Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Тейхоевые кислоты и гликополимеры актиномицетов: разнообразие структур, таксономические и экологические аспекты

Диссертация: Тейхоевые кислоты и гликополимеры актиномицетов: разнообразие структур, таксономические и экологические аспекты
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Открыто два новых кислых гликополимера с З-дрзокси-О-глицеро-О-галакто-ноп-2-улопиранозоновой кислотой (Kdn) в качестве повторяющегося звена: полисахарид (Р-Кёп)/олигосахарид, несущие либо р-галактозильные, либо и р-галактозильные и р-3−0-метилгалактозильные заместители. Гликоконъюгаты с Kdn широко распространены в тканях животныхмоно-, дии тримеры Kdn известны в составе О-полисахаридов… Читать ещё >

Тейхоевые кислоты и гликополимеры актиномицетов: разнообразие структур, таксономические и экологические аспекты (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений

Обзор литературы. Тейхоевые кислоты и другие гликополимеры клеточных стенок грамположительных бактерий: структурное разнообразие, распространение и некоторые функции, экологические аспекты.

Глава I. Тейхоевые кислоты и гликополимеры клеточной поверхности грамположительных бактерий.

1.1. Клеточная стенка грамположительных бактерий.

1.2. Пептидогликан.

1.2.1. Химическая структура пептидогликана.

1.2.2. Пространственная структура пептидогликана.

1.3. Тейхоевые и тейхуроновые кислоты.

1.3.1. Тейхоевые кислоты.

1.3.1.1. Разнообразие структур тейхоевых кислот.

1.3.2. Тейхуроновые кислоты.

1.3.2.1. Распространение тейхуроновых кислот у различных грамположительных организмов.

1.4. Сахар-1-фосфатные полимеры.

1.4.1. Распространение сахар-1-фосфатных полимеров у грамположительных бактерий.

1.5. Анионные полисахариды.

1.6. Биологическая роль связанных с клеточной стенкой анионных углеводсодержащих полимеров.

1.6.1. Тейхоевая кислота является необходимым стеночным полимером функционально отличным от тейхуроновой кислоты.

1.7. Краткое заключение.

Глава II. Современная классификация актиномицетов.

2.1. Актиномицеты — микроорганизмы, способные к биосинтезу многих биологически активных веществ.

2.2. Современная система классификации актинобактерий базируется на полифазном принципе.

2.2.1. Морфологические, культуральные и физиолого-биохимические признаки как основной критерий выделения родов актиномицетов на начальном этапе развития их классификации.

2.2.2. Развитие хемотаксономии позволило усовершенствовать ранее принятую систематику актиномицетов.

2.2.3. Геномные характеристики штаммов и видов.

2.3. Краткое заключение.

Глава III. Стрептомицеты — возбудители парши обыкновенной у картофеля и корнеплодов.

3.1. Экономический урон.

3.2. Роль поверхностных структур клеточной стенки в фитопатогенности.

3.2.1. Общие свойства, характерные для фитопатогенных микроорганизмов.

3.2.2. Адгезия зависит от свойств клеточной поверхности.

3.3. Парша обыкновенная у картофеля, вызываемая различными видами стрептомицетов.

3.3.1. Симптомы, вызываемые фитопатогеном и формы парши обыкновенной.

3.3.2. Как происходит процесс инфекции.

3.3.3. Факторы патогенности.

3.3.3.1. Токсины.

3.3.3.2. Другие факторы патогенности.

3.3.4. «Остров патогенности» у стрептомицетов.

3.4. Фитопатогенные виды стрептомицетов.

3.4.1. Филогения фитопатогенных стрептомицетов.

3.4.2. Некоторые представители фитопатогенных стрептомицетов.

3.5. Краткое заключение.

Экспериментальная часть.

Глава IV. Материалы и методы, использованные в работе.

4.1. Объекты исследования и накопление биомассы актиномицетов.

4.2. Методы исследования.

4.2.1. Получение клеточных стенок.

4.2.2. Получение пептидогликана.

4.2.3. Получение препаратов тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.3.1. Получение препаратов тейховых кислот из целого мицелия.

4.2.3.2. Получение препаратов тейхоевых кислот и гликополимеров из клеточных стенок.

4.2.3.3. Очистка и разделение тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.4. Общие методы анализа.

4.2.4.1. Нисходящая хроматография и электрофорез на бумаге.

4.2.4.2. Количественные аналитические методы.

4.2.4.2.1. Определение форм фосфора.

4.2.4.2.2. Определение моносахаридов.

4.2.4.2.3. Определение глицерина, рибита, формальдегида.

4.2.4.2.4. Определение аминосахаридов.

4.2.4.2.5. Определение пировиноградной кислоты.

4.2.5. Химические методы изучения первичной структуры тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.5.1. Кислотный гидролиз.

4.2.5.2. Щелочной гидролиз.

4.2.5.3. Ферментативный гидролиз и определение длины цепи тейхоевой кислоты.

4.2.5.4. Периодатное окисление.

4.2.5.5. Определение О-ацильных групп.

4.2.5.5. Нингидриновое окисление.

4.2.5.6. Определение молекулярной массы тейхоевых кислот.

4.2.5.7. Идентификация фосфолипидов.

4.2.5.8. Определение абсолютной конфигурации некоторых заместителей в молекулах тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.6. Инструментальные методы изучения первичной структуры тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.6.1. ЯМР-Спектроскопические методы исследования тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.2.6.2. Масспектроскопия MALDI-TOF.

4.3. Изучение морфологических и культуральных признаков исследуемых актиномицетов.

4.4. Методы определения фитопатогенных свойств актиномицетов.

4.5. Молекулярно-генетические методы исследования и их компьютерная обработка.

4.6. Обсуждение методов, используемых в работе.

4.6.1. Получение клеточных стенок актиномицетов.

4.6.2. Выделение тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.6.3. Разделение и очистка тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.6.4. Методы установления первичной структуры тейхоевых кислот и гликополимеров.

4.6.4.1. Химические (деструктивные) методы.

4.6.5. ЯМР-спектроскопия.

4.6.6. Масс-спектроскопия MALDI TOF.

Глава V. Разнообразие структур тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточных стенок актиномицетов.

5.1. Структуры тейхоевых кислот клеточных стенок представителей видов и подвидов рода Nocardiopsis.

5.1.1. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardiopsis dassonvillei ssp. dassonvillei и Nocardiopsis dassonvillei ssp. antarcticus.

5.1.2. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Nocardiopsis synnemataformans Ас

5.1.3. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Nocardiopsis halotolerans Ас-2519Т.

5.1.4. Тейхоевые кислоты клеточных стенок Nocardiopsis alba ВКМ

Ас-1883т, ВКМ Ас-1879 и ВКМ Ас-1884.

5.1.5. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Nocardiopsisprasina

ВКМ Ас-1880т.

5.1.6. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardiopsis composta

ВКМ Ас-2520 и Nocardiopsis composta ВКМ Ас-2521т.

5.1.7. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Nocardiopsis metallica

ВКМ Ас-2522т.

5.1.8. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardiopsis trehalosi

ВКМ Ас-942.

5.2. Структуры тейхоевых кислот клеточных стенок представителей видов рода Glycomyces.

5.2.1. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки Gycomyces rutgersensis ВКМ Ас-1248.

5.2.2. Структуры тейхоевых кислот клеточных стенок Gycomyces harbinensis ВКМ Ас-1247, G. harbinensis NRRL 16 897 и

G. harbinensis IFO 14 487 т.

5.3. Структуры тейхоевых кислот клеточных стенок представителей видов рода Nocardioides.

5.3.1. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardioides albus

ВКМ Ас-805т.

5.3.2. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardioides luteiis

ВКМ Ас-1246т и 12 других штаммов этого вида.

5.3.3. Тейхоевая кислота клеточной стенки «N. albus» ВКМ Ас-806.

5.4. Структуры анионных полимеров клеточных стенок представителей некоторых видов рода Streptomyces.

5.4.1. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Streptomyces castelarensis

ВКМ Ас-832т (ранее S. rutgersensis ssp. castelarensis).

5.4.2. Тейхоевые кислоты и кислый полисахарид клеточной стенки

Streptomyces melanosporofaciens ВКМ Ас-1864т.

5.4.3. Тейхоевые кислоты и кислый полимер клеточных стенок Streptomyces hygroscopicus ВКМ Ас-831т, S. violaceusniger ВКМ Ас-583т,

S. endus ВКМ Ас-1331т, а также S. endus ВКМ Ас-129.

5.4.4. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Streptomyces sparsogenes

ВКМ Ас-1744т.

5.4.5. Тейхоевые кислоты и анионный олигомер клеточной стенки

Streptomyces sp. BKM Ac-2274 (МБ-8).

5.4.6. Тейхоевые кислоты и гликополимеры клеточной стенки

Streptomyces sp. МБ-2, МБ-5, МБ-6, МБ-7, МБ-10.

5.4.7. Тейхоевая и тейхуроновая кислоты клеточной стенки

Streptomyces sp. BKM Ас-2534.

5.5. Тейхоевая кислота и нейтральный полисахарид клеточной стенки

Kineosporia aurantiaca BKM Ас-702т.

5.6. Краткое заключение.

Глава VI. Тейхоевые кислоты клеточных стенок как видоспецифический маркер актиномицетов.

6.1. Структуры и набор тейхоевых кислот клеточных стенок как видоспецифические маркеры видов и подвидов рода Nocardiopsis.

6.1.1. Тейхоевые кислоты клеточных стенок видов и подвидов рода

Nocardiopsis.

6.1.1.1. Виды и подвиды TV. dassonvillei.

6.1.1.2. Видовая группа N. alba.

6.1.1.3. Другие изученные видовые группы рода Nocardiopsis.

6.1.2. Использование сочетания (набора) тейхоевых кислот в таксономии рода Nocardiopsis.

6.1.2.1. Структура тейхоевых кислот клеточных степок и их набор являются хемотаксономическими характеристиками видов и подвидов.

6.1.2.2. Дифференцирующие характеристики видов и подвидов рода

Nocardiopsis, основанные на сравнении продуктов химической деградации их клеточных стенок.

6.1.3. Спектры 13С ЯМР как внутривидовой указатель для рода

Nocardiopsis.

6.1.3.1. 13С ЯМР спектры тейхоевых кислот группы N. dassonvillei.

6.1.3.2.13С-ЯМР спектр тейхоевой кислоты клеточной стенки

N. trehalosei.

6.1.3.3.13С-ЯМР спектр тейхоевой кислоты клеточной стенки

N. tropica.

6.1.3.4.13С-ЯМР спектр тейхоевых кислот клеточных стенок представителей группы N. alba.

6.2. Хемотаксономическая специфичность тейхоевых кислот клеточных стенок актиномицетов рода Glycomyces

6.2.1. Тейхоевые кислоты клеточных стенок видов рода Glycomyces.

6.2.2. Использование структуры и набора тейхоевых кислот в таксономии рода Glycomyces.

6.2.3. Дифференцирующие характеристики видов рода Glycomyces, основанные на сравнении продуктов химической деградации их клеточных стенок.

6.2.4. Спектры 13С ЯМР как внутривидовой указатель для рода Glycomyces.

6.2.4.1.13С-ЯМР Спектр тейхоевой кислоты из клеточной стенки G. tenuis.

6.2.4.2. Сравнение спектров 13С-ЯМР препаратов тейхоевых кислот клеточных стенок G. rutgersensis и G. harbinensis.

6.3. Хемотаксономическая специфичность тейхоевых кислот клеточных стенок актиномицетов рода Nocardioides.

6.3.1. Тейхоевые кислоты клеточных стенок видов рода. Nocardioides.

6.3.2. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки является хемотаксономическим маркером образующих мицелий видов рода Nocardioides.

6.3.2.1. Структура тейхоевой кислоты дифференцирует два образующих мицелий вида рода Nocardioides и служит уточнению диагноза видов Nocardioides albus и Nocardioides Intens.

6.3.2.2. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки служит основанием для предложения нового вида рода Nocardioides.

6.4. Тейхоевые кислоты клеточных стенок как хемотаксономический маркер кластер-вида «Streptomyces violacensniger».

6.4.1 Тейхоевые кислоты клеточных стенок представителей фенокластера

S. violacensniger".

6.4.2. Использование сочетания (набора) тейхоевых кислот для дифференциации представителей фенокластера «S'. violacensniger «.

6.4.3. Спектры 13С ЯМР как внутривидовой указатель для фенокластера «S. violacensniger».

6.5. Краткое заключение.

Глава VII. Распространение тейхоевых кислот и моносахариды клеточных стенок у представителей порядка Actinomycetales.

7.1. Распространение тейхоевых кислот в клеточных стенках некоторых представителей порядка Actinomycetales.

7.1.1. Наличие тейхоевых кислот в клеточных стенках дифференцирует роды Nocardiopsis и Saccharothrix.

7.2. Моносахариды в клеточных стенках изученных актиномицетов.

7.3. Краткое заключение.

Глава VIII. Экологические аспекты изучения анионных углеводсодержащих полимеров клеточных стенок актиномицетов.

8.1. Видовой состав изученных стрептомицетов.

8.2. Структуры тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок стрептомицетов, вызывающих паршу обыкновенную у картофеля и проростков редиса.

8.2.1. Тейхоевые кислоты, обнаруженные в клеточных стенках изучаемых фитопатогенных стрептомицетов.

8.2.2. Тейхуроновые кислоты, обнаруженные в клеточных стенках изучаемых фитопатогенных стрептомицетов.

8.2.3. Новый кислый полисахарид в клеточных стенках изучаемых фитопатогенных стрептомицетов.

8.3. Фитопатогенные свойства изучаемых стрептомицетов.

8.4. Тейхоевые кислоты и гликополимеры клеточных стенок служат для дифференциации фитопатогенных стрептомицетов, вызывающих паршу обыкновенную.

8.5. Краткое заключение.

Глава IX. Обсуждение результатов.

9.1. Изучение структур тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок актиномицетов вносит определённый вклад в химическую микробиологию.

9.1.1. Тейхоевые кислоты.

9.1.1.1. Полиолы и заместители в структурах описанных тейхоевых кислот.

9.1.1.2. Новое в классификации тейхоевых кислот.

9.1.1.3. Структурная микрогетерогенность в молекулах тейхоевых кислот и гетерогенность цепей тейхоевых кислот в клеточных стенках.

9.1.2. Тейхуроновые кислоты.

9.1.3. Нейтральные полисахариды.

9.1.4. Кислые полисахариды.

9.2. Изучение распространения тейхоевых кислот у представителей порядка

Actinomycetales, а также знание структур этих полимеров, позволяет использовать их как один из фенотипических признаков для уточнения диагноза вида и идентификации филогенетически близких актиномицетов внутри кластеров.

9.2.1. Распространение тейхоевых кислот у представителей прорядка

А сИпотусе1а1е5.

9.2.2. Тейхоевые кислоты клеточных стенок как видоспецифический маркер актиномицетов.

9.2.2.1. Род ЫосагсИорз15.

9.2.2.2. Род аусотусез.

9.2.2.3. Род МосаЫШйез.

9.2.2.4. Род БКер^тусез.

9.2.2.5. Представители других исследованных родов порядка АсИпотусМакя

9.2.2.6. Моносахаридный состав клеточных стенок представителей порядка АсНпотусе1а1ез.

9.3. Исследование структур тейхоевых кислот и гликополимеров раскрывает особенности клеточной поверхности фитопатогенных стрептомицетов, вызывающих паршу обыкновенную у картофеля.

Клеточная оболочка бактерий представляет собой сложную структуру, отделяющую внутреннее содержимое клетки от внешней среды, защищающую и в то же время осуществляющую взаимодействие самой клетки с окружающей внешней средой и обеспечивающую как обмен веществ, так и обмен информацией бактериальной клетки с окружающим миром. Знания, касающиеся архитектуры клеточной стенки бактерий, биохимических процессов, протекающих в ней, химических структур компонентов клеточной стенки и процессов их биосинтеза, важны и актуальны, поскольку способствуют пониманию значения бактериальной клеточной стенки для существования ca^югo микроорганизма, пониманию химизма жизненных процессов, происходящих в клетке, а также могут быть применены для нужд микробиологии и иммунологии, способствуют развитию современной клеточной биологии, вносят определенный вклад в понимание многих экологических процессов на Земле. На поверхности бактериальной клетки экспонированы углеводные остатки, входящие в состав биополимеров клеточной стенки (Shibaev, 1987; Sutcliffe, 1994; Наумова и Шашков, 1997; Weidenmaier and Peschel, 2008). Эти полимеры часто имеют весьма сложную структуру и играют важную роль в жизнедеятельности микроорганизма. Нейтральные и кислые полисахариды, тейхуроновые кислоты, у которых углеводные остатки соединены между собой ковалентными связями, являются типичными представителями гликополимеров клеточных стенок. Моносахаридные остатки присутствуют в основном гликополимере бактериальной ьслеточной стенки — пептидогликане, а также в уникальных соединениях, характерных только для клеточных стенок грамположительных бактерий — тейхоевых кислотах и сахар-1-фосфатных полимерах, мономерные звенья которых объединены фосфодиэфирными связями. Среди этих соединений нельзя не отметить липотейхоевые кислоты, амфифилы, заякоренные гидрофобной частью молекулы в цитоплазматической мембране, и имеющие гидрофильную углеводную часть, расположенную в толще пептидогликана. Однако последние не являлись объектом наших исследований. Исследование структур тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок важно как в фундаментальном, так и научно-прикладном аспектах. Выявление и описание новых структур представляет интерес в связи с оценкой разнообразия биополимеров, пониманием их функций в микробной клетке и путей их биосинтеза, а также распространения у различных микроорганизмов в связи с вопросами эволюции. Исследование структур поверхностных полимеров способствует также пониманию механизмов взаимодействия бактерий внутри микробного сообщества и с внешней средой, в том числес высшими организмами. Весьма актуальны исследования этих биополимеров микроорганизмов в медицинском аспекте. Их углеводная составляющая отвечает за биологическое распознавание поступающих извне веществ (например, лекарств), а также определяет самые разнообразные процессы клеточного узнавания, в том числе, имеющих ключевое значение при развитии многих заболеваний человека и животных, включая бактериальные и вирусные инфекции, рак, воспацения и др. (Дмитриева и др., 2007; Нифантьев, 2008; Weidenmaier and Peschel, 2008). Исследование клеточных стенок патогенных микроорганизмов привело к пониманию таких важных явлений как адгезия, вирулентность, образование биопленок на имплантированных материалах (Rijnaarts et al., 1995; Hussain et al., 2001), a также природы некоторых аутоимунных заболеваний человека (Дерябин и Каральник, 1983).Гликополимеры клеточных стенок ответственны за чувствительность клетки к ряду антибиотиков и иммуномодуляторные свойства бактерий (Wicken and Knox, 1975; Clark et al., 2000). Одним из направлений исследований тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок бактерий, получившим развитие в последние годы, является так называемое «хемотаксономическое» — изз^ение распространения и структур полимеров в связи с фундаментальными задачами развития естественной системы микроорганизмов и решения практичесих задач идентификации. К началу наших исследований среди вышеупомянутых полимеров наиболее изученными были тейхоевые кислоты. С момента их открытия у лактобацилл в 50-е годы XX века в лаборатории профессора Джеймса Бэддили (Baddiley and Matias, 1954; Baddiley et al., 1956) проводились работы, связагшые с изучением структурного разнообразия, путей биосинтеза и функций тейхоевых кислот у бактерий. Эти работы в основном были выполнены на представителях родов Bacillus*, Lactobacillus и Staphylococcus (Baddiley et al., 1962 a, bBaddiley, 1972; Karamata et al., 1972; 1987; Archibald, 1974; Doyle et al., 1975; Hancock and Baddiley, 1976; Rodgers and Taylor, 1978; Yokoyama et al., 1987; Mauel et al., 1989 и др.). Бьшо также обнаружено, что организмы разных видов содержат различные по структуре тейхоевые кислоты (Baddiley et al., 1961; Davison and Baddiley, 1963; Archibald et al., 1968; Baird-Parker, 1970), и была высказана идея о возможности использования данных полимеров в таксономических целях (Fiedler et al., 1981; Schleifer and Stackebrandt, 1983).Огромный вклад в изучение разнообразия структур и распространения тейхоевых кислот у представителей различных таксонов порядка Actinomycetales внесли приоритетные работы Заслуженного деятеля науки Российской Федерации, профессора Ирины Борисовны * - латинские наименования родов, видов и подвидов, а также наименования таксонов более высокого порядка (семейство, порядок, класс и т. д.) приведены согласно правилам журнала «Микробиология», 2008, Т. 77, № 4, стр. 574. Наумовой с сотрудниками (Наумова, 1964; 1973; 1979; Naumova et al., 1980; Евтушенко и др., 1984; Naumova, 1988; Наумова и Шашков, 1997; Naumova et al., 2001), ведущиеся в течение многих лет на кафедре микробиологии биологического факультета МГУ в сотрудничестве со специалистами Института органической химии им. Н. Д. Зелинского РАН и Института биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г. К. Скрябина РАН (отдел «Всероссийская коллекция микроорганизмов»).Представители порядка Actinomycetales (актиномицеты) выделяются среди других прокариот размерами (до 9 млн. п.о.) и организацией генома, особенностями фенотипа, в т. ч., разнообразием морфологии и химических компонентов клетки и клеточной стенки. Актиномицеты также превосходят другие известные группы бактерий по способности синтезировать биологически активные соединения. Они являются продуцентами свыше половины из более 10 000 антибиотиков и других соединений, известных к настоящему времени (Goodfellow et al., 1988; Anderson and Wellington, 2001; Watve et al., 2001; Грачева, 2003). Являясь типичными обитателями почвы, они весьма неприхотливы в отношении питания, благодаря чему могут развиваться на субстратах с ничтожным количеством питательных веществ (Теппер, 1976; Linos et al., 1999; Зенова и Звягинцев, 2002). Некоторые актиномицеты ассоциированы с высшими организмами (Kizuka et al., 1994; Zinniel et al., 2002) — ряд организмов известны как патогены человека и животных (Mabeza and Macfarlane, 2003; Read, 2005) или растений (Loria et al., 1997; 2006). Все вышесказанное способствовало повышенному интересу к этой группе микроорганизмов со стороны различных специалистов, прежде всего биотехнологов, микробиологов-систематиков и молекулярных биологов, что, в свою очередь, определило более успешное развитие систематики актинобактерий по сравнению с другими группами прокариот. Создание филогенетической схемы прокариот, и актинобактерий в частности, стало возможным благодаря внедрению в микробиологию молекулярно-генетических методов и определению нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК. Филогенетические древа, однако, не могут быть использованы непосредственно для построения иерархической системы (Stackebrandt and Swings, 2005; Калакуцкий, 2006). Вьщеление новых и ревизия ранее описанных таксонов осуществляется с учетом разносторонних согласующихся данных филогенетического и фенотипического характера (принцип полифазной таксономии).Информация о фенотипе особенно важна для обоснования вьщеления новых таксонов родового и видового уровней и уточнения границ между таксоналш. Изучение хемотаксономических признаков (тип клеточной стенки, тип пептидогликана, состав менахинонов, жирных кислот фосфолипидов) сыграло ключевую роль в развитии системы классификации актиномицетов в «домолекулярную эру». Отличия организмов по хемотаксономическим признакам зачастую являются определяющими при обосновании вьщеления нового рода или вида актиномицетов и в настоящее время. Вместе с тем, многие полимеры и крупные молекулы клетки не изучены или слабо исследованы в таксономическом аспекте. В этой связи актуальны работы, направленные на поиск и оценку таксономической значимости новых биомолекул и их структурных компонентов — особенно в связи с выделением из природной среды массивов новых микроорганизмов, обособляющихся от известных таксонов на уровне генотипа, по неотличимых от них по традиционно используемым в систематике актиномицетов фенотипическим, в т. ч., хемотаксономическим, признакам. К настоящему моменту определены структуры тейхоевых кислот и показана возможность использования этих полимеров и их структурных компонентов в качестве хемотаксономических маркеров видов ряда родов актшюмицетов, например, Agromyces (Гнилозуб, 1994), Actinomadura, Nonomurea, Brevibacterium (Потехина, 2005). Эти и другие работы продемонстрировали также огромное структурное разнообразие тейхоевых кислот и гликополимеров в этой группе бактерий и перспективность дальнейших исследований в данном направлении.

Цель и задачи исследования

Цель настоящего исследования — изучение распространения и структурного разнообразия тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок у представителей порядка Actinomycetales и оценка коррелятивных связей между наличием и структурой вышеназванных полимеров, с одной стороны, и таксономическим положением и свойствами организмов, с другой. Среди основных задач исследования можно выделить следующие: 1. Изучение распространения тейхоевых кислот и других гликополимеров у представителей различных родов актиномицетов, относящихся к 12-ти семействам, 9-ти подпорядкам порядка Actinomycetales (более 100 штаммов).2. Установление структур тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточных стенок исследуемых актиномицетов — представителей некоторых видов родов Nocardiopsis (29 штаммов) — Glycomyces (4 штамма) — Nocardioides (15 штаммов) — Streptomyces (14 штаммов), а также Kineosporia aurantiaca.3. Анализ полученных и имеющихся в литературе данных и оценка возможности использования вышеназванных полимеров и их структурных элементов в качестве химических маркеров таксонов.4. Выяснение взаимосвязи между набором тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок стрептомицетов-возбудителей парши обьпсновенной картофеля и корнеплодов и их патогенностью. Научная новизна работы Впервые изз^ено распространение тейхоевых кислот и других гликополимеров в клеточных стенках, а также моносахаридный состав последних у более 100 штаммов, представителей различных родов актиномицетов, относящихся к 12-ти семействам 9-ти подпорядкам порядка Actinomycetales. Впервые найдены тейхоевые кислоты и другие гликополимеры клеточных стенок и установлены структуры полимеров у 63 (из 100) штаммов актиномицетов, относящихся к 28 видам, 5-ти родам 5-ти семейств 5-ти подпорядков порядка Actinomycetales. Установлено и описано 14 новых структур упомянутых биополимеров, среди них 10 тейхоевых кислот, 2 кислых полисахарида — полимер и олигомер Kdn (3-дезокси-0−27гиг/е/70−0-2ала7с/770-нон-2-улопиранозоновая кислота), тейхуроновая кислота и нейтральный полисахарид. Впервые показана специфичность набора и строения тейхоевых кислот для видов родов Nocardiopsis, Nocardioides, Glycomyces и Streptomyces, что имеет важное значение для усовершенствования системы классификации исследованных групп бактерий. Предложен новый перспективный подход к, ревизии таксономической структуры наиболее многочисленного по видовому составу рода Streptomyces, а именно, использование признака «набор и структура тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточной стенки» как критерия границ близких видов. В соответствии с отличиями по составу тейхоевых кислот клеточной стенки и с другими фенотипическими признаками, а также с обособленностью на филогенетическом уровне (анализ 16S рРНК), предложен новый вид Nocardioides prauseri sp. nov. и переописаны виды Nocardioides luteus и Nocardioides albus. Впервые показано, что клеточные стенки стрептомицетов, вызывающих паршу обыкновенную у картофеля и корнеплодов, содержат в клеточных стенках более двух анионных полимеров различных по структуре, среди которых — полимер/олигомер Kdn. Эти полимеры, наряду с фитотоксином такстомином и гидролитическими ферментами, по всей вероятности, могут считаться факторами патогенности, обусловливая специфическую адгезию фитопатогена к растению-хозяину на первых этапах развития инфекции. Выявлен ряд новых фитопатогенных актиномицетов рода Streptomyces, филогенетически и фенотипически отличных от ранее известных возбудителей парши обыкновенной картофеля и корнеплодов. Практическое значение работы Полученные данные о химическом составе и структурных особенностях тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточных стенок фитопатогенных стрептомицетов могут служить основой для будущих исследований молекулярных механизмов взаимодействия фитопатогенов и растения-хозяина и разработки новых методов борьбы с возбудителями заболеваний растений. Полученные данные могут быть использованы для создания более совершенной системы идентификации фитопатогенов. На большом фактическом материале убедительно показано, что признак «наличие/отсутствие тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточной стенки», а также таксономическая специфичность ряда структурных элементов, выявляемых методами хроматографии, могут бьггь успешно применены в повседневной микробиологической практике при идентификации микроорганизмов исследованных групп и решении вопроса о границах таксонов. Подкомитетом по систематике подпорядка Micrococcineae Международного комитета по систематике прокариот рекомендовано определять вышеназванные характеристики при описании новых родов и видов соответствующих групп актипобактерий (Shumann et al., 2009).Значительно пополнены базы данных спектров ЯМР тейхоевых кислот и других гликополимеров бактериальных клеточных стенок, что внесло определённый вклад в гликологию, химическую микробиологию и может быть использовано при анализе структур близких полимеров в биохимической практике. Полученные данные о структуре, разнообразии и распространении тейхоевых кислот и других гликополимеров в клеточных стенках представителей порядка Actinomycetales востребованы и цитируются в ведущих современных обзорах и монографиях (Lazarevic et al., 2002; Seltmann and Hoist, 2002; Neuhaus and Baddiley, 2003; Weidenmaier and Peschel, 2008) и авторитетном международном руководстве по микробиологии — «The Prokaryotes» (Kroppenstedt and Evtushenko, 2006). Кроме того, эти данные могут быть включены в курсы по биохимии и микробиологии на биологических факультетах высших учебных заведений. Основные защищаемые полозкения диссертации • тейхоевые кислоты и гликополимеры широко распространены в клеточных стенках представителей порядка Actinomycetales, однако доминируют тейхоевые кислоты- • тейхоевые кислоты и гликополимеры клеточных стенок представителей порядка Actinomycetales проявляют широкое структурное разнообразие- • наличие, набор и структура тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок представителей порядка Actinomycetales являются таксономически значимой фенотипической характеристикой таксонов разных уровней (от подпорядка до вида) — • клеточные стенки фитопатогенных стрептомицетов характеризуются ярко выраженными анионными свойствами, которые обеспечены наличием в них комплекса кислых полимеров гетерогенного состава: тейхоевыми и тейхуроновыми кислотами с пировиноградной или глутаминовой кислотой в качестве дополнительного кислого компонента, кислыми поли/олигосахаридами- • выявление новых структур гликополимеров клеточной стенки важно, поскольку они могут служить не только маркерами новых видов или подвидов актиномицетов, но и указывать на неизвестные до сего времени экологические функции изучаемых организмов. Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Всесоюзной конференция «Регуляция микробного метаболизма» (Пущино, 1989) — Международных симпозиумах по биологии актиномицетов (Madison, 1991; Москва, 1994) — Международной конференции «Микробное разнообразие» (Пермь, 1996) — Втором съезде Биохимического общества Российской АН, Москва, 1997) — Международном симпозиуме «Современные проблемы биохимии микроорганизмов и биотехнологии» (Пущино, 2000) — Втором Германо-Польско-Российском съезде по углеводам бактерий (Москва, 2002) — Первой Всероссийской конференции по иммунитету растений к болезням и вредителям (Санкт-Петербург, 2002) — Первом конгрессе FEMS Европейских микробиологов (Ljubljana, 2003) — II Московском международном конгрессе по биотехнологии (Москва, 2003) — III Всероссийской школе-конференции «Химия и биохимия углеводов» (Саратов, 2004 г.) — Всероссийском симпозиуме «Биотехнология микробов», (Москва, 2004 г.) — Всероссийском симпозиуме с международным участием «Автотрофные микроорганизмы» (Москва, 2005г) — Международном конгрессе коллекций культур микроорганизмов (Goslar, 2007) — IV съезде Российского общества биохимиков и молекулярных биологов (Новосибирск, 2008).Публикации. По материалам диссертации опубликовано 45 работ, из них обзор и 24 экспериментальные статьи в рекомендуемых ВАК’ом изданияхтезисы 20 докладов. Структура и объем работы. Диссертация изложена на 356 страницах машинописного текста и состоит из введения- 9-ти глав, включающих материалы литературных источников (3 главы обзора литературы) — краткой характеристики объектов и методов исследований (одна глава) — изложения результатов собственных исследований (4 главы), а также главы, посвященной обсуждению полученньк результатовобщего заключения и вьшодов. Работа содержит 62 таблицы, 49 рисунков. Список цитируемой литературы содержит 697 ссылок. В Приложении приведён полный список исследованных пггаммов актиномицетов с указанием обнаруженных моносахаридов, а также наличия (отсутствия) тейхоевых кислот в их клеточных стенкахтаблицы баз данньк по ЯМР-спектрам изученных тейхоевых кислот и других гликополимеров. БЛАГОДАРНОСТИ Автор выражает глубокую признательность всем российским и зарубежным коллегам — соавторам публикаций, принимавшим з^астие в представленной работе на различных этапах ее вьшолнения: сотрудникам биологического факультета МГУ — д.б.н. Н. В. Потехиной, к.б.н. Ю. И. Козловойсотрудникам Института органической химии им. Н. Д. Зелинского РАН — д.х.н. А. С. Шашкову, к.х.н. Н. Сенченковойсотруднику Института новых антибиотиков им. Г. Ф. Гаузе РАМН — д.б.н. Л. П. Тереховойсотрудникам ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН — к.б.н. В. Н. Акимову, к.б.н. Е. Ю. Гавриш, к.б.н. В. И. Краузовой, м.н.с. В. В. Таран, к.б.н. О. А. Степной, чл. корр. РАН И. С. Кулаевусотруднику Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН — к.х.н. А. А. Стомахинучл. корреспонденту БелНАН В. Г. Иванюку (Белорусский НИИ картофелеводства БелАН) — проф. Э. Стакебрандту (Немецкая коллекция микрооранизмов, Германия).Автор бесконечно благодарен своим наставникам и учителям: д.б.н.Ирине Борисовне Наумовой] (биологический факультет, МГУ) и д.б.н.Ирине Михайловне Грачёвой] (Московский технологический институт пигцевой промышленности), а также д.б.н., профессору Дмитрию Григорьевичу Звягинцеву (факультет почвоведения, МГУ) и к.б.н. Галине Матвеевне Стрешинской (биологический факультет, МГУ).Автор признателен научным консультантам настоящей работы д.б.н. Людмиле Ивановне Евтушенко (ИБФМ им. Г. К. Скрябина РАН, отдел «Всероссийская коллекция микроорганизмов») за помощь в обсуждении и интерпретации результатов, по чьей инициативе и выполнена данная работа, и д.б.н., профессору Александру Ивановичу Нетрусову (биологический факультет, МГУ, зав. каф. микробиологии) за постоянное внимание и интерес к нашим работам, а также за помощь в обсуждении результатов и оформлении данной работы.

Выводы.

1. Исследованы тейхоевые кислоты и гликополимеры клеточных стенок более 100 штаммов — представителей различных родов актиномицетов, относящихся к 12-ти семействам 9-ти подпорядкам порядка Actinomycetales. Названные выше полимеры, среди которых доминируют глицеринтейхоевые кислоты разных типов, обнаружены у 80% изученных актиномицетов.

2. Выявлено широкое разнообразие структур тейхоевых кислот и других гликополимеров у представителей порядка Actinomycetales. Расшифрованы структуры полимеров у 63 штаммов. Впервые установлены структуры 14-ти новых полимеров:

— 10 тейхоевых кислот, среди которых: уникальные поли (полиолфосфат-гликозилполиолфосфаты), незамещенный 3,5-поли (рибитфосфат), 1,5-поли (рибитфосфат) с пируват-кетальными заместителями, 1,3-поли (глицерофосфат) с адетилированным и неацетилированным аминосахаром на одной цепи, тейхоевая кислота с ß—фуранозным олигомером на терминальном конце цепи и ряд других;

— тейхуроновая кислота с дисахаридом в повторяющемся звене и N-глютаминовой кислотой в качестве ацильного остатка;

— нейтральный полисахарид — галактоманнан;

— два кислых полисахарида: олигомер и полимер 3-дсзокси-Т)-глицеро^-галакто-иои-2-улопиранозоновой кислоты (Kdn), несущие либо ß—галактозильные, либо и ß—галактозильные, и ?-3-О-метилгалактозильные заместители.

3. Получены приоритетные данные о корреляции состава и строения тейхоевых кислот и других гликополимеров клеточных стенок у представителей более 25 видов Nocardiopsis, Nocardioides, Glycomyces и Streptomyces с группировкой организмов по генотипическим признакам. Показана эффективность использования строения вышеназванных полимеров и их структурных элементов для решения таксономических задач, в т. ч., ревизии системы структуры рода Streptomyces.

4. Структура тейхоевых кислот может служить основанием для описания новых видов и определения видовой принадлежности выделенных из природных источников изолятов: с учетом отличий по структурам тейхоевых кислот и результатов ДНК-ДНК гибридизации описан новый вид Nocardioides prauseri sp. nov. и предложено уточнение диагноза видов Nocardioides luteus и Nocardioides albus.

5. Анализ результатов собственных исследований и данных других авторов о распространении тейхоевых кислот и гликополимеров у организмов порядка.

Actinomycetales выявил корреляцию признака «наличие/отсутствие тейхоевых кислот» с таксономическим положением актиномицетов. Признак характеризует высшие таксоны (подпорядки и семейства), при вариабельности — дифференцирует роды внутри семейств или группы близких видов внутри родов.

6. Обобщены и проанализированы собственные результаты и литературные данные о моносахаридном составе препаратов клеточных стенок у большого массива актиномицетов. Выявлены дополнительные диагностические моносахариды для ряда таксонов. Обнаружение редких природных Сахаров, входящих в структуру гликополимеров клеточной стенки, может указывать на принадлежность организмов к определённому роду и позволяет прогнозировать открытие новых видов.

7. Тейхоевые кислоты и гликополимеры служат выявлению новых свойств изучаемых актиномицетов: обнаружена новая группа фитопатогенных стрептомицетов, филогенетически и фенотипически отличных от известных возбудителей парши обыкновенной картофеля — это представители «почвенных» видов из филогенетического кластера «Streptomyces violaceusniger», традиционно считавшихся сапрофитами. Характерной особенностью клеточных стенок изученных фитопатогенных стрептомицетов является наличие нескольких анионных полимеров: тейхоевых и тейхуроновых кислот и полимеров/олигомеров Kdn.

Заключение

.

Проведенные исследования выявили широкое распространение тейхоевых кислот и других гликополимеров у представителей порядка Actinomycetales и обнаружили большое число не описанных ранее структур природных полимеров, в том числе уникальных (табл. 9). Наряду с общим планом строения, изученные тейхоевые кислоты проявляют различия в тонкой структуре, обусловленные типом полиола, локализацией фосфодиэфирных связей, природой заместителей, присоединенных гликозидными связями разной конфигурации к полиольпым остаткам и т. д. В числе установленных новых структур — уникальный тип тейхоевой кислоты, найденный пока только у Nocardiopsis dassonvillei и близких видов, новый подтип с 3,5-локализацией фосфодиэфирной связи в рибитфосфатном полимере, 1,5-поли (рибитфосфат) с пируват-кетальными группами, тейхоевая кислота с (3-фуранозным олигомером на терминальном конце цепи, тейхоевая кислота с частично ацетилированным аминокислотным заместителем и т. д.

Открыто два новых кислых гликополимера с З-дрзокси-О-глицеро-О-галакто-ноп-2-улопиранозоновой кислотой (Kdn) в качестве повторяющегося звена: полисахарид (Р-Кёп)/олигосахарид [a-Kdn-(2—>4)-P-Kdn], несущие либо р-галактозильные, либо и р-галактозильные и р-3−0-метилгалактозильные заместители. Гликоконъюгаты с Kdn широко распространены в тканях животныхмоно-, дии тримеры Kdn известны в составе О-полисахаридов у грамотрицательных бактерий, тогда как полимеры Kdn обнаружены в природе впервые. Впервые (в клеточных стенках фитопатогенных стрептомицетов) найдена тейхуроновая кислота с димером, состоящим из диаминоманнуроновой кислоты и галактозамина, связанными (1—>3) гликозидной связью, первая ацилирована N-связанной глютаминовой кислотой. Впервые выявлен нейтральный полисахарид — галактоманнан. Открыт новый сахар (крибелоза) у бактерий рода Kribbella. Обнаруженные и описанные новые химические структуры полимеров расширяют представления о многообразии органического мира и биосинтетическом потенциале микроорганизмов, и представляют интерес для будущих исследований в области молекулярной и клеточной биологии, экологии, эволюции микроорганизмов. Полученные результаты будут, несомненно, востребованы при аннотации полных геномов микроорганизмов.

Значительно пополнена база данных спектров ЯМР тейхоевых кислот и гликополимеров бактериальных клеточных стенок. Показана возможность использования ЯМР-спектров тейхоевых кислот как своеобразных фингерпринтов организмов для идентификации новых изолятов исследованных родов.

Использование строения тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок и их структурных элементов в качестве химических маркеров таксонов принадлежит к числу развивающихся направлений в таксономии актинобактерий. На большом экспериментальном материале продемонстрирована возможность и перспективность использования тейхоевых кислот и других гликополимеров для решения задач классификации и идентификации актинобактерий на всех таксономических уровнях (от подпорядка до вида). Обнаружение корреляции между структурами тейхоевых кислот и гликополимеров клеточных стенок представителей ряда родов, в том числе Nocardiopsis, Nocardioides, Glycomyces, Streptomyces, с одной стороны, и генотипическими и фенотипическими характеристиками организмов, с другой, открывает новые возможности при решении задач по уточнению границ видов и ревизии таксономической структуры родов актиномицетов. Выявленные различия в структурах тейхоевых кислот способствовали установлению видовой принадлежности ряда изолятов и позволили дополнить описание ранее предложенных видов рода Nocardioides (N. luteus и N. albus), а также описать новый вид рода (Nocardioides prauseri sp. nov). Отличия в структурах полимеров фитопатоненных штаммов рода Streptomyces позволяют прогнозировать открытие не менее 15-ти новых фитопатогенных видов.

Сравнительный анализ опубликованных и наших данных по «сахарам клеточных стенок» показал, что определение Сахаров в препаратах клеточных стенок позволяет выявлять дополнительные диагностические для таксона моносахариды, не учитываемые при стандартном определении признака «тип клеточной стенки», производимом в целых клетах. Обнаружение характерных моносахаридов в составе клеточных стенок в некоторых случаях может достаточно точно указывать на принадлежность к определенному роду (например, p-галактофураноза для рода Nocardioides- 2,3-дидезокси-2,3-диметилгалактоза для рода Kribbella).

Важным результатом исследования клеточных стенок стрептомицетов, вызывающих паршу обыкновенную картофеля, было обнаружение в их составе набора углеводсодержащих полимеров с ярко выраженными анионными свойствами — тейхоевых и тейхуроновых кислот с пировиноградной или глутаминовой кислотой в качестве ацилирующих заместителей и полимеров/олигомеров Kdn. Предполагается, что подобные кислые полимеры, локализованные на поверхности клетки фитопатогенного микроорганизма, играют важную роль в инфекционном процессе, обусловливая адсорбцию фитопатогена к клетке растения-хозяина. Дальнейшие исследования, наряду с изучением факторов патогенности и устойчивости, будут способствовать пониманию молекулярных механизмов взаимодействия фитопатогенных стрептомицетов и растения-хозяина и разработке эффективных средств защиты растений. Обнаружение полимера Kdn в клеточной стенке известных «почвенных» видов из филогенетического кластера «.Streptomyces violaceusniger», традиционно считавшихся сапрофитами, позволило выявить неизвестные ранее функции этих видов в системе «почва-растение».

Показать весь текст

Список литературы

  1. Э. Избирательная токсичность. // М. «Мир». 1971. С. 431.
  2. А. Фосфорилированные сахара. // В кн: Биохимические методы анализа растений. М. «Иностр. лит-ра». 1960. стр. 146−182.
  3. Л.И. Археи. II М. ИКЦ «Академкнига». 2007. С. 447.
  4. Г. Ф., Преображенская Т. П., Кудрина Е. С., Блинов Н. О., Рябова И. Д. и Свешникова М.А. Вопросы классификации актиномицетов-антагонистов. // М. «Медгиз». 1957. С. 208.
  5. Г. Ф., Преображенская Т. П., Свешникова М. А., Терехова Л. П. и Максисова Т.С.
  6. Определитель актиномицетов. // Москва. Изд-во: Наука. 1983. 246 С.
  7. .Н. Определение аминосахаров в гидролизатах животных, растительных и бактериальных объектов. // Биохимия. 1959. Т. 24. стр.789−793.
  8. В.А. Тейхоевые и липотейхоевые кислоты актиномицетов. // Автореферат дис. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. Москва, 1994. 24 С.
  9. В.А., Стрешинская Г. М., Евтушенко Л. И., Шашков A.C. и Наумова И.Б. Липотейхоевые кислоты видов рода Agromyces. II Микробиология. 1994 а. Т. 63. стр. 495 502.
  10. В.А., Стрешинская Г. М., Наумова И. Б., Евтушенко Л. И. и Шашков A.C.1,5-Поли (рибитфосфат) с тетрасахаридными заместителями в клеточной стенке Agromyces fucosus ssp. hippuratus. II Биохимия 1994 б. Т. 59. стр. 1892−1899.
  11. И.М. Теоретические основы биотехнологии. // Москва. Изд-во «Элевар». 2003. С. 553
  12. П.Н. и Каральник В.В. Биологические свойства и использование тейхоевых кислот микроорганизмов. // ЖМЭИ. 1983. Т. 9. стр. 26−29.
  13. Н.Ф., Тимофеев Ю. М. и Брнко Н.И. Липотейхоевые и тейхоевые кислоты патогенных стрептококков: структура, функции, роль во взаимодействии возбудителя с макроорганизмом. //ЖМЭИ. 2007. Т. 33. № 6. с. 100−107.
  14. Т.Н., Гошадзе М. Ш., Стрешинская Г. М. и Шибаев В.Н. Образование уридинпирофосфатных производных хиновозамина и фукозамина с ферментной системой из Streptomyces chysomalliis sp. 2. II Биоорган, химия. 1988. Т. 14. стр. 1690−1694.
  15. Л.И. Актинобактерии: развитие систематики на примере семейств порядка Actinomycetales. И Автореферат дис. на соиск. уч. степ. докт. биол. наук. Пущино, 2003. С. 58
  16. Л.И. и Зелеикова Н.Ф. Таксономическое положение Proactinomyces farineus. //Микробиология.'1989. Т. 58. стр. 498−500.
  17. Л.И., Янушкене H.A., Стрешинская Г. М., Наумова И. Б. и Агре Н.С. Распространение тейхоевых кислот в представителях порядка Actinomycetales. // ДАН СССР. 1984. Т. 278. стр.237−240.
  18. И.В., Коннова С. А., Скворцов И.М и Игнатов В. В. Исследование начальных этапов взаимодействия бактерий Azospirillum brasilense с корнями проростковпшеницы: адсорбция, деформация корневых волосков. // Микробиология. 2000. Т. 69. стр. 120−126.
  19. Г. А. Виноградский и современная микробиология. // Микробиология. 2006. Т. 75. стр. 581−592.
  20. Г. М. и Звягинцев Д.Г. Разнообразие актиномицетов в наземных экосистемах. // М. Изд-во МГУ. 2002. 132 с.
  21. В.Г., Банадысев С. А., Ященко Н. П. и Дударевич В.И. Атлас болезней и вредителей картофеля. // Минск. Изд-во: «СоюзИнформ». 2000. 35 С.
  22. Ионин Б.И.и Ершов Б. А. ЯМР-спектроскопия в органической химии. // JI. «Химия» 1967. С. 326.
  23. JI.B. С.Н.Виноградский и современные представления о виде бактерий. // В сб.: Материалы международной конференции «Экология микроорганизмов» к 150-летию С.Н.Виноградского. 2006. стр. 63−65.
  24. JI.B. и Никитина Е.Т. К анализу явлений «естественной» изменчивости у актиномицетов. // Усп. микробиол. 1976. Т. 11. стр. 67−100.
  25. JI.B. и Агре Н.С. Развитие актиномицетов. // Москва. Наука. 1977. 287 С.
  26. Ю.И., Стрешинская Г. М., Шашков А. С., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Поли (гликозилглицерофосфат) в клеточной стенке Streptomyces flavotricini ВКМ Ас-1277. // Биохимия. 1996. Т. 61. стр. 1892−1897.
  27. Ю.И., Стрешинская Г. М., Шашков А. С., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Анионные углеводсодержащие полимеры клеточных стенок двух геновидов стрептовертицилл. // Биохимия 1999. Т. 64. стр. 805−812.
  28. Ю.И., Стрешинская Г. М., Шашков А. С., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Структура анионных углеводсодержащих полимеров клеточных стенок некоторых представителей порядка Actinomycetales. II Биохимия. 2000. Т. 65. стр. 1432−1439.
  29. Ю.И., Стрешинская Г. М., Шашков А. С., Сенченкова С. Н. и Евтушенко Л.И. Углеводсодержащие полимеры клеточной стенки стрептомицета-термофила Streptomyces thermovidgaris subsp. thermovidgaris ВКМ Ас-1857т. // Биохимия. 2006. Т. 71. стр. 954−960.
  30. Л.Н. Анионные полимеры клеточных стенок фитопатогенных стрептомицетов. // Дисс. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. Москва. 2003. 138 С.
  31. Ю.А. и Кочетков Н.К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. III. Структура О-специфических полисахаридов. // Биохимия. 1994. Т. 59. стр. 1784−1851.
  32. . Использование ядерного магнитного резонанса в копформационном анализе. // В кн: Методы исследования углеводов. Изд-во: Мир. Москва. 1975. стр. 386−408.
  33. Н.А., Томшич С. В., Шевченко А. В., Перепелов А. В., Сенченкова С. Н., Шашков А. С. и Книрель Ю.А. Структура кислого О-специфического полисахарида морской бактерии Pseudomonas sp. КММ 634. // Биохимия. 2000. Т. 65. стр. 1253−1261.
  34. Н.А. Определитель бактерий и актиномицетов. // Москва, изд. АН СССР. 1949. 830 С.
  35. Н.А. Лучистые грибки. Высшие формы. // М.: Наука. 1970. 534 С.
  36. В.Д. Гомологические ряды наследственной изменчивости актиномицетов. // Антибиотики. 1973. Т. 18. стр. 579−586.
  37. В.Д. и Филиппова С.Н. Гомологические ряды в наследственной изменчивости и вопросы систематики актиномицетов. // В сб.: Труды ИНМИ им. С. Н. Виноградского. Выпуск XII. Москва. Наука. 2004. стр. 249−268.
  38. И.С. Бактериолитические ферменты микробного происхождения в биологии и медицине. // Соросовский образовательный журнал. 1997. № 3. стр. 23−31.
  39. И.С. и Белозерский А.Н. Изучение при помощи 3 Р физиологической роли полифосфатов в процессе развития Aspergillus niger. II Биохимия. 1957. Т. 23. стр. 587−590.
  40. Й., Древе Г. и Шлегель Г. Современная микробиология. // М. «Мир». 2005. Т. 1.С. 654 и Т. 2. С. 493
  41. И.Б. Тейхоевые кислоты микроорганизмов. // Усп. биол. химии. 1964. Т. 6. стр. 199−214.
  42. И.Б. Особенности структуры, биосинтез и биологическая функция тейхоевых кислот микроорганизмов. // Усп. соврем, биол. 1973. Т. 75. стр. 357−378.
  43. И.Б. Тейхоевые кислоты грамположительных бактерий // Усп. биол. химии. 1979. Т. 20. с 128−151.
  44. И.Б. и Зарецкая М.Ш. Некоторые свойства глицеринтейхоевой кислоты из Actinomyces rimosus JICT 118 и Actinomyces antibioticus 39. // ДАН СССР. 1964. Т. 157. стр. 207−211.
  45. И.Б. и Белозерский А.Н. Рибитгейхоевая кислота из клеточной стенки актиномицета — продуцента антибиотика аурантина. // Биохимия. 1966. Т. 31. стр. 12 761 282. (
  46. И.Б. и Дмитриева Н.Ф. Структура глицеринтейхоевой кислоты клеточной 55. стенки Actinomyces thermovulgaris. //Биохимия. 1974. Т. 39. стр. 201−209.
  47. И.Б. й Шашков А.С. Анионные полимеры клеточных стенок грамположительных бактерий. //Биохимия. 1997. Т. 62. стр. 947−982.
  48. И.Б., Белозерский А. Н., Шафикова Ф. А. Выделение и некоторые свойства тейхоевой кислоты из Actinomyces streptomycini. И ДАН СССР. 1962. Т. 143. стр. 730−734.
  49. И.Б., Шабарова З. А. и Белозерский А.Н. К структуре рибиттейхоевой кислоты из Actinomyces streptomycini. И ДАН СССР. 1963. Т. 152. стр. 1471−1474.
  50. И.Б., Рогозина С. В. и Зарецкая М.Ш. К структуре тейхоевой кислоты из клеточной стенки Actinomyces violaceus. II ДАН СССР. 1969. Т. 188. стр. 710−712.
  51. И.Б., Шашков А. С. и Строганова М.П. Тейхоевая кислота из клеточной стенки Streptomyces kanamyceticus RIA 690 и применение 13С-ЯМР для локализации фосфодиэфирной связи в цепи. // Биоорган. Химия. 1978. Т. 4. стр. 1529−1537
  52. И.Б., Шашков А. С., Скоблилова Н. К., Агре Н. С. и Романов В.В. Лизилтейховая кислота клеточной стенки Streptomyces roseoflavus var. roseofungini 1128. // Биоорган, химия. 1982. Т. 8. стр. 848−856.
  53. И.Б., Дигимбай К., Потехина Н. В., Шашков А. С., Терехова Л. П. и Преображенская Т.П. Тейхоевая кислота клеточной стенки Actinomadura carminata — продуцента антибиотика карминомицина. //Биоорган. Химия. 1986. Т. 12. стр. 670−678.
  54. И.Б., Садиков Б. М., Стрешинская Г. М. и Полин А.Н. Тейхоевая кислота клеточной стенки Arthrobacter crystallopoietes. II Антибиотики и мед. Биотехнол. 1987. № 2. стр. 107−111.
  55. О.А., Квасников Е. И. и Ногина Т.М. Нокардиоподобные и коринеподобные бактерии. // Киев. Изд-во: Наукова думка. 1985. 331 С.
  56. М.В. и Битеева М.Б. Синтетическая среда для продуцента аурантина. // Научн. Докл. Высш. Школы. 1961. № 3. стр. 159−162.
  57. Е.Т., Казакова Г. Г. и Калакуцкии Л.В. Индукция особого типа развития у Actinomyces roseoflavus var. roseofungini на среде с фруктозой. // Докл. АН СССР. 1971. Т. 196. стр. 448−451.
  58. Н.Э. Рациональный дизайн блокаторов углеводсвязывающих белков. //. Сборник материалов IV съезда Российского общества биохимиков и молекулярных биологов. Новосибирск. 11−15 мая. 2008. стр. 409.
  59. А.В. и Ломовская Н.Д. Актиномицеты — объекты генно-инженерных исследований. // Генетика. 1986. Т. 22. стр. 2593−2604.
  60. H.B. Тейхоевые кислоты актиномицетов. // Диссертация на соискание ученой степени доктора биологических наук. Москва. 2005. 285 С.
  61. Н.В. Тейхоевые кислоты актиномицетов и других грамположительных бактерий. // Усп. Биол. Химии. 2006. Т. 46. стр. 225−278.
  62. Н.В., Наумова И. Б., Шашков A.C. и Терехова Л.П. Полимеры клеточной стенки Actinomadura crernea ИНА 292. // Микробиология. 1989 а. Т. 58. стр. 452−456.
  63. Н.В., Наумова И. Б., Шашков A.C. и Терехова Л.П. Поли (галактозилглицерофосфат) с боковыми глицерофосфатными единицами в клеточной стенкс Actinomadura cremea ИНА 292. // Биоорган. Химия. 1989 б. Т. 15. стр. 399−404.
  64. Н.В., Шашков A.C., Кузнецов В. Д. и Наумова И.Б. З-О-метилрамноза в составе тейхоевой кислоты клеточной стенки Streptomyces roseolus. II Биохимия. 1992. Т.57.стр. 1206−1214.
  65. Н.В., Шашков A.C., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Два типа незамещенных поли (глицерофосфатных) тейхоевых кислот в клеточной стенке Streptomyces sp. ВКМ Ас-1830. //Биохимия. 1996а. Т. 61. стр. 1807−1812.
  66. Н.В., Шашков A.C., Наумова И. Б. Поли(гапактозил -1—>2- глицерофосфат) и поли (3−0-метилгалактозил-1—^-глицерофосфат) в клеточной стенкq Actinomadura madura II Микробиология 1996 б. Т. 65. стр. 522−526.
  67. Н.В., Тульская Е. М., Шашков A.C., Таран В. В., Евтушенко Л. И., Наумова И. Б. Таксономическая специфичность тейхоевых кислот клеточных стенок актиномицтов рода Glycomyces. //Микробиология 1998. Т. 67. стр. 399−403.
  68. Н.В., Шашков A.C., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты клеточных стенок Microbispora mesophila Ас-1953т и Thermobifida fusca Ас-19 521 // Микробиология. 2003. Т. 72. стр. 189−193.
  69. Н.В., Евтушенко Л. И., Сенченкова С. Н., Шашков A.C. и Наумова И.Б. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки Brevibacterium iodinum ВКМ Ас-2106т. // Биохимия. 2004. Т. 69. стр. 1659−1666.
  70. .М. Тейхоевые кислоты бактерий рода Arthrobacter. II Автореф. дисс. на соиск. уч. степ. кад. биол. наук. Ленинград. 1987. 21 С.
  71. H.H., Матвеев В. Ю., Панасенко В. И. и Котусов В.В. Зависимость агглютинации Azospirillum brasilense Sp7 лсктином пшеницы от фазы роста культуры. // Прикл. Биохим. и Микробиол. 1986. Т. 22. стр. 396−399.
  72. М.В., Рогов С. И., Шевалье А. Ф. и Грачев С.А. Масс-спектрометрия MALDI TOF для быстрой качественной оценки продукции генно-инженерных белков Е. coli. II Биоорган. Химия. 1999. Т. 25. стр. 638−640.
  73. Н.Г. Биологические особенности возбудителей парши обыкновенной и некоторые меры борьбы с болезнью в условиях БССР: Автореф. дис. канд. биол. наук -Минск. 1974. 22 С.
  74. Н.К., Агре Н. С., Шашков A.C. и Наумова И.Б. Тейхоевая кислотаклеточной стенки адифференцированного варианта 1−68 Streptomyces roseo? avus var. roseofungini 1128. II Биоорган, химия. 1982. Т. 8. стр. 857−862.
  75. A.C. Спектрофотометрическое определение суммарного количества нуклеиновых кислот. //Биохимия. 1958. Т. 23. с. 656−662.
  76. Г. М., Наумова И. Б. и Панина Л.И. Химический состав клеточной стенки Streptomyces chrysomalliis, образующего антибиотик аурантин. // Микробиология. 1979. Т. 48. стр. 814−819.
  77. Г. М., Наумова И. Б., Романов В. В. и Шашков A.C. Структура рибиттейхоевой кислоты клеточной стенки Streptomyces azareiis RIA 1009. // Биоорган, химия. 1981. Т. 7. стр. 1409−1418.
  78. Г. М., Дружинина Т. Н., Наумова И. Б. и Шибаев В.Н. Биосинтез полипренилпирофосфатгексозаминов бесклеточной системой из Streptomyces chysomalliis sp. 2. // Биоорган, химия. 1987. Т. 13. стр. 102−108.
  79. Г. М., Тульская Е. М., Терехова Л. П., Галатенко O.A., Наумова И. Б. и Преображенская Т.П. Некоторые хемотаксономические критерии рода Nocardiopsis. II Докл. Акад. Наук СССР. 1989. Т. 309. стр. 477−480.
  80. Г. М., Наумова И. Б., Шашков A.C., Козлова Ю. И., Терехова Л. П., Галатенко O.A. Особенности строения полимеров клеточной стенки Actinomadura (Nonomnraea) polychroma ИНА 2755 // Биохимия 1991. Т. 56. № 12. стр. 2270−2280.
  81. Г. М., Шашков A.C. и Наумова И.Б. Гетерогенность цепей тейхоевьтх кислот в клеточной стенке Streptomyces chrysomallus ВКМ Ас-628. // Биохимия. 1995. Т. 60. стр. 1274−1282.
  82. Г. М., Козлова Ю. И., Евтушенко Л. И., Таран В. В., Шашков A.C. и Наумова И.Б. Тейхоевая кислота из клеточной стенки Nocardiopsis ssp. ВКМ Ас-1457. // Биохимия. 1996. Т. 61. стр. 285−288.
  83. Г. М., Тульская Е. М., Шашков A.C., Евтушенко Л. И., Таран В. В. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты клеточных стенок Nocardiopsis listeri, Nocardiopsis liicentensis и Nocardiopsis tregalosei. II Биохимия. 1998. Т. 63. № 2. стр. 230−234.
  84. Г. М., Шашков A.C., Усов А. И., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты клеточных стенок актиномицетов трех родов порядка Actinomycetales. // Биохимия. 2002. Т. 67. стр. 939−947.
  85. Г. М., Козлова Ю. И., Шашков A.C., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты клеточных стенок стрептомицетов кластера «Streptomyces eyaneus». II Микробиология. 2003. Т. 72. стр. 510−515.
  86. Г. М., Козлова Ю. И., Алфёрова И. В., Шашков A.C. и Евтушенко Л.И. Тейхоевые кислоты клеточных стенок Streptomyces dagestanicus ВКМ Ас-17 221 и Streptomyces murimis ИНА-524Т. // Микробиология. 2005. Т. 74. стр. 48−54.
  87. С.Д., Терехова Л. П. и Аданин В.М. Состав менахинонов у Nocardiopsis spp. II Достижения микробиологии практике. Тез. VII съезда Всес.микробиол. об-ва. Алма-Ата: Наука. 1985. Т. 1. стр. 48.
  88. Т.А. Биохимические методы. // Москва. Наука. 1980. стр. 154−157.
  89. Е.З. Микроорганизмы рода Nocardia и разложение гумуса. // Москва. Наука. 1976. 199 С.
  90. Е.М., Вылегжанина Е. С. Стрешинская Г. М. Шашков A.C. Наумова И.Б.
  91. Гетерогенность цепей глицеринтейхоевой кислоты клеточной стенки Streptomyces rutgersensis var. сastela-rense ВКМ Ас-238. // Биохимия. 1989. Т. 54. стр. 531−536.
  92. Е.М., Стрешинская Г. М., Наумова И. Б., Терехова Л. П., Галатенко O.A. Некоторые хемотаксономические критерии видов Nocardiopsis dassonvillei и Nocardiopsis antaretiens. II Микробиология. 1992. Т. 61. стр. 908−915.
  93. , Е.М., Потехина, Н.В., Наумова, И.Б., Шашков, A.C. и Евтушенко, Л. И. Сравнительное изучение тейхоевых кислот клеточных стенок актиномицетов Glycomyces rutgersensis и Glycomyces harbinensis. II Микробиология. 1993. V. 62. стр. 932−937.
  94. Е.М., Шашков A.C., Евтушенко Л. И., Буева О. В. и Наумова И.Б.
  95. Идентичность структур тейхоевых кислот актиномицетов вида Streptomyces hygroscopiciis. II Биохимия. Т.62. 1997. стр. 338−343
  96. Е.М., Шашков A.C., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты клеточной стенки Nocardiopsis prasina ВКМ Ас-1880т. // Микробиология. 2000. Т. 69. стр. 58−61.
  97. Е.М., Шашков A.C., Буева О. В. и Евтушенко Л.И. Анионные углеводсодержащие полимеры клеточных стенок Streptomyces melanosporofaciens и близких видов. // Микробиология. 2007 а. Т. 72, стр. 48−54.
  98. Е.М., Шашков A.C., Сенченкова С. Н., Акисмов В. Н., Буева О. В., Ступарь О. С. и Евтушенко Л.И. Анионные полимеры клеточной стенки Streptomyces sp. ВКМ Ас-2534. // Биоорг. химия. 2007 б. Т. 33. стр. 269−276.
  99. И.М. и Мацек К. (ред) Хроматография на бумаге. // Мир. Москва. 1962. 896 С.
  100. З.А. и Богданов A.A. Химия нуклеиновых кислот и их компонентов. // М.: Химия. 1978. 584 С.11
  101. A.C. и Чижов О.С. «С-ЯМР спектроскопия в химии углеводов и родственных соединений. // Биоорган, химия. 1976. Т. 2. стр. 437−497.
  102. A.C., Стрешинская Г. М., Наумова И. Б. Применение спектроскопии 13С ЯМР для изучения рибиттейхоевой кислоты и S. azureus RIA 1009. II Биоорган, химия. 1979. Т. 5. стр. 782−784.
  103. A.C., Тульская Е. М., Стрешинская Г. М., Терехова Л. П., Галатенко O.A. и Наумова И.Б. ЯМР-спектроскопическое исследование тейхоевой кислоты клеточной стенки Nocardiopsis dassonvillei. II Биоорган, химия. 1990. Т. 16. стр. 993−996.
  104. A.C., Свиридов А. Ф., Ботвинко И. В. и Семенов A.M. Структура экзополисахарида Prosthecomicrobium pneiimaticum. II Биоорган, химия. 1992. Т. 18. стр. 112−115.
  105. A.C., Малышева В. А., Наумова И. Б., Стрешинская Г.М. и Евтушенко
  106. Л.И. Поли (рибофуранозилрибитфосфат) в клеточной стенке Agromyces cerinus subsp. nitratus ВКМ Ac-1351. II Биоорган, химия. 1993. Т. 19. стр. 433−438.
  107. A.C., Стрешинская Г. М., Козлова Ю. И., Потехина Н. В., Таран В. В., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки Nocardiopsis alborubida. //Биохимия. 1997. Т. 62. стр. 1327−1331.
  108. A.C., Тульская Е. М., Грачев A.A., Евтушенко Л. И., Буева О. В. и Наумова И.Б. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки Streptomyces sparsogenes ВКМ Ас-1744г. // Биохимия. 1998. Т.63, стр. 1288−1294.
  109. A.C., Тульская Е. М., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевая кислота клеточной стенки Nocardioides albus ВКМ Ас-805т. // Биохимия. 1999. Т. 64. стр. 1544−1549.
  110. A.C., Тульская Е. М., Евтушенко Л. И., Грачев A.A. и Наумова И.Б. Структура тейхоевой кислоты клеточной стенки Nocardioides Intens ВКМ 1246 т. // Биохимия. 2000. Т.65. стр. 505−510.
  111. A.C., Потехина Н. В., Евтушенко Л. И. и Наумова И.Б. Тейхоевые кислоты двух штаммов бревибактерий. // Биохимия. 2004. Т. 69. с. 609−616.
  112. Abeygunawardana C., Bush C.A. and Cisar J.O. Complete structure of the polysaccharide from Streptococcus sanguis J22. // Biochemistry 1990. V. 29. p. 234−48.
  113. Abeygunawardana C., Bush C.A. and Cisar J.O. Complete structure of the cell surface polysaccharide of Streptococcus oralis ATCC 10 557: a receptor for lectin-mediated interbacterial adherence. // Biochemistry 1991a. V. 30. p. 6528−40.
  114. Abeygunawardana C., Bush C.A. and Cisar J.O. Complete structure of the cell surface polysaccharide of Streptococcus oralis CI 04: A600-MHz NMR study. // Biochemistry 1991 b. V. 30. p. 8568−8577.
  115. Adam A., Petit J.F., Wietzerbin-Falszpan J., Sinay P., Thomas D.W. and Lederer E.1.acide N-glycolyl-muramique, constituant des parois de Mycobacterium smegmatis: Identification par spectrometrie de masse. // FEBS Lett. 1969. V. 4. p. 87−92.
  116. Agrious G.N. Plant Pathology. // Cflifornia. San-Diego. Academic Press USA. 1997. P. 635.
  117. Ahmad S., Selvapandiyan A. and Bhatnagar R. A protein-based phylogenetic tree for Gram-positive bacteria derived from hrcA, a unique heat-shock regulatory gene. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1999. V. 49. p. 1387−1394.
  118. Ahrazem O., Prieto A., Leal J.A., Jimenes-Barbero J and Bernabe M. Fungal cell-wall galactomannans isolated from Geotrichum spp. and their teleomorphs, Dipodascus and Galactomyces. //Carbohydr. Res. 2002. V. 337. p. 2347−2351.
  119. Akimov V.N., Taran V.V., Evtushenko L.I., Naumova I.B. and Kalakoutskii L.V.
  120. Grouping of Nocardiopsis strains on the basis of DNA relatedness. // In: Theses of the 9th Int. Symp. On the Biology of Actinomycetes. Moscow. Russia. 1994. p. 242.
  121. Al-Tai A.M. and Ruan, J.S. Nocardiopsis halophila sp. nov., a new halophilic actinomycete isolated from soil. II Int. J. Syst. Bacteriol. 1994. V. 44. p. 474−478.
  122. Al-Tai A., Kim B., Kim S.B., Manfio G.P. and Goodfellow M. Streptomyces malaysiensis sp. nov., a new streptomycete species with rugose, ornamented spores, // Int. J. Syst. Bacteriol. 1999, V, 49, p. 1395−1402.
  123. Altona C. and Hassnoot C.A.G. Prediction of anti and gauche vicinal proton-proton coupling constants in carbohydrates: a simple additivity rule for piranose rings. // Organ. Magn. 1980. V. 13. p. 417−429.
  124. Al-Zarban S.S., Abbas I., Al-Musallam A.A., Steiner U., Stackebrandt E. and Kroppenstedt R.M. Nocardiopsis halotolerans sp. nov., isolated from salt marsh soil in Kuwait. // Int. J Syst. Evol. Microbiol. 2002. V. 52. p. 525−529.
  125. Anderson A.J. and Archibald A.R. Poly (glucosylglycerol phosphate) teichoic acid in the cell wall of Bacillus stearothermophylus B 65. // Biochem. J. 1975. V. 151. p. 115−120.
  126. Anderson A.S. and Wellington E.M.H. The taxonomy of Streptomyces and related genera. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V. 51. p. 797−814.
  127. Anderton W.J. and Wilkinson S.G. Structural studies of mannitol teichoic acid from the cell wall of Bacterium NCTC 9742 // Biochem. J. 1985. V. 226. p. 587−599.
  128. Aono R. The poly-a- and -P~l, 4-glucuronic acid moiety of teichuronopeptide from the cell wall of the alkalophilic Bacillus strain C-125. // Biochem. J. 1990. V 270. p. 363−367.
  129. Arakawa H. and Ito E. Biosynthetic studies on iV-acetylmannosaminuronic acid containing teichuronic acid in Bacillus megaterium. II Can. J. Microbiol. 1986. V. 32. p. 822−825.
  130. Araki Y. and Ito E. Linkage units in cell walls of gram-positive bacteria. // Crit. Rev. Microbiol. 1989. V. 17. p. 121−135.
  131. Archibald A.R. Teichoic acids. // In: Meth. Carbohydr. Chem. (R.L. Whistler and J.N. Bemiller eds.). Academic Press, London and New York., 1972. V. 6. p. l 62−172.
  132. Archibald A. R. The structure, biosynthesis and function of teichoic acid. // Adv. Microbiol. Physiol. 1974. V. 11. p. 53−95.
  133. Archibald A. R. Bacterial cell wall structure and the ionic environment. // In: R. Whittenbury, G. W. Gould, J. G. Banks, and R. G. Board (ed.), Homeostatic mechanisms in micro-organisms. Bath University Press, Bath, United Kingdom. 1988. p. 159−173.
  134. Archibald A. R. and Baddiley J. The teichoic acids. // Adv. Carbohydr. Chem. 1966. V. 21. p. 23−375.
  135. Archibald A.R. and Stafford G.H. A polymer of N-acetylglucosamine 1-phosphate in the wall of Staphylococcus lactis 2102. II Biochem. J. 1972. V. 130. p. 681−690.
  136. Archibald A.R. and Coapes H.E. Bacteriophage SP 50 as a marker for cell walls growth in Bacillus subtil is. II J. Bacteriol. 1976. V. 125. p. l 195−1206.
  137. Archibald A. R., Armstrong J. J., Baddiley J. and Hay J. B. Teichoic acids and the structure of bacterial walls //Nature 1961. V. 191. p. 570−572.
  138. Archibald A.R., Baddiley J.G. and Blumson N.L. The teichoic acids. // In: Nord F.F. (ed) Advances in enzymology. Interscience Pablishers, New York,. 1968 a. V. 30. p. 223−253.
  139. Archibald A.R., Baddiley J.G. and Button D. The glycerol teichoic acid of walls of Staphilococcus lactis 13. II Biochem. J. 1968 b. V. 110. p. 543−557.
  140. Armstrong J. J., Baddiley J., Buchanan J. G., Carss B. and Greenberg G. R. Isolation and structure of ribitol phosphate derivatives (teichoic acids) from bacterial cell walls // J. Chem. Soc. 1958. p. 4344−4354.
  141. Armstrong J.J., Baddiley J. and Buchanan J.G. Structure of the ribitol teichoic acid from walls of Bacillus subtilis. II Biochem. J. 1960. V. 76. p. 610−621.
  142. Armstrong J. J., Baddiley J. and Buchanan J. G. Further studies on the teichoic acid from Bacillus subtilis walls. // Biochem. J. 1961. V. 80. p. 254−261.
  143. Asano K., Masunaga I., Kawamoto I. and Ohta S. Cell wall teichuronic acid containing 3-O-methylrhamnose and glucuronic acid in Catellatospora feiruginea, a soil actinomycete. // Agric. Biol. Chem. 1990. V. 54. p. 1235−1240.
  144. Babcock M.J., Eckwall E.C. and Sxhottel J.L. Production and regulation of potato-scab-inducing phytotoxins by Streptomyces scabiei. II J. Gen. Microbiol. 1993. V. 139. p. 1579−1586.
  145. Baddiley J. Teichoic acids in cell walls and membranes of bacteria. // Essays Biochem. 1972. V. 8. p. 35−77.
  146. Baddiley J. The function of teichoic acids in walls and membranes of bacteria. // In: The Roots of Modern Biochemistry. Kleinkauf, Von Dohren and Jaenicke (eds). Walter de Gruyter, Berlin. 1988. p. 223−229.
  147. Baddiley J. and Matias A.P. Cytidine nucleotides, Part I, Isolation from Lactobacillus arabinosus. //J. Chem. Soc. 1954. p. 2723−2731.
  148. Baddiley J. and Davison A. L. The occurrence and location of teichoic acids in Lactobacilli //
  149. J. Gen. Microbiol. 1961. V. 24. p. 295−299.
  150. Baddiley J., Buchanan J.G., Matias A.P. and Sanderson A.R. Citidine diphosphate glycerol. // J. Chem. Soc. 1956. p. 4186−4190.
  151. Baddiley J., Buchanan J.G., Hardy F.E., Martin R.O., RajBhandry U.L. and Sanderson
  152. A.R. The structure of the ribitol teichoic acid of S. aureus H. // Biochim, Biophys, Acta, 1961. V. 52. p. 406−407.
  153. Baddiley J., Buchanan J.G. and Martin R.O., RajBhandary U.L. Teichoic acids from the walls of Staphylococcus aureus H. // Biochem. J. 1962 a. V. 85. p. 49−56.
  154. Baddiley J., Buchanan J.G., RajBhandary U.L. and Sanderson A.R. Teichoic acids from walls of Staphylococcus aureus H. // Biochem. J. 1962 b. V. 82. p. 439−448.
  155. Baddiley J., Hancock I.C. and Sherwood P.M. X-ray photoelectron studies of magnesium ions bound to the cell walls of gram-positive bacteria. //Nature. 1973. V. 243. p. 43−45.
  156. Baird-Parker A.C. The relationship of cell wall composition to the current classification of staphylococci and micrococci. // Int. J. Syst. Bacterid. 1970. V. 20. p. 483−490.
  157. Bang H. Studies on potato russet scab. A characterization of different isolates from northern Sweden. // Acta Agric. Scand. 1979. V. 29. p. 145−150.
  158. Bang H. Effects of soil conditions on the prevalence of netted scab. // Acta Agric. Scand. Sect. B, Soil Plant Sci. 1995. V. 45. p. 271−277.
  159. Bax A. and SubramanianS. Sensitivity-enhanced correlation of nitrogen-15 and proton chemical shifts in natural-abundance samples via multiple quantum coherence. // J. Magn. Reson. 1986. V.67. p. 565−569.
  160. Bayer M.E. and Sloyer J.L.Jr. The electrophoretic mobility of gram-negative and grampositive bacteria: an electrokinetic analysis. // J. Gen Microbiol. 1990. V. 136. p. 867−874.
  161. Beausejour J., Goyer C., Vachon J. and Beaulieu C. Production of thaxtomin A by Streptomyces scabiei strains in plant extract containing media. // Can. J. Microbiol. 1999. V. 45. p. 764−768.
  162. Becker B., Lechevalier M.P. and Lechevalier H.A. Chemical composition of cell wall preparations from strains of various form-genera of aerobic actinomycetes. // Appl. Microbiol. 1965. V. 13. p. 236−243.
  163. Belozersky A.N. and Spirin A.S. A correlation between the compositions of deoxyribonucleic and ribonucleic acids.//Nature. 1958. V. 182(4628). p. 111−112.
  164. Bergey’s Manual Determinative Bacteriology. Ninth Edition. // J.G. Holt, N.R.Krieg, F.H.A. Sneath, J.T. Staley and S.T. Williams (eds.). Baltimore: Williams and Wilkins. 1994. V. 2. 787 P.
  165. Bergstrom N., Jansson P.E., Kilian M. and Sorensen U. B. S. A unique variant of streptococcal group O-antigen (C-polysaccharide) that lacks phosphocholine. // Eur. J. Biochem. 2003. V. 270. p. 2157−2162.
  166. Bernardet J. F., Nakagawa Y. and Holmes B. Proposed minimal standards for describing new taxa of the family Flavobacteriaceae and emended description of the family. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. V. 52. p. 1049−1070.
  167. Beveridge T. J. and Murray R. G. E. Uptake and retention of metals by cell walls of Bacillus subtilis. //J. Bacterid. 1976. V. 127. p. 1502−1518.
  168. Beyazova M. and Lechevalier M.P. Taxonomic utility of restriction endonuclease fingerprinting of large DNA fragments from Streptomyces strains. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1993. V. 43. p. 674−682.
  169. Bhavsar A.P., Erdman L.K., Schertzer J.W. and Brown E.D. Teichoic acid an essential polymer in Bacillus subtilis that is functionally distinct from teichuronic acid. // J. Bacteriol. 2004. V. 186. p. 7865−7873.
  170. Blackman S. A., Smith T. J. and Foster S. J. The role of autolysins during vegetative growth of Bacillus subtilis 168. // Microbiology. 1998. V. 144. p. 73−82.
  171. Bock K. and Pedersen C. Carbon 13 nuclear magnetic resonance spectroscopy of monosaccharides. // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1983. V. 41. p. 27−66.
  172. Boneca I.G., Huang Z.H., Gage D.A. and Tomasz A. Characterization of Staphylococcus aureus cell wall glycan strands: evidens for a new P-N-acetylglucosaminidase activity. // J. Biol. Chem. 2000. V. 275. p. 9910−9918.
  173. Boylan R.J. and Mendelson N.H. Initial characterization of a temperature-sensitive rod» mutant of Bacillus subtilis. //J. Bacteriol. 1969. V. 100. p. 1316−1321.
  174. Boylan R.J., Mendelson N.H., Brooks D. and Young F.E. Regulation of the bacterial cell wall: analysis of a mutant of Bacillus subtilis defective in biosynthesis of teichoic acid. // J. Bacteriol. 1972. V. 110. p. 281−290.
  175. Bracha R. and Glaser L. An intermediate in teichoic acid biosynthesis. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1976 a. V. 72. p. 1091−1098.
  176. Bracha R. and Glaser L. In vitro system for the synthesis of teichoic acid linked to peptidoglycan. // J. Bacteriol. 1976 b. V. 125. p. 872−879.
  177. Bradley S.G. DNA reassociation and base composition. // Soc. Appl. Bacteriol. Symp. Ser. 1980. V. 8. p. 11−26.
  178. Bramwell P.A., Wiener P., Akkermans A.D.L. and Wellington E.M.H. Phenotypic, genotypic and pathogenic variation among strcptomycetes implicated in common scab disease. // Lett. Appl. Microbiol. 1998. V. 27. p. 255−260.
  179. Briehl M., Pooley H.M. and Karamata D. Mutants of Bacillus subtilis 168 thermosensitive for growth and wall teichoic acid synthesis. // J. Gen. Microbiol. 1989. V. 135. p. 1325−1334.
  180. Brocq-Rousseu D. Sur un Streptothrix. II Rev. Gen. Bot. 1904. V. 16. p. 219−230.
  181. Bukhalid R.A. and Loria R. Cloning and expression of a gene from Streptomyces scabiei encoding a putative pathogenicity factor. // J. Bacteriol. 1997. V. 179. p. 7776−7783.
  182. Bukhalid R.A., Chung S.Y. and Loria R. necl, a gen conferring a necrogenic phenotype, is conserved in plant-pathogenic Streptomyces spp., and linked to a transposase pseudogene. // Mol. Plant Microbe Interact. 1998. V. 11, p. 960−967.
  183. Burge R.E., Fowler A.G. and Reaveley D.A. Structura of the peptidoglycan of bacteria cell walls. I. // J. Mol. Biol. 1977. V. 117. p. 927−953.
  184. Burger M.M. and Glaser L. The synthesis of teichoic acids. I. Polyglycerophosphate. // J. Biol. Chem. 1964. V. 239. p. 3168−3177.
  185. Busse H.J. and Schumann P. Polyamine profiles within genera of the class Acinobacteria with LL-diaminopimelic acid in the peptidoglycan. // Int J Syst Bacteriol. 1999. V. 49. p. 179 184.
  186. Butler W.R. and Guthertz L.S. Mycolic acid analysis by high-performance liquid chromatography for identification of Mycobacterium species. // Clin. Microbiol. Rev. 2001. V. 14. p. 704−726.
  187. Calamita H.G. and Doyle R.J. Regulation of autolysins in teichyronic acid-containing Bacillus subtilis cells. // Mol. Microbiol. 2002. V. 44. p. 601−606.
  188. Chatterjee B.P. and Rao C.V.N. Some structural features of pncumococcus type XXII capsular polysaccharide. //J. Chem. Soc. Perkin 1. 1975. V. 11. p. 985−988.
  189. Chun J., Bae K.S., Moon E.Y., Jung S.O., Lee H.K. and Kim S.J. Nocardiopsis kunsanensis sp. nov., a moderately halophilic actinomycete isolated from a saltern. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000. V. 50. p. 1909−1913.
  190. Clark C. A. and Moyer J. W. Soil rot (pox). // In: Compendium of sweet potato diseases.
  191. American Phytopathological Society. St. Paul, MN. 1988. p. 6−9.
  192. Collins M. D. and Jones D. Distribution of isoprenoid quinone structural types in bacteria and their taxonomic implications. // Microbiol. Rev. 1981. V. 45. p. 316−354.
  193. Collins M.D. and Stackebrandt E. Molecular taxonomic studies on some LL-diaminopimelic acid-containing coryneforms from herbage: description of Nocardioides fastidiosa sp. nov. // FEMS Microbiol. Lett. 1989. V. 57. p. 289−294.
  194. Collins M.D., Pirouz T., Goodfellow M. and Minnikin D.E. Distribution of menaquinones in actinomycetes and corynebacteria. // J Gen Microbiol. 1977. V. 100. p. 221−230.
  195. Collins M.D., Costas M. and Owen R.J. Isoprenoid quinone composition of representatives of the genus Campylobacter. II Arch Microbiol. 1984. V. 137. p. 168−170.
  196. Collins, M.D., Cockcroft, S. and Wallbanks, S. Phylogenetic analysis of a new LL-diaminopimelic acid-containing coryneform bacterium from herbage, Nocardioides plantarum sp. nov. II Int. J. Syst. Bacteriol. 1994. V. 44. p. 523−526.
  197. Collins M.D., Falsen E., Akervall E., Sjiiden B. and Alvarez A. Corynebacterium kroppenstedtii sp. nov., a novel corynebacterium that does not contain mycolic acids. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1998. V. 48. p. 1449−1454.
  198. Colquhoun J.A., Zulu J., Goodfellow M., Horikoshi K., Ward A.C. and Bull A.T. Rapid characterisation of deep-sea actinomycetes for biotechnology screening programmes. // Antonie Van Leeuwenhoek. 2000. V. 77. p. 359−367.
  199. Colwell R.R. Polyphasic taxonomy of bacteria. // In: H. Iizuka and T. Hasegawa (ed.). Proceedings of the International Conference on Culture Collections. Tokyo University Press. Tokyo. Japan. 1970. p. 421−436.
  200. Couch J.N. A new genus and family of the Actinomycetales, with a revision of the genus Actinoplanes. II J. Elisha Mitchell Sci. Soc. 1955. V. 71. p. 148−155.
  201. Couch J.N. Some new genera and species of the Actiniplanaceae. II J. Elisha Mitchell Sci. Soc. 1963. V. 79. p. 53−70.
  202. Coyette J. and Ghuysen J.M. Structure of the walls of Lactobacillus acidophilus strain 63 AM Gasser. // Biochemistry. 1970. V. 9. № 15. p. 2935−43.
  203. Crespi M., Messens E., Caplan A.B., Van Montagu M. and Dcsomer J. Fasciation induction by the phytopathogen Rhodococcus fascians depends upon a linear plasmid encoding a cytokinin synthase gene. // EMDO J. 1992. V. 11, p. 795−804.
  204. Cross T. and Goodfellow M. Taxonomy and classification of the actinomycetes. // Soc. Appl. Bacteriol. Symp. Ser. 1973. V. 2. p. 11−112.
  205. Cui X.-L., Mao P.-H., Zeng M., Li W.-J., Zang L.-P., Xu L.-H. and Jiang C.-L. Streptimonospora salina gen. nov., sp. nov., a new member of the family Nocardiopsaceae. II Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V. 51. p. 357−363.
  206. Cumminus C.S. and Harris H. The chemical composition of the cell wall in some grampositive bacteria and its possible value as a taxonomic character. // J. Gen. Microbiol. 1956. V. 14. p. 583−600.
  207. DangI J.L. (ed.). Bacterial pathogenesis of plants and animals. Molecular and cellular mechanisms. // Berlin, Springer. 1994. 285 P.
  208. Davison A.L. and Baddiley J. The distribution of teichoic acids in staphylococci. // Gen. Microbiol. 1963. V. 32. p. 271−276.
  209. Dawn L. A., Pitman A. and Jackson R. W. Pathogenicity and other genomic islands in plant pathogenic bacteria. // Mol. Plant Patology. 2003. V. 4, p. 407−420.
  210. De Boer W.R., Wouters J.T.M., Anderson a.J. and Archibald A.R. Further evidence for the structure of the teichoic acids from Bacillus stearothermophylus B 65 and Bacillus subtilis var. niger WM. // Eur. J. Biochem. 1978. V. 85. p. 433−436.
  211. Denny T.P. Involvment of bacterial polysaccharides in plant pathogenesis. // Annu. Rev. Phytopathol. 1995. V. 33. p. 173−198.
  212. Diaz-Maurino T. and Perkins H.R. The presence of acidic polysaccharides and muramic acid phosphate in the walls of Corynebacterium poinsettiae and Corynebacterium betae. II J. Gen. Microbiol. 1974. V. 80. p. 533−539.
  213. Dixon J.S. and Lipkin D. Spectrophotometric determination of vicinal glycols. Application to the determination of ribofuranosides. // Anal. Chem. 1954. V. 26. p. 1092−1093.
  214. Dmitriev B.A., Ehlers S. and Rietschel E. T. Layered murein revisited: a fundamentally new concept of bacterial cell wall structure, biogenesis and function. // Med. Microbiol. Immunol. (Berlin). 1999. V. 187. p. 173−181.
  215. Dmitriev B.A., Toukach F.V., Schaper K.-J., Hoist O., Rietschel E. T. and Ehlers S. Tertiary structure of bacterial murein: the scaffold model. // J. Bacteriol. 2003. V. 185. p. 34 583 468.
  216. Dmitriev B.A., Toukach F.V., Hoist O., Rietschel E. T. and Ehlers S. Tertiary structure of Staphylococcus aureus cell wall murein. //J. Bacteriol. 2004. V. 186. p. 7141−7148.
  217. Doyle R.J., McDannel M.L., Helman J.R., and Streips U.N. Distribution of teichoic acid in the cell wall of Bacillus subtilis II J. Bacteriol. 1975. V. 122. p. 152−158.
  218. Dreywood R. Qualitative determination of hydrocarbone compounds. // Indust. Engin. Chem. Anal. 1946. V. 18. p. 176−179.
  219. Elesawy A. A. and Szabo I. M. Isolation and characterization of Streptomyces scabiei strains from scab lesions of potato tubers. Designation of the neotype strain of Streptomyces scabiei. II Acta Microbiol. Acad Sci. Hung. 1979. V. 26, p. 311−320.
  220. Elliott T.S.J., Ward J.B. and Rogers H.J. Formation of cell wall polymers by reverting protoplasts of Bacillus licheniformis. II J. Bacteriol. 1975. V. 124. p. 623−632.
  221. Ellwood D.C. and Tempest D.W. Control of teichoic acid and teichuronic acid biosinthesis in chemostat cultures of Bacillus subtilis var. niger. II Biochem. J. 1969. V. 111. p. 1−5.
  222. Ellwood D.C. and Tempest D.W. Effect of enviroment on bacterial wall content and composition. // Adv. Microb. 1972. V. 7. p. 83−117.
  223. Emdur L.I., Saralkar C., McHugh J.G. and Chiu T.H. Glycerolphosphate-containing cell wall polysaccharides from Streptococcus sanguis. II J. Bacteriol. 1974. V. 120. № 2. p. 724−32.
  224. Endl J., Seidle, P.H., Fiedler F. and Schleifer K.H. Chemical composition and structure of cell wall teichoic acids of staphylococci. // Arch.Microbiol. 1983. V. 135. p. 215−223.
  225. Evtushenko L.I., Taptykova S.D., Akimov V.N., Semyonova S.A. and Kalakoutskii L.V. Glycomyces tennuis sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1991. V. 41. p. 154−157.
  226. Faucher E., Otrysko B., Paradis E., Hodge N. C., Stall R. E. and Beaulieu, C. Characterization of Streptomyces causing russet scab in Quebec. // Plant Dis. 1993. V. 77. p. 1217−1220.
  227. Fedonenko Yu. P., Zatonsky G.V., Konnova S. A" Zdorovenko E.L. and Ignatov V.V.
  228. Structure of the O-specific polysaccharide of the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense Sp245. // Carbohydr. Res. 2002. V. 337. p. 869−872.
  229. Fiedler F. Biochemistry of the cell surface of Listeria strains: a locating general view. // Infection. 1988. V. 16. p. 92−97.
  230. Fiedler F. and Schaffler M.J. Teichoic acids in cell wall of strains of «nicotianae» group of Arthrobacter a chemotaxonomic marcer. // System. Appl. Microbiol. 1987. V. 9. p. 16−21.
  231. Fiedler F., and Bude A. Occurrence and chemistry of cell wall teichoic acids in the genus Brevibacterium II J. Gen. Microbiol. 1989. V. 135. p. 2837−2846.
  232. Fiedler F., Schaffler M.J., and Stackebrandt E. Biochemical and nucleic acid hybridisation studies on Brevibacterium linens and related strains // Arch. Microbiol. 1981.V. 129. p. 85−93.
  233. Fiedler F., Seger J., Schettenbrunner A. and Seeliger H.P.R. The biochemistry of murein and cell wall teichoic acids in the genus Listeria. II System. Appl. Microbiol. 1984. V. 5. p. 360−376.
  234. Fischetti V.A. Surface proteins of gram-positive bacteria. // In: Fischetti V.A., Novick R.P., Ferretti J.J., Portnoy D.A., Rood J.J. (eds) Gram-positive pathogens. Washington. ASM Press. 2000. p. 11−24.
  235. Fisher A., Kroppenstedt R.M. and Stackebrandt E. Molecular-genetic and chemotaxonomic studies on Actinomadura and Nocardiopsis. II J. Gen. Microbiol. 1983. V. 129. p. 3433−3446.
  236. Fischer W. Physiology of lipoteichoic acids in bacteria. // Adv. Microb. Physiol. 1988. V.29. p. 233−302.
  237. Fischer W. Lipoteichoic acids and lipoglycans. // In: Ghuysen J.M. and Hakenbeck R. (eds). Bacterial cell wall. New comprehencive biochemistry. Amsterdam. Elsevier. 1994. V. 27. p. 199 215.
  238. Fischer W., Rosel P. and U Koch H. Effect of alanine ester substitution and other structural features of lipoteichoic acids on their inhibitory activity against autolysins of Staphylococcus aureus. // J. Bacterid. 1981 V. 146. p. 467−475.v.
  239. Formanek H., Formanek S. and Wawra H. A three-dimentional atomic model of the murein layer of bacteria. // Eur. J. Biochem. 1974. V. 17. p. 279−294.
  240. Foster S. J. The role and regulation of cell wall structural dynamics during differentiation of endospore-forming bacteria. // Soc. Appl. Bacteriol. Symp. Ser. 1994. V. 23. p. 25S -39S.
  241. Freney J., Kloos W.E., Hajek V., Webster J.A., Bes M., Brun Y. and Vernozy-Rozand C.
  242. Recommended minimal standards for description of new staphylococcal specises // Int. J. Syst. Bacteriol. 1999. V. 49. p. 489−502.
  243. Gamian A. and Kenne L. Analysis of 7-substituted sialic acid in some enterobacterial lipopolysaccharides.//J Bacteriol. 1993. V. 175. p. 1508−1513.
  244. Garegg P.J., Jansson P.E., Lindberg B., Lindh F., Lonngren J., Kvarnstrom I. and Nimmich W. Configuration of the acetal carbon atom of pyruvic acid acetals in some bacterial polysaccharides. II Carbohydr. Res. 1980. V. 78. p. 127−132.
  245. Gerwig G.J., Kamerling I, P, and Vicgcnthart J.F.G. Determination of the absolute configuration of mono-saccharides in complex carbohydrates by capillary G.L.C. // Carbohydr. Res. 1979. V. A77. p. 10−17.
  246. Gevers D., Cohan F.M., Lawrence J.G., Spratt B.G., Coenye T., Feil E.J., Stackebrandt E., de Peer Y.V., Vandamme P., Thompson F.L. and Swings J. Re-evaluating prokaryotic species. //Nature Rev. Microbiol. 2005. V. 3. p. 733−739.
  247. Ghuysen J.-M. Use of bacteriolytic enzymes in determination of wall structure and their role in cell metabolism. // Bacteriol. Rew. 1968. V. 32. p. 425−464.
  248. Ghuysen J.M. and Strominger J.L. Structure of the cell wall of Staphylococcus aureus strain Coprngagen. I. Preparation of fragments by enzymatic hydrolysis. // Biochemistry. New York. 1963. V. 2. p. 1110−1119.
  249. Glaser L. The synthesis of teichoic acids. II Polyribitol phosphate. // J. Biol. Chem. 1964. V. 239. p. 3178−3186.
  250. Glaser L. and Burger M.M. The synthesis of teichoic acids. III. Glucosylation of polyglycerophosphate. // J. Biol. Chem. 1964. V. 239. p. 3187−3191.
  251. Goethals K., Vereecke D., Jaziri M., Van Montagu M. and Holsters M. Leafly gall formation by Rhodococcus fascians. II Annu. Rev. Phytopathol. 2001. V. 39. p. 27−52.
  252. Goodfellow M. Suprageneric classification of Actinomycetales. II In: Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology (Williams S.T., Sharpe M.E. and Holt J.G., eds). Williams and Wilkins. Baltimore. 1989. V. 4. p. 2333−2339.
  253. Goodfellow M. and Cross T. The biology of the actinomycetes. // In: The Biology of the Actinomyces. Edited by M. Goodfellow, M. Mordarski and S.T. Williams. London. Academic Press. 1984. p. 7−164.
  254. Goodfellow M. and O’Donnel A.G. Chemical methods in prokaryotic systematics. // New York: Wiley. 1994. 520 P.
  255. Goodfellow M., Williams S.T. and Mordarski M. Introduction to and importance of actinomycetes. // In: The biology of Actinomycetes. Edited by M. Goodfellow, M. Mordarski and S.T. Williams. London. Academic Press. 1984. p. 1−6.
  256. Goodfellow M., Williams S.T. and Mordarski M. Actinomycetes in biotechnology. // London. Academic Press, 1988. 320 P.
  257. Goodfellow M., Kumar Y., Labeda D.P. and Sembiring L. The Sytreptomyces violaceusniger clade: a home for Streptomycetes with rugose ornamented spores. // Antone Van Leeuwenhoek. 2007. V. 92. p. 173−199.
  258. Gorin P.A.G. and Mazurek M. Further studies on the assignment of signals in 13C magnetic resonance spectra of aldoses and derived methyl glycosides. // Canad. J. Chem. 1975. V. 53. p. 1212−1223.
  259. Goyer C., Faucher E and Beaulieu C. Streptomyces caviscabies sp. nov., from deep-pitted lesions in potatoes in Quebec, Canada. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996 a. V. 46. p. 635−639.
  260. Goyer C., Otrysko B., and Beaulieu C. Taxonomic studies of Streptomyces causing potato common scab. // Can. J. Plant Pathol. 1996 b. V. 18. p. 107−113
  261. Goyer C., Vachon J. and Beaulieu C. Pathogenicity of Sti’eptomyces scabiei mutants altered in thaxtomin A production. // Phytopathology. 1998. V. 88. p. 442−445.
  262. Graham L.L. and Beveridge T.J. Structural differentiation of the Bacillus subtilis 168 cell wall. II J. Bacteriol. 1994. V. 176. p. 1413−1421.
  263. Grant W.D. Cell wall teichoic acid as a reserve phosphate sourse in Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1979. V. 137. p. 35−43.
  264. Grimont P. A. D. Use of DNA reassociation in bacterial classification. // Can. J. Microbiol. 1988. V. 34. p. 541−546.
  265. Groisman E.A. and Ochman H. Pathogenicity islands bacterial evolution in quantrum leaps. // Cell. 1996. V. 87. p. 791−794.
  266. Gromska W. and Mayer H. The Linkage of lysine in the O-specific chains of Proteus mirabilis 1959. // Eur. J. Biochem. 1976. V. 62. p. 391−399.
  267. Grund E. and Kroppenstedt R.M. Chemotaxonomy and numerical taxonomy of the genus Nocardiopsis Meyer 1976. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1990. V. 40. p. 5−11.
  268. Guilhaus M. Special feature: tutorial, principles and instrumentation in time-of-flight massspectrometry. Physical and instrumental concepts. //J. Mass Spectr. 1995. V. 30. p. 1510−1532.
  269. Gurtler V., Smith R., Mayall B.C., Potter-Reinemann G., Stackebrandt E. and Kroppenstedt RM. Nocardia veterana sp. nov., isolated from human bronchial lavage. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V. 51. p. 933−936.
  270. Gyobu Y. and Miyadoh S. Proposal to transfer Actinomadura carminata to a new subspecies of the genus Nonomuraea as Nonomuraea roseoviolacea subsp. carminata comb. nov. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V. 51. p. 881−889.
  271. Haegi A. and Del Gallo M. Azospirillum-plant interaction: a biochemical approach. // In: Nitrogen Fixation. Polsinelli M., Matterassi R. and Vicenzini M. (eds). Dordrecht: Kluwer Academic Publishers. 1991. p. 147−153.
  272. Hanahan D.I. and OHey I.N. Chemical nature of monophosphoinositides. // J. Biol. Chem. 1958. V. 231. p. 813−828.
  273. Hancock I. C. and Baddiley J. In vitro synthesis of the unit links teichoic acid to peptidoglycan. // J. Bacteriol. 1976. V. 125. p, 880−886.
  274. Hancock I.C. and Poxton I. Teichoic acids and other accessory carbohydrates from grampositive bacteria. // In: Bacterial Cell Surface Techniques. Hancock I.C. and Poxton I. (eds). Chichester: John Wiley and sons. 1988. p. 79−88.
  275. Hancock I. C., Wiseman G. and Baddiley J. Biosynthesis of the unit links teichoic acid to the bacterial wall: inhibition by tunicamycin. // FEBS Lrtt. 1976. V. 69. p. 75−80.
  276. Harrison M. D. Potato russet scab, its cause and factors affecting its development. // Am. Potato J. 1962. V. 39. p. 368−387.
  277. Harz H., Burgdorf K. and Holtije J.V. Isolation and separation of the glycan strands from murein of Escherichia coli by reversed-phase high-performance liquid chromatography. // Annal. Biochem. 1990. V. 190. p. 120−128.
  278. Healy F. G. and Lambert D. H. Relationships among Streptomyces spp. causing potato scab. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1991. V. 41, p. 479−482.
  279. Healy F. G., Krasnoff S. B., Wach M., Gibson D. M. and Loria R. Involvement of a Cytochrome P450 monooxygenase in thaxtomin A biosynthesis by Streptomyces acidiscabiei. II J. Bacteriol. 2002. V. 184. p. 2019−2029.
  280. Hase S. and Matsushima Y. Structural studies on a glucose-containing polysaccharide obtained from cell walls of Micrococcus lysodeikticus. 3. Determination of the structure. // J. Biochem. (Tokyo). 1972. V. 72. p. 1117−1128.
  281. Heckeis J.E., Archibald A.R. and Baddiley J. Studies on the linkage between teichoic acid and peptidoglycan in a bacteriophage-resistant mutant of Staphylococcus aureus H // Biochem. J. 1975. V. 149. p. 637−47.
  282. Heckeis J.E., Lambert P.A. and Baddiley J. Binding of magnesium ions to cell walls of Bacillus subtilis W23 containing teichoic acid or teichuronie acid 11 Biochem. J. 1977. V. 162. p. 359−365.
  283. Henssen A. Beitrage zur Morphologie und Systematik der thermophilen Actinomyceten. // Arch. Microbiol. 1957. V. 26. p. 373−416.
  284. Heptinstall J., Heptinstall S., Archibald A.R. and Baddiley J. Teichoic acids and membrane function in bacteria //Nature. 1970. V. 225. p. 519−521.
  285. Heptinstall J, Coley J., Ward P.J., Archibald A.R. and Baddiley J. The linkage of sugar phosphate polymer to peptidoglycan in walls of Micrococcus sp. 2102. // Biochem J. 1978. V. 169. p. 329−336.
  286. Herbold D.R. and Glaser L. Interaction of iV-acetylmuramic acid L-alanine amidase with cell wall polymers. //J. Biol. Chem. 1975. V. 250. p. 7231−7238.
  287. Hess H.H. and Dcrr J.E. Assay of inorganic and organic phosphorus in the 0,1−5 nanomole range. // Anal. Biochem. 1975. V. 63. p. 607−613.
  288. Hiorns W.D., Methe B.A. and Nierzwicki-Baner S.A. Bacterial diversity in Adirondack mountain lakes as revealed by 16S RNK gene sequences. // Appl. Environ. Microbiol. 1997. V. 63. p. 2957−2960.
  289. Hodgson D.A. Primary metabolism and its control in streptomycetes: a most unusual group of bacteria//Adv. Microbiol.Physiol. 2000. V. 42. p. 47−238.
  290. Holme T. Influence of environment on content and composition of bacterial envelopes // J. Appl. Chem. And Biotechnol. 1972. V. 22. p. 391−399.
  291. Holt J.G., Krieg N.R., Sneath P.H.A., Stalcy J.T. and Williams S.T. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 9th eds. Baltimore: Williams and Wilkins. 1997. p. 690−691.
  292. Holtje J.V. and Tomasz A. Specific recognition of choline residues in the cell wall teichoic acid by the N-acetylmuramyl-L-alanine amidase of Pneumococcus. // J. Biol. Chem. 1975. V. 250. p. 6072−6076.
  293. Honeyman A.L. and Stewart G.C. The nucleotide sequence of the rodC operon of Bacillus subtilis. //Mol. Microbiol. 1989. V, 3. p. 1257−1268.
  294. Hooker W.J. Common scab. // In: Compendium of potato diseases. American Phytopathological Society, St. Paul, MN. 1981. p. 33−34.
  295. Home D.S. and Tomasz A. Possible role of a choline-containing teichoic acid in the maintenance of normal cell shape and physiology in Streptococcus oralis. II J. Bacteriol. 1993. V. 175. p. 1717−1722.
  296. Hozzein W.N., Li W.-J., Ali M.I.A., Hammouda O., Mousa A.S., Xu L.-H. and Jiang C.
  297. Nocardiopsis alkaliphila sp. nov., a novel alkaliphilic actinomycete isolated from desert soil in Egypt. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2004. V. 54. p. 247−252.
  298. Hughes R.S., Pavlik J.G., Rogers H.J. and Tanner P.J. Organization of polymers in the cell walls of some bacilli. //Nature. 1968. V. 219. p. 642−644.
  299. Hughes A.H., Hancock I. C. and Baddiley J. The function of teichoic acids in cation control in bacterial membranes // Biochem. J. 1973. V. 132. p. 83−93.
  300. Hussain M., Heilmann C., Peters G. and Herrmann M. Teichoic acid enhances adhesion of Staphylococcus epidermidis to immobilized fibronectin. // Microb. Pathog. 2001. V. 31. p. 261 270.
  301. Hussey H., Sueda S., Cheah S.C. and Baddiley J. Control of teichoic acid synthesis in Bacillus licheniformis ATCC 9945. // Eur. J. Biochem. 1978. V. 82. p. 69−74.
  302. Ivatt R.J., and Gilvarg C. The primary structure of the teichuronic acid of Bacillus megaterium. II J. Biol. Chem. 1979. V. 254. p. 2759−2765.
  303. Janczura E., Perkins H.E., and Rogers, H.J. Teichuronic acid: a mucopolysaccharide present in wall preparations from vegetative cells of Bacillus subtilis. 11 Biochem. J. 1961. V. 80. p. 82−93.
  304. Jansson P.-E., Kenne L., and Widmalm G. Computer-assisted structural analysis of polysaccharides with an extended version of CASPER using 1H- and 13C-n.m.r. data. // Carbohydr. Res. 1989. V. 188. p. 169−191.
  305. Jansson, P.-E., Lindberg, J. and Widmalm G. Syntheses and NMR studies of pyruvic acid 4,6-acetals of some methyl hexopyranosides. // Acta Chem Scand. 1993. V. 47. p. 711−715.
  306. Jennings H. J., Lugowski C. and Young N. M. Structure of the complex polysaccharide C-substance from Streptococcus pneumoniae type 1. // Biochemistry. 1980. V. 19, p. 4712−4719.
  307. Jones D. and Collins M.D. Taxonomic studies on some human cutaneous coryneform bacteria: description of Dermabacter hominus gen. nov. sp. nov. // FEMS Microbiol Lett. 1988. V. 51. p. 51−56.
  308. Jongrungruangchok S., Tanasupawat S. and Kudo T. Micromonospora chaiyaphumensis sp. nov., isolated from Thai soils. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2008. V. 58. p. 924−928.
  309. Kampfer P. The family Streptomycetaceae, Part I: Taxonomy. // In: Dworkin et al., (Eds), The Prokaryotes, A Handbook on the Biology of Bacteria, 3rd Ed., New York. Springer-Verlag. 2006. V. 3.p. 538−604.
  310. Kampfer P., Kroppenstedt R.M. and Dott W. A numerical classification of the grnera Streptomyces and Streptoverticillium using miniaturized physiological tests. // J. Gen. Microbiol. 1991. V. 137. p. 1831−1891.
  311. Kampfer P., Busse H.J. and Rainey F. A Nocardiopsis composlus sp. nov., from the atmosphere of a composting facility. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. V. 52. p. 621−627.
  312. Karamata D., McConnel M. and. Rogers H.J. Mapping of rod mutants of Bacillus subtilis. //J. Bacteriol. 1972. V. l 11. p. 73−79.
  313. Karamata D., Pooley H.M. and Monod M. Expression of heterologous genes for wall teichoic acid in Bacillus subtilis 168. // Mol. Gen. Genet. 1987. V. 207. p. 73−81.
  314. Kaya S., Yokoyama K., Araki Y. and Ito E. Structural and biosynthetic studies on linkage region between poly (galactosylglycerol phosphate) in Bacillus coagulans. II Biochem. Biophys. Res. Commun. 1983. V. 111. p. 312−318.
  315. Kaya S., Yokoyama K., Araki Y. and Ito E. N-acetylmannosaminyl (l—>4)N-acetylglucosamine, a linkage unit between glycerolteichoic acid and peptidoglycan in cell walls of several Bacillus strains II J. Bacteriol. 1984. V. 158. № 3. p. 990−996.
  316. Kaya S., Araki Y. and Ito E. Structural studies on the linkage unit between poly (galactosylglycerol phosphate) and peptidoglycan in cell walls of Bacillus coagidans II Eur. J. Biochem. 1985. V. 147. p. 41−46.
  317. Kelemen M.V. and Baddiley J. Structure of the intracellular glycerol teichoic acid from Lactobacillus casei ATCC 7469. II Biochem. J. 1961. V. 80. p. 246−254.
  318. Kelemen M.V. and Rogers H.J. Three-dimentional molecular models of bacterial cell wall muropeptides (peptidoglycans). // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1971. V. 68. p. 992−996.
  319. Kers J.A., Cameron K.D., Joshi M.V., Bukhalid R.A., Morello J.E., Wach M.J.GibsonD.M. and Loria R. A large, mobile pathogenicity island confers plant pathogenicity on Streptomyces species. // Mol. Microbiol. 2005. V. 55. p. 1025−1033.
  320. Kimura M, Ohta T. Eukaryotes-prokaryotes divergence estimated by 5S ribosomal RNA sequences. //Nat New Biol. 1973. V. 243. p. 199−200.
  321. King R. R. and Lawrence C. H. Characterization and of new thaxtomin A analogues generated in vitro by Streptomyces scabiei. II J. Agric. Food Chem. 1996. V. 44. p. 1108−1110.
  322. King R. R., Lawrence C. H., Clark M.C. and Calhoun L.A. Isolation and characterisition of phytotoxins associated with Streptomyces scabiei. II J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1989. V. 13. p. 849−850.
  323. King R. R., Lawrence C. H. and Calhoun L.A. Chemistry of phytotoxins associated with Streptomyces scabiei, the causal organism of potato common scab J. Agric. Food Chem. 1992. V. 40. p. 834−837.
  324. King R.R., Lawrence C.H., Calhoun L.A.and Ristanio J.B. Isolation and characterization of thaxtomin-type phytotoxins associated with Streptomyces ipomoeae. il J. Agric. Food Chem. 1994. V. 42. p. 1791−1794.
  325. King R. R., Lawrence C. H. and Calhoun L. A. Isolation and identification of pigments generated in vitro by Streptomyces acidiscabiei. II J. Agric. Food Chem. 1996. V. 44, p. 28 492 851
  326. King R. R., Lawrence C. H. and Gray J.A. Herbicidal properties of the thaxtomin group of phytotoxins. //J. Agric. Food Chem. 2001.V. 49. p. 2298−2301.
  327. Kizuka M., Enokita R., Tanahashi K. and Okazaki T. Studies on actinomycetes in plant leaves. // In: The 9-th Intern. Symp. Biology of Actinomycetes. Moscow. Theses. 1994. p. 232.
  328. Klem P. and Schembri M.A. Bacterial adhesins: function and structure. // Int. J. Med. Microbiol. 2000. V. 299. p. 27−35.
  329. Knirel Y.A., Paredess L., Jansson P.-E., Weintraub A., Widmalm G. and Albert M.J.
  330. Structure of the capsular polysaccharide of Vibrio cholerae O 139 synonim Bengal D-galactose 4,6-cyclophosphate. // Eur. J. Biochem. 1995. V. 232. p. 391−396.
  331. Knirel Yu.A., Shaskov A.S., Tsvetkov Yu.E., Jansson P-.E. and Ziihringer U. 5,7-diamino-3,5,7,9-tetradeoxynon-2-ulosonic acids in bacterial glycopolymers: chemistry and biochemistry. // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 2003. V. 58. p. 371−417.
  332. Koch A.L. Orientation of the peptidoglycan in the sacculus of Escherichia coli. II Res. Microbiol. 1998 a. V. 149. p. 689−701.
  333. Koch A.L. The three-for-one model for gram-negative wall growth a problem and a possible solution. //FEMS Microbiol. Lett. 1998 b. V. 162. p. 127−134.
  334. Koch A.L. How did bacteria come to be? // Adv. Microbial. Physiol. 1998 c. V. 40. p. 353 399.
  335. Kocharova N.A., Knirel Y.A., Shashkov A.S. Kochetkov N.K. and Pier G.B. Structure of an extracellular cross-reactive polysaccharide from Pseudomonas aeruginosa immunotype 4. // J. Biol. Chem. 1988. V. 263. p. 1291−1295.
  336. Kogan G., Jann B. and Jann K. Structure of the Escherichia coli 0104 polysaccharide and its identity with the capsular K9 polysaccharide. // FEMS Microbiol Lett. 1992. V. 70. p. 135−140.
  337. Kogan G., Shashkov A.S., Jann B. and Jann K. Structure of the 056 antigen of Escherichia coli, a polysaccharide containing 7-substituted alpha-N-acetylneuraminic acid. // Carbohydr Res. 1993 a. V. 238. p. 261−270.
  338. Kogan G., Jann B. and Jann K. Structure of the 024 antigen of Escherichia coli, a neuraminic acid-containing polysaccharide. // Carbohydr Res. 1993 b. V. 238. p. 335−338.
  339. Kojima N., Araki Y. and Ito. Structural studies on the acidic polysaccharide of Bacillus cereus AHU 1356 cell walls. // Eur J Biochem. 1985 a. V. 148. p. 479−484.
  340. Kojima N., Iida J., Araki Y. and Ito E. Structural studies on the linkage unit between poly (N-acetylglucosaminel-phosphate) and peptidoglycan in cell walls of Bacillus pumilus AHU 1650. // Eur. J. Biochem. 1985 b. V. 149. p. 331−336.
  341. Kojima N., Uchikawa K, Araki Y. and Ito E. Structural studies on the minor teichoic acid of Bacillus coagulans AHU 1631. // Eur. J. Biochem. 1986. V. 155. p. 521−526.
  342. Kojima N., Kaya S., Araki Y. and Ito E. Pyruvic-acid-containing polysaccharide in the cell wall of Bacillus polymyxa AHU1385. // Eur. J. Biochem. 1988. V. 174. p. 255−260.
  343. Korn-Wendisch F. and Kutaner H.J. The family Streptomycetaceae. II In: The Procaryotes. Balows et al., (eds). New York: Springer. 1992. p. 921−995.
  344. Krause R. M. Antigenic and biochemical composition on hemolytic streptococcal cell walls. // Bacteriol. Rev. 1963. V.149. p. 689−701.
  345. Kritzman G., Shani-Cahani A., Kirshner B., Riven Y., Bar Z., Katan J. and Grinstein A. Pod wart disease of peanut. // Phytoparasitica. 1996. V. 24, p. 293−304.
  346. Kroppenstedt R.M. Fatty acid and menaquinone analysis of actinomycetes and related organisms. // Soc. Appl. Bacteriol. Tech. Ser. 1985. V. 20- p. 173−197.
  347. Kroppenstedt R.M. and Kutaner H.J. Biochemical markers in the taxonomy of the Actinomycetales. // Experientia. 1976. V. 32. p. 318−319.
  348. Kroppenstedt R.M. and Evtushenko L.I. The Family Nocardiopsaceae. // In: Dworkin et al. (Eds), The Prokaryotes, A Handbook on the Biology of Bacteria, 3rd Ed., New York: SpringerVerlag. 2006. V. 3. p. 754−795.
  349. Kunst F., Ogasawara N., Moszer I., Albertini A.M. and Alloni G. The complete genome sequence of the Gram positive bacterium Baciluus subtilis. II Nature. 1997. V. 390. p. 249−256.
  350. Kusser W. and Fiedler F. Purification, Mr-value and subunit structure of a teichoic acid hydrolase from Baciluus subtilis. II FEBS Lett. 1982. V. 149. p. 67−70.
  351. Kusser W. and Fiedler F. Teichoicase from Baciluus subtilis Marburg. // J. Bacteriol. 1983. V. 155. p 302−310.
  352. Kwok A., Su S., Reynolds R., Bay S., Av-Gay Y., Dovichi N. and Chow A. Species identification and phylogenetic relationships based on partial HSP60 gene sequences within the genus Staphylococcus. II Int. J. Syst. Bacteriol. 1999. V. 49. p. 1181−1192.
  353. Labeda D.P. DNA-DNA hybridization in the systematics of Streptomyces. II Gene. 1992. V. 115. p. 249−253.
  354. Labeda D.P. DNA-relatedness among strains of the Streptomyces lavendulae phenotypic cluster group. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1993. V. 43. p. 822−825.
  355. Labeda D.P. DNA-relatedness among verticil-forming Sti-eptomyces species (formerly Streptoverticillium species). // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V. 46. p. 699−703.
  356. Labeda D.P. DNA relatedness among the Streptomyces fulvissimus and Streptomyces griseoviridis phenotypic claster groups. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1998. V. 48. p. 829−832.
  357. Labeda D.P. and Lyons A.J. Deoxyribonucleic-acid relatedness among species of the Streptomyces cyaneus cluster. // Syst. Appl. Microbiol. 1991 a. V. 14. p. 158−164.
  358. Labeda D. P. and Lyons A. J. DNA relatedness among strains of the sweet potato pathogen Streptomyces ipomoeae. II Appl. Environ. Microbiol. 1992. V. 58. p. 532−535.
  359. Labeda D.P. and Kroppenstedt R.M. Goodfellowia gen. nov., a new genus of the Pseudonocardineae related to Actinoalloteichus, containing Goodfellowia coendeoviolacea gen. nov., comb. nov. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V.56. p. 1203−1207.
  360. Labeda D.P., Testa R.T., Lechevalier M.P. and Lechevalier H.A. Glycomyces, a new genus of the Actinomycetales. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1985. V. 35. p. 417−421.
  361. Lahooti M. and Harwood C.R. Transcriptional analysis of the Baciluus subtilis teichuronic acid operon. // Microbiology. 1999. V. 145. p. 3409−3417.
  362. Lambert D.H. and Loria R. Streptomyces scabies sp. nov. nom. rev. // Int.J.Syst.Bacteriol. 1989a. V. 39. p. 387−392.
  363. Lambert D.H. and Loria R. Streptomyces scabies sp. nov. nom. rev. // Int.J.Syst.Bacteriol. 1989b. V. 39. p. 393−396.
  364. Lambert P.A., Hancock I.C. and Baddiley J. The interaction of magnesium ions with teichoic acid // Biochem. J. 1975 a. V. 149. p. 519−524.
  365. Lambert P.A., Hancock I.C. and Baddiley J. Influence of alanyl ester residues on the binding of magnesium ions to teichoic acids // Biochem. J. 1975 b. V. 151. p. 671−676.
  366. Lang W.K., Glassey K. and Archibald A.R. Influence of phosphate supply on teichoic acid and teichuronic acid content of Baciluus subtilis cell walls. // J. Bacteriol. 1982. V. 151. p. 367 375.
  367. Lawrence C. H., Clark M. C. and King R. R. Introduction of common scab symptoms in aseptically cultured potato tubers by the vivotoxin, thaxtomin. // Phytopathology. 1990. V. 80. p. 606−608.
  368. Lazarevic V. and Karamata D. The tagGl I operon of Baciluus subtilis 168 encodes a two-component ABC transporter involved in the metabolism of two wall teichoic acids. // Mol. Microbiol. 1995. V. 16. p. 345−355.
  369. Lazarevic V., Pooley H.M., Mauel C. and Karamata D. Teichoic and teichuronic acids from Gram-positive bacteria. // In: Biopolymers. A. Steinbuchel (ed), Weinheim. Willey-VCH Verlag. Vol. 5. Polysaccharides I. 2002 b. p. 465−492.
  370. Lederer E. The mycobacterial cell wall. // Pure Appl. Chem. 1971. V. 25. p. 135−165.
  371. Lederer E., Adam A., Ciorbaru R., Petit J.F. and Wietzerbin J. Cell walls of Mycobacteria and related organisms- chemistry and immunostimulant properties. // Mol. Cell Biochem. 1975. V. 7. p. 87−104.
  372. Leiner R. H., Fry B. A., Carling D. E. and Loria R. Probable involvment of thaxtomin A in pathogenicity of Streptomyces scabiei on seedlings. // Phytopathology. 1996. V. 86. p. 709−713.
  373. Lechevalier M.P. Lipids in bacterial taxonomy a taxonomist’s view. // CRC Crit Rev Microbiol. 1977. V. 5. p. 109−210.
  374. Leshevalier M.P. and Leshevalier H.A. Composition of whole-cell hydrolysates as a criterion in the classification of aerobic actinomycetes. // In: The Actinomycetales. H. Prauser (ed). Jena. VEB Gustav Fisher Verlag. 1970 a. p. 311−316.
  375. Leshevalier H.A. and Leshevalier M.P. A critical evaluation of the genera of aerobic actinomycetes. // In: The Actinomycetales. H. Prauser (ed). Jena. VEB Gustav Fisher Verlag. 1970 b. p. 393−405.
  376. Leshevalier M.P. and Leshevalier H.A. Chemical composition as a criterion in the classification aerobic actinomycetes. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1970 c. V. 20. p. 435−443.
  377. Lechevalier M.P., de Bievre C. and Lechevalier H. Chemotaxonomy of aerobic actinomycetes: phospholipid composition. // Biochem. System. Ecol. 1977. V. 5. p. 249−260.
  378. Leps B., Labischinski H. and Bradaczek H. Conformational behavior of the polysaccharide backbone of murein. // Biopolymers. 1987. V. 26. p. 1391−1406.
  379. Li M.-G., Li W.-J., Xu P., Cui X.-L., Xu L.-H. and Jiang C.-L. Nocardiopsis xinjiangensis sp. nov., a halophilic actinomycete isolated from a saline soil sample in China. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003. V. 53. p. 317−321
  380. Liegard H. and Landrieu M. Un cas de mycose conjunctivaele. // Ann. Ocul. 1911. V. 146. p. 418−426.
  381. Lifley M. R., Tarelli E. and Baddiley J. The teichuronic acid from the walls of Bacillus licheniformis ATCC 9945. II Biochem.J. 1980. V. 191. p. 305−318.
  382. Lim S. and Salton M.R. Isolation and characterization of a succinylated polysaccharide from the cell wall of Micrococcus agilis. II Microbios. 1985. V. 44. p. 95−105.
  383. Lindholm P., Kortemaa H., Kokkola M., Haahtela K., Salkinoja-Salonen M. and Valkonen J.P.T Streptomyces spp. isolated from potato scab lesions under Nordic conditions of Finland. II Plant Dis. 1997. V 81. p. 1317−1322.
  384. Linos A., Steinbuchel A., Spruer C. and Kroppenstedt R.M. Gordonia polyisoprenivorans sp. nov., a rubber-degrading actinomycete isolated from an automobile tyre. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1999. V. 49. p. 1785−1791.
  385. Lipkind G.M., Shashkov A.S., Knirel Y.A., Vinogradov, E.V. and Kochetkov N.K. // A computer-assisted structural analysis of regular polysaccharides on the basis of 13C-NMR. data. // Carbohydr. Res. 1988. V. 175. p. 59−75.
  386. Liu T.Y. and Gotschlich E.C. The cemical composition of pneumococcal C-polysaccharide. //J. Biol. Chem. 1963. V. 238. p. 1928−1934.
  387. Liu W. and Hulett F.M. Comparison of Pho binding to the tuaA promoter with PhoP binding to other Pho-regulon promoters establishes a Bacillus subtilis Pho core binding site. // Microbiology. 1998. V 144. p. 1443−1450.
  388. Liu W., Eder S. and Hulett F.M. Analysis of Bacillus subtilis tagAB and tagDEF expression during phosphate starvation identifies a repressor role for PhoP-P. I I J. Bacteriol. 1998. V. 180. p. 753−758.
  389. Liu Z., Shi Y., Zang Y., Zhou Z., Lu Z., Wei L., Huang Y., Rodrigues C. and Goodfellow
  390. Loria R., Bukhalid R. A., Creath R. A., Leiner R. H., Olivier M. and Steffens J. C. Differential production of thaxtomins by pathogenic Streptomyces species in vitro. II Phytopathology. 1995. V. 85. p. 537−541
  391. Loria R., Grace, E., Bukhalid R. A. and Fry B. A. Streptomyces acidiscabiei reduces growth and causes cell hypertrophy and necrosis on monocot and dicot seedlings. // Phytopathology. 1996. V. 86. p. 578−582
  392. Loria R., Bukhalid R.A.and Fry B.A. Plant pathogenisyty in the genus Streptomyces. II Plant Disease. 1997. V. 81. № 8. p. 836−846.
  393. Loria R., Kers J. and Joshi M. Evolution of plant pathogenicity in Streptomyces. II Ann. Rev. Phytopathol. 2006. V. 44. p. 469−487.
  394. Mabeza G.F. and Macfarlane J. Pulmonary actinomycosis. // Eur. Respir. J. 2003. V. 21. p. 545−551.
  395. Magee J.T., Philpot C., Yang J. and Hosein I.K. Pyrolysis typing of isolates from a recurrence of systemic cryptococcosis. // J. Med. Microbiol. 1994. V. 40. p. 165−169.
  396. Markovitz A. and Dorfman A. Synthesis of capsular polysaccharide (hyaluronic acid) by protoplast membrane preparations of group A Streptococcus. II J. Biol. Chem. 1962. V. 237. p. 273−279.
  397. Mauel C., Young M., Margot P. and Karamata D. The essential nature of teichoic acids in Baciluus subtilis as revealed by insertional mutagenesis. // Mol.Gen. Genet. 1989. V. 215. p. 388 394.
  398. Mauel C., Young M., Monsutti-Grecescu A., Marriott S.A. and Karamata D. Analysis of Bacillus subtilis tag gene expression using transcriptional fusions. // Microbiology. 1994. V. 140. 2279−2288.
  399. McArthur H.A., Roberts F.M., Hancock I.C. and Baddiley J. Lipid intermediates in the biosynthesis of the linkage unit between teichoic acids and peptodoglycan. // FEBS Lett. 1978. V 86. p. 186−200.
  400. Mc Carthy A.J. and Williams S.T. Actinomycetes as agents of biodegradation in the environment. // Gene. 1992. V. 115. p. 189−192.
  401. McConnel M. and Rogers H.J. Mapping of rod mutants of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1972. V. 111. p. 73−79.
  402. McQuenn D. A. R., and Schottel J. L. Purification and characterization of a novel extracellular esterase from pathogenic Streptomyces scabiei that is inducible by zinc. // J. Bacteriol. 1987. V. 169. p, 1967−1971.
  403. Merchante R., Pooley H.M. and Karamata D. A periplasm in Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1995. V. 177. p. 6176−6183.
  404. Meroueh S.O., Bencze K.Z., Hcsek D., Lee M., Fisher J.F., Stcmmler T.L. and Mobashery S. Three-dimentional structure of the bacterial cell wall peptidoglycan. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. V. 103. p. 4404−4409.
  405. Meyer J. Nocardiopsis, a new genus of the order actinomycetales. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1976. V. 26. p. 487−493.
  406. Michiels K.W., Croes C.L. and Vanderleyden J. Two different models of attachment of Azospirillum brasilense sp7 to weat roots. // J/Gen Microbiol. 1991. V. 137. p. 2241−2246.
  407. Miller E.S., Woese C.R. and Brenner S. Description of the erythromycin-producing bacterium Arthrobacter sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1991. V. 41. p. 363−368.
  408. Minke R. and Blackwell J. The structure of alpha-chitin. // J/ Mol/ Biol. 1978. V. 120. p. 167 181.
  409. Minnikin D.E., Alshamaony L. and Goodfellow M. Differentiation of Mycobacterium, Nocardia, and related taxa by thin-layer chromatographic analysis of whole-organism methanolysates. //J. Gen. Microbiol. 1975. V. 88. p. 200−204.
  410. Minnikin D.E. and Goodfellow M. Lipid composition in the classification and identification of acid-fast bacteria. // Soc. Appl. Bacteriol. Symp. Ser. 1980. V. 8. p. 189−256.
  411. Minnikin D. E., O’Donnell A. G., Goodfellow M., Alderson G., Athalye M., Schaal A. and Parlett J. H. An integrated procedure for the extraction of bacterial isoprenoid quinones and polar lipids. //J. Microbiol. Methods. 1984. V. 2. p. 233−293
  412. Mirelman D., Back B.D. and Shaw D.R. The location of the D-alanyl ester in the ribitol teichoic acid of Staphylococcus aureus. II Biochem. Biophys. Res. Commun. 1970. V. 39. p. 712 717.
  413. Misaki A., Seto N. and Azuma I. Structure and immunological properties of D-arabino-D-galactans isolated from cell walls of Mycobacterium species. // J. Biochem. 1974. V. 76. p. 15−27.
  414. Miyajima K., Tanaka F., Takeuchi T. and Kuninaga S. Streptomyces turgidiscabiei sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1998. V. 48. p. 495−502.
  415. Mock K.K., Davey M. and Cottrell J.S. The analysis of underivatised oligosaccharides by matrix-assisted laser desorption mass spectrometry. // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1991. V. 177. p. 597−895.
  416. Med. 2005. V. 37. p. 234−249.
  417. Muhlenhoff M., Eckhardt M. and Gerardy-Schahn R. Polysialic acid: three-dimensional structure, biosynthesis and function. // Curr. Opin. Struct. Biol. 1998. V. 8. p. 558−64.
  418. Murakami T., AnzaiH., Imai S., Satoh A., Nagaoka K and Thompson C.J. The bialaphos biosynthetic genes of Streptomyces hygroscopicus: molecular cloning and characterization of the gene cluster. // Mol.Gen. Genet. 1986. V. 205. p. 42−50.
  419. Murazumi N., Sasaki Y., Okada J., Araki Y. and Ito E. Biosynthesis of glycerol theichoic acid in Bacillus cereus: formation of linkage unit disaccharide on lipid intermediate. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1981. V. 99. p. 504−510.
  420. Nagaoka M., Kamisango K., Fujii H., Uchikawa K., Sekikawa I. and Azuma I. Structure of acidic polysaccharide from cell wall of Propionibacterium acnes strain CI. II J. Biochem. (Tokyo) 1985. V. 97. p. 1669−1678.
  421. Natsume M., Matsumoto M., Ohshiro A., Kozone I., Hashimoto M. and Abe H. Effect of antibiotics on formation of aerial mycelium and production of phytotoxins in Streptomyces spp. // J. Pestic. Sci. 2003. V. 28. p. 183−187
  422. Naumova I.B. The teichoic acids of actinomycetes. // Microbiol. Sci. 1988. V. 5. p. 275−279.
  423. Naumova I.B., Kuznetsov V.D., Kudrina K.S. and Bezzubenkova A.P. The occurence of teichoic acids in Streptomyces. II Arch. Microbiol. 1980. V. 126. p. 71−75.
  424. Naumova I.B., Potekhina N.V., Duigimbaye C., Shashkov A.S., Terekhova L.P. and Preobrazhenskaya T.P. Cell wall polymers of Actinomadura carminata INA 4281. // Arch.Microbiol. 1986. V. 146. p. 256−262
  425. Naumova I.B., Yanushkene N.A., Streshinskaya G.M. and Shashkov A.S. Cell wall anionic polymers and peptidoglycan of Actinoplanes philippinensis VKM Ac-647. // Arch. Microbiol. 1990. V. 154. p. 483−488.
  426. Ndowora T. C. R., Kinkel L. L., Jones R. K., and Anderson, N. A. Fatty acid analysis of pathogenic and suppressive strains of Streptomyces species isolted in Minnesota. // 1996. Phytopathology. V. 86. p. 138−143.
  427. Neuhaus F.C. and Baddiley J. A continuum of anionic charge: structures and functions of d-alanyl-teichoic acids in gram-positive bacteria. // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2003. V. 67. p. 686 723.
  428. Nonomura H. and Ohara Y. Distribution of actinomycetes in soil. X. New genus and species of monosporic actinomycetes. //J. Ferment. Technol. 1971. V. 49. p. 895−903.
  429. Oberreuter H., Seiler H. and Scherer S. Identification of coryneform bacteria and related taxa by Fourier-transform infrared (FT-IR) spectroscopy. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. V. 52. p. 91−100.
  430. Oniki M., Suzui T., Araki T., Sonoda R-i., Chiba T. and Takeda, T. Causal agent of russet scab of potato. // Bull. Natl. Inst. Agro-Eviron. Sci. 1986. V. 2. p. 56−59.
  431. Osbourn A. Saponin and plant defense a soap story. // Trends Plant. 1996. V. 1. p. 4−9.
  432. O’Donnei A.G., Minnikin D.E. and Goodfeiiow M. Integrated lipid and wall analysis of Actinomycetes. // In: Chemical Methods in Bacterial Systematics. Goodfeiiow M. and Minnikin D.E.(eds). Academic PressL London. 1985. p. 131−141.
  433. Ohta T. and Kimura M. Functional organization of genetic material as a product of molecular evolution. //Nature. 1971. V. 233. p. 118−119.
  434. Olive D.M. and Bean P. Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms. // J. Clin. Microbiol. 1999. V. 37. p. 1661−1669.
  435. Oxiey D., and Wilkinson S.G. Structural studies of acidic polymers produced by the O 23 reference strain of Serratia marcescens presence of amide-linked glutamic acid. // Carbohydr. Res. 1990. V. 204. p. 85−91.
  436. Park Y.S., Sweitzer T.D., Dixon J. F and Kent C. Expression, purification, and characterization of CTP: glycerol-3-phosphate cytidyl-transferase from Bacillus subtilis. II J. Biol. Chem. 1993. V, 268. p. 16 648−16 654.
  437. Park D.H., Kim J.S., Kwon S.W., Wilson C., Yu Y.M., Hur J.H. and Lim C.K.
  438. Streptomyces luridiscabiei sp. nov., Streptomyces puniciscabiei sp. nov., and Streptomyces niveiscabiei. sp. nov., wich cause potato common scab disease in Korea. // 2003. Int. .J. Syst. Evol. Microbiol. V. 53. p. 2049−2054.
  439. Partridge M.D., Davison A.L. and Baddiley J. A polymer of glucose and N-acetylgalactosamine 1-phosphate in the wall of Micrococcus sp. Al. // Biochem J. 1971. V. 121. p. 695−700.
  440. Partridge M.D., Davison A.L. and Baddiley J. The distribution of teichoic acids and sugar 1-phosphate polymers in walls of micrococci. // J Gen Microbiol. 1973. V. 74. p. 169−173.
  441. Patt S.L. and Shoolery, J.N. Attached proton test for carbon-13NMR. // J. Magn. Reson. 1982. V. 46. p. 535−539.
  442. Pavlik J.C. and Rogers H.J. Selective extraction of polymers from cell walls of grampositive bacteria. //J. Gen. Microbiol. 1973. V 131. p. 619−621.
  443. Pazur J.H. and Forsberg L.S. The sugar sequence of a streptococcal, immunogenic tetraheteroglycan: a revision. // Carbohydr Res. 1980. V. 83. p. 406−408.
  444. Person L.H. and Martin W.J. Soil rot of sweet potatoes in Luisiana. // Phythopathology. 1940. V. 30. p.913−926.
  445. Podvin L., Reysset G., Hubert J. and Sebald M. Presents of choline in teichoic acid of Clostridium acetobytylicum N1−4 and choline inhibition of autolytic functions. // J.Gen. Microbiol. 1988. V. 134. p. 1603−1609.
  446. Pollack H.M. and Neuhaus F.C. Changes in wall teichoic acid during’the rod-sphere transition of Bacillus subtilis 168. //J. Bacteriol. 1994. V. 176. p. 7252−7259.
  447. Pooley H.M. Turnover and spreading of old wall during surface growth of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1976 a. V. 125. p. 1127−1138.
  448. Pooley H.M. Leyered distribution, according to age, within the cell wall of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1976 b. V. 125. p. 1139−1147.
  449. Pooley H.M. and Karamata D. Teichoic acid synthesis in Bacillus subtilis: genetic organization and biological roles. //New Compr. Biochem. 1994. V. 27. p. 187−198
  450. Potekhina N.V., Naumova I.B., Shashkov A.S. and Terekhova L.P. Structural features of cell wall teichoic acid and peptidoglycan of Actinomadura cremea INA 292. // Eur. J. Biochem. 1991. V. 199. p. 313−316.
  451. Potekhina N.V., Tul’skaya E.M., Naumova I.B., Shashkov A.S. and Evtushenko L.I.
  452. Erythritolteichoic acid in cell wall of Glycomyces tenuis VKM Ac-1250. // Eur. J. Biochem. 1993. V. 218. p. 371−375.
  453. Potekhina N.V., Shashkov A.S., Evtushenko L.I., Senchenkova S.N. and Naumova I.B.
  454. The mannitol teichoic acid from the cell wall of Brevibacterium permense BKM Ac-2280 // Carbohydr. Res. 2003 b. V. 338. p. 2745−2749.
  455. Potekhina N.V., Shashkov A.S., Evtushenko L.I. and Naumova I.B. Two novel cell wall teichoic acids in two novel Brevibacterium species. // 1st FEMS Congress of European Microbiologists. Slovenia. Ljubljana. June 29 July 3, 2003 c. p. 346.
  456. Powelson M.L., Johnson K.B. and Rowe R.C. Manegement of diseases caused by soilborne pathogens. // In: Potato health management. Rowe R.C. (eds). American Phytopathological Society, St. Paul, MN. 1993. p. 149−158.
  457. Prauser H. Nocardioides, a new genus of the order Actinomycetales. II Int. J. Syst. Bacteriol. 1976. V. 26. p. 58−65.
  458. Prauser H. Nocardioides luteus spec. nov. // Z. Allg. Microbiol. 1984. V. 24. p. 647−648.
  459. Prauser H. Genus Nocardioides Prauser 1976, 61AL. // In: Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. S.T.Williams, M.E.Sharpe and J.G.Holt (eds). Baltimore: Williams and Wilkins. 1989. V. 4. p. 2371−2375.
  460. Pridham T. G., Hesseltine C. W and Benedict R. G. A guide for the classification of Streptomycetes according to selected groups, placement of strains in morphological sections 1. // Appl. Microbiol. 1958. V. 6. p. 52−79.
  461. Quintela J.C., Caparros M. and de Pedro M.A. Variability of peptidoglycan structural parameters in gram-negative bacteria. // FEMS Microbiol. Lett. 1995.V. 125. p. 95−100.
  462. Read R.C. Nocardiosis and actinomycosis. // Medicine. 2005. V. 33. p. 114−115.
  463. Reddy G.P., Chang C.C. and Bush C.A. Determination by heteronuclear NMR spectroscopy of the complete structure of the cell wall polysaccharide of Streptococcus sanguis strain K103. // Anal. Chem. 1993. V. 65. p. 913−21.
  464. Reuhs B.L., Kim J.S. and Matthysse A.G. Attachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot cells and Arabidopsis wound sites is correlated with the presence of a cell-associated, acidic polysaccharide. //J. Bacteriol. 1997. V. 179. p. 5372−5379.
  465. Reusch V.M. and Neuhaus F.C. D-Alanine: membrane acceptor ligase from Lactobacillus casei. II J. Biol. Chem. 1971. V. 246. p. 6136−6143.
  466. Richert K., Brambilla E. and Stackebrandt E. Development of PCR primers specific for the amplification and direct sequencing of gyrB genes from microbacteria, order Actinomycetales. // J Microbiol. Methods. 2005. V. 60. p. 115−123.
  467. Rijnaarts H.H.M., Norde W., Bouwer E.J., Lyklema J. and Zehnder A.J.B. Reversibility and mechanism of bacterial adhesion // Colloids Surf. B: Biointerface. 1995. V. 4. p. 5−22.
  468. Robson R.L. and Baddiley J. Role of teichuronic acid in Baciluus licheniformis: defective autolysis due to deficiency of teichuronic acid in novobiocin-resistant mutant. // J. Bacteriol. 1977. V. 129. p. 1051−1058.
  469. Rogers H.J. The function of bacterial autolysins. // In: Microbial Polysaccharases. London. Acad. Press. 1979. p. 235−268.
  470. Rodgers H.J., McConnell M. and Burdett I, D. The isolation and characterization of mutants of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis with disturbed morphology and cell division. // J. Gen. Microbiol. 1970. V. 61. p. 155−171.
  471. Rodgers H.J., Thurman P.F., Taylor C. and Reeve J.N. Mucoprptide synthesis by rod mutants of Bacillus subtilis. II J. Gen. Microbiol. 1974. V. 85. p. 335−350.
  472. Rodgers H.J. and Taylor C. Autolysins and shape change in rodA mutants of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1978. V. 135. p. 1032−1042.
  473. Rogers H.J., Perkins H.R. and Ward J.B. Structure of peptidoglycan. // In: Microbial cell walls. London: Chapman and Hall, Ltd. 1980. p. 190−204.
  474. Rossello-Mora R. Opinion: the species problem, can we achieve a universal concept? // Syst. Appl. Microbiol. 2003. V. 26. p. 323−326.
  475. Rossello-Mora R. and Amann R. The species concept for prokaryotes. // FEMS Microbiol. Rev. 2001. V. 25. p. 39−67.
  476. Sabry S.A., Ghanem N.B., Abu-Ella G.A., Schumann P., Stackebrandt E., and Kroppenstedt R.M. Nocardiopsis aegyptia sp. nov., isolated from marine sediment. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2004. V. 54. p. 453−456.
  477. Sadovskaya I., Vinogradov E., Li J., and Jabbouri S. Structural elucidation of the extracellular and cell-wall teichoic acids of Staphylococcus epidermidis RP62A, a reference biofilm-positive strain // Carbohydr Res. 2004. V. 339. p. 1467−1473.
  478. Salton M. R. J. Studies of the bacterial cell wall: V. The action of lysozyme on cell walls of some lysozyme-sensitive bacteria. // Biochim. Biophys. Acta. 1956. V. 22. p. 495−506.
  479. Sanderson A.R., Strominger J.L. and Nathenson S.G. Chemical structure of teichoic acid from Staphylococcus aureus strain Copengagen. // J. Biol. Chem. 1962. V.237. p. 3603−3613.
  480. Sasaki Y., Araki Y. and Ito E. Structure of the linkage region betweenglycerol teichoic acid and peptidoglycan in Bacillus cereus AHU cell walls. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980. V. 96. p. 529−534.
  481. Sasaki Y., Araki Y. and Ito E. Structure of teichoic-acid-glycopeptide complexes from cell walls of Bacillus cereus AHU 1030. // Eur. J. Biochem. 1983. V. 132. p. 207−213.
  482. Savelkoul P.H., Aarts H.J., de Haas J., Dijkshoorn L., Duim B., Otsen M., Rademaker J.L., Schouls L. and Lenstra JA. Amplified-fragment length polymorphism analysis: the state of an art. // J. Clin. Microbiol. 1999. V. 37. p. 3083−3091.
  483. Schiiffler M.J., and Stackebrandt E. Biochemical and nucleic acid hybridisation studies on Brevibacterium linens and related strains. // Arch. Microbiol. 1981. V. 129. p. 85−93.
  484. Schaffer C. and Messner P. The structure of secondary wall polymers: how Gram-positive bacteria stick their cell walls together. // Microbiology. 2005. V. 151. p. 643−651.
  485. Schertzer J.W. and Brown E.D. Purified, recombinant TagF protein from Bacillus subtilis 168 catalyzes the polymerization of glycerol phosphate onto a membrane acceptor in vitro. 11 J .Biol.Chem. 2003. V. 278. p. 18 002−18 007.
  486. Schipper D. Structural studies of the teichoic acids from Bacillus lisheniformis. I I Carbohydr. Res. 1995. V. 279. p. 75−82.
  487. Schleifcr K.H. and Kandler O. Peptidoglycan types of bacterial cell walls and their taxonomic implications. // Bacteriol. Rev. 1972. V. 36. p. 407−477.
  488. Schleifer K.H. and Stackebrandt E. Molecular systematics of prokaryotes. // Ann. Rev. Microbiol. 1983. V. 37. p. 143−187.
  489. Schleifer K.-H. and Ludwig W. Phylugenetic relationship among bacteria. // In: The hierarchy of life. Fernholm B., Bremer K., Jornwall H. (eds.). Amsterdam. Elsevier. 1989. p. 103 117.
  490. Schleifer K.H., Hammcs W.P. and Kandler O. Effect of endogenous and exogenous factors on the primary structures of bacterial peptidoglycan. // Adv. Microb. Physiol. 1976. V. 13. p. 245 292.
  491. Scholte K. and Labruyere R. E. Netted scab: a new name for an old disease in Europe. // Potato Res. 1985. V. 28. p. 443−448.
  492. Schloter M., Lebuhn M., Heulin T. and Hartmann A. Ecology and evolution of bacterial microdiversity. II FEMS Microbiol. Rev. 2000. V. 24. p. 647−660.
  493. Schubert K. and Fiedler F. Structural investigations on the cell surface of Eiysipelothrix rhusiopathiae. II System. Appl. Microbiol. 2001. V. 24. p. 26−30.
  494. Schubert K., Ludwig W., Springer N., Kroppenstedt R.M., accolas J.P. and Fiedler F.
  495. Two coryneform bacteria isolated from the surface of french Gruyere and Beaufort cheeses are new species of the genus Brachybacterium alimenlarium sp. nov. and Brachybacterium tyrofermentans sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V. 46. p. 81−87.
  496. Schumann P. and Prauser H. Minimal standarts for taxa related to Arthrobacter and Microb act erium. II In: Proceedind in the nineth International Symposium on the biology of the Actinomycetes. 1994. p. 237−241.
  497. Schumann P., Kiimpfer P., Busse H.J., Evtushenko L.I. Proposed minimal standards for describing new genera and species of the suborder Micrococcineae. II Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2009. V. 59. p. 00−00.- in press.
  498. Seidl P.H., Golecki J.R., Franken N. and Schleifer K.H. Immunoelectron microscopic studies on the localization of peptidoglycan peptide subunit pentapeptides in bacterial cell walls. // Arch. Microbiol. 1985. V. 142. p. 121−127.
  499. Seltmann G. and Hoist O. The bacterial cell wall. II Berlin. Springer-Vcrlag. 2002. 280 P.
  500. Severin A., Tabei K. and Tomasz A. The structure of cell wall peptidoglycan of Bacillus cereus RSVF1, a stain closely related to Bacillus anthracis. II Microb. Drug. Resist. 2004. V. 10. p. 77−82.
  501. Shashkov A.S., Lipkind G.M., Knirel Y.A. and Kochetkov N.K. Stereochemical factors determining the effects of glycosylation on the 13C chemical shifts in carbohydrates. // Magn. Reson. Chem. 1988. V.26. p. 735−747.
  502. Shashkov A.S., Kochanowski H., Kozlova Yu.I., Streshinskaya G.M., Terekhova L.P. and Galatenko O.A. Teichuronic acid of the cell wall of Actinoplanes brasiliensis II Biochim. Biophys. Acta 1994 a. V. 1201. p. 333−338.
  503. Shashkov AS., Streshinskaya G.M., Gnilozub V.A., Evtushenko L.I., and Naumova I.B. Poly (arabitol phosphate) teichoic acid in the cell wall of Agromyces cerinus subsp. cer/>?zw VKM Ac-1340 // FEBS Lett. 1995. V. 371. p. 163−166.
  504. Shashkov A.S., Potekhina N.V., Naumova I.B., Evtushcnko L.I., and Widmalm G. Cell wall teichoic acids of Actinomadura vir idis VKM Ac-1315T // Eur. J. Biochem. 1999. V. 262. № 3. p. 688−695.
  505. Shashkov A.S., Streshinskaya G.M., Evtushenko L. and Naumova I.B. NMR-based identification of cell wall anionic polymers of Spirilliplanes yamanashiensis VKM Ac-1993T. // Carbohydr. Res. 2001. V. 336. p. 237−242.
  506. Shashkov A. S., Streshinskaya G. M., Kosmachevskaya L.N., Senchenkova S. N., Evtushenko L. I. and Naumova, I.B. NMR-basedidentification of cell wall galactomaiman of Streptomycessp. VKM Ac-2125. // Carbohydr. Res. 2003. V. 338. p. 2021−2024.
  507. Shibaev V. N Biosynthesis of bacterial polysaccharide chains composed of repeating units. // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1986. V. 44. p. 277−339.
  508. Shibaev V.N., Duckworth M., Archibald A.R. and Baddiley J. The structure of a polymer containing galactosamine from walls of Bacillus subtilis 168. // Biochem. J. 1973. V. 135. p. 383 384.
  509. Shiflett M.A., Brooks D. and Yong F.E. Cell wall and morphological changes induced by temperature shift in Baciluus subtilis cell wall mutants. // J. Bacteriol. 1977. V. 132. p. 681−690.
  510. Shirling E.B. and Gottlieb D. Methods for characterization of Streptomyces species. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1966. V. 16. p. 313−340.
  511. Shirling E.B. and Gottlieb D. Cooperative description of type cultures of Streptomyces. II. Species description s from first study. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1968. V. 18. p. 69−189.
  512. Shockman G.D. and Holtje J.V. Microbial peptidoglycan (murein) hydrolases // In: Bacterial Cell Wall. (J.-M. Ghuysen and R. Hakenbeck, Eds). Amsterdam: Elsevier. 1994. pp. 131−166.
  513. Shungu D.L., Cornett J.B., and Shockmann G.D. Lipids and lipoteichoic acid of autolysis-defective Streptococcus faecium strains. // J. Bacteriol. 1980. V. 142. p. 349−354.
  514. Slack S.A. A look at potato leafroll virus and potato virus Y: past, present and future. // Badger Common' Tater. V. 43. p. 16−21.
  515. Sleytr U.B. and Beveridge T.J. Bacterial S-layers. // Trends Microbiol. 1999. V. 7. p. 253 260.
  516. Smith T.J., Blackman S.A. and Foster S.J. Autolysins of Bacillus subtilis: multiple enzymeswith multiple functions // Microbiology. 2000. V. 146. p. 249−62.
  517. Soldo B., Lazarevic B., Pagni M. and Karamata D. Teichoic acid operon of Baciluus subtilis 168.1 I Mol. Microbiol. 1999. V. 31. p. 795−805.
  518. Sonnenfeld E.M., Beveridge T.J., Koch A.L. and Doyle R.J. Asymmetric distribution of charge on the cell wall of Bacillus subtilis. II J. Bacteriol. 1985a. V. 163. p. 1167−1171.
  519. Sonnenfeld E.M., Beveridge T.J. and Doyle R.J. Discontinuity of charge on cell wall poles of Bacillus subtilis. II Can. J. Microbiol. 1985b. V. 31. p. 875−877.
  520. Stackebrandt E. Defining taxonomic ranks. // In: Prokaryotes. 2006. V. 1. p. 29−57.
  521. Stackebrandt E. and Kandier O. Taxonomy of the genus Cellulomonas, based on phylogenetic characters and deoxyribonucleic acid-deoxyribonucleic acid homology, and proposal of seven neotype strains. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1979. V. 29. p. 273−282.
  522. Stackebrandt E. and Goebel B.M. A place for DNA-DNA reassotiation and 16S rRNA sequence analysis in the present species definition in bacteriology. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1994. V. 44. p. 846−849.
  523. Stackebrandt E. and Swings J. Bundling the forces in systematists. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2005. V. 55. p. 993−994.
  524. Stackebrandt E. and Ebers J. Taxonomic parameters revisited: tarnished gold standards. // Microbiology today. 2006. November, p. 152−155.
  525. Stackebrandt E., Lewis B.J. and Woese C.R. The phylogenetic structure of the coryneform group of bacteria. // Zbl. Bakt. Abt. 1 Orig. C. 1980. V. 2. p. 137−149.
  526. Stackebrandt E., Rainey F.A. and Ward-Raincy N.L. Proposal for a new hierarchic classification system, Actinibacteria classis nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. 47. p. 479−491.
  527. Stackebrandt E, Brambilla E, Richert K. Gene sequence phylogenies of the family microbacteriaceae. // Curr Microbiol. 2007. V. 55. p. 42−46
  528. Steigcrwalt A.G., Fanning G.R., Fife-Ashbury M.A. and Brenner D.J. DNA relatedness among species of Enterobacter and Serratia. II Can. J. Microbiol. 1975. V. 22. p. 441−455.
  529. Stoffyn J. and Jeanloz R.W. Identification of aminosugars by paper chromatography. // Arch. Biochem. Biophys. 1954. V. 52. p. 373−379.
  530. Stortz C.A., Cherniak R., Jones R.G., Trebcr T.D. and Reinhardt D.J. Polysaccharides from Peptostreptococcus anaerobius and structure of the species-specific antigen. // Carbohydr Res. 1990. V. 207. p. 101−120.
  531. J.L. & Ghuysen J.M. Mechanisms of enzymatic bacteriolysis. Cell walls of bacteria are solubilized by action of either specific carbohydrates or specific peptidases. // Science. 1967. V. 156. p. 213−236.
  532. Suput J.M.P., Leshevalier M.P. and Leshevalier H.A. Chemical composition of variants of aerobic actinomycetes. // Appl. Microbiol. 1967. V. 15. p. 1356−1361.
  533. Sutcliffe I.C. The lipoteichoic acids and lipoglycans of grampositive bacteria: a chemotaxonomic perspective. // Syst. Appl. Microbiol. 1994. V. 17. p.467−480.
  534. Suzuki K., Goodfellow M. and O’Donnel A.G. Cell envelopes and classification. // In: Handbook of New Bacterial Systematics. (Goodfellow M. and O’Donnel A.G., eds.). Academic Press. London. 1994. p. 195−250.
  535. Tabor C.W. and Tabor H. Polyamines in microorganisms. // Microbiol. Rev. 1985. V. 49. p. 81−99.
  536. Takeuchi M. and Yokota A. Cell-wall polysaccharides in coryneform bacteria. // J. Gen. Appl. Microbiol. 1989. V. 35. p. 233−252.
  537. Takeuchi T., Sawada H., Tanaka F. and Matsuda I. Phylogenetic analysis of Streptomyces spp. causing potao scab based on 16S rRNA sequences. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. V. 46. № 2. p. 476−479.
  538. Tamura T. and Yokota A. Transfer of Nocardioides fastidiosa Collins and Stackebrandt 1989 to the genus Aeromicrobium as Aeromicrobium fastidiosum comb. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1994. V. 44. p. 608−611.
  539. Thiemann J.E., Pagani H. and Beretta G. A new genus of Actinomycetales Microlelraspora gen. nov. //J. Gen. Microbiol. 1968. V. 50. p. 295−303.
  540. Thurow H., Choy Y.M., Frank N. and Niemann H. The structure of Klebsiella serotype 11 capsular polysaccharide. // Carbohydr. Res. 1975. V. 41. p. 241−255.
  541. Tille D., Prauser H., Szyba K. and Mordarski. On the taxonomic position of the Nocardioides albus Prauser by DNA: DNA-hybridization. // Z. Allg. Microbiol. 1978. V. 18 p. 459−462
  542. Tomasz A. The staphylococcal cell wall. // In: Fischetti V.A., Novick R.P., Ferretti J.J., Portnoy D.A., Rood J.J. (eds) Gram-positive pathogens. Washington, D.C. ASM Press. 2000. p. 351−360.
  543. Tomasz A., Westphal M., Briles E.B. and Fletcher P. On the physiological functions of teichoic acids. // J. Supramol. Structure. 1975. V. 3. p. 1−16.
  544. Troy F.A. Polysyalylation: from bacteria to brains. // Glycobiology. 1992. V. 2. p. 5−23.
  545. Triiper H.G. and Schleifer K.-H. Procaryote characterization and classification. // In: Procaryotes. 2006. V. 1. p. 58−79.
  546. Tul’skaya E.M., Shashkov A.S., Evtushenko L.I., Taran V.V. and Naumova I.B. Novel cellwall teichoic acid from Nocardiopsis albus subsp. albus as a species-specific marker // Microbiology (UK) 1995. V. 141. p. 1851−1856.
  547. Tul’skaya E.M., Senchcnkova S. N., Evtushenko L. I., Shashkov A. S. and Naumova I. B.
  548. A new neutral polymer from the cell wall of actinomycete Kineosporia aurantiaca VKM Ac-702T. // Carb. Res. 2005. V. 340. p. 1247−1251
  549. Tul’skaya E.M., Streshinskaya G.M. Kozlova Yu.I., Shashkov, A.S. and Evtushenko L.I. Species and strain specific features of cell wall teichoic acids in Nocardiopsis. // XI Int. Congr. Cultur. Coll. Goslar. Germany. 2007. p. 272.
  550. Uchida K. and Seino A. Intra- and intergeneric relationships of various actinomycete strains based on the acyl types of the muramyl residue in cell wall peptidoglyeans examined in a glycolate test. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. V. 47. p. 182−190.
  551. Uchida K., Kudo T., Suzuki K.I. and Nakase T. A new rapid method of glycolate test by diethyl ether extraction, which is applicable to a small amount of bacterial cells of less than one milligram. // J. Gen. Appl. Microbiol. 1999. V. 45. p. 49−56.
  552. Uchikawa K., Sekikawa I. and Azuma I. Structural studies on teichoic acids cell walls of several serotypes oi Listeria monocytogenes, ii J. Biochem. (Tokyo) 1986. V. 99. p. 315−327.
  553. Umeda A. The assignment of polymers in the staphylococci cell wall. // Fukuoka Acta Med. 1980. V. 71. p. 334−351.
  554. Vandamme P., Pot B., Gillins M., De Vos P., Kersters K. and Swings J. Poliphasic taxonomy, a consensus approach to bacterial systematics. // Microbiol. Rev. 1996. V. 60. p. 407 438.
  555. Van de Peer Y. and De Wachter R. TREECON for Windows: a software package for the construction and drawing of evolutionary trees for the Microsoft Windows environment. // Comput. Appl. Biosci. 1994. V. 10. p. 569−570.
  556. Vaneechoutte M. DNA fingerprinting techniques for microorganisms. A proposal for classification and nomenclature. // Mol. Biotechnol. 1996. V. 6. p. 115−142.
  557. Vaneechoutte M., Boerlin P., Tichy H.V., Bannerman E., Jager B. and Bille J.
  558. Comparison of PCR-based DNA fingerprinting techniques for the identification of Listeria species and their use for atypical Listeria isolates. // Int. J. Syst. Bactcriol. 1998. V. 48. p. 127 139.
  559. Vaneechoutte M, Vauterin L, van Harsselaar B, Dijkshoorn L. and De Vos P.
  560. Considerations in evaluation of the applicability of DNA fingerprinting techniques for species differentiation. 111. Clin. Microbiol. 1999. V. 37. p. 3428−3429.
  561. Vann W.F., Liu T.Y. and Robbins J.B. Bacillus pumilus polysaccharide cross-reactive with meningococcal group A polysaccharide. // Infect. Immun. 1976. V. 13. p. 1654−62.
  562. Varbanets L.D., Shashkov A.S. and Kocharova N.A. Phosphorus-containing glucopolymers of Clavibacter michiganense cell walls. // Carbohydr. Res. 1990. V. 204. p. 157−160.
  563. Vargha M., Takats Z., Konopka A. and Nakatsu C. H. Optimization of MALDI-TOF MS for strain level differentiation of Arthrobacter isolates. // J. Microbiol. Methods. 2006. V. 66. p. 399−409.
  564. Veerkamp J.H., Hoelen G.J.M. and Op Den Camp. The structure of a mannitol teichoic acid from Bifidobavterium bifidum spp. Pennsylvanicum. II Biochim. Biophys. Acta. 1983. V. 755. p. 439−451.
  565. Ventura M., Canchaya C., Tauch A., Chandra G., Fitzgerald G.F., Chater K.F. and Van Sinderen D. Genomics of Actinobacteria: tracing the evolutionary history of an ancient phylum. // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2007. V. 71. p. 495−548.
  566. Vinogradov E.V., Holst O., Thomas-Oates J.E., Broady K.W. and Brade H. The structure of the O-antigenic polysaccharide from lipopolysaccharide of Vibrio cholerae strain Hll (non-Ol). // Eur J Biochem. 1992. V. 210. p. 491−498.
  567. Vinogradov E.V., Paramonov N.A., Knirel Y.A., Shashkov A.S. and Kochetkov NK.
  568. Structural study of a new sialic acid-containing O-specific polysaccharide of Salmonella arizonae 021- formation of anhydro derivatives of neuraminic acid upon treatment with anhydrous hydrogen fluoride. // Carbohydr Res. 1993. V. 242. p. CI 1−14.
  569. Virudachalam R. and Rao V.S.R. Theoretical studies on peptidoglycans. II. Conformation of the disaccharide-peptide subunit and the three-dimentional structure of peptidoglycan. // Biopolymers. 1979. V. 18. p. 571−589.
  570. Volmer W. and Holtije J.V. The architecture of the murein (peptidoglycan) in gram-negative bacteria: vertical scaffold or horizontal layer (s)? // J. Bacterid. 2004. V. 186. p. 5978−5987.
  571. Vos P., Hogers R., Bleeker M., Reijans M., Van de Lee T., Homes M., Frijters A., Pot J., Pelentan J. and Kuiper M. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting. // Nucleic. Acids. Res. 1995. V.23. p. 4407−4414.
  572. Wagner M., Wagner B. and Rye M. An electro microscopic study of the location of peptidoglycan in group A and C streptococcal cell walls. // J. Gen. Microbiol. 1978. V. 108. p. 283−294.
  573. Waksman S.A. Strain specificity and production of antibiotic substances. X. Characterization and classification of species within the Streptomyces griseus group. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1959. V. 45. p. 1043−1047.
  574. Waksman S.A. The Actinomycetes. Classification, identification and descriptions of genera and species. // Williams and Wilkins Co. 1961. V. 2. p. 58−60.
  575. Waksman S.A. and Henrici A.T. The nomenclature and classification of the actinomycetes. // J. Bacteriol. 1943. V. 46. p. 337−341.
  576. Wallis T.S. and Galyov E.E. Molecular basis of Salmonella-induced enteritis. // Mol. Microbiol. 2000. V. 36. p. 997−1005.
  577. Ward J. B. Teichoic and teichuronic acids: biosynthesis, assembly, and location. // Microbiol. Rev. 1981. V. 45. p. 211−243.
  578. Ward D.M., Weller D. and Bateson M.M. 16S rRNA sequences reveal uncultured inhabitants af a well-studied thermal community. // FEMS Microbiol. Rev. 1990. V. 75. p. 105 116.
  579. Ward D.M., Ferris M.J., Nold S.C. and Bateson M.M. A natural view of microbial biodiversity within hot spring cyanobacterial mat communities. // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. V. 62. p. 1353−1370.
  580. Watve M.G., Tickoo R., Jog M.M. and Bhole B.D. How many antibiotics are produced by the genus Streptomyces? // Arch. Microbiol. 2001. V. 176. p. 386−390.
  581. Weckesser J., Drews G. and Mayer H. Lipopolysaccharides of photosynthetic prokaryotes. // Ann. Rev. Microbiol. 1979. V. 33. p. 215−239.
  582. Weidel W. and Plezer H. Bagshaped macromolecules a new outlook on bacterial cell walls. // Adv. Enzymol. Relat. Areas Mol. Biol. 1964. V. 26. p. 193−232.
  583. Weidenmaier C. and Peschel A. Teichoic acids and related cell-wall glycopolymers in Grampositive physiology and host interactions. //Nat. Rev. Microbiol. 2008. V. 6. p. 276−287.
  584. Weil-Malherbe H. and Green R.H. The catalytic effect of molibdate on the hydrolysis of organic phosphate. // Biochem. J. 1951. V. 49. p. 289−292.
  585. Welsh J. and McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers. // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. p. 7213−7218.
  586. Wenner T., Virginie R., Decaris B. and Leblond P. Intragenomic and intraspecific polymorphism of the 16S-23S rDNA internally transcribed sequences of Streptomyces ambofaciens. II Microbiol. 2002. V. 148. p. 633−42.
  587. Wicken A.J. and Knox K.W. Lipoteichoic acids: a new class of bacterial antigen. // Science. 1975. V. 187. p. 1161−1167.
  588. Wicken A.J. and Knox K.W. Bacterial cell walls amphiphiles. // Biochim. Biophys. Acta. 1980. V. 604. p. 1−26.
  589. Williams S.T., Goodfellow M., Alderson G., Wellington F.M.H., Sneath P.H.A. and Sackin M.J. Numerical classification of Streptomyces and related genera. // J Gen Microbiol. 1983. V. 129. p. 1743−1813.
  590. Williams J.G., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A. and Tingey SV. DNApolymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. p. 6531−6535.
  591. Williamson N., Brian P. and Wellington E.M. Molecular detection of bacterial and streptomycete chitinases in the environment // Antonie Van Leeuwehock. 2000. V. 78. p. 315 321.
  592. Woese C.R. Bacterial evolution. II Microbiol. Rev. 1987. V. 51. p. 221−271.
  593. Woese C.R. Interpreting the universal phylogenetic tree. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. p. 8392−8396.
  594. Woese C.R. A new biology for a new century. // Microbial. Molecular. Biology Revs. 2004. V. 68. p. 173−186.
  595. Work E. Biochemistry of the bacterial cell wall. //Nature. 1957. V. 179. p. 841−847.
  596. Work E. The distribution of diamino acids in cell walls and its significance in bacterial taxonomy. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1970. V. 20. p. 425−433.
  597. Wright J. and Heckels J.E. The teichuronic acid of cell walls of Bacillus subtilis W23 grown in a chemostat under phosphate limitation. // Biochem. J. 1975. V. 147. p. 187−189.
  598. Yadav J.S., Labischinski H., Barnikcl G. and Bradaczek H. Quantum chemical studies on the conformational structure of bacterial peptidoglycan. I. MNDO calculations on the glycan moiety. //J. Theor. Biol. 1981. V. 88. p. 441−457.
  599. Yamada K. and Komagata K. Taxonomic studies on coryneform bacteria. IV. Morphological, cultural, biochemical and physiological characteristics. // J. Gen. Appl. Microbiol. 1972. V. 18. p. 399−416.
  600. Yamada M., Hirose A. and Matsuhashi M. Association of lack of cell wall teichuronic acid with formation of cell packets of Micrococcus lysodeicticus (luteus) mutants. // J. Bacteriol. 1975. V. 123. p. 678−686.
  601. Yamaguchi T. Comparison of the cell-wall composition of morphologically distinct actinomycetes. // J. Bacteriol. 1965. V. 89. p. 444−453.1
  602. Yamaoka N., Usui T., Sugiyama H. and Sato S. C NMR spectra of some aminosugars and sugar-antibiotics, neomycin and kanamycin. // Chem. Pharm. Bull.(Tokyo) 1974. V. 22. p. 21 962 200.
  603. Yao X., Jericho M., Pink D. and Beveridge T. Thickness and elasticity of gram-negative murein sacculi measured by atomic force microscopy. // J. Bacteriol. 1999. V.181. p. 6865−6875.
  604. Yassin A.F., Galinski E. A, Wohlfarth A., Jahnke K.-D., Schaal K.P. and Truper H.G. Anew actinomycetes species, Nocardiopsis lucentensis sp. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. 1993. V. 43. p. 266−271.
  605. Yokoyama K., La Mar G.N., Araki Y. and Ito E. Structure and functions of linlage unit intermediates in biosynthesis of ribitol teichoic acids in Staphylococcus aureus H and Bacillus subtilis W-23.// Eur. J. Biochem. 1986. V. 161. p. 479−489.
  606. Yokoyama K., Araki Y. and Ito E. Biosynthesis of poly (galactosylglycerol phosphate) in Bacillus coagulans. II Eur. J. Biochem. 1987. V. 163. p. 47−53.
  607. Yoneyama T., Koike Y., Arakawa H., Yokoyama K., Sasaki Y., Kawamura T., Araki Y., ItoE. and Takao S. Distribution of mannosamine and mannosaminuronic acid among cell walls of Bacillus species. //J. Bactcriol. 1982. V. 149. p. 15−21.
  608. Yoneyama T., Araki Y. and Ito E. The primary structure of teichuronic acid in Bacillus subtilis AHU 1031. // Eur. J. Biochem. 1984. V. 141. p. 83−89.
  609. Yoon J.-H., Lee S. T. and Park Y.-H. Inter- and intra-specific phylogenetic analysis of genus Nocardioides and related taxa based on 16S rDNA sequences. // Int J Syst Bacteriol. 1998. V. 48. p. 187−194.
  610. Yoshida M. and Kobayashi K. Taxonomic characterization of the actinomycete causing root tumor of melon. // Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 1991. V. 57. p. 540−548.
  611. Yothcr J., Leopold R., White J. and Fischer W. Generation and properties of a Streptococcus pneumoniae mutant which does not require choline or analogs for growth // J. Bacteriol. 1998. V. 180. p. 2093−2101.
  612. Young F.E. Requirement of glucosylated teichoic acid for adsorption of phage in Baciluus subtilis 168. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1967. V. 58. p. 2377−2384.
  613. Young J.M., Saddler G.S., Takikawa Y., De Boer S.H., Vauterin L., Gardan L.,
  614. Gvozdyak R.I., and Stead D.E. International society for plant pathology, names of plantpathogenic bacteria, 1864−1995. // http://www.isppweb.org/namesbacterial rath. asp 1995.
  615. Zhang Z., Wang Y. and Ruan J. A proposal to revive the genus Kilasatospora. Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. V.47. p. 1048−1054.
  616. Zhang Z.S., Wang Y. and Ruan J.S. Reclassification of Thermomonospora and Microtetraspora. //Int. J. Syst. Baeteriol. 1998. V. 48. p. 411−422.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!