Влияние продуктов пчеловодства на белковый обмен

12). Старателева Ю. А. в своей работе (Старателева, 2010) показала, что применение ингаляций с прополисом и пчелиным маточный молочком способствует нормализации адгезивных и агрегационных свойств тромбоцитов, обеспечивает улучшение процесса свертывания крови и фибринолиза. В работе Крылова В. Н и соавт. (2015а) показано, что при экспериментальной адреналиновой модели происходило снижение общего белка плазмы крови на 44,5%, а фибриногена — на 29,8%, а при проведении курса ингаляций Апингалином в протеинограмме плазмы крови крыс было отмечено повышение концентрации как общего белка почти в 2 раза по сравнению с отеком легких, так и фибриногена на 11,9%.Рис. 10. Содержание мочевины в сыворотке крови крыс.Примечание.

* - различия статистически значимы по отношению к интактной группе (p<0,05); & - различия статистически значимы по отношению к группе контрольных животных (p<0,05).Рис. 11. Содержание фибриногена в сыворотке крови крыс.Примечание. * - различия статистически значимы по отношению к интактной группе (p<0,05); & - различия статистически значимы по отношению к группе контрольных животных (p<0,05); # - различия статистически значимы по отношению к группе экспериментального фармакологического стресса. Итак, в нашей работе статистически достоверные отличия (p<0,05) установлены для показателей:

общего белка между И-группой и К-группой, между И-группой иФС+АП-группой (сниженный в 1,2 раза уровень в группах после манипуляций);

— креатинина между И-группой и ФС+АП-группой (увеличенный показатель в 1,3 раза по сравнению с интактной группой);

— мочевины между И-группой и К-группой (снижение по сравнению с интактной группой в 4,5 раза), К-группой и ФС-группой (увеличение по сравнению с контрольной группой в 1,9 раза), а также между И-группой и ФС-группой (снижение по сравнению с интактом в 2,4 раза), между И-группой и ФС+АП-группой (сниженный в 1,9 раза уровень в последней группе);

— фибриногена между И-группой и К-группой (в группе контроля после введения физиологического раствора показатель выше в 9,5 раза); К-группой и ФС-группой (в группе контроля показатель выше в 12,7 раза); ФС-группой и ФС+АП-группой (во второй выше в 6,4 раза).Таким образом, в ходе анализа полученных данных (прил. 1 и 2) было выявлено, что показатель общего белка снижался в 1,2 раза во всех группах по сравнению с интактными, однако статистически достоверные отличия зафиксированы только для группы с введением физиологического раствора и группы с ингаляциями Апингалина на фоне адреналинового фармакологического стресса (p<0,05). Концентрация креатинина была повышена во всех группах воздействия по сравнению с интактными животными, однако статистически достоверные отличия зафиксированы только для группы с экспериментальным фармакологическим стрессоми последующими ингаляциями Апингалина (p<0,05).Концентрация мочевины была снижена во всех группах воздействия по сравнению с интактными животными. Кроме того, было выявлено, что в группе крыс с экспериментальным фармакологическим стрессом концентрация мочевины была значимо выше, чем в группе контрольных животных после введения физиологического раствора. Содержание фибриногена на фоне экспериментального фармакологического стресса практически не изменялось, но статистически значимо возрастало в группе с введением физиологического раствора, где значимо превышало показатель группы крыс с фармакологическим стрессом. Содержание альбумина практически не изменялось при воздействиях и соответствовало показателю в группе интактных крыс. При сравнении двух групп с экспериментальным фармакологическим стрессом (с последующим применением ингаляций Апингалина и без них) установлено, что содержание общего белка, альбумина и мочевины практически не изменялось на фоне применения продукта пчеловодства, а уровень креатинина и фибриногена повышался, однако статистически значимая разница определена только для фибриногена. ВЫВОДЫ1. Внутрибрюшинное введение физиологического раствора в дозе 0,1 мг/кг вызывает изменение показателей белкового обмена крови. Выявлено статистически значимое (p<0,05) снижение общего белка, мочевины и повышение фибриногена.

2. Экспериментальный фармакологический стресс, вызванный введением адреналина в дозе 0,1 мг/кг, сопровождается изменением показателей белкового обмена крови. Установлено достоверное (p<0,05) снижение концентрации мочевины в крови крыс.

3. Концентрация альбумина не изменяется ни при введении физиологического раствора, ни при экспериментальном фармакологическом стрессе, ни при курсовой ингаляции Апингалина на фоне экспериментального фармакологического стресса.

4. Курс ингаляций Апингалина вызывал повышение уровня фибриногена в 6,4 раза (p<0,05) по сравнению с группой животных, которым моделировался экспериментальный фармакологический стресс.

5. Проведение ингаляций Апингалина на фоне экспериментального фармакологического стресса, вызванного введением адреналина в дозе 0,1 мг/кг, приводило к снижению показателя общего белка в 1,2 раза (p<0,05); снижению мочевины в 1,9 раза (p<0,05) и повышению креатинина в 1,3 раза (p<0,05) по сравнению с интактными животными. ЦИТИРОВАННАЯ ЛИТЕРАТУРААнашкина А. А., Копылова С. В., Крылов В. Н. Влияние Апингалина на белки и фосфолипиды крови крыс при моделировании отека легких //Вестник Нижегородского университета им. НИ Лобачевского.

2011. №. 2−2. С. 169 — 173. Атраментова Л. А., Утевская О. М. Статистические методы в биологии. Горловка, 2008. 248 c. Блохин А. В. Теория эксперимента [Электронный ресур]: Курс лекций в двух частях: Часть 1.

Электрон. текст. дан. (1,1 Мб). Мн.: Научно-методический центр «Электронная книга БГУ», 2003.

Режим доступа:

http://anubis.bsu.by/publications/elresources/Chemistry/blohin1.pdf. Электрон. версия печ. публикации, 2002. PDF формат, версия 1.4 .

Систем. требования: A dobe Acrobat 5.0 и выше. Блохин А. В. Теория эксперимента [Электронный ресур]: Курс лекций в двух частях: Часть 2. Электрон. текст. дан. (1,0 Мб). Мн.: Научно-методический центр «Электронная книга БГУ», 2003.

Режим доступа:

http://anubis.bsu.by/publications/elresources/Chemistry/blohin2.pdf. Электрон. версия печ. публикации, 2002. PDF формат, версия 1.4 .

Систем. требования: A dobe Acrobat 5.0 и выше. Георгиева Е., Василев В. Результаты лечения больных язвенной болезнью маточным молочком // Международный симпозиум по применению продуктов пчеловодства в медицине и ветеринарии в Москве. Бухарест: Апимондия, 1972. С. 148 — 149. Гончаренко В. Ф. Применение продуктов пчеловодства в практике врача-гастроэнтеролога // Апитерапия сегодня (сб.

XI). Матер. XI Всероссийской научн. -практ. конф. &# 171;Апитерапия — XXI век". Рыбное, 2004.

С. 63 — 64. Горячева А. А., Морозов В. Н., Пальцева Е. М., Хадарцев А. А. и др. Возможности предупреждения неблагоприятных эффектов адреналина // Вестник новых медицинских технологий. 2007. Т.

ХIV, № 3. С. 30 — 32. АГорячева А.А., Морозов В. Н., Пальцева Е. М., Хадарцев А. А. и др. Системные эффекты экзогенного адреналина // Вестник новых медицинских технологий. 2007. Т. ХIV, № 3. С. 32 — 35.

БГубергриц Н. Б., Клочков А. Е. Апитерапия в гепатологии: от векового опыта народной медицины к современным научным доказателествам // Сучасна гастроентерологія. 2011.

№. 5. С. 57 — 63. Данилова Л. А. Анализы крови и мочи. СПб.: Салит-Медкнига, 2003. 128 с. Дубцова Е. А., Лазебник Л. Б., Касьяненко В. И. и др. Опыт использования продуктов пчеловодства в комплексной терапии заболеваний желчного пузыря и печени // Матер.

V Международной научн.

практ. конф. и координационного совещания по пчеловодству. Рыбное, 2004. С. 281 — 282. Дубцова Е. А., Лазебник Л. Б., Касьяненко В. И. и др. Продукты пчеловодства в комплексной терапии заболеваний желчного пузыря и печени // Матер. IV Международной (XII Всероссийской) научн.

практ. конф. «Успехи современной апитерапии». Рыбное, 2006.

Сб. 12. С. 131. Зыблев С. Л., Дундаров З.

А., Грицук А. И. и др. Роль мочевой кислоты в системе антиоксидантной защиты организма // Проблемы здоровья и экологии. 2016.

№ 1. С. 50 — 55. Козинец Г. И. Интерпретация анализов крови и мочи и их клиническое значение. Москва: Триада — Х, 1998. 104 с. Копылова С. В. Физиологический анализ действия препарата прополиса и маточного молочка пчел на некоторые функции нормального и альтерированного организма при ингаляционном введении: автореф. дис. … канд. биол. наук. Нижний Новгород, 2001.

133 c. Копылова С. В., Пашкина А. А., Старателева Ю. А. Влияние препарата «апингалин» на некоторые показатели эндогенной интоксикации крови крыс при отеке легких // Вестник Нижегородского университета им. Н. И. Лобачевского. 2010. № 2 (2). С. 532 — 535Копылова С.В., Старателева Ю. А. Исследование показателей системы гемостаза крови крыс при ингаляционном введении препарата «апингалин» в условиях моделирования отека легких // Международный научно-исследовательский журнал.

2013. №. 1−1 (8). С. 78 — 80. Косырева А. М., Диатроптов М.

Е. Морфологические проявления системного воспалительного ответа в печени и легких крыс Вистар в разные фазы эстрального цикла //Иммунология. 2013. Т. 34, №. 2.

С. 111 — 114Кравченко А. Б. Влияние полифенолов винограда на содержание белка в тканях крыс при введении адреналина // Природничий альманах. Біологічні науки: Збірник наукових праць Вип. 13. Херсон: ПП Вишемирський, 2009.

C. 92 — 97. Крылов В. Н., Ерлыкина Е. И., Копылова С. В. и др. Апингалин снижает степень эндогенной интоксикации при отеке легких у крыс // Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2015.

Вып.

58. С. 88 — 91. АКрылов, В. Н., Копылова, С.

В., Старателева, Ю. А. и др. Действие комплексного препарата на основе маточного молочка пчел и прополиса при отеке легких у крыс // Бюллетень физиологии и патологии дыхания. №. 55. С.

91 — 94. БЛазебник Л.Б., Касьяненко В. И., Орлова Ю. Н. и др. Применение меда при нарушении сократительной функции желчного пузыря // Материалы IV Международной (XII Всероссийской) научно-практ. конф. «Успехи современной апитерапии». Рыбное, 2006.

Сб. 12. С. 133. Лудянский Э. А. Апитерапия. Вологда, 1994. -.

462 с. Матушевский А., Кагор К., Колтек А. Иммунодепрессивное действие маточного молочка // Продукты пчеловодства — пища, здоровье, красота. Бухарест: Апимондия, 1982. С.

131 — 133. Меерсон Ф. 3. Адаптация, стресс и профилактика. М., Наука, 1981.

Мельник Б. Е., Кахана М. С. Медико-биологические формы стресса. Кишинев: Штиинца, 1981. 176 с. Мищенко Е. Д., Актова Л. С., Ковалева О. Н. и др.

Применение апилака при лечении больных язвенной болезнью // Продукты пчеловодства в сельском хозяйстве и медицине. Вологда, 1987. С. 57 — 58. Никулин А. А., Якушева Е. Н., Романов Б. К. и др. Продукты пчел и токсический гепатит // Пчеловодство.

1991. № 7. С. 45 — 46. Никулин Н. П., Лукачев Н. Ф. Апилак. Саранск, 1976. 98 с. Определение показателей гемостаза на программируемом оптико-механическом коагулометре Минилаб 704 [Электронный ресурс]. Режим доступа:

http://www.coagulometers.ru/minilab704.htmРусакова Т. М. Проблема монофлерных медов // Матер. II Международной научно-практ.

конф. &# 171;Интермед-2001″. Рыбное, 2001. С. 125 — 128. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме.

Медгиз, М., 1960. 253 с. Сельцовский А. П., Лазебник Л. Б., Касьяненко В. И. и др. Лечение медом, продуктами пчеловодства и лекарственными травами. М.: Анахарсис, 2007. 328 с. Соколова Е. Д., Березин Ф. Б., Барлас Т.

В. Эмоциональный стресс: психологические механизмы, клинические проявления, психотерапия // MateriaMedica. 1996. N.

1(9). P. 5 — 25. Старателева Ю. А. Исследование системы крови крыс при ингаляционном введении препарата пчелиного маточного молочка и прополиса в условиях моделирования отека легких: автореф. дис. … канд. биол. наук.

Нижний Новгород, 2010. 21 c. Хныченко Л. К., Сапронов Н. С. Стресс и его роль в развитии патологических процессов // Обзоры по клинич. фармакол. и лек. терапии. 2003.

№ 3 С. 2−15.Цыганенко А. Я., Жуков В. И., Мясоедов В. В. и др. Клиническая биохимия: Учебное пособие для студентов медицинских вузов. Москва: Триада — Х, 2002.

504 с.Чучалин.

А.Г.Отек легких: лечебные программы //Атмосфера. Пульмонология и аллергология. 2005. № 4.С. 2−9.Bhattacharya J, Gropper M. A., and Staub N. C. I.

nterstitial fluid pressure gradient measured by micropuncture in excised dog lung // J Appl Physiol. 1984.Vol. 56. P. 271 — 277. Blankstein R, Cannon C, Udelson J.

U pdate on pharmacological cardiac stress testing: efficacy, risk stratification and patient selection. // A m J Med. 2014.

№ 127(11): e16−7. [Medline]. DOI: 10.1016/j.amjmed.

2014.

10.008Broaddus V.C., Wiener-Kronish J.P., Staub N.C. Clearance of lung edema into the pleural space of volume-loaded anesthetized sheep.// J Appl Physiol. 1990. V ol.

68. P. 2623 — 2630. Brohee D., Vanhaeverbeek M., Kennes B., et al. L.

eukocyte and lymphocyte subsets after a short pharmacological stress by intravenous epinephrine and hydrocortisone in healthy humans //International Journal of Neuroscience. 1990. V ol. 53, №. 2−4. С. 53 — 62. Chattopadhyay, S., Alamgir, M.

F., N ikitin, N. P. et al. T he effect of pharmacological stress on intraventricular dyssynchrony in left ventricular systolic dysfunction // European journal of heart failure. 2008. V.

ol. 10(4), Р.412 — 420. Dobbs L.G., Gonzalez R., Matthay M.A., et al. H ighly water-permeable type I alveolar epithelial cells confer high water permeability between the airspace and vasculature in rat lung // Proc Natl Acad Sci USA. 1998.Vol. 95.

P. 2991 — 2996. Effros R.M., Hacker A., Silverman P. et al. P rotein concentrations have little effect on reabsorption of fluid from isolated rat lungs // J Appl Physiol 1991.Vol. 70. P. 416 — 422. Ersoz N, Finestone S.C. Adrenaline-Induced Pulmonary Oedema and its treatment. A report of two cases // Survey of Anaesthesiology.

1972. V ol. 16(3).

P. 216. Frank, J. A., W ang, Y., Osorio, O. et al. β-A drenergic agonist therapy accelerates the resolution of hydrostatic pulmonary edema in sheep and rats //Journal of Applied Physiology.

2000. V ol. 89, №. 4.

P. 1255 — 1265. Kamakura M. S ignal transduction mechanism leading to enhanced proliferation of primary cultured adult rat hepatocytes treated with royal jelly 57-kDa protein // J. B.

iochem. 2002. V ol.

132. P. 911 — 919. Kamakura M., Suenobu N., Fukushima M. 57-kDa protein in royal jelly enhances proliferation of primary cultured rat hepatocytes and increases albumin production in the absence of serum // Biochem.

B iophys. R es. C ommun. 2001.

N 282. P. 865 — 874. Kanbur M., Eraslan G., Beyaz L.

et al. T he effects of royal jelly on liver damage induced by paracetamol in mice // Exp.Toxicol. P athol. 2009. V ol.

61, N 2. P. 123 — 132. Kovalenko A. N., V ereskun S. B. H emodynamic correlation between the reaction of circulatory system on physical activity and exogenic adrenaline in liquidators of Chernobyl accident with neurocirculatory dystonia syndrome // Likars' ka sprava.

2006. №. 5−6. С. 25 — 28. Li C., Mannoor M. K., T oma N.

et al. T he efficacy of Royal Jelly in the restoration of alcoholic liver injury in mouse model // Biomedical Research. 2011. V.

ol. 22, N 1. P. 1 — 8Maron M. B. D ose-response relationship between plasma epinephrine concentration and alveolar liquid clearance in dogs //Journal of Applied Physiology. 1998. V.

ol. 85, №. 5. P. 1702 — 1707. Mutlu G. M., S znajder J.

I. M echanisms of pulmonary edema clearance //American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 2005. — V ol. 289, №. 5.

P. L 685 — L695. Sartori C., Allemann Y., Duplain H. et al. S.

almeterol for the prevention of high-altitude pulmonary edema // N Engl J Med. 2002. V ol. 346, No. 21. P. 1631 — 1636. Sedy J., Likavcanova´ K., Urdzikova L.

et al. L ow degree of anesthesia increases the risk of neurogenic pulmonary edema development // Medical Hypotheses. 2008. N 70. P 308 — 313. Serda S.

M., W ei E. T. E pinephrine-induced pulmonary oedema in rats is inhibited by corticotropin-releasing factor // Pharmacological research. 1992. V.

ol. 26, №. 1. P. 85 — 91. Sharma T., Lau E.M.T., Choudhary P.

et al. D obutamine stress for evaluation of right ventricular reserve in pulmonary arterial hypertension // European Respiratory Journal. 2015. V ol. 45 (3).

P. 700 — 708. DOI: 10.1183/9 031 936.

8 9914STAT FAX® 3300.

Биохимический анализатор. Руководство пользователя. AWARENESS Technology Inc. [Электронный ресурс]. Режим доступа:

http://www.awareness.ru/support/show/1184Staub N. C. T he pathogenesis of pulmonary edema //Prog Cardiovasc Dis. 1980. V ol. 23. P.

53 — 80. Syal K., Ohri A., Thakur J. R. A drenaline induced pulmonary oedema //Journal of anaesthesiology, clinical pharmacology. 2011.

V ol. 27, №. 1. P. 132. Visscher M. B., H addy F.

J., S tephens G. T he physiology and pharmacology of lung edema //Pharmacological reviews.

1956. V ol. 8, №. 3. P.

389 — 434. Ware L. B. M odeling human lung disease in animals // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2008.

N 294. P. L 149-L150. DOI:

10.1152/ajplung.

472.

2007.Yue G., Russell W.J., Benos D.J. et al. I ncreased expression and activity of sodium channels in alveolar type II cells of hyperoxic rats. P roc Natl Acad Sci USA. 1995. V.

ol. 92. P. 8418 — 8422. Zumsteg T. A., H avill A.M., Gee M.H. Relationships among lung extravascular fluid compartments with alveolar flooding // J Appl Physiol. 1982.

Vol.

53. P. 267 — 271. Приложение 1Таблица 2Результаты анализа белкового обмена крыс.

Группа№п/пОбщий белок, г/лКреатинин, мкмоль/лМочевина, ммоль/лФибриноген, г/лАльбумин г/дл, И-группа1 103 175,20,2 190,644,1274,7230,70,1 360,140,3380,3209,90,990,0546,7 478 238,80,0090,340,2 585 236,40,1 070,1346,3К-группа174,2327,10,531,7446,6277,3195,80,4 244,3373,8183,90,272,0643,4463,7221,80,120,5241,3575,13 200,00134,8233,5АДР-группа156,4251,60,270,5147,2258,8218,30,670,1340,3365,1220,50,640,1342,8475,7398,50,4 246,2567257,50,510,1247,2682,6220,90,620,1841,5777,6217,70,441,4897,5174,70,560,1140953,8216,80,670,1242,91 084,2262,40,660,1243,9АДР-АП-группа163,9400,30,15,8745,3271,7212,70,320,1240,6 370 316,60,3 320,946,8470,9349,10,760,1249,2574,6281,10,170,2244,9680,6339,40,632,2847,2775,9282,40,280,2136,9869,32 390,00740,1946,1971,9215,30,380,748,21 073 264,80,710,2636,3Приложение 2Таблица 3Показатели белкового обмена крови крыс.

ГруппаОбщий белок, г/лКреатинин, мкмоль/лМочевина, ммоль/лФибриноген, г/лАльбумин г/дл, И-группа84,20±4,99 218,20±11,890,0130±0,240,24±0,1043,52±1,41К-группа72,82±2,36 249,72±30,780,0029±0,82,29±0,9141,82±2,25АДР-группа71,87±4,44 243,89±18,980,0054±0,40,18±0,0543,34±0,86АДР+АПгруппа72,18±1,39 290,07±19,360,0073±0,301,09±0,5744,15±1,46.