Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Исследование неопиоидной рецепции ?-эндорфина в доимплантационном развитии эмбриона мыши

Диссертация: Исследование неопиоидной рецепции ?-эндорфина в доимплантационном развитии эмбриона мыши
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые нами было показано не только биологический эффект р~ эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие ранних эмбрионов, но и также установлены основные компоненты сигнальной системы неопиоидного рецептора Р-эндорфина. В работе показано, что передача сигнала исследуемыми пептидами при активации неопиоидных рецепторов Р-эндорфина осуществляется через аденилатциклазную сигнальную систему… Читать ещё >

Исследование неопиоидной рецепции ?-эндорфина в доимплантационном развитии эмбриона мыши (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Ранний эмбриогенез млекопитающих: стадии и особенности раннего развития
    • 1. 2. Межклеточные взаимодействия и ростовые факторы в раннем развитии млекопитающих
    • 1. 3. Характеристика Р — эндорфина
    • 1. 4. Характеристика иммуноглобулина О
    • 1. 5. Неопиоидное действие р -эндорфина
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Реактивы
    • 2. 2. Среды для работы с культурами клеток
    • 2. 3. Экспериментальные животные
    • 2. 4. Синтетические пептиды
    • 2. 5. Выделение и культивирование ранних эмбрионов мыши
    • 2. 6. Изучение действия Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на раннее развитие эмбрионов мыши
    • 2. 7. Выделение и культивирование первичных эмбриональных фибробластов мыши
    • 2. 8. Оценка метаболической активности и жизнеспособности клеток
    • 2. 9. Методы измерения внутриклеточного Са у 2- и 8-клеточных эмбрионов мыши
      • 2. 9. 1. Микроспектральный флуоресцентный анализ
      • 2. 9. 2. Ратиометрический анализ
    • 2. 10. Вазэктомия самцов мыши
    • 2. 11. Трансплантация бластоцист псевдобеременным самкам мыши
    • 2. 12. Криоконсервация (витрификация) ранних эмбрионов мыши
    • 2. 13. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Влияние Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на доимплантационное развитие эмбрионов мыши
      • 3. 1. 1. Выбор эффективной концентрации исследуемых веществ
      • 3. 1. 2. Развитие 2-клеточных эмбрионов
        • 3. 1. 2. 1. Влияние Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие 2-клеточных эмбрионов мыши
        • 3. 1. 2. 2. Влияние Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина в присутствии налоксона на развитие 2-клеточных эмбрионов мыши
      • 3. 1. 3. Развитие 4-клеточных эмбрионов
        • 3. 1. 3. 1. Влияние р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие 4-клеточных эмбрионов мыши
        • 3. 1. 3. 2. Влияние Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина в присутствии налоксона на развитие 4-клеточных эмбрионов мыши
      • 3. 1. 4. Развитие 8-клеточных эмбрионов
        • 3. 1. 4. 1. Влияние р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие 8-клеточных эмбрионов мыши
        • 3. 1. 4. 2. Влияние р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина в присутствии налоксона на развитие 8-клеточных эмбрионов мыши
    • 3. 2. Влияние Р-эндорфина и пентарфина на пролиферативную и митохондриальную активность первичных эмбриональных фибробластов мыши
    • 3. 3. Роль ионов Са в развитии доимплантационных эмбрионов млекопитающих
      • 3. 3. 1. Передача внутриклеточного сигнала при действии пентарфина и циклопентарфина на 2- и 8-клеточные эмбрионы мыши
      • 3. 3. 2. Передача внутриклеточного сигнала при действии Р-эндорфина на 2- и 8-клеточные эмбрионы мыши
      • 3. 3. 3. Ратиометрическое определение [Са2+]- у 2-клеточных эмбрионов
    • 4. Действие циклопентарфина на выживаемость ранних эмбрионов при криоконсервации (витрификации)
    • 5. Исследование действии* циклопентарфина на постам плантационное развитие

Эмбриональное развитие млекопитающих — это сложный и длительный процесс превращений и перестроек, в результате которых из зиготы развивается взрослый организм. Основные стадии раннего развития (2-, 4-и 8-клеточная) являются определяющими и на этих стадиях происходят важные события, которые в последующем влияют на формирование и развитие всего организма. Во время развития эмбриона млекопитающих происходят сложные взаимодействия как между эмбрионом и материнским организмом, так и между клетками самого эмбриона. В настоящее время, изучению фундаментальных основ эмбриогенеза животных и человека, а также исследованною факторов, влияющих на этот процесс, уделяется огромное внимание во всем мире. Детальное изучение факторов, влияющих на раннее развитие эмбриона, его имплантацию, на взаимосвязь бластомеров эмбриона между собой, а также механизмов этого действия очень важно и актуально. На доимплантационное развитие эмбрионов млекопитающих оказывают влияние несколько семейств ростовых факторов различного происхождения, такие как инсулиноподобные (ИФР), эпидермальные (ЭФР), тромбоцит-производные (ТПФР), трансформирующий фактор роста Р (ТФР-р), фактор роста фибробластов (ФРФ), лейкемия-ингибирующий фактор (ЛИФ) [Гилберт, 1993]. Однако, помимо классических факторов роста, могут существовать неспецифические пептидные ростовые факторы, которые также могут оказывать свое влияние на ранний эмбриогенез млекопитающих. Ильинским и соавторами было высказано предположение о том, что в роли неспецифического ростового фактора может выступать Р~ эндорфин [Ильинский и др., 1987]. Р-Эндорфин — опиоидный нейропептид, способен регулировать основные функции организма, осуществляя тесное взаимодействие иммунной и нейроэндокринной систем. Установлено, что молекула Р-эндорфина содержит три различных участка, ответственных за специфическое связывание с рецепторами. Концевые участки р-эндорфина отвечают за взаимодействие с ци 8- опиоидными рецепторами [1л е1 а1.,.

1976], а центральная часть — с неизвестным типом рецепторов p-эндорфинанеопиоидным (не чувствительным к специфическому блокатору опиоидных рецепторов налоксону) [Hazum et al., 1979]. В настоящее время показано наличие неопиоидных рецепторов p-эндорфина в иммунной, нервной и эндокринной системах организма [Hazum et al., 1979; Наволоцкая и др., 2004; Nekrasova et al., 2010]. Кроме того, известно, что Р-эндорфин локализован в репродуктивной системе [Lim et al., 1983; Wahlstrom et al., 1985; Okrasa et al., 2003]. Однако сих пор остается неясным, существуют ли неопиоидные рецепторы p-эндорфина на ранних стадиях развития эмбриона и если существуют, то какую роль они играют в доимплантационном развитии эмбрионов.

В репродуктивной системе также обнаружен иммуноглобулин G (IgG), представляющий собой один из основных белков плазмы крови [Oliphant et al., 1978]. Под действием протеаз в просвете яйцевода и в плаценте из IgG образуется пептид, представляющий собой фрагмент 364−377 тяжелой цепи IgG, подобный центральной части молекулы P-эндорфина [Julliard et al., 1980; Gandolfi, 1995]. Значение и функциональная роль этого пептида в репродуктивной системе в настоящее время не выявлена. Однако, известно, что пептид способен взаимодействовать только с неопиоидным рецептором p-эндорфина и для связывания достаточно последовательности 369−373 [Ковалицкая и др., 2010].

Таким образом, изучение с помощью коротких фрагментов IgG (Р-эндорфинподобных пептидов) роли неопиоидного рецептора P-эндорфина в течении доимплантационного эмбриогенеза млекопитающих, а также самого P-эндорфина представляет научный и практический интерес. Для исследования неопиоидной рецепции на ранних эмбрионах мыши был синтезирован фрагмент 369−373 тяжелой цепи IgG — пентарфин, и его циклическая форма, циклопентарфин.

Цель настоящей работы — исследование неопиоидной рецепции [3-эндорфина и фрагментов иммуноглобулина G в доимплантационном развитии эмбриона мыши в условиях культивирования in vitro. Основные задачи исследования:

1) Изучить влияние Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие 2-, 4-, и 8-клеточных эмбрионов мыши в условиях in vitro',.

2) Определить пути передачи внутриклеточного сигнала при действии пентарфина и циклопентарфина на 2- и 8-клеточные эмбрионы мыши;

3) Определить пути передачи внутриклеточного сигнала при действии (3-эндорфина на 2- и 8-клеточные эмбрионы мыши;

4) Исследовать действие циклопентарфина на выживаемость ранних эмбрионов при криоконсервации (витрификации);

5) Исследовать воздействие предварительной инкубации 8-клеточных эмбрионов мыши с циклопентарфином на их выживаемость при постимплантационном развитии.

Работа выполнена в лаборатории «Роста клеток и тканей» Института теоретической и экспериментальной биофизики РАН в соответствии с планом научно-исследовательских работ.

Объектом нашего исследования стали доимплантационные эмбрионы на стадии 2, 4 и 8 бластомеров, полученные от мышей стока SHK из вивария Института теоретической и экспериментальной биофизики РАН. Используемые в работе синтетические пептиды пентарфин и циклопентарфин были получены в Государственном научно-исследовательском институте особо чистых биопрепаратов (г. Санкт-Петербург).

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, изложения собственного экспериментального материала и его обсуждения, выводов и библиографического списка использованной литературы.

107 ВЫВОДЫ.

1) На 2-, 4- и 8-клеточных эмбрионах мыши локализованы неопиоидные рецепторы р-эндорфина;

2) Р-эндорфин, пентарфин и циклопентарфин увеличивают жизнеспособность эмбрионов, стимулируют деление бластомеров, способствуют образованию и «выклевыванию» зрелых бластоцист и уменьшают количество аномально развитых бластоцист в условиях in vitro;

3) Воздействие p-эндорфина на 2-клеточные эмбрионы осуществляется по инозитолфосфатному и аденилатциклазному путям через опиоидные и неопиоидные рецепторы соответственно, а на 8-клеточные эмбрионы — только по аденилатциклазному пути через неопиоидные рецепторы р-эндорфина;

4) Воздействие пентарфина и циклопентарфина на 2- и 8-клеточные эмбрионы осуществляется по аденилатциклазному пути через неопиоидные рецепторы р-эндорфина;

5) Предварительная инкубация 8-клеточных эмбрионов с циююпентарфином (ОД мкМ) повышает криорезистентность эмбрионов при витрификации;

6) Предварительная инкубация 8-клеточных эмбрионов с циклопентарфином (0,1 мкМ) позволяет увеличить количество рожденных мышей у самок-реципиентов при трансплантации.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Впервые открытая Хазумом в 1979 году способность бета-эндорфина взаимодействовать с неопиоидным рецептором дала сильный толчок к изучению неопиоидного действия опиоидных пептидов. Неопиоидные рецепторы были обнаружены и охарактеризлованы на различных клетках млекопитающих (нервные, иммунокомпетентные и пр.). Нами было обнаружено наличие неопиодных рецепторов бета-эндорфина на доимплантациорнных эмбрионах мыши и установлено, что (3-эндорфин и фрагменты иммуноглобулина G пентарфин и циклопентарфин стимулируют процессы клеточного деления ранних эмбрионов мыши, образование и выклевывание зрелых бластоцист in vitro. Циклопентарфин наиболее активен в качестве неспецифического фактора роста, повышающего жизнеспособность ранних эмбрионов мыши. В присутствии циклопентарфина в среде культивирования эмбрионы проходят стадии развития в те же сроки, что и в организме матери, т. е. происходит нормализация сроков развития. Выявленная нами способность Р-эндорфина и фрагментов иммуноглобулина G стимулировать процессы первичной дифференцировки у ранних эмбрионов мыши, образование зрелых бластоцист и выход их из оболочки оплодотворения дает право считать, что эти вещества играют роль неспецифических факторов роста в регуляции доимплантационного развития мыши. Оценивая роль Р-эндорфина, пентарфина и циклопентарфина в раннем эмбриональном развитии, необходимо отметить, что полученные данные прямо указывают на непосредственное участие этих эндогенных пептидов в • стимулировании раннего развития. По нашему мнению, применение циклопентарфина при культивировании доимплантационных эмбрионов позволит увеличить их жизнеспособность и подготовить эмбрионы к более успешной имплантации.

Результаты настоящей работы могут быть с успехом использованы на практике при культивировании ранних эмбрионов, криоконсервации и трансплантации эмбрионов для любых целей: сохранение ценных видов животных, сельскохозяйственных пород и главное, для решения проблемы бесплодия человека. С этих позиций проведенные исследования вносят существенный вклад в развитие биофизики и экспериментальной эмбриологии и мо1уг быть использованы на практике.

Впервые нами было показано не только биологический эффект р~ эндорфина, пентарфина и циклопентарфина на развитие ранних эмбрионов, но и также установлены основные компоненты сигнальной системы неопиоидного рецептора Р-эндорфина. В работе показано, что передача сигнала исследуемыми пептидами при активации неопиоидных рецепторов Р-эндорфина осуществляется через аденилатциклазную сигнальную систему при участии аденилатциклазы и высвыбождения ионов Са2+ из внутриклеточных депо.

Изучение неопиодного рецептора Р-эндорфина с помощью синтетических пептидов, фрагментов позволяет решить фундаментальную задачу, позволяя охарактеризовать неизвестный тип рецепторов Р-эндорфина и функции, которые он осуществляет, взаимодействуя с ним. Исследуемые пептиды пентарфин и циклопентарфин имеют высокое (примерно одинаковое) сродство к неопиоидному рецептору Р-эндорфина и поэтому любой из этих пептидов может быть использован в качестве специфического маркера для данного рецептора.

В настоящее время остается не ясным, является ли неопиоидный рецептор Р-эндорфина неизвестным до сих пор новым рецептором Р-эндорфина, или это уже известный рецептор, способный наряду с собственным эндогенным лигандом связывать р-эндорфин. Для ответа на этот вопрос необходимо проведение дальнейших исследований, направленных на изучение неопиоидного рецептора Р-эндорфина, его молекулярной структуры и с последующей возможностью его клонирования.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Awdeh Z.L., Williamson A.R., Askonas B.A. One cell-one immunoglobulin. Origin of limited heterogeneity of myeloma proteins // Biochem. J. — 1970. — Y. l 16(2). — P.241−8.
  2. Aplin J.D. Adhesion molecules in implantation // Rev.Reprod. —1997, — V.2. P.84−93.
  3. Apte R.N., Oppenheim J.J., Durum S.K. Beta-endorphin regulates interleukin 1 production and release by murine bone marrow macrophages // Int. Immunol. 1989. -V.l (5). -P.465−470.
  4. Artus J., Panthier J.J., Hadjantonakis A.K. A role for PDGF signaling in expansion of the extra-embryonic endoderm lineage of the mouse blastocyst // Development. 2010. — V.137(20). — P.3361−3372.
  5. Bernasconi S., Petraglia F., Iughetti L., Marcellini C., Lamborghini A., Facchinetti F., Genazzani A.R. Impaired beta-endorphin response to human corticotropin-releasing hormone in obese children // Acta. Endocrinology. — 1988.-V.l 19(1).-P.7−10.
  6. Berridge M.J., Downes C.P., Hanley M.R. Lithium amplifies agonist-dependent phosphatidylinositol responses in brain and salivary glands // Biochem. J. 1982. — V.206(3). -P.587−595.
  7. Biswas D., Jung E.M., Jeung E.B., Hyun S.H. Effects of vascular endothelial growth factor on porcine preimplantation embiyos produced by in vitro fertilization and somatic cell nuclear transfer // Theriogenology. 2011. — V.75(2). — P.256−267.
  8. Bloor D.J., Metcalfe A.D., Rutherford A. Expression of cell adhesion molecules during human preimplantation embryo development // Mol.Hum.Reprod. 2002. — V.8(3). — P.237−245.
  9. Bruce A.W., Zernicka-Goetz aM. Developmental control of the early mammalian embryo: competition mong heterogeneous cells that biases cell fate// Curr. Opin. Genet. Dev. -2010. V.20(5). -P.485−491.
  10. Burton A., Torres-Padilla M.E. Epigenetic reprogramming and development: a unique heterochromatin organization in the preimplantation mouse embryo // Brief. Funct. Genomics. 2010. — V.9(5−6). — P.444−454.
  11. Carr D.J. The role of endogenous opioids and their receptors in the immune system // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1991. — V. 198. -P.710−720.
  12. Chandrashekar V. and Bartke A. The influence of beta-endorphin on testicular endocrine function in adult rats // Biology of reproduction. — 1992. — V.47(l). — P. 1−5.
  13. Charlwood P.A., Utsumi S. Conformation changes and dissociation of Fc fragments of rabbit immunoglobulin G as a function of pH // Biochem J. — 1969. — V. l 12(3). -P.357−65.
  14. Chen H.F., Shew J.Y., Ho H.N., Hsu W.L., Yang Y.S. Expression of leukemia inhibitory factor and its receptor in preimplantation embryos // Fertil Steril. 1999. — V.72(4). — P.713−719.
  15. Cheng S.X., Okuda M., Hall A.E., Geibel J.P., Hebert S.C. Expression of calcium-sensing receptor in rat colonic epithelium: evidence for modulationof fluid secretion // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. — 2002. -283(1). -P.240−250.
  16. Chereshnev V.A., Gein S.V. Beta-endorphin as the endogenous regulator of immune processes // Ross. Fiziol. Zh. Im. I.M. Sechenova. 2009. -V.95(12). — P. 1279−1290.
  17. Chia C.M., Winston R.M., Handyside A.H. EGF, TGF-alpha and EGFR expression in human preimplantation embryos // Development. — 1995. -V. 121(2). -P.299−307.
  18. Chisholm J.C., Johnson M.H., Warren P.D., Fleming T.P., Pickering S.J. Developmental variability within and between mouse expanding blastocysts and their ICMs // J. Embryol. Exp. Morphol. 1985. — V.86. — P.311−336.
  19. Chou K.C. Low-frequency motions in protein molecules. Beta-sheet and betabarrel // Biophys. J. 1985. — V.48(2). — P.289−97.
  20. Chun J.T., Santella L. Roles of the actin-binding proteins in intracellular Ca2+ signaling // Acta. Physiol. 2009. — V. 195(1). -P.61−70.
  21. Clegg K.B., Piko L. Quantitative aspects of RNA synthesis and polyadenylation in 1-cell and 2-cell mouse embryos // J. Embryol. Exp. Morphol. 1983. — V.74. -P.169−82.
  22. Cuthbertson K.S., Whittingham D.G., Cobbold P.H. Free Ca2+ increases in exponential phases during mouse oocyte activation // Nature. 1981. -V.294(5843). — P.754−757.
  23. Cuthbertson K.S., Cobbold P.H. Phorbol ester and sperm activate mouse oocytes by inducing sustained oscillations in cell Ca2+ // Nature. — 1985. — V.316(6028). P.541−542.
  24. Dale B., Gualtieri R., Talevi R., Tosti E., Santella L., Elder K. Intercellular communication in the early human embryo // Mol. Reprod. Dev. — 1991. — V.29(l). — P.22−28.
  25. Dardik A., Schultz R.M. Blastocoel expansion in the preimplantation mouse embryo: stimulatory effect of TGF-alpha and EGF // Development. — 1991. -V.113(3). -P.919−30.
  26. Davidson E.H. How embryos work: a comparative view of diverse modes of cell fate specification //Development. 1990. -V. 108(3). -P.365−89.
  27. Dell’Aquila M.E., Casavola V., Reshkin S.J., Albrizio M., Guerra L., Maritato F., Minoia P. Effects of beta-endorphin and Naloxone on in vitro maturation of bovine oocytes // Mol. Reprod. Dev. 2002. — V.63. — P.210−22.
  28. Dhawan B.N., Cesselin F., Ragnubir R., Reisine T., Bradley P.B., Protoghese P. S., Hamon M. International Union of Pharmacology. XII. Classification of opioid receptors // Pharm. Rev. 1996. — V.48. — P.567−92.
  29. Dunglison G.F., Jane S.D., McCaul T.F., Chad J.E., Fleming T.P., Kaye P.L. Stimulation of endocytosis in mouse blastocysts by insulin: a quantitative morphological analysis // J. Reprod. Fertil. 1995. — V.105(l). — P. l 15−23.
  30. Dupont G., Heytens E., Leybaert L. Oscillatory Ca2+ dynamics and cell cycle resumption at fertilization in mammals: a modelling approach // Int. J. Dev. Biol. 2010. -V.54(4). — P.655−65.
  31. Eckenhoff J.E., Elder J.D., King B.D. N-allyl-normorphine in the treatment of morphine or demerol narcosis // Am. J. Med. Sci. — 1952. — V.223(2). -P.191−7.
  32. El-Haggar S., El-Ashmawy S., Attia A., Mostafa T., Roaiah M.M., Fayez A., Ghazi S., Zohdy W., Roshdy N. Beta-endorphin in serum and seminal plasma in infertile men // Asian J. Androl. 2006. — V.8(6). — P.709−12.
  33. Fagarasan M.O., Aiello F., Muegge K., Durum S., Axelrod J. Interleukin 1 induces beta-endorphin secretion via Fos and Jun in AtT-20 pituitary cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1990a. V.87(20). — P.7871−4.
  34. Faletti A.G., Mohn C., Farina M., Lomniczi A. and Rettri V. Interaction among beta-endorphin, nitric oxide and prostaglandins during ovulation in rats // Reproduction. 2003. — V.125. — P.469−477.
  35. Fields S.D., Hansen P.J., Ealy A.D. Fibroblast growth factor requirements for in vitro development of bovine embryos // Theriogenology. — 2011. —V. 74. — P.872−876.
  36. Forsberg G., Bednar I., Eneroth P., Sodersten P. Beta-endorphin acts on the reproductive tract of female rats to suppress sexual receptivity // Neurosci. Lett.- 1990.-V.115(l).-P.92−6.
  37. Freye E., Schnitzler M., Schenk G. Opioid-induced respiratory depression and analgesia may be mediated by different subreceptors // Pharm. Res. — 1991. -V. 8. — P. 196−9.
  38. Furshpan E.J., Potter D.D. Low-resistance junctions between cells in embryos and tissue culture // Curr. Top. Dev. Biol. -1968. -V.3. P.95−127.
  39. Gallagher S.K., Witkovsky P., Roux M.J., Low M.J., Otero-Corchon V., Hentges S.T., Vigh J. Beta-endorphin expression in the mouse retina // J. Comp. Neurol. 2010. — V.518(15). — P.3130−48.
  40. Galvao T.F., Matos K.C., Brum P.C., Negrao C.E., Luz P.L., Chagas A.C. Cardioprotection conferred by exercise training is blunted by blockade of the opioid system // Clinics. 2011. — V.66(l). — P. 151−7.
  41. Gandolfi F. Functions of proteins secreted by oviduct epithelial cells // Microsc. Res. Tech. 1995. — V.32(l). -P.l-12.
  42. Gein S.V., Gorshkova K.G., Tendryakova S.P. Regulation of interleukin-lbeta and interleukin-8 production by agonists of mu and delta opiate receptors in vitro // Neurosci. Behav. Physiol. 2009. — V.39(6). — P.591−5.
  43. Giedroc D.P., Puett D. Binding of a synthetic beta-endorphin peptide to calmodulin//Mol. Pharmacol. 1985. — V.28(6).-P.588−93.
  44. Gilman S.C., Schwartz J.M., Milner R.J., Bloom F.E., Feldman J.D. pendorphin enhances lymphocyte proliferative responses // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. — V.79. -P.4226−30.
  45. Gilman A.G. The Albert Lasker Medical Awards. G proteins and regulation of adenylat cyclase // JAMA. 1989. — V.262(13). -P.1819−25.
  46. Gilman A.G. Transmembrane signaling, G proteins, and adenylat cyclase // Harvey Lect. 1990. — V.85. — P.153−72.
  47. Gilmore W., Weiner L.P. The opioid specificity of beta-endorphin enhancement of murine lymphocyte proliferation // Immunopharmacology. — 1989. — V.17. — P.19−30.
  48. Giordano A.L., Nock B., Cicero T.J. Antagonist-induced up-regulation of the putative epsilon opioid receptor in rat brain: comparison with kappa, mu and delta opioid receptors // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1990. — V.255. — P.536−40.
  49. Gonzalez J.P., Brogden R.N. Nalaxone. A review of its pharmacodynamic and pharmacokinetic properties and therapeutic efficacy in the management of opioid dependence //Drugs. 1988. — V.35(3). — P. 192−213.
  50. Gulyas B.J. A reexamination of cleavage patterns in eutherian mammalian eggs: rotation of blastomere pairs during second cleavage in the rabbit // J. Exp. Zool. 1975. — V. 193(2). -P.235−48.
  51. Gumbiner B. Cadherins: a family of Ca2±dependent adhesion molecules // Trends. Biochem. Sci. 1988. — V.13(3). -P.75−6.
  52. Hansson U.B. Correlation between amount of aggregates formed on freezing of immunoglobulin G and protein concentration // Acta. Chem. Scand. -1969. V.23(5). — P. 1828−9.
  53. Harvey M.B., Leco K.J., Arcellana-Panlilio M.Y., Zhang X., Edwards D.R. and Schultz G.A. Roles of growth factors during periimplantation development // Molecular Human Reproduction. — 1995. — V.10. — P.712−8.
  54. Hazum E., Chang K.J., Cuatercasas P. Specific nonopiate receptors for (3-endorphin // Science. 1979. — V.205. — P.1033−35.
  55. Heagy W., Shipp M.A., Finberg R.W. Opioid receptor agonists and Ca2+ modulation in human B cell lines // J. Immunol. 1992. — V. 149(12). -P.4074−81.
  56. Heijnen C.J., Croiset G., Zijlstra J., Ballieux R.E. Modulation of lymphocyte function by endorphins // Ann. N.Y. Acad. Sci. -1987. V.496. — P.161−5.
  57. Hildebrand A., Schweigerer L., Teschemacher H. Characterization and identification of heparin-induced nonopioid-binding sites for p-endorphin in human plasma // J. Biological. Chem. 1988. — V.263. — P.2436−41.
  58. Houck J.C., Kimball C., Chang C. Placental p-endorphin-like peptides // Science. 1980. — V.207. — P.78−9.
  59. Jacquet Y.F., Lajtha A. The periaqueductal gray: site of morphine analgesia and tolerance as shown by 2-way cross tolerance between systemic and intracerebral injections // Brain. Res. 1976a. — V.103. — P.501−13.
  60. Jacquet Y.F., Carol M., Russell I.S. Morphine-induced rotation in naive, nonlesioned rats // Science. 1976b. — V.192. — P.261−3.
  61. Jacquet Y.F., Marks N. The C-fragment of beta-lipotropin: an endogenous neuroleptic or antipsychotogen? // Science. 1976c. — V.194. — P.632−5.
  62. Julliard J.H., Shibasaki T., Ling N., Guillemin R. High-molecular-weight immunoreactive beta-endorphin in extracts of human placenta is a fragment of immunoglobulin G // Science. 1980. — V.208. — P.183−5.
  63. Johnson R.L., Deutsch H.F. Preparation and studies of myeloma Fab subtractions // Immunochemistiy. 1970. — V.7(2). — P.207−15.
  64. Kalyuzhny A.E., Hensleigh H.C., Arvidsson U., Robert E. Immunocytochemical localization of p-opioid receptors in follicular cells and preimplantation mouse embryos // Anatomy and Embryology. 1997. -V. 195(5). -P.451−5.
  65. Kane M.T., Morgan P.M., Coonan C. Peptide growth factors and preimplantation development // Hum. Reprod. Update. 1997. — V.3(2). — P.137−57.
  66. Harvey M.B., Kaye P.L. Mediation of the actions of insulin and insulin-like growth factor-1 on preimplantation mouse embryos in vitro // Mol. Reprod. Dev. 1992. — V.33(3). — P.270−5.
  67. Kelamangalath L., Dravid S.M., George J., Aldrich J.V., Murray T.F. Kappa-opioid receptor inhibition of calcium oscillations in spinal cord neurons // Mol. Pharmacol. 2011. — V.79(4). — P. 768−75.
  68. Kelly S.J., Mulnard J.G., Graham C.F. Cell division and cell allocation in -early mouse development // J. Embryol. Exp. Morphol. — 1978. V.48. -P.37−51.
  69. Kidder G.M. The genetic program for preimplantation development // Dev. Genet. 1992. — V.13(5). — P.319−25.
  70. King A.C. and Cuatrecasas P. Peptide hormone-induced receptor mobility, aggregation, and internalization // New England J Medicine. — 1981. V.305. -P.77−88.
  71. Knotts L.K. and Glass J.D. Effects of photoperiod, beta-endorphin, and naloxone on in vitro secretion of testosterone in white-footed mouse (Peromyscus leucopus) testes // Biology of reproduction, 1988. — V.39(l). — P.205−12.
  72. Korotkoiychko V.P. Immunoglobulin G peculiar to cancer // Ukr. Biokhim. Zh. -1975. V.47(5). -P.593−603.
  73. Krieger D.T. Placenta as a source of 'brain' and 'pituitary' hormones // Biol. Reprod. 1982. — V.26(l). — P.55−71.
  74. Kovalitskaia Iu.A., Navolotskaia E.V. Synthetic peptide immunorphin as an instrument for studying nonopioid beta-endorphin receptor // Bioorg. Chem. — 2010. — V.36(l). — P.47−55.
  75. Lambert D.G. Methods in molecular biology: Calcium signaling protocols // Humana Press. Totowa, New Jersey. — 2006. — 359 pp.
  76. Larson R.C., Ignotz G.G. and Currie W.B. Platelet derived growth factor (PDGF) stimulates development of bovine embryos during the fourth cell cycle // Development. 1992. — V. l 15(3). — P.821−6.
  77. Lessey B.A. Adhesion molecules and implantation // J. Reprod. Immunol. — 2002. — V.55(l-2). — P.101−12.
  78. Li CH. Beta-endorphin // Cell. 1982. — V.31(3). -P.504−5.
  79. Li C.H., Chang D., Doneen B.A. Isolation, characterization and opiate activity of p-endorphin from the human pituitary glands // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1976a. -V.72. -P.1542−7.
  80. Li C.H., Lemare S., Yamashiro D-, Doneen D.A. The synthesis and opiate activity of p-endorphin // Biochem Biophys Res Commun. 1976b. — V.71. -P. 19−25.
  81. Li C.H., Yamashiro D., Tseng L.F., Loh H.H. Beta-endorphin: synthesis and biological activity of shortened peptide chains // Int. J. Pept. Protein Res. — 1978.-Y.il.-P. 54−8.
  82. Li Y.M., Zhuang L.X., Zhang D.S., Luo Y.F. Effect of catgut implantation at acupoint on gonadal hormone and beta-endorphin in patients of climacteric syndrome // Zhongguo Zhen. Jiu. 2009. — V.29(l 1). — P.865−7.
  83. Lighten A.D., Hardy K., Winston R.M., Moore GJE. Expression of mRNA for the insulin-like growth factors and their receptors in human preimplantation embryos // Mol. Reprod. Dev. 1997. — V.47(2). — P.134−9.
  84. Lim A.T., Lolait S., Barlow J.W. et al. Immunoreactive beta-endorphin in sheep ovary //Nature. 1983. — V.303. -P.709−11.
  85. Lin S.C., Wani M.A., Whitsett J.A., Wells J.M. Klf5 regulates lineage formation in the pre-implantation mouse embryo // Development. — 2010. -V. 137(23). -P.3953−63.
  86. Ling N. And Guillemin R. Morphinomimetic activity of synthetic fragments of p-lipotropin and analogs // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1976. — V.73. -P.3308−10.
  87. Logan J.E. and William E. Roudebush Platelet-Activating Factor Increases Intracellular Calcium Levels In Preimplantation Stage Embryos // Early Pregnancy. 2000. — V.4(l). — P.30−8.
  88. Loh H.H., Tseng L.F., Wie E., Li C.H. p-Endorphin is a potent analgesic agent // Proc. Nat Acad. Sci. USA. 1976. — V.73. — P.2895−8.
  89. Lolait S.J., Lim A.T., Toh B.H., Funder J.W. Immunoreactive beta-endorphin in a subpopulation of mouse spleen macrophages // J. Clin. Invest — 1984. — V.73. — P.277−80.
  90. Lord J.A.H., Waterfield A.A., Hughes J., Kosterlitz H.W. Endogenous opioid peptides: Multiple agonists and receptors // Nature. 1977. — V.267. — P.495−9.
  91. Lovegren E.S., Ling N., Puett D. Interaction of alfa-N-acetyl-beta-endorphin and calmodulin // J. Protein Chem. 1988. — V.7. — P.35−47.
  92. Mallery D.L., McEwan W.A., Bidgood S.R., Towers G.J., Johnson C.M., James L.C. Antibodies mediate intracellular immunity through tripartite motif-containing 21 (TRIM21) // Proc. Natl. Acad. Sei. 2010. — V.10. -P.101−4.
  93. Malkova N.V., Krasnova S.B., Navolotskaya E.V., Zargarova T.A., Prasolov V.S. Effect of beta-endorphin and beta-endorphin-like peptide immunorphin on the growth of human leukemic cells in vitro // Russ. J. Immunol. — 2002. -V.3. -P.239−44.
  94. Mariani R.K., Mello C.F., Rosa M.M., Ceretta A.P., Camera K., Rubin M.A. Effect of naloxone and morphine on arcaine-induced state-dependent memory in rats // Psychopharmacology. 2011. — V.25 (3). — P. 306−13.
  95. Martin W.R., Eades C.G., Thompson J.A., Huppier R.E., Gilbert P.E. The effects of morphine and nalorphine like drugs in the nondependent and morphin depended chronic spinal dog // J. Pharmacol. Exp. Hier. — 1976. -V.197. — P.517−32.
  96. McCain H.W., Lamster I.B., Bozzone J.M., Grbic J.T. ?-Endorphin modulates human immune activity via non-opiate receptor mechanisms // Life Sei. 1982. — V.31. -P.1619−24.
  97. Millan M.J., Czlonkowski A., Lipkowski A., Herz A. Kappa-opioid receptor-mediated antinociception in the rat. II. Supraspinal in addition to spinal sites of action // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1989. — V.251(1). — P.342−50.
  98. Misawa H., Ueda H., Satoh M. Kappa-opioid agonist inhibits phospholipase C, possibly via an inhibition of G-protein activity // Neurosci. Lett. 1990. -V.l 12(2−3). -P.324−7.
  99. Montminy M. Transcriptional regulation by cyclic AMP I I Annu. Rev. Biochem. 1997. — V.66. — P.807−22.
  100. Morita Y., Tsutsumi O., Taketani Y. In vitro treatment of embryos with epidermal growth factor improves viability and increases the implantation rate of blastocysts transferred to recipient mice // Am. J. Obstet. Gynecol. — 1994. — V.171(2). -P.406−9.
  101. Nakanishi S., Inoue A., Kita T., Nakamura M., Chang A.C., Cohen S.N., Numa S. Nucleotide sequence of cloned cDNA for bovine corticotropin-beta-lipotropin precursor // Nature. 1979. — Y.278. — P.423−7.
  102. Navolotskaya E.V., Zargarova T.A., Malkova N.V., Krasnova S.B., Zav’yalov V.P., Lipkin V.M. Synthetic peptide SLTCLVKGFY competes with Pendorphin for naloxone-insensitive binding sites on rat brain membranes // Peptides. 2002. — V.23. — P. l 115−19.
  103. Navolotskaya E.V., Malkova N.V., Zargarova T.A., Lepikhova T.N., Zav’yalov V.P., Lipkin V.M. Synthetic beta-endorphin-like peptide immunorphin binds to non-opioid receptors for p-endorphin on T lymphocytes // Peptides. 2001. — V.22. — P.2009−13.
  104. Nekrasova YN, Sadovnikov VB, Zolotarev YA, Navolotskaya EV. Binding of synthetic peptide TPLVTLFK to nonopioid beta-endorphin receptor on rat brain membranes // J. Pept. Sci. 2010. — V.16(6). — P.263−8.
  105. Nichols J., Davidson D., Taga T., Yoshida K., Chambers I., Smith A. Complementary tissue-specific expression of LDF and LIF-receptor mRNAs in early mouse embryogenesis // Mech. Dev. — 1996. — V.57(2). P. 123−31.f
  106. O’Brien C.P., Testa T., Ternes J., Greenstein R. Conditioning effects of narcotics in humans // NIDA Res. Monogr. 1978. — V. l 8. — P.67−71.
  107. Owen D.L., Morley J.S., Ensor D.M., Miles J.B. The C-terminal tetrapeptide of p-endorphin (MPF) enhances lymphocyte proliferative responses // Neuropeptides. 1998. — V.32. -P.131−9.
  108. Panerai A.E., Sacerdote P. Beta-endorphin in the immune system: a role at last? // Immunol. Today. 1997. — V.18(7). — P.317−9.
  109. Paria B.C., Dey S.K. Preimplantation embryo developmemt in vitro: cooperative interactions among embryos and role of growth factors // Proc. Natl. Acad. Sci., USA. 1990. — V.87(12). -P.4756−69.
  110. Periyasamy S., Hoss W. Kappa opioid receptors stimulate phosphoinositide turnover in rat brain // Life Sci. -1990. V.47(3). — P.219−25.
  111. Peters J.M., Tsark E.C., Wiley L.M. Radiosensitive target in mouse embryo chimera assay: implications that the target involves autocrine growth factor function// School of Medicine, USA. 1996. — V. 145(6). -P.722−9.
  112. Pohl J., Zeitschr H. Oppressing action morphine and heroin on the respiratory center // Ges. Exp. Med. 1915. — V.17. — P.370−8.
  113. Porter R.R. Structural studies of immunoglobulins // Science. 1973. -V. 180(87). -P.713−6.
  114. Rappolee D.A., Basilico C., Patel Y. Werb Z. Expression and function of FGF-4 in periimplantation development in mouse embryos // Development. — 1994. V. 120(8). — P.2259−69.
  115. Ricci V., Russolo M. Production and importance of immunoglobulins G, A, M in lymphoid tissue of the tonsil // Arch. Klein. Exp. Ohren. Nasen. Kehlkopfheilkd. 1970. — V.196(2). -P.97−102.
  116. Salonen M.J., Vaheri A., Koskiniemi M. IgM and avidity of IgG antibodies in primary HHV-6 infections // Scand. J. Infect. Dis. 2008. — V.40(5). — P.420−3.
  117. Sambury S., Chowdhury P., Saha A. Studies on cryoprecipitation: covalent structure of a human IgG cryoglobulin and its gelation characteristics // Immunochemistry. 1974. — V. l 1(11). — P.711−8.
  118. Sawada H., Hoshi M., Someno Т., Suzuki R., Yamazaki K. Inhibition of mouse blastocyst hatching by subsite-specific trypsin inhibitors, peptidyl argininals // Development. Growth & Differentiation. 1992. — V.34 (3). — P.357−62.
  119. P. и Помыткин И. Интерлейкин-1 альфа эпидермальный цитокин, регулятор процессов формирования и функционирования кожи // Эстетическая медицина. — 2010. — V.2. — Р.115−22.
  120. Schweigerer L., Bhakdi S., Teschemacher H. Specific non-opiate binding sites for human P-endorphin on the terminal complex of human complement // Nature. 1982. — V.296. — P.572−4.
  121. Schweigerer L., Schmidt W., Teschemacher H., Gramsch C. P-endorphin: surface binding and internalization in thymoma cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. — V.82. — P.5751−5.
  122. Seung-uon Shin, Friden P., Moran M., Morrison S.L. Functional properties of antibody insulin-like growth factor fusion protein // The Journal of biological chemistry. 1994. — V.269(7). -P.4979−85.
  123. Shahabi N.A., Linner K.M., Sharp B.M. Murine splenocytes express a naloxone-insensitive binding site for P-endorphin // Endocrinol. — 1990a. — V. l 26.-P.1442−8.
  124. N.A., Peterson P.K., Sharp B. р-endorphin binding to naloxone-insensitive sites on a human mononuclear cell line (U937): effects of cations and guanosine triphosphate // Endocrinol. 1990b. -V. 126. — P. 006−15.
  125. Shi C.Z., Collins H.W., Buettger C.W., Garside W.T., Matschinsky F.M., Heyner S. Insulin family growth factors have specific effects on protein synthesis in preimplantation mouse embryos // Mol. Reprod. Dev. 1994. — V.37(4). — P.398−406.
  126. Shu-Dong T., Phillips D.M., Halmi N., Krieger D. and Bardin C.W. Beta-endorphin is present in the male reproductive tract of five species // Biology of reproduction. 1982. — V.27(3). -P.755−64.
  127. Simantov R. and Snyder S.H. Morphine-like peptides in mammalian brain: Isolation, structure elucidation, and interactions with the opiate receptor // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1976. — V.73. — P.2515−9.
  128. Skrzypczak J., Mikolajczyk M., Szymanowski K. Endometrial receptivity: expression of alpha3betal, alpha4betal and alpha5betal endometrial integrins in women with impaired fertility // Reprod. Biol. 2001. — V. l (2). — P.85−94.
  129. Smith E.M. and Blalock J.E. Human lymphocyte production of ACTH and endorphin-like substances: association with leukocyte interferon // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1981. — V.78. -P.7530- 4.
  130. Smith L.C., Wilmut I., West J.D. Control of first cleavage in single-cell reconstituted mouse embryos // J. Reprod. Fertil. 1990. — V.88(2). — P.655−63.
  131. Smotrich D.B., Stillman R.J., Widra E.A., Gindoff P.R., Kaplan P., Graubert M., Johnson K.E. Immunocytochemical localization of growth factors and their receptors in human pre-embryos and Fallopian tubes // Hum. Reprod. -1996. -V. 11(1). P.184−90.
  132. Smyth D.S., Utsumi S. Structure at the hinge region in rabbit immunoglobulin-G // Nature. 1967. — V.216(5113). — P.332−5.
  133. Solomon S. POMC-derived peptides and their biological action // Ann. NY Acad. Sci. 1999. — V.885. — P.22−40.
  134. Stachecki J.J., Armant D.R. Regulation of blastocoele formation by intracellular calcium release is mediated through a phospholipase Cdependent pathway in mice // Biology of Reproduction. 1996a. — V.55. — P. 1292−8.
  135. Taddio A., Shah V., Shah P., Katz J. Beta-endorphin concentration after administration of sucrose in preterm infants // Arch. Pediatr. Adolesc. Med. -2003. — V.157(ll). — P.1071−4.
  136. Takeichi M. Cadherin cell adhesion receptors as a morphogenetic regulator // Science. 1991. — V.251(5000). -P.1451−5.
  137. Tamada H., Das S.K., Andrews G.K., Dey S.K. Cell-type-specific expression of transforming growth factor-alpha in the mouse uterus during the periimplantation period // Biol.Reprod. 1991. — V.45(2). — P.365−72.
  138. Teruel M., Smith R., Catalano R. Growth factors and embryo development // Biocell. 2000. — V.24. — P.107−22.
  139. Tseng L.F., Loh H.H., Li C.H. (3-Endorphin as a potent analgesic by intravenous injection // Nature. 1976b. — V.263. — P.239−40.
  140. Tseng L.F., Menon M.K., Loh H.H. Comparative actions of monomethoxyamphetamines on the release and uptake of biogenic amines in brain tissue // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1976c. — V.197. — P.263−71.
  141. Tseng L.F., Loh H.H., Li C.H. P-Endorphin: cross tolerance to and cross physical dependence on morphine // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1976a. -V.73.-P.4187−9.
  142. Tseng L.F. Evidence for epsilon-opioid receptor-mediated P-endorphin-induced analgesia // Trends. Pharmacol. Sci. 2001. — V.22. — P.623−30.
  143. Tuchmann-Duplessis F. Teratogenic screening methods and their application to contraceptive products // Acta. Endocrinologica. — 1972. — V.77(l). — P. S203−23.
  144. Vaccarino A.L., Olson G.A., Olson R.D., Kastin A J. Endogenous opiates // Peptides. 1999. -V.20. — P.1527−74.
  145. Van Der Bergh P., Rozing J., Nagelkerken L. Identification of two moieties of P-endorphin with opposing effects on rat T-cell proliferation // Immunol. — 1993.-V. 79.-P. 18−23.
  146. Van Der Bergh P., Rozing J., Nagelkerken L. Two opposing modes of action of P-endorphin on lymphocyte function // Immunol. 1991. — V.72. — P.537−43.
  147. Velazquez M.A., Hermann D., Kues W.A., Niemann H. Increased apoptosis in bovine blastocysts exposed to high levels of IGF 1 is not associated with downregulation of the IGF1 receptor // Reproduction. 2011. — V. 141(1). -P.91−103.
  148. Wahlstrom T., Laatikainen T., Salminen K. Immunoreactive beta-endorphin is demonstrable in the secretory but not in the proliferative endometrium // Life Sci. 1985. — V.36. — P.987−90.
  149. Wai-Sum C. The effect of beta-endorphin on rat oocyte maturation in vitro // Mol. cell endocrinology. 1990. — V.68. — P. 181−5.
  150. Walker C.G., Meier S., Littlejohn M.D., Lehnert K., Roche J.R., Mitchell M.D. Modulation of the maternal immune system by the pre-implantation embryo // BMC Genomics. 2010. — V. 11. P.474−5.
  151. Webb T., Goodman H.C. The structure and function of immunoglobulins // Mod. Trends. Immunol. 1967. — V.2. — P. 151−87.
  152. Werb Z. Expression of EGF and TGF-alpha genes in early mammalian development // Mol. Reprod. Dev. 1990. — V.27(l). — P.10−5.
  153. Wood S.A., Kaye P.L. Effect of epidermal growth factor on preimplantation mouse embryos // Reprod. Fertil. 1989. — V.85(2). — P.575−82.
  154. Woods J.A., Shahabi N.A., Sharp B.M. Characterization of a naloxone-insensitive p-endorphin receptor on murine peritoneal macrophages // Life Sci. 1997. — V.78. — P.573−86.
  155. Wrobel M. Acquisition and expression of ethanol-induced conditioned place preference in mice is inhibited by naloxone // Pharmacol. Rep. — 2011. -V.63(l).- P.79−85.
  156. Wu C.S., Lee N.M., Loh H.H. Yang J.T. Li C.H. р-Endorphin: formation of alpha-helix in lipid solutions // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. — V.76. -P.3656−9.
  157. Yoshida S. Effect of basic fibroblast growth factor on the development of mouse preimplantation embryos // Development 1996. — V.48(3). — P. 1769.
  158. Zheng L., Paik W.Y., Cesnjaj M., Balla Т., Tomic M., Catt К J., Stojilkovic S.S. Effects of the phospholipase-C inhibitor, U73122, on signaling and secretion in pituitary gonadotrophs // Endocrinology. 1995. — V.136(3). -P.1079−88.
  159. JI.В. Основы общей эмбриологии. М.: Высш. шк., 2005. -367с.
  160. С. Биология развития. М.: «Мир», 1993. — Т.З. — 352с.
  161. А.П. Раннее развитие млекопитающих. М.: Наука, 1988. — 341 с.
  162. Е.А. Регуляторные механизмы доимплантационного морфогенеза мыши // Биополимеры и клетка. — 1997. — Т. 13(2). — С. 9399.
  163. В.П., Долгачева Л. П. Внутриклеточная сигнализация. Пущино. «Аналитическая микроскопия». — 2003. — 84с.
  164. О.Б., Козлова М. Б., Кондракова Е. С. и др. // Журн. эволюц. биохимии и физиологии. — 1985. — Т.21. С.511−5.
  165. А.Е., Платонов Е. С., Миронова О. В., Сухих Г. Т. Влияние опиоидов на развитие доимплантационных мышиных зародышей // Бюл. эксп. биол. мед. 1989. — Т. 108. — С.622−4.
  166. Ю.А., Наволоцкая Е. В. Синтетический пептид иммунорфин как инструмент исследования неопиоидного рецептора {3-эндорфина // Российский журнал биоорганической химии. — 2010. — Т.36(1). — С.40−48.
  167. Е.В., Ковалицкая Ю. А., Золотарев Ю. А. Выявление и характеристика неопиоидных рецепторов (3-эндорфина коры надпочечников крысы // Биохимия. 2004. — Т.69(8). — С.1071−78.
  168. Студеникина Т. М, Слука Б, А. Молекулы клеточной адгезии и их роль в процессе оплодотворения у человека // Медицинский журнал. 2005. -№ 4. — С.7−10.
  169. В.А. Мембранные рецепторы и внутриклеточный кальций // Соросовский образовательный журнал. 2001. — Т.7(5). — С. 10−5.
  170. Д.М., Шилдс Д. Молекулярная биология клетки. М.:"Бином". -2003.-268с.
  171. Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. шк. — 1990. — 352с.1. БЛАГОДАРНОСТИ
  172. Выражаю большую благодарность своим научным руководителям к.ф.-м.н. Давыдовой Г. А. и д.м.н. Гаврилюку Б. К. за их терпение, поддержку, советы и неоценимую помощь в работе над диссертацией.
  173. Искренне благодарен Сахаровой Н. Ю. за обучение и обсуждение проблем эмбриологии млекопитающих.
  174. Выражаю большую благодарность сотрудникам института биофизики клетки РАН Сергеевич JI.A. и Карнауховой H.A. за помощь в проведении исследований по микрофлуоресцентному анализу внутриклеточного кальция у ранних эмбрионов мыши.
  175. Особенно признателен Селезневой И. И., Акатову B.C., Шишовой Н. В., Гаховой Э. Н. за поддержку, участие и содействие при выполнении данной работы.
  176. Выражаю искреннюю благодарность сотрудникам НЛП «Питомник лабораторных животных» ФИБХ РАН Овсепяну A.A. и Телегину Г. Б. за обучение и помощь в проведении криоконсервации и трансплантации ранних эмбрионов мыши.
  177. Выражаю искреннюю благодарность моим родным и близким за поддержку, советы и помощь во время выполнения работы и написания диссертации.1
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!