Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Фотоиндуцированная генерация электрических потенциалов в мембранах растительной клетки

Диссертация: Фотоиндуцированная генерация электрических потенциалов в мембранах растительной клетки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Первичное запасание энергии света при фотосинтезе связано с образованием мембранного электрического (эл.) потенциала (Дер) в тилакоидах хло-ропластов, который участвует в регуляции трансмембранных ионных потоков и механизмах энергетического сопряжения. Известно, что фотогенерация Дер обусловлена совместным функционированием фотосистемы 2 (ФС2), ФС1 и цитохромного h (Jf комплекса. Фотохимические… Читать ещё >

Фотоиндуцированная генерация электрических потенциалов в мембранах растительной клетки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Перечень сокращений
  • ВВЕДЕНИЕ. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Фотоиндудированные изменения разности электрических потенциалов на тилакоидной мембране
    • 1. 2. Индукция флуоресценции хлорофилла зеленых растений в связи с электрогенезом на мембранах хлоропластов
  • ГЛАВА 2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объект и среда
    • 2. 2. Микроэлектродные измерения мембранного потенциала
    • 2. 3. Измерение флуоресценции хлорофилла
    • 2. 4. Порядок проведения опытов
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ
    • 3. 1. Электрогенные процессы в хлоропластах, обусловленные фотоактивацией переноса электронов в области ФС
      • 3. 1. 1. Фотоэлектрические ответы хлоропластов
      • 3. 1. 2. Влияние предварительного освещения на фотогенерацию Дф
      • 3. 1. 3. Флуоресценция одиночного хлоропласта
      • 3. 1. 4. Одновременные измерения Аср и флуоресценции хлорофилла: влияние темновой адаптации на кинетику изменений
      • 3. 1. 5. Сравнение индукционных кривых Дер и флуоресценции при модификациях фотосинтетической мембраны
      • 3. 1. 6. Воздействие ингибиторов
    • 3. 2. Влияние мембранного потенциала на флуоресценцию хлорофилла
      • 3. 2. 1. Изменение флуоресценции при пропускании тока через хлоропласт
      • 3. 2. 2. Влияние сдвигов мембранного потенциала на флуоресценцию изолированного хлоропласта
      • 3. 2. 3. Зависимость электроиндуцированных изменений флуоресценции от редокс-состояния первичного хинонного акцептора Qa
      • 3. 2. 4. Сравнение индукционных кривых мембранного потенциала и флуоресценции хлорофилла в хлоропластах с разной электрогенной активностью
      • 3. 2. 5. Влияние фотоиндуцированного мембранного потенциала на флуоресценцию хлоропласта
    • 3. 3. Запускаемые светом изменения мембранного потенциала клеток и их связь с энергозависимым тушением флуоресценции
      • 3. 3. 1. Триггерные электрические ответы клеток
      • 3. 3. 2. Одновременные измерения разности электрических потенциалов и выхода флуоресценции под действием света
      • 3. 3. 3. Запускаемые светом потенциалы действия и изменения квантовой эффективности ФС2 в клетках Anthoceros
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 4. 1. Изменение мембранного потенциала и флуоресценции хлорофилла, опосредованные активацией транспорта электронов в области ФС
    • 4. 2. Прямое влияние мембранного потенциала на выход флуоресценции хлорофилла в ФС
    • 4. 3. Модель потенциалозависимых изменений флуоресценции хлорофилла ФС
    • 4. 4. Фотоиндуцированные изменения электрического потенциала на клеточной мембране и изменения флуоресценции хлорофилла
    • 4. 5. Запускаемая светом генерация ПД и нефотохимическое тушение флуоресценции ФС
  • Выводы

Актуальность проблемы. Преобразование световой энергии в хлоро-пластах зеленых растений происходит в условиях непрерывно меняющейся внешней среды. Возможности адаптации растений связаны с существованием систем регуляции, действующих на разных уровнях, включая первичные процессы фотосинтеза [89- 90- 180- 181- 69- 86- 171- 178- 195- 26- 206- 127- 222- 214- 233- 238- 199- 179]. Изменения флуоресценции (Фл) хлорофилла, отражающие состояние фотосинтетического аппарата, находят широкое применение в прикладных исследованиях и экологическом мониторинге [41- 205- 210- 208- 209- 211- 203- 207- 19- 140- 138- 147- 193- 104- 190- 105- 200- 201- 237- 204- 202- 225- 233- 199- 188- 189- 231- 235]. Однако, современные представления о регуляторных механизмах, за редкими исключениями, не учитывают возможное влияние мембранных электрохимических процессов, которые развиваются на разных структурных уровнях: в тилакоидах и строме хлоропласта, в цитоплазме и на плазматических мембранах клетки.

Первичное запасание энергии света при фотосинтезе связано с образованием мембранного электрического (эл.) потенциала (Дер) в тилакоидах хло-ропластов, который участвует в регуляции трансмембранных ионных потоков и механизмах энергетического сопряжения [44- 172- 181- 55- 171- 68- 71- 184- 58- 154- 155]. Известно, что фотогенерация Дер обусловлена совместным функционированием фотосистемы 2 (ФС2), ФС1 и цитохромного h (Jf комплекса [181- 86- 171- 178- 130- 195- 196- 197- 26- 238- 100- 234]. Фотохимические процессы в ФС1 и ФС2 включают первичное разделение зарядов в реакционных центрах (между Р680 и феофитином в ФС2 и между Р700 и акцептором А0 в ФС1) и дальнейшие стадии стабилизации разделенных зарядов, при которых электрон переходит на последующие переносчики (хинонный акцептор Qa в ФС2- железо-серные белки Fx, FA, FB в ФС1)[187]. В образование Дф могут вносить вклад конформационные изменения заряженных аминокислотных остатков и редокс-центров, сопровождающие трансмембранный перенос заряда [230]. Источником генерации Дф может служить и обратимая Н^-АТРаза, способная транспортировать протоны за счет гидролиза АТР и синтезировать АТР за счет энергии электрохимического градиента протонов.

Генерируемая на свету разность электрических потенциалов Дф может по принципу обратной связи регулировать скорость электронотранспортных стадий, в которых перенос электрона ориентирован перпендикулярно или под углом к плоскости мембраны [92- 171- 5- 17- 124- 159- 238]. Изменения напряженности эл. поля в энергосопрягающих мембранах хлоропластов оказывают существенное влияние на обратный перенос электронов в реакционных центрах ФС2, проявляющийся в замедленной Фл. Создание положительного Дер внутри тилакоидов с использованием различных экспериментальных приемов понижает энергетический барьер для рекомбинации разделенных зарядов, связанной с образованием возбужденных молекул хлорофилла, и приводит к усилению замедленной Фл [6- 103- 117- 161- 206- 220- 233]. Однако механизм влияния Дф на процессы в реакционном центре ФС2 изучен недостаточно.

Опыты на изолированных тилакоидах (блебах) выявили эффекты внешнего эл. поля на интенсивность быстрой Фл хлорофилла [104- 186- 182- 48]. Становится очевидным, что Дф следует учитывать при моделировании индукционных кривых Фл зеленых растений [218]. Однако одновременное измерение индукционных изменений Дф и флуоресценции хлорофилла, а на одном объекте не проводилось. Вопрос о взаимосвязи эл. мембранных процессов и индукционных изменений Фл несомненно требует прямого экспериментального изучения. Один из подходов к исследованию влияния мембранного потенциала на электронный транспорт в области ФС2 заключается в измерении Фл хлорофилла, а при искусственных смещениях Дф на тилакоидной мембране путем пропускания тока через микроэлектрод, введенный в отдельный крупный хлоропласт [186].

Функционирование хлоропластов и выход Фл хлорофилла могут зависеть также от изменений эл. потенциала на плазматической мембране клетки. Сдвиги потенциала клетки сопряжены с трансмембранными потоками ионов и могут сопровождаться изменениями ионного состава цитоплазмы [166- 34] [166]. Для проверки представлений о вовлечении мембранных процессов целой клетки в регуляцию фотосинтеза удобно использовать способность некоторых мхов генерировать фотоиндуцированные потенциалы действия [64- 34- 184]. Экспериментальное изучение влияния мембранного потенциала тила-коидов и плазмалеммы клетки на фотосинтетические процессы зависит от возможности четкого разграничения эл. процессов, протекающих на этих пространственно разделенных мембранах. Перечисленные вопросы рассмотрены в данной работе.

Цели и задачи работы.

Цель работы состояла в исследовании механизмов и функциональной роли фотогенерации эл. потенциала на тилакоидных мембранах и вызываемых светом изменений эл. потенциала плазмалеммы путем сочетания микроэлектродных методов и микрофлуориметрии в опытах с целыми клетками и одиночными хлоропластами.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

• Разработать метод одновременной регистрации индукционных изменений Аф и флуоресценции Хл, а в хлоропласте растительной клетки in situ и изучить фотоиндуцированные изменения Аф и Фл в норме и при различных физико-химических воздействиях.

• Исследовать прямое влияние мембранного потенциала Аф на выход Фл Хл, а путем искусственного смещения эл. потенциала на тилакоидных мембранах хлоропласта при различных состояниях ЭТЦ (при разном уровне восстановления хинонного акцептора ФС2 Qa).

• Исследовать связи индукционных изменений Фл с изменениями мембранного потенциала на плазматической мембране, запускаемыми при освещении различной длительности.

Научная новизна. Впервые выявлены коррелирующие стадии в индукционных изменениях Лср и Фл Хл а, обусловленные ускорением потока электронов в акцепторной части ФС1. Впервые показано прямое влияние фото-индуцированного Дф тилакоидных мембран на Фл хлорофилла ФС2 в целой растительной клетке. Впервые установлено, что пропускание биполярных импульсов тока, через хлоропласт может вызывать симметричные или асимметричные сдвиги Фл Хл, а в зависимости от редокс состояния акцептора Qa. На основе представлений об обратимой радикальной паре в ФС2 [70- 95- 156] создана модель потенциалозависимых изменений Фл, учитывающая влияние Дер на процессы разделения, рекомбинации зарядов и стабилизации состояний в РЦ ФС2.

Практическая значимость. Результаты работы послужили основой для развития теоретических моделей процессов разделения и рекомбинации зарядов во внешнем эл. поле [169- 175- 170] и подтверждены экспериментально в ряде лабораторий [48- 50- 49]. Полученные результаты нашли практическое применение на кафедре биофизики Биологического факультете МГУ им. М. В. Ломоносова для построения обобщенной модели индукционных стадий фотосинтеза с учетом генерации мембранного потенциала хлоропластов [175]. Одновременная регистрация индукционных изменений Фл и эл. потенциала мембран в нативной растительной клетке в различных условиях представляет практическое значение для экологического мониторинга.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на IV Всесоюзн. межуниверситетской конференции по биологии клетки (Тбилиси, 1985), научных конференциях молодых ученых биологического ф-та МГУ (Москва, 1986, 1987), Ill-съезде биофизиков России (Воронеж, 2004), Межд. научно-практической конференции МГУ-СУНИ «Человечество и окружающая среда» (Москва, 2004), 12-ой Межд. конференции «Математика. Компьютер. Образование» (Пущино, 2005), семинарах кафедры биофизики биологического факультета и Экоцентра МГУ им. М. В. Ломоносова, XVIII Пущинских чтениях по фотосинтезу (2005).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 19 работ, из них: 5 в реферируемых научных российских журналах, 2 в зарубежных журналах, 5 в сборниках научных трудов, 2 в книгах, 1 в тезисах биофизического съезда, 4 в тезисах конференций.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, четырех глав, содержащих описание методов исследования, результаты, обсуждение, выводы и список литературы. Материалы изложены на 148 страницах текста и включают 2 фотографии и 43 рисунка.

Список литературы

включает 235 работ (из них 175 на иностранных языках).

Выводы.

1. Одновременные измерения индукционных изменений мембранного потенциала Лср и флуоресценции хлорофилла, а (Хл а) на хлоропластах Anthoceros выявили вторичное нарастание Аф после лаг-периода 0.2−0.4 с, которое коррелирует по времени и чувствительности к ингибиторам с фазой PSi снижения Фл. Эти синхронные изменения Аф и флуоресценции обусловлены фотоактивацией переноса электронов на акцепторной стороне ФС1 и находят отражение в сигнале ДА8ю хлорофилла Р700.

2. На хлоропластах Anthoceros in situ и изолированных хлоропластах Р. metallica показано, что пропускание электрического тока через тилакоидные мембраны повышает или снижает флуоресценцию в зависимости от полярности создаваемого мембранного потенциала Аф. Амплитуда изменений флуоресценции возрастает с увеличением силы тока, а их кинетика примерно соответствует зарядке эл. емкости мембраны.

3. Чувствительность флуоресценции к сдвигам Аф зависит от редокс состояния первичного акцептора ФС2 Qa. При подавлении донорной части ФС2 гидроксиламином положительные сдвиги Аф повышают флуоресценцию на 10−15%, а отрицательные — оказывают слабое влияние. При подавлении акцепторной части ФС2 положительные сдвиги Аф не сказываются на флуоресценции, а отрицательные вызывают ее тушение.

4. В условиях фотогенерации Аф за счет изолированной активности ФС1, фотоиндуцированные изменения Аф и флуоресценции Хл, а проявляют кинетическое сходство, что подтверждает возможность прямого влияния фотоин-дуцированного мембранного потенциала тилакоидов на выход флуоресценции Хл, а ФС 2.

5. Предложена модель потенциалозависимых изменений флуоресценции Хл, а ФС2. Показано, что симметричные и асимметричные сдвиги Фл под действием биполярных импульсов тока можно объяснить, учитывая влияние мембранного потенциала на процессы разделения, рекомбинации и стабилизации зарядов в РЦ.

6. Запуск фотосинтеза у Anthoceros вспышкой длительностью > 1−3 с вызывает на плазматической мембране генерацию потенциала действия (ПД), которая развивается сходным образом в темноте и на свету. Генерация ПД сопровождается снижением квантового выхода первичных фотопроцессов в ФС2 и усилением тепловой диссипации энергии поглощенных квантов. Результаты раскрывают наличие сложных регуляторных связей между фотосинтезом и мембранными процессами в растительной клетке.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Albertsson Р.-А. The structure and function of the chloroplast photosyn-thetic membrane — a model for domain organization // Photosynthesis Research.- 1995.- V. 46.- P. 141−149.
  2. Albertsson P.-A. A quantitative model of the domain structure of the photo-synthetic membrane // TRENDS in Plant Science.- 2001.- V. 6.- № 8.- P. 349−354.
  3. Anderson J. M. Consequences of spatial separation of photosystems 1 and 2 in thylakoid membranes of higher plant chloroplasts // FEBS Lett.-1981.- V. 124.-№ 1.- P. 1−10.
  4. Andersson В., Haehnel W. Location of photosystem I and photosystem II reaction centers in different thylakoid regions of stacked chloroplasts // FEBS Lett.- 1982.- V. 146.- № 1.- P. 13−17.
  5. Arata H., Nishimura M. Thermodynamics of electron transfer and its coupling to vectorial processes in biological membranes // Biophysical Journal.-1980.- V. 32.- № 2.- P. 791−806.
  6. Arnold W., Azzi J. The mechanism of delayed light production by photosyn-thetic organisms and a new effect of electric fields on chloroplasts // Photo-chem. Photobiol.-1971.- V. 14.- № 15.- P. 233−240.
  7. Arnold W. A., R.J. A. Two effects of electrical field on chloroplasts // Plant Physiol.- 1977.- V. 60.- № 3.- P. 449−451.
  8. Avron M. Mechanism of energy transduction in photosynthetic membranes // Biol. Cell.- 1982.- V. 45.- № 3.- P. 353−359.
  9. Barber J. Millisecond delayed light as an indicator of the electrical and permeability properties of the thylakoid membranes // Ion transport in plants. / Edited by W. P. Anderson.- London, Acad. Press., 1973.- P. 191−204.
  10. Barber J. Membrane surface charges and potentials in relation to photosynthesis // Biochim. Biophys. Acta.- 1980.- V. 594.- № 4.- P. 253−308.
  11. Barber J., Searle G. F. M. Cation-induced increase in chlorophyll fluorescence yield and the effect of electrical charge // FEBS Lett.- 1978.- V. 92. f № 1.-P. 5−8.
  12. Barber J., Telfer A. Ionic regulation in chloroplasts as monitored by promt and delayed chlorophyll fluorescence // Memrane transport in plant. / Edited by U. Zimmermann.- Berlin, Springer-Verlag, 1974.- P. 281−288.
  13. Bar-Zvi D., Shavit N. Modulation of the chloroplast ATPase by tight ADP binding. Effect of uncouplers and ATP // J. Bioenergetics and Biomem-branes.- 1982.- V. 14.- № 5−6.- P. 467−481.
  14. Bendall D. S., Manasse R. S. Cyclic photophosphorylation and electron transport // Biochim. Biophys. Acta.- 1995.- V. 1229.- P. 23−38.
  15. Bennet J. Chloroplast protein phosphorylation and the regulation of photosynthesis // Physiol. Plantarum.- 1984.- V. 60.- № 2.- P. 583−590.
  16. Blubaugh D. J., Govindjee Bicarbonate, not C02 is the species required for stimulation of photosystem electron transport // Biochim. Biophys. Acta.-1986.-V. 848.-№ 1.-P. 147−151.
  17. Boork J., Wennerstrom H. The influence of membrane potentials on reaction rates. Control in free-energy-trunsducting systems // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.- V. 767.- № 2.- P. 314−320.W
  18. Bose S. Dibromothymoquinone (DBMIB) mediated reduction of cytochrome in solution and formation of DBMIB-cytochrome complex // Bio-chem. and Biophys. Res. Commun.- 1985.- V. 127.- № 2.- P. 578−583.
  19. Bradbury M., Baker N. B. Analysis of the induction of chlorophyll fluorescence in leaves and isolated thylakoids: contributions of photochemical and non-photochemical quenching // Proc. Roy. Soc. London. Ser. В.- 1983.- V. 220.-№ 1219.- P. 251−264.
  20. Bradbury M., Baker N. B. A quantitative determination of photochemical and non-photochemical quenching during the slow phase of the chlorophyll fluorescence induction curve of bean leaves // Biochim. Biophys. Acta.-1984.- V. 765.- № 3.- P. 275−281.
  21. Bradbury M., Ireland C. R., Baker N. B. An analysis of the chlorophyll fluorescence transients from pea leaves generated by changes in atmospheric concentrations of C02 and 02 // Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 806.-№ 3, — P. 357−365.
  22. Briantais J. M., Vernotte C., Picaud M., Krause G. H. A quantitative study of the slow decline of chlorophyll a fluorescence in isolated chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1979.- V. 548.- № 1.- p. 128−136.
  23. Bulychev A. A. Different kinetics of membrane potential formation in dark-adapted and preilluminated chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.-V. 766.- № 3.- P. 647−652.
  24. Bulychev A. A., Andrianov V. K., Kurella G. A. Effect of dicyclohexylcar-bodiimide on proton conductance of thylakoid membrane in intact chloro-plast // Biochim. Biophys. Acta.- 1980.- V. 590.- № 2.- P. 300−308.
  25. Bulychev A. A., Andrianov V. K., Kurella G. A., F.F. L. Micro-electrode measurements of the transmembrane potential of chloroplasts and its photoinduced changes // Nature.- 1972.- V. 236.- № 5343.- P. 175−177.
  26. Bulychev A. A., Andrianov V. K., Kurella G. A., F.F. L. Photoinduction kinetics of electrical potential in a single chloroplast as studied with micro-electrode technique // Biochim. Biophys. Acta.- 1976.- V. 430.- № 3.- P. 336−351.
  27. Bulychev A. A., Antonov V. F., Schevchenko E. V. Patch-clamp studies of light-induced currents across the thylakoid membrane of isolated chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1992.- V. 1099.- № 1.- P. 16−24.
  28. A. A., Kamzolkina N. A., Luengviriya J., Rubin А. В., Mueller S. C. Effect of a single excitation stimulus on photosynthetic activity and lightdependent рН banding in Chara cells // J. Membrane Biol.- 2004.- V. 201.-.
  29. Bulychev A. A., Niyazova M. M., Turovetsky V. B. Evidence for delayed photoactivation of electrogenic electron transport in chloroplast membranes //Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 808.- № 1.- P. 186−191.
  30. Bulychev A. A., Niyazova M. M., Turovetsky V. B. Electro-induced changes of chlorophyll fluorescence in individual intact chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1986.- V. 850.- № 2.- P. 218−225.
  31. Bulychev A. A., Turovetsky V. B. Light-triggered changes of membrane potential in cells of Anthoceros punctatus and their relation to activation of chloroplast ATPase // J. Experimental Botany.- 1983.- V. 34.- № 146.- P. 1181−1188.
  32. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. The effect of cations and membrane permeability modifying agents on the dark kinetics of the photoelectric response in isolated chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1976.- V. 423.-№ 4.- P. 548−556.
  33. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. Effect of ionophores A23187 and ni-gericin on the light-induced redistribution of Mg2+, K+, and H+ across the thylakoid membrane // Biochim. Biophys. Acta.- 1976.- V. 449.- № 1.- P. 48−58.
  34. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. Enhancement of the light-triggered electrical response in plant cells following their deenergization with uncouplers // Physiol. Plantarum.- 1995.- V. 94.- № 1.- P. 64−70.
  35. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. Light-triggered electrical events in the thylakoid membrane of plant chloroplasts // Physiol. Plantarum.- 1999.- V. 105.- P. 577−584.
  36. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. Modulation of photosystem II chlorophyll fluorescence by electrogenic events generated by photosystem I // Bio-electrochemistry.- 2001.- V. 54.- P. 157−168.
  37. Bulychev A. A., Vredenberg W. J. Spatio-temporal patterns of photosystem II activity and plasma-membrane proton flows in Chara corallina cells exposed to overall and local illumination // Planta.- 2003.- V. 218.- № 1.- P. 143−151.
  38. Butler W. L. Fluorescence yield in photosynthetic systems and its relation to electron transport // Current Topics in Bioenergetics.- 1966.- V. 1.- P. 49−73.
  39. Butler W. L. Excitation transfer out of open photosystem 2 reaction centers // Photochem. and Photobiol.- 1984.- V. 40.- № 4.- P. 513−518.
  40. Crofts A. R., Wraight C. A., Fleischman D. E. Energy conservation in the photochemical reactions of photosynthesis and its relation to delayed fluorescence // FEBS Lett.- 1971.- V. 15.- № 2.- P. 89−100.
  41. Crofts A. R., Yerkes С. T. A Molecular Mechanism for Qe-quenching // FEBS Letters.- 1994.- V. 352.- P. 265−270.
  42. Dahse I., Bulychev A. A., Kurella G. A. Weak tentoxin effect on the electrical light response of isolated chloroplasts of Peperomia metallica // Physiol. Plant.- 1985.- V. 65.- № 4.- P. 446−452.
  43. Dau H., Sauer K. Electric field effect on chlorophyll fluorescence and its relation to photosystem II charge separation reactions studied by a salt-jump technique // Biochim. Biophys. Acta.- 1991.- V. 1089.- № 1.- P. 49−60.
  44. Dau H., Sauer K. Electric field effect on the picosecond fluorescence of photosystem II and its relation to the energetics and kinetics of primary charge separation // Biochim. Biophys. Acta.- 1992.- V. 1102.- № 1.- P. 91−106.
  45. Dau H. R., Windecker R., Hansen U.-P. Effect of light-induced changes in thylakoid voltage on chlorophyll fluorescence of Aegopodium podagraria leaves // Biochim. Biophys. Acta.- 1991.- V. 1057.- P. 337−345.
  46. Davis R. F. Photoinduced changes in electrical potentials and H+ activities of the chloroplast, cytoplasm and vacuole of Phaeoceros laevis // Membranek transport in plants. / Edited by U. Zimmermann, J. Dainty.- Berlin, Springer, 1974.- P. 197−202.
  47. Delphin E., Duval J.-C., Etienne A.-L., Kirilovsky D. DpH-dependent pho-tosystem II fluorescence quenching induced by saturating, multiturnover pulses in red algae // Plant Physiol.- 1998.- V. 118.- P. 103−113.
  48. Diner В., Joliot P. Effect of transmembrane electric field on the photochemical and quenching properties of photosystem II in vivo // Biochim. Biophys. Acta.- 1976.- V. 423.- № 2.- P. 479−498.
  49. Duysens L. N. M., Sweers H. E. Mechanism of the two photochemical reactions in algae as studied by means of fluorescence // Studies on licroalgae and photosynthetic bacteia. V. 353−372. / Edited.- Tokyo, University of Tokyo Press, 1963.
  50. Ellenson J. L., Sauer K. The electrophotoluminescence of chloroplasts // Photochem. and Photobiol.- 1976.- V. 23.- № 2.- P. 113−123.
  51. Ettinger W. F., Clear A. M., Fanning K. J., Peck M. L. Identification of a Ca2+/H+ antiport in the plant chloroplast thylakoid membrane // Plant Physiol.- 1999.-V. 119.-P. 1379−1386.
  52. Evans M. C., Atkinson Y. E., Ford R. C. Redox characterisation of the photosystem 2 electron acceptors. Evidence for two electron carriers between pheophytin and Q // Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 806.- № 2.- P. 247 254.
  53. Farkas D. L., Korenstein R., Malkin S. Electrophotoluminescence and the electrical properties of the photosynthetic membrane // Biophysical Journal.-1984.- V. 45.- № 2.- P. 363−373.
  54. Fleischman D. E., Mayne В. C. Chemically and physically induced luminescence as a probe of photosynthetic mechanisms // Current Topics in Bio-energetics.- 1973.- V. 5.- P. 77−105.
  55. Flores S., Ort D. R. Investigation of the apparent in efficiency of the coupling between photosystem 2 electron transfer and ATP formation // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.- V. 766.- № 2.- P. 289−302.
  56. Forster V., Junge W. Interaction of hydroxylamine with the water-oxidizing enzyme investigated via proton release // Photochem. Photobiol.- 1985.- V. 41.-№ 2.- P. 191−194.
  57. C. F., Кок B. Direct observation of a light-induced elecric field in chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1974.- V. 357.- № 2.- P. 308−318.
  58. Fujii S., Shimmen Т., Tazawa M. Light-induced changes in membrane potential in Spirogyra // Plant and Cell. Physiol.- 1978.- V. 19.- № 4.- P. 573 590.
  59. Giersch G. Nigericin-induced stimulation of photophosphorylation in chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1983.- V. 725.- № 2.- P. 309−319.
  60. Gilmore A. M., Bjorkman O. Temperature-sensitive coupling and uncoupling of ATPase-mediated, nonradiative energy dissipation: Similarities between chloroplasts and leaves // Planta.- 1995.- V. 197.- P. 646−654.
  61. Goh C.-H., Schreiber U., Hedrich R. New approach to monitoring changes in chlorophyll a fluorescence of single guard cells and protoplasts in response to physiological stimuli // Plant, Cell Environ.- 1999.- V. 22.- P. 1057−1070.
  62. Goltsev V. N., Venediktov P. S., Janumov D. A. Temperature dependence of the delayed fluorescence from wheat leaves treated by DCMU // Biochim. Biophys. Acta.- 1980.- V. 593.- № 1.- P. 133−135.
  63. Graber P., Witt H. T. On the extent of the electrical potential across thylakoid membrane induced by continuous light in Chlorella cells // Biochim. Biophys. Acta.- 1974.- V. 333.- № 2.- P. 389−392.
  64. Grondelle R. V. Excitation energy transfer, trapping and annihilation in pho-tosynthetic systems // Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 811.- P. 147−195.
  65. Grooth B. G. d., van Gorkom H. J. External electric field effects on prompt and delayed fluorescence in chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1981.-V. 635.- № 3.- P. 445−456.
  66. Grooth B. G. D., van Gorkom H. J., Meiburg R. F. Generation of the 518 nm absorbance change in chloroplasts by an externally applied electrical field // FEBS Letters.- 1980.- V. 113.- № 1.- P. 21−24.
  67. Grooth В. G. d., van Gorkom H. J., Meiburg R. P. Electrochromic absorb-ance changes in spinach chloroplasts induced by external electrical field // Biochim. Biophys. Acta.- 1980.- V. 589.- № 2.- P. 299−314.
  68. Hind G., Nakatani H. Y., Izawa S. Light-dependent redistribution of ions in suspensions of chloroplast thylakoid membranes // Proc. Natl. Acad. Sci USA.- 1974.- V. 71.- № 4.- P. 1484−1488.
  69. Hodges M., Barber J. Analysis of chlorophyll fluorescence quenching by DBMIB as a means of investigating the consequences of thylakoid membrane phosphorylation // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.- V. 767.- № 1.- P. 102−107.
  70. Hodges M., Barber J. Analysis of chlorophyll fluorescence induction kinetics exhibited by DCMU-inhibited thylakoids and origin alpha- and beta-centers // Biochim. Biophys.Acta.- 1986.- V. 848.- № 2.- P. 239−246.
  71. Hodges M., Packham N. K., Barber J. Modification of photosystem 2 activity by protein phosphorylation // FEBS Lett.- 1985.- V. 181.- № 1.- P. 8387.
  72. Homman P. H. The light dependent quenching of chloroplast fluorescence by cofactors of cyclic electron flow around photosystem 1 // Photochem. and Photobiol.- 1979.- V. 29.- № 4.- P. 815−822.
  73. Horton P. The effect of redox-potential on the knetics of fluorescence induction in pea chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1981.- V. 637.- № 1.- P. 152−158.
  74. Horton P., Black M. T. On the nature of the fluorescence decrease due to phosphorylation of chloroplast membrane proteins // Biochim. Biophys. Acta.- 1982.- V. 680.- № 1.- P. 22−27.
  75. Joliot P., Joliot A. Slow electrogenic phase and intersystem electron transfer in algae // Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 806.- № 3.- P. 398−409.
  76. Jones R. W., Selak M. A., Whitmarsh J. Electrogenic reactions of thechloroplast cytochrome b/f complex // Biochem. Soc. Transactions.- 1984.-V. 12.- P. 879−880.
  77. Jones R. W., Whitmarsh J. Origin of the electrogenic reaction in the chloroplast cytochrome b/f complex // Photobiochem. Photobiophysics.- 1985.- V. 9.- P. 119−127.
  78. Junge W. Membrane potentials in photosynthesis // Annual Reviews in Plant Physiology.- 1977.- V. 28.- P. 503−536.
  79. Junge W. Electrogenic reactions and proton pumping in green plant photosynthesis // V. P. // Current Topics in Membrane Transport.- 1982.- V. 16.-P. 431−465.
  80. Junge W. Protons, the thylakoid membrane, and the chloroplast ATP synthase // Bicarbonate, chloride, and proton transport systems. V. 574. / Edited by J. H. Durham, M. A. Hardy.- New York, The New York Academy of Sciences, 1989.- P. 268−286.
  81. Junge W., Witt H. T. On the ion transport system of photosynthesis. Investigations on a molecular level // Z. Naturforsch.- 1968.- V. 23b.- № 2.- P. 244−254.
  82. Junge W., Witt H. T. Analysis of electrical phenomena in membranes and interfaces by absorption changes // Nature.- 1969.- V. 222.- № 5198.- P. 1062−1067.
  83. Jursinic P. A. Flash polarographic detection of superoxide production as a means of monitoring election flow between photosystem 1 and 2 // FEBS Lett.- 1978.- V. 90.- № 1.- P. 15−20.
  84. Kell D. B. On the functional proton current pathway of electron transport phosphorylation // Biochim. Biophys. Acta.- 1979.- V. 549.- № 1.- P. 55−99.
  85. Klimov V. V., Dolan E., Ke B. EPR properties of an intermediate electron acceptor (pheophytin) in photosystem 2 reaction centres at cryogenic temperatures // FEBS Lett.- 1980.- V. 112.- № 1.- P. 97−100.
  86. Klimov V. V., Krasnovsky A. A. Pheophytin as a primary electron acceptor in photosystem 2 reaction centres // Photosynthetica.- 1981.- V. 15.- P. 592 609.
  87. Klimov V. V., Shuvalov V. A., Heber U. Photoreduction of pheophytin as a result of electron donation from the water-splitting system to photosystem II reaction centres // Biochim. Biophys. Acta.- 1985.- V. 809.- № 3.- P. 345 350.
  88. Krause G. H., Vemotte C., Briantais J. M. Photoinduced quenching of chlorophyll fluorescence in intact chloroplasts and algae. Resolution into two components // Biochim. Biophys. Acta.- 1982.- V. 679.- № 1.- P. 116−124.
  89. Lavergne J., Etienne A. L. Prompt and delayed fluorescence of chloroplasts upon mixing with DCMU // Biochim. Biophys. Acta.- 1980.- V. 593.- № 1.-P. 136−148.
  90. Li Q., Nothnagel E. A. Absence of variable fluorescence from guard cell chloroplasts of Stenotaphrum secundatum // Plant Physiol.- 1988.- V. 86.-№ 2.- P. 429−434.
  91. Li X.-G., Duan W., Meng Q.-W., Zou Q., Zhao S.-J. The Function of Chloroplastic NAD (P)H Dehydrogenase in Tobacco during Chilling Stress under Low Irradiance // Plant Cell Physiol.- 2004.- V. 45.- № 1.- P. 103−108.
  92. Malkin R., Niyogi K. Photosynthesis // Biochemistry & Molecular Biology of Plants. / Edited by R. Jones, Kluwer Academic Publishers, 2000.- P. 413 429.
  93. S., Кок B. Fluorescence induction studies in isolated chloroplasts. 1. Number of components involved in the reaction and quantum yields // Biochim. Biophys. Acta.- 1966.- V. 126.- № 3.- P. 413−432.
  94. Marre E., Ballarin-Denti A. The proton pump of the plasmalemma and the tonoplast of higher plants // J. Bioenergetics and Biomembranes.- 1985.- V. 17.-№ l.-P. 1−21.
  95. Matorin D. N., Venediktov P. S., Gashimov К. M., Rubin A. B. Millisecond delayed fluorescence activated by reduced DPIP in DCMU-treated chloroplasts // Photosynthetica.- 1976.- V. 10.- № 3.- P. 266−273.
  96. Meiburg R. F., van Gorkom H. J., van Dorssen R. J. Excitation trapping and charge separation in photosystem II in the presence of an electrical field // Biochim. Biophys. Acta.- 1983.- V. 724.- № 3.- P. 352−358.
  97. Meiburg R. F., van Gorkom H. J., van Dorssen R. J. Non-electrogenic charge recombination in photosystem 2 as a source of sub-millisecond luminescence // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.- V. 765.- № 3.- P. 295−300.
  98. Miller A. J., Sanders D. Depletion of cytosolic free calcium induced by photosynthesis //Nature.- 1987.- V. 326.- P. 397−400.
  99. Mills J. D., Mitchel P., Schurman P. Modulation of coupling factor ATPase activity in intact chloroplasts // FEBS Letters.- 1980.- V. 112.- № 2.- P. 175 177.
  100. Mimura Т., Shimmen Т., Tazawa M. Adenine-nucleotide levels and metabolism-dependent membrane potential in cells of Nitellopsis obtusa Groves // Planta.- 1984.- V. 162.- № 1.- p. 77−82.
  101. Mitchell P. Chemiosmotic coupling in an oxidative and photosynthetic phosphorylation // Biol. Rev.- 1966.- V. 41.- № 3.- P. 445−495.
  102. Muniz J. J., Pottosin I. I., Sandoval L. Patch-clamp study of vascular plant chloroplasts: Ion channels and photocurrents // J. Bioenerg. Biomembr.-1995.- V. 27.- № 2.- P. 249−258.
  103. Neubauer C., Schreiber U. The polyphasic rise of chlorophyll fluorescence upon onset of strong continuous illumination: Saturation characteristics and partial control by the photosystem II acceptor side // Z. Naturforsch.- 1987.-V. 42c.- P. 1246−1254.
  104. Neumann J., Jagendorf A. T. Light-induced pH changes related to phosphorylation by chloroplasts // Arch. Biochem. Biophys.- 1964.- V. 107.- № 1.- P. 109−119.
  105. Noctor G., Mills J. D. Control of C02 fixation during the induction period. The role of thiol-mediated enzyme activation in the alga Dunaliella // Biochim. Biophys. Acta.- 1987.- V. 984.- № 2.- P. 295−298.
  106. Oettmeier W., Soil H. J. Competition between plastoquinone and DCMU at the acceptor side of photosystem 2 // Biochim. Biophys. Acta.- 1983.- V. 724.-№ 1.- P. 287−290.
  107. Ohmori M., Gimmler H., Schreiber U., Heber U. Relative insensitivity of photosynthesis to the dissipation of a transthylakoid proton gradient in intact chloroplasts //Physiologie Vegetale.- 1985.- V. 23.- P. 801−812.
  108. Ort D. R., Dilley R. A. Photophosphorylation as a function of illumination time. 1. Effects of permeant cations and permeant anions // Biochim. Biophys. Acta.- 1976.- V. 449.- № 1.- P. 95−107.
  109. Oxborough K., Lee P., Horton P. Regulation of thylakoid protein phosphorylation by high-energy quenching // Biochim. Biophys. Acta.- 1987.- V. 921.-№ 2.- P. 211−216.
  110. Papageorgiou G. Chlorophyll fluorescence: An intrinsic probe of photosynthesis // Bioenergetics of photosynthesis. / Edited by Govindjee.- N.Y., Academic Press, 1975.- P. 319−371.
  111. Peltier G., Ravenel J. Oxygen photoreduction and variable fluorescence during a dark-to-light transition in Chlorella pyrenoidosa // Biochim. Biophys. Acta.- 1987.- V. 894.- №" 3.- P. 543−547.
  112. Plamondon В., Gagne S. Studies on electroosmotic effects in glass micro-electrodes // Transactions on Biomedical Engineering.- 1984.- V. 31.- № 7.-P. 512−519.
  113. Plieth C., Sattelmacher В., Hansen U.-P. Light-induced cytosolic calcium transients in green plant cells. II. The effect on a K+ channel as studied by a kinetic analysis in Chara corallina // Planta.- 1998.- V. 207.- № 1.- P. 62−59.
  114. Popovic Z. D., Kovacs G. J., Vincett P. S., Dutton P. L. Electric field modulation of charge transfer processes in reaction centres of photosynthetic bacteria // Chem. Physics. Lett.- 1985.- V. 116.- № 5.- P. 405−410.
  115. Pottosin I. I. Single channel recording in the chloroplast envelope // FEBS Lett.- 1992.- V. 308.- № 1.- P. 87−90.
  116. Pottosin I. I., Schonknecht G. Patch clamp study of the voltage-dependent anion channels in the thylakoid membrane // J. Membr. Biol.- 1995.- V. 148.-№ 143−156.-.
  117. Rees D. G. Electrostatic influence on energetics of electron transfer reactions // Proc. Nat. Acad. Sci. USA.- 1985.- V. 82.- № 10.- P. 3082−3085.
  118. Remis D., Bulychev A. A., Kurella G. A. The electrical and chemical components of the protonmotive force in chloroplast as measured with capillary and pH-sensitive microelectrodes // Biochim. Biophys. Acta.- 1986.- V. 852.-№ 1, — p. 68−73.
  119. Remis D., Bulychev A. A., Kurella G. A. Photo-induced pH changes in the vicinity of isolated Peperomia metallica chloroplasts // Journal of Experimental Botany.- 1988.- V. 39.- № 202.- P. 633−640.
  120. Remish D., Bulychev A. A., Kurella G. A. Light-induced changes of the electrical potential in chloroplasts associated with the activity of photosystem I and photosystem II // Journal of Experimental Botany.- 1981.- V. 32.-№ 130.- P. 979−987.
  121. Renger G., Kayed A. Fluorescence decline as a function of redox potential and actinic light intensity in spinach thylakoids // Biochim. Biophys. Acta.-1987.- V. 894.- № 2.- P. 261−269.
  122. Rich P. R. Electron and proton transfers through quinones and cytochrome be complexes // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.- V. 768.- № 1.- P. 53−79.
  123. Riznichenko G., Lebedeva G., Demin O., Rubin A. Kinetic mechanisms of biological regulation in photosynthetic organisms // Journal of Biological Physics.- 1999.- V. 25.- P. 177−192.
  124. Ruban V. R., Horton P. An investigation of the sustained component of non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence in isolated chloroplasts and leaves of spinach // Plant Physiol.- 1995, — V. 108.- P. 721−726.
  125. В. Т., Chow W. S., Barber J. Experimental and theoretical considerations of mechanisms controlling cation effects on thylakoid membrane stacking and chlorophyll fluorescence // Biochim. Biophys. Acta.- 1981.- V.634.-№ l.-P. 174−190.
  126. Rumberg В. Field changes // Photosynthesis I. Photosynthetic electron transport and photophosphorylation. / Edited by A. Trebst, M. Avron.- Berlin, Springer, 1977.- P. 404−415.
  127. Samson G., Prasil O., Yaakoubd B. Photochemical and thermal phases of chlorophyll a fluorescence // Photosynthetica.- 1999.- V. 37.- P. 163−182.
  128. Satoh K. Mechanism of photoactivation of electron transport in intact Bry-opsis chloroplasts // Plant Physiol.- 1982.- V. 70.- № 5.- P. 1413−1416.
  129. Satoh K. Protein-pigments and photosystem 2 reaction center // Photochem. and Photobiol.- 1985.- V. 42.- № 6.- P. 845−853.
  130. Satoh K. Fluorescence induction and activity of ferredoxin-NADP+ reductase in Bryopsis chloroplasts // Biochim. Biophys. Acta.- 1981.- V. 638.- № 2.- P. 327−333.
  131. Schansker G., Srivastava A., Govindjee, Strasser R. J. Characterization of the 820-nm transmission signal paralleling the chlorophyll a fluorescence rise (OJIP) in pea leaves // Functional Plant Biology.- 2003.- V. 30.- P. 785 796.
  132. Schlodder В., Witt H. T. Electrochromic absorption changes of a chloroplast suspension induced by an external electric field // FEBS Letters.- 1980.- V. 112.-№ l.-P. 105−113.
  133. Schreiber U. ATP-induced increase in chlorophyll fluorescence. Characterization of rapid and slow induction phases // Biochim. Biophys. Acta.- 1984.-V. 767.-№ 1.- P. 70−79.
  134. Schreiber U. Comparison of ATP-induced and DCMU-induced increases of chlorophyll fluorescence // Biochim. Biophys.Acta.- 1984.- V. 161.- № 1.-P. 80−86.
  135. Schreiber U., Krieger A. Two fundamentally different types of variable chlorophyll fluorescence in vivo // FEBS Letters.- 1996.- V. 397.- P. 131 135.
  136. Schreiber U., Pfister K. Kinetic analysis of the light-induced chlorophyll fluorescence curve in the presence of DCMU. Dependence of slow-rise component on the degree of chloroplast intactness // Biochim. Biophys. Acta.- 1982.- V. 680.- № i. p. 60−68.
  137. Schuurmans J. J., Casey R. P., Kraayenhof R. Transmembrane electrical potential formation in spinach chloroplasts. Investigation using rapidly-responding extrinsic probe // FEBS Letters.- 1978.- V. 94.- № 2.- P. 405 409.
  138. Shahak Y. Activation and deactivation of H+ ATPase in intact chloroplasts // Plant Physiol.- 1982.- V. 70.- № 1.- P. 87−91.
  139. Sokolov Z. N., Matorin D. N., Aksyonov S. I., Bulychev A. A., Venediktov P. S. H20 for D20 substitution on stability and functional activity of photo-synthetic membranes of green plants // Studia biophysica.- 1982.- V. 87.- № 1.- P. 29−30.
  140. Strasser R. J., Srivastava A., Govindjee Polyphasic chlorophyll a fluorescence transient in plants and cyanobacteria // Photochem. Photobiol.- 1995.-V. 61.- P. 32−42.
  141. Strasser R. J., Srivastava A., Govindjee Polyphasic chlorophyll a fluorescence transient in plants and cyanobacteria // Photochem. Photobiol.- 1995.-V. 61.-№ 1.-P. 32−42.
  142. Svintitskikh V. A., Andrianov V. K., Bulychev A. A. Photoinduced H+ transport between chloroplasts and the cytoplasm in a protoplasmic droplet of Characeae // Journal of Experimental Botany.- 1985.- V. 36.- № 170.- P. 1414−1429.
  143. Symons M., Malkin S., Farkas D. Electric-field-induced luminescence emission spectra of photosystem I and photosystem II from chloroplasts // Biochim. Biophys.Acta.- 1987.- V. 894.- № 3. p. 578−582.
  144. Trissl H.-W. Theory of fluorescence induction: an introduction 2002.-.
  145. Trissl H.-W., Breton J., Deprez J., Leibl W. Primary electrogenic reactions of photosystem II as probed by the light-gradient method // Biochim. Biophys. Acta.- 1987.- V. 983.- № 2.- P. 305−319.
  146. Trissl H.-W., Leibl W. Primary charge separation in photosystem II involves two electrogenic steps // FEBS Lett.- 1989.- V. 244.- № 1.- P. 85−88.
  147. Van Kooten, Snel J. P. H., Vredenberg W. J. Photosynthetic free energy transduction related to the electric potential changes across the thylakoid membrane // Photosynthesis Research.- 1986.- V. 9.- № 1.- P. 211−227.
  148. Vassiliev I. R., Jung Y.-S., Mamedov M. D., Semenov A. Y., Golbeck J. H. Near-IR absorbance changes and electrogenic reactions in the microsecond-to-second time domain in photosystem I // Biophysical Journal.- 1997.- V. 72.- P. 301−315.
  149. Venediktov P. S., Goltsev V. N., Shinkarev V. P. The influence of the electric diffusion potential on delayed fluorescence light curves of chloroplaststreated with 3-(3,4-dichlorophenyl)-l, l-dimethylurea // Biochim. Biophys.
  150. Acta.- 1980.- V. 593.- № 1.- P. 125−132.
  151. Vermaas W. P. J., Govindjee The acceptor side of photosystem 2 in photosynthesis // Photochem. and Photobiol.- 1981.- V. 34.- № 6.- P. 775−793.
  152. Vermaas W. P. J., Govindjee Bicarbonate effects on chlorophyll a fluorescence transients in the presence and the absence of diuron // Biochim. Biophys. Acta.- 1982.- V. 680.- № 2.- P. 202−209.
  153. Vos M. H., Van Gorkom H. J. Thermodynamics of electron transport in Photosystem I studied by electric field-stimulated charge recombination // Biochim. Biophys. Acta.- 1988.- V. 934.- P. 299−302.
  154. Vos M. H., Van Gorkom H. J. Thermodynamical and structural information on photosynthetic systems obtained from electroluminescence kinetics // Biophysical Journal.- 1990.- V. 58.- P. 1547−1555.
  155. Vredenberg W. J. Chlorophyll a fluorescence induction and changes in the electrical potential of the cellular membranes of green plant cells // Biochim. Biophys. Acta.- 1970.- V. 223.- № 2.- P. 230−239.
  156. Vredenberg W. J. Electrical interactions and gradients between chloroplastcompartments and cytoplasm // The Intact Chloroplast. V. 1. / Edited by J. Barber.- Amsterdam, Elsevier, 1976.- P. 53−88.
  157. Vredenberg W. J., Bulychev A. A. Changes in the electrical potential across the thylakoid membranes of illuminated intact chloroplasts in the presence of membrane-modifying agents // Plant Science Letters.- 1976.- V. 7.- P. 101−107.
  158. Vredenberg W. J., Bulychev A. A. Photo-electrochemical control of photosystem II chlorophyll fluorescence in vivo // Bioelectrochemistry.- 2002.- V. 57.-№ 1.- P. 123−128.
  159. Vredenberg W. J., van Rensen J. J. S., Rodrigues G. C. On the sub-maximal tield and photo-electric stimulation of chlorophyll a fluorescence in single turnover excitations in plasts cells // Bioelectrochemistry.- 2005.- V. 68.- P. 83−90.
  160. Witt H. T. Energy conversion in the functional membrane of photosynthesis. Analysis by light pulse and electric pulse methods. The central role of the electric field // Biochim. Biophys. Acta.- 1979.- V. 505.- № 3−4.- P. 355 427.
  161. Wraight C. A., Crofts A. R. Delayed fluorescence and the high-energy state of chloroplasts // Eur. J. Biochem.- 1971.- V. 19.- № 3.- P. 386−397.
  162. Yamagishi A. The concentrations and thermodynamic activities of cations in intact Bryopsis chloroplast // Biochim. Biophys. Acta.- 1981.- V. 637.- № 2.- P. 252−264.
  163. Yamagishi A., Satoh K., Katoh S. Fluorescence induction in chloroplasts isolated from green alga Bryopsis maxima. V. pH dependence of PS1-transient // Biochim. Biophys. Acta.-1981.- V. 637.- № 2.- P. 264−271.
  164. H. E. Обобщенная модель первичных процессов фотосинтеза. Дисс.соиск. уч. ст. к. ф.-м. н. М.- 2004, — 166 с.
  165. В. А., Игнатьев Н. В., Ладыгин В. Г., Климов В. В. Перенос энергии возбуждения в нативных комплексах фотосистемы 2 с участием феофитина // Биофизика.- 1989.- Т. 34.- № 2.- С. 246−250.
  166. А. А. Биологические мембраны и транспорт ионов,— М.: Изд-воМГУ, 1985.- 208 с.
  167. А. А. Ионный и энергетический обмен в хлоропластах // Итоги науки и техники. Т. 4. Физиология растений.- М., ВИНИТИ. 1980.-С. 126−174.
  168. А. А. Изменения электрического потенциала на фотосинтетической и клеточной мембранах при действии света // Физиология растений.- 1989.- Т. 36.- № 3.- С. 479−486.
  169. А. А., Андрианов В. К., Курелла Г. А. Трансмембранный потенциал клетки и хлоропласта высшего наземного растения // Физиология растений.- 1971.- Т. 18.- № 2.- С. 248−256.
  170. А. А., Андрианов В. К., Курелла Г. А. Участие двух пигментных систем фотосинтеза в генерации фотоэлектрической реакции клеток листьев // Физиология растений.- 1972.- Т. 19.- № 2.- С. 449−451.
  171. А. А., Денеш М. Интерпретация индукционной кривой флуоресценции хлорофилла с учетом потенциалзависимой стадии переноса электронов в фотосистеме 2 // Биофизика.- 1985.- Т. 30.- № 2.- С. 244 248.
  172. А. А., Курелла Г. А., Пучкова Т. В. Фотоиндуцированное поглощение феназинметосульфата тилакоидами изолированных хлоропластов // Физиология растений, — 1979.- Т. 26.- № 1.- С. 20−26.
  173. А. А., Курелла Г. А., Туровецкий В. Б. Изменения мембранного потенциала растительной клетки, обусловленные световой активацией АТФазы хлоропластов // Докл. АН СССР.- 1983.- Т. 271.- № 5.- С. 1277−1280.
  174. А. А., Пикуленко М. М. Фотогенерация потенциала действия в клетках Anthoceros и ее связь с нефотохимическим тушением флуоресценции хлорофилла.- Воронеж, 2004, Третий съезд биофизиков России, Тезисы докладов. Т. 2.- С. 402−403.
  175. А. А., Туровецкий В. Б. Влияние трансмембранной разности электрических потенциалов на флуоресценцию хлорофилла в одиночном интактном хлоропласте // Докл. АН СССР.- 1984.- Т. 279.- № 2.- С. 495−498.
  176. Н. Г. Динамическая световая регуляция фотосинтеза // Физиология растений.- 2004.- Т. 51.- № 6.- С. 825−837.
  177. Н. Г., Рахимбердиева М. Г., Карапетян Н. В. Темновая релаксация переменной флуоресценции у листьев гороха // Физиология растений.- 1989.- Т. 36.- № 4.- С. 675−685.
  178. Н. Г., Рахимбердиева М. Г., Карапетян Н. В. О природе медленных переходных явлений переменной и замедленной флуоресценции листьев // Физиология растений.- 1989.- Т. 36.- № 6.- С. 1045−1054.
  179. Н. Г., Карапетян Н. В., Воскресенская Н. П. Различие в индукции флуоресценции листьев ячменя, выращенного на синем или на красном свету // Физиология растений.- 1983.- Т. 30.- № 5.- С. 938−943.
  180. И. Б., Климов В. В., Красновский А. А. Исследование спектральных и функциональных свойст реакционного центра фотосистемы 2 // Биофизика.- 1985.- Т. 30.- № 5.- С. 811−816.
  181. А. В., Качалов П., Ноздрачев А. Д. Стеклянный микроэлектрод.-Л.: Наука, 1986.- 103 с.
  182. В. М., Белоног Н. П., Могильная О. А. Особенности организации фотосинтетического аппарата цветков семейства орхидных // Физиология растений.- 1982.- Т. 29.- № 6.- С. 849−853.
  183. И. В., Жилин С. Г. Мхи. Плауны. Хвощи. Папоротники // Жизнь растений. Т. 4. / Под ред. А. А. Федорова, — М.: Просвещение, 1978.-С. 56.
  184. Д. Изучение кинетики электрического потенциала хлоропласта в связи с функционированием электрон-транспортной цепи. Дисс.канд. биол. наук. М. 1981.- 113 с.
  185. Д., Булычев А. А. Изменения мембранного потенциала хлоропласта при раздельном функционировании двух фотосистем // Физиология растений.- 1981.- Т. 28.- № 4.- С. 711−717.
  186. Д., Булычев А. А. Электрические процессы на фотосинтетической мембране при освещении хлоропласта серией коротких вспышек // Докл. АН СССР.- 1981.- Т. 260.- № 1.- С. 224−227.
  187. Д., Булычев А. А., Соколов 3. Н., Рубин А. Б. Фотогенерация мембранного потенциала в интактных хлоропластах, помещенных всреды с Н20 и D20 // Биохимия.- 1981.- Т. 46.- № 11.- С. 2092−2099.
  188. В. А. Теоретическая модель взаимодействия световых и тем-новых процессов фотосинтеза // Физиология растений.- 1988.- Т. 35.- № 2.- С. 234−243.
  189. В. А., Кукушкин А. К., Шагурина Т. JI. Медленная индукция флуоресценции листьев высших растений в различных условиях освещения в процессе роста // Физиология растений.- 1985.- Т. 32.- № 2.- С. 274−281.
  190. В. А., Солнцев М. К., Шагурина Т. JI. Изменения индукции флуоресценции листьев высших растений в присутствии метилвиоло-гена и диурона // Биофизика.- 1985.- Т. 30.- № 4.- С. 661−665.
  191. В. А., Шагурина Т. Л., Кукушкин А. К. Медленная индукция флуоресценции и перераспределение энергии возбуждения между фотосистемами // Физиология растений.- 1987.- Т. 34.- № 2.- С. 221.
  192. Н. В. Переменная флуоресценция хлорофилла при фотосинтезе // Успехи совр. биол.- 1977.- Т. 83.- № 3.- С. 370−386.
  193. Н. В., Бухов Н. Г. Переменная флуоресценция хлорофилла как показатель физиологического состояния растений // Физиология растений.- 1986.- Т. 33.- № 5.- С. 1013−1026.
  194. Н. В., Климов В. В., Ланг Ф., Красновский А. А. Исследование индукции флуоресценции листьев кукурузы в анаэробных условиях // Физиология растений.-1971.- Т. 18.- № 3.- С. 507−517.
  195. Р. Фотосинтез. Физические механизмы и химические модели.-М.: Мир, 1984.-350 с.
  196. В. В., Аллахвердиев С. И., Деметер Ш. Фотовосстановление феофитина в фотосистеме 2 хлоропластов в зависимости от окислительно-восстановительного потенциала среды // Докл. АН СССР.-1979.- Т. 249.- № 1.- С. 227−230.
  197. В. В., Карапетян Н. В., Красновский А. А. Действие детергента тритона Х-100 на фотоиндуцированные изменения выхода флуоресценции хлоропласта // Молек. биол.- 1975.- Т. 9.- № 2.- С. 219−225.
  198. В. В., Крахмалева И. Н., Шувалов В. А. Зависимость выходафлуоресценции хлоропластов и хроматофоров от состояния реакционных центров // Докл. АН СССР.- 1975.- Т. 221.- № 5. С. 1207−1210.
  199. В. В., Ланг Ф., Карапетян Н. В. Индукция флуоресценции в процессе зеленения этиолированных листьев нормальных и мутантных растений кукурузы // Физиология растений.- 1972.- Т. 10.- № 1.- С. 151 159.
  200. В. В., Шувалов В. А., Крахмалева И. Н. Изменение выхода флуоресценции бактериохлорофилла при фотовосстановлении бакте-риофеофитина в хроматофорах пурпурных серных бактерий // Биохимия.- 1976.- Т. 41.- № 8.- С. 1435−1441.
  201. И. Б. Прямое многочастичное моделирование циклического транспорта электронов вокруг фотосистемы 1. Дисс.канд. физ.-мат. наук. М. 2004.- 127 с.
  202. У., Крофтс Э. Транспорт электронов и протонов // Фотосинтез. / Под ред. Говинджи.- М.: Мир, 1987.- С. 540−632.
  203. Т. Е., Тулбу Г. В. Влияние мембраноактивных соединений на энергизованное состояние в условиях раздельного функционирования фотосистемы 1 и фотосистемы 2 хлоропластов гороха // Биофизика.- 1981.- Т. 26.- № 4.- С. 636−641.
  204. Г. А. Электрохимические микрометоды // Методы изучения мембран растительных клеток. / Под ред. В. В. Полевого, Г. Б. Максимова, Н. Ф. Синютиной.- Л.: Изд. ЛГУ, 1986.- С. 78−96.
  205. Г. В., Беляева Н. Е., Дёмин О. В., Ризниченко Г., Рубин А. Б.
  206. Кинетическая модель первичных процессов фотосинтеза в хлоропластах. Описание быстрой фазы индукции флуоресценции хлорофилла при различной интенсивности света. // Биофизика.- 2002.- Т. 47.- № 6.-С. 1044−1058.
  207. Г. В., Беляева Н. Е., Ризниченко Г., Рубин А. Б., Демин О. В. Кинетическая модель фотосистемы II высших растений // Журнал физ. химии.- 2000.- Т. 74.- № 10.- С. 1874−1883.
  208. Д. Н., Венедиктов П. С., Рубин А. Б. Замедленная флуоресценция и ее использование для оценки состояния растительного организма // Изв. АН СССР, сер. биол.- 1985.- Т. 4.- С. 508−520.
  209. К. И. Морфология и систематика высших растений. Ч. 1. Архе-гониальные растения.- М.: Советская наука, 1947.- С. 57−63.
  210. Д. Биоэнергетика. Введение в хемиосмотическую теорию.- М.: Мир, 1985.- 190 с.
  211. М. М., Булычев А. А. Обратимое снижение выхода флуоресценции хлорофилла, а при генерации потенциала действия в клетках мха Anthoceros II Биофизика.- 1989.- Т. 34.- № 2.- С. 272−274.
  212. П. П., Кононенко А. А., Рубин А. Б. Влияние дейтерирования на кинетику фотоиндуцированного переноса электрона в реакционных центрах пурпурных бактерий // Биофизика.- 1980.- Т. 25.- № 2, — С. 239 241.
  213. В. В., Ке Б. Первичные фотохимические реакции // Фотосинтез. Т. 1. / Под ред. Говинджи.- М.: Мир, 1987.- С. 472−539.
  214. Р. Микроэлектродные методы внутриклеточной регистрации и ионофореза.- М.: Мир, 1983.- 208 с.
  215. В. А. Фотоэлектрические явления на мембране капли протоплазмы, изолированной из клетки. Дисс.канд. биол. наук. М. 1984.161 с.
  216. А., Чаморовский С. К., Мамедов М. Д. Электрогенные реакции в комплексах фотосистемы 1 // Биофизика.- 2004.- Т. 49.- № 2.- С. 227−238.
  217. А. В. Экологическая диагностика качества среды обитания на примере наземных сообществ района Южно-Уральского радиоктивно-го следа и донных сообществ залива Нячанг Южно-Китайского моря. Дисс. на соиск. уч. ст. д.б.н. 2003.- 51 с.
  218. А. Б. Биофизика. Кн. 2. Биофизика клеточных процессов.- М.: Высшая школа, 1987.- 303 с.
  219. А. Б. Биофизика.- Москва, Книжный дом «Университет», 2000.
  220. А. Б. Биофизика фотосинтеза и методы экологического мониторинга // Технологии живых систем.- 2005.- Т. 2.- № 1−2.- С. 47−67.
  221. А. Б., Кренделева Т. Е. Регуляция первичных процессов фотосинтеза // Успехи биологической химии.- 2003.- Т. 43.- № 1.- С. 225 266.
  222. Т. Л. Спектроскопические исследования действия гербицидов и антиоксидантов на световые стадии фотосинтеза. Дисс.канд. физ.-мат. наук. М. 1985.- 170 с.
  223. В., Джексон Д. Формирование разности электрохимических потенциалов // Фотосинтез. Т. 2. / Под ред. Говинджи.- М.: Мир, 1987.- С. 65−135.т
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!