Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Экологические связи таежного клеща и его хозяев с возбудителями иксодовых клещевых боррелиозов: На примере природного лесостепного очага Приобья

Диссертация: Экологические связи таежного клеща и его хозяев с возбудителями иксодовых клещевых боррелиозов: На примере природного лесостепного очага Приобья
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Весьма отрывочны сведения об экологии возбудителей боррелиозов для природных очагов на территории юга Западной Сибири, для которых характерен высокий эпидемический риск. В частности, в различных ландшафтных подзонах западной части региона (Тюменская область) с использованием микроскопических методов оценена зараженность имаго таежного клеща (Колчанова, 1997). Помимо этого, сведения об уровне… Читать ещё >

Экологические связи таежного клеща и его хозяев с возбудителями иксодовых клещевых боррелиозов: На примере природного лесостепного очага Приобья (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Введение
  • Глава 1. Состояние изученности клещевого боррелиоза
    • 1. 1. Особенности возбудителей ИКБ
    • 1. 2. Методы титрования геновидов и генетических групп комплекса Borrelia burgdorferi s. l
    • 1. 3. Связь клинических проявлений ИКБ с генетическими группами возбудителя
    • 1. 4. Экология Borrelia burgdorfei sensu lato в Евразии
      • 1. 4. 1. Итоги изучения экологии ИКБ с использованием микроскопических методов
      • 1. 4. 2. Географическое распространение, связи геновидов В. burgdorferi s.l. с клещами Ixodes и резервуарными хозяевами
    • 1. 5. Роль хозяев и клещей-переносчиков в поддержании природных очагов ИКБ
  • Глава 2. Район работ. Материалы и методы
    • 2. 1. Краткая характеристика природных условий северной лесостепи Приобья
    • 2. 2. Материалы и методы
      • 2. 2. 1. Зоологические и паразитологические методы
      • 2. 2. 2. Микробиологические методы
      • 2. 2. 3. Молекулярно-биологические методы
  • Глава 3. Характеристика геновидов Borrelia burgdorferi s.l. в западносибирских очагах иксодовых клещевых боррелиозов
    • 3. 1. Генетическая характеристика изолятов ДНК
  • В. burgdorferi s.
    • 3. 2. Зараженность голодных имаго клещей I. persulcatus различными геновидами боррелий
    • 3. 3. Зараженность фоновых видов мелких млекопитающих различными геновидами
  • В. burgdorferi s
  • Глава 4. Взаимоотношения боррелий с таежным клещом
    • 4. 1. Зараженность боррелиями таежного клеща I. persulcatus
    • 4. 2. Межгодовые изменения зараженности имаго клещей боррелиями
  • Глава 5. Экологические связи В. burgdorferi s.l. с млекопитающими
    • 5. 1. Зараженность боррелиями личинок и нимф таежного клеща, паразитирующих на мелких и средних млекопитающих
    • 5. 2. Зараженность боррелиями фоновых видов мелких млекопитающих
    • 5. 3. Динамика эпизоотического процесса у мелких млекопитающих в течение летнего сезона
    • 5. 4. Зараженность боррелиями различных демографических групп мелких млекопитающих
  • Выводы

Актуальность темы

Иксодовые клещевые боррелиозы (ИКБ) — сравнительно недавно открытая группа природноочаговых трансмиссивных инфекционных заболеваний, вызываемых борре-лиями комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato. К настоящему времени описано 13 геновидов Borrelia burgdorferi s.l., из которых три геновида (В. burgdorferi s.str., В. garinii и В. afzelii) способны вызывать заболевания человека (Горелова и др., 2001; Коренберг и др., 1999). Клещи рода Ixodes, принадлежащие к систематической группе «/. persulcatus», являются основными переносчиками борре-лий. Природные очаги ИКБ широко распространены в лесной зоне Северного полушария. В России они приурочены, главным образом к ее южной части, и выявлены от Прибалтики до Южного Сахалина (Коренберг, 1987).

Иксодовые клещевые боррелиозы являются наиболее значимыми из всех передаваемых клещами инфекций. В США ежегодно регистрируется около 16 тыс. случаев заболеваний (Centers for disease., 1999), в Западной и Центральной Европе — 50 тыс. (O'Connell et al., 1996), в России — от 10 до 12 тыс., что превышает уровень заболеваемости клещевым энцефалитом (см. Коренберг и др., 2002). Наиболее напряженные очаги ИКБ выявлены на Урале, в Западной Сибири и Волго-Вятском регионе (Алыпова и др., 2002; Коренберг и др., 2002). Поскольку выявление и регистрация заболеваний ИКБ на территории России далеко неполно отражают действительную картину, уровень заболеваемости инфекцией может быть значительно выше.

Различные геновиды спирохет комплекса В. burgdorferi s.l. морфологически неразличимы, вместе с тем для них отмечено высокое антигенное разнообразие (van Dam et al., 1997). Предполагают, что выявленные региональные особенности клинического проявления ИКБ (Воробьева и др., 1998; Лесняк и др., 1997; Скрип-никова, 1992; Стир, 1995), во многом обусловлены генетическими особенностями возбудителей, в частности, составом и соотношением геновидов на данной территории (van Dam et al., 1997).

В природе циркуляция возбудителей ИКБ осуществляется благодаря обмену между клещами-переносчиками и резервуарны-ми хозяевами-позвоночными. Популяции, поддерживающие существование возбудителей, образуют сложные трехчленные паразитарные системы, характеризующиеся разветвленными связями между всеми составляющими. Помимо основных переносчиков, в передаче боррелий могут участвовать другие виды клещей рода Ixodes, паразитирующих на тех же хозяевах. В различных природных очагах боррелий могут долговременно хранить и передавать клещам 2−3 основных и до 10−15 дополнительных видов млекопитающих, а также птицы, кормящиеся на земле (Горелова и др., 2001; Peteny et al., 1996; Miyamoto et al., 1997; Humair et al., 1998; Humair, Gem, 1998; Pichon et al., 2000). Вместе с тем, экологические связи В. burgdorferi s.l. с переносчиками и резервуарными хозяевами, в особенности для природных очагов Азиатской части России, изучены слабо.

Установлено, что в России практически по всему ареалу таежного клеща I. persulcatus и с его участием поддерживается цикл циркуляции спирохет В. garinii и В. afzelii (Коренберг и др., 1997; Postic et al., 1997; Коренберг и др., 1999; Горелова и др., 2001; Коренберг и др., 2002). Для 11 видов мелких лесных грызунов, как правило, видов-доминантов, выявлена спонтанная инфицирован-ность возбудителями ИКБ. Приуроченность различных геновидов боррелий к определенным группам мелких млекопитающих не установлена (Горелова и др., 2001).

Резервуарная роль многих видов млекопитающих, обитающих в природных очагах ИКБ в Азиатской части России, остается практически неизученной. Для подавляющего большинства видов хозяев, у которых выявлена спонтанная инфицированность борре-лиями, сведения об уровне зараженности в природных популяциях отсутствуют. Вместе с тем, эти данные могли бы служить основой для сравнительной оценки эпизоотического значения мелких мышевидных грызунов и насекомоядных в поддержании природных очагов ИКБ.

Весьма отрывочны сведения об экологии возбудителей боррелиозов для природных очагов на территории юга Западной Сибири, для которых характерен высокий эпидемический риск. В частности, в различных ландшафтных подзонах западной части региона (Тюменская область) с использованием микроскопических методов оценена зараженность имаго таежного клеща (Колчанова, 1997). Помимо этого, сведения об уровне зараженности имаго /. persulcatus, составе и соотношении геновидов ооррелий, встречающихся в клещах, имеются лишь для некоторых районов Омской, Новосибирской областей и Алтайского края (Рудакова, Ма-тущенко, 1996; Рудакова и др., 2002; Оберт и др., 2001). В литературе имеются сообщения о спонтанной зараженности боррелиями некоторых видов мелких грызунов и насекомоядных (Матущенко и др., 19 966- Рудакова и др., 2002; Калягин, Зубко, 2003), однако, в большинстве случаев, идентификацию возбудителей не проводили.

Таким образом, для многих территорий Западносибирского региона не установлены количественные соотношения геновидов боррелий, заражающих переносчиков и резервуарных хозяев. Практически отсутствуют данные о значении различных наземных позвоночных (птицы, мелкие, средние и крупные млекопитающие) в поддержании циркуляции отдельных геновидов боррелий. Остается открытым вопрос о межгодовых изменениях зараженности переносчиков и резервуарных хозяев боррелиями.

Цель и задачи исследования

Основная цель нашей работы — на примере природного очага в лесостепном Приобье изучить взаимоотношения таежного клеща и его прокормителей с возбудителями клещевых боррелиозов.

Для реализации цели были поставлены следующие задачи:

— установить состав геновидов возбудителей ИКБ, циркулирующих в природных очагах;

— оценить зараженность различных фаз развития таежного клеща боррелиями;

— изучить межгодовые изменения уровня зараженности взрослой части популяции переносчика;

— выявить основные виды мелких млекопитающих, поддерживающих циркуляцию боррелий;

— охарактеризовать динамику эпизоотического процесса в популяциях фоновых видов зверьков.

Научная новизна работы. Впервые для природных очагов Западной Сибири оценены уровень зараженности боррелиями В. burgdorferi s.l. всех фаз развития таежного клеща и, на основании косвенных оценок, показано участие в поддержании цикла циркуляции возбудителей 12 видов мелких лесных грызунов и насекомоядных, среди которых лесная мышовка упоминается впервые как резервуарный хозяин боррелий. Впервые для России с использованием прямого ПЦР-детектирования установлен уровень зараженности боррелиями трех видов мелких млекопитающих (Sorex araneus, Apodemus agrarius, Clethrionomys rutilus) и продемонстрировано, что уровень зараженности зверьков закономерно изменяется в ходе летнего сезона. Впервые выявлено, что полевые мыши Ар. agrarius участвуют в поддержании циркуляции В. afzelii и В. garinii NT29. Впервые показано участие белогрудого ежа (Erinaceus concolor) в передаче боррелий личинкам и нимфам I. persulcatus. Впервые для России оценено генетическое сходство западносибирских спирохет В. burgdorferi s.l., паразитирующих в таежных клещах, с представителями этого комплекса из европейских и азиатских природных очагов ИКБ. Выявлен нетипичный изолят боррелий из клещей I. persulcatus, не относящийся к известным генови-дам и генетическим вариантам.

Практическое значение. Полученные результаты дополняют имеющиеся представления о функционировании и особенностях паразитарных систем ИКБ и уточняют сведения об ареале отдельных геновидов боррелий. Исследования, построенные по принципу мониторинга, позволяют подойти к выяснению основных критериев прогноза эпидемической напряженности природных очагов ИКБ. Материалы диссертационного исследования могут быть использованы санитарно-эпидемиологическими службами для планирования профилактических мероприятий и проведения сани-тарно-просветительной работы, а также для преподавания курсов медицинской паразитологии и эпидемиологии в университетах и медицинских институтах.

Апробация работы и публикации. Основные положения работы были представлены и доложены на VI международном симпозиуме по проблемам клещевых инфекций (Потсдам, 2001), на региональной научной конференции «Исследования эталонных природных комплексов Урала» (Екатеринбург, 2001), на XI международном симпозиуме по биоиндикаторам (Сыктывкар, 2001), на межрегиональной научно-практической конференции «Актуальные аспекты природноочаговых болезней» (Омск, 2001), на научно-практической конференции с международным участием «Клещевые боррелиозы» (Ижевск, 2002). По теме диссертации опубликовано 10 работ.

Благодарности. Исследование реализовано под руководством к.б.н. А. К. Добротворского, которому автор выражает искреннюю благодарность. Молекулярно-биологическая часть исследования начата в лаборатории генной инженерии Института биохимии СО РАМН и курировалась заведующим этой лаборатории к.б.н. А. Б. Беклемишевым. В дальнейшем эта часть работы была продолжена в лаборатории молекулярной вирусологии института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН при поддержке и неоценимой помощи со стороны заведующего лабораторией д.б.н. О. В. Морозовой, которой также было сделано много ценных советов при прочтении рукописи. Автору трудно переоценить помощь в повседневной работе сотрудников ИХБФМ СО РАН и Института биохимии СО РАМН Н. В. Фоменко, к.б.н. В. А. Матвеевой, В.А. Pap, С. Е. Ткачева, к.б.н. Н. П. Пичко, к.б.н. B.C. Караваева, к.б.н. И. А. Лавриненко, И. Т. Иванова, А. В. Питериной, Л. А. Шишковой, НА. Титовой и И. Н. Ивлевой. Всем вышеперечисленным коллегам автор глубоко признателен. Отдельная благодарность В. В. Панову (лаборатория экологического прогнозирования, ИСиЭЖ СО РАН) за определение видовой принадлежности, генеративного состояния и возраста мелких млекопитающих.

147 Выводы.

1. В природных очагах иксодовых клещевых боррелиозов лесостепного Приобья зарегистрированы два патогенных для человека геновида боррелий: Borrelia afzelii и В. garinii. Последний геновид представлен генетическими группами NT29 и 20 047 т Выявлен нетипичный изолят, который по структуре межгенного участка 5S-23S рРНК не может быть отнесен ни к одному известному геновиду.

2. Уровень зараженности имаго I. persulcatus невысок (14,7%), вместе с тем, для Приобской лесостепи характерна высокая инфи-цированность преимагинальных фаз, паразитирующих на мелких млекопитающих.

3. Зараженность боррелиями имаго таежного клеща в годы исследований слабо изменялась по годам. При этом, пик численности имаго клещей, обычно наблюдающийся на следующий год после пика численности хозяев, сопровождался достоверным увеличением процента зараженных переносчиков. Максимальное обилие боррелий в клещах отмечено лишь через два года после пика численности грызунов и насекомоядных на фоне снижения обилия клещей.

4. В условиях лесостепного Приобья принимать участие в поддержании циркуляции боррелий может большинство из обитающих в регионе видов, в их числе ранее не упоминавшиеся в литературе полевая мышь, лесная мышовка и белогрудый еж. Уровень зараженности обыкновенной бурозубки, полевой мыши и красной полевки, доминирующих в западносибирских очагах ИКБ, не превышает 20%. Эти виды участвуют в циркуляции всех выявленных в регионе патогенных для человека геновидов боррелий.

5. Судя по сезонной динамике зараженности боррелиями паразитирующих на хозяевах преимагинальных фаз развития переносчика и динамике эпизоотического процесса в популяциях мелких млекопитающих, системная инфекция чаще развивается у сеголеток, которые, вероятно, и определяют уровень зараженности нимф, а, следовательно, и имаго таежного клеща.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Н., Арумова Е. А., Буренкова J1.А., Чунихин С П. Об особенностях распространения возбудителя болезни Лайма и поведения зараженных им клещей рода Ixodes // Паразитол., 1993, — Т. 27, Вып. 4 С. 389−398.
  2. А.Н., Чунихин С. П., Рухкян М. Я., Стефуткина Л. Ф. Возможная роль субстрата слюнных желез иксосдид в качестве адъюванта, усиливающего передачу арбовирусов // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1991.- № 1, — С. 28−31.
  3. И.И., Коренберг Э. И., Воробьева Н. Н. Риск заражения ик-содовым клещевым боррелиозом населения различных ландшафтных подзон Пермской области // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 2002, — № 1, — С. 37−40.
  4. Атлас Новосибирской области // М., Роскартография, 2002. -55 с.
  5. Ю.С. Кровососущие клещи (Ixodoidea) переносчики болезней человека и животных // Л., Наука, 1967, — 319 с.
  6. Ю.С., Григорьева Л. А. Локализация боррелий в организме клеща Ixodes persulcatus (Ixodidae) // ДАН, 1997, — Т. 352, № 1, — С. 130−132.
  7. Ю.С., Г ригорьева Л.А. Оливер Дж.Х. Локализация боррелий в организме клеща Ixodes persulcatus на разных стадиях развития// Паразитология, 1997.- Т. 31, № 2, — С. 97−103.
  8. Беклемишев В Н. Биоценологические основы сравнительной паразитологии // М.: Наука, 1970. 502 с.
  9. Биологическое районирование Новосибирской области (в связи с проблемой природноочаговых инфекций) // Новосибирск, Наука, 1969. -294 с.
  10. Н.Г. Клещи грызунов фауны СССР //М.-П, изд-во АН СССР, 1955. 459 с.
  11. И.С., Наумов Р. Л. Паразитарная система болезни Лайма: состояние вопроса. Сообщение 1. Возбудители и пара-носчики //Acarina, 1996.- Т. 4, № 1−2.- С. 53−75.
  12. И.С., Никифоров Л. П., Личинки и нимфы таежного клеща и их связи с мелкими млекопитающими Кемчугского стационара // Вопросы эпидемиологии клещвого энцефалита и биологические закономерности в его природном очаге. М.: Медицина, 1968 — С. 168−167
  13. Н.Н., Коренберг Э. И., Волегова Г. М., Москвитина Г, Г., Рысинская Т. К. Клинические аспекты антибиотикопрофилак-тики иксодовых клещевых боррелиозов \ Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1996, — № 2, — С. 8−10.
  14. Временная программа наблюдений за состоянием прродных очагов клещевого энцефалита и методические указания по ее выполнению (для областных, краевых, и республиканских санитарно-эпидемиологических станций) // М., 1966.- 15 с.
  15. Т.Н., Скалон Н. В. О заселении обыкновенным ежом Са-лаиро-Кузнецкой горной области // Проблемы сохранения биологического разнообразия южной Сибири. Мат. I межрегиональн. науч.-практ. конф. 19−22 мая 1997 г. Кемерово, 1997.-С. 35−37.
  16. Н.Б., Белленгер Э., Постик Д., Ковалевский Ю. В. Спонтанная микстзараженность грызуна боррелиями и лептоспи-рами II Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1996, — № 4, — С. 53.
  17. Н.Б., Ковалевский Ю. В., Коренберг Э. И., Постик Д. Зараженность клеща Ixodes trianguliceps различными геновидами борреллий в Приуралье // VII Акарологическое совещание, С. Петербург, 28−30 сент. 1999 г., С-Петербург, 1999, — С. 21−22.
  18. Н.Б., Коренберг Э. И., Филиппова Н. А., Постик Д. Первая изоляция, патогенных для человека боррелий от клещей Ixodes pavlovskyi Pom. // Доклады РАН, 2001.- Т. 378, № 4, — С. 1−2.
  19. Л.А. Землекройки как резервуар боррелий на северо-западе России // Паразитология, 1996.- Т. 30, № 5, — С. 458 460.
  20. Л.А., Третьяков К. А. Особенности паразитарной системы иксодовые клещи боррелии — мелкие млекопитающие на северо-западе России // Паразитология, 1998, — Т. 32, № 5.- С. 422−429.
  21. А.К., Бахвалова В. Н., Харитонова Н. Н., Сапегина В. Ф. Динамика параметров паразитарной системы клещевого энцефалита в условиях северной лесостепи Приобья // Сибирский экологический журнал, 1994, Т. 1, № 4, — С. 369 375.
  22. З.М., Земская А. А., Шлугер Е. Г. Кровососущие клещи. Общие вопросы сбора и обработки материалов // Методы изучения природных очагов болезней человека. М., Медицина, 1964.-С. 68−74.
  23. Западная Сибирь II М.: Изд-во АН СССР, 1963. -488 с.
  24. Н.И., Раевский В. В. Методика изучения некоторых вопросов экологии мышевидных грызунов // Вестник микроб., эпидем. и паразитол. -Саратов, 1933, — Т. 12, Вып. 1. -С. 6773.
  25. Г. С., Короткое Ю. С. Сравнительная оценка методов сбора и длительного содержания иксодовых клещей II Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1989, — № 1.- С. 60−62.
  26. Ю.В., Коренберг Э. И., Дауйотас С.В.Оценка различных способов приготовления витальных препаратов для выявления боррелий у иксодовых клещей II Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1990.- № 1, — С. 33−35.
  27. Ю.В., Коренберг Э. И., Кутлина Т. В., Устинова О. А. нормы просмотра препаратов при исследовании нимф иксодовых клещей методом темнопольной микроскопии в очагах боррелиозов // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1996.-№ 4,-С. 18−21.
  28. Ю.В., Коренберг Э. И., Левин М. Л. Сезонная и годовая вариабельность зараженности клещей I. ricinus и /. persulcatus возбудителем болезни Лайма // Пробл. клещевых боррелиозов. 1993. С. 137- 146.
  29. Ю.В., Крючечников В. Н., Коренберг Э. И. Сравнительная оценка двух методов индикации боррелий в клещах переносчиках болезни Лайма // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1988, — № 5, — С. 75−77.
  30. С.С. Лайм-боррелиоз в Северо-Западном регионе России // Автореф. дисс. докт. мед. н.- Санкт-Петербург, 1999 30 с.
  31. . Климат Западной Сибири // Новосибирск, Новосибгиз, 1947 59 с.
  32. Г. В. Мировое распространение иксодовых клещей (род Ixodes)// М.: Наука, 1981,-С. 114.
  33. Л.П. Спонтанная зараженность клещей боррелиями и степень их индивидуальной инфицированности в различных ландшафтных подзонах Тюменской области // Мед. парази-тол. и паразитар. болезни. 1997, — № 1, — С. 49−50.
  34. И.В. Зооантропонозы Сибири и Дальнего Востока: географический и экологические аспекты // Новосибирск, Наука, 1992, — 163 с.
  35. Э.И. Биохорологическая структура вида (на примере таежного клеща)//М.: Наука, 1979,-С. 170.
  36. Э.И. Проблема болезни Лайма в России // Проблемы клещевых боррелиозов. М., 1993,-С. 13−21.
  37. Э.И., Горелова Е. И., Постик Д. Резервуарные хозяева и переносчики боррелий возбудителей иксодовых клещевых боррелиозов России // Журн. микробиол., эпидемиол. и им-мунобиол., 1997, — № 6, — С. 36−38.
  38. Э.И., Горелова Е. И., Постик Д., Котти Б. К. Новые для России виды бореллий возможные возбудители иксодовых клещевоых боррелиозов // Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол., 1999.- № 2, — С. 3−5.
  39. Э.И., Горелова Н. Б., Ковалевский Ю. В. Основные черты природной очаговости иксодовых клещевых боррелиозов России // Паразитология, 2002, — Т. 36, № 3.- С. 177−191.
  40. Э.И., Ковалевский Ю. В. Основные черты ландшафтной приуроченности // Таежный клещ Ixodes persulcatus schulze
  41. Acarina: ixodidae). Морфология, систематика, экология, медицинской значение,-Л.: Наука, 1985.-С. 193−198.
  42. Э.И., Крючечников В. Н., Деконенко Е. П., Щербаков С. В., Ананьина Ю. В. Серологическое подтверждение болезни Лайма в СССР // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммуноби-ол., 1985 № 6.- С. 111−113.
  43. Э.И., Щербаков С. В., Крючечников В. Н. Материалы по распространению болезни Лайма в СССР // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1987.- № 2- С. 71−73.
  44. Э.И., Щербаков С. В., Баннова Г Г., Левин М. Л., Каранов А. С. Зараженность клещей I. persulcatus возбудителями болезни Лайма и клещевого энцефалита одновременно // Паразитол., 1990.- Т. 24, В. 2, — С. 102−105.*
  45. Э.И., Щербаков С. В., Блинова Г. Г., Левин М. Л., Караванов А. С. Зараженность клещей Ixodes persulcatus возбудителями болезни Лайма и клещевого энцефалита одновременно // Паразитол., 1990, — Т. 24, — В. 2, — С.102−105.
  46. Л.Н., Коренберг Э. И., Калинин М. И., Сысолятин В. А. Клинические варианты Лайм-боррелиоза в Кемеровской области // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1993.- № 1, — С.29−31.
  47. Г. В. Леса Западной Сибири // М., Изд-во АН СССР, 1961.252 с.
  48. А. В. Формирование геоботанических комплексов на стыке подтаежных и лесостепных районов Приобья // В кн.: Растительность Приобья и ее хозяйственное использование- Новосибирск, Наука, 1973. -С. 79−97.
  49. Г. Ф. Биометрия // М. Высшая школа, 1980.- 292 с.
  50. Е.И. Растительный покров // В кн.: Новосибирская область. Природа и ресурсы. Новосибирск, Наука, 1978, — С. 112−124.
  51. О. М. Истомина О. Ю., Рипкема Ш., Бруининк И., Беляева М. Л. Клинические проявления Лайм-боррелиоза на Среднем Урале и их ассоциации с геновидами Borrelia burgdorferi II Терапевтический архив, 1997, — № 5.- С. 9−12.
  52. О.М., Пономарев Д. Н., Волкова Л. И., Ильина Н. С., Лайков-ская Е. Э., Двоснина Б. А. Некоторые аспекты эпидемиологии Лайм-боррелиоза в Свердловской области // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 1995.-№ 1.-С.7−10.
  53. Ю.В., Антонов B.C., Козлов С. С., Крумгольц В. Ф. Болезнь Лайма Северо-Западном регионе //Ж. инфекц. патол., 1996.Т. 3, № 4, — С. 32−34.
  54. А.А. Природные циклы. Причины повторяемости экологических процессов //Л., Наука, 1989. -263 с.
  55. Т., Наумов Р. Л., Кудекен М., Харитоненков И. Г. Обнаружение Borrelia burgdorferi sensu stricto в Московской области, Россия // Мед. паразитол. и паразитар. болезни., 2001.-№ 2,-С. 52.
  56. А.А., Венедиктов B.C., Якименко В В., Танцев А. К. Роль мелких млекопитающих в циркуляции боррелий в очагах клещевого боррелиоза на юго-западе Сибири // Ж. инфекц. патол., 1996.- Т. 3, № 1, — С. 37−39.
  57. Г. Г., Коренберг Э. И., Горбань Л. Я. Присутствие боррелий в кишечнике и слюнных железах спонтанно зараженных взрослых клещей Ixodes persulcatus Schulze при кровососа-нии // Мед. паразитол. и паразитар. болезни., 1995, — № 3.- С. 16−20.
  58. Г. Г., Коренберг Э. И., Спилман Э., Щеголева Т. В. О частоте генерализованной инфекции у взрослых голодных клещей рода Ixodes в очагах боррелиозов России и США // Паразитология, 1997, — Т. 29, № 5, — С. 353−360.
  59. Н.П. Изучение подвижности и численности мелких млекопитающих с помощью ловчих канавок // Вопросы краевой, общей и экспериментальной паразитологии и медицинской зоологии. -М., Медгиз., 1955. -Вып. 9. -С. 179−202.
  60. Р.Л., Васильева И. С. Болезнь Лайма: проблемы эпизоотологии // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 2002.- № 4, — С.38−42.
  61. Р.Л., Васильева И. С., Гутова В. П., Ершова А. С. Лабораторная модель паразитарной системы болезни Лайма // Мед. паразитол. и паразитар. болезни, 2002, — № 1, — С. 40−43.
  62. Р.Л., Гутова В. П. Географическая и годовая изменчивость зараженности клещей вирусом клещевого энцефалита // Мед. паразитология и паразитар. Болезни, 1977.- Т. 46, вып 3. С. 346−355.
  63. Новосибирская область. Природа и ресурсы // Новосибирск: Наука, 1978. -152 с.
  64. А.С. О региональных особенностях клиники иксодовых клещевых боррелиозов // Актуальные аспекты природноочаговых болезней. Мат. межрегиональн. науч,-практ. конф. 16−17 октября 2001 г., посвященного 80-летию Омского НИИПИ. Омск, 2001.- С. 126−127.
  65. В.В. Западная Сибирь // Климат СССР, Вып. 4.- Л., Гид-рометеоиздат, 1962−360 с.
  66. В.В. Климатический очерк Барабинской низменности // Л., Гидрометеоиздат, 1954.-С. 189−200.
  67. И. Я. Борисенко А.В., Крускоп С. В., Яхонтов Е. Л. Млекопитающие Евразии II. Non-Rodentia. Систематико-географический справочник // М., изд-во Моск. ун-та, 1995,333 с.
  68. Н.А. алгоритмы биометрии II М.: Изд-во МГУ, 1980,150 с.
  69. Природные условия центральной части Западно-сибирской равнины // М., Изд-во МГУ, 1977. 216 с.
  70. Пространственно-временная динамика животного населения. Птицы и мелкие млекопитающие // Новосибирск, Наука, 1985.-206 с.
  71. Растительный покров Западно-Сибирской равнины // Новосибирск, Наука, 1985.-251 с.
  72. Растительный покров СССР // М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1956, т. 1−2.
  73. С. А., Матущенко А. А., Токаревич Н. К. Эколого-эпидемиологическая характеристика природных очагов иксодовых клещевых боррелиозов в Сибирском регионе // Науч. практич. конф. «Клещевые боррелиозы» 19−21 ноября. 2002 г., Ижевск, 2002.- С. 252−254.
  74. В.И. Фауна лесопарка и влияние на ее формирование антропогенного фактора // Известия СО АН СССР, Вып. 1, биологический. 1971. -№ 5. -С. 58−66.
  75. Н.М., Счесленок Е. П., Коренберг Э. И., Горелова Н. Б., Постик Д., Барантон Г. Генотипирование штаммов Borrelia burgdorferi sensu lato, выделенных в Белоруссии от клещей Ixodes ricinus II Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 1998.-№ 4,-С. 21−22.
  76. Н.А. Иксодовые клещи подсем. Ixodinae II Фауна СССР. Паукообразные. Т. 4, Вып. 6, — Л.: Наука, — 1977.- С. 393.
  77. Н.А. Таксономические аспекты переноса возбудителей болезни Лайма // Паразитология, 1990, — Т. 24, № 4, — С. 257 267.
  78. С.М. Птицы диффузного города (на примере Новосибирского Академгородка)//Новосибирск- Наука, 1985 -169с.
  79. С.П., Леонова Г. Н. Экология и географическое распространение арбовирусов // М., Медицина, 1985, — 127 с.
  80. Alekseev A.N., Arumova Е.А., Vasilieva I.S. Borrelia burgdorferi sensu lato in the female cement plug of Ixodes persulcatus ticks (Acari, Ixodidae)//Exp. Appl. Acarol., 1995,-Vol. 19, № 9.-P. 519−522.
  81. Alekseev A.N., Burenkova L.A., Vasilieva I.S., Dubinina H.V., Chunikhin S.P. Preliminary studies on virus and spirochete accumulation in the cement plug of ixodid ticks // Exp. Appl. Acarol., 1996.- Vol. 60, № 12 -P. 713−723.
  82. Alekseev A.N., Dubinina H.V. Exchange of Borrelia burgdorferi between Ixodes persulcatus (Ixodidae: Acarina) sexual partners // J. Med. Entomo)., 1996, — Vol. 33, № 3, — P. 351−354.
  83. Alekseev A.N., Dubinina H.V., Rijpkema S.G., Schouls L.M. Sexual transmission of Borrelia garinii by male Ixodes persulcatus ticks {Acari, Ixodidae) II Exp. Appl. Acarol., 1999- Vol. 23, № 2, — P. 165−169.
  84. Alekseev A.N., Dubinina H.V., van de Pol I., Schouls L.M. Identification of Ehrlichia spp., and Borrelia burgdorferi in Ixodes ticks in the Baltic regions of Russia // J. Clin. Microbiol., 2001, — Vol. 39, № 6.-P. 136−142.
  85. Anderson J.F., Magnarelli L.A. Natural history of Borrelia burgdorferi in vectors and vertebrate hosts // In.: Ecology and Environmental Management of Lyme disease (ed. H.S. Ginsberg).- New Brunswick, NJ, USA, Rutgers University Press, 1993.- P. 11−24.
  86. Anthonissen F. M., De Kesel M., Hoet P. P., Bigaignon G. H. Evidence for the involvement of different genospecies of Borrelia in the clinical outcome of Lyme disease in Belgium // Res. Microbiol., 1994, — Vol. 145, № 4, — P. 327−331.
  87. Asbrink E., Hovmark A., Hederstedt B. The spirochetal etiology of acrodermatitis chronica atrophicans Herxheimer // Acta. Dermatol. Venereol., 1984.- Vol. 64, № 6, — P. 506−512.
  88. Assous M., Postic D., Baranton G. Clinical and epidemiological implications of Borrelia burgdorferi sensu lato taxonomy // In Y. Yanagihara, Т. Masuzava (ed), Proceeding of the International Symposium on Lyme Disease in Japan 1994., 1994, — P. 148−162.
  89. Balmelli Т., Piffaretti J. C. Association between different clinical manifestations of Lyme disease and differend species of Borrelia burgdorferi sensu lato // Res Microbiol. 1995 Vol. 146, № 4, — P. 329−340.
  90. Baranton G., Seinost G., Theodore G., Postic D., Dykhuizen D. Distinct levels of genetic diversity of Borrelia burgdorferi are associated with different aspects of patogenicity // Res. Microbiol., 2001.-Vol. 152, № 2, — P.149−156.
  91. Barbour A.G. Plasmid analisis of Borrelia burgdorferi, the Lyme disease agent//J. Clin. Microbiol., 1988,-Vol. 26, № 3.-P. 475−478.
  92. Barbour A.G., Hayes S.F. Biology of Borrelia species // Microbiol. Rev., 1986, — Vol. 50, № 4, — P. 381−400.
  93. Barbour A.G., Heiland R.A., Howe T.R. Heterogeneity of major proteins in Lyme disease borreliae: a molecular analysis of North American and European isolates // J. Infect., 1985.- Vol. 152, № 4, — P. 478−484.
  94. Basta J., Murgia R., Cinco M. Effects of some stress factors on the morphology of Borrela burgdorferi // VII Int. Congr. Lyme Borrelio-sis. San Francisco. California., 1996.-Abstract. P.17.
  95. Britner-Ruddock S., Wurzner R., Shulze J., Brade V. Heterogenity in the complement-dependent bacteriolysis within the species of Borrelia bu rgdorferi II Med. Microbiol. I mmunol. (Berl.), 1997.-Vol. 185, № 4, — P. 253−260.
  96. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F., Benach J.L., Grunwaldt E., Davis J.P. Lyme disease a tick-borne spirochetosis? // Science. 1982.-Vol. 216, №.- P. 1317−1319.
  97. Callister S.M., Schell R.F., Case K.L., Lovrich S.D., Day S.P. Characterization of borreliacidal antibody response to Borrelia burgdorferi in humans: A serdiagnostic test // J. Infect. Dis., 1993.- Vol. 167, № 1.-P. 158−164.
  98. Callister S.M., Schell R.F., Lim I.C. Detection of borreliacidal antibodies by flow cytometri. An accurete, hidhly specific serodiagnostic test for Lyme disease // Arch. Intern. Med., 1994.- Vol. 154, № 14,-P.1625−1632.
  99. Casjens S., Huang W.M. Linear chromosomal physical and genetic map of Borrelia burgdorferi, the Lyme disease agent // Mol. Microbiol., 1993- Vol. 8, № 5.- P. 967−980.
  100. Centers for Disease Control and Prevention. 1999. Availability of Lyme disease vaccine. Morbid. Mortal. Weekly Rep. 48: 36−36,43
  101. Christova I., Hohenberger S., Zehetmeier C., Wilske B. First characterization of Borrelia burgdorferi sensu lato from ticks and skin biopsyin Bulgaria // Med. Microbiol. Immunol. (Berl.), 1998.- Vol. 186, № 4, — P. 171−175.
  102. Coleman J.L., Sellati T.J., Testa J.E., Kew R.R., Furie M.B., Benach J.L. Borrelia burgdorferi binds plasminogen, resulting in enhanced penetration of endothelial monolayers // Infect. Immun., 1995.-Vol. 63, № 7 P. 2478−2484.
  103. Craine N.G., Randolph S.E., Nuttall P.A. Seasonal variations in the role of grey squirrels as hosts of Ixodes ricinus, the tick vector of the Lyme disease spirochaete, in a British woodland // Folia Parasi-tol., 1995.-Vol. 42, № 1.- P. 73−80.
  104. Doby J.M., Degeilh В., Cayouette S., Guiguen C. Borrelia burgdorferi sensu lato observed in Ixodes (Trichotoixodes) pari Leach, 1815 (.Acari- Ixodidae) II Bull. Soc. Pathol. Exot. 1995, — Vol. 88, — № 4,-P. 185−186.
  105. Dolan M.C., Piesman J., Mbow L., Maupin G., Oliver P., Brossard M., Golde W.T. Vector competence of Ixodes scapularis and Ixodes ricinus (Acari: Ixodidae) for three genospecies of Borrelia burgdorferi И J. Med. Entomol., 1998, — Vol. 35, № 4.- 465−470.
  106. Donahue J.C., Piesman J., Spilman A. Reservoir competence of white-footed for Lyme-disease spirochetes // Am. J. Trop. Med. Hyg., 1987, — Vol. 36, № 1.-P. 92−96.
  107. Dykhuizen D.E., Polin D.S., Dunn J.J., Wilkie В., Preac-Mursic V., Datt-wyler R.J., Luft B.J. Borrelia burgdorferi is clonal: implications for taxonomy and vaccine development // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993, — Vol. 90, № 21, — P. 10 163−10 167
  108. Estrada-Pena A., Oteo J.A., Estrada-Pena R., Gortazar C., Osacar J.J., Moreno J.A., Castella J. Borrelia burgdorferi sensu lato in ticks (Acari: Ixodidae) from two different foci in Spain // Exp. Appl. Acarol., 1995,-Vol. 19, № 3,-P. 173−180.
  109. Firking E., Barthold S.W., Marcantonio N., Deponte K., Kantor F.S., Flavell R.A. Roles of OspA, OspB, OspC, and flagellin protective immunity to Lyme borreliosis in laboratory mice // Infect. Immun., 1992a.- Vol. 60, № 2, — P. 657−661.
  110. Firking E., Telford III S.R., Barthold S.W., Kantor F.S., Spielman A., Flavell R.A. Elimination of Borrelia burgdorferi from vector ticks feeding on OspA-immunized mice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 19 926,-Vol. 89, № 12, — P. 5418−5421.
  111. Fushs H., Wallich R., Simon M.M., Kramer M.D. The outer surface protein A of the spirochete Borrelia burgdorferi is a plasmin (ogen) receptor // Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 1994, — Vol. 91, № 26- P. 12 594−12 598.
  112. Gazumjan A., Schwartz J.J., Liveris D., Schwartz I. Sequence analysis of the ribosomal RNA operon of the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi/ Gene, 1994.- Vol. 146, № 1.- P. 57−65.
  113. Gern L., Estrada-Pena A., Frandsen F., Gray J.S., Jaenson T.G., Jon-gejan F., Kahl O., Korenberg E., Mehl R., Nuttall P.A. European reservoir hosts of Borrelia burgdorferi sensu lato // Zentralbl. Bak-teriol., 1998, — Vol. 287, № 3 P. 196−204.
  114. L., Ни C.M., Kocianova E., Vyrostekova V., Rehacek J. Genetic diversity of Borrelia burgdorferi sensu lato isolates obtained from Ixodes ricinus ticks collected in Slovakia // Eur. J. Epidemiol., 1999.- Vol. 15, № 7, — P. 665−669.
  115. Gern L., Humair P.-F. Natural history of Borrelia burgdorferi sensu lato //Wien. Klin. Wochenshr., 1998, — Vol. 110, № 24-P. 856−858.
  116. Gern L., Rais O. Efficient transmission of Borrelia burgdorferi between cofeeding Ixodes ricinus ticks // J. Med. Entomol., 1996a.- Vol. 33, № 1.-P. 189−192.
  117. Gern L., Rouvinez E., Toutoungi L.N., Godfroid E. Transmission cycles of Borrelia burgdorferi sensu lato involving Ixodes ricinus and/or /. hexagonus ticks and the European hedgehogs // Folia Parasi-tol., 1997,-Vol. 44, № 4 P. 309−314.
  118. Gern L., Schaible U.E., Simon M.M. Mode of inoculation of the Lyme disease agent Borrelia burgdorferi influences infection and immune responses in inbred strains of mice // J. Infect. Dis., 1.993,-Vol. 167, № 4, — P. 971−975.
  119. L., Siegenthaler M.C., Ни M., Leuba-Garcia S., Humair P.F., Moret J. Borrelia burgdorferi in rodents (Apodemus flavicol/is and
  120. A. sylvaticus): Duration and enhancement of infectivity for Ixodes ricinus ticks // Eur. J. Epidemiol., 1994a.- Vol. 10, № 1.- P. 75−80.
  121. Gern L., Toutoungy L.N., Hu Chang Min, Aeshliman A. Ixodes (Pholeoixodes) hexagonus, an efficient vector cf Borrelia burgdorferi in the laboraratory // Med. End Vet. Entomol. 1991.- Vol. 5,-№ 4.-P. 431−435.
  122. Giardina A.R., Schmidt K.A., Schauber E.M., Ostfeld R.S. Modeling the role of songbirds and rodents in the ecology of Lyme disease // Can. J. Zool., 2000, — Vol. 78, № 12, — P. 2184−2197.
  123. Golde W.T., Burkot T.R., Sviat S., Keen M.G., Mayer L.W., Johnson
  124. B.J.В., Piesman J. The major histocompatibility complex-restricted response of recombinant inbred strains of mice to natural tick transmission of Borrelia burgdorferi II J. Experim. Med., 1993,-Vol. 177, № 1, — P. 9−17.
  125. Golubic D., Rijpkema S., Tkalec-Makovec N., Ruzic E. Epidemiologic, ecologic and clinical characteristics of Lyme borrelliosis in northwest Croatia // Acta Med. Croatica, 1998, — Vol. 52, № 1- P. 7−13.
  126. Gorelova N.B., Korenberg E.I., Kovalevskii Y.V., Shcerbakov. S.V. Small mammals as reservoir hosts for Borrelia in Russia // Zen-tralbl. Bakteriol., 1995.-Vol. 282, № .- P. 315−322.
  127. Gray J.S., Kahl O., Janetski-Mittman C., Stain J., Guy E. Acquisition of Borrelia burgdorferi by Ixodes ricinus ticks fed on the European hedgehog, Erinaceus europaeus L. // Exp. Appl. Acarol., 1994,-Vol. 18, № 8,-P. 485−491.
  128. Gray J.S., Kirstain F., Robertson J.N., Stein J., Kahl O. Borrelia burgdorferi sensu lato in Ixodes ricinus ticks and rodents in a recreational park in south-western Ireland // Exp. Appl. Acarol., 1999, — Vol. 23, № 9.- P. 717−729.
  129. Gray J.S., Robertson J.N., Key S. Limited role of rodens as reservoirs of Borrelia burgdorferi II Eur. J. Epidemiol., 2000.- Vol. 16, № 2-P. 101−103.
  130. Guner E.S., Sigal L. Enhanced attachment of B. burgdorferi grown in mammalian tissue supported co-cultures // VI Int. Conf. Lyme Borreliosis. Bologna. Italy, 1994.- Program and Abstract.- P. 82.
  131. Gylfe A., Yabuki M., Drotz M., Bergstrom S., Fukunaga M., Olsen B. Phylogeographic relationships of Ixodes uriae (Acari: Ixodidae) and their significance to transequatorial dispersal of Borrelia garinii II Hereditas, 2001.-Vol. 134, № 3,-P. 195−199.
  132. Hainichka V., Kocakova P., Slovak P., Labuda M., Fushberger N., Nut-tal P. Inhibition of the antiviral action of interferon by tick salivary gland extract // Parasite Immunol., 2000, — Vol. 22, — № 4, — P. 201 206.
  133. Ни C.M., Humair P.F., Wallich R., Gern L. Apodemus sp. rodents, reservoir hosts for Borrelia afzelii in an endemic area in Switzerland // Zentralbl. Backt., 1997.- Vol. 285, № 4, — P. 558−564.
  134. Ни C.M., Wilske В., Fingerle V., Lobet Y., Gern L. Transmission of Borrelia garinii OspA serotype 4 to BALB/c mice by Ixodes ricinusticks collected in the field // J. Clin. Microbiol., 2001, — Vol. 396 № 3, — P. 1169−1171.
  135. Hubalek Z., Anderson J.F., Halouzka J., Hajek V. Borreliae in immature Ixodes ricinus (Acari.lxodidae) ticks parasitizing birds in the Czech Republic //J. Med. Entomol., 1996.- Vol. 33, № 5 P. 766 771.
  136. Hubalek Z., Halouzka J. Distribution of Borrelia burgdorferi sensu lato genomic groups in Europe, a review // Eur. J. Epidemiol. 1997-Vol. 13, № 1, — P. 951−957.
  137. Hubalek Z., Halouzka J., Juricova Z. Investigation of haematophagous arthropods for borreliae--summarized data, 1988−1996 // Folia Parasitol. (Praha), 1998, — Vol. 45, № 1, — P. 67−72.
  138. Hubalek Z., Halouzka J., Jurikova Z. A simple method of transmission risk assessment in enzootic foci of Lyme borreliosis // Eur. J. Epidemiol., 1996, — Vol. 12, № 4, — P. 331−333.
  139. Hubbard M.J., Baker A.S., Cann K.J. Distribution of B. burgdorferi s.l. spirochaetae DNA in British ticks (Argasidae and Ixodidae) since 19th century, assessed by PCR // Med Vet Entomol., 1998.- Vol. 12, № 1, — P. 89−97.
  140. Humair P.F., Gern L. Relationship between Borrelia burgdorferi sensu lato species, red squirrels (Sciurus vulgaris) and Ixodes ricinus in enzootic areas in Switzerland // Acta Trop., 1998.- Vol. 69, № 3-P. 213−227.
  141. Humair P.-F., Peter O., Wallich R., Gern L. Strain variation of Lyme disease spirochetes isolated from Ixodes ricinus ticks and rodents collected in two endemic areas in Switzerland // J. Med. Entomol., 1995, — Vol. 32, — P.433−438.
  142. Humair P.F., Postic D., Wallich R., Gern L. An avian reservoir (Tardus merula) of the Lyme borreliosis spirochetes // Zentralbl. Bakteriol., 1998.- Vol. 287, № 4 P. 521−538.
  143. Humair P.F., Rais O., Gern L. Transmission of Borrelia afzelii from Apodemus mice and Clethrionomys voles to Ixodes ricinus ticks: differential transmission pattern and overwintering maintenance // Parasitology, 1999,-Vol. 118, Pt 1, — P. 33−42.
  144. Humair P.-F., Turrian N., Aeschlimann A., Gern L. Borrelia burgdorferi in a focus of Lyme borreliosis: Epizootologic contribution of small mammals // Folia Parasitol. (Prague), 1993a.- Vol. 40, № 1.- P. 65−70.
  145. Jaenson T.G.T., Talleklint L. Lyme borreliosis spirochetes in Ixodes ricinus (Acari: Ixodidae) and the varying hare on isolated islands in the Baltic sea // J. Med. Entomol., 1996.- Vol. 33, № 3, — P. 339 343.
  146. Jensen P.M., Frandsen F. Temporal risk assessment for Lyme borreliosis in Denmark // Scand. J. Infec. Dis., 2000, — Vol. 32, № 5 P. 539−544.
  147. Jensen P.M., Hansen H., Frandsen F. Spatial risk assessment for Lyme borreliosis in Denmark // Scand. J. Infec. Dis., 2000, — Vol. 32, № 5, — P. 545−550.
  148. Johnson R.C., Schmid G.P., Hyde F.W., Steigerwalt A.G., Brenner D.J. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiological agent of Lyme disease // Int. J. Syst. Bacterid., 1984, — Vol. 34, № 5, — P. 496−497.
  149. Jones C.G., Ostfeld R.S., Richard M.P., Schauber E.M., Wolff J.O. Chain reactions linking acorns to gypsy moth outbreaks and Lyme disease risk // Science, 1998, — Vol. 279, № 5353, P. 1023−1026.
  150. Junttila J., Peltomaa M., Soini H., Marjamaki M., Viljanen M.K. Prevalence of Borrelia burgdorferi in Ixodes ricinus ticks in urban recreational areas of Helsinki // J. Clin. Microbiol., 1999.- P. 37, № 5, — P. 1361−1365.
  151. Kawabata H., Masuzawa Т., Yanagihara Y. Genomic analysis of Borrelia japonica sp. nov. isolated from Ixodes ovatus in Japan // Microbiol. Immunol., 1993, — Vol. 37, №.- P. 843−848.
  152. Kawabata H., Tashibu H., Yamada K., Masuzawa Т., Yanagihara Y. Polymerase chain reaction analysis of Borrelia species isolated in Japan // Microbiol Immunol., 1994, — Vol. 386, № 8, — P. 591−598.
  153. Kersten A., Poitschek C., Rauch S., Aberer E. Effects of penicillin, ceftriaxone, and doxycycline on morphology of Borrelia burgdorferi II Antimicrob. Agents. Chemother., 1995.- Vol. 39, № 5.- P. 11 271 133.
  154. Khal O., Janetzki C., Gray J.S., Stein J., Bauch R.J. Tick infection with Borrelia: Ixodes ricinus versus Haemaphysalis concinna and Dermacentor reticulatus in two locations in Eastern Germany // Med. and Vet. Entomol., 1992, — Vol. 6, № 4, — P.363−366.
  155. Kimito U., Koichi M., Kenji M., Minoru N. An extensive prevalence of Borrelia burgdorferi, the etiologic agent of Lyme borreliosis, in
  156. Nagano prefecture, Japan // Jap. J. Sanit. Zool., 1991.- Vol. 42, № 4 P. 293−299.
  157. Kirstein F., Rijpkema S., Molkenboer M., Gray J.S. Local variations in the distribution and prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato genomospecies in Ixodes ricinus ticks // Appl. Environ. Microbiol., 1997.-Vol. 63, № 3, — P. 1102−1106.
  158. Korenberg E.I., Gorelova N.B., Kovalevskii Y.V. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia // In: Lyme borreliosis: Biology, epidemiology and control (Gray J., Kahl O., Lane R.S., Stanek G. eds.).- CAB International, 2002, — P. 175−200.
  159. Korenberg E.I., Kovalevskii Y.V., Karavanov A.S., Moskvitina G.G. Mixed infection by tick-borne encephalitis virus and Borrelia in ticks // Med. Vet. Entomol. 1999, — Vol. 13, — № 2, — P. 204−208.
  160. Korenberg E.I., Kryuchechnikov V.N., Kovalevsky Y.V. Advances in Investigations of Lyme Borreliosis in the Territory of the Former USSR//Eur J Epidemiol., 1993,-Vol. 9, № 1, — P.86−91.
  161. Kurtenbach K., Carey D" Hoodless A.N., Nuttall P.A., Randolph S.E. Competence of pheasants as reservoirs for Lyme disease spirochetes//J. Med. Entomol., 1998.-Vol. 35, № 1, — P. 77−81.
  162. Kurtenbach K., de Michelis S., Etti S., Schafer S.M., Sewell H.S., Brade V., Kraiczy P. host association of Borrelia burgdorferi sensu latothe key role of host complement // Trends in Microbiol., 2002.~ Vol. 10, № 2 P. 74−79.
  163. Kurtenbach К., Peacey M., Rijpkema S.G., Hoodless A.N., Nuttall P.A., Randolph S.E. Differential transmission of the genospecies of Borrelia burgdorferi sensu lato by game birds and small rodents in
  164. Macagine F., Perez-Eid C. Presence de Borrelia affines de Borrelia burgdorferi chez Haemophysalis (Alloceraea) inermis Birula, 1895 (Acarina, Ixodoida), dans lesud-oust de la France // Ann. Parasi-tol. Hum. et Сотр. 1991.- Vol.66, № 6, — P. 269−271.
  165. Magnarelli L.A., Anderson J.F., Fish D., Transovarial transmission of Borrelia burgdorferi in Ixodes dammini (Acari: Ixodidae) // J. Infect. Dis., 1987, — Vol. 156, № 1, — P. 234−236.
  166. Marconi R.T., Garon C.F. Indentification of thrid genomic group of Borrelia burgdorferi through signature nucleotid analysis and 16S r RNA sequence determination // J. Gen. Microbiol., 1992.- Vol. 138, № Pt 3.-P. 533−536.
  167. Masuzawa Т., Iwaki A., Sato Y., Miyamoto K., Korenberg E.I., Yanagihara Y. Genetic diversity of Borrelia burgdorferi sensu lato isolated in far eastern Russia // Microbiol. Immunol., 1997.- P. 41, № 8, — P. 595−600.
  168. Masuzawa Т., Suzuki H., Kawabata H., Ishiguro F., Takada N., Yano Y., Yanagihara Y. Identification of spirochetes isolated from wild rodents in Japan as Borrelia japonica II J. Clin. Microbiol., 1995.-Vol. 33, № 5 P. 1392−1394.
  169. Mateicka F., Kozakova D., Rosa P.A., Kmety E. Identification of Borrelia burgdorferi sensu lato tick isolates from Slovakia by PCR typing with 16S rRNA primers // Zentralbl. Bakteriol., 1997, — Vol. 286, № 3 -P. 355−361.
  170. Mather T.N., Adler G.H. Absence of transplacental transmission of Lyme disease spirochetes from reservoir mice (Peromiscus leu-copus) to their offspring // J. Infect. Dis., 1991.- Vol. 164, № 3, — P. 564−567.
  171. Mather T.N., Telford III S.R., Moore S.I., Spielman A. Borrelia burgdorferi and Babesia microti: Efficiency of transmission from reservoirs from reservoirs to vector ticks (Ixodes dammini) II Exp. Parasitol., 1990,-Vol. 70, № 1, — P. 55−60.
  172. Mather T.N., Wilson M.L., Moore S.I., Ribero J.M., Spielman A. Comparing the relative potential of rodents as reservoirs of Lyme disease spirochete (Borrelia burgdorferi) II Am. J. Epidemiol., 1989.-Vol. 130, № 1.-P. 143−150.
  173. Matuschka F.R., Allgower R., Spielman A., Richter D. Characteristics of garden dormice that contribute to their capacity as reservoirs for lyme disease spirochetes // Appl Environ Microbiol, 1999.- Vol. 65, № 2.-P. 707−11.
  174. Matuschka F.R., Fisher P., Heiler M., Richter D., Spielman A. Capacity of European animals as reservoir hosts for the Lyme disease spirochete // J. Infect. Dis., 1992, — Vol. 165, № 3, — P. 479−483.
  175. Matuschka F.R., Klug В., Schinkel T.W., Spielman A., Richter D. Diversity of European Lyme disease spirochetes at the southern margin of their range // Appl. Environ. Microbiol., 1998.- Vol. 64, № 5,-P. 1980−1982.
  176. Matuschka F.R., Ohlenbusch A., Eiffert H., Richter D., Spielman A. Characteristics of Lyme disease spirochetes in archived European ticks // J. Infect. Dis., 1996.- Vol. 174, № 2, — P. 424−426.
  177. Matuschka F.R., Richter D. Mosquitoes and soft ticks cannot transmit Lyme disease spirochetes // Parasitol. Res., 2002.- Vol. 88, № 4,-P. 283−284.
  178. Matuschka F.R., Spielman A. Loss of Lyme disease spirochetes from Ixodes ricinus ticks feeding on European blackbirds // Experim. Parasitol., 1992, — Vol. .74, № 1, — P. 55−61.
  179. Missone M.C., Hoet P.P. Species-specifuc plasmid seguences for PCR identification of the three species of Borrelia burgdorferi sensu lato involved in Lyme disease // J.Clin. Microbiol., 1998.- Vol. 36, № 1.- P.269−272.
  180. Miyamoto K., Nakao M., Uchikawa K., Fujita H. Prevalenca of Lyme borreliosis spirochetes in ixodid ticks of Japan, with spetial reference to a new potential vector, Ixodes ovatus (Acari: Ixodidae) // J. Med. Entomol., 1992, — Vol. 29, № 2, — P. 216−220.
  181. Miyamoto K., Sato Y., Okada K., Fukunaga M., Sato F. Competence of a migratory bird, red-bellied thrush (Turdus chrysolaus), as an avian reservoir for the Lyme disease spirochetes in Japan // Acta. Trop., 1997,-Vol. 30, № 1, — P. 43−51.
  182. Mount G.A., Haile D.G., Daniels E. Simulation of blacklegged tick (Acari: Ixodidae) population dynamics and transmission of Borrelia burgdorferi II J. Med. Entomol., 1997a.- Vol. 34, № 4, — P. 461 484.
  183. Mount G.A., Haile D.G., Daniels E. Simulation of management strategies for the blacklegged tick (Acari: Ixodidae) and the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi I/ J. Med. Entomol., 19 976.-Vol. 34, № 6.-P. 672−683.
  184. Nakao M., Miyamoto K. Mixed infection of different Borrelia species among Apodemus speciosus mice in Hokkaido, Japan // J. Clin. Microbiol., 1995.- Vol. 33, № 2 P. 490−492.
  185. Nakao M., Miyamoto K., Fukunaga M. Lyme disease spirochetes in Japan: enzootic transmission cycles in birds, rodents, and Ixodes persulcatus ticks // J. Infect. Dis., 1994, — Vol. 170, № 4, — P. 878 882.
  186. Nakao M., Uchikawa K., Dewa H. Distribution of Borrelia species associated with Lyme disease in the subalpine forests of Nagano prefecture, Japan // Microbiol. Immunol. 1996, — Vol. 40, № 4 P. 307 311.
  187. Nguyen T.P., Lam T.T., Barthold S.W., Telford III S.R., Flavell R.A., Fik-rig E. Partial destruction of Borrelia burgdorferi within ticks that engorged on OspE- or OspF-immunized mice // Infect. Immun., 1994, — Vol. 62, № 5, — P. 2079−2084.
  188. M .С., М ather Т .N. М ethods f or Е valuating L yme dis ease risks using geographic information systems and geospatial analysis // J. Med. Entomol., 1996, — Vol. 33, — № 5, — P. 711−720.
  189. Nohlmans L.M., de Boer R., van den Bogaard A.E., van Boven C.P. Genotypic and phenotypic analysis of Borrelia burgdorferi isolates from the Netherlands // J. Clin. Microbiol., 1995, — Vol. 33, № 1, — P. 119−125.
  190. Norman G. L., Antig J. M., Bigaignon G., Hogrefe W. R. Serodiagnosis of Lyme borrelios by Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. garinii and B. afzelii Western blots (immunoblots) // J. Clin. Microbiol., 1996,-Vol. 34, № 7,-P. 1732−1738.
  191. Nuttall P .A. Pathogen-tick-host interactions: Borrelia burgdorferi and TBE virus // Zbl. Bakt.(Eur. J. Med. Microbiol.), 1999, — Vol. 289, № 5−7, — P. 492−505.
  192. O’Connell S., M. Granstrom, J. S. Gray, G. Stanek. 1998. Epidemiology of European Lyme borreliosis. Zentbl. Bakteriol. 287- 229−240.
  193. Ogden N.H., Nuttall P.A., Randolph S.E. Natural Lyme disease cycle maintained via sheep by cofeeding ticks // Parasitology, 1997.-Vol. 115, Pt. 6- P. 591−599.
  194. Olsen В., Duffy D.C., Jaenson T.G., Gylfe A., Bonnedahl J., Bergstrom S. Transhemispheric exchange of Lyme disease spirochetes by seabirds // J. Clin. Microbiol., 1995, — Vol. 33, № 12.- P. 32 703 274.
  195. Olsen В., Jaenson T.G., Bergstrom S. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato infected ticks on migrating birds // Appl. Environ. Microbiol., 1995, — Vol.61, № 8 — P. 3082−3987.
  196. Olsen В., Jaenson T.G.T., Noppa L., Bunikis J., Bergstrom S. A Lyme borreliosis cycle in seabirds and Ixodes uriae ticks // Nature (Lond.)., 1993-Vol. 362, № 6418 P. 340−342.
  197. Ostfeld R.S. The ecology of Lyme disease risk // Am. Sci., 1996.- Vol. 85, № 4,-P. 338−346.
  198. Pachner A.R. Neurologic manifestations of Lyme disease, the new «great imitator» // Rev. Infect. Dis., 1989.- Vol. 11, Suppl. 6, — P. S1482-S1486.
  199. Pal U., de Silva A.M., Montgomery R.R., Fish D., Anguita J., Anderson J.F., Lobet Y., Fikrig E. Attachment of Borrelia burgdorferi within Ixodes scapularis mediated by outer surface protein A // J. Clin. Invest., 2000, — Vol. 106, № 4, — P. 561−569.
  200. Park K.H., Chang W.H., Schwan T.G. Identification and characterization of Lyme disease spirochetes, Borrelia burgdorferi sensu lato, isolated in Korea // J. Clin. Microbiol., 1993.- Vol. 31, № 7, — P. 1831−1837.
  201. Parveen N., Robbins D., Leong J. M. Strain variation in glycosamingly-can recognition influences cell-type-specific binding by Lyme disease spirochetes // Infect. Immun., 1999.- Vol. 67, № 4 P. 17 431 749.
  202. Patrican L.A. Absence of Lyme disease spirochetes in larval progeny of naturally infected Ixodes scapularis (Acari: Ixodidae) fed on dogs // J. Med. Entomol., 1997.- Vol. 34, № 1.- P. 52−55.
  203. Patrican L.A. Acquisition of Lyme disease spirochetes by cofeeding Ixodes scapularis ticks // Am. J. Trop. Med. Hyg., 1997, — Vol. 57, № 5.-P. 589−593.
  204. Peavey С.A., Lane R.S., Damrov T. Vector competente of Ixodes an-gustus (Acari: Ixodidae) for Borrelia burgdorferi sensu stricto // Exp. Appl. Acarol., 1997, — Vol. 21, № 8 P.-569−584.
  205. Peavey C.A., Lane R.S., Kleinjan J.E. Role of small mammals in the ecology of Borrelia burgdorferi in a peri-urban park in North coastal California // Exp. Appl. Acarol., 2000, — Vol. 23, № 1, — P.-77−84.
  206. Peteny T.N., Hassler D., Bruckner M., Maiwald M. Comparison of urinary bladder and ear biopsy samples for determining prevalence of Borrelia burgdorferi in rodents in Central Europe // J. Clin. Microbiol., 1996.-Vol. 34, № 5, — P. 1310−1312.
  207. Peter O., Bretz A.G., Bee D. Occurrence of different genospecies of Borrelia burgdorferi sensu lato in ixodid ticks of Valais, Switzerland // Eur. J. Epidemiol., 1995, — Vol. 11, № 4, — P. 463−467.
  208. Peter O., Bretz A.G., Postic D., Dayer E. Association of distinct species of Borrelia burgdorferi sensu lato with neuroborreliosis in Switzerland // Clin. Microbiol. Infect., 1997, — Vol. 3, № 1, — P. 423−431.
  209. Pichon В., Gilot В., Perez-Eid C. Detection of spirochaetes of Borrelia burgdorferi complexe in the skin of cervids by PCR and culture // Eur. J. Epidemiol., 2000, — Vol. 16, № 9, — P. 869−873.
  210. Pichon В., Mousson L., Figureau C., Rodhain F., Perez-Eid C. Density of deer in relation to the prevalence of Borrelia burgdorferi s.l. in Ixodes ricinus nymphs in Rambouillet forest, France // Exp. Appl. Acarol., 1999, — Vol. 23, № 3, — P. 267−275.
  211. Picken R.N., Cheng Y., Strle F., Picken M.M. Patient isolates of Borrelia burgdorferi sensu lato with genotypic and phenotypic similarities of strain 25 015 // J. Infect. Dis., 1996, — Vol. 174, № 5.-P. 11 121 115.
  212. Piesman J. Dispersal of the Lyme disease spirochete Borrelia burgdorferi to salivary glands of feeding nymphal Ixodes scapularis (Acari: Ixodidae) // J. Med. Entomol., 1995.- Vol. 32, № 4.- P. 519−521.
  213. Piesman J. Intensity and duration of Borrelia burgdorferi and Babesia microti infectivity in rodent hosts // Int. J. Parasitol., 1988.- Vol. 18, № 5 P. 687−689.
  214. Piesman J., Dolan M.C., Happ C.M., Luft B.J., Rooney S.E., Mather Т., Golde W.T. Duration of Immunity to reinfection with tick-transmitted Borrelia burgdorferi in naturally infected mice 11 Infect. Immun., 1997.- Vol. 65, № 10, — P. 4043−4047.
  215. Postic D., Korenberg E., Gorelova N., Kovalevski Y.V., Bellenger E., Baranton G. Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia and neighbouring countries: High incidence of mixed isolates // Res. Microbiol., 1997.-Vol. 148, № 8, — P. 691−702.
  216. Postic D., Ras N.M., Lane R.S., Hendson M., Baranton G. Expanded diversity among California Borrelia isolates and description of Borrelia bissettii sp. nov. (formerly Borrelia group DN127) // J. Clin. Microbiol., 1998, — Vol. 36, № 12, — P. 3497−3504.
  217. Ralph D., Postic D., Baranton C., Pretzman C., McClelland M Species of Borrelia distinguished by site polymorphisms in 16S rRNA genes // FEMS Microbiol. Lett., 1993, — Vol. 111, № 2−3, — P. 239 243.
  218. Randolph S.E. Mighty theories from little acorns grow: is Lyme disease risk predictable from mast-seeding by oak trees // Tree, 1998.-Vol. 13, № 8,-P. 301−303.
  219. Rawlings J.A., Teitow G.J. Prevalence of Borrelia (Spirochaetaceae) spirochetes in Texas ticks // J. Med. Entomol., 1994.- Vol. 31, № 2, — P. 297−301.
  220. Richter D., Endepols S., Ohlenbusch A., Eiffert H., Spielman A., Matuschka F.R. Genospecies diversyti of Lyme disease spirochetes in rodent reservoirs // Emerg. Infect. Dis., 1999.- Vol.5, № .- P. 291−296.
  221. Richter D., Spielman A., Komar N., Matuschka F.R. Competence of american robins as reservoir hosts for Lyme disease spirochetes // Research, 2000, — Vol. 6, — № 2, — P. 133−138.
  222. Richter D., Spielman A., Matuschka F.R. Effect of prior exposure to noninfected ticks on susceptibility of mice to Lyme disease spirochetes // Appl. Environ. Microbiol., 1998.- Vol. 64, — № 11.- P. 4596−4599.
  223. Rijpkema S., Bruinink H. Detection of Borrelia burgdorferi sensu lato by PCR in questing Ixodes ricinus larvae from the Dutch North Sea island of Ameland // Exp. Appl. Acarol., 1996.- Vol. 20, № 7- P. 381−385.
  224. Roessler W.C., Hauser U., Wilske B. Heterogeneity of BmpA (P39) among European isolates of Borrelia burgdorferi sensu lato and infuence interspecies variability on serodiagnosis // J. Clin. Microbiol., 1997,-Vol. 35, № 11.- P. 2752−2758.
  225. Sadziene A., Thomas D.D., Bundoc V.G., Holt S.C., Barbour A.G. A flagella less mutant of Borrelia burgdorferi. Structural molecular and in vitro functional characterization // J. Clin. Invest., 1991.-Vol. 88, № 1, — P. 82−92.
  226. Saint-Girons I., Gern L., Gray J.S., Guy E.C., Korenberg E., Nuttall P.A., Rijpkema S.G., Schonberg A., Stanek G., Postic D. Identification of Borrelia burgdorferi sensu lato species in Europe // Zen-tralbl. Bakteriol., 1998,-Vol. 287, № 3, — P. 190−195.
  227. Sato Y., Nakao M. Transmission of the Lyme disease spirochete, Borrelia garinii, between infected and uninfected immature Ixodespersulcatus during cofeeding on mice // J. Parasitol., 1997.- Vol. 83, № 3 P. 547−550.
  228. Schulze T.L., Tailor R.C., Tailor G.C., Bosler E.M. Lyme disease: A proposed ecological index to assess areas of risk in the northeastern United States // Am. J. Public Health, 1991.- Vol., 1991, № 6,-P. 714−718.
  229. Schwan T.G., Burgdorfer W., Garon C.F. Changes in infectivity and plasmid profile of the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi, as a result of in vitro cultivation // Infect. Immun., 1988.- Vol. 56, № .- P.1831−1836.
  230. Schwan T.G.,. Hinnebusch J., Piesman J. Change in outer surface proteins of the Lyme disease spirochete in tick and mammalian hosts //VIII nt. С ongr. L yme В orreliosis. San F rancisco. С alifornia., 1996, — Abstracts.- P. 334.
  231. Shih C.M., Chao L.L.Lyme disease in Taiwan: primary isolation of Borrelia burgdorferi-like spirochetes from rodents in the Taiwan area // Am. J. Trop. Med.Hyg., 1998, — Vol. 59, № 5.- P. 687−692.
  232. Shih C.M., Pollack R.J., Telford III S.R., Spielman A. Delayed dissemination of Lyme disease spirochetes from the site of deposition inthe skin of mice // J. Infect. Dis., 1992, — Vol. 166, № 4, — P. 827 831.
  233. Sinski E., Rijpkema S.G. Prevalence of Borrelia burgdorferi infection in Ixodes ricinus ticks at urban and suburban forest habitats. // Przegl. Epidemiol., 1997.- Vol. 51, № 4 -P. 431−435.
  234. Sokal R.R., F.J. Rholph, Biometry, 2nd. ed., Freeman, San Francisco, 1981.
  235. Sonenshine D.E. Biology of ticks // New York, Oxford, Oxford University Press, 1993.- Vol. 2.-488 p.
  236. Spielman A. Development of Lyme disease spirochetes in vector ticks // 1st Int. Conf. on Tick-borne Pathogens at the Host-Vector Interface: an Agenda for Research. Proc. and Abstr. St. Paul, MN, USA, 1992, — P. 47−53.
  237. Stepanova-Tresova G., Petko В., Stefanciova A., Nadzamova D. Occurence of Borrelia burgdorferi sensu stricto, Borrelia garinii and
  238. Borrelia afzelii in the Ixodes ricinus ticks from Eastern Slovakia // Eur. J. Epidemiol., 2000, — Vol. 16, № 2, — P. 105−109. Strle F. Lyme borreliosis in Slovenia // Int. J. Med. Microbiol. Virol.
  239. Talleklint L., Jaenson T.G.T. Maintenance by hares of European Borrelia burgdorferi in ecosystems without rodents // J. Med. Entomol., 1993,-Vol. 30, № 1, — P. 273−276.
  240. Talleklint L., Jaenson T.G.T. Relationships between Ixodes ricinus and prevalence of infection with Borrelia-like spirochetes and density of infected ticks // J. Med. Entomol., 1996, — Vol. 33, № 5, — P. 805 811.
  241. Talleklint L., Jaenson T.G.T. Transmission of Borrelia burgdorferi s.l. from mammal reservoirs to the primary vector of Lyme borreliosis, Ixodes ricinus (Acari: Ixodidae), in Sweden // J. Med. Entomol., 19 956,-Vol. 31, № 6 -P. 880−886.
  242. Talleklint L., Jaenson T.G.T., Mather T.N. Season variation in the capacity of the bank vole to infect larval ticks (Acari: Ixodidae) with the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdo’feri s.l. // J. Med. Entomol., 1993, — Vol. 30, № 4, — P. 812−815.
  243. Talleklint-Eisen L., Lane R.S. Variation in the density of questing Ixodes pacificus (Acari: Ixodidae) nymphs infected with Borrelia burgdorferi at different spatial scales in California // J. Parasitol., 1999.-Vol. 85, № 5.-P. 824−831.
  244. Thomas D. D., Calavid D., Barbour A.G. Differential association of Borrelia species with cultured neural cells // J. Infect. Dis., 1994-Vol. 169, № 2,-P. 445−448.
  245. Tian W., Moldenhauer S., Guo Y., Yu Q., Wang L., Chen M. Detection of Borrelia burgdorferi from ticks (Acari) in Hebei Province, China // J. Med.Entomol., 1998.- Vol.2, № 35.- P. 95−98.
  246. Titus R.G., Ribero J.M.C. The role of vector saliva in transmission of arthropod-borne disease // Parasitol. Today, 1990.- Vol. 6, № 5.- P. 157−160.
  247. Wallich R., Helmes C., Schaible U.E., Lobet Y., Moter S.E., Kramer M.D., Simon M.M. Evaluation of genetic divergence among Borrelia burgdorferi isolates by use of OspA, fla, HSP60, HSP70 gene probes // Infect. Immun., 1992.- Vol. 60, № 11- P. 4856−4866.
  248. Wanchung Т., Zhikun Z., Moldenhauer S., Yixiu G., Quili Y., Lina W., Mei C. Detection of Borrelia burgdorferi from ticks (Acari) in Hebei Province, China // Proc. Entomol. Society of America., 1998, — Vol. 35, № 2 P. 95−98.
  249. Wang G., van Dam A., Schwartz I., Dankert J. Molecular typing of Borrelia burgdorferi sensu lato: Taxonomic, epidemiological, and clinical implications // Clin. Microbiol. Reviews, 1999.- Vol. 12, № 4, — P. 633−653.
  250. Wang G., van Dam A.P., Dankert J. Phenotypic and genetic characterization of a novel Borrelia burgdorferi sensu lato isolate from a patient with Lyme borreliosis // J. Clin. Microbiol., 1999.- Vol. 37, № 9. P. 3025−3028.
  251. Wang G., van Dam A.P., Spanjaard L., Dankert J. Molecular typing of Borrelia burgdorferi sensu lato by randomly amplyfied polymorphic DNA fingerprinting analysis // J. Clin. Microbiol., 1998.- Vol. 36, № 3, — P. 768−776.
  252. Wang H., Nuttall P.A. Excretion of the host immunoglobulin in the tick saliva and detection of IgG-binding proteins in tick haemolymph and salivary glands // Parasitology, 1994, — Vol. 109, № 4, — P. 525 530.
  253. Weber K., Pfister H.-W. History of Lyme borreliosis in Europe // In: Aspects of Lyme borreliosis (Weber K., Burgdorfer W. eds.). Berlin, Germany, Springer-Verlag KG, 1993, — P.25−29.
  254. Wilske В., Anderson J.F., Baranton G., Barbour A.G., Hovind-Hougen K., Johnson R.C., Preac-Mursic V. Taxonomy of Borrelia spp. // Scand. J. Infect. Dis. Suppl., 1991,-Vol. 77.- P. 108−129.
  255. Wilske В., Busch U., Fingerle V., Jauris-Heipke S. Preac-Mursic V., Rossler D., Will G. Immunological and molecular variability of OspA and OspC. Implications for Borrelia vaccine development // Infections, 1996, — Vol. 24, № .- P. 208−212.
  256. Woodrum J.E., Oliver J.H. Investigation of venerial, transplacental, and contact t ransmission о f t he L yme d isease s pirochete, В orrelia burgdorferi, in Sirian hamsters // J. Parasitol. 1999, — Vol. 85, № 3.- P. 426−430.
  257. Xu Y., Kodner L., Coleman L., Johnson R. Correlation of plasmids with infectivity of Borrelia burgdorferi sensu stricto type strain B31 // Infect. Immun., 1996.- Vol. 64, № 9.- P. 3870−3876.
  258. Yabuki M., Nakao M., Fukunaga M. Genetic diversity and the absence of regional differences of Borrelia garinii as demonstrated by ospA and ospB gene sequence analysis // Microbiol. Immunol., 1999,-Vol. 43, № 12.- P. 1097−1102.
  259. Yanagihara Y., Masuzawa T. Lyme disease (Lyme borreliosis) // FEMS Immunol. Med. Microbiol., 1997, — Vol.18, №.- P. 249−261.
  260. Yano Y., Takada N., Ishiguro F. Location and ultrastructure of Borrelia japonica in naturally infected Ixodes ovatus and small mammals // Microbiol. Immunol. 1997, — Vol. 41, — № 1. P. 9−13.
  261. Younsi H., Postic D., Baranton G., Bouattour A. High prevalence of Borrelia lusitaniae in Ixodes ricinus ticks in Tunisia // Eur. J. Epidemiol., 2001, — Vol. 17,№ 1, — P. 53−56.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!