Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Разработка диагностических тест-систем для инфекционной бурсальной болезни на основе иммуноферментного анализа

Диссертация: Разработка диагностических тест-систем для инфекционной бурсальной болезни на основе иммуноферментного анализа
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Диагноз на ИББ устанавливают на основании клинических, патологоанатомических и эпизоотических данных, а также вирусологических и серологических исследований. Серологическая диагностика ИББ является наиболее распространенной, как в аспекте ретроспективного отслеживания возможных вспышек заболеваний, так и оценки эффективности специфической профилактики. Важным и актуальным вопросом для диагностики… Читать ещё >

Разработка диагностических тест-систем для инфекционной бурсальной болезни на основе иммуноферментного анализа (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общие сведения об инфекционной бурсальной болезни
    • 1. 2. Диагностика инфекционной бурсальной болезни
    • 1. 3. Иммуноферментный анализ в диагностике ИББ
      • 1. 3. 1. Непрямой вариант ИФА
      • 1. 3. 2. Сэндвич-вариант

Актуальность темы

Инфекционная бурсальная болезнь (ИББ) -широко распространенное высококонтагиозное заболевание, к которому в возрасте до 22 недель восприимчив молодняк всех пород [16, 41, 82]. Возбудителем ИББ является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству Birnaviridae роду Avibirnavirus [30, 100]. Инфекция, в основном, передается алиментарным путем. Вирус является лимфоцитотропным и репродуцируется в р-лимфоцитах и макрофагах [36, 68, 97, 119], поэтому наиболее выраженные патологические изменения происходят в фабрициевой сумке [41], что проводит к снижению ее главной функциивоспроизводству иммунокомпетентных клеток и, в итоге, выражается в иммунодепрессии птиц. Заболевание охватывает практически все поголовье, летальность может достигать до 90% [37, 40], при этом переболевшие птицы приобретают повышенную восприимчивость к большинству инфекционных болезней вирусной и бактериальной этиологии [24, 42, 56, 123, 129, 130, 133, 160].

С середины 70-х годов наличие ИББ было зарегистрировано практически во всех экономически развитых странах мира. В настоящее время, в связи с широкими мероприятиями по ликвидации и специфической профилактики, ИББ не проявляется в виде эпизоотий [62, 152, 158]. В последние годы, в России вакцинация против инфекционной бурсальной болезни осуществляется практически во всех крупных птицеводческих хозяйствах.

Диагноз на ИББ устанавливают на основании клинических, патологоанатомических и эпизоотических данных, а также вирусологических и серологических исследований. Серологическая диагностика ИББ является наиболее распространенной, как в аспекте ретроспективного отслеживания возможных вспышек заболеваний, так и оценки эффективности специфической профилактики. Важным и актуальным вопросом для диагностики ИББ является выявление вируса в организме птиц. Кроме того большой интерес представляет определение концентрации антигена в вирусном сырье, используемом для производства живых и инактивированных вакцин против ИББ.

Большинство методов, позволяющих контролировать уровень антител к вирусу ИББ в сыворотках крови кур, а также присутствие вируса или его антигена в биологических материалах, основано на имуноферментном анализе (ИФА) [33, 54, 98, 101, 143, 146, 139, 155]. Достоинствами ИФА являются: высокая чувствительность и специфичность, возможность проведения масштабных исследований в полевых условиях, оперативность проведения анализов, небольшие объемы исследуемых проб и возможность автоматизации практически всех стадий выполнения реакции, включая регистрацию и обработку получаемых результатов.

Для выявления антител и определения их концентрации в сыворотках крови получил распространение непрямой вариант ИФА, в котором исследуемый образец взаимодействует с антигеном, иммобилизованным на планшете, далее антитела, в составе иммунных комплексов реагируют с конъюгатом. В свою очередь, для обнаружения и оценки титра антигена в биологических материалах широко применяют так называемый непрямой сэндвич-вариант, где исследуемый антиген вначале улавливается специфическими антителами, иммобилизованными на планшете, а затем выявляется детекторными антителами, с которыми взаимодействует конъюгат [14].

На основе ИФА разработаны и описаны различные тест-системы [38, 57, 86, 91, 109, 118, 140, 144, 150, 164] или выпускаются готовые коммерческие диагностические наборы с прилагаемыми инструкциями [77, 78, 79]. При этом все известные наборы, позволяющие проводить количественный анализ, являются импортными, что определяет высокую себестоимость соответствующих исследований. Важно отметить, что в литературе не обнаружено публикаций, в которых дано описание подготовки используемых компонентов, выбора их концентраций, условий проведения анализа и обоснования количественных показателей реакции.

Учитывая очевидную перспективность методов ИФА, создание отечественных тест-систем для выявления и оценки концентрации антител к вирусу ИББ в сыворотках крови птиц и соответствующего антигена в биологических материалах является, безусловно, актуальным.

Цели и задачи исследований. Главной целью исследований была разработка тест-систем на основе ИФА для выявления и определения титров антител к вирусу ИББ в сыворотках крови кур (непрямой вариант), а также для обнаружения и оценки титра антигена вируса ИББ в биологических материалах (сэндвич-вариант).

При разработке тест-системы, предназначенной для выявления и определения титров антител к вирусу ИББ, на основе непрямого варианта ИФА необходимо было решить следующие задачи:

— отработать методы получения антигена вируса ИББ, пригодного для ИФА с последующей иммобилизацией его на планшеты;

— определить оптимальные концентрации и условия взаимодействия компонентов реакции;

— установить величины пороговых показателей, разграничивающих специфическую (положительную) и неспецифическую (отрицательную) реакции и разработать способ опосредованного расчета титров антител при титровании проб в одном разведении;

— сопоставить результаты непрямого варианта ИФА и РДП, определить показатели коррелятивной связи и оценить относительную чувствительность данных тестов;

— с помощью разработанной тест-системы провести исследования напряженности материнского иммунитета у цыплят, а также поствакцинального иммунного ответа у птиц после применения живых и инактивированной вакцин против ИББ.

При разработке тест-системы для обнаружения и оценки титра антигена вируса ИББ в биологических материалах на основе сэндвич-варианта ИФА были поставлены следующие задачи:

— определить оптимальные концентрации взаимодействующих компонентов и условия проведения анализа;

— установить пороговые величины показателей реакции и разработать процедуры расчета титра антигена;

— сопоставить титры антигена, установленные в ИФА, РДП и титрами инфекционного вируса, определить их корреляцию и относительную чувствительность тестов;

— с помощью разработанного сэндвич-варианта провести исследования содержания антигена в органах птиц и в сырье для производства инактивированных вакцин против ИББ.

Научная новизна. Впервые разработаны отечественные тест-системы на основе непрямого варианта ИФА для выявления и оценки концентрации антител к вирусу ИББ при тестировании сывороток в одном разведении. При этом отработаны методы получения антигена вируса ИББ, пригодного для ИФА, с последующей иммобилизацией его на планшет, определены оптимальные концентрации компонентов реакции и условия их взаимодействия, а также установлены пороговые показатели, разграничивающие специфическую и неспецифическую реакции, разработан способ опосредованного расчета титра антител при титровании проб в одном разведении.

Сопоставлены результаты непрямого варианта ИФА и РДП и установлена корреляция между титрами, полученными этими методами, а также проведена оценка относительной чувствительности этих тестов.

С помощью разработанной тест-системы проведено изучение напряженности материнского иммунитета у цыплят, а также поствакцинального иммунного ответа у птиц после применения живых и инактивированной вакцин против ИББ.

Впервые разработана отечественная тест-система для обнаружения и оценки титра антигена вируса ИББ в биологических материалах на основе сэндвич-варианта ИФА, при этом определены оптимальные концентрации взаимодействующих компонентов и условия проведения анализа, разработана процедура расчета титра антигена.

Проведено сопоставление титров антигена, установленных в ИФА с титрами, полученными в РДП и титрами инфекционного вируса, определена корреляция между показателями, полученными этими методами, и показана относительная чувствительность тестов.

Проведено определение содержания антигена в органах птиц и в вирусном сырье, используемом для производства инактивированных вакцин против ИББ.

Практическое значение работы. Полученные результаты научных исследований легли в основу 9 нормативных документов, методик, инструкций, указаний и рекомендаций по диагностике ИББ, которые одобрены ученым советом ВНИИЗЖ, утверждены директором института или Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России.

Тест-система, разработанная на основе непрямого варианта ИФА с субстратами ОФД и АБТС, в качестве официально зарегистрированных коммерческих диагностических наборов применяется для диагностики ИББ в различных регионах России и странах ближнего зарубежья.

Во ВНИИЗЖ диагностические наборы в период с 1997 до 2000 г. были использованы для исследования более 100 000 проб сывороток, присланных для анализа более чем из 500 птицеводческих хозяйств Российской Федерации и ближнего зарубежья. Было реализовано 1039 указанных диагностических наборов, при этом стоимость одного исследования, выполненного с помощью разработанных наборов примерно в 4 раза дешевле, чем с использованием импортных.

Тестсистема на основе непрямого сэндвичварианта ИФА применяется для оценки концентрации антигена в сырье, используемом для производства инактивированных вакцин против ИББ.

Основные положения, выносимые на защиту:

— тест-система, разработанная на основе непрямого варианта ИФА, для выявления и сценки титров антител к вирусу ИББ в сыворотках крови кур при тестировании проб в одном разведении, включающая обоснования: оптимальных концентраций, условий взаимодействия компонентов, пороговых показателей реакции и способ опосредованного расчета титра антител;

— результаты использования непрямого варианта ИФА для исследования материнского иммунитета у цыплят и поствакцинального иммунного ответа птиц после использования живой и инактивированной вакцин против ИББ;

— тест-система, разработанная на основе сэндвич-варианта ИФА для выявления и оценки титра антигена вируса ИББ в биологических материалах, — включающая обоснование оптимальных концентраций взаимодействующих компонентов, условий проведения анализа, установление пороговых показателей реакции и процедура расчета титра антигена;

— результаты использования сэндвич-варианта для оценки концентрации антигена вируса ИББ в органах птиц и сырье для производства инактивированных вакцин.

Апробация работы. Результаты исследований по теме диссертации доложены й обсуждены на заседаниях учёного совета ВНИИЗЖ в 1995;1999 годах, на Всероссийской научно-практической конференции «Вирусные болезни сельскохозяйственных животных» (Владимир, 1995 г.) — на научной конференции «Проблемы инфекционной патологии сельскохозяйственных животных», посвященной 100-летию открытия вируса ящура (Владимир, 1997 г.) — на научной конференции «Современные аспекты ветеринарной патологии животных», посвященной 40-летию ВНИИЗЖ (Владимир, 1998 г.) — на научной конференции «Производство и контроль медицинских и ветеринарных препаратов, опыт применения и реализация их в странах СНГ», посвященной 30-летию ФГУП ПЗБ (Вольгинский, Владимирской области, 1999 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 7 научных работ.

Объём и структура работы. Диссертация изложена на 127 страницах, включая приложения. Работа иллюстрирована 12 таблицами и 20 рисунками.

Список литературы

включает 164 источника.

Исследования по диссертационной работе выполнены в 1995;2000 гг. во Всероссийском научно-исследовательском институте защиты животных (ВНИИЗЖ, г. Владимир).

Автор выражает искреннюю благодарность к.в.н. A.B. Борисову, к.б.н. В. В. Дрыгину, к.б.н. Н. С. Мудрак, к.б.н. Г. М. Фалиной, к.б.н. В. Н. Кузнецову, Ю. В. Кузнецову, к.б.н. С. Н. Колосову, к.б.н. В. Ю. Кулакову, д.б.н. А. П. Пономарёву, Ю. В. Зинковскому, В. Н. Ирзе, М. В. Гирину, к.б.н. М. А. Волковой, H.H. Луговской, В. Н. Овсянниковой, — за практическую помощь в выполнении отдельных этапов работы.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

4. ВЫВОДЫ.

1. Разработана процедура получения эмбрионального антигена вируса ИББ, включающая этапы очистки, инактивации и концентрирования. Установлена оптимальная концентрация антигена и определены условия иммобилизации его на планшеты для проведения непрямого варианта ИФА.

2. На основе непрямого варианта ИФА с использованием хромогенных субстратов ОФД и АБТС разработана тест-система для выявления и оценки титра антител к вирусу ИББ в сыворотках крови кур при тестировании проб в одном разведении. Определены оптимальные концентрации и условия взаимодействия компонентов реакции. Установлены пороговые показатели, разграничивающие специфическую и неспецифическую реакции, предложены уравнения опосредованного вычисления титров при титровании проб в одном разведении, а также способ взаимного перерасчета их значений с тест-системой фирмы KPL.

3. Произведено сравнение величин титров антител, параллельно установленных в непрямом варианте ИФА и РДП. Коэффициент корреляции титров для ОФД составил 0,97, для АБТС 0,98. Значения титров, установленные в ИФА, превосходили аналогичные показатели в РДП более чем в 700 раз с субстратом ОФД и более чем в 500 раз с субстратом АБТС.

4. С использованием разработанной тест-системы ИФА исследован пассивный иммунитет у цыплят, полученных от вакцинированных несушек. Изучена динамика его снижения и соответственно породам принципиально показана возможность вычисления оценки периода полураспада материнских антител, которые для яичных пород составили 4,6 дня, для мясных 3,2 дня. Предложен способ расчета оптимальных сроков вакцинации.

5. Предложенный непрямой вариант ИФА позволил изучить динамику поствакцинального иммунного ответа птиц в ранние сроки после использования живой вакцины против ИББ из штамма «БГ» и продолжительность иммунной реакции после прививки инактивированной.

98 вакциной. Иммунный ответ птиц на живую вакцину зарегистрирован с 6-го дня и после активного роста стабилизировался к 12-му дню после вакцинации. Значения титров сывороточных антител после применения инактивированной вакцины были выше и сохранялись в течение всего периода яйценоскости.

6. На основе непрямого сэндвич-варианта ИФА разработана тест-система для выявления и оценки титра антигена вируса ИББ в биологических материалах. Определены оптимальные концентрации компонентов реакции и условия их взаимодействия. Установлен пороговый показатель, разграничивающий неспецифическую и специфическую реакции, и разработан порядок расчета величины титра антигена.

7. Произведено сравнение показателей титров антигена, установленных в ИФА, РДП и титров инфекционного вируса ИББ. Коэффициент корреляции с титрами в РДП составил 0,918, при этом их значения в сэндвич-варианте были в среднем в 1400 раз выше. Корреляция с титром ЭИД50 составила 0,914. Чувствительность предложенной тест-системы была в среднем около 4500.

ЭИД5о/мл.

8. Разработанная тест-система позволила изучить динамику накопления антигена вируса ИББ в фабрициевых сумках и селезенках цыплят, иммунизированных сухой вирусвакциной против ИББ из штамма «БГ», а также определить концентрацию указанного антигена в сырье для инактивированной вакцины против ИББ на разных стадиях ее производства.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Результаты проведенных исследований явились основой следующих нормативно-технических документов (ТУ, наставлений, инструкций, методик, указаний и рекомендаций) для внедрения в практику коммерческих наборов для диагностики ИББ:

1. Методика получения антигена вируса инфекционной бурсальной болезни для иммуноферментного анализа (утверждена директором ВНИИЗЖ 28.10.99 г);

2. Методические рекомендации по определению титра антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни в сыворотках крови кур в непрямом варианте иммуноферментного анализа способом одного разведения с использованием различных хромогенных субстратов (одобрены ученым советом и утверждены директором ВНИИЗЖ 28.10.99 г.);

3. Методические рекомендации по взаимному перерасчету показателей титра антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни, установленные в сыворотках крови кур средствами различных диагностических наборов ИФА (утверждены директором ВНИИЗЖ 28.10.99 г.);

4. Инструкция по изготовлению и контролю диагностикумов и наборов для определения антител против вируса инфекционной бурсальной болезни кур иммуноферментным методом (утверждена директором ВНИИЗЖ 06.12.99 г.);

5. Технические условия (ТУ 9388−028−495 527−00) на набор для определения антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни иммуноферментным методом (утверждены Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 28.02.00 г.);

6. Наставление по применению набора для определения антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни иммуноферментным методом (утверждено Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 28.02.00 г.);

7. Технические условия (ТУ 9388−020−495 527−00) на набор для определения антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни иммуноферментным методом при тестировании сывороток в одном разведении (утверждены Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 09.03.00 г.);

8. Временное наставление по применению набора для определения антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни иммуноферментным методом при тестировании сывороток в одном разведении № 13−7-2/1903 (утверждено департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 09.03.00 г.);

9. Методика выявления и оценки титра антигена вируса инфекционной бурсальной болезни в непрямом сэндвич-варианте ИФА (утверждена директором ВНИИЗЖ 11.04.00 г.).

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.C. Специфическая профилактика инфекционного бурсита кур // Ветеринария, — 1991, — № 3, — С. 36−40.
  2. A.C., Джавадов Э. Д., Леонтьева М. Н. Реакция непрямой гемаглютинации при инфекционном бурсите кур // Ветеринария. 1989. -№ 12. — С. 33−35.
  3. В.А., Гуркало А. Н., Дудниченко И. П. и др. Инфекционная бурсальная болезнь птиц в Одесской области // Инст. эксп. клин. вет. мед.: Инф. бюл, — Харьков, 1995.- С. 148.
  4. В.А., Севостьянов Г. А., Миркина J1.M. Электронно-микроскопическое исследование при болезни Гамборо // Ветеринария. -1985. № 1. — С. 38−39.
  5. Ю.Э. Супермутагены. М.: Мир, 1966, — С. 211.
  6. М.К. Методы математической статистики в географии. М.: Мысль, 1971, — С. 371.
  7. Вирусные болезни животных / Сюрин В. Н., Самуйленко А. Я., Соловьев Б. В., Фомина H.B. М.: ВНИТИБП, 1998, — С. 928.
  8. Вирусология. Методы. / Под ред. Мейхи В.- М.: Мир, 1988, — С. 183−184.
  9. М.А., Гуленкин В. М., Мудрак Н. С. Методическое руководство по определению титра антител при проведении непрямой реакции ИФА методом одного разведения (на примере ССЯ-76). Владимир: ВНИИЗЖ, 1998.
  10. A.C., Титов И. Н. Очистка, концентрирование и фракционирование вирусов животных. М.: Колос, 1971.- С. 86−96.
  11. Т.Р. Инактивация вирусов, продуцируемых в культурах клеток животных//Биотехнология клеток животных. М., 1989,-Т.2,-С.145−169.
  12. С.А., Шажко Ж. А., Мудрак Н. С., и др. Методические указания по выявлению и типированию вируса ящура в непрямом сэндвич-варианте иммуноферментного анализа. Владимир: ВНИИЗЖ, 1997.
  13. Ю.С., Федоров Г. П., Балабанов В. А. Течение инфекционного бурсита у цыплят-бройлеров в эксперименте // Ветеринария. 1988. — № 9. -С. 34−36.
  14. A.M., Осипов А. П., Дзантиев Б. Б., Гаврилова Е. М. Теория и практика иммуноферментного анализа. М.: Высшая школа, 1991, — С.77−100.
  15. В.П. Элементы математической обработки биологических экспериментов.-Л.: Ленинградский ветеринарный институт, 1975, — 48 с.
  16. Ф.С., Барышников С. А., Радчук Л. А. Ингибирующее действие вируса болезни Гамборо // Ветеринария,-1981.- № 3, — С. 36−37
  17. Мисюк Н С, Мастыкин А. С., Кузнецов Г. П. Корреляционно-регрессионный анализ. М.: Медицина, 1975. — 192 с.
  18. П.Х. Иммуноферментный анализ антител // Иммуноферментный анализ. М.: Мир, 1988, — С. 193−205.
  19. В.А. Вирусные вакцины. Киев: Урожай, 1993. — 368 с.
  20. Т.И. Методические основы биохимии вирусов,— М.: Медицина, 1973, — С. 152−252.
  21. Р.Г. Контроль и предупреждение инфекционного бурсита // Проспект фирмы «Интервет интернейшнл», Боксмеер, Голландия.
  22. Abdu P.A. Studies on the profile and relationship of maternal and vaccinal antibodies in the prevention of infectious bursal disease in chickens: M. Sc. Thesis, Ahmadu Belio University, Zaria, Nigeria, 1985.
  23. Allan W.N., Faragher J.T., Culler) G.A. Immunosuppression by the infectious bursal agent in chickens immunized against Newcastle disease // Vet. Rec.-1972, — Vol.90.- P. 511−512.
  24. Anderson W.I., Reid W.M., Lukert P.D., Fletcher O.J. Influence of infectious bursal disease on the development of immunity to Eimeria tenella // Avian Dis.-1977,-Vol. 21, — P.637−641.
  25. Angelov A., Lyupke V. Demonstration of precipitating antibody to avian infectious bursitis virus in yolk samples and its significance for immunoprophylaxis // Vet. Sbirka. 1985. — Vol. 83. — P. 28−30.
  26. Armstrong L.D., Tabel H., Riddel C. Subclinical infectious bursal disease in commercial broiler flocks in Saskatchewan // Can. J. Comp. Med. 1981. — Vol. 45. — P. 26−33.
  27. Auti M.N. Infectious bursal disease (Gumboro) and vaccination // Poultry Guige. 1987. — Vol. 24, № 11−12.- P. 217−219.
  28. Azad A.A., Jagadish M.N., Brown M.A., Hudson P.J. Deletion mapping and expression in Escherichia coli of the large genomic segment of a birnavirus // Virology.- 1987.-Vol.161.- P. 145−152.
  29. Baxendale W., Lutticken D. The results of field trials with an inactivated Gumboro vaccine // Dev. Biol. Stand. -1981. Vol.51. — P. 211−219.
  30. Becht H. infectious bursal disease virus // Current Topics in Microbiology and Immunology. 1980. — Vol. 90. — P. 107−121.
  31. Becht H., Muller H., Muller H.K. Comparative studies on structural and antigenic properties of two serotypes of infectious bursal disease virus // J. gen. Virol.-1988,-Vol.69.- P. 631−640.
  32. Benton W.J., Cover M.S., Rosenberger J.K. Studies on the transmission of the infectious bursal agent (IBA) of chikens // Avian Dis. 1967. — Vol. 11. — P. 430 438.
  33. Brown F. The classificatoin and nomenclature of viruses: Summary of results of meetings of the International Committee on Taxonomy of Viruses in Sendai // Intervirology.- V. 25, — P. 141−143.
  34. Brown J., Resurreccion R.S., Dickson T.G., Home A. The relationship of egg yolk and serum antibody. I. Infectious bursal disease virus // Avian Dis.- 1989,-Vol. 33, — № 4, — P. 654−656.
  35. Burkhardt E., Muller H. Susceptibility of chicken blood lymphoblasts and monocytes to infectious bursal disease virus (IBDV) // Arch. Virol. 1987. — Vol. 94. — P. 297−303.
  36. Bygrave A.C., Faragher J.T. Mortality associated and Gumboro disease // Vet. Rec. 1970. — Vol.86.- P.758−759.
  37. Chantler S.M., Clayton A.L. The use of ELISA for rapid viral diagnosis: Viral antigen detection in clinical specimens // ELISA and other solid phase immunoassays. Chichester ets, 1988, — P. 279−301.
  38. Chettle N.J., Stuart J.C., Wyeth P.J. Outbreak of virulent Infectious bursal disease in East Anglia // Vet. Rec. 1989. — Vol. 125. — P. 271−272.
  39. Cheville N.F. Studies on the pathogenesis of Gumboro disease in the bursa of Fabricius, spleen and thymus of the chicken // Am. J. Pathol.- 1967, — V.51.-P.527−551.
  40. Cho B.R. Experimental dual infections of chikens with infectious bursal and Marek’s disease agents. I. Preliminary observation on the effect of infectious bursal agent on Marek’s disease //Avian Dis. 1970. — Vol. 14. — P. 665−675.
  41. Cho Y., Edhar S.A. Characterization of infectious bursal agent // Poultry Sci. -1969.-Vol.48. P. 2102−2109.
  42. Comps M., Mori J., Poisson F., Bonami J.R. Biophysical and biochemical properties of the RBV, and unusual birnavirus pathogenic for rotifers // J. gen. Virol. 1991. — Vol. 72. — P. 1229- 1236.
  43. Contarero LA., Butler J.E., Osborn J.V. The absorptive characteristics of proteins for polystyrene and their significance in solid phase immunoassays // Anal. Biochen.- 1980, — Vol.105, — P.375.
  44. Cosgrove A S. An apparently new disease of chikens avian nephrosis // Avian Dis. — 1962. — Vol.6. — P. 385−389.
  45. Crowther J.R. ELISA. Theory and practice. II Methods in Molecular Biology. -Totowa, New Jersey, 1995, — P. 64, 161−176.
  46. Cullen G.A., Wyeth P.J. Response of growing chickens to an inactivated IBD antigen in oil emulsion // Vet. Rec. 1976, — Vol. 99. — P.418.
  47. Cullen G.A., Wyeth P.J. Quantitation of antibodies to infectious bursal disease // Vet. Rec. 1975, — Vol. 97, — P. 315.
  48. Cursiefen D., Vielitz E., Langraf H., Becht H. Evaluation of vaccine against infectious bursal disease in field trials 11 Avian Pathol. 1979. — Vol. 8. — P. 341 351.
  49. Dietzen R.G., Francki R.I.B. Nonspecific binding of immunoglobulins to coat proteins of certain plant viruses in immunoblots and indirect ELISA // J. Virol. Meth.- 1987, — Vol. 15, — P. 159−164.
  50. Dobos P. Peptide map comparison of the proteins of infectious bursal disease virus //J. Virol.- 1979, — Vol.32.- P. 1046−1050.
  51. Dobos P., Hill B.J., Hallet R., e.a. Biophysical and biochemical characterization of five animal viruses with bisegmented double-stranded RNA genomes // J.Virol.- 1979,-Vol.32.- P.593−605.
  52. Engvall E, Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitative assay of immunoglobulin G // Immunochemistry.- 1971, — Vol.8.- P. 871−874.
  53. Eterradossi N., Toquin D., PicaultJ.P., e.a. Monoclonal antibody typing of recent isolates of infectious bursal disease virus from France // Int. Symp. on Infect. Bursal Dis. and Chiken Infect. Anemia. Rauischholzhausen, Germany, 1994. -P. 188−195.
  54. Fadly A.M., Winterfield R.W., Olander H.J. Role of the bursa of Fabricius in the pathogenicity of inclusion body hepatitis and infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1976. — Vol. 20. — P. 467−477.
  55. Fahey K.J., Crooks J.K., Fraser R. Assessment by ELISA of passively acquired protection against infectious bursal disease virus in chickens // Aust. Vet. J.-1987, — Vol. 64, № 7, — P. 203−207.
  56. Fahey K.J., O Donnell I.J., Azad A.A. Characterization by Western blotting of the immunogens of infectious bursal disease virus // J. gen. Virol.- 1985.-Vol.66.- P. 1479−1488.
  57. Faragher J.T., Allan W.H., Wyeth C.J. Immunosuppressive effect of infectious bursal agent on vaccination against Newcastle disease // Vet. Rec.- 1974.- Vol. 95. P. 385−388.
  58. Giambrone J.J. Efficacy of live vaccines against serologic subtypes of infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1990. — Vol. 34. — P. 7−11.
  59. Haddad E.E., Whitfill C.E., Avakian A.P., e.a. Efficacy of a novel infectious bursal disease virus immune complex vaccine in broiler chickens // Avian Dis. -1997. Vol. 41, № 4. — P. 882- 891.
  60. Hatfield R.M., Morris B.A., Henry R.R. Development of enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of humoral antibodies // Avian Pathol.-1987,-Vol. 16, — P. 123−140.
  61. Hein R.G., Mengel-Whereat S. Epiidemiological study of the prevalence of new antigenically distinct infectious bursal disease viruses in the USA // 11-th Int. Congr. World Vet. Poultry Assoc.: Abstr.- Budapest, Hungry, 1997, — P. 180.
  62. Helmboldt C.F., Garner E. Experimentally induced Gumboro disease (IBD) // Avian Dis. 1964. — Vol. 8, — P. 561 — 575.
  63. Herrmann J.E., Collins M.F. Quantitation of immunoglobulin absorption to plastics //J. Immunol. Meth.- 1976,-Vol.10.- P.363.
  64. Herrmann J.E., Hendry R.M., Collins M.F. Factors involved in enzyme-linked immunoassay and evaluation of the method of identification of enteroviruses // J. Clin. Microbiol.- 1979,-Vol. 10, — P. 210−217.
  65. Hirai K., Calnek W. In vitro replication of infectious bursal disease virus in established lymphoid cell lines and chicken B lymphocytes /7 Infect. Immun. -1979. Vol. 25. — P. 964−970.
  66. Hirai K., Shimakura S. Structure of infectious bursal disease virus // J. Virol. -1974. Vol. 14. — P. 957- 964.
  67. Hirai K, Shimakura S., Kawamoto E., e.a. The immunodepressive effect of infectious bursal disease virus in chickens // Avian Dis. 1974. — Vol. 18.- P.50−57.
  68. Hitchner S.B. Immunization of adult hens against infectious bursal disease virus //Avian Dis. 1976. — Vol. 20, — P. 611−613.
  69. Hitchner S.B. Infectivity of infectious bursal disease virus for embryonating eggs 11 Poultry S. 1970. — Vol. 49. — P. 511−516.
  70. Hitchner S.B. Persistence of parental infectious bursal disease antibody and its effect on susceptibility of young chickens // Avian Dis. 1971. — Vol. 15, — P. 894 900.
  71. Howell E.B., Nasser J., Schray K.J. Coated tube enzyme immunoassay: Factors affecting sensitivity and effects of reversibl protein binding to polystyrene // J. Immunol.-1981.-Vol. 2, — P. 205−225.
  72. Howie R.I., Thorsen J. An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for infectious bursal disease virus // Can. J. Comp. Med.- 1981, — Vol. 45, № 1.- P. 51−55.
  73. Ide P.R., Schulte-Nordholt J.A., Dewitt W, F., Smith J.D. Broiler- breeder vaccination against infectious bursal disease and persistence of maternal antibody in progeny//Can. Vet. J. -1978. Vol. 19. — P. 123−127.
  74. IDEXXs instruction for an enzyme immunoassay for the detection of antibody in chicken serum. IDEXX Laboratories, Inc. Westbrook, USA, 1996, — 30 p.
  75. Infectious bursal disease antibody test kit. Instruction. Catalog № 54−81−01/ KPL (Kirkegaard and Perry Laboratories), US, 2 Cessna Court Gaithersburg Maryland 20 879, 800 638 3167.
  76. Infectious bursal disease antibody test kit. Instruction. Catalog Code CK 113 // BioChek C. V. Weth. Venteweg 143. 2805 JN Gouda. Holland.
  77. Ismail N., Saif Y.M. Differentiation between antibodies to serotypes 1 and 2 infectious bursal disease viruses in chiken sera // Avian Dis. 1990. — Vol. 34. -P. 1002- 1004.
  78. Jackwood D.J., Jackwood R.J. Infectious bursal disease viruses: Molecular differentiation of antigenic subtypes among serotype 1 virus // Avian Dis. 1994. -Vol. 38. — P. 531- 537.
  79. Jackwood D.J., Saif Y.M., Huches J.H. Characteristics and serologic studies of two serotypes of infectious bursal disease virus in turkeys // Avian Dis. 1982. -Vol. 26. — P. 871- 882.
  80. Jackwood D.J., Saif Y.M. Prevalence of antibodies to infectious bursal disease virus serotypes I and II in 75 Ohio chicken flocks // Avian Dis. 1983. — Vol. 27. -P. 850- 854.
  81. Jackwood D.J., Sommer S.E., Odor E. Correlation of enzyme-linked immunosorbent assay titers with protection against infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1999. — Vol. 43, № 2, — P. 189- 197.
  82. Kardi V., Perenyi T., Kocsis G., e.a. Sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for measuring antigen concentration of infectious bursal disease virus//Acta Vet. Hung.- 1988,-Vol.36, № 1−2.- P. 123−134.
  83. Kardi V., Szegletes E., Forgach K, e.a. Use of ELISA methods for determination of IBD (Gumboro) virus antigen and antibody // 11-th Int. Congr. World Vet. Poultry Assoc.: Abstr.- Budapest, Hungry, 1997, — P.269.
  84. Kaufer I., Weiss E. Significance of bursa of Fabricius as target organ in infectious bursal disease of chickens // Infect. Immun. 1980. — Vol. 27. — P. 364 367.
  85. Kemeny D.M., Challacombe S.J. Microtitre plates and other solid phase supports // ELISA and Other Solid Phase Immunoassays. Chichester ets, 1988, — P. 31−39.
  86. Kemeny D.M., Chantler S. An introduction to ELISA. // ELISA and Other Solid Phase Immunoassays. Chichester ets, 1988, — P. 3−5.
  87. Kouwenhoven B., Van der Bos. J. Control of very virulent infectious. bursal disease (Gumboro disease) in the Netherlands with so called «hot» vaccines // Proc. 42th Western Poultry Dis. Conf. Sacramento, California, 1993. — P. 3740.
  88. Kumar A., Rao A.T. Doubl-antibody sandwich ELISA for detection of infectious bursal disease virus // Br. Vet. J.- 1991.-Vol.147, № 3, — P. 251−256.
  89. Kurstak E., Tijssen P., Kurstak C., Morisset R. Enzime immunoassay in diagnostic medical virology // Bull. FAO.- 1986, — Vol.64, № 3, — P. 465−479.
  90. Lamichhane C.M., Kirkegaard L., Collins W. ELISA provides better detection of antibodies to infectious bursal disease virus (IBDV) // 11-th Int. Congr. World Vet. Poultry Assoc.: Abstr.- Budapest, Hungry, 1997, — P. 41.
  91. Landgraff H., Vielitz E., Kirsch R. Occurrence of an infectious bursal affecting the bursa of Fabricius (Gumboro disease) // Dtsch. tierarztl. Wschr. 1967. — Bd. 74.-S. 6−10.
  92. Laser H. N'., Shane S.M. Infectious bursal disease // World Poultry Sci. J. 1994. -Vol. 50. — P. 133−166.
  93. Lucio B., Hitchner S.B. Infectious bursal disease emulsified vaccine: Effect upon neutralizing-antibody levels in the dam and subsequent protection of the progeny // Avian Dis. 1979. — Vol. 23. — P. 466 — 478.
  94. Lukert P.D., Saif Y.M. Infectious bursal disease // Diseases of Poultry. 10th edn. Ames, Iowa, 1997. — P. 721−738.
  95. Mandelli G., Rinaldi A., Cerioli A., Cervio G. Aspetti ultrastrutturali della borsa di Fabrizio nella malattia di Gumboro de polio // Atti. Soc. Ital. Sci. Vet. 1991. -Vol. 21. — P. 615−619.
  96. Manual of standards for diagnostic tests and vaccines / Office International des Epizooties, World Organisation for Animal Health. Paris, 1996. — 723 p.
  97. Marquardt W., Johnson R.B., Odenwald W.F., Schlotthoher B.A. An indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for measuring antibodies in chickens infected with infectious bursal disease virus // Avian Dis.- 1980, — Vol. 24, — P. 375−385.
  98. McClaren M.L., Liilywhite J.E., Andrew C.S. Indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): Practical aspects of standartization and quality control // Med. Lab. Sci.-1981, — Vol. 38, — P. 245−251.
  99. McFaney K.J., Erny K., Crooks J. A conformational immunogen on VP2 of infectious bursal disease virus that induces virus-neutralizing antibodies that passively protect chickens //J. gen. Virol.- 1989.- Vol.70, № 6.- P.1473−1481.
  100. McFerran J.B., McNulty M.S., McKillop E.R. e.a. Isolation and serological studies with infectious bursal disease viruses from fowl, turkeys and ducks: demonstration of a second serotype // Avian Pathol. 1980. — Vol. 9. — P. 395 -404 .
  101. McNulty M.S., Saif Y.M. Antigenic relationship of non-serotype 1 turkey infectious bursal disease viruses //Avian Dis. 1988. — Vol. 32.- P. 374−375.
  102. Mohamed K. H., Saif Y.M., Shawky S. Comparison between antigen-capture ELISA and conventional methods used for titration of infectious bursal disease viruses//Avian Dis. 1996. — Vol. 40, — P. 562−566.
  103. Morgan M.M., Macreadie I.G., Harley V.R., e.a. Sequence of the small double- stranded RNA genomic segment of infectious bursal disease virus and its deduced 90-kD product//Virology.- 1988,-Vol. 163, — P. 240−242.
  104. Muller H., Bech H. Biosynthesis of virus-specific proteins in cells infected with infectious bursal disease virus and their significance as structural elements for infectious virus and incomplete particles //J. Virol.- 1982, — Vol.44.- P.384−392.
  105. Muller R., l/Ve/'ss I.K., Reinacher M., Weiss E. Immunofluorescent studies of early virus propagation after oral infection with infectious bursal disease virus (IBDV) // Zentralbl. Vet. Med. — 1979. — Vol.26.- P.345−352.
  106. Mundt E., Beyer J., Muller H. Identification of a novel viral protein in infectious bursal disease virus-infected cells // J. gen. Virol.- 1995, — Vol.76.- P.437−443.
  107. Nachimuthu K., Raj G.D., Thangavelu A., Venkatesan R.A. Reverse passive hemagglutination test in the diagnosis of infectious bursal disease // Trop. Anim. Health Prod. -1995. Vol. 27. — P. 43−46.
  108. Nakane P., Kawaoi A. Peroxidase-labelled antibody. A new method of conjugation //J. Histochem. Cytochem.-1974.-Vol. 22, — P. 1084.
  109. Naqi S.'A, Millar D.L., Grumbles L.G. An evaluation of three commercially available infectious bursal disease vaccines // Avian Dis. 1980- Vol. 24.- P. 233−240.
  110. Nick H., Cursiefen D., Becht H. Structural and growth characteristics of infectious bursal disease virus //J. Virol.- 1976, — Vol. 18, — P.227−234.
  111. Nicholas R.A., Reed N.E., Wood G.W., e.a. Detection of antibodies against infectious bursal disease virus: a comparison of three serological methods // Res. Vet. Sci.- 1985, — Vol. 38, № 2, — P.189−192.
  112. Nikai T., Hirai K. In vitro infection of fractionated chicken lymphocytes by infectious bursal disease virus //Avian Dis. -1981- Vol. 25, — P. 831−838.
  113. Panigraphy B.L., Misra L.K., Naqi S. A, Hall C.F. Prolongation of skin allograft survival in chickens with infectious bursal disease // Poultry. Sci. 1977. -Vol. 56. — P. 1745.
  114. Panisup A.S., Verma K.S., Mohaty G.C. Age resistance in chickens against infectious bursal disease // Acta Vet. Scandinavica. 1984. — Vol. 28. — P. 561 566.
  115. Parsons G.H. Antibody-coated plastic tubes in radioimmunoassay // Methods in Enzymology. N. Y., 1981,-Vol. 73. — P. 5.
  116. Pejkovski C., Davelaar F.G., Kouwenhoven B. Immunosuppressive effect of infectious bursal disease virus on vaccination against infectious bronchitis II Avian Pathol. 1979. — Vol.8. — P. 95−106.
  117. Penzes Z., Meszaros I. Comparison of different computational methods for measuring antibodies to avian infections bronchitis virus in single serum dilution //Acta Vete. Hungarica.- 1992, — Vol. 40, № 4, — P. 311−321
  118. Perce A.J., Ford D.J., Gaizutis M.A. Quantitative and qualitative aspects of immunoassays // Scand. J. Immunol.- 1978, — Vol.8, № 7, — P.1.
  119. Peters G. Histology of Gumboro disease // Berl. Munch, tierarztl. Wschr. -1967. Vol.80. — P. 394−396.
  120. Rosenberger J.K. Vaccination of broiler-breeder and their progeny with Infectious bursal disease virus // Proc. Symp. Inf. Bursal Dis. (Gumboro dis.). -Atlanta, 1977. P. 12−16.
  121. Rosenberger J.K., Cloud S.S. Isolation and characterization of variant infectious bursal disease viruses abst. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1986. — Vol. 189. — P. 357.
  122. Rosenberger J.K., Gelb J. Response to several avian respiratory viruses as affected by infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1978. — Vol. 22. — P. 95 105.
  123. Rosenberger J.K., Klopp S., Eckroade R.J., Krauss W.C. The role of the Infectious bursal agent and several avian adenoviruses in the hemorrhagic-aplastic-anemia syndrome and gangrenous dermatitis // Avian Dis. 1975. — Vol. 19. — P. 717−729.
  124. Rosenberger J.K., Saif Y.M., Jackwood D.J. Infectious bursal disease // A Laboratory Manual for the Isolation and Identification of Avian Pathogens / Published by the American Association of Avian Pathologists, 1998, — P. 215−218.
  125. SaifY.M. Infectious bursal disease virus types // Proc. 19th Nat. Meet. Poult. Health Condemn. Ocean City, MD, 1984, — P. 105−107.
  126. Sharma J.M. Effect of infectious bursal disease virus on protection against Marek’s disease by turkey herpes virus vaccine // Avian Dis. 1984. — Vol. 28, — P. 629−640.
  127. Sharma J.M., Dohms J.E. Comparative pathogenesis of serotype 1 and variant serotype 1 isolates of infectious bursal disease virus and their effect ofhumoral of specific-pathogen-free chickens // Avian Dis. 1989. — Vol. 33, № 1 -P. 112−124.
  128. Silim A., Venne D. Comparison of egg-yolk and serum antibody titers to four avian viruses by enzyme-linked immunosorbent assay using paired field samples //Avian Dis. 1989. — Vol. 33, № 4, — P. 643−648.
  129. Snyder D.B. Changes in the field status of infectious bursal disease virus 11 Avian Pathol. 1990.-Vol. 19. — P. 419−423.
  130. Snyder D.B., Marquardt W.W., Mallinson E.T., e.a. Rapid serological profiling by enzyme-linked immunosorbent assay. 4. Association of infectious bursal disease serology with broiler flock performance // Avian Dis.- 1986, — Vol. 30, — P. 139−148.
  131. Snyder D. B, Vakharia V.N., Savage P.K. Naturally occurring- neutralizing monoclonal antibody escape variants define the epidemiology of infectiousbursal disease virus in the United States // Arch. Virol. 1992. — Vol. 127. — P. 89 101.
  132. Solano W., Giambrone J. J., Williams J.C., e.a. Effect of maternal antibody on timing of initial vaccination of young white leghorn chickens against infectious bursal disease virus //Avian Dis.- 1986,-Vol. 30, № 4, — P. 662−671.
  133. Tham K.M., Young L.W., Moon C.D. Detection of infectious bursal disease virus by reyers transcription-polymerase chain reaction amplification of the virus segment A gene //J. Virol. Meth. -1995. Vol. 53. — P. 201−212.
  134. Thayer S.G., Viilegas P., Fletcher O.J. Comparison of two commercial enzyme-linked immunosorbent assays and conventional methods for avian serology//Avian Dis.- 1987, — Vol. 31, — P. 120−124.
  135. Thorton D.H., Pattison M. Comparison of vaccines against infectious bursal disease //J. Comp. Pathol. 1975. — Vol. 85, № 4, — P. 597−610.
  136. Todd D., McNulty M.S. Biochemical studies with infectious bursal disease virus: comparison of some of its properties with infectious pancreatic necrosis virus //Arch. Virol.- 1979,-Vol. 60, — P.265−277.
  137. Thorton L. Mississippi IBD problem, solutions are explaind // Poultry Dis.-1982, — V.41, № 490, — P.604−605.
  138. Tsukamoto K., Matsumura T, Mase M., Imai K. A highly sensitive, broad-spectrum infectivity asay for Infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1995. -Vol. 39, № 3. — P. 575−586.
  139. Tsukamoto K., Obata H., Hihara H. Improved preparation of ELISA antigen of infectious bursal disease virus // Avian Dis. 1990 — Vol. 34, № 1 — P. 209−213.
  140. Tsukamoto K., Tanimura N., Kakita S.: e.a. Efficacy of three live vaccines against highly virulent infectious bursal disease virus in chickens with or without maternal antibodies // Avian Dis. 1995. — Vol. 39, № 2. — P. 218−247.
  141. Urbanek R., Kemeny D.M., Samuel D. Use of enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of allergen-specific antibodies // J. Immunol Meth.-1985,-Vol.79.- P.123.
  142. Van der Marel P., Snyder D. B, Lutticken D. Antigenic characterization of IBDV field isolates by their reactivity with a panel of monoclonal antibodies // Dtsch. tierarztl. Wschr. 1990. — Bd. 97. — S. 81−83.
  143. Van Weeman B.K., Schuurs A.H.W.M. Immunoassay using antigen-enzyme conjugate // FEBBS.- 1971.-Vol. 15, — P. 232−237.
  144. Vogt R.F., Phillips D.L., Henderson L.O., e.a. ELISA microtiter plates // J. Immunol. Meth.- 1987.- Vol. 101P. 43−50.
  145. Voller A., Bidwell D.E., Bartlett A The enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Dynatech Europe.- UK.
  146. Winterfield R.W. Immunity response to the infectious bursal agent // Avian Dis. 1969. — Vol. 13. — P.-548−557.
  147. Winterfield R.W., Fadly A.M., Bickford A. Infectivity and distribution of infectious bursal disease virus in the chicken. Persistence of the virus and lesions // Avian Dis. 1972. — Vol. 16. — P. 622−632.
  148. Wyeth P.J. Effect of infectious bursal disease on the response of chickens to S. typhimurium and E. coli infections //Vet. Rec. 19.75. — Vol. 96. — P. 238−243.
  149. Wyeth P.J., Chettle N. Comparison of the efficacy of four inactivated infectious bursal disease oil emulsion vaccine //Vet. Rec. 1982. — Vol. 110. — P. 359−361.
  150. Wyeth P.J., Cullen G.A. Susceptibility of chicks to infectious bursal disease (IBD) following vaccination of their parents with live IBD vaccine // Vet. Rec. -1978. Vol. 103. — P. 281−282.
  151. Wyeth P. J., Cullen G.A. The use of an inactivated infectious bursal disease oil emulsion vaccine in commercial broiler parent chickens II Vet. Rec. 1979.-Vol.104. — P. 188−193.
  152. Zajac J., Novotna L. Evaluation of the results of ELISA in the quantitative determination of antibodies against bursitis in poultry // Vet. Med. (Praha).-1992,-Vol.36, № 12, — P.737−743.копия1. МЕТОДИКА
  153. ПОЛУЧЕНИЕ АНТИГЕНА ВИРУСА ИНФЕКЦИОННОЙ БУРСАЛЬНОЙ БОЛЕЗНИ ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА.
  154. Авторы: Оковытая Т. В., Фалина Г. М., Мудрак Н. С., Кузнецов Ю. В. Дрыгин Б.В., Борисов A.B.
  155. Рассмотрено и одобрено методкомиссией: протокол № 6 от 4.07.99 Ученым советом: протокол 16 от 6.10.99лопия верна: Ученый секретарь ВН1004.2000г.1. М. Семенов1. CL1. Л «П <. ¦<>^, 4″. УТВЕРЖДАЮ1. А. А. Гусев 1999 г.1. МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
  156. ПО ОПРЕДЕЛЕНИЮ ТИТРА АНТИТЕЛ К ВИРУСУ ИНФЕКЦИОННОЙ БУРСАПЬНОЙ БОЛЕЗНИ В СЫВОРОТКАХ КРОВИ КУР В НЕПРЯМОМ ВАРИАНТЕ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА СПОСОБОМ ОДНОГО РАЗВЕДЕНИЯ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РАЗЛИЧНЫХХРОМОГЕННЫХ1. СУБСТРАТОВ.
  157. Авторы: Оковытая Т. В., Мудрак Н. С., Дрыгин В. В., Борисов A.B., Кулаков В.Ю.1. СОГЛАСОВАНО
  158. Зам. директор по, ЙИР /. ¦. /1С/ Захаровдиректор по,-^рЯ^.з/к1999г.
  159. ДирфрблЯш И И 3 Ж Д. Гусев 1999 г.
  160. МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ВЗАИМНОМУ ПЕР ЕРА СЧЕТУ ПОКАЗА ТЕЛЕЙ ТИТРА АНТИТЕЛ К ВИР УСУ ИНФЕКЦИОННОЙ БУРСАЛЬНОЙ БОЛЕЗНИ, УСТА НОВЛЕИНЫХ В СЫВОРОТКАХ КРОВИ КУР СРЕДСТВАМИ РАЗЛИЧНЫХ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ НАБОРОВ ИФА.
  161. Авторы: Оковытая Т. В., Мудрак Н. С., Дрыгин В. В., Борисов A.B., Кулаков В.Ю.
  162. Рассмотрено и одобрено методкомиссией: протокол № 6 от 4.07.99 и Ученым советом: протокол 16 от 6.10.991 201. КОПИЯ
  163. СОГЛАСОВАНО Зам. директора института1. В.М.Захаров199?г.1. КОПИЯ БЕЕ1. Ученый секрета- 28.03.2'
  164. РАЗРАБОТЧИКИ: Борисов A.B. зав. лаб. № 6- Дрыгин В. В., зав. лаб. № 11- Мудрак Н. С., вед. н. с. лаб, № 11- Оковытая Т. В., вед. инж.-химик лаб. № 111. Г. М.Семенова
  165. МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ОКП 938 870 УДК 619:616.476−022.6:616−078.23/049.32)1. Группа Р-5Аекгора по НИР учно-исследовательского I животных В. М. Захаровгооог.
  166. НАБОР ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К ВИРУСУ ИНФЕКЦИОННОЙ БУРСАЛЬНОЙ БОЛЕЗНИ ИММУНОФЕРМЕНТНЫМ МЕТОДОМ.
  167. Технические условия ТУ 9388−028−495 527−99
  168. Без ограничения срока действия Срокдействия с феВРАЛЯ 2000 г.1. СОГЛАСОВАНО
  169. Директор Всероссийа научро-исследоват^ ков^Гер!1НОГО1. РАЗРАБОТЧИКИ
  170. Директор Всероссийского научно-исследовательского института защиты животных1. АА Гусев1993 г. т1. А. В. Борисов 1993 г.
  171. Заведую!: ЦИЙ ОТЯ1 рлом ВНИИЗЖ1. В.В.Дрыгин1/уО» } 1999 г./
  172. Продолжение на следующем листе
  173. Продолжение титульного листа ТУ
  174. Ведущий научный сотрудник ВНИИЗЖд/рМАЛ Н. С. Мудрак ¦ АС" 1990 г.1. Технолог ВНИИЗЖ
  175. Т. В. Оковытая «¿-У 1991. г.
  176. НАСТАВЛЕНИЕ по применению набора для определения ат-ител к вирусу инфекционной бурсапьной болезни иммуноферментным методом-Селиверстов2000г.
  177. Набор предназначен для определения специфических антител против вируса инфекционной бурсальной болезни (ИББ) в сыворотках крови кур иммуноферментным методом (ИФА)',
  178. Для исследования в лабораторию доставляют из птицехозяйств сыворотки крови кур от 25 голов (по 0,2−0,3 см3). Пробы сывороток хранят в морозильной камере бытового’холодильника.
  179. В состав набора входят 9 компонентов (К1-К9).
  180. КОПИЯ ВЕРНА Ученый секрета 27.03.2001. Г. М.Семеновал
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!