Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Изменчивость и структура популяций остролодочника ханкайского Oxytropis chankaensis jurtz

Диссертация: Изменчивость и структура популяций остролодочника ханкайского Oxytropis chankaensis jurtz
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Многие редкие и эндемичные виды в настоящее время находятся под угрозой полного исчезновения из-за нарушения или уничтожения их естественных мест обитания, главным образом, в результате человеческой деятельности. Численность природных популяций сокращается, в большинстве случаев популяции сохраняются в небольших изолированных локальностях. Для таких малых популяций очень высок риск вымирания… Читать ещё >

Изменчивость и структура популяций остролодочника ханкайского Oxytropis chankaensis jurtz (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Остролодочник ханкайский Oxytropis chankaensis Jurtz. как объект исследования
      • 1. 1. 1. Эколого-биологические особенности представителей рода Oxytropis
      • 1. 1. 2. Систематическое положение, распространение, вопросы охраны О. chankaensis
      • 1. 1. 3. Биологическая характеристика и практическое значение О. chankaensis
    • 1. 2. Изучение изменчивости в природных популяциях растений
      • 1. 2. 1. Анализ изменчивости морфологических признаков
      • 1. 2. 2. Молекулярные маркеры для исследования генетической изменчивости
      • 1. 2. 3. Уровень генетического разнообразия в популяциях редких видов растений
      • 1. 2. 4. Аллозимная изменчивость полиплоидов
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Материалы
    • 2. 2. Методы
    • 2. 3. Статистическая обработка.&bdquo
  • Глава 3. Биоморфологическая характеристика вида
    • 3. 1. Биоморфология и онтогенез О. chankaensis
    • 3. 2. Возрастная структура и численность популяций
    • 3. 3. Репродуктивная биология О. chankaensis
  • Глава 4. Изменчивость морфологических признаков О. chankaensis
    • 4. 1. Оценка параметров морфологических признаков
    • 4. 2. Дисперсионный анализ признаков О. chankaensis
    • 4. 3. Многомерный анализ морфологической изменчивости
  • Глава 5. Аллозимный полиморфизм популяций О. chankaensis
    • 5. 1. Описание ферментных систем и определение типа полиплоидии
    • 5. 2. Частоты аллелей, оценка равновесия и показатели полиморфизма в популяциях
    • 5. 3. Подразделенность и дифференциация популяций О. chankaensis

Эндемичные виды растений часто характеризуются узкой специализацией, приспособленностью к строго определенным условиям существования, и, как следствие, прерывистым распространением даже в пределах основного ареала. Такие эндемики составляют наиболее уязвимую часть региональных флоризменение биотопов под влиянием человека приводит к еще большему сокращению их ареала (Горчаковский, Зуева, 1984, 1993; Crawford et al., 2001; Luijten, 2001). Для видов, существующих в форме малых изолированных популяций, показано снижение генетического разнообразия, усиление негативных последствий генетического дрейфа и инбридинга, возрастание угрозы полного исчезновения фрагментированных популяций (Nei, 1973; Сулей, 1983; Godt, Hamrick, 1993; Luijten, 2001). Проблема малых популяций растений, выяснение механизмов их существования в последнее время приобретает большое значение. Подобные исследования необходимы, особенно в связи с тем, что усиливающееся антропогенное воздействие приводит к раздроблению и сокращению ареалов ранее широко распространенных видов растений (Журавлев и др., 1999; Lienert et al., 2002), так что в недалеком будущем обширные с высоким обилием популяции многих видов могут перейти в категорию малых популяций. С другой стороны, изучение малых популяций эндемичных растений необходимо в практических целях для организации их мониторинга, разработки мер по охране вида.

Остролодочник ханкайский Oxytropis chankaensis Jurtz. — травянистый многолетник из сем. Fabaceae, редкий эндемичный вид, рекомендованный к охране на Дальнем Востоке России (Харкевич, Качура, 1981) и включенный в Красную книгу Приморского края (Перечень., 2002). Характеризуется узкой экологической приуроченностью к открытым пескам, встречается только на песчаных косах и отмелях западного побережья оз. Ханка и о-ве Сосновом (Приморье). Цитологическими методами установлено, что вид является тетраплоидом с 2п = 32 (Гурзенков, 1969; Жукова, 1983; Гурзенков, Павлова, 1984). О. chankaensis — высокодекоративное растение, неотъемлемый компонент уникального растительного сообщества (Крестов, Верхолат, 2003). О. chankaensis представляет интерес как потенциальный источник лекарственных средств: эксперименты по изучению биохимического состава показали наличие флавоноидов (Павлова, Уланова, 1971), все части растения О. chankaensis используют в составе различных лекарственных препаратов в «Центре тибетской медицины», г. Владивосток. Другие виды рода Oxytropis DC. также широко используют в тибетской медицине как кровоостанавливающее, сердечно-сосудистое и жаропонижающее средство, при инфекционных заболеваниях и интоксикациях (Шретер,.

1975). Для близкого вида О. охурЪ. у11а показано наличие кумаринов, проявляющих противоопухолевую активность в эксперименте (Цетлин и др., 1965). Из надземной части О. охуркуИа получен экстракт, содержащий биологически активные флавоноидные соединения, на основе которого разработан препарат «Оксофил» для лечения ринитов, обладающий противогипоксическим, анальгезирующим и противовоспалительным действием, а также способствующий восстановлению пораженных тканей (Кабишев, Саканян, 2002).

В последнее время популяции О. скапкаетк испытывают нарастающие антропогенные воздействия почти по всему ареалу (строительство дорог, выпас скота, рекреация), приводящие к резкому снижению численности особей. Разрушение биотопов в результате человеческой деятельности может привести к дальнейшей фрагментации ареала и исчезновению отдельных популяций, численность которых достигает опасно низкого уровня. Для сохранения генофонда вида особенно важно определение уровня генетической изменчивости. Вместе с тем, для правильного истолкования генетической информации и обеспечения восстановления численности популяций необходим комплексный подход, вовлечение в анализ данных о биологии и жизненной стратегии вида, демографической структуре популяций и изменчивости количественных признаков. Подобный комплексный подход был применен в настоящей работе. Следует отметить, что в случае с О. скапкает1 $ оценка полиморфизма имела свои особенности. Для полиплоидного вида корректная оценка уровня генетической изменчивости невозможна, если неизвестен тип полиплоидии (алло-или автополиплоидия). Определение типа полиплоидии имело решающее значение для описания генофонда О. сИапкает18 и разработки рекомендаций по сохранению вида.

Данный вид обладает рядом особенностей, привлекательных для исследования с позиций фундаментальной науки. В случае с о. ханкайским предоставляется возможность выяснить, как протекают различные эволюционные процессы в малых изолированных популяциях — в ненарушенных местообитаниях и в условиях антропогенного пресса. Кроме того, О. скапкает18 может быть использован как модельная система для выяснения генетических последствий полиплоидии в природных популяциях. Полученные данные могут послужить научной основой для разработки стратегии сохранения и восстановления генофонда вида и внести определенный вклад в представление о механизмах поддержания генетического разнообразия у редких видов.

Все это определяет актуальность исследования данного вида.

Цель настоящей работы заключалась в исследовании популяционно-генетической структуры и внутривидовой дифференциации редкого эндемичного тетраплоидного вида остролодочника ханкайского на основе изучения морфологической и генетической изменчивости.

Были поставлены следующие задачи:

1. Изучить особенности онтогенеза, возрастной структуры популяций и репродуктивной биологии вида, охарактеризовать состояние популяций.

2. Оценить уровень изменчивости признаков вегетативной и генеративной сферы растения и степень внутривидовой дифференциации по морфологическим признакам.

3. Установить тип полиплоидии данного вида на основе электрофоретического анализа изоферментов, с учетом этого определить параметры генетического полиморфизма.

4. Разработать рекомендации для программы сохранения и восстановления природных популяций остролодочника ханкайского.

Работа выполнена в Лаборатории биотехнологии Биолого-почвенного института ДВО РАН под руководством академика Ю. Н. Журавлева, в рамках плановой тематики лаборатории. Работа была частично поддержана грантом ДВО РАН «Молекулярные и эколого-физиологические маркёры в популяционно-генетических исследованиях редких видов растений Дальнего Востока» .

Основные результаты работы получены автором лично.

Автор выражает искреннюю признательность и благодарность своему руководителю академику Ю. Н. Журавлеву и сотрудникам БПИ ДВО РАН, при участии которых были проведены следующие исследования: изучение морфологии пыльцы и завязей проведено совместно с м.н.с. лаб. биотехнологии О. В. Наконечной и н.с. лаб. биотехнологии Т. Ю. Горпенченкоизучение влияния различных режимов долговременного хранения на жизнеспособность семян проведено совместно с ст.н.с. лаб. биотехнологии Н. М. Воронковойстатистический анализ морфологических признаков проведен совместно с ст.н.с. лаб. энтомологии, к.б.н. С. К. Холинымисследование аллозимного полиморфизма проведено при участии ст.н.с. лаб. биотехнологии, к.б.н. О. Г. Корень. Автор считает своим приятным долгом поблагодарить также сотрудников Государственного природного заповедника «Ханкайский» ст.н.с. И. В. Маслову и егеря В. М. Козырева за содействие при выполнении работы.

Выводы.

1. Для редкого эндемичного тетраплоидного вида Oxytropis chankaensis впервые получены данные по онтогенезу, возрастной структуре популяций и репродуктивной биологии. Вид имеет полный онтогенез, включающий четыре периода и 12 возрастных состояний, и относится к типу моноцентрических биоморф. Все изученные популяции являются нормальными полночленными. Базовый возрастной спектр мономодальный, с максимальным подъемом, приходящимся на средневозрастное генеративное состояние.

2. Ряд особенностей репродуктивной биологии О. chankaensis являются ключевыми для поддержания высокого уровня генетического разнообразия в популяциях: нормальное развитие и функционирование органов размноженияналичие перекрестного опылениявысокая семенная продуктивностьсочетание различных способов диссеминациидлительное сохранение жизнеспособности семян, прорастание которых приводит к периодическому пополнению генофонда популяций.

3. Для О. chankaensis показан высокий уровень морфологической изменчивости, дана оценка дифференциация популяций по морфологическим признакам. Наиболее изменчивыми являются популяции заповедника, тогда как популяции, находящиеся в зоне антропогенного воздействия, характеризуются минимальными значениями морфологических признаков и снижением их вариабельности.

4. Впервые на основе анализа изоферментов определен тип полиплоидии О. chankaensis-. вид является автотетраплоидом. Из данных аллозимного анализа следует, что возникновение автополиплоида О. chankaensis могло произойти путем слияния нередуцированных гамет в ходе многократных скрещиваний растений с различными генотипами.

5. Высокий уровень полиморфизма (Р — 42.9%, А = 2, Н0ь = 0.266) обусловлен особенностями биологии О. chankaensis, тетрасомным типом наследования и историей формирования автотетраплоидного генома. Наиболее полиморфной является популяция косы Пржевальского (заповедник «Ханкайский»), которая заслуживает особого внимания, как источник материала для реинтродукции.

6. Проверена возможность замораживания семян в жидком азоте для их долговременного хранения и установлено, что криоконсервация в течение 1 мес. позволяет сохранить жизнеспособность семян на уровне, близком к исходному.

7. Редкий статус вида связан, главным образом, с его узкой экологической приуроченностью, поэтому основной задачей в программе по сохранению генофонда вида должно быть сохранение природных мест обитания. Состояние популяции О. сЬапкаетгз на косе Пржевальского (заповедник «Ханкайский») может быть принято в качестве эталонного и в дальнейшем использовано для оценки влияния антропогенного фактора на состояние данного вида в других местообитаниях.

Заключение

.

Многие редкие и эндемичные виды в настоящее время находятся под угрозой полного исчезновения из-за нарушения или уничтожения их естественных мест обитания, главным образом, в результате человеческой деятельности. Численность природных популяций сокращается, в большинстве случаев популяции сохраняются в небольших изолированных локальностях. Для таких малых популяций очень высок риск вымирания вследствие снижения генетической изменчивости и приспособленности растений. Уровень генетического разнообразия вида отражает генетические ресурсы, необходимые для кратковременных экологических адаптаций и долговременных эволюционных преобразованийвиды должны обладать достаточным запасом изменчивости, чтобы выдержать давление окружающей среды, достигающее пределов пластичности, и преодолеть неблагоприятные последствия, связанные с малой численностью популяций. Определение уровня изменчивости вида и соотношения внутрии межпопуляционной изменчивости особенно важно для разработки программ сохранения генофонда редких видов. Вместе с тем, для правильного истолкования генетической информации и обеспечения восстановления численности популяций необходим комплексный подход, вовлечение в анализ данных о биологии и жизненной стратегии вида, демографической структуре популяций и изменчивости количественных признаков. Подобный комплексный подход был применен в настоящей работе в ходе исследования популяционно-генетической структуры и внутривидовой дифференциации редкого вида О. сЪапкаеж1з.

Представление о системе размножения и демографии вида, как основных факторов, лежащих в основе наблюдаемого уровня полиморфизма, необходимо для понимания генетических процессов в популяциях с малой численностью. На первом этапе исследования были охарактеризованы жизненная форма и особенности онтогенеза О. скапкает15, среди которых выявлены наиболее важные для поддержания численности популяций и сохранения генетической гетерогенности: большая продолжительность жизни растения (до 50 лет), наличие перекрывающихся поколений, поливариантность развития, ранний переход в генеративное состояние, значительная длительность генеративного состояния. Изучение возрастной структуры позволило охарактеризовать состояние популяций по соотношению онтогенетических групп, выявить наиболее уязвимые стадии жизненного циклаювенильное и имматурное состояние, и выделить базовый возрастной спектр как биологическую характеристику вида, указывающую, что в целом в популяциях О. сЪапкает1 $ процессы появления молодых особей, их созревания, старения и отмирания происходят без резких перепадов. Данные о численности, плотности и возрастном составе популяций, их способности к самоподдержанию, наряду с данными о мощности и продуктивности растений позволили провести оценку экологического и фитоценотического оптимумов для популяций О. chankaensis.

Исследование репродуктивной биологии вида стало следующим этапом работы. По результатам было установлено нормальное строение и функционирование репродуктивных органов, высокая фертильность пыльцы, значительная продолжительность периода цветения и длительный срок жизни цветка, обеспечивающие надежность опыления, высокая семенная продуктивность. Был определен показатель репродуктивного усилия, с учетом которого было показано наличие у О. chankaensis вторичного типа жизненной стратегии, сочетающего стратегии патиентов и эксплерентов, что имеет особое значение для редких видов и способствует выживанию и повышению приспособленности вида. Было обнаружено, что для остролодочника ханкайского характерно сочетание различных способов диссеминации, твердосемянность и способность к длительному — свыше 10 лет — сохранению всхожести. Распространение семян на ближние и дальние расстояния способствует формированию определенной внутрипопуляционной генетической структуры, с одной стороны, и гомогенизации популяций путем обмена генами, с другой. Долговечность семян приводит к накоплению банка семян в почве и пополнению генофонда популяции за счет их прорастания. Качества семян делают их наиболее удобным материалом для мобилизации и сохранения генофонда вида в низкотемпературных генетических банках. Кроме того, результаты исследования прорастания семян после криоконсервации позволили предположить возможность долговременного хранения семян О. chankaensis в жидком азоте, при этом необходимы углубленные исследования влияния криоконсервации на генетический аппарат клеток.

Так как именно количественные признаки связаны с адаптивными свойствами организма, было проведено изучение фенотипического разнообразия вида, позволяющее охарактеризовать уровень изменчивости, описать популяционную структуру вида и оценить последствия антропогеного нарушения экосистем. По результатам был установлен значительный полиморфизм природных популяций О. chankaensis по морфологическим признакам, что свидетельствует о высокой фенотипической пластичности вида. При этом для популяций, находящихся в зоне антропогенного воздействия, были характерны минимальные значения и снижение вариабельности большинства признаков. Результаты многомерного анализа позволили объективно выделить популяции и оценить роль эколого-географических факторов в формировании популяционной структуры. Очевидно, что формирование внутривидовой структуры по морфологическим признакам обусловлено совместным действием генетических процессов и разнонаправленных векторов отбора по двум независимым группам признаков (вегетативных и генеративных органов) под влиянием естественных (географическое распространение, эколого-климатические условия) и антропогенных факторов.

Для исследования генетической структуры популяций и определения уровня полиморфизма О. скапкает15 был проведен анализ 16 ген-ферментных систем и поиск маркерных генов. Методом электрофореза были идентифицированы 28 генов, контролирующих ферменты, из которых 12 были полиморфными. Было обнаружено, что полиморфные локусы стабильно экспрессируются в листьях остролодочника и надежно интерпретируются, поэтому могут быть использованы в качестве генных маркеров для исследования популяционно-генетической структуры вида. По результатам анализа изоферментов был определен тип полиплоидии О. сЪапкаетгз-. наличие сбалансированных и несбалансированных гетерозигот по всем полиморфным локусам, наличие трех или четырех аллелей по отдельному локусу у индивидуума, отсутствие фиксированных гетерозигот, характерных для аллополиплоидов — совокупность таких данных свидетельствует о том, что вид является автотетраплоидом.

На следующем этапе были проведены оценка генетической изменчивости О. сИапкаеп$ 1 $ и состояния его генофонда, выявление центров наибольшего генетического разнообразия, анализ распределения изменчивости внутри и между популяциями и дифференциации популяций. Уровень аллозимного полиморфизма оказался весьма высоким как для узколокального эндемичного редкого вида, так по сравнению с другими автотетраплоидными видами. Очевидно, что особенности биологии и системы размножения вида, а также тетрасомное наследование вносят существенный вклад в поддержание высокого уровня полиморфизма О. скапкает1 $. Кроме того, определенное значение имеет и история формирования автотетраплоидного генома у О. сИапкаетгз: данные анализа изоферментов указывают на возникновение автополиплоида О. скапкаетгв путем слияния нередуцированных гамет в ходе многократных скрещиваний растений с различными генотипами. Наиболее полиморфной оказалась популяция косы Пржевальского, расположенная на территории заповедника, которая заслуживает особого внимания как источник материала для реинтродукции. Было установлено, что свыше 90% изменчивости сосредоточено внутри популяций, в то же время каждая популяция характеризуется генетическим своеобразием и несет уникальную часть генофонда вида.

Таким образом, впервые было проведено комплексное исследование биологии и генетики редкого эндемичного вида О. скапкает1 $. Результаты проведенных исследований позволяют считать, что причиной редкости данного вида является его приуроченность к специфическим условиям существования — на песках, на берегу большого озера, при интенсивной инсоляции и высокой влажности воздуха. Вызываемые природными явлениями регулярные «локальные экологические катастрофы» могут приводить к снижению численности, на некоторых участках — до весьма низких пределов, но в этих случаях фенотипическая пластичность, высокая продуктивность и резерв генетической изменчивости, обеспечивающий адаптивные реакции вида, способствуют восстановлению популяции. В случае же антропогенного разрушения мест обитания встает угроза полного уничтожения вида. В связи с этим первоочередной задачей в программе по сохранению и использованию природных популяций остролодочника должно быть сохранение очагов возобновления вида в природных местообитаниях, охрана биотопов. Внесение редкого вида в Красные книги, без заповедывания части его ареала, не может гарантировать сохранение вида в природе, что подтверждается выявленной нами явной утратой морфологического и генетического разнообразия, снижением плотности популяций и их способности к восстановлению на неохраняемых территориях. Поэтому одной из мер охраны могло бы стать создание микрорезервата в районе Турьего Рога, где состояние популяции остается еще довольно стабильным. Неотъемлемой частью программы должен быть контроль за состоянием популяций с использованием разнообразных подходов и методов их изучения. Для долговременного сохранения генофонда вида требуется создание коллекции семян, дальнейшее исследование влияния криоконсервации на жизнеспособность семян, и передача материала в криохранилище Всероссийского института растениеводства им. Н. И. Вавилова.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Д., Архарова К. Б., Бахтина Л. И., Земскова Е. А., Тарвис Л. В. Числа хромосом цветковых растений флоры СССР: Семейства Асегасеае — Menyanthaceae / Под ред. акад. А. Л. Тахтаджяна. Л.: Наука, 1990. С. 398−410.
  2. Ф. Введение в популяционную и эволюционную генетику. М.: Мир, 1984. 232 с.
  3. С.А., Бежаева З. И., Староверов О. В. Классификация многомерных наблюдений. М.: Статистика, 1974. 240 с.
  4. С.А., Бухштабер В. М., Енюков И. С., Мешалкин Л. Д. Прикладная статистика: Классификация и снижение размерности. М.: Финансы и статистика, 1989. 607 с.
  5. Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М.: ИКЦ «Академкнига», 2003. 431 с.
  6. Ю.П., Салменкова Е. А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. Т. 38. № 9. С. 1173−1195.
  7. Ю.П., Салменкова Е. А., Омельченко В. Т. Популяционная генетика лососевых рыб. М.: Наука, 1997. 285 с.
  8. В.П. Современное состояние популяций Allium nutans (Alliaceae) на юге Томской области // Бот. ж. 1998. Т. 83. № 2. С. 89−101.
  9. Е.В., Холина А. Б., Журавлёв Ю. Н., Козыренко М. М. Анализ генетической изменчивости редкого эндемичного вида Oxytropis chankaensis Jurtz. (Fabaceae) на основе RAPD-маркеров // Генетика. 2004. Т. 40. № 7. С. 877−884.
  10. З.Т. Атлас по описательной морфологии высших растений: Семя. Л.: Наука, 1990. 204 с.
  11. А., Эйзен С. Статистический анализ. Подход с использованием ЭВМ. М.: Мир, 1982. 488 с.
  12. A.A., Каршибаев Х. К. Семенная продуктивность видов Glycyrrhiza L. в культуре в Узбекской ССР // Раст. ресурсы. 1984. Т. 20. Вып. 3. С. 379−387.
  13. Э.Г., Асеева Т. А. «Вайдурья-онбо» трактат индо-тибетской медицины. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1984. 120 с.
  14. Е.В., Шемберг М. А. Ольха в Сибири и на Дальнем Востоке России (изменчивость, таксономия, гибридизация). Новосибирск: Изд-во СО РАН. 2000. 99 с.
  15. Э.Э. Опыт использования экологической морфологии цветка для целей таксономии (на примере видов рода Hedysarum L.) // Экология опыления. Межвуз. сб. научн. тр. Пермь: Перм. ун-т, 1980. С. 32−43.
  16. В.Ю., Вышин И. Б., Харкевич С. С. Первые впечатления о растительном покрове Ханкайского государственного заповедника // Комаровские чтения. Владивосток: Дальнаука, 1993. Вып. 41. С. 114−140.
  17. В.Ю., Харкевич С. С. Сосудистые растения Ханкайского государственного заповедника // Бот. ж. 1996. Т. 81. № 11. С. 104−116.
  18. А.Д. Опыт определения длительности сохранения всхожести семян некоторых представителей семейства Leguminosae Juss.// Интродукция и акклиматизация растений. Ташкент: ФАН, 1970. Вып. 6. С. 103−115.
  19. А.Б. Биоморфологическая структура и особенности жизненных форм семенных растений Уссурийского флористического района. Дисс. .канд. биол. наук. Владивосток, 2002. 351 с.
  20. Т.П. К экологии цветения, опыления и семенного размножения эндема уральской флоры астрагала кунгурского Astragalus kungurensis Boriss. 11 Экология опыления растений. Межвуз. сб. научн. тр. Пермь: Перм. ун-т, 1978. С. 76−88.
  21. Т.П. К антэкологии некоторых реликтовых и эндемичных видов астрагалов Кунгурской лесостепи // Экология опыления растений. Межвуз. сб. научн. тр. Пермь: Перм. ун-т, 1984. С. 34−49.
  22. Бе Тхи Тхуань, Блинова К. Ф. Флавоноиды некоторых забайкальских видов p. Oxytropis DC. // Раст. ресурсы. 1974. Т. 10. Вып. 1. С. 72−75.
  23. Р.Л. Генетика и эволюция. Избранные труды. Новосибирск: ВО «Наука», 1993. 284 с.
  24. М., Харпер Дж., Таунсенд К. Экология. Особи, популяции и сообщества. Т. 2. М.: Мир, 1989. 477 с.
  25. К.Ф., Иристе В. А. Современное состояние и перспективы изучения представителей рода Oxytropis DC. II Раст. ресурсы. 1972. Т. 8. Вып. 2. С. 305−309.
  26. К.Ф., Саканян Е. И. Виды Oxytropis DC., применяемые в тибетской медицине, и их флавоноидный состав // Раст. ресурсы. 1986. Т. 22. Вып. 2. С. 266−272.
  27. H.A. Популяционная изменчивость морфологических признаков караганы мелколистной на территории Сибири //Изв. СО АН СССР. Сер. Биол. науки. 1988. Вып. 3. С. 57−63.
  28. H.A. Карагана Бунге в Сибири (морфологическая изменчивость, внутривидовая структура, интродукция) // Бюлл. ГБС. 1990. Вып. 5. С. 31−39.
  29. H.A. Популяционно-морфологическая изменчивость и внутривидовая структура Caraganapygmaea (Fabaceae) в Сибири // Бот. ж. 1994. Т. 79. № 6. С. 74−87.
  30. И.В. О долговечности семян некоторых степных и пустынных растений Казахстана и Монголии // Бот. ж. 1998. Т. 83. № 6. С. 55−66.
  31. В.Ф. Биология некоторых видов Astragalus L. флоры СССР, выращиваемых в Ленинграде // Раст. ресурсы. 1981. Т. 17. Вып. 3. С. 420−433.
  32. Н.И. Линнеевский вид как система // Вавилов Н. И. Закон гомологических рядов в наследственной изменчивости. Л.: Наука, 1987. С. 160−180.
  33. Н.И. Закон гомологических рядов в наследственной изменчивости // Вавилов Н. И. Закон гомологических рядов в наследственной изменчивости. Л.: Наука, 1987. С. 56−100.
  34. И.В. О методике изучения семенной продуктивности растений // Бот. ж. 1974. Т. 59. № 6. С. 826−831.
  35. A.B., Кричфалуший В. В. Биоэкологическая характеристика и возрастной состав популяций Scilla kladnii Schur (Восточные Карпаты) // Раст. ресурсы. 1994. Т. 30. Вып. 1−2. С. 36−53.
  36. Е. Распределение растений в зависимости от внешних условий (экологическая география растений). СПб.: Изд. Акц. Общ. Брокгауз-Эфрон, 1902. 474 с.
  37. И.Т. К вопросу о генезисе рода остролодочник Oxytropis DC. II Бот. ж. 1965. Т. 50. № 3. С. 313−323.
  38. Т.И. Ценопопуляции Daphne спеоит (Thymelaeaceae) в условиях пастбищного и заповедного режимов//Бот. ж. 1981. Т. 66. № 11. С. 1561−1569.
  39. М.Г. Гидрологический режим озера Ханка. Л.: Гидрометеоиздат, 1978. 176 с.
  40. В.А., Колясникова Н. Л. Эмбриология некоторых многолетних видов люцерны (.Medicago, Fabaceae) II Бот. ж. 1990. Т. 75. № 5. С. 604−614.
  41. В.А., Новоселова Л. В. Репродуктивная биология Medicago lupulina {Fabaceae) II Бот. ж. 1997. T. 82. № l.C. 30−39.
  42. M.A., Киликовская Т. В., Тихменев Е. А. Семенная репродукция Vicia multicaulis Ledeb. (Fabaceae) Охото-Колымского нагорья II Экология. 2000. № 2.С. 140−143.
  43. Н.М., Холина А. Б. Влияние температурного фактора и скарификации на прорастание семян и рост сеянцев Sophora? avescens Soland. II Раст. ресурсы. 2003. T. 39. Вып. 1. С. 43−49.
  44. Л.И., Заугольнова Л. Б. Мультивариантность развития особей в течение онтогенеза и ее значение в регуляции численности и состава ценопопуляций растений // Ж. общ. биол. 1978. Т. 39. № 4. С. 555−562.
  45. Л.И., Заугольнова Л. Б. О подходах к изучению ценопопуляций растений // Бот. ж. 1979. Т. 64. № 9. С. 1296−1311.
  46. В.Н. Флора Советского Дальнего Востока. M.: Наука, 1966. 480 с.
  47. Л.Е. Морфогенез копеечника кустарникового (Hedysarum fruticosum Pall.) при постоянном уровне песчаного субстрата // Онтогенез и возрастной состав популяций цветковых растений / Отв. ред. A.A. Уранов. М.: Наука, 1967. С. 9−34.
  48. Н.В. Оценка генетической гетерогенности природных популяций: количественные признаки // Экология. 1983. № 1. С. 3−10.
  49. Н.В., Максименко O.E., Орлинский Д. Б. Эколого-генетическая изменчивость клевера белого {Trifolium repens L.) в природных популяциях Среднего Приобья // Экология. 1995. № 5. С. 344−346.
  50. Г. Г., Падутов В. Е., Потенко В. В. Руководство по исследованию хвойных видов методом электрофоретического анализа изоферментов. Гомель: Полеспечать, 1989. 163 с.
  51. Г. Г., Падутов В. Е., Силин А. Е. Генетическая структура, изменчивость и дифференциация в популяциях Pinus sibirica Du Tour II Генетика. 1992. T. 28. № 10. С. 114 127.
  52. П.Л., Зуева В. Н. Возрастная структура и динамика малых изолированных популяций уральских эндемичных астрагалов // Экология. 1984. № 3. С. 3−11.
  53. П.Л., Зуева В. Н. Онтогенез, структура и динамика популяций южноуральского эндемика Onosmaguberlinensis Dobrocz. et V.Vinogr. //Экология. 1993. № 6. С. 24−29.
  54. П.Л., Степанова A.B. Уральские эндемичные виды рода Minuartia L.: онтогенез, структура и динамика популяций // Экология. 1994. № 3. С. 22−30.
  55. П.Л., Хохлова М. Г. Сравнительная оценка состояния популяций уральского эндемика Lagotis uralensis Schischk. в градиенте высотной поясности // Экология. 2001. № 5. С. 323 330.
  56. С.А., Кокаева З. Г., Боброва В. К. Использование молекулярных маркеров для анализа генома растений // Генетика. 1999. Т. 35. № 11. С. 1538−1549.
  57. В. Видообразование у растений. М.: Мир, 1984. 528 с.
  58. В. Эволюционный процесс: Критический обзор эволюционной теории. М.: Мир, 1991. 488 с.
  59. В.И. Растения Центральной Азии. Вып. 86. Род Остролодочник. СПб.: «Мир и семья-95″, 1998.92 с.
  60. И.А. Конспект флоры Внешней Монголии (Сосудистые растения). М.: „Валанг“, 1996. 136 с.
  61. И.И., Тимошок Е. Е. Онтогенез и структура ценопопуляций Gueldenstaedtia monophylla (.Fabaceae) в Юго-Восточном Алтае // Бот. ж. 2001. Т. 86. № 8. С. 94−103.
  62. Н.Н. Кариологическая характеристика некоторых эндемов флоры Приморья и Приамурья // Комаровские чтения. Владивосток: БПИ ДВ фил. СО АН СССР, 1969. Вып. 15−17.С. 73−85.
  63. Н.Н. Исследование хромосомных чисел растений юга Дальнего Востока // Комаровские чтения. Владивосток: БПИ ДВНЦ АН СССР, 1973. Вып. 20. С. 47−62.
  64. Н.Н., Павлова Н. С. Хромосомные числа представителей родов Astragalus и Oxytropis (Fabaceae) с Дальнего Востока СССР // Бот. ж. 1984. Т. 69. № 11. С. 1569−1570.
  65. Дзэйцхар мигчжан» памятник тибетской медицины / Отв. ред. Б. Б. Бадараев. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1985. 88 с.
  66. Дикорастущие полезные растения флоры Монгольской Народной Республики / Отв. ред. Е. М. Лавренко. Л.: Наука, 1985. 236 с.
  67. Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях / Под ред. Ю. П. Алтухова. М.: Наука, 2004. 619 с.
  68. С.А. Структура природных популяций земляники лесной (Fragaria vesca L.). Автореф. дис. .канд. биол. наук. Йошкар-Ола, 2000. 24 с.
  69. ., Одел П. Кластерный анализ. М.: Статистика, 1977. 128 с.
  70. Л.А. Статистические методы анализа частот генов в природных популяциях. // Итоги науки и техники. ВИНИТИ АНГ СССР. Общая генетика. 1983. Т. 8. С. 76−104.
  71. Л.А. Интеграция полигенных систем в популяциях. М.: Наука, 1984. 183 с.
  72. Л.А. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991. 271 с.
  73. Л.А. Онтогенетические состояния, эффективная плотность и классификация популяций растений // Экология. 2001. № 1. С. 3−7.
  74. Г. Г. Формирование популяционных границ энтомофильных растений в связи с опылением //Ж. общ. биол. 1989. Т. 50. № 5. С. 646−654.
  75. П.Ю., Алексеев Ю. Е., Карпухина Е. А. Основные термины и понятия биоморфологии растений. М.: Изд.-во МГУ, 1993. 149 с.
  76. П.Ю., Алексеев Ю. Е., Карпухина Е. А., С.А. Баландин. Биоморфология растений. М.: Изд.-во МГУ, 2002. 240 с.
  77. JI.A. Онтогенез и возрастной состав ценопопуляций Deschampsia flexuosa (L.) Trin. (.Poaceae) I ! Бот. ж. 1979. T. 64. № 4. С. 525−540.
  78. JI.A. Динамика ценопопуляций // Ценопопуляции растений (очерки популяционной биологии) / Отв. ред.: Т. И. Серебрякова, Т. Г. Соколова. М.: Наука, 1988. С. 102−114.
  79. JI.A. Многообразие путей онтогенеза в популяциях растений // Экология. 2001. № 3. С. 169 176.
  80. JI.A., Ведерникова О. П., Файзуллина С .Я., Балахонов C.B., Максименко O.E., Глотов Н. В. Эколого-демографическая характеристика природных популяций Plantago major L. // Экология. 1996. № 6. С. 445−452.
  81. JI.A., Комаров A.C. Поливариантность онтогенеза и динамика ценопопуляций растений // Ж. общ. биол. 1990. Т. 51. № 4. С. 450−461.
  82. JI.A., Смирнова О. В. Элементы популяций и их дифференциация // Ценопопуляции растений (очерки популяционной биологии) / Отв. ред.: Т. И. Серебрякова, Т. Г. Соколова. М.: Наука, 1988. С. 13−33.
  83. П.Г. Числа хромосом у некоторых видов семейства Fabaceae с северо-востока Азии // Бот. ж. 1983. Т. 68. № 7. С. 925−932.
  84. Ю.Н., Корень О. Г., Музарок Т. И., Реунова Г. Д., Козыренко М. М., Артюкова Е. В., Илюшко М. В. Молекулярные маркеры для сохранения редких видов растений Дальнего Востока// Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6. С. 953−964.
  85. K.M. Вид и видообразование. JI.: Наука, 1968. 404 с.
  86. Г. Н. Математика в экспериментальной ботанике. М., 1990. 296 с.
  87. Л.Б. Типы возрастных спектров нормальных ценопопуляций растений // Ценопопуляции растений (основные понятия и структура) / Отв. ред.: A.A. Уранов, Т. И. Серебрякова. М.: Наука, 1976. С. 81−92.
  88. Л.Б. Анализ ценопопуляций как метод изучения антропогенных воздействий на фитоценоз // Бот. ж. 1977. Т. 62. № 12. С. 1767−1779.
  89. Л.Б. Понятие оптимумов у растений // Ж. общ. биол. 1985. Т. 46. № 4. С. 444−452.
  90. Л.Б., Смирнова О. В. Возрастная структура ценопопуляций многолетних растений и ее динамика//Ж. общ. биол. 1978. Т. 39. № 6. С. 849−858.
  91. Л.Б., Денисова Л. В., Никитина C.B. Подходы к оценке состояния ценопопуляций растений // Бюлл. МОИП. Отд. биол. 1993. Т. 98. Вып. 5. С. 100−108.
  92. Л.Б., Никитина C.B., Денисова Л. В. Типы функционирования популяций редких видов растений // Бюлл. МОИП. Отд. биол. 1992. Т. 97. Вып. 3. С. 80−91.
  93. Л.Б., Смирнова О. В., Попадюк Р. В. Структура ценопопуляций. Возрастная структура // Ценопопуляции растений (очерки популяционной биологии) / Отв. ред.: Т. И. Серебрякова, Т. Г. Соколова. М.: Наука, 1988. С. 64−71.
  94. Л.Б., Сугоркина Н. С., Щербакова Е. Г. Жизненные формы и популяционное поведение многолетних травянистых растений // Экология популяций. / Отв. ред. И. А. Шилов. М.: Наука, 1991. С. 5−22.
  95. Ю.А. Теория и практика оценки виталитетного состава популяций растений // Бот. ж. 1989а. Т. 74. № 6. С. 769−780.
  96. Ю.А. Репродукция у цветковых растений: уровень особей и уровень популяций // Биол. науки. 19 896. № 7. С. 77−89.
  97. В.Н., Родионова Г. Н. Мониторинг ценопопуляций редких бобовых растений в Самарской области // Ботанические исследования в Азиатской России: Материалы XI съезда Русского Ботанического общества. Том 3. Барнаул: Изд-во «АзБука», 2003. С. 310−311.
  98. М.В., Картавцев Ю. Ф., Журавлев Ю. Н. Изменчивость морфологических признаков Iris setosa (Iridaceae) на российском Дальнем Востоке // Бот. ж. 2001. Т. 86. № 3. С. 60−72.
  99. Инге-Вечтомов С. Г. Генетика с основами селекции. М.: Высш. шк., 1989. 591 с.
  100. М.М., Суюндуков И. В., Ишбирдин А. Р., Жирнова Т. В. Состояние ценопопуляций некоторых видов сем. Orchidaceae на Южном Урале. Сообщение 1. Виды со стеблекорневыми тубероидами // Раст. ресурсы. 2003а. Т. 39. Вып. 2. С. 1−17.
  101. М.М., Суюндуков И. В., Ишбирдин А. Р., Жирнова Т. В., Наибуллин М. И. Состояние ценопопуляций некоторых видов сем. Orchidaceae на Южном Урале. Сообщение 2. Корневищные виды // Раст. ресурсы. 20 036. Т. 39. Вып. 2. С. 18−37.
  102. М.М., Суюндуков И. В., Ишбирдин А. Р. Состояние ценопопуляций некоторых видов сем. Orchidaceae на Южном Урале. Сообщение 3. Корнеотпрысковые виды (Listera cordata (L.) R. Br.) II Раст. ресурсы. 2003 В. Т. 39. Вып. 2. С. 38−41.
  103. Е.Б., Вишнякова М. А., Орел Л. И. Самонесовместимость и отмирание семяпочек до опыления как факторы снижения семенной продуктивности Medicago sativa и Medicago varia СFabaceae) //Бот. ж. 1991. Т. 76. № 12. С. 1682−1694.
  104. М.С. Антэкология растений ракомитриевой тундры Полярного Урала // Экология опыления. Межвуз. сб. научн. тр. Пермь: Перм. ун-т, 1979. С. 80−108.
  105. С.И., Лайдинен Г. Ф. Морфологические изменения природных популяций Alopecurus pratensis (Роасеае) при интродукции // Бот. ж. 1997. Т. 82. № 10. С. 38−48.
  106. О.П., Проскурина О. Б., Жинкина H.A. К методике окраски эмбриологических препаратов // Бот. ж. 1992. Т. 77. № 4. С. 93−96.
  107. H.A., Сыева С. Я. Онтогенез и возрастная структура ценопопуляций Hedysarum austrosibiricum В. Fedtsch. в Горном Алтае и Хакасии // Раст. ресурсы. 2002. Т. 38. Вып. 3. С. 10−19.
  108. Ю.Ф. Генетическая дифференциация и интеграция в популяциях водных животных. Автореф. дис. .доктора биол. наук. СПб. 1995. 40 с.
  109. Ю.Ф., Заславская Н. И. Генетическая структура, факторы интеграции и дифференциации популяций обыкновенной мидии (Mytilus edulis L.) // Генетика. 1982. T. 18. № 10. С. 16 531 666.
  110. H.H., Малахова Л. А. Значение полиплоидии в процессе видообразования бобовых Юго-Восточного Алтая, произрастающих в различных экологических условиях // Экология. 1973. № 1.С. 66−68.
  111. Х.К. Особенности семенного размножения некоторых видов сем. Fabaceae в аридной зоне Узбекистана // Раст. ресурсы. 2002. Т. 38. Вып. 1. С. 65−72.
  112. Х.К., Ашурметов A.A. Семенная продуктивность Alhagi pseudalhagi (Bieb.) Fisch, в Узбекистане //Раст. ресурсы. 1990. Т. 26. Вып. 2. С. 183−187.
  113. С.Г. Опыт применения многомерных методов для определения таксономического положения Juniperus sibirica (Cupressaceae) // Бот. ж. 2004. Т. 89. № 2. С. 236−244.
  114. В.И., Бачинская Л. М., Лаптев A.B., Сметанин Н. И. К вопросу о механизмах перекрестного опыления у энтомофильных видов растений (на примере эспарцета песчаного) //С.-хоз. биология. 1983. № 8. С. 47−53.
  115. Ю.П. К систематике, биологии и эволюции представителей бобовых (Fabaceae) на юго-востоке гор Бырранга (Таймыр). I. // Бот. ж. 1981. Т. 66. № 11. С. 1549−1560.
  116. Комаров B. J1. Флора Маньчжурии. Часть II. // Избранные сочинения. M.-JL: Изд-во АН СССР, 1950. T. IV. С. 588.
  117. И.И., Пирко Я. В. Генетическая изменчивость и дифференциация болотных и суходольных популяций сосны горной (Pinus mugo Turra) в высокогорье Украинских Карпат // Генетика. 2002. Т. 38. № 9. С. 1235−1241.
  118. .А., Милютин Л. И. Анализ популяций с помощью многомерных методов // Ж. общ. биол. 1985. Т. 46. № 4. С. 557−568.
  119. П.В., Верхолат В. П. Редкие растительные сообщества Приморья и Приамурья. Владивосток: ДВО РАН, 2003. 200 с.
  120. В.В., Будников Г. Б. Биоморфологическая и экологическая характеристика Galanthus nivalis L. в Закарпатье // Раст. ресурсы. 1992. Т. 28. Вып. 1−2. С. 13−27.
  121. Г. В. Морфогенез почек возобновления и ритм развития бобовых Юго-Восточного Алтая // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1985. Т. 90. Вып. 4. С. 89−96.
  122. И.В., Челомина Г. Н., Журавлев Ю. Н. Низкая генетическая дифференциация и тесные эволюционные связи между Anas platyrhynchos и Anas poecilorhyncha: данные RAPD-PCR анализа// Генетика. 2003. Т. 39. № 10. С. 1353−1362.
  123. Г. Э. Растительность Приханкайской равнины и окружающих предгорий. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1962. 140 с.
  124. Г. Э. Растительность Приморского края. Владивосток: Дальневосточное книжное изд-во, 1968. 192 с.
  125. К.А. Фитоценотипы и эколого-ценотические потенции луговых трав // Экология. 2002. № 1. С. 18−22.
  126. М.В. Особенности семенной продуктивности Lupinus luteus (Fabaceae) II Бот. ж. 1997. T. 82. № 12. С. 34−40.
  127. И.А., Ткаченко К. Г., Елсаков В. В. Популяционная и межвидовая изменчивость двух видов рода Rhodiola (Crassulaceae) в условиях Арктики // Бот. ж. 1998. Т. 83. № 9. С. 63−70.
  128. P.E. Репродуктивная биология семенных растений (Обзор проблемы). М.: Наука, 1981. 96 с.
  129. Е.В. Генетика изоферментов растений. Новосибирск: Наука, 1986. 144 с.
  130. Р. Генетические основы эволюции. М.: Мир, 1978. 350 с.
  131. Ли Ч. Введение в популяционную генетику. М.: Мир, 1978. 555 с.
  132. H.H. Оценка генотипической и экологической изменчивости в системе признаков вида Prunus cerasifera (Rosaceae) // Бот. ж. 1997. Т. 82. № 10. С. 74−82.
  133. М.М. Генетика и эволюция природных популяций растений // Генетика и эволюция природных популяций растений. Махачкала: Кн. изд-во, 1975. С. 5−16.
  134. Э. Популяции, виды и эволюция. М.: Мир, 1974. 464 с.
  135. С.И., Колодяжная Я. С. Генетическая изменчивость в популяциях соматических клеток и ее влияние на репродуктивные признаки у покрытосеменных растений // Успехи совр. биологии. 1999. Т. 119. С. 128−143.
  136. С.И. Эпигенетические и синергические формы наследования репродуктивных признаков у покрытосеменных растений // Ж. общ. биол. 2004. Т. 65. С. 116−135.
  137. С.А. Формы внутривидовой изменчивости древесных растений. М.: Наука, 1972. 284 с.
  138. С.А., Махнев А. К. Изучение популяционной структуры древесных растений с помощью метода морфофизиологических маркеров // Фенетика популяций / Отв. ред. A.B. Яблоков. М.: Наука, 1982. С. 140−150.
  139. В.Д., Шалин А. Ю. Проблемы длительного хранения растительных объектов в условиях низкотемпературного криобанка // Генетические коллекции растений. Новосибирск, 1987. Вып. 3. С. 6−25.
  140. М.В. Популяционная биология растений. Казань: Изд-во Казанского ун-та, 1986. 112 с.
  141. М.В. Популяционная биология розеточных и полурозеточных малолетних растений. Казань: Изд-во Казанского ун-та, 1990. 188 с.
  142. М.В., Плещинская Е. Н. Репродуктивное усилие у растений // Ж. общ. биол. 1987. Т. 48. № 1.С. 77−83.
  143. Ю.Л. Применение канонического и дискриминантного анализа в ботанике (на примере изучения кавказских дубов) // Ж. общ. биол. 1968. Т. 29. № 3. С. 272−296.
  144. Л., Грегг Т. Генетика популяций и эволюция. М.: Мир, 1972. 324 с.
  145. Л.И. Особенности краевых популяций древесных растений // Экология популяций. / Отв. ред. И. А. Шилов. М.: Наука, 1991. С. 86−97.
  146. .М. Теоретические основы современной фитоценологии. М.: Наука, 1985. 136 с.
  147. В.Ю. Хранение семян зерновых бобовых и технических культур при сверхнизких температурах // Бюл. ВИР. 1984. № 144. С. 38−40.
  148. В.Ю. Влияние сверхнизкой температурной обработки на твердосемянность бобовых трав // Бюл. ВИР. 1985. № 152. С. 60−64.
  149. В.Ю. Значение влажности семян некоторых зерновых и зерновых бобовых культур при криоконсервации в жидком азоте // Бюл. ВИР. 1986. № 165. С. 22−24.
  150. Н.Т., Василевская В. К., Антонова К. Г. Жизненные формы растений пустыни Каракумы. М.: Наука, 1973. 244 с.
  151. М.Г., Разумова М. В., Гладкова В. Н. Справочник по проращиванию покоящихся семян. Л.: Наука, 1985.348 с.
  152. М.Г., Тихонова В. Л., Далецкая Т. В. Долговременное хранение семян дикорастущих видов растений. Биологические свойства семян // Консервация генетических ресурсов. Информационный материал. Пущино: Пущинский научный центр РАН, 1992. 36 с.
  153. Я. Факторный анализ. М.: Статистика, 1974. 200 с.
  154. М.В. Морфологическая дифференциация Роа glauca (Роасеае) // Бот. ж. 1998. Т. 83. № 9. С. 54−62.
  155. В.Г., Гужова Г. А., Семенова Г. В., Работнова М. В. Популяционные стратегии альпийских растений Северо-Западного Кавказа // Экология популяций. / Отв. ред. И. А. Шилов. М.: Наука, 1991. С. 165−180.
  156. Оно С. Генетические механизмы прогрессивной эволюции. М.: Мир, 1973. 228 с.
  157. Онтогенетический атлас лекарственных растений. Том II. / Отв. ред. Жукова Л. А. Йошкар-Ола: Map. гос. ун-т, 2000. 268 с.
  158. Л.И., Казачковская Е. Б. Эмбриологическая гетерогенность как причина снижения семенной продуктивности Medicago sativa (Fabaceae) // Бот. ж. 1991. Т. 76. № 2. С. 161−172.
  159. Н.С. Исследование флавоноидов некоторых дальневосточных видов (Astragalus L., Oxytropis DC., Hed.ysa.rum L.) // Тез. докл. совещ. по вопросам изучения и освоения растительных ресурсов СССР. Новосибирск, 1968. С. 47−48.
  160. Н.С. Бобовые Fabaceae // Сосудистые растения советского Дальнего Востока / Отв. ред. С. С. Харкевич. Л.: Наука, 1989. Т. 4. С. 191−339.
  161. Н.С. Дикорастущие бобовые российского Дальнего Востока — природный резерв кормового белка // Ботанические исследования в Азиатской России: Материалы XI съезда Русского Ботанического общества. Том 3. Барнаул: Изд-во «АзБука», 2003. С. 39−41.
  162. Арктике // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1960. Вып. 3. С. 53−62. Паушева З. П. Практикум по цитологии растений. М.: Колос, 1970. 256 с.
  163. Перечень объектов растительного и животного мира, занесенных в Красную книгу Приморскогокрая / Отв. ред.: А. Е. Кожевников, В. А. Костенко. Владивосток: Апостроф, 2002. 48 с. Пианка Э. Эволюционная экология. М.: Мир, 1981. 400 с.
  164. Пименов М. Г. Математические методы и вычислительная техника в систематике высших растений
  165. A.B. Флорогенентический анализ остролодочников Средней Сибири // Ученые записки Томского Государственного университета. Биология и почвоведение. 1965. № 51. С. 18−38.
  166. A.B. Oxytropis DC. Остролодочник // Флора Сибири / Отв. ред. A.B. Положий, Л. И. Малышев. Новосибирск: ВО «Наука», 1994. Т. 9. С. 74−151.
  167. A.B. К вопросу о происхождении и эволюции рода Oxytropis (Fabaceae) И Бот. ж. 2003. Т. 88. № ю. С. 55−59.
  168. A.B., Тимошок Е. Е. Онтогенез и структура популяции Oxytropis kossinskyi (Fabaceae) на Юго-Восточном Алтае//Бот. ж. 1992. Т. 77. № 12. С. 105−108.
  169. А.Н., Демьянова Е. И., Лыков В. А. К антэкологии некоторых бобовых луговой и разнотравно-ковыльной степи // Экология опыления. Межвуз. сб. научн. тр. Пермь: Перм. ун-т, 1978. С. 23−37.
  170. A.B. Биология твердосемянности. М.: Наука, 1976. 157 с.
  171. Н.С., Селедец В. П., Соколовская А. П. Галофильные растения морских побережий советского Дальнего Востока: числа хромосом и экология // Комаровские чтения. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1984. Вып. 31. С. 89−116.
  172. Н.С. Числа хромосом растений как источник информации при изучении флоры Дальнего Востока России // Вестник ДВО РАН. 2003. № 3. С. 54−67.
  173. А.И., Животовский Л. А. Дефицит гетерозигот в популяциях морских донных беспозвоночных // Биология моря. 1980. № 5. С. 57−61.
  174. В.И., Иванов Л. А. Структура биомассы у растений бореальной зоны с разными типами экологических стратегий // Экология. 2000. № 1. С. 3−10.
  175. Т.А. Жизненный цикл многолетних травянистых растений в луговых ценозах // Тр. Бот. ин-та АН СССР. Сер. 3. Геоботаника. 1950. Вып. 6. С. 7−204.
  176. Т.А. Методы определения возраста и длительности жизни у травянистых растений // Полевая геоботаника. Том II. / Отв. ред.: Лавренко Е. М., Корчагин A.A. М.-Л.: Изд. АН СССР, 1960. С. 249−262.
  177. Т.А. Фитоценология. М.: Изд.-во МГУ, 1978. 384 с.
  178. Т.А. О типах стратегий растений // Экология. 1985. № 3. С. 3−12.
  179. М.В. Особенности покоя семян дикорастущих бобовых // Биологические основы семеноведения и семеноводства интродуцентов / Гл. ред. К. А. Соболевская. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1974. С. 228−229.
  180. М.В. О твердосемянности дикорастущих бобовых. Автореф. дис .канд. биол. наук. Владивосток, 1975.
  181. Л.Г. Избранные работы. Л.: Наука, 1971. 334 с.
  182. М.А. Экспериментальные основы систематики растений. М.-Л.: Изд-во Академии наук СССР, 1946. 256 с.
  183. П.Ф. Биологическая статистика. Минск: изд-во «Вышэйшая школа», 1973. 320 с.
  184. P.A. Изменение состава жизненных форм растений в процессе естественного зарастания барханных песков // Бюлл. ГБС. 1964. Вып. 52. С. 87−97.
  185. P.A. Биолого-морфологические особенности многолетних пустынных растений (в природе и опыте интродукции). М.: Наука, 1969. 105 с.
  186. А.Б. Анализ фенотипической изменчивости одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) из биотопов с разными уровнями техногенного загрязнения // Экология. 1998. № 5. С. 362−365.
  187. В.К. Генетика полиплоидных популяций. Минск: Наука и техника, 1976. 240 с.
  188. С.Н. Импульсная стабильность и микроэволюция популяций // Экология популяций. / Отв. ред. И. А. Шилов. М.: Наука, 1991. С. 128−142.
  189. В.Л., Беляев А. Ю. Аллозимный полиморфизм в природных популяциях и культурных сортах клевера лугового (Trifolium pratense L.) II Генетика. 1995. Т. 31. С. 815−819.
  190. Л.Ф. Популяционная структура древесных растений (на примере видов дуба европейской части СССР и Кавказа). М.: Наука, 1986. 144 с.
  191. Л.Ф., Казанцев B.C. Популяционная структура дуба черешчатого (Quercus robur L.) в Поволжье и Предуралье // Экология. 1979. № 2. С. 12−21.
  192. И.Г. Экологическая морфология растений. М.: Высш. шк., 1962. 378 с.
  193. И.Г. Жизненные формы высших растений и их изучение // Полевая геоботаника. Т. 3. М, Л.: Наука, 1964. С. 146−208.
  194. Т.И. Типы большого жизненного цикла и структура наземных побегов у цветковых растений//Бюлл. МОИП. Отд. биол. 1971. Т. 76. Вып. 1. С. 105−119.
  195. Т.И. Учение о жизненных формах растений на современном этапе // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Ботаника. 1972. Т. 1. С. 84−169.
  196. Т.И. Об основных «архитектурных моделях» травянистых многолетников и модусах их преобразования//Бюлл. МОИП. Отд. биол. 1977. Т. 82. Вып. 5. С. 112−128.
  197. Т.И. Об некоторых модусах морфологической эволюции цветковых растений // Ж. общ. биол. 1983. Т. 44. № 5. С. 579−593.
  198. Ю.М., Календарь Р. Н. Генетический полиморфизм ячменя, выявленный ПЦР с произвольными праймерами//Генетика. 1995. Т. 31. № 10. С. 1358−1364.
  199. Е. Н. Динамика вида. М.: Сельхозгиз, 1948. 526 с.
  200. Е.А., Пигулевская Т. К., Жукова Л. А. Морфологическая и физиологическая оценка онтогенеза Chelidonium majus (Papaveraceae) // Бот. ж. 2000. Т. 85. № 10. С. 55−61.
  201. М.А. Дикорастущие многолетние декоративные травянистые растения юга Дальнего Востока для зеленого строительства. Владивосток: Прим. кн. изд-во, 1960. С.32−33.
  202. М. Пороги для выживания: поддержание приспособленности и эволюционного потенциала // Биология охраны природы / Ред. М. Сулей, Б. Уилкокс. М.: Мир, 1983. С. 177−197.
  203. Г. Е. ДНК-маркеры в генетических исследованиях: типы маркеров, их свойства и области применения // Успехи соврем, биол. 2004. Т. 124. № 3. С. 260−271.
  204. В.В. Приспособленность, экологическая устойчивость и эволюция диплоидных организмов // Генетика. 2000. Т. 36. № 1. С. 5−16.
  205. А.Н. Генетическая дифференциация поселений Littorina brevicula (Mollusca: Gastropoda) в заливе Петра Великого (Японское море) // Генетика. 1995. Т. 31. № 4. С. 514 520.
  206. Л.В., Дымова О. В., Головко Т. К. Морфофизиологические и популяционные адаптации Ajuga reptans L. на северной границе ареала // Экология. 2001. № 3. С. 209−215.
  207. Тимофеев-Ресовский Н.В., Яблоков A.B., Глотов Н. В. Очерк учения о популяции. М.: Наука, 1973. 277 с.
  208. Е.А. Антэкология растений острова Врангеля // Бот. ж. 1976. Т. 61. № 2. С. 164−176.
  209. Е.А. Опыление и самоопылительный потенциал энтомофильных растений арктических и горных тундр Северо-Востока СССР // Экология. 1984. № 4. С. 8−15.
  210. В.Л. Ресурсы внутривидовой изменчивости дикорастущих травянистых растений, их изучение, сохранение и использование (на примере охраняемых и лекарственных видов). Автореф. дис. .доктора биол. наук. СПб. 1992. 40 с.
  211. В.Л. Долговременное хранение семян // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 3. С. 467 476.
  212. Тихонова B. J1., Лысых Н. И., Фирсанова В. М. Влияние замораживания на жизнеспособность семян дикорастущих растений // Бюлл. ГБС. 1997. Вып. 175. С. 83−90.
  213. В.Л., Макеева И. Ю., Хоциалова Л. И. Морфобиологические особенности семян копеечника альпийского // Бюлл. ГБС. 1984. Вып. 133. С. 93−97.
  214. В.Л., Яшина С. Г., Шабаева Э. В. Изучение роста и развития дикорастущих травянистых растений из семян, прошедших криоконсервацию // Биофизика живой клетки. 1994. Т. 6. С. 86−90.
  215. А.И. Введение в географию растений. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1974. 244 с.
  216. М.Р. Эколого-генетическая структура изменчивости в популяциях скерды кровельной {Crepis tectorum L.) // Экология. 2001. № 1. С. 38−43.
  217. М.Р., Махнев А. К. Возрастная структура популяций травянистых растений в условиях стресса (на примере Crepis tectorum L.) // Экология. 1999. № 2. С. 116−120.
  218. Р. Сообщества и экосистемы. М.: Прогресс, 1980. 328 с.
  219. А.А. Возрастной спектр фитоценопопуляций как функция времени и энергетических волновых процессов // Биол. науки. 1975. № 2. С. 7−33.
  220. А.А., Смирнова О. В. Классификация и основные черты развития популяций многолетних растений // Бюлл. МОИП. Отд. биол. 1969. Т. 74. Вып. 1. С. 119−134.
  221. К., ван дер Пэйл Л. Основы экологии опыления. М.: Мир, 1982. 384 с.
  222. Н.И., Мухаметзянова К. Ф. О фенотипическом разнообразии Delphinium dictyocarpum (Ranunculaceae) на Южном Урале // Бот. ж. 2002. Т. 87. № 10. С. 85−90.
  223. О.М., Олимпиенко Г. С. Генетическое разнообразие природных популяций Festuca pratensis в Карелии // Генетика. 1998. Т. 34. № з. С. 379−384.
  224. Фельбаба-Клушина Л. М. Особенности репродуктивной биологии и экология возобновления популяций Colchicum autumnale L. в биоценозах Карпат // Раст. ресурсы. 1995. Т. 31. Вып. 1. С. 24−36.
  225. Т.В. Фенологическая изоляция, фенотипическая и генетическая дифференциация популяций сосны обыкновенной на Северном и Южном Урале. Автореф. дис. .канд. биол. наук. Екатеринбург, 2001. 25 с.
  226. Л.И. Первые этапы онтогенеза Hedysarun alpinum L. и Lespedeza hedysaroides (Pall.) Kitag. в Читинской обл. // Раст. ресурсы. 1990. Т. 26. Вып. 3. С. 370−382.
  227. E.B. Структура популяций горца змеиного в условиях техногенного загрязнения // Экология. 1996. № 4. С. 307−309.
  228. С.С., Качура H.H. Редкие виды растений советского Дальнего Востока и их охрана. М.: Наука, 1981.234 с.
  229. К.Ф., Никулин A.B., Кирик А. И. Особенности онтогенеза и структуры ценопопуляций Sempervivum ruthenicum и Jovibarba sobolifera (Crassulaceae) бассейна Среднего Дона в связи с типом стратегии жизни // Бот. ж. 2003. Т. 88. № 4. С. 17−27.
  230. К.Ф., Скользнева JI.H. Состояние популяции Schivereckia podolica (Brassicaceae) на известняках севера Среднерусской возвышенности // Бот. ж. 2000. Т. 85. № 1. С. 104−108.
  231. Е.А. Особенности прорастания семян арктических растений (Западный Таймыр) // Бот. ж. 1993. Т. 78. № 2. С. 15−27.
  232. А.Б. Всхожесть семян двух видов Oxytropis после длительного хранения // Тез. VI молод, конф. ботаников в С.-Петербурге. СПб, 1997. С. 110.
  233. А.Б., Болтенков Е. В., Илюшко М. В., Воронков A.A. Внутривидовая изменчивость плодов и семян трех видов Iris L. Дальнего Востока // Раст. ресурсы. 1997. Т. 33. Вып. 1. С. 59−68.
  234. А.Б., Воронкова Н. М. Влияние замораживания на прорастание семян некоторых видов сем. Fabaceae флоры Дальнего Востока России // Раст. ресурсы. 2001. Т. 37. Вып. 2. С. 39−42.
  235. А.Б., Нестерова C.B., Воронкова Н.М Особенности прорастания семян дальневосточных леспедец // Труды Первой Всероссийской конференции по ботаническому ресурсоведению. С.-Пб, 1996. С. 84−85.
  236. А.Б., Нестерова C.B., Воронкова Н. М. Биология прорастания семян Thermopsis lupinoides (L.) Link// Раст. ресурсы. 1999. T. 35. Вып. 3. С. 43−50.
  237. A.JI., Никонов Г. К., Шварев И. Ф., Пименов М. Г. К вопросу о противоопухолевой активности природных кумаринов // Раст. ресурсы. 1965. Т. 1. Вып. 4. С. 507−511.
  238. М.М., Кострикова Л. Н. Семейство Fabaceae // Сравнительная эмбриология цветковых растений. Brunelliaceae-Tremandraceae / Отв. ред. М. С. Яковлев. Л.: Наука, 1985. С. 67−77.
  239. И.А., Гинцбург A.J1. ПЦР-генетическое типирование патогенных микроорганизмов // Генетика. 1995. Т. 31. № 5. С. 600−610.
  240. О.В. Популяционная изменчивость некоторых морфологических признаков костреца безостого в Коми АССР // Интродукция растений в Коми АССР / Труды Коми научного центра УрО АН СССР. Сыктывкар, 1989. № 102. С. 25−34.
  241. О.В. Внутривидовая изменчивость костреца безостого в республике Коми. Автореф. дис. .канд. биол. наук. Сыктывкар, 1998. 25 с.
  242. В.Ф., Тихменев Е. А. Цветение и плодоношение бобовых (Leguminosae) и норичниковых (Scrophulariaceae) на острове Врангеля // Бот. ж. 1971. Т. 56. № 3. С. 403−413.
  243. М.А., Шемберг E.H. Изменчивость и структура популяций Lonicera pallasii Ledeb. в Средней Сибири // Раст. ресурсы. 1994. Т. 30. Вып. 4. С. 29−35.
  244. И.Н., Челомина Г. Н. Оценка генетического разнообразия островных и материковых популяций дальневосточной полевки Microtus fortis (Rodentia, Cricetidae): данные RAPD-PCR анализа //N. Pac. Isl. biol. res. № 9. 2003. C. 1−18.
  245. E.M. Онтогенез Astragalus membranaceus в условиях Восточного Забайкалья II Труды Международ, конф. по анатомии и морфологии растений. С.-Пб, 1997. С. 331−332.
  246. .К. Oxytropis DC. (секции Baicalia) // Флора СССР. M.-JL: Изд-во Академии наук СССР, 1948. Т. 13. С. 192−206.
  247. И.И. Интеграция биологических систем и их саморегуляция // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1961. Т. 66. Вып. 2. С. 104−135.
  248. И.И. Факторы эволюции. Теория стабилизирующего отбора. М.: Наука, 1968. 261 с.
  249. И.В., Кричфалуший В. В. Биоморфологическая и эколого-ценотическая характеристика Allium ursinum L. в Карпатах //Раст. ресурсы. 1995. Т. 31. Вып. 5. С. 1−18.
  250. А.И. Лекарственная флора советского Дальнего Востока. М.: Медицина, 1975. 328 с.
  251. Е.Г. Дифференциация особей клевера лугового как один из механизмов устойчивости ценопопуляции // Биол. науки. 1985. № 3. С. 79−85.
  252. .А. Конспект системы секции Baicalia Bge. рода Oxytropis DC. II Новости систематики высших растений. М.: Наука, 1964а. С. 191−218.
  253. .А. Основные пути эволюции остролодочников секции Baicalia Bge. II Бот. ж. 19 646. Т. 49. № 5. С. 634−648.
  254. Юрцев Б.А. Oxytropis DC. II Арктическая флора СССР. Л.: Наука, 1986. Вып. 9. Ч. 2. С. 61−146.
  255. .А., Жукова П. Г. Полиплоидные ряды и таксономия (на материале анализа некоторых групп арктических бобовых) // Бот. ж. 1968. Т. 53. № 11. С. 1531−1542.
  256. A.B. Фенетика. Эволюция, популяция, признак. М.: Наука, 1980. 132 с.
  257. А.В. Состояние исследований и некоторые проблемы фенетики популяций // Фенетика популяций / Отв. ред. А. В. Яблоков. М.: Наука, 1982. С. 3−14.
  258. А.В. Популяционная биология. М.: Высш. шк., 1987. 303 с.
  259. А.В., Остроумов С. А. Уровни охраны живой природы. М.: Наука, 1985. 175 с.
  260. Г. П. Бобовые земного шара. Л.: Наука, 1991. 144 с.
  261. И.А. Популяционная структура дуба черешчатого в Среднем Поволжье // Экология. 1999. № 3. С. 182−188.
  262. Abrahamson W.G. Patterns of resource allocation in wildflower populations of fields and woods // Amer. J. Bot. 1979. V. 66. P. 71−79.
  263. Antonovics J., Levin D.A. The ecological and genetic consequences of density-dependent regulation in plants //Ann. Rev. Ecol. Syst. 1980. V. 11. P. 411−452.
  264. Archibald J.K., Wolf P.G., Tepedino V.J., Bair J. Genetic relationships and population structure of the endangered Steamboat buckwheat, Eriogonum ovalifolium var. williamsiae (Polygonaceae) // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 608−615.
  265. Arft A.M., Ranker T.A. Allopolyploid origin and population genetics of the rare orchid Spiranthes diluvialis II Amer. J. Bot. 1998. V. 85. P. 110−122.
  266. Argus G.W., Steele J.W. A reevaluation of the taxonomy of Salix tyrelli, a sand dunes endemic // Syst. Bot. 1979. V. 4. P. 163−177.
  267. Babbel G.R., Selander R.K. Genetic variability in edaphically restricted and widespread plant species // Evolution. 1974. V. 28. P. 619−630.
  268. Bascauf C.J., Snapp Sh. Population genetics of cedar-glade endemic Astragalus bibullatus (Fabaceae) using isozymes // Ann. Missouri Bot. Gard. 1998. V. 85. P. 90−96.
  269. Baskin J.M., Nan X., Baskin C.C. A comparative study of seed dormancy and germination in an annual and perennial species of Senna (Fabaceae) // Seed Sci. Res. 1998. Vol. 8. P. 501−512.
  270. Bayer R.J. Patterns of isozyme variation in western North American Antennaria (Asteraceae: Inuleae) II. Diploid and polyploid species of section Alpinae // Amer. J. Bot. 1989. V. 76. P. 679−691.
  271. Beet E.A. The genetics of sickle cell trait in a Bantu tribe // Ann. Eugenics. 1949. V. 14. P. 279−286.
  272. Berg R.L. The ecological significance of correlation pleiads // Evolution. 1960. V. 14. P. 171−180.
  273. Berry R.J. Inheritance and natural history. London, 1977. 350 p.
  274. Bonfil C. The effects of seed size, cotyledon reserves, and herbivory on seedling survival and growth in Quercus rugosa and Q. laurina (Fagaceae) // Amer. J. Bot. 1998. V. 85. P. 79−87.
  275. Bonnin I., Huguet Th., Gherardi M., Prosperi J.-M., Olivieri I. High level of polymorphism and spatial structure in a selfing plant species, Medicago truncatula (Leguminosae), shown using RAPD markers // Amer. J. Bot. 1996. V. 83. P. 843−855.
  276. Bonnin I., Prosperi J.-M., Olivieri I. Genetic markers and quantitative genetic variation in Medicago truncatula (Leguminosae): a comparative analysis of population structure // Genetics. 1996. V. 143. P. 1795−1805.
  277. Borba E.L., Felix J.M., Solferini V.N., Semir J. Fly-pollinated Pleurothallis (Orchidaceae) species have high genetic variability: evidence from isozyme markers // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 419−428.
  278. Bowers J.E. Plant geography of Southwestern sand dunes // Desert plants. 1984. V. 6. P. 31−54.
  279. Brant R.E., McKee G.W., Cleveland R.W. Effect of chemical and physical treatment on hard seed of Penngift crownvetch // Crop Sci. 1971. V. 11. P. 1−6.
  280. Bretagnolle F., Thompson J.D. Tansley review no. 78. Gametes with somatic chromosome number: mechanisms of their formation and role in the evolution of autopolyploid plants // New Phytol. 1995. V. 129. P. 1−22.
  281. Brown A.H.D. Enzyme polymorphism in plant population // Theoretical population biology. 1979. V. 15. P. 1−42.
  282. Casiva P.V., Saidman B.O., Vilardi J.C., Cialdella A.M. First comparative phonetic studies of Argentinean species of Acacia (Fabaceae), using morphometric, isozymal, and RAPD approaches // Amer. J. Bot. 2002. V. 89. P. 843−853.
  283. Casiva P.V., Vilardi J.C., Cialdella A.M., Saidman B.O. Mating system and population structure of Acacia aroma and A. macracantha (Fabaceae) // Amer. J. Bot. 2004. V. 91. P. 58−64.
  284. Chamberlain J.R. Isozyme variation in Calliandra calothyrsus (Leguminosae): its implications for species delimitation and conservation // Amer. J. Bot. 1998. V. 85. P. 37−47.
  285. Chamberlain J.R., Galwey N.W., Simons A.J. Population structure in Gliricidia sepium (Leguminosae) as revealed by isozyme variation // Silvae Genetica. 1996. V. 45. P. 112−118.
  286. Chalmers K.J., Waugh R., Sprent J.I., Simons A.J., Powell W. Detection of genetic variation between and within populations of Gliricidia sepium and G. maculata using RAPD markers // Heredity. 1992. V. 69. P. 465−472.
  287. Chmielewski J.G., Ringius G.S. Biomass-allocation patterns in populations of Trillium erectum and T. grandiflorum in southern Ontario // Can. J. Bot. 1987. V. 65. P. 1671 -1675.
  288. Chowdhury M.A., Slinkard A.E. Genetic diversity in grasspea (Lathyrus sativus L.) // Gen. Res. Crop Evol. 2000. V. 47. P.163−169.
  289. Clegg M.T., Brown A.H.D. The founding of plant populations / Eds. Schonewald-Cox Ch.M., Chambers S.M., Mac-Bryde B., Thomas W.L. Menlo Park, California: Benjamin-Cummings, 1983. P. 216 228.
  290. Coates D.J., Carstairs S., Hamley V.L. Evolutionary patterns and genetic structure in localized and widespread species in the Stylidium caricifolium complex (Stylidiacae) // Amer. J. Bot. 2003. V. 90. P. 997−1008.
  291. Cole C.T., Biesboer D.D. Monomorphism, reduced gene flow, and cleistogamy in rare and common species of Lespedeza (Fabaceae) // Amer. J. Bot. 1992. V. 79. P. 567−575.
  292. Cole C.T., Kuchenreuther M.A. Molecular markers reveal little genetic differentiation among Aconitum noveboracense and A. columbianum (Ranunculaceae) populations // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 337−347.
  293. Cook L.M., Soltis P. S., Brunsfeld S.J., Soltis D.E. Multiple independent formations of Tragopogon tetraploids (Asteraceae): evidence from RAPD markers // Mol. Ecology. 1998. V. 7. P. 1293−1302.
  294. Crawford D.J. Phylogenetic and systematic inferences from electrophoretic studies // Isozymes in plant genetics and breeding. Part A / Eds. Tanksley S.D., Orton T.J. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B.V., 1983. P. 257−287.
  295. Crawford D.J. Molecular markers for the study of genetic variation within and between populations of rare plants // Opera Bot. 1997. V. 132. P. 149−157.
  296. Crawford D.J., Esselman E.J., Windus J.L., Pabin C.S. Genetic variation in running buffalo clover (Trifolium stoloniferum: Fabaceae) using random amplified polymorphic DNA markers (RAPDs) // Ann. Missouri Bot. Gard. 1998. V. 85. P. 81−89.
  297. Daehler C.C., Yorkston M., Sun W., Dudley N. Genetic variation in morphology and growth characters of Acacia koa in the Hawaiian Islands // Int. J. Plant Sci. 1999. V. 160. P. 767−773.
  298. Dodd S.C., Helenurm K. Genetic diversity in Delphinium variegatum (Ranunculaceae): a comparison of to insular endemic subspecies and their widespread mainland relative // Amer. J. Bot. 2002. V. 89. P. 613−622.
  299. Evans M.E.K., Dolan R.W., Menges E.S., Gordon D.R. Genetic diversity and reproductive biology in Warea carteri (Brassicaceae), a narrowly endemic Florida scrub annual // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 372−381.
  300. Ewart A.J. On the longevity of seeds // Proc. Roy. Soc. Victoria. 1908. V. 21. P. 1−210.
  301. J. Bot. 2000. V. 87. P. 783−792. Godt M.J.W., Hamrick J.L. Genetic variation in Lathyrus latifolius (Leguminosae) // Amer. J. Bot. 1991. V. 78. P. 1163−1171.
  302. Godt M.J.W., Hamrick J.L. Genetic diversity and population structure in Tradescantia hirsuticaulis (Commelinaceae) // Amer. J. Bot. 1993. V. 80. P. 959−966.
  303. Godt M.J.W., Johnson B.R., Hamrick J.L. Genetic diversity and population size in four rare southern Appalachian plant species// Conservation Biology. 1996. V. 10. P. 796−805.
  304. Godt M.J.W., Walker J., Hamrick J.L. Genetic diversity in the endangered lily Harperocallis flava and a close relative, Tofieldia rasemosa II Conservation Biology. 1997. V. 11. P. 361−366.
  305. Gonzales-Benito E., Pita J.M., Perez C., Perez-Garsia F. Effect of cryopreservation on seed germination of different Leguminosae species // Basic and Applied Aspects of Seed Biology. Dordrecht, 1997. P. 797−802.
  306. Gottlieb L.D. Electrophoretic evidence and plant systematics // Ann. Missouri Bot. Gard. 1977. V. 64. P. 161−180.
  307. Gottlieb L.D. Conservation and duplication of isozymes in plants // Science. 1982. V. 216. P. 373−380.
  308. Grime J. Plant Strategies and Vegetation Processes. Chichester: J. Wiley Publ., 1979. 222 p.
  309. Guries R.P., Ledig F.T. Genetic diversity and population structure in pitch pine (Pinus rigida Mill.) // Evolution. 1982. V. 36. P. 387−402.
  310. Gutierrez J.F., Vaquero F., Vences F.J. Allopolyploid vs. autopolyploid origins in the genus Lathyrus (Leguminosae) // Heredity. 1994. V. 73. P. 29−40.
  311. Hamrick J.L. The distribution of genetic variation within and among natural plant populations // Genetics and conservation / Eds. Schonewald-Cox Ch.M., Chambers S.M., Mac-Bryde B., Thomas W.L. Menlo Park, California: Benjamin-Cummings, 1983. P. 335−348.
  312. Hamrick J.L., Godt M.J.W. Allozyme diversity in plant species // Plant population genetics, breeding, and genetic resources / Eds. Brown A.H.D., Clegg M.T., Kahler A.L., Weir B.S. Massachusetts: Sinauer Associates, Sunderland, 1989. P. 43−63.
  313. Hamrick J.L., Godt M.J.W., Sherman-Broyles S.L. Factors influencing levels of genetic diversity in woody plant species // New Forests. 1992. V. 6. P. 95−124.
  314. Hannan G.L., Orick M.W. Isozyme diversity in Iris cristata and the threatened glacial endemic I. lacustris (Iridacece) // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 293−301.
  315. Hardy O.J., Vekemans X. Patterns of allozyme variation in diploid and tetraploid Centaurea jacea at different spatial scales // Evolution. 2001. V. 55. P. 943−954.
  316. Harris H. Enzyme polymorphism in men // Proceed. Roy. Soc., London B. 1966. V. 164. P. 298−310.
  317. Haufler C.H. Electrophoresis in modifying our concepts of evolution in homosporous pteridophytes // Amer. J. Bot. 1987. V. 74. P.953−966.
  318. Hendrix S.D., Nielsen E., Nielsen T., Schutt M. Are seedlings from small seeds always inferior to seedlings from large seeds? Effects of seed biomass on seedling growth in Pastinaca sativa L. // New Phytol. 1991. V. 119. P. 299−305.
  319. Hiramatsu M., Li K., Okubo K., Huang K.L., Huang C.W. Biogeography and origin of Lilium longiflorum and L. formosanum (Liliaceae) endemic to the Ryukyu Archipelago and Taiwan as determined by allozyme diversity// Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 1230−1239.
  320. Hoelzel A.R., ed. Molecular genetic analysis of populations. A practical approach. Tokyo: IRL Press, 1992. 315 p.
  321. Horandl E., Greilhuber J. Diploid and autotetraploid sexuals and their relationships to apomicts in the Ranunculus cassubicus group: insights from DNA content and isozyme variation // Plant Syst. Evol. 2002. V. 234. P. 85−100.
  322. Hubby J.L., Lewontin R.C. A molecular approach to the study of genie heterozygosity in natural populations. I. The number of alleles at different loci in Drosophila pseudoobscura II Genetics. 1966. V. 54. P. 577−591.
  323. Hubby J.L., Throckmorton L.H. Protein differences of Drosophila. II. Comparative species genetics and evolutionary problems. // Genetics. 1965. V. 52. P. 203−215.
  324. Huff D.R., Peakall R., Smouse P.E. RAPD variation within and among natural populations of outcrossing buffalograss Buchloe dactyloides (Nutt.) Engelm. // Theor. Appl. Gen. 1993. V. 86. P. 927−934.
  325. Jenczewski E., Prosperi J.-M., Ronfort J. Evidence for gene flow between wild and cultivated Medicago sativa (Leguminosae) based on allozyme markers and quantitative traits // Amer. J. Bot. 1999a. V. 86. P. 677−687.
  326. Jorgensen J.L., Stehlik I., Brochmann C., Conti E. Implication of ITS sequences and RAPD markers for the taxonomy and biogeography of the Oxytropis campestris and O. arctica (Fabaceae) complexes in Alaska // Amer. J. Bot. 2003. V. 90. P. 1470−1480.
  327. Kan Y.W., Dozy A.M. Polymorphism of DNA sequence adjacent to the P-globin structural gene. Its relation to the sickle mutation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978. V. 75. P. 5631−5635.
  328. Kang S.S., Chung M.G. High level of allozyme variation within populations and low allozyme divergence within and among species of Hemerocallis (Liliaceae) // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 1634−1646.
  329. Karron J.D. A comparison of levels of genetic polymorphism and self-compatibility in geographically restricted and widespread plant congeners // Evol. Ecol. 1987. V. 1. P. 47−58.
  330. Karron J.D., Linhart Y.B., Chaulk C.A., Robertson C.A. Genetic structure of populations of geographically restricted and widespread species of Astragalus (Fabaceae) // Amer. J. Bot. 1988. V. 75. P. 11 141 119.
  331. Kephart S.R. Starch gel electrophoresis of plant isozymes: a comparative analysis of techniques // Amer. J. Bot. 1990. V. 77. P. 693−712.
  332. Kholina A.B., Koren O.G., Zhuravlev Yu.N. Allozyme variation in Oxytropis retusa Matsum. from the Kuril Archipelago // Natural History Research. Special Issue. 2000. № 7. P. 15−20.
  333. Kholina A.B., Koren O.G., Zhuravlev Yu.N. Allozyme Diversity of Two Rare Oxytropis Species in the Kuril Islands // Plants and Volcanoes. Abstr. of the Kamchatka Field Symposium. Vladivostok, 2001a. P. 38.
  334. Kholina A.B., Voronkova N.M., Zhuravlev Yu.N. Effect of deep freezing on seed germination in some native plants for the Kuril Islands // N. Pac. Isl. biol. res. № 1. 1999. P. 16−18.
  335. Kleinschmit J.R.G., Bacilieri R., Kremer a., Roloff A. Comparison of morphological and genetic traits of pedunculate oak (Q. robur L.) and sessile oak (Q. petraea (Matt.) Liebl.) // Silvae Genetica. 1995. V. 44. P. 256−269.
  336. Knapp E.E., Connors P.G. Genetic consequences of a single-founder population bottleneck in Trifolium amoenum (Fabaceae) // Amer. J. Bot. 1999. V. 86. P. 124−130.
  337. Koren O.G., Potenko V.V., Zhuravlev Yu.N. Inheritance and variation of allozymes in Panax ginseng C.A. Meyer (Araliaceae) // Int. J. Plant Sci. 2003. V. 164. P. 189−195.
  338. Krebs S.L., Hancock J.F. Tetrasomic inheritance of isoenzyme markers in the highbush blueberry, Vaccinium corymbosum L. // Heredity. 1989. V. 63. P. 11−18.
  339. Kruckeberg A.R., Rabinowitz D. Biological aspects of endemism in higher plants // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1985. V. 16. P. 447−479.
  340. Macdonald S.E., Chinnappa C.C., Reid D.M., Purdy B.G. Population differentiation of the Stellaria longipes complex within Saskatchewan’s Athabasca sand dunes // Can. J. Bot. 1987. V. 65. P. 1726−1732.
  341. Mahy G., Bruederle L.P., Connors B., van Hofwegen M., Vorsa N. Allozyme evidence for genetic autopolyploidy and high genetic diversity in tetraploid cranberry, Vaccinium oxycoccus (Ericaceae) //Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 1882−1889.
  342. Maki M. Genetic differentiation within and among island populations of the endangered plant Aster miyagii (Asteraceae), an endemic to the Ryukyu Islands // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 2189−2194.
  343. Maki M., Masuda M., Inoue K. Genetic diversity and hierarchical population structure of a rare autotetraploid plant, Aster kantoensis (Asteraceae) // Amer. J. Bot. 1996. V. 83. P. 296−303.
  344. Marshall D.L. Effect of seed size on seedling success in three species of Sesbania (Fabaceae) // Amer. J. Bot. 1986. V. 73. P. 457−464.
  345. Masterson J. Stomatal size in fossil plants: evidence for polyploidy in majority of angiosperms // Science. 1994. V. 264. P. 421−424.
  346. Matolweni L.O., Balkwill K., McLellan T. Genetic diversity and gene flow in the morphologically variable, rare endemics Begonia dregei and Begonia homonyma (Begoniaceae) // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 431−439.
  347. May B. Starch gel electrophoresis of allozymes // Molecular Genetic Analysis of Population: A Practical Approach / Ed. Hoelzel A.R. London: Oxford Univ. Press, 1992. P. 1−27 and 271−280.
  348. Mills L.S., Allendorf F.W. The One-Migrant-per-Generation Rule in Conservation and Management // Conservation Biology. 1996. V. 10. P. 1509−1518.
  349. Molina-Freaner F., Delgado P., Pinero D., Perez-Nasser N., Alvarez-Buylla E. Do rare pines need different conservation strategies? Evidence from three Mexican species // Can. J. Bot. 2001. V. 79. P. 131 138.
  350. Molina-Freaner F., Jain S.K. Isozyme variation in Californian and Turkish populations of the colonizing species Trifolium hirtum II J. Hered. 1992. V. 83. P. 423−430.
  351. Moody M.E., Mueller L.D., Soltis D.E. Genetic variation and random drift in autotetraploid populations // Genetics. 1993. V. 134. P. 649−657.
  352. Morse L.E. Plant rarity and endangerment in North America // Restoring diversity: strategies for reintroduction of endangered plants / Eds. D.A. Falk, C.I. Millar, M. Olwell. Washington, D.C.: Island Press, 1996. P. 7−22.
  353. Nassar J.M., Hamrick J.L., Fleming T.H. Population genetic structure of Venezuelan chiropterophilous columnar cacti (Cactaceae) // Amer. J. Bot. 2003. V. 90. P. 1628−1637.
  354. Neel J.V. The inheritance of sickle cell anemia // Science. 1949. V. 110. P. 64−66.
  355. Neel J.V., Satoh Ch., Goriki K. et al. The rate with which spontaneous mutation alters the electrophoretic mobility of polypeptides // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V. 83. P. 389−393.
  356. Neel M.C., Ellstrand N.C. Patterns of allozyme diversity in the threatened plant Erigeron parishii (Asteraceae) // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 810−818.
  357. Nei M. Interspecific gene differences and evolutionary time estimated from electrophoretic data on protein identity // Amer. Naturalist. 1971. V. 105. № 945. P. 385−398.
  358. Nei M. Genetic distance between populations // Amer. Naturalist. 1972. V. 106. № 949. P. 283−292.
  359. Nei M. Analysis of gene diversity in subdivided populations // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973. V. 70. P. 3321−3323.
  360. Nei M. Molecular population genetics and evolution. Amsterdam: North-Holland Publ. Co., 1975. 288 p.
  361. Nei M., Kumar S. Molecular evolution and phylogenetics. N.Y.: Oxford Univ. Press, 2000. 333 p.
  362. Nei M., Maruyama T., Chakraborty R. The bottleneck effect and genetic variability in populations // Evolution. 1975. V. 29. P. 1−10.
  363. Ness B.D., Soltis D.E., Soltis P. S. Autopolyploidy in Heuchera micrantha (Saxifragaceae) // Amer. J. Bot. 1989. V. 76. P. 614−626.
  364. Nevo E., Beiles A., Ben-Shlomo P. The evolutionary significance of genetic diversity: ecological, demographic and life history correlates // Lect. Notes Biomath. 1984. V. 53. P. 13−213.
  365. Olmstead R.G. Biological and historical factors influencing genetic diversity in the Scutellaria angustifolia complex (Labiatae) // Evolution. 1990. V. 44. P. 54−70.
  366. Oostermeijer J.G.B., den Nijs J.C.M., Raijmann L.E.L., Menken S.B.J. Population biology and management of the marsh gentian (Gentiana pneumonante L.), a rare species in the Netherlands // Bot. J. Linn. Soc. 1992. V. 108. P. 117−130.
  367. Oostermeijer J.G.B., van Eijck M.W., den Nijs J.C.M. Offspring fitness in relation to population size and genetic variation in the rare plant species Gentiana pneumonante (Gentianaceae) // Oecologia. 1994a. V. 97. P. 289−296.
  368. Oostermeijer J.G.B., van’t Veer R., den Nijs J.C.M. Population structure of the rare, long-lived perennial Gentiana pneumonante in relation to vegetation and management in the Netherlands // J. Appl. Ecol. 1994b. V.31.P. 428−438.
  369. Pappert R.A., Hamrick J.L., Donovan L.A. Genetic variation in Pueraria lobata (Fabaceae), an introduced, clonal, invasive plant of the southeastern United States // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 1240−1245.
  370. Pauling L., Itano H.H., Singer S.J., Wells I.C. Sickle cell anemia: a molecular disease // Science. 1949. V. 110. P. 543−548.
  371. Pleasant J.M., Wendel J.F. Genetic diversity in a clonal narrow endemic, Erythronium propullans, and its widespread progenitor, Erythronium albidum // Amer. J. Bot. 1989. V. 76. P. 1136−1151.
  372. Podolsky R.H., Holtsford T.P. Population structure of morphological traits in Clarkia dudleyana. I. Comparison of Fst between allozymes and morphological traits // Genetics. 1995. V. 140. P.733−744.
  373. Price M.V., Waser N.M. Pollen dispersal and optimal outcrossing in Delphinium nelsonii II Nature. 1979. V. 277. P. 294−297.
  374. Purdy B.G., Bayer R.J. Genetic diversity in the tetraploid sand dune endemic Deschampsia mackenzieana and its widespread diploid progenitor D. cespitosa // Amer. J. Bot. 1995a. V. 82. P. 121−130.
  375. Purdy B.G., Bayer R.J. Allozyme diversity in the Athabasca sand dune endemic, Salix silicicola, and the closely related widespread species S. alaxensis II Systematic Botany. 1995b. V. 20. P. 179−190.
  376. Purdy B.G., Bayer R.J. Genetic variation in populations of the endemic Achillea millefolium ssp. megacephala from the Athabasca sand dunes and the widespread ssp. lanulosa in western North America//Can. J. Bot. 1996. V. 74. P. 1138−1146.
  377. Purdy B.G., Bayer R.J., Macdonald S.E. Genetic variation, breeding system evolution, and conservation of the narrow sand dune endemic Stellaria arenicola and the widespread S. longipes (Caryophyllaceae) // Amer. J. Bot. 1994. V. 81. P. 904−911.
  378. Raelson J.V., Grant W.F. Evaluation of hypotheses concerning the origin of Lotus corniculatus (Fabaceae) using isoenzyme data // Theor. Appl. Genet. 1988. V. 76. P. 267−276.
  379. Ramsey J., Schemske D.W. Pathway, mechanisms, and rates of polyploid formation in flowering plant // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1998. V. 29. P. 467−501.
  380. Ramshaw J.A.M., Coyne J.A., Lewontin R.C. The sensitivity of gel electrophoresis as a detector of genetic variation// Genetics. 1979. V. 93. P. 1019−1037.
  381. Raymond S. Acrilamide gel electrophoresis // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1964. V. 121. P. 350−365.
  382. Richter T.S., Soltis P. S., Soltis D.E. Genetic variation within and among populations of the narrow endemic Delphinium viridescens (Ranunculaceae) // Amer. J. Bot. 1994. V. 81. P. 1070−1076.
  383. Rieseberg L.H., Doyle M.E. Tetrasomic segregation in the naturally occurring autotetraploid Allium nevii (Alliaceae) // Hereditas. 1989. V. 111. P. 31−36.
  384. Ringius G.S., Chmielewski J.G. Morphological variation within and among six populations of Trillium erectum in southern Ontario // Can. J. Bot. 1987. V. 65. P. 2450−2457.
  385. Rochefort R.M., Peterson D.L. Genetic and morphologic variation in Phyllodoce empetriformis and Phyllodoce glanduliflora (Ericaceae) in Mount Rainer National Park, Washington I I Can. J. Bot. 2001. V. 79. P. 179−191.
  386. Rogers J.S. Measures of genetic similarity and genetic distance. Univ. Texas Publ., 1972. P. 145−153.
  387. Rohlf F.G. NTSYS-pc: Numerical taxonomy and multivariate analysis system. N.Y.: Exter Publ., 1988.
  388. Roose M.L., Gottlieb L.D. Genetic and biochemical consequences of polyploidy in Tragopogon II Evolution. 1976. V. 30. P. 818−830.
  389. Runyeon H., Prentice H.C. Patterns of seed polymorphism and allozyme variation in the bladder campions, Silene vulgaris and Silene uniflora (Caryophyllaceae) // Can. J. Bot. 1997. V. 75. P. 1868−1886.
  390. Ruter J.M., Ingram D.L. Germination and morphology of Sophora secundiflora seeds following scarification // HortScience. 1991. Vol. 26. P. 256−257.
  391. Saiki R.K., Gelfand D.N., Stoffels S., Scharf S., Higuchi R.H., Horn G.T., Mullis K.B., Erlich H.A. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with thermostable DNA polymerase // Science. 1988. V. 239. P. 487−491.
  392. Samuel R., Pinsker W. Ehrendorfer F. Allozyme polymorphism in diploid and polyploid populations of Galium II Heredity. 1990. V. 65. P. 369−378.
  393. Sarthou C., Samadi S., Boisselier-Dubayle M.-C. Genetic structure of the saxicole Pitcairnia geyskesii (Bromeliaceae) on inselbergs in French Guiana // Amer. J. Bot. 2001. V. 88. P. 861−868.
  394. Schaal B.A. Reproductive capacity and seed size in Lupinus texensis II Amer. J. Bot. 1980. V. 67. P. 703 709.
  395. Schemske D.W., Husband B.C., Ruckelshaus M.N., Goodwillie C., Parker I.M., Bishop J. Evaluation approaches to the conservation of rare and endangered plants // Ecology. 1994. V. 75. P. 384−606.
  396. Schnabel A., Hamrick J.L. Organization of genetic diversity within and among populations of Gleditsia triacanthos (Leguminosae) //Amer. J. Bot. 1990. V. 77. P. 1060−1069.
  397. Schnabel A., Nason J.D., Hamrick J.L. Understanding the population genetic structure of Gleditsia triacanthos L.: seed dispersal and variation in female reproductive success // Mol. Ecology. 1998. V. 7. P. 819−832.
  398. Schoen D.J., Brown A.H.D. lntraspecific variation in population gene diversity and effective population size correlates with the mating system in plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. V. 88. P. 44 944 497.
  399. Segraves K.A., Thompson J.N., Soltis P. S., Soltis D.E. Multiple origins of polyploidy and the geographic structure of Heuchera grossulariifolia II Mol. Ecology. 1999. V. 8. P. 253−262.
  400. Semerikov V.L., Belyaev A. Y., Lascoux M. The origin Russian cultivars of red clover (Trifolium pratense L.) and their relationships to wild populations in the Urals // Theor. Appl. Genet. 2002. V. 106. P. 127−132.
  401. Shannon C.E., Weaver W. The mathematical theory of communication. Urbana: Univ. Illinois Press, 1949.
  402. Shaw C.R., Prasad R. Starch gel electrophoresis of enzymes a compilation of recipes // Biochem. Genet. 1970. V. 4. P. 297−320.
  403. Shibata T., Sakai E., Shimomura K. Effect of rapid freezing and thawing on hard-seed breaking in Astragalus mongolicus Bunge {Leguminosae) II J. Plant Physiol. 1995. Vol. 147. P. 127−131.
  404. Shore J.S. Tetrasomic inheritance and isozyme variation in Turnera ulmifolia vars. elegans Urb. and intermedia Urb. (Turneraceae) // Heredity. 1991. V. 66. P. 305−312.
  405. Silva-Montellano A., Eguiarte L.E. Geographic patterns in the reproductive ecology of Agave lechuguilla (Agavaceae) in the Chihuahuan desert. I. Floral characteristics, visitors, and fecundity // Amer. J. Bot. 2003a. V. 90. P. 377−387.
  406. Silva-Montellano A., Eguiarte L.E. Geographic patterns in the reproductive ecology of Agave lechuguilla (Agavaceae) in the Chihuahuan desert. II. Genetic variation, differentiation, and inbreeding estimates // Amer. J. Bot. 2003b. V. 90. P. 700−706.
  407. Slatkin M. Gene flow in natural populations // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1985. V. 16. P. 393−430. Slatkin M. Gene flow and the geographic structure of natural populations // Science. 1987. V. 236. P. 787 792.
  408. Slatkin M. A comparison of three indirect methods for estimating average levels of gene flow // Evolution. 1989. V. 43. P. 1349−1368.
  409. Smithies O. Zone electrophoresis in starch gels: Group variation in the serum proteins of normal humanadults // Biochem. J. 1955. V. 61. P. 151−169. Soejima A., Nagamasu H., Ito M., Ono M. Allozyme diversity and the evolution of Symplocos
  410. Soltis D.E., Soltis P. S. The dynamic nature of polyploid genomes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P.8089−8091.
  411. Soltis D.E., Soltis P. S. Polyploidy: recurrent formation and genome evolution II Trends Ecol. Evol. 1999. V. 14. P. 348−352.
  412. Soltis P. S., Soltis D.E. The role of genetic and genomic attributes in the success of polyploids // Proc. Natl.
  413. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. P. 7051−7057. Soltis P. S., Soltis D.E., Tucker T.L., Lang F.A. Allozyme variability is absent in the narrow endemic
  414. Bensoniella oregona (Saxifragaceae) // Conservation Biology. 1992. V. 6. P. 131−134.: Soule M.E. Allomeric variation. 1. The theory and some consequences II Amer. Naturalist. 1982. V. 120. № 6. P. 751−764.
  415. Spitze K. Population structure in Daphnia obtusa: quantitative genetic and allozyme variation // Genetics. 1993. V. 135. P. 367−374.
  416. Stamp N.E. Production and effect of seed size in a grassland annual (Erodium brachycarpum, Geraniaceae)
  417. Amer. J. Bot. 1990. V. 77. P. 874−882. STATISTICA for Windows (Computer program manual). Statistica. Statfort Inc. Tulsa, OK: Statfort, Inc., 1995.
  418. Stebbins G.L. Polyploidy in plants: unresolved problems and prospects // Polyploidy/ Ed. Lewis W.H. New
  419. York: Plenum, 1980. P. 495−520. Susko D.J., Lovett-Doust L. Patterns of seed mass variation and their effects on seedling traits in Alliaria petiolata (Brassicaceae) // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 56−66.
  420. Susko D.J., Mueller J.P., Spears J.F. An evaluation of methods for breaking seed dormancy in kudzu CPueraria lobata) II Can. J. Bot. 2001. V. 79. P. 197−203.
  421. Takahashi H. Pollen morphology of Japanese Oxytropis (Leguminosae) // Jpn. J. Palynol. 1995. V. 41. № 2. P. 91−97.
  422. Tanksley S.D., Orton T.J., eds. Isozymes in plant genetics and breeding. Amsterdam: Elsevier Science Publishers B.V., 1983. Part A, 516 p. Part B, 472 p.
  423. Tecic D.L., McBride J.L., Bowles M.L., Nickrent D.L. Genetic variability in the federal threatened mead’s milkweed, Asclepias meadii Torrey (Asclepiadaceae), as determined by allozyme electrophoresis // Ann. Missouri Bot. Gard. 1998. V. 85. P. 97−109.
  424. Thompson J.D., Lumaret R. The evolutionary dynamics of polyploid plants: origins, establishment and persistence // Trends Ecol. Evol. 1992. V. 7. P. 302−307.
  425. Thompson K., Stewart A.J.A. The measurement and meaning of reproductive effort in plants // Amer. Naturalist. 1981. V. 117. № 2. P. 205−211.
  426. Torres E., Iriorondo J.M., Perez C. Genetic structure of an endangered plant, Antirrhinum microphyllum (Scrophulariaceae): allozyme and RAPD analysis // Amer. J. Bot. 2003. V. 90. P. 85−92.
  427. Triest L., Kabir S.M.G. The use of allozyme at three life stages influenced genetic variation analysis and clustering in Cicer arietinum germplasm collections // Euphytica. 2000. V. 112. P. 109−115.
  428. Turner M.E., Stephens J.C., Anderson W.W. Homozygosity and patch structure in plant populations as a result of nearest-neighbor pollination // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V. 79. P. 203−207.
  429. Watanabe K., Peloquin S.J., Endo M. Genetic significance of mode of polyploidization: somatic doubling or 2n gametes? // Genome. 1991. V. 34. P. 28−34.
  430. Watson L.E., Uno J.E., McCarty N.A., Kornkven A.B. Conservation biology of a rare plant species, Eriocaulon kornickianum (Eriocaulaceae) // Amer. J. Bot. 1994. V. 81. P. 980−986.
  431. Weeden N.F., Doyle J.J., Lavin M. Distribution and evolution of a glucosephosphate isomerase duplication in the Leguminosae // Evolution. 1989. V. 43. P. 1637−1651.
  432. Welsh J., McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. P. 7213−7218.
  433. Wiens D., Nickrent D.L., Davern C.I., Calvin C.L., Vivrette N.J. Developmental failure and loss of reproductive capacity in the rare palaeoendemic shrub Dedeckera eurekensis II Nature. 1989. V. 338. P. 65−67.
  434. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers //Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. P. 6531−6535.
  435. Williamson P. S., Werth S.R. Levels and patterns of genetic variation in the endangered species Abronia macrocarpa (Nyctaginaceae) // Amer. J. Bot. 1999. V. 86. P. 293−301.
  436. Wolf A.T., Howe R.W., Hamrick J.L. Genetic diversity and population structure of the serpentine endemic Calystegia collina (Convolvulaceae) in northern California // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 11 381 146.
  437. Wolf P.G., Soltis P. S., Soltis D.E. Autopolyploid evolution in Heuchera grossulariifolia (Saxifragaceae) // Amer. J. Bot. 1987. V. 74. P. 767. Abstr.
  438. Wolf P.G., Soltis D.E., Soltis P. S. Chloroplast-DNA and allozyme variation in diploid and autotetraploid Heuchera grossulariifolia (Saxifragaceae) // Amer. J. Bot. 1990. V. 77. P. 232−244.
  439. Wright S. Isolation by distance // Genetics. 1943. V. 28. P. 114−138.
  440. Wright S. The genetical structure of population. Ann. Eugen. 1951. V. 15. P. 323−354.
  441. Wright S. Evolution and genetics of populations. Chicago: Univ. Chicago Press, 1969. V. 2. 511 p.
  442. Wulff R.D. Seed size variation in Desmodium paniculatum I. Factors affecting seed size // J. Ecol. 1986. V. 74. P. 87−97.
  443. Zawko G., Krauss S. L., Dixon K. W., Sivasithamparam K. Conservation genetics of the rare and endangered Leucopogon obtectus (Ericaceae)// Mol. Ecology. 2001. V. 10. P. 2389−2396.
  444. Zhang J. Seed dimorphism in relation to germination and growth of Cakile edentula // Can. J. Bot. 1993. V. 71. P. 1231−1235.
  445. Zoro Bi I., Maquet A., Baudoin J.-P. Population genetic structure of wild Phaseolus lunatus (Fabaceae), with special reference to population sizes // Amer. J. Bot. 2003. V. 90. P. 897−904.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!