Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Генетическое разнообразие вида пшеницы Triticum spelta L. по аллелям глиадинкодирующих локусов

Диссертация: Генетическое разнообразие вида пшеницы Triticum spelta L. по аллелям глиадинкодирующих локусов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Наиболее важной продовольственной культурой в мире, а также одной из древнейших культур является пшеница. Данная культура представлена на земном шаре большим разнообразием видов. Наиболее распространенной среди зерновых культур и всех видов пшеницы является мягкая пшеница, занимающая наибольшую посевную площадь (Якубцинер М.М., 1956; Bushuk, 1984; Curtis, 2002). Установлено, что испанские спельты… Читать ещё >

Генетическое разнообразие вида пшеницы Triticum spelta L. по аллелям глиадинкодирующих локусов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Род ТгШсит Ь.: систематика
    • 1. 2. Доноры геномов гексаплоидной пшеницы
    • 1. 3. Происхождение гексаплоидных пшениц
    • 1. 4. Генетическое разнообразие вида Т. БреЬа
    • 1. 5. Запасные белки пшеницы как генетические маркеры
      • 1. 5. 1. Классификация белков пшеницы
      • 1. 5. 2. Биохимическая характеристика запасных белков пшеницы
      • 1. 5. 3. Полиморфизм и генетический контроль биосинтеза глиадина
      • 1. 5. 4. Характер наследования компонентов глиадина
      • 1. 5. 5. Использование запасных белков в качестве генетических маркеров в селекции и в исследованиях филогении пшениц
    • 1. 6. Молекулярные маркеры
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Растительный материал
    • 2. 2. Методы исследований
      • 2. 2. 1. Электрофорез глиадинов в полиакриламидном геле
      • 2. 2. 2. Статистические методы
  • Глава 3. ГЕНЕТИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ КОМПОНЕНТОВ ГЛИАДИНА У ВИДА ттсимЗРЕЬТА
    • 3. 1. Гибридологический анализ наследования компонентов глиадина в комбинации скрещивания к-20 539 х Ершовская
    • 3. 2. Гибридологический анализ наследования компонентов глиадина в комбинации скрещивания к-20 558 х Ершовская
    • 3. 3. Каталог аллельных вариантов блоков компонентов глиадинов вида Т. БреНа
  • Глава 4. АНАЛИЗ ГЕНЕТИЧЕСКОГО РАЗНООБРАЗИЯ АЛЛЕЛЕЙ ГЛИАДИНКОДИРУЮЩИХ ЛОКУСОВ ВИДА TRITICUM SPELTA
    • 4. 1. Частоты встречаемости аллелей глиадинкодирующих локусов у яровой и озимой спельты
    • 4. 2. Генетическое разнообразие аллелей глиадинкодирующих локусов у европейских образцов спельты
    • 4. 3. Генетическое разнообразие аллелей глиадинкодирующих локусов у азиатских образцов спельты
    • 4. 4. Сравнительный анализ полиморфизма аллелей глиадинкодирующих локусов европейской и азиатской спельты
    • 4. 5. Генетическая близость европейской и азиатской спельты по генам глиадина
  • Глава 5. СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ОБРАЗЦОВ TRITICUM SPELTA L. И TRITICUM AESTIVUM L. С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ АЛЛЕЛЕЙ ГЛИАДИНКОДИРУЮЩИХ ЛОКУСОВ И МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ
    • 5. 1. Морфологические характеристики Т. spelta L. и Т. aestivum L
    • 5. 2. Анализ частот аллелей глиадинкодирующих локусов у образцов видов Т. spelta L. и Т. aestivum L
    • 5. 3. Сравнение аллельных вариантов блоков компонентов глиадина среди образцов испанской спельты и местных сортов мягкой пшеницы Испании
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ

Наиболее важной продовольственной культурой в мире, а также одной из древнейших культур является пшеница. Данная культура представлена на земном шаре большим разнообразием видов. Наиболее распространенной среди зерновых культур и всех видов пшеницы является мягкая пшеница, занимающая наибольшую посевную площадь (Якубцинер М.М., 1956; Bushuk, 1984; Curtis, 2002).

Мягкая пшеница (Triticum aestivum L.) относится к голозерным гексаплоидным видам. К гексаплоидам относится также и пленчатая пшеница спельта Triticum spelta L. (AABBDD). Культура спельты была известна с эпохи раннего неолита (Жуковский, 1971). В ходе экспедиционных сборов, проведенных В. Ф. Дорофеевым, P.A. Удачиным, Н. Kuckuck, были обнаружены посевы спельты в Иране, Центральной Азии и Закавказье. В настоящее время спельта занимает значительно меньшие площади посевов в мире, по-сравнению с мягкой пшеницей (встречается в Германии, Италии, Испании, Франции, США). Однако она привлекает внимание селекционеров ценными свойствами, которые отсутствуют у мягкой пшеницы (Perrino et al., 1996). К ним относят: устойчивость растения к патогенам, лучшую адаптивность к неблагоприятным факторам среды (Ruegger et al., 1990, 1993), повышенное содержание белка в зерне (до 21%), пищевые достоинства зерна (Pruska-Kedzior et al., 2008). Кроме того, мука из зерна спельты обладает уникальными вкусовыми качествами и высоким содержанием витаминов (Campbell, 1997). Хлебопекарные свойства спельты были оценены уже в начале 1900;х годов (LeClerc et al., 1918). Спельта пригодна для производства таких продуктов, как хлеб, кондитерские изделия, макаронные изделия (Galova, Knoblochova, 2001; Elia et al., 2004). Спельта характеризуется высоким уровнем устойчивости к некоторым грибным патогенам, таким как желтая ржавчина (Pythium aristoporum Vanterpool) и представителям рода Fusarium (Кета, 1992а). Между тем, широкому распространению этой культуры препятствует ее низкая урожайность и ряд морфологических характеристик, неудобных в производственном отношении, а именно ломкость колоса и трудность его обмолота (Гончаров, 2002).

В современных селекционных программах спельту интенсивно используют в скрещиваниях с мягкой пшеницей с целью улучшения последней: для повышения устойчивости к болезням, для улучшения реологических свойств теста и качества выпечки хлеба.

Для оценки наследственной конституции конкретного генотипа используют генетические маркеры, среди которых наиболее информативными оказываются группы высокополиморфных запасных белков, поскольку являются первичным и непосредственным продуктом генетической системы (Конарев, 1987). Генотипы по белковым маркерам можно выявлять в морфологически однородных популяциях, а также анализировать гибридные популяции уже с первых поколений. В качестве белковых маркеров у злаков выступают аллели глиадинкодирующих локусов, которые наследуются кодоминантно, обладают независимостью их фенотипического проявления от условий выращивания и стабильностью на протяжении многих поколений (Созинов, 1985; Собко и Созинов, 1999). Аллели глиадинкодирующих локусов используются в качестве генетических маркеров для идентификации генотипов пшеницы, в филогенетических и ряде других исследований (Metakovsky, 1990). Локусы запасных белков, вероятно, являются маркерами устойчивых ассоциаций генов, обуславливающих адаптацию генотипов к определенным условиям среды.

Несмотря на то, что спельта, как и мягкая пшеница, относится к широко изучаемым видам, генетический контроль блоков глиадинов (запасных белков эндосперма) и аллельное разнообразие глиадинкодирующих локусов на данный момент остаются не изучены.

Необходимо отметить, что название вида пшеницы спельта упоминается в биолого-генетической литературе по-разному: Triticum spelta L., Triticum aestivum (L.) Thell. subsp. spelta (L.), Triticum aestivum var. spelta (L.) Bailey.

Наиболее распространенным вариантом употребления вида в ряде номенклатур отечественной и зарубежной литературы считается название ТгШсит зреЫа Ь. Несомненно, выделение спельты в отдельный вид или отнесение ее в качестве разновидности мягкой пшеницы является проблемой систематики и требует более масштабных исследований.

Цель настоящей работы состояла в изучении полиморфизма и анализе наследования запасных белков — глиадинов у вида гексаплоидной пшеницы ТгШсит БреИа Ь. Для выполнения этой цели были поставлены и решены следующие задачи:

1. Методом гибридологического анализа изучить генетический контроль электрофоретических компонентов глиадина у вида Т. БреЫа Ь. Провести серию гибридизаций между образцами спельты и мягкой пшеницы.

2. Исследовать полиморфизм запасных белков — глиадинов у 80 образцов вида Т. БреЫа Ь. с помощью метода электрофореза белков.

3. Идентифицировать аллели глиадинкодирующих локусов у образцов европейской и азиатской спельты.

4. Составить каталог аллельных вариантов блоков компонентов глиадина вида Т. БреЫа Ь.

5. Определить разнообразие аллелей глиадинкодирующих локусов среди образцов яровой и озимой спельты.

6. Провести сравнение аллельных вариантов блоков компонентов глиадина, идентифицированных у Т. Брека Ь., с известными аллельными вариантами глиадина сортов мягкой пшеницы Т. аеяИуит Ь.

выводы.

1. Установлено наследование блоков компонентов глиадина у вида Т. spelta L. Создан каталог аллельных вариантов блоков компонентов глиадина спельты, включающий 141 аллель по локусам Gli-Al, Gli-Bl, Gli-Dl, GU-A2, GH-D2. Выявлено 15 семейств блоков компонентов глиадина: по Gli-Al — 3 семейства, по Gli-Bl — 3 семейства, по Gli-Dl — 2, по GU-A2 — 3, по GH-D2 — 4.

2. Впервые у спельты идентифицированы новые аллели глиадинкодирующих локусов первой и шестой гомеологических групп хромосом. Так, по локусу Gli-Al выявлено 12 новых аллелей, по локусу Gli-Bl — 17, по Gli-Dl — 7, по GH-A2 — 35 и по локусу GH-D2 — 15 новых аллелей.

3. Результаты анализа аллельного разнообразия глиадинкодирующих локусов вида Т. spelta L. позволили подтвердить существование двух подвидовазиатского (kuckuckianum) и европейского {spelta).

4. Показано, что европейские и азиатские спельты не имели значимых различий по числу идентифицированных аллелей (81 и 86 аллелей, соответственно), но различались по аллельному составу.

5. Установлено, что испанские спельты образуют отдельную группу среди европейских спельт, что подтверждает разделение европейского подвида спельты на иберийскую и баварскую группы. Показано значительное сходство испанской спельты с мягкой пшеницей по аллелям глиадинкодирующих локусов хромосом шестой гомеологической группы.

6. У европейской, как и азиатской спельты яровые и озимые формы различались по составу и частотам аллелей глиадинкодирующих локусов.

7. Впервые показано, что аллельное разнообразие по глиадинкодирующим локусам хромосом первой гомеологической группы было выше у образцов яровой европейской спельты, чем у озимой европейской и азиатской спельты (озимой и яровой), а также вида Т. aestivum L.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.Г., Метаковекий Е. В. Наследование компонентного состава глиадина гибридами от скрещивания сортов мягкой пшеницы Безостая 1 и Чайниз Спринг // Генетика. 1987. Т. 23. — № 8. — С. 1478−1489.
  2. В. Изучение ультраструктуры пшеницы в связи с переработкой зерна и получаемыми продуктами / В кн.: Белки семян зерновых и масличных культур. М.: Колос, 1977, с. 195−214.
  3. Н.И. Центры происхождения культурных растений // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1926. — Т. 16. — Вып. 2. — 248 с.
  4. Н.И. Научные основы селекции пшеницы. М., Л.: Сельхозгиз. -1935. С. 3−244.
  5. Н.И. Мировые ресурсы хлебных злаков. Пшеница. М., Л. 1964.
  6. Н.П. Сравнительная генетика пшениц и их сородичей. Новосибирск: Сибирское университетское издательство, 2002. 251 с.
  7. О.С. Сравнительное филогенетическое исследование полиплоидных пшениц Triticum dicoccum (Schrank) Schuebl., Т. spelta L., Т. aestivum L. с использованием цитогенетических маркеров. Дисс.. канд. биол. наук, — М., 2008. 160 с.
  8. В.Ф. Проблемы современной филогении и систематики пшеницы // Вестник с.-х. науки. 1969. — № 3. — С. 25−35.
  9. В.Ф. Пшеницы Закавказья (ботанический состав, эволюция и роль в селекции) // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции (зерновые культуры). 1972. — Т. 47. — Вып. 1.
  10. В.Ф., Филатенко A.A., Мигушова Э. Ф., Удачин P.A., Якубцинер М. М. Пшеница. Л.: Колос. 1979. 346 с.
  11. В.Ф., Филатенко A.A. Новая внутривидовая классификация пшеницы мягкой (Triticum aestivum L.) // Бюлл. Всесоюзного НИИ растениеводства им. Н. И. Вавилова. Проблемы систематики, филогении и селекции пшеницы. 1981. — Вып. 106. — С. 40−44.
  12. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М.: Агропромиздат. 1985. 351 с.
  13. А.Ю. Закономерности формирования биоразнообразия вида мягкой пшеницы Triticum aestivum L. по генам запасных белков. Дисс. докт. биол. наук. Москва, 2008. 312 с.
  14. JI.A. Популяционная биометрия. М: Наука. 1991. 271 с.
  15. П.М. Культурные растения и их сородичи. JI.: Колос. 1971. -752 с.
  16. С.Ф., Метаковский Е. В., Кудрявцев А. М., Созинов A.A. О сцеплении семейств аллелей глиадинкодирующих локусов с генами опушения и окраски колоса у пшеницы // С.-х. Биология. 1986. — № 2. — С. 31−36.
  17. В.Г., Гаврилюк И. П., Мигушова Э. Ф. Дифференциация диплоидных пшениц по данным иммунохимического анализа глиадина // Докл. ВАСХНИЛ. 1974. — № 6. — С. 12.
  18. В.Г. Белки пшеницы. М.: Колос. 1980. 351с.
  19. В. Г. Белки растений как генетические маркеры. М.: Колос. 1983. 320 с.
  20. В.Г. Белковые маркеры в сортовой идентификации и регистрации генетических ресурсов культурных растений // Сб. науч. трудов по приклад, ботанике, генетике и селекции. Ленинград, 1987.
  21. Дж.Б. Многомерное шкалирование и другие методы поиска структуры // Статистические методы для ЭВМ / Под. ред. Энелейна К. и др. М.: Наука. 1986.-460 с.
  22. Я. Селекция пшеницы. Теория и практика. М.: Колос. 1980. 383 с.
  23. М.Е. Генетика (издание второе). Ленинград.: ЛГУ. 1967. 751 с.
  24. В.Л. Пшеницы Грузии. Тб., издат. АН ГССР. 1948.-272 с.
  25. Е.В., Новосельская А. Ю., Созинов A.A. Генетический контроль компонентов глиадина у озимой мягкой пшеницы Безостая 1 // Генетика. 1985. — Т. 21. — № 3. — С. 472−478.
  26. Е.В. Организация семейства глиадинкодирующих генов -генетического маркера у пшеницы // Молекулярные механизмы генетических процессов / Под ред. Созинова A.A., Шуппе Н. Г. М.: Наука. 1990. С. 157 168.
  27. Методика проведения лабораторного сортового контроля по группам сельскохозяйственных растений. М.: ФГНУ «Росинформагротек». 2004. -96 с.
  28. Е.Р., Сире Э. Р. Цитогенетика пшеницы и родственных форм // Пшеница и ее улучшение. М.: Колос. 1970. С. 33−110.
  29. A.A., Фисенко A.B., Новосельская-Драгович А.Ю., Брежнева (Карпова) Т.А., Упелниек В. П. Полиморфизм глиадина у современных сортов яровой мягкой пшеницы Сибири // Селекция и семеноводство. 2005. — № 4. -С. 13−18.
  30. A.A. Динамика разнообразия яровых мягких пшениц Западной и Восточной Сибири по глиадинкодирующим локусам за вековой период селекции. Дисс. канд. биол. наук. Москва, 2008. 203 с.
  31. Т.Б. Растительные белки. М.- Д.: Биохимгиз. 1935. 220 с.
  32. А.Н. Закономерности накопления белка в зерне пшеницы и их значение для селекции на качество урожая // Физиология растений в помощь селекции. М., 1974. С. 178−193.
  33. Ф.А., Бабаянц Л. Г. Блок компонентов глиадина GH-B13 как маркер гена, обуславливающего устойчивость растений пшеницы к стеблевой ржавчине // Докл. ВАСХНИИЛ. 1978. — № 6. — С. 6−7.
  34. Ф.А., Созинов A.A. Биохимическая генетика глиадина и селекция пшеницы // Проблема повышения качества зерна. М.: Колос. 1977. -С. 65−79.
  35. В.А. Материалы к изучению генов гибридного некроза в роде Triticum L. // Генетика. 1996. — Т. 32. — № 4. — С. 541−546.
  36. Пшеница в СССР. Л.: Сельхозгиз. 1958. — 632 с.
  37. А.И. Гибридологический и моносомный анализ компонентного состава глиадина у сортов мягкой пшеницы: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Одесса, 1975. 22 с.
  38. А.И., Созинов A.A. Картирование локуса Gld 1 В, контролирующего биосинтез запасных белков мягкой пшеницы // Цитология и генетика. 1979. — Т. 13. — № 4. — С. 276−282.
  39. Ю.А. Использование полиморфизма глиадина при формировании рационально организованной коллекции Triticum spelta L.: автореф. дисс.. канд. биол. наук. С.-Пб., 2002. -20 с.
  40. В.Г. Улучшение зерновых белков и их оценка. М.: Колос. 1978. 368 с.
  41. А. Биохимический полиморфизм. Молекулярные механизмы генетических процессов. М.: Наука. 1982. С. 139−147.
  42. А.М. Генетическая стабильность блоков компонентов глиадина и их использование для анализа сорта мягкой пшеницы Богарная 56. Дисс. канд. биол. наук. Москва, 1988. 142 с.
  43. A.C. Генетический анализ. М.: Наука. 1970. 342 с.
  44. E.H. Историческая география культурной флоры. JL: Колос. 1969. -480 с.
  45. Т.А., Попереля Ф. А. Сцепление глиадинкодирующего локуса Gld-1А и гена опушения колосковых чешуй Hg у пшеницы // Научно-техн. бюлл. ВСГИ. 1982. — Т.2. — № 48. — С.28−33.
  46. Т.А., Попереля Ф. А., Рыбалка А. И., Созинов A.A. Наследование и картирование генов, кодирующих синтез запасных белков в хромосоме 1А мягкой пшеницы // Цитология и генетика. 1986. — Т. 20. — № 5. — С. 372−376.
  47. Т. А., Созинов A.A. Анализ генотипической структуры возделываемых в Украине сортов озимой мягкой пшеницы с использованием генетических маркеров // Цитология и генетика. 1999. — Т. 33. — № 5. — С. 3041.
  48. A.A., Лаптев Ю. П. Генетика и урожай. М.: Наука. 1986. 168 с.
  49. A.A., Попереля Ф. А., Стаканова А. И. Гибридологический анализ как метод изучения генетических закономерностей биосинтеза глиадина // Научно-техн. бюлл. ВСГИ. 1975. — Вып. 42. — № 24. — С. 10−15.
  50. A.A., Попереля Ф. А. Принципы биохимической генетики как теоретическая основа решения практических задач селекции (на примере проламинов). Материалы к заседанию Президиума ВАСХНИЛ // Одесса. -1976.-С.48.
  51. A.A., Попереля Ф. А. Методика вертикального дискового электрофореза в крахмальном геле и генетический принцип классификации глиадинов // Одесса. 1978. — С. 16.
  52. A.A., Попереля Ф. А. Полиморфизм глиадинов и селекция // Вестн.с.-х. науки. 1979. — Т. 10. — С. 21−34.
  53. А.А. Полиморфизм белков и его значение для генетики и селекции // Вести. АН СССР. 1982. -№ 11.-С. 18−29.
  54. А.А. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции. М.: Наука. 1985. -272 с.
  55. В.П. Анализ спонтанной и индуцированной изменчивости компонентного состава запасных белков яровой мягкой пшеницы. Дисс. канд. биол. наук. Москва, 1994. 137 с.
  56. К.А. Пшеница // M.-JI. 1938. — 295 с.
  57. . Нетрадиционные методы многомерного статистического анализа: Сб. статей. Пер. с анг. М.: Финансы и статистика. — 1988. — 263 с.
  58. З.А. Установление филогенетических связей между видами пшеницы с помощью анализа полиморфизма и наследования запасных белков. Дисс.канд. биол. наук. Москва, 1989. 192 с.
  59. М.М. К истории культуры пшеницы в СССР. Материалы по истории земледелия в СССР // Сборник II. M.-JI. 1956. — 747 с.
  60. Anderson O.D., Greene F.C. The a-gliadin gene family. II. DNA and protein sequence variation, subfamily structure, and origins of pseudogenes // Theor. Appl. Genet. -1997. V. 95. — P. 59−65.
  61. Anderson O.D., Hsia C.C., Torres V. The wheat y-gliadin genes: characterization of ten new sequences and further understanding of y-gliadin gene family structure // Theor. Appl. Genet. 2001. — V. 103. — P. 323−330.
  62. Andrews A.C. The genetic origin of spelt and related wheats // Ziichter. 1964.-V. 34. — P. 17−22.
  63. Badaeva E.D., Friebe B. and Gill B.S. Genome differentiation in Aegilops. 1. Distribution of highly repetitive DNA sequences on chromosomes of diploid species // Genome. 1996. — V. 39. — P. 293- 306.
  64. Baker R.I., Bushuk K. Inheritance of differences of gliadin electrophoregrams in the progeny of «Neepawa» and «Pitic 62» wheats // Can. J. Plant. Sei. 1978. -V. 5. -№.2. -P. 599−610.
  65. Bertin P., Gregoire D., Massart S., de Froidmont D. Genetic diversity among European cultivated spelt revealed by microsatellites // Theor. Appl. Genet. -2001.-V. 102.-P. 148−156.
  66. Bertin P., Gregoire D., Massart S., de Froidmont D. High level of genetic diversity among spelt germplasm revealed by microsatellite markers // Genome. -2004. -V. 47.-P. 1043−1052.
  67. Bertsch K. Vom Ursprung der hexaploiden Weizen // Zuchter. 1950. — V. 20. -P. 24−27.
  68. Bietz J.A., Huebner F.R., Sanderson J.E., Wall J.S. Wheat gliadin homology revealed through N-terminal amino acid sequence analysis // Cereal. Chem. 1977. — V. 54. — P. 1070−1083.
  69. Blatter R.H.E., Jacomet S., Schlumbaum A. Spelt-specific alleles in HMW glutenin genes from modern and historical European spelt (Triticum spelta L.) // Theor. Appl. Genet. 2002. — V. 104. — P. 329−337.
  70. Blatter R.H.E., Jacomet S., Schlumbaum A. About the origin of European spelt (Triticum spelta L.): allelic differentiation of the HMW Glutenin Bl-1 and A1−2 subunit genes // Theor. Appl. Genet. 2004. — V. 108. — P. 360−367.
  71. Branlard G. Correlation between gliadin bands // Theor. Appl. Genet. 1983. -V. 64.-№ 2.-P. 163−168.
  72. Brett G.M., Mills E.N.C., Tatham A.S., Fido R.J., Shewry P.R., Morgan M.R.A. // Theor. Appl. Genet. 1993. — V. 84. — P. 442−448.
  73. Brown T.A. How ancient DNA may help in understanding the origin and spread of agriculture // Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sei. 1999. — V. 354. — P. 8998.
  74. Bushuk W. Functionality of wheat proteins in dough // Cereal Foods World. -1984. V. 29. — № 2. — P. 162−164.
  75. Bushuk W., Rasper V.F. Wheat: production, properties and quality. Blackie academic and professional, 1994. 239 p.
  76. Bushuk W., Zillman R.R. Wheat cultivar identification by gliadin electrophoregrams // Canad. J. Plant. Sci. 1978. — V. 58. — № 2. — P. 505−515.
  77. Caballero L., Martin L.M., Alvarez J.B. Genetic variability of the low-molecular-weight glutenin subunits in spelt wheat {Triticum aestivum ssp. spelta L. em Thell.) // Theor. Appl. Genet. 2004. — V. 108. — P. 914−919.
  78. Caballero L., Martin L.M., Alvarez J.B. Agrobiodiversity of hulled wheats in Asturias (North of Spain) // Gen. Resour. and Crop Evol. 2007. — V. 54. — P. 267 277.
  79. Campbell K.G. Spelt: agronomy, genetics, and breeding // Plant Breeding Rev. 1997.-V. 15.-P. 187−213.
  80. Curtis B.C. Wheat in the world / Bread Wheat. Food and agricultural organization of the united nations / FAO Plant Production and Protection. Rome, 2002. — P. 1−18.
  81. Dvorak J., Mcguire P.E., Cassidy B. Apparent sources of the A genomes of wheats inferred from polymorphism in abundance and restriction fragment length of repeated nucleotide sequences // Genome. 1988. — V. 30. — № 4. — P. 680−689.
  82. Dvorak J. The relationship between the genome of Triticum urartu and the A and B genomes of Triticum aestivum If Can. J. Genet. Cytol. 1976. — V. 18. — № 2. -P. 371−379.
  83. Dvorak J, Luo M.C., Yang Z.L., Zhang H.B. The structure of the Aegilops tauschii genepool and the evolution of hexaploid wheat // Theor. Appl. Genet. -1998. -V. 97. P. 657−670.
  84. Dvorak J., Luo M.C., Yang Z.L. Genetic evidence on the original of Triticum aestivum L. In: The origins of agriculture and crop domestication. The Harlan Symposium. 1998. — ICARDA. Aleppo. — P. 235−251.
  85. Dvorak J. and Luo M.C. Evolution of free-threshing and hulled forms of Triticum aestivum: old problems and new tools. In: Wheat Taxonomy: the legacy of John Percival. The Linnean Society of London, London. 2001. — P. 127−136.
  86. Elia M., Moralejo M., Rodriguez-Quijano M. and Molina-Cano J.L. Spanish spelt: a separate gene pool within the spelt germplasm // Plant Breed. 2004. — V. 123.-P. 297−299.
  87. Fletcher R.J. and Mcintosh R.A. Isolation and identification of the chromosome and bearing Rg detemining brown glume colour in Federation wheat // Austral. Wheat Cytogenet. Newslett. 1972. — V. 5. — P. 10−11.
  88. Gianibelli M.C., Wrigley C.W., MacRitchie F. Polymorphisms of low Mr glutenin subunits in Triticum tauschii // J. Cereal. Sci. 2002. V. 35. — P. 277−286.
  89. Gonzalez J.M., Ferrer E. Random amplified polymorphic DNA analysis in Hordeum species // Genome. 1993. — V. 36. — P. 1029−1031.
  90. Graham J.S.D., Morton R.K., Raison J.K. Isolation and characterisation of protein bodies from developing wheat endosperm // Austral. J. Biol. Sci. 1963. -V. 16.-P. 375−383.
  91. Gupta P.K. and Varshney R.K., Cereal Genomics // Springer 2004. 639 p.
  92. Ewart J.A.D. A Capelle-Desprez gliadin of high mobility // J. Sci. Food and Agr. 1976. — V. 27. — P. 695−698.
  93. Harberd N.P., Bartels D., Thompson R.D. Analysis of the gliadin multigene loci in bread wheat using nullisomic-tetrasomic lines // Molecular and General Genetics 1985. — № 198. — P. 234−242.
  94. Harsch S., Giinther T., Kling Ch. I., Rozynek B., Hesemann C. U. Characterization of spelt (Triticum spelta L.) forms by gel electrophoretic analyses of seed storage proteins. I. The gliadins // Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 94. — P. 52−60.
  95. Helbaek H. Archeological evidence for genetical changes in wheat and barley // Plant Introd. Rev. Austr. CSIRO. 1965. — № 2.
  96. Heun M., Murphy J.P., Phillips T.D. A comparison of RAPD and isozyme analysis for determining the genetic relationships among Avena sterilis L. accessions // Theor. Appl. Genet. 1994. — V. 87. — P. 689−696.
  97. Howes N.K. Linkage between the LrlO gene conditioning resistance to leaf rust, two endosperm proteins, and hairy glums in hexaploid wheat // Canad. J. Genet. Cyt. 1986. — V. 28. — № 4. — P. 595−600.
  98. Jaaska V. NADP-dependent aromatic alcohol dehydrogenase in polyploid wheats // Theor. Appl. Genet. 1978. — V. 53. — P. 209−217.
  99. Kasarda D.D., Bernardin J.E., Qualset C.O. Relation of gliadin protein components to chromosomes in hexaploid wheat (Tr. aestivum) // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1976. — V. 73. — P. 3646−3650.
  100. Kasarda D.D. Structure and properties of gliadins // Ann. Technol. Agric. -1980.-V. 29. -№ 2. -P. 151−173.
  101. Kasarda D.D., Autran J.C., Lew J.L., Nimmo C.C., Shewry P.R. N-terminal amino acid sequences of (c)-gliadins and co-secalins // Biochim. Biophys. Acta. -1983.-V. 747.-P. 138−150.
  102. Keller M., Karutz Ch., Schmid J.E., Stamp P., Winzeler M., Keller B., Messmer M.M. Quantitative trait loci lodging resistance in a segregating wheat x spelt population // Theor. Appl. Genet. 1999a. — V. 98. — P. 1171−1182.
  103. Keller M., Keller B., Schachermayr G., Winzeler M., Schmid J.E., Stamp P., Messmer M.M. Quantitative trait loci for resistance against powdery mildew in a segregating wheat x spelt population // Theor. Appl. Genet. 1999b. — V. 98. — P. 903−912.
  104. Kema G.H.J. Resistance in spelt wheat to yellow rust. I. Formal analysis and variation for gliadin patterns // Euphytica. 1992. — V. 63. — P. 207−217.
  105. Kihara H. Cytologische und Genetische Studien bei wichtigen Getreidearten mit besonderer Rucksicht auf das Verhaten der Chromosomen und die Sterilitat in den Bastarden. Kyoto: Kyoto Imp. Univer. Bl. 1924. P. 200.
  106. Kihara H. Synthesized spelta wheat from Triticum dicoccoides x Aegilops squarrosa //Kromosomo. 1949. — № 5−6.
  107. Kihara H. Considerations on the evolution and distribution of Aegilops species based on the analyzer-method // Cytologia. 1954. — V. 19. — P. 336−357.
  108. Kislev M.E. Botanical evidence for ancient naked wheats in the Near East // Proceedings of the 6th Symposium of the International Work Group for Paleoethnobotany. 1984. — P. 141−152.
  109. Koebner R.M.D., Shepherd K.W., Appels R. Controlled introgression to wheat of genes from rye chromosome arm IRS by induction of allosyndesis. 2. Characterization of recombinants // Theor. and Appl. Genet. 1986. — V. 73. — P. 209−217.
  110. Kornike F., Werner H. Hundbuch des Getreidebaus. Berlin: Sort, und Anb., 1885. 176 p.
  111. Kreis M., Shewry P.R., Forde B.G. Structure and evolution of seed storage proteins and their genes with particular reference to those of wheat, barley and rye // Oxf. Surv. Plant Mol. And Cell Biol. 1985. — V. 2. — P. 253−317.
  112. Kuckuck, H. Experimentelle Untersuchungen zur entstehung der kulturweizen // Pflanzenzucht. 1964. — V. 51. — P. 97−138.
  113. Kuckuck H., Schiemann E. Uber das Vorkommen von Spelz und Emmer {Triticum spelta and T. dicoccum (Schubl.) im Iran // Z. Pflanzenzucht. 1957. — V. 38. — P. 383−396.
  114. LeClerc J.A., Bailey L.H., Wessling H.L. Milling and baking tests of einkorn, emmer, spelt, and polish wheat // J. Am. Soc. Agron. 1918. — V. 10. — P. 215−217.
  115. Lee Y.K., Bekes F., Gupta R., Appels R., Morell M.K. The low-molecular-weight glutenin subunit proteins of primitive wheats. I. Variation in A-genome species // Theor. Appl. Genet. 1999. — V. 98. — P. 119−125.
  116. Lilienfeld F.A., Kihara H. Genome-analysis in Triticum and Aegilops. X Concluding review // Cytologia. 1951. — V. 16. — P. 101−123.
  117. Liu Y.G., Mori N., Tsunewaki K. Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis in wheat. I. Genomic DNA library construction and RFLP analysis in common wheat // Jpn. J. Genet. 1990. — V. 65. — P. 367−380.
  118. Liu Y.G., Tsunewaki K. Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis in wheat. II. Linkage maps of the RFLP sites in common wheat // Jpn. J. Genet. 1991. — V. 5. — P. 617−633.
  119. Luo M-C, Yang Z-L, Dvorak J. The Q locus of Iranian and European spelt wheat // Theor. Appl. Genet. 2000. — V. 100. — P. 602−606.
  120. Luo M.C., Yang Z.L., You F.M., Kawahara T., Waines J.G., Dvorak J. The structure of wild and domesticated emmer wheat populations, gene flow between them, and the site of emmer domestication // Theor. Appl. Genet. 2007. — V. 114. -№ 6. — P. 947−959.
  121. MacKey J. Species relationships in Triticum II Proceedings of the 2nd International Wheat Genetics Symposium, 19−24 August 1966. Sweden: Berlingska Boktryckeriet. 1966. — P. 48−51.
  122. Mecham D.K., Kasarda D.D., Qualset C.O. Genetic aspects of wheat gliadin proteins // Biochem. Genet. 1978. — V. 16. — P. 831−853.
  123. Messmer M.M., Keller M., Zanetti S., Keller B. Genetic linkage map of a wheat x spelt cross // Theor. Appl. Genet. 1999. — V. 98. — P. 1163−1170.
  124. Metakovsky E.V. The value of gliadin biotypes in commercial cultivars of wheat. / Proc. 4th Int. Workshop on Glut. Prot. Winnipeg, Canada. 1990.
  125. Metakovsky E.V. Gliadin allele identification in common wheat 2. Catalogue of gliadin alleles in common wheat // J. Genet. & Breed. 1991. — V. 45. — P. 325 344.
  126. Metakovsky E.V., Baboev S.K. Polymorphism and inheritance of gliadin polypeptides in T. monococcum L. // Theor. Appl. Genet. 1992. — V. 84. — P. 971 978.
  127. Metakovsky E.V., Novoselskaya A.Yu. Gliadin allele identification in common wheat 1. Methodological aspects of the analysis of gliadin patterns by one-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis // J. Genet. & Breed. 1991. -V. 45.-P. 317−324.
  128. Metakovsky E.V., Novoselskaya A.Yu., Kopus M.M., Sobko T.A., Sozinov A.A. Blocks of gliadin components in winter wheat detected by one-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis // Theor. Appl. Genet. 1984. — V. 67. — P. 559 568.
  129. MacKey J. Species relationship in Triticum II Hereditas Supplement. 1966. -V. 2. — P. 237−276.
  130. McFadden E.S. and Sears E.R. The origin of Triticum spelta and its free-threshing hexaploid relatives 11 J. Hered. 1946. — Y. 37. — № 3. — P. 107−116.
  131. Mcintosh R.A. A catalogue of gene symbols for wheat. Proc. 6th Int. Wheat Genet. Symp. 1983. — P. 1197−1284.
  132. Mukhtar M.S., Rahman M., Zafar Y. Assessment of genetic diversity among wheat (Triticum aestivum L.) cultivars from a range of localities across Pakistan using random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis // Euphytica. 2002. -V. 128. — P. 417−425.
  133. Muramatsu M. Dosage effect of the spelta gene q of hexaploid wheat // Genetics. 1963. — V. 48. — № 4. — P. 469−482.
  134. Nieto-Taladriz M.T., Ruiz M., Martinez M.C., Vazquez J.F., Carrillo J.M. Variation and classification of B low-molecular-weight glutenin subunit alleles in durum wheat // Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 95. — P. 1155−1160.
  135. Nesbitt M. Wheat evolution: integrating archaeological and biological evidence / Wheat Taxonomy: the legacy of J. Percival. 2001. P. 37−60.
  136. Ohtsuka I. Origin of the central European spelt wheat. In: Proc. 9th Int. Wheat Genet. Symposium, University Extension Press, Canada. 1998. — P. 303−305.
  137. Payne P.I., Holt L.M., Lawrence A.I., Law C.N. The genetics of gliadin and glutenin, the major storage proteins of the wheat endosperm // Qual. Plant. Foods. Hum. Nutr. 1982. — V. 31. — № 2. — P. 229−241.
  138. Pena-Chocarro L. and Zapata-Pena L. Hulled wheats in Spain: history of minor cereals. In: Jaradat A.A. (ed.), Triticeae III. Science Publisher Inc., Bombay, India, 1998, p. 45−52.
  139. Percival J. The wheat plant, a monograph / London, 1921. 99 p.
  140. Pogna N.E., Boggini G., Corbellini M., Cattaneo M., Peruffo D.B. Association between gliadin electrophoretic bands and quality in common wheat // Canad. J. Plant. Sci. 1982. — V. 62. — P. 913−918.
  141. Provan J., Wolters P., Caldwell K.H., Powell W. High-resolution organellar genome analysis of Triticum and Aegilops sheds new light on cytoplasm evolution in wheat // Theor. Appl. Genet. 2004. — V. 108. — № 6. — P. 1182−1190.
  142. Pruska-Kedzior A., Kedzior Z., Klockiewicz-Kaminska E. Comparison of viscoelastic properties of gluten from spelt and common wheat // Eur. Food Res. Technol. 2008. — V. 227. — P. 199−207.
  143. Pukhalskiy V.A., Martynov S.P., Dobrotvorskaya T.V. Analysis of geographical and breeding related distribution of hybrid necrosis // Euphytica. -2000.-V. 114.-P. 233−240.
  144. Ranhotra G.S., J.A. Gelroth, B.K. Glaser and K.J. Lorenz. Baking and nutritional qualities of a spelt wheat sample // Lebensm. Wiss. Technol. 1995. -V. 28.-P. 118−122.
  145. Roder M.S., Plaschke J., Konig S.U., Borner A., Sorrells M.E., Tanksley S.D., Ganal M.W. Abundance, variability and chromosomal location of microsatellites in wheat // Mol. Gen. Genet. 1995. — V. 246. — P. 327−333.
  146. Roder M.S., Korzun V., Gill B.S., Ganal M.W. The physical mapping of microsatellite markers in wheat // Genome. 1998. — V. 41. — P. 278−283.
  147. Ruegger A., Winzeier H. and Nosberger J. Studies on the germination behaviour of spelt (Triticum spelta L.) and wheat (Triticum aestivum L.) under stress conditions // Seed Sei. Technol. 1990. — V. 18. — P. 311−320.
  148. Ruegger A. and Winzeier H. Performance of spelt (Triticum spelta L.) and wheat (Triticum aestivum L.) at two different seeding rates and nitrogen levels under contrasting environmental conditions // J. Agron. Crop. Sei. 1993. — V. 170. -P. 289−295.
  149. Sarkar P. and Stebbins G.L. Morphological evidence concerning the B genome in wheat // Am. J. Bot. 1956. — V. 43. — P. 297−304.
  150. Shewry P.R., Tatham A.S. The prolamine storage proteins of cereal seeds: structure and evolution // J Biochem. 1990. — V. 267. — P. 1−12.
  151. Sears E.R. The aneuploids of common wheat // Res. Bull. Mol. Agr. Exp. Stat. Columbia. 1954. — № 572. — P. 1−58.
  152. Sears E.R. Chromosome mapping with the aid of telocentric // Proc. 2nd Intern. Wheat Genet. Sympcs. Hereditas. Suppl. 1966. — V. 2. — P. 370−381.
  153. Siedler H., Messmer M.M., Schachermayr G.M., Winzeier H., Keller B. Genetic diversity in European wheat and spelt breeding material based on RFLP data // Theor. Appl. Genet. 1994. — V. 88. — P. 994−1003.
  154. Simonetti M.C., Bellomo M.P., Laghetti G., Perrino P., Simeone R., Blanco A. Quantitative trait loci in influencing free-threshing habit in tetraploid wheats // Genet. Res. Crop Evol. 1999. — V. 46. — P. 267−271.
  155. Statistica для Windows. Statsoft Inc. 1998. — Version 7.0
  156. Sun Q., Ni Z., Liu Z., Gao J., Huang T. Genetic relationships and diversity among Tibetan wheat, common wheat and European spelt wheat revealed by RAPD markers // Euphytica. 1998. — V. 99. — P. 205−211.
  157. Tatham A.S., Shewry P.R. The S-poor prolamins of wheat, barley, and rye // J. Cereal Sei. 1995. -V. 22.-P. 1−16.
  158. Tkachuk R., Metlish V.J. Wheat cultivar identification by high voltage gel electrophoresis // Ann. Technol. Agric. 1980. — V. 29. — P. 207−212.
  159. Torres A.M., Weeden N.F., Marti’n A. Linkage among isozyme, RFLP and RAPD markers in Vicia faba // Theor. Appl. Genet. 1993. — V. 85. — P. 937−945.
  160. Tschermak E., Bleier H. Uber fruchtbare Aegilops-Weizenbastarde (Beispiele fur die Entstehung neuer Arten durch Bastardierung) // Berichte der Deutsch. Botan. Gesselschaft. 1926. — V. 44. — № 2. — P. 110−132.
  161. Tsunewaki K. Distribution of necrosis genes in wheat. V. Triticum macha, T. spelta and T. vavilovii II Jpn. J. Genet. 1971. — V. 46. — P. 93−101.
  162. Tsunewaki K. and Nakai Y. Considerations on the origin and speciation ofthgroups of wheat from the distribution of necrosis and chlorosis genes // Proc. 4 Int. Wheat Genet. Symp., Missouri. 1973. — P. 123−129.
  163. Van Slageren M.W. Whild Wheats: a monograph of Aegilops L. and Amblyopyrum (Jaub. et Spach) Eig (Poaceae). Aleppo (Syria): Wageningen Agricultural University, Wageningen and ICARDA, 1994. 514 p.
  164. Von Buren M. Polymorphisms in two homeologous gammagliadin genes and the evolution of cultivated wheat // Genet. Res. Crop. Evol. 2001. — V. 48. — P. 205−220.
  165. Yan Y., Hsam S.L.K., Yu J.Z., Jiang Y., Ohtsuka I., Zeller F.J. HMW and LMW glutenin alleles among putative tetraploid and hexaploid European spelt wheat (Triticum spelta L.) progenitors // Theor. Appl. Genet. 2003. — V. 107. — P. 1321−1330.
  166. Ward J. H. Hierarchical grouping to optimize an objective function // Journal of the American Statistical Association. 1963. — № 58. — P. 236.
  167. Winzeier H. Dinkelanbau und Dinkelforschung in der Schweiz / 1. Dinkelsymposium in der Universitat Hohenheim, 29 July, 1988, p. 51−59.
  168. Winzeier H., Schmid J.E., Winzeier M. Analysis of the yield potential and yield components of F. and F2 hybrids of crosses between wheat (Triticum aestivum L.) and spelt (Triticum spelta L.) // Euphytica. 1994. — V. 74. — P. 211 218.
  169. Wieser H. Chemistry of gluten proteins // Food Microbiol. 2007. — V. 24. -P. 115−119.
  170. Woychik, Boundy J. A., Dimler R. J. Starch gel elctroforesis of wheat glutein proteins wich concentrated urea // Arch. Biochem. Biophys. 1961. — V. 94. — P. 477−482.
  171. Wrigley C. W. and Shepherd K. W. Electrofocusing of grain proteins from wheat genotypes // Ann. Acad. Sei. 1973. — V. 209. — P. 154−162.
  172. Zeller F.J., Gunzel G., Fischbeck G. Veranderung der Backeigenschaften der Weizen-Roggen-Translokation 1B/1R // Getreide Mehl. Brot. 1982. — Bd. 36. — S. 141−143.
  173. Zeller F. J., Hsam S.L.K. Broadening the genetic variability of cultivated wheat by utilizing rye chromatin // Proc. VI Intern, wheat genet, symp. / Ed. S. Sakamoto. Kyoto, 1983. — P. 161−173.
  174. Zonary D., Hopf M. Domestication of plants in the Old World. The origin and spread of cultivated plants in west Asia, Europe, and Nile valley. Oxford: Clarendon Press, 1988. 245 p.
  175. Zonary D., Hopf M. Domestication of plants in the world. Oxford University Press, Oxford. 2000. — P. 19−59.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!