Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Распространение гормональных, гидравлических и трофических сигналов и их взаимодействие в растениях при внешних воздействиях на корневую систему

Диссертация: Распространение гормональных, гидравлических и трофических сигналов и их взаимодействие в растениях при внешних воздействиях на корневую систему
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Материалы диссертации были представлены на 20 конференциях, наиболее важные из которых: III, IV, V, VI съезд обществ физиологов растений (Москва, 1997; Москва, 1999; Пенза, 2003; Сыктывкар, 2007), XI-XIV конгрессы европейских обществ физиологов растений (Варна, 1998; Будапешт, 2000; Крит, 2002; Краков, 2004; Лион, 2006), 5-я международная конференция «Регуляторы роста и развития растений… Читать ещё >

Распространение гормональных, гидравлических и трофических сигналов и их взаимодействие в растениях при внешних воздействиях на корневую систему (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Обмен сигналами между органами растения
    • 1. 2. Влияние гормональных и гидравлических сигналов на водный обмен растений
      • 1. 2. 1. Координация поглощения и потери воды
      • 1. 2. 2. Регуляция устьичной проводимости
      • 1. 2. 3. Гормональные сигналы, регулирующие устьичную проводимость
      • 1. 2. 4. Регуляция гидравлической проводимости
    • 1. 3. Регуляция роста растений при дефиците воды
    • 1. 4. Синтез, транспорт и метаболизм цитокининов
      • 1. 4. 1. Синтез цитокининов
      • 1. 4. 2. Роль ЦКО в регуляции содержания цитокининов
      • 1. 4. 3. Транспорт и перераспределение цитокининов
    • 1. 5. Регуляция роста растений при дефиците питания
      • 1. 5. 1. Дефицит минерального питания и гормоны
      • 1. 5. 2. Роль ЦК в регуляции соотношения массы побег/корень при дефиците минерального питания
    • 1. 6. Регуляция ветвления корней
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Условия выращивания растений
    • 2. 2. Постановка опытов
      • 2. 2. 1. Эксперименты с локальной засухой в области корней
      • 2. 2. 2. Эксперименты с локальным нагреванием корней растений табака
      • 2. 2. 3. Эксперименты с растениями пшеницы
    • 2. 3. Оценка показателей роста
      • 2. 3. 1. Площадь поверхности листьев
      • 2. 3. 2. Измерение роста растений
      • 2. 3. 4. Определение коэффициента растяжения
      • 2. 3. 3. Определение числа боковых корней и примордиев боковых корней
    • 2. 4. Измерение показателей водного обмена
      • 2. 4. 1. Измерение скорости транспирации
      • 2. 4. 2. Измерение устьичной проводимости
      • 2. 4. 3. Определение водного потенциала листа, ОСВ, осмотического давления и содержания ионов
      • 2. 4. 4. Определение гидравлической проводимости растений
    • 2. 5. Оценка показателей фотосинтеза
    • 2. 6. Оценка транспорта гормонов по флоэме
    • 2. 7. Сбор ксилемного сока растений
    • 2. 8. Экстракция, очистка и концентрирование гормонов
    • 2. 9. Твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА)
    • 2. 10. Иммунолокализация ИУК
    • 2. 11. Определение активности цитокининоксидазы
    • 2. 12. Определение уровня экспрессии генов ЦКО
    • 2. 13. Статистическая обработка данных
  • 3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
    • 3. 1. Гормональные и гидравлические сигналы в регуляции роста и устьичной проводимости у растений томатов при частичной засухе в области корней
    • 3. 2. Сигнальная роль корневых цитокининов в регуляции устьичной проводимости у /р/-трансгенных растений табака в условиях локального действия температуры
      • 3. 2. 1. Реакция растений табака на локальное нагревание корня
      • 3. 2. 2. Содержание цитокининов и АБК при локальном нагревании корней
    • 3. 3. Исследование сигнальных механизмов, обеспечивающих координацию роста и регуляцию водного обмена при частичном удалении корней у растений пшеницы
      • 3. 3. 1. Реакция растений пшеницы на удаление части корней
      • 3. 3. 2. Водный обмен
      • 3. 3. 3. Гормональный баланс побега
        • 3. 3. 3. 1. Абсцизовая кислота
        • 3. 3. 3. 2. Цитокинины
      • 3. 3. 4. Регуляция роста побега
      • 3. 3. 5. Гормоны в корнях и контролируемые ими процессы.158 У
        • 3. 3. 5. 1. АБК и гидравлическая проводимость корня
        • 3. 3. 5. 2. Перераспределение ИУК и регуляция роста корней
        • 3. 3. 5. 3. Иммунолокализация ИУК.171 <
        • 3. 3. 5. 4. ЦК и регуляция роста корней
    • 3. 4. Сравнительное изучение роли субстратных, гидравлических и гормональных сигналов в регуляции ответа растений пшеницы на уровень минерального питания
      • 3. 4. 1. Влияние дефицита ионов и азотной подкормки на динамику цитокининов в изолированных листьях пшеницы
      • 3. 4. 2. Реакция растений на дефицит ионов в питательном растворе
        • 3. 4. 2. 1. Дефицит ионов и регуляция соотношения побег/корень
        • 3. 4. 2. 2. Влияние дефицита минеральных веществ на водный обмен растений
        • 3. 4. 2. 3. Взаимодействие субстратных и гидравлических сигналов в индукции накопления АБК в побеге
        • 3. 4. 2. 4. Механизмы регуляции содержания ЦК в побеге
        • 3. 4. 2. 5. Флоэмный транспорт АБК и регуляция роста корней

Актуальность темы

исследования.

Способность координировать процессы, которые происходят в разных органах — важное свойство растений, обеспечивающее их реакцию на организменном уровне и приспособление к изменению условий обитания. Одно из важных проявлений этого свойства — изменение гидравлической проводимости корней в соответствие с транспирационным запросом, обеспечивающее баланс между поглощением и испарением воды (Steudle, 2000; Meinzer, 2002; Parent et al., 2010). Другое проявление координации процессов, происходящих в разных органах растений — это относительная активация роста корней за счет ингибирования роста побега, лежащая в основе приспособления растений к дефициту воды и ионов (Beck, 1996; Poorter, Nagel, 2000; Bogeat-Triboulot et al., 2007). Известно, что фитогормоны могут выполнять функцию сигналинга на уровне целого растения, передавая информацию из органа в орган (Кулаева, 1962; Davies et al., 2005; Романов, 2009; Титов, Таланова, 2009). Впервые это было показано на примере синтезируемых в корнях цитокининов, которые транспортируются в побег и влияют на происходящие там процессы (Кулаева, 1962). Была показана сигнальная функция корневой абсцизовой кислоты (АБК) в передаче в побег сигналов о наступающей засухе (Zhang, Davies, 1990). Идея о роли корневой АБК в адаптации растений к дефициту воды стала весьма популярной (см. обзор Schachtman, Goodger, 2008), а роль корневых цитокининов в нитратном сигналинге была недавно подтверждена в опытах японский исследователей (Takei et al., 2001; Sakakibara et al., 2007). Тем не менее, не всегда удается доказать роль гормонов в качестве системных сигналов, обеспечивающих реакцию на уровне целого организма. Не у всех растений удалось зарегистрировать повышение притока АБК из корней при подсыхании почвы (Dodd 2005). Отдельные эксперименты с трансгенными растениями свидетельствовали против роли цитокининов в качестве системных сигналов.

Faiss et al., 1997). В них было показано, что только локальная индукция ipt-гена в побегах трансгенного привоя приводит к активации роста боковых побегов, а индукция синтеза цитокининов в корнях трансгенного подвоя не давала такой реакции. Из литературы известна роль гидравлических (Malone, 1993; Холодова и др., 2006; Christman et al., 2007), электрических (Fromm, Lautner, 2007) и субстратных (трофических) (Forde, 2002; Rolland et al., 2006) сигналов в координации процессов в растениях. Высказывалось предположение о том, что их распространение по растению может вызывать локальные изменения в метаболизме гормонов, обеспечивая тем самым их участие в дистанционном сигналинге (Кудоярова и др., 1990; Полевой и др., 1997; Christmann et al., 2007). Способность гормонов влиять на концентрацию друг друга (Brugier et al., 2003; Reski, 2006) может играть важную роль в обеспечении распространения гормональных сигналов по растению. И, тем не менее, взаимодействию гормональных, гидравлических и трофических сигналов уделяется крайне мало внимания. Также немногочисленны исследования, которые позволили бы выявить роль взаимовлияния разных гормонов в осуществлении гормональной системой функции сигналинга на уровне целого растения. Вместе с тем, можно было предполагать, что транспорт одного гормона может влиять на локальный метаболизм другого гормона, вовлекая его в системный сигналинг.

Цель работы состоит в выявлении роли гидравлических, гормональных и трофических сигналов в обеспечении реакции растения на уровне целого организма при воздействиях на корневую систему. Для ее достижения были поставлены следующие задачи:

1. Оценить вклад притока гормонов из корней и их метаболизма in situ в формировании гормонального статуса побега растений томатов при локальном дефиците воды в почве. Выявить роль гормональных и гидравлических сигналов в регуляции метаболизма цитокининов в побеге.

2. На модели трансгенных растений табака с индуцируемой экспрессией? р?-гена изучить влияние локального повышения продукции цитокининов в корнях на скорость транспирации и содержание ЦК в листьях.

Изучить транспорт ЦК из корней, динамику содержания АБК, а также активность цитокининоксидазы в побеге с целью выявления компенсаторных механизмов, направленных на обеспечение поддержания водного баланса у трансгенных растений табака после индуцированного повышения уровня цитокининов.

3. Изучить влияние частичного удаления корней на рост листьев растяжением, накопление массы побега и корней, ветвление корней, концентрацию элементов минерального питания, показатели водного обмена, содержание и транспорт гормонов у растений пшеницы. На основании анализа этих данных выявить возможные гидравлические и гормональные сигналы, запускающие компенсаторные реакции, направленные на поддержание потока воды из корней и повышение их поглотительной способности. ^.

4. Оценить влияние дефицита элементов минерального питания в среде на рост побега и корней, соотношение их массы, содержание гормонов и показатели водного обмена (водный и осмотический потенциал, тургор, устьичная и гидравлическая проводимость) у растений пшеницы. На основании анализа результатов этих экспериментов выявить относительную роль гидравлических, гормональных и трофических сигналов в регуляции относительной активации роста корней как адаптивной реакции на дефицит питания.

5. Проверить гипотезу о том, что сопряженность сигналинга ЦК и АБК обусловлена влиянием АБК на активность цитокининоксидазы и содержание цитокининов в растениях.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

• Трофические и гидравлические сигналы оказывают влияние на содержание гормонов в побегах и корнях и их ксилемные и флоэмные потоки. Координация ростовых реакций побега и корня при воздействиях на корни осуществляется за счет изменения метаболизма и перераспределения гормонов между побегом и корнем.

• Системное действие цитокининов в регуляции водного баланса растений реализуется через влияние уровня продукции цитокининов в корнях на устьичную проводимость. Реакция устьиц при воздействиях на корневую систему зависит от соотношения АБК и цитокининов, которое, в свою очередь, определяется как притоком гормонов из корней (корневые гормональные сигналы), так и их метаболизмом in situ.

• В основе согласованности изменений уровня цитокининов и АБК и сопряженности их действия на устьичную проводимость и соотношение массы побег/корень лежит влияние АБК на уровень ЦК, реализуемое через повышение уровня транскриптов и активности цитокининоксидазы.

• Компенсаторное повышение поглотительной способности корневой системы после ее редукции достигается за счет повышения гидравлической проводимости в результате концентрирования АБК в редуцированной корневой системе и активации ветвления под влиянием ауксинового сигнала, поступающего из побега.

Научная новизна.

Выявлен относительный вклад транспорта и метаболизма цитокининов in situ в регуляцию их содержания в листьях при разбавлении питательного раствора, локальном подсыхании почвы (PRD) и удалении части корней. Показано, что при данных воздействиях уровень этого гормона в большей степени зависит от его метаболизма: снижается за счет активации цитокининоксидазы при дефиците элементов минерального питания и поддерживается — в результате снижения активности этого фермента при редукции корневой системы. С помощью ингибитора синтеза АБК флуридона доказано существование причинно-следственной связи между накоплением АБК и снижением уровня цитокининов в растении при стрессовых воздействиях, в основе которого лежит активация цитокининоксидазы под влиянием АБК. На модели трансгенных растений с локальной индукцией синтеза цитокининов в корнях растений показана системная роль дальнего транспорта цитокининов в повышении устьичной проводимости и, тем самым — в регуляции водного обмена на уровне целого растения. Выявлен высокий адаптивный потенциал корневой системы растений пшеницы, который проявляется в способности редуцированной корневой системы обеспечивать побег достаточным количеством воды за счет быстрого подъема гидравлической проводимости, а также компенсаторной активации роста боковых корней. Показано, что увеличение поглотительной способности редуцированной корневой системы обусловлено перераспределением гормонов: приток АБК из побега в корень — способствует увеличению гидравлической проводимости, а повышение притока ауксинов — активирует 1 формирование боковых корней. Выявлена роль гидравлических сигналов, которая проявляется в активации потоков АБК и ИУК в корень под влиянием, транзиторного дефицита воды в побеге.

Научно-практическая значимость работы.

Показано, что в основе разнообразия адаптивных реакций растений лежит сочетание различных сигналов и их взаимодействие. В работе раскрыто, каким образом воздействия на корень индуцируют передачу гормональных, гидравлических и трофических сигналов, которые не только вызывают ответные реакции в побеге, но и генерацию обратных сигналов из побега в корень, обеспечивая тем самым координацию процессов, лежащих в основе роста и водного обмена. Эта информация углубляет представления о механизмах, лежащих в основе регуляции продуктивности и устойчивости растений, и будет полезна в поиске путей их повышения. Основные 8 результаты работы используются в учебном процессе на кафедре физиологии растений — включены в учебное пособие «Гормоны и адаптация растений к условиям обитания. Уфа: РИО БашГУ, 2003».

Связь работы с плановыми исследованиями и научными программами.

Исследования проводились в рамках планов НИР лаборатории физиологии растений Института биологии УНЦ РАН: «Оптимизация и стабилизация продуктивного процесса растений в условиях стресса уровнем минерального питания и регуляторами роста (1996;1998) — «Исследование системы регуляции концентрации фитогормонов как фактора интеграции растительного организма» (2000;2003) — «Механизмы передачи сигналов между органами растения и согласования процессов, обеспечивающих рост и водный обмен в изменяющихся условиях внешней среды (2004;2006) — «Регуляция роста и водного обмена растений в изменяющихся условиях внешней среды (2007;2009). Исследования выполнены при поддержке грантов РФФИ: 97−04−49 962, 99−04−49 291, 02−04−97 908, 03−04−49 780, 05−04−50 824-МФ, 05−04−97 900, 06−04−49 166, 06−04−49 276, 08−04−591, 09−04−942, 11−04−97 023.

Декларация личного участия. Автором была определена тема исследования и подбор экспериментальных моделей. Часть результатов, представленных в разделах 3.3 и 3.4 диссертации, получены в совместной работе с кандидатом биологических наук JI.H. Тимергалиной, кандидатом биологических ннаук A.B. Коробовой, автор был научным руководителем их кандидатских диссертаций. Автору принадлежит замысел и окончательный текст диссертации. В диссертации использованы опубликованные в соавторстве работы.

Апробация работы.

Материалы диссертации были представлены на 20 конференциях, наиболее важные из которых: III, IV, V, VI съезд обществ физиологов растений (Москва, 1997; Москва, 1999; Пенза, 2003; Сыктывкар, 2007), XI-XIV конгрессы европейских обществ физиологов растений (Варна, 1998; Будапешт, 2000; Крит, 2002; Краков, 2004; Лион, 2006), 5-я международная конференция «Регуляторы роста и развития растений» (Москва, 1999), 3-я Всероссийская конференция «Иммуноанализ регуляторов роста в решении проблем физиологии растений, растениеводства и биотехнологи» (Уфа, 2000), международная конференция по экологической ботанике (Сыктывкар, 2002), 2-я международная конференция «Integrated Approaches to Sustain and Improve Plant Productivity under Drought Stress» (Рим, 2005), международный симпозиум «Сигнальные системы растений: роль в адаптации и иммунитете» (Казань, 2006), международная конференция «Современная физиология растений: от молекул до экосистем» (Сыктывкар, 2007), международная конференция «Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений» (Екатеринбург, 2008), Всероссийская конференция «Устойчивость организмов к неблагоприятным факторам внешней среды» (Иркутск, 2009), 8-я международная конференция «Eco-Physiological aspects of plant responses to stress factors» (Cracow, 2009), Всероссийский симпозиум «Растение и стресс» (Москва, 2010), II-ая Международная конференция «Регуляция роста и развития растений: физиолош-биохимические и генетические аспекты» (Харьков, 2011).

Публикации.

По теме диссертации опубликованы 32 работы, в том числе 1 монография, 17 статей в научных журналах, рекомендованных ВАК РФ для защиты докторских диссертаций, 9 статей в крупных региональных изданиях.

Благодарности. Автор благодарит к.б.н. Тимергалину JI.H., к.б.н. Коробову A.B., за помощь в проведении экспериментов и анализе результатов, профессора Веселова С. Ю., профессора Трапезникова В. К., д.б.н. Веселова Д. С., к.б.н Архипову Т. Н., к.б.н. Иванова И. И. за ценные советы и рекомендации, научного консультанта профессора Кудоярову Г. Р. за чуткое руководство и предоставление всех необходимых условий для выполнения экспериментов, а также весь коллектив нашей лаборатории и членов своей семьи.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Список сокращений г — скорость росташ — коэффициент растяжимости;

Р — тургор (тургорное давление);

У — пороговое значение тургора;

ЛЧ’тг — разность осмотических потенциаловл- — осмотическое давление;

Атсразность между осмотическим потенциалом окружающей среды и клеткиЬ, Ьр, Ьрггидравлическая проводимость- 1у — скорость потока ксилемного экссудата;

— водный потенциалДЧ' - разность водных потенциалов- 8 — коэффициент растяженияО, gs — устьичная проводимостьТСХ — тонкослойная хроматографияАБК — абсцизовая кислотаИУК — индолилуксусная кислотаЦКО — цитокининоксидаза Ъ (3) — зеатин;

ЗН) — зеатиннуклеотидТК (ЗР) — зеатинрибозидР (ИП) — изопентениладенин- 1Ра (ИПА) -изопентениладенозинБАП — 6-бензиламинопуринСВ — содержание воды в тканях растенийОСВ — относительное содержание воды;

ОТ-ПЦР — полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией;

БК — боковые корни;

ПБК — примордии боковых корней;

НК — нуклеиновые кислоты.

Выводы.

1. Снижение концентрации цитокининов в листе при локальном подсыхании почвы происходит за счет уменьшения их притока из корней и метаболических превращений этих гормонов в побеге. Сигналом, вызывающим изменение метаболизма цитокининов в побеге, может служить как увеличение уровня АБК в ксилемном соке, так и снижение водного потенциала.

2. С использованием гр/-трансгенных растений табака получены экспериментальные доказательства системной роли продуцируемых в корнях цитокининов в регуляции водного обмена растений. Так, локальная экспрессия гена изопентенилтрансферазы в корнях приводит к увеличению концентрации цитокининов не только в корнях, но и ксилемном соке, и листьях растений, что сопровождается увеличением устьичной проводимости и усилением транспирации.

3. Повышение содержания цитокининов в листьях трансгенных растений табака и связанное с ним увеличение транспирационных потерь приводит к падению относительного содержания воды (гидравлический сигнал) и накоплению АБК. Увеличение уровня АБК под влиянием гидравлического сигнала в свою очередь приводит к компенсаторному падению устьичной проводимости. Важную роль в регуляции закрытия устьиц и восстановлении оводненности листьев играет также понижение концентрации цитокининов в листьях вследствие активации цитокининоксидазы.

4. Редукция корневой системы проростков пшеницы — удаление четырех из пяти зародышевых корней — не приводит к снижению потока воды в побег. Данный эффект достигается за счет повышения гидравлической проводимости оставшегося корня и поддержания устьичной проводимости листьев, а также компенсаторной активации ветвления оставшегося корня, связанных с перестройками в гормональной системе растений: а) возрастание гидравлической проводимости единственного оставшегося корня обусловлено накоплением АБК за счет ее притока из побегаб) поддержание устьичной проводимости листьев растений с редуцированной корневой системой на уровне интактных растений связано с поддержанием высокого содержания цитокининов в листьях вследствие снижения уровня транскриптов гена цитокининоксидазы и активности этого ферментав) активация ветвления оставшегося корня обусловлена резким возрастанием притока в него ауксинов. О важной роли ауксинов в регуляции этого процесса свидетельствуют данные об их локализации в примордиях боковых корней. Роль гидравлических сигналов (временное снижение содержания воды в зоне роста листа) проявляется в подавлении роста побега, дополнительном усилении притока ауксинов в корень и, соответственно, стимуляции его ветвления.

5. При дефиците минерального питания выявлен приоритет гормональных сигналов в регуляции соотношения масс корень/побег у растений пшеницы: снижение уровня цитокининов в корнях и побегах, накопление АБК в побеге, увеличение концентрации конъюгированной АБК в ксилемном соке и притока ее свободной формы в корень.

6. В условиях дефицита минерального питания выявлена роль трофических сигналов, проявляющаяся в снижении концентрации осмотически активных веществ, что приводит к снижению тургора клеток, накоплению АБК в листе и усилению ее транспорта из побега в зону роста корней.

7. С использованием ингибиторного анализа обнаружено, что повышение соотношения масс корень/побег и снижение содержания цитокининов в растениях пшеницы за счет активации цитокининоксидазы при дефиците минерального питания связано с накоплением АБК.

Заключение

.

В работе выявлена сложная картина разнообразных сочетаний сигналов и соответствующих ответных реакций при воздействии на корни растения. Очевидно, что это разнообразие отражает пластичность растительного организма и обеспечивает адекватное приспособление к изменяющимся условиям внешней среды. В работе было показано, что взаимосвязанное сочетание, как минимум, сигналинга абсцизовой кислоты, индолилуксусной кислоты и цитокининов обеспечивает такой важный для адаптации процесс, как координация роста побега и корня. При воздействиях на корень изменение уровня гормонов в побегах является результатом как изменения их притока из корней (корневой гормональный сигнал), так и изменения метаболизма in situ, которое инициируется поступающими из корней сигналами. Так, снижение притока ионов из корней при дефиците питания приводит к снижению скорости фотосинтеза и тургора клеток и тем самым индуцирует синтез АБК в побеге, которая, в свою очередь, снижает уровень цитокининов через активацию цитокининоксидазы (ЦКО). Резкое снижение концентрации ЦК в ксилемном соке при удалении корней приводит к падению активности и снижению уровня экспрессии гена ЦКО. Результирующее разнообразие гормональных ответов на корневые воздействия обеспечивает разнообразие таких ответных реакций, как (1) открытие устьиц за счет повышения притока цитокининов из корней при локальной индукции их синтеза в корнях и их последующее компенсаторное закрытие в результате падения водного потенциала и накопления АБК в самом листе- (2) закрытие устьиц при локальном подсыхании почвы под влиянием увеличения концентрации АБК в ксилемном соке и снижения уровня цитокининов в листьях- (3) поддержание устьиц в открытом состоянии при дефиците элементом минерального питания и редукции корневой системы благодаря отсутствию накопления АБК в ксилемном соке и сохранению высокого уровня цитокининов при редукции корневой системы. Передача сигналов из корня в побег и обратно в корень обеспечивает согласованность изменений устьичной и гидравлической проводимости.

Выявлена поразительная пластичность корневой системы растений пшеницы.

Так, поток АБК из побега повышает гидравлическую проводимость, что обеспечивает достаточный приток воды из редуцированной корневой системы, и поддерживает водный баланс без закрытия устьиц. При этом поток ауксинов из побега обеспечивает компенсаторное увеличение поглотительной способности корней за счет активации их ветвления.

Регуляторная роль гидравлических сигналов при этом проявляется в активации потока ауксинов и АБК в корни.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.M., Юлдашев P.A., Высоцкая Л. Б., Шакирова Ф. М. Регуляция 24-эпибрассинолидом экспрессии гена и активности цитокининоксидазы в корнях проростков пшеницы//ДАН. 2006, Т. 410.- С. 825−827.
  2. A.B., Раткович С. Транспорт воды в растениях. Исследование импульсным ЯМР. М.: Наука, 1992. — 144 с.
  3. Т. Н., Анохина Н. Л. Влияние инокуляции цитокинин-продуцирующими микроорганизмами на рост растений пшеницы при повышении уровня минерального питания//Физиология растений. 2009.- Т. 56, № 6. -С.899−906.
  4. Г., Бергер В., Домшке Г. и др. Органикум.- М: Мир, 1979.- С.228−232, 247−250.
  5. В.Г. Концентрационная зависимость влияния 6-бензиламинопурина на рост корней растений разных видов//Физиология растений. 1986. -Т. 33, № 6. -С.1084−1089.
  6. С.Ю. Использование антител для количественного определения, очистки и локализации регуляторов роста растений. Уфа: Изд-во Башкирского ун-та, 1998. 138 с.
  7. С.Ю., Симонян М. В. Использование иммуноферментного анализа цитокининов для оценки активности цитокининоксидазы //Физиология рвстений. 2004.- Т. 51. — С.297−302.
  8. С.Ю., Вальке P.C., Ван Онкелен X., Кудоярова Г. Р. Содержание и локализация цитокининов в листьях исходных и трансгенных растений табака//Физиология растений. 1999.- Т. 46, № 1,-С.326−335.
  9. С.В., Фархутдинов Р. Г., Веселов Д. С., Кудоярова Г. Р. Роль цитокининов в регуляции устьичной проводимости проростков пшеницы при быстром локальном изменении температуры//Физиология растений. 2006.- Т. 53, № 6. -С.857−862.
  10. Ю.В. Транспортная сосудистая система сосудистых растений. -С.-Петербург.: Издательство С.-Петербургского универститета, 2004. 424 с.
  11. Н.С. Влияние условий азотного питания на рост корней//Агрохимия. 1965.- N 6.- С.53−60.
  12. К.Н., Демченко Н. П., Данилова М. Ф. Инициация и развитие примордиев боковых корней у проростков Triticum aestivum (Роасеае) и Cucurbita реро (СисигЬкасеае)//Ботанический журнал. — 2001.- № 1. -С. 14−30.
  13. Н.П., Демченко К. Н. Возобновление синтеза ДНК и деления клеток в корнях пшеницы в связи с инициацией боковых корней//Физиология Растений. 2001.- Т. 48. -С.869−878.
  14. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985. — 206 с.
  15. А.Г., Жолкевич В. Н. Изменения основных параметров экссудации отделенной корневой системы кукурузы под влиянием ЩС12.//Физиология растений. 2008.- Т. 56. -С.901−908.
  16. И.М., Ампилогова Я. Н., Шевырева Т. А., Трофимова М.С.
  17. Влияние низких положительных температур на осмотическую водную проницаемость и активность аквапоринов плазмалеммы корней гороха//Физиология растений. 2009.- Т. 56, № 5. -С.704−711.
  18. В.Н., Пустовойтова Т. Н. Рост листьев Cucumbus sativus L. и содержание в них фитогормонов при почвенной засухе//Физиол. раст. 1993.- Т.40, № 4. -С.676−680.
  19. В.Б. Меристема как самоорганизующаяся система//Физиология растений. 2004.- Т. 51. -С.926−941.
  20. В.Б. Клеточные механизмы роста растений. LXVIII Тимерязевские чтения. М.: Наука. 2011. С. 3.
  21. И.И. Эндогенные ауксины и ветвление корней при изолированном питании растений пшеницы//Физиология растений. 2009.- Т. 56. -С.241−246.
  22. И.Ф., Анисимов A.B. Различие чувствительности диффузионного транспорта воды в коре и стели корней кукурузы к действию блокатора аквапоринов НОСЬ2//Физиология растений. 2008.- Т. 55, № 3. -С.362−367.
  23. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин E.H. Природный ингибитор роста — абсцизовая кислота. М: Наука, 1989. — 488 с.
  24. И.С., Каминская O.A. Гормональная регуляция утилизации ассимилятов в листьях ячменя в связи с формированием донорной функции//Физиология растений. 2002, — Т. 49, № 4. -С.596−602.
  25. E.H., Кефели В. И. Образование абсцизовой и индолилуксусной кислот в побегах и корнях// Изв. АН СССР. Сер. биол. 1985.-№ 3. -С.375−385.
  26. И.Н., Скобелева О. В. Снижение гидравлической проводимости мембран клеток ризодермы при дефиците нитрата связано с закислением у поверхности корня//Физиология растений. — 2008.Т. 55, № 5. -С. 690−698.
  27. Г. Р., Веселов С. Ю., Усманов И. Ю. Гормональная регуляция соотношения биомассы побег/корень при стрессе//Журнал Общей биологии. 1999.- Т. 60, № 6. -С.633−641.
  28. Г. Р., Докичева P.A., Веселов С. Ю., Трапезников В. К., Иванов И. И. БАП-индуцированная ростовая реакция растений пшеницы и эндогенное содержание гормонов, обусловленное уровнем минерального питания//Физиология растений. 1993.- Т. 40. -С.893−897.
  29. Г. Р., Усманов И. Ю. Гормоны и минеральное питание//Физиология и биохимия культурных растений. 1991. — Т.23. — С.232−244.
  30. Г. Р., Усманов И. Ю., Гюли-Заде В.З., Иванов И. И., Трапезников В. К. Влияние уровня минерального питания на рост, концентрацию цитокининов и ауксинов в проростках пшеницы//Физиология растений. 1989.- Т. 36. -С.1012−1015.
  31. Г. Р., Усманов И. Ю., Гюли-Заде В.З., Фаттахутдинов Э. Г., Веселов С. Ю. Взаимодействие пространственно разобщенных органов. Соотношение электрических и гормональных сигналов//Доклады АН СССР. 1990.- Т. 310, № 6. -С.1511−1514.
  32. О.Н. Влияние корней на обмен веществ листьев в связи с проблемой действия на лист кинетина//Физиология растений. -1962.-Т. 9. -С.229−239.
  33. О.Н. Цитокинины, их структура и функции. М.: Наука, 1973. — 263 с.
  34. О.Н., Кузнецов В. В. Новейшие достижения и перспективы в области изучения цитокининов//Физиология растений. 2002.- Т. 49. -С.626−640.
  35. А.Н. Динамика содержания гормонов в проростках пшеницы при изменении температуры. Автореф. дисс. кандидата биол. наук. 1999, Уфа. 24 с.
  36. О.Ф., Чернядьев И. И. Протекторное влияние цитокининовых препаратов на фотосинтетический аппарат растений пшеницы при водном дефиците//Прикладная биохимия и микробиология. -2007.- Т. 43. -С.720−729.
  37. М.Е., Иванов В. Б., Салмин С. А., Быстрова Е. И. Анализ возможных механизмов регуляции ветвления корня//Журн. общей биологии. 2002.- Т. 63. -С.68−74.
  38. A.B., Танкелюн О. В., Полевой В. В. Быстрая дистанционная передача сигнала о локальном стрессовом воздействии у проростков кукурузы//Физиология растений. 1997, — Т. 44, № 5. -С.645−651.
  39. Т.И. Значение гормонального баланса в реакции растений картофеля на условия минерального питания//Агрохимия. 2000.-№ 4. -С.27−32.
  40. Т.Н., Баврина Т. В., Ложникова В. Н., Жданова Н.Е.
  41. Использование трансгенных растений для выяснения роли цитокининов в устойчивости к засухе//Доклады РАН. 1997.- Т. 354. -С.702−704.
  42. С.С. Распространяющиеся электрические сигналы в растениях/ЛДитология. 2008.- Т. 50, № 2. -С. 154−160.
  43. З.Ф., Рамазанова Г. А., Мустафина А. Р., Усманов И.Ю.
  44. Оценка дыхательных затрат на адаптацию у растений с разной устойчивостью к дефициту и избытку элементов минерального питания//Физиология растений. 2001.- Т. 48, № 5. -С.651−656.
  45. Г. А. Как цитокинины действуют на клетку//Физиология растений. 2009.- Т. 56, № 2. -С. 295−319.
  46. И.Р., Фархутдинов Р. Г., Митриченко А. Н., Иванов И. И., Веселов С. Ю., Вальке P.JL, Кудоярова Г. Р. Реакция на повышенную температуру у трансформированных растений табака, содержащих 1р1:-ген//Физиология растений. 2000.- Т. 47. -С.416−419.
  47. А.Ф., Таланова В. В. Устойчивость растений и фитогормоны. Петрозаводск: КарНЦ РАН, 2009. 206 с.
  48. Р.Г., Веселова C.B., Веселов Д. С., Митриченко А.Н., Дедов
  49. A.B., Кудоярова Г. Р. Регуляция скорости роста листьев пшеницы при быстром повышении температуры//Физиология растений. -2003.- Т. 50, № 2. -С.275−279.
  50. Е.В., Черный С. Г., Алехина Н. Д. Формирование запасного пула нитрата в корнях проростков пшеницы//Физиология растений. 1993.- Т. 40, № 3. -С.443−447.
  51. В.П., Мещеряков А. Б., Ракитин В. Ю., Карягин В.В., Кузнецов
  52. B.В. Гидравлический сигнал как «первичный мессенджер водного дефицита» при солевом стрессе у растений//ДАН. 2006.- Т. 407, № 2. -С.282−285.
  53. И.И. Фотосинтез и цитокинины/ЛТрикладная биохимия и микробиология. 1993.- Т. 29, Вып. 5. -С.644−674.
  54. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа: Гилем, 2001. — 160 с.
  55. В.Ю., Кулаева О. Н. Цитокинин-зависимая экспрессия ARRS5:Gus-KOHCTpyKijHH в ходе роста трансгенных растений Arabidopsis Й1аНапа//Физиология растенийю 2008. -Т. 55. -С.842−850.
  56. Aloni R., Langhans M., Aloni E., Dreieicher E., Ullrich C. Root-synthesized cytokinin in Arabidopsisi is distributed in the shoot by the transpiration stream//J. Exp. Bot. 2005.- V.56. -P.1535−1544.
  57. Anderson. B.E., Ward J.M., Schroeder J. Evidence for an extracellular reception site for abscisic acid in Commelina cuard cells//Plant Physiol. 1994.-V. 104. -P.l 177−1183.
  58. Astot C., Dolezal K., Nordstrom A., Wang Q., Kunkel Т., Moritz Т., Chua N., 9
  59. Sandberg G. An alternative cytokinin biosynthesis pathway//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000.- V. 97. -P. 14 778−14 783.
  60. Bacon M.A., Wilkinson S., Davies W.J. pH-regulated leaf cell expansion in droughted plants is abscisic acid dependent/ZPlant Physiol. 1998.- V. 118. -P.l507−1515.
  61. Baker D. Vascular transport of auxins and cytokinins in Ricinus// Plant Growth Regul. 2000.- V. 32. -P. 157−160.
  62. Bano A., Dorffling K., Bettin D., Hahn H. Abscisic acid and cytokinins as possible root-to-shoot signals in xylem sap of rice plants in drying soil//Australian J. Plant Physiol. 1993.- V. 20. -P. 109−115.
  63. Bartholomew D.M., Bartley G.E., Scolnik P.A. Abscisic acid control of rbcS and cab transcription in tomato leaves//Plant Physiology. 1991- V. 96.-P.291−296.
  64. Beck E. Regulation of the shoot/root ratio by cytokinins in Urtica dioica: Opinion//Plant Soil. 1996.- V. 185. -P. 3−12.
  65. Benkova E., Michniewicz M., Suaer M., Teichmann T., Seifertova D., Jurdens G., Friml J. Local, efflux-dependent auxin gradients as a common module for plant growth organ formation//Cell. 2003.- V. 115. -P.591−602.
  66. Benkova E., Witters T., van Dongen W., Kolar J., Motyka V., Brzobohaty B., van Onckelen H.A., Machackova I. Cytokinins in tobacco and wheat chloroplasts. Occurrence and changes due to light/dark treatment//Plant Physiol. 1999.-V. 121. -P.245−251.
  67. Beveridge C.A., Murfet I.C., Kerhoas L., Sotta B., Miginiac E., Rameau C. The shoot controls zeatin riboside export from pea roots. Evidence from the branching mutant rms4//Plant J. 1997.- V. 11. -P.339−345.
  68. Bhalerao R.P., Eklof E., Ljung K., Marchant A., Bennett M., Sandberg G.
  69. Shoot-drived auxin is essential for early lateral root emergence in Arabidopsis seedlings//Plant J. 2002.- V. 29. -P.325−332.
  70. Biddington N.L., Dearman A.S. Shoot and root growth of lettuce seedlings following root pruning//Ann. Bot. 1984.- V. 53. -P.663−668.
  71. Blackman P.G., Davies W.J. Root to shoot communication in maize plants and the effects of soil drying//J. Exp. Bot. 1985.- V. 36. -P.39−48.
  72. Blakely L.M., Durham M., Evans T.A., Blakely R.M. Experimental studies on lateral root formation in radish seedlings roots. I. General methods, developmental stages, and spontaneous formation of laterals//Bot. Gaz. 1992.- V. 143. -P.341−352.
  73. Blakesley D., Weston G.D., Hall J.F. The role of endogenous auxin in root initiation. Part I: Evidence from studies on auxin application, and analysis of endogenous levels//Plant Growth Regul. 1991.- V. 10. -P.341−353.
  74. Boudsocq M., Lauriere C. Osmotic signaling in plants. Multiple pathways mediated by emerging kinase families//Plant Physiology. 2005, — V. 138. -P.l 185−1194.
  75. Brewitz E., Larsson C-M., Larsson M. Influence of nitrate supply on concentrations and translocation of abscisic acid in barley (Hordeum vulgare)//Phvsiologia Plantarum. 1995.- V. 95. -P.499−506.
  76. Brouwer R. The regulation influence of transpiration and suction tension on the water and salt uptake by roots of intact Vicia faba plants//Acta Bot. Neerl. 1954.- V. 3. -P.264−312.
  77. Canny M.J. Ashby’s law and the pursuit of plant hormones: a critique of accepted dogmas, using a conceipt of variety//Austral. J. Physiol. — 1985.-V. 12.-P.1−7.
  78. Caputo C., Barneix A.J. The relationship between sugar and amino acid export to the phloem in young wheat plants//Ann. Bot. 1999.- V. 84. -P.33−38.
  79. Carabelli M., Possenti M., Sessa G., Ciolfi A., Sassi M., Morelli G., Rubertil I. Canopy shade causes a rapid and transient arrest in leaf development through auxin-induced cytokinin oxidase activity//Genes and Development. 2007.- V. 21. -P. 1863−1868.
  80. Carimi F., Terzi M., De Michele R., Zottini N., Lo Schiavo F. High levels of the cytokinin BAP induce PCD by acceleration senescence/ZPlant Sci. -2004.- V. 166. -P.963—969.
  81. Carvajal M., Cooke D.T., Clarkson D.T. Responses of wheat plants to nutrient deprivation may involve the regulation of water-channel function//Planta. 1996.- V. 199. -P.372−381.
  82. Cary A.J., Liu W., Howell S. H. Cytokinin action is coupled to ethylene in its effects on the inhibition of root and hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana seedlings/ZPlant Physiol. 1995.- V. 107. -P. 1075−1082.
  83. Casimiro I., Marchant A., Bhalerao R.P., Beeckman T., Dhooge S., Swarup R., Graham N., Inzer D., Sandberg G., Casero P.J., Bennett M. Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation/ZPlant Cell. -2001.-V. 13.-P.843−852.
  84. Casson S.A., Lindsey K. Genes and signaling in root development//New Phytol. -2003.-V. 158. -P. 11−38.
  85. Chapin F.S. Ill, Walter C.H.S., Clarkson D.T. Growth response of barley and tomato to nitrogen stress and its control by abscisic acid, water relations and photosynthesis//Planta. 1988.- V. 173. -P.352−366.
  86. Chaves M.M., Francisco Z.R., Costa J.M., Santos T., Regalado A.P., Rodrigues M.L., Lopes C.M. Grapevine under deficit irrigation: hints from physiological and molecular data//Ann. Bot. 2010.- V. 105. -P.661−676.
  87. Chen C.M., Erti J.R., Leisner S.M. Localisation of cytokinin biosynthetic sites in pea plants and carrot roots//Plant Physiol. 1985.- V. 78. -P.510−513.
  88. Chernyad’ev I.I. Ontogenetic changes in the photosynthetic apparatus and effects of cytokinins//Appl. Environ. Microbiol. 2000.- V. 36. -P.527−539.
  89. Choat B., Cobb A. R., Jansen S. Structure and function of bordered pits: new discoveries and impacts on whole-plant hydraulic function//New Phytologist. 2007, doi: 10.1111/j.1469−8137.2007.2 317.
  90. Christmann A., Weiler E.W., Steudle E., Grill E. A hydraulic signal in root-to-shoot signalling of water shortage//The Plant J. 2007.- V. 52. -P. 167 174.
  91. Clarkson D.T., Carvajal M., Henzler T., Waterhouse R.N., Smyth A.J., Cooke D.T., Steudle E. Root hydraulic conductance: diurnal aquaporin expression and the effects of nutrient stress//J. Exp. Bot. 2000, — V. 51. -P.61−70.
  92. Clarkson D.T., Scattergood C.B. Growth and phosphate transport in barley and tomato plants during the development of, and recovery from, phosphate-stress//J. Exp. Bot. 1982.- V. 33. -P.865−875.
  93. Cochard H., Coll L., Le Roux X., Ameglio T. Unraveling the effects of plant hydraulics on stomatal conductance during water stress in walnut//Plant Physiol. 2002.- V. 128. -P.282−290.
  94. Comstock J.P. Hydraulic and chemical signaling in the control of stomatal conductance and transpiration//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P. 195−200.
  95. Coque M., Gallais A. Genomic regions involved in response to grain yield selection high and low nitrogen fertilization in maize//Theor. Appl. Genet. 2006.-V. 112. -P. 1205−1220.
  96. Coque M., Gallais A. Genomic regions involved in terponse to grain yield selection at high and low nitrogen fertilization in maize//Theor Appl. Genet. 2006.- V. 112. -P. 1205−1220.
  97. Cosgrove D.J., Li L.C., Cho H.-T., Hoffmann-Benning S., Moore R.C., Blecker D. The growing world of expansins//Plant Cell Physiology. 2002. — V.43. -P. 1436−1444.
  98. Cramer, G. R. and Jones, R. L. Osmotic stress and abscisic acid reduce cytosolic calcium activities in roots of Arabidopsis thaliana//Plant Cell Environ. 1996.-V. 19. -P.1291−1298.
  99. Creelman R.A., Mason H.S., Bensen R.J., Boyer J.S., Mullet J.E. Water deficit and abscisic acid cause differential inhibition of shoot versus root growth in soybean seedlings//Plant Physiol. 1990.- V. 92. -P.205−214.
  100. D’Agostino I.B., Kieber J.J. Molecular mechanisms of cytokinin action//Current Opinion in Plant Biol. 1990.- V. 2. -P.359−364.
  101. Daeter W., Slovik S., Hartung W. The pH gradients in the root system and the abscisic acid concentration in xylem and apoplastic saps//Philosophical Transactions of the Royal Society of London B. -1993.-V. 341. -P.49−56.
  102. Davey J.E., Van Staden J. Cytokinin translocation-changes in zeatin and zeatin-riboside levels in root exudate of tomato plants during their development//Planta. 1976.-V. 130. -P.69−72.
  103. Davidson R.L. Effect of root/leaf temperature differentials on root/shoot ratios of some pasture grasses and clover//Ann. Bot. 1969.- V. 33. -P.561−569.
  104. Davies W.J., Kudoyarova G.R., Hartung W. Long-distance ABA signaling and its relation to other signaling pathways in the detection of soil drying and the mediation of the plant’s response to drought//! Plant Growth Regul. 2005.-V. 24. -P.285−295.
  105. Davies W.J., Metcalfe J., Lodge T.A., Da Costa A.R. Plant growth substances and the regulation of growth under drought//Australian J. Plant Physiol. 1986.-V. 13. -P. 105−125.
  106. Davies W.J., Tardieu F., Trejo C. How do chemical signals work in plants that grow in drying soil?//Plant Physiol. 1994.- V. 104. -P.309−314.
  107. Davies W.J., Zhang J. Root signals and the regulation of growth and development of plants in drying soil//Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991.- V. 42. -P.55−76.
  108. De Greef J.A., Caubergs R., Verbelen J.P., Moereels E. Phytochromemediated inter-organ dependence and rapid transmission of the light stimulus/In: Smith, H. (Ed.), Light and Plant Development. Butterworths, London. 1976.
  109. Deak K.I., Malamy J.E. Osmotic regulation of root system architecture//Plant J. 2005.- V. 43. -P. 17−28.
  110. Debi B.R., Taketa S., Ichii M. Cytokinin inhibits lateral root initiation but stimulates lateral root elongation in rice (Oryza sativa)//J. Plant Physiol. 2005.- V. 162. -P.507−515.
  111. Dieleman J.A., Verstappen F.W.A., Nicander B., Kuiper D., TillbergE., Tromp J.
  112. Cytokinins in Rosa hybrida in relation to bud break//Physiol. Plant.-1997.-V. 99. -P.456−464.
  113. Dodd I., Munns R., Passioura J. Dose shoot water status limit leaf expansion of nitrogen deprived barley//J Exp Bot. 2002.- V. 53. -P. 1765−1770.
  114. Dodd I., Tan L. P., He J. Do increases in xylem sap pH and/or ABA concentration mediate stomatal closure following nitrate deprivation?//!. Exp. Bot. 2003.- V. 54, № 385. -P.1281−1288.
  115. Dodd I.C. Root-toshoot signaling: assessing the roles of 'up' in the up and down world of long-distance signaling in planta//Plant and Soil. 2005.- V. 274. -P.251−270.
  116. Dodd I.C., Beveridge C.A. Xylem-borne cytokinins: still in search of a role?//J. Exp. Bot. 2006.- V. 57. -P. 1−4.
  117. Dodd I.C., Ngo C., Turnbull C.G.N., Beveridge C.A. Effects of nitrogen supply on xylem cytokinin delivery, transpiration and leaf expansion of pea genotypes differing in xylem cytokinin concentration//Func. Plant Biol. 2004.- V. 31. -P.903−911.
  118. Dodd I.C., Stikic R., Davies W.J. Chemical regulation of gas exchange and growth of plants in drying soil in the field//J Exp. Bot. 1996.- V. 47. -P.1475−1490.
  119. Doi M., Shimazaki K. The stomata of the fern Adiantum capillus-veneris do not respond to C02 in the dark and open by photosynthesis in guard cells//Plant Physiol. 2008.- V. 147. -P.922−930.
  120. Else M.A., Taylor J.M., Atkinson C.J. Anti-transpirant activity in xylem sap from flooded tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) plants is not due to pH-mediated redistributions of root- or shoot-sourced ABA//J. Exp. Bot. 2006.- V. 57. -P. 3349−3357.
  121. Evans M.L. Functions of hormones at the cellular level of organization/An: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series / ed. T.K.Scott. Berlin: Springer-Verlag, 1984.- V.10, p.23−79.
  122. Faiss M., Zalubilova J., Strnad M., Schmulling T. Conditional transgenic expression of the ipt gene indicates a function for cytokinins in paracrin signaling in whole tobacco plants//Plant J. 1997.- V. 12. -P.401−415.
  123. Farkhutdinov R.G., Veselov S.U., Kudoyarova G.R., Valcke R. Influence of temperature increase on evaportranspiration rate and cytokinin content in wheat seedlings/ZBiologia Plantarum. 1997.- V. 39. -P. 289−291.
  124. Foo E., Morris S.E., Parmenter K., Young N., Wang H., Jones A., Rameau C., Turnbull C.G., Beveridge C.A. Feedback regulation of xylem cytokinin content is conserved in pea and Arabidopsis//Plant Physiology. 2007.- V. 143. -P.1418−1428.
  125. Forde B.G. Local and long-range signaling pathways regulating plant responses to nitrate//Ann. Rev. Plant Biol. 2002.- V. 53. -P.203−224.
  126. Forde B.G., Clarkson D.T. Nitrate and ammonium nutrition of plants: physiological and molecular perspectives//Adv. Bot. Res. 1999. V. 30.-P. 1−90.
  127. Franco-Zorrilla J.M., Gonzalez E., Bustos R., Linhares F., Leyva A., Paz-Ares J. The transcriptional control of plant responses to phosphate limitation//! Exp. Bot. 2004.- V. 55. -P.285−293.
  128. Frensch J., Primary responses of root and leaf elongation to water deficits in the atmosphere and soil solution//J. Exp. Bot. 1997.- V. 48. -P.985−999.
  129. Freundle E., Steudle E., Hartung W. Water uptake by roots of maize and sunflower affects radial transport of abscisic acid and its concentration in the xylem//Planta. 1998.- V. 207. -P.8−19.
  130. Fricke W. Cell turgor, osmotic pressure and water potential in the upper epidermis of barley leaves in relation to cell location and in response to NaCI and air humidity//J. Exp. Bot. 1997.- V. 48. -P.45−58.
  131. Fricke W., Akhiyarova G., Veselov D., Kudoyarova G. Rapid and tissue-specific changes in ABA and in growth rate in response to salinity in barley leaves//J. Exp. Bot. 2004.- V. 55. -P.1115−1123.
  132. Friml J., Benkova E., Blilou I., Wisniewska J., Hamann T., Ljung K., Woody S., Sandberg G., Scheres B., Jurgens G., Palme K. AtPIN mediates sink-driven auxin gradients and root patterning in Arabidopsis//Cell. -2002.-V. 108. -P.661−673.
  133. Fromm J., Lauter S. Electrical signals and their physiological significance in plants//Plant, Cell Environ. 2007.- V. 30. -P.249−257.
  134. Fukaki H., Tasaka M. Hormone interactions during lateral root formation//Plant Mol. Biol. 2009.- V. 69. -P.437−449.
  135. Galuszka P., Frebortova J., Luhova L., Bilyeu K.D., English J.T., Frebort I.
  136. Tissue localization of cytokinin dehydrogenase in maize: possible involvement of quinone species generated from plant phenolics by other enzymatic systems in the catalytic reaction/ZPlant and Cell Physiol. 2005.- V. 46. -P.716−728.
  137. Gamier E., Salager J.L., Laurent G., Sonie L. Relationships between photosynthesis, nitrogen and leaf structure in 14 grass species and their dependence on the basis of expression//New Phytologist. -1999.-V. 143.-P. 119−129.
  138. Gasco A., Nardini A., Gortan E., Salleo S. Ion-mediated increase in the hydraulic conductivity of Laurel stems: role of pits and consequences for the impact of cavitation on water transport//Plant, Cell Environ. -2006,-V. 29. -P. 1946−1955.
  139. Gashaw L., Mugwira L.M. Ammonium-N and nitrate-N effects on the growth and mineral compositions of triticale, wheat and rye//Agronomy J. -1981.- V. 73. -P.47−51.
  140. Gilbert S.M., Clarkson D.T., Cambridge M., Lambers H., Hawkesford M.J.
  141. S042- deprivation has an early effect on the content of ribulose-1,5-biphosphate carboxylase/oxygenase in young leaves of wheat//Plant Physiol. 1997.-V. 115. -P.1231−1239.
  142. Gonzalez N., Beemster G.T.S., Inze D. David and Goliath: what can the tiny weed Arabidopsis teach us to improve biomass production in crops?//Curr. Opin. Plant Biol. 2009.- V. 12. -P. 157−164.
  143. Gordon I., Intyre Mc. Control of plant development by limiting factors: A nutritional perspective//Physiologia Plantarum. 2001.- V. 113. -P. 165−175.
  144. Goring H., Mardanov A.A. Influence of nitrogen deficiency on K/Ca ratio and cytokinin content of pumpkin seedlings/ZBiochem. Physiol. Pflanzen. 1970.-V. 170. -P.261−264.
  145. Gowing D.J.G., Davies W.J., Jones H.G. A positive root-coursed signal as an indicator of soil drying in apple, Malus domestica Borkh//J. Exp. Bot. 1990.-V. 41.-P. 153 5−1540.
  146. Gowing D.J.G., Davies W.J., Trejo C.L., Jones H.G. Xylem-transported chemical signals and the regulation of plant growth and physiology//Phyl. Trans. R. Soc. Lond. B. 1993.- V. 341. -P. 41−47.
  147. Groot C., Marcelis L.F. M., van den Boogaard R., Kaiser W. M., Lambers H.1.teraction of nitrogen and phosphorus nutrition in determining growth//Plant and Soil. 2010.- V. 248. -P.257−268, DOI: 10.1023/A: 1 022 323 215 010.
  148. Giines A., Inal A., Aktas M. Reducing nitrate content of NFT grown winter onion plants (Allium cepa L.) by partial replacement of N03 with amino acid in nutrient solution//Scientia Horticulturae. 1996.- V. 65. -P.203−208.
  149. Guo J., Yang Y., Wang G., Liudong Yang L., Sun X. Ecophysiological responses of Abies fabri seedlings to drought stress and nitrogen supply//Physiologia Plantarum. 2010.- V. 139. -P.335−347.
  150. Hachez C., Zelazny E., Chaumont F. Modulating the expression of aquaporin genes in planta: A key to understand their physiological functions?//Biochim. Biophys. Acta. 2006.- V. 1758. -P.l 142−1153.
  151. Hager A. Role of the plasma membrane H±ATPase in auxin-induced elongation growth: historical and new aspects//J Plant Res. 2003.- V. 116. -P.483−505.
  152. Hansen H., Dorffling K. Root-derived trans-zeatin riboside and abscisic acid in drought-stressed and rewatered sunflower plants: interaction in the control of leaf diffusive resistance?//Func. Plant Biol. 2003.- V. 30. -P.365−375.
  153. Hare P.D., Cress W.A., van Staden J. The involvement of cytokinins in plant responses to environmental stress // Plant Growth Regul. 1997.- V. 23. -P.79−103.
  154. Hare P.D., Van Staden J. Cytokinin oxidase: biochemical features and physiological significance//Physiol. Plant. 1994, — V. 91. -P.128−136.
  155. Hartig K., Beck E. Crosstalk between auxin, cytokinins and sugars in the plant cell cycle//Plant Biol. 2006.- V. 8. -P.389−396.
  156. Hartung W. The site of action of abscisic acid at the guard cell plasmalemma of Vaierianella locusla//Plant, Cell Environ. 1983.- V. 6. -P.427−428.
  157. Hartung W., Radin J.W., Herndrix D.L. Abscisic acid movement into the apoplastic solution of water-stressed cotton leaves. Role of apoplastic pH//Plant Physiol. 1988.-V. 86. -P.908−913.
  158. Hartung W., Sauter A., Hose E. Abscisic acid in the xylem: where does it come from, where does it go?//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.27−32.
  159. Heilmeier H., Schulze E.D., Jiang F., Hartung W. General relations of stomatal responses to xylem sap abscisic acid under stress in the rooting zone: a global perspective//Flora. 2007.- V. 202. -P.624−636.
  160. Henson I.E., Wareing P.F. Cytokinins in Xanthium strumarium L. The metabolism of cytokinins in detached leaves and buds in relation to photoperiod//New Phytol. 1977.- V. 78. -P.27−33.
  161. Hirose N., Takei K., Kuroda T., Kamada-Nobusada T., Hayashi H., Sakakibara H. Regulation of cytokinin biosynthesis, compartmentalization and translocation//J. Exp. Bot. 2008.- V. 59. -P.75−83.
  162. Hodge A. The plastic plant: root responses to heterogeneous supplies of nutrients//New Phytologist. 2004.- V. 162. -P.9−24.
  163. Holbrook N.M., Shashidhar V.R., James R.A., Munns R. Stomatal control in tomato with ABA-deficient roots: response of grafted plants to soil drying//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.1503−1514.
  164. Hooker T.S., Thorpe T.A. Effects of fluridone and abscisic acid on lateral root initiation and root elongation of excised tomato roots cultured in vitro//Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1998.- V. 52. -P. 199 203.
  165. Horgan R.// Physiology and biochemistry of cytokinins in plants/ Eds. Kaminek M., Mok D.W.S., Zazimalova E., The Hague: Academic Publishing, 1992.-P.3−12.
  166. Hsiao T.C., Xu L.K. Sensitivity of growth of roots versus leaves to water stress: biophysical analysis and relation to water transport//.!. Exp. Bot. -2000.-V. 51.-P. 1595−1616.
  167. Hu Y., Poh H.M., Chua N.H. The Arabidopsis ARGOS-LIKE gene regulates cell expansion during organ growth//PlantJ. 2006.- V. 47. -P. 1−9.
  168. Hunt R.S. Further observations on root-shoot equilibria in perennial rye-grass (Lolium perenne)//Ann. Bot. 1975.- V. 39. -P.745−755.
  169. Jackson M. Are plants hormones involved in root to shoot communication?//Advanced in Botanical Research/Ed. J.A.Callow. Academic Press, 1993.-V. 19. -P.103−187.
  170. Jackson M.B. Ethylene-promoted Elongation: an adaptation to submergence stress//Ann. Bot. 2008.- V. 101. -P. 229−248.
  171. Jackson M.B. Long-distance signaling from roots to shoots assessed: the flooding story//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.175−181.
  172. Janicka-Russak M., Klobus G. Modification of plasma membrane and vacuolar H±ATPases in response to NaCl and ABA//J. Plant Physiol. 2007.-V. 164. -P.295−302.
  173. Jeschke W.D., Hartung W. Root-shoot interactions in mineral nutrition//Plant and Soil. 2000. — V.226. — P.57−69.
  174. Jeschke W.D., Peukel A.D., Pate J.S., Hartung W. Transport, synthesis and catabolism of abscisic acid (ABA) in intact plants of castor bean (Ricinus communis L.) under phosphate deficiency and moderate salinity//J. Exp. Bot. 1997.- V. 48. -P. 1737−1747.
  175. Jiang F., Hartung W. Long-distance signalling of abscisic acid (ABA): the factors regulating the intensity of the ABA signal//J. Exp. Bot. -2008.V.- 59. -P.37—43.
  176. Jiang F., Veselova S., Veselov D., Kudoyarova G., Jeschke W.D., Hartung W.
  177. Cytokinin flows from Hordeum vulgare to the hemiparasite Rhinanthus minor and the influence of infection on host and parasite cytokinins relations//Funct. Plant Biol. 2005.- V. 32. -P.619−629.
  178. Johansson I., Karlsson M., Shukla V.K., Chrispeels M.J., Larsson C., Kjellbom P. Water transport activity of the plasma membrane aquaporin PM28A is regulated by phosphorylation//Plant Cell. 1998.- V. 10. -P.451−459.
  179. Jones H., Tomos A.D., Leith R.A., Jones R.G.W. Water relations of epidermal and cortical cells of the primary root of Triticum aestivum L.//Planta. -1983.-V. 158. -P.230−236.
  180. Jones H.G. Plants and microclimate (2nd edition). — Cambridge: Cambridge university press, 1992.
  181. Jones R., Schreiber B. Role and function of cytokinin oxidase in plants//Plant Grow. Regul. 1997.- V. 23. -P. 123−134.
  182. Kaiser W.M., Hartung W. Uptake and release of abscisic acid by isolated photoautotrophic mesophyll cells, depending on pH gradients//Plant Physiol. 1981.- V. 68. -P.202−206.
  183. Kakimoto T. Identification of plant cytokinin biosynthetic enzymes as dimethylallyl diphosphate: ATP/ADP isopentenyltransferases//Plant and Cell Physiology. 2001.- V. 42. -P. 677−685.
  184. Kaldenhoff R., Fischer M. Functional aquaporin diversity in plants//Biochimica et Biophysica Acta. -2006.-V. 1758. -P. 1134−1141.
  185. Kaldenhoff R., Ribas-Carbo M., Flexas J., Lovisolo C., Heckwolf M., Uehlein U. Aquaporins and plant water balance//Plant Cell Environ. 2008.-V. 31. -P.658−666.
  186. Karmoker J.L., Clarkson D.T., Saker L.R., Rooney J.M., Purves J.V. Sulphate deprivation depresses the transport of nitrogen to the xylem and the hydraulic conductivity of barley (Hordeum vulgare L.) roots//Planta. -1991.-V. 185. -P.269−278.
  187. Kerk N.M., Ceserani T., Tausta S.L., Sussex I.M., Nelson T.M. Laser capturemicrodissection of cells from plant tissues/ZPlant. Physiol. 2003.- V. 132. -P.27−35.
  188. Kerk N.M., Jiang K., Feldman L.J. Auxin metabolism in the root apical meristem//Plant Physiology. 2000.- V. 122. -P.925−932.
  189. Kiba T., Kudo T., Kojima M., Sakakibara H. Hormonal control of nitrogen acquisition: roles of auxin, abscisic acid, and cytokinin//J. Exp. Bot. -2011.-V. 62. -P. 1399−1409.
  190. Kiba T., Naitou T., Koizumi N., Yamashino T., Sakakibara H., Mizuno T.
  191. Combinatorial microarray analysis revealing Arabidopsis genesimplicated in cytokinin responses through HisAsp phosphorelay circuitry//Plant and Cell Physiol. 2005.- V. 46. -P.339−355.
  192. Kjellbom P., Larsson C., Johansson I. et al. Aquaporins and water homeostasis in plants//Trends in Plant Sci. 1999.- V.4. -P.308−314.
  193. Komor E., Lieg. l I., Schobert C. Loading and translocation of various cytokinins in phloem and xylem of the seedlings of Ricinus communis L.//Planta. 1993.-V. 191. -P.252−255.
  194. Krol E., Trebacz K. Ways of Ion Channel Gating in Plant Cells//Ann. Bot. -2000.- V. 86. -P.449−469.
  195. Kuderova A., Urbankova I., Valkova M., Malbeck J., Brzobohaty B., Nemethova D., Hejatko J. Effects of conditional IPT-dependent cytokinin overproduction on root architecture of arabidopsis seedlings//Plant Cell Physiol. 2008.- V. 49. -P.570−582.
  196. Kudo T., Kiba T., Sakakibara H. Metabolism and long-distance translocation of cytokinins//J. Integr. Plant Biol. 2010.- V. 52. -P.53−60.
  197. Kuiper D., Schuit J., Kuiper P.J.C. Effects of internal and external cytokinin concentrations on root growth and shoot to root ratio of Plantago major ssp pleiosperma at different nutrient conditions//Plant and Soil. 1988.-V. 111. -P.231−236.
  198. Kuiper D., Staal M. The effects of endogenously applied plant growth substances on the physiological plasticity in Plantago major ssp. pleiosperma: responses of growth, shoot to root ratio and respiration//Physiol. Plant. 1987.- V. 69. -P.651−658.
  199. Kurakawa T., Ueda N., Maekawa M., Kobayashi K., Kojima M., Nagato Y., Sakakibara H., Kyozuka J. Direct control of shoot meristem activity by a cytokinin-activating enzyme//Nature. 2007.- V. 445. -P.652— 655.
  200. Kuroha T., Kato H., Asami T. Yoshida S., Kamada H., Satoh S. A transDzeatin riboside in root xylem sap negatively regulates adventitious root formation on cucumber hypocotyls//J. Exp. Bot. 2002, — V. 53. -P.2193−2200.
  201. R., Sosa J. L., Zavala M. E. Accumulation of zeatin O-glycosyltransferase in Phaseolus vulgaris and Zea mays following cold stress//Plant Growth Regulation. 2000.- V. 32. -P. 295−305.
  202. D.T., Maurel C. Aquaporins in a challenging environment: molecular gears for adjusting plant water status//Plant, Cell Environ. 2005.- V. 28. -P.85−96.1.an S. Signalling drought in guard cells// Plant, Cell Environ. 2002.- V. 25. -P.229−237.
  203. Malamy J.E., Ryan K.S. Environmental regulation of lateral root initiation in Arabidopsis/ZPlant Physiol. 2001.- V. 127. -P.899−909.
  204. Malone M. Hydraulic signals//Phil. Trans. R. Soc Lond. 1993.- V. 341. -P.33−39.
  205. Mansfield T.A., Hetherington A.M., Atkinson C.J. Some current aspects of stomatal physiology//Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -1990.- V.41. -P.55−75.
  206. Mansfield T.A., McAinsh M.R. Hormones as regulators of water balance//In Plant Hormones/Ed. P. J. Davies, Kluwer Academic Publisher, Dortrecht Berlin London. 1995. -P.598−616.
  207. Martin H.M., Elliott M.C., Wangermann E., Pilet P.E. Auxin gradient along the root of the maize seedling//Planta. 1978.- V. 141. -P.l 79−181.
  208. Martin T., Oswald O., Graham I.A. Arabidopsis seedling growth, storage mobilization, and photosynthetic gene expression are regulated by carbon: nitrogen availability//Plant Physiol. 2002.- V. 128. -P.472−481.
  209. Masia A., Pitacco A., Braggio L., Giulivo C. Hormonal responses to partial drying of the root system of Helianthus annuus//J. Exp. Bot. 1994.-V. 45. -P.69−76.
  210. Matsuda K., Riazi A. Stress-induced osmotic adjustment in growing regions of barley leaves//Plant Physiology. 1981.- V. 68. -P.571−576.
  211. Maurel C., Verdoucq L., Luu D.T., Santoni V. Plant aquaporins: membrane channels with multiple integrated functions//Ann. Review Plant Biol. 2008.- V. 59. -P.595−624.
  212. McGow B.A. Cytokinin Metabolism//Cytokinins: plant hormones in search of a role/Eds Horgan R., Jeffcoat B. Bristol: British Plant Growth Regulator Group. 1995. — P. 9−17.
  213. Mclntyre G.I., Cessna A.J. Apical dominance in Phaseolus vulgaris: effect of nitrogen supply//Can. J. Bot. 1991. — V.69. -P.1337−1343.
  214. McKenzie M.J., Mett V., Hugh P., Reynolds S., Jameson P.E. Controlled cytokinin production in transgenic tobacco using a copper-inducible promoter//Plant Physiol. 1998.-V. 116. -P.969−977.
  215. Mees G.C., Weatherley P.E. The mechanism of water absorption by roots//Proceedings of The Royal Society of London, Series B. 1957,-V. 147. -P.367−380.
  216. Meinzer F.C. Co-ordination of vapour and liquid phase water transport properties in plants//Plant, Cell Environ. 2002.- V. 25. -P.265−274.
  217. Meychik N.R., Yermakov I.P. A new approach to the investigation on the ionogenic groups of root cell walls//Plant Soil. 1999.- V. 217. -P.257−264.
  218. Miller C. O., Skoog F., Okumura F. S., Von Saltza M., Strong F.W. Isolation, structure and synthesis of kinetin, a substance promoting cell division//.!. American Chemical Society. 1956.- V. 11. -P. 118−131.
  219. Mingo D.M., Theobald J.C., Bacon M.A., Davies W.J., Dodd I.C. Biomass allocation in tomato (Lycopersicon esculentum) plants grown under partial rootzone drying: enhancement of root growth//Func. PI. Biol. -2004.- V. 31. -P.971−978.
  220. Miyawaki K., Matsumoto-Kitano M., Kakimoto T. Expression of cytokinin biosynthetic isopentenyltransferase genes in Arabidopsis: tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin, and nitrate/ZPlant J. -2004.-V. 37. -P. 128−138.
  221. Mizukami Y., Fischer R.L. Plant organ size control: AINTEGUMENTA regulates growth and cell numbers during organogenesis/ZProc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2000.- V. 18,№ 97. -P.942−947.
  222. Mok D.W.S., Mok M.C. Cytokinin metabolism and action//Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2001.- V. 52. -P.89−118.
  223. Monyo J.H., Whittington W.J. Genetic analysis of root growth in wheat//J. Agric. Scien. 1970.- V. 74. -P.329−338.
  224. Morcuende R., Perez P., Martinez-Carrasco R. Short-term feedback inhibition of photosynthesis in wheat leaves supplied with sucrose and glycerol at two temperatures//Photosynthetica. 1997.- V. 33. -P. 179−188.
  225. Morris P. C. MAP kinase signal transduction pathways in plants//New Phytologist. 2001V. 151. -P.67−89.
  226. Motyka V., Faiss M., Strnad M., Kaminek M., Schmulling T. Changes in cytokinin contentand cytokinin oxidase activity in response to derepression of ipt gene transcription in transgenic tobacco calli and plants/ZPlant Physiol. 1996.-V. 112. -P.1035−1043.
  227. Munns R., Cramer G.R. Is coordination of leaf and root growth mediated by abscisic acid? Opinion//Plant and Soil. 1996.- V. 185. -P.33−49.
  228. Munns R., Passioura J.B., Guo J., Chazen, Gramer G.R. Water relations and leaf expansion: importance of time scale//J. Exp. Bot. 2000.- V. 51. -P. 1495−504.
  229. Mustafma A., Veselov S., Valcke R., Kudoyarova G. Contents of abscisic acid and cytokinins in shoots during dehydration of wheat seedlings//Biologia Plantarum. 1997.- V. 40. -P. 291−293.
  230. Neuman D.S., Rood S.B., Smit B.A. Does cytokinin transport from root-to-shoot in the xylem sap regulate leaf responses to root hypoxia?//J. Exp. Bot. 1990.-V. 41. -P. 1325−1333.
  231. Niinemets U., Tenhumen J.D. A model separating leaf structural and physiological effects on carbon gain along light gradients for the shade-tolerant species Acer saccharum//Plant, Cell Environ. 1997.-V.20. -P.845−866.
  232. Nooden L.D., Guiamet J.J., Singh S., Letham D.S., Tsjui J., Schneider M.J. Hormonal control of senescence//Plant Growth Substances/Eds Pharis R.P., Rood S.B. Springer-Verlag, New York. 1990. -P. 537−546.
  233. Nooden, L.D., Guiamet J.J., John I. Senescence mechanisms // Physiol. Plant. 1997. V. 101. V. 746−753.
  234. Palmer S., Berridge D., Mac Donald A., Davies W. Control of leaf expansion in sunflower by nitrogen nutrition//J. Exp. Bot. 1996.- V. 47. -P.359−368.
  235. Parent B., Hachez C., Redondo E., Simonneau T., Chaumont F., Tardieu F.
  236. Drought and abscisic acid effects on aquaporin content translate into changes in hydraulic conductivity and leaf growth rate: a trans-scale approach//Plant Physiol. 2009.- V. 149. -P.2000−2012.
  237. Parent B., Suard B., Serraj R., Tardieu F. Rice leaf growth and water potential are resilient to evaporative demand and soil water deficit once the effects of root system are neutralized//Plant, Cell Environ. 2010.- V. 33. -P.1256−1267.
  238. Parry A.D., Griffiths A., Horgan R. Abscisic acid biosynthesis in roots. II. The effects water-stress in wild-type and abscisic acid-deficient mutant (notabilis) plants of Lycopersicon esculentum Mill.//Planta. 1992.-V. 187. -P. 192−197.
  239. Passioura J.B. Water transport in and to roots//Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 1988.- V. 39. -P.245−256.
  240. Paul M.J., Driscoll S.P. Sugar repression of photosynthesis: the role of carbohydrates in signaling nitrogen deficiency through source: sink imbalance//Plant, Cell Environ. 1997.- V. 20. -P.110−116.
  241. Paul M.J., Pellny T.K. Carbon metabolite feedback regulation of leaf photosynthesis and development//!. Exp. Bot. 2003.- V. 54. -P.539−547.
  242. Pengelly W.L., Hall P.J., Schulze A., Bandurski R.S. Distribution of Free and Ester Indole-3-Acetic Acid in the Cortex and the Stele of the Zea Mays Mesocotyl//Plant Physiol. 1982.- V. 69. -P.1304−1307.
  243. Peterson C.A., Murrman M., Steudle E. Location of the major barriers to water and ion movement in young roots of Zea mays L.//Planta. 1993.- V. 190. -P. 127−136.
  244. Pierce M., Raschke K. Correlation between loss of turgor and accumulation of abscisic acid in detached leaves // Planta. 1980. V. 148. P. 174−182.
  245. Pierik R., Sasidharan R., Voesenek L.A.C.J. Growth control by ethylene: adjusting phenotypes to the environment//! Plant Growth Regul. -2007,-V. 26.-P. 188−200.
  246. Poorter H., Nagel O. The role of biomass allocation in the growth response of plants to different levels of light, C02, nutrients and water: a quantitative review//Aust. J. Plant Physiol. 2000.- V. 27. -P.595−607.
  247. Popova L.P., Outlaw W.H., Aghoram K., Hite D. R. C. Abscisic acid an intraleaf water-stress signal//Physiologia Plantarum. — 2000.- V. 108. -P.376−381.
  248. Popova L.P.- Tsonev T.D.- Lazova G.N.- Stoinova Z.G. Drought- and ABA-induced changes in photosynthesis of barley plants//Physiologia Plantarum. 1996.- V. 96, №. 4. -P. 623−629.
  249. Preston G.M., Carroll T.P., Guggino W.B., Agre P. Appearance of water channels in Xenopus oocytes expressing red cell CHIP28 protein//Science. 1992.- V. 256. -P.385−387.
  250. Price A.N., Tomos A.D., Virk D.S. Genetic dissection of root growth in rice (Oryza sativa L) 1: A hydroponic screen//Theor. Appl. Genet. 1997.-V. 95.-P. 132−142.
  251. Radin J.W., Ackerson R.C. Water relations of cotton plants under nitrogen deficiency//Plant Physiology. 1981.-V.67.-P. 115−119.
  252. Radin J.W., Boyer J.S. Control of leaf expansion by nitrogen nutrition in sunflower plants//Plant Physiol. 1982.- V. 69. -P.771−775.
  253. Radin J.W., Eidenbock M.P. Hydraulic conductance as a factor limiting leaf expansion of phosphorus-deficient cotton plants//Plant Physiol. -1984.- V. 75. -P.372−377.
  254. Radin J.W., Matthews M.A. Water transport properties of cortical cells in roots of nitrogen- and phosphorus-deficient cotton seedlings//Plant Physiol. 1989.- V. 89. -P.264−268.
  255. Rahayu Y.S., Walch-Liu P., Neumann G., Romheld V., von Wiren N., Bangerth F. Root-derived cytokinins as long-distance signals for N03 -induced stimulation of leaf growth//J. Exp. Bot. 2005.- V. 56. -P.l 143−1152.
  256. Raschke K. Stomatal responses to pressure changes and interruption in the water supply of detached leaves of Zea mais L.//Plant Physiol. -1970.- V. 45. -P.415−423.
  257. Rayle D.L., Cleland R.E. The in-vitro acid-growth response: relation to in-vivo growth responses and auxin action/ZPlanta. 1972 — V. 104. -P.282−296.
  258. Redig P., Shaul O., Inz D., Van Montagu M., Van Onckelen H. Levels of endogenous cytokinins, indole-3-acetic acid and abscisic acid during the cell cycle of synchronized tobacco BY-2 cells//FEBS Letters. -1996.-V. 391. -P. 175−180.
  259. Reed R.C., Brady S.R., Muday G.K. Inhibition of auxin movement from the shoot into the root inhibits lateral root development in Arabidopsis//Plant Physiology. 1998. — V. 118. — P. 1369−1378.
  260. Reich P.B., Kloeppel B.D., Ellsworth D.S., Walters M.B. Different photosynthesis-nitrogen relations in deciduous hardwood and evergreen coniferous tree species//Oecologia. — 1995 — V.104. —P.24−30.
  261. Reich P.B., Walters M.B., Ellsworth D.S. From tropics to tundra: global convergence in plant functioning//Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 1997.-V.94. -P. 13 730−13 734.
  262. Reiser V., Raitt D.S., Saito H. Yeast osmosensor Slnl and plant cytokinin receptor Crel respond to changes in turgor pressure//J.Cell.Biol. -2003.-V. 161. -P.1035−1040.
  263. Reski R. Small molecules on the move: homeostasis, crosstalk, and molecular action of phytohormones//Plant Biol. 2006.- V.8. -P.277−280.
  264. Reynolds M., Foulkes M.J., Slafer G.A., Berry P. M.A.J., Snape J.W., Angus W.J. Raising yield potential in wheat//J. Exper. Bot. 2009.- V. 60, № 7. -P. 1899−1918.
  265. Riefler M., Novak O., Strnad M., Schmulling T. Arabidopsis cytokinin receptor mutants reveal functions in shoot growth, leaf senescence, seed size, germination, root development, and cytokinin metabolism//The Plant Cell. 2006.- V. 18. -P.40−54.
  266. Roelfsema M.R.G., Hedrich R. In the light of stomatal opening: newinsights into 'the watergateV/New Phytol. 2005.- V. 167. -P.665−691.
  267. Roitsch T., EhneP R. Regulation of source/sink relations by cytokinins//Plant Growth Regul. 2000.- V. 32. -P.359−367.
  268. Rolland F., Baena-Gonzalez E., Sheen J. Sugar sensing and signalling in plants: conserved and novel mechanisms//Ann. Review Plant Biol. 2006.-V. 57. -P.675−709.
  269. Romanov G.A., Lomin S.N., Schmulling T. Biochemical characteristics and ligand-binding properties of Arabidopsis cytokinin receptor ANK3 compared to CRE1/ANK4 as revealed by a direct binding assay//J. Exp. Bot. 2006.- V. 57. -P. 4051−4058.
  270. Saab I.N., Sharp R.E., Pritchard J., Voetberg G.S. Increased endogenous abscisic acid maintains primary root growth and inhibits shoot growth of maize seedlings at low water potentials//Plant Physiol. 1990.- V. 93. -P.1329−1336.
  271. Sabatini S., Bes D., Wolkenfelt H., Murfett J., Guilfoyle T., Jonelyn M., Benfey P., Leyser O., Bechtold N., Weisbeek P., Scheres B. An Auxin-Dependent Distal Organizer of Pattern and Polarity in the Arbidopsis Root//Cell. 1999.- V. 99. -P.463−172.
  272. Sakakibara H. Cytokinins: activity, biosynthesis, and translocation//Ann. Rev. Plant Biol. 2006.- V. 57. -P. 431−449.
  273. Sakakibara H., Suzuki M., Takei K., Deji A., Taniguchi M., Sugiyama T.A.
  274. Response regulator homologue possibly involved in nitrogen signal transduction mediated by cytokinin in maize//Plant J. — 1998.- V.14. -P.337−344.
  275. Sakakibara H., Takei K., Hirose N. Interactions between nitrogen and cytokinin in the regulation of metabolism and development//TrendsS in Plant Science. 2007.- V. 11. -P.440−447.
  276. Sakamoto T, Sakakibara H, Kojima M, Nagasaki H, Yamamoto Y, Inukai Y, Sato Y, Matsuoka M. Ectopic expression of KNOX homeodomain protein induces expression of cytokinin biosynthesis gene in rice//Plant Physiology. 2006.- V. 142. -P. 54−62.
  277. Salama A., Wareing P.F. Effects of mineral nutrition on endogenous cytokinins in plants of sunflower (Helianthus annuus L.)//J. Exper. Bot. 1979-V.30. -P.971−981.
  278. Saliendra N.Z., Sperry J.S., Comstock J.P. Influence of water status on stomatal resistance to humidity hydraulic conductance, and soil drought in Betula occidentalis//Planta. 1995.- V. 196. -P.357−366.
  279. Salisbury F.B., Marinos N.G. The ecological role of plant growth substances/ZHormonal regulation of development. III. Berlin etc.: Springer-Verlag, 1985. P. 707−764.
  280. Salisbury F.J., Hall A., Grierson C.S., Halliday K.J. Phytochrome coordinates Arabidopsis shoot and root development//Plant J. 2007.- V. 50. -P.42938.
  281. Santamaria P., Elia A. Producing nitrate-free endive heads: effect of nitrogen form on growth, yield, and ion composition of endive//Journal of the American Society for Horticultural Science. 1997- V.122. -P. 140 145.
  282. Sattelmacher B., Gerendas J., Thorns K., Bruck H., Bagdady N.H. Interaction between root growth and mineral nutrition//Environmental and Experimental Botany. 1993.- V.33. -P.63−73.
  283. Sauter A., Dietz K.J., Hartung W A possible stress physiological role of abscisic acid conjugates in root to shoot signaling//Plant, Cell Environ. -2002.-V. 25.-P. 223−228.
  284. Sauter A., Hartung W. Radial transpora of abscisic acid conjugates in maize roots: its implication for long distance stress signals//J. Exp Bot. -2000.-V. 51. -P.929−935.
  285. Schachtman D.P., Goodger J.Q.D. Chemical root to shoot signalling under drought//Trends in Plant Science. 2008.-V. 13. -P.281−287.
  286. Schaffner A.R. Aquaporin function, structure and expression: are there more surprises to surface in plant water relations?//Planta. 1998.- V. 204. -P. 131−139.
  287. Scheible W.R., Gonzalez-Fontes A., Lauerer M., Miiller-Rober B., Caboche M., Stitt M. Nitrate acts as a signal to induce organic acid metabolism and repress starch metabolism in tobacco//The Plant Cell. 1997.- V. 9. -P.783−798.
  288. Schmulling T., Beinsberger S., De Greef J., Shell J., Van Onckelen H., Spena A.
  289. Construction of a heat-inducible chimaeric gene to increase the cytokinin content in transgenic plant tissue//FEBS let. 1989.- 249. -P.40106.
  290. Schraut D., Heilmeier H., Hartung W. Radial transport of water and abscisic acid (ABA) in roots of Zea mays under conditions of nutrient deficiency//J Exp. Bot. 2005.- V. 56. -P.879−886.
  291. Sharp R. E. Interaction with ethylene: changing views on the role of abscisic acid in root and shoot growth responses to water stress//Plant cell Environment. 2002.- V. 25. -P.211−222.
  292. Sharp R., LeNoble M. ABA, ethylene and the control of shoot and root growth under water stress//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P. 33−37.
  293. Sharp R.E., Poroyko V., Hejlek L.G., Spollen W.G., Springer G.K., Bohnert H.J., Nguyen H.T. Root growth maintenance during water deficits: physiology to functional genomics//J. Exp. Bot. 2004.- V. 55. -P.2343−2351.
  294. Sharpe P.J.H., Wu H., Spence R.D. Stomatal mechanics//In Stomatal Function /Eds Zieger E., Farquhar G.D., Cowan I.R., Stanford University Press, Stanford.-1987. -P. 91−114.
  295. Signora L., Smet I. De, Foyer C.H., Zhang H. ABA plays a central role in mediating the regulatory effects of nitrate on root branching in Arabidopsis//Plant J. 2001.- V. 28. -P.655−662.
  296. Singh S., Letham D.S., Zhang X., Palni I.M.S. Cytokinin biochemistry in relation to leaf senescence. VI. Effect of nitrogenous nutrients oncytokinin levels and senescence of tobacco leaves//Physiol. Plant. -1992.-V.84. -P.262−268.
  297. Siopongco J. DLC, Sekiya K., Yamauchi A., Egdane J., Ismail A.M., Wade L.J.
  298. Stomatal responses in rainfed lowland rice to partial soil drying- Evidence for root signals/ZPlant prod. Sci. 2008.- V. 11. -P. 28−41.
  299. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultures in vitro//Symp. Soc. Exp. Biol. 1957, — V. 11. -P. 118−131.
  300. Slovik S., Daeter W., Hartung W. Compartmental redistribution and longdistance transport of abscisic acid (ABA) in plants as influenced by environmental changes in the rhizosphere —a biomathematical model//J. Exp. Bot. 1995.- V. 46. -P.881−894.
  301. Slovik S., Hartung W. Compartmental distribution and redistribution of ABA in intact leaves. II. Model analysis//Planta. 1992.- V. 187. -P.26−36.
  302. Smet I.D., Signora L., Beeckman T., Inze D., Foyer C.H., Zhang H. An abscisic acid-sensitive checkpoint in lateral root development of Arabidopsis//The Plant Journal. 2003.- V. 33, № 3. -P.543−555.
  303. Smith H., Whitelam G.C. The shade avoidance syndrome: multiple responses mediated by multiple phytoshromes//Plant, Cell Environ. 1997.- V. 20. -P.840−844.
  304. Sobeih W.Y., Dodd I.C., Bacon M.A., Grierson D., Davies W.J. Long-distance signals regulating stomatal conductance and leaf growth in tomato (Lycopersicon esculentum) plants subjected to partial root zone drying//J Exp. Bot. 2004.- V.55. -P.2353−2363.
  305. Sobrado M. A. Relationship of water transport to anatomical features in the mangrove Laguncularia racemosa grown under contrasting salinities//New Phytologist. 2007.- V. 173. -P.584−591.
  306. Spollen W.G., LeNoble M.E., Samuels T.D., Bernstein N., Sharp R.E. Abscisic acid accumulation maintains maize primaiy root elongation at low water potentials by restricting ethylene production//Plant Physiology. -2000.-V. 122. -P.967−976.
  307. Steudle E. The cohesion-tension mechanism and the aquisition of water by plant roots//Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 2001.- V.52. -P.847−875.
  308. Steudle E. Water uptake by roots: effects of water deficit // J. Exp. Bot. 2000.-V. 51.-P. 1531−1542.
  309. Steudle E., Frensch J. Water transport in plants: role of the apoplast//Plant and Soil. 1996.- V. 187. -P.67−79.
  310. Stitt M., MQller C., Matt P., Gilbon Y., Carillo P., Morcuende R., Scheible W.-R., Krapp A. Steps towards an integrated view of nitrogen metabolism//! Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.959−970.
  311. Studer C., Hu Y., Schmidhalte U. Evaluation of the differential osmotic adjustments between roots and leaves of maize seedlings with single or combined NPK-nutrient supply/ZFunc. Plant Biol. 2007.-V. 34. -P.228−236.
  312. Suzuki M., Kao C.Y., Cocciolone S., McCarty D.R. Maize VP1 complements Arabidopsis abi3 and confers a novel ABA/auxin interaction in roots//Plant J. 2001.- V 28. -P.409−418.
  313. Swarup R., Friml J., Marchant A., Ljung K., Sandberg G., Palme K., Bennet M. Localization of the auxin permease AUX1 suggests two functional distinct hormone pathways operate in the Arabidopsis root apex//Gene Dev. 2001.- V. 15. -P.2648−2653.
  314. Takahashi K., Hirata S., Kido N., Katou K. Wall-yielding properties of cell walls from elongating Cucumber hypocotyls in relation to the action of expansin//Plant Cell Physiol. 2006.- V. 47, № 11. -P. 1520−1529.
  315. Takei K., Takahashi T., Sugiyama T., Yamaya T., Sakakibara H. Multiple routes communicating nitrogen availability from roots to shoots: a signal transduction pathway mediated by cytokinin//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.971−977.
  316. Takei K., Ueda N., Aoki K., Kuromori T., Hirayama T., Shinozaki K., Yamaya T., Sakakibara H. AtIPT3 is a key determinant of nitrate-dependent cytokinin biosynthesis in Arabidopsis//Plant and Cell Physiol. 2004.-V. 45. -P. 1053−1062.
  317. Tanaka M., Takei K., Kojima M., Sakakibara H., Mori H. Auxin controls local cytokinin biosynthesis in the nodal stem in apical dominance//Plant J. 2006.- V. 45. -P. 1028−1036.
  318. Tanaka Y., Sano T., Tamaoki M., Nakajima N., Kondo N., Hasezawa S.
  319. Ethylene inhibits abscisic acid-induced stomatal closure in Arabidopsis//Plant Physiol. 2005.- V. 138. -P.2337−2343.
  320. Tang A., Boyer J.S. Growth-induced water potentials and the growth of maize leaves//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P.489−503.
  321. Taniguchi H., Kiba T., Sakakibara T., Ueguchi C., Siguyama T. Expression of Arabidopsis response regulator homologs is induced by cytokinins and nitrate//FESB Letters. 1998.- V. 429. -P.259−262.
  322. Tardieu F., Parent B., Simonneau T. Control of leaf growth by abscisic acid: hydraulic or non-hydraulic processes?//Plant, Cell Environ. 2010.-V. 33. -P.636−647.
  323. Trejo C.L., Clephan A.L., Davies W.J. How do stomata read abscisic acid signals?//Plant Physiol. 1995.-V. 109. -P.803−811.
  324. Trejo C.L., Davies W.J. Drought induced closure of Phaseolus vulgaris L. stomata precedes leaf water deficit and any increase in xylem ABA concentration//J Exp Bot. 1991.- V. 42. -P. 1507−1515.
  325. Tyree M.T., Ewers F.W. The hydraulic architecture of trees and other woody plants//New Phytologist. 1991.- V. 119. -P.345−360.
  326. Van der Werf A., Nagel O.W. Carbon allocation to shoots and roots in relation to nitrogen supply is mediated by cytokinins and sucrose: opinion//Plant Soil. 1996.- V. 185. -P.21−32.
  327. Van Staden J., Harty R. Cytikinins and adventitious root formation//In: Adventitious root formation in cuttings/Eds. Davies T.D., Haissig B.E., Sankhila N. Dioscorides Press, 1988.- V.2. -P. 185−201.
  328. Veselov S. Yu., Valcke R., Van Onckelen H., Kudoyarova G.R. Cytokinin content and location in the leaves of the wild-type and transgenic tobacco plants//Russian Journal of Plant Physiology. 1999.- V. 46. -P.26−31.
  329. Veselov S.Yu., Kudoyarova G.R., Egutkin N.L., Guili-Zade V.Z., Mustafina A.R., Kof E.M. Modified solvent partitioning scheme providing increased specificity and rapidity of immunoassay for indole 3-acetic acid//Physiol. Plant. 1992.- V. 86. -P.93−96.
  330. Vickova A., Spundova M., Kotabova E., Novotny R., Dolezal K., Naus J.
  331. Protective cytokinin action switches to damaging during senescenceof detached wheat leaves in continuous light//Physiol. Plant. 2006.-V.126. -P.257−267.
  332. Walch-Liu P., Filleur S., Gan Y., Forde B.G. Signaling mechanisms integrating root and shoot responses to changes in the nitrogen supply//Photosynthesis Research. 2005.-V. 83. -P.239−250.
  333. Walch-Liu P., Ivanov I.I., Filleur S., Gan Y., Remans T., Forde B.G. Nitrogen regulation of root branching//Annals of Botany. 2006.- V. 97. -P.875−881.
  334. Wallace A., Frohlich A. Phosphorus deficiency symptoms in tobacco versus transpirational water loss//Nature. 1965 — V.208. -P. 123−124.
  335. Warren C.R. Stand aside stomata, another actor deserves centre stage: the forgotten role of the internal conductance to C02 transfer//.!. Exp. Bot. 2008.- V. 59, № 7. -P.1475−1487.
  336. Wartinger A., Heilmeier H., Hartung W., Schulze E.D. Daily and seasonal courses of leaf conductance and abscisic acid in the xylem sap of almond trees Prunus dulcis (Miller) D.A.Webb. under desert conditions//The New Phytol. 1990.- V. 116. -P.581−587.
  337. Wasilewska A., Fiorina Via, Caroline Sirichandr, Yulia Redko, Fabien Jammesc, Christiane Valona, Nicolas Frei dit Freya and Jeffrey Leunga. An update on abscisic acid signaling in plants and more.//Molecular Plant. 2008.- V. 1. -P. 198−217.
  338. Werner T, Kollmer I, Bartrina I, Hoist K, Schmu" lling T. New insights into the biology of cytokinin degradation//Plant Biology. 2006.- V. 8. -P.371−381.
  339. Werner T., Motyka V., Laucou V., Smets R., Van Onckelen H., Schmulling T.
  340. Cytokinin-deficient transgenic Arabidopsis plants show multiple developmental alterations indicating opposite functions of cytokininsin the regulation of shoot and root meristem activity//Plant Cell. -2003.-V. 15. -P.2532−2550.
  341. Werner T., Motyka V., Strnad M., Schmulling T. Regulation of plant growth by cytokinin/ZProceedings of the National Academy of Sciences, USA. -2001.- V. 98. -P. 10 487−10 492.
  342. Wilkinson S., Bacon M.A., Davies W.J. Nitrate signalling to stomata and growing leaves: interactions with soil drying, ABA and xylem sap pH in maize//J. Exp. Bot. 2007.- V. 58. -P.1705−1716.
  343. Wilkinson S., Davies W.J. Drought, ozone, ABA and ethylene: new insights from cell to plant to community//Plant, Cell Environ. 2010.- V. 33. — P.510−525.
  344. Wilkinson S., W. J. Davies. ABA-based chemical signalling: the co-ordination of responses to stress in plants/ZPlant, Cell Environ. 2002.- V. 25. -P. 195−210.
  345. S.T., Hiron R.P. (+) Abscisic acid, the growth inhibitor induced in detached wheat leaves by a period of wilting//Nature. 1969.- V. 224. -P.719−720.
  346. Wu Y., Cosgrove D. Adaptation of roots to low water potentials by changes in cell wall extensibility and cell wall proteins//J. Exp. Bot. 2000.- V. 51. -P.1543−1553.
  347. Xiao-Ping S., Xi-Gui S. Cytokinin- and auxin-induced stomatal opening is related to the change of nitric oxide levels in guard cells in broad bean//Phiologia Plantarum. 2006, — V. 128. -P.569−579.
  348. Xiong L., Zhu J.-K. Molecular and genetic aspects of plant responses to osmotic stress// Plant, Cell Environ. 2002.- V. 25. -P. 131−139.
  349. Yamaguchi M., Sharp R.E. Complexity and coordination of root growth at low water potentials: recent advances from transcriptomic and proteomic analyses//Plant, Cell Environ. 2010.- V. 33. -P.590−603.
  350. Yang S.H., Yu H., Goh C.J. Isolation and characterization of the orchid cytokinin oxidase DSCKX1 promoter//J. Exp. Bot. 2002.- V. 53. -P. 1899−1907.
  351. Yin C., Duan B., Wang X., Li C. Morphological and physiological responses of two contrasting Poplar species to drought stress and exogenous abscisic acid application//Plant Science. 2004.- V. 167. -P. 10 911 097.
  352. Zazimalova E., Kaminek M., Brezinova A., Motyka V. Control of cytokinin biosynthesis and metabolism//In Biochemistry and Molecular Biology of Plant Hormones/ Eds. Hooykaas P.J.J., Hall M.A., Libbenga K.R. Elsevier Science, 1999.
  353. Zeevaart J.A.D., Creelman R.A. Metabolism and physiology of abscisic acid//Annual Review of Plant Physiology. 1988.- V. 39. -P.439−473.
  354. Zhang J., Davies W.J. Abscisic acid produced in dehydrating roots may enable the plant to measure the water status of the soil//Plant Cell Envir. -1989.-V. 12. -P.73−81.
  355. Zhang J., Davies W.J. Does ABA in the xylem control the rate of leaf growth in soil-dried maize and sunflower plants?// Exp. Bot. 1990, — V. 41. -P. 1125−1132.
  356. Zhang R., Letham D.S., Willcocks D.A. Movement to bark and metabolism of xylem cytokinins in stems of Lupinus angustifolius/ZPhytochemistry. 2002.- V. 60. -P.483−488.
  357. Zhang H., Rong H., Pilbeam D. Signalling mechanisms underlying the morphological responses of the root system to nitrogen in Arabidopsis thaliana//J. Exp.Bot. 2007.- V. 58. -P. 2329−2338.
  358. Zimmermann H.M., Steudle E. Apoplastic transport across young maize roots: effect of the exodermis//Planta. 1998.- V. 206. -P.7−19.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!