Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Морфо-функциональная реорганизация нейронных связей в зрительной коре кошки при нарушении бинокулярного зрения

Диссертация: Морфо-функциональная реорганизация нейронных связей в зрительной коре кошки при нарушении бинокулярного зрения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Сведения о структурной реорганизации нейрональных связей при нарушении бинокулярного зрения представляют самостоятельный интерес в рамках фундаментальной проблемы пластичности нервной системы. Детальные знания о нейронных связях зрительной коры важны не только для более полного понимания функционирования нормального бинокулярного зрения, но и для понимания нейрональных механизмов, лежащих… Читать ещё >

Морфо-функциональная реорганизация нейронных связей в зрительной коре кошки при нарушении бинокулярного зрения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Актуальность проблемы
  • Научная новизна
  • Теоретическое и практическое значение работы
  • Глава 1. Обзор литературы 7 1.1. Морфо-функциональная организация зрительных полей 17 и 18 коры
    • 1. 1. 1. «Ретинотопическая и зрительно-топическая организация полей 17 и
    • 1. 1. 2. Особенности структурной и функциональной организации полей
    • 1. 1. 3. Модульная организация полей 17 и
    • 1. 1. 4. Нейронные связи полей 17 и
      • 1. 1. 4. 1. Внешние связи полей 17 и
      • 1. 1. 4. 2. Внутренние связи коркового поля
      • 1. 1. 4. 3. Межполушарные связи 20 1.2 Онтогенез струкурно-функциональных модулей и связей зрительной коры
      • 1. 2. 1. Развитие колонок глазодоминантности
      • 1. 2. 2. Развитие физиологических свойств нейронов зрительной коры
      • 1. 2. 3. Развитие внутрикорковых и межполушарных связей
    • 1. 3. Нарушения развития зрительной системы в условиях измененного зрительного опыта
      • 1. 3. 1. Монокулярная депривация
      • 1. 3. 2. Косоглазие
    • 1. 4. Цель и задачи исследования
    • 1. 5. Основные положения, выносимые на защиту
  • Глава 2. Материал и методика
    • 2. 1. Формирование страбизма и монокулярной депривации
    • 2. 2. Оценка отклонения глаз у кошек с косоглазием
    • 2. 3. Выявление нейронных связей колонок полей 17 и
      • 2. 3. 1. Введение маркера в отдельную нейрональную колонку коры
      • 2. 3. 2. Перфузия и гистохимическая обработка
      • 2. 3. 3. Реконструкция области меченых клеток
      • 2. 3. 4. Кластерный анализ распределения меченых клеток
      • 2. 3. 5. 'Оценка преимущественного глазного входа инъецированных колонок
      • 2. 3. 6. Статистическая обработка данных
  • Глава 3. Результаты исследований
    • 3. 1. Исследование внутриполутарных связей полей 17, 18 коры
      • 3. 1. 1. Внутриполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, у иптактных кошек
      • 3. 1. 2. Внутриполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, 18. у монокулярно депривированных кошек
      • 3. 1. 3. Внутриполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, коры у кошек с косоглазием 72 3.1.3.1.Параметры отклонения глаз у кошек с экспериментально вызванным косоглазием
        • 3. 1. 3. 2. Внутриполушарные связи глазодоминантных колонок полей
    • 17. 18. у кошек с унилатеральным косоглазием
      • 3. 1. 3. 3. Внутриполушарные связи глазодоминантных колонок полей
    • 17. 18. у кошек с билатеральным косоглазием
      • 3. 1. 3. 4. Нейронные связи глазодоминантных колонок полей 17, у кошек с косоглазием и одновременным торзионным отклонением глаз
      • 3. 1. 4. Обсуждение результатов ¦
    • 3. 2. Исследование межполушарных связей полей 17, 18 коры у кошек с нарушением бинокулярного зрения
      • 3. 2. 1. Межполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, у интактных кошек
      • 3. 2. 2. Межполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, у кошек с косоглазием
      • 3. 2. 3. Межполушарные связи глазодоминантных колонок полей 17, у монокулярно депривированных кошек
      • 3. 2. 4. Обсуждение результатов
  • Заключение
  • Выводы
  • Список использованной литературы

Бинокулярное зрение — это зрение с использованием информации, поступающей в головной мозг от сетчаток двух глаз. Оно обеспечивает более совершенное по сравнению с монокулярным зрением восприятие глубины, трехмерной формы объектов, оценку их абсолютной и относительной удаленности, восприятие яркости и контраста [Кропман, 1966; Рожкова, 1992]. Нарушения бинокулярного зрения у людей наиболее часто встречаются вследствие неодинаковой стимуляции глаз в раннем постнатальном периоде, когда зрительная система наиболее чувствительна к изменениям зрительного опыта, например, при врожденной катаракте или косоглазии [Daw, 2005]. Из клинической практики известно, что такие условия приводят к значительному и, как правило, необратимому изменению зрительных функций: утрачивается способность к фузии и стереопсису [Birch, Stager 1985; Birch et al., 1990], нарушается восприятие движения [Norcia et al., 1991; Tychsen et al., 1996; Schor et al., 1997], возникает амблиопия депривированного или отклоненного глазаснижается острота зрения [Зислина, 1987; Mitchell, McKinnon, 2002], искажается восприятие объектов этим глазом [Barrett et al., 2004]. Это существенно ограничивает выбор профессии и повышает опасность травматизма из-за невозможности точно оценивать пространственные соотношения предметов в окружающей среде.

В нейрофизиологических исследованиях на животных было показано, что нарушение бинокулярных функций при косоглазии [Hubel, Wiesel, 1965; Van Sluyters, Levitt, 1980; Freeman et al., 1982; Mower et al., 1982; Kalil et al., 1984] и монокулярной депривации [Wiesel, Hubel, 1963; Hubel, Wiesel, 1970; Cynader et al., 1980; Mower et al., 1982] обусловлено утратой бинокулярных нейронов в первичной зрительной коре. Кроме .того, уменьшается количество нейронов, управляемых из депривированного или отклоненного глаза, снижается их пространственная разрешающая способность, увеличивается размер рецептивных полей, расширяется ориентационная и дирекциональная настройка [Kalil et al., 1984; Chino et al., 1983; Mower et al., 1982]. Несмотря на значительное количество исследований, посвященных влиянию косоглазия и монокулярной депривации на свойства нейронов зрительной коры, сведений об организации межнейронных связей, которые могут обуславливать эти изменения, недостаточно. В имеющихся работах показано, что при косоглазии наблюдается более четкая сегрегация связей клеток поля 17, управляемых из разных глаз [Lowel, Singer, 1992; Schmidt et al., 1997], при монокулярной депривации нарушается кластерная организация клеток поля 17 [Price et al., 1994]. О структуре межполушарных связей у животных, выращенных в условиях рассогласования сенсорной информации из двух глаз, имеются противоречивые данные. Ряд авторов отмечают расширение зоны каллозальных клеток в поле 17 [Lund et al., 1978; Innocenti, Frost, 1979; Berman, Payne, 1983], тогда как в других работах не выявлено отличий от нормы, как по количеству, так и по распределению каллозальных клеток [Bourdet et al., 1996; Olavarria, 2001].

Известно, что у животных с бинокулярным зрением (фронтальным расположением глаз) в коре каждого полушария представлена проекция контралатеральной половины поля зрения обоих глаз. Зрительные пути из левой и правой сетчаток пе перекрываются во входном слое первичной зрительной коры, образуя чередующиеся зоны монокулярно управляемых клеток, которые дают начало вертикальной организации коры в колонки доминирования разных глаз. Исследований организации внутрии межполушарных связей отдельных глазодоминантных колонок зрительной коры у животных с нарушением бинокулярного зрения не проводилось. Научная новизна.

В работе впервые проведена количественная оценка изменений конструкции нейронных связей отдельных глазодоминантных колонок корковых полей 17 и 18 у кошек при нарушении бинокулярного зрения, экспериментально вызванного в критический период развития зрительной системы. Впервые показано, что в зрительной коре меняется протяженность связей нейронов колонок, получающих вход из депривированного или отклоненного глаза, а также нейронов колонок, получающих вход из интактного глаза. Выявлены различия в организации нейронных связей колонок, получающих входы из депривированного и интактного глаза у монокулярно депривированных кошек, отклоненного и интактного глаза у кошек с унилатеральным косоглазием, более отклоненного и менее отклоненного глаз у кошек с билатеральным косоглазием. Обнаружено увеличение протяженности внутриполушарных связей колонок интактного глаза и уменьшение связей колонок депривированного или отклоненного глаза. Получены новые данные об увеличении протяженности внутриполушарных связей вдоль направления, совпадающего с проекцией вертикального меридиана поля зрения, у животных с торзионным отклонением глаз. Получено экспериментальное подтверждение гипотезы о сохранении глазоспецифичности моносинаптических межполушарных связей. Впервые показано, что межполушарные связи колонок коркового поля у кошек с нарушением бинокулярного зрения расширяются на одну гиперколонку. Теоретическое и практическое значение работы.

Сведения о структурной реорганизации нейрональных связей при нарушении бинокулярного зрения представляют самостоятельный интерес в рамках фундаментальной проблемы пластичности нервной системы. Детальные знания о нейронных связях зрительной коры важны не только для более полного понимания функционирования нормального бинокулярного зрения, но и для понимания нейрональных механизмов, лежащих в основе патологии зрительной системы. Важное теоретическое значение имеют полученные в работе сведения о количественных изменениях конструкции моносинаптических связей в коре. Выявленные в работе расширение внутренних и межполушарных связей колонок, получающих вход из интактного глаза, и сужение связей колонок, получающих вход из депривированного или отклоненного глаза, расширяют существующие представления о роли горизонтальных связей в коре и позволяют оценить их возможный вклад в патогенез амблиопии. Косоглазие и депривационная амблиопия, возникающая при врожденной катаракте, встречается у 5% населения [Rubenstein, 1985; Barrett et al., 2004], поэтому полученные в работе данные важны для клинических целей и могут быть использованы при выборе сроков и способов лечения амблиопии и нарушений стереозрения у детей.

ВЫВОДЫ.

1. Нарушение бинокулярного зрения в ранний постнатальный период развития кошек вызывает количественные изменения пространственной организации моносинаптических внутрии межполушарных связей нейронов зрительной коры. Эти изменения выявляются на уровне связей отдельных глазодоминантных колонок полей 17 и 18.

2. У нии билатеральное конвергентное косоглазие, монокулярная депривация вызывают увеличение протяженности внутриполушарных связей колонок доминирования интактного глаза и уменьшение протяженности связей колонок доминирования депривированного или отклоненного глаза. При билатеральном косоглазии наблюдается тенденция к уменьшению протяженности связей колонок более отклоненного глаза и увеличению протяженности • связей колонок менее отклоненного глаза. Это свидетельствует о том, что конкурентные взаимодействия между нейронами, получающими входы из разных глаз, отражаются и на протяженности их внутрикорковых связей.

3. Направления в коре, вдоль которых происходит изменение протяженности связей колонок доминирования интактного глаза, различаются у кошек с разными формами нарушения бинокулярного зрения. У кошек с конвергентным косоглазием протяженность связей увеличивается вдоль оси, совпадающей с направлением смещения глаз (а), у кошек с косоглазием и одновременным торзионным отклонением глаз протяженность связей увеличивается также и вдоль ортогонального направления, у монокулярно депривированных кошек — вдоль разных направлений. Это указывает, что формирование распределения связей в коре зависит отразличий освещенности двух сетчаток и пространственного расположения изображений объектов на них.

4. При косоглазии и при монокулярной депривации сохраняется асимметрия в расположении каллозально связанных участков коры двух полушарий, а также глазоспецифичность межполушарных связей. Наблюдаемое при этом расширение зоны каллозальных клеток может обеспечить более надежное объединение проекций левой и правой половин поля зрения глаза, что необходимо для компенсации утраченных бинокулярных связей.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Результаты нейрофизиологических исследований зрительной коры [Hubel, Wiesel, 2005] свидетельствуют о снижении активности нейронов депривированного глаза при монокулярной депривации и нейронов отклоненного глаза при унилатеральном косоглазии. Полученные нами данные указывают, что нейроны таких колонок имеют меньшую протяженность связей. Наблюдаемое при этом увеличение протяженности связей у нейронов интактного глаза по сравнению с нормой свидетельствует о конкурирующих взаимодействиях между нейронами, получающими входы из разных глаз, при формировании внутрикорковых связей. Подобные различия в изменениях связей колонок, получающих вход из менее отклоненного и более отклоненного глаз, наблюдались и у части животных с билатеральным косоглазием. Редукция протяженности связей приводит к ограничению латеральных функциональных взаимодействий между корковыми нейронами [Kasamatsu et al., 1998], в результате чего снижается их пространственная разрешающая способность. Вследствие этого ухудшается острота зрения глаза, снижается контрастная чувствительность, т. е. возникает амблиопия. В данной работе показано, что снижение освещенности сетчатки, а также отсутствие паттернового зрения при сшивании век одного глаза и рассогласование сигналов от разных глаз при косоглазии с одновременным нарушением подвижности отклоненного глаза приводят к сходным изменениям связей нейронов колонок депривированного и отклоненного глаза. Однако полученных данных недостаточно для того, чтобы оценить различия в изменениях связей нейронов этих колонок. В обоих случаях вероятность выявления укороченных нейронных связей снижается, возможно, из-за уменьшения размера корковых колонок и ветвления терминалей аксонных коллатералей клеток [Hubel et al., 1975].

Выявленные в работе изменения протяженности нейронных связей глазодоминантных колонок могут обуславливать известные различия в степени синхронизации ответов монокулярных клеток [Roelfsema et al., 1994], что может повлиять на процессы выделения фигуры из фона, интеграции контуров у животных и пациентов с амблиопией глаза [Kozma, Kiorpes, 2003; Simmers et al., 2003].

Известно, что граница разделения полей зрения глаз на полуполя, представленные в разных полушариях, проходит через область максимальной остроты зрения. Обнаруженное нами расширение зон межполушарных связей при депривации и косоглазии может обеспечить более надежное объединение проекций левой и правой половин поля зрения глаза, что, вероятно, необходимо для компенсации утраченных бинокулярных межполушарных связей.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.А., Бухштабер В. М., Енюков И. С., Мешалкин Л. Д. Прикладная статистика: Классификация и снижение размерности // М.:Финансы и статистика. 1989. 607 с.
  2. С.В., Топорова С. Н., Макаров Ф. Н. Микротопография корковых полей 17 и 18 у кошки // Сенсорные системы. 1999. — т.13. — N 4. — с. 277−282.
  3. С. В. Топорова С.Н., Макаров Ф. Н. Структура реципрокных связей зрительных корковых полей 17 и 18 у кошки. // Рос. Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2002а. — Т. 88. — N 3. — С. 324−328.
  4. С.В., Топорова С. Н., Макаров Ф. Н. Нейрональные связи, обеспечивающие объединение полуполей зрения // Сенсорные системы. -20 026.-Т. 16.-N2.-С. 83−88.
  5. С.В., Топорова С. Н., Макаров Ф. Н., Ляховецкий В. А. Структура внутренних межнейронных связей поля 17 коры кошки // Морфология. 2003.-Т.123.- N 2.- С. 20−23. .
  6. Я., Бурешова О., Хьюстон Дж.П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения //М: Высшая школа. 1991. 400 с.
  7. С. Медико-биологическая статистика // М.: Практика, 1998. 459 с.
  8. В.Д. Зрение и мышление // Л: Наука. 1985. 246 с.
  9. Н.Н. Нейрофизиологические механизмы нарушения зрительного восприятия у детей и подростков // М.: Педагогика, 1987. 234 с.
  10. Ю.Илюшов Г. С., Ляховецкий В. А., Алексеенко С. В. Кластерный анализ распределения нейронных связей в зрительной коре // В сб.: Биотехнические системы в медицине и биологии. Из-во Политехника, Санкт-Петербург, 2002. с. 78−82.
  11. Н.Кропман И. Л. Физиология бинокулярного зрения и расстройства его при содружественном косоглазии // Л.: Медицина. 1966. 206 с.
  12. Ф.Н. Исследование связей нервной системы с помощью аксонального транспорта пероксидазы хрена // Арх.анат., гист. и эмбриол. 1979. -Т. 77.- N 9.- С.108−115.
  13. В. Организующий принцип функций мозга элементарный модуль и распределительная система // Разумный мозг. М.: Мир, 1981, с.15−67.
  14. А.А. Системная организация зрительных функций // М.: Наука. 1988. 200 с.
  15. Н.Ф., Макаров Ф. Н., Шелепин Ю. Е. Элементы структурно-функциональной организации зрительно-глазодвигательной системы // JI: Наука. 1986. 252с.
  16. Г. И. Бинокулярное зрение // Физиология зрения, М.: Наука, ред. Бызов АЛ. Глава XI.- Р. 586 — 665.
  17. С.Н., Алексеенко С. В., Макаров Ф. Н. Пространственное распределение горизонтальных связей в поле 18 коры мозга кошки // Морфология. 2000. — Т.117. — С.13−16.
  18. Д. Глаз, мозг, зрение // М.: Мир. 1990. 239 с.
  19. Albus К., Wolf W. Early post-natal development of neuronal function in the kitten’s visual cortex: a laminar analysis // J. Physiol. 1984. — Vol. 348.- P. 153−185.
  20. Alexeenko S.V., Toporova S.N., Makarov F.N. Spatial distribution of neuronal connections between areas 17 and 18 in the cat’s cortex // Georgian Journal of neurosciences. 2001. — Vol.1. — N1. — P. 59−64.
  21. Alonso J.M., Cudeiro J., Perez R., Gonzalez F., Acuna C. Orientational influences of layer V of visual area 18 upon cells in layer V of area 17 in the cat cortex // Exp. Brain Res. 1993. — Vol. 96.- P.212−220.
  22. Antonini A., Stryker M. P. Plasticity of geniculocortical afferents following brief or prolonged monocular occlusion in the cat // J. Comp Neurol. 1996. — Vol. 369.-P.64−82.
  23. Barrett B.T., Bradley A., McGraw P. V. Understanding the neural basis of amblyopia // Neuroscientist. 2004. — Vol. 10.- P. 106−117.
  24. Bear M.F., Singer W. Modulation of visual cortical plasticity by acetylcholine and noradrenaline // Nature. 1986. — Vol. 320.- P. 172−176.
  25. Bear M.F., Colman H. Binocular competition in the control of geniculate cell size depends upon visual cortical N-methyl-D-aspartate receptor activation // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1990. — Vol. 87.- P.9246−9249.
  26. Bear M.F., Connors B.W., Paradiso M.A. Neurosicence: exploring the brain. Lippincott Williams & Wilkins, 2001. 2nd ed.
  27. Beaulieu C., Dyck R., Cynader M. Enrichment of glutamate in zinc-containing terminals of the cat visual cortex// Neuroreport. 1992. — Vol. 3.- P.861−864.
  28. Bennett M.J., Smith E. L., Ill, Harwerth R. S., Crawford M. L. Ocular dominance, eye alignment and visual acuity in kittens reared with an optically induced squint // Brain Res. 1980. — Vol. 193.- P.33.-45.
  29. Berlucchi G., Gazzaniga M. S., Rizzolatti G. Microelectrode analysis of. transfer of visual information by the corpus callosum // Arch. Ital. Biol. 1967. — Vol. 105.-P.583−596. :
  30. Berlucchi G., Rizzolatti G. Binocularly driven neurons in visual cortex of split-chiasm cats // Science. 1968. — Vol. 159.- P.308−310.
  31. Berman N.E., Payne B. R. Alterations in connections of the corpus callosum following convergent and divergent strabismus // Brain Res. 1983. — Vol. 274.-P.201−212.
  32. Birch E.E., Stager D. R. Monocular acuity and stereopsis in infantile esotropia // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 1985. — Vol. 26.- P. 1624−1630.
  33. Birch E.E., Stager D. R., Berry P., Everett M. E. Prospective assessment of acuity and stereopsis in amblyopic infantile esotropes following early surgery // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 1990. — Vol. 31.- P.758−765.
  34. Bisti S., Carmignoto G. Monocular deprivation in kittens differently affects crossed and uncrossed visual pathways // Vision Res. 1986. — Vol. 26.- P.875−884.
  35. Blakemore C. The representation of three-dimensional visual space in the cat’s striate cortex// J. Physiol. 1970. — Vol. 209.- P.155−178.
  36. Blakemore C., Fiorentini A., Maffei L. A second neural mechanism of binocular depth discrimination // J. Physiol. 1972. — Vol. 226, — P.725−749.
  37. Blakemore C., Van Sluyters R. C. Innate and environmental factors in the development of the kitten’s visual cortex // J. Physiol. 1975. — Vol. 248.- P.663−716.
  38. Bolz J., Gilbert C. D. The Role of Horizontal Connections in Generating Long Receptive Fields in the Cat Visual Cortex // Eur. J. Neurosci. 1989. — Vol. 1,-P.263−268.
  39. Bonhoeffer Т., Grinvald A. Iso-orientation domains in cat visual cortex are arranged in pinwheel-like patterns // Nature. 1991. — Vol. 353.- P.429−431
  40. Bonds A.B., Enroth-Cugell C. Recovery of cat retinal ganglion cell sensitivity following pigment bleaching// J. Physiol. 1979. — Vol. 295.- P.47−68.
  41. Bourdet C., Olavarria J. F., Van Sluyters R. C. Distribution of visual callosal neurons in normal and strabismic cats // J. Comp Neurol. 1996. — Vol. 366, — P.259−269.
  42. Boyd J., Matsubara J. Tangential organization of callosal connectivity in the cat’s visual cortex // J. Comp Neurol. 1994. — Vol. 347.- P.197−210.
  43. Boyd J.D., Matsubara J. A. Laminar and columnar patterns of geniculocortical projections in the cat: relationship to cytochrome oxidase // J. Comp Neurol. 1996. — Vol. 365.-P.659−682.
  44. Bremer F. Response of visual area to callosal impulses in the cat // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1955. — Vol. 90.- P.22−25.
  45. Bruce С.J., Isley M. R., Shinkman P. G. Visual experience and development of interocular orientation disparity in visual cortex // J. Neurophysiol. 1981. — Vol. 46.- P.215−228.
  46. Budd J.M., Kisvarday Z. F. Local lateral connectivity of inhibitory clutch cells in layer 4 of cat visual cortex (area 17) // Exp. Brain Res. 2001. — Vol. 140.- P.245−250.
  47. Callaway E.M., Katz L. C. Emergence and refinement of clustered horizontal connections in cat striate cortex // J. Neurosci. 1990. — Vol. 10.- P. 1134−1153.
  48. Campbell F.W., Cooper G. F., Enroth-Cugell C. The spatial selectivity of the visual cells of the cat// J. Physiol. 1969. — Vol. 203.- P.223−235.
  49. Casanova C., Michaud Y., Morin C., McKinley P. A., Molotchnikoff S. Visual responsiveness and direction selectivity of cells in area 18 during local reversible inactivation of area 17 in cats // Vis. Neurosci. 1992. — Vol. 9.- P.581−593.
  50. Chapman В., Godecke I., Bonhoeffer T. Development of orientation preference in the mammalian visual cortex// J. Neurobiol. 1999. — Vol. 41.- P. 18−24.
  51. Chang Т. H., Cheng Т.Н. An analysis of fiber constitution of optic tract of cat // Scientia sinica. 1961. -Vol.10. -P. 538−550.
  52. Chino Y.M., Shansky M. S., Jankowski W. L., Banser F. A. Effects of rearing kittens with convergent strabismus on development of receptive-field properties in striate cortex neurons // J. Neurophysiol. 1983. — Vol. 50.- P.265−286.
  53. Chino Y.M., Cheng H., Smith III E.L., Garragnty P.E., Roe A.W.Early discordant binocular vision signals transfer in the lateral geniculate nucleus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. — Vol.91. -P. 6938−6942.
  54. Cleland B.G., Crewther D. P., Crewthcr S. G., Mitchell D. E. Normality of spatial resolution of retinal ganglion cells in cats with strabismic amblyopia // J. Physiol. -1982. Vol. 326, — P.235−249.
  55. Crair M.C., Ruthazer E.S., Gillespie D.C., Stryker M.P. Ocular dominance peaks at pinwheel center singularities of the orientation map in cat visual cortex // J. Neurophysiol. 1997. — Vol.77. — P.3381−3385.
  56. Crair M.C., Gillespie D. C., Stryker M. P. The role of visual experience in the development of columns in cat visual cortex // Science. 1998. — Vol. 279.- P.566−570.
  57. Crair M.C., Horton J. C., Antonini A., Stryker M. P. Emergence of ocular dominance columns in cat visual cortex by 2 weeks of age // J. Comp Neurol. 2001. — Vol. 430.- P.235−249.
  58. Creutzfeldt O.D., Garey L. J., Kuroda R., Wolff J. R. The distribution of degenerating axons after small lesions in the intact and isolated visual cortex of the cat // Exp. Brain Res. 1977. — Vol. 27.- P.419−440.
  59. Crewther S.G., Crewther D. P., Peck С. K., Pettigrew J. D. Visual cortical effects of rearing cats with monocular or binocular cyclotorsion // J. Neurophysiol. 1980. -Vol. 44.- P.97−118.
  60. Cynader M, Timney B.N., Mitchell D.E. Period of susceptibility of kitten visual cortex to the effects of monocular deprivation extends beyond six months of age // Brain Res.- 1980. Vol.191. — N 2. — P.545−550.
  61. Daw N.W., Fox K., Sato H., Czepita D. Critical period for monocular deprivation in the cat visual cortex // J. Neurophysiol. 1992. — Vol. 67.- P.197−202.
  62. DawN.W. Visual development//Springer. 2005.
  63. Derrington A.M., Fuchs A. F. The development of spatial-frequency selectivity in kitten striate cortex// J. Physiol. 1981. — Vol. 316.- P. 1−10.
  64. Dews P.B., Wiesel T. N. Consequences of monocular deprivation on visual behaviour in kittens // J. Physiol. 1970. — Vol. 206.- P.437−455.
  65. Diao Y.C., Jia W. G., Swindale N. V., Cynader M. S. Functional organization of the Cortical 17/18 border region in the cat // Exp. Brain Res. 1990. — Vol. 19- P.271−282.
  66. Donaldson I.M., Nash J. R. Variability of the relative preference for stimulus orientation and direction of movement in some units of the cat visual cortex (areas 17 and 18) // J. Physiol. 1975. — Vol. 245.- P.305−324.
  67. Dreher В., Cottee L. J. Visual receptive-field properties of cells in area 18 of cat’s cerebral cortex before and after acute lesions in area 17 // J. Neurophysiol. 1975. -Vol. 38, — P.735−750.
  68. Dreher В., Leventhal A. G., Hale P. T. Geniculate input to cat visual cortex: a comparison of area 19 with areas 17 and 18 // J. Neurophysiol. 1980. — Vol. 44.-P.804−826.
  69. Dyck R.H., Cynader M. S. Autoradiographic localization of serotonin receptor subtypes in cat visual cortex: transient regional, laminar, and columnar distributions during postnatal development // J. Neurosci. 1993a. — Vol. 13.- P.4316−4338.
  70. Dyck R.IT., Cynader M. S. An interdigitated columnar mosaic of cytochrome oxidase, zinc, and neurotransmitter-related molecules in cat and monkey visual cortex// Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 19 936. — Vol. 90.- P.9066−9069.
  71. Eysel U.T. Late effects of deafferentation and signs of plasticity in the lateral geniculate nucleus of the adult cat after monocular lesions of the retina // Arch. Ital. Biol. 1978. — Vol. 116.- P.309−317.
  72. Eysel U.T., Muche Т., Worgotter F. Lateral interactions at direction-selectivc striate neurones in the cat demonstrated by local cortical inactivation // J. Physiol. 1988. -Vol. 399.- P.657−675.
  73. Eysel U.T., Crook J. M., Machemer H. F. GABA-induced remote inactivation reveals cross-orientation inhibition in the cat striate cortex // Exp. Brain Res. 1990. — Vol. 80.- P.626−630.
  74. Ferrer J.M., Kato N., Price D. J. Organization of association projections from area 17 to areas 18 and 19 and to suprasylvian areas in the cat’s visual cortex // J. Comp Neurol. 1992. — Vol. 316.- P.261−278.
  75. Fisken R.A., Garey L. J., Powell T. P. The intrinsic, association and commissural connections of area 17 on the visual cortex // Philos. Trans. R. Soc. Lond В Biol. Sci. 1975. — Vol. 272.- P.487−536.
  76. Freedman R., Foote S. L., Bloom F. E. Histochemical characterization of a neocortical projection of the nucleus locus coeruleus in the squirrel monkey // J. Comp Neurol. 1975. — Vol. 164.- P.209−231.
  77. Freeman D.N., Marg E. Visual acuity development coincides with the sensitive period in kittens // Nature. 1975. — Vol. 254, — P.614−615.
  78. Freeman R.D., Sclar G., Ohzawa I. Cortical binocularity is disrupted by strabismus more slowly than by monocular deprivation // Brain Res. 1982. — Vol. 255, — P.311−316.
  79. Fregnac Y., Imbert M. Development of neuronal selectivity in primary visual cortex of cat// Physiol Rev. 1984. — Vol. 64.- P.325−434.
  80. Gabbott P.L., Martin K. A., Whitteridge D. Connections between pyramidal neurons in layer 5 of cat visual cortex (area 17) // J. Comp Neurol. 1987. — Vol. 259, — P.364−381.
  81. Galuske R.A., Singer W. The origin and topography of long-range intrinsic projections in cat visual cortex: a developmental study // Cereb. Cortex. 1996. -Vol. 6.-P.417−430.
  82. Garey L.J. The termination of thalamocortical fibres in the visual cortex of the cat and monkey // J. Physiol. 1970. — Vol. 210, — P.15P-17P.
  83. Garey L.J. A light and electron microscopic study of the visual cortex of the cat and monkey // Proc. R. Soc. Lond В Biol. Sci. 1971. — Vol. 179.- P.21−40.
  84. Garey L.J., Powell T. P. An experimental study of the termination of the lateral geniculo-cortical pathway in the cat and monkey // Proc. R. Soc. Lond В Biol. Sci. -1−971.- Vol. 179.- P.41−63.
  85. Garraghty P.E., Besheer J., Salinger W. L. Cell size in the lateral geniculate nucleus of cats reared with esotropia and sagittal transection of the optic chiasm // Brain Res. Dev. Brain Res. -1997. Vol. 100.- P.127−129.
  86. Gilbert C.D., Kelly J. P. The projections of cells in different layers of the cat’s visual cortex// J. Comp Neurol. 1975. — Vol. 163.- P.81−105.
  87. Gilbert C.D., Wiesel Т. N. Morphology and intracortical projections of functionally characterised neurones in the cat visual cortex // Nature. 1979. — Vol. 280.- P.120−125.
  88. Gilbert C.D., Wiesel T.N. Laminar specialization and intracortical connection in cat primary visual cortex // In The organization of the Cerebral Cortex: Eds. Schmitt F.J.G, W. G Adelman and Dennies S.G. 1981, — MIT, Cambridge, MA. P. 163−194
  89. Gilbert C.D., Wiesel T. N. Clustered intrinsic connections in cat visual cortex // J. Neurosci. 1983. — Vol. 3.- P. l 116−1133.
  90. Gilbert C.D. Microcircuitry of the visual cortex // Annu. Rev. Neurosci. 1983. -Vol. 6.-P.217−247.
  91. Gilbert C.D., Wiesel T. N. Columnar specificity of intrinsic horizontal and corticocortical connections in cat visual cortex // J. Neurosci. 1989. — Vol. 9.-P.2432−2442.
  92. Godecke I., Kim D. S., Bonhoeffer Т., Singer W. Development of orientation preference maps in area 18 of kitten visual cortex // Eur. J. Neurosci. 1997. — Vol. 9.- P.1754−1762.
  93. Goldman-Rakic P. S. Neuronal development and plasticity of association cortex in primates // Neurosci. Res. Program. Bull. 1982. — Vol. 20.- P.520−532.
  94. Gordon В., Mitchell В., Mohtadi K., Roth E., Tseng Y., Turk F. Lesions of nonvisual inputs affect plasticity, norepinephrine content, and acetylcholine content of visual cortex// J. Neurophysiol. 1990. — Vol. 64.-P. 1851−1860.
  95. Guillery R.W., Stelzner D. J. The «differential effects of unilateral lid closure upon the monocular and binocular segments of the dorsal lateral geniculate nucleus in the cat // J-. Comp Neurol. 1970. — Vol. 139.- P.413−421.
  96. Guillery R.W. Experiments to determine whether retinogeniculate axons can form translaminar collateral sprouts in the dorsal lateral geniculate nucleus of the cat // J. Comp Neurol. 1972. — Vol. 146.- P.407−420. .
  97. Guillery R.W., Geisert E. E., Jr., Polley E. H., Mason C. A. An analysis of the retinal afferents to the cat’s medial interlaminar nucleus and to its rostral thalamic extension, the «geniculate wing» // J. Comp Neurol. 1980. — Vol. 194.- P. l 17−142.
  98. Harvey A.R. The afferent connexions and laminar distribution of cells in area 18 of the cat// J. Physiol. 1980. — Vol. 302.- P.483−505.
  99. Henry G.H., Salin P. A., Bullier J. Projections from Areas 18 and 19 to Cat Striate Cortex: Divergence and Laminar Specificity // Eur. J. Neurosci. 1991. — Vol. 3.-P. 186−200.
  100. Hess R.F., Dakin S.C., Tewfik M., Brown B. Contour interaction in amblyopia: scale selection // Vision Res.- 2001. Vol. 41.- P.2285−2296.
  101. Hensh Т.К., Stryker M.P. Columnar architecture sculpted by GABA circuits in developing cat visual cortex // Science. 2004. — Vol. 303. — P. 1678- 1688.
  102. Hensh Т.К. Critical period plasticity in local cortical circuits // Nature Rewiews. Neuroscience. 2005.- Vol.6. N 11.-P. 877−888.
  103. Hickey T.L., Guillery R. W. An autoradiographic study of retinogeniculate pathways in the cat and the fox // J. Comp Neurol. 1974. — Vol. 156.- P.239−253.
  104. Hickey T.L. Development of the dorsal lateral geniculate nucleus in normal and visually deprived cats // J. Comp Neurol. 1980. — Vol. 189, — P.467−481.
  105. Hollander H., Vanegas H. The projection from the lateral geniculate nucleus onto the visual cortex in the cat. A quantitative study with horseradish-peroxidase // J. Comp Neurol. 1977. — Vol. 173.- P.519−536.
  106. Holopigian K., Blake R. Spatial vision in strabismic cats // J. Neurophysiol. -1983.- Vol. 50, — P.287−296.
  107. Horton J.C. Cytochrome oxidase patches: a new cytoarchitectonic feature of monkey visual cortex // Philos. Trans. R. Soc. Lond В Biol. Sci. 1984. — Vol. 304.-P.199−253.
  108. Houzel J.C., Milleret C., Innocenti G. Morphology of callosal axons interconnecting areas 17 and 18 of the cat // Eur. J. Neurosci. 1994. — Vol. 6.-P.898−917.
  109. Houzel J.C., Milleret C. Visual inter-hemispheric processing: constraints and potentialities set by axonal morphology // J. Physiol Paris. 1999. — Vol. 93.- P.271−284.
  110. Hubel D.H., Wiesel T. N. Receptive fields of single neurones in the cat’s striate cortex // J. Physiol. 1959. — Vol. 148, — P.574−591.
  111. Hubel D.H., Wiesel T. N. Receptive fields, binocular interaction and functional architecture in the cat’s visual cortex // J. Physiol. 1962. — Vol. 160.-P.106−154.
  112. Hubel D.H., Wiesel T. N. Shape and arrangement of columns in cat’s striate cortex // J. Physiol. 1963a. — Vol. 165.- P.559−568.
  113. Hubel D.H., Wiesel T. N. Receptive fields of cells in striate cortex of very young, visually inexperienced kittens // J. Neurophysiol. 19 636. — Vol. 26.- P.994−1002.
  114. D.H., Wiesel T. 'N. Receptive fields and functional architecture in two nonstriate visual areas (18 and 19) of the cat // J. Neurophysiol. 1965a. — Vol. 28.-P.229−289.
  115. Hubel D.H., Wiesel T. N. Binocular interaction in striate cortex of kittens reared with artificial squint// J. Neurophysiol. 19 656. — Vol. 28.- P. 1041−1059.
  116. Hubel D.H., Wiesel T. N. Cortical and callosal connections concerned with the vertical meridian of visual fields in the cat // J. Neurophysiol. 1967. — Vol. 30.-P.1561−1573.
  117. Hubel D.H., Wiesel T. N. Anatomical demonstration of columns in the monkey striate cortex// Nature. 1969. — Vol. 221.- P.747−750.
  118. Hubel D.H., Wiesel T. N. The period of susceptibility to the physiological effects of unilateral eye closure in kittens // J. Physiol. 1970. — Vol. 206.- P.419−436.
  119. Hubel D.H., Wiesel T.N. Brain and visual perception // University Press. New York, Oxford. 2005.
  120. Hubel D.H., Wiesel T. N., LeVay S. Plasticity of ocular dominance columns in monkey striate cortex // Philos. Trans. R. Soc. Lond В Biol. Sci. 1977. — Vol. 278.- P.377−409.
  121. Hubener M., Shoham D., Grinvald A., Bonhoeffer T. Spatial relationships among three columnar systems in cat area 17 // J. Neurosci. 1997. — Vol. 17.-P.9270−9284.
  122. Hughes C.P., Chi D. Y. Afferent projections to the ventral lateral geniculate nucleus in the cat// Brain Res. -1981. Vol. 207.- P.445−448.
  123. Huttenlocher P.R. Development of cortical neuronal activity in the neonatal cat // Exp. Neurol. 1967. — Vol. 17.- P.247−262.
  124. H., Plant G. Т., Tremain К. E. Nasal field loss in kittens reared with convergent squint: neurophysiological and morphological studies of the lateral geniculate nucleus // J. Physiol. 1977. — Vol. 270, — P.345−366.
  125. Ikeda H., Tremain К. E. The development of spatial resolving power of lateral geniculate neurones in kittens // Exp. Brain Res.'- 1978. Vol. 31.- P.193−206.
  126. Ikeda H., Tremain К. E. Amblyopia resulting from penalisation: neurophysiological studies of kittens reared with atropinisation of one or both eyes // Br. J. Ophthalmol. 1978. — Vol. 62.- P.21−28.
  127. Ikeda H., Tremain К. E. Amblyopia occurs in retinal ganglion cells in cats reared with convergent squint without alternating fixation // Exp. Brain Res. 1979. — Vol. 35.-P.559−582.
  128. Ikeda H., Sheardown M. J. Aspartate may be an excitatory transmitter mediating visual excitation of «sustained» but not «transient» cells in the cat retina: iontophoretic studies in vivo // Neuroscience. 1982. — Vol. 7.- P.25−36.
  129. Innocenti G.M., Fiore L., Camintiti R. Exuberant projection into the corpus callosum from the visual cortex of newborn cats //Neurosci. Lett. 1977. — Vol. 4. -P. 237−242.
  130. Innocenti G.M. Adult and neonatal characteristics of the callosal zone at the boundary between areas 17 and 18 in the cat // Structure and function of cerebral comissures. London, 1979. Part 19.
  131. Innocenti G.M., Frost D. O. Effects of visual experience on the maturation of the efferent system to the corpus callosum // Nature. 1979. — Vol. 280.- P.231−234.
  132. Innocenti G.M., Clarke S. The organization of immature callosal connections // J. Comp Neurol. 1984a. — Vol. 230.- P.287−309.
  133. Innocenti G.M., Clarke S. Bilateral transitory projection to visual areas from auditory cortex in kittens // Brain Res. 19 846. — Vol. 316.- P.143−148.
  134. Innocenti G.M., Frost D. O., Illes J. Maturation of visual callosal connections in visually deprived kittens: a challenging critical period // J. Neurosci. 1985. — Vol. 5.-P.255−267.
  135. Innocenti G.M., Clarke S., Kraftsik R. Interchange of callosal and association projections in the developing visual cortex // J. Neurosci. 1986. — Vol. 6.- P. 13 841 409.
  136. Innocenti G.M., Lehmann P., Houzel J. C. Computational structure of visual callosal axons // Eur. J. Neurosci. 1994. — Vol. 6, — P.918−935.
  137. Isley M.R., Rogers-Ramachandran D. C., Shinkman P. G. Interocular torsional disparity and visual cortical development in the cat // J. Neurophysiol. 1990. — Vol. 64.-P.1352−1360.
  138. Jones E.G., Leavitt R. Y. Retrograde axonal transport and the demonstration of non-specific projections to the cerebral cortex and striatum from thalamic intralaminar nuclei in the rat, eat and monkey // J. Comp Neurol. 1974. — Vol. 154.-P.349−377.
  139. Jones K.R., Kalil R. E., Spear P. D. Effects of strabismus on responsivity, spatial resolution, and contrast sensitivity of cat lateral geniculate neurons // J. Neurophysiol. 1984. — Vol. 52, — P.538−552.
  140. Kaas J.H., Jain N. Neural plasticity // In: Wong-Riley M.T.T. (ed.) Neuroscience secrets. Hanley & Belfus, Inc., Philadelphia, 2000, p. 258−278.
  141. Kalil R.E., Spear P. D., Langsetmo A. Response properties of striate cortex neurons in cats raised with divergent or convergent strabismus // J. Neurophysiol. -1984.-Vol. 52.- P.514−537.
  142. Kisvarday Z.F., Martin K. A., Freund T. F., Magloczky Z., Whitteridge D., Somogyi P. Synaptic targets of HRP-filled layer III pyramidal cells in the cat striate cortex // Exp. Brain Res. 1986. — Vol. 64, — P.541−552.
  143. Kisvarday Z.F., Kim D. S., Eysel U. Т., Bonhoeffer T. Relationship between lateral inhibitory connections and the topography of the orientation map in cat visual cortex// Eur. J. Neurosci. 1994. — Vol. 6.-P.1619−1632.
  144. Kisvarday Z.F., Toth E., Rausch M., Eysel U. T. Orientation-specific relationship between populations of excitatory and inhibitory lateral connections in the visual cortex of the cat // Cereb. Cortex. 1997. — Vol. 7.- P.605−618.
  145. Kleinschmidt A., Bear M. F., Singer W. Blockade of «NMDA» receptors disrupts experience-dependent plasticity of kitten striate cortex // Science. 1987. -Vol. 238.- P.355−358.
  146. Konig P., Engel A. K., Lowel S., Singer W. Squint affects synchronization of oscillatory responses in cat visual cortex // Eur. J. Neurosci. 1993. — Vol. 5.- P.501−508.
  147. Kozma P., Kiorpes L. Contour integration in amblyopic monkeys // Vis. Neurosci. 2003. — Vol. 20.- P.577−588.
  148. Lee C., Malpeli J. G., Schwark H. D., Weyand T. G. Cat medial interlaminar nucleus: retinotopy, relation to tapetum and implications for scotopic vision // J. Neurophysiol. 1984. — Vol. 52, — P.848−869.
  149. Lepore F., Guillemot J. P. Visual receptive field properties of cells innervated through the corpus callosum in the cat // Exp. Brain Res. 1982. — Vol. 46.- P.413−424.
  150. Lepore F., Samson A., Molotchnikoff S. Effects on binocular activation of cells in visual cortex of the cat following the transection of the optic tract // Exp. Brain Res. 1983. — Vol. 50.- P.392−396.
  151. Lepore F., Samson A., Paradis M. C., Ptito M., Guillemot J. P. Binocular interaction and disparity coding at the 17−18 border: contribution of the corpus callosum // Exp. Brain Res. 1992. — Vol. 90.- P.129−140.
  152. LeVay S., Gilbert C. D. Laminar patterns of geniculocortical projection in the cat // Brain Res. 1976. — Vol. 113.- P. 1−19.
  153. LeVay S., Stryker M.N., Shatz C.J. Ocular dominance columns and their development in layer IV of the cat’s visual cortex: A quantitative study // J. Comp. Neurol. 1978.- Vol.179. — P. 233−241
  154. LeVay S. Patchy intrinsic projections in visual cortex, area 18, of the cat: morphological and immunocytochemical evidence for an excitatory function // J. Comp Neurol. 1988. — Vol. 269, — P.265−274.
  155. Levitt F.B., Van Sluyters R. C. The sensitive period for strabismus in the kitten // Brain Res. 1982. — Vol. 255, — P.323−327.
  156. Lowel S., Singer W. The pattern of ocular dominance columns in flat-mounts of the cat visual cortex// Exp. Brain Res. 1987. — Vol. 68, — P.661−666.
  157. Lowel S., Singer W. Selection of intrinsic horizontal connections in the visual cortex by correlated neuronal activity // Science. 1992. — Vol. 255.- P.209−212
  158. Lowel S. Ocular dominance column development: strabismus changes the spacing of adjacent columns in cat visual cortex // J. Neurosci. 1994. — Vol. 14.-P.7451−7468.
  159. Luhmann H.J., Martinez M. L., Singer W. Development of horizontal intrinsic connections in cat striate cortex // Exp. Brain Res. 1986. — Vol. 63, — P.443−448.
  160. Luhmann H.J., Singer W., Martinez-Millan L. Horizontal Interactions in Cat Striate Cortex: I. Anatomical Substrate and Postnatal Development // Eur. J. Neurosci. 1990a. — Vol. 2, — P.344−357.
  161. Luhmann H.J., Greuel J. M., Singer W. Horizontal Interactions in Cat Striate Cortex: III. Ectopic Receptive Fields and Transient Exuberance of Tangential Interactions // Eur. J. Neurosci. 19 906. — Vol. 2.- P.369−377.
  162. Lund R.D., Mitchell D. E., Henry G. H. Squint-induced modification of callosal connection in cats // Brain Res. 1978. — Vol. 144.- P.169−172.
  163. Lund R.D., Mitchell D. E. Asymmetry in the visual callosal connections of strabismic cats // Brain Res. 1979. — Vol. 167, — P. 176−179.
  164. Maffei L., Bisti S. Binocular interaction in strabismic kittens deprived of Vision// Science. 1976. — Vol. 191.- P.579−580.
  165. Malach R. Cortical columns as devices for maximizing neuronal diversity // Trends Neurosci. 1994.-Vol. 17.-P. 101−104.
  166. Mangel S.C., Wilson J. R., Sherman S. M. Development of neuronal response properties in the cat dorsal lateral geniculate nucleus during monocular deprivation // J. Neurophysiol. 1983. — Vol. 50.- P.240−264.
  167. Martin K.A., Somogyi P., Whitteridge D. Physiological and morphological properties of identified basket cells in the cat’s visual cortex // Exp. Brain Res. -1983. -Vol. 50.- P.193−200.
  168. Martin K.A., Whitteridge D. Form, function and intracortical projections of spiny neurones in the striate visual cortex of the cat // J. Physiol. 1984. — Vol. 353.-P.463−504.
  169. Martinez-Conde S., Cudeiro J., Grieve K. L., Rodriguez R., Rivadulla C., Acuna C. Effects of feedback projections from area 18 layers 2/3 to area 17 layers 2/3 in the cat visual cortex // J. Neurophysiol. 1999. — Vol. 82.- P.2667−2675.
  170. Matsubara J., Cynader M., Swindale N. V., Stryker M. P. Intrinsic projections within visual cortex: evidence for orientation-specific local connections // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1985. — Vol. 82, — P.935−939.
  171. Matsubara J.A., Cynader M. S., Swindale N. V. Anatomical properties and physiological correlates of the intrinsic connections in cat area 18 // J. Neurosci. -1987.- Vol.7.- P.1428−1446.
  172. Matsuda Y., Ohki K., Saito Т., Ajima A., Kim D. S. Coincidence of ipsilateral ocular dominance peaks with orientation pinwheel centers in cat visual cortex // Neuroreport. 2000. — Vol. 11.- P.3337−3343.
  173. McGuire B.A., Hornung J. P., Gilbert C. D., Wiesel T. N. Patterns of synaptic input to layer 4 of cat striate cortex // J. Neurosci. 1984. — Vol. 4.- P.3021−3033.
  174. Mesulam M.-M. Principles of horseradish peroxidase neurohistochemistry and their applications for tracing neural pathways //'In: Tracing neural connections with HRP, ed. M.-M. Mesulam. IBRO Press, Wiley. 1982. p. 1−151
  175. Meyer G., Albus K. Spiny stellates as cells of origin of association fibres from area 17 to area 18 in the cat’s neocortex // Brain Res. 1981. — Vol. 210.- P.335−341.
  176. J.W., Buschmann M. В., Benevento L. A. Extrageniculate thalamic projections to the primary visual cortex // Brain Res. 1980. — Vol. 189.- P.221−227.
  177. С., Houzel J. С., Buser P. Pattern of development of the callosal transfer of visual information to cortical areas 17 and 18 in the cat // Eur. J. Neurosci. 1994. — Vol. 6.- P.193−202.
  178. Milleret C., Houzel J. C. Visual interhemispheric transfer to areas 17 and 18 in cats with convergent strabismus // Eur. J. Neurosci. 2001. — Vol. 13.- P.137−152.
  179. Mitchell D.E., MacKinnon S. The present and potential impact of research on animal model for clinical treatment of stimulus deprivation amblyopia // Clin. Exp. Optom. 2002. — Vol. 85.-N l.-P. 5−18.
  180. Mitchison G., Crick F. Long axons within the striate cortex: their distribution, orientation, and patterns of connection // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1982. -Vol. 79.- P.3661−3665.
  181. Movshon J.A., Thompson I. D., Tolhurst D. J. Spatial and temporal contrast sensitivity of neurones in areas 17 and 18 of the cat’s visual cortex // J. Physiol. -1978.-Vol. 283.-P.101−120.
  182. Movshon J.A., Van Sluyters R. C. Visual neural development // Annu. Rev. Psychol. 1981. — Vol. 32, — P.477−522.
  183. Mower G., Gibson A., Robinson F., Stein J., Glickstein M. Visual pontocerebellar projections in the cat // J. Neurophysiol. 1980. — Vol. 43.- P.355−366.
  184. Mower G.D., Burchfiel J. L., Duffy F. H. Animal models of strabismic amblyopia: physiological studies of visual cortex and the lateral geniculate nucleus // Brain Res. 1982. — Vol. 281.-P.311−327.
  185. Mower G.D., Duffy F. H. Animal models of strabismic amblyopia: comparative behavioral studies // Behav. Brain Res. 1983. — Vol. 7.- P.239−251.
  186. Mower G.D. The effect of dark rearing on the time course of the critical period in cat visual cortex // Brain Res. Dev. Brain Res. 1991. — Vol. 58.- P. 151 158.
  187. Mower G.D. The. relationship between relative eye usage and ocular // Brain Res.Dev.Brain Res. 2005. — Vol. 154, — P.147−151.
  188. Murphy K.M., Jones D. G., Van Sluyters R. C. Cytochrome-oxidase blobs in cat primary visual cortex// J. Neurosci. 1995. — Vol. 15.- P.4196−4208.
  189. Murphy K.M., Trepel C., Pegado V. D. Non-uniform distribution of the NMDARl receptor subunit in kitten visual cortex at the peak of the critical period // Mol. Vis. 1996. — Vol. 2, — P.9.
  190. Murphy K.M., Duffy K. R., Jones D. G., Mitchell D. E. Development of cytochrome oxidase blobs in visual cortex of normal and visually deprived cats // Cereb. Cortex. 2001. — Vol. 11.- P. 122−135.
  191. Norcia A.M., Garcia H., Humphry R., Holmes A., Hamer R. D., Orel-Bixler D. Anomalous motion VEPs in infants and in infantile esotropia // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 1991. — Vol. 32.- P.436−439.
  192. O’Leary J.L. Structure of the area striata of the cat // J. Comp. Neurol. 1941. -Vol. 75. -N.l.-P. 131−164.
  193. Olavarria J.F. The effect of visual deprivation on the number of callosal cells in the cat is less pronounced in extrastriate cortex than in the 17/18 border region // Neurosci. Lett. 1995. — Vol. 195.- P.147−150.
  194. Olavarria J.F. Non-mirror-symmetric patterns of callosal linkages in areas 17 and 18 in cat visual cortex,// J. Comp Neurol. 1996. — Vol. 366.- P.643−655.
  195. Olavarria J.F. Callosal connections correlate preferentially with ipsilateral cortical domains in cat areas 17 and 18, and with contralateral domains in the 17/18 transition zone // J. Comp Neurol. 2001. — Vol. 433.- P.441−457.
  196. Olson C.R., Freeman R. D. Eye alignment in kittens // J. Neurophysiol. -1978. Vol. 41.- P.848−859.
  197. Orban G.A., Kennedy H., Maes H. Response to movement of neurons in areas 17 and 18 of the cat: velocity sensitivity // J. Neurophysiol. 1981. — Vol. 45.-P.1043−1058.
  198. Orban G.A. Neuronal operations in the visual cortex // Berlin. Springer-Verlag. 1984.367 p.
  199. Otsuka R., Hassler R. On the structure and segmentation of the cortical center of vision in the cat. // Arch. Psychiatr. Nervenkr. Z. Gesamte Neurol. Psychiatr. -1962.-Vol. 203.- P.212−234.
  200. Palmer L.A., Rosenquist A. C. Visual receptive fields of single striate corical units projecting to the superior colliculus in the cat // Brain Res. 1974. — Vol. 67,-P.27−42.
  201. Payne B.R., Elberger A. J., Berman N., Murphy E. H. Binocularity in the cat visual cortex is reduced by sectioning the corpus callosum // Science. 1980. — Vol. 207, — P.1097−1099.
  202. Payne B.R. Representation of the ipsilateral visual field in the transition zone between areas 17 and 18 of the cat’s cerebral cortex // Vis. Neurosci. 1990. — Vol. 4. P.445−474.
  203. Payne B.R. Neuronal interactions in cat visual cortex mediated by the corpus callosum // Behav. Brain Res. 1994. — Vol. 64.- P.55−64.
  204. Pettigrew J.D. The effect of visual experience on the development of stimulus specificity by kitten cortical neurones // J. Physiol. 1974. — Vol. 237.- P.49−74.
  205. Podell M., Isley M. R., Shinkman P. G., Rogers D. C. Visual development: early experience with torsionally disparate images // Metab Pediatr. Syst. Ophthalmol. 1982. — Vol. 6.- P.273−283.
  206. Price D.J., Blakemore C. The postnatal development of the association projection from visual cortical area 17 to area 18 in the cat // J. Neurosci. 1985a. -Vol. 5.- P.2443−2452.
  207. Price D.J., Blakemore C. Regressive events in the postnatal development of association projections in the visual cortex // Nature. 19 856. — Vol. 316.- P.721−724.
  208. Price D.J. The postnatal development of clustered intrinsic connections in area 18 of the visual cortex in kittens // Brain Res. 1986. — Vol. 389.- P.31−38.
  209. Price D.J., Ferrer J. M., Blakemore C., Kato N. Postnatal development and plasticity of corticocortical projections from area 17 to area 18 in the cat’s visual cortex// J. Neurosci. 1994. — Vol. 14.- P.2747−2762.
  210. Rockland K.S., Pandya D. N. Cortical connections of the occipital lobe in the rhesus monkey: interconnections between areas 17, 18, 19 and the superior temporal sulcus // Brain Res. 1981. — Vol. 212.- P.249−270.
  211. Rockland K.S., Lund J. S. Widespread periodic intrinsic connections in the tree shrew visual cortex// Science. 1982. — Vol. 215.- P. 1532−1534.
  212. Rockland K.S., Lund J. S. Intrinsic laminar lattice connections in primate visual cortex// J. Comp Neurol. T 1983. Vol. 216.-P.303−318.
  213. Rubenstein R., Lohr K., Brook R., Goldberg G., Kamberg C. Measurement of physiological health for children // 1985. In «Vision impairments.- Vol.4. Santa Monica: Rand Corporation.
  214. Salin P.A., Girard P., Kennedy H.-, Bullier J. Visuotopic organization of corticocortical connections in the visual system of the cat // J. Comp Neurol. 1992. — Vol. 320.- P.415−434.
  215. Salin P.A., Bullier J. Corticocortical connections in the visual system: structure and function // Physiol Rev. 1995. — Vol. 75, — P.107−154.
  216. Sasaki Y., Cheng H., Smith E. L., Ill, Chino Y. Effects of early discordant binocular vision on the postnatal development of parvocellular neurons in the monkey lateral geniculate nucleus // Exp. Brain Res. 1998. — Vol. 118.- P.341−351.
  217. Schmidt K.E., Kim D. S., Singer W., Bonhoeffer Т., Lowel S. Functional specificity of long-range intrinsic and interhemispheric connections in the visual cortex of strabismic cats // J. Neurosci. 1997. — Vol. 17.- P.5480−5492.
  218. Schmidt K.E., Stephan M., Singer W., Lowel S. Spatial analysis of ocular dominance patterns in monocularly deprived cats // Cereb. Cortex. 2002. — Vol. 12.- P.783−796.
  219. Schoen S.W., Leutenecker В., Kreutzberg G. W., Singer W. Ocular dominance plasticity and developmental changes of 5'-nucleotidase distributions in the kitten visual cortex // J. Comp Neurol. 1990. — Vol. 296.- P.379−392.
  220. Schor C.M., Fusaro R. E., Wilson N., McKee S. P. Prediction of early-onset esotropia from components of the infantile squint syndrome // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 1997. — Vol. 38.- P.719−740.
  221. Schwarz C., Bolz J. Functional specificity of a long-range horizontal connection in cat visual cortex: a cross-correlation study // J. Neurosci. 1991. — Vol. 11.- P.2995−3007.
  222. Sestokas A.K., Lehmkuhle S. The effects of monocular deprivation on the visual latency of geniculate X- and Y-cells in the cat // Brain Res. 1986. — Vol. 395.- P.93−95.
  223. Shatz C.J., Lindstrom S., Wiesel T. N. The distribution of afferents representing the right and left eyes in the cat’s visual cortex // Brain Res. 1977. -Vol. 131.-P.103−116.
  224. Shatz C.J., Stryker M. P. Ocular dominance in layer IV of the cat’s visual cortex and the effects of monocular deprivation // J. Physiol. 1978. — Vol. 281.-P.267−283.
  225. Sherk H. Area 18 cell responses in cat during reversible inactivation of area 17 //J. Neurophysiol. 1978. — Vol. 41. -P.204−215.
  226. Sherman S.M. Development of interocular alignment in cats // Brain Res. -1972. Vol. 37.-P.187−203.
  227. Sherman S.M., Spear P. D. Organization of visual pathways in normal and visually deprived cats // Physiol Rev. 1982. — Vol. 62.- P.738−855.
  228. Shinkman P.G., Bruce C. J. Binocular differences in cortical receptive fields of kittens after rotationally disparate binocular experience // Science. 1977. — Vol. Г97.- P.285−287.
  229. Shinkman P.G., Timney В., Isley M. R. Binocular depth perception following early experience with interocular torsional disparity // Vis. Neurosci. 1992. — Vol. 9.- P.303−312.
  230. Shoham D., Hubener M., Schulze S., Grinvald A., Bonhoeffer T. Spatio-temporal frequency domains and their relation to cytochrome oxidase staining in cat visual cortex// Nature. 1997. — Vol. 385.- P.529−533.
  231. Sillito A.M. Inhibitory mechanisms influencing complex cell orientation selectivity and their modification at high resting discharge levels // J. Physiol. -1979.-Vol. 289,-P.33−53.
  232. Simmers A.J., Ledgeway Т., Hess R. F., McGraw P. V. Deficits to global motion processing in human amblyopia // Vision Res. 2003. — Vol. 43.- P.729−738.
  233. Singer W. The effect of monocular deprivation on cat parastriate cortex: asymmetry between crossed and uncrossed pathways // Brain Res. 1978. — Vol. 157.- P.351−355.
  234. Sireteanu R., Fronius M. Naso-temporal asymmetries in human amblyopia consequence of long-term interocular suppression // Vision Res. 1981. — Vol. 21.-P.1055−1063.
  235. Sireteanu R., Maurer D. The development of the kitten’s visual field // Vision Res. 1982. -Vol. 22.-P.l 105−1111.
  236. Spencer H.I., Lynch G., Jones R.K. Horseradish peroxidase labeling // In: Neuroanatomical research techniques, ed. Robertson R. T. As. Press, N.Y. 1978. № 4. p. 291−315.
  237. Stone J. A quantitative analysis of the distribution of ganglion cells in the cat’s retina// J. Comp Neurol. 1965. — Vol. 124, — P.337−352.
  238. Stone J. The naso-temporal division of the cat’s retina // J. Comp Neurol. -1966.-Vol. 126.- P.585−6'00.
  239. Stone J., Dreher B. Projection of X- and Y-cells of the cat’s lateral geniculate nucleus to areas 17 and 18 of visual cortex // J. Neurophysiol. 1973. — Vol. 36.-P.551−567.
  240. Sur M., Weller R. E., Sherman S. M. Development of X- and Y-cell retinogeniculate terminations in kittens // Nature. 1984. — Vol. 310.- P.246−249.
  241. Thompson I.D., Kossut M., Blakemore C. Development of orientation columns in cat striate cortex revealed by 2-deoxyglucose autoradiography // Nature. 1983.- Vol. 301, — P.712−715.
  242. Thorn F., Gollender M., Erickson P. The development of the kittens visual optics// Vision Res. 1976.-Vol. 16.-P.l 145−1149.
  243. Tieman S.B. The anatomy of geniculocortical connections in monocularly deprived cats // Cell Mol. Neurobiol. 1985. — Vol. 5, — P.35−45.
  244. Timney В., Peck С. K. Visual acuity in cats following surgically induced cyclotropia // Behav. Brain Res. 1981. — Vol. 3.- P.289−302.
  245. Tootle J.S., Friedlander M. J. Postnatal development of the spatial contrast sensitivity of X- and Y-cells in the kitten retinogeniculate pathway // J. Neurosci. -1989.-Vol. 9.- P.1325−1340.
  246. Toyama K., Takeda T. Proceedings: Analysis of neural tracts in the visual fields 18 and 19 of the cerebral cortex using electric and photic stimulation of the retina// Nippon SeirigakuZasshi. 1974. — Vol. 36.- P.286−287.
  247. Trachtenberg J.T., Trepel C., Stryker M. P. Rapid extragranular plasticity in the absence of thalamocortical plasticity in the developing primary visual cortex // Science. 2000. — Vol. 287, — P.2029−2032.
  248. Trachtenberg J.T., Stryker M. P. Rapid anatomical plasticity of horizontal connections in the developing visual cortex // J. Neurosci. 2001. — Vol. 21.- P.3476−3482.
  249. Tremain K.E., Ikeda H. Relationship between amblyopia, LGN cell «shrinkage» and cortical ocular dominance in cats // Exp. Brain Res. 1982. — Vol. 45.- P.243−252.
  250. Trepel C., Duffy K. R., Pegado V. D., Murphy К. M. Patchy distribution of NMDAR1 subunit immunoreactivity in developing visual cortex // J. Neurosci. -1998.- Vol. 18.-P.3404−3415.
  251. Tretter F., Cynander M., Singer W. Cat parastriate cortex: A primary or second visual area? // J. Neurophysiology. 1975. — Vol. 38. -N 5. — P. 1099 -1114.
  252. Ts’o D.Y., Gilbert C. D., Wiesel T. N. Relationships between horizontal interactions and functional architecture in cat striate cortex as revealed by cross-correlation analysis // J. Neurosci. 1986. — Vol. 6.- P. l 160−1170.
  253. Tusa R.J., Palmer L. A., Rosenquist A. C. The retinotopic organization of area17 (striate cortex) in the cat // J. Comp Neurol. 1978. — Vol. 177.- P.213−235.
  254. Tusa R.J., Rosenquist A. C., Palmer L. A. Retinotopic organization of areas18 and 19 in the cat// J. Comp Neurol. 1979. — Vol. 185.- P.657−678.
  255. Tusa R.J., Palmer L.A., Rosenquist A.C. Multiple cortical visual areas: Visual field topography in the cat // In: Cortical Sensory Organization, v.2. Multiple Visual Areas, ed.: Woolsey C.N. Humana Press, Clifton, NY, USA. 1981. P. 1−31.
  256. Tychsen L., Rastelli A., Steinman S., Steinman B. Biases of motion perception revealed by reversing gratings in humans who had infantile-onset strabismus // Dev. Med. Child Neurol. 1996. — Vol. 38.- P.408−422.
  257. Tychsen L., Wong A. M., Burkhalter A. Paucity of horizontal connections for binocular vision in VI of naturally strabismic macaques: Cytochrome oxidase compartment specificity // J. Comp Neurol. 2004. — Vol. 474.- P.261−275.
  258. Van Sluyters R.C., Levitt F. B. Experimental strabismus in the kitten // J. Neurophysiol. 1980. — Vol. 43.- P.686−699.
  259. Wiesel T.N., Hubel D. H. Single-cell responses in striate cortex of kittens deprived of vision in one eye // J. Neurophysiol. 1963. — Vol. 26.- P.1003−1017.
  260. Wilson J.R., Tessin D. E., Sherman S. M. Development of the electrophysiological properties of Y-cells in the kitten’s medial interlaminar nucleus // J. Neurosci. 1982. — Vol. 2.- P.562−571.
  261. Windle, W.F. Normal behavioral reactions of kittens correlated with the postnatal development of nerve-fiber density in the spinal gray matter // J. Comp. Neurol. 1930. — Vol.50. — P. 479−459.
  262. Wong A.M., Burkhalter A., Tychsen L. Suppression of metabolic activity caused by infantile strabismus and strabismic amblyopia in striate visual cortex of macaque monkeys // J. AAPOS. 2005. — Vol. 9.- P.37−47.
  263. Yin T.C., Kalil R. E., Schechter P. B. Visual-evoked responses from strabismic cats. A comparison of esotropes with exotropes // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 1983. — Vol. 24.- P.1390−1399.
  264. Yinon U. Eye rotation in developing kittens: the effect on ocular dominance and receptive field organization of cortical cells // Exp. Brain Res. 1975. — Vol. 24.-P.215−218.
  265. Yinon U. Eye rotation surgically induced in cats modifies properties of cortical neurons // Exp. Neurol. 1976. — Vol. 51.- P.603−627.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!