Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Значение лабораторной диагностики краснушной и парвовирусной инфекций в период элиминации краснухи

Диссертация: Значение лабораторной диагностики краснушной и парвовирусной инфекций в период элиминации краснухи
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В 2002 г. Европейское региональное бюро ВОЗ разработало и внедрило региональный стратегический план предупреждения кори, который ставил своей целью элиминацию кори и предупреждение врожденной краснушной инфекции (ВКИ) в Европейском регионе к 2010 г. С учетом того, что краснуха является менее контагиозным заболеванием, чем корь, и большинство стран региона используют комбинированные вакцины для… Читать ещё >

Значение лабораторной диагностики краснушной и парвовирусной инфекций в период элиминации краснухи (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ВИРУС КРАСНУХИ И ПАРВОВИРУС В19- КЛИНИКО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТРИСТИКА И ДИАГНОСТИКА ОБУСЛОВЛЕННЫХ ИМИ ИНФЕКЦИЙ. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Вирус краснухи и парвовирус В19- их тератогенное действие
    • 1. 2. Характеристика эпидемического процесса краснухи и парвовирусной инфекции в РФ и в мире
    • 1. 3. Лабораторная диагностика краснушной и парвовирусной инфекций
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • ГЛАВА 3. АНАЛИЗ ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ И ОХВАТ ПРОФИЛАКТИЧЕСКИМИ ПРИВИВКАМИ ПРОТИВ КРАСНУХИ В СЕВЕРО-ЗАПАДНОМ ФЕДЕРАЛЬНОМ ОКРУГЕ В ПЕРИОД С 2002 ПО 2011 гг
    • 3. 1. Характеристика заболеваемости краснухой на территориях
  • СЗФО за десятилетний период
    • 3. 2. Уровень охвата первичной иммунизацией и ревакцинирующей прививкой против краснухи в СЗФО с 2002 по 2011 гг. и мониторинг иммунитета к краснухе в индикаторных группах населения
    • 3. 3. Характеристика генотипов вируса краснухи, циркулирующих в России до 2005 г. и в 2009—2011 гг.
  • ГЛАВА 4. ЗНАЧИМОСТЬ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ В ПЕРИОД СПОРАДИЧЕСКОЙ ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ КРАСНУХОЙ
    • 4. 1. Организация лабораторного обследования больных с экзантемными заболеваниями в СЗФО
    • 4. 2. Частота лабораторного подтверждения диагноза «корь» и «краснуха» при обследовании больных с экзантемными заболеваниями
  • ГЛАВА 5. РАСПРОСТРАНЕНИЕ ПАРВОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ В СЕВЕРО-ЗАПАДНОМ ФЕДЕРАЛЬНОМ ОКРУГЕ
    • 5. 1. Частота обнаружения антител классаМ к парвовирусу В у больных с экзантемными заболеваниями на территориях СЗФО
    • 5. 2. Серопревалентность парвовирусной инфекции среди беременных женщин на отдельных территориях СЗФО
    • 5. 3. Вспышки парвовирусной инфекции в СЗФО
  • ГЛАВА 6. ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ПАРВОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ И ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ИЗОЛЯТОВ PV19, ЦИРКУЛИРУЮЩИХ В СЕВЕРО-ЗАПАДНОМ ФЕДЕРАЛЬНОМ ОКРУГЕ
    • 6. 1. Лабораторная диагностика парвовирусной инфекции в системе надзора за экзантемными инфекциями
    • 6. 2. Молекулярно-генетическая характеристика геновариантов парвовируса В19, изолированных на территориях СЗФО в 2010—2011 гг.

Актуальность.

В 2002 г. Европейское региональное бюро ВОЗ разработало и внедрило региональный стратегический план предупреждения кори, который ставил своей целью элиминацию кори и предупреждение врожденной краснушной инфекции (ВКИ) в Европейском регионе к 2010 г. С учетом того, что краснуха является менее контагиозным заболеванием, чем корь, и большинство стран региона используют комбинированные вакцины для профилактики этих инфекций, в 2005 г. был принят новый стратегический план Европейского регионального бюро ВОЗ, задачами которого являлись элиминация эндемичной кори, эндемичной краснухи, предупреждение ВКИ (менее 1 случая на 100 000 живых новорожденных) к 2010 г. [61].

В соответствии с планами ВОЗ, была разработана национальная программа ликвидации кори на территории Российской Федерации к 2010 г. [53, 59, 67].

В связи с ухудшением эпидемической ситуации по кори в странах Европы, реализация плана элиминации кори, краснухи и профилактики синдрома врожденной краснухи в Европейском регионе продлена до 2015 г. [45, 240]. При этом стратегический план ВОЗ строится на применении как минимум двухдозовой тактики иммунизации — первичной вакцинации и последующей ревакцинации [6].

В Российской Федерации иммунизация против краснухи детей первого-второго года жизни введена в календарь профилактических прививок приказом МЗ РФ от 27.12.97 г. № 375, а ревакцинирующая прививка детей 6 лет и иммунизация девочек 13 лет — в 2001 г. (приказ МЗ РФ 27.06.2001 г. № 229).

Выраженные качественные и количественные изменения в развитии эпидемического процесса краснухи произошли в процессе реализации Национального проекта «Здоровье» (2006;2007 гг.), в рамках которого, помимо плановой, дополнительной иммунизации подлежали дети от 1 до 17 лет, не болевшие, не привитые или однократно привитые против краснухиа также девушки 18−25 лет, не болевшие и не привитые ранее. Реализация проекта предполагала обеспечение двухдозовой вакцинацией в первую очередь детского населения страны.

После реализации Национального проекта отмечается устойчивое снижение заболеваемости краснухой в России до показателя 0,24 на 100 ООО населения в 2011 г. Начиная с 2007 г. случаи краснухи не регистрируются на ряде территорий РФ. Так, в 2009 г. число таких территорий достигло 30,1%, а на 49,4% территорий показатель заболеваемости был менее 1,0 на 100 000 населения. Крупные очаги и вспышки заболевания не регистрируются, начиная с 2006 г. В 2010 г. из 471 очага краснухи в РФ 96,4% не имели распространениячисло заболевших на один очаг составило 1,04 [30].

В целом заболеваемость краснухой в России в настоящее время характеризуется как спорадическая. Существенно изменился генетический пейзаж циркулирующих на территории России штаммов вируса краснухи [30].

Кроме того, наряду с резким снижением заболеваемости, увеличилось число случаев ошибочной первичной диагностики краснушной инфекции [33].

Одной из нозологических форм, требующих проведения дифференциальной диагностики с краснухой, является парвовирусная инфекция (инфекционная эритема) [65]. Возбудитель инфекции — парвовирус человека В19 (РУ В19) широко распространен в мире [174]. Большое значение в патогенезе инфекции имеет способность вируса размножаться в эмбриональных тканях (печени, селезенке, а также клетках сердца и кишечника плода). При заражении беременной женщины РУ В19 риск поражения плода достигает 30% в период с 10 до 28 недель гестации [8].

Инфекционная эритема как заболевание с выраженным тератогенным действием вируса представляет собой важную, но малоизученную проблему отечественного здравоохранения. В настоящее время нет регистрации парвовирусной инфекции (ПВИ) в РФнеизвестны истинные масштабы ее распространенности, единичны сведения о циркулирующих на территории России генотипах РУ В19.

Изложенное свидетельствует о необходимости лабораторного подтверждения всех случаев заболеваний, обусловленных вирусом краснухи и парво-вирусом В19, об актуальности изучения превалентности ПВИ в структуре инфекционной заболеваемости. Совершенствование лабораторной диагностики указанных заболеваний, определение циркулирующих генотипов вируса краснухи и РУ В19 — актуальная задача отечественного здравоохранения, способствующая успешной реализации программы элиминации кори и краснухи в России.

Цель исследования.

Совершенствование лабораторной диагностики краснушной и парвови-русной инфекций и определение генотипов вируса краснухи и РУ В19, циркулирующих в Северо-Западном федеральном округе России.

Задачи исследования.

1. Проанализировать заболеваемость краснухой на территориях округа в период с 2002 по 2011 гг. в условиях вакцинопрофилактики этой инфекции.

2. Провести лабораторное обследование больных с первичным диагнозом «краснуха» с целью выявления изолятов вируса краснухи.

3. Проанализировать частоту лабораторного подтверждения диагноза «краснуха» в условиях спорадической заболеваемости этой инфекцией.

4. Изучить частоту обнаружения антител (АТ) классаМ к РУ В19 у больных с экзантемными заболеваниями на территориях Северо-Западного федерального округа.

5. Проанализировать возможности применения методов ПЦР и ИФА для лабораторной диагностики парвовирусной инфекции.

6. Провести филогенетический анализ геновариантов РУ В19, циркулирующих на территории Северо-Западного федерального округа России.

Научная новизна.

Впервые получены знания о циркуляции в Северо-Западном федеральном округе генотипа 1А парвовируса В19, о распространенности ПВИ на территориях округа, в том числе в группе риска (беременные женщины). Получены новые знания о генотипе изолята вируса краснухи, выделенного в Санкт-Петербурге в 2011 г.

Научная и практическая значимость.

Ретроспективный анализ заболеваемости краснухой и охвата первичной и ревакцинирующей прививками в СЗФО за десятилетний период (2002;2011 гг.) подтверждает эффективность специфической профилактики краснушиой инфекции. Лабораторно установленный случай импорта вируса краснухи в СЗФО из Китая, наряду с результатами других исследований, свидетельствует о вытеснении эндемичного для РФ генотипа 2С в период спорадической заболеваемости краснухой. Рост количества ошибок первичной диагностики краснухи доказывает необходимость лабораторного подтверждения диагноза в каждом случае.

Предложена схема лабораторной диагностики ПВИ с интерпретацией результатов, которая может быть использована для определения заболеваемости инфекцией и повышения качества медицинской помощи. Полученные сведения о генотипах PV В19 необходимы для надзора за парвовирусной инфекцией.

Доказана значимость лабораторной диагностики краснушной и парвовирусной инфекций для совершенствования эпидемиологического надзора за эк-зантемными инфекциямирасшифрованы вспышки парвовирусной инфекции на территориях СЗФО (Кронштадт, Ленинградская область).

Внедрение результатов исследования в практику.

1. Нуклеотидная последовательность гена El изолята вируса краснухи.

Sankt-Petersdurg RUS 1366, выделенного в г. Санкт-Петербурге в 2011 г.- депонирована в коллекцию Международного генетического банка.

Национального центра биотехнологической информации (Национальный институт здоровья, США) (accession number JX171315).

2. Нуклеотидные последовательности генов 8 изолятов парвовируса В19, выделенных на территориях СЗФО в 2010;2011 гг., депонированы в коллекцию Международного генетического банка Национального центра биотехнологической информации (Национальный институт здоровья, США) (accession number: JX435809, JX644426 — JX 644 432).

3. Аналитический обзор. Краснуха: эпидемиология, лабораторная диагностика и профилактика в условиях спорадической заболеваемости. — СПб.: НИИЭМ им. Пастера, 2010. — 68 с.

4. Аналитический обзор. Результаты сертификации территорий СевероЗападного федерального округа на отсутствие циркуляции эндемичного вируса кори. — СПб.: НИИЭМ им. Пастера, 2012. — 60 с.

5. Клиническая лабораторная диагностика: национальное руководство / T. II под ред. В. В. Долгова, В. В. Меньшикова // разделы: Вирус краснухи. Пар-вовирус В19. -М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012. — с. 663−665, с. 706−708.

6. Результаты исследования используются в учебном процессе на кафедре клинической лабораторной диагностики медико-биологического факультета СЗГМУ им. И. И. Мечникова (Санкт-Петербург).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. В результате специфической профилактики заболеваемость краснухи снизилась до уровня спорадической. В этих условиях возросло количество ошибок клинической диагностики краснухи.

2. Парвовирусная инфекция (инфекционная эритема) составляет существенную долю ошибок клинической диагностики краснухи, широко распространена на территориях Северо-Западного федерального округа. При этом значительная доля женщин репродуктивного возраста не имеет IgG-антител против PV В19.

3. Для лабораторного подтверждения диагноза «парвовирусная инфекция» методами ПЦР и/или ИФА существенное значение имеет время получения клинического материала от начала заболевания.

4. Проведенный филогенетический анализ нуклеотидных последовательностей изолятов РУ В19, выделенных на территориях Северо-Запада РФ, позволил отнести их к генотипу 1А.

ВЫВОДЫ.

1. Показано, что в период с 2002 по 2011 гг. заболеваемость краснухой в Северо-Западном федеральном округе снизилась до уровня спорадической, что обусловлено высоким (более 95%) уровнем охвата своевременной вакцинацией и ревакцинацией, достигнутым к 2010 г. на всех территориях округа.

2. Установлено, что выделенный в 2011 г. в Санкт-Петербурге изолят вируса краснухи относится к генотипу 1Е и является импортированным из КНР.

3. Доказано, что в условиях спорадической заболеваемости частота лабораторного подтверждения диагноза «краснуха» последовательно снижалась как у больных с первичным диагнозом «краснуха»: с 12% в 2010 г. до 7,5% в 2012 г., так и у больных с экзантемными заболеваниями: с 5,9% в 2010 г. до 1,25% в 2012 г.

4. Установлена необходимость проведения дифференциальной лабораторной диагностики краснухи и парвовирусной инфекции.

5. Впервые показано, что парвовирусная инфекция широко распространена и выявлена в 20,4± 1,9% случаев на 9 территориях Северо-Западного регионахарактеризуется очаговой и вспышечной заболеваемостью, однако 46,2% обследованных беременных женщин восприимчивы к заражению РУВ19.

6. Определено, что при лабораторном обследовании больных, подозрительных на парвовирусную инфекцию, использование ПЦР и/или ИФА определяется временем, прошедшим от контакта или начала заболевания.

7. Впервые установлено, что нуклеотидные последовательности восьми изо-лятов парвовируса В19, циркулирующих на территориях Северо-Западного федерального округа в 2010;2011 гг., относятся к генотипу 1 А.

Заключение

.

Анализ заболеваемости краснухой в СЗФО за последние десять лет убедительно доказывает устойчивое ее снижение до уровня спорадической, вытеснение из циркуляции эндемичного для РФ генотипа 2С. Эти изменения связаны, прежде всего, с высоким (превышающим 95%) уровнем охвата двукратной иммунизацией декретированных контингентов и, как следствие, высоким уровнем серопозитивных лиц, определяемых в иидикаторпых группах населения.

В этих условиях участились случаи ошибочной клинической диагностики краснухи, что свидетельствует о значимости лабораторного подтверждения диагноза, необходимости проведения дифференциальной лабораторной диагностики, в первую очередь с другим инфекционным экзантемным заболеванием — ПВИ.

Результаты проделанной в 2009;2012 гг. работы свидетельствуют о широком распространении ПВИ на Северо-Западе РФ, наличии очаговой и вспышечной заболеваемости в регионе. Установлено, что инфекция обусловлена РУ В19 генотипа А1, эндемичного для территории РФ. На примере двух территорий СЗФО — Санкт-Петербурга и г. Вологды, показано, что около 50% женщин репродуктивного возраста восприимчивы к инфекции.

Оценена возможность использования в диагностике ПВИ двух наиболее распространенных в лабораторной практике диагностических методов — им-му, но ферментного анализа (ИФА) и полимеразной цепной реакции (ПЦР) — разработан алгоритм их применения для верификации диагноза.

Проделанная работа направлена на совершенствование лабораторной диагностики краснухи и ПВИ и является обоснованием регистрации инфекционной эритемы по форме № 2 «Сведения об инфекционных и паразитарных заболеваниях» федерального государственного статистического наблюдения для определения истинного уровня заболеваемости ПВИ в целях развития эпидемиологического и вирусологического надзора за экзантемными инфекциями в РФ.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Л.М. Парвовирусы (Рагусмпс1ае) / Л. М. Алимбарова // Медицинская вирусология: руководство- под ред. Д. К. Львова. М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2008. — С. 276−284.
  2. , О.Г. Изучение иммунитета к краснухе среди женщин детородного возраста / О. Г. Анджапаридзе, Г. И. Червонский, Р. Г. Десятскова // Специфическая профилактика кори: сб. науч. тр. -Л., 1970.-С. 274−275.
  3. , О.Г. Краснуха/ О. Г. Анджапаридзе, Г. И. Червонский.-М., 1975.- 102 с.
  4. , О.Г. Сероэпидемиология краснухи в СССР / О. Г Анджапаридзе и др. // Вопросы вирусологии. 1972. — Т. 4. — С. 412−418.
  5. , Н.В. Диагностика синдрома врожденной краснухи в современной клинической практике / Н. В. Балаев и др. // Журнал инфектоло-гии. 2010. — Т. 2, № 3. — С. 49.
  6. , Т.А. Успехи вакцинопрофилактики кори, краснухи и эпидемического паротита за рубежом / Т. А. Бектемиров // Вакцинация. -2006.-Т. 4 (46).-С. 4−5.
  7. , Ж.В. Молекулярно-биологическая характеристика вирусов краснухи, выделенных на территории Санкт-Петербурга: автореф. дис.. канд. мед. наук / Бузицкая Жанна Валерьевна. СПб., 2012.22 с.
  8. , В.В. Парвовирусная (В 19У) инфекция у беременных и детей раннего возраста / В. В. Васильев и др. // Журнал инфектологии. -2011. Т. 3, № 4. -С.26−33.
  9. ВОЗ. Новости эпидемии. Вакцины против краснухи// Еженедельник эпидемиологии. 2000. — Т. 75, № 20.-С. 161−172.
  10. , С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1999. — 499 с.
  11. , Р.Г. Лабораторная диагностика краснухи / Р. Г. Десятскова и др. // Краснуха. Синдром врожденной краснухи: информ. сб. (2-е изд., доп.). М.-СПб.: Pasteur Merieux Connaught., 1998. — С. 7−12.
  12. , Р.Г. Сравнительное изучение антигенных связей между штаммами вируса краснухи в обычной и кинетической РТГА / Р. Г. Десятскова // Вопросы вирусологии. 1974. — № 2. — С. 165−169.
  13. , А.Б. Проблемы контроля инфекционных заболеваний/ А. Б. Жебрун, JI.B. Лялина. СПб.: «Русь», 2003. — 206 с.
  14. , Е.Б. Новое в трансфузиологии (на XXVIII Конгрессе Международного общества переливания крови) / Е. Б. Жибурт и др. Режим доступа: http://www.transfusion.ru/doc/2004−09−03-l.html, — Дата обращения: 26.02.13. — Загл. с экрана.
  15. , А.И. Длительность и напряженность поствакцинального гуморального иммунитета к вирусам кори, паротита и краснухи / А. И. Заргарьянц и др. // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. -2005.-Т. 5 (24).-С. 15−19.
  16. , В.В. Изменчивость штаммов вирусов краснухи, циркулирующих в г. Москве / В. В. Зверев и др. // Актуальные вопросы эпидемиологии инфекционных болезней: сб. науч. тр. РМАПО ГОУ ВУМЦ МЗ РФ.-М., 2002.-Вып. 5.-С. 154−158.
  17. Иммуноферментный анализ пер. с англ./ под ред. Т. Нго и Г. Ленхоффа. М.: Мир, 1988. — 446 с.
  18. Инфекционная заболеваемость в Северо-Западном регионе России: аналитический обзор / под ред. А. Б. Жебруна. СПб.: НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера, 1998. — С. 13−15.
  19. Инфекционная заболеваемость в Северо-Западном федеральном округе России. Закономерности и особенности эпидемического процесса в современный период: аналитический обзор. СПб.: Феникс, 2007.215 с.
  20. , P.A. Применение комплексного эпидемиологического и вирусологического анализа краснушной инфекции в целях эпидемиологического контроля за врожденной краснухой / P.A. Канторович и др. // Вопросы вирусологии. 1980. — Т. 1. — С. 103−106.
  21. , P.A. Эпидемиологические и иммунологические исследования краснухи на севере СССР / P.A. Канторович // Вопросы вирусологии. 1980. — № 2. — С. 191−195.
  22. Краснуха / Основные направления профилактики инфекционных и паразитарных заболеваний: материалы X съезда ВНПОЭМП. М., 2012.-С. 24−25.
  23. Краснуха и синдром врожденной краснухи: информ. сб. М.-СПб.: Pasteur Merieux Connaugth. — 1997. — 64 с.
  24. Краснуха: протокол лечения и программа профилактики / О повышении эффективности диагностики, лечения и профилактики краснухи: информационное письмо МЗ РФ № 13−01/8−96 от 29.09.1997.- М., 1997.-6 с.
  25. Краснуха: эпидемиология, лабораторная диагностика и профилактика в условиях спорадической заболеваемости: аналитический обзор. -СПб.: НИИЭМ им. Пастера, 2010. 68 с.
  26. , И.Н. Возрастная структура заболеваемости краснухой в г. Санкт-Петербурге / И. Н. Лаврентьева и др. // Актуальные вопр. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии инфекц. заболеваний: материалы междунар. конф. Харьков, 1993. — С. 37−39.
  27. , Д.К. Семество Togaviridae/ Д. К. Львов, Л.В. Урываев// Медицинская вирусология: руководство- под ред. Д. К. Львова. М.: ООО «Медицинское информационное агенство», 2008. — С. 217−224.
  28. , Л.В. Влияние двукратной иммунизации на заболеваемость корью, эпидемическим паротитом и краснухой в Северо-Западном федеральном округе России / Л. В. Лялина и др. // Инфекция и иммунитет. 2012. — Т. 2, № 4. — С. 753−756.
  29. , Л.В. Изучение распространенности синдрома врожденной краснухи среди детей с врожденными пороками развития в Санкт-Петербурге / Л. В. Лялина и др.// ЭпиНорт. 2009. — Т. 10, № 1.-С. 6−11.
  30. Л.В. Интенсивность эпидемического процесса краснухи и эффективность вакцинации на территориях с различным уровнем загрязнения атмосферного воздуха / Л. В. Лялина и др. // Вестн. мед. акад. им. И. И. Мечникова. 2006. — № 2. — С. 423.
  31. , Т.А. Национальная лабораторная сеть Российской Федерации по диагностике кори и ее роль в выполнении программы ВОЗ по ликвидации кори / Т. А. Мамаева и др. // Здоровье населения и среда обитания. 2007. -№ 11(176). — С. 4−7.
  32. , Т. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук // пер. с англ. под ред. акад. A.A. Баева и д-ра биол. наук К. Г. Скрябина. М.: Мир, 1984. -479 с.
  33. , В.А. Клинико-лабораторная характеристика В19 парвови-русной инфекции / В. А. Матвеев и др. // Инфекционные болезни. -2008.-Т. 6, № 3.-С. 33−37.
  34. , И.В. Иммуноструктура к краснухе детей второго года жизни/ И. В. Михеева и др.// Актуальные вопросы эпидемиологии инфекционных болезней: сб. науч. тр. РМАПО ГОУ ВУМЦ МЗ РФ. М., 2002.-Вып. 5.-С. 209−211.
  35. , H.H. Лабораторная диагностика вирусных инфекций/ H.H. Носик, В. Т. Стаханова // Клин, микробиология и антимикроб, химиотерапия. 2000. — Т. 2, № 2. — С. 70−78.
  36. , С.Л. Краснуха / С. Л. Носов // Руководство по инфекционным болезням у детей. М., 1980.-С. 196−206.
  37. О совершенствовании акушерско-гинекологической помощи в амбула-торно-поликлинических учреждениях: Приказ МЗ РФ № 50 от 10.02.2003.- 55 с.- Режим доступа: http://www.webapteka.ru/phdocs/ doc4528.html. Дата обращения: 01.03.2013. — Загл. с экрана.
  38. Обновленная приверженность достижению к 2015 г. целей элиминации кори и краснухи и профилактики синдрома врожденной краснухи в Европейском регионе ВОЗ. ВОЗ, 2010.-11 с.
  39. Общая и частная вирусология / под ред. В. М. Жданова, С. А. Гайдамович. М.: Медицина, 1986. — Т. 2. — С. 49−95.
  40. Парвовирус В19/ Лабораторная диагностика инфекций.- С. 262 264. Режим доступа: http://laboratory.rusmedserv.com/files/26Infekcii. pdf. — Дата обращения: 16.02.13. — Загл. с экрана.
  41. , И.Д. Клиническое, серологическое и молекулярно-биологическое исследование краснухи в Новосибирске в 2006 году / И. Д. Петрова и др.// Инфекционные болезни.- 2007.- № 3.-С. 16−19.
  42. Профилактика инфекционных заболеваний. Инфекции дыхательных путей. Эпидемиологический надзор за врожденной краснухой: МУ 3.1.2.2356−08.- Введ. впервые- введ. 01−07−2008.- М.: Роспотребнадзор, 2008.-36 с.
  43. Рекомендуемые стандарты ВОЗ по надзору за отдельными болезнями, предотвратимыми вакцинацией. ВОЗ, 2003. — 60 с.
  44. , H.JI. Выявление маркеров врожденной краснухи в группе умерших плодов и новорожденных / Н. Л. Рогушина и др. // Журнал инфектологии. 2010. — Т. 2, № 3. — С. 150.
  45. Руководство по лабораторной диагностике кори и краснухи. Вторая редакция.- 2005.- 115 с.- Режим доступа: http://www.who.int/ immunizationmonitoring/LabManualFinalRussianV.pdf. Дата обращения: 26.02.13. — Загл. с экрана.
  46. Руководство по организации эпидемиологического надзора за корью и врожденной краснушной инфекцией в Европейском регионе ВОЗ. -Женева, 2003.-80 с.
  47. , A.K. Эпидемиологическая характеристика краснухи в условиях крупного города: автореф. дис.. канд. мед. наук / А. К. Русанова. -Л., 1981.-15 с.
  48. , В.В. Краснуха / В. В. Семериков и др. Пермь-СПб-М.: ИПК «Звезда», 2002. — 175 с.
  49. Скрининг донорской крови на гемотрансмиссивные инфекции: рекомендации. ВОЗ.- 2010.- 85 с.- Режим доступа: http://www.who. int/bloodsafety/publications/ScreeningblooddonationsRU.pdf. Загл. с экрана.
  50. Стратегический план Европейского региона ВОЗ 2005−2010 гг. ВОЗ, 2005.-31 с.
  51. , В.К. Политика ВОЗ в отношении вакцинации против краснухи / В. К. Таточенко // Вакцинация. Новости вакцинопрофилактики: информационный бюллетень. М., 1999. — Т. 1. — С. 8.
  52. , В.Д. Врожденная краснуха / В. Д. Тимаков, В. А. Зуев // Медленные инфекции. -М.: Медицина, 1977. С. 79−93.
  53. , Н.Т. Оценка распространения парвовирусной инфекции в Москве / Н. Т. Тихонова и др. // Информационное письмо Комитета здравоохранения г. Москвы. М., 2004. — № 11. — 12 с.
  54. , Н.Т. Состояние противокраснушного иммунитета у лиц разного возраста, в том числе беременных и привитых против этой инфекции / Н. Т. Тихонова и др. // Информационное письмо Комитета здравоохранения г. Москвы. М., 2001. — № 2. — 8 с.
  55. , Г. И. Генотипирование вируса краснухи, циркулирующего на территории Западной Сибири России в эпидемический период 20 042 006 гг. / Г. И. Тюников и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2007. — № 6. — С. 26−29.
  56. , H.H. Социально-гигиенический мониторинг и эпидемиологический надзор в условиях Москвы / H.H. Филатов, И. Л. Шаханина, Н.И. Брико- под ред. акад. РАМН, проф. В. И. Покровский. М.: Эко-план, 2001.-С. 146−151.
  57. , Е.В. Определение маркеров парвовируса В19 в крови доноров / Е. В. Филатова и др. // Журнал микробиологии. 2010. — № 5. -С. 67−70.
  58. , О.В. Клинико-эпидемиологические особенности вспышки инфекционной эритемы / О. В. Цвиркун и др. // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2005. — № 2. — С. 21−25.
  59. , О.В. Характеристика эпидемического процесса краснушной инфекции на современном этапе / О. В. Цвиркун и др. // Теоретические и практические аспекты элиминации кори: сб. науч. тр. М., 2005.-С. 157−159.
  60. , В.А. Перинатальные инфекции (Вопросы патогенеза, морфологической диагностики и клинико-морфологических сопоставлений): практ. рук. / В. А. Цинзерлинг, В. Ф. Мельникова. СПб., 2002.-352 с.
  61. , Г. А. Неиммунная водянка плода: диагностика и тактика/ Г. А. Шипулин и др. // Акушерство и гинекология. 2009. — № 2. -С. 37−40.
  62. Экономическая эффективность вакцинопрофилактики. Методические указания: МУ.3.3.1878−04. Введен впервые- введ. 04−03−2004.- М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. -24 с.
  63. , М.А. Выявление парвовируса В19 в крови российских доноров / М. А. Элижбаева и др. // Гематология и трансфузиология. -2011.-Т. 56, № 2. С. 10−13.
  64. , Н.В. Диагностика краснухи в Российской Федерации / Н. В. Юминова // Вакцинация. Новости вакцинопрофилактики: информационный бюллетень. 2004. — Т. 6, № 36. — С. 3−6.
  65. , JI.H. Анализ геномов двух изолятов вируса краснухи из вспышек 2004−2005 гг. в Западной Сибири / Л. Н. Яшина и др. // Вопросы вирусологии. 2007. — № 2 — С. 16−19.
  66. Alford, С.А. Rubella: infectious diseases of the fetus and newborn infants / C.A. Alford.-Philadelphia, 1976.-P. 71−106.
  67. Amand, St. Identification and characterization of a family of 11-kDa proteins encoded by human parvovirus В19 / St. Amand, J. Astell, C.R. Astell//Virology.- 1993.-Vol. 192.-P. 121−131.
  68. Anderson, L.J. Detection of antibodies and antigens of human parvovirus B19 by enzyme-linked immunosorbent assay / L.J.Anderson et al.// J. Clin. Microbiol. 1986. — Vol. 24. — P. 522−526.
  69. Anderson, L.J. Risk of infection following exposures to human parvovirus B19 / L.J.Anderson et al.// Behring Inst. Mitt.- 1990.- Vol. 85.-P. 60−63.
  70. Anderson, M.J. Experimental parvovirus infection in humans / M.J. Anderson et al. // J. Infect. Dis. 1985. — Vol. 152. — P. 257−265.
  71. Anderson, M.J. Human parvovirus, the cause of erithema infectiosum (fifth disease)? / M.J. Anderson et al. // Lancet. 1983. — Vol. 321. — P. 1378.
  72. Anisimova, M. Approximate likelihood ratio test for branchs: a fast, accurate and powerful alternative / M. Anisimova, O. Gascuel // Syst. Biol. -2006. Vol. 55, N 4. — P. 539−552.
  73. Baasner, A. PCR-based diagnosis of Enterovirus and Parvovirus B19 in paraffin-embedded heart tissue of children with suspected sudden infant death syndrome/ A. Baasner et al.// Lab. Invest. 2003.- Vol. 83.-P.1451—1455.
  74. Bailey, J.M. Parvovirus B19 presenting with severe sepsis in a previously healthy 25-year-old female / J.M. Bailey // J. Am. Board Fam. Med. -2006.-Vol. 19, N3.-P. 317−319.
  75. Banatlava, J.E. Rubella / J.E. Banatlava, D.W.G. Brown // Lancet. 2004. -Vol. 363.-P. 1127−1137.
  76. Bardeletti, G. Rubella virus maturation and production in two host cell systems/ G. Bardeletti, J. Tektoff, D. Gautheron// Intervirology. 1979.-Vol. 11, N2.-P. 97−103.
  77. Baron, M.D. Intracellular transport of rubella virus structural proteins expressed from cloned cDNA / M.D. Baron, T. Ebel, M. Suomalainen // J. Gen. Virol. 1992. — Vol. 73. — P. 1073−1086.
  78. Baron, M.D. Oligomerization of the structural proteins of rubella virus/ M.D. Baron, K. Forsell // Virology. 1991. — Vol. 185. — P. 811−819.
  79. Baylis, S.A. Evaluation of different assays for the detection of parvovirus B19 DNA in human plasma / S.A. Baylis, N. Shah, Ph.D. Minor // J. Virol. Methods.-2004.-Vol. 121, N 1.-P. 7−16.
  80. Baylis, S.A. Standardization of nucleic acid amplification technique (NAT)-based assays for different genotypes of parvovirus B19: a meeting summary/ S.A. Baylis // Vox Sanguinis. 2008. — Vol. 94. — P. 74−80.
  81. Beersma, M.F.C. Parvovirus B19 viral loads in relation to VP1 and VP2 antibody responses in diagnostic blood samples / M.F.C. Beersma et al. // J. Clin. Virol. 2005. — Vol. 34. — P. 71−75.
  82. Best, J.M. Rubella / J.M. Best, J.E. Banatvala // Principles and practice of clinical virology- ed. by A.J. Zuckerman, J.E. Banatvala, R. Pattison. -2nd ed. Chichester John Wiley and Sons Ltd., 1990. — P. 337−374.
  83. Best, J.M. Rubella virus strains show no major antigenic differences / J.M. Best et al. // Intervirology. 1992. — Vol. 4. — P. 164−168.
  84. Blumel, J. Characterization of Parvovirus B19 Genotype 2 in KU812Ep6 Cells / J. Blumel et al. // J. Virol. 2005. — Vol. 79, N 22. — P. 1 419 714 206.
  85. Boshia, T.J. PCR for detection of rubella virus RNA in clinical samples/ T.J. Boshia et al. // J. Clin. Microbiol. 1995. — Vol. 33, N 3. — P. 10 751 079.
  86. Botto, S. Detection of PARV4, genotypes 1 and 2, in healthy and pathological clinical specimens / S. Botto et al. // New microbiol. 2009. -Vol. 32.-P. 189−192.
  87. Brown, K.E. Resistance to Parvovirus B19 infection due to lack of virus receptor (erythrocyte P antigen) / K.E. Brown et al. // N. Engl. J. Med. -1994.-Vol. 330, N 17.-P. 1192−1196.
  88. Brown, K.E. Simian parvovirus infection: a potential zoonosis / K.E. Brown etal.//J. Infect. Dis.-2004.-Vol. 190.-P. 1900−1907.
  89. Brown, T. Intrauterine parvovirus infection associated with hydrops fetalis / T. Brown et al. // Lancet. 1984. — Vol. 2. — P. 1033−1034.
  90. Castresana, J. Selection of conserved blocks from multiple alignments for their use in phylogenetic analysis / J. Castresana // Mol. Biol. Evol. -2000. Vol. 17, N 4. — P. 540−552.
  91. Chan, P.K.S. Parvovirus B19 associated hydrops foetalis: the first confirmed case in Hong Kong / P.K.S. Chan et al. // HKMJ. 1998. — Vol. 4, N3.-P. 321−323.
  92. Chaye, H.H. Cellular and humoral immune responses to rubella virus structural proteins El, E2 and С / H.H. Chaye et al. // J. Clin. Virol. 1992. -Vol. 30, N9.-P. 2323−2329.
  93. Chaye, H.H. Localization of the virus neutralizing and hemagglutinin epitopes of El glycoprotein of rubella virus / H.H. Chaye et al. // Virology. -1992.-Vol. 189.-P. 483−492.
  94. Chen, M.H. Rubella virus capsid protein modulates viral genome replication and virus infectivity / M.H. Chen, J.P. Icehogle // J. Virol. 2004. -Vol. 78, N8.-P. 4314—4322.
  95. Chen, Zh. Molecular characterization of human parvovirus B19 genotypes 2 and 3 / Zh. Chen et al. // Virology. 2009. — Vol. 394. — P. 276−285.
  96. Cherry, J.D. The «new» epidemiology of measles and rubella/ J.D. Cherry//Hosp. Practice. 1980.-Vol. 15.-P. 49−57.
  97. Chevenet, F. TreeDyn: towards dynamic graphics and annotations for analyses of trees / F. Chevenet et al. // BMC Bioinformatics. 2006. -Vol. 10, N7.-P. 439.
  98. Chisaka, H. Clinical manifestations and outcomes of parvovirus B19 infection duting pregnancy in Japan/ H. Chisaka et al.// Tohoku J. Exp. Med. 2006. — Vol. 209. — P. 277−283.
  99. Chisaka, H. Parvovirus B19 and the pathogenesis of anemia/ H. Chisaka et al. // Rev. Med. Virol. 2003. — Vol. 13. — P. 347−359.
  100. Christensen, J. A novel cellular site-specific DNA-binding protein cooperates with the viral NS1 polypeptide to initiate parvovirus DNA replication / J. Christensen, S.F. Cotmore, P. Tattersall // J. Virol. 1997. — Vol. 71. -P. 1405−1416.
  101. Clarke, D.M. Expression of rubella virus cDNA coding for the structural proteins / D.M. Clarke et al. // Gene. 1988. — Vol. 65. — P. 23−30.
  102. Clarke, D.M. Nucleotide sequence and in vitro expression of rubella virus 24S subgenomic messenger RNA encoding the structural proteins El, E2, and C / D.M. Clarke et al. // Nucleic Acids Res. 1987. — Vol. 15, N 7. -P. 3041−3056.
  103. Claus, C. Rubella virus pseudotypes and cell-cell fusion assay as tools for functional analysis of the rubella virus E2 and El envelope glycoproteins / C. Claus et al. // J. Gen. Virol. 2006. — Vol. 87. — P. 3029−3037.
  104. Cohen, B. Parvovirus B19: en expanding spectrum of disease/ B. Cohen// BMJ.- 1995.-Vol. 311.-P. 1549−1552.
  105. Cooper, L.Z. Clinical manifestations of postnatal and congenital rubella / L.Z.Cooper, S. Krugman// Arch. Ophthalmol.- 1967.- Vol. 77.-P. 434−439.
  106. Cooray, S. Improved RT-PCR for diagnosis and epidemiological surveillance of rubella / S. Cooray, L. Warrener, L. Jin // J. Clin. Virol. 2006. -Vol. 35, N 1.-P. 73−80.
  107. Corboba, P. Neutralizing monoclonal antibody to the El glycoprotein epi-topeof rubella virus mediates virus arrest in vero cells / P. Corboba et al. // Viral. Immunol.-2000.-Vol. 13, N l.-P. 83−92.
  108. Corcoran, A. Advances in the biology, diagnosis and host-pathogen interactions of parvovirus В19/ A. Corcoran, S. Doyle // J.Med. Microbiol.-2004. Vol. 53. — P. 459−475.
  109. Corcoran, C. Genetic variants of Human Parvovirus В19 in South Africa: cocirculation of three genotypes and identification of a novel subtype of genotype 1 / C. Corcoran et al. // J. Clin. Microbiol. 2010. — Vol. 48, N l.-P. 137−142.
  110. Cossart, Y.E. Parvovius-like particles in human sera/ Y. E. Cossart et al. // Lancet. 1975.-Vol. 1, N7898.-P. 72−73.
  111. Cubel, R.C. Human parvovirus В19 infection and fetal hydrops fetalies in Rio de Janeiro, Brazil / R.C. Cubel et al. // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. -1996.-Vol. 91.-P. 147−151.
  112. Dereeper, A. BLAST-EXPLORER helps you building datasets for phyloge-netic analysis / A. Dereeper et al. // BMC Evol. Biol. 2010. — Vol. 12, N 10.-P. 8.
  113. Dereeper, A. Phylogeny.fr: robust phylogenetic analysis for the non-specialist/ A. Dereeper et al.// Nucleic Acids Res. 2008.- Vol.36 (Web Server issue): W 465−469.
  114. De Jong, E.P. Parvovirus В19 infection in pregnancy/ E.P. de Jong et al. // J. Clin. Virol. 2006. — Vol. 36. — P. 1−7.
  115. Doerig, C. Nonstructural protein of parvoviruses B19 and minute virus of mice controls transcription/ C. Doerig et al. // J.Virol.- 1990.-Vol. 64.-P. 387−396.
  116. Dorsch, S. The VP1- unique region of parvovirus B19: amino acid variability and antigenic stability / S. Dorsch et al. // J. Gen. Virol. 2001.-Vol. 82.-P. 191−199.
  117. Duncan, R. RUBV capsid protein induces apoptosis in transfected RK 13 cells / R. Duncan et al. // Virology. 2000. — Vol. 275. — P. 20−29.
  118. Edgar, R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput / R.C. Edgar // Nucleic Acids Res. 2004. — Vol. 32, N5.-P. 1792−1797.
  119. Ekman, A. Biological and immunological relations among Human Parvovirus B19 genotypes 1 to 3 / A. Ekman et al. // J. Virol. 2007. — Vol. 81, N 13.-P. 6927−6935.
  120. Enders, G. Fetal infections / G. Enders// Prenatal- and Geburtsmedizim: DCM Drug Center. 1998. — P. 76−82.
  121. Enders, M. Current epidemiological aspects of human parvovirus B19 infection during pregnancy and childhood in the western part of Germany / M. Enders, A. Weidner, G. Enders // Epidemiol. Infect. 2007. -Vol. 135.-P. 563−569.
  122. Enders, M. Fetal morbidity and mortality after acute human parvovirus B19 infection in pregnancy: prospective evaluation of 1018 cases / M. Enders et al. //Prenat. Diagn.-2004.-Vol. 24.-P. 513−518.
  123. Erdman, D.D. Human parvovirus B19 specific IgG, IgA, and IgM antibodies and DNA in serum specimens from persons with erythema infectiosum / D.D. Erdman et al. // J. Med. Virol. 1991. — Vol. 5. — P. 110−115.
  124. Ergas, D. Pure red blood cell aplasia associated with Parvovirus B19 infection in large granular lymphocyte leukemia / D. Ergas, P. Resnitzk, A. Ber-rebi // Blood. 1996. — Vol. 87. — P. 3523−3524.
  125. Feng, Y. Application of new assays for rapid confirmation and genotyping of isolates of rubella virus / Y. Feng et al. // J.Med. Virol. 2011,-Vol. 8.-P. 170−177.
  126. Filipenko, D. In situ detection of rubella RNA and antigens in cultured cells / D. Filipenko, T. Hobman, A. MacDonald // J. Med. Virol. 1988. -Vol. 22, N 1. — P. 109−118.
  127. Fontana, J. Three-dimensional structure of Rubella virus factories/ J. Fontana et al. // Virology. 2010. — Vol. 405, N 2. — P. 579−591.
  128. Forng, R.J. Identification of the Rubella virus nonstructural proteins/ R.J. Forng, T.K. Frey // Virology. 1995. — Vol. 206. — P. 843−853.
  129. Forng, R.J. Mutations in the retinoblastoma protein-binding LXCXE motif of rubella virus putative replicase affect virus replication / R.J. Forng, C.D. Atreya // J. Gen. Virol. 1999. — Vol. 80. — P. 327−332.
  130. Freitas, R.B. Molecular characterization of human erythrovirus B19 strains obtained from patients with several clinical presentations in the Amazon region of Brazi/ R.B. Freitas et al. // J.Clin. Virol. 2008.- Vol. 43.-P. 60−65.
  131. Frey, T.K. Molecular biology of rubella virus / T.K. Frey// Adv. Virus Res. 1994. — Vol. 44. — P. 69−160.
  132. Frey, T.K. Sequence of the region coding for virions proteins C and E2 and the carboxy terminus of the nonstructural proteins of rubella virus: comparison with alphaviruses / T.K. Frey, L.D. Marr // Gene. 1988. — Vol. 62. -P. 85−99.
  133. Furesz, J. A micro tissue 124 culture test for titration and neutralization of rubella virus / J. Furesz, P. Moreau, W.A. Varosh // Can. J. Microbiol. -1969.-Vol. 15.-P. 67−71.
  134. Galazka, A. Rubella in Europe / A. Galazka// Epidemiol. Infect. 1991. -Vol. 107.-P. 43−54.
  135. Garbutt, M. Role of rubella virus domains in assembly of virus-like particles/ M. Garbutt et al. //J. Virol. 1999. — Vol. 73. — P. 3524−3533.
  136. Gigler, A. Generation of neutralizing human monoclonal antibodies against Parvovirus B19 proteins/ A. Gigler et al. // J. Virol. 1999. — Vol. 4. -P. 1974−1979.
  137. Gilbert, N.L. Seroprevalence of parvovirus B19 infection in daycare educators/ N.L.Gilbert et al.// Epidemiol. Infect.- 2005.-Vol. 133.-P. 299−304.
  138. Gillespie, S.M. Occupational risk of human parvovirus B19 infection for school and day-care personnel during an outbreak of erythema infectiosum / S.M.Gillespie et al. // J.Am. Med. Assoc. 1990.- Vol.263, N 15.-P.2061−2065.
  139. Gratacos, E. The incidence of human parvovirus B19 infection during pregnancy and its impact on perinatal outcome / E. Gratacos et al. // J. Infect. Dis.- 1995.-Vol. 171.-P. 1360−1363.
  140. Gregg, N.M. Congenital cataract following German measles in the mother/ N.M. Gregg // Trans. Ophthalmol. Soc. Aust. 1941. — Vol. 3. — P. 35−46.
  141. Gray, J.J. Human parvovirus B19 serology with recombinant VP1 and VP2 antigens: diagnosis of acute infections by detecting B19-specific IgM and IgA antibodies / J.J.Gray et al.// Clin. Diagn. Virol. 1994.- Vol.2, Iss. 6.-P. 331−341.
  142. Guindon, S. A simple, fast, and accurate algorithm to estimate large phy-logenies by maximum likelihood / S. Guindon, O. Gascuel // Syst. Biol. -2003. Vol. 52, N 5. — P. 696−704.
  143. Harger, J.H. Prospective evaluation of 618 pregnant women exposed to parvovirus B19: risks and symptoms / J.H. Harger et al. // Obstet. Gynecol. -1998.-Vol. 91. -P. 413−420.
  144. Heegard, E.D. Human parvovirus B19 / E.D. Heegard, K.E. Brown // Clin. Microbiol. Rev. 2002. — Vol. 15, N 3. — P. 485−505.
  145. Heegaard, E.D. Prevalence of parvovirus B19 and parvovirus V9 DNA and antibodies in paired bone marrow and serum samples healthy individuals / E.D. Heegaard et al. // J. Clin. Microbiol. 2002. — Vol. 40. — P. 933−936.
  146. Hemauer A., Sequence variability among different parvovirus B19 isolates / A. Hemauer et al. // J. Gen. Virol. 1996. — Vol. 77. — P. 1782−1785.
  147. Hemmila, I. Time-resolved fluorometric immunoassays/ I. Hemmila, G. Lanthanides // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1988. — Vol. 48. — P. 389 400.
  148. Herrmann, K.L. Rubella in the United States / K.L. Herrmann // Epidemiol. Infect. 1991.-Vol. 107.-P. 55−61.
  149. Hobman, T.C. In vitro and in vivo expression of rubella virus glycoprotein E2: the signal peptide is contained in the C-terminal region of capsid protein/ T.C. Hobman, S. Gillam//Virology. 1989. — Vol. 173. — P. 241−250.
  150. Hokynar, K. Tissue persistence and prevalence of B19 virus types 1−3 / K. Hokynar et al. // Future Virology. 2007. — Vol. 2, N 4. — P. 377−388.
  151. Horstmann, D.M. Rubella: the challenge of its control / D.M. Horstmann // Rev. Infect. Dis. 1971. — N 123. — P. 640−654.
  152. Horvant, L. Rubella antibody screening / L. Horvant, W. Lebar // Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 87th Atlanta- Washington, 1987. -P. 364.
  153. Ho-Terry, L. Diagnosis of fetal rubella virus infection by polymerase chain reaction / L. Ho-Terry, G.M. Terry, P. Londesborough // J. Gen. Virol. -1990.-Vol. 71.-P. 1607−1611.
  154. Ho-Terry, L. Rubella virus polypeptides / L. Ho-Terry, A. Cohen// Arch. Virol. 1982. — Vol. 72, N 1−2. — P. 47−54.
  155. Huppertz, H.E. Susceptibility of normal human joint tissue to viruses/ H.E. Huppertz, N.P.Nancy, J.K. Chantler// Rheumatol.- 1991. — Vol. 18.-P. 699−704
  156. Johnson, C.E. Antibody persistence after primary measles-mumps-rubella vaccine and response to a second dose given at four to six and eleven to hir-teen years / C.E. Johnson et al. // Pediatr. Infect. Dis. 1996. — Vol. 15. -P. 687−692.
  157. Jones, L.P. Prevalence of antibodies to human parvovirus B19 nonstructural protein in persons with various clinical outcomes folloeing B19 infection/ L.P.Jones, D.D. Erdman, L.J.Anderson // J. Infect. Dis.- 1999.-Vol. 180.-P. 500−504.
  158. Jordan, J.A. Globoside expression within the human placenta / J.A. Jordan, J.A. DeLoia // Placenta. 1999. — Vol. 20. — P. 103−108.
  159. Kaikkonen, L. Acute-phase-specific heptapeptide epitope for diagnosis of parvovirus B19 infection / L. Kaikkonen et al. // J. Clin. Microbiol.-1999. Vol. 37. — P. 3952−3956.
  160. Kajigaya, S. Self-assembled В19 parvovirus capsids, produced in a bacu-lovirus system, are antigenically and immunogenically similar to native virions/ S. Kajigaya et al.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1991. — Vol. 88.-P. 4646−4650.
  161. Kapoor, A. A Newly identified Bocavirus species in human stool. BRIEF REPORT / A. Kapoor et al. // JID. 2009. — Vol. 199. — P. 196−200. -Режим доступа: http://jid.oxfordjournals.Org/content/199/2/196.full.pdf. -Загл. с экрана.
  162. Katow, Sh. Rubella virus genome diagnosis during pregnancy and mechanism of congenital rubella / Sh. Katow // Intervirology. 1998. — Vol. 41. -P. 163−169.
  163. Kelly, H.A. The age-specific prevalence of human parvovirus immunity in Victoria, Australia compared with other parts of the world / H.A. Kelly et al. // Epidemiol. Infect. 2000. — Vol.124. — P. 449157.
  164. Kivovich, V. Parvovirus B19 genotype specific amino acid substitution innsl reduces the protein’s cytotoxicity in culture / V. Kivovich et al. // Int. J. Med. Sci. 2010. — Vol. 7, N 3. — P. l 10−119.
  165. Koppelman, M.H.G.M. Quantitative real-time detection of parvovirus B19 DNA in plasma / M.H.G.M. Koppelman et al. // Transfusion. 2004. -Vol.44, Iss. l.-P. 97−103.
  166. Kujala, P. Intracellular distribution of rubella virus nonstructural protein 150 / P. Kujala // J. Virol. 1999. — Vol. 73, N 9. — P. 7805−7811.
  167. Lee, J.-Y. Localization of rubella virus core particles in vero cells/ J.-Y.Lee, J.A.Marshall, D.S.Bowden// Virology.- 1999.- Vol. 265,-P. 110−119.
  168. Lee, J.-Y. Rubella virus replication and links to teratogenicity / J.-Y. Lee, D.S. Bowden // Clin. Microbiol. Rev. 2000. — Vol. 13, N 4. — P. 571−587.
  169. Levy, R. Infection by parvovirus B19 during pregnancy: a review / R. Levy et al. // Obstet Gynecol Surv. 1997. — Vol. 52. — P. 254−259.
  170. Liang Y. Mutational analysis of the rubella virus nonstructural polyprotein and its cleavage products in virus replication and RNA synthesis / Y. Liang, S. Giilam // J. Virol. 2000. — Vol. 74, N 11. — P. 5133−5141.
  171. Liang, Y. Rubella virus nonstructural protein protease domains involved in trans- and cys- cleavage activities / Y. Liang, J. Yao, S. Gillam // J. Virol. -2000. Vol. 74, N 12. — P. 5412−5423.
  172. Lieberman, E. Premarital rubella screening in Rhode Island / E. Lieberman, G.A.Faich. P.R.Simon, R.J.Mullan// JAMA.- 1981.- Vol. 245.-P. 1333−1335.
  173. Liu, Z.Y. Identification of domains in RUBV genomic RNA and capsid protein necessary for scecific interaction / Z.Y. Liu et al. // J. Virol. -1996.-Vol. 70.-P. 2184−2190.
  174. Lou, S. Molecular characterization of the newly identified human parvovirus 4 in the family Parvoviridae / S. Lou et al.// Virology. 2012.-Vol. 422. — P. 59−69.
  175. Luo, W. A novel protein encoded by small RNAs of parvovirus B19/ W. Luo, C.R. Astell / Virology. 1993. — Vol. 195. — P. 448155.
  176. Mani, B. Molecular mechanism underlying B19 virus inactivation and comparison to other parvoviruses / B. Mani et al. // Transfusion. 2007. -Vol. 47.-P. 1765−1774.
  177. Marchler-Bauer, A. CDD: a Conserved Domain Database for the functional annotation of proteins / A. Marchler-Bauer et al. // Nucleic Acids Res. -2011. Vol. 39 (D). — P. 225−229.
  178. Marr, L.D. Efficient in vitro translation and processing of rubella virus structural proteins in the presence of microsomes / L.D. Marr, A. Sanchez, T.K. Frey//Virology. 1991.-Vol. 180.-P. 400−405.
  179. Marr, L.D. Expression of the rubella virus nonstructural protein ORF and demonstration of proteolytic processing / L.D. Marr, C.-J. Wang, T.K. Frey//Virology. 1994. — Vol. 198. — P. 586−592.
  180. Mastromarino, P. Role of membrane phospholipids and glycolipids in the Vero cells surface receptor for rubella virus / P. Mastromarino et al. // Med. Microbiol. Immunol. 1990. — Vol. 179. — P. 105−114.
  181. Mauracher, C.A. PH-dependent solubility shift of rubella virus capsid protein/ C. A. Mauracher et al. //Virology. 1991. — Vol. 181. — P. 773−777.
  182. Mclver, C.J. Development of multiplex PCRs detection of common viral pathogens and agents of congenital infection / C.J. Mclver et al. // J. Clin. Microbiol.-2005.-Vol. 43, N 10.-P. 5102−5110.
  183. Meurman, O.H. Time-resolved fluoroimmunoassay: a new test for rubella antibody / O.H. Meurman et al. // J. Clin. Microbiol. 1982.- Vol. 16, N5.-P. 920−925.
  184. Miller, E. Immediate and long term outcome of human parvovirus B19 infection in pregnancy / E. Miller et al. // Br. J. Obstet Gynaecol. 1998. -Vol. 105.-P. 174−178.
  185. Moffatt, S. Human parvovirus B19 nonstructural (NS1) protein induced apoptosis in erythroid lineage cells / S. Moffatt et al. // J. Virol. 1998. -Vol. 72.-P. 3018−3028.
  186. Mori, J. Dot blot hybridization assey of B19 virus DNA in clinical specimens / J. Mori et al. // J. Clin. Microbiol. 1989. — Vol. 27. — P. 459−464.
  187. Mori, J. Structure and mapping of the DNA of human parvovirus B19 / J. Mori et al. // J. Gen. Virol. 1987. — Vol. 68. — P. 2797−2806.
  188. Mortimer, P.P. A human parvovirus-like virus inhibits haematopoietic colony formation in vitro / P.P. Mortimer et al. // Nature. 1983. — Vol. 302. -P. 426−429.
  189. Mossong, J. Parvovirus B19 infection in the European countries: seroepi-demiology, force of infection, and maternal risk of infection / J. Mossong etal.// Epidemiol. Infect.-2008.-Vol. 136, N8.-P. 1059−1068.
  190. Munakata, Y. Ku80 autoantigen as a cellular coreceptor for human parvovirus B19 infection/ Y. Munakata et al.// Blood. 2005.- Vol.106, N 10.-P. 3449−3456.
  191. Murry, Ch.E. Fatal parvovirus myocarditis in a 5-year-old girl/ Ch.E. Murry, K.R. Jerome, D.D. Reichenbach // Human Pathology. -2001. Vol. 32, Iss. 3.-P. 342−345.
  192. Musiani, M. Detection of parvovirus B19 DNA in bone marrow cells by chemiluminescence in situ hybridization / M. Musiani et al. / J. Clin. Microbiol. 1996. — Vol. 34, N 5. — P. 1313−1316.
  193. Musiani, M. Parvovirus B19 clearance from peripheral blood after acute infection./ M. Musiani et al. // J. Infect. Dis. 1995. — Vol. 172. — P. 13 601 363.
  194. Musiani, M. Prenatal diagnosis of parvovirus B19-induced hydrops fetalis by chemiluminescence in situ hybridization / M. Musiani et al. / J. Clin. Microbiol. 1999. — Vol. 37, N 7. — P. 2326−2329.
  195. Nakhasi, H.L. RUBV replication: effect on interferon and actinomycin D/ H.L. Nakhasi et al.//Virus Res. 1988.-Vol. 10.-P. 1−15.
  196. Nascimento, J.P. Laboratory diagnosis of acute human parvovirus B19 infection by specific IgM detection / J.P. Nascimento, A. Mistchenko, B.J.Cohen// Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 1998.- Vol.40, N4.-P. 265−266.
  197. Negro, P.A. Virus-specific polymeric immunoglobulin A antibodies in serum from patients with rubella, measles, varicella, and herpes zoster virus infections/ P.A.Negro et al. // J.Clin. Microbiol.- 1985.- Vol.22, N4.-P. 505−509.
  198. Norrby, E. Rubella virus / E. Norrby // Virol. Monogr. 1994. — Vol. 7. -P. 115−174.
  199. Nunoue, T. Human fetal infection with parvovirus B19: maternal infection time in gestation, viral persistence and fetal prognosis / T. Nunoue, K. Ku-suhara, T. Hara // Pediatr. Infect. Dis. J. 2002. — Vol. 21, N 12. — P. 1133— 1136.
  200. Nyman, M. Detection of human parvovirus B19 infection in first-trimester fetal loss/ M. Nyman et al.// Obstet Gynecol. 2002.- Vol. 99.-P. 795−798.
  201. Ojala, K. Expression and trafficking of fluorescent viral membrane proteins in baculovirus-trunsduced BHK cells / K. Ojala et al. // J. Biotechnology. -2004.-Vol. 114, N 1−2.-P. 165−175.
  202. Oker-Blom, C. Baculovirus polyhedron promoter-directed expression of rubella virus envelope glycoproteins, El and E2, in Spodoptera frugiperta cells / C. Oker-Blom, R.F. Petterson, M.D. Summers // Virology. 1989. -«Vol. 172, N1.-P. 82−91.
  203. Oliveira, S.A. Clinical and epidemiological aspects of human parvovirus B19 infection in an urban area in Brazil (Niteroi city area, State of Rio de Janeiro, Brazil) / S.A. Oliveira et al. // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. -2002. Vol. 97. — P. 965−970.
  204. Ozawa, K. Characterization of capsid and noncapcid proteins of B19 parvovirus propagated in human erythroid bone marrow cell cultures / K. Ozawa, N. Young // J. Virol. 1987. — Vol. 61. — P. 2627−2630.
  205. Ozawa, K. Replication of the B19 parvovirus in human bone marrow cell cultures/ K. Ozawa, G. Kurtzman, N.S.Young// Science.- 1986.-Vol. 233.-P. 883−886.
  206. Parsyan, A. Identification and genetic diversity of two human parvovirus B19 genotype 3 subtypes / A. Parsyan et al. // J. Gen. Virol. 2007.-Vol. 88.-P. 428−431.
  207. Petruzziello, R. Pathway of rubella virus infectious entry into Vero cells/ R. Petruzziello et al. // J. Gen. Virol. 1996. — Vol. 77. — P. 303−308.
  208. Peuvot, J.A. Are the fussion processes involved in birth. Life and death of the cell depending on tilted insertion of peptides into membranes? / J.A. Peuvot etal.//J. Theoretic Biol.-1999.-Vol. 198, N2.-P. 173−181.
  209. Plotkin, S.A. A new attenuated rubella virus grown in human fibroblasts: evidence forreduced nasopharyngeal excretion / S.A. Plotkin et al. // Am. J. Epidemiol. 1967. — Vol. 86. — P. 468−477.
  210. Plotkin, S.A. Birth and death of congenital rubella syndrome/ S.A. Plotkin // JAMA. 1984. — Vol. 251, N 15. — P. 2003−2004.
  211. Porter, H.J. B19 parvovirus infection of myocardial cells/ H.J.Porter, A.M. Quantrill, K.A. Fleming // Lancet. 1988. — Vol. 1. — P. 535−536.
  212. Public Health Laboratory Service Working Party on Fifth Disease Prospective stady of human parvovirus infection in pregnancy// BMJ. 1990. — Vol. 300.-P. 1166−1170.
  213. Revello, M.G. Prenatal diagnosis of rubella virus infection by direct detection and semiquantitation of viral RNA in clinical samples by reverse tran-scription-PCR / M.G. Revello et al. // J.Clin. Microbiol.- 1997.-Vol. 35.-P. 708−713.
  214. Rice, P.C. A school outbreak of parvovirus В19 infection investigated using salivary antibody assays / P.C. Rice, B.J. Cohen // Epidemiol. Infect. -1996.-Vol. 116.-P. 331−338.
  215. Riipinen, A. Parvovirus В19 infection in fetal deaths/ A. Riipinen et al. // CID.-2008.-Vol. 47.-P. 1519−1525.
  216. Rodis, J.F. Management and outcomes of pregnancies complicated by human parvovirus В19 infection: a prospective study / J.F. Rodis et al.// Am. J. Obstet Gynecol. 1990.-Vol. 163.-P. 1168−1171.
  217. Saikawa, Т. Neutralizing linear epitopes of В19 parvovirus cluster in the VP1 unique and VP1-VP2 junction regions / T. Saikawa et al. // J. Virol. -1993. Vol. 67. — P. 3004−3009.
  218. Schalk, J. Potency estimation of measles, mumps and rubella trivalent vaccine with quantitative PCR infectivity assay / J. Schalk, С. de Vries, P. Jongen // Biologicals. 2005. — Vol. 33, N 2. — P. 71−79.
  219. Schneider, B. Simultaneous persistence of multiple genome variants of human parvovirus B19 / B. Schneider et al. // J. Gen. Virol. 2008.-Vol. 89.-P. 164−176.
  220. Schwarz, T.F. Detection of parvovirus В19 in fetal autopsies/ T.F. Schwarz, A. Nerlich, P. Hillemanns // Arch. Gynecol. Obstet. 1993. -Vol. 253, N4.-P. 207−213.
  221. Schwarz, T.F. Human parvovirus В19 infection in pregnancy/ T.F. Schwarz et al. // Lancet ii. 1988b. — P. 566−567.
  222. Serjeant, G.R. Outbreak of aplastic crises in sickle cell anaemia associated with parvovirus-like agent / G.R.Serjeant et al.// Lancet ii. 1981.-P. 595−597.
  223. Servant, A. Genetic diversity within human erythro viruses: identification of three genotypes / A. Servant et al. // J. Virol. 2002. — Vol. 76, N 18. -P. 9124−9134.
  224. Sevall, J.S. Laboratory diagnosis of parvovirus В19 infection / J.S. Sevall, J. Ritenhous, J.B.Peter // J.Clin. Lab. Anal.- 1992.- Vol.6, Iss. 4,-P.171−175.
  225. Skendz, L.P. Rubella immunity: level of protective antibody/ L.P. Skendz//Am. J. Clin. Pathol. 1996. — Vol. 106.-P. 170−174.
  226. Soderlund, M. Accurate serodiagnosis of B19 parvovirus infection by measurement of IgG avidity / M. Soderlund et al. // J. Infect. Dis. -1995.-Vol. 171.-P. 710−713.
  227. Soderlund, M. Epitope type-specific IgG responses to capsid proteins VP1 and VP2 of human parvovirus B19 / M. Soderlund et al. // J. Infect. Dis. -1995b.-Vol. 172.-P. 1431−1436.
  228. Stewart, G.L. Rubella-virus hemagglutination- inhibition test / G.L. Stewart et al. // N. Engl. L. Med. 1967. — Vol. 276, N 10. — P. 554−557.
  229. Suomalainen, M.H. The E2 signal sequence of rubella virus remains part of the capsid protein and confers membrane association in vitro / M.H. Suomalainen, H. Garoff, M.D. Baron // J. Virol. 1990. — Vol. 64. -P. 5500−5509.
  230. Takasawa, N. Human Parvovirus B19 transgenic mice become susceptible to polyarthritis / N. Takasawa et al. // The J. of Immunol. 2004. -Vol. 173.-P. 4675−4683.
  231. Thompson, A. Grown of rubella virus in a glass bear propagator/ A. Thompson et al. // J.Virol. Methods.- 1989.- Vol.25, N1.-P. 443—454.
  232. Toan, N.L. Phylogenetic analysis of human parvovirus B19, indicating two subgroups of genotype 1 in Vietnamese patients / N.L. Toan et al. // J. Gen. Virol. 2006. — Vol. 87. — P. 2941−2949.
  233. Tolfvenstam, T. Evaluation of serological assays for identification of parvovirus B19 immunoglobulin M/ T. Tolfvenstam, U. Ruden, K. Brodilen // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1996. — Vol. 3. — P. 147−150.
  234. Torok, T.J. Human parvovirus В19 infections in pregnancy / T.J. Torok// Pediatr Infect Dis. 1990. — Vol. 9. — P. 772−776.
  235. Tzeng, W.P. C- El fuzion protein synthesized by rubella virus D1 RNAs maintained during serial passage / W.P. Tzeng, Т.К. Frey // Virology. -2006.-Vol. 356.-P. 198−207.
  236. Tzeng, W.P. Rubella virus capsid protein modulation of viral genomic and subgenomic RNA synthesis / W.P. Tzeng, Т.К. Frey // Virology. 2005. -Vol. 337, N2.-P. 327−334.
  237. Vaheri, A. Grown of the rubella virus in BHK 21 cells. 1. Virus production and infectivity assays / A. Vaheri, W.D. Sedwick, S.A. Plotkin // Proc. Soc. Exp. Biol. (N.Y.).- 1967.-Vol. 125.-P. 1086−1092.
  238. Valeur-Jensen, A.K. Risk factors for parvovirus B19 infection in pregnancy / A.K. Valeur-Jensen et al. // JAMA. 1999. — Vol. 281, N 12. -P. 1099−1105.
  239. Venturolli, S. IgG response to the immunoreactive region of parvovirus B19 nonstructural protein by immunoblot assay with a recombinant antigen/ S. Venturolli et al. // J. Infect. Dis. 1998.-Vol. 178.-P. 1826−1829.
  240. Virus Taxonomy: 2011 Release (current). Режим доступа: http://www. ictvonline.org/virusTaxonomy.asp. — Дата обращения: 20.01.2013. — Загл. с экрана.
  241. Update of standard nomenclature for wild-type rubella viruses, 2007 // Wkly Epidemiol. Rec. 2007. — Vol. 82, N 4. — P. 216−222
  242. Urquhart, C.E.D. Laboratory policy for rubella screening / C.E.D. Urquhart, H.G. Carson//Lancet. 1982. — Vol. 8309. — P. 1226.
  243. Usonis, V. Comparative study of reactogenicity and immunogenicity of new and established measles, mumps and rubella vaccines in healthy children/ V. Usonis et al. // Infection. 1998. — Vol. 26, N 4. — P. 222−226.
  244. Wong, A. Seroprevalence of Cytomegalovirus, Toxoplasma and parvovirus in pregnancy / A. Wong et al. // Singapore Med J. 2000. — Vol. 1, N 4. -P. 151−155.
  245. Wong, S. Ex Vivo-Generated CD36+ Erythroid Progenitors Are Highly Permissive to Human Parvovirus B19 Replication/ S. Wong et al. // J. Virol. 2008. — Vol. 82, N 5. — P. 2470−2476.
  246. World Health Organization. Accelerated control of rubella and prevention of congenital rubella syndrome. Brasil. // Wkly Epidemiol. Rec. 2002. -Vol. 77.-P. 169−175.
  247. World Health Organization. Manual for the laboratory diagnosis of measles and rubella virus infection. Second Edition. Geneva, 2006. — 100 p.
  248. World Health Organization. Preventing Congenital Rubella Syndrome// Wkly. Epidemiol. Rec. 2000. — Vol. 75. — P. 289−296.
  249. World Health Organization. Standartization of the nomenclature for genetic characteristics of wild-type rubella viruses // Wkly Epidemiol. Rec. -2005.-Vol. 80.-P. 125−132.
  250. Yaegashi, N. Propagation of human parvovirus B19 in primary culture of erythroid lineage cells derived from fetal liver / N. Yaegashi et al. // J. Virol. 1989. — Vol. 63. — P. 2422−2426.
  251. Yao, J. A single-amino-acid substitution of a tyrosine residue in the rubella virus El cytoplasmic domain blocks virus release / J. Yao, S. Gillam / J. Virol. 2000. — Vol. 74, N 7. — P. 3029−3036.
  252. Yao, J. Mutational analysis, using a full-length rubella virus CAN clone, of rubella virus El transmembrane and cytoplasmic domains required virus release/ J. Yao, S. Gillam // J. Virol. 1999. — Vol. 73. — P. 4622−4630.
  253. Yermalovich, M.A. Human parvovirus B19 surveillance in patients with rash and fever from Belarus./ M.A. Yermalovich et al. // J. Med. Virol. -2012.-Vol.84, N6.-P. 973−978.
  254. Young, N.S. Mechanisms of disease: Parvovirus B19/ N.S.Young, K.E. Brown // N. Engl. J. Med. 2004. — Vol. 350, N 6. — P. 586−597.
  255. Zakrzewska, K. Human parvovirus B19 experimental infection in human fibroblasts and endothelial cells cultures / K. Zakrzewska et al. // Virus Res. 2005. — Vol. 114. — P. 1−5.
  256. Zhao, L.H. Establishment and application of a TagMan real-time quantitative reverse transcription- polymerase chain reaction assay for rubella virus RNA / L.H. Zhao et al. // Acta Biochim. Bioph. Sin. (Shanghai). 2006. -Vol. 38, N 10.-P. 731−736.
  257. Zheng, D.-P. Global distribution of rubella virus genotypes / D.-P. Sheng, K. Teryl, T.K. Frey // Emerg. Infect.Dis. 2003. — Vol. 9, N 12. — P. 15 231 530.
  258. Zhou, Y. Genomic analysis of diverse rubella virus genotypes / Y. Zhou // J. Gen. Virol. 2007. — Vol. 88.-P. 932−941.
  259. Zimmerman, R.K. Ethical analyses of vaccines grown in human cell strains derived from abortion: arguments and Internet search / R.K. Zimmerman // Vaccine. 2004. — Vol. 22. — P. 4238^1244.
  260. Zuffi, E. Identification of an immunodominant peptide in the parvovirus B19 VP1 unique region able to elicit a long-lasting immune response in humans / E. Zuffi et al.// Viral Immunol. 2001.- Vol. 14, N 2.-P. 151−158.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!