Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Динамика структурной организации хромосом трофоцитов яичников двукрылых насекомых надсемейства Oestoidea

Диссертация: Динамика структурной организации хромосом трофоцитов яичников двукрылых насекомых надсемейства Oestoidea
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Структура хромосом трофоцитов видов надсемейства Oestroidae — Calliphora erythrocephala, Protophormia terranovae, Sarcophaga sp., Parasarcophaga sp. и Lucilla sp. имеет общую организацию: соматическая конъюгация гомологов, отсутствие локального хромоцентра, рассредоточенность хромосом в пространстве ядра. Одна из хромосом видов: С. erythrocephala, P. terranovae, Parasarcophaga sp. и Lucilla sp… Читать ещё >

Динамика структурной организации хромосом трофоцитов яичников двукрылых насекомых надсемейства Oestoidea (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Модели интерфазного ядра
    • 1. 2. Современные представления о структуре интерфазного ядра
      • 1. 2. 1. Роль ядерной оболочки в морфофункциональной организации хромосом
      • 1. 2. 2. Кинетика хромосом
      • 1. 2. 3. Внутриядерная компартментализация
    • 1. 3. Организация интерфазных ядер в клетках генеративной и соматической систем Diptera
      • 1. 3. 1. Особенности оогенеза Diptera
        • 1. 3. 1. 1. Эндоредупликация в трофоцитах яичников у Diptera
      • 1. 3. 2. Пространственная организация политенных хромосом малярийных комаров рода Anopheles в ядрах соматических тканей и генеративной системы клеток
      • 1. 3. 3. Структура и взаиморасположение политенных хромосом у представителей рода Drosophila
      • 1. 3. 4. Идентификация, структура и взаиморасположение политенных хромосом Calliphora erythrocephala
    • 1. 4. Системная реорганизация генома при видообразовании
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • Глава. З РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Сравнительный анализ структурной реорганизации хромосом в трофоцитах яичников у представителей надсемейства Oestroidae
      • 3. 1. 1. Политенизация в ядрах трофоцитов Calliphora erythrocephala
      • 3. 1. 2. Политенизация в ядрах трофоцитов Protophormia terranovae
      • 3. 1. 3. Политенизация в ядрах трофоцитов Sarcophaga sp
      • 3. 1. 4. Политенизация в ядрах трофоцитов Parasarcophaga sp
      • 3. 1. 5. Политенизация в ядрах трофоцитов Lucilia sp
    • 3. 2. Структура политенных хромосом трофоцитов Calliphora erythrocephala при межпопуляционных скрещиваниях
    • 3. 3. Структура хромосомных территорий в ядрах трофоцитов Calliphora erythrocephala на различных стадиях политенизации
      • 3. 3. 1. Анализ структуры хромосомной территории хромосомы
      • 3. 3. 2. Анализ структуры хромосомной территории хромосомы
      • 3. 3. 3. FISH ДНК-библиотеки теломерного участка хромосомы
    • 3. 4. Межвидовая in situ гибридизация у представителей семейства Calliphoridae
      • 3. 4. 1. FISH ДНК-библиотеки половой хромосомы Calliphora erythrocephala с хромосомами трофоцитов Protophormia terranovae
      • 3. 4. 2. FISH ДНК-библиотеки половой хромосомы Calliphora erythrocephala с хромосомами трофоцитов Lucilia sp

Актуальность темы

.

Современные исследования в области клеточной биологии всё чаще ориентируются на изучение структуры и пространственной организации интерфазного ядра, как основы функционального состояния клетки (Singer and Green, 1997; Dernburg and Sedat, 1998; Thomas et al., 2002). Благодаря развитию новейших и высокоэффективных методов клеточной и молекулярной биологии, а также приёмов 3D, 4D микроскопирования появилась реальная возможность выяснить более тонкие закономерности структурной упорядоченности интерфазного ядра (Стегний, 1979; Lowenstein, Goddard and Sedat, 2004; Ferrai and Pombo, 2009). Первым шагом на этом пути должно стать изучение архитектуры ядра при функционально различных его состояниях и выяснение принципов реорганизации хроматина при переходе ядра из одного функционального состояния в другое. Последние исследования показывают, что именно изменения в пространственной укладке хроматина определяют клеточную дифференцировку (Yoshioka, 2009).

В ряде работ на цитологическом уровне было описано протекание политенизации в ядрах трофоцитов яичников Calliphora erythrocephala (Mg) (Bier, 1958; Ribbert, 1979; Стегний и др., 1999). Интерес к данному объекту обусловлен тем, что в процессе развития в ядрах трофоцитов яичников происходят преобразования хроматина, связанные с эндомитозом. При этом выявляются политенные хромосомы, а также ряд промежуточных стадий политенизации. На конечном этапе развития трофоцитов по прошествии нескольких эндоциклов в их ядрах формируется ретикулярная структура хроматина. Таким образом, данная клеточная система предоставляет уникальную возможность для изучения морфофункциональных особенностей укладки хромосом и использования её в качестве модели преобразования структуры интерфазного ядра.

Цели и задачи исследования.

Целью данной работы являлось изучить структурную реорганизацию хромосом в ядрах трофоцитов яичников в процессе политенизации трофоцитов у ряда представителей надсемейства Oestroidea (отряд Diptera): Calliphora erythrocephala (Mg.), Protophormia terranovae (R.-D.), Sarcophaga sp., Parasarcophaga sp. и Lucilia sp. Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести сравнительный анализ изменения структуры хромосом в процессе политенизации у представителей надсемейства Oestroidea {Diptera): Calliphora erythrocephala, Protophormia terranovae, Sarcophaga sp., Parasarcophaga sp. и Lucilia sp.].

2. Выявить отличительные особенности структуры хромосом трофоцитов у линий Calliphora erythrocephala, полученных в результате межпопуляционных скрещиваний;

3. Проанализировать, с использованием ДНК-проб, динамику хромосомных территорий в связи со сменой стадий политенизации;

4. Выявить наличие общих ДНК последовательностей в районах хромосом, характеризующихся более плотной упаковкой хроматина у представителей.

Положения, выносимые на защиту.

1. В трофоцитах яичников представителей надсемейства Oestroidae в процессе политенизации происходят последовательные изменения структуры хромосом.

2. Структура хромосом в трофоцитах яичников особей Calliphora erythrocephala, полученных в результате межпопуляционных скрещиваний, отличается от структуры хромосом исходных линий.

3. В трофоцитах СаШркога егу^госерка1а в процессе политенизации происходит направленная динамика морфологии хромосомных территорий.

4. Районы хромосом СаШркога егу№госерка1а, Рго^ркогт1а 1еггапоуае и ЬисШа яр., отличающиеся от остальной части генома более плотной упаковкой хроматина, содержат гомологичные последовательности ДНК.

Научная новизна.

Впервые выявлены общие для пяти видов надсемейства Ое^гш'б/ея {СаШркога егу1кгосерка1а, Рго1оркогтга 1еггапоуае, Sarcopkaga яр., Parasarcopkaga яр. и ЬисШа Бр.) стадии политенизации трофоцитов, протекающие при начальных этапах оогенеза в течение первых суток жизни имаго. Смена стадий политенизации происходит в следующем порядке: первичные ретикулярные ядра, политенные хромосомы, помпоновидные хромосомы, эндохромосомы, вторичные ретикулярные ядра. Таким образом, в результате проведенных исследований установлены основные морфотипы ядер трофоцитов яичников. Впервые показаны индивидуальные видовые отличия в характере реорганизации ядерной архитектуры. Сюда относятся отличия в скорости политенизацииотличия в структуре хромосом. У С. егу1кгосерка1а показана структура хромосомных территорий трофоцитов и выяснен характер её изменения в процессе политенизации и в том числе на стадии ретикулярных ядер. Новыми являются данные о наличии общих последовательностей ДНК в составе половой хромосомы С. егу1кгосерка1а, половой хромосомы Р. terranovae и плотного блока хроматина в ядрах ЬисШа зр.- эти районы характеризуются аналогичной структурой хроматина.

Теоретическая и практическая значимость.

Полученные данные об особенностях структуры и реорганизации ядерного аппарата клетки на примере генеративной системы двукрылых насекомых вносят вклад в развитие представлений о функционировании интерфазного ядра. Основные положения диссертации используются при проведении занятий со студентами и магистрантами в рамках курсов «Цитогенетика» и «Практикум по молекулярной генетике» на кафедре цитологии и генетики Биологического института Томского государственного университета.

Апробация работы.

Основные результаты диссертации обсуждены на всероссийских и международных конференциях:

— I Съезд Общества клеточной биологии и Международный симпозиум по проблемам мейоза, С-Петербург, 14−17 октября 2003;

— III Съезд ВОГиС «Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития», Москва, 6−12 июня 2004;

— XV Всероссийское совещание «Структура и функции клеточного ядра», Санкт-Петербург, 18−20 октября 2005;

— IV Международная конференция по кариосистематике беспозвоночных животных, Санкт-Петербург, 28−30 августа 2006;

— Международная молодёжная научно-методическая конференция «Проблемы молекулярной и клеточной биологии», Томск, 9−12 мая 2007.

— Международной конференции «Хромосома 2009», Новосибирск, 31 августа-6 сентября 2009.

Исследования поддержаны грантами РФФИ — «Механизмы реорганизации хромосомного аппарата в ядрах генеративной ткани при экстремальных температурных воздействиях и инбридинге» (№ 04−448 175.) — «Механизмы структурных модификаций хромосом и гетерохроматина в онтои филогенезе эукариот» (№ 07−04−1 484.) — грантами.

Президента РФ для ведущих научных школ — «Молекулярно-цитогенетическое исследование реорганизации архитектуры хромосом в онтои филогенезе. Генодиагностика видов и эколого-генетический мониторинг популяций эпидемически опасных групп двукрылых насекомых» (НШ-4283.2006.4) — «Молекулярно-цитогенетическое исследование реорганизации архитектуры хромосом в онтои филогенезе. Генодиагностика видов и эколого-генетический мониторинг популяций растений и эпидемически опасных групп двукрылых насекомых» (№НШ-2027.2008.4).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 12 работ, в том числе 3 статьи в центральных рецензируемых журналах из перечня ВАК Министерства образования и науки РФ.

Вклад автора.

Основные результаты исследований, вошедшие в диссертацию, получены лично автором. Автор принимал непосредственное участие на всех этапах научно-исследовательской работы, в обработке полученных результатов, иллюстративного материала и последующей подготовки результатов для печати. Микродиссекция и FISH районов хромосом 2, 3 и 6 Calliphora erythrocephala проводились совместно с д.б.н. Н. Б. Рубцовым и к.б.н. Т. В. Карамышевой (ЩиГ СО РАН).

Структура и объём диссертации.

Работа состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, полученных результатов и обсуждения, заключения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 135 ссылки на литературные источники. Диссертация изложена на 103 страницах.

выводы.

1. Структура хромосом трофоцитов видов надсемейства Oestroidae — Calliphora erythrocephala, Protophormia terranovae, Sarcophaga sp., Parasarcophaga sp. и Lucilla sp. имеет общую организацию: соматическая конъюгация гомологов, отсутствие локального хромоцентра, рассредоточенность хромосом в пространстве ядра. Одна из хромосом видов: С. erythrocephala, P. terranovae, Parasarcophaga sp. и Lucilla sp., характеризуется наличием асинапсиса гомологов в прицентромерной области. Другая хромосома этих видов содержит обширный пуф. Структура политенных хромосом трофоцитов особей Calliphora erythrocephala, полученных в результате межпопуляционных скрещиваний, характеризуется нарушением конъюгации гомологов.

2. Политенизация в ядрах трофоцитов у всех изученных видов происходит аналогичным образом и характеризуется сменой стадий в следующем порядке: образование первичных ретикулярных ядер, политенные хромосомы, помпоновидные хромосомы, разобщение на эндометафазные хромосомы, стадия вторичных ретикулярных ядер. Скорость протекания процесса политенизации различна у представителей надсемейства Oestroidae: у Sarcophaga sp. и Parasarcophaga sp.- за 0,5 сутоку Protophormia terranovae и Lucilla sp.- за 4 сутоку Calliphora erythrocephalaза 6 суток. Половая хромосома сохраняет свою целостную структуру на всём протяжении дифференцировки трофоцитаостальные хромосомы подвергаются процессу эндометатического разобщения. У Sarcophaga sp. и Lucilla sp., также как у Calliphora erythrocephala, разобщение политенных хромосом на хроматиды происходит асинхронно.

3. Политенизация в трофоцитах Calliphora erythrocephala сопровождается направленной динамикой структуры хромосомных территорий. Первые пять эндоциклов обеспечивают полную репликацию хроматина и формирование классических политенных хромосом. Последующий, шестой эндоцикл характеризуется укороченной синтетической фазой, в конце которого каждая удлинённая хромосома разобщается на 64 пары эндометафазных хромосом. Дальнейшие процессы дифференцировки трофоцитов приводят к формированию 64-плоидного политенного ядра с упорядоченной структурой и наличием хромосомных территорий.

4. Распределение сигналов ДНК-зондов хромосом 2 и 3 на эндохромосомах СаШркога егу^госерка1а соответствует распределению на политенных хромосомах, что подтверждает происхождение эндохромосом из политенных хромосом путем расхождения хроматид и дальнейшей их компактизации.

5. В составе половой хромосомы С. егуЖгосерка1а, половой хромосомы Р. 1еггапоше и плотного блока хроматина в ядрах ЬисШа $р. содержатся общие, отсутствующие в других участках генома, последовательности ДНКхроматин этих районов имеет аналогичную структуру: для центральной части характерно сужение и более плотная упаковка хроматинана периферии хроматин веерообразно расплетён и имеет более рыхлую структуру.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проведённых исследований получены данные об изменении структуры интерфазных ядер трофоцитов яичников у 5 видов надсемейства Oestroidae'. Calliphora erythrocephala, Protophormia terranovae, Sarcophaga sp. Parasarcophaga sp. и Lucilia sp. в процессе политенизации. Полученные данные расширяют общие представления о формировании интерфазных хромосом. Сравнение стадий структурных преобразований хроматина между близкими видами отряда Diptera позволило выявить ряд общих, эволюционно консервативных особенностей этого процесса: 1) отсутствие общего хромоцентра и разобщённость политенных хромосом в пространстве ядра, 2) их ориентированность друг относительно друга, 3) сохранение структуры половой хромосомы на всём протяжении политенизации у изученных видов. Также выявлена короткая S-фаза шестого эндоцикла политенизации, приводящая к появлению недореплицированных районов сестринских хроматид и их парному связыванию на стадии эндомитоза. В тоже время репликация в ходе предыдущих пяти эндоциклов является полной. Известно, что у Drosophila лишь 4 первых эндоцикла обеспечивают полную репликацию хромосом, тогда как S-фаза пятого эндоцикла укорочена (Dej, Spradling, 1999). В целом процесс политенизации протекает аналогично у всех изученных нами представителей надсемейства Oestroidae. На первых этапах в первичных ретикулярных ядрах формируются хромосомы, затем они компактизуются, а в дальнейшем разобщаются на эндохромосомы. Последние постепенно декомпактизуются, что в итоге приводит к формированию ретикулярной структуры ядра.

Хромосомные территории в ходе описываемых процессов политенизации претерпевают значительные структурные изменения, однако их структура вполне закономерна и предопределена. Таким образом, хромосомные территории данной клеточной системы можно классифицировать как строго определённым образом ориентированные друг относительно друга, не перекрывающиеся функциональные области ядра, содержащие индивидуальные хромосомы. При этом некодирующие участки ДНК располагаются по периферии ядра, а кодирующие преимущественно ближе к центру.

Выявлены уникальные, видоспецифичные особенности политенизации в трофоцитах изучаемых видов. Прежде всего, сюда относится скорость данного процесса. Наиболее быстрые изменения в реорганизации хроматина происходят в трофоцитах Sarcophaga и Parasarcophaga. При этом с повышением скорости эндоциклов у видов усиливается вариабельность морфотипов ядертрофоцитов в пределах одного фолликула.

Межвидовая in situ гибридизация позволила выявить наличие гомологичных ДНК-последовательностей в районах половых хромосом Calliphora и Protophormia, а так же в плотноструктурированном блоке хроматина в ретикулярных ядрах трофоцитов Lucilia, что указывает на эволюционную консервативность и, возможно, высокую значимость этих участков генома. У различных видов районы хромосом, содержащие гомологичные последовательности ДНК, имеют общий характер упаковки хроматина, так же отличающий эти районы от остальных участков генома.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.Б. Цитология оогенеза. М., 1984. — 247 с.
  2. Е.В., Барский В. Е. Электронно-микроскопическая карта политенных хромосом слюнных желез дрозофилы (D. melanogaster). -М., 1985.-86 с.
  3. М. Д. Нуклеотипическая основа пространственной упорядоченности хромосом эукориот и ее значение для эволюции генома и фенотипической изменчивости // Эволюция генома. М.5 1986. — С. 234−255.
  4. В .Я., Урываева И. В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М., 1981. — 259с.
  5. И.Э. Динамика ориентации хромосом в ядрах трофоцитов яичников у близкородственных видов подгруппы D. melanogaster и группы D. virilis II Вестник ТГУ. 2008. — № 313. — С.205−214.
  6. И.Э. Организация и дифференциальная окраска хромосом эндомитотических ядер трофоцитов Calliphora erythrocephala (Diptera: Calliphoridae) / Вассерлауф И. Э., Ананьина Т. В., Унгер М. Ф. и др. // Генетика. 2003. -Т.39, № 9. — С. 1004−1012.
  7. И.Э., Стегний В. Н. Видоспецифичные особенности архитектоники первично политенных хромосом трофоцитов у Drosophila orena, D.erecta, D. teissieri, D. yakuba // Генетика. 1992. — T.26, № 3. — С. 198−201.
  8. И.Э. Влияние инбридинга и низкой температуры на характер синапсиса хромосом в ядрах трофоцитов яичников в линиях Drosophila melanogaster/ Вассерлауф И. Э., Шелковникова Т. А., Митренина Е. Ю. и др. // Генетика. 2008. Т.44, № 8. С. 1066−1074.
  9. Е.Б. Мясная муха (Calliphora vicina) модельный объект экологических и физиологических исследований. — Л., 1984. — 272с.
  10. В.А. Пространственное расположение хромосом в клеточномядре определяет активность генов // Соросовский образовательный журнал. 2001. — Т.2, № 2. — С. 4−10.
  11. М.В. Структура интерфазного ядра и образование хромосомных перестроек у Crepis capillaris // Генетика. 1975. — Т. 11, № 7. — С. 40−54.
  12. И.Ф. Молекулярная и генетическая организация гетерохроматина в хромосомах дрозофилы // Соросовский образовательный журнал. 2000. — Т.6, № 2. — С.76−82.
  13. И.Ф. Общая и молекулярная генетика : учеб. пособие. — 2-е изд., испр. и доп. Новосибирск: Сиб. унив. изд-во, 2003. — 479с.
  14. И.Ф. Политенные хромосомы: морфология и структура. -Новосибирск., 1992.-479с.
  15. Е.В. Цитология трофобласта. JL, 1986. — 192с.
  16. Т.В. Клинический и молекулярно-цитогенетический анализ редкого случая мозаицизма по частичной моносомии Зр и частичной трисомии 10q у человека / Карамышева Т. В., Матвеева В. Г., Шорина А. Р. и др. // Генетика. 2001. — Т.37, № 3. — С.811−816.
  17. Ю.Я. Причины неполной конъюгации хромосом у гибридов Drosophila melanogaster и Drosophila simulans // Изв. АН СССР. Сер. биол., 1937. № 2. — с.459.
  18. М.А. Цитогенетические аспекты пространственной организации интерфазного ядра // Успехи современной биологии. 1990. -Т. 110, вып.2(5). — С.163−179.
  19. Н.М. Инактивация репортерных генов клонированнымигетерохроматированными повторами Drosophila melanogaster сопровождается компактизацией хроматина / Наумова Н. М., Оленкина О. М., Гвоздев В. А. // Генетика. 2003. Т.39, № 5. С.682−686.
  20. Прокофьева-Бельговская A.A. Гетерохроматические районы хромосом. -М., 1986.-430с.
  21. Н.Б. Микроклонирование и характеристика ДНК из районов прицентромерного гетерохроматина политенных хромосом Drosophila melanogaster / Рубцов Н. Б., Алексеенко A.A., Беляева Е. С. и др. // Генетика. 1999. — Т.35, № 1. — С.55−61.
  22. В.Н. Архитектоника генома, системные мутации и эволюция. Н.: Изд-во Н-ого ун-та, 1993. — 110с.
  23. В.Н. Проблема системных мутаций // Генетика. 1996. — Т.32, № 1. — С.10−18.
  24. В.Н. Реорганизация структуры интерфазных ядер в онто- и филогенезе малярийных комаров // Докл. АН СССР. 1979. — Т.249, № 5.-С. 1231.
  25. В.Н. Системная реорганизация архитектоники политенных хромосом в онто- и филогенезе малярийных комаров. 1. Различия структуры ядер соматических и генеративных тканей // Генетика. -1987а.-Т23, № 5. — С.821.
  26. В.Н., Вассерлауф И. Э. Видовая архитектоника хромосом генеративной ткани и проблемы филогенетических отношений в подгруппе melanogaster рода Drosophila {Sophophora) II Генетика. — 1994. Т. ЗО, № 4. — С.478−483.
  27. В.Н., Вассерлауф И. Э. Межвидовые отличия коориентации первично политенных хромосом трофоцитов у Drosophila melanogaster, D.simulans и D. mauritiana II Генетика. 1991. — T.27, № 7. — С.1196−1173.
  28. В.H. Взаиморасположение первичных политенных хромосом яичников у 12 видов группы «virilis» рода Drosophila (.Sophophora) / Стегний В. Н., Вассерлауф И. Э., Ананьина Т. В. // Генетика. — 1996. — Т.32, № 6. С.750−754.
  29. В.Н. Идентификация, взаиморасположение и развитие первично политенных хромосом в ядрах трофоцитов у Calliphora erythrocephala / Стегний В. Н., Вассерлауф И. Э., Ананьина Т. В. // Генетика. 1999. — Т.35, № 7. — С.912−918.
  30. В.Н., Шарахова М. В. Системная реорганизация архитектоники политенных хромосом в онто- и филогенезе малярийных комаров. Структурные особенности зон прикрепления хромосом к ядерной мембране // Генетика. 1991. — Т.27, № 5. — С. 828.
  31. СЛ. Структура ядер в слюнных железах некоторых видов Drosophila. Сравнительная кариология Drosophila II Биологический журнал 1936.-Т.5, № 2.-С.271.
  32. В.В. Эндомитоз в питающих клетках насекомых в связи с ролью материнского генотипа в организации яйца // Проблемы генетики в исследованиях В. В. Хвостовой. Новосибирск, — 1980. — С. 23−36.
  33. .Ф., Банникова C.B. Определение взаимного расположения хромосом в профазе мейоза 1 дрозофилы по ориентации негомологов // Генетика. 1993. — Т.29, № 1. — С.42−53.
  34. А.И. О структуре кариотипа и порядке расположения хромосом в интерфазном ядре // Цитология. 1971. — Т.13, № 9. — С.1157−1163.
  35. Amano Т. Chromosomal dynamics at the shh locus: limb bud-specific differential regulation of competence and active transcription / Amano Т., Sagai Т., Tanabe H. at. al. // Developmental Cell. 2008. — vol.16. — P.47−57.
  36. Angus D., Raisbeck J. A transmissible factor involved in hybrid sterility in Drosophila melanogaster 11 Genetiea. 1979. — vol.50. — P.81−87.
  37. Bates G. Microdissection of and microcloning from the short arm of human chromosomes 2 / Bates G., Wainwright В., Williamson at. al. // Mol. Cell. Biol. 1986. — vol.6. — P.3826−3830.
  38. Bennett M. Genotypic control of centromere position of parental genomes in Hordeum Secale hybrid metaphases // J. Cell Sei. 1987. — vol.8. — P.291−304.
  39. Bier K. Beziehungen zwishen Wachstumsgeschwindigkeit, endometophasischer Kontraktion und der Bildung von Riesenchromosomen in den Nahrzellen von Calliphora erythroeephala II Z. Naturforsch. 1958. Bd. 13b.-P. 80−93.
  40. Bier K. Der Karyotyp von Calliphora erythroeephala Meigen unter besonderer berucksichtungung der Nahrzellenkernchromosomen im debundelten und gepaarten zustand II Chromosoma. — 1960. vol.ll. -P.335—364.
  41. Boveri Th. Die Blastomerenkerne von Ascaris megaloeephala und die Theorie der Chromosomenindividualitat II Archiv fur Zellforschung. 1909. — vol.3. -P.181−268.
  42. Boyes J. Somatic chromosomes of higher Diptera. V. Interspecific and intraspecific variation in the Calliphoridae II Can. J. Zool. 1961. — vol.39. -P.549−570. .
  43. Boyes J., Shewell G. Cytotaxonomy of Calliphoridae {Diptera) II Genetiea.- 1975. vol.45. -P.435−488.
  44. Broers J. Dynamics of the nuclear lamina as monitored by GFP-tagged Atype lamins / Broers J., Machiels B., van Eys G. at. al. // J. Cell. Sci. -1999. -№ 112. P.3463−3475.
  45. Brown K. Nuclear structure, gene expression and development // Crit. Rev. Eukaryot. Gene Expr. 1999. — vol.9. — P.203−212.
  46. Brutlag D. Molecular arrangement of evolution of heterochromatic DNA // Ann. Rev. Genet. 1980. — vol.14. — P. 121−144.
  47. Callow R. Comments on Bennett’s model of somatic chromosome disposition // Heredity. 1985. — vol.54. — P.171−177.
  48. Carvalho C. Chromosomal G-dark bands determine the spatial organization of centromeric geterochromatin in the nucleus / Carvalho C., Pereira H., Ferreira J. at. al. // Mol. Biol. Cell. 2001. — vol.12. — P.3563 -3572.
  49. Chiarelli B., Brogger A. Superchromosomal organization and its cytogenetic consequences in the eukariota // Genetica. (Ned.). 1978. — vol.49, № 2−3. P.109−126.
  50. Coates D. s Smith D. The spatial distribution of chromosomes in metaphase neuroblast cells from subspecific F1 hybrids of the grasshopper Caledia captiva II Chromosoma. 1984. — vol.90. — P.338−348.
  51. Comings D. The rational for an ordered arrangament of chromatin in the interphase nucleus // The Amer. J. of Hum. Genet. 1968. — vol.20, № 5. -P.440−460.
  52. Cremer M. Chromosome territories of small and large chromosomes are differently distributed in human lymphocyte nuclei / Cremer M., Heintzmann R., Brero A. // Medgen. 2000. — № 12. — P.95.
  53. Cremer T., Cremer C. Chromosome territories, nuclear architecture andgene regulation in mammalian cells // Genetics. 2001. — vol.2. — P.292−301
  54. CsinkA., HenikoffS. Large-scale chromosomal movements during interphase progression in Drosophila II J. Cell Biol. 1998. — vol.143, № 1. -P.13−22.
  55. Dej K., Spradling A. The endocycle controls nurse cell polytene chromosome structure during Drosophila oogenesis // Development. 1999. -vol.126. -P.293−303.
  56. Dernburg A., Sedat J. Mapping three-dimensional chromosome architecture in situ II Methods Cell Biol. 1998. — № 53. — P. 187 -233
  57. Dernburg A. Perturbation of nuclear architecture by long -distance chromosome interactions / Dernburg A., Broman K., Fung J. at. al. // Cell. 1996. — vol.85, № 5. — P.745 -759.
  58. C., Pombo A. 3D chromatin regulation of sonic hedgehog in the limb buds // Developmental Cell. 2009. — vol.16. — P.9−11.
  59. Finch R. Hordeum and Secale mitotic genomes lie apart in a hybrid / Finch R., Smith J., Bennett M.// J. Cell Sci. 1981.-vol.52.-P. 391−403.
  60. Foisner R., Gerace L. Integral membrane proteins of the nuclear envelope interact with lamins and chromosomes, and binding is modulated by mitotic phosphorylation// Cell. 1993. -№ 73. — P. 1267−1279.
  61. Fong L. Heterozygosity for Lmna deficiency eliminates the progeria-like phenotypes in Zmpste24-deficient mice / Fong L., Ng J., Meta M. at. al. // PNAS. 2004.-№ 52.-P.18 111−18 116.
  62. Fussell C., Catharine P. The position of interphase chromosomes and late replicating DNA in centromere and telomere region of Allium cepa L. // Chromosoma. 1975. — vol.50. -P.201−210.
  63. Gerace L., Burke B. Functional organization of the nuclear envelope // Annu. Rev. Cell. Biol. 1988. — № 4. — P.335−374.
  64. Goode B. Functional cooperation between the microtubule and actin cytoskeletons / Goode B., Drubin D., Barnes G. // Curr. Opin. Cell Biol. — 2000. № 12. — P.63 -71.
  65. Gruenbaum Y. The nuclear lamina comes of age / Gruenbaum Y., Margalit A., Goldman R. at. al. // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2005. — № 6. — P.21 -31.
  66. Henning W. Heterochromatin // Chromosoma. 1999. — vol.108. — P.1−9.
  67. Heslop-Harrison J.S., Bennett M.D. Chromosome order possible implication for development // J. Embryol. Exp. Morph. — 1984. — vol.83. -P.51−73.
  68. Hochstrasser M., Sedat J. Three-dimensional organization of Drosophila melanogaster interphase nuclei. II. Chromosome spatial organization and gene regulation // J. Cell Biol. 1987. — vol.104. — P.470−483.
  69. Holaska J. The nuclear envelope, lamins and nuclear assembly / Holaska J., Wilson K., Mansharamani M. // Curr. Opin. Cell Biol. 2002. — № 14. -P.357−364.
  70. Holmer L., Worman H. Inner nuclear membrane proteins: functions and targeting // Cell. Mol. Life Sci. 2001. — № 58. — P. 1741 -1747.
  71. Hsu T. Arrangement of mouse cells / Hsu T., Cooper J., Mace M. at. al. // Chromosoma. 1971. — vol.34. -P.73−87.
  72. Jacque J., Stevenson M. The inner-nuclear-envelope protein emerin regulates HIV-1 infectivity // Nature. 2006. — vol.441. — P.581−582.
  73. King R. Ovarian development in Drosophila melanogaster. — N. Y.: Acad. Press, 1970.-270p.
  74. Koch E., King R. The origin and early differentiation of thr egg chamber of Drosophila melanogaster II J. Morphol. 1966. — vol.119, № 3. — P.283−303.
  75. Lammerding J., Hsiao J., Schulze P. Abnormal nuclear shape and impaired mechanotransduction in emerin-deficient cells / Lammerding J., Hsiao J., Schulze P. at. al. // J. Cell Biol. 2005. — № 170. — P.781−791.
  76. Liu J. Essential roles for Caenorhabditis elegans lamin gene in nuclear organization, cell cycle progression and spatial organization of nuclear pore complexes / Liu J., Ben-Shahar T., Riemer D. at. al. // Mol. Biol. Cell. -2000. -№ 11.- P.3937−3947.
  77. Machiels B. An alternative splicing product of the lamin A/C gene lacks exon 10 / Machiels B., Zorenc A., Endert J. at. al. // J. Biol. Chem. 1996. — № 271. — P.9249−9253.
  78. Malone C. UNC-84 localizes to the nuclear envelope and is required for nuclear migration and anchoring during C. elegans development / Malone C., Fixsen W., Horvitz H. at. al. // Development. 1999. — № 126.1. P.3171−3181.
  79. Malone C. The C. elegans hook protein, ZYG-12: mediates the essential attachment between the centrosome and nucleus / Malone C., Misner L., le Bot N. at. al. // Cell 2003. -№ 115.- P.825−836.
  80. Maniotis A. Demonstration of mechanical connections between integrins, cytoskeletal filaments and nucleoplasm that stabilize nuclear structure / Maniotis A., Chen C., Ingber D. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. -№ 94. — P.849−854.
  81. Mannuelidis L. Indications of centromere movement during interphase and differentiation // Ann NY Acad. Sci. 1985. — vol.450. — P.205−221.
  82. Manuelidis L., Borden J. Reproducible compartmentalization of individual chromosome domains in human CNS cells revealed by in situ hybridization and three-dimensional reconstruction // Chromosoma. 1988. -№.96. -P.397−410.
  83. Marshall W. Order and disorder in the nucleus // Curr. Biol. 2002. — № 12. -P.185−192.
  84. Marshall W. Specific interactions of chromatin with the nuclear envelope, positional determination within the nucleus in Drosophila melanogaster / Marshall W., Dernburg A., Harmon B. at. al. // Mol. Biol. Cell. 1996. -№.7. — P.825−842.
  85. Marshall W. Interphase chromosomes undergo constrained diffusional motion in living cells / Marshall W., Straight A., Marko J. at. al. // Curr. Biol. 1997. — vol.7. — P.930−939.
  86. Matarazzo M. Chromosome territory reorganization in a human disease with altered DNA methylation / Matarazzo M., Boyle S., D’Esposito M. at. al. // PNAS. -2007. vol.104, № 42. — P. 16 546−16 551.
  87. Mateos-Langerak J. • Spatially confined folding of chromatin in the interphase nucleus / Mateos-Langerak J., Bohn M., de Leeuw W. at. al. // PNAS. 2009. — vol.106, № 10. — P.3812−3817.
  88. Mazurkiewicz M, Kubrakiewicz J. Intercellular cytoplasm transport duringoogenesis of the moth midge, Tinearia alternata Say (Diptera: Psychodidae) // Folia Biol (Krakow). 2001. — vol.49. — P.205−213.
  89. Meabura K., Misteli T. Cell biology: Chromosome territories // Nature. — 2007. vol.445. — P.379−381.
  90. Mislow J. Myne-1, a spectrin repeat transmembrane protein of the myocyte inner nuclear membrane, interacts with lamin Al C / Mislow J., Kim M., Davis D. at. al.//J. Cell. Sei.-2002.-№ 115.-P.61−70.
  91. Murray A., Davies H. Three-dimensional reconstruction of the chromatin bodies in the nuclei of mature erythrocytes from the newt Triturus cristatus: the number of nuclear envelope-attachment sites // J. Cell. Sei. 1979. -№ 35. -P.59 -66.
  92. Padmakumar V. Karakesisoglou I. Enaptin, a giant actin-binding protein, is an element of the nuclear membrane and the actin cytoskeleton / Padmakumar V., Abraham S., Braune S. at. al. // Exp. Cell Res. 2004. -№ 295. -P.330 -339.
  93. Painter T., Reindorp E. Endomitosis in the nurce cells of the ovary of Drosophila melanogaster II Chromosoma. 1939. — vol.1. — P.276−283.
  94. Pardue M., Gall J. Chromosomal localization of mouse sattelite DNA // Science. 1970. — vol.170. -P.1356−1358.
  95. Park P., De Boni U. Dynamics of structure-function relationships in interphase nuclei //Life Sciences. 1999. — vol. 64, № 19. -P1703−1718.
  96. Pinkel D. Cytogenetic analysis using quantitative, high-sensitivity, fluorescence hybridization / Pinkel D., Straume T., Gray J. // Proc. Nat. Acad. Sei. USA.- 1986. vol.83. — P.2934−2938.
  97. Ponelies N. Telomeric sequences derived from laser-microdissected polytene chromosomes / Ponelies N., Bautz E.K., Monajembashi S. at. al. // Chromosoma. 1989.-vol.98.-P.351−357.
  98. Rabl C. Uber Zellteilung // Morphologisches Jahrbuch. 1885. — № 10. -P.214−330.
  99. Razin S. Chromatin domains and territories: flexibly rigid / Razin S., Petrov
  100. A., Hair A. at. al. // Crit. Rev. Eukaryot. Gene Expr. 2004. — № 14. -P.79−88.
  101. Razin S. Chromatin domains and territories: flexibly rigid / Razin S., Petrov A., Hair A. at. al. // Crit. Rev. Eukaryot. Gene Expr. 2004. — № 14. -P.79−88.
  102. Ribbert D. Chromosomes and puffing in experimentally induced polytene chromosomes of Calliphora erythrocephala II Chromosoma (Berl.). 1979. — vol.74.-P.269−298.
  103. Robertson F. Studies in quantitative inheritance X. Genetic variation of ovary size in Drosophila I I J. Genetics. 1957. — № 55. — P.410−427.
  104. Rohme D. Molecular clones of the mouse t complex derived from microdissected metaphase chromosomes / Rohme D., Fox H., Hermann B. at. al. // Cell. 1984. — vol.36. — P.783−788.
  105. Rubtsov N. Chromosomal origin and distribution of DNA from the homogeneously staining regions in COLO 320-HSP cells / Rubtsov N., Junker K., von Eggelin F. at. al. // Medgen. 1995. — vol.7. — P.55.
  106. Rubtsov N. Chromosome microdissection is a universal tool for studies of mammalian chromosome rearrangements / Rubtsov N., Sablina O., Ivanova I. at. al. //Medgen. 1998. — vol.10. -P.149.
  107. Saitoh Y., Ikeda J. Technical viewpoint. Chromosome microdissektion and microcloning // Chromosome Res. 1997. — vol.5. — P.77−80.
  108. Scalenghe F. Microdissection and cloning of DNA from a specific region of
  109. Drosophila melanogaster politene chromosomes / Scalenghe F., Turco E., Edstrom J-E. // Chromosoma. 1981. — vol.82. — P.205−216.
  110. Shelby R. Dynamic elastic behaviour of a-sattelite DNA domains visualized in situ in living human cells / Shelby R., Hahn K., Sullivan K. // J Cell Biol 1996. — vol.135. -P.545−557.
  111. Singer H., Green M.R. Compartmentalization of eukaryotic gene expression: causes and effects // Cell. — 1997. vol.91. — P.291−294.
  112. Sokolova M. A redescription of the morphology of mosquito (Diptera: Culicidae) ovarioles during vitellogenesis // Bull. Soc. Vector Ecol. 1994. -№ 19. -P.53−68.
  113. Spradling A. Developmental genetics of oogenesis. In The Development of Drosophila melanogaster / Под ред. Bate M, Martinez-Arias A. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1993. — 70p.
  114. Starr D., Han M. ANChors away: an actin based mechanism of nuclear positioning // J. Cell. Sci. 2003. — № 116. — P.211−216.
  115. Starr D., Han M. Role of ANC-1 in tethering nuclei to the actin cytoskeleton // Science. 2002. — № 298. — P.406−409.
  116. Starr D. unc-83 encodes a novel component of the nuclear envelope and is essential for proper nuclear migration / Starr D., Hermann G., Malone C. at. al. // Development. 2001. — № 128. — P.5039−5050.
  117. Swedlow J., Lamond A. Nuclear dynamics: where genes are how they got there // Genome biology. -2001. vol.2, № 3. -P.0002.1−0002.7.
  118. Szklarzewicz Т., Bilinski S. Structure of ovaries in ensign scale insects, the most primitive representatives of Coccomorpha {Insecta, Hemiptera) // Journal of Morphology. 1995. — vol.224. — P.23−29.
  119. Thomas C. Engineering gene expression and protein synthesis by modulation of nuclear shape / Thomas C., Collier J., Sfeir C. at. al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. -№ 99. — P. 1972−1977.
  120. Wagenaar E. B. End-to-end chromosome attachments in mitotic interphase and their possible significance to meiotic chromosome pairing //
  121. Chromosoma. 1969. — № 26. — P.410−426.
  122. Ye Q., Worman H. Interaction between an integral protein of the nuclear envelope inner membrane and human chromodomain proteins homologous to Drosophila HP1 // J. Biol. Chem. 1996. -№ 271. — P. 14 653−14 656.
  123. Yoshioka H. Dynamic nuclear organization of constitutive heterochromatin during fetal male germ cell development in mice / Yoshioka H., McCarrey J., Yamazaki Y. // Biology of Reproduction. 2009. — № 4. — P.804−812.
  124. Zhang Q, Nesprins: a novel family of spectrin- repeat-containing proteins that localize to the nuclear membrane in multiple tissues / Zhang Q., Skepper J., Yang F. at. al. // J. Cell. Sci. 2001. — № 114. — P.4485−4498.
  125. Zhen Y. NUANCE, a giant protein connecting the nucleus and actin cytoskeleton / Zhen Y., Libotte T., Munck M. at. al. // J. Cell. Sci. 2002. — № 115. — P.3207−3222.
  126. Zink D., Cremer T. Chromosome dynamics in nuclei of living cells // Current Biology. 1998. — vol.8, № 9. — P.321−324.
  127. Изучение пространственной организации хроматина в ядрах трофоцитов в ходе эндомитотического цикла у мух Calliphora erythrocephala / Т. В. Ананьина, А. Е. Ведерников и др. // Цитология. 2003. — Т.45, № 9. -С.848.
  128. Визуализация хромосомных территорий в интерфазных ядрах трофоцитов яичников Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Callihoridae) / Т. В. Ананьина, А. Е. Ведерников и др. // Генетика. 2005. — Т.41, № 10. -С.1350−1357.
  129. Особенности гибридизации ДНК-зондов с ДНК политенных хромосом трофоцитов яичников Calliphora erythrocephala (Callihoridae: Diptera) (CISS-гибридизация) / Т. В. Ананьина, А. Е. Ведерников и др. // Цитология. 2005. — Т.47, № 9. — С.790−791.
  130. Анализ гомологии половых хромосом представителей семейства Calliphoridae / А. Е. Ведерников и др. // Материалы междунар. конф. «Хромосома 2009». Новосибирск, 31 августа-6 сентября 2009 г. -Новосибирск, 2009. С.124−125.
  131. Развитие овариол и структур цитоскелета трофоцитов Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Calliphoridae) / Т. В. Ананьина, А. Е. Ведерников и др. // Цитология. 2010. — Т.52, № 2. — С. 110−116.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!