Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Интродукция и размножение тюльпанов in vivo и in vitro в лесостепной зоне Башкирского Предуралья

Диссертация: Интродукция и размножение тюльпанов in vivo и in vitro в лесостепной зоне Башкирского Предуралья
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Выявлено, что при оптимальном температурном режиме (0−10°С) семена у Т. kuschkensis начинают прорастать через 30−32 дня, у Т. micheliana — 41−43 дня, у остальных видов {Т. praestans, Т. biebersteiniana, Т. turkestanica) — 61−92 дня. При переменном температурном режиме (0−10°С и 25°С) начало прорастания семян у всех исследованных видов затягивается и заканчивается через 90−132 дня. Период… Читать ещё >

Интродукция и размножение тюльпанов in vivo и in vitro в лесостепной зоне Башкирского Предуралья (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава I. Интродукция и размножение тюльпанов
    • 1. 1. Классификация, географическое распространение и биологические особенности растений рода Tulipa
    • 1. 2. Основные теории и методы интродукции
      • 1. 2. 1. История введения тюльпанов в культуру
    • 1. 3. Вегетативное и семенное размножение тюльпанов
    • 1. 4. Культура изолированных органов и тканей in vitro
      • 1. 4. 1. Индукция развития пазушных меристем
      • 1. 4. 2. Каллусогенез и последующая регенерация растений
      • 1. 4. 3. Культура изолированных зародышей
  • Глава II. Условия и методы проведения исследований
    • 2. 1. Место и условия проведения опытов
    • 2. 2. Объекты и методы исследований
  • Глава III. Результаты интродукционного изучения сортовых и видовых тюльпанов
    • 3. 1. Интродукционное изучение сортовых тюльпанов
      • 3. 1. 1. Фенологические наблюдения
      • 3. 1. 2. Результаты изучения динамики роста
      • 3. 1. 3. Оценка декоративных признаков
      • 3. 1. 4. Оценка хозяйственно-ценных признаков
      • 3. 1. 5. Определение перспектив использования
    • 3. 2. Интродукционное изучение видовых тюльпанов
      • 3. 2. 1. Фенологические наблюдения
      • 3. 2. 2. Результаты изучения динамики роста
      • 3. 2. 3. Оценка декоративных признаков. Биология цветения
      • 3. 2. 4. Оценка хозяйственно-ценных признаков. Определение успешности интродукции и перспектив использования
  • Глава IV. Результаты размножения тюльпанов in vivo. Ill
    • 4. 1. Влияние глубины посадки луковиц тюльпанов на их рост, развитие и коэффициент вегетативного размножения
    • 4. 2. Семенное размножение видовых тюльпанов
    • 4. 3. Начальные этапы онтогенеза видовых тюльпанов
  • Глава V. Изучение и размножение тюльпанов в культуре in vitro
    • 5. 1. Культура изолированных зародышей
    • 5. 2. Морфогенез в культуре in vitro тканей вегетативных и генеративных органов тюльпана

Актуальность темы

Тюльпаны отличаются большим разнообразием окраски, размеров и форм цветка, продолжительным и разнообразным сроком цветения. Однако в лесостепной зоне Башкирского Предуралья интродукционная работа с тюльпанами не ведется, не разработан зональный ассортимент, поэтому тюльпаны практически не используются в озеленении. В этой связи актуально изучение биологических особенностей возможно большего количества видов и сортов в условиях региона с целью отбора наиболее перспективных для широкой культуры. Кроме того, остается необходимость ускоренного размножения тюльпанов для удовлетворения все возрастающего спроса на посадочный материал. Эта проблема для ряда цветочно-декоративных растений решается использованием микроклонирования в условиях in vitro.

Цель и задачи исследований. Целью работы является интродукционное изучение видов и сортов тюльпана в условиях культуры в лесостепной зоне Башкирского Предуралья, разработка зонального ассортимента, выявление эффективных методов ускоренного размножения перспективных форм. Для достижения этой цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Изучить биологические особенности интродуцированных в Ботанический сад-институт видов и сортов тюльпана. Оценить успешность интродукции и перспективность использования тюльпанов в лесостепной зоне Башкирского Предуралья;

2. Выявить особенности семенного размножения тюльпанов. Оценить экзогенное влияние регуляторов роста на развитие зародыша;

3. Апробировать современные методы размножения тюльпанов с использованием культуры органов и тканей in vitro.

выводы.

1. Изучены 131 сорт тюльпана гибридного, относящихся к 15 садовым классам. По комплексу признаков: по оригинальности и чистоте окраски, крупности и форме цветка, высоте растения, обилию и продолжительности цветения, холодостойкости и устойчивости к болезням и вредителям, высокому коэффициенту вегетативного размножения лучшими признаны 71 сорт. Они рекомендуются для пополнения зонального ассортимента.

2. Дана оценка успешности интродукции Tulipa riparia, Т. patens и Т. tarda. Выявлено, что они устойчивы в условиях культуры Башкирского Предуралья: проходят полный цикл развития побегов, характеризуются стабильностью ритмических процессов, приспособлены к местным климатическим условиям, не повреждаются болезнями и вредителями, имеют низкий коэффициент вегетативного размножения (менее 2.0). По продуктивности и размерам побегов они уступают растениям из природных местообитаний. Проведенная комплексная оценка видовых тюльпанов по декоративным и хозяйственно-ценным признакам, позволила рекомендовать Т. tarda для использования в озеленении. Кроме того, изученные виды можно использовать в селекционной практике в качестве источников ценных признаков и свойств: ранние сроки цветения, устойчивость к болезням и вредителям, карликовость, оригинальная окраска цветков и листьев, многоцветковость.

3. Подобраны оптимальные условия для проращивания семян видов Т. kuschkensis, Т. micheliana, Т. praestans, Т. biebersteiniana, Т. turkestanica. Подтверждено, что определяющим фактором прорастания семян является низкая положительная температура среды (0−10°С). Выявлено, что внутрисемейной рост зародыша является длительным процессом (30−92 дня) и может быть интенсифицирован с помощью регуляторов роста (гибберелловая кислота, рифтал, фэтил, крезацин, фитон, гетероауксин).

4. Получены гибридные семена от 5 комбинаций скрещивания с участием 9 сортов зарубежной селекции из 4 классов: Махровые поздние, Лилиецветные, Бахромчатые и Простые поздние.

С целью ускоренного размножения гибридов и выхода посадочного материала, разработан перспективный метод культуры изолированных зародышей. Выявлен оптимальный срок изоляции зародышей из семян — 53—56-й день после опыления, при этом размер зародыша должен достигать 1,5−3,0 мм. Подобрана оптимальная питательная среда (MS, дополненная БАП 3,0 мг/л + НУК 0,15 мг/л), позволяющая размножать тюльпаны с эффективностью более чем в 125 раз превышающей традиционный способ вегетативного размножения.

5. Доказана возможность эффективного применения метода культуры вегетативных и генеративных органов тюльпана in vitro, позволяющего решить проблему сокращения сроков получения посадочного материала. Выявлены оптимальные экспланты для микроразмножения путем мультипликации побегов: пазушные почки луковицы, образующие с одного экспланта до 175 микролуковиц за год, цветоложе и завязь неокрашенных бутонов, образующие с одного экспланта до 10−30 регенерантов за год.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Тюльпаны отличаются большим разнообразием окраски, размеров и форм цветка, продолжительным и разнообразным сроком цветения. Однако в лесостепной зоне Башкирского Предуралья интродукционная работа с тюльпанами не ведется, не разработан зональный ассортимент, поэтому тюльпаны практически не используются в озеленении. В этой связи актуально изучение биологических особенностей возможно большого количества видов и сортов в условиях региона с целью отбора наиболее перспективных для широкой культуры. Кроме того, остается необходимость ускоренного размножения тюльпанов, для удовлетворения все возрастающего спроса на посадочный материал. Эта проблема для ряда цветочно-декоративных растений решается использованием микроклонирования в условиях in vitro.

Проведено интродукционное изучение 131 сорта тюльпанов. Сорта оценивались по декоративным и хозяйственно-ценным признакам. Одновременно изучались фенология и динамика роста для установления сортовых особенностей роста и развития тюльпанов в условиях лесостепной зоны Башкирского Предуралья.

В результате фенологических наблюдений выявлено, что в лесостепной зоне Башкирского Предуралья отрастание тюльпанов начинается в конце III декады апреля. В зависимости от сорта количество дней от отрастания до начала цветения колебалось в пределах 17−37 дней. Все изучаемые сорта тюльпана по срокам цветения можно разделить на 3 группы: раноцветущие (в I декаде мая), среднецветущие (во II декаде мая) и поздноцветущие (в III декаде мая).

Выделены 20 сортов с наиболее продолжительным цветением популяций (до 20 дней) и 18 сортов с наиболее продолжительным цветением одного растения (до 14 дней). Отмечено, что по годам меняются лишь сроки и продолжительность цветения тюльпанов, а их последовательность остается неизменной.

Проведены исследования динамики роста генеративных побегов сортовых тюльпанов из 15 садовых классов.

От начала отрастания до фазы цветения суточный прирост растений из всех садовых классов не превышает 1,0 см. Наиболее интенсивный рост изученные сорта имеют в период цветения (II декада мая). В зависимости от сорта и класса максимальный прирост растений в сутки за данный период у среднерослых тюльпанов составляет до 3,4 см, у низкорослых — 1,5 см. У большинства сортов наблюдаются однопиковые графики суточного прироста генеративных побегов. Однако бывают и исключения (рис.1). Так, например сорт Beauty of Oxford из класса Дарвиновы гибриды имеет два пика прироста. Его пик, приходящийся на период бутонизации выше, чем в период цветения.

При оценке декоративных признаков выявлено, что сортовые тюльпаны обладают широким спектром окраски, формы, высоты цветков и высоты растения. По окраске цветка в коллекции присутствуют группа одноцветных — 7 сортов, битональных 36 сортовтрехтональных — 45 сортовчетырехтональных — 26 сортов и пятитональных — 13 сортовшеститональных — 4 сорта. Коллекционные тюльпаны имеют разную форму цветка: 37 сорта — чашевидную, 5 — овальную, 48 — бокаловидную, 18 — махровую, 13 — широкобокаловидную, 1 сорт — шаровидную и 9 сортов — лилейную формы цветка. По высоте цветка (9−11 см) выделяются сорта класса Дарвиновы гибриды и Попугайные. Самый большой диаметр цветка у сорта Beauty of Oxford — 12,0 см (класс Дарвиновы гибриды). По высоте растения сортовые тюльпаны разделены на 2 группы: среднерослые (выше 50 см) — 70 сортов и низкорослые (ниже 50 см) — 61 сорт. В коллекции присутствуют сорта с двумя цветоносами (класс Махровые ранние) и с шестью (Простые поздние).

В результате комплексной оценки декоративных признаков по 100-балльной шкале выделен 71 сорт, набравших максимальное количество баллов (более 90). Данные сорта обладали крупными цветками с красивой формой и чистой окраской лепестков, высокими, прочными цветоносами, длительным и обильным цветением. Они рекомендованы для пополнения зонального ассортимента культурных растений.

Хозяйственно-ценные признаки сортовых тюльпанов определялись коэффициентом вегетативного размножения, холодостойкостью и устойчивостью к болезням и вредителям.

Выявлено, что в условиях лесостепной зоны Башкирского Предуралья сортовые тюльпаны холодостойки и устойчивы к болезням (исключением являются 4 сорта, которые были поражены вирусом пестрения). Отмечено, что луковицы тюльпанов классов Лилиецветные, Махровые ранние, Зеленоцветковые и Махровые поздние наиболее подвержены повреждению грызунами. *.

В результате исследования особенностей вегетативного размножения тюльпанов подземными органами в условиях лесостепной зоны Башкирского Предуралья выведен средний коэффициент размножения. Выявлено, что более высокий коэффициент размножения (в среднем 3,0) имели среднеи позднецветущие сорта, характеризующиеся длительным периодом вегетации. У раноцветущих сортов коэффициент размножения не превышал 2,1−2,5.

Проведено интродукционное изучение видовых тюльпанов: Т. riparia, Т. patens и Т. tarda. По результатам фенологических наблюдений за сезонным ритмом развития выявлено, что они являются рановегетирующими растениями, их весеннее отрастание начинается в начале III декады апреля. Период от отрастания до начала цветения составляет 11−13 дней. Выявлено, что Т. tarda отличается наиболее продолжительным цветением популяции и одного растения в условиях лесостепной зоны Башкирского Предуралья (10 и 8 дней соответственно). Наименьшими сроками цветения характеризовался Т. patens (6 и 3 дня).

Анализ динамики роста генеративного побега изучаемых видовых тюльпанов позволил выделить виды с различной интенсивностью роста в различные периоды вегетации. Они имели интенсивный рост в период бутонизации и цветения (I декада мая). Максимальный прирост в сутки за данный период колебался от 0,8 см {Т. tarda) и 1,8 см (Т. patens) до 2,5 см (Т. riparia). Во II декаду мая (конец цветения) рост растений замедлялся, а в начале III декады полностью прекращался.

В результате проведенной оценки декоративных признаков по 100-балльной шкале из интродуцированных видов выделен Т. tarda. Он получил максимальную сумму баллов — 90. Декоративность Т. riparia оценена 70, Т. patens — 63 баллами.

Для оценки успешности интродукции тюльпанов использована комплексная 15-балльная шкала, основанная на определении их состояния по пяти показателям: плодоношение, количество вегетативных побегов, размеры побегов, холодостойкость, повреждаемость болезнями.

Показано, что все виды проходят полный цикл развитияпобегов, характеризуются стабильностью ритмических процессов, приспособлены к местным климатическим условиям, не повреждаются болезнями, однако семенами не возобновляются и имеют низкий коэффициент вегетативного размножения (менее 2.0). По продуктивности, размерам они уступают растениям из природных местообитаний. Т. riparia, Т. patens и Т. tarda оценены в 10 баллов, что позволяет их отнести к группе устойчивых растений.

Таким образом, выявлено, что видовые тюльпаны являются устойчивыми в условиях культуры в Башкирском Предуралье, могут сохраняться в течение длительного времени без выпадов.

Проведенная комплексная оценка видовых тюльпанов по декоративным и хозяйственно-ценным признакам, позволила рекомендовать Т. tarda для использования в озеленении. Кроме того, все три изученных вида можно применять в селекционной практике в качестве источников ценных признаков и свойств: ранние сроки цветения, устойчивость к болезням, карликовость, оригинальная окраска цветков и листьев, многоцветковость.

Особенности семенного размножения изучались на семенах пяти видов, полученных по Делектусу.

Выявлено, что при оптимальном температурном режиме (0−10°С) семена у Т. kuschkensis начинают прорастать через 30−32 дня, у Т. micheliana — 41−43 дня, у остальных видов {Т. praestans, Т. biebersteiniana, Т. turkestanica) — 61−92 дня. При переменном температурном режиме (0−10°С и 25°С) начало прорастания семян у всех исследованных видов затягивается и заканчивается через 90−132 дня. Период прорастания всех всхожих семян с момента их замачивания при оптимальном температурном режиме составил у Т. kuschkensis, Т. micheliana 75−105 дней, у Т. praestans, Т. biebersteiniana и Т. turkestanica — 136−162 дней. При переменной температуре период прорастания семян увеличился в 1,2−2,0 раза. В опытных вариантах у всех пяти видов лабораторная всхожесть семян была высокой и составляла 79−100%. В контрольном варианте (25°С) семена не прорастали или их всхожесть была незначительной (9−12%). К моменту прорастания семян во всех вариантах опыта зародыши увеличивались в длину в 1,5−2,5 раза по сравнению с контролем.

Разный период прорастания семян можно связать с приспособленностью растений к условиям, в котором они формировались в процессе эволюции.

Таким образом, показано, что семена тюльпанов характеризуются глубоким морфофизиологическим типом покоя. Причина такого покоя заключается в недоразвитии зародыша и сильном физиологическом механизме торможения прорастания. Низкая положительная температура (оптимум которой находится в диапозоне от 0 до 10°С) способствует снятию физиологического покоя зародыша, следствием чего является его сравнительно быстрый внутрисеменной рост.

С целью ускорения процессов доразвития зародыша и прорастания семян тюльпанов, на пяти видах (Т. kuschkensis, Т. micheliana, Т. praestans, Т. turkestanica, Т. biebersteiniana), изучалось действие физиологически активных веществ (ФАВ). Для этого семена проращивали при низкой положительной температуре в растворах гибберелловой кислоты (ГК), рифтала, фэтила, фитона, крезацина и гетероауксина в концентрациях, рекомендуемых производителем. В качестве контроля использовали воду. Проведенные исследования показали, что при длительном воздействии ФАВ снижаются показатели всхожести семян. Лишь семена у Т. biebersteiniana, обработанные ГК, рифталом и фэтилом имели более высокий процент всхожести, чем в контроле. Однако, ФАВ существенно увеличили длину зародыша к 30-у дню проращивания (в 1,6 раз) и сократили период прорастания семян трех видов тюльпана (на 1−35 дней).

Биотехнологические исследования показали, что для получения посадочного материла гибридных форм тюльпана эффективно применение метода культуры изолированных зародышей.

В качестве исходного материала использовали зародыши семян гибридных форм тюльпана, полученных от 5 комбинаций скрещивания с участием 9 сортов зарубежной селекции из 4 классов: Махровые поздние, Лилиецветные, Бахромчатые и Простые поздние.

Выявлено, что положительные результаты зависят от фазы развития зародышей, их размеров и сроков изоляции. Оптимальный срок изоляции зародышей семян тюльпана — 53−56-й дни после опыления. Зародыши размером 1,5−3,0 мм были более жизнеспособными — 45,6−91,0%. Установлено влияние генотипа исходных родительских пар на жизнеспособность и рост зародышей. Определены пути получения микропобегов тюльпана с использованием культуры изолированных зародышей через органогенез и стадию каллусогенеза.

Серия экспериментов с регуляторами роста цитокининовой и ауксиновой природы позволила выделить комбинацию БАП (6бензиламинопурин) 3,0 мг/л + НУК (а-нафтилуксусная кислота) 0,15 мг/л, которая обеспечивала высокую частоту органогенеза — 62,5% и каллусогенеза — 56,3%. В целом из 10−15 микропочек, образовавшихся на зародыше и каллусной ткани удалось получить от 2 до 8 микропобегов, способных к дальнейшему росту.

Для стимуляции процесса формирования микролуковиц из питательной среды исключали цитокинины, а НУК заменяли на ИМК (индолилмасляная кислота). Выявлено, что культивирование растений-регенерантов на питательной среде MS с 0,5 мг/л ИМК при температуре +4°С в течение 12 нед в темноте способствовало образованию зачатков микролуковиц. Перенос в условия освещения и выдерживание при температуре 26 °C способствовало полному формированию микролуковиц, которое длилось от 30 до 120 дней. Продолжительность периода от опыления до формирования микролуковиц составила 17−19 мес и зависила от сортовых особенностей родительских форм и условий культивирования in vitro.

Выявлено, что на одном зародыше в культуре in vitro образуется от 2 до 8 побегов и соответственно микролуковиц. В коробочке одного растения образуется от 20 до 160 выполненных семян. В результате проведенных экспериментов выход микролуковиц от минимального количества выполненных семян за 1,5 года в среднем составил 160, максимального до 1000. Показано, что использование метода культуры изолированных зародышей позволяет не только получать гибридные формы тюльпана, но и одновременно размножать их.

Исследования показали возможность эффективного применения метода культуры тканей для микроразмножения тюльпана с использованием генеративных и вегетативных органов.

Изучалась регенерация растений из чешуй микролуковиц гибридных сеянцев New Look х Marietta. На поверхности чешуй получена прямая индукция развития побегов в течение 2,5 мес культивирования. Частота побегообразования была выше в вариантах БАП 0,5 мг/л + НУК 1,0 мг/л и кинетин 0,5 мг/л + ИУК (индолилуксусная кислота) 2,0 мг/л. За каждый пассаж (25−30 дней) из одного сегмента чешуи развивалось от 3 до 8 побегов.

В результате проведенных экспериментов выход микролуковиц за один год от каждого экспланта составил 60−120 штук.

Для микроразмножения in vitro были использованы неокрашенные бутоны тюльпана 'Lucky Strike'. Из них фрагментировали цветоложе, завязь, рыльце и околоцветник. Исследования показали, что в культуре in vitro наибольшую способность к морфогенезу и каллусогенезу проявили экспланты неоплодотворенной завязи и цветоложа. Экспериментально показано, что как для каллусогенеза так и для пролиферации на эксплантах завязи эффективными оказались питательные среды, содержащие БАП 10,0 мг/л и НУК 1,0 мг/л (43,6%), БАП 5,0 мг/л и ИУК 1,0 мг/л (20,4%) — для фрагментов цветоложа — кинетин 0,5 мг/л и НУК 2,5 мг/л (31,5%), БАП 5,0 мг/л и ИУК 1,0 мг/л (26,8%). Число побегов на эксплант за 2,5−3,0 мёс' культивирования варьировало от 2 хорошо развитых до 6−8 более мелких.

Разработанный метод микроразмножения сортового тюльпана, позволяет получать за один год от каждого экспланта от 10 до 30 МИКрОЛуКОВИЦ. t-' ~.

Изучался морфогенетический потенциал in vitro пазушных почек луковицы тюльпана 'Dawnglow'. Выявлены комбинации регуляторов роста и их концентрации, способствующие оптимизации процессов, проходящих на отдельных этапах клонального микроразмножения. Показано, что на среде MS, дополненной НУК 1,0 мг/л и кинетин 0,5 мг/л, доля эксплантов с дифференцированной тканью составила 76,3% и наблюдался относительно низкий процент некрозов 23,7%. При последующем культивировании снижение содержания кинетина в питательной среде до 0,25 мг/л и НУК до 0,05 мг/л способствовало росту микропобегов. При этом коэффициент размножения побегов с одного экспланта через 8 недель культивирования составил 8—10.

Для формирования микролуковиц побеги переносили на питательную среду MS, дополненную ауксинами. Выявлено, что наибольшее количество микролуковиц формировалось на питательной среде MS с добавлением ИМК 0,5 мг/л и ИМК в сочетании с НУК по 0,2 мг/л. Выход микролуковиц из одного экспланта (пазушной почки) был достаточно высокий 37,4 и 58,3%. Вес микролуковиц, полученных на указанных средах был также высоким (1,32 и 2,03 г соответственно).

Проведенное исследование показало возможность использования пазушных почек луковиц тюльпана для микроразмножения in vitro.

Обычно материнская луковица образует 5 пазушных почек за год. Разработанный нами метод микроразмножения in vitro позволил получить из одного экспланта до 10 микропобегов, каждая из которых образует по одной микролуковице. Из одной луковицы тюльпана за год удалось получить до 175 микролуковиц. ?

Показать весь текст

Список литературы

  1. С. Н. Биология прорастания семян некоторых видов тюльпана в Туркмении //Бюлл. ГБС. 1968. Вып. 69. — С. 52—54.
  2. Н.А. Переселение растений на Полярный Север: Эколого-географический анализ. М.- -Л.: Изд-во АН СССР. 1956. — 19 с.
  3. Н.Н., Меньшов В. В. О репродуктивной способности вегетативного размножения тюльпанов // Садоводство, виноградарство и виноделие. 1977. № 8. С. 33−39.
  4. Г. Н., Кротова З. Е., Рубцова В. В. Параллельные испытания дикорастущих растений в трех географических зонах // Интродукционные исследования на Кольском п-ове. Апатиты: Кольский филиал АН СССР. 1976.-С. 32−47.
  5. З.Т. Луковичные и клубнелуковичные растения для открытого грунта. М.- -Л.: Изд-во АН СССР, 1963. — 60 с.
  6. А.Ш., Байбурина Р. К. Клональное микроразмножение Rhaponticum carthamoides (Willd.) Iljin // Раст. pec. 2002. Т. 38, вып. 4. — С. 82−96.
  7. А.Ш., Байбурина Р. К. Размножение Lespedeza bicolor Turcz. в культуре in vitro II Раст. pec. 2003. Т. 39, вып. 4. — С. 115−122.
  8. Р.К., Катаева Н. В., Старова Н. В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение гетерозисных гибридов осины и тополя // Бюлл. ГБС. 1992.-Вып. 163.-С. 2−10.
  9. Р.К. Микроклональное размножение взрослых гибридных деревьев Betula pendula Roth var Carelica Merckl. // Раст. pec. 1998. T. 34, вып. 2. — С. 9−22.
  10. A. M., Хартина Г. А., Епихов В. А. Получение длительнокультивируемых морфогенных каллусов и регенерантов овощныхи зерновых сортов гороха // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск. 1988. — Т. 2. — С. 272−273.
  11. Н.А. Теории и методы интродукции растений. — М.: Изд-во Московского университета. 1964. — 127 с.
  12. М.В. Лилии. Л.: Наука, 1990. — 384 с.
  13. М.В. Луковичные растения семейства лилейных. СПб.: Наука, 1999.-229 с.
  14. Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений. СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского университета, 2002. —232 с.
  15. З.П. К вопросу о прорастании семян тюльпанов // Тр. Ботан сада АН УзбССР. 1951. Вып. 2. — С. 86−98.
  16. З.П. К вопросу о прорастании семян тюльпанов // Тр. Ботан. сада АН УзССР, 1956.-Вып. 5.-С.72−118.
  17. З.П. Тюльпаны. Ташкент: Изд-во АН УзбССР, 1962. — 407- •с.
  18. А.Б. Микроклональное размножение винограда // Биология, культивируемых клеток и биотехнология растений. — М.: Наука, 1991. — С. 216−219.
  19. В. М., Свириденко Э. И. Получение регенерантов облепихи из меристематических верхушек в культуре in vitro // Сиб. вестн. с.-х. науки. 1988.-Вып. З.-С. 106−110.
  20. Р. Г. Гормональная регуляция дифференцировки растительной клетки в культуре in vitro II Рост и гормональная регуляция жизнедеятельности растений. — Иркутск. 1974. — С. 67−85.
  21. Р. Г. Рост и дифференциация в культуре клеток и тканей // Рост растений и природные регуляторы. М.: Наука, 1977. — С. 6−21.
  22. Р. Г. Физиология клеточных культур, состояние и перспективы // Физиол. раст. 1978. Т. 25, вып. 5. — С. 1009−1024.
  23. Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе. -М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 160 с.
  24. Г. П., Скробова JI. JL Экспериментальные предпосылки клонального микроразмножения дуба черешчатого // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. — Т. 2. — С. 366.
  25. Г. П., Скробова JI. JL, Табацкая Т. М. Клональное микроразмножение карельской березы // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. — Т. 2. — С. 367.
  26. В.Н., Иванова И. А. Морфология и прорастание семян тюльпанов // Интродукция и селекция цветочно-декоративных растений. — М.: Наука, 1978.-С. 113−130.
  27. В.Н., Карписонова Р. А. Принципы создания и изучения коллекции малораспространенных многолетников // Бюлл. ГБС. 1978. Вып. 107.-С. 77−82.
  28. Н.И. Интродукция растений в советское время и ее результаты: (Итоги интродукционной работы ВИРа за период 1921—1940 гг.) //Избр. тр. Т. 1.-М.: Наука, 1965.-С. 574−689.
  29. И.А. Род 272. Тюльпан Tulipa L. // Флора СССР. Т. 4. — Л.: Изд-во АН СССР, 1935. — С. 320−364.
  30. P.P. Интродукция и селекция растений. — Рига, 1972. С. 105−121.
  31. Н.А., Таварткиладзе O.K., Клементьева Л. А., Долганова З. В. Особенности регенерации и размножения растений рода Iris (Iridaceae) in vitro II Раст. pec. 2004. Т. 40, вып. 4. — С. 56−64.
  32. В. А. Регенерационная способность изолированных меристемных верхушек черной смородины и вишни и методы получения из них целых растений // Плодоводство и ягодоводство Нечерноземной полосы. М., 1976. — Вып. 9. — С. 101−107.
  33. В. А. Клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. — С. 91−102.
  34. В. А. Возможности создания коллекций ценных форм плодовых и ягодных растений in vitro II Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. работ / ВСТИСП. М., 2000. — Т. 7. — 56 с.
  35. Г. И., Копылов В. В. Культура меристем у тюльпанов и нарциссов // Научное производство — НИИ горного садоводства и цветоводства. 1988. Т. 43. — С. 107−115.
  36. Глоба-Михайленко И. Д., Дамер И. Ф., Смирнова И. С. Размножение лилий в культуре ткани // Научное производство — НИИ горного садоводства и цветоводства. 1986. Т. 33. — С. 115−122.
  37. П. Я., Зленко В. А., Чекмарев JI. А.и др., Методические рекомендации по клональному микроразмножению винограда. Ялта. 1986. -56 с.
  38. Л. В., Перчуляк Л. П., Чалык Л. В. Морфогенез в культуре тканей кукурузы // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск. 1988. Т. 2. — С. 333−334.
  39. О.Н. Культура тюльпанов. Л.: Лениздат, 1956.- 72 с.
  40. О.Н. Размножение тюльпанов на Севере. Автореф. дис.. .канд. биол. наук. Л., 1955. — 28 с.
  41. Д.К., Рахимбаев И. Г. Влияние гормонального статуса интактных тканей на морфогенез in vitro амараилисовых // Изв. АН КазССР. 1986.-Вып. 4.- 18 с.
  42. Л.А., Расторгуев С. Л. Культура изолированных зародышей в связи с отдаленной гибридизацией косточковых плодовых растений // Тр. ЦГЛ. 1984.-Т. 46, вып. 1.-С. 74−81.
  43. Н. А., Бугара А. М. Регенерация растений в культуре ткани кориандра и герани // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988. Т. 2. — С. 276−277.
  44. П.Ю., Карпухина Е. А. О вегетативных малолетниках // Успехи экологической морфологии растений и ее влияние на смежные науки. — М.: Наука, 1994.-С. 12−13.
  45. И. Я. Размножение крупноцветковых садовых ирисов методом культуры ткани // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988. Т. 2. — С. 333−334.
  46. Э. И., Шелепова В. М., Ибрагимов И. Р. Оптимизация питательных сред для клонального микроразмножения цветной капусты // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988. -Т. 2. С. 324−325.
  47. .Н. Оптимум и норма в интродукции растений М.: Наука, 1983.-268 с.
  48. Г. Н. Математическая статистика в экспериментальной ботанике. М.: Наука, 1984. — 424 с.
  49. Е. С., Мурин А. В. Использование метода культуры тканей при размножении гладиолуса // Изв. АН ССР Молдова. Биол. и хим. науки. 1990.-Вып. 6.-С. 63.
  50. А.А., Ишмуратова М. М. Введение Paeonia anomala L. in vitro II Актуальные проблемы биологии. Сыктывкар, 1998. — С. 69.
  51. А.А. Оптимизация условий введения в культуру in vitro Valeriana officinalis L. // Сохранение и воспроизводство растительного компонента биоразнообразия. Ростов-на-Дону, 2002. — С. 194−196.
  52. И. А., Сучкова Н. К. Массовое размножение in vitro сортов садовой земляники. Создание банка in vitro сортов земляники мировой коллекции // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988.- Т. 2. С. 315−316.
  53. Здруйковская-Рихтер А. И. Культура изолированныъх зародышей in vitro и получение новых форм растений. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. — М., 1981.-33 с.
  54. Здруйковская-Рихтер А. И. Изолированные зародыши Ficus afganistanica W. в культуре in vitro II Бюлл. ГБС. 1997. Вып. 175. — С. 132— 137.
  55. Здруйковская-Рихтер А. И. Получение сортов плодовых растений in vitro методом культуры изолированных зародышей // Докл. АН СССР. 1985. Т. 283, вып. 1. — С. 246−249.
  56. Здруйковская-Рихтер А.И., Орехова В. П., Тарасюк Т. М. Итоги селекции черешни с использованием эмбриокультуры in vitro II Бюлл. ГБС. 1997.-Вып. 175.-С. 137−141.
  57. Л.П. Эколого-географический метод как показатель интродукционной способности цветочно-декоративных растений // Интродукция растений Сибири и Дальнего Востока. — Новосибирск, 1983. -С. 113−118. .V
  58. Илиев Иван Влияние различных факторов на размножение березы бородавчатой (Betula pendula Roth.) методом in vitro II Наука гората: 1993. — Т. 30, вып. № 4. С. 73−84.
  59. М.М. Биологические и химические особенности, культура тканей Rodiola rosea L. и R. iremelica Borriss. и возможность их интродукции в Башкортостан (на примере г. Уфы). Автореф. дисс.. канд. биол. наук. — Уфа, 1996.-20 с.
  60. М.М., Зарипова А. А. Особенности морфогенеза Polemonium coeruleum L. in vitro и in vivo II Раст. pec. 2000. T. 36, вып. 3. — С. 106−114.
  61. В. Ф., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова. думка. 1980. -488 с.
  62. И.И. Регенерация растений из изолированных почек луков // Изв. АН КазССР. 1982. Вып. 4. — С. 12−16.
  63. Т. М., Валуева С. В. Обработка методики микроклонального размножения капусты белокочанной, лука репчатого и огурца // Генетическая инженерия и биотехнология. — Минск, 1994. — С. 26.
  64. Р.А. Итоги интродукции травянистых растений флоры США в Москве // Опыт интродукции и охраны растений в СССР и США. — М.: Наука, 1982. С. 76−87.
  65. Р.А. Травянистые растения широколиственных лесов СССР. М.: Наука. 1985. — 264 с.
  66. Р.А. Цветоводство. М.: Кладезь-Букс, 2007. — С. 206 207.
  67. JI.M. Биологические особенности Tulipa orphanidea Boiss. ex Heldz. в культуре в Центрально-Черноземной зоне России // Бюлл. ГБС. 1998. Вып. 176. — С. 21−25.
  68. Н. В. Культура тканей и органов фрезии // Физиол. раст. 1981. Т. 28, вып. 5. — С. 1062−1084.
  69. Н.В., Аветисов В. А. Клональное размножение растений в культуре клеток растений. — М.: Наука, 1981. С. 137−149.
  70. Н. В., Бутенко Р. Г. Принципы микроклонального размножения растений на примере герберы // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1982. Вып. 1.-С. 126−130.
  71. Н. В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение растений. -М.: Наука, 1983.-96 с.
  72. Н. В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони // С.-х. биология. 1986. Вып. № 4. — С. 18−23.
  73. Н. В., Крамаренко J1. А. Клональное микроразмножение абрикоса//Бюлл. ГБС. 1989. Вып. 153. — С. 69−72.
  74. Каталог цветочно-декоративных травянистых растений ботанических садов СНГ и стран Балтии. — Минск: Минский гос. университет, 1997. — С. 339−365.
  75. А. В., Францу зенок В. В. Размножение лилий в культуре in vitro II Изв. Академии аграрных наук Респ. Беларусь. 1997. — Вып*. 2. — С. 73−76.
  76. М.С., Куликов П. В., Филиппов Е. Г. Тюльпаны родства Tulipa biebersteiniana (Liliaceae) на Южном Урале // Бот. журн., 2001. Т. 86, № 3. — С.109−119.
  77. Т.М. Использование культуры изолированных зародышей в селекции тюльпанов // Изв. ТСХА. 1997. Вып. 1. — С. 91−96.
  78. Комаров B. J1. Семейство Лилейные-ЫНасеае II Флора СССР. — Л.: Изд-во АН СССР, 1935. Т. 4. — С. 1−475.
  79. С. А. Дискуссионные вопросы клонального микроразмножения // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. научных работ / ВСТИСП. М., 2000. — Т. 7. — 56 с.
  80. С.Е., Кузьмин З. Е., Былов В. Н. и др. Интродукция растений в Главном ботаническом саду им. Н. В. Цицина. К 50-летию основания. М.: Наука, 1995.- 188 с.
  81. Красная книга Республики Башкортостан. Редкие исчезающие виды высших сосудистых растений. Т. 1. — Уфа: Китап, 2001. — С. 75−76.
  82. Красная книга СССР. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды животных и растений. Т. 2. — М.: Лесная промышленность, 1984. — С. 251−258.
  83. В.М. Отдаленная гибридизация у тюльпанов и перспективы повышения ее эффективности. — Минск: Наука и техника, 1972. -238 с.
  84. В.М. Влияние рентгеновских лучей на луковицы тюльпанов // Ботаника, Вып. 15. Минск: Наука и техника, 1973. — 329 с.
  85. В.М. Селекция тюльпанов. Минск: Наука и техника, 1978.- 144 с.
  86. В.М., Манкевич О. И., Ботяновский И. Е. и др. Цветоводство в БССР. Минск: Наука и техника, 1981. — С. 46−66.
  87. П. В. Экология и репродуктивные особенности редкихiорхидных Урала: Автореф. дис.. канд. биол. наук. Екатеринбург.-1995. — • 24 с.
  88. П.В. Конспект флоры Челябинской области (сосудистые- > растения). Екатеринбург-Миасс, 2005. — 385 с.
  89. М.В. Эколого-исторический метод в интродукции растений // Бюлл. ГБС. 1953. Вып. 15. — С. 24−39.
  90. М.В. Эколого-исторический метод и его значение в теории и практике интродукции растений // Изв. АН СССР. Сер. биол., 1958. Вып. З.-С. 257−270.
  91. Г. А., Дубовицкая Л. А. Культура in vitro незрелых зародышей косточковых плодовых растений // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. — Т. 2. — С. 333−334.
  92. Н.А., Беляев А. Ю. Генетическая и пространственная структура популяций Tulipa riparia в бассейне реки Сим // Особь и популяция — стратегии жизни — Уфа: Изд-ский дом ООО «Вилли Окслер», 2006.-Ч. 2.- С. 213−217.
  93. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. — 352 с.
  94. П.И. Место и значение коллективных исследований и международного сотрудничества в интродукции растений // Интродукция древесных растений. — М.: Наука, 1980. С. 5−14.
  95. В.П. Теоретические основы интродукции. — Л.: Сельхозгиз, 1933.- 168 с.
  96. Методика государственного сортоиспытания декоративных культур. — М.: Изд-во Мин-ва с. х-ва РСФСР, 1960. С. 117−120.
  97. Мешечкина 3. Ф. Ускоренное размножение оздоровленного методом апикальной меристемы картофеля на Урале // Генетико-селекционные исследования на Урале. Свердловск. 1984. — С. 74−75.
  98. Э. Л., Азизбекова Н. III., Комарова Э. Н., Ахундова Д. Д. Формирование клубнелуковиц-регенерантов шафрана посевного (Crocus sativus L.) в культуре in vitro II Физиол. раст. 1995. Т. 42, вып. 1. — С. 127— 134.: '
  99. Е. В. Клональное размножение in vitro луковичных и клубнелуковичных геофитов семейств Liliaceae и Iridaceae II Актуальные вопросы ботаники и физиологии растений. Саранск. 2004. — С. 163−166.
  100. Е. В., Лукаткин А. С. Масс-клональное размножение гладиолуса in vitro II Биотехнология. 2005. № 1. — С. 19−26.
  101. О.И., Беляева Ю. Е., Стахеева Т. С., Васильева О. Г. Использование биотехнологических методов для воспроизводства фиторесурсов // The biology of Plant Cells in vitro and Biotechnology Saratov, 2003.-C. 209.
  102. О.И., Коновалова Л. Н. Клональное микроразмножение видов и сортов сирени // The biology of Plant Cells in vitro and Biotechnology. Saratov, 2003.-C. 207.
  103. Т. С. Индуцированный органогенез у дуба черешчатого и ореха грецкого в изолированной культуре // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск, 1988. — Т. 2. — С. 344.
  104. Е.В. Тюльпан Tulipa L. // Флора европейской части СССР. — Л.: Наука, 19 796. — Т. IV. — С. 232−236.
  105. В.И. Актуальные вопросы развития теории акклиматизации растений. М.: Наука, 1980. — 101 с.
  106. М.Г. Физиология глубокого покоя семян. — Д.: Наука, 1967. -С. 206.
  107. М.Г., Разумова М. В. О влиянии температуры и ростовых веществ на прорастание семян тюльпанов // Бюлл. ГБС. 1973. Вып. 89. — С. 73−75.
  108. М.Г. Дополнение к классификации типов семян // Биологические основы семеноведения и семеноводства интродуцентов. — Новосибирск: Наука, 1974. С. 8−9.
  109. М.Г. Покой семян // Физиология семян. М.: Наука, 1982. -С. 125−183.
  110. М.Г., Разумова М. В., Гладкова В. Н. Справочник полЛпроращиванию покоящихся семян. — Д.: Наука, 1985. С. 300−301. €
  111. Опытническая работа по интродукции в цветочно-декоративных отделах учебно-опытных участков. Методические рекомендации.-:-— Уфа, 2003.-35 с.
  112. Н.Г. Культура зародышей и стеблевых узлов некоторых сортов ячменя. // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов. 1983. -Вып. 5.-С. 142−151.
  113. Ю.А. Вопросы интродукции и акклиматизации растений. -Минск: Наука и техника, 1971. 292 с.
  114. Т.Ф. Цитоэмбриология лилейных. Подсемейство Lilioideae. — М.: Наука, 1977.-С. 213.
  115. В.П. Влияние температуры на морфогенез среднеазиатских тюльпанов. Ташкент: Фан, 1990. 81 с.
  116. Т.И. Конспект флоры Волго-Уральского региона. — Самара: Изд-во Самарский университет, 2001. — 388 с.
  117. Т. В. Размножение in vitro новых сортов вишни // The biology of Plant Cells in vitro and Biotechnology. Saratov, 2003. — C. 253.
  118. JI.C. Научные основы интродукции древесных растений флоры СССР. М.: Наука, 1988. — 264 с.
  119. Поддубная-Арнольди В. А. Цитоэмбриология покрытосеменных растений. М.: Наука, 1976. — 369 с.
  120. Т.А. Методы изучения семенного размножения травянистых растений в сообществах // Полевая геоботаника. M.-JL: Наука, 1960. — Т. 2. -С. 20−41.
  121. Растительные ресурсы России и сопредельных государств. СПб.: Наука, 1994.-Т. 8.-271 с.
  122. С. М., Юшкова Е. В., Величко Н. А. Влияние химических и физических факторов на рост и развитие каллусных тканей левзеи сафлоровидной // Биотехнология. 1996. № 8. С. 45−49.
  123. В. М. Получение каллусной культуры ячменя с высокой регенерационной способностью и изучение растений-регенерантов // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988. — Т. 2.-С. 268.
  124. Ф.Н. Новые методы интродукции растений // Бюлл. ГБС. 1950. -Вып. 7.-С. 27−36.
  125. Ф.Н. Метод родовых комплексов в интродукции растений и его дальнейшее развитие // Бюлл. ГБС. 1971. Вып. 81. — С. 15−20.
  126. И. Н., Музарок Т. И., Журавлев Ю. Н. Получение каллусных культур ткани Gynostemma pentaphyllum (Thunb.) Makino 11 Раст. pec. 1992. -T. 28, вып. 2. С. 73−77.
  127. C.B. Самарский флористический феномен. — М.: Наука, 2006. -263 с.
  128. Е. А., Сперанская А. С., Скрипников А. Ю. Регенерация Arabidopsis Thaliana (L.) Heynh. Из апикальных меристемных комплексов in vitro II Вестн. Моск. Ун-та. Сер. Биол. 2002. Вып. 1. — С. 30−36.
  129. Г. Т. Климатические аналоги Черноморского побережья Кавказа // Тр. по прикл. бот., ген. и селекции. 1938. Т. 21. — С. 53−64.
  130. И.Г. Морфология вегетативных органов высших растений. -М.: Наука, 1952.-389 с.
  131. З.М. Культура тюльпанов в Леннградской области // Тр. БИН АН СССР. Интродукция растений и зеленое строительство. Сер. 6. 1953. -Вып. З.-С. 5−146.
  132. З.М. Некоторые результаты работ по селекции тюльпанов в Ботаническом институте им. В. Л. Комарова АН СССР // Тр. БИН АН СССР. Сер. 7. 1962. — Вып. 8. — С. 39−86.
  133. З.М. Внутривидовая изменчивость тюльпана Кауфмана // Тр. БИН АН СССР. Сер. 6. 1969. — Вып. 9. — С. 127−158.
  134. З.М. Современный ассортимент тюльпанов и история его формирования // Тр. БИН АН СССР. Сер. 6. 1970. — Вып. — С. 99−130.
  135. З.М. Выращивание посадочного материала луковичных цветочных культур. Сочи. 1974. — С. 72−84.
  136. З.М. Род Tulipa L. // Декоративные травянистые растения для открытого грунта СССР. Л.: Наука, 1977. — Т. 2. — С. 221−317.
  137. В.В. Прорастание семян некоторых дикорастущих декоративных растений в естественных условиях // Бюлл. ГБС. 1963. — Вып. 50.-С. 78.
  138. В.В., Скрипчинский Вл. В. Проблемы экологической морфологии растений — М.: Наука, 1976. С. 167—185.
  139. В. А. Оптимизация питательной среды для побегообразования в культуре клеток томатов // Культура клеток растений и биотехнология. -М.: Наука, 1986. С.128−132.
  140. Н. С. Использование регуляторов роста в клональном размножении ремонтантной гвоздики методом культуры ткани // Регуляторы роста и развития растений. М.: Наука. 1981. — С. 175−176.
  141. К.А. Экспериментальное обоснование эколого-исторического метода интродукции растений природной флоры // Бюлл. ГБС. 1971.-Вып. 15.-С. 54−59.
  142. О. В. Использование метода культуры тканей для ускоренного размножения сортов малины // Биология культивируемых клеток и биотехнология. Новосибирск., 1988. — Т. 2. — С. 342—343.
  143. В. В., Кузнецова С. М. Микроразмножение некоторых сортов роз // Биология культивируемых клеток и биотехнология. — Новосибирск, 1988.-Т. 2.-С. 305.
  144. В.П., Папазян Н. Г. Условия получения каллуса и регенерантов в культуре зрелых зародышей пшеницы // Апомиксис и цитоэмбриология растений. Саратов. 1983. — Вып. 5. — С. 124−130.
  145. Г. А., Турдиева В. М., Сарсенбаев К. Н. Влияние фитогормонов на морфогенез в культуре in vitro луковичных и клубнелуковичных растений // Изв. АН КазССР. 1989. Вып. 6. — С. 12−13.
  146. М.М., Калинин А. В., Лапочкина И. Ф. Использование, эмбриокультуры in vitro при межвидовой гибридизации // Бюлл. ГБС. 1997. — Вып. 175.-С. 127−131.
  147. А.Л. Система Магнолиофитов. Л.: Наука, 1987. — 439 с.
  148. А.Л. Флористические области Земли. Л.: Наука, 1978.247 с.
  149. Тахтаджян А.Л.) Takhtajan A.L. Diversity and classification of flowering plants. New York. 1997. — 558 p.
  150. Л. H., Остапенко Д. П., Бойко В. В. и др. Оздоровление и ускоренное размножение семенного картофеля. Методические рекомендации. М.: ВАСХНИЛ, 1985. — 36 с.
  151. Н.В. Эколого-фитоценотические основы интродукции растений. — М.: Наука, 1991.-215 с.
  152. Н. И., Стрыгина О. В., Алыневцева Л. И. Микроклональное размножение: результаты опытов с яблоней, грушей, малиной, смородиной //
  153. Сортоизучение и селекция плодовых и ягодных культур. Мичуринск. 1992. — С. 68−82.
  154. М. Т., Высоцкий В. А. Размножение ежевики и малины черной методом культуры тканей // Садоводство и виноградарство. 1991. № 6. С. 24−27.
  155. М. Т., Высоцкий В. А. Регенерационная способность эксплантов рода Rubus в зависимости от длительности культивирования in vitro II С.-х. биол. 1995. № 1. С 85−89.
  156. А.А. Онтогенез и возрастной состав популяций М.: Наука, 1976.-С. 3−8.
  157. Холина, А Б., Журавлев Ю Н. и др. Микроразмножение Thalictrum minus L. в культуре in vitro II Раст. pec. 1991. Т. 25, вып. 4. — С. 86−90.
  158. А.П. Соматическая эволюция однодольных. М.: Наука, 1975.- 195 с.
  159. Н.В. О развитии поиска, испытания и введения в культуру хозяйственно ценных растений природной флоры // Бюлл. ГБС. 1972. — ВыпД-.- 83.-С. 3−9.
  160. Т. М., Ларентьева А. Н., Буюн Л. И., Ковальская Л. А. Семенное и клональное размножение видов рода Cattleya Lindl. (Orchidaceae Juss.) в культуре // The biology of Plant Cells in vitro and Biotechnology. -Saratov, 2003.-C. 65.
  161. О. А., Барыкина P. П. Регенерационная способность некоторых луковичных и клубнелуковичных однодольных in vitro. Морфогенетический аспект // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 16, Биология. 1995. № 2. — С. 58−65.
  162. Р.Л. Тюльпаны Киргизии и опыт их культуры // Изв. АН КиргССР 1962. Т. IV, вып. 3. — С. 105−127.
  163. Д.Е. Из жизни тюльпанов на нижней Волге // Сов. ботаника. 1934, № 3. С.72−103.
  164. Baker J.D. Revision of genera and species of Tulipae. Jourrn. Linn. Soc. Bot. London. 1874. — Vol. 14. — S 10−19.
  165. Bancihon L. Premiere essays demuetipication vegetative en culture in vitro chez Tulipa gesneriana L. variete Paul Richter. C. R. // Acad. Sci. Ser. — 1974. — Vol. 279. № 12. — P. 983−986.
  166. Batygina T.B. Problems of morphogenesisin situ, in vivo, in vitro II Proc. Intern, symp. «Plant tissue and cell culture application to crop improvement». Olomouc. 1984.-263 p.
  167. Boisser E. Flora Orientalis, V, Geneva, Basle and Lyons. 1884. — S 310—319.
  168. Chandler J. M., Beard B.H. Embryo culture of Heliathus hybrids. Crop Sc. — 1983,-Vol. 23.- № 5.-P. 1004−1007.
  169. J. В. M., Eikelboom W., Bergervoet J. H.W., Eijk J. P. van // Sci. Hort. 1992. — Vol. 51. — № 1−2.-P. 111−122.
  170. Dahlgren R., Clifford H., Yeo P. The families of the Monocotyledons structure, evolution and taxonomy. Berlin. 1985. — 520 p.
  171. Engler A., Prantl K. Liliaceae II Die Naturlichen Pflanzenfamilien. Leipzig. -1888.-Bd 2.-S 10−91.
  172. Fari M., Csillery G., Zatuke L. Embryo culture an efficient techniqe in interspecific hybridization and in breeding of pepper (Capsicum) Genetics and freeding of capsicum. — 1983. — P. 31−37.
  173. Hall A.D. The genus Tulipa. London. 1940. — 215 p. Hegi G. Illustrierte Flora von Mittel-Europa // Monocotyledones. -1939. -Bd 2. — T 12. — 532 p.
  174. Huang Bei Chu, Yeoman M. M. Callus proliferation and morphogenesis in tissue cultures of Arabidopsis thaliana L. Пролиферация каллуса и морфогенез в культуре ткани Arabidopsis thaliana L. «Plant. Sci. Lett.». 1984. — Vol. 33. — № 3.-P. 353−363.
  175. Hussey G. In vitro methods of plant propagation. Sci. Hort. — 1975. — Vol. 27.-№ l.-P. 16−20.
  176. Jager E.J. Zur Verbreitung und Lebensgeschichte der Wildtulpe (Tulipa sylvestris L.) und Bemerkungen zur Chorologie der Gattung Tulipa L. // Hercynia. N.F. Bd 10. Abt. 4. 1973. — S. 429−448.
  177. Jordan M.C., Larter E.N. Somaclonal varuation in triticale (X Triticosecale Wittmack) cv. Carman. Canad. J. Genet. Cytol. 1985. — Vol. 27. № 2. — P. 151 157.
  178. Kirchner O., Loew E., Schroter C. Liliaceae II Lebensgeschichte der Blutenpflan-zen Mitteleuropas. Stuttgart. 1934. Bd 1. Abt. 3, 5. — S. 1139−1168.
  179. Koshor P.B. Kavi, Reddy G.M. Oryza sativa L. Regeneration of plants from long-term cultures of Orysa sativa L. «Plant Cell Repts». 1986. — Vol. 5. — № 5. -P. 391−393.
  180. K., Sharada K., Fukui H., Нага Т., Sarma S. In vitro bulblet regeneration from bulbscale explants of Lilium japonicum Thunb // Sci. Hort. — 1997. Vol. 69 (2). — P. 289−297.
  181. Morel G. M. La culture in vitro du meristeme apical de certaines orchidees // C. r. Acad. Sci. 1963. — Vol. 256. — P. 4955−4959.
  182. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. — Vol. 15. — № 13.' - P. 473 497.
  183. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures. Annu. Rev. Plant Physiol. — 1974. — Vol. 49. — № 25. — P. 135−166.
  184. Murashige T. Clonal crops through tissue culture. In Plant Tissue Cult, and Its Biotechnol. Appl., B. etc.: Spring.-Verl. — 1977. — P. 392−403.
  185. Nishiushi Y. Studies on vegetative propagation of tulips IV. Regeneratin of bulblets in bulb scale segments cultured in vitro. Soc. Hort. Sci. 1980. — Vol. 49. — № 2. — P. 235−240.
  186. Nishiushi Y. Studies on vegetative propagation of tulips silvestris L. Regeneratin of bulblets in bulb scale segments cultured in vitro. Soc. Hort. Sci. — 1980. Vol. 49. — № 2. — P. 235−240.
  187. Regel E. Enumerato specierum hucusque cognitarum generis Tulipae. Act. Hort. Petr. 2. 1873. -P.217−219.
  188. Skoog F., Miller С. O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro II The biological action of growth substances: Symp. Soc. Exp. Biol. Cambridge: Univ. press. 1957. — Vol. 11. — P. 118−131.
  189. Takayama S., Misawa M. A scheme for mass propagation of Lilium in vitro II Sci. Hort. 1983. — Vol. 18. — P. 353−362.
  190. Takhtajan A.L. Diversity and classification of flowering plants. New York. 1997.-558 p.
  191. Vasil Vimia, Lu Chin-yi, Vasil Indra K. Proliferation and plant regeneration from the modal region of Zea mays L. embryos. Vasil Vimia, Lu Chin-yi, Vasil Indra K. «Amer. J. Bot.». 1983. — Vol. 70. — № 6. — P. 951−954.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!