Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Характеристика генетической изменчивости вируса мозаики цветной капусты (дальневосточные изоляты) и разработка методов его диагностики

Диссертация: Характеристика генетической изменчивости вируса мозаики цветной капусты (дальневосточные изоляты) и разработка методов его диагностики
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Знание особенностей генетической изменчивости ВМЦК важно не только при изучении штаммового состава вируса, но и позволяет разработать для него эффективные методы диагностики. По литературным данным до сих пор пор еще не получен эффективный иммунодиагностикум против ВМЦК. В последние годы для этих целей используют молекулярные методы детекции вирусной ДНК, вследствие их высокой чувствительности… Читать ещё >

Характеристика генетической изменчивости вируса мозаики цветной капусты (дальневосточные изоляты) и разработка методов его диагностики (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ДНК- ГЕНОМНЫЕ ВИРУСЫ РАСТЕНИЙ: ТАКСОНОМИЯ, СВОЙСТВА, ДИАГНОСТИКА (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Общая характеристика вирусов рода СаиПтоу1гт семейства СаиНтоутс1ае
    • 1. 2. Вирус мозаики цветной капусты — типовой представитель рода СаиИтоупия
    • 1. 3. Характеристика репликации и изменчивости вирусного генома
    • 1. 4. Модельные системы для изучения ВМЦК
    • 1. 5. Использование генома ВМЦК в генетической инженерии
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. ВМЦК и его изоляты
    • 2. 2. Способы передачи вируса
    • 2. 3. Световая и электронная микроскопия
      • 2. 3. 1. Изучение внутриклеточных вирусных включений методом световой микроскопии
      • 2. 3. 2. Негативное контрастирование частиц ВМЦК для электронномикроскопического исследования
      • 2. 3. 3. Ультратонкие срезы
    • 2. 4. Получение каллусной ткани цветной капусты
    • 2. 5. Очистка ВМЦК
    • 2. 6. Получение поликлональных моноштаммовых антисывороток
    • 2. 7. Реакция двойной иммунодиффузии
    • 2. 8. Методы выделения ДНК
    • 2. 9. Электрофорез структурных белков в ПААГ
    • 2. 10. Анализ ДНК электрофорезом в акриламидном и агарозном гелях
    • 2. 11. Полимеразная цепная реакция
    • 2. 12. Рестрикционный анализ ДНК
    • 2. 13. Синтез нерадиоактивных ДНК-зондов
    • 2. 14. Блот-гибридизация ДНК
  • ГЛАВА 3. ХАРАКТЕРИСТИКА ДАЛЬНЕВОСТОЧНОГО ШТАММА ВМЦКо
  • ЗЛ. Цитологические и ультраструктурные особенности инфицированных ВМЦКо клеток
    • 3. 2. Физико-химическая характеристика ВМЦКо
      • 3. 2. 1. Подбор методики получения препарата ВМЦК
      • 3. 2. 2. Структурные полипептиды ВМЦКо
      • 3. 2. 3. Характеристика нуклеиновой кислоты ВМЦКо
    • 3. 3. Антигенная характеристика капсидных белков ВМЦКо и выявление штаммо-, видо- и родоспецифических эпитопов ВМЦК и ВМГ
  • ГЛАВА 4. РАЗРАБОТКА МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ ВМЦК НА ОСНОВЕ АНАЛИЗА ЕГО ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ИЗМЕНЧИВОСТИ
    • 4. 1. Амплификация ГБЦВ дальневосточных изолятов ВМЦК
    • 4. 2. Анализ генетической изменчивости ВМЦК
    • 4. 3. ПЦР диагностика ВМЦК
    • 4. 4. Диагностика ВМЦК с помощью ДНК-гибридизации
  • ГЛАВА 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Своеобразие гео-климатических условий юга Дальнего Востока России определяет повышенный инфекционный фон в агроценозах. Здесь циркулируют вирусы растений, поражающие важные в экономическом плане культуры: овощные, картофель, злаковые, бобовые, декоративные. К настоящему моменту в дальневосточном регионе выявлено около 50 фитовирусов из 16 родов и еще больше описано их штаммов (Гнутова, 2003). Результаты ежегодного фитосанитарного мониторинга поражаемости сельскохозяйственных культур вирусами свидетельствуют о наличии в биоценозах ранее не изученных вирусов и их штаммов. Так, оказалось, что овощные культуры, изучение вирусов которых интенсивно проводится в последние годы, поражаются не только РНК-, но и ДНК-геномными вирусами. Идентифицирован новый вид для дальневосточного региона — вирус мозаики цветной капусты — Cauliflower mosaic virus рода Caulimovirus семейства Caulimoviridae (Gnutova, Tolkach, 2000). Вид выделен из культурных растений сем. крестоцветные: капусты, редиса. Особый интерес представляет то, что в Приморском крае известно шесть изолятов вируса. При этом они отличаются как по биологическим, так и по физическим свойствам, что дает основание сделать предположение о высокой изменчивости ВМЦК в данном регионе.

Современный подход к изучению штаммов ВМЦК должен опираться не только на комплекс классических методов вирусологии, но и на методы молекулярной биологии, поскольку все фенотипические особенности изолятов генетически детерминированы (Chenault, Melcher, 1994). Поэтому для дополнения ранее полученных результатов по штаммовому разнообразию ВМЦК в дальневосточном регионе необходимо было продолжить дальнейшую идентификацию изолятов и получить данные по генетической изменчивости, которые подтверждали или отвергали их статус как самостоятельных штаммов. Кроме того, на георгине по биологическим свойствам был выявлен еще один вид рода Caulimovirus — вирус мозаики георгина — Dahlia mosaic virus (Tolkach, Gnutova, 2002), что позволило провести сравнительную характеристику эпитопов капсидных белков ВМЦК и ВМГ — как видов одного рода.

Знание особенностей генетической изменчивости ВМЦК важно не только при изучении штаммового состава вируса, но и позволяет разработать для него эффективные методы диагностики. По литературным данным до сих пор пор еще не получен эффективный иммунодиагностикум против ВМЦК. В последние годы для этих целей используют молекулярные методы детекции вирусной ДНК, вследствие их высокой чувствительности и специфичности. Разработанный за рубежом радиоактивно-гибридизационный метод выявления ВМЦК довольно перспективен, однако в практике он не нашел применения, главным образом, из-за трудоемкости и необходимости соблюдения строгих мер безопасности (Maule et al., 1983). Более доступным может стать его вариант с использованием нерадиоактивных зондов. Выявление промотора 35S РНК ВМЦК в трансгенных растениях с помощью ПЦР со специфическими праймерами — более быстрый и доступный способ (Melnychuk et al., 2002), что свидетельствует о его перспективности. Необходимо отметить также, что изучение изменчивости ВМЦК — актуальная задача не только для вирусологии, но и для генной инженерии, которая успешно использует геном вируса и его фрагменты как модельные объекты для получения трансгенных растений.

При работе одновременно с несколькими изолятами ВМЦК особое значение имеет длительное содержание их в растениях и сохранение моноинфекции. Известно, что растения сем. крестоцветные, на которых поддерживается вирус, являются объектом питания для насекомых-переносчиков вирусов, что создает опасность для сохранении чистоты отдельного штамма. Мы решили показать перспективность длительного содержания ВМЦК in vitro — в культуре изолированных тканей растений. Такой подход позволил бы сократить дорогостоящие площади теплиц и исключить влияние насекомых-переносчиков и мало контролируемых факторов на рост растений.

Исходя из выше изложенного, цель настоящей работы состояла в характеристике структурных белков и изменчивости вирусного генома, изучении цитопатогенных свойств для определения штаммового разнообразия ВМЦК, а также разработке молекулярных методов их диагностики.

При выполнении работы были поставлены следующие задачи:

1. Подобрать методику получения препарата обычного штамма ВМЦК (ВМЦКо).

2. Оценить возможность поддержания и накопления вируса in vitro в культуре каллусной ткани системного хозяина Brassica cauliflora.

3. Определить морфологию и размер вирионов ВМЦКо.

4. Дать характеристику ВМЦК-индуцированным внутриклеточным включениям и определить места их локализации.

5. Изучить ультраструктурные изменения в клетках инфицированных растений.

6. Получить антисыворотку против ВМЦКо от различных животных-продуцентов специфических антител.

7. Выявить родо-, видои штаммоспецифические эпитопы капсидных белков ВМЦК и ВМГ.

8. Отработать методику выделения нуклеиновой кислоты вируса, определить ее тип и размер.

9. Подобрать структуру олигонуклеотидных праймеров для амплификации гена белка цитоплазматических включений ВМЦК на основе известных нуклеотидных последовательностей вируса.

10. Провести молекулярно-генетический анализ изменчивости дальневосточных изолятов ВМЦК.

11. Разработать вариант нерадиоактивной блот-гибридизации для детекции ВМЦК.

12. Разработать систему диагностики ВМЦК с помощью ПЦР.

ВЫВОДЫ.

1.Вирионы ВМЦК сосредоточены в округлых белковых образованиях (вироплазмах), которые располагаются околоядерно, что характерно для вирусов рода СаиНтоу1Гш. Вироплазмы состоят из электронно плотного матрикса, в котором равномерно распределены сферические частицы ВМЦК диаметром 40−50 нм.

2. Показано, что линии пассируемой клеточной линии системного хозяина В. саиИ/1ога, полученные от инфицированных ВМЦК растений, были неоднородны по содержанию вирусалишь одна из десяти каллусных линий сохраняла инфекционность в течение 4 мес. Выделить вирус из полученных каллусов не удалось.

3. Выявлены два вирусспецифических белка с м. м. 42 и 44 кДа. Отсутствие низкомолекулярных белков и их димеров свидетельствует о высокой стабильности белка капсидной оболочки ВМЦКо.

4. Показано, что ДНК ВМЦКо мигрирует в геле в виде смеси молекул. Наиболее подвижная форма имеет размер около 8 тыс. п. н.

5. Получена поликлональная моноштаммовая антисыворотка к ВМЦКо от двух видов животных (кроличья и крысиная). Установлено антигенное родство между шестью дальневосточными изолятами ВМЦК. Выявлены родоспецифические эпитопы на поверхности капсидных белков у ВМЦК и другого каулимовируса, выявленного в Приморском крае на георгиневирусом созаики георгина.

6. Амплифицирована полноразмерная копия гена белка цитоплазматических включений ВМЦК. ПЦР-ПДРФ анализ показал, что ВМЦК на Дальнем Востоке России представляет собой генетически однородную популяцию. Показано наличие существенных различий рестрикционных профилей у российских изолятов и зарубежных штаммов ВМЦК, что позволяет сделать предположение, что на Юге Дальнего Востока России циркулирует самостоятельная популяция ВМЦК.

7. Разработаны две видоспецифические тест-системы диагностики ВМЦК: на основе ПЦР и нерадиоактивной блот-гибридизации ДНК.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.П., Салменкова Е. А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. Т. 38. № 9. С. 1173−1195.
  2. И.Г. (ред.). Практикум по общей вирусологии. М.: Изд-во МГУ, 2003. 191 с.
  3. В.П., Журавлев Ю. Н., Козыренко М. М. Содержание даммарановых гликозидов в различных каллусных линиях Panax ginseng Mey // Растит, ресурсы. 1991. Т. 27. С. 94−100.
  4. Ю.И., Редько Т. А., Лытаева Г. К. Вирусные болезни овощных и бахчевых культур. Л.: Колос, 1973. 72 с.
  5. А., Харрисон Б. Основы вирусологии растений. М.: Мир, 1978. 430 с.
  6. Р.В. Иммунохимические методы в фитовирусологии. М.: Наука, 1985. 183 с.
  7. Р.В. Серология и иммунохимия вирусов растений. М.: Наука, 1993.301 с.
  8. Р.В. Таксономический статус фитовирусов и их штаммов, идентифицированных на российской азиатской территории. В кн. Фундаментальные и прикладные аспекты микробиологии на Дальнем Востоке. 2003. С. 155−159.
  9. М.И. Вирусные включения в растительной клетке и природа вирусов. М.: Изд-во АН СССР, 1963. 203 с.
  10. Дж., Скотт Р., Армитидж Ф. и др. Геннная инженерия растений. Лабораторное руководство: Пер. с англ. М.: Мир, 1991. 408 с.
  11. Ю.Ф., Афонина И. А., Байер К. и др. Детекция Х- и М-вирусов картофеля с помощью ДНК-зондов, меченных пероксидазой хрена // Биоорганическая химия. Т. 15. С. 947−951.
  12. Ковган А. А, Жданов В. М. Структура и функция генома вируса мозаики цветной капусты и его использование в генной инженерии // Вопросы вирусологии. 1989. № 5. С. 523−533.
  13. Краев В. Г. Современная классификация и номенклатура вирусов растений
  14. По материалам Международного комитета по таксономии вирусов). Ч. 1 // Мкробюл. журн. 2000. Т. 62. № 5. С. 45−71.
  15. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984. 480 с.
  16. JI.A. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот: электрофорез и ультрацентрифугирование. М.: Наука, 1981. 288 с.
  17. Э.С. Основы генетической инженерии растений. М.: Наука, 1988.304 с.
  18. Р. Методы очистки белков: Пер. с англ. М.: Мир, 1985. 385 с.
  19. В.Ф. Идентификация и биологическая характеристика поти- и тобамовирусов (дальневосточные изоляты). Автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток: Дальнаука, 1995. 24 с.
  20. В.Ф., Гнутова Р. В. Возбудители вирусных заболеваний овощных культур на юге Дальнего Востока. / Тез. Меж. конф. «Биоресурсы и вирусы». Киев. 2001. с. 102.
  21. В.Ф., Гнутова Р. В., Богунов Ю. В. Вирус мозаики цветной капусты в Приморском крае // Вестник защиты растений. С-Пб., 2002. № 1. С. 51−57.
  22. . Электронная микроскопия для начинающих. Пер. с англ. /Под ред. В. Полякова. М.: Мир, 1975. 327 с.
  23. Р. Очистка, биофизическая и биохимическая характеристика вирусов (преимущественно вирусов растений) // Вирусология. Методы. М.: Мир, 1988. С. 12−43.
  24. Д. Полимеразная цепная реакция и молекулярно-генетический анализ биоптатов / В кн.: Молекулярная генетическая диагностика. Методы. М.: Мир, 1999. С. 395−427.
  25. Albrecht Н., Gelbreich A., Menissier de Murcia J. et al. Cauliflower mosaic virus gene I product detected in a cell-wall-enriched fraction // Virology. 1988. Vol. 163. P. 503−508.
  26. AI-KafFN.S, Covey S.N. Variation in biological properties of cauliflower mosaic virus clones //J. Gen. Virol. 1994. Vol. 75. P. 3137−3145.
  27. Al-Kaff N.S., Covey S.N. Biological diversity of cauliflower mosaic-virus isolates expressed in 2 brassica species // Plant Pathology. 1995. Vol. 44. P. 516−526.
  28. Al-Kaff N.S., Covey S.N. Unusual accumulation of CaMV in local lesion, dark green leaftissue, and roots of infected plants // Mol. Plant-Microb. Interactions. 1996. Vol. 9. P. 357−363.
  29. Ani R., Pfeffer P., Lebeurier G. The structure of cauliflower mosaic virus. II. Identity and location of the viral polypeptides // Virology. 1979. Vol. 93. P. 188−197.
  30. Ansa O.A., Bowyer J. W., Shepherd R.). Evidence for replication of cauliflower mosaic virus DNA in plant nuclei //Virology. 1982. Vol. 121. P. 147−156.
  31. Armour S.L., Melcher T.P., Pirone T.P. et al. Helper component for aphid transmission encoded by region II of cauliflower mosaic virus DNA// Virology. 1983. Vol. 129. P. 25−30.
  32. Balazs E., Guilley H., Jonard G., Richards K. Nucleotide sequence of DNA from an altered-virulence isolate D/H of cauliflower mosaic virus // Gene. 1982. Vol. 19. P. 239−249.
  33. Balazs E., Lebeurier G. Arabidopsis is a host of cauliflower mosaic virus // Arabidopsis Information Service. 1981. № 18. P. 130−134.
  34. Bannister A., Maule A., Covey S. Cauliflower mosaic virus particles alter the sensitivity of Arabidopsis thaliana seedlings to 2,4-D // J. Plant Physiol. 1993. Vol. 141. P. 502−504.
  35. Bassi M., Favali M.A., Conti G.G. Cell wall protrusions induced by cauliflower mosaic virus in Chinese cabbage leaves: a cytochemical and autoradiographic study//Virology. 1974. Vol. 60. P. 353−358.
  36. Baughman G., Jacobs J., Howell S. Cauliflower mosaic virus gene VI produces a symptomatic phenotype in transgenic tobacco plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. Vol. 85. P. 733−737.
  37. Bedford I., Kelly A., Blank G. et al. The effect of Pymetrizine, a feeding inhibitor of Homoptera, in preventing transmission of cauliflower mosaic virus by the aphid species Myzus persicae //Ann. Appl. Biol. 1998. Vol. 132. P. 453−462.
  38. Benfey P., Ren L., Chua N. Tissue-specific expression from CaMV 35S enhancer subdomains in early stages of plant development // EMBO J. 1990a. Vol. 9.1. P. 1677−1684.
  39. Benfey P., Ren L., Chua N. Combinatorial and synergistic properties of CaMV 35S enhancer subdomains // EMBO J. 19 906. Vol. 9. P. 1685−1696.
  40. Blanc S., Schmidt I., Vantard M. et al. The aphid transmission factor of cauliflower mosaic virus forms a stable complex with microtubules in both insect and plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. Vol. 93. P. 15 158−15 163.
  41. Bonneville J., Volovitch M., Modjtahedi et al. In vitro synthesis of cauliflower mosaic virus DNA in viroplasms // Adv. Exp. Med. Biol. 1984. Vol. 179. P. 113−119.
  42. Borneman J., Tritz R., Hampel A., Altschuler M. Detection of cleavage products from an in vivo transcribed cis hairpin ribozyme in turnips using the CaMV plant virus //Gene. 1995. Vol. 159. P. 137−142.
  43. Brisson N., Hohn T. Plant-virus vectors cauliflower mosaic virus // Methods in Enzymology. 1986. Vol. 118. P. 659−668.
  44. Brisson N., Paszkowski J., Penswick J. et al. Expression of a bacterial gene in plants by using a viral vector //Nature. 1984. Vol. 310. P. 511−514.
  45. Broadbent L. Investigation of virus diseases of Brassica crops // Agric. Res. Counc. Rep. Ser. 1957. Vol. 14. P. 12−19.
  46. Broglio E. Mutational analysis of cauliflower mosaic virus gene VI changes in host-range, symptoms, and discovery of transactivation-positive, noninfectious mutants // Mol. Plant-Microb. Interactions. 1995. Vol. 8. P. 755−760.
  47. Brunt A. Partial purification, morphology, and serology of dahlia mosaic virus / /Virology. 1966. Vol. 28. P. 778−780.
  48. Brunt A., Barton R., Tremaine J., Stacemith R. Composition of cauliflower mosaic virus protein // J. Gen. Virol. 1975. Vol. 27. P. 101−106.
  49. Burger J., Du Plessis D. Detection of partially proteolyzed cauliflower mosaic virus coat protein in infected leaf tissue by western blotting//J. Virol. Methods. 1983. Vol. 7. P. 11−19.
  50. Chapdelaine Y., Hohn T. The cauliflower mosaic virus capsid protein: assembly and nucleic acid binding in vitro // Virus Genes. 1998. Vol. 17. P. 139−150.
  51. Chapdelaine Y., Kirk D., Karsies A. et al. Mutation of capsid proteinphosphorylation sites abolishes cauliflower mosaic virus infectivity // J. Virol. 2002. Vol. 76. P. 11 748−11 752.
  52. Chenault K., Melcher U. Patterns of nucleotide sequence variation among cauliflower mosaic virus isolates // Biochimie. 1994. Vol. 76. P. 3−8.
  53. Chenault K., Melcher U. Phylogenetic relationships reveal recombination among isolates of cauliflower mosaic virus // J. Mol. Evol. 1994. Vol. 39. P. 496−505.
  54. Cheng R.H., Olson N.H., Baker T.S. Cauliflower mosaic virus: a 420 subunit (T=7), multilayer structure //Virology. 1992. Vol. 186. P. 655−668.
  55. Citovsky V., Knorr D., Zambryski P. Gene-I, a potential cell-to-cell movement locus of cauliflower mosaic virus, encodes an RNA-Binding protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. Vol. 88. P. 2476−2480.
  56. Conti G. G, Vegetti G., Bassi M., Favali M. Some ultrastructural and cytochemical observations on Chinese cabbage leaves infected with cauliflower mosaic virus / /Virology. 1972. Vol. 96. P. 694−770.
  57. Covey S.N., Hull R. Transcription of cauliflower mosaic virus DNA: detection of transcripts, properties, and location of the gene encoding the virus inclusion body protein // Virology. 1981. Vol. 111. P. 463−474.
  58. Covey S., Turner D. Changes in population of cauliflower mosaic virus DNA and RNA forms during turnip callus proliferation // J. Gen. Virol. 1993. Vol. 74. P. 1887−1839.
  59. Covey S.N., Turner D.S., Lusy A.P., Saunders K. Host regulation of cauliflower mosaic virus replication cycle // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. Vol. 87. P. 1633−1637.
  60. Daubert S., Shepherd R., Gardner R. Insertion mutagenesis of cauliflower mosaic virus genome //Gene. 1983. Vol. 25. P. 201−208.
  61. Dautel S., Guidasci T., Pique M. et al. The full-length product of cauliflower mosaic vims open reading frame III is associated with the viral particles // Virology. 1994. Vol. 202. P. 1043−1045.
  62. Day M.F., Venables D. G The transmission of cauliflower mosaic virus by aphids //Australian J.Biol. Sci. 1961. Vol. 14. P. 187−197.
  63. Dixon L., Koenig I., Hohn T. Mutagenesis of cauliflower mosaic virus // Gene. 1983. Vol. 25. P. 189−199.
  64. Dominguez D., Hohn T., Schmidt-Puchta W. Cellular proteins bind to multiple sites of the leader region of cauliflower mosaic virus 35S RNA//Virology. 1996. Vol.226. P. 374−383.
  65. Drucker M., Froissart R., Hebrard E. et al. Intracellular distribution of virus gene products regulates a complex mechanism of cauliflower mosaic virus acquisition by its aphid vector // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 19. P. 2422−2427.
  66. Du Plessis D.H., Wechmar M.B. Detection of cauliflower mosaic virus in leaf extracts, protoplasts and aphids by ELISA // Phytopathol. Z. 1981. Bol. 100. S. 270−278.
  67. Ducasse D. A., Mushegian A.R., Sheperd R.J. Gene-I mutants of peanut chlorotic streak virus, a caulimovirus, replicate in plants but, do not move from cell to cell // J. Virol. 1995. Vol. 69. P. 5781−5786.
  68. Espinosa A. M., Markham P.G., Maule A.J., Hull R. In vitro biological activity associated with the aphid transmission factor of cauliflower mosaic virus // J. Gen. Virol. 1988. Vol. 69. P. 1819−1830.
  69. Franck A., Guilley H., Jonard G. et al. Nucleotide sequence of cauliflower mosaic virus DNA // Cell. 1980. Vol. 21. P. 285−294.
  70. Furusawa I., Okuno T. Infection with BMV of mesophyll protoplasts isolated from five plant species // J. Gen. Virol. 1978. Vol. 40. P. 489−491.
  71. Futterer Y., Gordon K., Sanfacon H. et al. Positive and negative control of translation by the leader sequence of cauliflower mosaic virus pregenomic 35S RNA//EMBOJ. 1990. Vol. 9. P. 1697−1707.
  72. Futterer Y., Kiss-Laszlo Z., Hohn T. Nonlinear ribosome migration on CaMV 35S RNA//Cell. 1993. Vol. 73. P. 789−802.
  73. Futterer, J., Bonneville, J., Hohn T. Cauliflower mosaic virus as a gene expression vector for plants//Physiologia Plantarum. 1990. Vol. 79. P. 154−157.
  74. Garcia-Arenal F., Fraile A., Malpica J. Variability and genetic structure of plant virus populations //Annu. Rev. Phytopathol. 2001. Vol. 39. P. 157−186.
  75. Gardner R., Howarth A., Hahn P. et al. The complete nucleotide sequence of an infectious clone of cauliflower mosaic virus by Ml 3mp7 shot gun sequencing / /Nucleic Acids Res. 1981. Vol. 9. P. 2871−2887.
  76. Gardner R., Shepherd R. A procedure for rapid isolation and analysis of cauliflower mosaic virus DNA//Virology. 1980. Vol. 106. P. 159−161.
  77. Gearge R.A., Converse R.H. Methods for the enrichment of desired B-cell population before anti-cauliflower mosaic virus hybridoma formation // Phytopathology. 1988. Vol. 78. P. 1631−1636.
  78. Geri C., Cecchini E., Giannakou M., C. et al. Altered patterns of gene expression in Arabidopsis elicited by cauliflower mosaic virus infection and by a CaMV gene VI transgene // Mol. Plant-Microb. Interactions. 1999. Vol. 12. P. 377−384.
  79. Giband M., Mesnard J., Lebeurier G. The gene III product (P15) of cauliflower mosaic virus is a DNA-binding protein while an immunologically related PII polypeptide is associated with virions // EMBO J. 1986. Vol. 5. P. 2433−2438.
  80. Giband M., Stoeckel M., Lebeurier G. Use of the immune-gold technique for in situ localization of cauliflower mosaic virus particles and the major protein of the inclusion bodies // J. Virol. Methods. 1984. Vol. 9. P. 277−281.
  81. Gnutova R. V., Tolkach V.F. Taxonomy of phytopathogenic viruses identified in the Russian Far East //Arch. Phytopath. Pflanz. 2000. Bd. 33. S. 187−205.
  82. Gnutova R.V., Tolkach V.F., Bogunov Yu.V. Criteria for identification of cauliflower mosaic virus’s of the Far Eastern strains // Plant Protect. 2002. Vol. 38. P. 258−260.
  83. Goldberg K., Kiernan J., Shepherd R. A didease syndrome associated with expression of gene-VI of caulimoviruses may be a nonhost reaction // Mol. Plant Microbe Interaction. 1991. Vol. 4. P. 182−189.
  84. Gong Z.X., Wu H., Cheng R.H., Hull R., Rossmann M. G. Crystallization of cauliflower mosaic virus // Agronomie. 1990. Vol. 10. P. 749−758.
  85. Gracia O., Shepherd R. Cauliflower mosaic virus in the nucleus of Nicotiana // Virology. 1985. Vol. 146. P. 141−145.
  86. Hagen T.J., D.B.Taylor, R.Meagher. Rocket Immunoelectrophoresis assay for cauliflower mosaic virus // Phytopathology. 1982. Vol. 72. P. 239−242.
  87. Hahn P., Shepherd R.J. Evidence for a 58-kilodalton polypeptide as precursor of the coat protein of cauliflower mosaic virus // Virology. 1982. Vol. 116. P. 480−488.
  88. Hardwick N.V., Davies J.L., Wright D.M. The incidence of 3 virus diseases of winter oilseed rape in England and Wales in the 1991/92 and 1992/93 growing seasons // Plant Pathol. 1994. Vol. 43. P. 1045−1049.
  89. Harker C.L., Woolston C.J., Markham P.G., Maule A.J. Cauliflower mosaic virus aphid transmission factor protein is expressed in cells infected with some aphid nontransmissible isolates // Virology. 1987. Vol. 160. P. 252−254.
  90. Hemmings-Mieszczak M., Steger G., Hohn T. Regulation of CaMV 35S RNAtranslation is mediated by a stable hairpin in the leader // RNA-Publ. RNA Soc. 1998. Vol. 4. P. 101−111.
  91. Hepp R.F., Converse R.H. Blueberry red ringspot virus is serologically related to cauliflower mosaic virus // Phytopathology. 1987. Vol. 77. P. 1239−1239.
  92. Himmelbach A., Chapdelaine J., Hohn T. Interaction between cauliflower mosaic virus inclusion body protein and capsid protein: implycations for viral assembly //Virology. 1996. Vol. 217. P. 147−157.m
  93. Hohn T., Richards K., Lebeurier G. Cauliflower mosaic virus on its way to becoming a useful plant vector // Current Topics in Microbiology and Immunology. 1982. Vol. 96. P. 193−236.
  94. Horvath J., Besada W., Juretic N., Mamula D. Some data on properties of cauliflower mosaic virus in Hungary // Tagungsbericht. Berlin Akad. der Landwirtschaftswissenschaften der DDR. 1980. Bd. 184. S. 53−60.
  95. Howarth A., Gargner R., Messing J., Shepherd R. Nucleotide sequence of ^ naturally occurring deletion mutants of cauliflower mosaic virus // Virology. 1981.1. Vol. 112. P. 678−685.
  96. Howell S., Hull R. Expression of virus genome in plant protoplast infected with cauliflower mosaic virus and its DNA // Plant Physiol. 1977. Vol. 59. P. 105−106.
  97. Howell S.H., Hull R. Replication of cauliflower mosaic virus and transcription of its genome in Turnip leaf protoplasts // Virology. 1978. Vol. 86. R 468−481.
  98. Hull R. Structure of cauliflower mosaic virus genome III. Restriction endonuclease mapping of thirty-three isolates // Virology. 1980. Vol. 100. P. 76−90.
  99. Hull R., Covey S. Structure and replication of caulimovirus genomes // J. Cell Science. 1987. Vol. 7. P. 213−229.
  100. Hull R., Howell S.H. Structure of the cauliflower mosaic virus genome. II. Variation in DNA structure and sequence between isolates // Virology. 1978. Vol. 86. P. 482−493.
  101. Hull R., Shepherd R.J., Harvey J.D. Cauliflower mosaic virus: an improved purification procedure and some properties of the virus particles // J. Gen. Virol. 1976. Vol. 31. P. 93−100.
  102. Hull R., Shepherd R.J. The coat proteins of cauliflower mosaic virus // Virology. 1976. Vol. 70.217−220.
  103. Hussain M., Melcher U., Essenberg R. Infection of vacuolated turnip protoplasts with liposome-packaged cauliflower mosaic virus // Plant Cell Reports. 1985. Vol. 4. P. 58−62.
  104. Jacquot E., Geldreich A., Keller M., Yot P. Mapping regions of the cauliflower mosaic virus ORF III product required for infectivity // Virology. 1998. Vol. 242. P. 395−402.
  105. Karsies A., Merkle T., Szurek B. et al. Regulated nuclear targeting of cauliflower mosaic virus//J. Gen. Virol. 2002. Vol. 83. P. 1783−1790.
  106. Kasteel, D.T., Perbal, M.C., Boyer, J.C. et al. The movement proteins of cowpea mosaic virus and cauliflower mosaic virus induce tubular structures in plant and insect cells//J. Gen. Virol. 1996. Vol. 77. P. 2857−2864.
  107. Keinonen-Mettala K., Papinen A., Weissenberg K. Comparisons of the efficiency of some promoters in silver birch (Betula pendula) // Plant Cell Reports. 1998. Vol. 17. P. 356−361.
  108. Kelly D.C., Cooper J., Walker D.G.A. Cauliflower mosaic virus proteins // Microbios. 1974. Vol. 10. P. 239−245.
  109. Kennedy J.S., Day M.F., Eastop V.F. A conspectus of aphids as vectors ofplant viruses / In: Comminwealth Inst, of Entomology, 1962. P. 38−51.
  110. Kiraly L., Cole A., Bourque J., Schoelz J. Systemic cell death is elicited by the interaction of a single gene in Nicitiana clevelandii and gene VI of cauliflower mosaic virus // Mol. Plant-Microb. Interactions. 1999. Vol. 12. P. 919−925.
  111. Kiss-Laszlo Z., Blanc S., Hohn T. Splicing of cauliflower mosaic virus 35S RNA is essential for viral infectivity//EMBO J. 1995. Vol. 14. P. 3552−3562.
  112. Kobayashi K., Nakayashiki H., Tsuge S., Mise K., Furusawa I. Accumulation kinetics of viral gene products in cauliflower mosaic virus-infected turnip protoplasts // Microbiology and Immunology. 1998. Vol. 42. P. 65−69.
  113. Kruse J., Timmins P., Witz J. The spherically averaged structure of a DNA isometric plant virus cauliflower mosaic virus // Virology. 1987. Vol. 159. P. 166−168.
  114. Lawson R.H., Civerolo E.L. Carnation etched ring virus: purification, stability of inclusions, and properties of the nucleic acid. // Phytopathology. 1978. Vol. 68. P. 181−188.
  115. Lebeurier G., Hirph V., Hohn T., Hohn B. Infectivities of native and cloned DNA of cauliflower mosaic virus //Gene. 1980. Vol. 12. P. 139−146.
  116. Leclerc D., Chadelaine Y., Hohn T. Nuclear targeting of the cauliflower mosaic virus coat protein //J. Virology. 1999. Vol. 73. P. 553−560.
  117. Leh V., JacquotE., Geldreich A. et al. Aphid transmission of cauliflower mosaic virus requires the viral PIII protein // EMBO J. 1999. Vol. 18. P. 7077−7085.
  118. Leh V., Yot P., Keller M. The cauliflower mosaic virus translational transactivator interacts with the 60S ribosomal subunit protein LI8 of Arabidopsis thaliana // Virology. 2000. Vol. 266. P. 1−7.
  119. Liang Ji. Cauliflower mosaic virus (Caulimovirus) // Plant viruses in Azia. 1998. Gadjah Mada University Press. Indonesia. P. 51−53.
  120. Lin H., Rubio L., Smythe A. et al. Genetic diversity and biological variationamong California isolates of cucumber mosaic virus // J. Gen. Virol. 2003. Vol. 84. P. 249−258.
  121. Lung M.S., Pirone T.P. Studies on the reason for differential transmissibility of cauliflower mosaic virus-isolates by aphids // Phytopathology. 1973. Vol. 63. P. 910−914.
  122. Lung M.S., Pirone T.P. Acquisition factor required for aphid transmission of purified cauliflower mosaic virus // Virology. 1974. Vol. 60. P. 260−264.
  123. Maiti I., Shepherd R. Isolation and expression analysis of peanut chlorotic streak caulimovirus (PCIS V) full-length transcript (FLt) promoter in transgenic plants / / Biochem. Biophys. Res. Commum. 1998. Vol. 244. P. 440−444.
  124. Markham P.G., Pinner M.S., Raccah B., Hull R. The acquisition of caulimovirus by different aphid species//Ann. Appl. Biol. 1987.№ 111. P. 571−587.
  125. Marsh L., Kuzj A. Identification and characterization of cauliflower mosaic virus replication complexes analogy to hepatitis-B viruses // Virology. 1985. Vol. 143. P. 212−223.
  126. Martelli G.P., Castellano M.A. Light and electron microscopy of the intracellular inclusions of cauliflower mosaic virus // J. Gen. Virol. 1971. Vol. 13. P. 133−140.
  127. Martinez-Izquierdo J.A., Futterer J., Hohn I. Protein encoded by ORF I of cauliflower mosaic virus is port of the viral inclusion body // Virology. 1987. Vol. 160. P. 527−530.
  128. Maule A J. Infection of protoplasts from several Brassica species with cauliflower mosaic virus following inoculation using polyethylene-glycol II J. Gen. Virol. 1983. Vol. 64. P. 2655−2660.
  129. Maule A.J., Harker C.L., Wilson I.G. The pattern of accumulation of cauliflower mosaic virus-specific products in infected turnips // Virology. 1989. Vol. 169. P. 436−446.
  130. Meagner R., Shepherd R., Boyer H. A Restriction endonuclease map of cauliflower mosaic virus DNA// Virology. 1977. Vol. 80. P. 362−375.
  131. Melcher U. Symptoms of cauliflower mosaic virus infection in Arabidopsis thaliana and turnip//Botanical gazette. 1989. Vol. 150. P. 139−147.
  132. Melcher U., Choe I., Lebeurier G. et al. Selective allele loss and interferencebetween cauliflower mosaic virus DNAs // Mol. Gen. Genet. 1986. Vol. 203. P. 230−236.
  133. Melcher U., Hein R., Gardner C. et al. An inderect radioimmunoassay of cauliflower mosaic virus // Phytopathology. 1980. Vol. 70. P. 954−957.
  134. Melnychuk M.D., Dubin A.V., Spyrydonov V.G., Melnychuk S.D. Detection and identification of the transgenes in the genetically modified plants on the example of Bt-potatp // Microbiol. J. 2002. Vol. 64. P. 26−32.
  135. Menissier J, Hunting D.J., Murcia G. Electron microscopic mapping of single-stranded discontinuities in cauliflower mosaic virus DNA by means of the biotin-avidin technique//Anal. Biochemistry. 1985. Vol. 148.339−343.
  136. Menissier J., Demurcia G., Lebeurier G., Hirth L. Electron-microscopic studies of the different topological forms of the cauliflower mosaic virus DNA Knotted encapsidated DNA and nuclear minichromosome // EMBO J. 1983. Vol. 2. P. 1067−1071.
  137. Mesnard J., Carriere C. Comparison of packaging strategy in Retroviruses and Pararetroviruses//Virology. 1995. Vol. 213. P. 1−6.
  138. Mesnard J., Mougeot J. Geldreich A., Lebeurier G. Characterization of different electrophoretic forms of cauliflower mosaic virus virions (strain Cabb-S) // Biochimie. 1993. Vol. 75. P. 645−649.
  139. Mevel S., Kerlan C. Biological properties of different isolates of cauliflower mosaic virus. 1. Solanaceous hosts //Agronomie. 1990. Vol. 10. P. 749−752.
  140. Morris T.J., Mullian R.H., Schlegel D.E. et al. Isolation of caulimovirus from strawberry tissue infected with strawberry vein banding virus // Phytopathology. 1980. Vol. 70. P. 156−160.
  141. Mougeot J., Guidasch T., Wurch T. et al. Identification of C-terminal amino acid residues of cauliflower mosaic virus open reading frame III protein responsible for its DNA binding activity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. Vol. 90. P. 1470−1473.
  142. Mraz I., Petrzik K., Franova-Honetslegrova J. Detection of strawberry vein banding virus by polymerase chain reaction and dot blot hybridization // Acta Virologica. 1997. Vol. 41. P. 241−242.
  143. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays withtobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15. P. 473−497.
  144. Mushegian A., Shepherd R. Genetic elements of plant-viruses as tools for genetic engineering//Microbiologicol Reviews. 1995. Vol. 59. P. 548−569.
  145. Namba R., Sylvester E. Transmission of cauliflower mosaic virus by the green peach, turnip, cabbage, and pea aphids (Homoptera, aphididae) // J. Econ. Entomol. 1981. Vol. 74. P. 546−551.
  146. Natti J.J. Influense of cauliflower mosaic and turnip mosaic viruses on yields of cabbage in New York state // Plant Dis. Rep. 1956. Vol. 40. P. 591−595.
  147. Odell J.T., Dudley R.K., Howell S.H. Structure of the 19S RNA transcript encoded by the cauliflower mosaic virus genome // Virology. 1981. Vol. 111. P. 377−385.
  148. Olszewski N., Guilfoyle T. Nuclei purified from cauliflower mosaic virus infected turnip leaves contain subgenomic, covalently closed circular cauliflower mosaic virus DNAs//Nucl. Acids Res. 1983. Vol. 11. P. 8901−8914.
  149. Olszewski N., Hagen G., Guilfoyle T. A transcriptionally active, covalently closed minichromosome of cauliflower mosaic virus // Cell. 1982. Vol. 29. P. 395−402.
  150. Palanichelvan K., Schoelz J. A comparative analysis of the avirulence and translational transactivator functions of gene VI of cauliflower mosaic virus // Virology. 2002. Vol. 293. P. 225−233.
  151. Pauk J., Stefanov I., Fekete S. et al. A study of different (CaMV 35S and MAS) promotor activities and rish assessment of field use in transgenic rapeseed plants //Euphytica. 1995. Vol. 85. P. 411−416.
  152. Petrzik K., Benes V., Mraz I. et al. Carnation etched ring virus definitive member of the genes caulimovirus //Virus genes. 1998. Vol. 16. P. 303−305.
  153. Pfeiffer P., Hohn T. Involvement of reverse transcription in the replication of cauliflower mosaic virus: a detailed model and test of some aspects // Cell. 1983. Vol. 33. P. 781−789.
  154. Pfeiffer P., Mesnard J.M. The interplay of host and virus genes in the specificityand pathogenicity of cauliflower mosaic virus // Pathogenesis and host specificity in plant diseases. Oxford. Elsevier. 1995. Vol. III. P. 269−288.
  155. Pirone T.P., Blanc S. Helper-dependent vector transmission of plant viruses // Annu. Rev. Phytol. 1996. Vol. 34. P. 227−247.
  156. Pirone T.P., Pound G.S., Shepherd R.J. Properties and serology of purified cauliflower mosaic virus // Phytopathology. 1961. Vol. 51. P. 541 -546.
  157. Pooggin M., Futterer J., Skryabin K., Hohn T. A short open reading frame terminating in front of a stable hairpin is the conserved feature in pregenomic RNA leaders of plant pararetroviruses // J. Gen. Virol. 1999. Vol. 80. P. 2217−2228.
  158. Qiu S.- Schoelz J. Three regions of cauliflower mosaic virus strain W260 are involve in systemic infection of solanaceous hosts // Virology. 1992. Vol. 190. P. 773−782.
  159. Qiu S., Wintermantel W.- Sha Y., Schoelz J. Light-dependent systemic infection of solanaceous species by cauliflower mosaic virus can be conditioned by viral gene encoding an aphid transmission factor // Virology. 1997. Vol. 227. P. 180−189.
  160. Raybould A.F., Maskell L.C., Edwards M.L. et al. The prevalence and spatial distribution of viruses in natural populations of Brassica oleracea // New Phytologist. 1999. Vol. 141. P. 265−275.
  161. Richins R.D., Shepherd R. J. Physical maps of the genomes of dahlia mosaic virus and mirabilis mosaic virus two members of the caulimovirus group // Virology. 1983. Vol. 124. P. 208−214.
  162. Riederer M., Grimsley N., Hohn B., Jiricny J. The mode of cauliflower mosaic virus propagation in the plant allows rapid amplification of viable mutant strains // J. Gen. Vorol. 1992. Vol. 73. P. 1449−1456.
  163. Rollo F., Covey S. Cauliflower mosaic virus DN A persists as supercoiled forms in cultured turnip cells // J. Gen. Virol. 1985. Vol. 66. P. 603−608.
  164. Rothnie H., Chapdelaine Y., Hohn T. Pararetroviruses and retroviruses: a comparative review of viral structure and gene expression strategies // Adv. Virus Res. 1994. Vol. 44. P. 1−67.
  165. Rubio-Huertos M., Matsui C., Yamaguchi A., Kamei T. Electron microscopy of X-body formation in cells of cabbage infected with Brassica virus 3 // Phytopathology. 1968. Vol. 58. P. 548−549.
  166. Russell G.J., Follett E.A.C., Subak-Sharpe J.H., Harrison B.D. The double-stranded DNA of cauliflower mosaic virus // J. Gen Virol. 1971. Vol. 11. P. 129−138.
  167. Ryabova L., Pooggin M., Dominguez D., Hohn T. Continuous and discontinuous ribosome scanning on the cauliflower mosaic virus 35S RNA leader is controlled by short open reading frames // J. Biol. Chem. 2000. Vol. 24. P. 37 278−37 284.
  168. Rychlik W., Spencer W., Rhoads R. Optimization of the annealing temperature for DNA amplification in vitro //Nucl. Acids Res. 1989. Vol. 18. P. 6409−6412.
  169. Salmanian A., Gushchin A., Medvedeva T. et al. Synthesis and expression of tee gene for human epidermal growth factor in transgenic potato plants // Biotechnol. Lett. 1996. Vol. 18. P. 1095−1098.
  170. Sanger M., Daubert S., Goodman R.M. The regions of sequence variation in caulimovirus geneVI //Virology. 1991. Vol. 182. P. 830−834.
  171. Saunders K., Lucy A.P., Covey S.N. Susceptibility of Brassica species to cauliflower mosaic virus infection is related to a specific stage in the virus multiplication cycle//J. Gen Virol. 1990. Vol. 71. P. 1641−1647.
  172. Schoelz J.E., Shepherd R.J. Host range control of cauliflower mosaic virus // Virology. 1988. Vol. 162. P. 30−37.
  173. Schoelz J.E., Shepherd R.J., Daubert S. Region VI of cauliflower mosaic virus encodes a host range determinant // Mol. Cell Biol. 1986. Vol. 6. P. 2632−2637.
  174. Schoelz J.E., Shepherd R.J., Richins R.D. Properties of unusual strain of cauliflower mosaic virus // Phytopathology. 1986. Vol. 76. P. 451−454.
  175. Scholthof H., Wu F., Kiernan J., Shepherd R. The putative zing finger of a caulimovirus is essential for infectivity but does not influence gene expression / /J. Gen. Virol. 1993. Vol. 74. P. 775−780.
  176. Schroeder H., Schotz A., Wardleyrichardson T. et al. Transformation and regeneration of 2 cultivars of rea (Pisum sativum L) // Plant Physiol. 1993. Vol. 101. P. 751−757.
  177. Schultz E.S. A trasmissible mosaic disease of Chinese cabbage, mustard and turnip // J. agric. Res. 1921. Vol. 22. P. 173−177.
  178. Shepherd R.J. Cauliflower mosaic virus // C.M.I./A.A.B. 1970. № 24. 3 p.
  179. Shepherd R.J. DNA viruses of higher plants. P. 305−339 in: Laufler M.A. et al. Adv. Virus Res. 1976. Vol. 20. Ac. Press. New York.
  180. Shepherd R.J., Bruening G.E., Wakeman R.J. Double-stranded DNA from cauliflower mosaic virus // Virology. 1970. Vol. 41. P. 339−347.
  181. Shepherd R.J., Richings R., ShallaT.A. Isolation and properties of the inclusion bodies of cauliflower mosaic virus //Virology. 1980. Vol. 102. P. 389−400.
  182. Shepherd R.J., Wakeman R.J. Observation on the size and morphology of cauliflower mosaic virus//Phytopathology. 1971. Vol. 61. P. 188−193.
  183. Shepherd R.J., Wakeman R.J., Romanko R.R. DNA in cauliflower mosaic virus //Virology. 1968. Vol. 36. P. 150−153.
  184. Shewmaker C., Caton J., Houck C., Gardner C. Transcription of cauliflower mosaic virus integrated into plant genomes // Virology. 1985. Vol. 140. P. 281−288.
  185. Shukla D.D., Schmelzer K. Studies on viruses and virus diseases of cruciferous plants. VII. Occurrence and effects of cabbage black ring and cauliflower mosaic viruses on brassica crops // Acta Phytopathol. Acad. Sci. Hung. 1972. Vol. 7. P. 325−342.
  186. Sinilkumar G., Mohr L., Lopata-Finch E. et al. Developmental and tissue-specific expression of CaMV 35S promotor in cotton as revealed by GFP // Plant Mol. Biol. 2002. Vol. 50. P. 463−474.
  187. Sohal A., Love A., Cecchini E. et al. Cauliflower mosaic virus infection stimulates lipid transfer protein gene expression in Arabidopsis // J. Experimental Botany. 1999. Vol. 50. P. 1727−1733.
  188. Staar G. Blumenkohlvirosen // Deutsche Akad. Landwirtschaftswiss. Tagungsber. 1962. Bol. 51. S. 45−51.
  189. Sun L., Cai H., Xu W., Hu Y., Lin Z. CaMV 35S promoter directs beta-glucuronidase expression in Ganoderma lucidum and Pleurotus citrinopileatus / / Mol. Biotechnol. 2002. Vol. 20. P. 239−244.
  190. Tezuka N., Taniguchi T. Stepwise degradation of cauliflower mosaic virus by pronase // Virology. 1972. Vol. 47. P. 142−146.
  191. Thomas C., Maule A. Identification of structural domains within the cauliflower mosaic virus movement protein by scanning deletion mutagenesis and epitope tagging//Plant Cell. 1995. Vol. 7. P. 561−572.
  192. Thomas C., Perbal C, Maule, A. A mutation of cauliflower mosaic virus gene I interferes with virus movement but not virus replication // Virology. 1993. Vol. 192. P. 415−421.
  193. Tolkach V.F., Gnutova R.V. The new for South Far East Russia of Caulimoviruses: cauliflower mosaic and dahlia mosaic / Abstr. VH-th Intern. Symp. «Plant virus Epidemiology». Germany. Aschersleben. 2002. P. 123.
  194. Tomaru K. Cauliflower mosaic virus (Caulimovirus) // Plant viruses in Azia. 1998. Gadjah Mada University Press. Indonesia. P. 501−503.
  195. Tomlinson J.A., Shepherd R.J., Walker J.C. Purification, properties and serology of cucumber mosaic virus // Phytopatology. 1959. Vol. 49. P. 293−299.
  196. Tomlinson J. A., Walker V.M. Further studies on seed transmission in the ecology of some aphidtransmitted viruses //Ann. Appl. Biol. 1973. Vol. 73. P. 293−298.
  197. Torruella M., Gordon K., Hohn T. Cauliflower mosaic virus produces an aspartic proteinase to cleave its polyproteins // EMBO J. 1989. Vol. 8. P. 2819−2825
  198. Tsuge S., Kobayashi K., Nakayachiki H. et al. Cauliflower mosaic virus ORF III product forms a tetramer on planta: its implication in viral DNA folding during encapsidation // Microbiology and Immunology. 1999. Vol. 43. P. 773−780.
  199. Turner D., McCallum D., Covey S. Roles of the 35S promoter and multiple overlapping domains in the pathogenicity of the pararetrovirus cauliflower mosaicvirus // J. Virol. 1996. Vol. 70. P. 4514−4521.
  200. Vaden V., Melcher U. Recombination sites in cauliflower mosaic virus DNAs: implications for mechanisms of recombination // Virology. 1990. Vol. 177. P. 717−726.
  201. Van Regenmortel M.H.V., Fauquet C.M., Bishop D.H.L. Virus taxonomy. (7-th rep. of the Intern. Com. on Taxonomy of Viruses). San Diego: Acad. Press, 2000. 1121 p.
  202. Volovitch M., Drufeon G., Yot P. Studies on the single-strended discontinuities of the cauliflower mosaic virus genome // Nucleic Acids Res. 1978. Vol. 5. P. 2913−2925.
  203. Volovitch M., Modjtahedi N., Chouikh Y., Yot P. Conserved and non-conserved restriction sites are interspersed in the DNA of cauliflower mosaic virus // Biochemistry International. 1981. Vol. 3. P. 225−232.
  204. Walker J.C., Lebeau F.J., Pound G.S. Viruses associated with cabbage mosaic // J. Agr. Res. 1945. Vol. 70. P. 379−404.
  205. Woolston C.J., Covey S.N., Penswick J.R., Davies J.W. Aphid transmission and a polypeptide are specified by a defined region of the cauliflower mosaic virus//Gene. 1983. Vol. 23. P. 15−23.
  206. Woolston C.J., Czaplewsku L.G., Marham P.G. et al. Location and sequence of a region of cauliflower mosaic virus gene II responsible for aphid transmissibility //Virology. 1987. Vol. 160. P. 246−251.
  207. Xiong C., Balazs E., Lebeurier G. et al. Comparative cytology of 2 isolates of cauliflower mosaic virus // J. Gen. Virol. 1982. Vol. 61. P. 75−81.
  208. Yamaoka N., Furusawa I., Yamamoto M. Infection of turnip protoplasts with cauliflower mosaic virus DNA//Virology. 1982. Vol. 122. P. 503−505.
  209. Yamaoka N., Morita T., Furusawa I., Yamamoto M. Effect of temperature on the multiplication of cauliflower mosaic virus // J. Gen. Virol. 1982. Vol. 61. P. 283−287.
  210. Young M.J., Daubert S.D., Shephert R.J. Gene I products of cauliflower mosaic virus detected in extracts of infected tissue // Virology. 1987. Vol. 158. P. 444−446.
  211. Zhang X.S., Melcher U. Competition between isolates and variants of cauliflower mosaic virus in infected turnip plants // J. Gen. Virol. 1989. Vol. 70. P. 3427−3437.
  212. Zijlstra C., Scharer-Hemandez N., Gal S., Hohn T. Arabidopsis thaliana expressing the cauliflower mosaic virus ORF VI transgene has a late flowering phenotype / /Virus genes. 1996. Vol. 13. P. 5−17.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!