Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

БИОДЕСТРУКЦИЯ ЗУБНЫХ ПРОТЕЗОВ ИЗ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ (экспериментальное исследование

Диссертация: БИОДЕСТРУКЦИЯ ЗУБНЫХ ПРОТЕЗОВ ИЗ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ (экспериментальное исследование
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для оценки биоповреждений полимерных стоматологических материалов использование метода сканирующей электронной микроскопии является оптимальным. На основе этой оценки возможна экспертиза новых материалов с точки зрения их устойчивости к биодеструкции и разработка профилактических мер по устранению негативного влияния биодеструкции. 6. Применение ультразвуковой обработки полимерных зубопротезных… Читать ещё >

БИОДЕСТРУКЦИЯ ЗУБНЫХ ПРОТЕЗОВ ИЗ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ (экспериментальное исследование (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Введение
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Полимерные материалы, применяемые для изготовления зубных протезов
    • 1. 2. Биодеструкция пластмасс
    • 1. 3. Оценка свойств искусственных материалов зубных протезов с помощью электронно-микроскопических методов 1 о 1 о
    • 1. 4. Микрофлора полости рта в норме и при различных инфекционно-воспалительных заболеваниях
    • 1. 5. Биопленки — особая форма существования микроорганизмов
      • 1. 5. 1. Характеристика биопленки
      • 1. 5. 2. Динамика образования биопленки
      • 1. 5. 3. Биопленка на зубах (зубная бляшка)
    • 1. 6. Роль биопленок в развитии биодеструкции зуботехнических материалов
    • 1. 7. Проблема профилактики образования биопленок и их разрушения, как стратегия борьбы с биоповреждениями в 33 ортопедической стоматологии
  • Глава 2. Материалы и методы исследований
    • 2. 1. Характеристика исследованных конструкционных материалов. Методика подготовки образцов зубопротезных пластмасс
    • 2. 2. Методика подготовки клинических изолятов культур микроорганизмов
    • 2. 3. Экспериментальная модель «биопленка — базисные пластмассы»
    • 2. 4. Оценка структурных характеристик образцов зубопротезных пластмасс с помощью методов электронной микроскопии
      • 2. 4. 1. Метод сканирующей электронной микроскопии
      • 2. 4. 2. Методика исследования подповерхностной структуры образцов посредством резки ионным пучком в двулучевом сканирующем микроскопе Quanta 200 3D
      • 2. 4. 3. Изучение химического состава зубопротезных пластмасс с помощью рентгеновского микроструктурного анализа
      • 2. 4. 4. Метод трансмиссионной электронной микроскопии
    • 2. 5. Способ ультразвуковой эрадикации микроорганизмов с поверхности полимерных пластмасс
    • 2. 6. Применение программы «Scandium» для оценки площади обрастания биопленкой образцов зубопротезных пластмасс. Методика статистического анализа
  • Глава 3. Результаты собственных исследований

3.1. Сравнительная характеристика структуры интактных поверхностей пластмассовых образцов (гладкой, шероховатой поверхности, поверхностей спила и скола), изготовленных из полиуретана («Денталур») и полиметилметакрилатных базисных пластмасс — «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» 49

3.2. Результаты исследования химического состава образцов пластмасс методом рентгеновского микроструктурного анализа 53

3.3. Структура поверхности образцов пластмасс, инкубированных в питательном ЬВ-бульоне и в фиксирующих растворах 57

3.4. Результаты исследования процессов колонизации грамположительными {Staphylococcus aureus, Enterococcus faecium), грамотрицательными бактериями {Pseudomonas aeruginosa) и грибом {Candida albicans) образцов базисных пластмасс

3.4.1. Результаты исследований процессов колонизации поверхности полиуретана «Денталур» Staphylococcus aureus в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца. 60

3.4.2. Результаты исследований процессов колонизации поверхности пластмасс «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» Staphylococcus aureus в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца 63

3.4.3. Результаты исследований процессов колонизации поверхности полиуретана «Денталур» Enterococcus faecium в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца. 65

3.4.4. Результаты исследований процессов колонизации поверхности пластмасс «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» Enterococcus faecium в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца 67

3.4.5. Результаты исследований процессов колонизации поверхности полиуретана «Денталур» Pseudomonas aeruginosa в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца 68

3.4.6. Результаты исследований процессов колонизации поверхности пластмасс «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» Pseudomonas aeruginosa в динамике, на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца 73

3.4.7. Результаты исследований процессов колонизации поверхности полиуретана «Денталур» Candida albicans в динамике на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца 77

3.4.8. Результаты исследований процессов колонизации поверхности пластмасс «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» Candida albicans в динамике на сроках инкубации 24, 48 часов, 7,14 суток и 1,5 месяца. 84

3.5. Сравнительный анализ процесса формирования биопленки на поверхности исследованных зубопротезных пластмасс грамотрицательными {Pseudomonas aueroginosa), грамположительными бактериями {Staphylococcus aureus) и грибами Candida albicans 87

3.6. Результаты изучения образцов полиуретана «Денталур» и «Фторакс» (интактных и инкубированных со Staphylococcus aureus) при резке ионным (галлиевым) лучом в сканирующем электронном микроскопе Quanta 200 3D 90

3.7. Сравнительный анализ изменений структуры поверхности зубопротезных пластмасс при бактериальной и грибковой колонизации 93

3.8. Оценка площади обрастания биопленкой поверхности зубопротезных пластмасс с помощью программы «Scandium» 110

3.9. Морфофункциональная характеристика Staphylococcus aureus и Pseudomonas auerogenosa после взаимодействия с пластмассами 120

3.10. Ультразвуковая обработка съемных пластиночных протезов, как способ профилактики образования биопленок 122

Глава 4. Обсуждение результатов исследования 128

Актуальность проблемы.

Современные технологии и жесткий контроль за применяемыми в ортопедической стоматологии искусственными материалами существенно улучшили качество протезирования.

Материалы, используемые для протезирования, должны обладать механической износостойкостью, устойчивостью к физико-химическим факторам воздействия, быть биосовместимыми и безопасными для организма человека. Совокупность этих свойств обеспечивает долговечность протезов, улучшает качество жизни пациентов [36].

Помимо перечисленных требований к искусственным материалам для протезирования необходимо учитывать характер их взаимодействия с микроорганизмами полости рта [2].

В проблеме взаимодействия микроорганизмов полости рта с зуботехническими материалами можно выделить несколько важных аспектов:

— колонизация бактерий на поверхности искусственных материалов;

— разрушение пластмасс и металлических сплавов под воздействием микроорганизмов;

— формирование дисбиоза и очагов хронической инфекции в ротовой полости;

— образование токсических для организма человека продуктов в результате разрушения микроорганизмами искусственных материаловразработка эффективных способов борьбы с патогенными микроорганизмами, колонизирующими искусственные материалы, (поиск резистентных к микробной колонизации материалов, профилактических и лечебных препаратов);

— разработка способов эрадикации микроорганизмов с поверхности искусственных съемных протезов при их эксплуатации.

— 7 В перечне проблем, касающихся взаимодействия микроорганизмов ротовой полости с искусственными материалами, наименее изучено влияние микроорганизмов на полимерные компоненты протезов. Для характеристики разрушающего воздействия микроорганизмов на полимерные материалы принят термин «биодеструкция» [115].

Фундаментальной основой для изучения процессов биодеструкции является применение совокупности разных микроскопических методов (световой, люминесцентной, сканирующей и трансмиссионной электронной микроскопии).

Методами микроскопии возможен одновременный анализ структуры зуботехнических материалов и колонизирующих их микроорганизмов. Микроскопический контроль является наиболее объективным для оценки действия антимикробных препаратов, используемых для обработки поверхности различных материалов, применяемых для изготовления стоматологических протезов.

Цель работы — с помощью электронно-микроскопических методов изучить биодеструкцию базисных пластмасс, используемых для изготовления съемных зубных протезов, и предложить способы ее профилактики.

Задачи исследования:

1. Провести анализ поверхности образцов базисных пластмасс при различных способах их обработки.

2. Изучить в сравнительном аспекте динамику колонизации микроорганизмами полости рта образцов полиуретановых и акриловых базисов зубных протезов и дать количественную оценку этого процесса.

3. Проанализировать характер изменений поверхностей образцов зубных протезов из различных базисных пластмасс при бактериальной и грибковой колонизации.

4. Выявить очаги персистенции микроорганизмов в образцах пластмассовых базисов зубных протезов.

— 85. Обосновать целесообразность применения сканирующей электронной микроскопии для оценки качества стоматологических базисных пластмасс съемных зубных протезов и степени их биодеструктивных изменений.

6. Предложить способы эрадикации микроорганизмов, локализованных на пластмассовых базисах зубных протезов.

Научная новизна.

Впервые с помощью микроскопических методов исследования выявлена взаимосвязь между этапами бактериальной колонизации и структурными изменениями поверхности полиуретановой и полиметилметакрилатных пластмасс съемных зубных протезов.

Убедительно доказана более высокая степень деструктивных изменений образцов базисной пластмассы «Денталур» на основе полиуретана по сравнению с базисными пластмассами на основе полиметилметакрилата «Фторакс», «Пластмасса бесцветная».

Определена роль биопленок, формирующихся на поверхности пластмассовых базисов зубных протезов, как очагов персистенции микроорганизмов, и разработаны подходы для их эрадикации.

Показано, что образование глубоких дефектов в зубопротезных пластмассах в результате взаимодействия с микроорганизмами-биодеструкторами приводит к формированию очагов персистенции патогенной микрофлоры в виде биопленки внутри материала пластмасс, представляя реальную угрозу как источник инфекции и являясь причиной дисбиоза в ротовой полости.

Впервые с применением режима резки ионным пучком при исследовании в сканирующем электронном микроскопе Quanta 200 3D изучена структура подповерхностного слоя образцов базисных пластмасс и выявлена распространенность биодеструктивных изменений в акрилатах и полиуретане.

Разработаны подходы для детекции и оценки бактериальной колонизации полимерных зуботехнических материалов и оценки эффективности способов эрадикации биопленок с их поверхности с помощью СЭМ.

Положения, выносимые на защиту.

1. Методами сканирующей электронной микроскопии установлено явление биодеструкции полимерных зубопротезных материалов с образованием дефектов на их поверхности и в подповерхностном слое под влиянием пародонтопатогенных микроорганизмов Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa и Candida albicans.

2. Полиуретановый базисный материал «Денталур» по устойчивости к биодеструкции не имеет преимуществ перед акриловыми базисными пластмассами «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная».

3. Наиболее уязвимыми для микробной колонизации являются участки образцов полимерных зубных протезов, имеющие механические повреждения поверхности, образуемые при их клинической коррекции с укорочением границ или с истончением базиса.

4. Биоповреждающий потенциал бактерий реализуется при формировании ими биопленки, а для грибов Candida albicans — на этапе адгезии хламидоспор к поверхности образцов съемных пластмассовых протезов.

Практическая значимость.

Выявлена высокая информативность метода сканирующей электронной микроскопии в оценке качества полимерных зубопротезных материалов.

Показана необходимость проведения экспертизы устойчивости базисных стоматологических пластмасс к микробной колонизации.

Показано, что профилактика биодеструктивных изменений зубопротезных полимерных материалов должна проводиться до образования на их поверхностях бактериальной биопленки, а для грибов рода Candida albicans уже на этапе адгезии хламидоспор.

Результаты проведенных исследований свидетельствуют, что ультразвуковая обработка образцов съемных зубных протезов является эффективным способом борьбы с биопленками и соответственно с биодеструкцией зубопротезных пластмасс;

Личный вклад автора.

Автором лично проведены все экспериментальные исследования, включая работу на двулучевом сканирующем электронном микроскопе нового поколения Quanta 200 3D (FEI Company USA), на трансмиссионном электронном микроскопе JEOL 100 В (Japan), подготовлены экспериментальные образцы для исследований для количественной оценки биообрастания образцов зубопротезных пластмасс, адаптирована и применена компьютерная программа для измерений «Scandium» (Olympus Japan), проведена статистическая обработка полученных результатов, сформулированы основные положения и выводы диссертации, написаны статьи, диссертация и автореферат.

— 141 -Выводы.

1. Современными методами электронной микроскопии в эксперименте убедительно доказано явление биодеструкции образцов съемных зубных протезов из пластмасс: «Денталур», «Фторакс», «Пластмасса бесцветная» под действием микроорганизмов полости рта {Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans).

2. Динамика колонизации образцов базисных зубных протезов на ранних сроках максимальна для грибов Candida albicans, минимальна для Enterococcus faecium.

3. Степень микробного обрастания образцов съемных зубных протезов к 1,5 мес инкубации практически одинакова у Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa и гриба Candida albicans. Enterococcus faecium на этом сроке инкубации выявляется на поверхности образцов в виде единичных микроколоний.

4. Степень деструкции поверхности полированных образцов базисов пластмассовых зубных протезов зависит от срока инкубации, вида микроорганизма, химической природы базисной пластмассы.

5. Данные о внутреннем строении образцов базисных пластмасс, полученные с помощью резки ионным пучком в сканирующем электронном микроскопе Quanta 200 3D — свидетельствуют о распространении биодеструкции с поверхности материала вглубьв подповерхностный слой.

6. Очаги персистенции микроорганизмов локализуются в дефектах поверхности (трещинах и кавернах) образцов базисов зубных протезов, а десквамированные частицы полимера с локализованными на них биоплёнками могут приводить к диссеминации инфекционных агентов.

7. Применение сканирующего электронного микроскопа Quanta 200 3D в комплексе с трансмиссионным электронным микроскопом Jeol 100 В позволило выявить поглощение десквамационных частиц базисных пластмасс Staphylococcus aureus. 8. Установлено, что применение ультразвуковой очистки образцов базисов зубных протезов является эффективным способом профилактики колонизации их микроорганизмами и, соответственно, их биодеструкции.

Практические рекомендации:

1. Выявленная биодеструкция образцов базисных стоматологических пластмасс для съемных зубных протезов «Денталур», «Фторакс» «Пластмасса бесцветная» требует тщательного соблюдения разработанных методов очистки зубных протезов в процессе их использования. Особенно тщательно следует контролировать эффективность ухода за зубочелюстными протезами и протезами обтураторами из полиуретана, так как в диссертации убедительно показано разрушение пластмассовых образцов и поглощение частиц полиуретана стафилококками Staphylococcus aureus.

2. Для профилактики био деструкции необходимо тщательно полировать поверхность базиса протеза, в том числе и после проведенного сошлифовывания границ готового протеза при припасовке или коррекции.

3. Не выявлено преимуществ базисной пластмассы на основе полиуретана «Денталур» перед акриловыми пластмассами «Фторакс» и «Пластмасса бесцветная» по сопротивлению к биодеструкции, что не позволяет отдавать ей предпочтение при протезировании больных с первичными и вторичными иммунодефицитными состояниями.

4. Применение режима резки ионным пучком при исследовании в сканирующих микроскопах нового поколения (типа Quanta 200 3D, FEI Company, USA) позволяет изучать структуру подповерхностного слоя и глубину распространения биодеструктивных изменений различных полимерных зубопротезных материалов.

5. Для оценки биоповреждений полимерных стоматологических материалов использование метода сканирующей электронной микроскопии является оптимальным. На основе этой оценки возможна экспертиза новых материалов с точки зрения их устойчивости к биодеструкции и разработка профилактических мер по устранению негативного влияния биодеструкции. 6. Применение ультразвуковой обработки полимерных зубопротезных материалов является перспективным способом профилактики биодеструкции и сопряженных с нею негативных последствий.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Кац J1.H., Павлова И. Б // Атлас анатомии бактерий, патогенных для человека и животных М.: Медицина, 1972.-183 с.
  2. B.C., Арутюнов С. Д., Шулакова В. В. // Инфекционные воспалительные заболевания челюстно-лицевой области Медицинское информационное агентство, 2004.184 стр.
  3. Ю.М., Огородников М. Ю. Съемные зубные протезы с базисом из полиуретана //Учебное пособие для врачей стоматологов-ортопедов и зубных техников. Москва. 2009 г. с. 25.
  4. A.C., Царев В. Н., Седракян А. Н., Сулемова P. X., Комов Е. В. Сравнительный анализ адгезии микробной флоры рта к базисным материалам зубных протезов на основе полиуретана и акриловых пластмасс // Пародонтология. 2008. т. 49. № 4. с. 3−8.
  5. Т. М. Дефекты зубных рядов у детей и сравнительная оценка различных методик протезирования.// Автореф. дисс. канд.наук. 2009. 25 с.
  6. Г. А., Гальперин В. Б., Титов Б. П. Обезвреживание и утилизация отходов в производстве пластмасс// JI., Химия, 1982, 264 с.
  7. Ван Нурт Ричард. // Основы стоматологического материаловедения. Elsvier Science Limited, 2002.- с.221−230.
  8. А.Г. Микробная флора полости рта: пути заселения, распространения и распределения по биотопам полости рта в норме и патологии // Стоматологическое обозрение, № 1, 2004, С 7−10.
  9. Е.И., Оксман И. М. Ортопедическая стоматология // М. Медицина, 1979, 460 с.
  10. М. М. Батовский В.Н., Шарчилев В. И. Нападов М.А. Основы материаловедения по стоматологии // М.: Медицина. 1969. 295 с.
  11. Л.Д. Аллергические заболевания в ортопедической стоматологии //М. Медицина, 1988.-160 с.
  12. Л.Д. Аллергические и токсикохимические стоматиты, обусловленные материалами зубных протезов.// Методическое пособие для врачей стоматологов. М. 2000, 17 с.
  13. Л.Д., Руденко П. Р. Исследование изнашивания стоматологических материалов // Стоматология. 1986. № 1. — с. 1315.
  14. ГОСТ Р 51 830−2001 Оценка биологического действия медицинских стоматологических материалов и изделий. Классификация и приготовление проб.
  15. А. И., Овчинникова В. В. Частота выявления различных представителей пародонтопатогенной микрофлоры при пародонтите разной степени тяжести// Стоматология. 2009 т.88, № 3, с.34−37
  16. А.И., Синицын В. Д. Зуботехническое материаловедение // М. Медицина, 1986.-208с.
  17. С.И. Клиническая и лабораторная оценка съемных пластиночных протезов, изготовленных прессованием и центробежным литьем: Автореф. дисс. канд. мед. наук. Калинин 1987- 24 с.
  18. Я.В., Макеев В. Ф., Корень В. Н. и др. Влияние съёмных пластиночных протезов и материалов, из которых они изготовлены, на организм экспериментальных животных и человека ///Львов, мед. Ин-т. Львов, 1989. 28 с.
  19. О.В. Влияние биодеструкции съемных пластиночных протезов из различных акриловых пластмасс на ткани ротовой полости// Авторефер. дисс. канд. мед. наук. Москва 2005, 25 с.
  20. Земская Е. А, Сыдыгалиев К. И. Состояние местных защитных факторов полости рта у больных, пользующихся съемными протезами нз акриловых полимеров// М.: Медицина, 1982. Вып. № 5. с.60−63.
  21. Т.С., Романова Ю. М., Гинцбург A.JI. Биопленки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина: феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития. // Генетика. 2004. т.40. № 11. с. 1445−1456.
  22. Л.П., Кириллова Е. В., Царев В. Н., Артемова В.О// МГМСУ «Стоматология детского возраста и профилактика» 2009. № 4, с.86−94
  23. В.Н., Миргазизов М. З. Ортопедическая стоматология // М. Медицина, 2001 г. 624 с
  24. Курдиш И. К. Закономерности взаимодействия микроорганизмов с твердыми материалами // Мжробюл. журн., 2001. т.63. — № 6. — С. 7188.
  25. Р.Д., М.С. Лантц, Р. А. Берне, Д. Д. Лебланк Микробиология и иммунология для стоматологов пер. с англ. Под ред. Леонтьева В. К. // Москва. Практическая медицина. 2010, 504 с.
  26. И. Ю., Серебров Д. В., Воронов А. П., Царев В. Н. Адгезия микрофлоры полости рта к стоматологическим полимерам холодного отверждения // Российский стоматологический журнал. 2003. N5.
  27. B.C., Липницкий Ф. И. Очкурова О.М. Кандидоз ротовой полости// Проблемы медицинской микологии. 2003.Т.5. №.1 с.21−24.
  28. Ю. С., Керча Ю. Ю., Сергеева Л. М. Структура и свойства полиуретанов // Киев: «Наукова думка», 1970, 79 с.
  29. П.Ю. Сравнительная оценка эксплуатационных и физико-механических свойств акриловых пластмасс холодного отверждения для перебазировки и починки съемных зубных протезов.//Российский стоматологический журнал. 2006, № 3. — с. 12−13.
  30. А.Н., Чеботарь И. В. Стафилококковые биопленки: структура, регуляция, отторжение// Ж. микробиол. 2011. № 1. с. 101 108
  31. Международный стандарт ИСО № 10 993 разделы I-XII «Биологические методы оценки стоматологических материалов», 2007 г.
  32. М. Ю. Улучшение свойств базисных материалов, использующихся в ортопедической стоматологии: этапы развития, совершенствования и перспективные направления// Стоматология. 2004. т. 83, N6. с. 69−74.
  33. А.Н. Итоги науки и техники. // М.Химия.1976. т. 10 с. 204
  34. Г. А. Морфологические и биохимические аспекты биодеструкции полимеров. Киев: Наукова Думка, 1986. 152 с.
  35. С.А., Гумаргалиева К. З., Заиков Г. Е. Биоповреждения материалов и изделий техники // в кн. Горение, деструкция и стабилизация полимеров, под ред. Заикова Г. Е. 2008 г. 422 с
  36. Р. X. Сравнительная характеристика динамики микробной колонизации микробной колонизации съемных зубных протезов с базисами из полиуретана и акриловых пластмасс// Авторефер. Дисс.канд.мед.наук. 2008, 24 с.
  37. К. Клинико-лабораторное исследование нового базисного материала «Бакрил» //Автореф. дисс. канд. мед. наук. М., 1982, 23с.
  38. М.А., Шипунова О. В., Мошкевич С. А. Деструкция стоматологических полимеров и ее роль в этиологии протезных стоматитов// Стоматология 1989- 1: 68−70
  39. В. Н., Мишнев Л. М., Жулев Е. Н. Ортопедическая стоматология. Прикладное материаловедение под ред. Проф Трезубова
  40. B.Н. // 5-е изд. испр. и доп. Издательство: М. МЕДпресс-информ. 2008 г. 384 с.
  41. В.Н., Штейнгарт М. З., Машнев Л.М.
  42. Ортопедическое стоматологическое материаловедение и использование его достижений в клинической практике// М., 1994.1. C. 90−91.
  43. P.C., Газизов A.A., Газизов А. Ш. Увеличение охвата продуктивных пластов воздействием. Москва ОАО ВНИИОЭНГ 2003 с. 566
  44. В. Н. Микробиология, вирусология и иммунология, под ред. В. Н. Царева// М.: Практическая медицина: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 540 е., 40. л. ил.
  45. Энциклопедии полимеров, т. 1 — 3, гл. ред. В. А. Каргин, М., 1972 — 1977- 235 с.
  46. Н.А., Курочкина А. Ю. Контроль биопленки в современной стратегии профилактики и лечения стоматологических заболеваний // Стоматология 3, 2009, с. 77−81
  47. В. Д., Бунова Г. 3. Методы контроля и анализа веществ: учеб. Пособие // М-во образования и науки Рос. Федерации, Самар. гос. аэрокосм, ун-т им. С. П. Королева. Самара: СГАУ, 2004. — 63 с.
  48. Г. Г. Экологическая биотехнология в нефтегазодобывающей и нефтеперерабатывающей промышленности // Учеб. пособие. -Уфа: Изд-во УГНТУ, 2001. 214 с.
  49. Aamer A. S., Hasan F., Hameed A., Ahmed S. Biological degradation of plastics: A comprehensive review Biotechnology Advans. 2008. № 26.p. 246−265.
  50. Aas A. J. Paster, Lauren N. Stokes, lngar Olsen, and Floyd E. Dewhirst. Defining the Normal Bacterial Flora of the Oral Cavity //Journal of Clinical Microbiology. 2005, Vol.43. N11. p.5721−5732 .
  51. Arbuthnott J.P., Smith C.J. Bacterial adhesion by host/ pathogen interaction in animals // Adhesion of microorganisms to surface. London- New York -1979. p. 165−198.
  52. Baytekin H. T., Patashinski A. Z., Branicki M., Baytekin B., Soh S., Grzybowski B. A.. The Mosaic of Surface Charge in Contact Electrification // Science. 2011. V. 333. p. 308−312.
  53. Capitelli F., Sorlini C. Microorganisms attack synthetic polymers in items representing our cultural heritage//Appl. Environ. Microbiol. 2008. V .74. N.3. p.564−569.
  54. Chaturvedi T.P. An overview of the corrosion aspect of dental implants (titanium and its alloys) // Indian J. Dent. Res. 2009. V.20, N1, p. 91−98.
  55. , A. «Slime City», New Scientist 15 (2045), pp 32−36 (August 31, 1996).
  56. Costerton J.W., Stewart P. S., Greenberg E.P. Bacterial biofilm: a common cause of persistent infections // Sciens. 1999, 284. p. 318−322.
  57. Cortizo C., Lorenzo M.F. Evalution of early stages of oral Streptococci biofilm growth by optical microscopy// Effect of antimicrobial agents .2007. Comm. Current Res.a. Educ. Topics a. Trends in Appl. Microbiol. Mendez-Vilas (Ed.).
  58. Da Rocha S.S., Bernardi A.C.A., Pizzoloto A.C., Adabo G. L, Pizzoloto E.L. Streptococcus mutans attachment on a cast titanium surface.// Mat. Res. 2009.V.12, N1, p.1−7
  59. Danese P. N., Pratt L. A., Kolter R. Exopolysaccharide production is required for development of Escherichia coli K-12 biofilm architecture // J. Bacteriology March 2000, Jun-182 (12) 3593−6.
  60. Davey M. E., O’Tooi G. A. Microbial biofilm: from ecology to molecular genetics // Microbiol, a. Mol. Biol. Rev. 2000. V.64. N4. p.847−867.
  61. Donlan R. M. Biofilms: Microbial life on surfaces // Emerg. Infect Dis. 2002. V. 8. p. 1−20.
  62. Dreeszen, P.H. Biofilm: The Key to Understanding and Controlling Bacterial Growth in Automated Drinking Water Systems (2nd edition), Edstrom Industries Inc. (June 2003), 230 p.
  63. Dunny M.W. Bacterial adhesion: seen any good biofilm lately? //Clin. Microbiol. Rev. 2002.V.15. p. 155−166.
  64. El-Soth A.A., Pietrantoni C., Bhat A., Okada M., Zambon J., Aquilina A., E. Berbary. Colonization dental plaque A reservoir of respiratory pathogenfor hospital-acquired pneumonia in institutionalized elder// Chest. 2004. V.126.N 5. p. 1575−1582.
  65. Elter C., Heuer W., DemlingA., Hanning M., HeidenblutT., Bach W.F., Stiesch -Shlotz M. Supra- and subgingival biofilm formation on implant abutments with different surface characteristics// Intern. J. Oral a. Maxill. Implant. 2008.V.23. N2. p.327−333.
  66. Erlandsen S.L., KristichC.J., Dunny M. Ultrastructure of Enterococcus feacalis biofilms // Biofilms. 2004. V.l. p. 131−137.
  67. Froeliger H. E. Fives-Taylor. Streptococcus parasanguis fimbria-assciated adhesin Fapl is required for biofilm formation. // Infect. Immun. 2001. V. 69. N.4. p.2512- 2519.
  68. T. " New Concepts in Operative Dentistry"// Quintessence.Publ.Berlinetc.1980.164 p.
  69. T. «Two layers of carious dentin, diagnosis and treatment. // Op. Dent.1979, N2, 63−70
  70. Gordon R,. Martinez J P., Lopez-Ribot J. L. Candida biofilms on implanted biomaterials: a clinically significant problem //Fems yest. Res. 2006.1. N 7. p.970−986.
  71. Gotz F. Stafilococcus and biofilms // Mol.Microbiol. 2002.V.43.p.l3671 o^o ±3 /O.
  72. Handley P. S., A.E. Jacob Same structure and physiological properties of fimbriae of Enterococcus feacalis // J.Gen. Microbiol. 1981 .V 127. p.2 87 293.
  73. Howard.G.T. Biodegradation of polyuretan a review //Internat.Biodeterior. a. Biodegrad. 2002.V.49. p.245−252
  74. Hubble T.S., HattonJ.F., Nallapareddy R.S., Murray B. E. Gillespie M.J. Influence of Enterococcus feacalis proteases and the collagen-binding protein Ace on adhesion to dentine // Oral microbial. Immun. 2003.V. 18. p.121−126.
  75. Ian W. Sutherlandl Biofilm exopolysaccharides: a strong and sticky framework // Microbiology 2001, 147, p.3−9
  76. Ise N. and I. S. Sogami, Structure Formation in Solution: Ionic Polymers and Colloidal Particles, (ISBN-10 3−540−25 271−1. Springer, New York, 2005).
  77. Ito S. and Karnovsky M.J. (1968) Formaldehyde/glutaraldehyde fixatives containing trinitro compounds // J. Cell Biol. 39, p.168a 169a.
  78. Jonson M.C., Bozzola J.J., Shechmeister I.L. Morphological study of of Streptococcus mutans and two extracellular polysacharide mutans
  79. J. Bacteriol. 1974 .V .118.N.l.p. 304−311.
  80. Kawai F. Bacterial degradation of acrylic oligomers and polymers//Appl. Microbiol. Biotechnol. 1993 .V.39, p. 382−385.
  81. Klotz A., Drutz D. J., Zajic J. E. Factors governing adherence of Candida species to plastic surfaces// Infect, a Immun,. 1985, V. 50, N. l.p. 97−101
  82. Koltenbrader P. E., Palmer R.J., Periasami S., Jacubovich N.S. Oral multispecies biofilm development and key role of cell-cell distance// Nat. Rev Microbiol. 2010 Jul-8(7):471−80.
  83. Komiyama K, B. F. Habbick, R. J. Gibbons Interbacterial adhesion between Pseudomonas aeruginosa and indigenous oral bacteria isolated from patients with cystic fibrosis //Canad. J. Microbiol 1987, V.33. N1. p. 27−32.
  84. Kuramitsu H. K., X. He Lux X., Anderson, M. H., Shi W. Interspecies interactions within oral microbial communities// Microbiology and Molecular Biology Reviews .2007. Vol. 71, No. 4 p. 53−670
  85. Latasa C., Solano C., Penades J.R., Lasa I. Biofilm-associated protein// C.R. Biol. 2006. V.329. p.849−857
  86. Le Chevallier, M.W., Lowry, C.D., Lee, R.G., & Gibbon, D.L. «Examining the Relationship between iron corrosion and the distribution of biofilm bacteria"// Journal AWWA 85, pp. 111−123 (July 1993).
  87. Lejeune P. Contamination of abiotic surfaces: what a colonizing bacterium sees and how to blur it. //Trend in microbial. 2003. V. l 1. № 4 p. 179−184.
  88. Levesque C. Vadenboncouer C., Chandad F., Frenette M. Streptococcus salivarius fimbriae are composed of glycoprotein containing repeated motif assembled into filamentous nondissociable structure// J. Bacteriol. 2007.V.183. N 9. p. 2724−2732.
  89. Marsh P.D. Dental plaque as microbial biofilm // Caries Res. 2004. V. 38.p.204−211.
  90. Maruthamuthu S., Rajasekar A., Sathiyanarayanan S., Muthukumar N,.Paianiswamy N.i. Electrochemical behaviour of microbes on orthodontic wires.// Curr. Sci.2005. V.89. N 6.p. 988−996.
  91. Nallapareddy R.S., .Singh K., Sillnpaa J., Garsin D., Hook M., Erlandes S. L., Murray B. E. Endocarditis and biofilm -associated pili Enterococcus feacalis // J. Clin. Invest. 2006 .V. 116. N 10. P.2799−2807.
  92. Newman, G.R., Jasani, B. and Williams, E.D. (1982) The preservation of ultrastructure and antigenicity. // J. Microscopy, 127, p.5−6
  93. Noar H. J., Evans R. D., Wilson D., Costello J., Ioannou E., Aveni A., Mordan N, J., Wilson M., Pratten J. An in vitro study into the corrosion of intra oral magnets in the presence of dental amalgam //Europ. J. of ortodont.2003. V. 25, p.615 — 619.
  94. Ohgushi K, Fusayama T ?"Electron microscopic structure of the two layers of carious dentine». // J. Dent. Res. 1975- 54: 1019−1026
  95. Palmer R J., Gordon, J. O Jr., S. M. Cisar, P. E. Paul E. Kolenbrander Coaggregation-Mediated interactions of Streptococci and Actinomyces detected in initial human dental plaque // J. Bacteriol. 2003. Vol. 185. No. 11 p. 3400−3409.
  96. Premaj R., Doble M. Biodegradation of polymers // Ind. J. biotechnol. 2005. V. 4.p. 186−193.
  97. Reynolds E.M.The use of lead citrate at high pH as an electron -opaque stain in electron microscopy. // Cell Biol. 1963 April 1- 17(1): 208−212.
  98. Rickard A .P, Peter Gilbert P, High N J, Kolenbrander P. E, Handley P. S. Bacterial coaggregation: an integral process in the d evelopment of multi-species process in the development // Trends in microbial.2003.V.ll. N.2. p.94−100.
  99. Sarkonen N. Oral Actinomyces species in health and disease: identification, occurrence and importance of early colonization. Publication of National Health Institute (8) 2007. Helsinki. 46 p.
  100. Sesma N., Lagana D. C., Morimoto S., Gil C. Effect of denture surfaces glazing on denture plaque formation // Brazilian Dent. J. 2005. V.16 N.2. p. 129−134.
  101. Simoncini R. Cancer is a fungus // Review by Nexus Magazine Edizioni Lampis, Rome, Italy, 2007, p.12 -16.
  102. Smith A .J., Jackson M.S., Bagg J. The ecology of Staphylococcus species the oral cavity // J. Mol. Microbiol. 2001 V.50. p.940−946
  103. Tirpak. G. Microbial degradation of plastized P VC//Sp. Journ. Physiol Rev, 1969, 49(2), 163−239.
  104. Van der Borden A.J., van der Werf H., van der Mei H.C., Bussher H.J. Electric Current-Induced Detachment of Staphylococcus epidermidis Biofilms from Surgical Stainless Steel. //Appl.Environ. Microbiol. 2004 November- 70(11): 6871−6874.
  105. Van der Hocven J. S., De Jong M.H., .H. Rogers A. H and Camp P.J.M. A conceptual model for the co-existence of Streptococcus Spp. and Actinomyces Spp. in dental plaque // J. Dent. Res. 1984.V. 63. N.3. p. 389 392.
  106. Videla H.A., Gomez S.G., Preventing MIC through Microbial Adhesion Inhibition// Saravia University of la Plata Guiamet, INIFTA, Corrosion 98, March 22−27, 1998, San Diego NACE International
  107. Wu C., Mishra A., Yang J., Cisar J. O., A. Das A., and Ton-That Hung, Dual function of a tip fimbrillin of Actinomyces in Fimbrial assembly and receptor binding// J. of Bacteriology. 2011, Vol. 193, No. 13 p. 3197−3206.
  108. Ximenez-Fyvie L.A., Haffaejee A.D. Microbial composition of supra- and subgingival plaque in subjects with adult periodontitis // J. Clin.Periodontol.. 2000. V.27.p.722- 732.
  109. O.B. Морфо-физиологические аспекты взаимодействий микроорганизмов в микробных сообществах.// автореф. Дисс. докт.биол.наук. 2003. 337 с
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!