ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚
АнтистрСссовый сСрвис

ΠžΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC Ρƒ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ Microtus arvalis: Arvicolinae, Rodentia

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

БСмСйство SMC эукариот Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π΅Ρ‚ Π² ΡΠ΅Π±Ρ ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΡŒ основных Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMCl-Π±, ΠΈΠ³Ρ€Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² Ρ€Π΅ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ структуры Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½Π° Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΌ Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅ ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ транскрипционной активности. НаиболСС консСрвативными Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΠΈ сСмСйства ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π³Π΅Π½Ρ‹ SMCla ΠΈ SMC3. ΠŸΡ€ΠΎΡ†Π΅Π½Ρ‚ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ аминокислотных ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π²Π°Ρ€ΡŒΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΡ‚ 0.1% ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ SMC3 ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° Π΄ΠΎ 2% ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ SMCla ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

ΠžΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC Ρƒ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ Microtus arvalis: Arvicolinae, Rodentia (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • Π“Π»Π°Π²Π° 1. ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹
    • 1. 1. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
    • 1. 2. ΠžΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Ρ€Ρ„Π°Π·Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½Π° Π² ΡΠ΄Ρ€Π΅
    • 1. 3. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Ρ„Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… хромосом
    • 1. 4. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Π΅ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC
    • 1. 5. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ структура Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC сСмСйства
    • 1. 6. ΠžΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC
    • 1. 7. БСгрСгация Π±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… хромосом. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ прокариотичСских 24 прСдставитСлСй сСмСйства SMC
    • 1. 8. КогСзия сСстринских Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄
      • 1. 8. 1. Π‘Ρ†Π΅ΠΏΠ»Π΅Π½ΠΈΠ΅ сСстринских Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄ происходит ΠΏΡ€ΠΈ участии комплСкса 27 ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΠ½, ΠΊΠΎΡ€ΠΎΠ²Ρ‹ΠΌ ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠΌ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ³ΠΎ ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ SMC1-SMC
      • 1. 8. 2. БиохимичСскиС свойства ΠΈ Π°Ρ€Ρ…ΠΈΡ‚Π΅ΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° комплСкса ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΠ½
      • 1. 8. 3. Π˜Π½ΠΈΡ†ΠΈΠ°Ρ†ΠΈΡ сцСплСния сСстринких Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄
      • 1. 8. 4. РаспрСдСлСниС комплСксов ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΠ½ Π½Π° Ρ…ромосомах
      • 1. 8. 5. Π Π°Π·Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄ Π² ΠΌΠΈΡ‚ΠΎΠ·Π΅
      • 1. 8. 6. 4 КогСзия сСстринских Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄ Π² ΠΌΠ΅ΠΉΠΎΠ·Π΅
    • 1. 9. Π‘Π΅Π»ΠΊΠΈ SMC ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ°Ρ… Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ
    • 1. 10. УчастиС Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC5-SMC6 Π² Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ 37 Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš
    • 1. 11. Π€ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ митотичСских хромосом ΠΏΡ€ΠΈ участии Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π° 38 SMC2-SMC4 Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π΅ комплСкса кондСнсин
      • 1. 11. 1. РСгуляция Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ кондСнсина Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΌ Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅
      • 1. 11. 2. ВзаимодСйствиС кондСнсина с Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½ΠΎΠΌ
      • 1. 11. 3. " Π“Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠ΅Ρ€ SMC2-SMC4 Π΄Ρ€ΠΎΠΆΠΆΠ΅ΠΉ S. pombe способСн Ρ€Π΅Π½Π°Ρ‚ΡƒΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ i Π΄Π½ΠΊ
      • 1. 11. 4. КондСнсин Π²Π²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ супСрвитки Π² Π·Π°ΠΌΠΊΠ½ΡƒΡ‚ΡƒΡŽ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρƒ 42 Π”ΠΠš in vitro, ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΡ ΡΠ½Π΅Ρ€Π³ΠΈΡŽ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π° АВЀ
      • 1. 11. 5. КондСнсин-ΠΏΠΎΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹ΠΉ комплСкс Ρƒ C. elegans ΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‡Π°Π΅Ρ‚ Π·Π° Π΄ΠΎΠ·ΠΎΠ²ΡƒΡŽ 44 4 ΠΊΠΎΠΌΠΏΠ΅Π½ΡΠ°Ρ†ΠΈΡŽ Π³Π΅Π½ΠΎΠ²
    • 1. 12. МодСль ΠΈΠ½Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ X Ρ…ромосомы Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ Π²Ρ‹ΡΡˆΠΈΡ… ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… 44 ΠΏΡ€ΠΈ участии SMC содСрТащих комплСксов
    • 1. 13. ΠŸΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Ρ‹ изучСния ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° ΠΈΠ½Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π₯-хромосом Π½Π° ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈ 46 ΠΌΠ΅ΠΆΠ²ΠΈΠ΄ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠΊ (Ρ€ΠΎΠ΄ Microtus, Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΠ° arvalis")

ΠΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹.

Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Π΅ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½Π° сСмСйства SMC (Structural Maintenance of Chromosomes) ΠΈΠ³Ρ€Π°ΡŽΡ‚ Π²Π°ΠΆΠ½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π²ΠΎ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… процСссах, связанных с ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π±ΠΎΠ»ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠΌ Π”ΠΠš Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ΅. Π­Ρ‚ΠΎ, консСрвативноС Ρƒ Π²ΡΠ΅Ρ… ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ² сСмСйство Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², содСрТит ΠΏΡΡ‚ΡŒ эукариотичСских Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ ΠΈ ΠΎΠ΄Π½Ρƒ Π±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ. ΠŸΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΠΈ SMC сСмСйства эукариот входят Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π² биохимичСских комплСксов, ΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π·Π° ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΡŽ сСстринских Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄, Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΡŽ, Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡŽ, Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΡŽ экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ² (SMC1/SMC3, SMC2/SMC4, SMC5/SMC6), Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ митотичСских хромосом (SMC2/SMC4) (Strunnikov & Jessberger, 1999; Hirano, 1999; Jessberger et al., 1998). Анализ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Ρ‹Π²Π°Π΅Ρ‚, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ SMC ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π±Π°Π·ΠΎΠ²Ρ‹ΠΌ ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠΌ ряда систСм наслСдования, измСнчивости ΠΈ Ρ€Π΅Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ гСнСтичСского ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π° ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ.

Π Π°Π½Π΅Π΅ Π½Π°ΠΌΠΈ Π±Ρ‹Π»ΠΎ высказано ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΠ΅, Ρ‡Ρ‚ΠΎ SMC Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Π² ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠΈ Π΄ΠΎΠ·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ компСнсации X Ρ…ромосом Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… (Павлова ΠΈ Π΄Ρ€. 2000). ГСнСтичСская систСма этих Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ, слабо ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½Π°. ВыявлСниС Π³Π΅Π½ΠΎΠ² сСмСйства SMC Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠΊ ΠΈ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· ΠΈΡ… Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΉ являСтся ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΎΠΎΡ‡Π΅Ρ€Π΅Π΄Π½ΠΎΠΉ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π΅ΠΉ, стоящСй Π½Π° ΠΏΡƒΡ‚ΠΈ исслСдования участия Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΎΠ·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ компСнсации Π₯-хромосом Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ Π²Ρ‹ΡΡˆΠΈΡ… ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Ρ†Π΅Π»ΠΎΠΌ, ΠΈ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΡ Ρ„Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅Π½Π° нСслучайной ΠΈΠ½Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρƒ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠΊ Π² Ρ‡Π°ΡΡ‚ности (Zakian et al., 1987).

ЦСль ΠΈ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ исслСдования

.

ЦСлью настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являСтся ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π”ΠΠš Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ° ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ Microtus arvalis, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC. Π’ ΠΊΠΎΠ½ΠΊΡ€Π΅Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π²Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠ»ΠΎ:

1. Π’Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΈ ΡƒΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° Masmc4 (Microtus arvalis подсСмСйства SMC4) Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ М.arvalis.

2. Π’Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΈ ΡƒΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ мРНК Π³Π΅Π½Π°Masmc4 Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹.

3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ экзон-ΠΈΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½ΡƒΡŽ структуру Ρ‚Π³ΡŠΠ³. Машс4.

4. ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€Π½ΡƒΡŽ ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° Masmc4.

5. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡŽ Π³Π΅Π½Π° Masmc4 Π½Π° Ρ…ромосомах ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠΊ.

6. Π’Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ ПЦР ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π”ΠΠš, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ SMC1, SMC2, SMC3 Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ.

7. ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π² ΡΠ²Π΅Ρ‚Π΅ ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠΈΠΊΠΈ.

Научная Π½ΠΎΠ²ΠΈΠ·Π½Π° ΠΈ ΠΏΡ€Π°ΠΊΡ‚ичСская Ρ†Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹.

Π’ Π½Π°ΡˆΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΌΡ‹ Π²ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ выявили Π³Π΅Π½Ρ‹ структурных Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M. arvalis ΠΈ Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΠΎΠ»Π½ΡƒΡŽ копию Π³Π΅Π½Π° Masmc4 (Microtus arvalis подсСмСйства SMC4), установили Π΅Π³ΠΎ экзон/ΠΈΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½ΡƒΡŽ структуру, ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π»ΠΈ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· 5' рСгуляторной области. Выявили ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ 3' Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠ² Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Masmcl, Masmc2, Masmc3 ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ ΠΈ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π»ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΡƒΡŽ ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ ΠΈΡ… Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ с ΠΈΠ·Π²Π΅ΡΡ‚Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡΠΌΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC.

ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² сСмСйства SMC4 Π³Ρ€Ρ‹Π·ΡƒΠ½ΠΎΠ² (M.arvalis, Mus musculus, Rattus norvegicus), Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, ΡˆΠΏΠΎΡ€Ρ†Π΅Π²ΠΎΠΉ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠΈ (Xenopus laevis) ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠ²Π»Π΅Π½Ρ‹ основныС ΠΏΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΡ‹ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ исслСдуСмых Π³Π΅Π½ΠΎΠ².

ΠŸΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π”ΠΠš Π³Π΅Π½ΠΎΠ² зарСгистрированны Π² Π±Π°Π·Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… EMBL. Наши Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠ΄Ρ‚Π²Π΅Ρ€Π΄ΠΈΠ»ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΡƒΡŽ ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC Ρƒ Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ². Они ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ нСсомнСнным Π²ΠΊΠ»Π°Π΄ΠΎΠΌ Π² ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠΈ сСмСйства структурных Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC.

Апробация Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ ΠΈ ΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ.

По ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π°ΠΌ диссСртации ΠΎΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ Π΄Π²Π΅ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π±Ρ‹Π»ΠΈ Π΄ΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½Ρ‹ Π½Π° Π΄Π²ΡƒΡ… ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… конфСрСнциях.

Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΈ ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΌ диссСртации

.

ДиссСртация состоит ΠΈΠ· Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΡ, ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Π° Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹, ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΠΎΠ² ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ², Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² ΠΈ ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΡ, Π·Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½ΠΈΡ, Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠΈ ΡΠΏΠΈΡΠΊΠ° Ρ†ΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠΉ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹.

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π° полная нуклСотидная ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° MaSMC4 ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M. arvalis Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ 32 000 ΠΏ.ΠΎ. Π“Π΅Π½ Masmc4 ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ состоит ΠΈΠ· 24 экзонов, Ρ€Π°ΠΌΠΊΠ° считывания начинаСтся экзонС № 2. Π Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ мРНК составляСт 4218 ΠΏ.Π½., Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠ³ΠΎ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° составляСт 1286 Π°.ΠΎ. t.

ΠžΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ 5' Π³Π΅Π½Π° MaSMC4 содСрТит CpG островок Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ 1750 ΠΏ.ΠΎ., ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ΠΈΡ€Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΉΡΡ Π² Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ экзона-ΠΈΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½Π° № 1, экзона № 2. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ CpG островка Π³Π΅Π½Π° MaSMC4 ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ ΠΎΡ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π» связывания нуклСосом. РСгуляторная ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° SMC4 Ρƒ ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, крысы, ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° пСрСкрываСтся с ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹ΠΌ Π’Π‘34 101 (H.sapiens) ΠΈ ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ ΠΎΠΊΠΎΠ»ΠΎ 500 ΠΏ.ΠΎ. Π“Π΅Π½Ρ‹ SMC4 ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‚ мноТСстванныС Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ старта транскрипции. Π’ ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΈ ΠΌΠ°ΠΆΠΎΡ€Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ старта располагаСтся элСмСнт INR CCA+iTTTT (PyPyA+iNT/ApyPy). Для 5' области Π³Π΅Π½Π° SMC4 Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½ΠΎ отсутствиС ВАВА-бокса ΠΈ Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ мноТСствСнных ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… сайтов связывания базального транскрипционного Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° Spl. INR (+), ВАВА (-) класс ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² являСтся Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹ΠΌ для Π³Π΅Π½ΠΎΠ² домашнСго хозяйства с ΠΊΠΎΠ½ΡΡ‚ΠΈΡ‚ΡƒΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ΠΌ экспрСссии.

ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π° ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π³Π΅Π½Π° SMC4 ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ, ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, крысы, Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΈ ΡˆΠΏΠΎΡ€Ρ†Π΅Π²ΠΎΠΉ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠΈ. Π‘Ρ€Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ коэффициСнта синонимичных Π½Π° ΠΊΠΎΡΡ„Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΠ΅Π½Ρ‚ нСсинонимичных Π·Π°ΠΌΠ΅Π½ (Ka/Ks) исслСдованных Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 составляСт 0,123. НаиболСС Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π±Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠΌ Π³Π΅Π½Π° являСтся экзон № 2 (Ka/Ks=0,71), экзоны № 3−24 ΠΏΠΎΠ΄Π²Π΅Ρ€ΠΆΠ΅Π½Ρ‹ Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ ΡΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΠΌΡƒ давлСнию ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΎΡ‚Π±ΠΎΡ€Π° (Ka/Ks=0,l 11). НаиболСС консСрвативным Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠΌ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 являСтся участок, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Π‘-глобулярный Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², содСрТащий ДА-бокс (Ka/Ks=0,024).

ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π”ΠΠš ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M. arvalis, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ сСмСйства SMC1, SMC2 ΠΈ SMC3. Показана высокая гомология Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄ΠΎΠ² с Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π°ΠΌΠΈ ДА-бокс Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC1, SMC2 ΠΈ SMC3 Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, ΡˆΠΏΠΎΡ€Ρ†Π΅Π²ΠΎΠΉ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠΈ.

Π—Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅

.

ЦСлью настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являлось описаниС Π³Π΅Π½ΠΎΠ² сСмСйства SMC Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M.arvalis. Π˜ΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΡ соврСмСнныС Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Ρ‹ ΠΌΡ‹ ΠΏΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π»ΠΈ структуру Π³Π΅Π½ΠΎΠ² сСмСйства SMC Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ ΠΊΡ€Ρ‹ΡΡ‹ ΠΈ ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΠ»ΠΈ с ΡΠΎΠ±ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ.

ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ ПЦР Π±Ρ‹Π»ΠΈ Π°ΠΌΠΏΠ»ΠΈΡ„ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Ρ‹ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC 1,2,3, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ консСрвативный Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½ Π”Π°-бокс. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ «ΠΏΡ€ΠΎΠ³ΡƒΠ»ΠΊΠΈ ΠΏΠΎ Ρ…ромосомС» Π±Ρ‹Π»ΠΈ выявлСны ряд ΠΏΠ΅Ρ€Π΅ΠΊΡ€Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°Π³ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M. arvalis, содСрТащих ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° Π±Π΅Π»ΠΊΠ° SMC4, ΠΎΠ±ΠΎΠ·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π°ΠΌΠΈ ΠΊΠ°ΠΊ MaSMC4 (vSMC4). ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Ρ€Π°Π΄ΠΈΠΎΠ°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга ΠΊΠ”ΠΠš Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊΠΈ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ M. arvalis ΠΈ ΠŸΠ¦Π  со ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ичСскими ΠΏΡ€Π°ΠΉΠΌΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ (с ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ сиквСнсом ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π”ΠΠš), ΠΌΡ‹ Π²Ρ‹ΡΠ²ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ мРНК Π³Π΅Π½Π° MaSMC4. ΠŸΡ€ΠΈ сравнСнии ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π³Π΅Π½Π° ΠΈ ΠΌΠ ΠΠš MaSMC4 ΠΌΡ‹ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΠ»ΠΈ экзон-ΠΈΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½ΡƒΡŽ структуру. Π Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ Π³Π΅Π½Π° составляСт 32 Ρ‚.ΠΏ.ΠΎ., Π³Π΅Π½ состоит ΠΈΠ· 24 экзонов ΠΈ ΠΈΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½ΠΎΠ², содСрТит CpG островок Π΄Π»ΠΈΠ½ΠΎΠΉ 1750 ΠΏ.ΠΎ. Π² 5'-области Π³Π΅Π½Π° (Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Ρ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ экзона № 1 ΠΈ № 2), Ρ€Π°ΠΌΠΊΠ° считывания Π±Π΅Π»ΠΊΠ° SMC4 начинаСтся Π² ΡΠΊΠ·ΠΎΠ½Π΅ № 2. ΠŸΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° MaSMC4 высоко Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Π° Π³Π΅Π½Π°ΠΌ SMC4 ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, крысы, Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΈ ΡˆΠΏΠΎΡ€Ρ†Π΅Π²ΠΎΠΉ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠΈ. Π’ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½Π΅ΠΌ случаС ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅Π½Ρ‚ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ мРНК составляСт 28% (Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² — 24,8%). НаиболСС Π±Π»ΠΈΠ·ΠΊΠΈΠΌ Π³Π΅Π½Ρƒ SMC4 ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ ΠΏΠΎ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π΅ оказался Π³Π΅Π½ SMC4 ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ мРНК составила 8,8%, Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² — 7,5%. Π‘Ρ€Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ коэффициСнта синонимичных ΠΊ ΠΊΠΎΡΡ„Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Ρƒ нСсинонимичных Π·Π°ΠΌΠ΅Π½ (Ka/Ks) Π² ΠΌΠ ΠΠš Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ, ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, крысы, Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΈ ΡˆΠΏΠΎΡ€Ρ†Π΅Π²ΠΎΠΉ Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠΈ составляСт 0,123. НаиболСС Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π±Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠΌ Π³Π΅Π½Π° являСтся экзон № 2 (Ka/Ks=0,71), экзоны № 3−24 ΠΏΠΎΠ΄Π²Π΅Ρ€ΠΆΠ΅Π½Ρ‹ ΡΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΠΌΡƒ давлСнию ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΎΡ‚Π±ΠΎΡ€Π° (Ka/Ks=0,lll). НаиболСС консСрвативным Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠΌ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 являСтся участок, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Π‘-глобулярный Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², содСрТащий ДА-бокс (Ka/Ks=0,024).

Π‘ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅, ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€ΠΈ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π΅ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠΎΠ² ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… областСй Π³Π΅Π½ΠΎΠ² являСтся Π½ΠΈΠ·ΠΊΠΎΠΉ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ позволяСт Π²Ρ‹ΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒ ΠΎΡ€Ρ‚ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Π³Π΅Π½Ρ‹, Π° ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ рСгуляторных ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ являСтся достаточно высокой, Ρ‡Ρ‚ΠΎΠ±Ρ‹ Π²Ρ‹ΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Ρ‚Π°ΠΌ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ элСмСнты. ΠŸΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€Π½Π°Ρ ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 Ρƒ Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠ°, ΠΌΡ‹ΡˆΡŒ, крыса, Π»ΡΠ³ΡƒΡˆΠΊΠ° содСрТит консСрвативныС участки, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ ΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒΡΡ Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΠΌΡ‹ΠΌΠΈ для рСгуляции экспрСссии Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π΅Π½Π°.

РСгуляторная ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ Π³Π΅Π½Π° SMC4 Ρƒ ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, крысы, ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° пСрСкрываСтся с ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹ΠΌ Π’Π‘34 101 (H.sapiens) ΠΈ ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ ΠΎΠΊΠΎΠ»ΠΎ 500 ΠΏ.ΠΎ. Π“Π΅Π½Ρ‹ SMC4 ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‚ мноТСстванныС Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ старта транскрипции. Π’ ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΈ ΠΌΠ°ΠΆΠΎΡ€Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ старта располагаСтся элСмСнт INR CCA+iTTTT (PyPyA+iNT/ApyPy). Для 5' области Π³Π΅Π½Π° SMC4 Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½ΠΎ отсутствиС ВАВА-бокса ΠΈ Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ мноТСствСнных ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… сайтов связывания базального транскрипционного Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° Spl. INR (+), ВАВА (-) класс ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² являСтся Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹ΠΌ для Π³Π΅Π½ΠΎΠ² домашнСго хозяйства с ΠΊΠΎΠ½ΡΡ‚ΠΈΡ‚ΡƒΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ΠΌ экспрСссии. Основной Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠ΅ΠΉ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² Spl, Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ, являСтся ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½ΠΎΠ² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² Π½Π΅ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΌ состоянии ΠΈ «ΠΎΡ‚ΠΊΡ€Ρ‹Ρ‚ΠΎΠΉ» ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ. ΠžΡ‚ΡΡƒΡ‚ΡΡ‚Π²ΠΈΠ΅ мСтилирования Ρ†ΠΈΡ‚ΠΎΠ·ΠΈΠ½ΠΎΠ² спобствуСт ΡΠΎΡ…Ρ€Π°Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ островков CpG Π² 5'области Π³Π΅Π½ΠΎΠ², Ρ‚ΠΎΠ³Π΄Π° ΠΊΠ°ΠΊ ΠΏΡ€ΠΈ Π΄Π΅Π·Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Ρ†ΠΈΡ‚ΠΎΠ·ΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Π”ΠΠš происходит Π·Π°ΠΌΠ΅Π½Π° Π½Π° Ρ‚ΠΈΠΌΠΈΠ½ ΠΈ «Ρ€Π°Π·ΠΌΡ‹Π²Π°Π½ΠΈΠ΅» кластСров CpG Π² Π½Π΅ΠΉΡ‚Ρ€Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… позициях Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ°.

Π”ΠΠš CpG островков Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 исслСдуСмых Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π² ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€Π½ΠΎΠΉ области ΠΈ Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π΅ ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ… экзонов ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ ΠΎΡ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π» связывания нуклСосом, Ρ‡Ρ‚ΠΎ косвСнно ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ транскрипции. Высокая ΠΊΠΎΠ½ΡΠ΅Ρ€Π²Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ, Π½ΠΈΠ·ΠΊΠΈΠ΅ значСния Ka/Ks, ΠΎΡ‚Ρ€Π°ΠΆΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ дСйствиС ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΎΡ‚Π±ΠΎΡ€Π°, ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎ «Π°ΠΊΡ‚ивная» 5'ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΡŒ, содСрТащая островок CpG являСтся слСдствиСм высокой биологичСской значимости Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² сСмСйства SMC4.

Π Π°ΠΉΠΎΠ½ синтСнии, содСрТащий Π³Π΅Π½ SMC4 ΠΎΡ…Π²Π°Ρ‚Ρ‹Π²Π°Π΅Ρ‚ порядка 20 ΠΌ.ΠΏ.Π½. Π½Π° 3 хромосомС Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° (3q25 бэндС, Π² Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π΅ 150 ΠΌ.ΠΏ.Π½.), 18 ΠΌ.ΠΏ.Π½. Π½Π° 3 хромосомС Ρƒ ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ (Π—Π•2 цитологичСский бэнд 69 ΠΌ.ΠΏ.Π½.) ΠΈ 22 ΠΌ.ΠΏ.Π½. Π½Π° 2 хромосомС Ρƒ ΠΊΡ€Ρ‹ΡΡ‹ (2q31 бэнд 150.8 ΠΌ.ΠΏ.Π½.). ΠŸΠΎΡ€ΡΠ΄ΠΎΠΊ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΠ°Ρ…, содСрТащих Π³Π΅Π½ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° SMC4 (ΠΎΡ‚ Π³Π΅Π½Π° TM4SF1 Π΄ΠΎ Π³Π΅Π½Π° SERFINI), Ρƒ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² сохранСн. Около 90% Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠΎΠ² ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ Π² ΠΊΠΎΠ½ΡΠ΅Ρ€Π²Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ синтСнныС Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹, ΡΠΎΡ…Ρ€Π°Π½ΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ порядок Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ΠΉ ΠΈΠΌΠ΅Π» мСсто Ρƒ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΊΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° (MGSC, 2002).

БСмСйство SMC эукариот Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π΅Ρ‚ Π² ΡΠ΅Π±Ρ ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΡŒ основных Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMCl-Π±, ΠΈΠ³Ρ€Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² Ρ€Π΅ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ структуры Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½Π° Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΌ Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅ ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ транскрипционной активности. НаиболСС консСрвативными Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΠΈ сСмСйства ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π³Π΅Π½Ρ‹ SMCla ΠΈ SMC3. ΠŸΡ€ΠΎΡ†Π΅Π½Ρ‚ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΈ аминокислотных ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π²Π°Ρ€ΡŒΠΈΡ€ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΡ‚ 0.1% ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ SMC3 ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° Π΄ΠΎ 2% ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ SMCla ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ ΠΈ ΠΊΡ€Ρ‹ΡΡ‹. Высокая ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒ консСрвативности Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMCla ΠΈ SMC3 ΠΎΡ‚Ρ€Π°ΠΆΠ°Π΅Ρ‚ большоС Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² для ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ. Помимо участия Π² ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΠΈ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄ Π² ΠΌΠΈΡ‚ΠΎΠ·Π΅ ΠΈ ΠΌΠ΅ΠΉΠΎΠ·Π΅, ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Ρ‹ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMCla ΠΈ SMC3 входят Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π² ΠΊΠΈΠ½Π΅Ρ‚ΠΎΡ…ΠΎΡ€Π½ΠΎΠΉ пластинки ΠΈ Π°ΠΏΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π° Π²Π΅Ρ€Π΅Ρ‚Π΅Π½Π° дСлСния. ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ этого, Π±Π΅Π»ΠΎΠΊ SMC3 Π±Ρ‹Π» описан Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ ΠΊΠ°ΠΊ ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚ Π³Π΅Π½Π° Πͺатасап (Cspg6), ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ΠΉ выполняСт Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΡŽ, ΡΠΎΠ²Π΅Ρ€ΡˆΠ΅Π½Π½ΠΎ Π½Π΅ ΡΠ²ΡΠ·Π°Π½Π½ΡƒΡŽ с Ρ€Π΅ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠ΅ΠΉ Π”ΠΠš — Π² Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ΅ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΎΠ³Π»ΠΈΠΊΠ°Π½Π° присутствуСт Π²ΠΎ Π²Π½Π΅ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… образованиях ΡΠΎΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ.

Π£ ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… присутствуСт Π΄ΠΎΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π³Π΅Π½ SMClfi, ΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Π·Π° ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΡŽ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΎΠΌΠ΅Ρ€ Π² ΠΌΠ΅ΠΉΠΎΠ·Π΅ ΠΈ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΡˆΠΈΠΉ, ΠΏΠΎ-Π²ΠΈΠ΄ΠΈΠΌΠΎΠΌΡƒ, Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ Π΄ΡƒΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Π³Π΅Π½Π° SMCla. Π“Π΅Π½Ρ‹ SMClfi ΠΈ SMCla Π²Ρ‹Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‚ΡΡ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ собой ΠΏΠΎ Π²ΡΠ΅ΠΉ Π΄Π»ΠΈΠ½Π΅ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅Π½Ρ‚ Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Π½Π° Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ составляСт 61%. ΠžΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ коэффициСнтов синонимичных ΠΈ Π½Π΅ΡΠΈΠ½ΠΎΠ½ΠΈΠΌΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π·Π°ΠΌΠ΅Π½ для Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠ°Ρ€Ρ‹ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² составляСт Ρƒ ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ 0,144 ΠΈ Ρƒ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° 0,129. Π”Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚Π΅Π»ΠΈ Ka/Ks Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹ для консСрвативных Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠΈΠ²Π°Π΅ΠΌΡ‹Ρ… ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ ΠΎΡ‚Π±ΠΎΡ€ΠΎΠΌ. Π’ Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΌ случаС, это ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎ Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… участков, ΠΎΠ±Ρ‰ΠΈΡ… для Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC1J2 ΠΈ SMCla, Π° Ρ„иксация Π½Π΅Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ части Π·Π°ΠΌΠ΅Π½ ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΊ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½ΠΈΡŽ обособлСнной Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Ρƒ Π³Π΅Π½Π° SMClfi.

Π”Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€, ΠΊΠΎΠ³Π΄Π° Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ°Π΅Ρ‚ Π΄ΠΎΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π³Π΅Π½ SMC, извСстСн для C.elegans. Π’ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ Π½Π΅ΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ΄ ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ Π΄Π²Π° Π³Π΅Π½Π° подсСмСйства SMC4 — собствСнно SMC4, ΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Π·Π° ΠΌΠΈΡ‚ΠΎΡ‚ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΡƒΡŽ ΠΊΠΎΠ½Π΄Π΅Π½ΡΠ°Ρ†ΠΈΡŽ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ½Π° ΠΈ Dpy 27, ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Π² Π΄ΠΎΠ·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ компСнсации Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π₯-хромосом Ρƒ Π³Π΅Ρ€ΠΌΠ°Ρ„Ρ€ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ΠΎΠ² с Π³Π΅Π½ΠΎΡ‚ΠΈΠΏΠΎΠΌ XX. Π”Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π³Π΅Π½Ρ‹ Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π΄ΠΈΠ²Π΅Ρ€Π³ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π»ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ ΠΎΡ‚ Π΄Ρ€ΡƒΠ³Π° ΠΈ Π²Ρ‹Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π½ΠΈΠΌΠΈ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ лишь Π² Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π°Ρ…, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… консСрвативныС Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½Ρ‹ (Ka/Ks для Ρ€Π°ΠΉΠΎΠ½Π° Π”Π°-бокс Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC4 ΠΈ Dpy 2 7 составляСт 0,197). I.

Вопрос ΠΎΠ± ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚ΠΈΠΈ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΎΠ·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ компСнсации Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π₯-хромосом Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ Π²Ρ‹ΡΡˆΠΈΡ… ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠΊΠ° Π΅Ρ‰Π΅ остаСтся ΠΎΡ‚ΠΊΡ€Ρ‹Ρ‚Ρ‹ΠΌ. Поиск Π² Π±Π°Π·Π°Ρ… Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠΎΠ² ΠΌΡ‹ΡˆΠΈ, Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΈ ΠΊΡ€Ρ‹ΡΡ‹ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… консСрвативныС Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½Ρ‹ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² SMC, Π½Π΅ Π²Ρ‹ΡΠ²ΠΈΠ» Π΄ΠΎΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ², ΠΊΡ€ΠΎΠΌΠ΅ ΡƒΠΆΠ΅ извСстных SMCla, SMCip, SMC2−6. Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, хотя ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² (ΠΊΠ°ΠΊ Dpy27 Ρƒ C. elegans) Ρƒ ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π΅Ρ‚, ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ, ΠΏΠΎ Π²ΡΠ΅ΠΉ видимости, список нСканоничСских (ΠΏΠΎΠΌΠΈΠΌΠΎ ΠΊΠΎΠ³Π΅Π·ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΊΠΎΠ½Π΄Π΅Π½ΡΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΈΠ΄) Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² сСмСйства SMC ΠΏΠΎΠΊΠ° Π΅Ρ‰Π΅ Π½Π΅ Π·Π°ΠΊΡ€Ρ‹Ρ‚. ΠœΡ‹ ΠΏΠΎ-ΠΏΡ€Π΅ΠΆΠ½Π΅ΠΌΡƒ Π½Π΅ ΠΈΡΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π΅ΠΌ возмоТности Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Ρ‹ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² SMC Ρ‚Π΅ΠΌ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΈΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ связаны с Ρ€Π΅ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠ΅ΠΉ структуры Π”ΠΠš ΠΈΠ½Π°ΠΊΠΈΠ²ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠΉ X Ρ…ромосомы Ρƒ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΊ Π²Ρ‹ΡΡˆΠΈΡ… ΠΌΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ….

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. ., Π‘Ρ€Π΅ΠΉ Π”., Π›ΡŒΡŽΠΈΡ Π”ΠΆ., Рэфф Π‘., Π ΠΎΠ±Π΅Ρ€Ρ‚Π΅ К., Уотсон Π”ΠΆ. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ биология ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ. Москва: «ΠœΠΈΡ€», 1994.
  2. И.М., Поляков И .Π―. Π€Π°ΡƒΠ½Π° Π‘Π‘Π‘Π . ΠœΠ»Π΅ΠΊΠΎΠΏΠΈΡ‚Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅. ПолСвки (Microtinae) // Π›: Наука. 1977. Π’.Π—. 504 Π‘.
  3. Π’.М. БистСматика ΠΎΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ. // М.:Наука. 1983. 208 Π‘.
  4. Π’.М., Π‘Π°Π±Π»ΠΈΠ½Π° О. Π’. ΠšΠ°Ρ€ΠΈΠΎΡ‚ΠΈΠΏΡ‹. // ΠžΠ±Ρ‹ΠΊΠ½ΠΎΠ²Π΅Π½Π½Π°Ρ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠ°: Π’ΠΈΠ΄Ρ‹-Π΄Π²ΠΎΠΉΠ½ΠΈΠΊΠΈ. М.: Наука. 1994. Π‘.7−25.
  5. М.Н., Π“ΠΎΠ»Π΅Π½ΠΈΡ‰Π΅Π² Π€. Н., Π Π°Π΄ΠΆΠ°Π±Π»ΠΈ Π‘. И., Π‘Π°Π±Π»ΠΈΠ½Π° О. Π›. Π‘Π΅Ρ€Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΊΠΈ Ρ„Π°ΡƒΠ½Ρ‹ России ΠΈ ΡΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Ρ‚Π΅Ρ€Ρ€ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΉ. // Π’Ρ€ΡƒΠ΄Ρ‹ ЗоологичСского института. Π‘Π°Π½ΠΊΡ‚-ΠŸΠ΅Ρ‚Π΅Ρ€Π±ΡƒΡ€Π³. 1996. Π’.232. 320 Π‘.
  6. М.Н., Π Π°Π΄ΠΆΠ°Π±Π»ΠΈ Π‘. И., Π‘ΡƒΠ»Π°Ρ‚ΠΎΠ²Π° Н. Π¨., Π“ΠΎΠ»Π΅Π½ΠΈΡ‰Π΅Π² Π€. Н. ΠšΠ°Ρ€ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠ΅ особСнности ΠΈ Π²Π΅Ρ€ΠΎΡΡ‚Π½Ρ‹Π΅ родствСнныС связи ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠΊ Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ «arvalis» (Rodentia, CricetidaeJ // Π—ΠΎΠΎΠ». ΠΆ. 1985. T.LXIV. N*3. Π‘.417−428.
  7. Π›.И. ЭкспрСссия Π³Π΅Π½ΠΎΠ². Москва: «ΠΠ°ΡƒΠΊΠ°», 2000.
  8. А. Π’., Gross Π’. and Jessberger R. «Mammalian SMC3 C-terminal and coiled-coil protein domains specifically bind palindromic DNA, do not block DNA ends, and prevent DNA bending» // J Biol Chem, 1999, V. 274, P. 38 216−38 224.
  9. А. Π’., Frei C., Tsai-Pflugfelder M., Kemper Π’., Gasser S. M. and Jessberger R. «Structural maintenance of chromosomes protein C-terminal domains bind preferentially to DNA with secondary structure» // J Biol Chem, 1998, V. 273, P. 24 088−24 094.
  10. Alexandru G., Uhlmann F., Mechtler K., Poupart M. A. and Nasmyth K. «Phosphorylation of the cohesin subunit Sccl by Polo/Cdc5 kinase regulates sister chromatid separation in yeast» // Cell, 2001, V. 105, P. 459−472.
  11. A. «Together until separin do us part» // Nat Cell Biol, 2001, V. 3, P. E12−14.
  12. Anderson D. E., Losada A., Erickson H. P. and Hirano T. «Condensin and cohesin display different arm conformations with characteristic hinge angles» // J Cell Biol, 2002, V. 28, P. 28.
  13. Bailey J. A., Carrel L., Chakravarti A. and Eichler E. E. «From the cover: molecular evidence for a relationship between LINE-1 elements and X chromosome inactivation: the Lyon repeat hypothesis» // Proc Natl Acad Sci U S A, 2000, V. 97, P. 6634−6639.
  14. Ball A. R., Jr., Schmiesing J. A., Zhou C., Gregson H. C., Okada Y., Doi T. and Yokomori K. «Identification of a chromosome-targeting domain in the human condensin subunit CNAP 1/hCAP-D2/Eg7″ // Mol Cell Biol, 2002, V. 22, P. 5769−5781.
  15. Ball Jr A. R. and Yokomori K. „The structural maintenance of chromosomes (SMC) family of proteins in mammals“ // Chromosome Res, 2001, V. 9, P. 85−96.
  16. Bazett-Jones D. P., Kimura K. and Hirano T. „Efficient supercoiling of DNA by a single condensin complex as revealed by electron spectroscopic imaging“ // Mol Cell, 2002, V. 9, P. 1183−1190.
  17. Bellorini, M., Dantonel, J. C., Yoon, J. Π’., Roeder, R G., Tora, L., and Mantovani, R. „The major histocompatibility complex class II Ea promoter requires TFIID binding to an initiator sequence“ // Mol Cell Biol, 1996 V. 16, P. 503−512.
  18. Bhat M. A., Philp A. V., Glover D. M. and Bellen H. J. „Chromatid segregation at anaphase requires the barren product, a novel chromosome-associated protein that interacts with Topoisomerase II“ // Cell, 1996, V. 87, P. 1103−1114.
  19. Blat Y. and Kleckner N. „Cohesins bind to preferential sites along yeast chromosome III, with differential regulation along arms versus the centric region“ // Cell, 1999, V. 98, P. 249−259.
  20. Britton R. A., Lin D. C. and Grossman A. D. „Characterization of a prokaryotic SMC protein involved in chromosome partitioning“ // Genes Dev, 1998, V. 12, P. 1254−1259.
  21. N. „The role of Xist in X-inactivation“ // Curr Opin Genet Dev, 1998, V. 8, P. 328−333.
  22. Brown C. J. and Robinson W. P. „XIST expression and X-chromosome inactivation in human preimplantation embryos“ // Am J Hum Genet, 1997, V. 61, P. 5−8.
  23. Brown C. J., Ballabio A., Rupert J. L., Lafreniere R. G., Grompe M., Tonlorenzi R. and Willard H. F. „A gene from the region of the human X inactivation centre is expressed exclusively from the inactive X chromosome“ // Nature, 1991a, V. 349, P. 38−44.
  24. Cabello О. A., Eliseeva E., He W. G., Youssoufian H., Plon S. E., Brinkley B. R. and ^ Belmont J. W. „Cell cycle-dependent expression and nucleolar localization of hCAP-H“ //
  25. Mol Biol Cell, 2001, V. 12, P. 3527−3537.
  26. Carmi I. and Meyer B. J. „The primary sex determination signal of Caenorhabditis elegans“ // Genetics, 1999, V. 152, P. 999−1015.
  27. Chu D. S., Dawes H. E., Lieb J. D., Chan R. C., Kuo A. F. and Meyer B. J. „A molecular link between gene-specific and chromosome-wide transcriptional repression“ // Genes Dev, 2002, V. 16, P. 796−805.
  28. P. Π’., Albertson D. G. and Meyer B. J. „DPY-27:a chromosome condensation protein homolog that regulates C. elegans dosage compensation through association with the X chromosome“ // Cell, 1994, V. 79, P. 459−474.
  29. P. Π’., Lieb J. D. and Meyer B. J. „Sex-specific assembly of a dosage compensation complex on the nematode X chromosome“ // Science, 1996, V. 274, P. 1736−1739.
  30. Ciosk R., Zachariae W., Michaelis C., Shevchenko A., Mann M. and Nasmyth K. „An ESP1/PDS1 complex regulates loss of sister chromatid cohesion at the metaphase toj anaphase transition in yeast“ // Cell, 1998, V. 93, P. 1067−1076.
  31. Ciosk R., Shirayama M., Shevchenko A., Tanaka Π’., Toth A. and Nasmyth K. „Cohesin'si, binding to chromosomes depends on a separate complex consisting of Scc2 and Scc4proteins“ // Mol Cell, 2000, V. 5, P. 243−254.
  32. Cheremushkin E., Kel A. „Whole Genome Human/Mouse Phylogenetic Footprinting of Potential Transcription Regulatory Signals"// Pacific Symposium on Biocomputing, 2003, V. 8, P. 291−302.
  33. Clemson Π‘. M., McNeil J. A., Willard H. F. and Lawrence J. B. „XIST RNA paints the m inactive X chromosome at interphase: evidence for a novel RNA involved innuclear/chromosome structure“ // J Cell Biol, 1996, V. 132, P. 259−275.
  34. Cobbe N. and Heck M. M. „Review: SMCs in the world of chromosome biology- from prokaryotes to higher eukaryotes“ // J Struct Biol, 2000, V. 129, P. 123−143.
  35. J.M. „K-Estimator: calculation of the number of nucleotide substitutions per site and the confidence intervals“ //Bioinformatics, 1999, V. 15, № 9, P. 763−764.
  36. Connelly J. C., Kirkham L. A. and Leach D. R. „The SbcCD nuclease of Escherichia coli is a structural maintenance of chromosomes (SMC) family protein that cleaves hairpin DNA“ // Proc Natl Acad Sci U S A, 1998, V. 95, P. 7969−7974.
  37. Π© 40. Costanzi C., Stein P., Worrad D. M., Schultz R. M. and Pehrson J. R. „Histone macroH2Alis concentrated in the inactive X chromosome of female preimplantation mouse embryos“ // Development, 2000, V. 127, P. 2283−2289.
  38. Csankovszki G., Panning Π’., Bates Π’., Pehrson J. R. and Jaenisch R. „Conditional deletion of Xist disrupts histone macroH2A localization but not maintenance of X inactivation“ // Nat Genet, 1999, V. 22, P. 323−324. i
  39. Darwiche N., Freeman L. A. and Strunnikov A. „Characterization of the components of the putative mammalian sister chromatid cohesion complex“ // Gene, 1999, V. 233, P. 39−47.
  40. Dawes H. E., Berlin D. S., Lapidus D. M., Nusbaum C., Davis T. L. and Meyer B. J. „Dosage compensation proteins β€’ targeted to X chromosomes by a determinant of hermaphrodite fate“ // Science, 1999, V. 284, P. 1800−1804.
  41. Donze D., Adams C. R., Rine J. and Kamakaka R. T. „The boundaries of the silenced HMR domain in Saccharomyces cerevisiae“ // Genes Dev, 1999, V. 13, P. 698−708.
  42. Eide Π’., Carlson C., Tasken K. A., Hirano Π’., Tasken K. and Collas P. „Distinct but overlaPing domains of AKAP95 are implicated in chromosome condensation and condensin targeting“ // EMBO Rep, 2002, V. 18, P. 18.
  43. Eijpe M., Heyting C., Gross B. and Jessberger R. „Association of mammalian SMC1 and SMC3 proteins with meiotic chromosomes and synaptonemal complexes“ // J Cell Sci, 2000, V. 113, P. 673−682.
  44. Fousteri M. I. and Lehmann A. R „A novel SMC protein complex in Schizosaccharomyces pombe contains the Radl8 DNA repair protein“ // Embo J, 2000, V. 19, P. 1691−1702.
  45. Freeman L., Aragon-Alcaide L. and Strunnikov A. „The condensin complex governs chromosome condensation and mitotic transmission of rDNA“ // J Cell Biol, 2000, V. 149, P. 811−824.
  46. Furuya K., Takahashi K. and Yanagida M. „Faithful anaphase is ensured by Mis4, a sister chromatid cohesion molecule required in S phase and not destroyed in Gl phase“ // Genes Dev, 1998, V. 12, P. 3408−3418.
  47. Gartler S. M. and Riggs A. D. „Mammalian X-chromosome inactivation“ // Annu Rev Genet, 1983, V. 17, P. 155−190.
  48. Ghiselli, G., Coffee, N. Munnery, Π‘. E., Koratkar, R., and Siracusa, L. D. „The cohesin SMC3 is a target the for beta-catenin/TCF4 transactivation pathway“ // J Biol Chem, 2003, V. 278, P. 20 259−20 267.
  49. Ghiselli, G., Siracusa, L. D., and Iozzo, R. V. „Complete cDNA cloning, genomic organization, chromosomal assignment, functional characterization of the promoter, and expression of the murine Bamacan gene“ // J Biol Chem, 1999 V. 274, P. 17 384−17 393.
  50. Graumann P. L., Losick R. and Strunnikov A. V. „Subcellular localization of Bacillus subtilis SMC, a protein involved in chromosome condensation and segregation“ // J Bacteriol, 1998, V. 180, P. 5749−5755.
  51. Gregson H. C., Van Hooser A. A., Ball A. R., Jr., Brinkley B. R. and Yokomori K. „Localization of human SMC1 protein at kinetochores“ // Chromosome Res, 2002, V. 10, P. 267−277.
  52. Gregson H. C., Schmiesing J. A., Kim J. S., Kobayashi Π’., Zhou S. and Yokomori K. „A potential role for human cohesin in mitotic spindle aster assembly“ // J Biol Chem, 2001, V. 276, P. 47 575−47 582.
  53. Guacci V., Koshland D. and Strunnikov A. „A direct link between sister chromatid cohesion and chromosome condensation revealed through the analysis of MCD1 in S. cerevisiae“ // Cell, 1997, V. 91, P. 47−57.
  54. Haering Π‘. H., Lowe J., Hochwagen A. and Nasmyth K. „Molecular architecture of SMC proteins and the yeast cohesin complex“ // Mol Cell, 2002, V. 9, P. 773−788.
  55. , T.A. “ BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT» // Nucl. Acids. Symp. 1999, V. 41, P.95−98.
  56. Hagstrom K. A., Holmes V. F., Cozzarelli N. R. and Meyer B. J. «C. elegans condensin promotes mitotic chromosome architecture, centromere organization, and sister chromatid segregation during mitosis and meiosis» // Genes Dev, 2002, V. 16, P. 729−742.
  57. Hart Π‘. M. and Laemmli U. K. «Facilitation of chromatin dynamics by SARs» // Curr Opin Genet Dev, 1998, V. 8, P. 519−525.
  58. Hartman Π’., Stead K., Koshland D. and Guacci V. «Pds5p is an essential chromosomal protein required for both sister chromatid cohesion and condensation in Saccharomyces cerevisiae» // J Cell Biol, 2000, V. 151, P. 613−626.
  59. Harvey S. H., Krien M. J. and O’Connell M. J. «Structural maintenance of chromosomes (SMC) proteins, a family of conserved ATPases» // Genome Biol, 2002, V. 3, P.
  60. Hauf S., Waizenegger I. C. and Peters J. M. «Cohesin cleavage by separase required for anaphase and cytokinesis in human cells» II Science, 2001, V. 293, P. 1320−1323.
  61. He, F., Narayan, S., and Wilson, S." H. «Purification and characterization of a DNA polymerase beta promoter initiator element-binding transcription factor from bovine testis» //Biochemistry, 1996 V. 35, P. 1775−1782.
  62. Hirano M. and Hirano T. «ATP-dependent aggregation of single-stranded DNA by a bacterial SMC homodimer» // Embo J, 1998, V. 17, P. 7139−7148.
  63. Hirano M., Anderson D. E., Erickson H. P. and Hirano T. «Bimodal activation of SMC ATPase by intra- and inter-molecular interactions» //Embo J, 2001, V. 20, P. 3238−3250.
  64. T. «SMC protein complexes and higher-order chromosome dynamics» // Curr Opin Cell Biol, 1998, V. 10, P. 317−322.'
  65. T. «SMC-mediated chromosome mechanics: a conserved scheme from bacteria to vertebrates?» //Genes Dev, 1999, V. 13, P. 11−19.
  66. T. «Chromosome cohesion, condensation, and separation» // Annu Rev Biochem, 2000, V. 69, P. 115−144.
  67. T. «The ABCs of SMC proteins: two-armed ATPases for chromosome condensation, cohesion, and repair» // Genes Dev, 2002, V. 16, P. 399−414.
  68. Hirano T. and Mitchison T. J. «Topoisomerase II does not play a scaffolding role in the organization of mitotic chromosomes assembled in Xenopus egg extracts» // J Cell Biol, 1993, V. 120, P. 601−612.
  69. Hirano T. and Mitchison T. J. «A heterodimeric coiled-coil protein required for mitotic chromosome condensation in vitro» // Cell, 1994, V. 79, P. 449−458.
  70. Hirano Π’., Mitchison T. J. and Swedlow J. R. «The SMC family: from chromosome condensation to dosage compensation» // Curr Opin Cell Biol, 1995, V. 7, P. 329−336.
  71. Hirano Π’., Kobayashi R. and Hirano M. «Condensins, chromosome condensation protein complexes containing XCAP- Π‘, XCAP-E and a Xenopus homolog of the Drosophila Barren protein» // Cell, 1997, V. 89, P. 511−521.
  72. Houbaviy, H. B. and Burley, S. K. «Thermodynamic analysis of the interaction between YY1 and the AAV P5 promoter initiator element» // Chem Biol, 2001, V. 8, P. 179−187.
  73. Holmes V. F. and Cozzarelli N. R. «Closing the ring: links between SMC proteins and chromosome partitioning, condensation, and supercoiling» // Proc Natl Acad Sci U S A, 2000, V. 97, P. 1322−1324.
  74. Holt Π‘. L. and May G. S. «An extragenic suPressor of the mitosis-defective bimD6 mutation of Aspergillus nidulans codes for a chromosome scaffold protein» // Genetics, 1996, V. 142, P. 777−787.
  75. Hoque M. T. and Ishikawa F. «Human chromatid cohesin component hRad21 is phosphorylated in M phase and associated with metaphase centromeres» // J Biol Chem, 2001, V. 276, P. 5059−5067.
  76. Horvath J. E., Bailey J. A., Locke D. P. and Eichler E. E. «Lessons from the human genome: transitions between euchromatin and heterochromatin» // Hum Mol Genet, 2001, V. 10, P. 2215−2223.
  77. Ivanov D., Schleiffer A., Eisenhaber F., Mechtler K., Haering Π‘. H. and Nasmyth K. «Ecol is a novel acetyltransferase that can acetylate proteins involved in cohesion» // Curr Biol, 2002, V. 12, P. 323−328.
  78. Jager H., Herzig A., Lehner C. F. and Heidmann S. «Drosophila separase is required for sister chromatid separation and binds to P1M and THR» // Genes Dev, 2001, V. 15, P. 2572−2584.
  79. Jallepalli P. V., Waizenegger I. C., Bunz F., Langer S., Speicher M. R., Peters J. M., Kinzler K. W., Vogelstein B. and Lengauer C. «Securin is required for chromosomal stability in human cells» II Cell, 2001, V. 105, P. 445−457.
  80. Jensen R. B. and Shapiro L. «The Caulobacter crescentus smc gene is required for cell cycle progression and chromosome segregation» // Proc Natl Acad Sci U S A, 1999, V. 96, P. 10 661−10 666.
  81. JePesen P. and Turner Π’. M. «The inactive X chromosome in female mammals is distinguished by a lack of histone H4 acetylation, a cytogenetic marker for gene expression» // Cell, 1993, V. 74, P. 281−289.
  82. R. «The many functions of smc proteins in chromosome dynamics» // Nat Rev Mol Cell Biol, 2002, V. 3, P. 767−778.
  83. Jessberger R, Frei C. and Gasser S. M. «Chromosome dynamics: the SMC protein family» // Curr Opin Genet Dev, 1998, V. 8, P. 254−259.
  84. Jessberger R., Podust V., Hubscher U. and Berg P. «A mammalian protein complex that repairs double-strand breaks and deletions by recombination» // J Biol Chem, 1993, V. 268, P. 15 070−15 079.
  85. Jessberger R., Chui G., Linn S. and Kemper B. «Analysis of the mammalian recombination protein complex RC-1» // Mutat Res, 1996, V. 350, P. 217−227.
  86. Johansson, E., Hjortsberg, K., and Thelander, L. «Two YY-l-binding proximal elements regulate the promoter strength of the TATA-less mouse ribonucleotide reductase R1 gene» // J Biol Chem, 1998, V. 273, P. 29 816−29 821.
  87. Jones S. and Sgouros J. «The cohesin complex: sequence homologies, interaction networks and shared motifs» // Genome Biol, 2001, V. 2, P.
  88. Kazazian H. H., Jr. and Moran J. V. «The impact of LI retrotransposons on the human genome» // Nat Genet, 1998, V. 19, P. 19−24. i
  89. Kimura K. and Hirano T. «ATP-dependent positive supercoiling of DNA by 13S condensin: a biochemical implication for chromosome condensation» // Cell, 1997, V. 90, P. 625−634.
  90. Kimura K. and Hirano T. «Dual roles of the 1 IS regulatory subcomplex in condensin functions» // Proc Natl Acad Sci U S A, 2000, V. 97, P. 11 972−11 977.
  91. Kimura K., Cuvier O. and Hirano T. «Chromosome condensation by a human condensin complex in Xenopus egg extracts» // J Biol Chem, 2001, V. 276, P. 5417−5420.
  92. Kimura K., Hirano M., Kobayashi R. and Hirano T. «Phosphorylation and activation of 13S condensin by Cdc2 in vitro» // Science, 1998, V. 282, P. 487−490.
  93. Kimura K., Rybenkov V. V., Crisona N. J., Hirano T. and Cozzarelli N. R. «13S condensin actively reconfigures DNA by introducing global positive writhe: implications for chromosome condensation» // Cell, 1999, V. 98, P. 239−248.
  94. F., Mahr P., Galova M., Buonomo S. Π’., Michaelis C., Nairz K. and Nasmyth K. «A central role for cohesins in sister chromatid cohesion, formation of axial elements, and recombination during yeast meiosis» // Cell, 1999, V. 98, P. 91−103.
  95. Korenberg J. R. and Rykowski M. C. «Human genome organization: Alu, lines, and the molecular structure of metaphase chromosome bands» // Cell, 1988, V. 53, P. 391−400.
  96. Koshland D. and Strunnikov A. «Mitotic chromosome condensation» // Annu Rev Cell Dev Biol, 1996, V. 12, P. 305−333.
  97. KurodaM. I. and Villeneuve A. M. «Promiscuous chromosomal proteins: complexes about sex» // Science, 1996, V. 274, P. 1633−1634.
  98. Laloraya S., Guacci V. and Koshland D. «Chromosomal addresses of the cohesin component Mcdlp» // J Cell Biol, 2000, V. 151, P. 1047−1056.
  99. Lavoie B. D., Hogan E. and Koshland D. «In vivo dissection of the chromosome condensation machinery: reversibility of condensation distinguishes contributions of condensin and cohesin» //J Cell Biol, 2002, V. 156, P. 805−815.
  100. Lee J. T. and Jaenisch R. «Long-range cis effects of ectopic X-inactivation centres on a mouse autosome» //Nature, 1997, V. 386, P. 275−279.
  101. Lee J. Π’. and Lu N. «Targeted mutagenesis of Tsix leads to nonrandom X inactivation» // p Cell, 1999, V. 99, P. 47−57.
  102. Lee J. Π’., Davidow L. S. and Warshawsky D. «Tsix, a gene antisense to Xist at the X-inactivation centre» //Nat Genet, 1999, V. 21, P. 400−404.
  103. Lee J. Π’., Strauss W. M., Dausman J. A. and Jaenisch R. «A 450 kb transgene displays properties of the mammalian X-inactivation center» // Cell, 1996, V. 86, P. 83−94.
  104. Lee J. Y. and Orr-Weaver T. L. «The molecular basis of sister-chromatid cohesion» // Annu Rev Cell Dev Biol, 2001, V. 17, P. 753−777.
  105. Lewin Π’., Genes VI. Oxford University Press. 1997
  106. Lewis P. J. and Errington J. «Direct evidence for active segregation of oriC regions of the j Bacillus subtilis chromosome and co-localization with the SpoOJ partitioning protein» //
  107. Mol Microbiol, 1997, V. 25, P. 945−954.
  108. Lieb J. D., Capowski E. E., Meneely P. and Meyer B. J. «DPY-26, a link between dosage ^ compensation and meiotic chromosome segregation in the nematode» // Science, 1996, V. | 274, P. 1732−1736.
  109. Lieb J. D., Albrecht M. R., Chuang P. T. and Meyer B. J. «MIX-1: an essential component of the C. elegans mitotic machinery executes X chromosome dosage compensation» // Cell, 1998, V. 92, P. 265−277.
  110. Losada A. and Hirano T. «Shaping the metaphase chromosome: coordination of cohesion and condensation» //Bioessays, 2001a, V. 23, P. 924−935.
  111. Losada A. and Hirano T. «Intermolecular DNA interactions stimulated by the cohesincomplex in vitro: implications for sister chromatid cohesion» // Curr Biol, 2001b, V. 11, P. 268−272.
  112. Losada A., Hirano M. and Hirano T. «Identification of Xenopus SMC protein complexes required for sister chromatid cohesion» // Genes Dev, 1998, V. 12, P. 1986−1997.
  113. Losada A., Yokochi Π’., Kobayashi R. and Hirano T. «Identification and characterization of SA/Scc3p subunits in the Xenopus and human cohesin complexes» // J Cell Biol, 2000, V. 150, P. 405−416.
  114. Lowe J., Cordell S. C. and van den Ent F. «Crystal structure of the SMC head domain: an β€’f ABC ATPase with 900 residues antiparallel coiled-coil inserted» // J Mol Biol, 2001, V.306, P. 25−35.
  115. Lupas A., Van Dyke M. and Stock J. «Predicting coiled coils from protein sequences» I I Science, 1991, V. 252, P. 1162−1164.
  116. Lupo R., Breiling A., Bianchi M. E. and Orlando V. «Drosophila chromosome condensation proteins Topoisomerase II and Barren colocalize with Polycomb and maintain Fab-7 PRE silencing» // Mol Cell, 2001, V. 7, P. 127−136.
  117. M. F. «X-chromosome inactivation. Pinpointing the centre news- comment.» // Nature, 1996, V. 379, P. 116−117. :
  118. M. F. «X-chromosome inactivation: a repeat hypothesis» // Cytogenet Cell Genet, 1998, V. 80, P. 133−137.
  119. MacCallum D. E., Losada A., Kobayashi R. and Hirano T. «ISWI remodeling complexes in Xenopus egg extracts: identification as major chromosomal components that are regulated by INCENP-aurora B» // Mol Biol Cell, 2002, V. 13, P. 25−39.
  120. Mayer M. L., Gygi S. P., Aebersold R. and Hieter P. «Identification of RFC (Ctfl8p, CtfBp, Dcclp): an alternative RFC complex required for sister chromatid cohesion in S. cerevisiae» // Mol Cell, 2001, V. 7, P. 959−970.
  121. Megee P. C., Mistrot C., Guacci V. and Koshland D. «The centromeric sister chromatid cohesion site directs Mcdlp binding to adjacent sequences» // Mol Cell, 1999, V. 4, P. 445 450.
  122. V. H. «Dosage compensation: making IX equal 2X» // Trends Cell Biol, 2000, V. 10, P. 54−59.
  123. Mengiste Π’., Revenkova E., Bechtold N. and Paszkowski J. «An SMC-like protein is required for efficient homologous recombination in Arabidopsis» // Embo J, 1999, V. 18, P. 4505−4512.
  124. Mermoud J. E., Costanzi C., Pehrson J. R. and BrockdorfFN. «Histone macroH2A1.2 relocates to the inactive X chromosome after initiation and propagation of X-inactivation» //J Cell Biol, 1999, V. 147, P. 1399−1408.
  125. Mouse Genome Sequensing Consortium (MGSC). «Initial sequencing and comparative analysis of the mouse genome"//Nature, 2002, V. 420, P. 520−562.
  126. Michaelis C., Ciosk R. and Nasmyth K. «Cohesins: chromosomal proteins that prevent premature separation of sister chromatids» // Cell, 1997, V. 91, P. 35−45. j
  127. Moriya S., Tsujikawa E., Hassan A. K., Asai K., Kodama T. and Ogasawara N. «A Bacillus subtilis gene-encoding protein homologous to eukaryotic SMC motor protein is necessary for chromosome partition» // Mol Microbiol, 1998, V. 29, P. 179−187.
  128. K. «Disseminating the genome: joining, resolving, and separating sister chromatids during mitosis and meiosis» // Annu Rev Genet, 2001, V. 35, P. 673−745.
  129. K. «Segregating sister genomes: the molecular biology of chromosome separation» // Science, 2002, V. 297, P. 559−565.
  130. Π’. Π’., Duthie S. M., Mazurok N. A., Isaenko A. A., Rubtsova N. V., Zakian S. M. and Brockdorff N. «Comparative maPing of X chromosomes in vole species of the genus Microtus» // Chromosome Res, 1998, V. 6, P. 41−48.
  131. Neuwald A. F. and Hirano T. «HEAT Repeats Associated with Condensins, Cohesins, and Other Complexes Involved in Chromosome-Related Functions» // Genome Res, 2000, V. 10, P. 1445−1452.
  132. Panizza S., Tanaka Π’., Hochwagen A., Eisenhaber F. and Nasmyth K. «Pds5 cooperates with cohesin in maintaining sister chromatid cohesion» // Curr Biol, 2000, V. 10, P. 15 571 564.
  133. Panning Π’., Dausman J. and Jaenisch R. «X chromosome inactivation is mediated by Xist RNA stabilization» // Cell, 1997, V. 90, P. 907−916.
  134. Park J. G. and Chapman V. M. «CpG island promoter region methylation patterns of the inactive-X- chromosome hypoxanthine phosphoribosyltransferase (Hprt) gene» // Mol Cell Biol, 1994, V. 14, P. 7975−7983.
  135. C. L. «The SMC family: novel motor proteins for chromosome condensation? «// Cell, 1994, V. 79, P. 389−392.
  136. Prieto I., Suja J. A., Pezzi N. Kremer L., Martinez A. C., Rufas J. S. and Barbero J. L. «Mammalian STAG3 is a cohesin specific to sister chromatid arms in meiosis I» // Nat Cell Biol, 2001, V. 3, P. 761−766.
  137. J. B. «Integrating chromosome structure with function» // Chromosoma, 1992, V. 101, P. 259−264.
  138. Revenkova E., Eijpe M., Heyting C., Gross B. and Jessberger R. «Novel meiosis-specific isoform of mammalian SMC1» //Mol Cell Biol, 2001, V. 21, P. 6984−6998.1
  139. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecula cloning, a laboratory manual. Second edition. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1989
  140. Saitoh N., Goldberg I. and Earnshaw W. C. «The SMC proteins and the coming of age of the chromosome scaffold hypothesis» // Bioessays, 1995, V. 17, P. 759−766.
  141. Saitoh N., Goldberg I. G., Wood E. R. and Earnshaw W. C. «Sell: an abundant chromosome scaffold protein is a member of a family of putative ATPases with an unusual predicted tertiary structure» //J Cell Biol, 1994, V. 127, P. 303−318.
  142. Schmiesing J. A., Ball A. R., Jr., Gregson H. C., Alderton J. M., Zhou S. and Yokomori K. «Identification of two distinct human SMC protein complexes involved in mitotic chromosome dynamics» // Proc Natl Acad Sci U S A, 1998, V. 95, P. 12 906−12 911.
  143. Sharpe M. E. and Errington J. «Upheaval in the bacterial nucleoid. An active chromosome segregation mechanism» //Trends Genet, 1999, V. 15, P. 70−74.
  144. R. V., Corson L. Π’., Koshland D. and Hieter P. «Ctf7p is essential for sister chromatid cohesion and links mitotic chromosome structure to the DNA replication machinery» // Genes Dev, 1999, V. 13, P. 307−319.
  145. A. F. «The origin of interspersed repeats in the human genome» // Curr Opin Genet Dev, 1996, V. 6, P. 743−748.
  146. Smit A. F., Toth G., Riggs A. D. and Jurka J. «Ancestral, mammalian-wide subfamilies of LINE-1 repetitive sequences» // J Mol Biol, 1995, V. 246, P. 401−417.
  147. Steen R L., Cubizolles F., Le Guellec K. and Collas P. «A kinase-anchoring protein (AKAP)95 recruits human chromosome- associated protein (hCAP)-D2/Eg7 for chromosome condensation in mitotic extract» // J Cell Biol, 2000, V. 149, P. 531−536.
  148. Steffensen S., Coelho P. A., Cobbe N., Vass S., Costa M., Hassan Π’., Prokopenko S. N., Bellen H., Heck M. M. and Sunkel Π‘. E. «A role for Drosophila SMC4 in the resolution of sister chromatids in mitosis» // Curr Biol, 2001, V. 11, P. 295−307. Β¦
  149. A. V. «SMC proteins and chromosome structure» // Trends Cell Biol, 1998, V. 8, P. 454−459.
  150. Strunnikov A. V. and Jessberger R. «Structural maintenance of chromosomes (SMC) proteins: conserved molecular properties for multiple biological functions» // Eur J Biochem, 1999, V. 263, P. 6−13.
  151. Strunnikov A. V., Larionov V. L. and Koshland D. «SMC1: an essential yeast gene encoding a putative head-rod-tail protein is required for nuclear division and defines a new ubiquitous protein family» // J Cell Biol, 1993, V. 123, P. 1635−1648.
  152. Strunnikov A. V., Hogan E. and Koshland D. «SMC2, a Saccharomyces cerevisiae gene essential for chromosome segregation and condensation, defines a subgroup within the SMC family» // Genes Dev, 1995, V. 9, P. 587−599.
  153. Stursberg S., Riwar B. and Jessberger R «Cloning and characterization of mammalian SMC1 and SMC3 genes and proteins, components of the DNA recombination complexes RC-l» // Gene, 1999, V. 228, P. 1−12.
  154. Sultana R, Adler D. A., Edelhoff S., Carrel L., Lee К. H., Chapman V. C., Willard H. F. and Disteche Π‘. M. «The mouse Sbl.8 gene located at the distal end of the X chromosome is subject to X inactivation» // Hum Mol Genet, 1995, V. 4, P. 257−263.
  155. Sumara I., Vorlaufer E., Gieffers C., Peters Π’. H. and Peters J. M. «Characterization of vertebrate cohesin complexes and their regulation in prophase» // J Cell Biol, 2000, V. 151, P. 749−762.
  156. I., Vorlaufer E., Stukenberg P. Π’., Kelm O., Redemann N., Nigg E. A. and Peters J. M. «The dissociation of cohesin from chromosomes in prophase is regulated by Polo-like kinase» // Mol Cell, 2002, V. 9, P. 515−525.
  157. Sutani T. and Yanagida M. «DNA renaturation activity of the SMC complex implicated in chromosome condensation» //Nature, 1997, V. 388, P. 798−801.
  158. Sutani Π’., Yuasa Π’., Tomonaga Π’., Dohmae N. Takio К. and Yanagida M. «Fission yeast condensin complex: essential roles of non-SMC subunits for condensation and Cdc2 phosphorylation of Cut3/SMC4» // Genes Dev, 1999, V. 13, P. 2271−2283.
  159. Tanaka K., Hao Z., Kai M. and Okayama H. «Establishment and maintenance of sister chromatid cohesion in fission yeast by a unique mechanism» // Embo J, 2001, V. 20, P. 5779−5790.
  160. Tanaka K., Yonekawa Π’., Kawasaki Y., Kai M., Furuya K., Iwasaki M., Murakami H., Yanagida M. and Okayama H. «Fission yeast Esolp is required for establishing sister chromatid cohesion during S phase» // Mol Cell Biol, 2000, V. 20, P. 3459−3469.
  161. Taylor E. M., Moghraby J. S., Lees J. H., Smit Π’., Moens P. B. and Lehmann A. R. «Characterization of a novel human SMC heterodimer homologous to the Schizosaccharomyces pombe Radl8/Sprl8 complex» // Mol Biol Cell, 2001, V. 12, P. 1583−1594.
  162. Thompson, J.D., Gibson, T.J., Plewniak, F., Jeanmougin, F. and Higgins, D.G. «The ClustalX windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools» //Nucleic Acids Research, 1997 V. 24, P. 4876−4882.
  163. Toth A., Ciosk R., Uhlmann F., Galova M., Schleiffer A. and Nasmyth K. «Yeast cohesin complex requires a conserved protein, Ecolp (Ctf7), to establish cohesion between sister chromatids during DNA replication» // Genes Dev, 1999, V. 13, P. 320−333.
  164. F. «Chromosome condensation: packaging the genome» // Curr Biol, 2001, V. 11, P. R384−387.
  165. Uhlmann F. and Nasmyth K. «Cohesion between sister chromatids must be established during DNA replication» // Curr Biol, 1998, V. 8, P. 1095−1101.
  166. Verkade H. M., Bugg S. J., Lindsay H. D» Carr A. M. and O’Connell M. J. «RadI8 is required for DNA repair and checkpoint responses in fission yeast» // Mol Biol Cell, 1999, V. 10, P. 2905−2918.
  167. Waizenegger I. C., Hauf S., Meinke A. and Peters J. M. «Two distinct pathways remove mammalian cohesin from chromosome arms in prophase and from centromeres in anaphase» // Cell, 2000, V. 103, P. 399−410.
  168. Z., Castano I. Π’., De Las Penas A., Adams C. and Christman M. F. «Pol kaPa: A DNA polymerase required for sister chromatid cohesion» // Science, 2000, V. 289, P. 774 779.
  169. Watanabe Y. and Nurse P. «Cohesin Rec8 is required for reductional chromosome segregation at meiosis» // Nature, 1999, V. 400, P. 461−464.
  170. W. Π’., Streit A. and Li W. «Dosage compensation: X-repress yourself' // Curr Biol, 1997, V. 7, P. R227−230.
  171. Yoshimura S. H., Hizume K., Murakami A., Sutani Π’., Takeyasu K. and Yanagida M. «Condensin architecture and interaction with DNA: regulatory non-SMC subunits bind to the head of SMC heterodimer» // Curr Biol, 2002, V. 12, P. 508−513.
  172. Zakian S.M., Kulbakina N.A., Meyer M.N. et al. Nonrandom inactivation of the X-chromosome in interspecific hybrid voles // Genet. Res. 1987. V.50. P.23−27.
  173. Zakian S.M., Nesterova T.B., Cheryaukene O.V. et. al. Heterochromatin as a factor, affecting the inactivation of the X-chromosome in interspecific hybrid voles // Genet. Res. 1991. V.58. P. 105−110.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ