Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Разработка биочувствительных элементов в виде иммобилизованных клеток микроорганизмов для определения экотоксикантов в проточных водных системах

Диссертация: Разработка биочувствительных элементов в виде иммобилизованных клеток микроорганизмов для определения экотоксикантов в проточных водных системах
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Существует ряд носителей, применение которых возможно для разработки иммобилизованных форм микроводорослей и фотобактерий, однако, все они имеют те или иные недостатки. Так, в результате иммобилизации в некоторых микроводорослях ФСА претерпевает необратимые изменения, также отдельные клетки не способны функционировать при их обездвиживании в матрице носителя. В этой связи носитель, должен… Читать ещё >

Разработка биочувствительных элементов в виде иммобилизованных клеток микроорганизмов для определения экотоксикантов в проточных водных системах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Основные аспекты экомониторинга состояния природных объектов
      • 1. 1. 1. Особо важные объекты мониторинга: водные системы и почвы
      • 1. 1. 2. Спектр экотоксикантов, мониторинг наличия которых необходим в 14 природных средах
    • 1. 2. Известные биосенсорные системы на основе клеток микроорганизмов, 16 используемые для определения присутствия экотоксикантов в природных средах
      • 1. 2. 1. Клетки микроводорослей — как биочувствительные элементы 17 биоиндикаторов
        • 1. 2. 1. 1. Флуоресценция хлорофилла микроводорослей, как источник 18 аналитического сигнала
        • 1. 2. 1. 2. Биочувствительные элементы на основе иммобилизованных клеток 21 микроводорослей, используемые для определения наличия экотоксикантов в природных системах
      • 1. 2. 2. Фотобактерии — основа микробных биоиндикаторов
        • 1. 2. 2. 1. Принципы функционирования биочувствительных элементов на 25 основе клеток фотобактерий
        • 1. 2. 2. 2. Биочувствительные элементы на основе иммобилизованных клеток 27 фотобактерий, используемые для определения наличия экотоксикантов в водных проточных системах
        • 1. 2. 2. 3. Клетки фотобактерий в мониторинге экотоксикантов в почвах
    • 1. 3. Требования, предъявляемые к характеристикам биочувствительных элементов, получаемых на основе клеток микроорганизмов, для анализа экотоксикантов
    • 1. 4. Использование криотропных гелей для иммобилизации клеток микроорганизмов
      • 1. 4. 1. Криогель поливинилового спирта
      • 1. 4. 2. Криогель полиакриламида 43 2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 46 2.1 Материалы 46 2.1.1 Микроорганизмы
      • 2. 1. 2. Реактивы
    • 2. 2. Методы
      • 2. 2. 1. Выращивание биомассы клеток микроорганизмов
      • 2. 2. 2. Иммобилизация клеток фотобактерий и микроводорослей в криогель 48 поливинилового спирта
      • 2. 2. 3. Иммобилизация клеток микроводорослей в криогель полиакриламида
      • 2. 2. 4. Методики исследования влияния процесса иммобилизации на 49 состояние клеток микроорганизмов
      • 2. 2. 5. Изучение ответа биоиндикаторов на присутствие в среде токсикантов в водных системах
      • 2. 2. 6. Определение содержания влажной биомассы в образцах 53 биочувствительного элемента, полученных при введении клеток микроводорослей в криогель поливинилового спирта под действием центробежных сил
    • 2. 3. Подготовка модельных образцов почвы, загрязненной пестицидами, и 53 экстракция пестицидов из почвы
    • 2. 4. Расчет погрешностей и нижнего предела обнаружения

    2.5 Приборы и программное обеспечение 54 3 РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 55 3.1 Биочувствительный элемент в виде иммобилизованных клеток микроводорослей для определения присутствия экотоксикантов в проточных системах

    3.1.1 Разработка биочувствительного элемента на основе клеток 56 микроводорослей, иммобилизованных путем включения их в криогели

    3.1.1.1 Исследование влияния концентрации биомассы клеток 56 микроводорослей и поливинилового спирта в составе биочувствительного элемента на его характеристики

    3.1.1.2 Исследование влияния присутствия криопротекторов на 60 характеристики клеток микроводорослей Thala.ssio.sira veissflogii после их иммобилизации в криогель поливинилового спирта

    3.1.1.3 Исследование влияния состава питательной среды, используемой для 62 накопления биомассы клеток микроводорослей с целью ее последующей иммобилизации в криогель поливинилового спирта, на свойства биочувствительного элемента

    3.1.1.4 Влияние режима культивирования клеток микроводорослей

    Ткаїаььіо.їіга veissflogii на характеристики получаемых биочувствительных элементов

    3.1.1.5 Исследование влияния температуры формирования криогеля 70 поливинилового спирта на характеристики получаемого биочувствительного элемента в виде иммобилизованных клеток микроводорослей

    3.1.1.6 Исследование влияния условий формирования криогеля 72 полиакриламида для использования его в качестве носителя для иммобилизованных клеток микроводорослей

    3.1.1.7 Сравнение характеристик образцов иммобилизованных клеток 76 микроводорослей, полученных при разных приемах их введения в поры носителя криогеля полиакриламида

    3.1.1.8 Исследование эффективности удержания иммобилизованных клеток 77 микроводорослей в различных носителях в проточных условиях

    3.1.2 Исследование операционных характеристик биочувствительного 78 элемента в виде иммобилизованных клеток микроводорослей в стационарных водных системах

    3.1.2.1 Влияние температуры среды экспонирования на операционные 79 характеристики биочувствительного элемента в виде клеток микроводорослей в условиях дискретного анализа

    3.1.2.2 Влияние режима и интенсивности внешнего освещения на 80 операционные характеристики биочувствительного элемента в виде иммобилизованных клеток микроводорослей в условиях дискретного анализа

    3.1.2.3 Определение пределов обнаружения экотоксикантов с 82 использованием разработанных биочувствительных элементов в виде иммобилизованных клеток микроводорослей в дискретном режиме анализа

    3.1.3 Исследование операционных характеристик биочувствительных 84 элементов в виде иммобилизованных клеток микроводорослей в проточных аналитических системах

    3.1.3.1 Исследование стабильности операционных характеристик 85 разработанных биочувствительных элементов при их длительном экспонировании в проточной системе в условиях отсутствия токсикантов

    3.1.3 Исследование операционных характеристик биочувствительного 86 элемента в виде иммобилизованных клеток микроводорослей в проточных аналитических системах

    3.2 Биочувствительный элемент на основе иммобилизованных клеток 88 фотобактерий

    3.2.1 Разработка биочувствительного элемента в виде иммобилизованных в 89 криогель поливинилового спирта клеток фотобактерий

    3.2.1.1 Оценка влияния концентрации биомассы клеток в гранулах 89 биочувствительного элемента на характеристики иммобилизованных клеток фотобактерий

    3.2.1.2 Влияние концентрации полимера в гранулах биочувствительного 92 элемента на характеристики иммобилизованных клеток

    3.2.1.3 Влияние температурных условий формирования и хранения 93 биочувствительного элемента на биолюминесцентную активность иммобилизованных клеток

    3.2.1.4 Влияние состава среды, используемой на стадии формирования и 94 экспонирования биочувствительного элемента в виде иммобилизованных клеток фотобактерий, на его биолюминесценцию

    3.2.1.5 Оценка влияния процесса иммобилизации клеток фотобактерий в 96 криогель поливинилового спирта на спектр их биолюминесценции

    3.2.2 Исследование операционных характеристик биочувствительного 102 элемента на основе иммобилизованных в криогель поливинилового спирта клеток фотобактерий в стационарных водных системах

    3.2.2.1. Исследование влияния температурных условий на интенсивность 102 биолюминесценции иммобилизованных в криогель поливинилового спирта клеток фотобактерий

    3.2.2.2 Исследование основных аналитических характеристик 105 биочувствительного элемента на основе клеток фотобактерий, используемого при обнаружении экотоксикантов в режиме дискретного анализа

    3.2.2.3 Определение цитотоксичности новых фосфорорганических 109 соединений (потенциальных антимикробных препаратов) с помощью разработанного биочувствительного элемента на основе клеток фотобактерий, иммобилизованных в криогель поливинилового спирта

    3.2.3 Исследование операционных характеристик биочувствительного 112 элемента на основе иммобилизованных клеток фотобактерий в проточных водных системах

    3.2.3.1 Исследование стабильности сигнала полученного биочувствительного элемента биосенсора на основе иммобилизованных клеток в проточной системе при отсутствии экотоксикантов в среде

    3.2.3.2 Исследование характера отклика биочувствительного элемента на 115 присутствие в проточной среде экотоксикантов

    3.2.3.3 Исследование пределов обнаружения экотоксикантов при 121 использовании биочувствительного элемента в виде иммобилизованных клеток фотобактерий в проточной системе

    3.2.3.4 Оценка влияния скорости протока на показатели количественного 124 эффекта взаимодействия экотоксикантов с иммобилизованными клетками фотобактерий Р. phosphoreum

    3.2.3.5 Оценка токсичности реальных водных проб с помощью полученного 128 БЭ в виде иммобилизованных в криогель поливинилового спирта клеток фотобактерий

    3.2.3.6 Исследование возможности определения токсичности 130 фосфорорганических пестицидов и ионов тяжелых металлов, содержащихся в почве, с помощью полученного биочувствительного элемента в виде иммобилизованных в криогель поливинилового спирта клеток фотобактерий

    ВЫВОДЫ

Производственная деятельность человека и его воздействие на окружающую среду, в первую очередь, отражаются на состоянии водоемов и почв. Одновременно с интенсификацией того или иного производства увеличиваются и объёмы жидких промышленных и бытовых отходов. При этом, наибольшее внимание уделяется экотоксическому воздействию хлорорганических соединений, нефтепродуктов, производных тяжелых металлов на все природные биологические объекты [1−12]. Загрязнение окружающей среды увеличивается. Так в 2011 году только на водных объектах Московского региона было зафиксировано 323 случая высокого загрязнения различными веществами, что на 47% больше, чем в 2010 году и на 68% больше, чем в 2009 году. [13]. Вследствие постоянно возрастающей антропогенной нагрузки на окружающую среду разработка эффективных методов анализа состояния объектов окружающей среды становится особенно актуальной.

Проблемой первостепенной важности является необходимость проведения постоянного мониторинга качества воды. При этом требуется получение информации в режиме реального времени для экстренного выявления и принятия мер по ликвидации загрязнений. Своевременное получение информации возможно при использовании методов, позволяющих определять наличие в воде экотоксикантов оперативно и дистанционно, поэтому актуальной является разработка технологий экспресс-анализа экотоксикантов в проточных системах.

Почвенный покров играет роль универсального биологического сорбента и нейтрализатора загрязнений. Бесконтрольное применение пестицидов и сброс экотоксикантов на почву могут быть причиной экологических катастроф. Поэтому важным является проведение мероприятий, позволяющих своевременно зафиксировать и свести к минимуму или совершенно исключить загрязнения почвенного покрова. В настоящее время все известные методики анализа почвогрунта включают в себя стадию пробоподготовки, что, в свою очередь, неизбежно и значительно увеличивает время проведения анализа. В связи с этим актуальным является исследование и поиск новых подходов, связанных с возможностью проведения экомониторинга состояния почв в режиме реального времени без проведения пробоподготовки.

На сегодняшний день для проведения анализа состава разных образцов водных сред на наличие экотоксикантов используются разнообразные физико-химические, биофизические и биологические методы [1−27]. Первые дают оценку концентрации загрязнителей с высокой точностью и чувствительностью, но часто для проведения такого анализа требуется транспортировка образца в лабораторию, проведение многоэтапной 8 пробоподготовки и использование специального стационарного оборудования, что затрудняет получение информации о наличии вредных веществ в режиме реального времени и непосредственно «на месте» отбора проб (in situ). Кроме того, физико-химические методы не позволяют оценить именно негативное воздействие экотоксикантов на компоненты природных систем. В этой связи мониторинг состояния водных объектов с применением биологических методов, основанных на использовании биоиндикаторов (БИ) — живых организмов, позволяет давать быстрый специфический ответ на присутствие в среде экотоксикантов. Значительным преимуществом биоиндикаторов является также их способность реагировать на широкий спектр экотоксикантов различных классов, в то время как физико-химические методы анализа узкоспецифичны, и при наличии анализируемой системы сложного состава может потребоваться применение более, чем одной методики анализа. Среди широкого спектра биоиндикаторов эффективными для использования признаны клетки микроорганизмовмикроводорослей и фотобактерий [10, 14−17].

Фотосинтетический аппарат (ФСА) микроводорослей и сопряженные ферментативные системы чрезвычайно чувствительны к наличию в воде экотоксикантов. Изменения в состоянии ФСА определяются флуориметрически (по изменению квантового выхода флуоресценции хлорофилла) или амперометрически (по изменению содержания кислорода, образующегося при фотосинтезе в клетках) [10, 17, 28−35]. Использование БЭ на основе клеток фотобактерий основано на изменении интенсивности их биолюминесценции в присутствии экотоксикантов [36−47].

Основными ограничениями при использовании биочувствительных элементов (БЭ) на основе клеток микроорганизмов в аналитических целях являются: невысокая стабильность во времени аналитического сигнала, обеспечиваемого ими вследствие естественных метаболических процессов и невозможность применения свободных клеток для проведения анализа in situ в проточных системах. Подходом к преодолению этих ограничений является иммобилизация клеток микроорганизмов с использованием разнообразных носителей. Применение клеток в иммобилизованной форме позволяет организовать их использование в проточных системах и повысить стабильность аналитических характеристик клеток во времени [33, 41−47].

При этом, определяющими критериями эффективного функционирования разрабатываемых БЭ на основе иммобилизованных клеток микроорганизмов считаются: уровень выживаемости клеток в процессе иммобилизации, определяемый численностью жизнеспособных клеток в составе получаемого образца БЭуровень аналитического сигнала, обеспечиваемого иммобилизованными клетками (биолюминесцентного сигнала — у фотобактерийфотосинтетического сигналау клеток микроводорослей).

Наилучших значений этих критериев можно достичь путем подбора носителя, метода и условий иммобилизации клеток, а также оптимизации условий подготовки клеток к иммобилизации, включая накопление биомассы, подлежащей иммобилизации, в которой максимально сохранена целостность и метаболическая активность клеток.

Существует ряд носителей, применение которых возможно для разработки иммобилизованных форм микроводорослей и фотобактерий [36, 41−47], однако, все они имеют те или иные недостатки. Так, в результате иммобилизации в некоторых микроводорослях ФСА претерпевает необратимые изменения, также отдельные клетки не способны функционировать при их обездвиживании в матрице носителя [47]. В этой связи носитель, должен сохранять для клетки определенную степень свободы перемещения, например, в объеме макропор матрицы, применяемой для иммобилизации. Кроме того, очевидно, что носитель должен быть механически стабилен в условиях водной проточной среды и не должен подвергаться химической или биохимической деградации, а также оказывать негативные эффекты на аналитический сигнал самих клеток при проведении анализа экотоксикантов.

Разработка новых БЭ, подбор носителей для иммобилизации с целью достижения высокой эффективности функционирования клеток микроорганизмов являются актуальными как для биотехнологии получения оптимальных составов БЭ, так и для экологической биофизики, устанавливающей общие закономерности влияния физико-химических условий протекания процесса на аналитические и кинетические характеристики иммобилизованных клеток при определении экотоксикантов.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Разработан новый способ получения биочувствительных элементов (БЭ) в виде иммобилизованных в криогель поливинилового спирта (Г1ВС) клеток микроводорослей Chlorella sp. и Thalassiosira weissflogii для анализа присутствия экотоксикантов в проточных водных системах.

Полученные образцы БЭ обладают стабильностью получаемых операционных характеристик, в том числе при высоких скоростях протока (до 360 мл/ч) при детекции ионов тяжелых металлов (Zn2+, Hg2+, Cu2+) и гербицидов (атразина, диурона, параквата) как в пресноводных, так и в морских водных проточных средах.

Установлено, что в сравнении с известными аналогами разработанные БЭ в виде иммобилизованных клеток микроводорослей характеризуются высокими аналитическими характеристиками для детекции представительных образцов экотоксикантов в количествах ниже величины ПДК.

2. Разработан способ получения нового биочувствительного элемента в виде иммобилизованных в криогель ПВС клеток фотобактерий Photobacterium phosphoreum для определения присутствия экотоксикантов в стационарных и проточных системах, а также для скрининга и оценки токсичности новых органических веществ. Полученный БЭ обладает расширенным диапазоном температур эффективного функционирования (621°С) в сравнении с суспензионными клетками (6−15 °С), длительно сохраняющие свои основные операционные характеристики в протоке без экотоксикантов и обеспечивает определение экотоксикантов (ионов тяжелых металлов (Zn2+, Со2+, Си2+), фосфорорганических соединений (кумафоса, хлорпирифоса, малатиона, метилфосфоновой кислоты) и производных фенола (2,6-диметилфенола, пентахлорфенола, 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты)) в водных проточных средах в концентрациях значительно ниже величин ПДК этих соединений.

3. Впервые установлен факт смещения пика интенсивности биолюминесценции иммобилизованных в криогель ПВС исследованных штаммов клеток фотобактерий в концентрациях 0,1 — 10% на 5 — 7 нм в сторону более коротких длин волн по сравнению со свободными клетками.

4. Впервые при использовании иммобилизованных в криогель ПВС клеток фотобактерий для детекции экотоксикантов определены кинетические параметры (константы скорости биохимической реакции клеток фотобактерий с экотоксикантами, удельное количество активных единиц различных классов экотоксикантов, приводящее к тушению биолюминесценции одной клетки в условиях проточной системы). Показано, что скорость протока в интервале 45 — 180 мл/ч не влияет на удельное количество активных единиц экотоксикантов, приводящее к тушению биолюминесценции клеток фотобактерий.

5. На основе применения методов кибернетики предложено для описания биохимической реакции взаимодействия клеток фотобактерий с экотоксикантами использовать модель изотермического реактора идеального вытеснения. Получено кинетическое уравнение изменения концентрации активных клеток фотобактерий в ячейке в ходе биохимической реакции с экотоксикантом.

6. На основе разработанного БЭ в виде иммобилизованных клеток фотобактерий был предложен оригинальный подход к определению экотоксикантов в почвах, экстракцией «биодоступных» экотоксикантов из почвы с последующим анализом экотоксичности экстракта. Показано, что переход от проведения анализа экотоксичности экстракта в дискретном режиме к анализу в условиях проточной системы позволяет повысить чувствительность метода.

7. Показана эффективность использования БЭ на основе клеток фотобактерий для экомониторинга образцов проб воды, отобранных из реки Кура и прибрежных зон Каспийского моря, образцов почвы, отобранных в Московском регионе. Показана возможность определения присутствия в водной среде метилфосфоновой кислоты, являющейся продуктом разложения реакционных масс боевых отравляющих веществ.

Показать весь текст

Список литературы

  1. О. В., Воскобойников Г. М. Влияние нефти и нефтепродуктов на морфофункциональные особенности морских макроводорослей // Биол. Моря. 2006. Т. 32 (4), с. 241−248.
  2. С. Питание в атомном веке: Как уберечь себя от малых доз радиации // Минск: Из-во «Беларусь». 1991. 302 с.
  3. О. П. Измайлова Д. Н. Болотин O.A. Использование модифицированных сорбентов для удаления трех и пятивалентных ионов мышьяка из водных растворов // Bul.Inst. Geo? zica ?i Geologie al A§ M. 2006. № 1, с. 118−126.
  4. T.B. Химический мониторинг окружающей среды. Монография // Астрахань: Изд-во Астрах, гос. пед. ун-та. 2002. 210с.
  5. В. Н., Хамитов Р. 3., Будников Г. К. Эколого-аналитический мониторинг суперэкотоксикантов // Москва: Химия. 1996. 320 с.
  6. Ю. С. Экологическая аналитическая химия // Москва: М. 2000. 432 с.
  7. Е. М., Николаев А. Н., Жильникова Н. А. Очистка сточных вод от биогенных элементов // Экология производства. 2008. № 4, с. 6−9.
  8. Е. М., Николаев А. Н., Жильникова Н. А., Большаков Н. Ю. Методы очистки городских сточных вод от биогенных элементов // Сантехника, отопление, кондиционирование, 2006, № 8 (электронная версия журнала).
  9. С. С., Медведева J1. А., Анисимова О. В. Экологические и географические характеристики водорослей-индикаторов. Водоросли-индикаторы в оценке качества окружающей среды // Москва: ВНИИ Природы. 2000. Ч. 2, 150 с.
  10. Ф. Б., Захарова Е. А. Водоросли как индикатор загрязненности территории предприятия // Экология и промышленность России. 2002. № 6, с. 26−28.
  11. М., Воробьев А., Пашков Е., Филатов М., Мищенко И., Багранова Г. Лазерная флуоресцентная диагностика в медицине, пищевой промышленности, экологии // Электроника: наука, технология, бизнес. 2003. № 3, с. 54−60.
  12. Sherma J. Pesticide residue analysis (1999−2000): a review // J. Anal. Chem. Int. 2001. V. 8(5), p. 1303−1312.
  13. Бюллетень состояния загрязнения окружающей среды московского региона за 2011 г // URL: http://ecomos.ru/kadr22/sostoianieZagrOSgod.asp (дата обращения 15.05.2012).
  14. Zhirnov V. V., Cavin III R. К. Chapter 4 Sensors at the micro-scale. Microsystems for Bioelectronics // UK: Oxford. 2011. p. 91−121.
  15. Ron E. Z. Biosensing environmental pollution // Cur. Opin. Biotechnol. 2007. V. 18, p. 252−256.
  16. Rodriguez-Mozaz S., Lopez de Aida M. J., Barcelo D. Biosensors as useful tools for environmental analysis and monitoring II Anal. Bioanal. Chem. 2006. V. 386, p. 1025−1041.
  17. А. Б. Биофизические методы в экологическом мониторинге // Соросовский обр. журн. 2000. Т. 6 (4), с.7−13.
  18. О., Файзуллаев О. О. Определение ионов тяжелых металлов в объектах окружающей среды // Горный вестник Узбекистана. 2005. № 3, с. 109−110.
  19. Э. Д., Ревельский И. А., Ревельский А. И. Идентификация фенола и его производных методом ГХ-МС-МС // Вестн. Мое. Ун. Сер. 2. Химия. 2005. Т. 46 (6), с. 388−391.
  20. Orellana G., Cano-Raya С., Lopez-Gejo J., Santos A.R. 3.10 Online Monitoring Sensors// Treatise on Water Science. 2011. V. 3, p. 221−261.
  21. Xu T., Close D. M., Sayler G. S., Ripp S. Genetically modified whole-cell bioreporters for environmental assessment // Ecol. Indicat. 2012. D01:10.1016/j.ecolind.2012.01.020.
  22. Su L., Jia W., Houb C., Lei Y. Microbial biosensors: A review // Biosens. Bioelectron. 2011. V. 26, (5), p. 1788−1799.
  23. Durrieu C., Guedri H., Fremion F., Volatier L. Unicellular algae used as biosensors for chemical detection in Mediterranean lagoon and coastal waters // Res. Microbiol. 2011. V. 162 (9), p. 908−914.
  24. Brayner R., Coute A., Livage J., Perrette C., Sicard C. Micro-algal biosensors // Anal. Bioanal. Chem. 2011. V. 401 (2), p. 581−597.
  25. Trojanowicz M. Main Concepts of Chemical and Biological Sensing // Comb. Meth. Chemi. Biol. 5era., DOI: 10.1007/978−0-387−73 713−3 2.
  26. Farre' M., Kantiani L., Perez S., Barcelo D. Sensors and biosensors in support of EU Directives // Trends Anal. Chem. 2009. V. 28 (2), p. 170 185.
  27. Nakamura H., Shimomura-Shimizu M., Karube I. Development of Microbial Sensors and Their Application II Adv. Biochem. Engin. Biotechnol. 2008. V. 109, p. 351−394.
  28. Schreiber U., Mueller R., Escher В. I., Bengtson Nash S. M., Mueller J. F. Rapid exposure assessement of PSII herbicides in surface water using a novel chlorophyll a fluorescence imaging assay // Sci. Total Environ. 2008. V.401, p. 51−59.
  29. Ling Shing W., Surif S., Heng L. Y. Toxicity Biosensor for the evaluation of cadmium toxicity based on photosynthetic behavior of cyanobacteria Anabena torulosa II Asian J. Biochem. 2008. V.3(3), p. 162−168.
  30. Measuring indigenous photosynthetic organisms to detect chemical warfare agents in water//Патент США № 6 954 857, заявл. 17.06.2002, опубл. 11.10.2005.
  31. Singh J., Mittal S. K. Chlorella sp. based biosensor for selective determination of mercury in presence of silver ions // Sens, and Act. B: Chemical. 2012. V. 165 (1), p. 48−52.
  32. Abdel-Raoufa N., Al-Homaidanb A. A., Ibraheem I.B.M. Microalgae and wastewater treatment // Saudi J. Biol. Sci. 2012. V. 19 (3), p. 257−275.
  33. Girotti S., Ferri E. N., Fumo M. G., Maiolini E. Monitoring of environmental pollutants by bioluminescent bacteria // Anal. Chim. Acta. 2008. V. 608, p.2−29.
  34. Ma J., Lin F., Zhang R., Yu W., Lu N. Differential sensitivity of two green algae, Scenedesmus quadricauda and Chlorella vulgaris, to 14 pesticide adjuvants // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2004. V. 58, p. 61−67.
  35. Chun U-H., Simonova N., Chen Y., Britz M. L. Continuous pollution monitoring using Photobacterium phosphoreum II Res. Conserv. Recycl. 1996. V. 18, p. 25−40.
  36. Kim S. K. Lee B. S., Lee J. G., Seo H. G., Kim E. K. Continuous water toxicity monitoring using immobilized Photobacterium phosphoreum II Biotechnol. Bioproc. Eng. 2003. 8, p. 147−150.
  37. Kuncova G., Pazlarov J., Hlavata A., Ripp S., Sayler G. S. Bioluminescent bioreporter Pseudomonas putida TVA8 as a detector of water pollution. Operational conditions and selectivity of free cells sensor // Ecol. Indicat. 2011. V. 11 (3), p. 882−887.
  38. Parvez S., Venkataraman C., Mukherji S. A review on advantages of implementing luminescence inhibition test (Vibrio fischeri) for acute toxicity prediction of chemicals // Environ. Int. 2006. V. 32, p. 265 268.
  39. Kudryasheva N. S. Bioluminescence and exogenous compounds: Physico-chemical basis for bioluminescent assay II J. Photochem. Photobiol. B: Biology. 2006. V. 83, p. 77−86.
  40. Yin J., Xiao-zhou L. I., Zhou C., Zhang Y. Luminescent bacterial sensors made from immobilized films of Photobacterium phosphoreum II Chem. Res. Chinese U. 2005. V.21(l), p. 44−47.
  41. Toxicity assay using PVA-immobilized luminescent bacteria // Междунар. патент WO/2001/32 911, заявл. 1.11.2000, опубл. 10.05.2001.
  42. Nedovic V., Willaert R. Applications of cell immobilization biotechnology // Foe. biotechnol. 2005. V.8B, 573p.
  43. Nedovic V., Willaert R. Fundamentals of cell immobilisation biotechnology // Foe. Biotechnol. 2004. V.8A, 550p.
  44. Mallick N. Immobilization of Microalgae Immobilization of Enzymes and Cells // Methods Biothechnol. 2006. V.22, p. 373−391.
  45. Moreno-Garrido I. Microalgae immobilization: Current techniques and uses // Biores. Technol. 2008. V. 99, p. 3949−3964.
  46. Mohammed A. S., Kapri A., Goel R. Heavy metal pollution: source, impact, and remedies // Environ. Pollut. 2011. V. 20, p. 1−28.
  47. Tsybulskii I. E., Sazykina M. A. New biosensors for assessment of environmental toxicity based on marine luminescent bacteria // Appl. Biochem. Microbiol. 2010. V. 46 (5), p. 505−510.
  48. Gonecalves C., Alpendurada M. F. Assessment of pesticide contamination in soil samples from an intensive horticulture area, using ultrasonic extraction and gas chromatography-mass spectrometry // Talanta 2005. V. 65, p. 1179−1189.
  49. Lambropoulou D. A., Albanis T. A. Liquid-phase micro-extraction techniques in pesticide residue analysis // J. Biochem. Biophys. Meth. 2007. V. 70, p. 195−228.
  50. Chen W., Li L., Gan N., Song L. Optimization of an effective extraction procedure for the analysis of microcystins in soils and lake sediments // Environ. Pollut. 2006. V. 143, p. 241−246.
  51. Turner B. L., Cade-Menun B. J., Condron L. M., Newman S. Extraction of soil organic phosphorus // Talanta. 2005 V. 66, p. 294−306.
  52. Andy Hong P. K., Nakra S. Rapid extraction of sediment contaminants by pressure cycles // Chemosph. 2009. V. 74, p. 1360−1366.
  53. Kaasalainen M, Yli-Halla M. Use of sequential extraction to assess metal partitioning in soils II Environ. Pollut. 2003. V. 126, p. 225−233.
  54. Petanen T., Romantschuk M. Toxicity and bioavailability to bacteria of particle-associated arsenite and mercury // Chemosph. 2003. V. 50, p. 409-^113.
  55. Frische T., Hoper H. Soil microbial parameters and luminescent bacteria assays as indicators for in situ bioremediation of TNT-contaminated soils // Chemosph. 2003. V. 50, p. 415127.
  56. Ivask A., Virta M., Kahru A. Construction and use of specific luminescent recombinant bacterial sensors for the assessment of bioavailable fraction of cadmium, zinc, mercury and chromium in the soil // Soil Biol. Biochem. 2002. V. 34, p. 1439−1447.
  57. Skrbic В., Durisicr-Mladenovic N. Principal component analysis for soil contamination with organochlorine compounds // Chemosph. 2007. V. 68, p. 2144−2152.
  58. Hynninen A., Virta M. Whole-cell bioreporters for the detection of bioavailable metals // Adv Biochem Engin/Biotechnol, DOI: 10.1007/1 020 099.
  59. Охрана природы. Почвы. Классификация химических веществ для контроля загрязнения: ГОСТ 17.4.1.02−83. Введен 01.01.1985.
  60. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в почве. Гигиенические нормативы: ГН 2.1.7.2041−6. Введен 1.04.2006.
  61. Вода питьевая. Общие требования к организации и методам контроля качества: ГОСТ Р 51 232−98. Введен 1.07.1999.
  62. Вода питьевая. Методы определения содержания свинца, цинка, серебра: ГОСТ 18 293–72. Введен 01.01.1974.
  63. Вода питьевая. Методы определения массовой концентрации меди: ГОСТ 4388–72. Введен 01.01.1974.
  64. Мака К. W., Yanaseb H., Renneberga R. Cyanide fishing and cyanide detection in coral reef fish using chemical tests and biosensors // Biosens. Bioelectron. 2005. V. 20, p. 25 812 593.
  65. Нефть. Определение углеводородов C1-C6 методом газовой хроматографии: ГОСТ 13 379–82. Введен 01.07.1983.
  66. Vedrine С., Leclerc J-C., Durrieu С., Tran-Minh С. Optical whole-cell biosensor using Chlorella vulgaris designed for monitoring herbicides // Biosens. Bioelectron. 2008 V. 181, p. 457−463.
  67. Ivanova I., Groudeva V. Use of Selenastrum capricornutum growth inhibition test for testing toxicity of metal ions in soil and water // Biotechnol. Equipm. 2006. V. 20 (1), p. 179 183.
  68. Durrieu C., Tran-Minh J., Chovelon M., Barthet L., Chouteau C., Vedrine C., Algal biosensors for aquatic ecosystems monitoring II J. Appl. Phys. 2006. V.36 (11), p.205−209.
  69. Nguyen-Ngoc H., Tran-Minh С. Fluorescent biosensor using whole cells in an inorganic translucent matrix II Anal ChimActa. 2007. V. 583,1. 1, p. 161−165.
  70. Senger, H., Frickel-Faulstich, B. The regulation of electron flow in synchronized cultures of green algae // In: Avron, M. (Ed.), Proceedings of the Third International Congress on Photosynthesis. Elsevier, Rehovot, Israel. 1974. p. 715- 727.
  71. Naessens M., Leclerc J. C., Tran-Minh C. Fiber optic biosensor using Chlorella vulgaris for determination of toxic compounds // Ecotoxicol. Environ. Safe. 2000. V. 46, p. 181
  72. Method of detecting photosynthesis inhibition // Патент США № 7 333 195, заявл. 25.06.2002, опубл. 18.02.2008.
  73. Perrona М-С., Qiub В., Boucherc N., Bellemarec F., Juneau P. Use of chlorophyll a fluorescence to detect the effect of microcystins on photosynthesis and photosystem II energy fluxes of green algae // Toxicon. 2012. V. 59 (5), p. 567−577.
  74. Rashkova G. D., Dobrikovaa A. G., Pounevab I. D., Misrac A. N., Apostolova E. L. Sensitivity of Chlorella vulgaris to herbicides. Possibility of using it as a biological receptor in biosensors // Sens, and Act. B: Chemical. 2012. V.161 (1), p. 151−155.
  75. Krejci J., Ondruch V., Maly J., Stofik M., Krejcova D., Vranova H. High sensitivity biosensor measurement based on synchronous detection // J. Photochem. Photobiol. B: Biology. 2011. V. 102 (3), p. 192−199.
  76. Я., Рём К.-Г. Наглядная биохимия // Москва: Мир. 2000, 469 е.
  77. Rocchetta I., Ktipper Н. Chromium- and copper-induced inhibition of photosynthesis in Euglena gracilis analysed on the single-cell level by fluorescence kinetic microscopy // New Phytolog. 2009. V. 181, p. 405120.
  78. Faller P., Kienzler K., Krieger-Liszkay A. Mechanism of Cd2+ toxicity: Cd2+ inhibits photoactivation of Photosystem II by competitive binding to the essential Ca2+ site // Biochim. Biophys. Acta. 2005. V. 1706, p. 158- 164.
  79. Baumann H. A., Morrison L., Stengel D. B. Metal accumulation and toxicity measured by РАМ—Chlorophyll fluorescence in seven species of marine macroalgae // Ecotoxicol. Environ. Safe. 2009. V. 72, p. 1063−1075.
  80. Способ флуориметрического определения параметров фотосинтеза фотоавтотрофных организмов, устройство для его осуществления и измерительная камера // Патент РФ № 2 354 958, заявл. 13.09.2006, опубл. 20.03.2008.
  81. Burdin, К. S., Bird, К. Т., Heavy metal accumulation by carrageenan and agar producing algae // Bot. Mar. 1994. V. 37, p. 467−470.
  82. Chen Y.-H. Immobilization of twelve bentic diatom species for long-term storage and feed for post-larval abalone Haliotis diversicolor II Aquacul. 2007. V. 263, p. 97−106.
  83. Gaudin P., Lebeau Т., Robert J.-M. Microbial cell immobilization for long-term storage of marine diatom Haslea ostreariall J. Appl. Phycol. 2006. V.18, p. 175−184.
  84. Gautier C., Livage J., Coadin Т., Lopes P. J., Sol-gel encapsulation extends diatom viability and reveals their silica dissolution capability // Chem. Comm. 2006.1. 44, p. 4611−4613.
  85. В., Nowack E. С. M., Melkonian M. The use of multiple-strain algal sensor chips for the detection and identification of volatile organic compounds // Biosens. Bioelectron. 2004. V.19, p. 1253−1260.
  86. Nguen-Ngoc H., Durrieu C., Tran-Minh C. Synchronous-scan fluorescence of algal cells for toxicity assessment of heavy metals and herbicides // Ecotoxicol. Environmen. Saf. 2008. V.24, p. 199−129.
  87. Pena-Vazques E., Maneiro E., Perez-Conde C., Moreno-Bondi M. C., Costas E. Microalgae fiber optic biosensors for herbicide monitoring using sol-gel technology // Biosens. Bioelectron. 2009. V. 24, p. 3538−3543.
  88. Tissue-based standoff biosensors for detecting chemical warfare agents // Патент США № 6 649 417, заявл. 27.03.2001, опубл. 17.11.2003.
  89. Rouillon R., Tocabens M., Carpentier R. A photoelectrochemical cell for detecting pollutant-induced effects on the activity of immobilized cyanobacterium Synechococcus sp. PCC 7942 II Enz. Microb. Technol. 1999. V.25(3−5), p. 230−235.
  90. Avramescu A., Rouillon R., Carpentier R. Potential for use of a cyanobacterium Synechocystis sp. immobilized in poly (vinylalcohol): application to the detection of pollulants IIBiotechnol. Techniq. 1999. V.13,p. 559−562.
  91. Ionescu R. E., Abu-Rabeah К., Cosnier S., Durrieu C., Chovelon J.-V., Marks R. S., Amperometric algal Chlorella vulgaris cell biosensors based on alginate and polypyrrole-alginate gels // Electroanal. 2006. N11, p. 1041−1046.
  92. Frense D, Muller A. Beckmann D. Detection of environmental pollutants using optical biosensor with immobilized algae cells // Sens. Act. B-Chem. 1998. V. 51, p. 256−260.
  93. Куц В.В., Аленина К. А., Сенько О. В., Ефременко Е. Н., Исмаилов А. Д. Биолюминесцентный мониторинг экотоксикантов (экологическая люминометрия) // Вода: химия и экология. 2011. № 10, с. 47−53.
  94. Lopez-Roldan R., Kazlauskaite L., Ribo J., Riva M. С., Gonzalez S., Cortina J. S. Evaluation of an automated luminescent bacteria assay for in situ aquatic toxicity determination // Sci. Total Environ. 2012. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2012.05.043.
  95. Gu M. B. Environmental Chemistry. Part VII. Environmental biosensors using bioluminescent bacteria // Springer Berlin Heidelberg. 2005. p. 691−698.
  96. Badr С. E., Tannous B. A. Bioluminescence imaging: progress and applications // Trends in Biotech. 2011. V.29 (12), p. 624−633.
  97. Karatani H., Konaka Т., Katsukawa Ch. Properties of the bimodal fluorescent protein produced by Photobacterium phosphoreum II Photochem. Photobiol. 2000. V. 71(2), p. 230−236.
  98. Waters С. M., Bassler B. L. Quorum sensing: cell-to-cell communication in bacteria И Annu. Rev. Cell. Dev. Biol. 2005. V. 21. p. 319−346.
  99. Куц В.В., Исмаилов А. Д. Физиологические и эмиссионные характеристики светящихся бактерий Photobacterium phosphoreum из белого моря // Микробиол. 2009 Т. 78 (5), с. 612−617.
  100. Nakamura Т., Matsuda К. Studies on Luciferase from Photobacterium phosphoreum I. Purification and physicochemical properties.//,/ Biochem. 1971. V. 70, p. 35−44.
  101. Chatwell L., Illarionova V., Illarionov B. Eisenreich W., Huber R., Skerra A., Bache A., Fischer M. Structure of lumazine protein, an optical transponder of luminescent bacteria II J. Mol. Biol. 2008. V. 382 (1), p. 44−55.
  102. А. Д. Светящиеся бактерии белого моря (физиологические и энергетические характеристики // Конференция, посвященная 70-летию Беломорской биологической станции им. Н. А. Перцова. 9−10 августа 2008. Доклад.
  103. Ismailov A. D., Pogosyan S. I., Mitrofanova Т. I., Egorov N. S., and Netrusov A. I. Bacterial Bioluminescence Inhibition by Chlorophenols // Appl. Biochem. Micrbiol. 1999. V. 36 (4), p. 469−473.
  104. Kudryasheva N. S. Mechanisms of the effect of xenobiotics on bacterial bioluminescence // Luminesc. 1999. V. 14, p. 199−200.
  105. Kouts V. V., Il’ina Yu. M., Ismailov A. D., Netrusov A. I. Inhibitory Effects of Phenolic Ecotoxicants on Photobacteria at Various pH Values // Appl. Biochem. Micrbiol. 2005. V. 41 (6), p. 640−646.
  106. В. С., Егоров Н. С. Мультиферментная модель бактериальной люциферазы // Биоорг. Хим. 1981. т. 7, № 11, с. 1605 1626.
  107. Rani L., Basnet В., Kumar A. Mercury toxicity // Encyclopedia of Environ. Heal.2011. V. 3, p. 705−712.
  108. Ren S., Frymier P. D. Kinetics of the toxicity of metals to luminescent bacteria // Adv. Environ. Res. 2003. V. 7, p. 537−547.
  109. Kahru A., Tomson K., Pall Т., Kulm I. Study of toxicity of pesticides using luminescent bacteria Photobacterium phosphoreum II Wat. Sci. Tec. 1996. V. 33 (6), p. 147−154.
  110. BRENDA The Comprehensive Enzyme Information System. EC 1.14.14.3 -alkanal monooxygenase (FMN) // URL: http://www.brenda-enzymes.info/php/resultflat.php4?ecno=l. 14.14.3 (дата обращения 07.04.2010)
  111. A. M., Абдурманова Э. Р., Черный П. В. Использование иммобилизованных люминесцентных бактерий при биотестировании // Экспериментально-теоретические вопросы. 2007. Т.10 (3), с.153−156.
  112. Makiguchi N., Arita М., Asai Y. Immobilization of a luminous bacterium and light intensity of luminous materials // J. Ferment. Technol. 1980. V.58 (1), p. 17−21.
  113. Makiguchi N., Akita M., Asai Y. Optimal conditions for frozen storage of immobilized luminous bacteria// J. Ferment. Technol. 1980. V.58 (4), p. 333−337.
  114. Sakaguchi Т., Morioka Y., Yamasaki M., Iwanaga J., Beppu K., Maeda H., Morita Y., Tamiya E. Rapid and onsite sensing system using luminous bacterial cells-immobilized chip II Biosens. Bioelectron. 2007. V.22, p. 1345−1350.
  115. Chun U-H., Kim J-I., Yoo S-O, Lee H-J., Immobilization of Photobacterium phosphoreum for monitoring of toxic substances // Biotechnol. Bioproc. 1997. V. 2, p. 141−149.
  116. Lee H. J., Villaume J., Cullen D. C., Kim В. C., Gu M. B. Monitoring and classification of PAH toxicity using an immobilized bioluminescent bacteria // Biosens. Bioelectron. 2003. V. 18, p. 571- 577.
  117. Gu M.B., Chang S.T. Soil biosensor for the detection of PAH toxicity using an immobilized recombinant bacterium and a biosurfactant // Biosen. Bioelectron. 2001. V. 16, p. 667−674.
  118. Ertesva, H., Valla, S. Biosynthesis and applications of alginates // Polym. Degrad. Stabil. 1998. V. 59, p. 85−91.
  119. Senko О. V., Spiricheva О. V., Lozinsky V. I., Efremenko E. N. Immobilized biocatalyst for the treatment of fat-containing wastewaters of food industry enterprises // Catal. in Industry. 2007. № 1, p.55−61.
  120. Moreira S. M., Guilhermino, L., Ribeiro, R. Immobilization of the marine microalga Phaeodactylum tricornutum in alginate for in situ experiments: bead stability and suitability // Enz. Microb. Technol. 2006. V. 38, p. 135−141.
  121. А.П., Райнина Е. И., Лозинский В. И., Спасов С. Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов // Москва: Изд-во Моск. Ун-та. 1994. 288 с.
  122. Nguyen-Ngoc Н., Tran-Minh С. Sol-gel process for vegetal cell encapsulation // Mat. Sci. Eng.: C. 2007. V. 27 (4), p. 607−611.
  123. Hashimoto S., Furukawa K., Hama H. Immobilization of activated sludge and its treatment capability II J. Jap. Sew. Works Ass. 1986. V. 23 (1), p. 16 22.
  124. В.Г., Маргулис А. Б., Дамшкалн Л. Г., Лозинский В. И., Колпаков А. И., Ильинская О. Н. Сорбция микроорганизмов крупнопористыми агарозными криогелями, содержащими привитые алифатические цепи различной длины. // Микробиол. 2009. № 78 (5), с. 667−673.
  125. Buenger D., Topuz F., Groll J. Hydrogels in sensing applications // Progr. in Polymer Sci. 2012, D01:10.1016/j.progpolymsci.2012.09.001.
  126. В.И. Криогели на основе природных и синтетических полимеров: получение, свойства и области применения. // Yen. Химии. 2002. Т 71 (6), с. 559−585.
  127. В.И. Новое семейство макропористых и сверхмакропористых материалов биотехнологического назначения полимерные криогели. // Изв. РАН, Сер. хим. 2008. № 5, с. 996−1013.
  128. Kokufuta E., Jinbo E. A hydrogel capable of facilitating polymer diffusion through the gel porosity and its application in enzyme immobilization // Macromol. 1992. V.25, p. 3549 -3552.
  129. Urushizaki F., Yamaguchi Н., Nakamura К., Numajiri S. Swelling and mechanical properties of poly (vinyl alcohol) hydrogels // Int. J. Pharm. 1990. V. 58 (2), p. 135 142.
  130. Trieu H. H., Qutubuddin S. Poly (vinyl alcohol) hydrogels. 1. Microscopic structure by freeze-etching and critical point drying techniques // Colloid Pol. Sci. 1994. V. 272, p. 301 -309.
  131. Lozinsky V. I., Plieva F. M. Poly (vinyl alcohol) cryogels employed as matrices for cell immobilization. 3. Overview of recent research and developments // Enzyme Microb. Technol. 1998. V. 23 (3 4), p. 227 — 242.
  132. Plieva F. M., Galaev I. Yu., Noppe W., Mattiasson В., Cryogel applications in microbiology // Trends Microbiol. 2008. V.16 (11), p. 543−551.
  133. Способ получения биокатализатора и биокатализатор для детоксикации фосфорорганических нейротоксичных соединений в проточных системах // Патент РФ № 2 315 103, заявл. 21.06.2006, опубл. 20.01.2008.
  134. Efremenko Е., Lyagin I., Gudkov D., Varfolomeyev S. Immobilized biocatalysts for detoxification of neurotoxic organophosphorus compounds // Biocatal. Biotrans. 2007. V. 25(2−4), p. 359−364.
  135. Savina I. N., Mattiasson В., Galaev I. Yu. Graft polymerization of acrylic acid onto macroporous polyacrylamide gel (cryogel) initiated by potassium diperiodatocuprate // Polymer. 2005. V. 46, p. 9596−9603.
  136. Guillard R. R. L., Ryther J. H. Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea Cleve II Can. J. Microbiol. 1962. V.8, p. 229−239
  137. Prat S. Algarum, Hepaticarum, Muscorumque in culturis collectio // Prague, Preslia. 1948. XXII-XXIII, p.1−12.
  138. Г. И., Филаретов Г. Ф. Планирование эксперимента // Минск: изд-воБГУ. 1982. 302 с.
  139. Hubalek Z. Protectants used in the cryopreservation of microorganisms // Cryobiol. 2003. V. 46, p. 205−229.
  140. E. H., Татаринова H. Ю. Влияние длительного хранения клеток микроорганизмов, иммобилизованных в криогель поливинилового спирта, на их выживаемость и биосинтез целевых метаболитов // Микробиол. 2007. Т. 76 (3), с.383−389.
  141. Mortain-Bertrand A., Etchart F., Boucaud M.-Th. A method for the cryoconservation of Dunaliella salina (CHLOROPHYCEAE): effect of glycerol and cold adaptation // J. Phycol. 1996. V. 32, p.346−352.
  142. Jl. H., Габель Б. В., Фалькович Т. Н., Семененко В. Е. Фотобиореакторы закрытого типа для культивирования микроводорослей // Физиол. раст. 1996. Т. 43(1), с. 149- 155.
  143. Mouget J.-L., Dakhama A., Lavoie М. С., de la Noue J. Algal growth enhancement by bacteria: is consumption of photosynthetic oxygen involved? // FEMS Microb. Ecol. 1995. V. 18 (1), p. 35−44.
  144. A. K., Bull А. Т., Slater J. K. Microbial interaction and communities. Vol. 1. The interaction of algae and bacteria // New York: Academic Press. 1982, p. 189−247.
  145. Quinn P. J. The fluidity of cell membranes and its regulation. // Porg. Biophys. Mol. Biol. 1981. V. 38, p. 1−104.
  146. Quinn, P.J. Effects of temperature on cell membranes // Symp. Soc. Exp. Biol. 1988. 42, p. 237−258.
  147. Costello J. C. Chisholm S. W. The influence of cell size on the growth rate of Thalassiosira weissflogii II J. Plankt. Res. 1981. V. 3 (3), p. 415−419.
  148. Ribo J. M., Kaiser K. L. E. Photobacterium phosphoreum toxicity bioassay. I. Test procedures and applications // Environ. Toxicol. 1987. V. 2 (3), p. 305−323.
  149. Биосенсор на основе клеток микроводорослей для определения тяжелых металлов и гербицидов в водных системах // Патент РФ на изобретение № 2 426 779, заявл. 13.11.2009, опубл. 20.08.2011.
  150. Mosquito Control Mosquito Control US EPA // URL: http://www.epa.gov/mosquitocontrol/ (дата обращения 13.03.2011)
  151. Edwards J. W., Lee S. G., Heath L. M., Pisaniello D. L. Worker exposure and a risk assessment of malathion and fenthion used in the control of Mediterranean fruit fly in South Australia // Environ. Res. 2007. V. 103 (1). p. 3845.
  152. Т. Т., Коровкин Б. Ф. Биологическая химия: Учебник // М.: Медицина. 1990. 528 с.
  153. И. А. Влияние иммобилизации в полисахаридные гранулы на функциональные свойства клеток животных. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук // Санкт-Петербург. 1993,18 с.
  154. Е. Е. Индуцированные полисахаридами изменения ионного транспорта через плазмалемму иммобилизованных растительных клеток. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук // Минск. 1998, 92 с.
  155. В. В. Методы кибернетики в химии и химической технологии // Москва: Москва. 1971. 492 с.
  156. В. В., Перлов В. Л., Мешалкин В. П. Принципы математического моделирования химико-технологических систем // Москва: Химия. 1974. 344 с.
  157. В. В., Дорохов И. Н., Липатов Л. Н. Системный анализ процессов химической технологии. Статистические методы идентификации процессов химической технологии // Москва: Наука. 1982. 334с.
  158. Д. Г., Эмануэль Н. М. Курс химической кинетики. 4-е издание // Москва: Высшая школа. 1984. 463 с.
  159. Г. С., Быков В. И., Горбань А. Н. Кинетические модели каталитических реакций // Новосибирск: Наука. 1983. 255 с.
  160. X. Экологическая катастрофа в Московской области // URL: http://the-day-x.i'u/ekologicheskaya-katastrofa-v-moskovskoi-oblasti.html (дата обращения 06.07.2012)
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!