Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Антагонистическая активность штамма Bacillus subtilis ИБ-54 к дерматомицетам и его использование в разработке антимикотического препарата

Диссертация: Антагонистическая активность штамма Bacillus subtilis ИБ-54 к дерматомицетам и его использование в разработке антимикотического препарата
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В современных условиях резко возрастает потребность в новых эффективных антимикотических препаратах и фунгицидах для медицины, ветеринарии и сельского хозяйства, что делает поиск и разработку этих средств насущной необходимостью. Ключевой проблемой биотехнологических исследований и разработок в этой области является поиск и получение безопасных для человека и окружающей среды средств борьбы… Читать ещё >

Антагонистическая активность штамма Bacillus subtilis ИБ-54 к дерматомицетам и его использование в разработке антимикотического препарата (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИИ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Антагонистическая активность аэробных спорообразующих бактерий как одна из форм взаимоотношений с мицелиальными грибами
    • 1. 2. Основные механизмы подавления роста и развития микромицетов бациллами-антагонистами
    • 1. 3. Опыт практического применения бацилл-антагонистов в медицине
    • 1. 4. Лекарственные формы на основе бацилл для наружного применения
    • 1. 5. Актуальность биологического контроля дерматомицетов микробами-антагонистами и их метаболитами
      • 1. 5. 1. Возбудители дерматомикозов и проблемы борьбы с ними
      • 1. 5. 2. Особенности экологии дерматомицетов и факторы их патогенности
      • 1. 5. 3. Биологическая активность микробов-антагонистов в отношении дерматомицетов
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объекты исследований
    • 2. 2. Методы и условия хранения и поддержания бактериальной культуры и дерматомицетов
    • 2. 3. Условия глубинного культивирования бактерий
    • 2. 4. Определение общего белка
    • 2. 5. Изучение генотипических свойств В. йиЫШБ ИБ
    • 2. 6. Анализ антагонистической активности штамма В. зиЫШз ИБ-54 в отношении патогенных бактерий и дерматомицетов
    • 2. 7. Световая микроскопия
    • 2. 8. Оценка влияния параметров культивирования на рост и продукцию антимикотических соединений В. subtilis ИБ
    • 2. 9. Очистка и аминокислотный анализ фракции активных метаболитов В. subtilis ИБ
    • 2. 10. Характеристика физико-химических и биологических свойств антимикотических соединений В. subtilis ИБ
    • 2. 11. Определение чувствительности В. subtilis ИБ-54 к антибиотикам
    • 2. 12. Изучение биологической безопасности штамма Я subtilis ИБ
    • 2. 13. Разработка состава и технологии экспериментальной лекарственной формы наружного применения на основе В. subtilis ИБ
    • 2. 14. Изучение специфической активности разработанного гелевого препарата на основе В. subtilis ИБ-54 in vitro
    • 2. 15. Методы изучения стабильности экспериментального препарата при хранении
    • 2. 16. Оценка эффективности экспериментальной лекарственной формы in vivo (доклинические испытания)
    • 2. 17. Статистическая обработка результатов
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Фенотипическая и генотипическая характеристика В. subtilis ИБ
    • 3. 2. Антимикотическая активность В. subtilis ИБ-54 и особенности его антагонистического действия на дерматомицеты
    • 3. 3. Антагонизм В. subtilis ИБ-54 в отношении представителей патогенной и условно патогенной микробиоты
    • 3. 4. Антагонистические взаимоотношения В. subtilis ИБ-54 с таксономически близкими и отдаленными штаммами бацилл
    • 3. 5. Рост и биосинтез антимикотических соединений В. subtilis ИБв монокультуре и в бинарных культурах с дерматомицетами
      • 3. 5. 1. Специфика совместного развития и антагонистической активности В. subtilis ИБ-54 и дерматомицетов
    • 3. 6. Влияние природы и концентрации источников углерода на рост и антимикотическую активность В. subtilis ИБ
    • 3. 7. Влияние источников азота на рост и синтез антимикотических соединений В. subtilis ИБ
    • 3. 8. Выделение и характеристика антимикотических соединений В. subtilis ИБ
    • 3. 9. Устойчивость В. subtilis ИБ-54 к антибиотикам
    • 3. 10. Биологическая безопасность штамма В. subtilis ИБ-54 как потенциальной основы препаратов наружного действия для лечения дерматомикозов
      • 3. 10. 1. Характеристика вирулентных, токсигенных и токсичных свойств изучаемого штамма
      • 3. 10. 2. Острая и хроническая токсичность В. subtilis ИБ
      • 3. 9. 3. Оценка аллергенных свойств штамма и препарата на его основе
    • 3. 11. Разработка гелевой лекарственной формы на основе В. subtilis ИБ-54 для профилактики и лечения дерматомикозов
      • 3. 11. 1. Обоснование состава геля и подбор основных компонентов
      • 3. 11. 2. Стабильность экспериментальной лекарственной формы при хранении
      • 3. 11. 3. Эффективность экспериментальной лекарственной формы in vitro и in vivo

Актуальность темы

В настоящее время, в связи с резким увеличением заболеваемости микозами, возросла потребность в разработке новых эффективных и безопасных антимикотических средств. Одно из ведущих мест среди микотических инфекций занимают дерматомикозы [65]. Основную роль в терапии дерматомикозов играют достаточно токсичные синтетические препараты, интенсивное применение которых приводит к побочным эффектам и возникновению резистентности патогенных грибов. Таким образом, целесообразность поиска новых методов и подходов к лечению дерматомикозов очевидна. В практическом здравоохранении все более широко применяются биопрепараты (пробиотики) на основе бактерий рода Bacillus [55, 69]. Значительный интерес представляет опыт использования бацилл в составе наружных препаратов для заживления ран и ожогов [1, 8, 13, 20, 25, 34, 38, 82, 83, 94, 144]. Данный аспект, в сочетании с обнаруженной способностью некоторых штаммов В. subtilis подавлять развитие дерматомицетов, представляется перспективным для разработки наружных средств профилактики и лечения дерматомикозов.

В связи с этим целью настоящей работы являлось изучение антимикотической активности штамма Bacillus subtilis ИБ-54 к дерматомицетам и его возможности/потенциала в создании биопрепарата для профилактики и лечения дерматомикозов.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи.

1. Исследовать антимикотическую активность и особенности антагонистического взаимодействия штамма В. subtilis ИБ-54 с клиническими штаммами дерматомицетов различной таксономической принадлежности — Trichophyton rubrum, Т. gypseum и Microsporum canis.

2. Выявить факторы антимикотического действия В. subtilis ИБ-54 и охарактеризовать их физико-химические и биологические свойства.

3. Изучить влияние ряда параметров культивирования на особенности роста и продукции антимикотических соединений штаммом В. subtilis ИБ-54.

4. Разработать на основе В. subtilis ИБ-54 состав (рецептуру) лекарственной формы для наружного применения при дерматомикозах и оценить ее биологическую активность в доклинических испытаниях.

5. Изучить токсико-фармакологические свойства штамма В. subtilis ИБ-54 и биопрепарата на его основе.

Научная новизна. Впервые показана высокая конститутивная антимикотическая активность штамма В. subtilis ИБ-54 в отношении клинических штаммов дерматомицетов. Обнаружена специфичность в синтезе антимикотических веществ В. subtilis ИБ-54 при взаимодействии с дерматомицетами in vitro, тогда как проявление его действия на различные виды грибов имеет сходный характер. Установлена ключевая роль циклических липопептидов в антагонизме В. subtilis ИБ-54 к дерматомицетам. Выявлено, что одним из факторов устойчивости/конкурентоспособности грибов рода Trichophyton к бактериям-антагонистам является способность к синтезу антибактериальных веществ. Определена антибактериальная активность В. subtilis ИБ-54 к клиническим штаммам патогенных и условно патогенных бактерий. Впервые разработана лекарственная форма препарата на основе штамма В. subtilis ИБ-54 для профилактики и лечения дерматомикозов.

Практическая значимость работы. Изучены условия максимального роста и продукции антигрибных соединений в глубинной периодической культуре В. subtilis ИБ-54, которые могут быть использованы в разработке технологии создания многофункциональных биопрепаратов на основе этого штамма. Высокие продукционные характеристики исследуемого штамма позволяют применять его для направленного получения известных циклических липопептидов, относящихся к различным гомологическим группам (сурфактины, итурины и т. д.).

Обоснована возможность создания нового препарата наружного применения для профилактики и комплексного лечения поверхностных дерматомикозов.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Штамм В. subtilis ИБ-54 проявляет высокую антагонистическую активность к клиническим штаммам дерматомицетов различных таксономических групп, показывая сходство в общем механизме их подавления.

2. Антимикотическая активность В. subtilis ИБ-54 к дерматомицетам обусловлена в основном синтезом липопептидных веществ, близких по строению к циклическим липопептидам класса сурфактина с примесями других функционально активных компонентов.

3. Продукция антимикотических соединений В. subtilis ИБ-54 имеет конститутивный характер, но может специфически усиливаться при непосредственном взаимодействии с различными видами дерматомицетов.

4 Источники органического азота способствуют значительному повышению синтеза антимикотических соединений в периодической культуре В. subtilis ИБ-54.

5. Опытная лекарственная форма на основе жидкой культуры В. subtilis ИБ-54 показывает высокую активность в подавлении дерматомицетов in vitro, стабильна при хранении и сравнима по эффективности in vivo с коммерческим синтетическим препаратом.

6. Штамм В. subtilis ИБ-54 и препарат на его основе не проявляют вирулентности, токсических, токсигенных и сенсибилизирующих свойств в доклинических испытаниях.

Работа выполнена в филиале «Иммунопрепарат» ФГУП НПО «Микроген» МЗ и CP РФ, а также в Институте биологии Уфимского научного центра РАН.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы были представлены на Пятом Всероссийском конгрессе по медицинской 7 микологии (Москва, 2007), Всероссийской научно-практической конференции «Создание и перспективы применения медицинских иммунобиологических препаратов» (Пермь, 2008), Пятой конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины» (Москва, 2008), Втором международном экологическом форуме «Окружающая среда и здоровье человека» (Санкт-Петербург, 2008) и Втором съезде микологов России «Современная микология в России» (Москва, 2008).

Публикации. По материалам исследований опубликовано 8 научных работ, в том числе — 3 статьи в рецензируемых научных журналах.

Объем и структура диссертационной работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы (глава 1), объектов и методов исследований (глава 2), результатов и их обсуждения (глава 3), заключения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 205 ссылок, из них 83 — на русском языке. Работа изложена на 124 страницах машинописного текста и содержит 24 рисунка и 21 таблицу.

выводы.

1. Штамм В. subtilis ИБ-54 проявляет конститутивную способность к синтезу антимикотических соединений, специфически изменяющемуся при взаимодействии с различными видами дерматомицетов. Одним из факторов снижения чувствительности в ряду М canis, Т. gypseum и Т. rubrum к В. subtilis ИБ-54 является их способность к продукции антибактериальных веществ.

2. Основную роль в подавлении дерматомицетов штаммом В. subtilis ИБ-54 играет комплекс амфифильных соединений липопептидной природы, содержащий вещества по химическому строению пептидного компонента близкие к сурфактинам.

3. Наиболее высокий уровень роста и продукции антимикотических соединений В. subtilis ИБ-54 наблюдается в присутствии 0,5−1,0% масс, глицерина и 1,0−2,0% масс, дрожжевого и кукурузного экстрактов.

4. Разработан состав экспериментальной лекарственной формы на основе В. subtilis ИБ-54, которая стабильна при хранении в течение 12 месяцев и по лечебной эффективности in vivo сравнима с коммерческим синтетическим препаратом.

5. Штамм В. subtilis ИБ-54 и экспериментальный препарат на его основе не обладают токсическими, токсигенными и аллергизирующими свойствами.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В современных условиях резко возрастает потребность в новых эффективных антимикотических препаратах и фунгицидах для медицины, ветеринарии и сельского хозяйства, что делает поиск и разработку этих средств насущной необходимостью. Ключевой проблемой биотехнологических исследований и разработок в этой области является поиск и получение безопасных для человека и окружающей среды средств борьбы с патогенными грибами. В рамках такой проблемы дополнительную актуальность приобретает создание новых биопрепаратов на основе бактерий-антагонистов и их метаболитов. В последнее время в связи с решением задач эффективности и безопасности новых антимикотических средств многие исследования в большей степени начинают фокусироваться не только на поиске, выделении и скрининге новых перспективных микроорганизмов — антагонистов микромицетов, но и на детальном изучении механизмов и факторов их антигрибного действия, как на генотипическом, так и на фенотипическом уровне. В рамках нашей работы было реализовано одно из направлений в этой области исследований, связанное с изучением антимикотической активности штамма В. subtilis ИБ-54 в отношении дерматомицетов и его потенциала в разработке биопрепарата для профилактики и лечения дерматомикозов.

Штамм В. subtilis ИБ-54 из коллекции бацилл — антагонистов фитопатогенных грибов Института биологии УНЦ РАН проявлял высокую активность в подавлении дерматомицетов in vitro. В жидкой среде Сабуро при синхронном культивировании с М. canis, Т. gypseum и Т. rubrum штамм полностью подавлял рост грибов. Филогенетический анализ бактериальной культуры на основе секвенирования гена 16S рРНК подтвердил ее близость к типовым представителям В. subtilis с уровнем сходства 99,4%. Изучение плазмидного профиля штамма не выявило у него плазмид.

Чувствительность к антагонистическому действию штамма ИБ-54 снижалась в ряду М. canis — Т. gypseum — Т. rubrum. По сравнению с живой культурой ее внеклеточные метаболиты проявляли существенно более низкую антимикотическую активность in vitro и вносили меньший вклад в суммарную эффективность жидкого бактериального препарата. В то же время, уровень активности внеклеточных метаболитов значительно возрастал с завершением экспоненциальной фазы роста и достижением высокой степени споруляции бактерий. Продукция антимикотических соединений в монокультуре В. subtilis ИБ-54 коррелировала также с интенсивностью роста штамма и его титром. При взаимодействии с дерматомицетами в статической глубинной культуре рост бактерий несколько снижался, однако, синтез активных метаболитов оставался на том же уровне, а в некоторых случаяхвозрастал. Тем не менее, специфичность взаимодействия В. subtilis ИБ-54 с различными дерматомицетами заключалась не в общем количестве антимикотических соединений, а в их спектре. Резистентность дерматомицетов к действию штамма увеличивалась с возрастом тест-гриба и отчасти определялась их способностью к синтезу антибактериальных веществ. В частности, более устойчивыми являлись представители рода Trichophyton — Т. gypseum и Т. rubrum, которые продуцировали метаболиты, подавляющие рост В. subtilis ИБ-54 в незначительной степени.

Помимо антимикотических свойств, исследуемый штамм также проявлял антибактериальную активность в отношении клинических штаммов некоторых патогенных и условно патогенных бактерий. Больший подавляющий эффект В. subtilis ИБ-54 оказывал на грамположительные бактерии, что проявлялось в его активности против филогенетически удаленных групп бацилл-антагонистов. Основную роль в антимикотической и антибактериальной активности штамма играли амфифильные соединения липопептидной природы, в одинаковой степени выделяемые из монокультуры и бинарных культур штамма с дерматомицетами. Выделенная из КЖ В. subtilis ИБ-54 фракция активных веществ проявляла значительную термостабильность и устойчивость к протеазам. Анализ кислотного гидролизата частично очищенной фракции выявил присутствие в ней аминокислот в соотношениях, свойственных для структуры пептидного компонента сурфактинов/лихенизинов. Вместе с тем, были обнаружены значительные количества аминокислот, не встречающиеся у большинства описанных циклических липопептидов (треонин, фенилаланин), что говорит о гетерогенности антибиотического комплекса В. subtilis ИБ-54. В отличие от действия живой культуры наибольшую чувствительность к изолированным липопептидам В. subtilis ИБ-54 проявлял Т. gypseum. Так, интервалы их минимальной ингибирующей концентрации составляли 2,5−5, 5−10 и 22−25 мкг/мл для Т. gypseum, М. cards и Т. rubrum, соответственно. Высокая антимикотическая активность В. subtilis ИБ-54 обусловила выбор этого штамма для разработки биопрепарата для профилактики и лечения дерматомикозов. Предварительным этапом в создании данного биопрепарата являлась характеристика его токсико-фармакологических свойств. Результаты доклинических испытаний КЖ штамма В. subtilis ИБ-54 и препарата на его основе свидетельствуют об отсутствии у него острой и хронической токсичности, а также аллергизирующих свойств. Гелевая форма препарата на основе В. subtilis ИБ-54 показывала высокую антимикотическую активность in vitro. При оценке специфической активности биопрепарата в опытах на животных его эффективность была сравнима с действием коммерческого синтетического антимикотика «Экзодерил», что показывает перспективность В. subtilis ИБ-54 для дальнейшей разработки технологии производства антимикотических препаратов. Применение биопрепаратов на основе В. subtilis ИБ-54 в медицинской практике не рассматривается в качестве альтернативы синтетическим противогрибковым средствам, а направлено на снижение их нагрузки в комплексной терапии и профилактике дерматомикозов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.И. Применение комбинированных коллагеновых покрытий в комплексном лечении гнойных ран (экспериментально-клиническое исследование). Автореф. дисс.. канд. мед. наук. Уфа, 2003. 22 с.
  2. Н.В., Бондаренко О. Л., Ли В.Н. и др. Особенности набухания редкосшитых акриловых полимеров // Фармация.- 1988.- № 4.- С. 23−26.
  3. Андреев и др., Медицинская микология: руководство / В. А. Андреев, А. В. Зачиняева, A.B. Москалев, В.Б. Сбойчаков- под. ред. В. Б. Сбойчакова. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. 208 с.
  4. Э.А., Исаева Т. И., Кобаидзе Л. М. Этиологический фактор зооантропонозной микроспории // Успехи медицинской микологии 2007.-Т. 10.-С. 7−8
  5. В.А., Чердынцева Н. В., Бондаренко В. М. Литвяков, Н.В. Биологические эффекты интерферона, продуцируемого рекомбинантными бактериями препарата-пробиотика субалина // Журн. микробиол.- 2003.- № 2.- С. 102−109.
  6. Н.О., Хохлов A.C. Бумажная хроматография антибиотиков. М.: «Наука», 1970. 364 с.
  7. Ю.С., Перьянова О. П., Якимов C.B. и др. Метод лечения гнойных ран с использованием антагонистов. // International journal on immunorehabilitation.- 1998.- № 4.- С. 143.
  8. Т.А., Азизбекян P.P. Генофонд природных микроорганизмов как источник фунгицидных антибиотиков // Успехи медицинской микологии: материалы пятого всероссийского конгресса по медицинской микологии-М., 2007.-С. 279−280.
  9. М.М., Латыпов А. Б. Эпидемиология возбудителей микозов стоп в республике Башкортостан // Успехи медицинской микологии.- 2003.- Т. 2.-С. 45−48.
  10. Ф. Методы общей бактериологии. М.: Мир, 1983. — 536 с.
  11. Э.В., Фурманов Ю. А., Слабоспицкая А. Т., Резник С. Р., Пылаева В. П., Тарасенко Т. С. Применение биоспорина в лечении экспериментальной гнойной раны // Клиническая хирургия.- 1992.- № 9−10.-С. 30−32.
  12. В.М., Хоменок B.C. Руководство к практическим занятиям по технологии лекарственных форм М: «Медицина», 2000.- 304 с.
  13. A.M. Профилактика и лечение хирургической инфекции при термических ожогах с использованием живого бактериального препарата «споробактерин жидкий». Автореф. дис.. канд. мед. наук. Оренбург, 2007. 28 с.
  14. Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Справочник биохимика. М.: Мир, 1991.-544 с.
  15. Ю.Т., Новое в систематике и номенклатуре грибов. Под. ред. Ю. Т. Дьякова и Ю. В. Сергеева. М.: 2003. 164−192.
  16. Н.С. Основы учения об антибиотиках: Учебник 6-е изд., перераб. и доп. / Н. С. Егоров. М.: Изд-во МГУ- Наука, 2004. — 528 с.
  17. М.С., Сергеев А. Ю. К характеристике патогенных свойств дерматофитов // Успехи медицинской микологии.- 2005.- Т. 5.- С. 51−52.
  18. Н.Г., Алимова Ф. К., Егоров С. Ю. Скрининг микроорганизмов, перспективы для биотехнологии // Интродукция микроорганизмов в окружающую среду: Тез. докл. конф.- 1994, — С. 36.
  19. О.Л., Ломоносов К. М. Орунгал: итоги и перспективы применения при дерматомикозах // Вестн. дерматол.- 1997.- № 3.- С. 54−59.
  20. В.А., Попов А. В., Воронов О. Н., Гоцик А. А., Медведкин В. М. Профилактика хирургической инфекции у больных с термической травмой // Анналы травматологии и ортопедии.- 2001.- № 2.- С. 47−49.
  21. , А.А. Руководство по практической микологии / А. А. Кубанова, Н. С. Потекаев, Н. Н. Потекаев.- М., 2001. 143 с.
  22. В.А., Колтунова Н. В., Захарова И. Я. Иммобилизированная эластостераза // Микробиол. журнал 1994- Т. 56, № 1- С. 70−71.
  23. А.Б. Динамика заболеваемости и особенности эпидемиологии зооантропонозной трихофитии в республике Башкортостан // Успехи медицинской микологии.- 2007.- Т. 10.- С. 9−12.
  24. А.Б. К вопросу о заболеваемости микозами в Республике Башкортостан // Иммунология, аллергология, инфектология.- 2010.- № 1.- С. 161.
  25. В.M. Морфология, физиология, экология грибов (принципиальные положения). Materia medica. Ежеквартальный бюллетень для врачей и фармацевтов.- 1997.- № 2.- С. 5−9.
  26. K.M. История развития системных антимикотиков: от структуры к эффективности // Успехи медицинской микологии.- 2007.- Т. 10.- С. 125−126.
  27. A.B., Саркисов С. Е. К вопросу о гистероскопии в условиях бактериального вагиноза // Эндоскопическая хирургия.- 2010.- № 1.- С. 43−47.
  28. A.B. Гистероскопия в условиях бактериального вагиноза // Врач.-2010.-№ 1.- С. 58−60.
  29. Т., Фрич Э., Сэмбрук Д. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование М.: Мир, 1984. — 480 с.
  30. Л.Г., Русак A.B., Смехова И. Е. Технология мягких лекарственных форм. СПб.: СпецЛит. 2004. — 174 с.
  31. А.И. Аэробные спорообразующие бактерии Bacillus Cohn в агроэкосистемах. М.: Наука, 2007. — 147 с.
  32. В.М., Бялик И. Ф., Липняк С. А., Николаев В. Ф., Рак A.B., Фахрутдинов Р. З., Шорина Н. Ю. Лечение больных хроническим остеомиелитом и гнойными ранами с применением споробактерина // Анналы травматологии и ортопедии.- 2001.- № 2.- С. 12−14.
  33. C.B., Никитенко М. В., Бородин В. Ф., Кудашев С. Г., Тырсин Л. Д. Новый способ профилактики хирургической инфекции огнестрельных ран // Анналы травматологии и ортопедии.- 2001.- № 2.- С.38−41.
  34. B.C., Новоселов A.C. Рациональные подходы к терапии поверхностных микозов // Consilium medicum.- 2007.- T. 9.- № 1.- С. 24−27.
  35. P.C., Маноян М. Г., Телишевская Л. Я., Панин А. Н. Протеолитические ферменты дерматофитов, гидролизующие структурные белки // Успехи медицинской микологии.- 2004.- Т. 3.- С. 35−36.
  36. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Методические указания МУК 4.2.1890−04 // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия- 2004 Т. 6, № 4 — С. 306 359.
  37. М. В., Смирнова Т. А., Азизбекян Р. Р. Штаммы Bacillus, обладающие антагонистической активностью в отношении дрожжеподобных грибов Candida albicans // Успехи медицинской микологии.- 2003, — Т. 1.- С. 104−105.
  38. И.Г., Сорокулова И. Б., Терешкина Н. В., Григорьева Л. В. Изучение безопасности бактерий рода Bacillus, составляющих основу некоторых пробиотиков // Журн. микробиол.- 1998.- № 6.- С. 68−70.
  39. Пат. РФ № 1 743 019. Штамм бактерий Bacillus sp. для получения препарата против грибных возбудителей болезней злаковых культур // А. И. Мелентьев, Н. Г. Усанов, О. Н. Логинов. Заявл. 3.10.89- Опубл. 23.03.93.
  40. Пат. РФ № 1 839 459. Штамм бактерий Bacillus subtilis, обладающий антивирусной и антибактериальной активностью // В. В. Смирнов, В.А.
  41. , A.A. Ильичев, В.А. Петренко, И. В. Тимофеев, А. Е. Нестеров, С. Г. Резник, И. Б. Сорокулова. Опубл. 07.06.90.
  42. Пат. РФ № 2 217 154 Препарат споробактерин жидкий // М. В. Никитенко, В. И. Никитенко. Заявл. 12.09.01. Опубл. 20.06.03.
  43. Пат. РФ № 2 322 996. Ранозаживляющий биопрепарат в виде геля // Лукманова К. А., Зайнутдинова Ф. Н., Аюпова Г. В., Салихова Н. Х., Кузнецова Т. Н., Гиматдинов Р. И., Туйгунов М. М. Заявл. 15.06.06. Опубл. 27.04.08.
  44. Поиск и идентификация бактерий антагонистов возбудителей корневых гнилей сельскохозяйственных растений // Отчет о НИР.- 1991. Уфа. Институт биологии БНЦ УрО АН СССР. — №> ГР 0189.916 126.- 62 с.
  45. Д.Р., Хисматуллина З. Р., Мухамадеева O.P. Анализ эпидемиологической ситуации зооантропонозной трихофитии в Республике Башкортостан // Иммунология, аллергология, инфектология.- 2010.- № 1.- С. 166−167.
  46. H.H. Микроспория // Рус. мед. журнал.- 2000.- № 4.- С. 189−196.
  47. В.Д., Перелыгин В. В. Пробиотики на основе спорообразующих бактерий и их безопасность // Химическая и биологическая безопасность.- 2007.- № 2−3.- С. 20−41.
  48. Практикум по микробиологии / Под ред. Нетрусова А.И.- М.: Изд. центр «Академия», 2005. -608 с.
  49. М.А. Определение кератинолитической активности некоторых микромицетов: (обзор) // Проблемы медицинской микологии.- 2010.- Т. 12.-№ 2.- С. 53−58.
  50. A.M., Туйгунова В. Г., Зайнуллин P.P., Кузнецова Т. Н., Габидуллин Ю.З. Использование антагонистических свойств бактерий
  51. Bacillus subtilis в терапии госпитальной инфекции мочевых путей // Журн. микробиол.- 2007.- № 2.- С. 90−93.
  52. A.M. К оценке эффективности пробиотика бактиспорина в лечении госпитальной инфекции мочевых путей // Урология, — 2005.- № 4.- С. 48−53.
  53. А.Н. Грибковые заболевания кожи: руководство для врачей (2-е изд.). СПб: Издательство «Питер», 2000. 288 с.
  54. В.М. Эпидемиология, патогенез, клиника, лечение и профилактика микозов стоп // Materia medica. Ежеквартальный бюллетень для врачей и фармацевтов. Российская медицинская ассоциация. М: ФАРГУС ПРИНТ.- 1997.- Т. 2.- № 14.- С. 11−40.
  55. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. Книга 1 // Под ред. Лабинской A.C., Волиной Е. Г. М.: Изд-во БИНОМ, 2008. — 1080 с.
  56. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ./ под ред. Р. У. Хабриева. М., 2005. — 832 с.
  57. А. Ю., Сергеев Ю. В. Грибковые инфекции. Руководство для врачей. М.: БИНОМ-Пресс.- 2003.- 440 с.
  58. М.В. Технология экстемпоральных мазей с применением редкосшитых акриловых полимеров: Автореф. дисс.. канд. фарм. наук. -СПб., 2004.-22 с.
  59. Н.И. Лечение послеоперационных раневых инфекций в хирургической практике // Анналы травматологии и ортопедии.- 2001.- № 2.-С.30.
  60. В.В., Резник С. Р., Василевская И. А. Спорообразующие аэробные бактерии продуценты биологически активных веществ.- К.: Наукова думка, 1982.- 280 с.
  61. В.В. Антибиотики и/или пробиотики: размышления и факты // Мед. картотека.- 1998.- № 8.- С. 8−10.
  62. И.Б. Влияние пробиотиков из бацилл на функциональную активность макрофагов // Антибиотики и химиотерапия.- 1998.- Т 43.- № 2.-С. 20−23.
  63. И.Б. Изучение безопасности и реактогенности нового пробиотики Субалина на добровольцах // Микробиол. журн.- 1998.- Т. 60.- № 1.С. 43−46.
  64. И.Б., Осипова И. Г., Терешкина Н. В., Васильева Е. А., Буданова Е. В. Изучение безопасности бацилл-пробиотиков. // Вест. РАМН.-2006.-№ 1.-С. 50−54.
  65. А.Ю., Латыпов А. Б., Хисматуллина З. Р. Эпидемиология зооантропонозной трихофитии в республике Башкортостан // Успехи медицинской микологии.- 2005.- Т. 6.- С. 59.
  66. Т.Н., Гущина Р. Н., Халилова Ф. И., Язданов Ф. И., Мингазова Э. З., Мавзютов А. Р. Эпидемиология микроспории в республике Башкортостан // Иммунология, аллергология, инфектология.- 2010.- № 1.- С. 172−173.
  67. Г. П., Потебня Г. П., Лисовенко Г. С., Танасиенко O.A. Эффективность противоопухолевых вакцин на основе цитотоксических лектинов бактериального происхождения // Украинский химиотерапевтический журнал.- 2001.- № 4.- С.29−32.
  68. Х.С., Абсалямова H.H., Камалов Э. С. К вопросу эпидемиологии дерматофитий в республике Башкортостан. Иммунология, аллергология, инфектология, 2010 № 1, С. 176.
  69. Е.В., Ибрагимова Р. З. Современное состояние заболеваемости микозами стоп и онихомикозами в среднеповолжском регионе // Проблемы медицинской микологии. -2010.- Т. 12.- № 2.- С. 138.
  70. И.В., Карамова А. Э., Кальменсон В. В. Резистентность к противогрибковым препаратам: решение проблемы. Учебно-методическое пособие. -2006.- 20 с.
  71. С.Н. Антифунгальная активность некоторых пробиотиков по отношению к грибам возбудителям микозов и микотоксикозов // Успехи медицинской микологии- 2005.- Т. 5.- С. 315−317.
  72. А.Н., Елисеев С. А., Карпенко Е. В., Кирчив А. Р., Туровский А. А. Биоэмульгатор, образуемый культурой Bacillus species, и его свойства // Микробиол. журн.- 1990.- Т. 52, № 5.- С. 78−82.
  73. Янгирова 3.3., Зайнутдинова Ф. Н., Салихова Н. Х., Лукманова К. А., Кузнецова Т. Н., Нигматуллин Т. Г. Бактиспоринпласт новый препарат для лечения гнойных ран // Человек и лекарство.- 2004- С. 854.
  74. Янгирова 3.3. Разработка и изучение иммунобиологических свойств нового лекарственного средства бактиспоринпласта. Автореф. дис.канд. биол. наук. Уфа, 2005. 23 с.
  75. Ajello, L. Present day concepts of the dermatophytes // Mycopathol. Mycol. Appl.- 1962.-№ 17.-P. 315−324.
  76. Aljabre S.M., Richardson M.D., Scott E.M., Shanklans G.S. Germination of Trichophyton mentagrophytes on human stratum corneum in vitro // J Med Yet Mycol.- 1992.- V. 30.- P. 145−152.
  77. Aono R., Hammura M., Yamamoto M., Asano T. Isolation of extracellular 28-and 42-kilodalton (3−1,3-glucanases and comparison of three (3−1,3-glucanases produced by Bacillus circulans IAM1165 // Appl. Environ. Microbiol 1995.- V. 61,№ l.-P. 122−129.
  78. Apodaca G, McKerrow, J.H. Purification and characterization of a 27,000-Mr extracellular proteinase from Trichophyton rubrum II Infect Immun.- 1989.- V. 57.- P. 3072−3080.
  79. Arrebola E., Sivakumar D., Korsten L. Effect of volatile compounds produced by Bacillus strains on postharvest decay in citrus // Biol. Control 2010 — V. 53-P. 122−128.
  80. Augustine S.K., Bhavsar S.P., Kopadnis B.P. Production of growth dependent metabolite active against dermatophytes by Streptomyces rochei AK 39 // Indian Med Res.- 2005.- V.121, № 3.- P. 164−170.
  81. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Second Edition. V. 3. Springer, 2009. 1422 p.
  82. Bolton L., Fattu A.-J. Topical agents and wound healing // Clinics in Dermatology.- 1994.-V. 12, №. l.-P. 95−120.
  83. Brasch J, Martins B-S, Christophers E. Enzyme release by Trichophyton rubrum depends on nutritional conditions // Mycoses.- 1991.- V. 34, — P. 365−368.
  84. Brasch J, Zaldua M. Enzyme patterns of dermatophytes // Mycoses.- 1994.-V. 37.-P. 11−16.
  85. Brasch J, Folster-Holst R, Christophers E. Tinea durch Trichophyton equinum II Hautarzt.- 1998.- V. 49. P. 397−402.
  86. Brogden K.A. Antimicrobial peptides: pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? //Nat. Rev. Microbiol.- 2005.- V. 3.- P. 239−250.
  87. Chang W.-T., Chen C.-S. and San-Lang W. An antifungal chitinase produced by Bacillus cereus with shrimp and crab shell powder as a carbon source // Curr. Microbiol.-2003.-V. 47.-P. 102−108.
  88. Chang W.-T., Chen M.L. and San-Lang W. An antifungal chitinase produced by Bacillus subtilis using chitin waste as a carbon source // World J. Microbiol. Biotechnol 2010.- V. 26.- P. 945−950.
  89. Chen C.-Y., Wang Y.-H. and Huang C.-J. Enhancement of the antifungal activity of Bacillus subtilis F29−3 by the chitinase encoded by Bacillus circulans chiA gene // Can. J. Microbiol.- 2004.- V. 50, № 6.- P. 451−454.
  90. Chen W.-Q., Morgan D. P., Felts D. and Michailides T. J. Antagonism of Paenibacillus lentimorbus to Botryosphaeria dothidea and biological control of panicle and shoot blight of pistachio // Plant Disease- 2003.-V. 87 P. 359−365.
  91. Cho S. J., Lim W. J., Hong S. Y. et al. Endophytic colonization of Ballon flower by antifungal strain Bacillus sp. CY22 // Biosci. Biotechnol. Biochim-2003.-V. 67, № 10.- P. 2132−2138.
  92. H.D., Ditvatkovskaya E.M., Agafonova H.A. // Allergy.- 1992.-V. 47.-P. 12−14.
  93. Cross E.W., Park S., Perlin D.S. Cross-resistance of clinikal isolates of Candida albicans and Candida glabrata to over the counter azoles used in the treatment of vaginitis // Microb. Drug Resist 2000.- V. 6, № 2.- P. 155−161.
  94. Das S. K, Banerjee A.B. Lipolytic enzymes of Trichophyton rubrum II Sabouraudia.- 1977.-V. 15.-P. 313−323.
  95. De Boer W., Gunnewiek P.J.A., Lafeber P., Janse J.D., Spit B.E., Woldendorp J.W. Antifungal properties of chitinolytic dune soil bacteria // Soil Biol. Biochem.- 1998.-V. 30.-P. 193−203.
  96. De Boer W., Folman L.B., Summerbell R.C., Boddy L. Living in a fungal world: impact of fungi on soil bacterial niche development // FEMS Microbiol. Rev.- 2005.-V. 29.-P. 795−811.
  97. Debono M., Gordee R.S. Antibiotics that inhibit fungal cell wall // Ann. Rev. Microbiol.- 1994.- V. 48.- P. 471−497.
  98. De Lucca A.J. and Walsh T.J. Antifungal peptides: origin, activity, and therapeutic potential // Rev. Iberoam. Micol.- 2000 V. 17 — P. 116−120.
  99. Dijksterhuis J., Sanders M., Gorris L.G.M., Smid E.J. Antibiosis plays a role in the context of direct interaction during antagonism of Paenibacillus polymyxa towards Fusarium oxysporum 11 Journal of Applied Microbiology 1999.- V. 86-P. 13−21.
  100. Evolceanu R, Lazar Maria. Le probleme de 1' existence et de la mise en evidence des ferments keratinolytiques chez les dermatophytes // Mycopath Mycol Appl.- I960.- V. 12.- P. 216−222.
  101. Feio S.S., Barbosa A., Cabrita M., Nunes L., Esteves A., Roseiro J.C. and Curto M.J.M. Antifungal activity of Bacillus subtilis 355 against wood-surface contaminant fungi // J. Ind. Microbiol. Biotechnol 2004.- V. 31.- P. 199−203.
  102. Fiddaman P.J., Rossall S. The production of antifungal volatiles by Bacillus subtilis II J. Appl. Bacterid 1993.- V. 74.- P. 119−126.
  103. Frandberg E., Schnurer J. Antifungal activity of chitinolytic bacteria isolated from airtight stored cereal grains // Can. J. Microbiol.- 1998.- V. 44, №. 2.- P. 121 127.
  104. Fogliano V., Ballio A., Gallo M., Woo S., Scala F. and Lorito M. Pseudomonas lipodepsipeptides and fungal cell wall-degrading enzymes act synergistically in biological control // Mol. Plant-Microbe Interact 2002.- V. 15, № 4.-P. 323−333.
  105. Georgopapadakou N.H. Antifungals: mechanism of action and resistance, established and novel drugs // Curr. Opinion Microbiol 1998-V. l.-P. 547−557.
  106. Gordon R.E. The genus Bacillus II Agricultural handbook N 427. Wash. C.D., — 1973.-275 p.
  107. Gupte M., Kulkarni P., Ganguli B. Antifungal antibiotics // Appl. Microbiol. Biotechnol.- 2002.- V. 58.- P. 46−57.
  108. Hall T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucleic Acids Symp. Ser- 1999 V. 41.-P. 95−98.
  109. Havlickova B., Czaika V.A., Freidrich M. Epidemiological trends in skin mycoses worldwide // Mycoses.- 2008.- V. 51.- P. 2−15.
  110. He H., Shen B., Korshalla J. and Carter G.T. Circulocins, new antibacterial lipopeptides from Bacillus circulons, J2154 // Tetrahedron 2001- V. 51- P. 1189−1195.
  111. Hellgren L, Vincent J. Lipolytic activities of some dermatophytes // J Med Microbiol.- 1980.-V. 13.-P. 155−158.
  112. Hellgren L, Vincent J. Lipolytic activity of some dermatophytes. II. Isolation and characterization of the lipase of Epidermophyton floccosum // J Med Microbiol.- 1981.- V. 14.- P. 347−350.
  113. Hiradate S., Yoshida S., Sugie H., Yada H., Fujii Y. Mulberry anthracnose antagonists (iturins) produced by Bacillus amyloliquefaciens RC-2 // Phytochemistry.- 2002.- V. 61.- P. 693−698.
  114. Hong T.-Y., Meng M. Biochemical characterization and antifungal activity of an endo-l, 3-P-glucanase of Paenibacillus sp. isolated from garden soil // Appl. Microbiol. Biotechnol.- 2003.- V. 61.- P. 472−478.
  115. Hong H A., Huang J-M., Khaneja R., Hiep L V., Urdaci M C. and Cutting S M. The safety of Bacillus subtilis and Bacillus indicus as food probiotics // J. Appl. Microbiol.-2008.-V. 105, № 2.-P. 510−520.
  116. Horikoshi K. and Iida S. Effect of lytic enzyme from Bacillus circulans and chitinase from Streptomyces sp. on Aspergillus oryzae II Nature.- 1959.- V. 183.-P. 186−187.
  117. Horikoshi K., Koffler H. and Arima K. Purification and properties of P-1,3-glucanase from the lytic enzyme of Bacillus circulans II Biochym. Biophys. Acta.-1963.- V. 73.-P. 267−275.
  118. Howell C.R. Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: the history and evolution of current concepts // Plant Disease.-2003.-V. 87, № l.-P. 4−10.
  119. Hsieh F.C., Li M.C., Lin T.C., and Kao S.S. Rapid detection and characterization of surfactin-producing Bacillus subtilis and closely related species based on PCR//Curr. Microbiol.-2004.-V. 49.-P. 186−191.
  120. Huang C.-J., Wang T.-K., Chung S.-C. and Chen C.-Y. Identification of an antifungal chitinase from a potential biocontrol agent, Bacillus cereus 28−9 // J. Biochem. Mol. Biol.- 2005.- V. 38, № i.p. 82−88.
  121. Hyun J.-W., Kim Y.-H., Lee Y.-S. and Park W.-M. Isolation and evaluation of protective effect against Fusarium wilt of sesame plants of antibiotic substance from Bacilluspolymyxa KB-8 // Plant Pathol. J.- 1999.- V. 15, № 3.- P. 152−157.
  122. Jones HE. Immune response and host resistance of humans to dermatophyte infection // J Am Acad Dermatol.- 1993.- Y. 28.- P. 12−18.
  123. Jung W.J., An K.N., Jin Y.L., Park R.D., Lim K.T., Kim K.Y. and Kim T.H. Biological control of damping-off caused by Rhizoctonia solani using chitinase-producing Paenibacillus illinoisensis KJA-424 // Soil Biol. Biochem 2003- V. 35.-P. 1261−1264.
  124. Kajimura Y., Sugiyama M. and Kaneda M. Bacillopeptins, new cyclic lipopeptide antibiotics from Bacillus subtilis FR-2 // The J. Antibiot- 1995.- V. 48.-P. 1095−1103.
  125. Katz E. and Demain A. The peptide anibiotics of Bacillus: chemistry, biogenesis and possible functions // Bacteriol. Rev.- 1977.- V. 41, № 2.- P. 449 474.
  126. Kim P.I., Chung K.-C. Production of an antifungal protein for control of Colletotrichum lagenarium by Bacillus amyloliquefaciens MET0908 // FEMS Microbiol. Lett.- 2004.- V. 234.- P. 177−183.
  127. Klasen H.J. A review on the nonoperative removal of necrotic tissue from burn wound // Burns.- 2000.- V. 26, № 3.- P. 207−222.
  128. Kunert J. Keratin decomposition by dermatophytes: evidence of the sulphitolysis of the protein // Experientia.- 1972.- V. 28. P. 1025−1026.
  129. Kumar A., Saini P., Shrivastava J.N. Biological control of dermatophytic fungus Trichophyton species by Bacillus subtilis II Hindustan Antibiot. Bull —2005.- V. 47−48.- P. 36−40.
  130. Kumar A., Saini P., Shrivastava J.N. Production of peptide antifungal antibiotic and biocontrol activity of B. subtilis II Ind. J. Exp. Biol 2009- V. 47, № l.-P. 57−62.
  131. Leveau J.H. and Preston G.M. Bacterial mycophagy: definition and diagnosis of a unique bacterial-fungal interaction. Tansley review // New Phytologist 2008. -V. 177.-P. 859−876.
  132. Lin G.-H., Chen C.-L., Tschen J.C.-M., Tsay S.-S., Chang Y.-S. and Liu S.-T. Molecular cloning and characterization of fengycin synthetase gene FenB from Bacillus subtilis II J. Bacteriol.- 1998.- V. 180, № 5.- P. 1338−1341.
  133. Lisboa M.P., Bonatto D., Bizani D., Henriques J.A.P., Brandelli, A. Characterization of a bacteriocin-like substance produced by Bacillus amyloliquefaciens isolated from the Brasilian Atlantic forest // Int. Microbiol.2006.-Vol. 9.-P. 111−118.
  134. Liu W.-w., Mu W., Zhu B.-y., Du Y.-c. and Liu F. Antagonistic activities of volatiles from four strains of Bacillus spp. and Paenibacillus spp. against soil-borne plant pathogens // Agricultural Sciences in China 2008 — V. 7, № 9 — P. 1104−1114.
  135. Lorito M., Farkas V., Rebuffat S., Bodo B. and Kubicek C. Cell wall synthesis is a major target of mycoparasitic antagonism by Trichoderma harzianum II J. Bacteriol.- 1996.-V. 178, № 21.-P. 6382−6385.
  136. Lutz M.P., Wenger S., Maurhofer M., Defago G., Duffy B. Signaling between bacterial and fungal biocontrol agents in a strain mixture // FEMS Microbiol. Ecol 2004.- V. 48.- P. 447−455.
  137. Maget-Dana R., Ptak M., Peypoux F. and Michel G. Pore-forming properties of iturin A, a lipopeptide antibiotic // Biochim. Biophys. Acta. 1985. — V. 815. -P. 405−409.
  138. Maget-Dana R., Thimon L., Peypoux F., Ptak M. Surfactin/iturin A interactions may explain the synergistic effect of surfactin on the biological properties of iturin A // Biochimie.- 1992.- V. 74.- P. 1047−1051.
  139. McSpadden Gardener B.B. Ecology of Bacillus and Paenibacillus spp. in agricultural systems // Phytopathology 2004.- V. 94 — P. 1252−1258.
  140. Menkhaus M., Ullrich C., Kluge B., Vater J., Vollenbroich D. and Kamp R. M. Structural and functional organization of the surfactin synthetase multienzyme system // The J. Biol. Chem.- 1993.- V. 268, № 11.- P. 7678−7684.
  141. Milner J.L., Silo-Suh L., Lee J.C., He H., Clardy J. and Handelsman J. Production of Kanosamine by Bacillus cereus UW85 // Appl. Environ. Microbiol-1996.- V. 62, № 8.- P. 3061−3065.
  142. Mitchell R. and Alexander M. Mycolytic phenomenon and biological control ofFusarium in soil. //Nature.- 1961.- V. 190.- P. 109−110.
  143. Monod M, Capoccia S, Lechenne B, Zaugg C, Holdom M, Jousson O. Secreted proteases from pathogenic fungi // Int J Med Microbiol.- 2002.- V. 292, № 5−6.- P. 405−419.
  144. Nielsen P., Sorensen J. Multi-target and medium-independent fungal antagonism by hydrolytic enzymes in Paenibacillus polymyxa and Bacilluspumilus strains from barley rhizoshere // FEMS Microbiol. Ecol.- 1997.- V. 22.- P. 183−192.
  145. Nikitenko, V I. Infection prophylaxis of gunshot wounds using probiotics // Journal of Wound Care.- 2004.- V. 13, № 3.- P. 363−366.
  146. Odds F.C., Brown A.J., Gow N.A. Antifungal agents: mechanisms of action. A review // Trends Microbiol.- 2003.- V. 11, № 6.- P. 272−279.
  147. Orwa J.A., Govaerts C., Busson R., Roets E., Van Schepdae A., Hoogmartens J. Isolation and structural characterization of polymyxin B components // J. Chromatography A.- 2001.- V. 912.- P. 369−373.
  148. Pal K.K. and McSpadden Gardener B. Biological control of plant pathogens // The Plant Health Instructor DOI.- 2006.- P. 1−22.
  149. Patil R.S., Ghormade V. and Deshpande M.V. Chitinolytic enzymes: an exploration // Enzyme Microb. Technol.- 2000.- V. 26.- P. 473−483.
  150. Pleban S., Chernin L. and Chet I. Chitinolytic activity of an endophytic strain of Bacillus cereus II Lett. Appl. Microbiol.- 1997.- V. 25.- P. 284−288.
  151. Podile A.R., Prakash A.P. Lysis and biological control of Aspergillus niger by Bacillus subtilis AF1 // Can. J. Microbiol.- 1996.- V. 42.- P. 533−538.
  152. Raza W., Yang W. and Shen Q.-R. Paenibacillus polymyxa: antibiotics, hydrolytic enzymes and hazard assessment // J. Plant Pathol 2008 — V. 90 — P. 419−430.
  153. Rippon J.W. Host specificity in dermatophytoses // Proceedings of the Eight
  154. Congress of the International Society for Human and Animal Mycology.- 1982.- P. 28−33.
  155. Roberts W. and Selitrennikoff C. Plant and bacterial chitinases differ in antifungal activity // J. Gen. Microbiol.- 1988.- V. 134.- P. 169−176.
  156. Ryu C.M., Farag M. A, Hu C.H., Reddy M.S., Wei H.X., Kloepper J.W. et al. Bacterial volatiles induce systemic resistance in Arabidopsis II Plant Physiol-2004.-V. 134.-P. 1017−1026.
  157. San-Lang W., Shich I.-L., Wang C.-H., Tseng K.-C., Chang W.-T., Twu Y.K., Ro J.-J. and Wang C.-L. Production of antifungal compounds from chitin by Bacillus subtilis II Enzyme Microb. Technol.- 2002.- V. 31.- P. 321−328.
  158. Seifert K.A., Hamilton W.E., Breuil C., Best M. Evaluation of Bacillus subtilis CI86 as a potential biological control of sapstain and mould on unseasonned lumber // Can. J. Microbiol.- 1987.- V 33.- P 1102−1107.
  159. Seydlova G., Svobodova J. Review of surfactin chemical properties and the potential biomedical applications // Cent. Eur. J. Med 2008 — V. 3., № 2 — P. 123−133.
  160. Shai Y. Mode of action of membrane active antimicrobial peptides // Biopolymers (Peptide Science).- 2002 V. 66.- P. 236−248.
  161. Siesenop U, Bohm K.H. Comparative studies on keratinase production of Trichophyton mentagrophytes strains of animal origin // Mycoses.- 1995.- V. 38. P. 205−209.
  162. Silo-Suh L.A., Stabb E.V., Raffel SJ. and Handelsman J. Target range of zwittermicin A, an aminopolyol antibiotic from Bacillus cereus II Curr. Microbiol. -1998.- V. 37-P. 6−11.
  163. Simpanya M. F, Baxter M. Multiple proteinases from two Microsporum species // J Med VetMycol.- 1996.- V.34.- P. 31−36.
  164. Sojakova M., Liptajova D., Borovsky M., Subik J. Fluconazole and itraconazole suscaptibility of vaginal yeast isolates from Slovakia // Micopathologia.- 2004.- V. 157, № 2.- P. 163−169.
  165. Stein T. Bacillus subtilis antibiotics: structures, syntheses and specific functions // Mol. Microbiol- 2005.- V. 56.- P. 845−857.
  166. Tamehiro N., Okamoto-Hosoya Y., Okamoto S., Ubukata M., Hamada M., Naganawa H. and Ochi K. Bacilysocin, a novel phospholipid antibiotic produced by Bacillus subtilis 168 // Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2002 — V. 46, № 2.-P. 315−320.
  167. Theis T., Stahl U. Antifungal proteins: targets, mechanisms and prospective applications // Cellular and Molecular Life Sciences 2004 — V. 61- P. 437−455.
  168. Thimon L., Peypoux F., Wallach J. and Michel G. Effect of the lypopeptide antibiotic, iturin A, on morphology and membrane ultrastructure of yest cells // FEMS Microbiol. Lett.- 1995.-V. 128.-P. 101−106.
  169. Tompkins T.A., Hagen K.E., Wallace T.D. and Fillion-Forte V. Safety evaluation of two bacterial strains used in Asian probiotic products // Can. J. Microbiol.- 2008.- V. 54, № 5.- P. 391−400.
  170. Tu J.C. Gliocladium vir ens, a destructive mycoparasite of Sclerotinia sclerotiorum II Phtopathol.- 1980.- V. 70, № 7.- P. 670−674.
  171. Vanittanakom N., Loeffler W., Koch U., Jung G. Fengycin, a novel antifungal lipopeptide antibiotic produced by Bacillus subtilis F-29−3 // J. Antibiot 1986-V. 39, № 7.- P. 888−901.
  172. Verma M., Brar S. K., Tyagi R.D., Surampalli R.Y., Valero J.R. Antagonistic fungi, Trichoderma spp.: panoply of biological control. Review // Biochem. Engineering J.- 2007.- V. 37.- P. 1−20.
  173. Vinale F., Sivasithamparam K., Ghisalberti E.L., Marra R., Woo S.L., Lorito M. Trichoderma-plant-p&thogQn interactions. Review // Soil Biol. Biochem. -2008.-V. 40.-P. 1−10.
  174. Wagner DK, Sohnle PG. Cutaneous defenses against dermatophytes and yeasts. Clin Microbiol Rev.- 1995.- V. 8.- P. 317- 335.
  175. Watanabe T., Kanai R., Kawase T., Tanabe T., Mitsutomi M., Sakuda S. and Miyashita K. Family 19 chitinases of Streptomyces species: characterization and distribution//Microbiology.- 1999-V. 145.-P. 3353−3363.
  176. Weitzman I, Summerbell RC. The dermatophytes // Clin Microbiol Rev.-1995.- V. 8.-P. 240−259.
  177. Woo S. L., Scala F., Ruocco M. and Lorito M. The molecular biology of the interactions between Trichoderma spp., phytopathogenic fungi, and plants // Phytopathology.-2006.-V. 96,№ 2.-P. 181−185.
  178. Yakimov M.M., Abraham W.-R., Meyer H., Giuliano L., Golyshin P.N. Structural characterization of lichenysin A by fast atom bombardment tandem mass spectrometry // Biochim. Biophys. Acta 1999.- V. 1438 — P. 273−280.
  179. Yu G.Y., Sinclair J.B., Hartman G.L. and Bertagnolli B.L. Production of iturin A by Bacillus amyloliquefaciens suppressing Rhizoctonia solani II Soil Biol. Chem 2002 — V. 34.-P. 955−963.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!