Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Цитологические особенности спермиев ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна и их изменение в зависимости от условий криоконсервации

Диссертация: Цитологические особенности спермиев ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна и их изменение в зависимости от условий криоконсервации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Результаты работы доложены и обсуждены на VIII Международной научной конференции «Эколого-биологические проблемы бассейна Каспийского моря» (Астрахань, 2005) — на студенческой конференции Астраханского государственного университета (Астрахань, 2006) — на IX Международной научной конференции «Эколого-биологические проблемы бассейна Каспийского моря» (Астрахань, 2006) — в докладах Московского… Читать ещё >

Цитологические особенности спермиев ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна и их изменение в зависимости от условий криоконсервации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА I. РЕТРОСПЕКТИВНЫЙ АНАЛИЗ НАУЧНОЙ ИНФОРМАЦИИ ПО ПРОБЛЕМЕ КРИОКОНСЕРВАЦИИ РЕПРОДУКТИВНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ
    • 1. 1. Проблема сохранения генофонда исчезающих диких животных и растений и пути ее решения
      • 1. 1. 1. Способы сохранения генофонда диких и домашних животных
      • 1. 1. 2. Перспективы использования сверхнизких температур для сохранения генофонда растительного и животного мира
    • 1. 2. Достижения в области криобиологии
      • 1. 2. 1. Основные явления, происходящие при охлаждении воды и биологических объектов
      • 1. 2. 2. Причины устойчивости и повреждаемости живых систем при криоконсервации
      • 1. 2. 3. Особенности защитного действия некоторых криопротекторных веществ на биологические объекты в процессе их криоконсервации
      • 1. 2. 4. Методы оценки качества половых клеток животных после хранения их в условиях низких температур
    • 1. 3. Особенности воздействия низких температур на спермии хладнокровных животных
      • 1. 3. 1. Опыт криоконсервации семенной жидкости лососевых видов рыб
      • 1. 3. 2. Особенности криоконсервации семенной жидкости осетровых видов рыб
      • 1. 3. 3. Особенности криоконсервации спермы карповых видов рыб
  • ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объем и структура проведенных исследований
    • 2. 2. Методы цитофизиологического анализа качества половых клеток до и после замораживания при низкой и сверхнизкой температуре
    • 2. 3. Способы приготовления криопротекторной искусственной среды для замораживания семенной жидкости рыб
    • 2. 4. Способы дефростации и повышения подвижности спермиев рыб после низкотемпературного хранения семенной жидкости
    • 2. 5. Метод осеменения икры дефростированной семенной жидкостью
    • 2. 6. Статистические методы исследования
  • ГЛАВА III. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ СПЕРМИЕВ РЫБ ДО И ПОСЛЕ КРИОКОНСЕРВАЦИИ
    • 3. 1. Цитологические и функциональные особенности спермиев ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна
    • 3. 2. Зависимость криоустойчивости клеток от состава криопротекторной среды
      • 3. 2. 7. Морфофункциональная характеристика дефростированных спермиев осетровых видов рыб
      • 3. 2. 2. Изменение качества спермиев карповых видов рыб после дефростации семенной эюидкости
      • 3. 2. 3. Криоустойчивостъ спермиев белорыбицы в зависимости от состава криопротекторной среды
      • 3. 2. 4. Качественная характеристика дефростированных спермиев окуня
    • 3. 3. Зависимость криоустойчивости клеток от скорости замораживания и условий хранения криоконсервированной семенной жидкости
    • 3. 4. Оплодотворяющая способность дефростированных спермиев разных видов рыб
      • 3. 4. 1. Оплодотворяющая способность спермиев севрюги после дефростации
      • 3. 4. 2. Результаты оплодотворения икры семенной жидкостью окуня, после их предварительного криоконсервирования
  • ГЛАВА IV. СПОСОБЫ СТИМУЛЯЦИИ ПОДВИЖНОСТИ СПЕРМИЕВ ПОСЛЕ ДЕФРОСТАЦИИ СЕМЕННОЙ ЖИДКОСТИ
    • 4. 1. Влияние температурного режима размораживания семенной жидкости на подвижность спермиев
    • 4. 2. Влияние компонентов различной природы как возможных стимуляторов подвижности спермиев
  • ГЛАВА V. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы.

Постоянно растущее загрязнение окружающей природной среды, нерациональное использование биоресурсов, разработка новых источников полезных ископаемых, урбанизация и другие компоненты техногенной среды губительно сказываются на живых организмах, лишая их убежища, условий размножения, кормовых ресурсов т.д., что в итоге привело и продолжает негативно сказываться на численности ценных и редких видов животного и растительного царства (Васильева JI.M. с соавт., 1993; Державин А. Н., 1947; Кожин Н. И., 1953; Патин С. А., 1979).

Южный регион Волго-Каспийского бассейна продолжает развиваться в направлении расширения техногенной среды. В северной части Астраханской области (пос. Аксарайск) функционирует газоперерабатывающий комплекс, влияние которого, по крайней мере, на близлежащую от него территорию, известно. В настоящее время осуществляется нефтебуровая добыча углеводородов непосредственно в Каспийском море. Имеются опубликованные данные о превышении сульфатных соединений в почве и воде (Орлова О.В. с соавт., 2006). Уже на этапе нефтеразведки, на Каспии насчитывалось несколько ценных видов рыб, занесенных в Красную книгу (Бердичевский JI.C., 1980; Иванов В. П., 2000; Красиков Е. В., 1997).

Существующее положение вещей приводит к необходимости принятия срочных мер для сохранения существующих видов растений и животных во всем их генетическом многообразии. Из существующих в настоящее время способов сохранения генофонда наиболее перспективным в сложившихся условиях является долговременная криоконсервация генетического материала, с последующей возможностью его реализации для получения полноценных особей, как резерва восстановления численности (Вепринцев Б.Н. с соавт., 1984, 1989; Карнаухов В. Н., 1994; Багиров В. А. с соавт., 2004; Грищенко В. И. с соавт., 2004).

Сохранение генетических ресурсов редких, исчезающих и уникальных видов животных имеет значительную научную, информационную, экономическую и медицинскую ценность. Генетический материал, сохраняемый в криобанке, может быть использован для обмена им между популяциями, разводимыми в неволе, а также для обогащения резерва наследственной изменчивости свободно живущих популяций, находящихся под угрозой исчезновения в виду их малой численности. Кроме того, сохранение половых продуктов может найти широкое применение в селекционно-племенной работе, при этом появляется возможность избежать ипбредной депрессии, упрощаются получение промышленных гибридов.

В настоящее время удается замораживать и хранить в жидком азоте, при температуре -196° половые клетки, гонады, многие соматические клетки ранних зародышей и ряд органов животных, а также семена, пыльцу и меристему растений. Однако, как показали исследования, эта технология должна разрабатываться специально применительно к каждому виду и объекту. Одна из наиболее разработанных отраслей криобиологии — глубокое замораживание сперматозоидов. Это связано как с биологическими особенностями спермиев, делающими их наиболее подходящим объектом для замораживания, так и с большим практическим значением этих работ. Сперматозоиды обладают уникальными морфологическими, биохимическими и физиологическими характеристиками, резко отличающими их от остальных клеток. Разработка методов оценки качества семени животных в настоящее время чрезвычайно актуальна. Знание цитологических и функциональных особенностей спермиев даст возможность прогнозировать изменение их качества под действием различных факторов.

Аиализ научной информации по проблеме криоконсервации репродуктивных клеток животных показал, что исследования осуществляются в двух направлениях: разрабатывается состав искусственной криозащитной среды для спермиев, обеспечивающий защиту клеток от механического повреждения при замораживаниивторое направление связано с реактивацией подвижности спермиев после дефростации семенной жидкости.

Несмотря на большой объем научной информации по криоконсервации семенной жидкости животных, в опубликованных работах, как правило, нет данных для сравнения эффективности криозащитных сред, различающихся между собой по составу. Одним из важных предметов исследований продолжает оставаться вопрос унификации методов по расчету качественного и количественного состава криозащитной среды.

К настоящему времени накоплен обширный материал по криосохранению семенной жидкости различных пород сельскохозяйственных животных и различных диких видов млекопитающих (Курбатов А.Д. с соавт., 1988; Дьяконов Л. П. с соавт., 2004; Айбазов В. М. с соавт., 2004; Максудов Г. Ю., 2004; Жильцов Н. З. с соавт., 2007). Известно, что криоустойчивость спермиев сельскохозяйственных животных превышает таковую у рыб. Для теплокровных животных, в отличие от рыб, разработаны разнообразные методы оценки качества половых клеток как до, так и после хранения их в криосреде (Максудов Г. Ю. с соавт., 1987). Изучению цитологических особенностей спермиев сельскохозяйственных животных посвящены многочисленные работы ряда авторов (Ойвадис Р.Н., 1980, 1985; Ойвадис Р. Н. с соавт., 1984; Соколовская И. с соавт., 1981; Буров В. А. с соавт., 1985; Наук В. А., 1991; Осташко Ф. И., 1978). Работы по цитологическим особенностям спермиев рыб немногочисленны и посвящены преимущественно особенностям строения сперматозоидов осетровых видов, как наиболее важных объектов аквакультуры (Гинзбург А.С. с соавт., 1975; Детлаф Т. А. с соавт., 1981). Имеются немногочисленные опубликованные данные по химическому составу семенной жидкости и спермиев карповых видов рыб (Жукинский В.Н. с соавт., 1988).

Что касается морфологических изменений спермиев животных под влиянием низких и сверхнизких температур, и особенно в зависимости от состава криозащитных сред, то в научной литературе сведений нет. Кроме того, отсутствуют публикации, отражающие перечень криоповреждений клеток рыб на различном уровне организации. Именно цитоморфологический анализ служит вполне доступным для оценки качества спермиев на этапе разработки криопротекторных смесей, что и было положено в основу настоящей исследовательской работы.

Цель исследования.

Изучить цитологические особенности спермиев некоторых ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна (осетровых, карповых, белорыбицы, окуня) и их изменение в зависимости от состава криозащитной среды, условий замораживания, хранения и размораживания биоматериала.

Задачи исследования:

1. Изучить цитологические и функциональные особенности спермиев разных видов рыб в нативном состоянии.

2. Изучить морфофункциональные особенности сохранения спермиев рыб после воздействия низких температур в зависимости от состава искусственных криопротекторных сред, температуры и других условий замораживания и хранения биоматериала.

3. Определить оплодотворяющую способность и цитоморфологическое состояние дефростированных спермиев рыб после различных сроков хранения в криосреде при использовании стандартных и модифицированных по составу криопротекторов.

4. Разработать морфологические критерии оценки качества половых клеток после размораживания и разработать базу данных морфологических нарушений спермиев рыб в зависимости от состава криопротектора, условий замораживания, хранения и размораживания биоматериала.

5. Разработать способы повышения подвижности и оплодотворяющей способности спермиев рыб после дефростации семенной жидкости.

Научная новизна исследования.

Изучены и обобщены морфофункциональные особенности спермиев ценных видов рыб Волго-Каспийского бассейна, ранее фрагментарно описанных в современных информационных источниках. В настоящей работе на основе микроскопического анализа впервые дана цитологическая характеристика сперматозоидов белорыбицы, речного окуня и карповых видов рыб, а также проведен сравнительный анализ особенностей головной и хвостовой частей спермиев данных видов рыб.

Впервые дана характеристика морфофункциональных изменений спермиев рыб до и после криоконсервации в зависимости от состава криопротекторных сред, условий замораживания, хранения и размораживания. Выявлены наиболее типичные криоповреждения спермиев рыб на клеточном уровне организации.

Разработана матрица степени морфофункциональных нарушений спермиев рыб в зависимости от различного состава стандартных криопротекторных сред и их модификаций, а также разработаны и апробированы оригинальные составы криозащитных сред, удовлетворяющих сохранению основных морфофункциональных показателей спермиев после криоконсервации.

На основании результатов проведенных серийных экспериментальных работ доказаны приемлемость замораживания и хранения семенной жидкости рыб в условиях низкой температуры (минус 22 градуса по Цельсию), что является альтернативой криоконсервации биоматериала в жидком азоте.

На основании проведенных опытов по оценке оплодотворяющей способности дефростированной семенной жидкости зарегистрировано оплодотворение яйцеклеток, что указывает на необходимость дальнейших коррективных изменений в традиционную биотехнику искусственного воспроизводства рыб.

Научно-практическая значимость.

Работа представляет цитологическую, функциональную характеристику половых клеток рыб в норме и на фоне низкотемпературного воздействия. Полученные данные позволяют выявить цитологические особенности строения спермиев в зависимости от ряда условий криоконсервации, а именно от состава криопротекторной среды, способа замораживания, температурных условий хранения и дефростации биоматериала.

Практическая значимость работы заключается в том, что она позволяет расширить существующие представления о механизмах и характере повреждения половых клеток в результате воздействия низких и сверхнизких температур, что рекомендуется использовать в качестве тест-критерия качественного состояния спермиев после хранения их в замороженном виде в условиях криобанка.

Полученные данные являются основой для последующих исследований с целью использования криоконсервированной семенной жидкости в практике искусственного осеменения репродуктивных клеток ценных видов рыб, а также позволит снизить затраты на содержание производителей на рыбоводных заводах.

Результаты проведенного комплекса исследований рекомендуется использовать в рыбоводной практике, а также специалистам в области криобиологии и криоконсервации спермиев и других видов клеток и тканей животных и человека.

Полученные данные могут быть внедрены для преподавания соответствующих разделов цитологии, гистологии, физиологии человека и животных, криобиологии. Результаты исследования могут быть использованы для написания монографий, и служить в качестве методической основы для последующих исследований в этой области.

Положения, выносимые на защиту.

1. По внешним морфологическим признакам спермии различных видов рыб отличаются формой и размерами головной части, а также продолжительности поступательного и колебательного движения, отражающего различные энергетические ресурсы в зависимости от вида рыб.

2. Одной из причин морфофункциональных нарушений спермиев при замораживании семенной жидкости является гиперосмотичность плазмы за счет внесения водных растворов различных компонентов криопротекторной среды. Дополнительное введение воды в семенную жидкость перед замораживанием усиливает акустическую эмиссию, что приводит к деструктивным изменениям спермиев.

3. Семенная жидкость рыб после хранения ее при низкой и сверхнизкой температуре сохраняет способность к оплодотворению яйцеклеток, однако необходимо внести коррективы в традиционные способы искусственного осеменения.

4. Функциональную активность дефростированной семенной жидкости рыб возможно увеличить за счет внесения биологически активных веществ различной природы.

Апробация работы.

Результаты работы доложены и обсуждены на VIII Международной научной конференции «Эколого-биологические проблемы бассейна Каспийского моря» (Астрахань, 2005) — на студенческой конференции Астраханского государственного университета (Астрахань, 2006) — на IX Международной научной конференции «Эколого-биологические проблемы бассейна Каспийского моря» (Астрахань, 2006) — в докладах Московского общества испытателей природы «Биотехнология — охране окружающей среды (Москва, 2006) — на Международной научной студенческой конференции «Научный потенциал студенчествабудущему России» (Ставрополь, 2007) — на Четвертом Московском международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2007) — на Международной конференции «Биоресурсы, биотехнологии, экологически безопасное развитие регионов Юга России» (Сочи, 2007) — на Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии воспроизводства животных» (Дубровицы, 2007) — на Международном конгрессе молодых ученых, студентов и аспирантов «Перспектива — 2007» (п. Эльбрус, 2007) — на Международной конференции «Генетика, селекция, гибридизация, племенное дело и воспроизводство рыб» (Санкт-Петербург, 2008) — на II Международной научно-практической конференции «Экология биосистем: проблемы изучения, индикации и прогнозирования» (Астрахань, 2009).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 22 работы, из них 3 в изданиях, рекомендованных ВАК.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, изложения и обсуждения результатов собственных исследований, выводов, практических рекомендаций, списка литературы и приложения.

121 ВЫВОДЫ.

1. Цитофизиологические особенности спермиев изученных видов рыб заключаются в различных размерах и форме головной части клеток, а также продолжительности их поступательного и колебательного движения. Так, спермии осетровых видов рыб и белорыбицы имеют значительно большие размеры головной и хвостовой частей, время их подвижности более продолжительно, в отличие от спермиев карповых видов рыб и речного окуня, имеющих меленькие головные и короткие хвостовые части, что определяет их различную криоустойчивость.

2. Для оценки качества нативных и дефростированных спермиев рыб необходимо учитывать комплекс показателей, таких как их морфологическая целостность, физиологическая активность и оплодотворяющая способность. Разработанная электронная база данных «Морфологические нарушения спермиев рыб при различных условиях замораживания» отражает изменения данных показателей в зависимости от состава криозащитной среды, условий замораживания, хранения и размораживания биоматериала.

3. Анализ морфофункционального состояния спермиев изученных видов рыб после криоконсервации семенной жидкости показал, что применение стандартных криозащитных сред приводит к смещению изоосмотичности плазмы, что и является основной причиной утраты подвижности клеток и сопровождается в различной степени мофологическими нарушениями головной и особенно хвостовой части спермиев. Использование модифицированной криозащитной среды, в состав которой входят диметилсульфоксид, глицерин и гепарин, позволяет заметно снизить степень нарушений спермиев.

4. Замораживание и хранение семенной жидкости рыб при температуре минус 22 градуса по Цельсию по морфофункциональному состоянию спермиев не уступает технике криоконсервации в жидком азоте при температуре минус 196 градусов по Цельсию, и служит приемлемым и доступным способом сохранения генетического материала ценных видов рыб.

5. Одним из способов повышения подвижности и оплодотворяющей способности дефростированных > спермиев рыб является использование стимуляторов различной природы. Наиболее эффективными для спермиев осетровых видов рыб и белорыбицы оказались растворы на основе препаратов «Эпин», «Метилтестостерон», также питательные среды.

6. Дефростированная семенная жидкость после различных сроков хранения при низкой (-22°С) и сверхнизкой (-196°С) температуре в криозащитных средах стандартного и модифицированного состава может быть использована для оплодотворения яйцеклеток рыб. Низкая оплодотворяемость икры севрюги и речного окуня при использовании дефростированной семенной жидкости указывает на необходимость внести изменения в традиционную биотехнику искусственного осеменения.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. На основании полученных результатов по качеству дефростированных спермиев разных видов рыб и их оплодотворяющей способности, в практике искусственного осеменения промысловых видов рыб рекомендуем увеличить объем семенной жидкости, время оплодотворения, а также испытать процесс оплодотворения при различных вариантах обесклеивания икры.

2. В процессе искусственного осеменения яйцеклеток рыб целесообразно применение активирующих растворов для оттаивания криоконсервированной спермы и осеменения ею икры. Активизирующие растворы возможно использовать и при работе с нативной семенной жидкостью, в связи с понижением жизнеспособности спермы и оплодотворяемости икры.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.М., Трубникова П. В. Замораживание и использование спермы баранов производителей (рекомендации). РАСН. ГНУСНИИ ЖК. Ставрополь. — 2004. — 70 с.
  2. Т.И. Альтернативные хладоагенты для реализации методов криосохранения репродуктивных клеток ценных видов животных // Естественные науки. № 3−4 (16−17). — Астрахань: Издательский дом «Астраханский университет», 2006. — С. 26−29.
  3. Т.И. Перспективы изучения морфологии спермиев рыб с целью оценки их качественного состояния после хранения в условиях сверхнизкой температуры // Ветеринарная патология. 2007 а. — № 4. -С. 230−231.
  4. В.И. Концепция сохранения и устойчивого использования биоразнообразия с применением методов криоконсервации геномов гидробионтов // Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура: Информпакет / ВНИЭРХ. 1997. — Вып. 1. — С. 1 — 36.
  5. В.И., Андреев А. А., Голованова Т. С., Петропавлов Н. Н., Цветкова Л.И. Опыт криоконсервации спермы белорыбицы и белуги,
  6. Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. М., 1998 а. — Вып. 1. — С. 25 -32.
  7. В.И., Цветкова Л. И., Манохина М. С., Рыжков Л. П., Докина С. Б. Проблемы сохранения геномов лососевых и осетровых рыб. Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. М., 1998 Ь. — Вып. 1. — С. 2−24.
  8. А.А., Садикова Д. Г. Сохранение спермиев осетровых рыб методами криоконсервации. Актуальные проблемы биологии воспроизводства животных // Материалы международной научно-практической конференции. Дубровицы: ВНИИЖ, 2007. — С. 136−137.
  9. Е.Б. Формирование представлений о причинах индивидуального развития. М., Наука.- 1979. — 152с.
  10. П. И. Итог моих исследований об анабиозе насекомых и план его исследования у теплокровных животных. Изв. АН СССР, Т. 27,№ 4, 1902.-С. 161−166.
  11. П. И. Как я нашел анабиоз у млекопитающих. Природа, № 1, 1912.-С. 606−622.
  12. А. М., Шраго М. И., Пушкарь Н. С. Криоконсерванты.— Киев: Наук, думка, 1979. 198 с.
  13. Бех В. В. Криоконсервация спермы карпов украинских пород./ Материалы международной конференции «Сохранение генетических ресурсов». Ж. «Цитология», Т. 46, № 9, 2004. — С. 769.
  14. Биохимия мембран: Учеб. пособие для биол. и мед. спец. вузов / Под ред. А. А. Болдырева. Кн. 3. A.M. Белоус, Е. М. Гордиенко, Л. Ф. Розанов. Замораживание и криопротекция. М.: Высш. шк., 1987. — 80 с.
  15. В.М. Многофакторная регрессионная модель оплодотворяющей способности спермы быков-производителей. Сб. науч. тр. Гродненского с.-х. ин-та, вып. 20, 1974. — С. 3−7.
  16. И. А, Иммунные реакции в репродуктивных органах самки в связи с осеменением. Вести, с.-х. науки, 1985, № 1, с. 128−133.
  17. В. А., Корякина JI. В. Экспресс-метод определения выживаемости семени быков. Животноводство, № 7, 1985. — С. 43−44.
  18. JI.M., Попова О. В., Хорошко В. И. Состояние загрязнения водной среды, донных отложений и гидробионтов в Волго-Каспийском районе // Биологические ресурсы Каспийского моря. Астрахань. -1993.-С. 43−46.
  19. .Н., Пилиев С. А. Сохранить генофонд рыб и водных беспозвоночных. Рыбное хозяйство, 1989, № 6. С. 29−32.
  20. .Н., Ротт Н. Н. Консервация генетических ресурсов: Программа исследований // Консервация генетических ресурсов. -Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН, 1990. С. 18−35.
  21. .Н., Ротт Н. Н. О возможности восстановления исчезающих видов животных из их консервированных геномов. Пущино: ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1978. — 15 с.
  22. .Н., Ротт Н. Н. Предпосылки к созданию программы исследований // Консервация генетических ресурсов. Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН, 1980.-С. 18.
  23. .Н., Ротт Н. Н. Проблема сохранения генофонда. Сер. Консервация генетических ресурсов. Пущино, 1984. — 48 с.
  24. JI.B. Эффективность использования биологически активных веществ в искусственном воспроизводстве русского осетра // Вестник АГТУ. № 2. Астрахань, 1996 Ъ. С. 71−74.
  25. JI.B., Егоров М. А., Абтахи Б. Исследование последствий обработки икры осетровых рыб биологически активными веществами // Вестник АГТУ. Астрахань, 1997. С. 29−34.
  26. JI. Г. Влияние низких температур на клетки рыхлой соединительной ткани кролика. 1. Изменение размеров фибробластов и гистиоцитов. В сб.: Реакция клеток на экстремальные воздействия. -М.-Л., 1963а.-С. 66−74.
  27. Л. Г. Влияние низких температур на клетки рыхлой соединительной ткани кролика. 2. Витальное окрашивание фибробластов и гистиоцитов. В сб.: Реакция клеток на экстремальные воздействия М.-Л., 19 636. — С. 75−79.
  28. А.С., Детлаф Т. А. Осетр Acipenser guldenshtadti. В кн.: Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. С. 217−260.
  29. А.С., Детлаф Т. А. Развитие осетровых рыб: созревание яиц, оплодотворение и эмбриогенез. Москва, 1969. 134 с.
  30. A.M. Анабиоз и его практическое значение. JL: Наука, 1986.- 169с.
  31. ГОСТ 209.09 3−75−6-75. Сперма быков неразбавленная. Методы испытаний.
  32. ГОСТ 236.81.79. Сперма жеребцов неразбавленная свежеполученная. Методы испытаний.
  33. В.И., Копейка Е. Ф., Петрушко М. П. Проблемы криобиологии и сохранение генетических ресурсов. / Материалы международной конференции «Сохранение генетических ресурсов». -Ж. «Цитология», Т.46, № 9, 2004. С. 784.
  34. ., Фоломеев В. Связь качества спермы с активностью аминотрансфераз. Свиноводство, 1975, № 7.- С. 24−25.
  35. А.Н. Воспроизводство запасов осетровых рыб. Баку, 1947. -256 с.
  36. Т.А., Гинзбург А. С., Шмальгаузен О. И. Развитие осетровых рыб: созревание яиц, оплодотворение, развитие зародышей и предличинок. М.: Наука, 1981. 224 с.
  37. М.А. О создании Международного криобанка генофонда флоры и фауны Каспийского бассейна. Материалы международной конференции «Сохранение генетических ресурсов».- Ж. «Цитология», Т.46, № 9, 2004. С. 791−792.
  38. М.А. Сперма осетровых как тест-объект для экспресс-оценки активности биостимуляторов // Тезисы докладов I Международной научной конференции Ассоциации Прикаспийских государств. Астрахань, 1998. С. 135−136.
  39. М.А., Витвицкая JI.B. Использование биологически активных веществ в искусственном воспроизводстве осетровых Волго-Каспийского региона. Астрахань, 2002. 165 с.
  40. М.А., Ершова В. И., Земков Г. В., Акимочкина Т. И. Проведение экспериментов по корректировке оптимальных значений компонентов составных частей криопротекторов. СПб.: ВНТИЦ, 2007. — 15 с. — № ГР 1 200 609 511. -Инв. № 22 007 4 566.
  41. Т.А., Клунова С. М., Живухина Е. А. Основы биотехнологии: Учеб. пособие для высш. пед. учеб. заведений / М.: Издательский центр «Академия», 2003.- 208 с.
  42. О.В. Криоконсервация и создание низкотемпературного банка спермы лососей Дальнего Востока // Автореф. дисс.,. канд. биол. наук: 03.00.10. Лесные Поляны, Моск. обл., 1997. — 24 с.
  43. Н.З., Голубь B.C. Метод глубокого замораживания семени мужчин. Актуальные проблемы биологии воспроизводства животных // Материалы международной научно-практической конференции. -Дубровицы: ВНИИЖ, 2007. С. 137−140.
  44. Е. К. О температурном парабиозе нерва в связи с колориметрическими изменениями парабиотической области. Тр. Лен. общ. естествоиспыт., 1935, Т. 64, № 3. С. 407−428.
  45. Г. В., Чухрий Б. Н., Клевец Л. А. Взаимосвязь активности окислительных ферментов в сперме быков с физиологическими показателями спермиев. Докл. ВАСХНИЛ, 1978, N 4. — С. 24−26.
  46. Г. В., Акимочкина Т. И. Цитоморфологические и функциональные изменения спермиев русского осетра (ACIPENSER GULDENSHTADTI В.) после криоконсервации // Цитология. 2009, Т. 51, № 11. — С. 945−952.
  47. А.В., Зинченко В. Д., Копейка Е. Ф., Онищенко Е. В. О возможных факторах повреждения биологических объектов и их ДНК при криоконсервации. / Материалы международной конференции
  48. Сохранение генетических ресурсов".- Ж. «Цитология», Т.46, № 9, 2004. С. 796.
  49. В.П. Биологические ресурсы Каспийского моря. Астрахань. -2000. — 196 с.
  50. Н.Т. Атлас клеток крови рыб (сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб). М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982.- 184 с.
  51. Т., Антонюк В., Безлюдников Л., Жуковская Л. Воспроизводительная способность хряков и холодостойкость их спермы. Свиноводство, 1975, № 1. — С. 24−26.
  52. В.Н. Проблемы и перспективы создания генетических криобанков для целей сохранения биоразнообразия. Биофизика живой клетки. Т. 6., 1994. С. 1−6.
  53. И.М. Морфологические и функциональные изменения хлоропластов при охлаждении листьев Cucumis sativus L. В кн.: Клетка и температура среды. М.-Л. (Тр. Межд. симп. по цитоэкологии, Л., 1963 г.), 1964. — С. 47−49.
  54. Н.И. Итоги и задачи научно-исследовательских работ по воспроизводству рыбных запасов в южных водоемах в связи с гидростроительством // Тр. Всес. конф. по вопр. рыбного хоз-ва. М.: 1953.-С. 237−253.
  55. Г. А. Камера для микроскопических наблюдений биологических объектов при температурах от +100° до -50°С. Цитология, 1963, Т. 5, № 6. С. 700−704
  56. Г. А., Теодорович В. И., Равдель А. А. Об образовании центров кристаллизации при замораживании крови с защитными веществами. Биофизика, 1967, Т. 12, № 3. С. 483−488.
  57. Е.Ф. Замораживание спермы осетровых Азово-Черноморского бассейна // Криоконсервация репродуктивных клеток рыб и эмбрионов: Сб. научн. тр. Харьков: АН Украины, 1992. — С. 66−72.
  58. Е.Ф., Новиков А. Н. Криоконсервирование спермы рыб // Криоконсервация клеточных суспензий. Под ред. А. А. Цуцаевой. -Киев: Наукова Думка, 1983. С. 204−215.
  59. Г. Ю., Кудокоцева О. В., Гордиенко А. Д., Федец О. И. Механизмы индукции и репарации нелетальных криоповреждений. «Сохранение генетических ресурсов». Матер, междун. конф. С.-П., 12−22 октября 2004 г. — Ж. «Цитология». Т.46, № 9−10, 2004. — С. 879.
  60. Е.В. Состояние запасов каспийских осетровых (по материалам летних траловых съемок 1991 и 1994 гг.). // Тез. докл. I Конгресса ихтиологов России, Астрахань. 1997. — М. «ВНИРО». -1997.-432 с.
  61. Е.М. О путях развития эволюционной биохимии. В кн.: Руководство по физиологии. Эволюционная физиология. JL: Наука, № 1, 1979.-С. 394−426.
  62. А.Д., Платов Е. М., Корбан Н. В. Криоконсервация спермы сельскохозяйственных животных. Д.: Агропромиздат, 1988. — 255 с.
  63. А.И. Динамическое поведение белков в водной среде и их функции. Л.: Наука, 1980. — С.270.
  64. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973. — 343 с.
  65. Лозина-Лозинский Л.К., Заар Э. И. Получение бесцветных клеток Euglena gracilis кратковременным воздействием высоких и низких температур. Цитология, Т. 3, № 1, 1961. С. 103−105.
  66. Лозина-Лозинский Л. К. К вопросу о способности некоторых живых систем переносить внутриклеточное образование льда.
  67. В сб.: Реакция клеток и их белковых компонентов на экстремальные воздействия, М.-Я., 1966. С. 33−50.
  68. Лозина-Лозинский Л. К., Наматов Т. Микроскопическое изучение замерзания нематод Rhabditis sp. и Anguina tritici при низких и сверхнизких температурах. Зоол. журн., Т. 49, № 2, 1971. С. 210−218.
  69. Лозина-Лозинский Л. К. Очерки по криобиологии. Л., Наука, 1972. -288с.
  70. Лозина-Лозинский Л. К. Реакция насекомых на глубокое охлаждение. В сб.: Реакция клеток на экстремальные воздействия, М.-Л., 1963а. С. 34−53.
  71. Лозина-Лозинский Л. К. Устойчивость некоторых насекомых к температуре жидкого гелия (-269°) при внутриклеточном замерзании в отсутствие антифризов. Цитология, Т. 5, № 2, 19 636. С. 220−221.
  72. В. Н. Криолиз ДНК. Автореф. дисс. М., 1968.
  73. Т., Нарубина Л., Тур Б.К. Низкотемпературная консервация спермы птиц. Материалы международной конференции «Сохранение генетических ресурсов».- Ж. «Цитология», Т.46, № 9, 2004. С. 814−816.
  74. Н. А. О вымерзании и холодостойкости растений. СПб., 1913.-330 с.
  75. Г. Ю., Артюшкова В. А., Трошко Е. В. Оценка качества семени животных. Пущино, 1987. — 42 с.
  76. Г. Ю. Криобанки диких видов животных России. -«Сохранение генетических ресурсов». -Матер, междун. конф. С.-П., 12 22 октября 2004. -Ж. «Цитология», Т. 46, № 9−10, 2004. — С. 816−817.
  77. Н. Наука о льде. М.: Мир, 1988. — С. 96−98.
  78. Методическое пособие по криоконсервации спермы карпа, лососевых и осетровых рыб. М., 1997.
  79. В.К. Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных. М.: Сельхозгиз, 1962. 659 с.
  80. JI. Г., Шапиев И. Ш., Корбан Н. В. Способ оценки качества спермы сельскохозяйственных животных, преимущественно хряков. Авт. свид. СССР № 938 990. БИ, 1982, № 24. — С. 42.
  81. А. М., Домбровский Н. Н., Джиенбаева Р. С. Капацитация сперматозоидов млекопитающих. Изв. АН КазССР, сер. биол., 1985, № 1. — С. 11−20.
  82. Н. Н. Биохимия сперматогенеза. Успехи соврем, биол., 1981, т. 96, вып. 1(4).-С. 101−116.
  83. В.А. Структура и функция спермиев сельскохозяйственных животных при криоконсервации / отв. ред. Ф.И. Фурдуй- АН СССР Молдова, Инст-т зоологии и физиологии. Кишинев: Штиинца, 1991. -197 с.
  84. Р.Н. Методические рекомендации по иммунологии воспроизведения. Дубровицы, 1985. 78 с.
  85. Р.Н. Методические рекомендации по оценке качества спермы хряков при низкотемпературной консервации. Ленинград, ВНИИРГЖ, 1980.-61 с.
  86. Р.Н., Соколовская И. И., Абилов А. И. Морфология гамет самцов сельскохозяйственных животных как критерий биологической полноценности. В кн.: Морфологические исследования в практике здравоохранения и животноводства. М.: Наука, 1984. — С. 144−148.
  87. О.В., Алыков Н. М. Содержание сульфатов в воде и почвах Астраханской области. «Эколого-биологические проблемы Каспийского моря. Матер. 9-ой междун. конф. 10−11 октября 2006. -Изд. дом „Астраханский университет“, 2006. — С. 66−69.
  88. Ф.И. Разработка вопросов теории и практики глубокого охлаждения и длительного хранения спермы производителей. Автореф. дисс. Харьков, 1968.
  89. Ф.И. Глубокое замораживание и длительное хранение спермы производителей. 2-е изд. доп. и пераб. — Киев: Урожай, 1978. -255 с.
  90. С.А. Влияние загрязнения на биологические ресурсы и продуктивность Мирового океана. М.: Пищевая промышленность. -1979.- 189 с.
  91. Г. М. Учет осетроводных работ в связи с применением гипофизарных инъекций. В кн.: Метод гипофизарных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов. Л.: Изд-во ЛГУ, 1941. С. 4250.
  92. Н.Н., Андреев А. А., Каранова М. В. Биофизика живой клетки. Т. 6. — Пущино, 1994. — С. 62−64.
  93. Н.А. Алгоритмы биометрии // М.: МГУ, 1980. 150 с.
  94. Н.Д. Оценка качества криоконсервированной спермы рыб. Материалы междун. конф. „Сохранение генетических ресурсов“. Ж. „Цитология“, Т. 46, № 9−10, 2004. — С.843−844
  95. Н.С., Белоус A.M. Актуальные проблемы криобиологии. Киев: Наук. думка, 1981. 608 с.
  96. Н. С., Шраго М. И., Белоус А. М., Калугин Ю. В. Криопротекторы.- Киев: Наук, думка, 1978. 204 с.
  97. Рэ Л. Консервация жизни холодом. М.: Мир, 1962. 155 с.
  98. С.И. Воспроизводство осетровых рыб с использованием криоконсервированной спермы. Проблемы сохранения геномов рыб. Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. М., Вып. 1, 1999. — С.39−42.
  99. С.И., Цветкова Л. И. Эффективность использования дефростированной спермы при воспроизводстве осетровых рыб. -Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. М., Вып. 1, 1998. — С. 33−36.
  100. Г. А. Причины вымерзания растений.- М.: Наука, 1974. -191 с.
  101. И., Ойвадис Р., Абилов А. и др. О значении акросомы в оценке семени самцов. Животноводство, 1981, № 9. — С. 45−46.
  102. Справочник по искусственному осеменению сельскохозяйственных животных. М.: Россельхозиздат, 1983. 272 с.
  103. A.M. Стратегия работы Нижневоложского криобанка по сохранению биоразнообразия в регионе. Материалы международной конференции „Сохранение генетических ресурсов“.- Ж. „Цитология“, Т.46, № 9, 2004.-С. 870−871.
  104. В.П. Функциональное состояние изолированных тканей при температуре, близкой к нулю. Вестн. ЛГУ, сер. биол., № 3, 1957. -С. 111−120.
  105. В.П., Штурм В. А. Действие низких температур на изолированные эпителиальные ткани белой мыши и лягушки. Бюлл. эксп. биол. и мед., № 7, 1956. С. 63−66.
  106. А. Определение оплодотворяющей способности глубокоохлажденной спермы быков по активности дегидрогеназ. -Молоч. и мяс. скотоводство, 1967, № 12. С. 30−31.
  107. Физиология воспроизведения сельскохозяйственных животных. Харьков: НИИ животноводства лесостепи и полесья УССР, 1971.-С. 281.
  108. У. Биохимические и физиологические аспекты морозоустойчивости растений. В кн.: Клетка и температура среды. (Тр. Межд. симп. по цитоэкологии, Л., 1963 г.). М. Л., 1964. — С. 23−28.
  109. Л.И. Создание низкотемпературных коллекций геномов рыб и амфибий // Консервация генетических ресурсов: Мат. раб. совещ. Пушкино, 1996. — С. 89−93.
  110. Л.И., Докина О. Б., Пронина Н. Д., Миленко В. А. Использование криоконсервированной спермы для осеменения больших партий икры сибирского осетра. Проблемы сохранения геномов рыб. Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. М., 1999 г. -Вып. 1.-С. 24−29.
  111. Л.И., Каранова М. В. Криопротективный эффект низкомолекулярных и высокомолекулярных антифризныхгликопротеинов из крови трески Gadus mothua // Биофизика живой клетки. 1994. — № 6. — С. 77−80.
  112. Л.И., Савушкина С. И. Методическое пособие по криоконсервации спермы карпа, лососевых и осетровых видов рыб. М.: ВНИИПРХ, 1997.- 11с.
  113. А.А., Аграненко В. А., Федорова Л. И. и др. Криоконсервирование клеточных суспензий / Под общ. ред. Цуцаевой А. А. Киев: Наук, думка, 1983. — 240 с.
  114. Н.А., Пинаев Г. И., Блинова М. И., Николаенко Н. С. К вопросу о криоконсервации клеток морских беспозвоночных. / Материалы международной конференции „Сохранение генетических ресурсов“.- Ж. „Цитология“, Т.46, № 9, 2004. С. 889.
  115. Т.Н., Козлова В. Ф., Скорняков Б. А., Строна В. И., Репин Н. В. Влияние криопротекторов на биологические системы. Киев, Наукова Думка, 1989. 98с.
  116. В. А. Видовые особенности обмена веществ в сперме быка, барана и хряка. Автореферат. Львовский зоовет. ин-т., 1970. С. 34.
  117. Alderson R., MacNeil A.J. Preliminary investigations of cryopreservation of milt of atlantic salmon (Salmo salar) and its application to commercial fanning // Aquaculture. 1984. — V. 43. — P. 351−354.
  118. Anan’ev V.I. Problems of conservation and stable employment of biological diversity with the use of deep freezing methods for hydrobionts. / Froid et Aquaculture. Refrigeration and Aquaculture. Bordeaux, France. -1996.-P. 33−42.
  119. Anchordoguy T.J. Insights into the cryoprotective mechanism of dimethylsulfoxide for phospholipid bilayers // Cryobiology. 1991. — V. 28. -P. 467−473.
  120. Anderson R. A. Relationship between semen characteristics and fertility in electroejaculated mice. J. Repr., 1983, v. 68, p. 1−7.
  121. E. 1966. Freezing and frost resistance in insects. In: Cryobiology. Ed. H. T. Meryman, L.-N. Y.: 451—486.
  122. Asahina E., Shinada K, Hisada J. A state of frozen protoplasm with invisible intracellular ice crystals obtained by rapid cooling.- Exp. Cell. Res., 1970, 59, № 4, p. 349−358.
  123. Baynes S.M., Scott A.P. Cryopreservation of rainbow trout spermatozoa: the influence of sperm quality, egg quality and extender composition on post-thaw fertility // Aquaculture. 1987. — V. 66, N 1. — P. 53−57.
  124. Bautron P., Kaufmann A. Stability of the amorphous state in the system water-glycerol ethylene tflycol.- Ibid., 1979, 16, JM» 1, p. 83−89.
  125. Billard R. Cryopreservation of rainbow trout sperm by deep freezing // Reprod. Nutr. Dev. 1980. — V. 20. — P. 1859−1868.
  126. Billard R., Cosson Y., Liuhart O., Tsvetkova L. I. Motility analysis of fresh and thawed spermatozoa in Acipenser baeri.- Italy, July, 1997.
  127. J. H. 1953. Sperm storage and crossfertilization of spring and autumn sprawning herring. Nature, London, 172: 1189−1190.
  128. К. S. 1940. Water, free and bound. Cold Spring Harbor. Sympos. Quant. Biol., 8:1−8.
  129. Blanco A. On the functional significance of LDG-H J. Hopkins Med. I., 1980, v. 41, N2, p. 117−192.
  130. Blasco L. Clinical tests of sperm fertilizing ability. Fertil. Steril., 1984, v. 41, N 2, p. 177−192.
  131. Blazac W., Overstreet J., Hanson F. A competative in vitro assay of human sperm penetration into the human zona pellucida and zona-free hamster eggs using contrasting fluorescent markers. Biol. Repr., 1980, v. 22, suppl. 1, p. 45.
  132. Blom E. The ultrastructure of some characteristic sperm defects and a proposal for a new classification of the bull spermatozoa. Nord. Vet. Med., 1973, v. 25, p. 383.
  133. Bobichou H., Bajolle F., Andet J. Detection dactivities enzymatiques du spermatozoide human en microscopie electronique a balayage. Biol, cell, 1982, v. 44, N1, p. 25.
  134. Boell E. J., Burkus J. K. Oxygen consumption and motility of mouse sperm as affected by oxidizable substrates and oxygen tension. Carlsberg Res. Comm., 1984, v. 49, N 2, p. 147−154.
  135. Bower R. E., Pace M. M., Crabo B. G., Graham E. F. Effects of dilution and glicerol on the release of glutamic-oxaloacetic transaminase from boar spermatozoa. J. Anim. Sci., 19,73, v. 36, N 2, p. 319−324.
  136. Cameron A. T. a. Brownlee T. 1.1913. The effect of low temperature an the frog. Proc. Roy. Soc., Canada, 7, sect. 4: 107−124.
  137. Chaffield P.O., Battista A.F., Lyman G.P. a. Garcia J.P. 1948. Effects of cooling on nerve conduction in a hibernator (golden hamster) and nonhibernator (albino rat.). Amer. J. Physiol., 155, 1−3: 179−185.
  138. Chandler J.E., Ruiz C.F., Adkinson R.W., Koonce K.L. Reletionship between final temperature, thaw rate and quality of bovine semen. J. Dairy sci., 1984, v. 67, N 8, p. 1806−1821.
  139. Cheng San-Pao. Using DAPI-fluorescence as a radio vital stain test for the viability of the unfixed mouse sperm. Proc. 5-th World conf. Anim. Prod. (Tokyo), 1983. v. 2, p. 173−174.
  140. Corteed G. M. Effects du plasma seminal sur la survie et la fertilite des spermatozoides conserves in vitro. Repr. nutr. develop., 1980, v. 20, N 4a, p. 1111−1123.
  141. Cosentino M. J., Emilson L., Cockett A. Prostaglandins in semen and their relationship to male fertility: a study of 145 man. Fertil. Steril., 1984, v. 41, N1−2, p. 88−95.
  142. Coulter W. H. Hight speed automatic blood cell counter and cell analizer. Proc. Nat. Elec. Conf., 1956, v. 12, p. 1034.
  143. Dixit M. K., Agarwal S. Seasonal variations in sperm levels of thiroid hormones and their relation with seminal quality and libido in buffalo bulls. Theriogenology, 1984, v. 22, N 5, p. 497−502.
  144. N. E. 1948, цит. no: Meryman H. T. 1966. In: Cryobiology Ed. В. T. Meryman. London — N. Y.: 1−114
  145. Dowell L. G. a. Rinfrei A. P. 1960. Low-temperature forms of ice, as studied by x-ray diffraction. Nature, 188, 4757: 1144−1148.
  146. Drokin S. I., Kopeika E. F. Motility of and Phospholipid Content in Cryopreserved Spermatozoa of Three Sturgeon Species // Sturgeon Quarterly. Oct.- 1996.- V. 4, № 4.- P. 8−10.
  147. Erdahl A.W., Erdahl D.A., Graham E.F. Some factors affecting the preservation of salmonid spermatozoa // Aquaculture. 1984. — V. 43. — P. 341−350.
  148. Ericsson R., Buthala D. A fluorescence staining method for studing sperm membranes. Biol. Repr., 1970, v. 3, N 1, p. 8−14.
  149. Evenson D. P., Darzyncewicz Z., Melamed M. K. Simultaneous measurement by flow cytometry of sperm cell viability and mitochondria I membrane potential related to cell motility. J. Histochem., Cytochem., 1982, v. 30, N 3, p. 279−280.
  150. Fan-ant J. General observation on cell preservation / Low-Temperature Preservation in Medicine and Biology. Eds. M.J. Ashwood-Smite and J. Farrant. Pitman, Bath., UK. 1980. — P. 1−19.
  151. Farrant J., Woolgar A. E. Cryoprotective additives and hypertonic hemolysis.- Cryobiology, 1970, 7, № 1, p. 56−60.
  152. Fietta P., Spisni A., Lindler L., Masotti L. Antioxidant activity of bull semen in relation with aging. Boll. soc. ital. biol. sper., 1982, v. 58. N 17, p. 1079−1085.
  153. Foster M., Smith W., Lee W. Selection of human spermatozoa according to their relative motility and their interection with zona-free hamster eggs. Fertil. Steril., 1983, v. 40, No 5−6, p. 655−660.
  154. Foulkes G.A., Watson P.A. Hyaloronidase activity in seminal plasma as a method of assessing bull sperm integrity. J. Repr. Fert., 1975, v. 43, N 2, p. 394−353.
  155. Fredrich F. Spermakonservierung bel Salmoniden // Z. Binnenfischerei DDR. 1984. — Bd. 31, N 1. — S. 24−31.
  156. Gallant R. K., Richardson G. F., McNiven M. A. Comparison of different extenders for the cryopreservation of Atlantic salmon spermatozoa // Thermogenology.- 1993.- V. 40, № 3.- P. 479−486.
  157. Goodpasture J. C., Zavos P. M. Effect of various conditions of semen storage on the acrosin system of human spermatozoa. J. Repr. Fert., 1981, v. 63, N 2, p. 397−405.
  158. H. 1906. Uber chemische Vorgange beim Erfrieren der Pflanzen. Land. Vers. Stat., 65: 149−160.
  159. Graham E. F., Shmehl M. K. L. Some physical and chemical methods of evaluating semen. Proc. 3rd Techn. conf. Art. Ins. Repr. N. А. А. В., 1970. p. 44−49.
  160. Graham E. F., Crabo B. G., Shmehl M. K- L. Utilization of enzyme assay in developing techniques for freezing semen VHIth Int. Simp, zootechn. Milan, 1973, p. 95−111.
  161. Halangk W., Bohnensack R. A quick test for the simultaneous determination of intactness and concentration of spermatozoa. Actabiol. et med. Germ., 1982, v. 41, N 10, p. 899−905.
  162. Halangk W., Bohnensack R. Effect of various substrates on mitochondria! and cellular energy state of intact spermatozoa. Biomed. Biochim. Acta. 1985, v. 44. N 3, p. 411−420.
  163. Hammerstedt R.H. Monitoring the metabolic rate of germ cells and sperm. In: Reproduction process and contraception. N.Y., Plenum Publ. Corp., 1981, p. 353−391.
  164. Harvey B. Salmon gene banking. A conservation opportunity. A review and Analysis of Salmonid gene banks for DFO // MTI Biotech. Ltd.-Internat. Fishes Gene Bank. 1996. — P. 36−52.
  165. L.V. 1924. The colloid chemistry protoplasm. 3. The viscosity of protoplasm at various temperatures. Amer. J. Physiol., 68, 3: 645−648.
  166. R. 1933. Untersuchungen uber Kaltebedarf und aus gefroseren Wassermengen beim schnellen und beim langsamen Gefrieren und Lebens ' mittelen. Zeitschr. Ges. Kalte Industrie, 39, 7: 97−108.
  167. A. 1931. Adventures in Biophysics. London.
  168. Holtz W., Schmidt-Baulain R., Meiners-Gefken M. A simple saccharide extender for cryopreservation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // 4th International Symposium on Reproductive Physiology of Fish. Norwich, July, 1991. — P. 25−252.
  169. Jeulin C., Seres C., Jouannet P. The effects of centrifugation, various syntetic media and temperature on the motility and vitality of human spermatozoa. Reprod. Nutr. Developp., 1982, v. 22, Nla, p. 81−91.
  170. Jeyendram R.S., Graham E.F., Schmehl M.K.L. Fertility of dehydrated bull sperm. Cryobiology, 1981, v. 18, p. 292−300.
  171. Johnson L., Berndtson W., Pickett B. An improved method for evaluating acrosomes of bovine spermatozoa. J. Anim. Sci., 1976, v. 42, N 4, p. 951−954.
  172. Karow A. M., Abouna Jr. G., Humphries A. L. Organ preservation for transplantation.- Boston: Little Brown and со, 1974. 429 p.
  173. Kusunoki H., Tsukase I., Seisiro K., Sunao K. Identification of acrosom reacted goat spermatozoa by a symplified triple-staine technique. -Japanese J. of Zootechn. Sci., 1984, v. 55, N 11, p. 832−837.
  174. Lacy D., Pettit A., Pettit J., Martin R. Application of scanning electron microscopy to semen analisis of the subfertile man utilizing date obtained by transmission electron microscopy as an aid to interpretation. Micron, 1974, v. 5, p. 135−173.
  175. Larson E.V., Graham E.F. Fertility of freeze-dried bovine spermatozoa. Proc. 8th Int. congr. on Anim. repr. Art. Ins (Kracow), 1976, v. 4, p. 822−825.
  176. Legendre M., Billard R. Cryopreservation of rainbow trout sperm by deep freezing // Reprod. Nutrit. Devel. Paris. 1980. — V. 20, № 6. — P. 18 591 868.
  177. J. 1962. A sulfhydryl-disulfide hypothesis of frost injury and resistance in plants. J. Theor, Biol., 3, 3: 355−391.
  178. J. 1967. The role of SH and SS in the resistance of cells to high and low temperatures. In: The Cell and Environmental temperature.
  179. Ed. A. S. Troshin. Pergamon Press: 269−274.
  180. J. 1966. Winter hardiness in-plant. In: Cryobiology. Ed. H. T. Meryman. London N. Y.: 495−561.
  181. Liakatas J., Williams A., Hargreave T. Scoring sperm morfology using the scanning electron microscope. Fertil. Steril., 1982, v. 38, No 1−2, p. 227−232.
  182. Linford E., Stewart D.L. The relationship between evaluation methods and fertility in the bull. J. Repr. Fert., 1976, v. 47, p. 283−291.
  183. J.E. 1957. Denaturation of lipidprotein complexes as a cause of damage by freezing. Proc. Roy. Soc., ser. Biol., 147: 427−433.200.. Lovelock J. E. 1954. Physical instability and thermal shock in red cells. Nature, London, 173: 659−661.
  184. J. E. 1953. The haemolysis of human red blood-cells by freezing and thawing. Biochim. et Biophys. Acta, 10:414.
  185. Lozina-Lozinsky L. K. 1965. Survival of some insects and cells following intracellular ice formation. Fedei*. Proc., 24, 2, pt. Ill: 206−212.
  186. Lunstra D., Echternkamp S.E. Puberty in breef bulls: acrosom morfology and semen quality in bulls of different breds. J. Anim. sci., 1982, v. 55, N. 3, p. 638−648.
  187. B. J. 1960. On various phase transitions occurring in aqueous solutions at low temperatures. Ann. N. Y. Acad. Sci., 85: 549−569.
  188. B. J. 1962. Recent developments in cryobiology and their significance in the study of freezing and freeze-drying of bacteria. Proc. Low temp, microbiol., Symp. Camden, 1961: 63−87.
  189. B. J. 1966. Anatomy of the freezing process in biological materials. In: Cryobiology. Ed. H. T. Meryman. London—N. Y.: 115−137.
  190. Luyet B.J. a. Gehenio P.M. 1940a. Life and death et low temperatures. Biodynamica. Missouri.
  191. Maisse G. Cryopreservation of fish semen- A review. Froid et Aquaculture. Refrigeration and Aquaculture. Bordeaux, France. 1996. — P. 443−450.
  192. Mahadevan M. M., Trounson A. O. The influence of seminal characteristics on the success rate of human in vitro fertilization. Fert. Steril., 1984, v. 42, No 3−4, p. 400−405.
  193. Makler A. Simultaneous differentiation between motile, nonmotile, live and dead spermatozoa by combining the supravital staining and the МЕР method.- Int. J. Androl., 1979, v. 2, No 1, p. 32−42.
  194. Makler A., Jacobi P. Factors, affecting sperm motility. V. Washing and resuspension of human spermatozoa in various artifical media. Fertil. Steril., 1981, v. 35, N 4, p. 442−446.
  195. Makler A., Fisher M., Murillo O. Factors, affecting sperm motility. IX. Survival of spermatozoa in various biological media and under different gaseous compositions. Fertil. Steril., 1984, v. 41, N 3, p. 428−432
  196. Mazur P. Cryobiology. The freezing of biological systems.- Science, 1970, 169, N5135, p. 939−949.
  197. Mazur P. Kinetics of water loss from cells at subzero temperatures and likehood of intracellular water.- J. Gen. Physiol., 1963,47, p. 347—369.
  198. Mazur P. The freezing biological systems.- Cryobiology, 1970, 16, № 8, p. 939−949.
  199. Mazur P. Theoretical and experimental effects of cooling and warming velocity in the survival of frozen and thawed cells.- Cryobiology, 1966, 2, N4, p. 181−192.
  200. Mellish O., Baker R. D. Marcing boar spermatozoa with fluorochromes for evaluating spermatozoan transport within giltis. J. Anim. Sci., 1970, v. 31, N 5, p. 917−922.
  201. Menkveld R., Van Zyl J. A statistical comparison of three methods for the counting of human spermatozoa. Andrologia, 1984, v. 16, N 6, p. 554 558.
  202. Mercado-Richardo E., Dominquez-Aquilar R. Intrinic fluorescence on intact and washed and metabolically active human spermatozoa. Arch. Invest. Med., 1982, v. 13, N 14, p. 225−229.
  203. Meryman H.T. Review of biological freezing. In: Cryobiology. / Ed. H.T. Meryman. London — N.Y.: Acad, press, 1966, p. 55−90.
  204. McGrath J., Somlo S., Makova S., Tian X., Brueckner M. 2003. Two populations of nobe monocilia initiate left-right asymmetry in the mouse. Cell. 114: 61−73.
  205. McNiven M.A., Gallant R.K., Richardson G.F. Dimethyl acetamide as a cryoprotectant for rainbow trout spermatozoa // Theriogenology. 1993. -V. 40.-N5.-P. 943−948.
  206. Mitcell K., Hansen R.D., Fleming W.H. Utilizing differential interference contrast microscopy for evaluating abnormal sperm. Proc. 6th Teshn. conf. on Art Ins. Reprod. N.A.A.B., 1978, p. 20−21.
  207. H. 1897. Untersuchungen fiber das Erfrieren der Pflanzen. Jena.
  208. T. 1929. Critical temperature of freezing. Proc. Roy. Soc., ser. Biol., 105:177−195.
  209. Munkittrick K.R., Moccia R.D. Advanced in the cryopreservation of salmonid semen and suitability for a productionscale artificial fertilization program // Theriogenology. 1984. — V. 21. — N 4. — P. 646−659.
  210. Nash T. Chemical constitution of compounds which protect erythrocytes against freezing damage.- J. Gen. Physiol., 1962, 46, № 1, p. 167−175.
  211. Pace M. M., Graham E. F. The release of glutamic oxaloacetic transaminase from bovine spermatozoa as a test method of assessing semen quality and fertility. Biol. Repr., 1970, v. 3, N 2, p. 140−146.
  212. Pace M. M., Graham E. F. Fundamentals of assay of spermatozoa. -9th Int. Congr. on Anim. Repr. Art. Ins., (Madrid), 1980, p. 133−147.
  213. Parkes A.S., Radiation sensitivity ovarian tissue at -79°C. Nature, London, 176. 1955, p. 1216−1217.
  214. Parkes A.S., Smith A.U. Regeneration of rat ovarian tissue grafted after exposure to low temperature. Proc, Roy. Soc., ser. Biol., 140. 1953, p. 455−470.
  215. Parkinson T. Seasonal variation in semen quality of bulls and correlations with metabolic and endocrine parameters. Vet. Rec, 1985, v. 117, N12, p. 302−307.
  216. Pickett B. W., Berndtson W. E. Sullivan J. I. Techniques for processing and packading bovin semen. Proc. 6th Techn. conf. on Alt. Ins. and Repr. N. А. А. В., 1976, p. 34−50.
  217. Piironen J. Cryopreservation of sperm from brown trout (Salmo Trutta M. Lacustris L.) and arctic charr (Salvelinus Alpinus L.) // Aquacultire. -1993. — V. 116, N 2−3. — P. 275−285.
  218. Piironen J. Report on cryopreservation of fish eggs and sperm / Nordic Council of Ministers, Copenhagen. 1992. — 28 p.
  219. Polge C. Freezing of spermatozoa. In: Low-Temperature Preservation in Medicine and Biology. Eds. M.J. Ashwood-Smite and J. Farrant. Pitman, Bath., UK. 1980. -P. 45−65.
  220. C. 1957. Low temperature storage of mammalian spermatozoa. Proc. Roy. Soc., ser. Biol., 147: 498−508.
  221. Polge C., Lovelock Т.Е. Preservation of bull semen at -79°C. Vet. Rec., 64.- 1952. p. 396−398.
  222. Pushkar N. S, Itkin Yu. A., Bronstein V. L. et al. On the problem of dehydration and intracellular crystallization during freezing of cell suspension.- Ibid., 1976, 13, N 2, p. 147−152.
  223. Renard J.P. Genetics, reproduction and refrigeration. Conf. Mond., Paris, 18−20 Juin, 1986. F. Froide dev., Paris. — 1996. — P. 254−271.
  224. Reslei J., Gaspar R., Szabo G., Matyus L., Damjanovich S. A him ivarsejtec fertilisanak biofizikaianalize.— Madyar Allatorvosok lapja, 1983, v" 38, No 1, p. 38−41.
  225. W. 1927. Water-binding capacity of colloides as definite factor in winter hardiness of insects. J. Econ. Ent., 20: 80−88.
  226. W. 1928. Determination of the natural undercooling and freezing point in insects. J. Econ. Ent., 21: 37.
  227. J. 1946. Glycerine et resistance du sperme aux basses temperatures. C. r. Acad. sci. Paris, 222: 1524−1525.
  228. Roussel G. D., Stallcup О. T. Parallelism between semen characteristic and glutamic oxaloacetic, glutamic pyruvic acetic transaminase activities. J. Dairy Sci., 1965, v. 48, N 12, p. 1684−1687.
  229. Saacke R.G., Amann R.R., Marshall C.E. Acrosomal cup adnormalities of sperm from sub fertile bulls. J. Anim. sci., 1968, v. 27, N 5, p. 1391−1400.
  230. Saacke R.G. Morphology of the sperm and its relationship to fertility. Proc. 3rd Techn. cont. on Art. Ins. Repr. N. А. А. В., 1970, p. 17−30.
  231. Saacke R.G. Semen quality test and their relationship to fertility. -Proc. 4rd Techn. cont. on Art. Ins. Repr. N. А. А. В., 1972, p. 22−28.253., Saacke G. Semen quality in relation in semen preservation. J. Dairy Sci, 1983, v. 66, N 12, p. 2636−2644.
  232. R. W. 1955. Extent of ice formation in frozen tissues and a new method for its measurement. Canad. J. Zool., 33, 6: 391−403.
  233. R. W. 1959. Survival of frozen fat body cells in an insect. Nature, London, 184: 1426.
  234. Sato H., Landthaler M., Haina D., Scill W.B. The effect of laser light on sperm motility and velocity in vitro. Andrologia, 1984, v. 16, N 1, p. 23−25.
  235. Schoysman R., Khan I., Yandroosendaal E., Schoysman-Deboek A. A la recherhe du pouvoir fecondant du sperm. Rev. Med. Bruxelles, 1985, v. 6, N9, p. 633−637.
  236. Scott A.P., Baynes S.M. A review of the biology, handling and storage of salmonid spermatozoa // J. Fish Biol. 1980. — Y. 17. — P. 707 739.
  237. Sjager S., Kuiken J., Kremer J. Comparison of two supravital stains in examination of human semen and in tests for cytotoxic antibodies to human spermatozoa. Fertil. Steril., 1984, v. 41, N 2, p. 294−297.
  238. Shimada K., Asahina E. Visualization of intracellular ice crystals formed in very rapidly frozen cells at -27°C.- Ibid., 1975, 12, N 3, p. 209 218.
  239. F.E. 1961. Phrenic nerve diaphragm preparation in relation to temperature and hibernation. Amer. J. Physiol., 206, 3: 565−571.
  240. A.U. 1954. Effects of low temperature on living cells and tissues. In: Biological application of freezing and drying. N.Y.: 9−90.
  241. A.U., Smiles J. 1953. Microscopic studies of mammalia tissue during cooling to and rewarming from -79°C. Roy. Micr. Soc., 73: 134−139.264. (Smith А.) Смит A. 1963. Биологическое действие замораживания и переохлаждения. М.
  242. Steffens W., Yahnichen Н., Fredrich F. Possibilities of sturgeon culture in Central Europe // Aquaculture. 1990. — V. 89. — P. 101−122.
  243. Stein H., Bayrle H. Cryoconservation of the sperm of some freshwater leleosta. Ann. biol. anim., biochim., biophys., 1978, 18, N 4, p. 1037−1076.
  244. Stoss J., Holtz W. Cryopreservation of rainbow trout (Salmo gairdneri) sperm. I. Effect of thawing solution, sperm density and intervalbetween thawing and insemination // Aquaculture. 1981 a. — V. 22. — P. 97 104.
  245. Stoss J., Holtz W. Cryopreservation of rainbow trout (Salmo gairdneri) sperm. II. Effect of pH and presence of a buffer in the diluent // Aquaculture. -1981 b. V. 25. — P. 217−222.
  246. Stoss J., Holtz W. Cryopreservation of rainbow trout (Salmo gairdneri) sperm. III. Effect of proteins in the diluent, sperm from different males and interval between sperm collection and freezing // Aquaculture. -1983 a. -V. 31.-P. 275−282.
  247. Stoss J., Refstie T. Short-time storage and cryopreservation of milt from Atlantic salmon and Sea trout // Aquaculture. 1983 с. — V. 30. — P. 229−236.
  248. Sueldo R., Berger Т., O’Brien Т., Hetzky O. Correlation of transferrin concentration and sperm fertilizing ability. Amer. J. Obstet. Gynecol., 1984, v, 150, N 5, p. 528−531.
  249. Sundquist C., Lucola A., Valtonen M. Relationship between serum testosterone concentrations and fertility in male mink. J. Repr. Fert., 1984. v. 70, N2, p. 409−412.
  250. Talbot P., Chacon R. A new procedure for rapidly scoring acrosome reactions of human sperm. Gamete Res., 1980, v. 3, N 3, p. 211−216.
  251. Talbot P., Chacon R. A triple staine technique for evaluation normal acrosome reactions of human sperm. J. Exp. Zool., 1981, v. 215, N 2, p. 201−208
  252. G. 1903. Kristallisierea und Schmelzen. Leipzig, 274 p.
  253. G. 1925. The states of agregations. N. Y. 132 p.
  254. Terner С. Evaluation of salmonid sperm motility for cryopreservation I I Progres. Fish Culturist. — 1986. — V. 48. — P. 230−232.
  255. Thom F., Matthes G. Remarks on ice formation in binary aqueous solytions of ethylene glycol and dimethylsulfoxide // Ciy о letters. 1990. -V. 2.-P. 13−26.
  256. Thorgaard G.H., Wheeler P.A., Cloud J.G. In press. Status and potential value of sperm banking for snake river salmon.
  257. Topfer-Petersen, Heissler E., Scill W B. The kinetic of acrosome reaction an additional sperm parameter. — Andrologia, 1985, v. 17, N 3, p. 224−227.
  258. I., Malikov V., Rodionov V. 2001. Self-organization of a radial microtubule array by dynein-dependent nucleation of microtubules. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 98: 10 160−10 165.
  259. Wheeler P.A., Thorgaard G.H. Cryopreservation of rainbow trout semen in large straws // Aquaculture. 1991. — V. 93, N 1. — P. 95−100.
  260. Wolf D. P., Inone M. Sperm concentration dependency in the fertilization and zonae sperm binding properties of mouse eggs insemination in vitro.— J. Exp. Zool., 1976, v. 196, No 1, p. 27−37.
  261. W. Т., Dhaliwal G. K. Observation on semen quality of dogs in tropics. Vet. Res., 1985, v. 116, No 12, p'. 313−314.
  262. Wolley D. M. A test of functional significance of the quantity of mitochondria in the spermatozoa in mice. Gen. Res., 1970, v. 16, p. 225 228.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!