Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Методы ядерной медицины в изучении патогенеза бактериальной транслокации абдоминального происхождения

Диссертация: Методы ядерной медицины в изучении патогенеза бактериальной транслокации абдоминального происхождения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Учитывая вышеизложенное, представляется важным разработка радио-нуклидного метода, направленного на регистрацию прямых признаков БТ, включающего способ метки микроорганизмов радиоактивным маркером и метод их сцинтиграфической визуализации, использование которого позволит выявить закономерности распространения бактериальных клеток в условиях распространенного гнойного перитонита, роль транслокации… Читать ещё >

Методы ядерной медицины в изучении патогенеза бактериальной транслокации абдоминального происхождения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Бактериальная сцинтиграфия в исследовании миграции бактериальных клеток (обзор литературы)
    • 1. 1. Исторические аспекты исследования патогенетической роли бактериальной транслокации
    • 1. 2. Методы визуализации (исследования) распространения бактерий
    • 1. 3. Методы ядерной медицины в изучении бактериальной транслокации
    • 1. 4. Препараты для радионуклидного исследования миграции бактерий (история вопроса)
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Общая характеристика клинических групп
    • 2. 2. Методы исследования
    • 2. 3. Общая характеристика экспериментального материала
    • 2. 4. Методы исследования in vitro
    • 2. 5. Методы исследования in vivo (эксперименты на животных)
    • 2. 6. Сцинтиграфия
    • 2. 7. Бактериологические и патоморфологические исследования
    • 2. 8. Методы статистической обработки результатов

    Глава 3. Результаты применения гепатобилисцинтиграфии для выявления косвенной сцинтиграфической семиотики бактериальной транслокации у пациентов с воспалительными процессами в гепатодуоденальной области.

    Глава 4. Разработка технологии получения бактериального радионуклидного препарата для исследования бактериальной транслокации методом сцинтиграфии.

    4.1. Оценка накопления радионуклида технеция-99т в ходе естественного метаболизма бактериальной клетки.

    4.2. Определение локализации радионуклида по отношению к клеточной мембране Е. coli.

    4.3. Оценка эффективности различных способов очистки взвеси бактерий Е. coli, меченных технецием-99т, от несвязанного радионуклида.

    4.4. Влияние реагента «Пирфотех, 99тТс» на связывание технеция-99т клетками Е. coli.

    4.5. Влияние количества радиоактивной метки (активности технеция-99ш) на связывание данного радионуклида клетками Е. coli.

    4.6. Обработка данных сцинтиграфии.

    Глава 5. Результаты исследования бактериальной транслокации у здоровых животных методом бактериальной сцинтиграфии.

    5.1. Создание моделей для количественной оценки бактериальной транслокации и перитонеальной резорбции.

    5.2. Транслокация Е. coli из просвета кишечника в норме у крупных лабораторных животных (собаки).

    5.3. Транслокация Е. coli из просвета кишечника в норме у мелких лабораторных животных (крысы).

    Глава 6. Сцинтиграфческое исследование бактериальной транслокации в условиях распространенного перитонита.

    6.1. Характер индуцированного перитонита.

    6.2. Сравнительная оценка параметров бактериальной транслокации до

    6 часов после индукции перитонита.

    6.3. Сравнительная оценка параметров бактериальной транслокации при 612-часовом перитоните.

    6.4. Параметры бактериальной транслокации при релапаротомии и манипуляциях на кишечнике в условиях распространенного гнойного перитонита.

    Глава 7. Результаты исследования бактериальной транслокации в условиях аспленизации методом бактериальной сцинтиграфии.

    7.1. Морфологическая характеристика состояния печеночного барьера в условиях аспленизации.

    7.2. Оценка параметров бактериальной транс локации в условиях индуцированного гипоспленизма.

    Глава 8. Сцинтиграфическое исследование бактериальной транслокации в условиях странгуляционной непроходимости кишечника.

    8.1. Морфологическая характеристика странгуляционной непроходимости кишечника.

    8.2. Оценка параметров бактериальной транслокации при странгуляционной непроходимости кишечника.

    Глава 9. Сцинтиграфическое исследование бактериальной транслокации в условиях обтурационной непроходимости кишечника.

    9.1. Морфологическая характеристика обтурационной непроходимости кишечника.

    9.2. Оценка параметров бактериальной транслокации при обтурационной непроходимости кишечника.

Актуальность проблемы.

Актуальность работы связана с тем, что на сегодняшний день в арсенале методов ядерной медицины отсутствуют технологии, позволяющие исследовать механизмы развития и течения абдоминального сепсиса. Методы ядерной медицины достаточно широко применяются в диагностике инфекционных и воспалительных процессов [50, 146, 455], в том числе абдоминальной локализации [162, 443]. В свою очередь, процесс перемещения облигатной микрофлоры кишечника за пределы кишечной стенки в другие органы и ткани, определяемый как бактериальная транслокация, сопровождает многие патологические состояния и на современном этапе развития медицины вызывает большой интерес со стороны врачей различных специальностей. В связи с этим, разработка способа метки бактерий радионуклидом и методов сцинти-графической визуализации, составляющие технологию бактериальной сцин-тиграфии, позволит поднять на принципиально новый уровень исследования миграции бактерий в процессе формирования абдоминального сепсиса, а так же оценить эффективность различных лечебных мероприятий.

Преимущества динамического радионуклидного исследования — непрерывное наблюдение в реальном масштабе времени, возможность синхронной регистрации процессов на локальном и системном уровнях, анализ не только качественной, но и количественной информации, побудили нас разработать метод бактериальной сцинтиграфии и применить его для исследования закономерностей бактериальной транслокации (БТ) и перитонеальной резорбции (ПР) на моделях, которые были апробированы при распространенном гнойном перитоните [15, 118, 119], спленэктомии и гипоспленизме [7, 67], стран-гуляционной и обтурационной кишечной непроходимости [94].

Одним из ключевых звеньев патогенеза острой хирургической патологии живота (перитонит, острая непроходимость кишечника) и последствий хирургических вмешательств (программированная релапаротомия, назоинте-стинальная интубация, спленэктомия) считается транслокация бактерий и резорбция токсинов из просвета кишечной трубки [40, 44, 397]. Источником интоксикации при этом является тонкая кишка [9, 66].

Отдельные вопросы патогенеза распространенного гнойного перитонита, гипоспленизма, острой кишечной непроходимости, связанные, прежде всего, с механизмами эндотоксикоза, остаются до конца не изученными и дискутабельными [49, 116, 279, 281].

Диагностика феномена БТ в клинике в настоящее время направлена, в основном, на бактериологическое обнаружение микроорганизмов в биологических жидкостях и тканях постфактум, а также на выявление косвенных признаков миграции бактерий по результатам водородного дыхательного теста [399], определения липополисахаридсвязывающего белка [129] и бактериальной ДНК в крови [235].

Наряду с этим, предпринимаются попытки регистрировать косвенные признаки БТ с применением методов ядерной медицины, а именно — радио-нуклидного исследования гепатобилиарной системы [85].

Учитывая вышеизложенное, представляется важным разработка радио-нуклидного метода, направленного на регистрацию прямых признаков БТ, включающего способ метки микроорганизмов радиоактивным маркером и метод их сцинтиграфической визуализации, использование которого позволит выявить закономерности распространения бактериальных клеток в условиях распространенного гнойного перитонита, роль транслокации бактерий и причины формирования печеночной недостаточности в условиях послеоперационного гипоспленизма, а также закономерности транслокации бактерий и проведение углубленного анализа механизмов патогенеза странгуляцион-ной и обтурационной кишечной непроходимости.

Цель работы: разработать технологию бактериальной сцинтиграфии и на ее основе исследовать механизмы развития и течения БТ абдоминального происхождения.

Задачи:

1. Определить диагностические возможности динамической сцинтиграфии гепатобилиарной системы (гепатобилисцинтиграфии) в оценке косвенных признаков БТ абдоминального происхождения.

2. Создать бактериальный радионуклидный препарат (БРП) — меченные технецием-99ш живые бактерии Е. coli с максимальной степенью поглощения радионуклидной метки внутриклеточными структурами кишечной палочки, и разработать оптимальный способ его очистки от несвязанного радионуклида.

3. Разработать метод бактериальной сцинтиграфии и предложить алгоритм обработки получаемых данных для определения индекса транслокации (ИТ) или индекса резорбции (ИР) с учетом распада радиоактивного маркера.

4. С помощью метода бактериальной сцинтиграфии выявить закономерности БТ и ПР меченных технецием-99ш Е. coli в условиях экспериментального перитонита и определить степень влияния операционной травмы кишечной трубки на характер миграции бактерий.

5. Методом бактериальной сцинтиграфии изучить динамику БТ в процессе формирования постспленэктомического гипоспленизма.

6. Предложить методологию сцинтиграфического исследования для раскрытия механизмов БТ при странгуляционной и обтурационной кишечной непроходимости.

Научная новизна.

Создан БРП (меченные технецием-99т живые бактерии Е. coli), отвечающий условиям применения методов ядерной медицины для изучения процессов БТ и ПР при моделировании любых инфекционных воспалительных процессов на крупных и мелких лабораторных животных.

Разработан радионуклидный метод исследования (бактериальная сцин-тиграфия), позволяющий визуально оценивать процессы микробной транслокации и резорбции, а также определять их временные и количественные характеристики.

С помощью метода бактериальной сцинтиграфии выявлены закономерности интестиногенного распространения инфекционного процесса на регионарный (портальная система) и системный (генерализация бактериемии) уровни в динамике экспериментального перитонита.

Подробно изучено патогенетическое звено эндотоксемии, обусловленное транслокацией микроорганизмов из просвета кишечника и дальнейшей их резорбцией из брюшной полости на ранних стадиях гнойного перитонита.

Установлено влияние хирургического вмешательства при перитоните на параметры транслокации условно патогенной микрофлоры через кишечный барьер.

Подтверждена роль БТ в патогенезе печеночной недостаточности в условиях гипоспленизма.

С помощью методов ядерной медицины изучены различия в механизмах формирования абдоминального сепсиса при странгуляционной и обтураци-онной кишечной непроходимости.

Доказана ведущая патогенетическая роль ишемии ущемленного отдела тонкой кишки в развитии эндотоксемии при странгуляционной кишечной непроходимости.

Установлена роль БТ в генезе бактериемии при обтурационной непроходимости кишечника.

Практическая значимость.

Разработана технология получения БРП, перспективного для сцинти-графической визуализации процессов БТ и резорбции при различных формах абдоминального сепсиса.

Результаты, раскрывающие механизмы развития абдоминального сепсиса при распространенном перитоните, спленэктомии и различных видах механической непроходимости кишечника на всех этапах развития патологии, позволяют экспериментально обосновать целесообразность применения сорбционных технологий и модификации хирургической тактики при этих заболеваниях.

Внедрение в практику.

Полученный БРП используется в Учреждении Российской академии медицинских наук Научном центре реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН (НЦРВХ СО РАМН) для сцинтиграфи-ческой визуализации миграции бактерий в организме лабораторных животных при различной патологии.

Разработанная методика оценки распространения бактериальных клеток при перитоните используется в НЦРВХ СО РАМН для экспериментальной апробации предлагаемых методов детоксикации.

Результаты диссертационного исследования используются в учебном процессе госпитальной хирургической клиники Государственного бюджетного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Иркутский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ГБОУ ВПО ИГМУ Минздравсоцразвития РФ) и в НЦРВХ СО РАМН.

По результатам разработанной технологии плучены патенты Российской Федерации:

1. Способ приготовления бактериального радиофармпрепарата: Пат. 2 255 748 Рос. Федерация: МПК7 А 61 К 35/74, 51/00 / А. Г. Кувшинов, Е. А. Ильичева, С. А. Лепехова, А. Ю. Шамеев, Е. В. Коваль, Т. В. Фадеева, Д. И. Максиков, Ю. М. Галеев, М. В. Попов. Заявлено 26.05.03- Опубл.

10.07.05, Бюл.№ 19.

2. Способ оценки бактериемии перитонеального происхождения в эксперименте: Пат. 2 275 859 Рос. Федерация: МПК7 А 61 В 6/00 / Ю. М. Галеев, М. В. Попов, О. В. Салато, К. А. Апарцин, Е. В. Коваль. Заявлено 09.12.04- Опубл. 10.05.06, Бюл. № 13.

3. Способ радионуклидной маркировки бактерий кишечной палочки для сцинтиграфических исследований: Пат. 2 290 643 Рос. Федерация: МПК7 G 01 N 33/60- G 12 N 1/20 / О. В. Салато, Ю. М. Галеев, М. В. Попов, Е. В. Коваль, С. А. Лепехова, Т. В. Фадеева. Заявлено 12.07.05- Опубл.

27.12.06, Бюл. № 36.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Сцинтиграфический метод, основанный на использовании БРП, полученного с помощью витальной внутриклеточной маркировки Е. coli технеци-ем-99т, позволяет визуализировать процесс БТ и изучать его закономерности на моделях абдоминального воспаления у различных видов лабораторных животных.

2. В процессе развития перитонита БТ из просвета кишечника становится доминирующим путём системного распространения патогенов, резко усиливаясь после хирургического вмешательства, сопровождаемого манипуляциями на кишечнике.

3. Гипоспленизм индуцирует транслокацию бактерий из желудочно-кишечного тракта.

4. В процессе развития странгуляционной непроходимости кишечника происходит миграция бактерий из просвета ущемленного отдела тонкой кишки в брюшную полость, после чего, микрофлора указанного отдела кишечника становится источником развития системной бактериемии за счет ПР, а микрофлора тонкой кишки выше уровня странгуляции приобретает роль патогенетического фактора портальной бактериемии за счет миграции микроорганизмов. При обтурационной непроходимости микрофлора тонкой кишки становится источником портальной бактериемии только в терминальной фазе патологического процесса.

Апробация основных положений работы.

Материалы исследования представлены на Невском радиологическом форуме (Санкт-Петербург, 2003), на Всероссийской научно-практической конференции «Избранные вопросы ядерной медицины» (Дубна, 2004), на международной конференции «Сепсис: патогенез, диагностика и терапия» (Харьков, 2004), на научно-практической конференции «Новое в реконструктивной хирургии» (Москва, 2004), на Всероссийском научном форуме «Достижения и перспективы современной лучевой диагностики» (Москва, 2004), на Всероссийской научно-практической конференции хирургов «Сложные и нерешённые вопросы диагностики и лечения острого аппендицита, острой кишечной непроходимости и сочетанной травмы» (Санкт-Петербург, 2004), на международном конгрессе молодых ученых и специалистов «Наука о человеке» (Томск, 2004), на научно-практической конференции хирургов Иркутской области (Иркутск, 2004), на научно-практической конференции «Актуальные проблемы клинической медицины» (Иркутск, 2004), на научно-практической конференции «Актуальные вопросы хирургии» (Челябинск, 2004), на международной дистанционной научно-практической конференции «Новые технологии в медицине» (Санкт-Петербург, 2005), на международном хирургическом конгрессе «Новые технологии в хирургии» (Ростов-на-Дону, 2005), на научно-практической конференции с участием специалистов стран ближнего и дальнего зарубежья «Новые технологии в диагностике, интервенционной радиологии, хирургии печени и поджелудочной железы» (Санкт-Петербург, 2005), на Всероссийской научно-практической конференции «Современные методы диагностики и лечения заболеваний в клинике и в эксперименте» (Москва, 2005), на международной дистанционной научно-практической конференции «Новые технологии в медицине» (Санкт-Петербург, 2006), на Всероссийском форуме «Радиология 2006» (Москва, 2006), на международной конференции «Сепсис: проблемы диагностики, терапии и профилактики» (Харьков, 2006), на Всероссийской научно-практической конференции «Многопрофильная больница: проблемы и решения» (Ленинск-Кузнецкий, 2006), на научно-практической конференции «Актуальные вопросы хирургии» (Челябинск, 2006), в материалах 12-ой Российской гастроэнтерологической недели (Москва, 2006), на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы флебологии. Распространённый перитонит» (Барнаул, 2007), на международной медицинской научной конференции между Автономной Республикой Внутренней Монголии, КНР и Республикой Бурятии РФ (Китай, Маньчжурия, 2007), на Всероссийской научно-практической конференции «Современные аспекты кишечной непроходимости» (Анапа, 2007), в материалах 14-ой Российской гастроэнтерологической недели (Москва, 2009), на 56-ом ежегодном съезде Общества ядерной медицины (Канада, Торонто, 2009), на ежегодном конгрессе Европейской ассоциации ядерной медицины (Испания, Барселона, 2009).

Основные положения диссертационного исследования опубликованы в 54 работах, в том числе в 14 статьях из списка журналов, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства образования и науки Российской Федерации для опубликования материалов докторских диссертаций, в 2 монографиях (в соавторстве) и 3 патентах Российской Федерации.

Структура и объем работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы о материалах и методах исследования, семи глав собственных наблюдений, заключения, выводов, практических рекомендаций, указателя литературы.

ВЫВОДЫ.

1. Косвенные признаки БТ у больных с воспалительными процессами в гепатодуоденальной области, выявляемые в процессе гепатобилисцинтигра-фии (нарушения поглотительно-выделительной функции гепатоцитов и на-копительно-эвакуаторной функции желчного пузыря), носят неспецифический характер.

2. Предлагаемая технология маркировки бактерий Е. coli технецием-99т позволяет получить БРП без потери жизнеспособности и активности использованных микроорганизмов. Произведенный индикатор предназначен для сцинтиграфической визуализации процессов распространения бактерий в организме при абдоминальной патологии.

3. Разработанный метод бактериальной сцинтиграфии с алгоритмом обработки результатов, включающим в себя визуальную оценку распространения меченых радионуклидом бактерий, построение кривых «активность-время» и расчет индекса транслокации/резорбции, в совокупности дают возможность не только качественно анализировать полученные данные, но и производить количественную оценку процессов микробной миграции.

4. Доминирующим источником поступления Е. coli в системную циркуляцию на ранних (0−6 часов) стадиях перитонита является полость брюшины, на что указывает высокий (59,2% (58,4−63,3)) сцинтиграфический индекс транслокации/резорбции БРП. При этом микроорганизмы, поступающие в портальный кровоток из полости кишечника, эффективно задерживаются печеночным фильтром, в связи с чем, именно в области печени регистрируется максимальный уровень накопления радиоактивности.

5. В терминальной стадии экспериментального перитонита (6−12 часов) происходит смена приоритетов источников бактериальной токсинемии за счет резкого снижения ПР (ИР — 10,9% (9,3−14,7)) и сохранения на прежнем уровне транслокации Е. coli из полости кишечника (ИТ — 35% (30,9−36,4)) с развитием несостоятельности печеночного барьера, сцинтиграфическими признаками чего являются снижение интенсивности накопления радиоактивности в печени и появление её в мягких тканях.

6. Операционная травма во время релапаротомии с манипуляциями на кишечнике в условиях распространенного гнойного перитонита вызывает активацию процессов проникновения бактерий в кровоток из просвета кишечной трубки, а также их распространение в органах и тканях, о чем свидетельствует резкое убывание сцинтилляционного счета при построении кривой «активность-время» с области кишечника, в то время как кривые с области сердца и печени, напротив, демонстрируют массивное поступление меченой радионуклидом кишечной палочки в эти органы с током крови.

7. При использовании разработанного метода визуализации было зафиксировано, что при формировании постспленэктомического гипосплениз-ма происходит транслокация кишечной микрофлоры в портальный, а затем и в системный кровоток с развитием бактериемии, что подтверждало появление очагов радиоактивности в области печени, почек и мочевого пузыря.

8. Бактериальная сцинтиграфия позволяет выявить патогенетические закономерности развития бактериемии при странгуляционной кишечной непроходимости, связанные с особенностями транслокации Е. coli из просвета ущемленного отдела тонкой кишки в брюшную полость с последующей резорбцией в системный кровоток, а из приводящего отдела тонкой кишки — в портальную систему. Об этом свидетельствуют сцинтиграммы, на которых было зафиксировано характерное распределение БРП — появление очагов радиоактивности в месте прилегания ущемленной петли кишечника к париетальной брюшине, затем в проекции печени, сердца, мягких тканей, почек и мочевого пузыря. При этом микрофлора ущемленной петли тонкой кишки (ИТ — 12,7% (9,3−15,3)) становится основным, по отношению к приводящему отделу (ИТ — 3,6% (2,3−3,8)) источником развития системной бактериемии.

9. Результаты бактериальной сцинтиграфии свидетельствуют о том, что на ранних (12−16 часов) сроках развития обтурационной тонкокишечной непроходимости активации механизмов БТ не происходит, поскольку экстра-интестинальных очагов радиоактивности зарегистрировано не было. Закономерности перемещения бактерий из кишечной трубки в терминальной стадии обтурационной тонкокишечной непроходимости сводятся к развитию портальной бактериемии (24−28 часов) — регистрация очагов радиоактивности в области печениа затем и системной бактериемии (36−40 часов), ассоциированной с несостоятельностью печеночного барьера для Е. соИ. — очаги радиоактивности в проекции печени, почек, мочевого пузыря и ее наличие в мягких тканях.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Для сцинтиграфического изучения закономерностей развития БТ целесообразно использовать БРП на основе меченной технецием-99ш Е. coli.

2. Лечебную тактику у пациентов с бактериемией абдоминального происхождения следует выбирать с учетом особенностей сцинтиграфической картины развития эндогенной интоксикации.

В раннем периоде развития патологического процесса визуализируется массивное поступление БРП в мягкие ткани с минимальным поступлением последнего в печень, почки, мочевой пузырь — это свидетельствует о том, что наиболее значимым источником бактериальной токсинемии является всасывание патогенного материала из полости брюшины.

В дальнейшем, по мере прогрессирования бактериемии на сцинтиграммах регистрируются очаги аккумуляции радиоактивного индикатора в печени, сердце, минимально в мягких тканях, что является показателем миграции меченых бактерий из просвета кишечной трубки в портальный кровоток и системную циркуляцию.

3. Манипуляции на кишечной трубке у больных перитонитом должны быть максимально щадящими в связи с возможностью развития инфекцион-но-токсического шока, обусловленного массивным поступлением микроорганизмов на системный уровень за счет БТ.

4. Профилактика постспленэктомических осложнений в раннем послеоперационном периоде должна включать антибактериальные компоненты, а также мероприятия, направленные на профилактику и коррекцию печеночной и почечной недостаточности.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Авакян Л. А. Значение бактериальной транслокации и её роль в формировании симбиотических отношений с макроорганизмом // Доклады Национальной академии наук Республики Армения. 2008. -№ 3, Т. 108-С. 262−269.
  2. Д.А. Роль нарушений микроциркуляции стенки тонкой кишки в развитии острой энтеральной недостаточности при распространенном перитоните (экспериментально-клиническое исследование): Автореф. дис.. канд. мед. наук. Астрахань, 2009. — 24 с.
  3. К.Х., Бондаренко В. М. Моделирование транслокации кишечной микрофлоры на конвенциональных животных // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. -1991.- № 8. С. 11−17.
  4. К.Х., Бондаренко В. М., Горская Е. М. и др. Профилактика транслокации кишечной микрофлоры после выведения организма из терминального состояния // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. 1992. — № 5−6. — С. 11−14.
  5. Е. В. Швейнов И.А. Морфометрические показатели состояния ткани печени при полиорганной недостаточности на фоне острой патологии органов брюшной полости // Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2009. — № 4. — С. 76−80.
  6. К.А. Последствия спленэктомии // В кн. Органосохраняющая хирургия селезенки / под ред. Е. Г. Григорьева, К. А. Апарцина. Новосибирск: Наука, 2001. — С. 115−121.
  7. К.А. Хирургическая профилактика и способы коррекции послеоперационного гипоспленизма: дис.. д-ра мед. наук. Иркутск, 2001. -288 с.
  8. Н.И. Закономерности развития гипоспленизма после вмешательств на селезенке (экспериментально-клиническое исследование): дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 2001. — 13 8 с.
  9. С.Ф. Шок: теория, клиника, организация противошоковой помощи / под общ. ред. С. Ф. Багненко, Г. С. Мазуркевич. СПб.: Политехника, 2004. — 539 с.
  10. Ю.Белобородова Н. В., Бирюков А. В. Проницаемость кишечного барьера // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1992. — № 3. -С. 52−55.
  11. .А., Цветцих В. Е., Лернер Г. Я. и др. Значение аутогенного инфицирования в развитии послеоперационных осложнений // Хирургия. 1993,-№ 5.-С. 63−66.
  12. Биотехнология. Принципы и применение: пер. с англ. / под ред. И. Хиггинса, Д. Беста, Дж. Джонсона. М.: Мир, 1988. — 479 с.
  13. З.Боровиков В. П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере: статистический анализ и обработка данных в среде Windows для профессионалов. СПб.: Питер, 2003. — 688 с.
  14. Ю.А., Гриценко В. А., Журлов О. С., Брудастов А. Н. Свойства Escherichia coli как факторы транслокации из кишечника во внутренние органы // Вестник ОГУ, приложение Биология и медицина. 2005. — № 5. -С. 9−14.
  15. А.Д. Способы завершения хирургического вмешательства по поводу распространенного гнойного перитонита: дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 1999.- 127 с.
  16. П.Веснина Ж. В., Каралкин А. В., Фомин Д. К. Сцинтиграфические исследования в диагностике заболеваний печени // Радионуклидная диагностика для практических врачей / под ред. Ю. Б. Лишманова, В. И. Чернова. -Томск: STT, 2004. С. 235−262.
  17. .В., Каем Р. И. О механизмах кишечной бактериальной интоксикации при тяжелой ожоговой травме // Архив патологии. 1976. — № 6. -С.27−33.
  18. .Р., Гологорский В. А., Бурневич С. З. и др. Абдоминальный сепсис: современный взгляд на нестареющую проблему. Стратегия и тактика лечения // Вестник интенсивной терапии. 1997. — № 1. — С. 10−16.
  19. .Р., Мамонтова O.A., Гельфанд Е. Б. Абдоминальная хирургическая инфекция, антибактериальная профилактика и терапия // Руководство по неотложной хирургии органов брюшной полости / под ред.
  20. B.C. Савельева. М.: Триада-Х, 2005. — С. 103−154.
  21. .Р., Матвеев Д. В., Сергеева H.A. Роль портальной бактериемии и эндотоксинемии в патогенезе полиорганной недостаточности при перитоните // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 1992. — Т. 148, № 1.1. C. 21−27.
  22. .Р., Руднов В. А., Проценко Д. Н. и др. Сепсис: определение, диагностическая концепция, патогенез и интенсивная терапия // Инфекции в хирургии. 2004. — Т. 2, № 2. — С. 2−17.
  23. .Р., Филимонов М. И., Бурневич С. З. Абдоминальный сепсис // Русский медицинский журнал. 1998. — Т. 6, № 11. — С. 697−706.
  24. Ф. Сбор и очистка // Методы общей бактериологии: Т. 1. М.: Мир, 1983.-С. 426−432.
  25. С. Медико-биологическая статистика / под ред. Н. Е. Бузикашвили, Д.В. Самойлова- пер. с англ. Ю. А. Данилова. М.: Практика, 1998. -459 с.
  26. А.А., Андреев А. А., Жданов А. И. Метод пристеночно-полостной санации кишечника в комплексном лечении острого распространенного перитонита // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2004. — Т. 163, № 2. -С. 41−45.
  27. А.А., Басараб Д. А., Кожура В. Л., Мороз В. В. Перфторан мини-минизирует повреждающий эффект ишемии тонкой кишки // Российский биомедицинский журнал. 2004. — Т. 5, № 34. — С. 132−133.
  28. Н.В. Полисахариды клеточной стенки базидомицета Coriolus chirsunus // Прикладная биохимия и биология. 1996. — Т. 32, № 4. -С. 434−437.
  29. Г. О. Метаболизм дизентерийного аллергена в животном организме // Украинский биохимический журнал. 1964. — № 2. — С. 175−181.
  30. В.К., Афанасьев А. Н., Круглянский Ю. М., Сотников Д. Н. Бактериальная транслокация в условиях острой непроходимости кишечника // Вестник Российской академии медицинских наук. 2006. — № 9−10. -С. 34−38.
  31. Е.В., Чурляев Ю. А. Дисфункция гематоспланхнического барьера как фактор патогенеза абдоминального сепсиса // Актуальные вопросы интенсивной терапии. 2002. — № 11. — С. 10−15.
  32. М.В., Багненко С. Ф., Кулибаба Д. М., Громов М. И. Септический шок // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2004. — Т. 163, № 2. — С. 1217.
  33. В.А., Бухарин О. В. Экологические и медицинские аспекты си-биоза Escherichia coli и человека // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. 2000. — № 3. — С. 92−99.
  34. А.И. Интубация тонкой кишки в неотложной абдоминальной хирургии // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2002. — Т. 161, № 2. -С.92−95.
  35. Диагностика и лечение заболеваний желчевыводягцих путей / под ред. И. В. Маева. М., 2003. — 96 с.
  36. И.А., Гаврилин C.B., Немченко Н. С. и др. Эндотоксикоз при тяжелой сочетанной травме // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2001. -Т. 160, № 5.-С. 120−124.
  37. И.А., Гельфанд Б. Р. Современное состояние проблемы перитонита // Хирургические инфекции / под ред. И. А. Ерюхина, Б. Р. Гельфанда, С. А. Шляпникова. СПб.: Питер, 2003. — С. 608−611.
  38. И.А., Петров В. П., Ханевич М. Д. Кишечная непроходимость. -СПб.: Питер, 1999.-448 с.
  39. И.А., Хрупкин В. А., Бадиков В. М. Раневая инфекция // Хирургические инфекции / под ред. И. А. Ерюхина, Б. Р. Гельфанда, С. А. Шляпникова. СПб.: Питер, 2003. — С. 230−233.
  40. H.A., Базаров A.C. Антимикробная терапия интроабдоминаль-ных инфекций // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2003. — Т. 5, № 2. — С. 153−166.
  41. .А., Володин H.H., Кафарская Л. И., Коршунов В. М. Характеристика микроорганизмов, колонизирующих кишечник человека // Журнал микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии. 2002. — № 5. — С. 98 104.
  42. М.С., Маевская М. В., Ивашкин В. Т. Современный взгляд на бактериальные осложнения при циррозе печени // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2010. — Т. 20, № 6. -С. 61−69.
  43. Г. И. Диагностика и лечение абдоминального сепсиса при острой обтурационной тонкокишечной непроходимости // Новые технологииг" vTin^mruTi1 «/гам^тгттог vim тггт. тm Т^ллтлг>«т.то ТТаттлтТ гтлт ОПП^ г
  44. Ю.Б. Лишманова, В. И. Чернова. Томск: STT, 2004. — С. 320−336.51.3атула Д.Г., Резник С. Р. Влияние метаболитов споровых сапрофитных бактерий на организм человека и животных. Киев: Наукова Думка, 1973. — 119 с.
  45. К.Н., Ноздрачев А. Д., Поляков Е. Л. Нобелевские премии по химии за 100 лет. СПб.: Гуманистика, 2003. — 872 с.
  46. И.В. Адгезия стафилококка и кишечной палочки к различным клеткам человека // Иммунопатология, аллергология, инфектология. -2003,-№ 4.-С. 85−93.
  47. A.B. Функциональные расстройства кишечника и их связь с нарушением состава кишечных бактерий у больных циррозом печени с наличием портальной гипертензионной колонопатии // Успехи современного естествознания. 2010. — № 3 — С. 48−54.
  48. Н.Ф. Органопатология бактериального шока // Архив патологии. -1983. № 12. — С. 20−27.
  49. А.И., Андрияшкин В. В., Кузнецов М. Р. Острая кишечная непроходимость // Руководство по неотложной хирургии органов брюшной полости / под ред. B.C. Савельева. М.: Триада-Х, 2005. — С. 241−280.
  50. М.Н. Коррекция клинико-иммунологических нарушений после операций с искусственным кровообращением внутривенным иммуноглобулином «габриглобин»: Автореф. дис.. канд. мед. наук. М., 2009. -28 с.
  51. Е.А., Нетребенко С. Е., Украинцев С. Е. Роль кишечной микрофлоры и пробиотиков в развитии иммунитета у грудных детей // Педиатрия. 2009. — Т. 87, № 1. — С. 77−83.61 .Котегов К. В., Павлов О. Н., Шведов В. П. Технеций. М., 1965. — 120 с.
  52. Ю.М. Бактериальная транслокация при обтурационной непроходимости кишечника (экспериментальное исследование): Автореф. дис.. канд. мед. наук. М., 2007. — 24 с.
  53. А.Г. Закономерности развития бактериальной транслокации при ранних ишемических и реперфузионных повреждениях тонкой кишки, вызванных острым нарушением магистрального кровотока: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 2004. — 26 с.
  54. В.Ю. Характеристика основных радиофармпрепаратов для исследования почек: современное состояние и перспективы // Украинский радиологический журнал. 2004. — № 12. — С. 79−87.
  55. С.А. Саногенез печеночной недостаточности под влиянием ксе-нотрансплантации клеток печени и селезенки (экспериментальное исследование): Автореф. дис.. д-ра биол. наук. Иркутск, 2010. — 47 с.
  56. Е.М., Гальперин Э. И., Котовский А. Е. и др. Роль декомпрессии желчных протоков и коррекции дисбиоза кишечника в лечении механической желтухи // Вестник Российской Академии медицинских наук. -2010.-№ 12.-С. 46−49.
  57. Ю.М. Экспериментальная хирургия. М.: Медицина, 1971. -196 с.
  58. Т.К., ГурскийЯ.Г., Звягинцева М. А. Стрессогенная потенциация трансинтестинального антигенного транспорта как физиологическая основа развития системных и локальных воспалительных процессов // Медицинская консультация. 2008. — № 3. -С. 30−33.
  59. Г. А. Курс патогистологической техники. Л.: Медицина, 1969. -423 с.
  60. Д.В. Диагностические и лечебные аспекты пункционно-дренирующих вмешательств при панкреатогенных жидкостных образований живота: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Астрахань, 2009. — 18 с.
  61. А.П., Данилов A.M., Напалков А. Н. и др. Острая опухолевая непроходимость ободочной кишки у больных пожилого и старческого возраста // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2003. — Т. 162, № 6. -С. 25−28.
  62. В.И. Взаимоотношения макроорганизма и бактерий в ране и тканях человека и животных // Хирургия. 1990. — № 9. — С. 94−98.
  63. В.И., Захаров В. В., Бородин A.B. Роль транслокации бактерий в патогенезе хирургической инфекции // Хирургия. 2001. — № 2. — С. 6366.
  64. Д.К., Зубарева И. В. Адгезия бактерий лимфоцитами человека // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2003. — № 1. — С. 39−45.
  65. Нормы радиациной безопасности (НРБ-99): гигиенические нормативы. СП 2.6.1.758−99. М.: Центр санитарно-эпидемиологического нормирования, гигиенической сертификации и экспертизы Минздрава Рос., 1999. — 116 с.
  66. Е.Р., Дугин С. Ф. Патофизиологическое значение трансинтести-нальной транслокации бактерий // Успехи современного естествознания. -2006,-№ 6.-С. 81−82.
  67. А.П. Роль бактериальной транслокации в развитии хирургического сепсиса // Успехи современного естествознания. 2007. — № 7. -С. 77−83.
  68. ПеевБ.И., Довженко А. Н. Бактериальная транслокация и нарушение мо-торно-эвакуаторной функции тонкой кишки в послеоперационном периоде у больных с острой кишечной непроходимостью // Украинский журнал хирургии. 2009. — № 4. — С. 113−116.
  69. H.H., Язиков В. Г., Аубакиров Х. Б. и др. Урановые месторождения Казахстана (экзогенные). Алматы: Гылым, 1995. — 264 с.
  70. A.M. Ядерная энергетика. -М.: Наука, 1981. 187 с.
  71. В.А. Нарушения функций печени и дисбиоз при липидном дистресс-синдроме Савельева и их коррекция пребиотиком хилак форте // Русский медицинский журнал. 2002. — № 4. — С. 158−163.
  72. В.А., Каралкин A.B., Ибрагимов Т. И. и др. Нарушение функций печени и дисбиоз при жировом гепатозе и липидном дистресс-синдроме и их лечение препаратом // Российский гастроэнтерологический журнал. -2001,-№ 2.-С. 93−104.
  73. М.В. Применение ксенотрансплантации криоконсервирован-ных клеток селезенки для коррекции постспленэктомического гипоспле-низма: дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 2001. — 166 с.
  74. О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. М.: Медиа Сфера, 2003.-312 с.
  75. Я.Г., Гончаров В. А., Нехотин В. В. Рассекреченный зубр. Новое о Н.В. Тимофееве-Ресовском // Вестник РАН. 2001. — № 6. — С. 636 649.
  76. В.И., ГульянцЭ.С., Лукаш H.A., Журавлева H.H. и др. Патогенез острой непроходимости кишечника. Ростов-на-Дону: Изд-во Ростов, унта, 1985.-200 с.
  77. Г. А., Семенов В. Н., Терентьева Л. М. Анестезия и интенсивная терапия при острой кишечной непроходимости // Экстренная анестезиология. М.: Медицина, 1983.-С. 114−159.
  78. B.C., Филимонов М. И., Бурневич С. З. Острый панкреатит // Руководство по неотложной хирургии органов брюшной полости / под ред. B.C. Савельева. М.: Триада-Х, 2005. — С. 365−414.
  79. О.В. Исследование бактериальной транслокации в условиях механической кишечной непроходимости методом сцинтиграфии (экспериментальное исследование): Автореф. дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 2006. — 23 с.
  80. А.Ю. Изучение некоторых вопросов экспериментальной лептоспирозной инфекции с применением радиоизотопных индикаторов // Тр. ин-та эпидемиол. и микробиол. им. Пастера. 1966. — Т. 29. — С. 7685.
  81. Т.С., Гречко В. В. Опыт применения радиоактивной серы для получения меченых бактерий // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1960. — Т. 31, № 3. — С. 31−35.
  82. О.Ю., Максимов В. Н. Действие тяжелых металлов на микроорганизмы // Успехи микробиологии. М.: Наука, 1985. — С. 227−252.
  83. В.Г. Миграция анаэробных бактерий в стенке тонкой кишки при её острой непроходимости // Клиническая хирургия. 1988. — № 4. -С. 37−39.
  84. ЮО.Слепых Н. И., Третьяков A.A., Стадников A.A., Петров C.B. Оценка эффективности использования споробактерина в профилактике и лечении // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2003. — № 1. — С. 65−69.
  85. А.Г., Салмина А. Б., Степаненко A.B. и др. Роль транслокации бактерий в развитии абдоминального сепсиса // Новые технологии в хирургии: матер, междунар. хир. конгр., Ростов-на-Дону, 5−7 окт. 2005 г. -Ростов-на-Дону, 2005. С. 96.
  86. B.C., Никитенко В. И., Стадников A.A. Экспериментально-клиническое обоснование применения споробактерина в комплексном лечении панкреонекроза // Вестник хирургии им. И. И. Грекова. 2002. -Т. 161, № 1.-С. 72−75.
  87. В.В. Роль кишечника в развитии полиорганной недостаточности при острой хирургической патологии // Украинский медицинский журнал. 2004. — Т. 43, № 5. — С. 84−92.
  88. Юб.Титова Г. П., Платонова Г. А., Попова Т. С. и др. Морфофункциональные нарушения в тонкой кишке при острой обтурационной непроходимости // Архив патологии. 1999. — № 2. — С. 27−30.
  89. С.Е., Нетребенко С. Е. Грудное молоко: пребиотик, пробиотик или синбиотик? // Педиатрия. 2008. — Т. 87, № 1. — С. 95−98.
  90. Е.А., Жаркова М. С., Маевская М. В. Бактериальная кишечная микрофлора и заболевания печени // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2009. — Т. 19, № 6. — С. 73−81.
  91. Ю.М., Миханева Л. Г., Шапиро A.B., Кузьменко В. Д. Количественное определение бактерий в клинических материалах // Лабораторное дело. 1984. — № ю. — С. 616−619.
  92. Хирургия послеоперационного перитонита / под ред. Е. Г. Григорьева,
  93. А Г* ТГ""--------1ППС о п «ui ana. — iripivy хсл., i уую. — z. jl j v^.
  94. Хирургия тяжелых гнойных процессов / под ред. Е. Г. Григорьева, A.C. Когана. Новосибирск: Наука, 2000. — 314 с.
  95. Д.А., Розанов А. Я. Получение меченных радиоактивным йодом аллергенов из бруцелл и изучение их судьбы в животном организме // Вопросы медицинской химии. 1959. — Т. 5, Вып. 3. — С. 232−237.
  96. В.И., Лишманов Ю. Б. Радиофармпрепараты для ядерной медицины // Радионуклидная диагностика для практических врачей / под ред. Ю. Б. Лишманова, В. И. Чернова. Томск: STT, 2004. — С. 10−14.
  97. В.Н., БеликБ.М. Классификация и принципы лечения острых гнойных перитонитов // Хирургия. 2002. — № 4. — С. 52−56.
  98. С.А., Радзиховский А. П., Кейсевич Л. В. Руководство по экспериментальной хирургии. М.: Медицина, 1989. — 272 с.
  99. A.B. Исследование перитонеальной резорбции методом динамической гамма-сцинтиграфии в условиях экспериментального перитонита: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Иркутск, 1998. — 24 с.
  100. Г. Общая микробиология: пер. с нем. / под ред. E.H. Кондратьевой. М.: Мир, 1987. — 567 с.
  101. С.А. Хирургические проблемы мягких тканей старая проблема в новом свете // Инфекции в хирургии. — 2003. -Т. 1, № 1. — С. 1421.
  102. С.А., Ерюхин И. А., Ефимова И. С. Перитонит и абдоминальный сепсис // Инфекции в хирургии. 2004. — Т. 2, № 1. — С. 2−7.
  103. С.А., Ефимова И. С. Вторичный и третичный перитонит: роль антибактериальной терапии в комплексном лечении // Антибиотики и химиотерапия. 2001. — Т. 46, № 12.-С. 35—41.
  104. А.Ю., Горская Е. М., Исламова Г. Р., ИшановаМ.К. Морфофи-зиологическая характеристика иммунной системы слизистой оболочкитонкой кишки // Морфология. 1993. — Т. 105, № 9−10. — С. 181.
  105. Abdeldayem Н., GhoneimE., Refaei А.А., Abou-Gabal A. Obstructive jaundice promotes intestinal-barrier dysfunction and bacterial translocation: experimental study // Hepatol Int. 2007. — Vol. 1, № 4. — P. 444−448.
  106. Akcan A., Kucuk C., Sozuer E. et al. Melatonin reduces bacterial translocation and apoptosis in trinitrobenzene sulphonic acid-induced colitis of rats // World J Gastroenterol. 2008. — Vol. 14, № 6. — P. 918−924.
  107. Akin M.L., Gulluoglu B.M., Erenoglu C. et al. Hyperbaric oxygen prevents bacterial translocation in thermally injured rats // J Invest Surg. 2002. -Vol. 15, № 6.-P. 303−310.
  108. Akin M.L., Uluutku H., Erenoglu C. et al. Hyperbaric oxygen ameliorates bacterial translocation in rats with mechanical intestinal obstruction // Dis Colon Rectum. 2002. — Vol. 45, № 7. — P. 967−972.
  109. Albillos A., de-la-Hera A., Alvarez-Mon M. Serum lipopolysaccharide-binding protein prediction of severe bacterial infection in cirrhotic patients with ascites // Lancet. 2004. — Vol. 363, № 9421. — P. 1608−1610.
  110. Aldemir M., Kokoglu O.F., GeyikM.F., Biiyukbayram H. Effect of octreotid acetate and Saccharomyces boulardii on bacterial translocation in an experimental intestinal loop obstruction model of rats // Tohoku J Exp Med. 2002. -Vol. 198, № l.-P. 1−9.
  111. Alvarez R., Diehl K.M., AvramA. et al. Localization of splenosis using 99mTc-darnaged red blood cell SPECT/CT and intraoperative gamma probe measurements // Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2007. — Vol. 34, № 6. -P. 969.
  112. Alverdy J.C., Aoys E., Moss G.S. Total parenteral nutrition promotes bacterialtranslocation from the gut // Surgery. 1988. — Vol. 104, № 2. — P. 185−190.
  113. Angelberger P. Production of ready-to-use technetium (Tc)-99m and Tc99m-labeled radiopharmaceuticals // Strahlentherapie Sonderb. 1975. — Vol. 74. -P. 457−460.
  114. Ara C., Esrefoglu M., Polat A. et al. The effect of caffeic acid phenethyl ester on bacterial translocation and intestinal damage in cholestatic rats // Dig Dis Sei.-2006.-Vol. 51, № 10.-P. 1754−1760.
  115. AraiT., Nagino M., NimuraY. Biliary bacterial infection in liver surgery // Nippon Geka Gakkai Zasshi. 2002. — Vol. 103, № 12. — P. 869−872.
  116. Araujo I.D., Grossi G.C., Diniz S.O. et al. Effects of the povidone-iodine (PVPI) in treatment of bacterial peritonitis induced in rats // Acta Cir Bras. -2010. Vol. 25, № 4. — P. 322−327.
  117. Araujo-Filho I., Rego A.C., Pinheiro L.A. et al. Prevention of bacterial translocation using beta-(l-3)-D-glucan in small bowel ischemia and reperfusion in rats // Acta Cir Bras. 2006. — Vol. 21, Suppl. 4. — P. 18−22.
  118. Arden W.A., Yacko M.A., JayM. et al. Scintigraphic evaluation of bacterial translocation during hemorrhagic shock // J Surg Res. 1993. — Vol. 54, № 2. -P. 102−106.
  119. Arkhipova O.P., Ouvarova O.A. Distribution in the organs of guinea pigs of virulent and avirulent (BCG) Mycobacterium tuberculosis labeled with P32 at the time of subcutaneous infection // Rev Tuberc. 1958. — Vol. 22, № 1. -P. 71−91.
  120. Assimakopoulos S.F., Vagianos C.E., Charonis A. et al. Intestinal failure in obstructive jaundice // World J Gastroenterol. 2005. — Vol. 11, № 24. -P. 3806−3807.
  121. Bajaj J.S., Zadvornova Y., HeumanD.M. et al. Association of proton pump inhibitor therapy with spontaneous bacterial peritonitis in cirrhotic patients with ascites // Am J Gastroenterol. 2009. — Vol. 104, № 5. — P. 1130−1134.
  122. Baker J.W., DeitchE.A., Li M. et al. Hemorrhagic shock induces bacterialtranslocation from the gut // J Trauma. 1988. — Vol. 28, № 7. — P. 896−906.
  123. Barth R.F., Singla O. Distribution of technetium-99m labeled Corynebacte-rium parvum in normal and tumor bearing mice // Dev Biol Stand. 1977. -Vol. 38.-P. 129−135.
  124. Barth R.F., Singla O. Organ distribution of technetium-99m-labeled coryne-bacterium parvum in normal and tumor-bearing mice // Cancer Res. 1978. -Vol. 38, № l.-P. 32−34.
  125. Basu S., Zhuang H., Torigian D.A. et al. Functional imaging of inflammatory diseases using nuclear medicine techniques // Semin Nucl Med. 2009. -Vol. 39, № 2.-P. 124−145.
  126. Beck C., Pannen B.H., Picker O. Optimization of hepatosplanchnic oxygenation in septic shock // Anasthesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther. -2008. Vol. 43, № 1. — P. 66−70.
  127. Bedirli A., KeremM., Ofluoglu E. et al. Administration of Chlorella sp. mi-croalgae reduces endotoxemia, intestinal oxidative stress and bacterial translocation in experimental biliary obstruction // Clin Nutr. 2009. — Vol. 28, № 6. -P. 674−678.
  128. Belyansky L.S., Sayenko V.F., Furmanov J.A., Churilova T.J. Bacterial translocation as a cause for sepsis complication in obstructive colonic ileus // Acta Chir Belg. 2002. — Vol. 102, № 2. — P. 75−77.
  129. BergR.D. Bacterial translocation from the intestines // Jikken Dobutsu. -1985.-Vol. 34, № l.-P. 1−16.
  130. Berg R.D., Owens W.E. Inhibition of translocation of viable Escherichia coli from the gastrointestinal tract of mice by bacterial antagonism // Infect Immun. 1979. — Vol. 25, № 3. — P. 820−827.
  131. Bernardo-Filho M., Machadoe Silva J.R., Reis Rde J. et al. Conditions for labeling of Schistosoma mansoni cercaria with technetium-99m // J Nucl Biol Med. 1992.-Vol. 36, № l.-P. 56−59.
  132. Bernardo-Filho M., PereiraJ.A., Boasquevisque E.M., Hasson-Voloch A. Technetium-99m distribution into Klebsiella pneumoniae // J Nucl Biol Med. -1991. Vol. 35, № 3. — P. 162−166.
  133. Bernardo-Filho M., Pires E.T., Boasquevisque E.M., Hasson-Voloch A. Labelling of the platyhelminth Dugesia tigrina with 99mtechnetium // Braz J Med Biol Res. 1989. -Vol. 22, № 6. — P. 787−789.
  134. Besselink M.G., van Santvoort H.C., Renooij W. et al. Intestinal barrier dysfunction in a randomized trial of a specific probiotic composition in acute pancreatitis // Ann Surg. 2009. — Vol. 250, № 5. — P. 712−719.
  135. BlokD., FeitsmaH.I., Kooy Y.M. et al. New chelation strategy allows for quick and clean 99mTc-labeling of synthetic peptides // Nucl Med Biol. 2004. -Vol. 31, № 6.-P. 815−820.
  136. Bohorquez D.V., Bohorquez N.E., FerketP.R. Ultrastructural development of the small intestinal mucosa in the embryo and turkey poult: A light and electron microscopy study // Poult Sci. 2011. — Vol. 90, № 4. — P. 842−855.
  137. Bonet-Maury P., Deysine A. Preparation of bacteria labeled with radiophos-phorus // Ann Inst Pasteur (Paris). 1953. — Vol. 84, № 6. — P. 1052−1055.
  138. BrookI., Elliott T.B., LedneyG.D., Knudson G.B. Management of postirradiation sepsis // Mil Med. 2002. — Vol. 167, № 2, Suppl. — P. 105−106.
  139. Buhl T., StentzerK., Hede A. et al. Bone infection in patients suspected of complicating osteomyelitis: the diagnostic value of dual isotope bone-granulocyte scintigraphy // Clin Physiol Funct Imaging. 2005. — Vol. 25, № 1. — P. 20−26.
  140. Caobelli F., Panarotto M.B., Andreoli F. et al. Is 99mTc-HMPAO granulocyte scan an alternative to endoscopy in pediatric chronic inflammatory bowel disease (IBD)? // Eur J Pediatr. 2011. — Vol. 170, № 1. — P. 51−57.
  141. Cevikel M.H., Ozgiin H., Boylu S. et al. C-reactive protein may be a marker of bacterial translocation in experimental intestinal obstruction // ANZ J Surg. -2004. Vol. 74, № 10. — P. 900−904.
  142. Cevikel M.H., Ozgiin H., Boylu S. et al. Nitric oxide regulates bacterial translocation in experimental acute edematous pancreatitis // Pancreatology. 2003. -Vol.3, № 4. -P. 329−335.
  143. Chattopadhyay S., SahaDas S., Chandra S. et al. Synthesis and evaluation of (99m)Tc-moxifloxacin, a potential infection specific imaging agent // Appl Radiat Isot. 2010. — Vol. 68, № 2. — P. 314−316.
  144. Chen D.C., Ma L.Q., Liu S.Z. Effects of rhubarb on intestinal flora and bacterial translocation in rats with sepsis // Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2009.-Vol. 21, № l.-P. 17−20.
  145. Chin K.F., KallamR., O’Boyle C., MacFie J. Bacterial translocation may influence the long-term survival in colorectal cancer patients // Dis Colon Rectum. 2007. — Vol. 50, № 3. — P. 323−330.
  146. Chiu C.J., McArdleA.H., Brown R. et al. Intestinal mucosal lesions in low-flow states. I. A morphological, hemodynamic and metabolic reappraisal // Arch Surg. 1970. — Vol. 101, № 4. — P. 478−483.
  147. Cooney D.R., Swanson S.E., Dearth J.C. et al. Heterotopic splenic autotransplantation in prevention of overwhelming postsplenectomy infection // J Pediatr Surg. 1979. — Vol. 14, № 3. — P. 337−342.
  148. Cowie D.B., Bolton E.T., Sands M.K. Sulfur metabolism in Escherichia coli. II. Competitive utilization of labeled and nonlabeled sulfur compounds // J Bacterid. 1951. — Vol. 62, № 1. — P. 63−74.
  149. Cuevas P., Fine J. Role of intraintestinal endotoxin in death from peritonitis // Surg Gynecol Obstet. 1972. — Vol. 134, № 6. — P. 953−957.
  150. Dadachova E., Rivera J., Revskaya E. et al. In vitro evaluation, biodistribution and scintigraphic imaging in mice of radiolabeled anthrax toxins // Nucl Med Biol. 2008. — Vol. 35, № 7. — P. 755−761.
  151. Dantas F.J., de Mattos J.C., Moraes M.O. et al. Genotoxic effects of stannous chloride (SnC12) in K562 cell line // Food Chem Toxicol. 2002. — Vol. 40, № 10.-P. 1493−1498.
  152. Das S.S., WarehamD.W., BrittonK.E. 99mTc-labeled antimicrobial peptides for detection of bacterial and Candida albicans infections // J Nucl Med. 2002. -Vol. 43, № 8.-P. 1125.
  153. De Barros A.L., Mota L.G., Ferreira C. de A. et al. Bombesin derivative radiolabeled with technetium-99m as agent for tumor identification // Bioorg Med Chem Lett. 2010. — Vol. 20, № 21. — P. 6182−6184.
  154. De Madaria E., Martinez J., Lozano B. et al. Detection and identification of bacterial DNA in serum from patients with acute pancreatitis // Gut. 2005. -Vol. 54, № 9.-P. 1293−1297.
  155. Deitch E.A. Simple intestinal obstruction causes bacterial translocation in man
  156. Arch Surg. 1989. — Vol. 124, № 6. — P. 699−701.
  157. Deitch E.A., Bridges R.M. Effect of stress and trauma on bacterial translocation from the gut // J Surg Res. 1987. — Vol. 42, № 5. — P. 536−542.
  158. Deitch E.A., MaL., Ma J.W., Berg R.D. Lethal burn-induced bacterial translocation: role of genetic resistance // J Trauma. 1989. — Vol. 29, № 11. -P. 1480−1487.
  159. Deitch E.A., Senthil M., Brown M. et al. Trauma-shock-induced gut injury and the production of biologically active intestinal lymph is abrogated by castration in a large animal porcine model // Shock. 2008. — Vol. 30, № 2. -P. 135−141.
  160. Deitch E.A., Sittig K., Li M. et al. Obstructive jaundice promotes bacterial translocation from the gut // Am J Surg. 1990. — Vol. 159, № 1. — P. 79−84.
  161. Demling R.H. The clinical relevance of defining the mechanism for altered gut permeability in a «two-hit» model of injury and infection // Crit Care Med. -2004. Vol. 32, № 11. — P. 2356−2357.
  162. DenizT., Agalar C., OzdoganM. et al. Mild hypothermia improves survival during hemorrhagic shock without affecting bacterial translocation // J Invest Surg. 2009. — Vol. 22, № 1. — P. 22−28.
  163. Dervenis C., Smailis D., Hatzitheoklitos E. Bacterial translocation and its prevention in acute pancreatitis // J Hepatobiliary Pancreat Surg. 2003. — Vol. 10, № 6.-P. 415−418.
  164. De-Souza D.A., Greene L.J. Intestinal permeability and systemic infections in critically ill patients: effect of glutamine // Crit Care Med. 2005. — Vol. 33, № 5.-P. 1125−1135.
  165. Diamond L.K. Splenectomy in childhood and the hazard of overwhelming infection // Pediatrics. 1969. — Vol. 43, № 5. — P. 886−889.
  166. Diller R., Stratmann U., Minin E. et al. ATIII attenuates endotoxemia induced healing impairment in the colon // J Surg Res. 2009. — Vol. 157, № 1. — P. 413.
  167. Ding L.A., Li J.S. Gut in diseases: physiological elements and their clinical significance // World J Gastroenterol. 2003. — Vol. 9, № 11. — P. 2385−2389.
  168. Ding L.A., Li J.S., Li Y.S. et al. Prophylactic treatment with growth hormone improves intestinal barrier function and alleviates bacterial translocation in stressed rats // Chin Med J (Engl). 2004. — Vol. 117, № 2. — P. 264−269.
  169. Diniz S.O., ResendeB.M., NunanE.A. et al. Technetium 99m labelled Escherichia coli // Appl Radiat Isot. 1999. — Vol. 51, № 1. — P. 33−36.
  170. Doering P., Clemens H., Fritze E. The distribution of labeled endotoxin in the body // Z Gesamte Exp Med. 1959. — Vol. 131, № 4. — P. 334−345.
  171. Dos Santos R.G., VianaM.L., Generoso S.V. et al. Glutamine supplementation decreases intestinal permeability and preserves gut mucosa integrity in an experimental mouse model // JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2010. — Vol. 34, № 4.-P. 408−413.
  172. Duffy M.J., Duffy G.J. Studies on the labeling of streptokinase with 99mTc for use as a radiopharmaceutical in the detection of deep-vein thrombosis: concise communication // J Nucl Med. 1977. — Vol. 18, № 5. — P. 483−485.
  173. Dutta P., Bhansali A., Mittal B.R. et al. Instant 99mTc-ciprofloxacin scintigraphy for the diagnosis of osteomyelitis in the diabetic foot // Foot Ankle Int. -2006. Vol. 27, № 9. — P. 716−722.
  174. Duval-Araujo I., Guimaraes Sarmiento M.A., Xavier Grossi G.C. et al. Pulmonary phagocyte depression induced by an acid or alkaline solution in a rat model of peritonitis // Surg Infect (Larchmt). 2007. — Vol. 8, № 6. — P. 599 604.
  175. Edmiston C.E. Jr., Condon R.E. Bacterial translocation // Surg Gynecol Obstet.- 1991. -Vol. 173, № l.-P. 73−83.
  176. Eizaguirre I., Garcia Urkia N., Asensio A.B. et al. Adaptation in the small intestine: Effect of minimal enteral nutrition and probiotics on proliferation and apoptosis in the intestinal wall // Cir Pediatr. 2010. — Vol. 23, № 2. — P. 118 121.
  177. E1-Awady S.I., El-Nagar M., El-Dakar M. et al. Bacterial translocation in an experimental intestinal obstruction model. C-reactive protein reliability? // Acta Cir Bras. 2009. — Vol. 24, № 2. — P. 98−106.
  178. Ellemann A., Rubow S., ErlankP., ReuterH. Is there a role for 99mTc-HMPAO leucocyte scintigraphy in infective endocarditis? // Cardiovasc J S Afr. 2003. — Vol. 14, № 4. — P. 199−203.
  179. Endo Y., Shimizu T., Mori T. et al. Hyperoxic condition prevents bacterial translocation and elevation of plasma microorganism components during hemorrhagic shock // J Invest Surg. 2003. — Vol. 16, № 5. — P. 275−281.
  180. Evans W.E., Darin J.C. Effect of enterectomy in endotoxin shock // Surgery. -1966. Vol. 60, № 5. — P. 1026−1029.
  181. Evans W.E., Shore R.T., Carey L.C., Darin J.C. Effect of intestinal exclusion in Escherichia coli endotoxin shock // Arch Surg. 1967. — Vol. 95, № 3. -P. 511−516.
  182. Filos K.S., Kirkilesis I., Spiliopoulou I. et al. Bacterial translocation, endotox-aemia and apoptosis following Pringle manoeuvre in rats // Injury. 2004. -Vol. 35, № l.-P. 35−43.
  183. Fowler J.C., Solanki C.K., Barber R.W. et al. Dual-isotope lymphoscintigraphy using albumin nanocolloid differentially labeled with 111 In and 99mTc // Acta Oncol. 2007. — Vol. 46, № 1. — P. 105−110.
  184. Fritz S., Hackert T., Hartwig W. et al. Bacterial translocation and infected pancreatic necrosis in acute necrotizing pancreatitis derives from small bowel rather than from colon // Am J Surg. 2010. — Vol. 200, № 1. — P. 111−117.
  185. FritzS., Hartwig W., LehmannR. et al. Prophylactic antibiotic treatment is superior to therapy on-demand in experimental necrotising pancreatitis // Crit Care.-2008.-Vol. 12, № 6.-P. 141.
  186. Fuller K.G., BergR.D. Inhibition of bacterial translocation from the gastrointestinal tract by nonspecific immunostimulation // Prog Clin Biol Res. 1985. -Vol. 181.-P. 195−198.
  187. Furuya T., Soeno T., Komatsu M. Strategy for bacterial translocation in acute pancreatitis // Nippon Shokakibyo Gakkai Zasshi. 2004. — Vol. 101, № 5. -P. 502−509.
  188. Gautreaux M.D., Deitch E.A., Berg R.D. T lymphocytes in host defense against bacterial translocation from the gastrointestinal tract // Infect Immun. -1994. Vol. 62, № 7. p. 2874−2884.
  189. Gencay C., Kilicoglu S.S., Kismet K. et al. Effect of honey on bacterial translocation and intestinal morphology in obstructive jaundice // World J Gastroenterol. 2008. — Vol. 14, № 21.-P. 3410−3415.
  190. Giacometti A., Cirioni O., Ghiselli R. et al. Amphibian peptides prevent endotoxemia and bacterial translocation in bile duct-ligated rats // Crit Care Med. 2006. — Vol. 34, № 9. — P. 2415−2420.
  191. Giamarellos-Bourboulis E.J., Bengmark S., Kanellakopoulou K., Kotzam-passi K. Pro- and synbiotics to control inflammation and infection in patients with multiple injuries // J Trauma. 2009. — Vol. 67, № 4. — P. 815−821.
  192. Gong G., Wang P., Ding W. et al. Microscopic and ultrastructural changes of the intestine in abdominal compartment syndrome // J Invest Surg. 2009. -Vol. 22, № 5.-P. 362−367.
  193. Gosain A., Gamelli R.L. Role of the gastrointestinal tract in burn sepsis // J Burn Care Rehabil. 2005. — Vol. 26, № 1. — P. 85−91.
  194. Guarner C., Gonzalez-Navajas J.M., Sanchez E. et al. The detection of bacterial DNA in blood of rats with CC14-induced cirrhosis with ascites represents episodes of bacterial translocation // Hepatology. 2006. — Vol. 44, № 3. -P. 633−639.
  195. Guarner C., Soriano G. Bacterial translocation and its consequences in patients with cirrhosis ,/./ Eur J Gastroenterol Hepatol. 2005. — Vol. 17, № 1. — P. 2731.
  196. Giiler O., Akturan S., Kisli E. et al. Acute pancreatitis, bacterial translocation, and different octreotide regimens: an experimental study // Surg Today. 2009.-Vol. 39, № 10.-P. 876−883.
  197. Guo L., Dong N.D., Xiong A.B. et al. An experimental study on the prevention and treatment of postburn intestinal injury and bacterial translocation by Sijunzi decoction in scalded rats // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2003. -Vol. 19, № 2.-P. 89−93.
  198. Gurleyik G., Ozturk E., Adaleti R. et al. Effects of prostaglandin El and E2 analogues on mucosal injury-induced, and on bacterial translocation promoted by, experimental intestinal obstruction // J Invest Surg. 2004. — Vol. 17, № 3. -P. 127−134.
  199. Guzman-Stein G., Bonsack M., Liberty J., Delaney J.P. Abdominal radiation causes bacterial translocation // J Surg Res. 1989. — Vol. 46, № 2. — P. 104 107.
  200. Hanaoka H., Mukai T., Habashita S. et al. Chemical design of a radiolabeled gelatinase inhibitor peptide for the imaging of gelatinase activity in tumors // Nucl Med Biol. 2007. — Vol. 34, № 5. p. 503−510.
  201. HannaN., Bialowas C., Fernandez C. Septicemia secondary to ileus in trauma patients: a human model for bacterial translocation // South Med J. 2010. -Vol. 103, № 5.-P. 461−463.
  202. Hansen J., Gulati A., Sartor R.B. The role of mucosal immunity and host genetics in defining intestinal commensal bacteria // Curr Opin Gastroenterol. -2010.-Vol. 26, № 6.-P. 564−571.
  203. Hass F.J., Lee P. S., Lourenco R.V. Tagging of iron oxide particles with 99mTc for use in the study of deposition and clearance of inhaled particles // J Nucl Med. 1976. — Vol. 17, № 2. — P. 122−125.
  204. Hawbecker D.E., Carpenter J.A., Hamdy M.K. Translocation and fate of 32P-labeled salmonella in mice II Proc Soc Exp Biol Med. 1970. — Vol. 135, № 2. -P. 546−552.
  205. Henry-Stanley M., Wells C.L. Syndecan-1 as a mediator of bacteria-enterocyte interactions // ScientificWorldJournal. 2006. — Vol. 6. — P. 466471.
  206. Henry-Stanley M.J., Hess D.J., Erlandsen S.L., Wells C.L. Ability of the heparan sulfate proteoglycan syndecan-1 to participate in bacterial translocation across the intestinal epithelial barrier // Shock. 2005. — Vol. 24, № 6. -P. 571−576.
  207. Henry-Stanley M.J., Wells C.L. Polyethylene glycol influences microbial interactions with intestinal epithelium // Shock. 2009. — Vol. 31, № 4. — P. 390 396.
  208. Herek O., Karal.G., Kaleli I. Effects of antibiotics and Saccharomyces bou-lardii on bacterial translocation in burn injury // Surg Today. 2004. — Vol. 34, № 3. — P. 256−260.
  209. Herndon D.N., Morris S.E., Coffey J.A. Jr. et al. The effect of mucosal integrity and mesenteric blood flow on enteric translocation of microorganisms in cutaneous thermal injury // Prog Clin Biol Res. 1989. — Vol. 308. — P. 377 382.
  210. Hess D.J., Garni R.M., Henry-Stanley M.J., Wells C.L. Escherichia coli modulates extraintestinal spread of Staphylococcus aureus // Shock. 2005. -Vol. 24, № 4.-P. 376−381.
  211. Highet A.R., Berry A.M., Goldwater P.N. Novel hypothesis for unexplained sudden unexpected death in infancy (SUDI) // Arch Dis Child. 2009. -Vol. 94, № 11.-P. 841−843.
  212. HoferU., Schlaepfer E., Baenziger S. et al. Inadequate clearance of translocated bacterial products in HIV-infected humanized mice // PLoS Pathog. -2010. Vol. 6, № 4. — el000867.
  213. Hofmann A.F. Cholestatic liver disease: pathophysiology and therapeutic options // Liver. 2002. — Vol. 22, Suppl. 2. — P. 14−19.
  214. Holanda C.M., Leite R.C., Catanho M.T. et al. The effect of Glucantime on the labeling of blood constituents with technetium-99m // Acta Cir Bras. -2005.-Vol. 20, Suppl. l.-P. 126−130.
  215. Huang Y., Yi C., Long Y. et al. Studies of the possible mechanisms for protective effects of recombinant human growth hormone on intestinal mucosa barrier in rat sepsis // Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2006. — Vol. 37, № 1. -P. 10−13.
  216. Jeghers O., Abramovici J., JonckheerM., Ermans A.M. A chemical method for the labeling of fibrinogen with 99mTc // Eur J Nucl Med. 1978. — Vol. 3, № 2.-P. 95−100.
  217. Jeong J.M., Hong M.K., Lee J. et al. 99mTc-neolactosylated human serum albumin for imaging the hepatic asialoglycoprotein receptor // Bioconjug Chem. 2004. — Vol. 15, № 4. — P. 850−855.
  218. Jeziorski E., Ludwig C., Rodiere M. et al. Gut translocation septicemia in infant // Arch Pediatr. 2010. — Vol. 17, Suppl. 4. — P. 179−83.
  219. Joao S.A., Alencar S.S.S., Medeiros A.C. et al. Translocation of 99mTc labelled bacteria after intestinal ischemia and reperfusion // Acta Cir Bras. -2004. Vol. 19, № 4. — P. 328−333.
  220. Johanson W.G. Jr., Kennedy M.G., Bonte F.J. Use of technetium (99mTc) as a bacterial label in lung clearance studies // Appl Microbiol. 1973. — Vol. 25, № 4. — P. 592−594.
  221. Jugenburg M., Haddock G., Freedman M.H. et al. The morbidity and mortality of pediatric splenectomy: does prophylaxis make a difference? // J Pediatr Surg. 1999. — Vol. 34, № 7. — P. 1064−1067.
  222. Kabaroudis A., Papaziogas B., Koutelidakis I. et al. Disruption of the small-intestine mucosal barrier after intestinal occlusion: a study with light and electron microscopy // J Invest Surg. 2003. — Vol. 16, № 1. — P. 23−28.
  223. Kalambokis G., Tsianos E.V. Endotoxaemia in the pathogenesis of cytopenias in liver cirrhosis. Could oral antibiotics raise blood counts? // Med Hypotheses. -2011.-Vol. 76, № l.-P. 105−109.
  224. Kaufmann M., Marqverson J., Stanley K.E. et al. Distribution of intrapleural and intravenous Corynebacterium parvum in humans- 99mTc-, and 1311-labeled bacteria // Cancer Immunol Immunother. 1986. — Vol. 22, № 1. -P. 56−61.
  225. Kelsen J., Agnholt J., Falborg L. et al. Indium-labelled human gut-derived T cells from healthy subjects with strong in vitro adhesion to MAdCAM-1 showno detectable homing to the gut in vivo // Clin Exp Immunol. 2004. -Vol. 138, № 1. — P. 66−74.
  226. Kim A.S., Garni R.M., Henry-Stanley M.J. et al. Hypoxia and extraintestinal dissemination of Candida albicans yeast forms // Shock. 2003. — Vol. 19, № 3. — P. 257−262.
  227. Kishikawa H., Miura S., NishidaJ. et al. Ethanol-induced CXC-chemokine synthesis and barrier dysfunction in intestinal epithelial cells // Alcohol Clin Exp Res. 2005. — Vol. 29, № 12. — P. 2116−2122.
  228. Kishore R. Radiolabeled microorganisms: comparison of different radioisotopic labels // Rev Infect Dis. 1981. — Vol. 3, № 6. — P. 1179−1185.
  229. Kjaer A., Lebech A.M., Eigtved A., Hojgaard L. Fever of unknown origin: prospective comparison of diagnostic value of 18F-FDG PET and lllln-granulocyte scintigraphy // Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2004. — Vol. 31, № 5. — P. 622−626.
  230. Klotz I.M., Melchior J.B. Some aspects of the action of sulfonamides- binding of S35 labeled sulfanilamide by Escherichia coli // Arch Biochem. 1949. -Vol. 21, № 1, — P. 35−39.
  231. Kocdor M.A., Kocdor H., Gulay Z., Gokce O. The effects pentoxifylline on bacterial translocation after intestinal obstruction // Shock. 2002. — Vol. 18, № 2.-P. 148−151.
  232. Koh I.H., Menchaca-Diaz J.L., Farsky S.H. et al. Injuries to the mesenteric microcirculation due to bacterial translocation // Transplant Proc. 2002. -Vol. 34, № 3,-P. 1003−1004.
  233. Koratzanis G., Giamarellos-Bourboulis E.J., Papalambros E., Giamarellou H. Bacterial translocation following intrabdominal surgery. Any influence of antimicrobial prophylaxis? // Int J Antimicrob A.gents. 2002. — Vol. 20, № 6. -P. 457−460.
  234. Koren L., Gurfmkel R., Glezinger R. et al. The effect of Lactobacillus bacteria supplement on sepsis and its complications in patients with acute burns //
  235. Burns. 2007. — Vol. 33, № 5. — P. 594−598.
  236. Koulaouzidis A., Bhat S., Saeed A.A. Spontaneous bacterial peritonitis // World J Gastroenterol. 2009. — Vol. 15, № 9. — P. 1042−1049.
  237. Koutelidakis I., Papaziogas B., Giamarellos-Bourboulis E.J. et al. Systemic endotoxaemia following obstructive jaundice: the role of lactulose // J Surg Res. 2003. — Vol. 113, № 2. — P. 243−247.
  238. Kramer L., Druml W. Ascites and intraabdominal infection // Curr Opin Crit Care. 2004. — Vol. 10, № 2. -P. 146−151.
  239. S.R., Deutscher S.L. 11 lln-labeled galectin-3-targeting peptide as a SPECT agent for imaging breast tumors // J Nucl Med. 2008. — Vol. 49, № 5. -P. 796−803.
  240. Kumar V. Radiolabeled white blood cells and direct targeting of microorganisms for infection imaging // Q J Nucl Med Mol Imaging. 2005. -Vol. 49, № 4.-P. 325−338.
  241. Kushen M.C., DamH.Q., Manzone T.A. Indium-Ill leukocyte scintigraphy AIDS in diagnosis of tubo-ovarian abscess // Clin Nucl Med. 2011. — Vol. 36, № 4.-P. 300−302.
  242. Lambrecht F.Y. Evaluation of «(m)Tc-labeled antibiotics for infection detection // Ann Nucl Med. 2011. — Vol. 25, № 1. — P. 1−6.
  243. Lara-Villoslada F., Sierra S., Diaz-Ropero M.P. et al. Safety assessment of Lactobacillus fermentum CECT5716, a probiotic strain isolated from human milk // J Dairy Res. 2009. — Vol. 76, № 2. — P. 216−221.
  244. Lears K.A., Ferdani R., Liang K. et al. In vitro and in vivo evaluation of 64Cu-labeled SarAr-bombesin analogs in gastrin-releasing peptide receptor-expressing prostate cancer // J Nucl Med. 2011. — Vol. 52, № 3. — P. 470−477.
  245. Lee D.E., Hong Y.D., Choi K.H. et al. Preparation and evaluation of 99mTc-labeled cyclic arginine-glycine-aspartate (RGD) peptide for integrin targeting // Appl Radiatlsot.- 2010. -Vol. 68, № 10.-P. 1896−1902.
  246. Leevy W.M., SerazinN., Smith B.D. Optical imaging of bacterial infectionmodels // Drug Discov Today Dis Models. 2007. — Vol. 4, № 3. — P. 91−97.
  247. Levi H. George Hevesy and his concept of radioactive indicators in retrospect // Eur J Nucl Med. — 1976. — Vol. 1, № 1. — P. 3−10.
  248. Li Z.L., Yang X.D., Lu L.R. et al. Early fracture fixation alleviates gut barrier function damage after multiple firearm injuries in pigs // Zhonghua Wai Ke Za Zhi. -2003. Vol. 41, № 8. — P. 620−622.
  249. Liboredo J.C., Anastacio L.R., Mattos L.V. et al. Impact of probiotic supplementation on mortality of induced 1,2-dimethylhydrazine carcinogenesis in a mouse model // Nutrition. 2010. — Vol. 26, № 7−8. — P. 779−783.
  250. Lima-Filho G.L., Pungartnik C., Catanho M.T., Bernardo-Filho M. Assessment of the stannous fluoride and phytic acid effect in the yeast Saccharomyces cerevislae // Cell Mol Biol (Noisy-le-grand). 2002. — Vol. 48, № 7. p. 777 781.
  251. Liu J., An H., Jiang D. et al. Study of bacterial translocation from gut after paraplegia caused by spinal cord injury in rats // Spine (Phila Pa 1976). 2004. -Vol. 29, № 2.-P. 164−169.
  252. Liu S. Radiolabeled cyclic RGD peptides as integrin alpha (v)beta (3)-targeted radiotracers: maximizing binding affinity via bivalency // Bioconjug Chem. -2009.-Vol. 20, № 12.-P. 2199−2213.
  253. Lloyd J.R., Cole J.A., Macaskie L.E. Reduction and removal of heptavalent technetium from solution by Escherichia coli // J Bacteriol. 1997. — Vol. 179,6.-P. 2014−2021.
  254. Lorenzo-Zuniga V., Bartoli R., Planas R. et al. Oral bile acids reduce bacterial overgrowth, bacterial translocation, and endotoxemia in cirrhotic rats // Hepa-tology. 2003. — Vol. 37, № 3. — P. 551−557.
  255. Lovering A.T., Haverkamp H.C., RomerL.M. et al. Transpulmonary passage of 99mTc macroaggregated albumin in healthy humans at rest and during maximal exercise // J Appl Physiol. 2009. — Vol. 106, № 6. — P. 1986−1992.
  256. Luo Q., Wu S.F. Effect of carbon dioxide pneumoperitoneum on the translocation of intestinal endotoxin/bacteria in rats // Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2009. — Vol. 40, № l.-P. 141−144.
  257. Lupetti A., de BoerM.G., ErbaP. et al. Radiotracers for fungal infection imaging // Med Mycol. 2011. — Vol. 49, Suppl. l.-P. 62−69.
  258. Lupetti A., Nibbering P.H., Welling M.M., Pauwels E.K. Radiopharmaceuticals: new antimicrobial agents // Trends Biotechnol. 2003. — Vol. 21, № 2. -P. 70−73.
  259. Lupetti A., Welling M.M., Pauwels E.K., Nibbering P.H. Detection of fungal infections using radiolabeled antifungal agents // Curr Drug Targets. 2005. -Vol. 6, № 8.-P. 945−954.
  260. MacFie J. Current status of bacterial translocation as a cause of surgical sepsis // Br Med Bull. 2004. — Vol. 71. — P. 1−11.
  261. Macintire D.K., Bellhorn T.L. Bacterial translocation: clinical implications and prevention // Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2002. — Vol. 32, № 5.-P. 1165−1178.
  262. MadlC., Druml W. Gastrointestinal disorders of the critically ill. Systemic consequences of ileus // Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2003. — Vol. 17, № 3. — P. 445156.
  263. Magnotti L.J., Deitch E.A. Burns, bacterial translocation, gut barrier function, and failure // J Burn Care Rehabil. 2005. — Vol. 26, № 5. — P. 383−391.
  264. Mainous M.R., Tso P., Berg R.D., Deitch E.A. Studies of the route, magnitude, and time course of bacterial translocation in a model of systemic inflammation // Arch Surg. 1991. — Vol. 126, № 1. — P. 33−37.
  265. Majeski J. Operative therapy for cecal volvulus combining resection with col-opexy // Am J Surg. 2005. — Vol. 189, № 2. — P. 211−213.
  266. Marques R.G., PetroianuA., de Oliveira M.B. et al. Bacterial clearance after total splenectomy and splenic autotransplantation in rats // Appl Radiat Isot. -2002. Vol. 57, № 6. — P. 767−771.
  267. Marques R.G., PetroianuA., de Oliveira M.B. et al. Evaluation of possible failure of the mononuclear phagocyte system after total splenectomy in rats // Brazilian archives of biology and technology. 2004. — Vol. 47, № 2. — P. 199 204.
  268. Marshall J.C. Biomarkers of sepsis // Curr Infect Dis Rep. 2006. — Vol. 8, r» C D T ^ 1 1 C'7 J>i! J. -1. JJ i—JD /.
  269. Marshall J.C. Lipopolysaccharide: an endotoxin or an exogenous hormone? // Clin Infect Dis. 2005. — Vol. 41, Suppl. 7. — P. 470180.
  270. Matrane A., Mariaule E., Martin P., Bergmann P. Lower gastrointestinalbleeding: contribution of labeled erythrocytes scintigraphy // Rev Med Brux. -2009.-Vol. 30, № l.-P. 55−58.
  271. McBride W.J., Zanzonico P., Sharkey R.M. et al. Bispecific antibody pretar-geting PET (immunoPET) with an 1241-labeled hapten-peptide // J Nucl Med. -2006. Vol. 47, № 10. — P. 1678−1688.
  272. Meddah A.T., Leke L., Romond M.B. et al. The effects of mesenteric ischemia on ileal colonization, intestinal integrity, and bacterial translocation in newborn piglets // Pediatr Surg Int. 2001. — Vol. 17, № 7. — P. 515−520.
  273. Medeiros A.C., Chacon D.A., Sales V.S. et al. Glucan and glutamine reduce bacterial translocation in rats subjected to intestinal ischemia-reperfusion // J Invest Surg. 2006. — Vol. 19, № 1. — P. 39−46.
  274. Meller B., Frohn C., Brand J.M. et al. Monitoring of a new approach of immunotherapy with allogenic (11 l) In-labelled NK cells in patients with renal cell carcinoma // Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2004. — Vol. 31, № 3. — P. 403 407.
  275. Mifkovic A., Pindak D., Daniel I., Pechan J. Septic complications of acute pancreatitis // Bratisl Lek Listy. 2006. — Vol. 107, № 8. — P. 296−313.
  276. Miniello S., Testini M., Amoruso M. Acute pancreatic necrosis complicated by infection and gastro-intestinal translocation: pathogenesis correlation and therapeutic implication // Ann Ital Chir. 2002. — Vol. 73, № 6. — P. 611−617.
  277. Mittal A., Phillips A.R., Loveday B., Windsor J.A. The potential role for xanthine oxidase inhibition in major intra-abdominal surgery // World J Surg. -2008. Vol. 32, № 2. — P. 288−295.
  278. Moriez R., Leveque M., Salvador-Cartier C. et al. Mucosal mast cell proteases are involved in colonic permeability alterations and subsequent bacterial translocation in endotoxemic rats // Shock. 2007. — Vol. 28, № 1. — P. 118−124.
  279. Nacul F.E., Guia I.L., LessaM.A., Tibiri^aE. The effects of vasoactive drugs on intestinal functional capillary density in endotoxemic rats: intravital video-microscopy analysis // Anesth Analg. 2010. — Vol. 110, № 2. — P. 547−554.
  280. Nameda S., Miura N.N., Adachi Y., Ohno N. Antibiotics protect against septic shock in mice administered beta-glucan and indomethacin // Microbiol Immunol. 2007. — Vol. 51, № 9.-P. 851−859.
  281. Nascimento Cardoso V., Roca M., Martin-Comin J. No influence of propa-nolol, cyclosporine, adriamycin, and nifedipine on the in vitro labelling of erythrocytes // Rev Esp Med Nucl. 2002. — Vol. 21, № 1. — P. 24−27.
  282. Nathan J., Crawford J.A., Sodee D.B., Bakale G. Fused SPECT/CT imaging of Peri-iliopsoas infection using Indium-111 -labeled leukocytes // Clin Nucl Med. -2006,-Vol. 31, № 12.-P. 801−802.
  283. Nigri F., Oliveira M.B., Bernardo-Filho M. Assessment of the effect of antiseizure drugs on the labeling process of red blood cells and plasma proteins with technetium-99m // Cell Mol Biol (Noisy-le-grand). 2002. — Vol. 48, № 7. -P. 793−801.
  284. Nikitenko V.I. Can translocated bacteria reduce wound infection? // J Wound Care.-2007.-Vol. 16, № 4.-P. 151−153.
  285. Nixon D.E., Landay A.L. Biomarkers of immune dysfunction in HIV // Curr
  286. Opin HIV AIDS. 2010. — Vol. 5, № 6. — P. 498−503.
  287. Norden C.W., Green G.M., Kass E.H. Antibacterial mechanisms of the urinary bladder // J Clm Invest. 1968. — Vol. 47, № 12. — P. 2689−2700.
  288. PalluaN., vonBulow S. Methods of burn treatment. Part I: general aspects // Chirurg. 2006. — Vol. 77, № 1. — P. 81−92.
  289. Parks R. Gut barrier dysfunction in obstructive jaundice. The Puree Lecture 1997 // Ulster Med J. 1998. — Vol. 67, Suppl. l.-P. 86−90.
  290. Parks R.W., Clements W.D., Pope C. et al. Bacterial translocation and gut microflora in obstructive jaundice // J Anat. 1996. — Vol. 189, Pt. 3. — P. 561 565.
  291. Pastor Rojo O., Lopez San Roman A., Albeniz Arbizu E. et al. Serum lipopol-ysaccharide-binding protein in endotoxemic patients with inflammatory bowel disease // Inflamm Bowel Dis. 2007. — Vol. 13, № 3. — P. 269−277.
  292. Paulus S.C., van Saene H.K., Hemsworth S. et al. A prospective study of septicaemia on a paediatric oncology unit: a three-year experience at The Royal Liverpool Children’s Hospital, Alder Hey, UK // Eur J Cancer. 2005. -Vol. 41, № 14.-P. 2132−2140.
  293. Peng J.S., Liu Z.H., Li C.J. et al. Development of a real-time PCR method for the detection of bacterial colonization in rat models of severe acute pancreatitis // Chin Med J (Engl). 2010. — Vol. 123, № 3. — P. 326−331.
  294. PenkovN. Pathogenetic mechanisms in biliary obstruction (literature review) // Khirurgiia (Sofiia). 2003. — Vol. 59, № 1−2. — P. 39−45.
  295. Peremans K., De Winter F., Janssens L. et al. An infected hip prosthesis in a dog diagnosed with a 99mTc-ciprofloxacin (infecton) scan // Vet Radiol Ultrasound. 2002. — Vol. 43, № 2. — P. 178−182.
  296. Perin F., Laurence D., Savary I. et al. Radioactive technetium-99m labelling of Salmonella abortusovis for the assessment of bacterial dissemination in sheep by in vivo imaging // Vet Microbiol. 1997. — Vol. 57, № 2−3. — P. 171−180.
  297. Perin F., Le Pape A., Laurence D. et al. Technetium 99m labeling of microorganisms for the dynamic imaging of bacterial dissemination // Eur J Nucl Med. 1996. — Vol. 23, № 9. — P. 1249.
  298. Petroianu A., da Silva R.G., Nascimento Cardoso V. et al. Effect of spleen surgeries on Escherichia coli distribution on the mononuclear phagocytic system//Int J Surg.-2010.-Vol. 8, № l.-P. 48−51.
  299. Phisitkul S., Laski M., Kimbrough R., Meyerrose G. Appearance of histoplasmosis sepsis on indium-111 labeled white blood cell scintigraphy // Clin Nucl Med. 2004. — Vol. 29, № 9. — P. 576−577.
  300. Pitombo M.B., Faria C.A., Bernardo L.C. et al. Dissemination of bacteria labeled with technetium-99m after laparotomy and abdominal insufflation with different C02 pressures on rats // Acta Cir Bras. 2008. — Vol. 23, № 1. -P. 48−54.
  301. Pitombo M.B., Lupi O.H., Gomes R.N. et al. Inflammatory response and bacterial dissemination after laparotomy and abdominal C02 insufflation in a murine model of peritonitis // Surg Endosc. 2006. — Vol. 20, № 9. — P. 14 401 447.
  302. Plachouras D., Stamatakos M., Baziaka F. et al. Portal and systemic en-dotoxemia in abdominal operations: the significance of acute abdomen // J Surg Res. 2006. — Vol. 134, № 1. — P. 133−137.
  303. Plokowski M.C., Beck G., Bernardo Filho M. et al. Evaluation of the 99m technetium labelling effect on Pseudomonas aeruginosa surface properties // Ann Inst Pasteur Microbiol. 1987. — Vol. 138, № 4. — P. 415−426.
  304. Polito E., Burroni L., Pichierri P. et al. Technetium tc 99m-labeled red blood cells in the preoperative diagnosis of cavernous hemangioma and other vascular orbital tumors // Arch Ophthalmol. 2005. — Vol. 123, № 12. — P. 1678−1683.
  305. Pungartnik C., Viau C., PicadaJ. et al. Genotoxicity of stannous chloride in yeast and bacteria // Mutat Res. 2005. — Vol. 583, № 2. — P. 146−157.
  306. Qiao Z., Li Z.L., Li J.Y. et al. Clinical study on bacterial translocation in severe multiple trauma patients // Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. -2006.-Vol. 18, № 1. P. 13−15.
  307. Qin H.L., Shen T.Y., Gao Z.G. et al. Effect of lactobacillus on the gut microflora and barrier function of the rats with abdominal infection // World J Gastroenterol. 2005.-Vol. 11, № 17.-P. 2591−2596.
  308. Qin H.L., Su Z.D., Gao Q., Lin Q.T. Early intrajejunal nutrition: bacterial translocation and gut barrier function of severe acute pancreatitis in dogs // Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2002. — Vol. 1, № 1. — P. 150−154.
  309. Quirino I.E., CorreiaM.I., Cardoso V.N. The impact of arginine on bacterial translocation in an intestinal obstruction model in rats // Clin Nutr. 2007. -Vol. 26, № 3.-P. 335−340.
  310. Ramirez P., Marti V., de la Plata A.M. et al. Bacterial translocation in heat stroke // Am J Emerg Med. 2009. — Vol. 27, № 9. — P. 1168.
  311. Rasaratnam B., Connelly N., Chin-Dusting J. Nitric oxide and the hyperdynamic circulation in cirrhosis: is there a role for selective intestinal decontamination? // Clin Sci (Lond). 2004. — Vol. 107, № 5. — P. 425−434.
  312. Ravin H.A., Rowley D., Jenkins C., Fine J. On the absorption of bacterial endotoxin from the gastro-intestinal tract of the normal and shocked animal // J Exp Med. 1960. — Vol. 112. — P. 783−792.
  313. Redd A.D., Gray R.H., Quinn T.C. Is microbial translocation a cause or consequence of HIV disease progression? // J Infect Dis. 2011. — Vol. 203, № 5. -P. 744−745.
  314. Reikeras O., Shegarfi Pl., WangJ.E., Utvag S.E. Lipopolysaccharide impairs fracture healing: an experimental study in rats // Acta Orthop. 2005. -Vol. 76, № 6.-P. 749−753.
  315. Reimund J.M., Arondel Y., Finck G. et al. Catheter-related infection in patients on home parenteral nutrition: results of a prospective survey // Clin Nutr.- 2002.-Vol. 21, № l.-P. 33−38.
  316. Rennen H.J., Bleeker-Rovers C.P., vanEerdJ.E. et al. 99mTc-labeled inter-leukin-8 for scintigraphic detection of pulmonary infections // Chest. 2004. -Vol. 126, № 6.-P. 1954−1961.
  317. Rivas S., Hernandez F., Martinez L. et al. Decrease in bacterial translocation in burned children treated with controlled nutritional support // Cir Pediatr. -2002.-Vol. 15, № 2.-P. 79−81.
  318. Romond M.B., Colavizza M., Mullie C. et al. Does the intestinal bifidobacteria! colonisation affect bacterial translocation? // Anaerobe. 2008. — Vol. 14, № l.-P. 43-^8.
  319. Roscher R., OettingerW., BegerH.G. Bacterial microflora, endogenous endotoxin, and prostaglandins in small bowel obstruction // Am J Surg. 1988. -Vol. 155, № 2.-P. 348−355.
  320. RuanX., Shi H., XiaG. et al. Encapsulated Bifidobacteria reduced bacterial translocation in rats following hemorrhagic shock and resuscitation // Nutrition.- 2007. Vol. 23, № 10. — P. 754−761.
  321. Rusckowski M., Gupta S., Liu G. et al. Investigation of four 99mTc-labeled bacteriophages for infection specific imaging // Nucl Med Biol. 2008. -Vol. 35, № 4.-P. 433−440.
  322. RuthT.J. The uses of radiotracers in the life sciences // Rep Prog Phys. -2009.-Vol. 72, № i.p. 1−23.
  323. Sakaguchi S., Furusawa S. Oxidative stress and septic shock: metabolic aspects of oxygen-derived free radicals generated in the liver during endotoxemia
  324. FEMS Immunol Med Microbiol. 2006. — Vol. 47, № 2. — P. 167−177.
  325. Sakorafas G.H., Lappas C., Mastoraki A. et al. Current trends in the management of infected necrotizing pancreatitis // Infect Disord Drug Targets. 2010. -Vol. 10, № l.-P. 9−14.
  326. Salman F.T., BuyrukM.N., GurlerN., CelikA. The effect of surgical trauma on the bacterial translocation from the gut // J Pediatr Surg. 1992. — Vol. 27, № 7.-P. 802−804.
  327. Samel S., Keese M., KleczkaM. et al. Microscopy of bacterial translocation during small bowel obstruction and ischemia in vivo a new animal model // BMC Surg. — 2002. — Vol. 2, № 6. — P. 39−44.
  328. Samel S., Keese M., Lanig S. et al. Supplementation and inhibition of nitric oxide synthesis influences bacterial transit time during bacterial translocation in rats // Shock. 2003. — Vol. 19, № 4. — P. 378−382.
  329. Samel S., Lanig S., Lux A. et al. The gut origin of bacterial pancreatic infection during acute experimental pancreatitis in rats // Pancreatology. 2002. -Vol. 2, № 5.-P. 449−455.
  330. Schietroma M., Cappelli S., Carlei F. et al. Intestinal and systemic endotoxae-mia after laparotomic or laparoscopic cholecystectomy // Chir Ital. 2006. -Vol. 58, № 2.-P. 171−177.
  331. Schweinburg F.B., Seligman A.M., Fine J. Transmural migration of intestinal bacteria- a study based on the use of radioactive Escherichia coli // N Engl J Med. 1950. — Vol. 242, № 19. — P. 747−751.
  332. Seal M., Naito Y., Barreto R. et al. Experimental radiotherapy-induced enteritis: a probiotic interventional study // J Dig Dis. 2007. — Vol. 8, № 3. -P. 143−147.
  333. Sepulveda-Mendez J., de Murphy C.A., Rojas-Bautista J.C., Pedraza-Lopez M. Specificity of 99mTc-UBI for detecting infection foci in patients with fever in study // Nucl Med Commun. 2010. — Vol. 31, № 10. — P. 889−895.
  334. Sha H.C., Ma Q.Y., Jha R.K. et al. Protective effect of resveratrol on intestinal mucosal barrier in rats with severe acute pancreatitis // Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2008. — Vol. 39, № 5. — P. 740−743.
  335. Shahidi S., Eskil A., Lundof E. et al. Detection of abdominal aortic graft infection: comparison of magnetic resonance imaging and indium-labeled white blood cell scanning // Ann Vase Surg. 2007. — Vol. 21, № 5. — P. 586−592.
  336. Shannon F.L., Moore E.E., Moore F.A., McCroskey B.L. Value of distal colon washout in civilian rectal trauma reducing gut bacterial translocation // J Trauma. — 1988. — Vol. 28, № 7. — P. 989−994.
  337. Sharma B.R. Infection in patients with severe burns: causes and prevention thereof// Infect Dis Clin North Am. 2007. — Vol. 21, № 3. — P. 745−759.
  338. Shiomi H., Shimizu T., Endo Y. et al. Relations among circulating monocytes, dendritic cells, and bacterial translocation in patients with intestinal obstruction // World J Surg. 2007. — Vol. 31, № 9. — P. 1806−1812.
  339. Siaens R.H., RennenH.J., Boerman O.C. et al. Synthesis and comparison of 99mTc-enrofloxacin and 99mTc-ciprofloxacin // J Nucl Med. 2004. — Vol. 45, № 12.-P. 2088−2094.
  340. Sileri P., Morini S., Sica G.S. et al. Bacterial translocation and intestinal morphological findings in jaundiced rats // Dig Dis Sci. 2002. — Vol. 47, № 4. -P. 929−934.
  341. Silva C.R., Oliveira M.B., Melo S.F. et al. Biological effects of stannous chloride, a substance that can produce stimulation or depression of the central nervous system // Brain Res Bull. 2002. — Vol. 59, № 3. — P. 213−216.
  342. SilvaDe Souza S.M., HirataR. Jr., MoreiraL.O. et al. Influence of stannous chloride on the adhesive properties of Corynebacterium diphtheriae strains // Int J Mol Med.-2003.-Vol. 12, № 4.-P. 657−661.
  343. Skinn A.C., VergnolleN., Cellars L. et al. Combined challenge of mice with Citrobacter rodentium and ionizing radiation promotes bacterial translocation // Int J Radiat Biol. 2007. — Vol. 83, № 6. — P. 375−382.
  344. Smith A.J., Schacker T.W., Reilly C.S., Haase A.T. A role for syndecan-1 and claudin-2 in microbial translocation during HIV-1 infection // J Acquir Immune Defic Syndr. 2010. — Vol. 55, № 3. — P. 306−315.
  345. Smith R.T., Braude A.I., Carey F.J. The distribution of Cr51 labeled E. coli endotoxin in the generalized Shwartzman reaction // J Clin Invest. 1957. -Vol. 36, № 5.-P. 695−699.
  346. Sonmezoglu K., Sonmezoglu M., Halac M. et al. Usefulness of 99mTc-ciprofloxacin (infecton) scan in diagnosis of chronic orthopedic infections: comparative study with «mTc-HMPAO leukocyte scintigraphy // J Nucl Med. -2001.-Vol. 42, № 4.-P. 567−574.
  347. Spaeth G., Specian R.D., Berg R.D., Deitch E.A. Splenectomy influences en-dotoxin-induced bacterial translocation // J Trauma. 1990. — Vol. 30, № 10. -P.1267−1272.
  348. Spiess H., Poppe H. Further studies with radioactive-labeled bacteria in tuberculosis vaccination // Klin Wochenschr. 1954. — Vol. 32, № 7−8. — P.186−187.
  349. Stagnitti F. Intestinal occlusion and abdominal compartment syndrome (ACS) // Ann Ital Chir. 2009. — Vol. 80, № 6. — P. 417−421.
  350. Steinberg S., FlynnW., KelleyK. et al. Development of a bacteria-independent model of the multiple organ failure syndrome // Arch Surg. 1989. -Vol. 124, № 12.-P. 1390−1395.
  351. Sternberg J., Podoski M.O. Studies on labeled Mycobacteria. I. Mycobacterium phlei and radiophosphorus- technic of obtaining and rate of utilization of exogenous phosphorus // Ann Inst Pasteur (Paris). 1953. — Vol. 84, № 5. -P. 853−878.
  352. Sundararajan C., Besanger T.R., Labiris R. et al. Synthesis and characterization of rhenium and technetium-99m labeled insulin // J Med Chem. 2010. -Vol. 53, № 6.-P. 2612−2621.
  353. Talavera Rubio M.P., Ruiz Solis S., Garcia Vicente A.M. et al. Value of 99mTc-labelled red cells in the detection of pulmonary haemorrhage // Rev Esp Med Nucl. 2008. — Vol. 27, № 4. — P. 274−276.
  354. Tancrede C. Translocation of digestive tract bacteria in the body // Gastroenterol Clin Biol. 1986.-Vol. 10, № 11.- P. 709−711.
  355. Tandon P., Garcia-Tsao G. Bacterial infections, sepsis, and multiorgan failure in cirrhosis // Semin Liver Dis. 2008. — Vol. 28, № 1. — P. 26−42.
  356. Tascilar N., Irkorucu O., Tascilar O. et al. Bacterial translocation in experimental stroke: what happens to the gut barrier? // Bratisl Lek Listy. 2010. -Vol. Ill, № 4.-P. 194−199.
  357. Thomson A. Bacterial translocation in acute pancreatitis // J Gastroenterol Hepatol. 2003. — Vol. 18, № 10. — P. 1214.
  358. Tomono K. Etiology of sepsis occurring in the immunocompromised host and its prevention. 1. Analysis of the bacterial portal of entrance in experimental mice with bacteremia // Kansenshogaku Zasshi. 1989. — Vol.63, № 5. -P. 479−488.
  359. Torer N., Nursal T.Z., Tufan H. et al. Effect of manual bowel decompression (milking) in the obstructed small bowel // Am J Surg. 2008. — Vol. 195, № 6. -P. 807−813.
  360. Torrecillas S., Makol A., Benitez-Santana T. et al. Reduced gut bacterial translocation in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed mannan oligosaccharides (MOS) // Fish Shellfish Immunol. 2011. — Vol. 30, № 2. — P. 674 681.
  361. C., Penglis S., Ruszkiewicz A., Bartholomeusz F.D. 99mTc-alafosfalin: an antibiotic peptide infection imaging agent ././ Nucl Med Biol. -2003. Vol. 30, № 2. — P. 169−175.
  362. Tsuda Y., Shigematsu K., Kobayashi M. et al. Role of polymorphonuclear neutrophils on infectious complications stemming from Enterococcus faecalisoral infection in thermally injured mice // J Immunol. 2008. — Vol. 180, № 6. -P. 4133−4138.
  363. Tuncyurek P., Sari M., Firat O. et al. Does pharmaconutrition with L-arginine and/or alpha-tocopherol improve the gut barrier in bile duct ligated rats? // Eur Surg Res. 2006. — Vol. 38, № 1. — P. 4−10.
  364. Tiirk9apar N., BayarS., KoyuncuA., Ceyhan K. Octreotide inhibits hepatic fibrosis, bile duct proliferation and bacterial translocation in obstructive jaundice // Hepatogastroenterology. 2003. — Vol. 50, № 51. — P. 680−683.
  365. Tuzel E., Guler C., Aktepe O.C. et al. Effect of carbon dioxide pneumoretroperitoneum on bacterial translocation in an experimental retroperitoneoscopy model // J Endourol. 2007. — Vol. 21, № l.-P. 108−111.
  366. Uslu H., Varoglu E., Kadanali S. et al. 99mTc-HMPAO labelled leucocyte scintigraphy in the diagnosis of pelvic inflammatory disease // Nucl Med Commun. 2006. — Vol. 27, № 2. — P. 179−183.
  367. Vaidyanathan G., Friedman H.S., Affleck D.J. et al. Specific and high-level targeting of radiolabeled octreotide analogues to human medulloblastoma xenografts // Clin Cancer Res. 2003. — Vol. 9, № 5. — P. 1868−1876.
  368. Van der Waaij D. Colonization resistance of the digestive tract mechanism and clinical consequences // Nahrung. — 1987. — Vol. 31, № 5−6. — P. 507−517.
  369. Van der Waaij D. The persistent absence of Enterobacteriaceae from the intestinal flora of mice following antibiotic treatment // J Infect Dis. 1968. -Vol. 118, № l.-P. 32−38.
  370. Van der Waaij D., Berghuis-de Vries J.M., Lekkerkerk-van der Wees. Colonization resistance of the digestive tract and the spread of bacteria to the lymphatic organs in mice // J Hyg (Lond). 1972. — Vol. 70, № 2. — P. 335−342.
  371. Van Minnen L.P., Blom M., Timmerman H.M. et al. The use of animal models to study bacterial translocation during acute pancreatitis // J Gastrointest Surg. -2007. Vol. 11, № 5. — P. 682−689.
  372. Van Minnen L.P., Nieuwenhuijs V.B., de Bruijn M.T. et al. Effects of subtotalcolectomy on bacterial translocation during experimental acute pancreatitis // Pancreas. 2006 — Vol. 32, № l.-P. 110−114.
  373. Van Vliet M.J., Harmsen H.J., de Bont E.S., Tissing W.J. The role of intestinal microbiota in the development and severity of chemotherapy-induced mucositis // PLoS Pathog. 2010. — Vol. 6, № 5. — el000879.
  374. Van Vliet M.J., Tissing W.J., de Bont E.S. et al. Denaturing gradient gel electrophoresis of PCR-amplified gki genes: a new technique for tracking streptococci // J Clin Microbiol. 2009. — Vol. 47, № 7. — P. 2181−2186.
  375. Viana M.L., Santos R.G., Generoso S.V. et al. Pretreatment with arginine preserves intestinal barrier integrity and reduces bacterial translocation in mice // Nutrition. 2010. — Vol. 26, № 2. — P. 218−223.
  376. Victoni T., Coelho F.R., Soares A.L. et al. Local and remote tissue injury upon intestinal ischemia and reperfusion depends on the TLR/MyD88 signaling pathway // Med Microbiol Immunol. 2010. — Vol. 199, № 1. — P. 35−42.
  377. Vilstrup H. Cirrhosis and bacterial infections // Rom J Gastroenterol. 2003. -Vol. 12, № 4.-P. 297−302.
  378. Vittorini E., Del Giudice E., Pizzoli A., Caudana R. MRI versus scintigraphy with 99mTc-HMPAO-labelled granulocytes in the diagnosis of bone infection // Radiol Med. 2005. — Vol. 109, № 4. — P. 395−403.
  379. Von Guggenberg E., Behe M., Behr T.M. et al. 99mTc-labeling and in vitro and in vivo evaluation of HYNIC- and (Nalpha-His)acetic acid-modified D-Glul .-minigastrin // Bioconjug Chem. 2004. — Vol. 15, № 4. — P. 864−871.
  380. Wagner T., Payoux P., Simon J. et al. Discordance between labelled white blood cell scintigraphy and bone scan following suspicion of bone infection: what should be done about it? // Nucl Med Rev Cent East Eur. 2010. -Vol. 13, № I. — P. 5−7.
  381. Wanahita A., Villeda C., KutkaN. et al. Diagnostic sensitivity and specificity of the radionuclide (indium)-labeled leukocyte scan // J Infect. 2007. -Vol. 55, № 3,-P. 214−219.
  382. Wang P., Wei X., Li Y., Li J. Influences of intestinal ligation on bacterial translocation and inflammatory response in rats with hemorrhagic shock: implications for damage control surgery // J Invest Surg. 2008. — Vol. 21, № 5. -P. 244−254.
  383. Wang Z.T., Yao Y.M., Xiao G.X., Sheng Z.Y. Risk factors of development of gut-derived bacterial translocation in thermally injured rats // World J Gastroenterol. 2004. — Vol. 10, № 11.-P. 1619−1624.
  384. Weber-Mzell D., ZaupaP., PetnehazyT. et al. The role of nuclear factor-kappa B in bacterial translocation in cholestatic rats // Pediatr Surg Int. 2006. -Vol. 22, № l.-P. 43−49.
  385. Weiner R.E., Thakur M.L. Radiolabeled peptides in oncology: role in diagnosis and treatment // BioDrugs. 2005. — Vol. 19, № 3. — P. 145−163.
  386. Welling M.M., Lupetti A., Baiter H.S. et al. 99mTc-labeled antimicrobial peptides for detection of bacterial and Candida albicans infections // J Nucl Med. -2001. Vol. 42, № 5. — P. 788−794.
  387. Wells C.L. Relationship between intestinal microecology and the translocation of intestinal bacteria // Antonie Van Leeuwenhoek. 1990. — Vol. 58, № 2. -P. 87−93.
  388. Wells C.L., Balish E. Gastrointestinal ecology and histology of rats monoas-sociated with anaerobic bacteria // Appl Environ Microbiol. 1980. — Vol. 39, № l.-P. 265−267.
  389. Wells C.L., Hess D.J., Erlandsen S.L. Impact of the indigenous flora in animal models of shock and sepsis // Shock. 2004. — Vol. 22, № 6. — P. 562−568.
  390. Wells C.L., Jechorek R.P., Maddaus M.A., Simmons R.L. Effects of clindamycin and metronidazole on the intestinal colonization and translocation of enterococci in mice // Antimicrob Agents Chemother. 1988. — Vol. 32, № 12. -P. 1769−1775.
  391. Wells C.L., Maddaus M.A., Jechorek R.P., Simmons R.L. Ability of intestinal Escherichia coli to survive within mesenteric lymph nodes // Infect Immun. -1987.-Vol. 55, № 11.-p. 2834−2837.
  392. Wells C.L., Maddaus M.A., Reynolds C.M. et al. Role of anaerobic flora in the translocation of aerobic and facultatively anaerobic intestinal bacteria // Infect Immun. 1987. — Vol. 55, № 11. — P. 2689−2694.
  393. Wells C.L., Maddaus M.A., Simmons R.L. Role of the macrophage in the translocation of intestinal bacteria // Arch Surg. 1987. — Vol. 122, № 1. -P. 48−53.
  394. Wells C.L., Rotstein O.D., Pruett T.L., Simmons R.L. Intestinal bacteria translocate into experimental intra-abdominal abscesses // Arch Surg. 1986. -Vol. 121, № l.-P. 102−107.
  395. White J.S., HoperM., Parks R.W. et al. Patterns of bacterial translocation in experimental biliary obstruction // J Surg Res. 2006. — Vol. 132, № 1. -P. 80−84.
  396. Wiest R., Cadelina G., Milstien S. et al. Bacterial translocation up-regulates GTP-cyclohydrolase I in mesenteric vasculature of cirrhotic rats // Hepatology. 2003. — Vol. 38, № 6. — P. 1508−1515.
  397. Worlicek M., Knebel K., Linde H.J. et al. Splanchnic sympathectomy prevents translocation and spreading of E coli but not S aureus in liver cirrhosis // Gut. -2010. -Vol. 59, № 8. P. 1127−1134.
  398. Wu C.C., Lu Y.Z., Wu L.L., Yu L.C. Role of myosin light chain kinase in intestinal epithelial barrier defects in a rat model of bowel obstruction // BMC Gastroenterol. 2010. — Vol. 10. — P. 39.
  399. Xiang X.S., Zhao Y.Z., Li N. et al. Accumulation of DC in lamina propria induced by FMS-like tyrosine kinase 3 ligand aggravates the intestinal inflammatory response during endotoxemia // Inflammation. 2010. — Vol. 33, № 1.1. P. 34−45.
  400. Xiao G.X. The gut-origin infection in severe burns // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2008. — Vol. 24, № 5.-P. 331−333.
  401. Xu G.F., Lu Z., Gao J. et al. Effect of ecoimmunonutrition supports on maintenance of integrity of intestinal mucosal barrier in severe acute pancreatitis in dogs // Chin Med J (Engl). 2006. — Vol. 119, № 8. — P. 656−661.
  402. Yajima S., Morisaki H., Serita R. et al. Tumor necrosis factor-alpha mediates hyperglycemia-augmented gut barrier dysfunction in endotoxemia // Crit Care Med. 2009. — Vol. 37, № 3. — P. 1024−1030.
  403. Yamaguchi H., KitaT., Sato H., TanakaN. Escherichia coli endotoxin enhances acute renal failure in rats after thermal injury // Burns. 2003. -Vol. 29, № 2.-P. 133−138.
  404. Yang J., Guo H., Miao Y. Technetium-99m-labeled Arg-Gly-Asp-conjugated alpha-melanocyte stimulating hormone hybrid peptides for human melanoma imaging // Nucl Med Biol. 2010. — Vol. 37, № 8. — P. 873−883.
  405. Yang J., Nie Q.H., Wang A.H. et al. Effects of intestinal intervention on bacterial translocation in a rat model of acute liver failure in vivo // Eur J Gastroenterol Hepatol.-2010.-Vol. 22, № 11.-P. 1316−1322.
  406. Yang R., HaradaT., MollenK.P. et al. Anti-HMGBl neutralizing antibody ameliorates gut barrier dysfunction and improves survival after hemorrhagic shock // Mol Med. 2006. — Vol. 12, № 4−6. — P. 105−114.
  407. Yang R., Miki K., OksalaN. et al. Bile high-mobility group box 1 contributes to gut barrier dysfunction in experimental endotoxemia // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2009. — Vol. 297, № 2. — P. 362−369.
  408. Yang Z.W., Li J.G., Mao X.G. et al. Effects of recombinant human growth hormone on intestinal translocation of bacteria and endotoxin in rats with obstructive jaundice // Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2005. — Vol. 4, № 3. -P. 445−449.
  409. Yao V., Cooper D., McCauley R. et al. Bacterial translocation in a non-lethalrat model of peritonitis // Colorectal Dis. 2001. — Vol. 3, № 5. — P. 338−344.
  410. Yasuda T., Takeyama Y., Ueda T. et al. Breakdown of intestinal mucosa via accelerated apoptosis increases intestinal permeability in experimental severe acute pancreatitis // J Surg Res. 2006. — Vol. 135, № 1. — P. 18−26.
  411. Yasumura M., Mori Y., Takagi H. et al. Experimental model to estimate intestinal viability using charge-coupled device microscopy // Br J Surg. 2003. -Vol. 90, № 4. — P. 460−465.
  412. Zanoni F.L., Benabou S., Greco K.V. et al. Mesenteric microcirculatory dysfunctions and translocation of indigenous bacteria in a rat model of strangulated small bowel obstruction // Clinics. 2009. — Vol. 64, № 9. — P. 911−919.
  413. Zapata-Sirvent R.L., Larocca A., Pinate S. et al. Factors involved in bacterial translocation in an experimental model of intestinal obstruction // GEN. -1989. Vol. 43, № 3. — P. 185−193.
  414. Zhang B., Wang W., Zhang G. Effects of Gutuo Qingfu Decoction via gastroenteric perfusion on 16SrRNA in blood of severe multitraumatic patients // Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi. 2010. — Vol. 30, № 6. — P. 589−592.
  415. Zhang H., Jiang N.Y., Zhu L. Experimental studies on imaging of infected site with (99m)Tc-labeled ciprofloxacin in mice // Chin Med J (Engl). 2009. -Vol. 122, № 16. — P. 1907−1909.
  416. Zhang M.M., Cheng J.Q., Lu Y.R. et al. Effects of enteral nutrition and parenteral nutrition on gut epithelial tight junction and barrier function in rats after surgical stress // Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2009. — Vol. 40, № 4. -P. 615−618.
  417. Zhang X.P., Zhang J., Song Q.L., Chen H.Q. Mechanism of acute pancreatitis complicated with injury of intestinal mucosa barrier // J Zhejiang Univ Sci B.7"1 Q AfX n P 888 QQ
  418. Zhang Y.J., Li M., Meng M. et al. The effect of ulinastatin on the small intestine injury and mast cell degranulation in a rat model of sepsis induced by CLP // Exp Toxicol Pathol. 2009. — Vol. 61, № 5. — P. 481490.
  419. Zhang Z.J., Yang C.Q. Progress in investigating the pathogenesis of hepato-pulmonary syndrome // Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2010. — Vol. 9, № 4. -P. 355−360.
  420. Zou X.P., Chen M., Wie W. et al. Effects of enteral immunonutrition on the maintenance of gut barrier function and immune function in pigs with severe acute pancreatitis // JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2010. — Vol. 34, № 5. P. 554−566.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!