Современные способы разведения раков в индустриальном раководстве

В виду крайне неблагополучной ситуации с состоянием естественных запасов речных раков, актуальными являются исследования по разработке современных биотехнологий производства товарных раков и молоди, которые проводились и проводятся в ВНИИРе, ГосНИОРХе, АзНИИРХе, КаспНИИРХе, КрасНИИРХе, Санкт — Петербургском научно-исследовательском центре экологической безопасности и др.

Эффективная биотехнология выращивания широкопалого рака до товарного веса в прудахи озерах совместно с рыбой разработана ГОСНИОРХ. Во ВНИИР Е. Н. Александровой разработаны ресурсосберегающий способ выращивания посадочного материала длиннопалого и широкопалого раков в садках, размещенных в открытых водоемах и технология пастбищного выращивания речных раков для пищевого потребления в малых неспускных водоемах, а также создаются методы ведения племенной работы с речными раками (Лебедева, 1999).

Современные методики индустриального разведения раков в основном включают в себя следующие положения:

• 1) рекомендации по территориальному размещению пастбищного рачного хозяйства и подбору в его состав естественных водоемов;
• 2)технологическая схема формирования, содержания и эксплуатации маточных стад раков;
• 3) низкозатратные технологии выращивания личинок рака в садковых устройствах;
• 4) методы вселения в водоемы заводского посадочного материала и вылова товарных раков.

При выборе мест для размещения пастбищных рачных хозяйств применяется ландшафтный подход. Особое внимание уделялось гидрографическим показателем, характеризующим озерность (км² оз/км² террит.) и плотности речной сети (км рек/км² террит), на 1 км² суши, гидрохимии поверхности вод.

Технологическая схема формирования, содержания и эксплутации маточных стад рака включает: бонитировку и отбор наиболее качественных самцов и самок из природных популяций, проведение их спаривания и зимовки в прудах, отлов весной икряных самок и рассадку их в инкубационно — вырастные садки, установленные в прудах. Выход личинок 2 стадии от самок из пруда, по сравнению с таковым от икряных самок той же длины, выловленных из естественных водоемов весной, увеличивается в 1,9 раза; при отборе наиболее качественных самок в маточное стадо — в 3,1 раза (Александрова, 1997).

В настоящее время применяется садковая технология выращивания личинок рака на плеоподах самок является низкозатратной, т. к в ней применяется недорогое оборудование (садки из мелкоячеистой капроновой ткани на деревянном каркасе), не потребляется электроэнергия, имеются возможности снизить затраты корма (Александрова, 1994).

При вселении в водоем заводского посадочного материала применяется метод, позволяющий повысить промвозврат от посадки, что достигается за счет обустройства мест выпуска личинок убежищем, использования специального оборудования и формирования кормовых биоценозов (Александрова Е. Н, 1999).

Разведение длиннои широкопалого речных раков осуществляют двумя способами. При первом варианте отловленных производителей высаживают в специально подготовленные спускные пруды площадью 0,1 га, имеющие мелководную и глубокую части. В прудах, куда помещают раков в конце лета, происходит естественный нерест.

Имеется опыт получения потомства в аквариумах или небольших лотках, однако это довольно сложный и малоэффективный способ.

По второй технологии выращивания следует устроить инкубатор, иметь маточные и выростные пруды. И инкубационные стойки с аппаратами Вейса (Власов, 2004).

Каждый способ характеризуется различными устройствами для выращивания раков и условиями их искусственного разведения.

Клейменов А.Н. (Клейменов, 1996), например, предлагает для обеспечения сокращения времени между линьками и увеличение выхода товарной продукции выдерживать самок с икрой в кассеты путем повышения жизнестойкости рачков и организации водоподготовки.

Предварительно отловленных в естественных водоемах самок-икрянок с икрой на стадии «глазка» помещают в кассеты, обеспечивающие им раздельное размещение. Выдерживание самок-икрянок до стадии выклева личинок производят без подкормки в емкостях с проточной водой, взятой из естественного водоема, в которые помещают кассеты с самками. После выклева личинок из емкости удаляют кассеты с самками, в самой емкости размещают растительные объекты, являющиеся кормом для личинок, а подаваемую в емкость с личинками воду подвергают механической очистке и периодическому, не более 2 ч в сутки, омагничиванию.

Александровой Е.Н. (Александрова, 1996) рассматривается способ получения и выращивания личинок речных раков на водорослевом субстрате, обогащенном кормовыми организмами.

Икряных самок рака сажают в садок на водорослевый субстрат, который предварительно обогащают живыми кормовыми организмами. В процессе выращивания полученных икринок в субстрат добавляют обогащенные водоросли для поддержания исходной высоты его слоя. Садки размещают в водоеме ярусами на расстоянии один от другого 0,2 м. Размер садков составляет 1,25×0,8×0,25 м каждый. Размер крышки 1,0×0,525 м. Способ позволяет получить не менее 250 шт/м² жизнестойких личинок рака, исключив из числа технологических операций кормление и использование искусственных кормов, что упрощает выращивание снижает себестоимость посадочного материала.

Рис. 1.3 Садок предлагаемый Александровой Е. Н. для разведения раков

В рассмотренных нами патентах предлагаются различные устройства для разведения раков.

Клейменов А.Н. (Клейменов, 1996) предлагает в качестве устройства для разведения раков использовать емкость с системой подачи и слива воды, которая образована из двух частей, соединенных сквозными горизонтально размещенными трубами. На внутренней поверхности труб закреплены направляющие для размещения съемных гнезд, в которые помещают самок с икрой. Система слива воды имеет фильтр. Устройство позволяет улучшить условия жизнедеятельности раков и увеличить, тем самым, выход товарной продукции с единицы выростной площади. Кроме того, устройство удобно в обслуживании.

Рис. 1.4. Емкость предлагаемая Клейменовым А.Н.для разведения раков

Колмыков Е.В. (Колмыков, 1994) предлагает устройство для разведения молоди содержащее соединенные трубопроводами инкубационный блок с приспособлением для получения личинок раков, блок подготовки воды, представляющий собой биофильтр, вход которого соединен с приспособлением для получения личинок раков, циркуляционный насос, вход которого соединен с выходом биофильтра, электронагреватели воды с системой поддержания температуры и систему контроля уровня воды, отличающееся тем, что приспособление для получения личинок раков состоит из отдельных резервуаров, каждый резервуар оборудован барботером, флейтой для подачи воды и установленной на его дне кассетой с убежищами для самок, а инкубационный блок дополнительно содержит воздушный насос, соединенный шлангами с барботерами, биофильтр выполнен секционным, а над его первой секцией установлен источник УФ-излучения, электронагреватели установлены или в последней секции биофильтра или на трубопроводе перед циркуляционным насосом, выход которого соединен с флейтами, при этом устройство дополнительно снабжено механическим фильтром, установленным в трубопроводе перед блоком подготовки воды.

Устройство дополнительно содержит сифон для сбора загрязнений и личинок раков из резервуаров, ведро с прорезью, затянутой сеткой, для сбора загрязнений при чистке резервуаров, таз с прорезью, затянутой сеткой, для концентрации молоди при отборе их из резервуара, сито для отцеживания личинок, сетчатый контейнер для транспортировки раков.

Ивановым Г. Ю. (Иванов, 1998) предложена универсальная установка для разведения гидробионтов, варианты которой можно использовать для разведения раков. Она предназначена для выдерживания производителей рыб и речного рака, инкубации рыб и речного рака совместно с самками, а также выдерживания личинок после инкуба…

Происходит постоянный круговорот органических и неорганических соединений, их количественные и качественные изменения, т. е. гидрохимический режим водоемов постоянно меняется.

В естественных водоемах изменения гидрохимического режима происходят относительно медленно. Однако под влиянием хозяйственной деятельности человека эти изменения значительно ускоряются. Для интенсивного выращивания рыбы вносят в пруды органические и минеральные удобрения, известь, осуществляет кормление рыбы различными искусственно приготовленными кормосмесями и комбикормами, остатки которых и экскременты рыб, попадая в воду, являются поставщиками дополнительных органических веществ, загрязняющих пруд. Все перечисленные воздействия на пруд имеют положительные и отрицательные стороны, поэтому их строго дозируют с целью получения максимального положительного эффекта и сведения до минимума отрицательного.

Для определения рыбоводного состояния пруда, необходимо знать качество воды в нем, или гидрохимический режим. Основные параметры качества среды обитания рыб довольно полно изучены и определены. Рыбоводные параметры имеют оптимальные и предельно допустимые концентрации (ПДК). Для летних и зимних прудов эти характеристики значительно различаются.

Растворенный в воде кислород является одним из важнейших гидрохимических показателей. Его концентрация измеряется в мг/л. От его количества зависит состояние и рост рыб, или успешность их зимнего содержания. При наличии кислорода в воде происходит процесс минерализации органических веществ, благодаря чему пруд освобождается от их избытка. Кислород необходим и для жизнедеятельности других гидробионтов, обитающих в пруду.

Водородный показатель или концентрация свободных ионов (рН), зависит в основном от соотношения свободной углекислоты и бикарбонатов (кислых солей). Оптимальный показатель рН находится на уровне 7,0 — 8,5 ед., допускается кратковременное изменение его содержания до 6,5 и 9,5 ед., при такой ситуации необходимо принимать срочные меры к его повышению или понижению до оптимального уровня.

Свободная углекислота - диоксид углерода — имеет большое значение в развитии водной растительности, переводя нерастворимые соли кальция и магния в растворимое состояние, после чего они легко усваиваются зелеными растениями и служат для построения тканей водной растительности. Усвоение углерода растениями происходит с выделением в воду кислорода. Большое количество углекислоты в воде свидетельствует об интенсивности окислительных процессов в водоеме.

Отрицательное влияние на рыбу углекислота оказывает лишь при малом содержании кислорода в воде.

Сероводород и свободный аммиак образуются в результате разложения органических веществ белковой природы. При отсутствии кислорода эти газы ядовиты. Сероводород должен полностью отсутствовать в воде, количество аммиака допускается в сотых долях мг/л.

Перманганатная, бихроматная, агрессивная окисляемости отражают степень загрязнения воды пруда органическими соединениями. Окисляемость выражается количеством кислорода (в мг/л), необходимым для окисления органических веществ. Оптимальная величина перманганатной окисляемости составляет 10−15 мгО₂/л, допустимая — до 30, бихроматная — 35 — 70 мгО₂/л, допустимая до 100, агрессивная — 40 — 65 мгО₂/л, допустимая — до 85. Наиболее опасной является агрессивная окисляемость — окисляемость легко растворимых и легко разрушающихся органических соединений. Превышение допустимых концентраций этого показателя быстро приводит к резкому снижению содержания растворенного в воде кислорода и возникновению заморной ситуации.

Соединения азота (азот аммонийный, нитраты) и фосфора (фосфаты)имеют большое значение в формировании естественной продуктивности пруда. Это основные биогенные вещества, потребляемые водными растениями, которые находятся в начале пищевой цепи всех живых организмов. Оптимальное содержание соединений азота в воде составляет 2 мг/л, а фосфора —0,5 мг/л, допустимые значения — соответственно до 5,5 мг/л и 2,0 мг/л.

Приведенные параметры водной среды являются основными и, в представленном виде, не отражают в полной мере всю сложность гидрохимических процессов в их взаимодействии, протекающих в воде рыбоводных прудов.

Увеличение показателей качества водной среды за пределы ПДК для рыб приводит к нежелательным (негативным) явлениям в пруду: заморам, снижению темпа роста рыб и их заболеванию, снижению естественной продуктивности прудов, нежелательному интенсивному развитию микроводорослей (фитопланктона) и ряду других (http://www.aquatoria.net.ru).

Гидрологические методы.

• -определение прозрачности воды. В речной воде находятся взвешенные вещества, которые уменьшают ее прозрачность. Существуют несколько методов определения прозрачности воды: по диску Секки, который опускают на веревке в воду, прикрепив к нему груз, чтобы диск уходил вертикально вниз; по кресту — находят предельную высоту столба воды, через которую просматривается рисунок черного креста на белом фоне с толщиной линий равной 1 мм, и четырех черных кружочков диаметром равным 1 мм.; по шрифту — под цилиндр высотой 60 см и диаметром 3−3,5 см подкладывают стандартный шрифт на расстоянии 4 см от дна, исследуемую пробу наливают в цилиндр, так чтобы можно было прочитать шрифт, и определяют предельную высоту столба воды.
• -определение мутности воды. Повышенную мутность вода имеет за счет содержания в ней грубодисперсных неорганических и органических примесей. Определяют мутность воды весовым методом, и фотоэлектрическим колориметром.
• -определение запаха воды. Запахи в воде могут быть связаны с жизнедеятельностью водных организмов или появляться при их отмирании — это естественные запахи.
• -определение цветности воды. Качественную оценку цветности производят, сравнивая образец с дистиллированной водой. Для этого в стаканы из бесцветного стекла наливают отдельно исследуемую и дистиллированную воду, на фоне белого листа при дневном освещении рассматривают сверху и сбоку, оценивают цветность как наблюдаемый цвет, при отсутствии окраски вода считается бесцветной.
• -определение скорости течения реки. Для определения скорости течения реки нужно выбрать относительно ровный участок длиной не менее 30 м и отметить его вешками (створы). Поплавок бросают в воду выше верхнего створа. При прохождении им верхнего створа включают секундомер или засекают время по часам. Затем засекают время при прохождении поплавком нижнего створа, затем высчитывают скорость в м/сек. Для более точного определения поверхностного течения поплавки бросают на середину и ближе к берегам, вычисляя среднюю скорость течения реки. (http://ecosoft.iatp.org.ua/)
• -определение глубины водоема определение рельефа дна

Гидробиологические методы Ихтиофауну водоема и естественную кормовую базу водоема определяют с помощью гидробиологических методов.

Для выявления состава сообществ беспозвоночных использовался гидробиологический сачок. Диаметр сачка 0.45 м., длина металлической ручки меняется в зависимости от целей исследования от 1.2 м. до 2.5 м. Отбор проб производился в 10-ти произвольно выбранных точках водоема. В каждой точке сначала облавливалась толща воды (5 сачков змахов) и прибрежные водные растения. Затем в этой же точке сачком зачерпывались донные отложения с бентосными организмами (5 скребков). Отбор проб производился на расстоянии 0.5−2м. от берега и на глубине 0.1−0.7м. Живые организмы более заметны и легче поддаются выборке. Поэтому я их просмотрела в кювете с тонким слоем воды в тот же день, как их отловила.

В российской системе мониторинга окружающей среды (в системе Росгидромета) для оценки качества вод по показателям гидробионтов наибольшее распространение получил метод расчета биотического индекса (БИ), разработанный Ф. Вудивиссом в 1964 году. В основу метода положена закономерность упрощения таксономической структуры биоценоза по мере повышения уровня загрязнения вод (за счет выпадения индикаторных таксонов при достижении предела их толерантности) одновременно со снижением общего разнообразия организмов, объединенных в группы Вудивисса. В качестве индикаторных групп выбраны отряды веснянок, поденок, ручейников, ракообразные, а также олигохеты сем.Tubificidae и хирономиды рода Chironomus.