Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Изучение высокопроницаемой поры в митохондриях растений в условиях стресса

Диссертация: Изучение высокопроницаемой поры в митохондриях растений в условиях стресса
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Проблема механизмов регуляции высокопроницаемой митохондриальной поры находится в центре научного внимания. Это связано в первую очередь с центральной ролью, играемой митохондриями в процессе индукции программированной клеточной смерти. В настоящее время имеются скорее разрозненные и в чем-то противоречивые данные о наличии и функционировании высокопроницаемых пор у животных. Существование… Читать ещё >

Изучение высокопроницаемой поры в митохондриях растений в условиях стресса (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ПРИНЯТЫЕ СОКРАЩЕНИЯ
  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Влияние абиотических стрессов на клеточный метаболизм растений
      • 2. 1. 1. Реакция растений на низкотемпературный стресс, синтез стрессовых белков
      • 2. 1. 2. Низкотемпературный стресс и его воздействие на растения
      • 2. 1. 3. Зависимость процесса дыхания от низкотемпературных стрессовых условий, изменения в сопряжении процессов окисления и фосфорилирования
      • 2. 1. 4. Окислительный стресс и его последствия для растительной клетки
    • 2. 2. Митохондрии как звено в ответе растительной клетки на стресс
      • 2. 2. 1. Структура митохондрий и функционирование электронтранспортной цепи
      • 2. 2. 2. Генерация активных форм кислорода при функционировании электронтранспортной цепи и антиоксидантная система защиты клетки
      • 2. 2. 3. Митохондриальные белки, участвующие в ответе растительной клетки на стрессовое воздействие
      • 2. 2. 4. Участие митохондрий в программируемой клеточной смерти
    • 2. 3. Проницаемость митохондриальных мембран растений
      • 2. 3. 1. Понятие о митохондриальной проницаемости
      • 2. 3. 2. Структура высокопроницаемых митохондриальных пор
      • 2. 3. 3. Роль ионов кальция в изменении проницаемости митохондрий
      • 2. 3. 4. Роль цитохрома с в неспецифической мембранной проницаемости и причины его выхода из митохондрий
      • 2. 3. 5. Функционирование митохондриальной поры в стрессовых условиях
    • 2. 4. Выводы из обзора литературы, постановка цели и задач исследования
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 3. 1. Растительный материал
    • 3. 2. Моделирование стрессовых условий
    • 3. 3. Определение жизнеспособности клеток проростков
    • 3. 4. Определение изменений ростовой реакции проростков и их выживаемости
    • 3. 5. Выделение митохондрий
    • 3. 6. Очистка митохондрий
    • 3. 7. Определение активности цитохром с оксидазы
    • 3. 8. Определение окислительной и фосфорилирующей активности митохондрий
    • 3. 9. Измерение набухания митохондрий
    • 3. 10. Экстракция белков
      • 3. 10. 1. Выделение суммарного белка
      • 3. 10. 2. Выделение цитоплазматических белков
      • 3. 10. 3. Выделение митохондриальных белков
    • 3. 11. Электрофоретические методы
      • 3. 11. 1. Электрофорез в ПААГе с ДДС-Na
      • 3. 11. 2. Окраска и обесцвечивание гелей
    • 3. 12. Вестерн-блоттинг
    • 3. 13. Определение молекулярных масс полипептидов
    • 3. 14. Статистическая обработка данных
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. Чувствительность дыхания митохондрий разных злаков к индуктору и ингибитору высокопроницаемой митохондриальной поры
      • 4. 1. 1. Влияние ЭДТА, как компонента сред, используемых для выделения митохондрий, на энергетическую активность митохондрий
      • 4. 1. 2. Влияние ионов Са2+ на дыхательные параметры митохондрий разных видов злаков
      • 4. 1. 3. Влияние циклоспорина, А на функционирование митохондрий разных видов растений
    • 4. 2. Влияние низкотемпературного и окислительного стрессов на жизнеспособность клеток, рост и выживание проростков озимой пшеницы
    • 4. 3. Дыхание митохондрий озимой пшеницы при низкотемпературном и окислительном стрессах
      • 4. 3. 1. Дыхание митохондрий в присутствии индукторов и ингибиторов различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран
      • 4. 3. 2. Изменение дыхания митохондрий под действием стрессовых факторов
      • 4. 3. 3. Изменение чувствительности дыхания митохондрий к индукторам и ингибиторам различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран под действием стрессовых факторов
      • 4. 4. 1. Влияние сред различного состава на набухание митохондрий
      • 4. 4. 2. Набухание митохондрий в присутствии индукторов и ингибиторов различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран
      • 4. 4. 3. Изменение набухания митохондрий под действием стрессовых факторов
      • 4. 4. 4. Изменение чувствительности набухания митохондрий к индукторам и ингибиторам различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран под действием стрессовых факторов

В последнее время изменение проницаемости митохондриальных мембран привлекает большое внимание в связи с тем, что разобщение окислительного фосфорилирования и набухание матрикса митохондрий являются событиями, предшествующими открытию в митохондриях высокопроницаемой поры («Permeability transition роге»), высвобождению цитохрома с и инициации программированной клеточной смерти (Zoratti, Szabo, 1995; Bernardi, 1996; Crompton, 1999; Huang et al., 2001; Curtis, Wolpert, 2002; Bernardi et al., 2006; Tsujimoto, Shimizu, 2007). Ведущую роль в изменении проницаемости играют ионы Са2+, повышение содержания которых в цитозоле в стрессовых условиях приводит к тому, что они начинают поступать в митохондрии, а увеличение их содержания в митохондриальном матриксе в момент стресса может достигать такой концентрации, которая приводит к способности этих ионов связываться со свободными жирными кислотами с образованием комплекса жирной кислоты и ионов Са2+, что в свою очередь и индуцирует набухание органелл, открытие поры и индукцию программированной клеточной смерти. Способность жирных кислот вызывать открытие циклоспорин А-чувствительной поры объясняется как их протонофорным действием, так и непосредственным взаимодействием с АДФ/АТФ-антипортером. Механизм индукции митохондриальной поры у растений мало изучен. Существование классической циклоспорин А-чувствительной поры в растительных митохондриях до сих пор обсуждается, а данные о влиянии стрессовых факторов на процессы, происходящие при открытии высокопроницаемых пор у растений и приводящие к клеточной гибели, фрагментарны (Koukalova et al., 1997; Balk et al., 1999; Tiwari et al., 2002; Virolainen et al., 2002).

Установлено, что окислительный стресс, вызванный обработкой Н2О2, является причиной выхода цитохрома с в цитозоль в клетках арабидопсиса (Tiwari et al., 2002). ПКС, индуцированная тепловым шоком, в растениях огурца (Balk et al., 1999) и аноксия озимой пшеницы (Virolainen et al., 2002) также приводят к высвобождению цитохрома с из митохондрий этих растений. Показано, что холодовой стресс служит стимулом для активации ПКС в культуре клеток табака BY-2, который приводит к специфической фрагментации хроматина, сопряженной с апоптическими изменениями ядра и цитоплазмы (Koukalova et al., 1997). В то же время отсутствуют данные о влиянии холодового воздействия на изменение проницаемости митохондрий растений.

Целью настоящей работы явилось изучение высокопроницаемой поры в митохондриях растений в условиях стресса.

В задачи исследования входило:

1) изучить чувствительность дыхания митохондрий проростков злаков с различной степенью холодоустойчивости к специфичному ингибитору высокопроницаемой митохондриальной поры — циклоспорину, А и индуктору поры — ионам Са2+;

2) исследовать влияние кратковременного и длительного низкотемпературных воздействий, окислительного стресса и сочетания этих факторов на жизнеспособность клеток, рост и выживание проростков озимой пшеницы;

3) изучить чувствительность дыхания митохондрий озимой пшеницы, изолированных из проростков, подвергнутых стрессовым воздействиям, к индукторам и ингибиторам различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран;

4) исследовать набухание митохондрий озимой пшеницы, изолированных из проростков, подвергнутых стрессовым воздействиям, и оценить его чувствительность к индукторам и ингибиторам различных механизмов, изменяющих проницаемость митохондриальных мембран;

5) установить возможность существования циклоспорин А-чувствительной поры в митохондриях проростков озимой пшеницы и изучить изменение ее свойств при низкотемпературном и окислительном стрессах.

Работа была выполнена в лаборатории физиологической генетики Сибирского института физиологии и биохимии растений СО РАН. Автор выражает большую признательность и благодарность своему научному руководителю д.б.н., гл.н.с. Побежимовой Тамаре Павловне за постоянное внимание к данной работе, а также к.б.н., с.н.с. Грабельных Ольге Ивановне и ведущему технологу Королевой Нине Анатольевне за всестороннюю помощь и поддержку. Кроме того, автор благодарит весь коллектив лаборатории физиологической генетики за дружеское участие и поддержку.

6. ВЫВОДЫ.

1. Кратковременное холодовое воздействие (-4°С, 1 ч), окислительный стресс (0.5 мМ Н2О2, 4 ч) и окислительный стресс, следующий за кратковременным Холодовым воздействием, не снижают жизнеспособность клеток и рост проростков озимой пшеницы. Холодовое закаливание (4°С, 7 сут) с последующим окислительным стрессом приводит к снижению жизнеспособности клеток и роста проростков озимой пшеницы.

2. Ионы Са и пальмитиновая кислота вызывают стимуляцию дыхания и набухания митохондрий из контрольных проростков озимой пшеницы и проростков, подвергнутых кратковременному и длительному низкотемпературным воздействиям.

3. Способность циклоспорина, А ингибировать скорость нефосфорилирующего дыхания и набухание митохондрий из контрольных проростков озимой пшеницы исчезает после низкотемпературного воздействия и появляется после следующего за низкотемпературным окислительного стресса, что позволяет предположить изменение свойств митохондриальной поры в условиях стресса.

4. В набухании митохондрий озимой пшеницы как в нормальных, так и стрессовых условиях принимает участие АДФ/АТФ-антипортер. Кратковременное холодовое воздействие приводит к участию в набухании митохондрий разобщающего белка PUMP.

5. В митохондриях озимой пшеницы, озимой ржи и кукурузы существует регулируемая Са2±зависимая и циклоспорин А-чувствительная пора. У озимой пшеницы высокопроницаемая митохондриальная пора является и пальмитат-зависимой.

5.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проблема механизмов регуляции высокопроницаемой митохондриальной поры находится в центре научного внимания. Это связано в первую очередь с центральной ролью, играемой митохондриями в процессе индукции программированной клеточной смерти. В настоящее время имеются скорее разрозненные и в чем-то противоречивые данные о наличии и функционировании высокопроницаемых пор у животных. Существование классической циклоспорин А-чувствительной поры в растительных митохондриях до сих пор обсуждается, а данные о влиянии стрессовых факторов на процессы, происходящие при открытии высокопроницаемых пор у растений малочисленны.

В ходе изучения влияния низкотемпературного и окислительного стрессов на жизнеспособность клеток, рост и выживание проростков озимой пшеницы было показано, что их действие на проростки сопровождалось изменениями как жизнеспособности клеток проростков, так и роста. Так, кратковременное холодовое воздействие (-4°С, 1 ч), окислительный стресс (0.5 мМ Н2О2, 4 ч) и окислительный стресс, следующий за кратковременным Холодовым воздействием, не снижали жизнеспособность клеток и рост проростков озимой пшеницы. Длительное холодовое воздействие (4°С, 7 сут) с последующим окислительным стрессом приводило к снижению жизнеспособности клеток и роста проростков озимой пшеницы. Выживаемость проростков озимой пшеницы после всех изученных видов стрессового воздействия была 100%. Таким образом, применяемые в работе стрессы имели мягкий повреждающий характер и были не губительны для растения.

Л I.

Изучение индукторов (ионов Са и жирных кислот) и ингибитора митохондриальной поры — циклоспорина А, эффект которого выступает диагностическим признаком классической высокопроницаемой поры, выявило циклоспорин А-чувствительную, Са2± и пальмитат-зависимую стимуляцию скорости нефосфорилирующего дыхания митохондрий озимой пшеницы. Эти данные согласуются с результатами, полученными при изучении влияния циклоспорина А, ионов Са и пальмитиновой кислоты на набухание митохондрий озимой пшеницы, которые также имели циклоспорин А-чувствительный, Са2± и пальмитат-зависимый характер. В связи с этим, можно сделать вывод, что в митохондриях озимой пшеницы I существует Са /пальмитат-зависимая и циклоспорин А-чувствительная пора. Однако способность циклоспорина, А ингибировать процессы дыхания и набухания митохондрий исчезала после низкотемпературного воздействия на проростки и появлялась после следующего за низкотемпературным окислительного стресса, что позволяет заключить, что в условиях стресса происходят изменения свойств митохондриальной поры.

Известно, что одним из структурных компонентов митохондриальной поры является АДФ/АТФ-антипортер (Crompton, 1999; Bernardi et al., 2006; Tsujimoto, Shimizu, 2007). В наших исследованиях участие АДФ/АТФ-антипортера было показано в набухании как в митохондриях контрольных проростков, так и после изученных стрессовых воздействий. В набухании митохондрий из проростков озимой пшеницы, подвергнутых кратковременному холодовому воздействию, наряду с АДФ/АТФ-антипортером принимает участие разобщающий белок PUMP.

Изучение высокопроницаемой поры у разных видов растений, отличающихся по степени холодостойкости (озимая рожь, озимая пшеница и кукуруза), позволило установить, что в митохондриях всех изученных растений существует регулируемая Са2±зависимая и циклоспорин, А L чувствительная пора. Однако действие ионов Са и циклоспорина, А на дыхание митохондрий проростков озимой пшеницы, по сравнению с митохондриями проростков озимой ржи, было более выражено.

Следует заметить, что в отличие от обнаруженной чувствительности набухания митохондрий из побегов проростков озимой пшеницы к циклоспорину, А Е. Virolainen с соавт. в 2002 г. на митохондриях из корней проростков озимой пшеницы показали нечувствительность набухания к данному ингибитору. Можно предполагать, что механизмы индукции и регуляции открытия высокопроницаемой поры в митохондриях зависят даже от функциональной роли того или иного органа растения. Полученные нами данные согласуются с предположением других авторов о нескольких функциональных состояниях высокопроницаемой поры как в митохондриях животных, так и растений (Fortes et al., 2001; Arpagaus et al., 2002; Curtis, Wolpert, 2002; He, Lemasters, 2002; Tiwari et al., 2002; Virolainen et al., 2002) и указывают на то, что индукция и регуляция митохондриальной поры может происходить посредством нескольких механизмов.

Обнаружение в митохондриях злаков Сазависимой и циклоспорин А-чувствительной поры и изменение ее свойств при холодовом и окислительном воздействиях значительно расширяет и дополняет имеющиеся знания о процессах, предшествующих инициации программы клеточной смерти в растительной клетке, и открывает перспективы для дальнейших исследований в области изучения программированной клеточной смерти растений.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Н.И. Апоптоз у проростков пшеницы при нормальном световом дне / Н. И. Александрушкина, В. А. Замятина, Л. Е. Бакеева и др. // Биохимия. 2004. — Т.69, вып. 3. — С.356−366.
  2. , И.Н. Методы выделения физиологически активных митохондрий из растительных тканей // Клетка и кл. структуры / И. Н. Андреева / отв. ред. Ю. Г. Молотковский. М.: Наука, 1968. — С.16−24.
  3. , Е. Процессы замерзания и повреждения растительных клеток // Холодостойкость растений / Е. Асахина / отв. ред. Г. А. Самыгин. -М.: Колос, 1983.-С.23−36.
  4. , А.Х. Экспрессия гена аланин-богатого белка капусты при различных условиях холодовой акклимации / А. Х. Баймиев, Ф. Р. Гималов, А. В. Чемерис // Физиол. растений. 1999. — Т.46, № 4. — С.605−609.
  5. , Т.С. Влияние циклогексимида на синтез полисахаридов клеточной стенки и активность гликозидаз корней пшеницы при закаливании к морозу / Т. С. Барышева, О. А. Заботина, А. И. Заботин // Физиол. растений. 1999. — Т.46, № 4. — С.633−638.
  6. , К.Н. Возможный механизм образования и регуляции пальмитат-индуцированной циклоспорин А-нечувствительной митохондриальной поры / К. Н. Белослудцев, Н. В. Белослудцева, Г. Д. Миронова//Биохимия. 2005. — Т.70, вып. 7. — С.987−994.
  7. , Л.Р. Независимое от биосинтеза белка изменение активности инвертазы в узлах кущения озимой пшеницы в условиях гипотермии / Л. Р. Борисенко, Ю. Е. Колупаев, Н. И. Рябчун и др. // Физиол. и биох. культ, растений. 1991. — Т.23, № 1. — С.5 8−64.
  8. , Ю.А. Нарушение барьерных свойств внутренней и наружной мембран митохондрий, некроз и апоптоз / Ю. А. Владимиров // Биол. мембраны. 2002. — Т. 19, № 5. — С.356−377.
  9. , С.В. Активность пептидгидролаз в проростках озимой пшеницы при действии низких температур / С. В. Вовчук, В. Н. Мусич, О. А. Макаренко // Физиол. и биох. культ, растений. 1991. — Т.23, № 4. — С.355−359.
  10. , С.В. Протеиназная активность и компонентный состав межклеточной жидкости проростков озимой пшеницы при действии низких температур / С. В. Вовчук, О. А. Макаренко, В. Н. Мусич // Физиол. и биох. культ, растений. 1994. — Т.26, № 2. — С. 180−185.
  11. , В.К. К вопросу о выделении интактных растительных митохондрий / В. К. Войников // Изв. Сиб. отд-ния АН СССР. Сер. биол. наук. 1980. -Т.10, вып.2.-С.121−125.
  12. , В.К. Действие холода на количество свободных жирных кислот и активность митохондрий у озимой ржи / В. К. Войников, Г. Б. Лузова, В. П. Лемзяков // Физиол. растений. 1981. — Т.28, вып.1. — С.18−26.
  13. , В.К. Влияние холодового шока на количество свободных жирных кислот, энергетическую активность митохондрий и температуру в проростках озимых злаков / В. К. Войников, Г. Б. Лузова, A.M. Корзун // Доклады АН СССР. 1983. — Т.270, № 3. — С.761−764.
  14. , В.К. Температура тканей побегов озимой пшеницы при холодовом шоке / В. К. Войников, A.M. Корзун // Изв. Сиб. отд-ния АН СССР. Сер. биол. наук. 1984. — Вып.2. — С.121−125.
  15. , В.К. Синтез белков в растениях при действии низкой температуры / В. К. Войников, Г. Г. Иванова, М. В. Корытов // Физиол. и биох. культ, растений. 1986. — Т. 18, № 3. -С.211−222.
  16. , В.К. Температурный стресс и митохондрии растений /
  17. B.К. Войников. Новосибирск: Наука, 1987. — 135 с.
  18. , В.К. Синтез стрессовых белков в проростках озимой пшеницы при закаливании к холоду / В. К. Войников, М. В. Корытов // Физиол. растений. 1991. -Т.38, вып.5. — С.960−969.
  19. , В.К. Влияние условий гипотермии на синтез стрессовых белков в проростках озимой пшеницы / В. К. Войников, М. В. Корытов // Физиол. растений. 1993. — Т.40, № 4. — С.589−595.
  20. , В.К. Роль стрессовых белков в клетках при гипертермии / В. К. Войников, Г. Б. Боровский // Успехи совр. биол. 1994. -Т.114, вып.1.-С.85−95.
  21. , В.К. Белок холодового шока 310 кДа разобщает окислительное фосфорилирование в растительных митохондриях / В. К. Войников, О. И. Грабельных, А. В. Колесниченко и др. // Физиол. растений. -2001. -Т.48, № 1. -С.106−112.
  22. , Г. Г. Митохондриальная ДНК / Г. Г. Гаузе. М.: Наука, 1977.-286 с.
  23. , Ф.Р. Специфичность синтеза белков холодового шока в проростках отдельных представителей трибы Triticeae семейства злаковых / Ф. Р. Гималов, А. В. Чемерис, В. А Вахитов // Физиол. растений. 1996. — Т.43, № 2. — С.262−266.
  24. , О.И. Изучение влияния циклоспорина, А и ионов1. Л I
  25. Са на функционирование растительных митохондрий / О. И. Грабельных, Н. С. Павловская, Т. П. Побежимова и др. // Вестник Харьковского национального аграрного университета, Серия Биология. 2004. — № 2 (5). -С.33−38.
  26. , О.И. Механизмы и функционирование нефосфорилирующего транспорта электронов в дыхательной цепи митохондрий растений / О. И. Грабельных, А. В. Колесниченко, Т. П. Побежимова и др. // Физиол. растений. 2006. — Т.56, № 3. — С.468−480.л .
  27. , Р. Влияние разобщителей на Са -стимулируемое дыхание митохондрий / Митохондрии. Регуляция процессов окисления и сопряжения / Р. Даргель, Ю. Н. Лейкин. М.: Наука, 1974. — С.76−83.
  28. , Р. Влияние Са на сопряжение митохондрий крыс / Митохондрии. Транспорт электронов и преобразование энергии / Р. Даргель. -М.: Наука, 1976.-С.47−52.
  29. , В.Н. Индукция неселективной проницаемости внутренней мембраны в деэнергизованных митохондриях / В. Н. Дедов, О. В. Демин, В. Я. Черняк и др. // Биохимия. 1999. — Т.64. — С.965−973.
  30. , Н.В. Озимая пшеница в Иркутской области / Н. В. Дорофеев, А. А. Пешкова, В. К. Войников / отв. ред. О. П. Родченко. Иркутск: Арт — Пресс, 2004. -175 с.
  31. , Ю.В. Регуляция ионами кальция окислительного фосфорилирования во внутренней мембране митохондрий печени крысы / Ю. В. Евтодиенко, Т. С. Азарашвили, В. В. Теплова // Биохимия. 2000. — Т.65, вып.9. — С.1210−1214.
  32. , А.Г. Об использовании 2,3,5-трифенилтетразолий хлорида для оценки жизнеспособности культур растительных клеток / А. Г. Еникеев, Е. Ф. Высоцкая, JI.A. Леонова и др. // Физиол. растений. 1995. -Т.42, № 3. — С.423−426.
  33. , В.А. Апоптоз в первом листе у этиолированных проростков пшеницы: влияние антиоксиданта ионола (ВНТ) и перекисей / В. А. Замятина, Л. Е. Бакеева, Н. И. Александрушкина и др. // Биохимия. -2002. Т.67, вып 2. — С.253−264.
  34. , О.А. Последействие пониженных температур на дыхание теплолюбивых растений / О. А. Зауралов, А. С. Лукаткин // Физиол. растений. 1997. — Т. 44, № 5. — С.736−741.
  35. , Н.К. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз / Н. К Зенков., Е. Б. Меньшикова, Н. Н. Вольский и др. // Успехи совр. биол. -1999. Т.119, № 5. — С.440−450.
  36. , В.В. Участие активных форм кислорода в реакции митохондрий растений на низкотемпературный стресс /В.В. Зыкова, А. В. Колесниченко, В. К. Войников // Физиол. растений. 2002. — Т.49, № 2. — С.1−9.
  37. , В.Б. Клеточные основы роста растений / В. Б. Иванов. -М.: Наука, 1974.-223 с.
  38. , Е.М. Влияние низкой температуры на содержание абсцизовой и индолилуксусной кислот в растениях озимой и яровой пшеницы на ранних фазах развития / Е. М. Ильянчук, Д. А. Лихолат // Физиол. и биох. культ, растений. 1989. — Т.21, № 3. — С.286−293.
  39. , К.С. Механизмы развития цитокининдуцированного апоптоза / К. С. Казначеев // Гематология и трансфузиология. 1999. — Т.44, № 1.-С.40−43.
  40. Касперска-Палач, А. Механизм закаливания травянистых растений / А. Касперска-Палач // Холодостойкость растений / отв. ред. Г. А. Самыгин. М.: Колос, 1983. — С. 112−123.
  41. , И.М. Стимуляция дыхания листьев пшеницы и пролиферация митохондрий в их клетках под влиянием охлаждения / И. М. Кислюк, Е. А. Мирославов, Т. В. Палеева // Физиол. растений. 1995. — Т.42, № 4. — С.603−606.
  42. , С.В. Адаптация фотосинтеза озимой пшеницы к низким положительным и отрицательным температурам в связи с перезимовкой / С. В. Климов // Физиол. и биох. культ, растений. 1989. — Т.21, № 3. — С.261−267.
  43. , С.В. Сопряженные изменения морозостойкости, фотосинтеза и дыхания, ультраструктуры клеток и хлоропластов у озимой пшеницы и ржи при холодовом закаливании / С. В. Климов, Н. В. Астахова, Т. И. Трунова // Доклады АН. 1994. — Т.337, № 2. — С.276−279.
  44. , С.В. Повышенное отношение фотосинтез/дыхание при низких температурах важное условие холодового закаливания озимой пшеницы / С. В. Климов // Физиол. растений. — 1998. — Т.45, № 3. — С.419−424.
  45. , А.В. Содержание стрессового белка 310 кДа в проростках озимой пшеницы при гипотермии и водном стрессе / А. В. Колесниченко, В. К. Войников, Г. Б. Боровский и др. // Физиол. и биох. культ, растений. -1999. -Т.31. С.145−149.
  46. , А.В. Характеристика белков низкотемпературного стресса растений / А. В. Колесниченко, Т. П. Побежимова, В. К. Войников // Физиол. растений. 2000. — Т.47, № 4. — С.624−630.
  47. , Ю.Е. О возможных механизмах изменения активности инвертазы колеоптилей пшеницы при холодовом закаливании / Ю. Е. Колупаев, J1.A. Сысоев, Т. А. Манойло и др. // Физиол. и биох. культ, растений. 1989. — Т.20, № 6. — С.560−566.
  48. , Э.Н. Изменение лектиновой активности клеточных стенок этиолированных проростков озимой пшеницы в процессе закаливания к морозу / Э. Н. Комарова, Э. И. Выскребенцева, Т. И. Трунова // Доклады АН. 1993. — Т.329, № 5. — С.680−681.
  49. , М.Н. Метаболические состояния митохондрий и основные метаболические состояния живой ткани / М. Н. Кондрашова / В кн.: Свойства и функции макромолекул и макромолекулярных систем. М.: Наука, 1969.-С.135−143.
  50. , А.И. Растения и экстремальные температуры / А. И. Коровин. JL: Гидрометеоиздат, 1984. — 272 с.
  51. , B.C. Развитие представлений об адаптации растений к низким температурам / B.C. Кравец // Физиол. и биох. культ, растений. -1996. Т.28, вып.З. — С.168−182.
  52. , С.П. Влияние абсцизовой кислоты и цитокинина на биосинтез белка при холодовой и тепловой адаптации растений / С. П. Критенко, А. Ф. Титов // Физиол. и биох. культ, растений. 1990. — Т.37, вып.1. — С.126−132.
  53. , В.В. Элементы неспецифичности реакции генома растений при холодовом и тепловом стрессе / В. В. Кузнецов, Д. Кимпел, Д. Гокджиян и др. // Физиол. растений. 1987. — Т.34, вып.5. — С.859−868.
  54. , В.В. Физиология растений / В. В. Кузнецов, Г. А. Дмитриева. М.: Высшая школа, 2005. — 736 с.
  55. , В.К. Действие и последействие температуры на дыхание интактных растений / В. К. Курец, С. Н. Дроздов, Э. Г. Попов и др. // Физиол. растений. 2003. — Т.50, № 3. — С.349−353.
  56. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин. М.: Высшая школа, 1973.343 с.
  57. , Дж. Повреждения и выживание после замораживания и связь с другими повреждающими воздействиями / Дж. Левитт // Холодостойкость растений / отв. ред. Г. А. Самыгин. М.: Колос, 1983. -С. 10−22.
  58. , А. Биохимия. Молекулярные основы структуры и функции клетки / А. Ленинджер. М.: Мир, 1974. — 957 с.
  59. , М.И. Изменение термостабильности и кинетических свойств ферментов при адаптации растений к температуре / М. И. Лютова // Физиол. растений. 1995. — Т.42, № 6. — С.929−941.
  60. , В.Д. Принципы стабилизации растительных мембран при формировании состояния криорезистентности / В. Д. Мануильский // Физиол. и биох. культ, растений. 1990. — Т.22, № 4. — С.315−326.
  61. , Д.Н. Лекции по клинической патологии / Д. Н. Маянский, Н. Г. Урсов. Новосибирск, 1997. — 325 с.
  62. , С.С. Физиология растений / С. С. Медведев. С.-П.: Издательство С.-Петербургского Университета, 2004. — 335 с.
  63. , А.Г. Регуляция и физиологическая роль цианидрезистентной оксидазы у грибов и растений / А. Г. Меденцев, А.Ю.
  64. , Е.Е. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных процессов / Е. Е. Меныцикова, Н. А. Зенков // Успехи совр. биол. 1993. -Т.113, № 4. — С.442−455.
  65. , М.Н. Активированный кислород и жизнедеятельность растений / М. Н. Мерзляк // Соросовский Образовательный Журнал. 1999. -№ 9. — С.20−26.
  66. , Д. Биоэнергетика. Введение в хемиосмотическую теорию / Д. Николе- пер. с англ. М.: Мир, 1985. — 190 с.
  67. , Г. В. Липидный состав листьев и узлов кущения озимой ржи при закаливании к морозу / Г. В. Новицкая, О. А. Зверкова, Соколова // Физиол. растений. 1986. — Т. ЗЗ, вып.5. — С.997−1004.
  68. , Г. В. Изменение ненасыщенности жирных кислот липидов растений озимой и яровой пшеницы в процессе закаливания / Г. В. Новицкая, Е. Б. Сальникова, Т. А. Суворова // Физиол. и биох. культ, растений. 1990. — Т.22, № 3. — С.257−263.
  69. , Г. В. Роль липидной компоненты мембран в устойчивости растений огурца к низкой температуре / Г. В. Новицкая, Н. В. Астахова, Т. А. Суворова // Физиол. растений. 1999. — Т.46, № 4. — С.618−625.
  70. , Н.Д. Механизмы адаптаций / Н. Д. Озернюк. М.: Наука, 1992.-272 с.
  71. , К.Р. Анализ стрессов, вызываемых замерзанием и реакция на них растений / К. Р. Олайен // Холодостойкость растений / отв. ред. Г. А. Самыгин. М.: Колос, 1983. — С.37−45.
  72. Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН. 2006. -С.74−78.
  73. , Н.С. Циклоспорин А-чувствительная митохондриальная пора озимой пшеницы при низкотемпературном и окислительном стрессах / Н. С. Павловская, О. В. Савинова, О. И. Грабельных и др. // Доклады АН. 20 076. — Т.417, № 2.
  74. , Т.П. Методы изучения митохондрий растений. Полярография и электрофорез / Т. П. Побежимова, А. В. Колесниченко, О. И. Грабельных. Москва, 2004. — С.6−15.
  75. , В.В. Физиология растений / В. В. Полевой. М.: Высшая школа, 1989.-464 с.
  76. , Г. Б. Изучение конформационных свойств гемсодержащих белков методом спиновых меток / Г. Б. Постникова // Биохимия. 1996. -Т.61. — С.947−967.
  77. , М.М. Липолитические ферменты / М. М. Рахимов, Н. Р. Джамбаева // Успехи совр. биол. 1977. — Т.84, № 3. — С.323−337.
  78. , Э. Биоэнергетические механизмы: новые взгляды / Э. Рэкер. М.: Мир, 1979. — 216 с.
  79. , И.М. Изопероксидазы проростков сорго при холодовом стрессе / И. М. Савич // Физиол. и биох. культ, растений. 1989. — Т.20, № 6. -С.566−572.
  80. , В.Д. Программируемая клеточная смерть у растений /
  81. B.Д. Самуилов // Соросовский Образовательный журнал. 2001. — № 10.1. C.12−17.
  82. , О.А. Энергетика дыхания растений в норме и при экологическом стрессе / О. А. Семихатова // 48-е Тимирязевские чтения. JL: Наука, 1990. — 72 с.
  83. , О.А. Дыхание поддержания и адаптация растений / О.А. Семихатова//Физиол. растений. 1995. -Т.42, № 2. -С.312−319.
  84. , В.П. Трансформация энергии в биомембранах / В. П. Скулачев. М.: Наука, 1972. — 203 с.
  85. , В.П. Энергетика биологических мембран / В. П. Скулачев. М.: Наука, 1989. — 564 с.
  86. , В.П. Снижение внутриклеточной концентрации 02 как особая функция дыхательных систем клетки / В. П. Скулачев // Биохимия. -1994. Т.59. — С.1910−1912.
  87. , В.П. В своем межмембранном пространстве митохондрия таит «белок самоубийства», который, выйдя в цитозоль, вызывает апоптоз / В. П. Скулачев // Биохимия. 1996. — Т.61, вып. 11. -С.2060−2063.
  88. , В.П. Явления запрограммированной смерти. Митохондрии, клетки и органы: роль активных форм кислорода / В. П. Скулачев // Соросовский Образовательный Журнал. 2001. — Т.7, № 6. — С.4−10.
  89. , Н.Ф. АБК как фактор закаливания суспензионной культуры пшеницы к морозу / Н. Ф. Сопина, Г. С. Карасев, Т. Н. Трунова // Физиол. растений. 1994. — Т.41, № 4. — С.546−551.
  90. Стрессовый белок БХШ 310: характеристика и функции в растительной клетке / А. В. Колесниченко, В. К. Войников, О. И. Грабельных и др. Иркутск: Издательство Института географии СО РАН, 2004. — 225 с.
  91. , JI.A. Температурные характеристики растворимой инвертазы озимой пшеницы в процессе холодового закаливания / Л. А. Сысоев, Ю. Е. Колупаев, Т. А. Манойло // Физиол. и биох. культ, растений. -1989. -Т.21, № 2.-С.178−182.
  92. , А. А. Изготовление в лабораторных условиях закрытого полярографического электрода Кларка // Руководство по изучению биологического окисления полярографическим методом / А. А. Трушанов / отв. ред. Г. М. Франк. М.: Наука, 1973. — 221 с.
  93. , И.И. Физиология закаливания и морозостойкости растений / И. И. Туманов. М.: Наука, 1979. — 352 с.
  94. , Д.Б. Апоптоз: фармакологические аспекты / Д. Б. Утешев, А. В. Сергеев, Б. С. Утешев // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1998. — Т.61, № 4. — С.57−65.
  95. Физиология растений / Н. Д. Алехина, Ю. В. Балнокин, В. Ф. Гавриленко и др. / под ред. И. П. Ермаковой. М.: Издательский центр «Академия», 2005. — 640 с.
  96. , В.В. Энергетика теплообразования и адаптация к холоду / В. В. Хаскин. Новосибирск: Наука, 1975. — 200 с.
  97. , Л.П. Сезонные изменения митохондрий у закаленных и незакаленных к холоду растений озимой пшеницы / Л. П. Хохлова, Н. Н. Кучеренкова, Й. Р. Абдрахимова // Физиол. растений. 1993. — Т.40. — С.607−612.
  98. , П. Биохимическая адаптация / П. Хочачка, Дж. Сомеро. -М.: Мир, 1988.-567 с.
  99. , Ч. Активные формы кислорода и воспалительные процессы в зубах человека / Ч. Чанакчи, Я. Чичек, В. Чанакчи // Биохимия. -2005. -Т.70, вып.6.-С.751−761.
  100. Чен, П. Роль воды в морозостойкости озимых злаков / П. Чен, JI.B. Густа // Холодостойкость растений / отв. ред. Г. А. Самыгин. М.: Колос, 1983.-С.132−140.
  101. , Т.В. Физиологические основы устойчивости растений / Т. В. Чиркова. СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского университета, 2002. -458 с.
  102. , А.Г. Некоторые особенности структурной организации и окислительной активности дыхательной цепи митохондрий растений / А. Г. Шугаев // Успехи совр. биологии. 1991. -Т.111, вып.2. — С. 178−189.
  103. , А.Г. 1999. Альтернативная CN-резистентная оксидаза митохондрий растений: структурная организация, механизмы регуляции активности, возможная физиологическая роль / А. Г. Шугаев // Физиол. растений. 1999. -Т.46. — С.307−320.
  104. , А.А. Апоптоз. Природа феномена и его роль в целостном организме / А. А. Ярилин // Пат. физиология. 1998. — № 2. — С.38−48.
  105. Almeida, A.M. Cyanide-resistant, ATP-synthesis-sustained, and uncoupling protein sustained respiration during postharvest ripening of tomato fruit / A.M. Almeida, W. Jarmuszkiewicz, H. Khomsi et al. // Plant Physiol. 1999. -V.119. -P.1323−1329.
  106. Al-Nasser. Salicylate-induced kidney mitochondrial permeability transition is prevented by cyclosporin A / Al-Nasser // Toxicology Lett. 1999. -V.105.-P.1−8.
  107. Amor, Y. Anoxia pretreatment protects soybean cells against H2O2-induced cell death: possible involvement of peroxidases and of alternative oxidase / Y. Amor, M. Chevion, A. Levine // FEBS Lett. 2000. — V.477. — P.175−180.
  108. Anderson, J.V. Spinach BiP and an HSP 70 are differentially regulated during cold acclimation: Jt. Annu. meet. Amer. Soc. Plant Physiol., Can.
  109. Soc. Plant Physiol., Minneapolis, Minn., July 31 Aug. 4, 1993: Sci. program- Abstr. Pap. / J.V. Anderson, Q.-B. Li, D.W. Haskel et al. // Plant Physiol. 1993. -V.102, № 1. — Suppl. — P. 149.
  110. Andreyev, A.Y. Cytochrome с release from brain mitochondria is independent of the mitochondrial permeability transition / A.Y. Andreyev, B. Fahy, G. Fiskum // FEBS Lett. 1998. — V.439. — P.373−376.
  111. Antikainen, M. Immunolocalization of antifreeze proteins in winter rye leaves, crowns, and roots by tissue printing / M. Antikainen, M. Griffith, J. Zhang // Plant Physiol. 1996. — V. l 10, № 3. — P.845−857.
  112. Antikainen, M. Antifreeze protein accumulation in freezing-tolerant cereals / M. Antikainen, M. Griffith // Physiol. Plant. 1997. — V.99, № 3. — P.423−432.
  113. Arpagaus, S. Occurrence and characteristics of the mitochondrial permeability transition in plants / S. Arpagaus, A. Rawyler, R. Braendle // J. Biol. Chem. 2002. — V.277, № 3. — P. 1780−1787.
  114. Asghar, R. Nuclear and cytoplasmic localisation of maize embryo and aleurone dehydrin / R. Asghar, R.D. Fenton, D.A. De Mason // Protoplasma. -1994. V. 177. — P.87−94.
  115. Balk, J. Translocation of cytochrome с from the mitochondria to the cytosol occurs during heat-induced programmed cell death in cucumber plants / J. Balk, C.J. Leaver, P.F. McCabe // FEBS Lett. 1999. — V.463. — P.151−154.
  116. Battaglia, V. Oxidative stress is responsible for mitochondrial permeability transition induction by salicylate in liver mitochondria / V. Battaglia, M. Salvi, A. Toninello // J. Biol. Chem. 2005. — V.280, № 40. — P.33 864−33 872.
  117. Belosludtsev, K.N. Possible mechanism for formation and regulation of the palmitate-induced cyclosporine A-insensitive mitochondrial pore / K.N. Belosludtsev, N.V. Belosludtseva, G.D. Mironova // Biochem. 2005. — V.70, № 7.-P.815−821.
  118. Belosludtsev, K.N. On the mechanism of palmitic acid-induced1. Л Iapoptosis: the role of a pore induced by palmitic acid and Ca in mitochondria / K. Belosludtsev, N.E. Saris, L.C. Anderson et al. // J. Bioenerg. Biomembr. 2006. -V.38, № 2.-P.l 13−120.
  119. Ben-Ari, Z. Circulating soluble cytochrome с in liver disease as a marker of apoptosis / Z. Ben-Ari, H. Schmilovotz-Weiss, A. Belinki et al. // J. Int. Med. 2003. — V.254. — P.168−175.
  120. Bernardi, P. Recent progress on regulation of the mitochondrial PTP- a cyclosporinsensitive pore in the inner mitochondrial membrane / P. Bernardi, K.M. Broekemeier, D.R. Pfeiffer // J. Bioenerg. Biomembr. 1994. — V.26. -P.509−517.
  121. Bernardi, P. The permeability transition pore. Control points of a cyclosporin A-sensitive mitochondrial channel involved in cell death / P. Bernardi // Biochim. Biophys. Acta. 1996. — V.1275. — P.5−9.
  122. Bernardi, P. Mitochondria and cell death. Mechanistic aspects and methodological issues / P. Bernardi, L. Scorrano, R. Colonna et al. // Eur. J. Biochem. 1999. — V.264. — P.687−701.
  123. Bernardi, P. The mitochondrial permeability transition from in vitro artifact to disease target / P. Bernardi, A. Krauskopf, E. Basso et al. // FEBS Lett. -2006. V.273. — P.2077−2099.
  124. Boresky, J. Plant uncoupling mitochondrial protein and alternative oxidase: energy metabolism and stress / J. Boresky, A.E. Vercesi // Biosci. Reports. 2005. — V.25. — P.271−286.
  125. Bouillaud, F. Homologues of the uncoupling protein from brown adipose tissue (UCP1): UCP2, UCP3, BMCP1 and UCP4 / F. Bouillaud, E. Coulpan, C. Pecqueur et al. // Biochim. Biophys. Acta. 2001. — V.1504. — P.107−119.
  126. Bowler, C. The role of calcium and activated oxygens as signals for controlling cross-tolerance / C. Bowler, R. Fluhr // Trends Plant Sci. 2000. — V.5, № 6. — P.241−246.
  127. Brandalise, M. Overexpression of Plant Uncoupling Mitichondrial Protein in transgenic tobacco increases tolerance to oxidative stress / M. Brandalise, I.G. Maia, J. Boresky et al. // J. Bioenerg. Biomembr. 2003. — V.35, № 3. -P.203−209.
  128. Broekemeier, K.M. Cyclosporin A is a potent inhibitor of the inner membrane permeability transition in liver mitochondria / K.M. Broekemeier, M.E. Dempsey, D.R. Pfeiffer // J. Biol. Chem. 1989. — V.264, № 14. — P.7826−7830.
  129. Brookes, P. S. Calcium, ATP, and ROS: a mitochondrial love-hate triangle / P. S. Brookes, Y. Yoon, J.L. Robotham et al. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2004. — V.287. — P.817−833.
  130. Brush, R.A. Characterization and quantification of intrinsic ice nucleators in winter rye (Secale cereale) leaves / R.A. Brush, M. Griffith, A. Mlynarz // Plant Physiol. 1994. — V.104. — P.725−735.
  131. Catisti, R. Permeability transition pore closure promoted by quinine / R. Catisti, A.E. Vercesi // J. Bioenerg. Biomembr. 1999. V.31, № 2. — P.153−157.
  132. Cattivelli, L. Molecular cloning and characterization of cold-regulated genes in barley / L. Cattivelli, D. Bartels // Plant Physiol. 1990. — V.93. — P. 15 041 510.
  133. Chance, B.W. The respiratory chain and oxidative phosphorylation / B.W. Chance, V.R. Williams // Adv. Enzymol. 1956. — V.17. — P.65−132.
  134. Chavez, E. The composition of the incubation medium influences the sensitivity of mitochondrial permeability transition to cyclosporin A / E. Chavez, N. Garcia, C. Zazueta et al. // J. Bioenerg. Biomembr. 2003. — V.35, № 2. -P.149−156.
  135. Considine, M.J. Superoxide stimulates a proton leak in potato mitochondria that is related to the activity of uncoupling protein / M.J. Considine, M. Goodman, K.S. Echtay et al. // J. Biol. Chem. 2003. — V.278. — P.22 298−22 302.
  136. Crompton, M. The mitochondrial permeability transition pore and its role in cell death / M. Crompton // Biochem. J. 1999. — V.341. — P.233−249.
  137. Curtis, M.J. The oat mitochondrial permeability transition and its implication in victorin binding and induced cell death / M.J. Curtis, T.J. Wolpert // Plant J. 2002. — V.29, № 3. — P.295−312.
  138. Davy de Virville, J. Isolation and properties of mitochondria from Arabidopsis thaliana cell suspension cultures / J. Davy de Virville, I. Aaron, M.F. Alin et al. // Plant Physiol. Biochem. 1994. — V.32. — P. 159−166.
  139. Doran, E. Cytochrome с release from isolated rat liver mitochondria can occur independently of outer-membrane rupture: possible role of contact sites / E. Doran, A.P. Halestrap // Biochem. J. 2000. — V.348. — P.343−350.
  140. Douce, R. Mitochondria in higher plants: structure, function and biogenesis / R. Douce. London: Acad. Press, 1985. — 327 p.
  141. Ellis, R.J. Proteins as molecular chaperones / R.J. Ellis // Nature. -1987. V.328, № 1. -P.228−232.
  142. Ernster, D. Biochemical, phisiological and medical aspects of ubiquinone function / D. Ernster, G. Dallner // Biochim. Biophys. Acta. 1995. -V.1271. -P.165−170.
  143. Estabrook, R.W. Mitochondrial respiratory control and the polarografic measurement of ADP:0 ratio / R.W. Estabrook // Methods Enzimol. -1967. V.10. — P.41−47.
  144. Fath, A. PCD in cereal aleurone / A. Fath, P. Bethke, L. Jennifer et al. // Plant Mol. Biol. 2000. — V.44. — P.255−266.
  145. Ferri, K.F. Organelle-specific initiation of cell death pathways / K.F. Ferri, G. Kroemer // Nature Cell Biol. 2001. — V.3. — P.55−263.
  146. Fontaine, E. Progress on the mitochondrial permeability transition pore: regulation by complex T and ubiquinone analogs / E. Fontaine, P. Bernardi // J. Bioenerg. Biomembr. 1999. — V.31, № 4. — P.335−345.
  147. Fratianni, A. Increase of membrane permeability of mitochondria isolated from water stress adapted potato cells / A. Fratianni, D. Pastore, M.L. Pallotta et al. // Biosci. Reports. 2001. — V.21, № 1. — p.81−91.
  148. Garrido, C. Mechanisms of cytochrome с release from mitochondria / C. Garrido, L. Galluzzi, M. Brunet et al. // Cell Death Dif. 2006. — P. 1−11.
  149. Gatenby, A.A. Structural and functional aspects of chaperonin-mediated protein folding / A.A. Gatenby, P.V. Viitanen // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1994. — V.45. — P.469−491.
  150. Grabelnych, O.I. Pore permeability in the mitochondria of winter wheat / O.I. Grabelnych, T.P. Pobezhimova, A.V. Kolesnichenko et al. // Annual Wheat Newsletters. 2004b. — V.50. — P.125−128.
  151. Grabelnych, O.I. The energetic functions of plant mitochondria under stress / O.I. Grabelnych // J. Stress Physiol. Biochem. 2005. — V. l, № 1. — P.37−54.
  152. Grenier, G. Chengements dans les lipides de la luzerne en conditions menant a l’endurcissement au froid / G. Grenier, A. Tremolieres, H.P. Therrien et al. // Can. J. Bot. -1972. V. 50, № 8. — P.1681−1689.
  153. Griffith, M. Antifreeze protein produced endogenously in winter rye leaves / M. Griffith, P. Ala, D.S.C.Yang et al. // Plant Physiol. 1992. — V. l00, № 2. — P.593−596.
  154. Griffith, M. The role of apoplastic protein sin frost tolerance of winter iye: Jt. Annu. meet. Amer. Soc. Plant Physiol., Can. Soc. Plant Physiol.,
  155. Minneapolis, Minn., July 31 Aug. 4, 1993: Sci. program- Abstr. Pap. / M. Griffith, E. Marentes, A. Mlynerz et al. // Plant Physiol. — 1993. — V. 102, № 1. — Suppl. — P.9.
  156. Griffith, M. Antifreeze Proteins in Winter Rye / M. Griffith, M. Antikainen, W.-C. Hon et al. // Physiol. Plant. 1997. — V.100. — P.327−332.
  157. Guillot-Salomon, T. Phospholipids and polypeptides in the outer membrane of maize mitochondria / T. Guillot-Salomon, R. Remy, C. Cantrel et al. // Phytochemistry. 1997. — V.44. — P.29−43.
  158. Gupta, S. HSP60, Bax, apoptosis and the heart / S. Gupta, A.A. Knowlton // J. Cell. Mol. Med. 2005. — V.9, № 1. — P.51 -58.
  159. Guy, C.L. Altered gene expression during cold acclimation of spinach / C.L. Guy, K.J. Niemi, R. Brambl // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. — V.82, № 5. — P.3 673−3677.
  160. Guy, C.L. Sucrosephosphate synthase and sucrose accumulation at low temperature / C.L. Guy, J.L.A. Huber, S.C. Huber // Plant Physiol. 1992. -V.100, № 1. -P.502−508.
  161. Hackenbrock, C.R. The distribution of anionic sites on the surfaces of mitochondrial membranes. Visual probing with polycationic ferritin / C.R. Hackenbrock, K.J. Miller//J. Cell Biol. 1975. — V.65. P.615−630.
  162. Hahn, M. Effects of cold-treatment on protein synthesis and mRNA levels in rice leaves / M. Hahn, V. Walbot // Plant Physiol. 1989. — V.91. -P.930−938.
  163. Hansson, M.J. Powerful cyclosporin inhibition of calcium-induced permeability transition in brain mitochondria / M.J. Hanson, T. Persson, H. Friberg et al. // Brain Research. 2003. — V.960. — P.99−111.
  164. Hazen, S.P. Gene expression profiling of plant responses to abiotic stress / S.P. Hazen, Y. Wu, J.A. Kreps // Funct. Itegr. Genomic. 2003. — V.3. — P. 105−111.
  165. He, L. Regulated and unregulated mitochondrial permeability transition pores: a new paradigm of pore structure and function / L. He, J.J. Lemasters // FEBS Lett. 2002. — V.512. — P. 1−7.
  166. Hon, W.-C. Extraction and isolation of antifreeze proteins from winter rye (Secale cereale) leaves / W.-C. Hon, M. Griffith, P. Chong // Plant Physiol. -1994. V. 104.-P.971−980.
  167. Hon, W.-C. Antifriize proteins in winter iye are similar to pathogenesis-related proteins / W.-C. Hon, M. Griffith, A. Mlynarz et al. // Plant Physiol. 1995. — V.109, № 3. — P.879−889.
  168. Huang, X. Dependence of permeability transition pore opening and cytochrome с release from mitochondria on mitochondria energetic status / X. Huang, D. Zhai, Y. Huang // Mol. Cell. Biochem. 2001. — V.224. — P. l-7.
  169. Ito, K. Isolation of two distinct cold-inducible cDNAs encoding plant uncoupling proteins from the spadix of skunk cabbage (Symplocarpus foetidus) / K. Ito // Plant Sci. 1999. — V. 149. — P. 167−173.
  170. Jabs, T. Reactive oxygen intermediates as mediators of PCD in plants and animals / T. Jabs // Biochem. Pharmacol. 1998. — V.57. — P.231−245.
  171. Jezek, P. Fatty acid cycling mechanism and mitochondrial uncoupling protein / P. Jezek, H. Engstova, M. Zackova et al. // Biochim. Biophys. Acta. -1998.-V.1365.-P.319−327.
  172. Jezek, P. Occyrence of plant uncoupling mitochondrial protein (PUMP) in diverse organs and tissues of sevelar plants / P. Jezek, M. Zackova, J. Kosarova et al. // J. Bioenerg. Biomembr. — 2000. — V.32. — P. 1414−1420.
  173. Jones, A. Does the Plant Mitochondrion Integrate Cellular Stress and Regulate Programmed Cell Death? / A. Jones // Trends Plant Sci. 2000. — V.5. -P.225−230.
  174. Kaasik, A. Regilation of mitochondrial matrix volume / A. Kaasik, D. Safiulina, A. Zharkovsky et al. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2007. — V.292. -P.157−163.
  175. Knorre, D.A. Cyclosporin A-sensitive cytochrome с release and activation of external pathway of NADH oxidation in liver mitochondria due to pore opening by acidification of phosphate-containing incubation medium / D.A.
  176. Knorre, V.I. Dedukhova, M.Y. Vyssokikh et al. // Biosci. Reports. 2003. — V.23. -P.67−75.
  177. Kolesnichenko, A.V. Stress-induced protein CSP 310: a third uncoupling system in plants / A.V. Kolesnichenko, T.P. Pobezhimova, O.I. Grabelnych et al. / Planta. 2002. — V. 215. — P.279−286.
  178. Kolesnichenko, A.V. Difference between the temperature of non-hardened and hardened winter wheat seedling shoots during cold stress / A.V. Kolesnichenko, O.I. Grabelnych, T.P. Pobezhimova et al. // J. Therm. Biol. 2003. — V.28, № 3. — P.235−244.
  179. Kolesnichenko, A.V. Non-phosphorylating bypass of the plant mitochondrial respiratory chain by stress protein CSP310 / A.V. Kolesnichenko, O.I. Grabelnych, T.P. Pobezhimova et al. // Planta. 2005. — V. 221. — P. 113−122.
  180. Korshunov, S.S. The antioxidant functions of cytochrome с / S.S. Korshunov, B.F. Krasnikov, M.O. Pereverzev et al. // FEBS Lett. 1999. — V.462. -P.192−198.
  181. Koukalova, B. Chromatin fragmentation associated with apoptotic changes in tobacco cells exposed to cold stress / B. Koukalova, A. Kovarik, J. Fajkus et al. // FEBS Lett. 1997. — V.414. — P.289−292.
  182. Kowaltowski, A.J. Mitochondrial damage induced by conditions of the oxidative stress / A.J. Kowaltowski, A.E. Vercesi // Free Radical Biology & Medicine. 1999. — V. 26. — P.463−471.
  183. Krishna, P. Cold-induced accumulation of hsp 90 transcripts in Brassica napus / P. Krishna, M. Sacco, J.F. Cherutti et al. // Plant Physiol. 1995.- V.107, № 3. -P.915−923.
  184. Kristal, B.S. Apoptogenic ganglioside GD3 directly induces the mitochondrial permeability transition / B.S. Kristal, A.M. Brown // J. Biol. Chem.- 1999. V.274. -P.23 169−23 175.
  185. Kurkela, S. Cloning and characterization of a cold- and ABA-inducible Arabidopsis gene / S. Kurkela, M. Frank // Plant Mol. Biol. 1990. -V.15. -P.137−144.
  186. Kuzminova, A.E. The permeability transition pore induced uhder anaerobic conditions in mitochondria energized with ATP / A.E. Kuzminova, A.V. Zhuravlyova, M.Y. Vyssokikh et al. // FEBS Lett. 1998. — V.434. — P.313−316.
  187. Laemmli, U.K. Cleavage of structural proteins during the assemble of the head bacteriophage T4 / U.K. Laemmli // Nature. 1970. — V.227, № 5259.- P.680−685.
  188. Laloi, M. A plant cold-induced uncoupling protein / M. Laloi, M. Klein, J. Riesmeier et al. // Nature. 1997. — V.389 — P.135−136.
  189. Lee, W-K. Cd -induced swelling contraction dynamics in isolated kidney cortex mitochondria: role of Ca uniporter, К cycling, and protonmotive force / W-K Lee, M. Spielmann, U. Bork et al. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. -2005. — V.289. — P.656−664.
  190. Lin, C. DNA sequence analysis of a complementary DNA for cold-regulated Arabidopsis gene Cor 15 and characterization of the COR15 polypeptide / C. Lin, M.F. Thomashow // Plant Physiol. 1992. — V.99. — P.519−525.
  191. Lisa, F. Mitochondria and reperfusion injury / F. Lisa, M. Canton, R. Menabo // Basic Res. Cardiol. 2003. — V.98. — P.23 5−241.
  192. Liu, X.Q. An amino-terminal signal sequence abrogates the intrinsic membrane-targeting information of mitochondrial uncoupling protein / X.Q. Liu, K.B. Freeman, G.C. Shore // J. Biol. Chem. 1990. — V.265, № 1. — P.9−12.
  193. Lowry, O.H. Protein measurement with the folin phenol reagent / O.H. Lowry, N.J. Rosebrough, A.L. Farr et al. // J. Biol. Chem. 1957. — V. 193. -P.265−275.
  194. Lyons, J.M. Chilling injury in plant / J.M. Lyons // Ann. Rev. Plant Physiol. 1973. — V.24. — P.445−460.
  195. Maciel, E.N. Oxidative stress in Ca -induced membrane permeability transition in brain mitochondria / E.N. Maciel, A.E. Vercesi, R.F. Castilho // J. Neurochem. 2001. — V.79. — P.1237−1245.
  196. Maia, I.G. AtPUMP: an Arabidopsis gene encoding a plant uncoupling mitochondrial protein / I.G. Maia, C.E. Benedetti, A. Leite et al. // FEBS Lett. 1998. — V.429. — P.403−406.
  197. Marienfeld, J.R. The nad 4 gene of maize mitochondria is highly conserved / J.R. Marienfeld, K.J. Newton // Plant Physiol. 1994. — V.104, № 1. -P.301−302.
  198. Maxwell, D.P. The alternative oxidase lowers mitochondrial reactive oxygen production in plant cells / D.P. Maxwell, Y. Wang, L. Mcintosh // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. — V.96. — P.8271−8276.
  199. Mayer, M.P. Hsp 70 chaperones: cellular functions and molecular mechanism / M.P. Mayer, B. Bukau // Cell. Mol. Life Sci. 2005. — V.62. — P.670−684.
  200. Mergemann, H. Ethylene induces epidermal cell death at the site of adventitious root emergence in rice / H. Mergemann, M. Sauter // Plant Physiol. -2000. V.124. — P.609−614.
  201. Mohapatra, S.S. Molecular cloning and relationship to freezing tolerance of cold-acclimation-specific genes of alfalfa / S.S. Mohapatra, L. Wofraim, R.J. Poole // Plant Physiol. 1989. — V.83. — P.375−380.
  202. Moller, I.M. The oxidation of cytosolic NAD (P)H by external NAD (P)H dehydrogenases in the respiratory chain of plant mitochondria / I.M. Moller//Physiol. Plant. 1997. — V.100. — P.85−90.
  203. Moller, I.M. Plant mitochondria and oxidative stress: electron transport, NADPH turnover, and metabolism of reactive oxygen species / I.M. Moller//Plant Physiol. 2001. — V.52. — P.561−591.
  204. Moller, I.M. A new dawn for plant mitochondrial NAD (P)H dehydrogenases / I.M. Moller // Trends Plant Sci. 2002. — V.7, № 6. — P.235−237.
  205. Moore, A.L. Mitochondria and sub-mitochondrial particles / A.L. Moore, M.O. Proudlove // Isolation of membranes and organelles from plant cells / Eds. Hall T.L., Moore A. L. London: Acad. Press. 1983. — P.153−184.
  206. Moore, A. The regulation and nature of the cyanide-resistant alternative oxydase of plannt mitochondria / A. Moore, J. Siedow // Biochim. Biophys. Acta. -1991. V. l059. — P. 121−140.
  207. Papa, S. Reactive oxygen species, mitochondria, apoptosis and aging / S. Papa, V.P. Skulachev // Mol. Cell. Biochem. 1997. — V.174. P.305−319.
  208. Perras, M. Synthesis of freezing tolerance proteins in leaves, grown, and roots during cold acclimation of wheat / M. Perras, F. Sarhan // Plant Physiol. 1989. — V.89. — P.577−585.fji
  209. Petrussa, E. A induces the opening of a potassium-selective channel in higher plant mitochondria / E. Petrussa, V. Casolo, E. Braidotet et al. // J. Bioenerg. Biomembr. -2001. V.33, № 2. -P.107−117.
  210. Pfeiffer, D.R. The peptide mastoparan is a potent facilitator of the mitochondrial permeability transition / D.R. Pfeiffer, T.I. Gudz, S.A. Novgorodov et al. // J. Biol. Chem. 1995. — V.270. — P.4923−4932.
  211. Pobezhimova, T.P. Protein import to mitochondria / T.P. Pobezhimova, V.K. Voinikov // Plant Physiol. 2000. — V.47, № 1. — P.129−136.
  212. Prasad, Т.К. Evidence for chilling-induced oxidative stress in maize seedlings and a regulatory role for hydrogen peroxide / Т.К. Prasad, M.D. Anderson, B.A. Martin et al. // Plant Cell. 1994a. — V.6. — P.65−74.
  213. Prasad, Т.К. Acclimation, hydrogen peroxide, and abscisic acid protect mitochondria against irreversible chilling injury in maize seedlings / Т.К. Prasad, M.D. Anderson, C.R. Stewart // Plant Physiol. 1994b. — V.105, № 2. -P.619−627.
  214. Prasad, Т.К. Localization and characterization of peroxidases in the mitochondria of chilling-acclimated maize seedlings / Т.К. Prasad, M.D. Anderson, C.R. Stewart//Plant Physiol. 1995. -V. 108, № 4. — P. 1597−1605.
  215. Purvis, A.C. Does the alternative pathway ameliorates chilling injury in sensitive plant tissue? / A.C. Purvis, R.L. Shewfelt // Physiol. Plant. 1993. -V.88. — P.712−718.
  216. Rasmusson, A. Isolation of the rotenon-sensitive NADH: ubiquinone reductase (complex I) from red mitochondria / A. Rasmusson, J. Mendel-Hartving, L.M. Moller et al. // Physiol. Plant. 1994. — V.90. — P.607−615.
  217. Reed, D.J. Influence of metabolic inhibitors on mitochondrial permeability transition and glutathione status / D.J. Reed, M.K. Savage // Biochim. Biophys. Acta. 1995. — V.1271. -P.43−50.
  218. Reed, J.C. Cytochrome c: Cant Live with It Can’t Live without It / J.C. Reed // Cell. — 1997. — V.91. — P.559−562.
  219. Richter, C. Oxidants in mitochondria: from physiology to diseases / C. Richter, V. Godvadze, R. Laffranchi et al. // Biochim. Biophys. Acta. 1995. -V.1271.-P.67−74.
  220. Rigobello, M.P. Mitochondrial permeability transition and release of cytochrome с induced by retinoic acids / M.P. Rigobello, G. Scutari, A. Friso et al. // Biochem. Pharmacol. 1999. — V.58. — P.665−670.
  221. Rosenstock, T.R. Mitochondrial calcium, oxidative stress and apoptosis in a neurodegenerative disease model induced by 3-nitropropionic acid /
  222. T.R. Rosenstock, A.C.P. Carvalho, A. Jurkiewicz et al. // J. Neurochem. 2004. -V.88. -P.1220−1228.
  223. Sabehat, A. The correlation between heat-shock protein accumulation and persistence and chilling tolerance in tomato fruit / A. Sabehat, D. Weiss, S. Lurie//Plant Physiol. 1996. -V. 110, № 2. -P.531−537.
  224. Saotome, M. Mitochondrial membrane potential modulates regulationп Iof mitochondrial Ca in rat ventricular myocytes / M. Saotome, H. Katoh, H. Satoh et al. // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2005. — V.288. — P. 1820−1828.
  225. Sarhan, F. Accumulation of a high molecular weight protein during cold hardening of wheat (Triticum aestivum L.) / F. Sahran, M. Perras // Plant Cell Physiol. 1987. — V.28, № 7. — P. 1173−1179.
  226. Scarpa, A. Maintenance of energy linked functions in rat liver mitochondria aged an the presence of nupercaine / A. Scarpa, J. Lindsay // Biochem. 1972. — V.27, № 3. -P.401−407.
  227. Schaffer, M.A. Transcriptional activation by heat and cold of a tiol protease gene in tomato / M.A. Schaffer, R.L. Fischer // Plant Physiol. 1990. -V.93, № 4.-P.l 486−1491.
  228. Schatz, G. The protein import machinery of mitochondria / G. Schatz //Protein Sci. 1993. — V.2. -P.141−146.
  229. Schatz, G. The protein import system of mitochondria / G. Schatz // J. Biol. Chem. 1996. — V.271, № 5. — P.31 763−31 766.
  230. Schefler, I.E. A Century of Mitochondrial Research: Achievements and Perspectives / I.E. Schefler // Mitochondrion. 2000. — V.l. — P.3−31.
  231. Scherphot, G.L. The effect of local anesthetics on the hydrolysis of free and membrane-bound phospholipids catalyzed by various phospholipases / G.L. Scherphot, A. Scapra, A. Toorenenbergen // Biochim. Biophys. Acta. 1972. — V.270, № 2. — P.266−270.
  232. Schild, L. Oxidative stress is involved in the permeabilization of the inner membrane of brain mitochondria exposed to hypoxia/reoxygenation and low
  233. Schroers, A. The reversible antiport-uniport conversion of the phosphate carrier from yeast mitochondria depends on the presence of a single cysteine / A. Schroers, R Kramer, H. Wohlrab // J. Biol. Chem. 1997. — V.272. -P.10 558−10 564.
  234. Scorrano, L. Arachidonic acid causes cell death through the mitochondrial permeability transition / L. Scorrano, D. Penzo, V. Petronilli et al. // J. Biol. Chem. 2001. — V.276, № 15. — P.12 035−12 040.
  235. Sentex, E. Calcium- and ADP-magnesium-induced respiratory uncoupling in isolated cardiac mitochondria: influence of cyclosporine A / E. Sentex, A. Laurent, L. Martine et al. // Mol. Cell. Biochem. 1999. — V.202. -P.73−84.
  236. Siedow, J.N. The mitochondrial cyanide-resistant oxidase: structural conservation and regulatory diversity / J.N. Siedow, A.L. Umbach // Biochim. Biophys. Acta. 2000. — P.432−439.
  237. Sieg, F. Purification and characterization of a cryoprotective protein (cryoprotectin) from leaves of cold acclimated cabbage / F. Sieg, W. Schroder, J.M. Schmitt et al. // Plant Physiol. 1996. — V. l 11. — P.215−217.
  238. Skulachev, V.P. Lowering of the intracellular concentration as a special function of respiratory systems of the cells / V.P. Skulachev // Biochem. -1994. V.59. — P.1910−1912.
  239. Skulachev, V.P. Role of uncoupled and non-coupled oxidations in maintenance of safely low levels of oxygen and its one-electron reductants /V.P. Skulachev // Quart Rev. Biophys. 1996. — V.29. — P. l69−202.
  240. Smolenska, G. Effect of low temperature upon lipid and fatty acid composition of roots and leaves of winterrape plants / G. Smolenska, P.J. Kuiper // Physiol. Plant. 1977. — V.41, № 1. — P29−35.
  241. Soole, K.L. Functional molecular aspects of the NADH-dehydrogenases of plant mitochondria / K.L. Soole, R.I. Menz // J. Bioenerg. Biomembr. 1995. — V.27, № 4. — P.397−406.
  242. Sreedhar, A.S. Heat shock proteins in the regulation of apoptosis: new strategies in tumor therapy A comprehensive review / A.S. Sreedhar, P. Csermely // Pharmacology & Therapeutics. 2004. — V. 101. — P.227−257.
  243. Sultan, A. Palmitic acid opens a novel cyclosporine A-insensetive pore in the inner mitochondrial membrane / A. Sultan, P.M. Sokolove // Arch. Biochem. Biophys. 2001. — V.386. — P.37−51.
  244. Szal, B. Oxygen concentration regulates alternative oxidase expression in barley roots during hypoxia and post-hypoxia / B. Szal, Y. Jolivet, M.P. Hazenfratz-Sauder et al. // Physiol. Plant. 2003. — V. l 19. — P.494−502.
  245. Taylor, N.L. Targets of stress-induced oxidative damage in plant mitochondria and their impact on cell carbon/nitrogen metabolism / N.L. Taylor, D.A. Day, A.H. Miller // J. Exper. Bot. -2004. V.55, №.394. -P.l-10.
  246. Tolbert, N.E. Isolation of sub-cellular organelles of metabolism on isopicnic sucrose gradients / N.E. Tolbert // Methods Enzymol. 1974. — V.31. -P.734−746.
  247. Tsujimoto, Y. Role of the mitochondrial membrane permeability transition in cell death / Y. Tsujimoto, S. Shimizu // Apoptosis. 2007. — V.12, № 5.-P.835−840.
  248. Umbach, A.L. Covalent and noncovalent dimers of the cyanide-resistant alternative oxidase protein in higher plant mitochondria and their relationship to enzime activity / A.L. Umbach, J.N. Siedow // Plant Physiol. -1993. V. 103. — P.845−854.
  249. Umbach, A.L. Characterization of transformed Arabidopsis with altered Alternative Oxidase level and analysis of effect on Reactive Oxygen Species in Tissue / A.L. Umbach, F. Fiorani, J.N. Siedow // Plant Physiol. 2005. — V.139. -P.1806−1820.
  250. Vanlerberghe, G.C. Lower grows temperature increases alternative pathway capacity and alternative oxidase protein in tobacco / G.C. Vanlerberghe, L. Mcintosh // Plant Physiol. 1992. — V.100. — P. l 15−119.
  251. Vercesi, A.E. PUMPing plants / A.E. Vercesi, I.S. Martins, M.A.P. Silva et al. // Nature. 1995. — V.375. — P.24.
  252. Vianello, A. Effect of cyclosporin A on energy coupling in pea stem mitochondria / A. Vianello, F. Macri, E. Braidot et al. // FEBS Lett. 1995. -V.371. -P.258−260.
  253. Vierling, E. The role of heat shock proteins in plants / E. Vierling // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. — V.42. — P.579−620.
  254. Virolainen, E. Ca -induced high amplitude swelling and cytochrome с release from Wheat (Triticum aestivum L.) mitochondria under anoxic stress / E. Virolainen, O. Blokhina, K. Fagerstedt // Ann. Bot. 2002. — V.90. — P.509−516.
  255. Voinikov, V.K. The composition of free fatty acids and mitochondrial activity in seedlings of winter cereals under cold shock / V.K. Voinikov, G.B. Luzova, A.M. Korzun // Planta. 1983. — V.158. -P.194−198.
  256. Voinikov, V.K. Effect cold shock on the mitochondrial activity and on the temperature of winter wheat seedlings / V.K. Voinikov, A.M. Korzun, T.P. Pobezhimova et al. // Biochim. Physiol. Pflanz. 1984. — V.179. — P.327−330.
  257. Voinikov, V. Stress protein 310 kD affects the energetic activity of plant mitochondria under hypotermia / V. Voinikov, T. Pobezhimova, A. Kolesnichenko et al. // J. Therm. Biol. 1998. — V.23, № 1. — P. 1−4.
  258. Voinikov, V. Plant stress uncoupling protein CSP 310 caused thermogenesis in winter wheat mitochondria in vitro / V. Voinikov, 0. Grabelnych, T. Pobezhimova et al. // J. Plant Physiol. 2001. — V.158, № 6. — P.807−810.
  259. Wang, W. Plant responses to drought, solinity and extreme temperatires: towards genetic engineering for stress tolerance / W. Wang, B. Vinocur, A. Altman // Planta. 2003. — V.218. — P. 1−14.
  260. Wang, W. Role of plant heat-shock proteins and molecular chaperones in the abiotic stress response / W. Wang, B. Vinocur, O. Shoseyov et al. // Trends Plant Sci. 2004. — V.9, № 5. — P.244−252.
  261. Weis H. The respiratory-chain NADH-dehydrogenese (complex I) of mitochondria / H. Weis, T. Friedrich, G. Hofhause et al. // Eur. J. Biochem. 1991. — V.197. -P.563−576.
  262. Wharton, D.C. Cytochrome oxidase from beef heart mitochondria / D.C. Wharton, A. Tzagoloff// Methods Enzymol. 1967. — V.10. — P.245−250.
  263. Whelan, J. The alternative oxidase is encoded in a multigene family in soybean / J. Whelan, H. Millar, D. Day // Planta. 1996. — V.198. — P. l97−201.
  264. White, T.C. Regulation of BN115, low-temperature-responsive gene from winter Brassica napus / T.C. White, D. Simmond, P. Donaldson et al. // Plant Physiol. 1994. — V.106. — P.917−928.
  265. Wieckowski, M.R. Fatty acid-induced uncoupling of oxidative phosphorylation is partly due to opening of the mitochondrial permeability transition pore / M.R. Wieckowski, L. Wojtczak // FEBS Lett. 1998. — V.423. -P.339−342.
  266. Wieckowski, M.R. Long-chain Fatty Acid Promote Opening of the Reconstituted Mitochondrial Permeability Transition Pore / M.R. Wieckowski, D. Brdiczka, L. Wojtczak // FEBS Lett. 2000. — V.484. — P. 61−64.
  267. Willemot, C. Stimulation of phospholipid biosynthesis during frost hardening of winter wheat / C. Willemot // Plant Physiol. 1975. — V.55, № 2. -P.356−359.
  268. Xia, T. A study on permeability transition pore opening and cytochrome с release from mitochondria, induced by caspase-3 in vitro / T. Xia, C. Jiang, L. Li et al. // FEBS Lett. 2002. — V. 510. — P.62−66.
  269. Xu, Y. PCD during pollination-induced petal senescence in petunia / Y. Xu, M.R. Hanson // Plant Physiol. 2000. — V.122. — P.1323−1333.
  270. Yao, N. Mitochondrial oxidative burst involved in apoptotic response in oats / N. Yao, Y. Tada, M. Sakamoto et al. // Plant J. 2002. — V.30, № 5. -P.567−579.
  271. Young, Т.Е. PCD during endosperm development / Т.Е. Young, D.R. Gallie // Plant Mol. Biol. 2000. — V.44. — P.283−301.
  272. Yu, X-H. Mitochondrial involvement in tracheary element programmed cell death / X-H Yu, T.D. Perdue, Y.M. Heimer et al. // Cell Death Diff. 2002. — V.9. — P. 189−198.
  273. Zamzami, N. Inhibitors of permeability transition interfere with the disruption of the mitochondrial transmembrane potential during apoptosis / N. Zamzami, P. Marchetti, M Castedo et al. // FEBS Lett. 1996. — V.384. — P.53−57.
  274. Zoratti, M. The mitochondrial permeability transition / M. Zoratti, I. Szabo //Biochim. Biophys. Acta. 1995. — V.1241. -P.139−176.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!