Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Сравнительная оценка металлсвязывающей активности низкоэтерифицированных и высокоэтерифицированных пектинов

Диссертация: Сравнительная оценка металлсвязывающей активности низкоэтерифицированных и высокоэтерифицированных пектинов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. В работе впервые проведен анализ связи физико-химических свойств пектинов с их металлсвязывающей активностью. Исследованы сорбционные свойства пектинов, различающихся относительным содержанием эте-рифицированных и деэтерифицированных карбоксильных групп, полигалактуроно- ' вой кислоты, вязкостью. Установлено, что эффективность связывания металлов пектинами in vitro зависит… Читать ещё >

Сравнительная оценка металлсвязывающей активности низкоэтерифицированных и высокоэтерифицированных пектинов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Структура, физико-химические свойства и фармакологическая активность пектинов
    • 1. 1. Химическое строение пектинов
    • 1. 2. Физико-химические свойства пектинов
    • 1. 3. Фармакологические эффекты пектинов
    • 1. 4. Зависимость фармакологических эффектов от структуры и физико-химических свойств пектинов

Актуальность проблемы. Фундаментальной проблемой теоретической фармакологии является установление закономерных связей между структурой химических соединений и их воздействием на живой организм. Удобным объектом для анализа таких связей могут служить пектиновые вещества, представляющие интерес и как потенциальный источник новых лекарственных препаратов и биологически активных добавок к пище (Thakur et al., 1997; Хотимченко и др., 2001а, бSun et al., 2002; Nangia-Makker et al., 2002), и как материал для современных фармацевтических технологий (Miyazaki et al., 2000; Semde et al., 2000; Liu et al., 2003; Cheng, Lim, 2004).

Пектины относятся к классу полимерных углеводов и, как большинство полисахаридов, являются гетерогенными по структуре, молекулярной массе и физико-химическим свойствам. Их состав различается в зависимости от источника сырья, места произрастания растений и условий выделения (Chang et al., 1994). Первичными блоками полимерной цепи пектинов являются остатки D-галактуроновой кислоты, соединенные друг с другом а (1—>4)-связью. Пектиновая цепь может состоять от нескольких десятков до нескольких сотен галактуроновых блоков (Thibault et al., 1993), между которыми на разных расстояниях друг от друга располагаются остатки L-рамнозы. От основной линейной цепи рамногалактуронана берут начало боковые цепи, состоящие из 8−20 молекул нейтральных Сахаров, таких как D-галактопираноза, L-арабинофураноза, D-ксилопираноза, D-глюкопираноза, L-фукопираноза, D-апиоза, 2−0-метил-0-ксилоза и 2-О-метилфукоза (Schols, Voragen, 1996; Thakur et al., 1997; Ridley et al., 2001). В зависимости от относительного количества карбоксильных групп в остатках галактуроновой кислоты, этерифицирован-ных метиловым спиртом, различают высокометоксилированные и низкометоксили-рованные пектины. Все эти структурные особенности молекул полисахарида создают разнообразие физико-химических параметров пектинов, что должно отражается на их биологических и фармакологических свойствах.

В спектре фармакотерапевтических эффектов пектинов их способность снижать уровень сывороточного холестерина и липопротеинов низкой плотности (Gonzalez et al., 1998; Vergara-Jimenez et al., 1998; Bladergroen et al., 1999), связывать тяжелые металлы (Kohn, 1987; Dongowski et al., 1997), увеличивать экскрецию желчных кислот (Garcia-Diez et al 1996), проявлять антимутагенную активность в отношении нитроароматических соединений (Hensel, Meier, 1999) и ингибировать пролиферацию злокачественных клеток (Heitman et al, 1992; Hsieh and Wu, 1995). Пек-тинсодержащие препараты оказывали лечебные эффекты у больных с гиперхолесте-ринемией (Groudeva et al., 1996; Knopp et al, 1999), сахарным диабетом (Levitt et al., 1980) и персистирующей диареей (Rabbani et al., 2001). Вместе с тем, анализ литературы свидетельствует о существенных противоречиях как в результатах близких по содержанию работ, так и в их интерпретации. Эти противоречия обусловлены отсутствием стандартизованных препаратов исследованных пектинов. В различных работах используются пектины неодинакового происхождения, с разной степенью эте-рификации, с разной молекулярной массой и с неодинаковыми реологическими свойствами. Лишь в единичных работах предприняты попытки установить связь структуры пектинов с их фармакологической активностью, например, с гипохоле-стеринемическим действием (Kishimoto et al., 1995; Yamaguchi et al., 1995; Trautwein et al., 1998), воздействием на активность микрофлоры кишечника (Langhout et al., 1999) и сорбцией желчных кислот (Dongowski, 1995). Отсутствие в литературе достаточных сведений о закономерных связях между физико-химическими характеристиками пектинов, такими как вязкость, массовая доля полиуроновых кислот, относительное содержание свободных карбоксильных групп, с одной стороны, и фармакологическими эффектами, с другой стороны, определило цели и задачи настоящей работы.

Цель работы. Цель работы состояла в установлении связи физико-химических свойств пектинов с их металлсвязывающей активностью.

Задачи работы:

1. Получить пектины с заданной степенью этерификации в диапазоне от 1 до 60% и охарактеризовать их физико-химические свойства по относительному содержанию свободных карбоксильных групп, содержанию ангидрогалактуроновой кислоты, характеристической вязкости и теоретической сорбционной емкости.

2. Определить сорбционные характеристики пектинов с разной степенью этерификации по отношению к ионам меди, свинца, кадмия, ртути, цинка и железа.

3. Изучить влияние рН среды на сорбционную активность пектинов с разной степенью этерификации при взаимодействии с металлами.

4. Провести сравнительную оценку металлсвязывающей активности пектинов с одинаковой степенью этерификации, полученных методом щелочной деэтерифи-кации и способом смешивания низкоэтерифицированных и высокоэтерифициро ванных пектинов.

5. Оценить металлсвязывающую, гиполипидемическую и антитоксическую активность пектинов с разной степенью этерификации у экспериментальных животных.

Научная новизна. В работе впервые проведен анализ связи физико-химических свойств пектинов с их металлсвязывающей активностью. Исследованы сорбционные свойства пектинов, различающихся относительным содержанием эте-рифицированных и деэтерифицированных карбоксильных групп, полигалактуроно- ' вой кислоты, вязкостью. Установлено, что эффективность связывания металлов пектинами in vitro зависит от их физико-химических свойств, при этом более значимую роль играют такие параметры, как степень этерификации и содержание свободной ангидрогалактуроновой кислоты. Характеристическая вязкость играет меньшую роль, по крайней мере, по отношению к связыванию изученных металлов. Существенное влияние на связывание металлов пектинами оказывает кислотность среды. Сдвиг рН в щелочную сторону приводит к повышению сорбционной емкости по меди, кадмию, свинцу и железу. Сорбционная емкость пектинов по ртути практически не зависит от рН среды.

В качестве важного количественного параметра сорбционной активности пектинов предложен показатель теоретической сорбционной емкости, позволяющий более точно судить о количестве карбоксильных групп, участвующих в связывании металлов.

Установлено, что эффективность выведение тяжелых металлов из организма, А экспериментальных животных с помощью пектиновых веществ зависит от степени этерификации пектинов. Гиполипидемическая и гепатопротекторная активность пектинов не зависит от степени их этерификации.

Практическая значимость. На основе результатов экспериментальных исследований по оценке металлсвязывающей активности пектинов с разной степенью этерификации разработана технологическая схема производства биологически активных добавок к пище, активным компонентом которых является низкоэтерифици-рованный пектин. Предложены к выпуску биологически активные пищевые добавки, сертифицированные в Федеральном центре Госсанэпиднадзора, зарегистрированные в Министерстве здравоохранения Российской Федерации (регистрационные удостоверения № 1 310.Р.643.11.99 и № 1 310.Р.643.11.99, которые разрешены для реализации через аптечную сеть в качестве источника пищевых волокон.

Апробация работы. Основные результаты исследования доложены и обсуждены на Всесоюзном семинаре «Проблемы производства продукции из красных и бурых водорослей» (Владивосток, 1987), Региональной конференции Сибири и Дальнего Востока «Перспективы развития малотоннажной, химии» (Красноярск, 1989), 2-м съезде физиологов Сибири и Дальнего Востока (Новосибирск, 1995), 5, 6 и 11-м Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 1998, 1999, 2004), 12-м съезде физиологов России (Ростов-на-Дону, 1998), 4-м Международном симпозиуме «Биологически активные добавки к пище: XXI век» (Санкт-Петербург, 2000), 2-м съезде Российского научного общества фармакологов «Фундаментальные проблемы фармакологии» (Москва, 2003).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 15 печатных работ.

Объем и структура диссертации. Диссертация выполнена на 133 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, 3 глав собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, списка литературы.

114 ВЫВОДЫ.

1. Модифицированным методом щелочной деэтерификации получены образцы пектинов со степенью этерификации 1,2%, 9,6%, 18,8%, 27,4%, 40,1%, 52,0% и 60,2% и установлены их физико-химические характеристики. Показано, что характеристическая вязкость пектина снижается с уменьшением степени этерификации, при этом содержание ангидрогалактуроновой кислоты не изменяется. Все полученные образцы отнесены к высокомолекулярным пектинам.

2. Абсолютная сорбционная емкость пектинов по отношению ко всем исследованным металлам повышается с уменьшением степени этерификации. Относительная сорбционная емкость пектинов по отношению к кадмию и двухвалентному железу повышается с уменьшением степени этерификации. Относительная сорбционная емкость пектинов по отношению к меди, свинцу, цинку и ртути не зависит от степени этерификации при рН выше 4,0.

3. При увеличении рН среды абсолютная и относительная сорбционная емкость пектинов по отношению к большинству исследованных металлов повышается. Сорбционная емкость по ртути у низкоэтерифицированных пектинов не зависит от рН, а у высокоэтерифицированных эта зависимость выражена слабо. Абсолютная сорбционная емкость по трехвалентному железу повышается с увеличением рН, а относительная сорбционная емкость по этому металлу при рН 2,0 повышается с понижением степени этерификации, а при рН 3,0 и больше повышается с увеличением степени этерификации.

4. Образцы пектинов с заданной степенью этерификации, полученные методом щелочной деэтерификации и способом смешивания низкоэтерифицированных и высокоэтерифицированных пектинов, характеризуются близкими значениями сорб-ционной емкости по меди, свинцу и кадмию.

5. В опытах на экспериментальных животных показано, что способность пектинов выводить из организма тяжелые металлы зависит от степени этерификации их молекул. Гиполипидемическая и гепатопротективная активность пектинов не зависит от их степени этерификации.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

На основе результатов экспериментальных исследований по оценке металлсвязывающей активности пектинов с разной степенью этерификации нами совместно с сотрудниками кафедры фармакологии Владивостокского государственного медицинского университета разработана технологическая схема производства биологически активных добавок к пище, активным компонентом которых является низко-этерифицированный пектин. Предложены к выпуску две пищевые добавки. Первая добавка представляет собой смесь высокоэтерифицированного пектина со степенью этерификации 60,2% и низкоэтерифицированного пектина со степенью этерификации 1,2%. Согласно нормативной документации суммарное относительное содержание свободных (неэтерифицированных) карбоксильных групп в молекулах пектинов этого препарата должно составлять 50%. Содержание полиуроновых кислот — не менее 40%. Вторая добавка содержит низкоэтерифицированный пектин, нанесенный на сахарозу. Согласно нормативной документации суммарное относительное содержание свободных (неэтерифицированных) карбоксильных групп в молекулах пектинов этого препарата должно быть не менее 95%.Содержание полиуроновых кислот в пектине — не менее 60%.

Токсикологические испытания были проведены во Владивостокском государственном медицинском университете. Было установлено, что исследованные в остром и подостром токсиколого-гигиенических экспериментах биологически активные добавки на основе низкоэтерифицированных пектинов оказались безопасными при длительном пищевом использовании и были рекомендованы для гигиенической сертификации по критериям безопасности.

По внешнему виду добавки представляет собой гранулы или мелкий однородный порошок от светло-серого до кремового цветадопускается наличие вкраплений частиц более темного или более светлого цвета. Для обеспечения безопасности эти добавки должны удовлетворять требованиям органов Госсанэпиднадзора. Остаточные количества пестицидов, содержание токсичных элементов и радионуклидов и микробиологические показатели должны удовлетворять «Гигиеническим требованиям к качеству и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов». Материалы и разработанные технологические схемы внедрены в производство на Научно-производственной фирме «Востокфарм» (Владивосток). Обе добавки были сертифицированы в Федеральном центре Госсанэпиднадзора, зарегистрированы в Министерстве здравоохранения Российской Федерации (регистрационные удостоверения № 77.99.04.916.Б.361.08.03 и № 77.99.04.916.Б.363.08.03) и разрешены для реализации через аптечную сеть в качестве источника пищевых волокон.

Показать весь текст

Список литературы

  1. О.Г., Беззубов А. Д., Хатина А. И. Связывание и выведение свинца из организма под влиянием пектина // В кн.: Токсикология новых промышленных химических веществ. М., 1961. Вып. 2. С. 148−165.
  2. С.П., Чирва В. Ю., Кацева Г. Н., Кухта Е. П., Панова Е. П. Модификация титриметрических методов анализа пектиновых веществ // Химия природных соединений. 1984. — N 4. — С. 428−431.
  3. A.A. Окружающая среда и здоровье // Педиатрия. 1994. № 5. — С. 56.
  4. А.Д., Хатина А. И. Исследование возможности использования пищевого пектина в качестве комплексона при интоксикации кобальтом // Гигиена и санитария. 1959. — № 11. — С. 32−36.
  5. Ю.К., Москаленко C.B., Кайшева Н. Ш. и др. Получение и изучение физико-химических и гепатопротекторных свойств пектиновых веществ // Хим.-фарм. журн. 1997. — № 6. — С. 28−29.
  6. Ю.Е. Экопатология детского возраста // Педиатрия. — 1995. № 4. -С. 26−33.
  7. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. — 522 с.
  8. М.Д., Галенко-Ярошевский П.А., Петров В. И. Фармакотерапия с основами клинической фармакологии. Волгоград, 1996. — 451 с.
  9. Т.А., Кику П. Ф., Дегтярева Н. Е. Влияние факторов окружающей среды на формирование эконефрологической патологии у детского населения Приморского края // Педиатрия. 1999. — № 4. — С. 55−57.
  10. Ю.П. Современные проблемы экологической медицины. Новосибирск: СО РАМН, 1999.-180 с.
  11. Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов. JL: Медицина, 1978. — 296 с.
  12. В.Ф., Ключников С. О., Покидкина Г. Н. Значение неблагоприятных экологических факторов в формировании детской патологии // Педиатрия. 1995. -№ 3.-С. 98−101.
  13. JI.А., Байкова В. Н., Маякова С.А и др. Состояние системы антиокси-дантной защиты у детей, проживающих на территориях, загрязненных малыми дозами радионуклидов после аварии на ЧАЭС // Педиатрия. 1999. — № 5. — С. 65−68.
  14. A.A. Экология и здоровье детей // Педиатрия. 1995. — № 4. — С. 4950.
  15. Т.С., Беседнова H.H., Лямкин Г. П. и др. Антибактериальная и терапевтическая эффективность пектина из морской травы Zostera // Антибиотики и химиотер. 1991. — № 4. — С. 24−26.
  16. H.H., Козарезова Т. И., Слобожанина Е. И., Волкова Л. И. Экология и железодефицитные анемии у детей республики Беларусь // Педиатрия. 1998. — № 25.-С. 58−62.
  17. P.E. Регламентация экспериментов на животных этика, законодательства, альтернативы // Усп. физиол. наук. — 1998. — Т.29, № 4. — С.74−92.
  18. Г. Е., Коршун М. Н., Швайко И. И. Исследование защитных свойств пектина при экспериментальной ртутной интоксикации // Рациональное питание (Киев). 1971. — Вып. 9. — С. 101−103.
  19. Ю.Н., Артюков A.A., Козловская Э. П. и др. Зостерин. Владивосток: Дальнаука, 1997.-212 с.
  20. А.И., Беляков H.A., Соломенников A.B. Энтеросорбенты // В кн.: Энтеросорбция / Под ред. Н. А. Белякова. Л.: Центр сорбционных технологий, 1991. -С. 9−47.
  21. A.M., Жулидов A.B. Биомониторинг металлов в пресноводных экосистемах. Л.: Гидрометеоиздат, 1991. 312 с.
  22. А.Т., Пятницкий И. В. Аналитическая химия: В двух книгах: кн. 1 -М.: Химия, 1990.-480 с.
  23. Н.И., Осипенко Б. Г., Мускдынова П. А., Новохатская Н. К. Биохимические исследования в токсикологическом эксперименте. Иркутск: Изд-во Иркутского университета, 1990. 216 с.
  24. Э.Г., Ашубаева З. Д., Рахимов Д. А. и др. Бактерицидное действие пектинов на возбудителей острых кишечных инфеккций // Мед. журн. Узбекистана. -1991.- № 7.-С.20−22.
  25. Э.Г., Шавахабов Ш. Ш., Бондаренко В. М., Ашубаева З. Д. Экспериментальное и клиническое изучение влияния пектина на возбудителей острых кишечных инфекций // Журн. микробиол. 1994. — Прилож. — С. 106−109.
  26. О.В., Хотимченко Ю. С. Энтеросорбция свинца детоксапом у детей // Педиатрия -2002.- № 1.-С. 76−80.
  27. О.Н., Оберт A.C., Винокуров Ю. И. Влияние факторов внешней среды на частоту и выраженность дисбактериоза кишечника у детей раннего возраста // Педиатрия. 1995. -№ 5. — С. 61−62.
  28. В.А. Стратегия разработки, применения и оценки эффективности биологически активных добавок к пище // Вопр. питания. 1996. — № 6. — С. 3−11.
  29. Ю.С., Хасина Э. И. Ковалев В.В. и др. Эффективность пищевых некрахмальных полисахаридов при экспериментальном токсическом гепатите // Вопр. питания. 2000. — Т. 69. — № 1−2. — С. 22−26.
  30. Ю.С., Кропотов A.B., Хотимченко М. Ю. Фармакологические свойства пектинов // Эфферентная терапия. 2001а. — Т. 7, № 4. — С. 22−36.
  31. Ю.С., Одинцова М. В., Ковалев В. В. Полисорбовит. Томск: Изд-воНТЛ, 20 016.-132 с.
  32. О.В., Гордеец A.B., Хотимченко Ю. С. Оценка эффективности биологически активной добавки «полисорбовит-50» при лечении острых кишечных инфекций, осложненных дисбактриозом кишечника // Тихоокеанский мед. журн. 2001. № 1 (6).-С. 52−56.
  33. Abbasi S., Dickinson Е. High-pressure-induced rheological changes of low-methoxyl pectin plus micellar casein mixtures // J. Agrie. Food Chem. 2002. — Vol. 5. -P. 3559−3565.
  34. Anderson M.E. Determination of glutathione and glutathione disulfide in biological samples. Methods Enzymol. 1985. — Vol. 113. — P. 548−553.
  35. Anderson J.W., Jones A.E., Riddell-Mason S. Ten different dietary fibers have significantly different effects on serum and liver lipids of cholesterol-fed rats // J. Nutr. -1994. Vol. 124, N 1. — P. 78−83.
  36. Andoh A., Bamba T., Sasaki M. Physiological and anti-inflammatory roles of dietary fiber and butyrate in intestinal functions // J. Parenter. Enteral Nutr. 1999. — Vol. 23, N 5 (Suppl.). — P. S70-S73.
  37. Angyal S.J., Complex of metal catio with carbohydrates in solution // Adv. Carbo-hydr. Chem. Biochem. 1989. — Vol. 1. — P. 47.
  38. Asamizu T., Nakayama N., Nishi A. Pectic polysaccharides in carrot cells growing in suspension culture // Planta. 1984. — Vol. 160. — P. 469−473.
  39. Aspinal G.O., Chemistry of cell wall polysaccharides // In: The biochemistry of plants. Vol. 3. Ed.: Press J. Academic Press, New York. 1980. P. 473−500.
  40. Axelos M.A.V., Thibault J.F. The chemistry of low methoxyl pectin // In: The Chemistry and Technology of Pectin. Ed. Walter R.H. Academic Press, New York. 1991. -P. 109.
  41. Bacic A., Harris P.J., Stone B. A // In: The Biochemistry of plants 14, Carbohydrate. London: Academic Press, 1988. P. 297−371.
  42. Baier M., Goldberg R., Catesson A.M., Liberman M., Bouchemal N., Michon V., Herve-Penhoat C. Pectin changes in samples containing polar cambium and inner bark in relation to the seasonal cycle // Planta. 1994. — Vol. 193. — P. 446.
  43. Barbolt T.A., Abraham R. Dose-response, sex difference, and the effect of bran in dimethylhydrazine-induced intestinal tumorigenesis in rats // Toxicol. Appl. Pharmacol. -1980. Vol. 55, N 3. — P. 417−422.
  44. Bauer H.G., Asp N.-G., Dahlqvist A. et al. Effect of two kinds of pectin and guar gum on dimethylhydrazine initiation of colon tumors and fecal /S-glucuronidase activity in the rat // Cancer Res. 1981. — Vol. 41, N 6. — P. 2518−2523.
  45. Berggren A.M., Bjorck I.M.E., Nyman E.M.G.L., Eggum B.O. Short-chain fatty-acid content and pH in cecum of rats given various sources of carbohydrates // J. Sci. Food Agric. 1993. — Vol. 63, N 4. — P. 397−406.
  46. Black S.A., Smit C.J. The effect of demethylation procedures on the quality of low ester pectins used in desert gels // J. Food. Sci. 1972. — Vol. 37. — P.730.
  47. Bladergroen В A, Beynen AC, Geelen MJ. Dietary pectin lowers sphingomyelin concentration in VLDL and raises hepatic sphingomyelinase activity in rats // J. Nutr. -1999.-Vol. 129.-P. 628−633.
  48. Brown L., Rosner В., Willett W.W., Sacks F.M. Cholesterol-lowering effects of dietary fiber: a meta-analysis // Am. J. Clin. Nutr. 1999. — Vol. 69, N 1. — P. 30−42.
  49. Carpita N.C., Gibeaut D.M. Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of molecular structure with the physical properties of the cell wall during growth // Plant Journal. 1993. — Vol. 3. — P. 706−713.
  50. Change K., Dhurandhar N., You X., Miyamoto A. Cultivar/location and processing methods affect yield and quality of sunflower pectin // J. Food Sci. -1994. Vol. 59. — P. 602.
  51. Chen W.-J.L., Anderson J.W., Jennings D. Propionate may mediate the Hypocholes-terolemic effects of certain soluble plant fibers in cholesterol fed rats // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1984. — Vol. 175, N 2. — P. 215−218.
  52. Cheng L., Kindel P.K. Detection and homogeneity of sell wall pectic polysaccharides of lemna mirror// Carbohydr. Res. 1997. — Vol. 301. — P. 205−212.
  53. Cheng K., Lim L.Y. Insulin-loaded calcium pectinate nanoparticles: Effects of pectin molecular weight and formulation pH // Drug Develop. Industr. Pharm. 2004. — Vol. 30, N4.-P. 359−367.
  54. Christl S.U., Bartram H.P., Buckert A. et al. Influence of starch fermentation on bile-acid metabolism by colonic bacteria // Nutr. Cancer. Int. J. 1995. — Vol. 24, N 1. — P. 67−75.
  55. Clausen M.R., Mortensen P.B. Kinetic-studies on the metabolism of short-chain fatty-acids and glucose by isolated rat colonocytes // Gastroenterology. 1994. — Vol. 106, N2.-P. 423−432.
  56. Crandall P.G., Braddock R.J., Rouse A.H. Effect of drying on pectin made from lime and lemon pomace // J. Food Sci. 1978. — Vol. 43, N 6. — P. 1680−1684.
  57. Cummingis J.H., Hill M.J., Bone E.S. et al. Effect of meat protein and dietary fiber on colonic function and metabolism. 2. Bacterial metabolites in feces and urine // Am. J. Clin. Nutr.- 1979.-Vol. 32, N 10.-P. 2094−2101.
  58. Cummings J.H., Englyst H.N. Fermentation in the human large intestine and the available substrates // Am. J. Clin. Nutr. 1987. — Vol. 45. — P. 1243−1255.
  59. Daas P.J.H., Boxma B., Hopman A.M.C.P., Voragen A.G.P., Schols H.A. Non-esterified galacturonic acid sequence homology of pectins // Inc. Biopoly. 2001. Vol. 58. -P. 1−8.
  60. Davies M.A.F., Gidley M.J., Morris E.R. Intermolecular association in pectic solutions // Int. J. Biol. Marcomolec. 1980. Vol. 2. — P. 330.
  61. Dematry M., Morvan C., Thellier M. Calcium and the cell wall // Plant Cell Environ. 1987.-Vol. 7.-P.441.
  62. Denes J.-M., Baron A., Renard C.M.G.C., Pean C., Drilleau J-F // Carbohydr. Res.-2000. Vol. 327. — P. 385−393.
  63. DeVries J.A., Den Viji C.H., Voragen A.G.J., Rombouts F.M., Pilnik W. Structural features of the neutral side chains of apple pectic substances // Carbphydrate polymers. -1983.-Vol.3.-P. 193−205.
  64. Doherty J., Jackson A.A. The effect of dietary pectin on rapid catch-up weight gain and urea kinetics in children recovering from severe undernutrition // Acta Paediatr. -1992. Vol. 81, N 6/7. — P. 514−517.
  65. Donaghy J.A., McKay A.M. Pectin extraction from citrus peel by polygalacturonase produced on whey // Biores. Technol. 1994a. — Vol. 47, N 1. — P. 25−28.
  66. Donaghy J.A., McKay A.M. The use of Kluyveromyces fragilis for the extraction of orange peel pectins //J. Appl. Bacterid. 1994b. — Vol. 76, N 5. — P. 505−510.
  67. Dongowski G. Influence of pectin structure on the interaction with bile acids under in vitro conditions // Z. Lebensm. Unters Forsch. -1995. Bd. 201, N 4. — S. 390−398.
  68. El-Nawawi S.A., Shehata F.R. Effect of the extraction temperature on the quality characteristics of pectin extracted from Egyptian orange peel // Biol. Waste. -1988. Vol. 24. — P. 307.
  69. Fan J., Li R. Advanced applied statistics, 2000. 150 p.
  70. FAO, Nutrition Meetings // Rep. Ser. -1969. N 46A. — P.133.
  71. Fernandez M.L. Distinct mechanisms of plasma LDL lowering by dietary fiber in the guinea pig: specific effects of pectin, guar gum, and psyllium // J. Lipid Res. 1995. -Vol. 36, N 11. — P. 2394−2404.
  72. Fernandez M.L., Lin E.C.K., Trejo A., McNamara D.J. Prickly pear (Opuntia sp) pectin reverses low-density-lipoprotein receptor suppression induced by a hypercholes-terolemic diet in guinea-pigs // J. Nutr. 1992. — Vol. 122, N 12. — P. 2330−2340.
  73. Fishman M.L., Chau H.K., Hoagland P., Ayyad K. Characterization of pectin flash extracted from orange albedo by microwave heating under pressure // Carbohydr. Res. 2000. Vol. 323. — P. 126−138.
  74. Fishman M.L., Chau H.K., Kolpak F., Brady J. Solvent effects on the molecular properties of pectin //J. Agric. Food Chem. -2001. Vol. 49. — P. 4494−4501.
  75. Forster S., Dongowski G, Kunzek H. Structure, physicochemical properties and in vitro fermentation of enzymatically degraded cell wall materials from apples // Nahrung. -2002. Vol. 46. — P. 158−166.
  76. Freeman H.J., Kim Y.S., Spiller G.A. A double-blind study on the effect of different purified cellulose and pectin fiber on 1,2-dimethylhydrazine-induced rat colonic neoplasia // Cancer Res. 1980. — Vol. 40, N 8. — P. 2661−2665.
  77. Freudenheim J.L., Graham S., Marshall J.R. et al. A case control study of diet and rectal cancer in western New York // Am. J. Epidemiol. 1990. — Vol. 131, N 4. — P. 612 624.
  78. Fukunaga T., Sasaki M., Araki Y. et al. Effects of the soluble fibre pectin on intestinal cell proliferation, fecal short chain fatty acid production and microbial population // Digestion. 2003. — Vol. 67. — P. 42−49.
  79. Garcia-Diez F., Garcia-Mediavilla V., Bayon J.E., Gonzalez-Gallego J. Pectin feeding influences fecal bile acid excretion, hepatic bile acid and cholesterol synthesis and serum cholesterol in rats // J. Nutr. 1996. — Vol. 126, N 7. — P. 1766−1771.
  80. Gibson G.R., Macfarlane S., Cummings J.H. The fermentability of polysaccharides by mixed faecal bacteria in relation to their suitability as bulk-forming laxatives // Lett. Appl. Microbiol. 1990. — Vol. 11. — P. 251−254.
  81. Gonzalez M., Rivas C., Caride B. et al. Effect of orange and apple pectin on cholesterol concentration in serum, liver and faeces // J. Physiol. Biochem. 1998. — Vol. 54, N 2.-P. 99−104.
  82. Gross M.O., Rao V.N.M., Smit C.J.B. Rheological characterization of low methoxyl pectin gel by normal creep and relaxation // J. Text. Stud. -1980. Vol. 11.- P. 271.
  83. Groudeva J., Kratchanova M.G., Panchev I.N., Kratchanov C.G. Application of granulated pectin in the treatment of hyperlipoproteinemia // Z. Lebensm. Unters. Forsch. -1996. Vol. A 204. — P. 374−378.
  84. Guillon F., Renard C.M.G.C., Hospers J., Thibault J.-F., Barry J.-L. Characterization of residual fibres from fermentation of pea and apple fibres by human faecal bacteria // J. Sci. Food Agric. 1995. — Vol. 68. — P. 521−529.
  85. Gurer H., Ercal N. Can antioxidants be beneficial in the treatment of lead poisoning? // Free Radical Biol. Med. 2000. — Vol. 29, N 10. — P. 927−945.
  86. Hague A., Elder D.J.E., Hicks D.J., Paraskeva L.H. Apoptosis in colorectal tumor-cells. Induction by the short-chain fatty-acids butyrate, propionate and acetate and by the bile-salt deoxycholate // Int. J. Cancer. 1995. — Vol. 60, N 3. — P. 400−406.
  87. Harris P J., Ferguson L.R. Dietary fibers may protect or enhance carcinogenesis // Mutat. Res. 1999. — Vol. 443, N 1−2. — P. 95−110.
  88. Hart D.A., Kindel P.K. A novel reaction involved in the degradation of apiogalactu-ronans from lemna minor and the isolation of apiobiose as a product // Biochemistry. -1970.-Vol. 9.-P. 2190−2196.
  89. Hawang J., Kokini J.L. Contribution of the side chains to rheological properties of pectins // Carbohydr. Polym. 1992. — Vol. 19. — P. 41.
  90. Heerdt B.G., Houston M.A., Augenlicht L.H. Potentiation by specific short-chain fatty-acids of differentiation and apoptosis in human colonic carcinoma cell fines // Cancer Res. 1994. — Vol. 54, N 12. — P. 3288−3294.
  91. Heitman D.W., Ord V.A., Hunter K.E., Cameron I.L. Effect of dietary cellulose on ^ cell proliferation and progression of 1,2-dimethylhydrazine-induced colon carcinogenesisin rat // Cancer Res. 1989. — Vol. 49, N 20. — P. 5581−5585.
  92. Heitman D.W., Hardman W.E., Cameron I.L. Dietary supplementation with pectin and guar gum on 1,2-dimethylhydrazine-induced colon carcinogenesis in rat // Carcinogenesis. 1992. — Vol. 13, N 5. — P. 815−818.
  93. Hensel A., Meier K. Pectins and xyloglucans exhibit antimutagenic activities against nitroaromatic compounds // Planta Med. 1999. — Vol. 65, N 5. — P. 395−399.
  94. Jacobs L.R., Lupton J.R. Relationship between colonic luminal pH, cell prolif-eraion, and colon carcinogenesis in 1,2-dimethylhydrazine-treated rats fed high fiber diets // Cancer Res. 1986. — Vol. 46, N 4. — P. 1727−1734.
  95. Jang L.K., Geesey G.G., Lopez S.L., Eastman S.L., Wichlacz P.L. Sorption equilib-^ rium of copper by partially-coagulated calcium alginate gel // Chem. Eng. Comm. 1992.-Vol. 57.-P. 1713−1716.
  96. Jarvis M.C. Structure and properties of pectin gels in plant cell wall // Plant Cell Environ. 1984.-Vol.7.-P.153.
  97. Jiang Y.H., Lupton J.R., Chapkin R.S. Dietary fat and fiber modulate the effect of carcinogen on colonic protein kinase C lambda expression in rats // J. Nutr. 1997. — Vol. 127, N 10.-P. 1938−1943.
  98. Jodra Y., Mijangos F. Ion exchange selectivities of calcium alginate gels for heavy metals. Water Sci. Technol. 2001. — Vol. 43, № 2. — P. 237−244.
  99. Kamath P. S., Phillips S.F., Zinsmeister A.R. Short chain fatty-acids stimulate ileal motility in humans // Gastroenterology. 1988. — Vol. 95, N 6. — P. 1496−1502.
  100. Kaminski W., Modrzejewska Z. Application of chitosan membranes in separation of heavy metal ions. Sep. Sci. Technol. 1997. — Vol. 32, N 16. — P. 2659 — 2668.
  101. Kartel MT., Kupchik LA., Veisov BK. Evaluation of pectin binding of heavy metal ions in aqueous solutions // Chemosphere. -1999. Vol. 38, N 11. — P. 2591−2596.
  102. Kelley J.J., Tsai A.C. Effect of pectin, gum arabic and agar on cholesterol absorption, synthesis, and turnover in rats // J. Nutr. 1978. — Vol. 108, N 4. — P. 630−639.
  103. Kikuchi A., Edashige Y., Ishii T., Satoh S. A xylogalacturonan whose level is dependent on the size of cell clusters is present in the pectin from cultured carrot cells // Planta. -1996. Vol. 200. — P. 369−372.
  104. Kim W.J., Susulskiu F., Rees S.C.K. Chemical and gelation characteristics of am-monia-demethylated sunflower pectins // J. Food Sci. 1978. — Vol. 43. — P. 1436.
  105. Kishimoto Y., Wakabayashi S., Takeda H. Hypocholesterolemic effect of dietary fiber: relation to intestinal fermentation and bile acid excretion // J. Nutr. Sci. Vitaminol. -1995. Vol. 41, N l.-P. 151−161.
  106. Knopp R.H., Superko H.R., Davidson M. et al. Long-term blood cholesterol-lowering effects of a dietary fiber supplement // Am. J. Prev. Med. 1999. — Vol. 17. — P. 18−23.
  107. Kobayashi M., Nakagawa H., Asaka T., Matoh T. Borate-rhamnogalacturonan II bonding reinforced by Ca retains pectic polysaccharides in higher plants cell walls // Plant Physiol. 1999.-Vol. 119.-P. 199−203.
  108. Kohn R. Binding of divalent cations to oligomeric fragments of pectin // Carbohydr. Res. 1987. — Vol. 160. — P. 643.
  109. Komalavilas P., Mort A.J. The acetylation at 0−3 of galacturonic acid in the rham-nose-rich region of pectin // Carbohydr. Res. 1989. — Vol.189. — P. 261−272.
  110. Kritchevsky D. Fiber, lipid, and atherosclerosis // Am. J. Clin. Nutr. 1978. — Vol. 31, N 10 (Suppl.).-P. S65-S74.
  111. Kritchevsky D. In vitro binding properties of dietary fibre // Eur. J. Clin. Nutr. -1995. Vol. 49, N S3. — P. SI 13-S115.
  112. MacDonald N.S., Eznurlian F., Spain P., Rounds D.E. Agents diminishing skeletal accumulation of lead // Arch. Indust. Hyg. Occup. Med. 1953. — Vol. 7, N 3. — P. 217 220.
  113. Mackie W., Perez S., Rizzo R., Taravel F., Vignon M. Aspects of the polygalactu-ronate in the solid state and in solution // Int. J. Biol. 1983. — Vol. 5. — P. 329−341.
  114. Matheson H.B., Coon I.S., Story J.A. Cholesterol 7-alpha-hydroxylase activity is increased by dietary modification with psyllium hydrocolloid, pectin, cholesterol and cholestyramine in rats // J. Nutr. 1995. — Vol. 125, N 3. — P. 454−458.
  115. McKay G., Blair H.S., Findon A. Equilibrium studies for the sorption of metal ions onto chitosan // Ind. J. Chem. 1989. — Vol. 28A. — P. 356−360.
  116. Michaelsen T.E., Gilje A., Samuelsen A.B. et al. Interaction between human complement and a pectin type polysaccharide fraction, PMII, from the leaves of Plantago major L. // Scand. L. Immunol. 2000. — Vol. 52. — P. 483−490.
  117. Miyazaki S., Kawasaki N., Nakamura T., Iwatsu M., Hayashi T., Hou W.M., Att-wood D. Oral mucosal bioadhesive tablets of pectin and HPMC: in vitro and in vivo evaluation // Int. J. Pharmaceut. 2000. — Vol. 204, N ½. — P. 127−132.
  118. Mohnen D. Biosynthesis of pectins and galactomannans // In: Comprehensive natural products chemistry. Vol. 3. Carbohydrates and their derivates including tannins, cellulose, and related lignins. Oxford Elsevier, 1999. P. 497−527.
  119. Moundras C., Demigne C., Mazur A., Remesy C. The cholesterol-lowering effect of steroid sequestrants is modulated by large-intestine fermentations // J. Nutr. Biochem. -^ 1995.-Vol. 6, N3.-P. 158−162.
  120. Murakami Y., Kitano E., Kitamura H., Iwata H. Effect of adsorbent of Ripo-sorber™, a cellulose microparticle with immobilized dextran sulfate, on the serum complement system // J. Biomater. Sci. Polymer Edn. 2003. — Vol. 14, N 11. — P. 1255−1267.
  121. Muralikrishna G., Taranathan R.N. Characterization of pectin polysaccharides from pulse husks // Food Chem. -1994. Vol. 50. — P. 87.
  122. Nangia-Makker P., Conklin J., Hogan V., Raz A. Carbohydrate-binding proteins in cancer, and their ligands as therapeutic agents // Trends Mol. Med. 2002. — Vol. 8, N 4. -P. 187−192.
  123. Nie Y., Li Y., Wu H. et al. Colloidal bismuth pectin: an alternative to bismuth subcitrate for the treatment of Helicobacter pylori-positive duodenal ulcer // Helicobacter. -1999.-Vol. 4, N2.-P. 128−134.
  124. Noack J., Kleessen B., Proll J. et al. Dietary guar gum and pectin stimulate intestinal microbial polyamine synthesis in rats // J. Nutr. 1998. — Vol. 128, N 8. — P. 1385−1391.
  125. O’Neill M., Albersheim P., Darvill A. The pectic polysaccharides of primary cell walls // In: Methods in plants biochemistry. Vol. 2. Ed.: Dey D.M. London. Academic Press, 1990.-P. 415−441.
  126. Oakenfull D., Fenwick D.E. Hydrophobic interactions in aqueous organic mixed solvents // J. Chem. Soc. Faraday Trans. I. 1979. — Vol. 75. — P. 636.
  127. Oakenfull D., Scott A. New approaches to the investigation of food gels //In: Gum and stabilizers for the food industry. Eds.: Philip G.O., Wedlock D.J., Williams P.A. London. Elsevier, 1986.
  128. Oakenfull R.C., Scott A. Hydrophobic interaction in the gelation of high methoxyl pectins // J. Food Sci. 1984. — Vol. 49. — P. 1093.
  129. Okenfull D.G. The chemistry of high methoxyl pectins // In: The chemistry and technology of pectin. Ed.: Walter R.H. New York. Academic Press, 1991. P. 87.
  130. Olano-Martin E., Rimbach G.H., Gibson G.R., Rastall R.A. Pectins and pectic-oligosaccharides induce apoptosis in vitro human colonic adenocarcinoma cells // Anticancer Res. 2003. — Vol. 23. — P. 341−346.
  131. Olano-Martin E., Williams M.R., Gibson G.R., Rastall R.A. Pectins and pectic-oligosaccharides inhibit Escherichia coli 0157: H7 Shiga toxin as directed towards the human colonic cell line HT29 // FEMS Microbiol. Lett. 2003. — Vol. 218. — P. 101−105.
  132. Pellerin P., O’Neilll M.A. The interation of the pectic polysaccharide rhamnogalac-turonan II with heavy metals and lanthanides in wines and fruit juices // Analusis. -1998. -Vol. 26. P. M32-M36.
  133. Pellerin P., O’Neilll M.A., Pierre C., Cabanis M.-T., Darvill A.G., Albersheim P., Moutounet M. Lead complexation in wines with the dimers of the grape pectic polysaccharide rhamnogalacturonan II // J. Int. Sci. Vigne et Vin. 1997. — Vol.31. — P. 33−41.
  134. Pilnik W., Rombouts F.M. Polysaccharides and food processing // Carbohydr. Res.-1985.-Vol. 142, N1.-P. 93−105.
  135. Plaami S.P. Content of dietary fiber in foods and its physiological effects // Food Rev. Int. 1997. — Vol. 13, N 1. — P. 29−76.
  136. Popov S.V., Popova G.Y., Ovodova R.G. et al. Effects of polysaccharides from Silene vulgaris on phagocytes // Int. J. Immunopharmacol. 1999. — Vol. 21, N 9. — P. 617 624.
  137. Rabbani G.H., Teka T., Zaman B., Majid N., Khatun M., Fuchs G.J. Clinical studies in persistent diarrhea: dietary management with green banana or pectin in Bangladesh children // Gastroenterology. 2001. — Vol. 121. — P. 554−560.
  138. Rafter J.J., Eng V.W.S., Furrer R. et al. Effects of calcium and pH on the mucosal damage produced by deoxycholic acid in the rat colon // Gut. 1986. — Vol. 27, N 11. — P. 1320−1329.
  139. Rao C.V., Chou D., Simi B. et al. Prevention of colonic aberrant crypt foci and modulation of large bowel microbial activity by dietary coffee fiber, inulin and pectin // Carcinogenesis.- 1998.-Vol. 19, N 10.-P. 1815−1819.
  140. Rao M.A., Cooley H.J. Influence of glucose and fructose on high methoxyl pectin gel strength and structure development // J. Food Qual. 1994. — Vol. 17. — P. 21.
  141. Ravanat G., Rinaudo M. Investigation on oligo and polygalacturonic acids by poten-tiomatry and circular dichroism // Biopolymers. 1980. — Vol. 9. — P. 2209.
  142. Renard C.M.G.C., Voragen A.G.J., Thibault J.F., Pilnik W. Comparison between enzymatically and chemically extracted pectins from apple cell walls // Animal Food Sci. Technol. 1991. — Vol. 32, N 1/3. — P. 69−75.
  143. Renard C.M.G.C., Thibault J.F. Structure and properties of apple and sugar beet pectins extracted by chelating agents // Carbohydr. Res. 1993. — Vol. 244. — P.99.
  144. Ridley B.L., O’Neil M.A., Mohnen D. Pectins: structure, biosynthesis, and oligoga-lacturonide-related signaling // Phytochemistry 2001. — Vol. 57. — P. 929−967.
  145. Rihouey C., Morvan C., Borissova I., Jauneau A., Demarty M., Jarvis M. Structural features of CDTA-soluble pectinsfrom flax hypocotyls // Carbohydr. Polym. 1995. — Vol. 28.-P. 159−166.
  146. Rolandelli R.H., Koruda M.J., Settle R.G. et al. The effect of pectin on hepatic lipo-genesis in the enterally-fed rat // J. Nutr. 1989. — Vol. 119, N 1. — P. 89−93.
  147. Rolin C., De Vried J // In: Food Gels, Pectin- Ed.: Harris P. Amsterdam. Elsevier, 1990.-P. 401−434.
  148. Sakai T., Okushima M., Yoshitaka S. Purification, crystallization and some properties of endopolygalacturonase from Kluyveromyces fragilis // Agricul. Biol. Chem. 1984. -Vol. 48, N8.-P. 1951−1961.
  149. Sakai T., Sakamoto T., Hallaert J., Vandamme E.J. Pectin, pectinase and protopecti-nase: production, properties, and application //Adv. Appl. Microbiol. 1993. — Vol. 39. -P. 213.
  150. Sanchez-Fructuoso A.I., Prats D., Barrientos A. Treatment of chronic lead intoxication // Ann. Intern. Med. 1999. — Vol. 131, N 9. — P. 716.
  151. Saulnier L., Thibault J.-F. Ferulic acid and diferulic acids as components of sugar-beet pectins and maize bran heteroxylans // J. Sci. Food Agrie. -1999.- Vol. 79.- P. 396 402.
  152. Scheppach W. Effects of short-chain fatty-acids on gut morphology and function // Gut.-1994.-Vol. 35.-N 1 (Suppl.).-P. S35-S38.
  153. Schiewer S., Volesky B. Ionic strength and electrostatic effects in biosorption of divalent metal ions and protons // Environ. Sci. Technol. 1997. — Vol. 31. — P. 2478−2485.
  154. Schmuhl R., Krieg H.M., Keizer K. Adsorption of Cu (II) and Cr (VI) ions by chito-san: Kinetics and equilibrium studies // Water SA. 2001. — Vol. 27, N 1. — P. l-8.
  155. Schols H.A., Bakx E.J., Schipper D., Voragen A.J.G. A xylogalacturonan subunit present in the modified hairy regions of apple pectin // Carbohydr. Res. 1995. — Vol. 279. -P. 265−279.
  156. Schols H.A., Voragen A. G J. Complex pectins: structure elucidation using enzymes // In: Pectins and pectinases. J. Visser and A.G.J. Voragen (ed.), Elsevier Science, Amsterdam, The Netherlands, 1996. P. 3−19.
  157. Semde R., Amighi K., Devleeschouwer M.J., Moes A.J. Studies of pectin HM/Eudragit® RL/Eudragit® NE film-coating formulations intended for colonic drug delivery // Int. J. Pharmacol. 2000. — Vol. 197, N12. — P. 181−192.
  158. Simpson B.K., Egyankor K.B., Martin A.M. Extraction, purification and determination of pectin in tropical fruits// J. Food Process Preserv. 1984. — Vol. 2. — P.63.
  159. Smidsrod O., Haug A. Estimation of relative stiffness of the molecular chain in polyelectrolytes from measurements of viscosity at different ionic strengths // Biopolymers.- 1971.-Vol. 10.-P.1213.
  160. Solfrizzo M., Visconti A., Avantaggiato G., Torres A., Chulze S. In vitro and in vivo studies to assess the effectiveness of cholestyramine as a binding agent for fumonisins //Mycopathologia.-2000.-Vol. 151.-P. 147−153.
  161. Southgate D.A.T. The relation between composition and properties of dietary fiber and physiological effects // In: Dietary Fiber: Basic and Clinical Aspects. New York: Plenum Press, 1986. P. 35−48.
  162. Stark A., Nyska A., Madar Z. Metabolic and morphometric changes in small and large intestine in rats fed high-fiber diets // Toxicol. Pathol. 1996. — Vol. 24, N 2. — P. 166−171.
  163. Sun Y., Koski K.G., Wykes L J., Scott M.E. Dietary pectin, but not cellulose, influences Heligmosomoides polygyrus (Nematoda) reproduction and intestinal morphology in the mouse // Parasitology. 2002. — Vol. 124. — P. 447−455.
  164. Szpunar J., Pellerin P., Makarov A., Doco T., Williams P., Lobiski R. Speciation of metal-carbohydrate complexes in fruit and vegetable samples by size-exlusion Hplc-Icp-MS// J. Anal. Atomic Spectrom. -1999. -Vol. 14. P. 639−644.
  165. Ta C.A., Zee J.A., Desrosiers T. et al. Binding capacity of various fibre to pesticide residues under simulated gastrointestinal conditions // Food Chem. Toxicol. 1999. — Vol.37, N 12.-P. 1147−1151.
  166. Tahiri M., Pellerin P., Tressol J.C., Doco T., Pepin D., Rayssiguier Y., Coudray C. The rhamnogalacturonan II dimer decreases intestinal absorption and tissue accumulation of lead in rats // J. Nutr. 2000. — Vol. 130. — P. 249−253.
  167. Tandon S.K., Singh S., Prasad S., Srivastava S., Siddiqui M.K.J. Reversal of lead-induced oxidative stress by chelating agent, antioxidant, or their combination in the rat // Environ. Res. 2002b. — Vol. 90, N 1. — P. 61−66.
  168. Taper H.S., Roberfroid M. Influence of inulin and oligofructose on breast cancer and tumor growth // J. Nutr. 1999. — Vol. 129. — N 7 (Suppl.). — P. 1488S-1491S.
  169. Thakur B.R., Singh R.K., Handa A.K. Chemistry and uses of pectin. A review // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 1997. — Vol. 37, N 1. — P. 37−47.
  170. Thibault J.F., Rinaudo M. Interactions of mono and divalent counter ions with alkali and enzyme-deesterified pectins // Biopolymers. -1985. Vol. 24. — P. 2131.
  171. Thibault J.-F., Renard C.M.G.C., Axelos M.A.V., Roger P., Crepeau M.-J. Studies of the length of homogalacturonic regions in pectins by acid hydrolysis // Carbohydr. Res. 1993.-Vol. 238.-P. 271−286.
  172. Thornton F.J., Barbul A. Healing in the gastrointestinal tract // Gastroenterol.Clin. -1996.-Vol. 25, N4.-P. 717.
  173. Titgemeyer E.C., Bouquin L.D., Fahey G.C., Garleb K.A. Fermentability of various fiber sources by human fecal bacteria in vitro // Am. J. Clin. Nutr. 1991. — Vol. 53. — P. 1418−1424.
  174. Topping D. Hydroxypropylmethylcellulose, viscosity, and plasma-cholesterol control // Nutr. Rev. 1994. — Vol. 52, N 5. — P. 176−178.
  175. Trock B., Lanza E., Greenwald P. Dietary fiber, vegetables, and colon cancer. Critical review and meta-analyses of the epidemiologic evidence // J. Natl. Cancer Inst. 1990. -Vol. 82, N8.-P. 650−661.
  176. Tsai A.C., Elias J., Kelley J.J. et al. Influence of certain fibers on serum and tissue cholesterol levels in rats // J. Nutr. 1976. — Vol. 106, N 1. — P. 118−123.
  177. Van Custem P., Messiaen J. Biological effects of pectic fragments in plant cells // Acta Bot. Neerl. 1994. — Vol. 43. — P. 231−245.
  178. Veldman F.J., Nair C.H., Vorster H.H. et al. Possible mechanisms through which dietary pectin influences fibrin network architecture in hypercholesterolemic subjects // Thromb. Res. 1999. — Vol. 93, N 6. — P. 253−264.
  179. Vergara-Jimenez M., Conde K., Erickson S.K., Fernandez M.L. Hypolipidemic mechanisms of pectin and psillium in guinea pigs fed high fat-sucrose diets: alterations on hepatic cholesterol metabolism // J. Lipid Res. 1998. — Vol. 39, N 7. — P. 1455−1465.
  180. Visser J., Voragen A.G.J. Pectins and pectinases, progress in biotechnology. Vol. 14. Amsterdam. Elsevier, 1996.
  181. Volesky B., Weber J., Park J.M. Development of a heavy metal biosorption process // Wat. Res. 2001. — Vol. 37, N 2. — P. 297−306.
  182. Volesky B. Sorption and biosorption, BV-Sorbex, Inc., St. Lambert, Quebec. -2003. -316pgs.
  183. Voragen A.G. J., Pilnik W., Thibault J.-F., Axelos M.A.V., Renard C.M.G.C//In: Food Polysaccharides and Their Applications- Ed.: Stephen A.M., Marcel Dekker- New York, 1995. P. 287−339.
  184. Walkinshaw M.D., Arnott S. Conformations and interactions of pectin. II. Models for junction zones in pectinic acid and calcium pectate gels // J. Molec. Biol. -1981. —Vol. 53.-P. 1075.
  185. Wang J., Friedman E.A. Short-chain fatty acids induced cell cycle inhibitors in colonocytes // Gastroenterology. 1998. — Vol. 114, N 5. — P. 940−946.
  186. Yagy K. Assay for blood plasma or serum. In: Packer L, ed. Methods in enzymol-ogy. New-York: Academic Press, 1984. P. 328−331.
  187. Yamaguchi F., Shimizu N., Hatanaka C. Preparation and physiological effect of Iow-molecular-weight pectin // Biosci. Biotech. Biochem. 1994. — Vol. 58, N 4. — P. 679 682.
  188. Yamaguchi F., Uchida S., Watabe S. et al. Relationship between molecular weights of pectin and hypocholesterolemic effects in rats // Biosci. Biotech. Biochem. 1995. -Vol. 59, N 11.-P. 2130−2131.
  189. Yu L., Mort A.J. Partial characterization of xylogalacturonans from cell wall of ripe watermelon fruit: inhibition of endopolygalacturonase activity by xylosylation // In: Pectins and pectinases. Amsredam. Elsevier, 1996. P. 79−88.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!