Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Структурные изменения лимфоидной ткани селезенки крыс при воздействии паров формальдегида

Диссертация: Структурные изменения лимфоидной ткани селезенки крыс при воздействии паров формальдегида
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Формальдегид — один из широко распространенных загрязнителей окружающей среды (Германова А.Д., 1982). Проникая в организм человека через слизистые оболочки дыхательных путей, пищеварительного тракта и кожу, он концентрируется в тканях с интенсивным синтезом белков и высокой пролиферативной активностью, в которых он может взаимодействовать с нуклеофильными группами молекул белков, ДНК и РНК… Читать ещё >

Структурные изменения лимфоидной ткани селезенки крыс при воздействии паров формальдегида (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Введение
  • С
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Современные представления о структуре и функциях селезенки С
    • 1. 2. Структурно-функциональная характеристика белой пульпы селезенки С
    • 1. 3. Реактивность лимфоидных органов при токсических воздействиях С. 27 1.4 .Влияние альдегидов на структурно-функциональное состояние лимфоидных органов С
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Организация эксперимента С
    • 2. 2. Гистологические методы С
    • 2. 3. Морфометрические методы исследования С
    • 2. 4. Методы вариационно- статистической обработки результатов исследования С
  • Глава 3. Результаты собственных исследований
    • 3. 1. Микротопография и клеточный состав белой пульпы селезенки крыс С
    • 3. 2. Реакция белой пульпы селезенки крыс на кратковременное воздействие паров формальдегида С
    • 3. 3. Реакция белой пульпы селезенки крыс на длительное воздействие паров формальдегида С
    • 3. 4. Динамика восстановления лимфоидных структур селезенки крыс после токсического воздействия паров формальдегида С
  • Глава 4. Обсуждение результатов исследования С
  • Выводы С

Актуальность исследования. В связи с развитием иммунологии возрос интерес морфологов к изучению как первичных, так и вторичных органов иммунной системы, основной функцией которых является продукция лимфоцитов, участвующих вместе с другими клетками иммунной системы в защитных реакциях организма (Петров Р.В., 1987; Сапин М. Р., 1987; Хаитов P.M., Пинегин Б. М., 1995). К настоящему времени проведены многочисленные исследования строения, периферических органов иммуногенеза, давшие подробные сведения о строении нёбных (Назаров Д.Р., 1984), глоточной (Иванов А.И., 1988), трубных (Мурагзамова Г. М., 1989) — язычной (Чилингариди С.Н., 1990), миндалин, селезенки (Амбар-цумян Е.Ф., 1991) и др.

Большое значение для практической медицины имеет изучение изменений лимфоидной ткани в экспериментальных условиях, моделирующих влияние различных видов токсичных веществ, применяемых в производстве и содержащихся в атмосфере. Иммунная система, являющаяся наиболее динамичной и лабильной активно реагирует структурно-функциональными изменениями на антигенные влияния и действия неблагоприятных факторов окружающей среды. Воздействие химических веществ различной природы приводит к своеобразным изменениям микроструктуры и микротопографии органов иммунной системы, которые зависят от вида действующего вещества, его концентрации и длительности действия. Установлено, что различные химические вещества могут приводить к угнетению в клетках лимфоидных органов синтеза ДНК, а также к уменьшению в тканях органа количества малых лимфоцитов, ми-тотически делящихся клеток, макрофагов и усилению деструктивных процессов (Григоренко Д.Е., 1988; Ерофеева JI.M., 1994; Никифорова Е. Е., 1998; Fujimaki Н., Kurokawa Y., Kunugita N., 2004).

Селезенка, как орган иммунной системы, занимает особое положение и играет важную роль в формировании защитных реакций организма в ответ на поступление токсических веществ. Именно в селезенке антигены, присутствующие в крови, «могут активировать соответствующим образом детерминированные лимфоциты к преобразованию в иммуноком-петентные клетки» (Сапин М.Р., Этинген Л. Е., 1996). К настоящему времени получены достаточно подробные данные о макрои микроскопическом строении, возрастных особенностях лимфоидных образований селезенки человека и некоторых животных (Самойлов М.В., 1987; Амбарцу-мян Е.Ф., 1991; Сапин М. Р., Этинген JI.E., 1996; Моталов В. Г., 2004).

Анализ работ отечественных и зарубежных исследователей позволяет утверждать, что существует зависимость реакции лимфоидной ткани от степени концентрации и длительности воздействия различных видов токсических веществ, употребляемых на производстве и содержащихся в атмосфере (Григоренко Д.Е., 1988; Бардик Ю. В., 1990; Никифорова Е. Е., 1999; Чава С. В. 1996; Golalipour M. J, Kord Н. 2008). Но проблема изучения иммунотоксического воздействия химических факторов, загрязняющих окружающую среду, остается актуальной, поскольку нарушение иммунологической реактивности может приводить к развитию инфекционных и онкологических заболеваний, формированию аутоиммунных и аллергических процессов.

Формальдегид — один из широко распространенных загрязнителей окружающей среды (Германова А.Д., 1982). Проникая в организм человека через слизистые оболочки дыхательных путей, пищеварительного тракта и кожу, он концентрируется в тканях с интенсивным синтезом белков и высокой пролиферативной активностью, в которых он может взаимодействовать с нуклеофильными группами молекул белков, ДНК и РНК (Фельдман Н.Я., 1971; Mashford P.M., 1982). Высокая химическая активность формальдегида обусловливает его токсические действия. Им-мунотоксические эффекты формальдегида могут реализоваться двумя способами: путем формирования аутоантител, индуцирующих аутоиммунные и аллергические реакции (Дуева JI.A., 1983; Patterson R., Pateras.

V., 1984; Куценко С. А., 2003), и путем развития деструктивных изменений лимфоидной ткани (Гофмеклер В.А., Бонашевская Т. И., 1969).

Несмотря на то, что в отдельных исследованиях установлена высокая чувствительность лимфоидных клеток к действию формальдегида, убедительные данные, подтверждающие влияние этого вещества на иммуногенез, в литературе отсутствуют. Не изученными остаются и динамика изменений различных структур белой пульпы селезенки после вдыхания паров формальдегида. Отсутствуют данные о клеточном составе лимфоидной ткани, об особенностях их микротопографии в структуре белой пульпы селезенки при действии паров формальдегида. Учитывая, что селезенка играет важную роль в поддержании иммунного статуса в организме, изучение взаимоотношений и динамики развития лимфоидной ткани при воздействии химических веществ (в частности формальдегида) высокой концентрации имеет важное теоретическое и практическое значение.

Цель исследования. Изучить особенности структурных изменений лимфоидной ткани селезенки у крыс при действии на организм паров формальдегида.

Задачи исследования:

1. Изучить микротопографию и клеточный состав лимфоидных структур селезенки крыс в норме.

2. Изучить структурные характеристики лимфоидной ткани селезенки крыс после кратковременного вдыхания паров формальдегида.

3. Изучить клеточный состав лимфоидных структур селезенки крыс, подвергшихся длительному воздействию паров формальдегида.

4. Изучить динамику восстановления лимфоидных структур селезенки крыс после токсического воздействия паров формальдегида.

Научная новизна исследования:

Изучение структурной организации лимфоидных образований селезенки белых крыс позволило уточнить площади, занимаемые лимфоидными узелками, как с центрами размножения, так и без таковых, и пери-артериальными лимфоидными муфтами, а также определить в них клеточный состав.

Морфофункциональное изучение изменений в лимфоидных образованиях селезенки белых крыс после воздействия паров формальдегида высокой концентрации позволило впервые установить, что их реактивность зависит от длительности воздействия на организм данного вредоносного фактора. При кратковременном воздействии паров формальдегида в белой пульпе селезенки резко усиливаются процессы деструкции, исчезают центры размножения лимфоидных узелков, снижается проли-феративная активность клеток лимфоидного ряда. При длительном, воздействии паров формальдегида на фоне выраженных деструктивных и воспалительных изменений в тканях селезенки в белой пульпе появляются признаки активации иммунной реакции.

После окончания воздействия на организм паров формальдегида в селезенке крысы постепенно восстанавливается лимфоцитопоэз. Однако даже на 14 сутки после воздействия формальдегида в селезенке животных полного восстановления лимфоидных структур еще не происходит.

Теоретическая и практическая значимость Полученные данные о структурных изменениях лимфоидных образований селезенки под влиянием формальдегида углубляют представление о патогенном их воздействии на органы иммунной системы, что важно не только в теоретическом плане, но и в практическом отношении для уточнения ПДК паров формальдегида в воздухе рабочей зоны промышленных предприятий, а также в замкнутых рабочих пространствах. Данные о морфофункцио-нальных особенностях реакции лимфоидных структур селезенки после воздействия формальдегида, свидетельствующие о ее важной роли в реактивности иммунной системы организма, используются в учебном процессе при изучении лимфоидной системы на кафедре анатомии человека РУДН.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. При воздействии формальдегида высокой концентрации в белой пульпе селезенки исчезают центры размножения лимфоидных узелков, уменьшается число иммуннокомпетентных клеток на ед. площади, снижается пролиферативная активность клеток лимфоид-ного ряда. Усиливаются деструктивные процессы в лимфоидных структурах селезенки.

2. .Повреждающее влияние формальдегида на лимфоидные структуры селезенки проявляются при любой длительности его воздействия на организм.

3. В восстановительном периоде после длительного воздействия паров формальдегида, усиливается процессы лимфоцитопоэза во всех структурах белой пульпы селезенки, снижается уровень деструкции. Процесс иммунноцитопоэза наиболее выражен в периартери-альных лимфоидных муфтах.

Апробация результатов исследования.

Материалы исследования были доложены и обсуждены на конференции, посвященной 100-летию со дня рождения Д.А. Жданова* (2008), IX конгрессе Международной Ассоциации морфологов (2008), VI Всероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (2009), X конгрессе Международной Ассоциации морфологов (2010).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 5 работ. Объем и структура диссертации.

Выводы.

1. У интактных животных белая пульпа представлена хорошо выраженными периартериальными лимфоидными муфтами и лимфоидными узелками. Лимфоидные узелки занимают 31,7±0,24% относительной площади среза селезенки, из которой на долю лимфоидных узелков с центром размножения приходится 25,44±0,98%. Относительная площадь лимфоидных узелков без центра размножения — 6,36±0,24%.

2. Клеточный состав, и распределение числа клеток на единицу площади представленный преимущественно малыми (46,88 — 50,5%), средними (17,6 — 18,7%>) лимфоцитами, ретикулярными клетками (12,6 — 14,3) одинаковый для всех структур белой пульпы селезенки за исключением центров размножения. В центрах размножения преобладает число молодых форм клеток (24,3%), ретикулярных клеток (21,0%), средних лимфоцитов (22,1).

3. При воздействии формальдегида высокой концентрации уменьшается относительная площадь занимаемая белой пульпой селезенки. Лимфоидные узелки с центрами размножения отсутствуют. Увеличивается относительная площадь соединительной ткани селезенки за счет отечной рыхлой капсулы и трабекул по сравнению с контрольными животными.

4. При кратковременном воздействии паров формальдегида достоверно уменьшается число малых средних и больших лимфоцитов, макрофагов, ретикулярных клеток, плазматических клеток в лимфоидных узелках и в периартериальных лимфоидных муфтах селезенки. Число деструктивно измененных клеток увеличивается в периартериальных лимфоидных муфтах на 188,7%, в лимфоидных узелках без центра размножения на 131,8%.

5. При длительном воздействии паров формальдегида в селезенке усиливается воспалительная реакции, что проявляется в возрастании числа гранулоцитов в периартериальных лимфоидных муфтах и развитии застойных явлений в сосудах селезенки, степень которых более выражена, чем при кратковременном воздействии.

6. При воздействии паров формальдегида в периартериальных лимфоид-ных муфтах, по сравнению с лимфоидными узелками сохраняется более высокая функциональная активность лимфоидной ткани. Несмотря на высокий уровень деструкции, в периартериальных лимфоидных муфтах преобладает макрофагальная активность, сохраняются процессы бласттрансформации и иммуноцитопоэз.

7. На 3 — е сутки после окончания вдыхания паров формальдегида в селезенке крысы появляются признаки активации лимфоцитопоэза: появляются центры размножения в лимфоидных узелках, увеличивается число малых лимфоцитов периартериальных лимфоидных муфтах, уменьшается число деструктивных клеток. Снижается воспалительная реакция.

8. На более поздних сроках восстановительного периода увеличивается число плазматических клеток, особенно плазмоцитов, в периартериальных лимфоидных муфтах. Максимальное число малых лимфоцитов выявлено в лимфоидных узелках без центров размножения, меньше в мантии узелков, и менее всего — в периартериальных лимфоидных муфтах.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.К. Т- и В- лимфоциты, распределение в организме, функционально-морфологическая характеристика и значение/ А. К. Агеев //Арх. патологии 1976. — Т.40, № 12.- С.3−11.
  2. Е.Ф. Цитоархитектоника лимфоидных образований селезенки у человека в постнатальном онтогенезе: автореферат дис. .канд. мед. наук: 14.00.02 /Амбарцумян Елена Фариховна -Москва, 1991.- 17с.
  3. Апоптоз клеток иммунной системы Программированная клеточная гибель./ B.C. Новиков, Д. В. Булавин, В. В. Малинин, В.А. Симо-ненкова // СПб.:Наука, 1996. — С. 104 — 119.
  4. У.А., Очерки современной иммунологии / У. А. Арипов, Р: М. Хаитов, В. Г Галактионов. Ташкент: Фан, 1981. — 255с.
  5. А.Г. Реактивные изменения тимуса и селезенки в ответ на оперативные вмешательства/ А. Г. Бабаева Е.И. Гиммельфарм, И. И. Калинина // Архив патологии -1995 т. 57, № 2 — С. 58−61.
  6. Ю.В. Изучение функционального состояния лимфоидных органов в токсиколого-гигиенических исследованиях/ Ю.В. Бар-дик//Гигиена санитария 1990 — № 10 -С. 85−87.
  7. И. Селезенка/ И. Барта Будапешт: 1976. — 264 с.
  8. Н.О. Анатомо-экспериментальное исследование некоторыхорганов иммунной системы при аутотрансплантации конечности: дис. .д-ра. мед. наук: 14.00−02 / Бартош Николай Олегович. -Москва, 1996.- 392 с.
  9. H.A. Эндогенные интоксикации и лимфатическая система/
  10. H.A. Беляков.//Эфферентная терапия-1998, № 2.С. 11−16.
  11. Л.П., Кузнецов С. Л., Сапрыкин В. П. Гистофизиология кровии органов кроветворения и иммуногенеза/ Л. П. Бобова, С. Л. Кузнецов, В. П. Сапрыкин М.: Новая волна, 2003.
  12. А.Г. Влияние болевого стресса и КВЧ-поля на морфофункциональное состояние селезенки крыс: автореф. дис. .канд. биол. наук: 03.00.25. Бочкарева Алла Генадьевна.- 2002. 25 с.
  13. Быков В. Л! Цитология и общая гистология/ В. Л. Быков.- СПб:1. Sotis, 2007.Т.1-С.520
  14. Вредные вещества в промышленности. Справочник- Л.: Химия, 1976. -Т.1-С. 505−509.
  15. А.Д. Лимфоидная ткань селезенки в условиях употребления питьевой воды с различным содержанием антигенного материала/ дис. .канд. мед. наук: 14.00.02./ Анджела Дмитриевна Вовкогон.-Москва, 1998.- 168 с.
  16. Гистофизиология капилляров/ В .И. Козлов, ЕЛ. Мельман, Е.М.
  17. , Б.В. Шутка. Спб: Наука- 1994. — 234с.
  18. Д.С. КВЧ и биоаминный статус селезенки / Д. С. Гордон //
  19. Современные проблемы аллергологии, клинической иммунологии и иммунофармакологии.- М.: МЗ РФ, 1997. С.257−257.
  20. В.А. Некоторые биохимические сдвиги при изученииэмбриотропного действия бензола и формальдегида / В. А. Гофмеклер Н.Н.Пушкина, Г. Н Клевцова // Гигиена и санитария. 1968. -№ 7. С. 96−100.
  21. Д. Е. Лимфоцитопоэз в тимусе и селезенке в остром периоде после гамма-облучения- 2000 /Д.Е. Григоренко //Вестник новых мед. технологий. 1988.- Т.7. № 2. С. 35−37.
  22. О. Н. Морфологические изменения селезенки под влиянием физических нагрузок и иммунокоррекции: автореф. дис. .канд. биол. наук: 14.00.02./ Ольга Николаевна Груздева, СПб-2000. -22 с.
  23. И.С. Клеточная организация аллергического воспаления /
  24. И.С. Гущин // Современные проблемы аллергологии, клинической иммунологии, и иммунофармакологии. М: Институт иммунологии МЗ РФ, 1997. — С. 19−24.
  25. JI.M. Влияние диметилсульфита на структуру и цитоархитектонику тимуса крыс/JI.M. Ерофеева, М. Р. Сапин //Бюллетень эксперим. Биол. и медицины 1995. -.Т.119, № 1, С.96−100.
  26. H.A. Периферические органы иммунитета (развитие, строение, функция)/ H.A. Жарикова. Минск: Беларусь, 1979. -205с.
  27. Т.А. Функциональная морфология селезенки и лимфоидного аппарата кишечника при стрессе / Т. А. Журавлева, О.Д.if «
  28. , Р.П. Огурцов // Архив патологии. 1995. Т. 57, № 1, -С.56−61.
  29. К.А. Органы иммунной системы (структурные и функциональные аспекты) / К. А. Зуфаров, К. Р. Тухтаев Ташкент: Фан, 1987. 184с. ¦
  30. А.И. Глоточная миндалина человека в постнатальном онтогенезе (макро-микроскопическое исследование): автореф. дис. .канд. мед. наук: 14.00.02 / А. И. Иванов. Москва, 1988. — 22 с.
  31. Иммуногистохимическая характеристика селезенки при действииразличных видов стресса / М. Ю. Капитонова, C.JI. Кузнецов, С.Б.С. А. Фуад, Ю. В. Дегтярь, В. В. Хлебников // Морфология. № 5, 2009.G.78−79.
  32. T.B. Продукция гемо-иммунорегуляторных цитокиновклетками эритроидного ряда мыши и человека: дис. .канд. мед. наук: 14.00.36/Татьяна Владимировна Инжелевская Новосибирск, 2001 — 132 с.
  33. Исследование воздействия паров ацетальдегида на органы дыхания
  34. Е.Е.Никифорова C.B. Чава, В. А. Кудряшова, Д. Б. Никитюк //Тезисы докладов 1- го Российского конгресса по патфизиологии. -М.-РГМУ, 1996.-С.110−110.
  35. C.B. Селезенка и эритроциты Руководство по физиологии:
  36. Физиология системы крови. Физиология эритропоэза/ C.B. Канаев, М. М. Тушинская. Л., Наука, 1979. — С.256−273.
  37. Н.Г. Адаптационные реакции лимфатической системы материи плода в условиях эмоционально-иммобилизационного стресса и при коррекции: автореферат дис. .канд. мед. наук: 14.00.02/ Наталья Григорьевна Когут Новосибирск, 1993 — 22с.
  38. М.Э. Селезенка/ М. Э. Комахидзе М.: Наука, 1971.253 с.
  39. Ю.А. Кровоснабжение селезенки/ Ю. А. Кудряшов // Физиология кровообращения- Физиология сосудистой системы. Л.: Наука, 1984. С. 523 — 532.
  40. С. И. Клетки иммунной системы как посредники в реакции других систем организма на стрессорное воздействие/ С. И. Кузнецов, И. В. Семенова //Тезисы докладов 1-го Российского кон' гресса по патофизилогии. М.: РГМУ, 1996. С. 227−227.I
  41. Е. В. Мегакариоциты селезенки морских свинок при анти? генной стимуляции организма/ Е. В. Любаева //Морфологическиеведомости.-2002. № 1−2. С. 27−29.1.
  42. В.А. Гистометрическое исследование реакции тимуса иселезенки на костную травму у крыс / В. А. Масютин // Осложнения шоков травмы и травматические болезни. — СПб научно-исследовательский институт скорой помощи. СПб.: 1994 — с.28−33.
  43. В. Г. Структурно-функциональная характеристика и закономерности морфогенеза селезенки человека в постнатальном онтогенезе: дис. .д-ра мед. наук: 14.00.02./ Владимир Григорьевич Моталов. Москва, 2002. — 293 с.
  44. Морфогенез иммунекомпетентных органов при действии стрессовых факторов и кортикостероидов / H.A. Юрина, В. Е. Торбек, Т. И. Лебедева, В. А. Ремизова // Тезисы докладов 1- российского конгресса по патофизиологии. М.: РГМУ, 1996. — С. 220−220.
  45. Г. М. Анатомия и топография трубной миндалины человека в возрастном аспекте / Г. М. Мурагзамова. М. Р. Сапин // Архив анатомии, гистологии, эмбриологии. 1989. Т 161, № 1. С. 68 — 72.
  46. Д.Р. Микроскопическая анатомия небных миндалин человека в постнатальном онтогенезе: автореф. дис. канд. .мед. наук: 14.00.02. / Джора Розыевич Назаров. Москва, — 1984. — 22 с.
  47. И. А. Активность щелочной фосфатазы в лимфоидныхорганах крыс при остром и хроническом введении морфина и при его отмене //Адаптационно-компенсаторные механизмы регуляции функций в современных экологических условиях. 2000 — С. 113−115.
  48. A.A. Морфологическая и иммуногистохимическая характеристика селезенки при хроническом стрессе в раннем, постнатальном онтогенезе: авторефер. дис. .канд. мед. наук: 03.00.25/ Нестерова Алла Анатольевна.-Волгоград, 2007. — 26 с.
  49. В.Д. Органы тимо-лимфатической системы / В. Д. Новиков,
  50. В.А. Труфакин // Новосибирск: Новосибирский медицинский ин-т, 1980. -29с.
  51. Общая патология и морфология иммунитета/ А. Ф. Киселева,
  52. Л.В.Чернышенко, А. П. Радзиховский, Л. В. Кейсевич Киев: Нау-кова думка, 1994. — 204 с.
  53. Р.В. Иммунология/Р.В. Петров.-М., 1987−415 с.
  54. П.В. Функциональная морфология лимфоидных органов и иммунорегуляторных лимфоцитов человека в норме' и атеросклерозе: автореф. дис. .докт. биол. наук: 14.00.02/ Пигаревский Петр Валерьевич. СПб., 1991.-41с.
  55. А. В., Морфофункциональная характеристика селезенкии лимфатических узлов при экспериментальном воспроизведении лихорадки Западного Нила: автореф. дис. .канд. мед. наук. 14.00.15/ Поройская Анна Владимировна.- Волгоград, 2004. с. 24
  56. Г. В., Гистофизиология органных макрофагов / Г. В.
  57. , В.Д. Новиков // Новосибирск: Новосибирский медицинский институт, 1996. — 118с.
  58. Л.А. Морфофункциональные характеристики селезенкиу крыс разного поведения после воздействия рестрикционного стресса/ Л. А Прасолова, И. Н. Оськина, С. Г Шихевич //Морфология, 2004, т. 125, вып.1, с. 59−63.
  59. Т.Н. Новые данные о строении селезенки/ Т. Н. Радостина, Г. С Сатюкова // Архив анат. 1961. Т. 40, № 1. С. 99 — 112.
  60. М.В. Лимфоидные образования селезенки у человека впостнатальном онтогенезе: дис. .канд. мед. наук: 14.00.02 / Самойлов Михаил Владимирович. 1987. — 155 с.
  61. И.В. Методы определения токсичности и опасности химических веществ/ Саноцкий И. В. Москва, 1970.- С. 9.-29.
  62. М.Р. Анатомия органов иммунной системы/ М. Р. Сапин //
  63. Функциональная морфология иммунной системы. Новосибирск: Наука, 1987.-С. 6−62.
  64. М.Р. Известное и неизвестное в строении и функциях селезенки. / М. Р. Сапин // Российские морфологические ведомости. -1995-№ 1.-С 50−53.
  65. М.Р. Эллипсоиды селезенки.(эллипсоидные макрофагальнолимфоидные муфты)/ М. Р. Сапин, Г. В. Буланова // Архив анатомии.- 1988. Т.45, № 12-С. 5−13.
  66. М.Р. Иммунная система, стресс и иммунодефицит/ М. Р. Сапин, Д. Б. Никитюк М., Джангар, 2000.
  67. М.Р., Лимфоидные образования селезенки у людей разноговозраста/ М. Р. Сапин, М. В. Самойлов // Архив анатомии. 1988. -Т. 94, № 2. -С.65 69.
  68. М.Р. Иммунная система человека/ М. Р. Сапин, Л.Е. Этинген- М.: Медицина, 1996. 304 с.
  69. С.Ю. Селезенка и защитная функция организма / С. Ю. Сафаров, Г. К. Тюнина, М. Э. Гаджиев //Патологическая физиология и экспериментальная терапия 1983 — № 5 — С.86−91.
  70. А.П. Клиническая морфология селезенки / А. П. Сорокин,
  71. Н.Я. Полянкин, Я.И. Федонюк-М.: Медицина, 1989. 160 с.
  72. . М. Сравнительная морфология лимфоидных органовпри воздействиях различными гепатотропными ядохимикатами/ Б. М. Сыздыков //Астана медициналык журналы. 2000 — № 2. С. 127−129.
  73. М. Г. Изменения тимуса и селезенки в условиях реадаптации после физических нагрузок/ М. Г. Ткачук //Российские морфологические ведомости. 2001 № 1−2. С. 92−94.
  74. М. Г. Особенности восстановления органов иммуногенезапосле окончания физических нагрузок- 2000 / М. Г. Ткачук //Проблемы экспериментальной, клинической и профилактической лимфологии. С. 281−284.
  75. В.А. Иммуноморфологические аспекты аутоиммунныхпроцессов/ В. А. Труфакин. Новосибирск: Наука, 1983. — 178 с.
  76. P.M. Экологическая иммунология/ P.M. Хаитов, Б. В. Пинегин, Х.И. Истамов- М.: Издательство ВНИРО, 1995. 219с.
  77. Г. В. Регенерация лимфоидных органов у млекопитающих/
  78. Г. В. Харлова М. Медицина, 1975. — 176 с.
  79. З.С. Становление иммунитета плода Морфологическиеосновы./ З. С. Хлыстова М.: Медицина, 1987. — 256 с.
  80. В.Г. Микроциркуляторное русло органов иммунной системы человека в постнатальном периоде морфогенеза. автореферат дисс. .док-pa. мед. наук: 14.00.02/ Черкасов В. Г. — Киев: 1989. — 32 с.
  81. С.Н. Анатомия язычной миндалины человека в постнатальном онтогенезе: автореф. дис. .канд. мед. наук: 14.00.02 / Чилингариди Светлана Нинельевна. Москва, 1991. — 23с.
  82. Э.Т. Структурные изменения лимфоидных узелков селезенки при экспериментальном отравлении карбофосом/ Э. Т. Шадыев // Проблемы морфологии и паразитологии. М.: 1992. -С. 83−85.
  83. Н.И. Влияние толуола на регулирующие структуры селезенки и печени/ Н. И. Шихматова //Социально-гигиенический мониторинг практика применения и научное обеспечение. Ч. 1. -2000 С. 223−228.
  84. Е. Г.,Гистологическая картина внутренних органов крыспри отравлении чернокорнем- 2002(Морфологические ведомости. 62−65):
  85. Amlot L. Impaired human antibody response to the thymus-independentantigen, DNP-Fiction, after splenectomy. Implications for post- splenectomy infections / L. Amlot, A.E. Hayes //Lancet-1985-I.-P. 10 081 010.
  86. Bajenoff M. Fibroblastic Reticular Cells Guide T Lymphocyte Entry intoand Migration within the Splenic T Cell Zone/ M. Bajenoff, N. Glaichenhaus R. N. Germain. // J. Immunol., 2008.- 181(6). N. 15 P. 3947−3954.
  87. Balogh M., Immunoarchitecture of Distinct Reticular Fibroblastic Domains in the White Pulp of Mouse Spleen/ M. Balogh, G. Horvath, A. K. Szakal // J. Histochem. Cytochem. 2004- V.52(10): N. 1. P. 1287 -1298.
  88. Beyer T. A possible role of chemotaxis in germinal center formation/ Т.,
  89. Beyer, M. Meyer-Hermann, and G. Soff.// Int. Immunol., 2002. V 14. № 12: P. 1369- 1381.
  90. Bishop M.B. The spleen: a correlative overview of normal and pathologic anatomy/ M.B. Bishop, L.S. Lansing//Hum. Pathol.-1982.-V.13,N.4-P. 334−342.
  91. Blue J. Periarterial macrophagage sheaths (ellipsoids) in cat spleen.-Anelectron microscope study / J. Blue, L. Weiss// Amer. J. Anat.-1981a.-V.161,N.2-P.l 15−134.
  92. Blue J. Vascular pathways in nonsinusal red pulp An electron microscopic study of the cat spleen/ J. Blue, L. Weiss /Amer.J.Anat.-1981b.-V161,N.2.-P135−168.
  93. Brelinska R. Macrophages and interdigitating cells- their relationship tomigrating lymphocytes in the white pulp of rat spleen/ R. Brelinska, C. Pilgrim //Cell Tissues Res.-1983.-V.233, N.3.-P.671−688.
  94. Brozman M. Outer mantle zone of the follicle in the human spleen/ M.
  95. Brozman// Virchows Arch A Pathol. Anat. Histopathol. 1985.V. 407.P.107−117.
  96. Brozman M. Immunohistological study of the red pulp in the humanspleen M. Brozman // Anat.Anz. 1985.-V.158. — P.57−64.
  97. Brozman M. Anatomical pathways from the white to the red pulp in thehuman spleen /M. Brozman // Acta Anat 1985, V.121. P. 189−193.
  98. Bourgeois //Vircow's Arch. 1984. — V.403, N.l. — P.27 — 40.
  99. Characterization of stromal cells with myoid features in lymph nodesand spleen in normal and pathologic conditions / M.F. Toccanier-Pelte, O. Skalli, Y. Kapanci, G. Gabbiani IIAm J Pathol 1987. V.129 P. 109 118.
  100. Characterization of lymphoid and nonlimphoid cells in the white pulp ofthe spleen using immunohistoperoxidase techniques and enzyme histochemistry/ P. Eikelinboom, C.D. Dijkstra, D.M. Boorsma, N. Van Rooijen //Experientia 1985. V.41. P. 209−215.
  101. Chen L. Microcirculation of the spleen / L. Chen //Amer.J.Anat. 1972.1. V.134 P. 425 — 430.
  102. Despars G. Splenic endothelial cell lines support development of dendritic cells from bone marrow / G. Despars, H.C. O’Neill //Stem Cells. 2006. V24. N6. P. 1496−504.
  103. Dijkstra C.D. Non -limphoid cells in the splenic white pulp/ C.D.
  104. Dijkstra, G. Kraal //Res. Immunol.-1991.V.142. -P.325−327.
  105. Drenckhahn D. Stress fibres in the splenic sinus endothelium in situ: molecular structure, relationship to the extracellular matrix, and contractility/ D. Drenckhahn, J. Wagner //J. Cell. Biol. 1986. V. 102. P. 1738−1747.t
  106. Electron-microscopic observation of mouse spleen tissue infected with
  107. Orientia tsutsugamushi isolated from Shandong, China. / L. Yang, Z. Zhao, B. Li, Y. Liu, Y. Feng //J Electron Microsc (Tokyo). 2008 V. 57(5). P. 169−74.
  108. Faller A. Splenic architecture reflected in the connective tissue structurei of the human spleen / Faller A.// Experientia 1985.-V.41. P. 164−167i
  109. Ulfig N., Risse M., Barth P.J.// Histochem Cell Biol. 2007. v. 128(3).p. j? 205−15.
  110. Fibroblastic and dendritic reticulum cells of lymphoid tissue / H.K.
  111. Miiller-Hermelink, B. Gaudecker, D. Drenckhahn, K. Jaworsky, C. Feldmann // J. Cancer Res. Clin. Oncol. 1981. V. 101. P. 149−164.
  112. Ford W.L. The immunological and migratory propecties of the lymphocytes reciculating through the red spleen./ W.L. Ford // Brit.J.exp. Pathol. 1969f.-V.50,N.3-P.257−269.
  113. Frances M.F. Splenic constriction during isometric handgrip exercise inhumans / M.F. Frances, Z. Dujic, J.K. Shoemaker // Appl Physiol Nutr Metab. -2008. V. 33. N 5. P. 990−6.
  114. Fu Y.X. Development and maturation of secondary lymphoid tissues /
  115. Y.X. Fu, D.D. Chaplin//Annu.Rev. Immunol., 1999, V. 17, P.399−433.
  116. Fujita T. Three dimensional microanatomy reticular tissue. 3 Dimension
  117. Microanatomy. Cells and tissue Surfaces/ T. Fujita // Proc. Sym. Mexico Cyty.-N.Y., t.a., 1981-P.89−101.
  118. Fujita T. Scanning electron microscopy and terminal circulation / T. Fujita, M. Kashimura, K. Adachi // Experientia 1985. — V. 41. N. 2. P. 167−179
  119. Further delineation of the immuno-architecture of the human spleen /
  120. T.M. Grogan, C.S. Rangel, L.C. Richter, D.P. Wirt, H. V Villar // Lymphology 1984. V.17. P. 61−68.
  121. Grogan T.M. Immunoarchitecture of the human spleen / Grogan T.M.,
  122. C. S. Jolley, C.S. Rangel // Lymphology 1983. V.16. P.72−82.
  123. Go wans J. L The route of reticulation of lymphocytes in the rat / J.L.
  124. Gowans, E.J. Knight//Proc.Roy. Soc.Biol.-1964.-V.159.-P.257−263.
  125. Hsu S.M. Lymphocyte subsets in normal human lymphoid tissues/ Hsu
  126. S-M, Cossman J, Jaffe ES: // Am J Clin Pathol 1983, 80: p.21−30.
  127. Hsu S.M. Phenotypic expression of B lymphocytes. III. Marginal zone Bcells in the spleen are characterized by the expression of Tac and alkaline phosphatase / S.M. Hsu//J. Immunol. 1985.-Y.135. P.123−130.
  128. Howard J.C. The life-span and recirculation of marrow derived smalllymphocytes from the rat thoracic duct / J.C. Howard // J.Exp.Med.-1972.-V.135.N.2. P.185−199.
  129. Human clones with naturel killer function can active B cell and cecrete Bcell differentiation factors / A. Vyakarnan, M.K. Brenner, J.E. Reitlie, C.H. Houlker, P.J. Lachmann //Eur.J. Immunol.-1985. V15.-P. 606 610:
  130. Human spleen contains phenotypic subsets of macrophages and dendriticcells that occupy discrete micro anatomic locations/ P.J. Buckley, M.R. Smith, M.F. Braverman, S.A. Dickson// Am J Pathol. 1987. — V.128. P. 505−520.
  131. Immunohistochemical and structural characteristics of the reticularframework of the white pulp and marginal zone in the human spleen/ T. Satoh, R. Takeda, H. Oikawa, R. Satodate // Anat Rec 1997, 249. p. 486−494.
  132. Key role of splenic myeloid DCs in the IFN-alphabeta response to adenoviruses in vivo / Fejer G., Drechsel L., Liese J., Schleicher U., Ruzsics Z., Imelli N., Greber U.F., // Pathog. 2008 Nov-4(l 1).
  133. Kinetics of red blood cell passage through interendothelial slits into venous sinuses in rat spleen, analyzed by in vivo microscopy / I.C. MacDonald, D.M. Ragan, E.E. Schmidt, A.C. Groom // Microvasc. Res. 1987. Y.33.P.118−134.
  134. Kotani M. Marginal zone bridging channels as a pathway for migratingmacrophages from the red towards the white pulp in the rat spleen /
  135. M. Kotani, K. Matsuno, T. Ezaki // Acta Anat. 1986. — V.126. N3. P. 193−198.
  136. Kraal G. Lymphocyte migration in the spleen: the effect of macrophageelimination / G. Kraal, H. Rodrigues, K. Hoeben, N. Van Rooijen // Immunol. 1989.-V.68. P.227−232.
  137. Kumarata D.S. Marginal zones: the major B cell compartment of ratspleen / D.S. Kumarata, H. Bazin, I.C.M. MacLennan // Eur J.Immunol.-1981 .-V. 11. P.858−864.
  138. Kraal G. Cells in the marginal zone of the spleen/ Kraal G. // Int. Rev.
  139. Cytology. 1992. V 132.P.31−74
  140. Krafft C. Identification of B and T cells in human spleen sections by infrared microspectroscopic imaging / C. Krafft, R. Salzer, G. Soff, M. Meyer-Hermann // Cytometry A. 2005 V. 64. N. 2.P. 53−61.
  141. Kraal G. New insights-into the cell biology of the marginal zone of thespleen / Kraal G., Mebius R.// Int Rev Cytol. 2006. V. 250.P. 175−215.
  142. Locwood C.M. Immunological functions of the spleen / C.M. Locwood
  143. Clin. Yaematol.-1983.-V. 12. P. 449−465.
  144. Lopes-Carvalho T. Marginal zone B cell physiology and disease / T.1.pes-Carvalho, J.F. Kearney // Curr Dir Autoimmun. 2005. N.8. P.91−123.
  145. Lo C.G. Integrin-dependence of Lymphocyte Entry into the Splenic
  146. White Pulp / C.G. Lo, T.T. Lu, J.G. Cyster //J. Exp. Med., -2003. V.197. N3.P. 353 -361.
  147. Lopes-Carvalho T. Marginal zone B cells in lymphocyte activation andregulation/ T. Lopes-Carvalho, J. Foote, J.F. Kearney // Curr Opin Immunol. 2005 V.17. N.3. P.244−50.
  148. Lymphocyte migration in lymphocyte function-associated antigen
  149. A)-1-deficient mice/ C. Berlin-Rufenach, F. Otto, M. Mathies, J. Westermann, M. J Owen, A. Hamann, N. Hogg://J Exp Med 1999, V.189. P. 1467−1478.
  150. Lymphocyte subsets in the white pulp of human spleen in normal anddiseased cases/ Tanaka H, Takasaki S, Sakata A, Muroya T, Suzuki T, Ishikawa E. //Acta Pathol Jpn 1984, v.34:p.251−270.
  151. Mebius R.E. Structure and function of the spleen / R.E. Mebius, G. Kraal
  152. Nat Rev Immunol.- 2005. V5. N. 8. P. 606−16.
  153. McKenzie J.L. Human thy-1: unusual localization and possible functional significance in lymphoid tissues/ J.L. McKenzie, J.W. Fabre // J Immunol 1981, V.126. P. 843−850.
  154. Mangeney M. CD77: an antigen of germinal center B cells enteringapoptosis/ M. Mangeney, Y. Richard, D. Coulaud // Eur.J. Immunol. -1991.-V.21.N.5.P.1131−1140.
  155. Marginal-zone B cells in the human lymph node and spleen show somatic hypermutations and display clonal expansion // A. Tierens, J. Delabie, L. Michiels, P. Vandenberghe, C. De Wolf-Peeters// Blood 1999. v. 93:226−234.
  156. Mitchell J. Lymphocyte circulation in the spleen. Marginal zone bridingchannels and their possible role in cell traffic / J. Mitchell // Immunol-ogy.-1973.-V.24. P.93−107.
  157. Moore R. Alveolar lining cells and pulmonary reticuloendothelial systemof the rabbit/ R. Moore, V.R. Mumaw, M.D. Shoenberg // Amer. J. Path.-1964.-V.45. N.6. P.991−1006.
  158. Nieuwenhuis P. Comparative migration of B- and T-lymphocytes in therat spleen and lymph nodes/ Nieuwenhuis P., Ford W.L. // Cell Immunol 1976,23. P.254−267.
  159. Retention of Plasmodium falciparum ring-infected erythrocytes in theslow, open microcirculation of the human spleen / I. Safeukui, J.M. Correas, V. Brousse, D. Hirt, G. Deplaine, M. Lesurtel, N. Goasguen, A. Sauvanet//Blood. 2008. V 112(6):2520−8.
  160. Phenotypic differences between red pulp capillary and sinusoidal endothelia help localizing the open splenic circulation in humans/ Steiniger B., Stachniss V., Schwarzbach H., Barth P.J.// Histochem Cell Biol. 2007.v. 128(5). P. 391−8.
  161. Primitive hematopoietic cell populations reside in the spleen: Studies inthe pig, baboon, and human / F.J. Dor, M.L. Ramirez, K. Parmar, E.L. Altaian, C.A. Huang, J.D. Down, D.K. Cooper //Exp Hematol. 2006 V. 34. N11. P. 1573−82.
  162. Sasou S. Views of the endothelial surface of the marginal sinus in ratspleens using the scanning electron microscope / S. Sasou, T. Madorame // Virchow’s Arch. -1982.-Bd.40,N.2.-S.l 17−120.
  163. Splenic white pulp and associated vascular channele in chicken spleen/
  164. K. Nohara, X. Pan, S. Tsukumo, A. Hida, T. Ito, H. Nagai, K. Inouye, H. Motohashi, I. Olah, B. Glick.//Amer.J.Anat. 1982.-V.165, N.4.-P.445−480.
  165. Steiniger B. The Three-dimensional Structure of Human Splenic White
  166. Pulp Compartments/ B. Steiniger, L. Ruttinger, P.J. Barth //J. Histochem. Cytochem., N.1.-2003- 51(5): P.655 664.
  167. Steiniger B. The Perifollicular and Marginal Zones of the Human
  168. Splenic White Pulp/ B. Steiniger, P. Barthand, A. Hellinger //American Journal of Pathology. -2001, vl59: P.501−512.
  169. Schmidt E.E. Microcirculatory pathways in normal human spleen, demonstrated by scanning electron microscopy of corrosion casts/ E.E. Schmidt, I.C. MacDonald, A.C. Groom // Am J Anat 1988, v. 181, c.253−266.
  170. Schmidt E.E. Comparative aspects of splenic microcirculatory pathwaysin mammals: the region bordering the white pulp / E.E. Schmidt, I.C. MacDonald, A.C. Groom// ScanningMicrosc 1993, v.7:613−628.
  171. Steiniger B. Microanatomy and function of the spleen/ B. Steiniger, P.
  172. Barth//Adv. AnatEmbryol. Cell. Biol. 1999, v. 151, p. 1−101
  173. Steiniger B. The splenic marginal zone in humans and rodents: an enigimatic compartment and its inhabitants / Steiniger B., Timphus E.M.,
  174. P.J. // Histochem Cell Biol. 2006 v. 126(6). p. 641−8.
  175. Saitoh K. A scanning electron microscopic study of the boundary zoneof the human spleen / K. Saitoh R. Kamiyama, S. Hatakeyama// Cell Tissue Res 1982, v. 222. p. 655−665.
  176. Sasou S.R. The marginal sinus in the perifollicular region of the ratspleen / S.R. Sasou, R. Statodate, S. Katsura // Cell Tissue Res. 1976. V. 172. P.195−203.
  177. Sasou S. A scanning electron microscopic study of the perifollicular region of the rat spleen / S. Sasou, R. Statodate, H. Suzuki // J. Reticu-loendothel. 1980.-V. 27.-P. 461−469.
  178. Sasou.S. Periarterial lymphoid sheaths in the rat spleen: A light, transjmission, and scanning electron microscopic study / S. Sasou., T. Sugai //Anat.Record.-1992.-V.232. N.l.-P. 15−24.
  179. Schluns J. Isolation, culture and preliminary characterizations of ellipi1. soids (sheathed capillaries of Schweigger-Seidel) of the spleen pig.2.1
  180. An enzyme histohemical study of in vitro cultivated. ellipsoids / J.
  181. Schluns, B. Drewes // Histochemistry. -1984.-V.81,N.3. -P.291−295.
  182. E. Dopp, S. Kelm, P.R. Crocker, C.D. Dijkstra, G. Kraal // J. Exp. Med. 1992, 176. P. 647−655. i 162. Scanning electron microscopy of the perimarginal cavernous sinusplexus of the human spleen. K. Yamamoto, N. Arimasa, T. Yamamoto,
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!