.- 40с.
  131. З.Р., Хайруллин P.M., Максимов И. В. Активность пероксидазы в различных клеточных фракциях при инфицировании пшеницы Septoria nodorum Berk // Физиология растений. 2006. Т. 53. №. 6. С. 910−917.
  132. А.А., Талипов Р. Ф., Ибрагимов Р. И., Сакаева А. Г. Исследование действия рифтала на фракционный состав белков семян и оптические свойства ХБК растений // Вестник Башкирского университета. 2004. №. 3. С. 96- 99.
  133. Affourtit С., Albury M.S., Crichton P.G., Moore A.L. Exploring the molecular nature of the alternative oxidase regulation and catalysis // FEBS Lett. 2001. V. 510. P. 121−126.
  134. Amthor J.S. Plant respiratory responses to the environment and their effects on the carbon balance. In: WiJkinson Kb. ed. Plant- environment interactions. New York: Decker. 1994. P. 501−554.
  135. Amthor J.S. The McCree-de Wit-penning de Vries-Thornley respiration paradigms: 30 years later//Annals of botany. 2000. V. 86. P. 1−20.
  136. Ap Rees T. The organization of glycolysis and the oxidative pentose phosphate pathway in plants // Encyclopedia of plant physiology (N.S.) / Eds Douce R., Day D. Heidelberg: Springer-Verlag, 1985. V. 18. P. 390 417.
  137. Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygens and dissipation of excess protons // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1999. V. 50. P. 601−639.
  138. Bahr J.T., Bonner W.D.Ir. Cyanide insensitive respiration. I. The steady states of skunk cabbage spadix and bean hypocotyls mitochondria // J. Biol. Chem. 1973. V. 248. P. 3441−3445.
  139. Beck E. Regulation of the shoot/root ratio by cytokinins in Urtica dioica: Opinion // Plant Soil. 1996. V. 185. P. 3−12.
  140. Bilgrami K.S., Kumar S. Effects of copper, lead and zinc on phytoplankton growth // Biol. Plant. 1997. V. 39. P. 315−317.
  141. Blokhina O., Virolainen E., Fagerstedt K. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review // Annals of Botany. 2003. V. 91. P. 179−194.
  142. Breusegem F.V., Vranova E., Dat J. Fet al. The role of oxygen species in plant signal transduction // Plant Science. 2001. V. 161. P. 405−414.
  143. Cannell M.G.R., Thornley J.H.M. Modelling the components of plant respiration: some guiding principles // Annals of Botany. 2000. V. 85. P. 4554.
  144. Chapin F.S. Integrated responses of plant to stress // BioScince. 1991.V. 41. P. 29−36.
  145. Chen Z., Iyer S., Caplan A., Klessig D.F., Fan B. Differential accumulation of salicylic acid and salicylic acid-sensitive catalase in different rice tissues //PlantPhysiology. 1997. V. 114. P. 193−201.
  146. Chen L.-M., Lin C.C., Kao C.H. Copper toxicity in rice seedlings: changes in antioxidative enzyme activities, Н2Ог level, and cell wall peroxidase activity in roots // Botanical Bulletin of Academia Sinica. 2000. V. 41. P. 99−103.
  147. Chen Z., Silva H., Klessig D.F. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid // Science. 1993. V. 262. P. 1883−1886.
  148. Chen Z., Ricigliano J.W., Klessig D.F. Purification and characterization of a soluble salicylic acid-binding protein from tobacco // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993a. V. 90. P. 9533−9537.
  149. Christel Norman, Katharine Howell A., Millar Harvey A., Whelan James M., Day David A. Salicylic acid is an uncoupler and inhibitor of mitochondrial electron transport // Plant Physiology. 2004. V. 134. P. 492 501.
  150. Chugh I.K., Sawhney S.K. Effect of cadmium on activities of some enzymes of glycolisis and pentose phosphate pathway in pea // Biologya plantarum. 1999. V. 42. P. 401−407.
  151. Cleland R.E. Wall extensibility: hormones and wall extension // Encyclopedia of Plant Physiology. V. 13B/Eds Tanner W., Loewus F.A. Berlin: Springer. 1981. P. 255−273.
  152. Conrath U., Chen Z., Ricigliano J.W., Klessig D.F. Two inducers of plant defense responses, 2,6-dichloroisonicotinic acid and salicylic acid, inhibit catalase activity in tobacco // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 7143−7147.
  153. Conrath U., Silva H., Klessig D.F. Protein dephosphorylation mediates salicylic acid-induced expression of PR-1 genes in tobacco // Plant J. 1997. V. 11. P. 747−757.
  154. Danson J., Wasano K., Nose A. Infection of rice the sheath blight fungus causes an activation of pentose phosphate and glycolytic pathway // European journal of plant pathology. 2000. V. 106. P. 555−561.
  155. Dat J.F., Foyer C.H., Scott I.M. Changes in salicylic acid and antioxidants during induced thermotolerance in mustard seedlings // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 1455- 1461.
  156. Dat J.F., Lopez-Delgado H., Foyer C.H., Scott I.M. Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings // Plant Physiol. 1998. V. 116. P. 13 511 357.
  157. Davies D.D. The central role of phosphoenolpyruvate in plant metabolism //Annu. Rev. Plant Physiol. 1979. V. 30. P. 131−158.
  158. De Vos C.H.R., Schat H., de Waal M.A.M., Vooijs R., Ernst W.H.O. Increased resistance to copper-induced damage of the root cell plasmalemma in copper tolerant Silene cucubalus II Physiol. Plant. 1991. V. 82. P. 523 528.
  159. Dieguez-Rojo E., Gonzalez L. Effects of allelochemical 2 -benzoxazolinone on growth, pigment content and cell appearance of Tetraselmis suecica (Kylin) butch. // Thalassas. 2003. V. 19. P. 13−22.
  160. Ducet G. et A.J. Rosenberg. Activite respiratiore chezles vegetaux superieurs. II. Activites cytochrome oxydasique et polyphenoloxydasique chez quelques vegetaux superieurs. Bull. Soc. Chim. Biol. 1951. V. 33. №. 3−4. P. 321−336.
  161. Durner J., Klessig D.F. Salicylic acid is a modulator of tobacco and mammalian catalases // J. Biol Chem. 1996. V. 27. P. 28 492−28 501.
  162. Edge R., McGarvey D.J., Truscott T.G. The carotenoids as antioxidants-a review // Photochem. Photobiol. Ser. Biol. 1997. V. 41. P. 189−200.
  163. Enyedi A., Yalpani N., Silverman P., Raskin I. Localization, conjugation and function of salicylic acid in tobacco during the hypersensitive reaction to tobacco mosaic virus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P. 24 802 484.
  164. Eva V., Dirk I., Frank V.B. Signal transduction during oxidative stress // J. Exp. Bot. 2002. V. 53. P. 1227−1236.
  165. Evans J.P. Pgotosynthesis-the dependence on nitrogen partitioning // Causes and consequences of varation in growth rate and productivity of higher plants. The Hague. 1989. P. 159−174.
  166. Ferreira R.R., Fornazier R.F., Vitoria A.P., Lea P.J. Changes in antioxidant enzyme activities in soybean under cadmium stress // J. Plant Nutr. 2002. V. 25. P. 327−342.
  167. Fiorani F., Umbach Ann L, Siedow James N. The alternative oxidase of plant mitochondria is involved in the acclimation of shoot growth at low temperature. A study of Arabidopsis AOXla transgenic plants // Plant Physiology. 2005. V. 139. P. 1795- 1805.
  168. Forman H.J., Azzi A. On the virtual existence of superoxide anions in mitochondria: thoughts regarding its role in pathophysiology // FASEB I. 1997. V. 1. P. 374−375.
  169. Fu X. Auxin promotes Arabidopsis root growth by modulating the gibberellin response / Fu X., Harberd N. // Nature. 2003. V. 421. P. 740−743.
  170. Gechev Т., Gadjev I., Breusegem F.V., Inze D., Dukiandjiev S., Toneva V., Minkov I. Hydrogen peroxide protects tobacco from oxidative stress by inducing a set of antioxidant enzymes // Cell Mol. Life Sci. 2002. V. 59. P. 708−714.
  171. S.J., Prince S.D. 1998. Variability in carbon exchange and light utilization among boreal forest stands: implications for remote sensing of net primary production. Canadian Journal of Forest Research 28. P. 375−389.
  172. Gordon A.S., Howell L.D., Harwood V. Response of diverse heterotrophic bacteria to elevated copper concentrations // Can J Microbiol. 1994. V. 40. P. 408−411.
  173. Guan L, Scandalios J.G. Developmentally related responses of maize catalase genes to salicylic acid // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 5930.
  174. Hayat S., Ali В., Ahmad A. Salicylic acid: biosynthesis, metabolism and physiological role in plants // Springer. 2007. P. 1−14.
  175. Hansen G.K., Jensen C.R. Growth and maintenance respiration in whole plants, tops and root of Lolium multiflorum II Physiol. Plantarum. 1977. V. 39. №. 2. P. 155−164.
  176. Hartwell J., Bowsher C.G., Ernes M.J. Recycling of carbon in the oxidative pentose phosphate pathway in non-photosynthetic plastids // Planta. 1996. V. 200. P. 107−112.
  177. Health R.L., Packer L. Photoperoxidation in isolated chloroplasts. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation // Arch. Biochem. Biophys. 1968. V. 125. P. 189−198.
  178. Heuer B. Growth, photosynthesis and protein content in cucumber plants as affected by supplied nitrogen form'// J. Plant. Nutr. 1991. V. 14. P. 363−373.
  179. Hiraga S., Yamamoto K., Ito H., Sasaki K., Matsui H., Honma M., Nagamura Y., Sasaki Т., Ohashi Y. Diverse expression profiles of 21 rice peroxidase genes // FEBS Lett. 2000. V. 471. P. 245−250.
  180. Hyber S.C., Sugiyama Т., Alberte R.S. Photosynthetic determinant of growth in maize plants // Plant and Cell Physiology. 1989. V. 30. P. 10 631 072.
  181. Hunt M.D., Neuenschwander U.H., Delaney T.P., Weymann K.B., Friedrich L.B., Lawton K.A., Steiner H.Y., Ryals J.A. Recent advances in systemic acquired resistance research: a review // Gene. 1996. V. 179. P. 8995.
  182. Kabata-Pendias A., Pendias Kh. Mikroelementy v pochvakh i rastenijakh. M.: Mir, 1989. 439 p.
  183. Kaothien P., Shimokawatoko Y., Kawaoka A., Yoshida A., Shinmyo A. A cis-element containing PAL-BOX functions in the expression of the wound-inducible peroxidase gene of horseradish // Plant Cell Rep. 2000. V. 19. P. 558−562.
  184. Kawano T. Roles of the reactive oxygen species-generating peroxidase reactions in plant defense and growth induction // Plant Cell Rep. 2003. V. 21. P. 829−837.
  185. Klessig D.F., Malamy J. The salicylic acid signal in plants // Plant Mol Biol. 1994. V. 26. P. 1439−1458.
  186. Kowaltowski A.J., Vercesi A.E. Mitochondrial damage induced by conditions of oxidative stress // Free Radic. Biol. Med. 1999. V. 26. P. 463 471.
  187. Koyama Y. Structures and functions of carotenoids in photosynthetic systems // J. Photochem. Photobiol. Ser. Biol. 1991. V. 9. P. 265−280.
  188. Larque-Saavedra A., Martin-Mex R. Effects of salicylic acid on the bioproductivity of plants // Springer. 2007. P. 15−23.
  189. Laspina N.V., Groppa M.D., Tomaro M.L., Benavides M.P. Nitric oxide protect sunflower leaves against Cd-induced oxidative stress // Plant Sci. 2005. V. 169. P. 323−330.
  190. Lenton J. Plant hormones on the move! / Lenton L. // Trends in plant Sci. 1998. V.3.№. 12. P. 457−458.
  191. Lewis S., Handy R.D., Cordi В., Billinghurst Z., Depledge M.H. Stress proteins (HSPs): methods of detection and their use as an environmental biomarker // Ecotoxicology. 1999. V. 8. P. 351−368.
  192. Logan B.A., Demming-Adams В., Resenstiel T.N., Adams W.W., III. Effect of nitrogen limitation of folia antioxidants in relationship to other metabolic characteristics // Planta. 1999. V. 209. P. 213−220.
  193. Mackenzie S., Mcintosh L. Higher plant mitochondria // Plant Cell. 1999. V. 11. P. 571−585.
  194. Magel E.A., Hillinger С., Wagner Т., Holl W. Oxidative pentose phosphate pathway and pyridine nucleotides in relation to heartwood formation in Robinia pseudoacacia L. // Phytochemistry. 2001. 57. P. 10 611 068.
  195. Maksymiec W. Effect of copper on cellular processes in higher plants // Photosynthetica. 1997. V. 34. P. 321−342.
  196. Malamy J., Klessig D.F. Salicylic acid and plant disease resistance // Plant Journal. 1992. V. 2. P. 643−654.
  197. Maxwell D.P., Wang Y., Mcintosh L. The alternative oxidase lowers mitochondrial reactive oxygen production in plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 8271−8276.
  198. McCree K.J., Troughton J.H. Non-existence of an optimum leaf area index for the production rate of white clover growth under constant conditions // Plant Physiol. 1966. V. 41. P. 1615−1623.
  199. Meeuse BJ.D. Thermogenic respiration in aroids // Annu Rev Plant Physiol. 1975. V. 26. P. 117−126.
  200. F.F., Benshop J.J., Wagner A.M., Lambers H. (1998). Plant Physiol. V. 118. P. 599−607.
  201. Mishra A., Choudhuri M.A. Effect of salicylic acid on heavy metal-induced membrane deterioration mediated by lipoxygenase in rice // Biol. Plant. 1999. V. 42. P. 409−415.
  202. Mitteler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance // Trends Plant Sci. 2002. V. 7. P. 405−410.
  203. Mittova V., Guy M., Tal M., Volokita M. Salinity up-regulates the antioxidative system in root mitochondria and peroxisomes of the wild salttolerant tomato species Licopersicon penelli П J. Exp. Bot. 2004. V. 55. №. 399. P. 1105−1113.
  204. Molina A., Volarth S., Guyer D., Maleck K., Ryals J., Ward E. Inhibition of protoporphyrin oxygen oxidase expression in Arabidopsis causes a lesion-mimic phenotype that induces systemic acquired resistance // Plant Journal. 1999. V. 17. P. 667−678.
  205. Moore A.L., Siedow J.N. The regulation and nature of the cyanide-resistant alternative oxidase of plant mitochondria // Biochim. Biophys. Acta. 1991. V. 1059. P. 121−140.
  206. Moller I.M. Plant mitochondria and oxidative stress: electron transport, NADPH turnover, and metabolism of reactive oxygen species // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2001. V. 52. P. 561−591.
  207. Moller I.M., Kristensen B.K. Protein oxidation in plant mitochondria as a stress indicator // Photochem. Photobiol. Sci. 2004. V. 3. P. 730−735.
  208. Morris K., Mackerness S.A., Page T et al. Salicylic acid has a role in regulating gene expression during leaf senescence // Plant J. 2000. V. 23. P. 677- 685.
  209. Nies D. H. Microbial heavy metal resistance // Appl Microbiol Biotechnol. 1999. V. 51. P. 730−750.
  210. Osada A. Relationship between photosynthetic activity and dry matter production in rice varieties, especially as influence by nitrogen supply // Bui. Nat. Inst. Agr. Sci. Tokyo, 1966. V. 14. Ser. D.
  211. Palmer J.C., Sugden M.C. The stoichiometry of Krebs cycle // Trends biochem. sci. 1983. V. 8. P. 161−162.
  212. Pancheva T.Y., Popova L.P., Uzunova A.N. Effects of salicylic acid on growth and photosynthesis in barley plants // J. Plant Physiol. 1996. V. 149. P. 57−63.
  213. Pandey N., Sharma C.P. Zinc deficiency effect on photosynthesis and transpiration in safflower and its reversal on making up the deficiency // Ind. J. Exp. Biol. 1989. V. 27. №. 4. P. 376−377.
  214. Pilet P.E. Some cellular and molecular properties of abscisic acid: its particular involvement in growing plant roots / Pilet P.E. // CMLS, Cell Mol. Life Sci. 1998. V. 54. P. 851−865.
  215. Plaxton W.C. The organization and regulation of plant glycolysis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. V. 47. P. 185−214.
  216. Popov V.N., Simonian R.A., Sculachev V.P., Starkov A.A. Inhibition of the alternative oxidase stimulates H2O2 production in plant mitochondria // FEBS Lett. 1997. V. 415. P. 87−90.
  217. Purvis A.C. Role of the alternative oxidase in limiting superoxide production by plant mitochondria // Physiol. Plant. 1997. V. 100. P. 165 170.
  218. Rai K, Sharma S.S., Sharma S. Reversal of ABA indused stomatal closure by phrnolic compounds // J. Exp. Bot. 1986. Y. 37. P. 129- 134.
  219. Raskin I. Role of salicylic acid in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 43. P. 439 463.
  220. Raskin I., Ehmain A., Melander W.R., Meeuse B.J.D. Salicylic acid: a natural inducer of heat production in Arum lilies II Science. 1987. V. 237. P. 1601−1602.
  221. Rasmussen J.B., Hammerschmidt R., Zook M.N. Systemic induction of salicylic acid accumulation in cucumber after inoculation with Pseudomonas syringaepv syringae II Plant Physiol. 1991. V. 97. P. 1342−1347.
  222. Rhoads D.M., Umbach A.L., Sweet C.R., Lennon A.M., Rauch G.S., Siedow J.N. Regulation of the cyanide-resistant alternative oxidase of plant mitochondria // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 30 750−30 756.
  223. Ribnicky D.M., Shulaev V., Raskin I. Intermediates of salicylic acid biosynthesis in tobacco // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 565−572.
  224. Richardson S.G., McCree K.J. Carbon balance and water relations of sorghum exposed to salt and water stress // Plant Physiol. 1985. V. 79. №. 4. P. 1015−1020.
  225. Ristenbil J. W., Gerringa L.G.A. Interactions of algal ligands, metal complexation and availability, and cell responses of the diatom Ditilum brightwellii with a gradual increase of copper // Aquat. Toxicol. 2002. V. 56. P. 115−131.
  226. Rodriguez Montelongo L, de la Cruz Rodriguez L. C., Farias R.N., Massa E.M. Membrane associated redox cycling of copper mediates hydroperoxide toxicity in Escherichia coli II Biochim Biophys Acta. 1993. V. 1144. P. 77−84.
  227. Sahu G.K., Kar M., Sabat S.C. Electron transport activities of isolated thylakoids from wheat plants grown in salicylic acid // Plant Biology. 2002. V. 4. P. 321 -328.
  228. Schettel N.I., Balke N.E. Plant growth response to several alleloplathic chemicals // Weed Sci. 1983. V. 31. P. 293−298.
  229. Schubert J, Wilmer J.W. Does hydrogen peroxide exist «free» in biological systems? // Free radical biol. Med. 1991. V. 11. P. 545−555.
  230. Schuetzenduebel A., Polle A. Plant responses to abiotic stresses: heavy metal-induced oxidative stress and protection by mycorrhization // J. Exp. Bot. 2002. V. 53. P. 1351−1365.
  231. Scott I.M., Clarke S.M., Wood J.E., Mur L.A.J. Salicylate accumulation inhibits growth at chilling temperature in Arabidopsis II Plant Physiology. 2004. V. 135. P. 1040−1049.
  232. Senaratna Т., Touchell D., Bunn E., Dixon K. Acetyl salicylic acid (Aspirin) and salicylic acid induce multiple stress tolerance in bean and tomato plant // Plant Growth Regul. 2000. V. 30. P. 157−161.
  233. Shakirova Farida M., Sakhabutdinova Assol R., Bezrukova Marina V., Fatkhutdinova Rymma A., Fatkhutdinova Dilara R. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity // Plant Science. 2003. V. 164. P. 317−322.
  234. Shakirova F.M. Role of hormonal system in the manifestation of growth promoting and antistress action of salicylic acid // Springer. 2007. P. 69−89.
  235. Shirasu K, Nakajima H, Rajasekhar V.K., Dixon R.A., Lamb C. Salicylic acid potentiates an agonist- dependent gain control that amplifies pathogen signals in the activation of defense mechanisms // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 261−270.
  236. Shulaev V., Leon J., Raskin I. Is salicylic acid a translokated signal of systemic acquired resistance in tobacco? // Plant Cell. 1995. V. 10. P. 16 911 701.
  237. Singh R.P., Bharti N., Kumar G. Differential toxicity of heavy metals to growth and nitrate reductase activity of Sesamum indicum seedlings // Phytochemistry. 2005. V. 35. P. 1153−1156.
  238. Skulachev V.P. Cytochrome с in the apoptic and antioxidant cascades // FEBS Lett. 1998. V. 423. P. 275−280.
  239. Stohs S., Bagchi D. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions // Free Radic. Biol. Med. 1995. V. 18. P. 321−336.
  240. Sukalovich V., Vuletic M., Vucinic Z. Plasma membrane-bound phenolic peroxidase of maise roots in vitro regulation of activity with NADH and ascorbate // Plant Sci. 2003. V. 165. P. 1429−1435.
  241. Summermatter K., Sticher L., Metraux J.P. Systemic response in Arabidopsis thaliana infected and challendged with Pseudomonas syringae pv syringae 11 Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 1379- 1385.
  242. Sutton H.C., Winterbourn C.C. On the participation of higher oxidation states of iron and copper in Fenton reaction // Free Radical Biol. Med. 1989. V. 6. P. 53−60.
  243. Thornley J.H.M., Cannel M.G.R. Modelling the components of plant respiration: representation and realism. Annals of Botany. 2000. V. 85. P. 55−67.
  244. Tjoelker M.G., Oleksyn J., Reich P.B. Acclimation of respiration to temperature and CO2, in seedlings of boreal tree species in relation to plantsi/e and relative growth rate // Global Change Biology. 1999. V. 5. P. 679−691.
  245. Trono D., Flagella Z., Laus M.N., Fonzo N.D., Pastore D. The uncoupling protein and the potassium channel are activated by hyperosmotic stress in mitochondria from durum wheat seedlings // Plant Cell Environ. 2004. V. 27. P. 437−448.
  246. Vanlerberghe G.C., Mcintosh L. Signals regulating the expression of the nuclear gene encoding alternative oxidase of plant mitochondria // Plant Physiol. 1996. V. 111. P. 589−595.
  247. Vanlerberghe G.C., Mcintosh L. Alternative oxidase: from gene to function // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol Biol. 1997. V. 48. P. 703- 734.
  248. Vanlerberghe G.C., Yip J.Y.H., Parsons H.L. In organello and in vivo evidence of the importance of the regulatory sulfhydryl/disulfide system and pyruvate for alternative oxidase activity in tobacco // Plant Physiol. 1999. V. 121. P. 793−803.
  249. Vanlerberghe G.C., Robson C.A., Yip J.Y.H. Induction of mitochondrial alternative oxidase in response to a cell signal pathway down-regulating the125cytochrome pathway prevents programmed cell death // Plant Physiol. 2002. V. 129. P. 1829−1842.
  250. Wagner A.M. A role for active oxigen species as second messenger in the induction of alternative oxidase gene expression in Petunia Hybrida cells // FEBS Lett. 1995. V. 368. P. 339−342.
  251. Wagner A.M., Krab K. The alternative respiration pathway in plants: role and regulation//Plant Physiol. 1995. V. 95. P. 318−325.
  252. Ward E.R., Uknes S.J., Williams S.C., Dincher S.S., Wiederhold D.L., Alexander D.C., Ahl -Goy P, Metraux J.P., Ryals J.A. Coordinate gene activity in response to agents that induce systemic acquired resistance // Plant Cell. 1991. V. 3. P. 1085−1094.
  253. Webster G.C. The occurence of a cytochrome oxidase in the tissues of higher plants //Amer. J. Bot. 1952. V. 39. №. 10. P. 739−745.
  254. R.M. // Crit. Rev. Plant Sci. 1995. V. 14. №. 1. P. 49.
  255. Weyman K., Hunt M., Uknes S., Neuenschwander U., Lawton K., Steiner H., Ryals J. Suppression and restoration of lesion formation in Arabidopsis Isd mutants // Plant Cell. 1995. V. 7. P. 2013−2022.
  256. Willekens H., Villarroel R., Van Montagu M., Inze D., Van Camp W. Molecular identification of catalase from Nicotiana plumbaginifolia II FEBS Lett. 1994. V. 352. P. 79−83.
  257. Wilson D.R., Van Bavel C.H.M., McCree KJ. Carbon balance of water-deficient grain sorhum plants // Crop. Sci. 1980. V. 20. №. 2. P. 153.
  258. Wiskich J.T., Dry I.B. The tricarboxylic acid cycle in plant mitochondria: Its operation and regulation // Higher plant cell respiration. Berlin etc., 1985. P. 281−313.
  259. Wollgiehn R, Neumann D. Metal stress response and tolerance of cultured cells from Silene vulgaris and Lycopersicon peruvianum: role of heat stress proteins // Journal of Plant Physiology. 1999. V. 154. P. 547−553.
  260. Yabuta Y., Motoki Т., Yoshimura K. et al. Thylakoid membrane-bound ascorbate peroxidase is a limiting factor of antioxidative systems under photooxidative stress // Plant J. 2002. V. 32. P. 915−925.
  261. Yang Y., Shah J., Klessig D.F. Signal perception and transduction in plant defense responses // Genes Dev. 1997. V. 11. P. 1621−1639.
  262. Zhang S., Klessig D.F. Salicylic acid activates a 48-kD MAP kinase in tobacco // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 809−824.
  263. Zimmermann S., Thomine S., Guen J., Barbier-Biygoo H. An anion current at the plasma membrane of Tobacco protoplasts shows ATP-dependent voltage regulation and it modulated by auxin // Plant J. 1994. V. 6. №. 5. P. 707−716.
  264. Zottini M., Formentin E., Scattolin M., Carimi F., Schiavo L., Terzi M. Nitric oxide affects plant mitochondrial functionality in vivo // FEBS Lett. 2002. V. 515. P. 75−78.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!