Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)

Диссертация: Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Наиболее распространенным видом опухолей головного мозга человека, как известно, являются астроцитарные опухоли, отличающиеся значительной вариабельностью структуры в зависимости от степени анаплазии (Burger, Scheithauer, 1994; Escalone Zapata, 1994; Bertossi et. al, 1997). В последнее время в диагностике опухолей начали использоваться некоторые иммуногистохимические методы, основанные… Читать ещё >

Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Строение нейроглии и микрососудов головного мозга в 8 норме
    • 1. 2. Морфология опухолей астроцитарного ряда
  • 3. ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • 4. ГЛАВА З. ИЗМЕНЕНИЕ КОМПОНЕНТОВ 57 ГЕМАТОЭНЦЕФАЛИЧЕСКОГО БАРЬЕРА В ОПУХОЛЯХ ГОЛОВНОГО МОЗГА АСТРОЦИТАРНОГО РЯДА И В ПЕРИОПУХОЛЕВОЙ ЗОНЕ
  • 5. ГЛАВА 4. ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКАЯ 102 ХАРАКТЕРИСТИКА ОПУХОЛЕЙ АСТРОЦИТАРНОГО

В настоящее время морфологическому изучению опухолей нервной системы посвящено большое число исследований (Wahl et. al, 1991; Rutten et. al, 1992; Pascual-Castroviejo et. al, 1995; Liberski, Kordek, 1997; Demuth T., Berens M. E., 2004; Hartmann C, et al., 2005). Однако данный раздел онкологии остаётся одним из наименее изученных, что связано со сложностью структурной организации нервной системы (Zorzi et. al, 1992; Scarpelli et. al, 1994; Tomlinson et. al, 1994).

Наиболее распространенным видом опухолей головного мозга человека, как известно, являются астроцитарные опухоли, отличающиеся значительной вариабельностью структуры в зависимости от степени анаплазии (Burger, Scheithauer, 1994; Escalone Zapata, 1994; Bertossi et. al, 1997). В последнее время в диагностике опухолей начали использоваться некоторые иммуногистохимические методы, основанные на выявлении белков, специфичных для клеток разного гистогенетического происхождения (Zorzi et. al, 1992; Luo, 1993; Huang et al., 1996). Несмотря на значительные достижения в этой области, многие вопросы остаются недостаточно выясненными: в частности, некоторые антигенные характеристики клеток пролиферирующих сосудов и гигантских клеток, распределение трех изоформ NO синтазы в тканях опухолей. Противоречивые данные относятся даже к выявлению глиального фибриллярного кислого белка (ГФКБ) — иммуноположительные клетки встречаются при всех опухолях астроцитарного ряда, степень реакции различается и зависит не только от степени злокачественности опухоли, но и от местных тканевых особенностей строения опухолей (Березин, 1985; Burger Р. С. et al., 1991; Коршунов А. Г., Лахтеева C.B., 1998).

В прогрессии опухолей головного мозга немаловажное значение придается пролиферации клеток кровеносных сосудов (Jansen M. et al., 2004; Demeule Met al., 2004). Взаимосвязь опухолевых клеток с кровеносными сосудами описана в ряде работ (Sumpio В. Е. et al., 2002), однако остается недостаточно выясненной, особенно методом иммуногистохимии и электронной микроскопии.

Морфологическому изучению нарушения компонентов гематоэнцефалического барьера при опухолях головного мозга посвящено большое число исследований (Bertossi M. et al., 1997; Demeule M. et al., 2004). Однако остается множество нераскрытых вопросов, и самый главный из них: каковы структурные причины нарушения гематоэнцефалического барьера.

Целью работы является изучение ультраструктурных и иммуногистохимических особенностей клеток пролиферирующих сосудов микроциркуляторного русла и периваскулярной области в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека, а также исследование экспрессии белков промежуточных филаментов и других антигенных свойств опухолевой ткани астроцитом разной степени дифференцировки.

Задачи исследования.

1. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически исследовать структурные проявления нарушения компонентов гематоэнцефалического барьера при астроцитарных анапластических опухолях головного мозга человека.

2. Исследовать изменения в ультраструктуре эндотелиоцитов, перицитов и астроцитов (в области контактов отростков астроцитов с базальной мембраной эндотелия).

3. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически изучить перифокальную зону при анапластических астроцитарных опухолях головного мозга на нейрохирургическом материале.

4. Изучить экспрессию ряда иммуногистохимических маркеров (ГФКБ, виментин, белок 8−100, нейрофиламенты, коллаген IV типа, пролиферационный маркер Кл-67, онкопротеин р53) в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга и в периопухолевой зоне.

5. Провести анализ экспрессии >Ю-синтазы (три изоформы) в опухолях головного мозга астроцитарного ряда.

Научная новизна работы. Впервые проведено комплексное морфологическое исследование анапластических астроцитарных опухолей головного мозга на разных уровнях структурной организации. Установлено что, интерстициальный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности. Это является причиной нарушения гематоэнцефалического барьера.

Электронно-микроскопически и иммуногистохимически впервые выявлено что, пролиферирующие кровеносные капилляры отличаются суженным просветом и усиленным развитием внеклеточного периваскулярного компонента (резкое утолщение эндотелиальной базальной мембраны и большое число волокон коллагена), таким образом, периваскулярный компонент уплотняется и, это является компенсаторным механизмом для предупреждения дальнейшего нарушения гематоэнцефалического барьера.

Изучение и сопоставление операционного и аутопсийного материала показало что, в сосудистых клубках пролиферирующий эндотелий является виментиниммунопозитивным и N0 синтаза (три изоформы) — иммунонегативным, что говорит о мезенхимальном происхождении пролиферирующего эндотелия и о не способности пролиферирующего эндотелия продуцировать N0.

Впервые выявлены морфологические особенности периваскулярных гигантских клеток глиобластом, иммуногистохимически установлено, что часть из них являются ГФКБ-иммунонегативными и электронно-микроскопически не содержат промежуточные филаменты в цитоплазме перикариона.

На основе последовательного анализа выявлено что, многие опухолевые астроциты в астроцитарных опухолях являются N0 синтаза (три изоформы) -иммунопозитивными. При этом в высокоанапластических астроцитомах положительная реакция наблюдалась гораздо чаще, чем в низкоанапластических. Максимальная степень иммунореактивности выявлена для индуцибельной формы N0 синтазы.

На фоне выраженной неоднородности морфологической картины впервые установлено что, в анапластических опухолях встречается большое число гигантских атипических клеток, которые теряют способность экспрессировать ГФКБ, характерный маркер для данного типа клеток. Напротив реакция на виментин практически всегда была положительной. Данная закономерность указывает на то, что данные клетки идут по пути дедифференцировки, так как виментин появляется на более ранних сроках созревания клеток.

Установлено, что в периопухолевой зоне анапластических астроцитом и глиобластом гиперплазия астроцитарной глии более выражена по сравнению с доброкачественными астроцитомами и многие ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрессируют виментин. Это свидетельствует о том, что реактивные астроциты зрелые клетки.

Научно-практическое значение работы. Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне. Изучены структурные основы нарушения гематоэнцефалического барьера и функционально неполноценного ангиогенеза. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике астроцитарных опухолей головного мозга человека. Эти данные используются патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга. Материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологической анатомии и нейрохирургии.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Особенности ультраструктурной организации и иммуногистохимической характеристики пролиферирующих кровеносных сосудов и неопластических астроцитов в опухолевой ткани и периопухолевой зоне.

2. Структурные основы нарушения гематоэнцефалического барьера при анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека.

3. Экспрессия белков цитоскелета и других иммуногистохимических маркеров в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека.

4. Закономерности экспрессии 3-х изоформ NO-синтазы в астроцитарных опухолях головного мозга человека.

Апробация работы. Материалы и основные положения диссертации доложены и обсуждены на конференции «Гистохимический анализ изменчивости и регенерации тканей» (г. С.-Петербург, 1997) — конференциях молодых ученых Мордовского госуниверситета им. Н. П. Огарева (Саранск, 1997, 1998) — Международном симпозиуме «Структура и функции вегетативной нервной системы» (г. Воронеж, 1998) — Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины» (Пенза, 2000) — Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической медицины» (Пенза, 2004).

Внедрение в практику. Полученные результаты исследования позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике анапластических астроцитарных опухолей головного мозга в практике патологоанатомов, онкологов. Эти данные используются при чтении лекций и на практических занятиях по гистологии и патологической анатомии в Казанском государственном медицинском университете, Саратовском государственном медицинском университете, Пензенском медицинском институте.

По материалам диссертации опубликовано 23 научные работы.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 217 страницах машинописи, состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, списка литературы, 87 рисунков.

Список литературы

включает 430 наименований, из которых 44 отечественных и 386 иностранных.

ВЫВОДЫ.

1. Электронно-микроскопически в пролиферирующих сосудах опухолевой ткани глиобластом и анапластических астроцитом выявлено отсутствие нарушений межэндотелиальных соединений (показано^ что области простых и специализированных контактов между соседними клетками имеют не измененную ультраструктуру, сохраняется? большое число плотных контактов между эндотелиальными клетками):

2. Доказано нарушение трансэндотелиального транспорта: в пролиферирующих кровеносных микрососудах проявляющееся в отсутствии микропиноцитозных пузырьков в цитоплазме эндотелиальных клеток.

3. Установлено, что межклеточный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электроннойплотности, что свидетельствует о нарушении клеток ее производящих и является ведущей причиной нарушения гематоэнцефалического барьера.

4. Иммуногистохимически выявлено, что с увеличением степени злокачественности в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга количество — клеток экспрессирующих ГКФБ и виментин возрастает, причем количество ГФКБ-позитивных клеток меньше, чем количество виментин-позитивных клеток.

5. Установлена неравномерная реакция клеток на виментин в пролиферирующих клетках стенки кровеносных сосудов в астроцитарных опухолях (доброкачественных астроцитомах, анапластических астроцитомах и глиобластомах), что может свидетельствовать о разной гистогенетической их природе или неодинаковой степени дифференцировки.

6. В периваскулярном пространстве пролиферирующих кровеносных сосудов глиобластом и анапластических астроцитом выявлено наличие гигантских клеток, которые иммуногистохимически не давали положительной реакции на ГКФБ, а на ультраструктурном уровне в них отсутствовали глиофиламенты, что свидетельствует о том, что данные клетки не астроцитарного происхождения.

7. Установлено, что опухолевые астроциты во всех астроцитарных новообразованиях являются иммунопозитивными на три изоформы (нейрональную, индуцибельную и эндотелиальную) N0 синтазы с максимальной реакцией (увеличение количества иммунопозитивных клеток и степени окраски) на индуцибельную форму фермента. Выявлено, что в высокоанапластических астроцитомах и глиобластомах число иммунопозитивных клеток и степень окраски были значительно выше, чем в доброкачественных астроцитомах.

8. Выявлено, что N0 синтаза — иммунореактивные клетки на все три изоформы преимущественно локализуются около пролиферирующих кровеносных сосудов и участков некроза и многие митотически делящиеся клетки являются N0 синтаза — иммунопозитивными, что свидетельствует в прямом их участии гиперпродукции N0 в васкуляризации опухолей мозга. В нормальной периопухолевой ткани положительная реакция была только на? N08 и еЖ)8, а на п>Ю8 не давало положительной реакции.

9. Установлено, что в периопухолевой зоне анапластических астроцитарных опухолей (анапластические астроцитомы и глиобластомы) ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрессируют виментин, а также интенсивность реакции была значительно выше в высокоанапластичных опухолях (+++), чем в доброкачественных астроцитомах (+).

10.' Выявлено, что в доброкачественных астроцитомах степень иммунореактивности на антитело Кл-67 выше, чем в анапластических астроцитомах и глиобластомах, что может свидетельствовать о низкой митотической активности в низкоанапластических опухолях.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне межклеточных основах нарушения гематоэнцефалического барьера и функционально неполноценного ангиогенеза. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике конкретно взятой опухоли. Эти данные могут быть использованы патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга, а также материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологии и невропатологии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.П., Вихерт Т. М., Касумова С. Ю. Международная гистологическая классификация опухолей центральной нервной системы (ВОЗ). Вопр. нейрохир., — 1981, № 2, стр.45−51
  2. В.В., Гайнутдинов Х. Л., Гайнутдинова Т. Х., Мухамедшина Д. И., Штарк М. Б. Мембранотропные эффекты малых доз антител к белку S100 // Бюлл. экспер. биол. мед. 2003. — Прил. 1. — С.24−27.
  3. В.В., Касумова С. Ю. Опухоли центральной нервной системы // Патологоанатомическая диагностика опухолей человека: Рук-во в 2 т. — Т.2 / Под. ред. H.A. Краевского, A.B. Смольяникова, Д. С. Саркисова. —М.: Медицина, 1993. — С. 600−620.
  4. В.В., Алимов Г. А. Эндотелий как метаболически активная ткань: синтетические и регуляторные функции. //Морфология. 1992. — Т. 102.- N 2.-С. 10−35.
  5. Я.В. От химической топографии мозга к нейроспецифическим белкам и их функциям. Биохимия животных и человека: Биохимия белков нервной системы. 1980. Вып.4. С.11−22.
  6. Г. А., Белик Я. В. Распределение нейроспецифических белков S-100 и антигена D в субклеточных фракциях головного мозга. Докл. АН УССР. Сер.Б. 1981. С.60−62.
  7. В.А., Белик Я. В. Специфические белки нервной ткани. Киев. Наукова думка. 1990.
  8. В.А., Жмарева E.H., Ромоданов С. А. и др. Нейроспецифические белки в диагностике опухолей головного мозга человека. Вопр. онкологии. 1985. Т.31. С.7−17.
  9. В.А., Жмарева E.H., Шаповал Т. И., Жолудь Л. М. Нейроспецифические мембранные антигены в опухолях мозга челоека. Нейрохимия. 1984. Т 3. С.269−275.
  10. Ю.Березин В. А., Шевченко Г. М. Нейроспецифические белки цитоскелета. Укр. биохим. журн. 1987. Т.59. С.105−115.
  11. П.Березин В. А., Шевченко Г. М., Жмарева E.H. и др. Кислый глиальный фибриллярный белок в опухолях головного мозга человека различной гистоструктуры и степени злокачественности. Нейрохимия. 1984. Т.53. С.327−328.
  12. В.А., Шевченко Г. М., Бунятян Г. Г. и др. Специфические белки промежуточных филаментов в нервной ткани и опухолях. Нейрохимия 1987. Т.7. С.77−82.
  13. Ю.Ю. Использование отечественных моноклональных антител. в патоморфологической диагностике опухолей центральной нервной системы человека (Автореферат кандидатской диссертации). Москва, 1994.
  14. Ю.Ю., Бухвалов И. Б., Василов Р. Г. Дифференциальная иммуноцитохимическая диагностика опухолей центральной нервной системы человека с помощью моноклональных антител. Арх. пат. 1996. № 2, С.28−32.
  15. А.Н., Павлов A.B. Пролиферативные свойства клеточных дифферонов сосудистой стенки // Морфология. 1998. — Т. 113. — N 2. — С. 66 -70.
  16. Л.И., Березин В. А., Василов Р. Г. Экспрессия ГФКБ в развивающемся мозге человека. Биохимия. 1991. Т.56. С.1322−1323.
  17. И., Ениш В. Возможности и пределы применения иммуногистохимической диагностики опухолей центральной нервной системы. Архив патологии. 1987. С.3−11
  18. Д.Г. Нейронально-глиальные опухоли ЦНС у детей // Избранные вопросы онкоморфологии: Сб. науч. работ / Под ред. проф. Г. И. Кравцовой. —Мн.: МГМИ, 2000. — С.45−53.
  19. Ю.А., Гридина Н. Я. Молекулярная генетика глиом и перспективы молекулярной нейрохимии//Вопр. нейрохирургии.— 1998.— 4.— С.45—51.
  20. Г. К., Норенберг М. Д. Астроциты. В мире науки. 1989. № 6. С.32−41.
  21. A.B. Биология менингиом: современное состояние проблемы // Вопросы нейрохирургии. — 2001. — № 1. — С. 32−37.
  22. А.Т., Галанов A.B., Сычева Р. В., Пронин И. Н. Прогностическое значение онкоассоциированных белков и апоптоза в глиобластомах больших полушарий головного мозга //Вопр. нейрохирургии.— 1999.— 1.— С. З—7.
  23. А.Г., Сычёва Р. В. Экспрессия глиального фибриллярного кислого белка и белка S- 100 в астроцитарных глиомах головного мозга различной степени злокачественности (Иммунногистохимические исследования). Арх. патол. 1995. № 4, С. 16−25.
  24. А.Г., Лахтеева C.B., Иммуногистохимическое изучение экспрессии эпителиального антигена ber ер4 и других тканеспецифических антигенов в первичных и метастатических опухолях головного мозга. Архив патологии № 6, 1998, стр. 40−47.
  25. Коршунов А. Г, Сычёва Р. В. Иммунногистохимическое изучение экспрессии антител ядер пролиферирующих клеток в астроцитарных глиомах больших полушарий головного мозга. Арх. пат. 1996. № 2. С.32−37.
  26. Коршунов А. Г, Сычёва Р. В. Иммунногистохимическое изучение экспрессии онкобелка р53 в астроцитарных глиомах больших полушарий головного мозга. Арх. пат. 1996. № 6. С.37−42.
  27. В.В., Миронов В. А., Миронов A.A., Турина О. Ю. Ангиогенез: Образование, рост и развитие кровеносных сосудов // М.: НИО Квартет, 1993.-201 с.
  28. В.Г., Никитин В. П., Шерстнев В. В. Влияние антител против белка S100 В на синаптическую передачу и долговременную потенциацию нейронов области CAI гиппокампа крысы // Бюлл. экспер. биол. мед. — 2002.-Т. 133. -№ 2. -С. 132−135.
  29. М. А., Иванов А. А. Межклеточные взаимодействия. М, 1995.
  30. Н.Т. Гистохимия в диагностике опухолей человека. Вопросы онкологии. 1984. Т.З. № 4. С.97−110.
  31. Н.Т., Петров C.B. Актуальные проблемы онкоморфологии. Сборник научн. трудов к 100-летию со дня рождения проф. М. Ф. Глазунова. Под редакц. Н. М. Аничкова, А. Е. Колосова. 1996. С.100−109.
  32. Н.Т., Петров C.B. Основные этапы иммуногистохимической диагностики опухолей человека. Арх. патол. 1997. № 4. С. 14−19.
  33. Л.И. Опухоли головного и спинного мозга.- М.,"Медгиз"., 1962.
  34. . А.А., Чучков В. М. Концепции и принципы организации нервной системы. Российские морфологические ведомости. 1995. № 1. С.57−61.
  35. А.А., Чаиркин И. Н., Одыванова Л. Р., Гуски Г., Цервос-Наварро Д. Синтаза окиси азота в нейроэпителиальных опухолях головного мозга. Архив патологии 1997. № 6. С.61−65.
  36. А. А. Цитокины суперсемейства ЭФР и онкогенез. Эксперим. онкология.— 1998.— 20 (2).— С.83—108.
  37. Ю.А. Курс гистологии. 2-е изд. Казань. 1995. С.34−40.
  38. М.Б. Мозгоспецифические белки (антигены) и функции нейрона.-М.: Медицина, 1985.-319 с.
  39. Adachi J., Kazumoto К., Uki J. Et al. Sekretory meningioma: a case report with immunohistochemical and ultrastructural study. Noshuyo. Biori. 1993. V.20. P.93−98.
  40. Adamek D., Kaluza J., Stachura K. Primary ballon cell malignant melanoma of the right temporo-parietal region arising from meningeal naevus. Clin. Neuropathol. 1995. V.14. P.29−32.
  41. Allcutt D., Michowiz S., Weizman S. et al. Primary leptomeningeal melanoma: an unusually aggressive tumor in childhood. Neurosurg. 1993. V.32. P.721−729.
  42. Almqvist P. M, Mah R, Lendahl U, Jacobsson B, Hendson G. Immunohistochemical detection of nestin in pediatric brain tumors. J Histochem Cytochem. 2002 Feb. 50 (2): 147−58.
  43. Alonso M, Tamasdan C, Miller D. C, Newcomb E.W. Flavopiridol induces apoptosis in glioma cell lines independent of retinoblastoma and p53 tumor suppressor pathway alterations by a caspase-independent pathway. Mol Cancer Ther. 2003 Feb- 2 (2): 139−50.
  44. Altermatt H.J., Sheperd C.W., Scheithauer B.W., Gomez M.R. Subependymal giant cell astrocytoma. Zentralb. Pathol. 1991. V.137. P.105−116.
  45. Amelio F.D., Gibbs M.A., Mehler W. Et al. Immuncytochemical localisation of glial fibrillary acidic protein (GFAP) in the area posteria of the cat. Light and electron microscopic study. In Brain research. 1985. V.330. P.146−149.
  46. Anderson DJ: Stem cells and pattern formation in the nervous system: the possible versus the actual. Neuron 30: 19−35, 2001
  47. Armond S.J. de, Eng L.F., Rubinstein L.J. The apposition of glial fibrillary acidic (GFA) protein immunohistochemistry in neurooncology. Path. Res. Pract. 1980. V.168. P.374−394.
  48. Asa S.L., Kovacs K., Bilbao J.M., Penz G. Immunhistochemical localization of keratin in craniopharyngiomas and squamous cell nests of the human pituitary. Acta. Neuropathol. 1981. V.54. P.257−260.
  49. Autilio-Gambetti L., Sipple J., Sudilovsky O., Gambetti P. Intermediate filaments of Schwann cells. J. Neurochem. 1982. V.38. P.774−780.
  50. Bakshi A., Nag T.C., Wadhwa S. et al. The expression of nitric oxide synthase in human brain tumouros and peritumoral areas //J. Neurol. Sci.— 1998. — 155. — P. 196—203
  51. Banks W.A. Blood-brain barrier transport of cytokines: a mechanism for neuropathology. Curr Pharm Des. 2005- 11 (8): 973−84.
  52. Bar H., Schlote W. Malignant melanoma in the CNS, subtyping and immunocytochemistry. Clin. Neuropathol. 1997. V.16. P.337−345.
  53. Barnett FH, Scharer-Schuksz M, Wood M, Yu X, Wagner TE, Friedlander M. Intra-arterial delivery of endostatin gene to brain tumors prolongs survival and alters tumor vessel ultrastructure. Gene Ther. 2004 Aug- 11 (16): 1283−9.
  54. Bates S.E., Longo D.L. Tumor markers: Value and limitations in the management of cancer patients. Cancer Treat. Revs. 1985. V.12. P. 163−207.
  55. Battifora H. Recent progress in the immunhistochemistry of solid tumours. Semin. Diagn. Pathol. 1984. V.l. P.251−268.
  56. Becker I., Paulus W., Roggendorf W. Histogenesis of stromacells in cerebellar hemangioblastomas. An immunohistochemical study. 1989. Am. J. Pathol. V.134. P.271−275.
  57. Bell H. S, Whittle I. R, Walker M, Leaver H. A, Wharton S.B. The development of necrosis and apoptosis in glioma: experimental findings using spheroid culture systems. Neuropathol Appl Neurobiol. 2001 Aug. 27 (4): 291−304.
  58. Berezin V.A., Gajdar L.I. Analysis of human intermediate filament proteins by use of monoclonal antibody. 14th Int. Congr. Biochem. Prague: S.n. 1988.-MO: 350.-P.146.
  59. Bertossi M., Virintino D., Maiorano E., Occhiogrosso M., Roncali L. Ultrastructural and morphometric investigation of human brain capillaries in normal and peritumoral tissues. Ultrastruct/ Pathol., 1997. 21(1). P.41−49.
  60. Bhat V.R., Arimoto K., Warecka K., Brunngraber E.G. Expression of a2-glicoprotein by glial precursor cells: An immunocytochemical study with glial cultures. Rev. Brein Res. 1986. V.29. P.31−36.
  61. Blottner D., Schmidt H., Baumgarten H. Nitroxergic autonomic neurones in rat spinal cord. Neuroreport. 1993. V.4. P.923−926.
  62. Blumcke I, Luyken C, Urbach H, Schramm J, Wiestier O.D. An isomorphic subtype of long-term epilepsy-associated astrocytomas associated with benign prognosis. Acta Neuropathol (Berl). 2004 May- 107 (5):381−8.
  63. Bo L., Dawson T.M., Wesselingh S., Mork S. et al. Induction of nitric oxide synthase in demyelinating regions of multiple sclerosis brains. Ann. Neurol. 1994. V.63. P.910−915.
  64. Bottiger BW, Mobes S, Glatzer R, Bauer H, Gries A, Bartsch P, Motsch J, Martin E. Astroglial protein S-100 is an early and sensitive marker of hypoxic brain damage and outcome after cardiac arrest in humans. Circulation. 2001 Jun 5−103(22):2694−8.
  65. Brady J, Neal J, Sadakar N, Gasque P. Human endosialin (tumor endothelial marker 1) is abundantly expressed in highly malignant and invasive brain tumors. J Neuropathol Exp Neurol. 2004 Dec- 63 (12): 1274−83.
  66. Braus D.F., Schwechheimer K., Muller-Hermelink H.K. et al. Primary cerebral malignant non-Hodgkin's lymphomas: a retrospective clinical study. J. Neurol. 1992. V.239. P. l 17−124.
  67. Bredt D.S., Glatt C., Hwang P.M., Fotuhi M., Dawson T.M., Snyder S.H. Nitrix oxide synthase protein and mRNA are discretely localized in neuronal populations of the mammalian CNS together with NADPH diaphorase. Neuron. 1991. V.7. P.615−620.
  68. Bredt D.S., Hwang P.V., Glatt C.E., Lowenstein C., Reed R.R., Snyder S.H. Cloned and expressed nitric oxide synthase structurally resembles cytochrome P-450 reductase. Nature. 1991. V. 351. P.714−718.
  69. Bredt D.S., Hwang P.M., Snyder S.H. Localisation of nitric oxide synthase indicating a neural role for nitric oxide. Nature. 1990. V. 347. P.768−771.
  70. Brewton LS, Haddad L, Azmitia EC. Colchicine-induced cytoskeletal collapse and apoptosis in N-18 neuroblastoma cultures is rapidly reversed by applied S-lOObeta. Brain Res. 2001 Aug 31−912(1):9−16.
  71. Broholm H, Laursen H. Vascular endothelial growth factor (VEGF) receptor neuropilin-l's distribution in astrocytic tumors. APMIS. 2004 Apr-May- 112 (45): 257−63.
  72. Bullon M., Alvare-Gagu T. et al. Glial fibrillary acidic (GFA) protein in rat spinal cord. An immunoperoxidase study in semithin sections. Brain Res. 1984. V.309. P.79−83.
  73. Burger P.C., Fuller G.N. Pathology — Trends and pitfalls in histologic diagnosis, immunopathology, and applications of oncogene research // Neurol. Clin. — 1991. — 9. — P. 249−272.
  74. Burger P.C., Scheithauer B.W. Tumors of the central nervous system. Atlas of tumor pathology. Armed. Foces Institute of Pathology. Washington. 1994.
  75. Bussolati G., Gulgiotta R., Sapino A., Eusebi V., Lloyd R.V. Chromogranin-reactive endocrine cells in argyrophilic carcinomas and normal tissue of the breast. Am. J. Pathol. 1985. V.120. P.186−192.
  76. Butti G., Assietti R., Casalone R. et al. Multiph. Meningiomas: a clinical, surgical and cytogenetic analysis. Surg. Neurol. 1989. V.31. P.255−260.
  77. Cameron P. L, Liu C, Smart D. K, Hantus S. T, Fick JR, Cameron R.S. Caveolin-1 expression is maintained in rat and human astroglioma cell lines Glia. 2002 Mar 1- 3 7(3): 275−90.
  78. Cancilla P. A, Bready J., Berliner J. Brain endothelial-astro-cyte interaction // Pardridge W. M. The Blood-Brain Barrier. Cellular and Molecular Biology. -New York, 1993.-P. 25−46.
  79. Carlei F., PolakJ.M., Ceccamea A., Marangos P.J., Dahl D., Cocchia D., Michetti F., Lezoche E., Speranza V. Neuronal and glial markers in tumours of neuroblastic origin. Virchows Arch. (Pathol. Anat.) 1984. V.404. P.313−324.
  80. Cavalla P., Schiffer D. Cell cycle and proliferation markers in neuroepithelial tumors. Anticancer. Res. 1997. V.17. P.4135−4143.
  81. Cervos Navarro J, Kunas RC, Sampaolo S, Mansmann U. Heart mitochondria in rats submitted to chronic hypoxia. Histol Histopathol. 1999 Oct- 14 (4): 104 552.
  82. Cervos-Navarro J, Sharma HS, Westman J, Bongcam-Rudloff E. Glial reactions in the central nervous system following heat stress. Prog Brain Res. 1998- 115: 241−74.
  83. Choi B.H., Kim R.S. Expression of glial fibrillary acidic protein in immature oligodendroglia. Science. 1984. V.223. P.407−409.
  84. Chozick B.S., Pezullo J.C., Epstein M.H. et al. Neurosurgery. 1994. V.35. P.831−838.
  85. Clark H.B., Hartman B.K. S-100 protein as an immunohistochemical marker for neoplasms of glial and Schwann cell origin. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1981. V40.P.335.
  86. Coakham H.B., Garson J.A., Allan P.M., Harper E.I., Brownell B., Kemshead J.T., Lane E.B. Immunhistological diagnosis of central nervous system tumours using a monoclonal antibody panel. J. Clin. Pathol. 1985. V.38. P. 165−173.
  87. Cobbs C.S., Brenman J.E., Aldape K.D., Bredt D.S., Israel M.A. Expression of nitric oxide synthase in human central nervous system tumors. Cancer Res. 1995. V.55. P.727−731.
  88. Cocchia D., Miani N. Immunocytochemical localization of the brain-specific S-100 protein in the pituitary gland of adult rat. J. Neurocytol. 1980. V.9. P.771−782.
  89. Cocchia D., Tiberio G., Santarelli R., Michetti F. S-100 protein in «follicular-dendritic» cells of rat lymphoid organs. An immunochemical and immunocytochemical study. Cell and Tissue Res. 1983. V.230. P.95−103.
  90. Coffin C.M., Braun J.T., Wick M.R., Dehner L.P. Choroid plexus neoplasia: an immunohistochemical study with clinicopathologic correlation. Lab. Invest. 1985. V.52. P. 15.
  91. Cohn D.V., Zangerle R., Fischer-Colbrie R., Chu L.L.H., Elting J.J., Hamilton J.W., Winkler H. Similarity of secretory protein I from parathyroid gland to chromogranin A from adrenal medulla. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V.79. P.6056−6059.
  92. Coons S.W., Johson P.C., Pearl D.K. The prognostic significance of Ki-67 labeling indices for oligodendrogliomas. Neurosurgery. 1997. V.41. P.878−884.
  93. Cooper D., Schermer A., Sun T.T. Classification of human epithelia and their neoplasms using monoclonal antibodies to keratins: strategies, applications, and limitations. Lab. Invest. 1985. V.52. P.243−256.
  94. Cowin P., Mattey D., Garrod D. Identification of desmosomal surface components (desmocollins) and inhibition of desmosome formation by specific Fab'. J. Cell. Sci. 1984. V.70. P.41−60.
  95. Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W. The complement of desmosomal plaque proteins in different cell types. J. Cell. Biol. 1985. V.101. P.1442−1454.
  96. Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W., Tamkun J., Hynes R.O. Plakoglobin: a protein common to different kinds of intercellular adhering junctions. Cell. 1986. V.46. P. 1063−1073.
  97. Cras P., Martin J.J., Gheuens J. y-Enolase and glial fibrillary acidic protein in nervous system tumors. An immunhistochemical study using specific monoclonal antibodies. Acta. Neuropathol. 1988. V.75. P.377−384.
  98. Cumming R., Burgoyne R.D. Compartmentalization of neuronal cytoskeletal proteins. Biosci. Rep. 1983. V.3. P.997−1006.
  99. Cunningment J.M., Kimmel D.W., Scheithauer B.W. Analysis of proliferation markers and p53 expression in gliomas of astrocytic origin: relationships and prognostic value. J. Neurosurg. 1997. V.86. P. 121−130.
  100. Dahl D., Bignami A. Intermediate filaments in nervous tissue. In: Shay J.W. Cell. And muscle motility. 1985. V.6. Plenum Press. New York. P.75−96.
  101. Dahl D., Rueger D.C., Bignami A., Weber K., Osborn M. Vimentin, the 57 000 molecular weight protein of fibroblast filaments, is the major cytoskeletal component in immature glia. Eur. J. Cell. Biol. 1981. V.24. P. 191−196.
  102. Dahl D., Chi N.H., Miles L.E., Nguyen B.T. Glial fibrillary acidic (GFA) protein in Schwann cells: fact or artifact? J. Histochem. Cytochem. 1982. V.30. P.912−918.
  103. Dai C, Holland EC: Astrocyte difeerentiation states and glioma formation. Cancer J 9: 72−81,2003
  104. Daimaru Y., Hashimoto H., Enjoji M. Malignant peripheral nerve-sheath tumors (malignant schwannomas). An immunohistochemical study of 29 cases. Am. J. Surg. Pathol. 1985. V.9. P.434−444.
  105. Damianov I. Antibodies to intermediate filaments and histogenesis. Lab. Invest. 1982. V.47. P.215−217.
  106. Danks R.A., Chopra G., Gonzales M.F. et al. Neurosurgery. 1995. V.37. P.246−254.
  107. Daugherty CK, Banik DM, Janish L, Ratain MJ. Quantitative analysis of ethical issues in phase I trials: a survey interview of 144 advanced cancer patients. IRB. 2000 May-Jun- 22(3):6−14.
  108. Daumas-Duport C., Scheithauer B., O’Fallon J. et al. Grading of astrocytomas. A simple and reproducible method // Cancer. — 1988. — Vol. 62. — P. 2152−2165.
  109. Daumas-Duport C., Scheithauer B.W., O’Fallon J.R., Kelly P.J. Cancer. 1988. V.62. P.2152−2165.
  110. DeAngelis LM: Brain tumors. N Engl J Med 344: 114−123, 2001
  111. DeArmond S.J., Eng L.F., Rubinstein L.J. The application of glial fibrillary acidic (GFA) protein immunhistochemistry in neurooncology. A progress. Report. Pathol. Res. Pract. 1980. V.168. P.374−394.
  112. Dejana E., Corada M., Lampugnani M.G. Endothelial cell-to-cell junctions//FASEB J.- 1995, — v.9.- N.10.- p.910−918.
  113. DeLellis R.A. Diagnostic immunohistochemistry. Masson. New York. 1981.
  114. De Lellis R.A. Diagnostic Immunohistochemistry. 1988. New York.
  115. DeLellis R.A. Advances in immunhistochemistry. Raven. Press. New York. 1988.
  116. Demuth T, Berens M.E. Molecular mechanisms of glioma cell migration and invasion. J Neurooncol. 2004 Nov. 70 (2): 217−28.
  117. Demeule M, Regina A, Annabi B, Bertrand Y, Bojanowski M. W, Beliveau R. Brain endothelial cells as pharmacological targets in brain tumors. Mol Neurobiol. 2004 Oct. 30 (2): 157−83.
  118. Denk H. Morphologische Nachweismethoden: Methodisches Spektrum (Prinzipien, Mechanismen und Wertigkeit). Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1986. V.70. P. 18−27.
  119. Denk H. Immunhistochemical Methods for the demonstration of tumor markers. In: Seifert G. Morphological tumor markers. General aspects and diagnostic relevance. Springer, Berlin Heidelberg. New York. 1987. P.47−69.
  120. DeStephano D.B., Lloyd R.V., Pike A.M., Wilson B.S. Pituitary adenomas. An immunohistochemical study of hormone produktion and chromogranin localization. Am. J. Pathol. 1984. V.116. P.464−472.
  121. Di X., Nishizaki T., Harada K., Kajiwara K., Nakayama H., Ito H. Proliferative potentials of glioma cells and vascular components determined with monoclonal antibody MIB-1. J. Exp. Clin. Cancer. Res. 1997. V.16. P.153−157.
  122. Di Carlo E.F., Woodruff J.M., Bansal M., Erlandson R.A. The purely epithelioid malignant peripheral nerve sheath tumor. Am. J. Surg. Pathol. 1986. V.10. P.478−490.
  123. Dinerman J.L., Dawson T.M., Schnell M.J., Snowman A., Snyder S.H. Endotelial nitric oxide synthaselocalized to hippocampal pyramidal cell: implication for synaptic plasticity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91. P.4214−4218.
  124. Doglioni C., dell’Orto P., Coggi G., Iuzzolino P., Bontempini L., Viale G. Choroid plexus tumors. An immuncytochemical study with particular reference to the coexpression of intermediate filament proteins. Am. J. Pathol. 1987. V.127. P.519−529.
  125. Donato R. SI 00: a multigenic family of calcium-modulated proteins of the EF-hand type with intracellular and extracellular functional roles. Int. J. Biochem. Cell. Biol. 33 (2001), pp. 637−668.
  126. Doolittle N.D. State of the science in brain tumor classification. Semin Oncol Nurs. 2004 Nov- 20 (4):224−30.
  127. Du Plessis D. G, Rutherfoord G. S, Joyce K. A, Walker C. Phenotypic and genotypic characterization of glioblastoma multiforme with epithelial differentiation and adenoid formations. Clin Neuropathol. 2004 Jul-Aug- 23 (4): 141−8.
  128. Dupoury P., Lucas C.V., Gomes D., Jacque C. Immunohistochemical localization of the myelin basic protein and of the glial fibrillary acidic protein: comparative study of normal, quaking and simpi mice/ J. Neurosc. Res. 1980. V.5. P.387−398.
  129. Ebhart G., Cervos-Navarro J. The fine structure of cells in astrocytomas of various grades of malignancy. Acta Neuropathol (Supp L). 1981. P.88−90.
  130. Ehrmann J., Kolar Z., Kala M. et al. Expression of p53 in glioblastoma multiforme cells: relationship to survival, proliferation and glycosylation. Cesk. Pathol. 1995. V.3l.P.87−91.
  131. Eiden L.E., Huttner W.B., Mallet J., O’Connor D.T., Winkler H., Zanini A. A nomenclature proposal for the chromogranin/ secretogranin proteins. Neuroscience 1987. V.21. P.1019−1021.
  132. Eizaguirre B., Elizalde J.M., Martinez L.J. et al. Gliosarcoma. Case report with immunohistochemical study. Arch. Anat. Cytol. Pathol. 1994. V.42. P.54−56.
  133. Eng L.F., Smith M.E., de Vellis J., Skoff P.P. Recent studies of the glial fibrillary acidic protein. Ann. NY. Acad. Sci. 1985. V.455. P.525−537.
  134. Erdem O, Dursun A, Coskun U, Gunel N. The prognostic value of p53 and c-erbB-2 expression, proliferative activity and angiogenesis in node-negative breast carcinoma. Tumori. 2005 Jan-Feb-91(l):46−52.
  135. Eriksen JL, Gillespie R, Druse MJ. Effects of ethanol and 5-HT (lA) agonists on astroglial S100B. Brain Res. Dev. Brain Res. 139 (2002), pp. 97−105.
  136. Erlandson R.A. Diagnostic immunohistochemistry of human tumors. An interim evaluation. Am. J. Surg. Pathol. 1984. V.8. P.615−624.
  137. Ferri G.L., Marangos P.J., Bloom S.R., Polak J.M. Intramural distribution of neuron specific enolase (NSE) in the human gastrointestinal tract. Experiental. 1983. V.39. P.622−623.
  138. Figueroa P, Lupton J. R, Remington T, Olding M, Jones R. V, Sekhar L. N, Sulica V.l. Cutaneous metastasis from an intracranial glioblastoma multiforme. J Am Acad Dermatol. 2002 Feb- 46 (2): 297−300.
  139. Finn P.E., Bjerkvig R., Pilkington G.I. The role of growth factors in the malignant and invasive progression of intrinsic brain tumours //Anticancer Res. — 1997.— 17.—P.4163—72.
  140. Fischer-Colbrie R., Fischenschlager I. Immunological characterization of secretory proteins of chromaffin granules: chromogranins A, chromogranins B, and enkephalin-containing peptides. J. Neurochem. 1985. V.44. P.1854−1861.
  141. Fischer-Colbrie R., Hagn C., Kilpatrick L., Winkler H. Chromogranin C: a-third component of the acidic proteins in chromaffin granules. J. Neurochem. 1986. V.47.P.318−321.
  142. Forsman M, Kallioinen L, Kallioinen M, Ryhanen J. Dupuytren’s contracture- increased cellularity—proliferation, is there equality? Scand J Surg. 2005−94 (l):71−5.
  143. Franke3 W.W., Moll R., Schiller D.L., Schmid E., Kartenbeck J., Mueller H. Desmoplakins of epithelial and myocardial desmosomes are immunologically and biochemically related. Differentiation. 1982. V.23. P. l 15−127.
  144. Franke W.W., Moll R., Mueller H., Schmid E., Kuhn C., Klepler R., Artlieb U., Denk H. Immuncytochemical identification of epithelium-derived human tumors with antibodiea to desmosomal plaque proteins. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1983. V.80. P.543−547.
  145. Fuller G.N. Central Nervous System Tumors In: Pediatric neoplasia. Morphology and biology / Ed D.M. Parham. — Lippincortt-Raven. — Philadelphia-New York. — 1996. — P. 153−204.
  146. Fuller C. E, Frankel B, Smith M, Rodziewitz G, Landas S. K, Caruso R, Schelper R. Suprasellar monomorphous pilomyxoid neoplasm: an ultastructural analysis. Clin Neuropathol. 2001 Nov-Dec- 20 (6): 256−62.
  147. Gao P, Shivers RR. Correlation of the presence of blood-brain barrier tight junctions and expression of zonula occludens protein ZO-1 in vitro: a freeze-fracture and immunofluorescence study. J Submicrosc Cytol Pathol. 2004 Jan- 36 (1): 7−15.
  148. Gardner E.E., Dahl D., Bignami A. Formation of 10-nanometer filaments from the 150 K-Dalton neurofilament protein in vitro. J. Neurosci. Res. 1984. V.ll. P.145−155.
  149. Garthwaite J. Neural nitric oxide signalling. Trends Neurosci. 1995. V.18. P.51−56.
  150. Giannini C, Scheithauer B. W, Lopes M. B, Hirose T, Kros J. M, VandenBerg S.R. Immunophenotype of pleomorphic xanthoastrocytoma. Am J Surg Pathol. 2002 Apr- 26 (4): 479−85.
  151. Ghandour M.S., Langley O.K., Gombos G. et al. Cellular localization of the brain specific a2-glicoprotein in rat cerebellum: an immunhistological study. Neurosciense. 1982. V.7. P.231−237.
  152. Gould V.E., Wiedenmann B., Lee I., Schwechheimer K., Dockhorn-Dworniczak B., Radosevich J.A., Moll R., Franke W.W. Synaptophysin expression in neuroendocrine neoplasms as determined by immuncytochemistry. Am J. Pathol. 1987. V.126. P.243−257.
  153. Gown A.M., Vogel A.M. Monoclonal antibodies to human intermediate filament proteins. II. Distribution of filament proteins in normal human tissues. Am. J. Pathol. 1984. V. l 14. P.309−321.
  154. Guha A, Mukherjee J. Advances in the biology of astrocytomas. Curr Opin Neurol. 2004 Dec- 17(6):655−62.
  155. Gullotta F., Schindler F., Schmutzler R., Week-Seifert A. GFAP in brain tumor diagnosis: possibilities and limitations. Pathol. Res. Pract. 1985. V.180. P.54−60.
  156. Haan E.A., Boss B.D., Cowan W.M. Production and characterization of monoclonal antibodies against the «brain-specific» proteins 14−3-2 and S-100. Proc. Nat. Acad. Sei. USA Biol. Sei. 1982. V.79. P.7585−7589.
  157. Hachisuka H., Mori O., Sakamoto F. et al. Immunohistological demonstration of S-100 protein in the cutaneous nervous system. Anat. Ree. 1984. V.210. P.639−646.
  158. Heizmann CW, Fritz G, Schafer BW. SI00 proteins: structure, functions and pathology. Front Biosci. 2002 May 1- 7: P. 1356−68.
  159. Nafe R, Schlote W. Histomorphometry of brain tumours. Neuropathol Appl Neurobiol. 2004 Aug-30 (4): 315−28.
  160. Hagn C., Schmid K.W., Fischer-Colbrie R., Winkler H. Chromogranin A., B and C in human adrenal medulla and endocrine tissues. Lab. Invest. 1986. V.55. P.405−411.
  161. Hall P., Lane D. J. Pathol. 1994. V. 172. P. 1 -4.
  162. Halliday W.C., Yeger H., Duwe G.F., Phillips M.J. Intermediate filaments in meningiomas. J. Neuropathol. Exp. Neuronal. 1985. V.44. P.617−623.
  163. Hartmann C, Mueller W, Lass U, Kamel-Reid S, yon Deimling A. Molecular genetic analysis of oligodendroglial tumors. J Neuropathol Exp Neurol. 2005 Jan- 64 (1): 10−4.
  164. Nathoo N, Chahlavi A, Barnett: G. II, Toms S.A. Pathobiology of brain metastases. J Clin Pathol, 2005 Mar. 58 (3): 237−42.
  165. Herpers MJ.II.M., Ramaekers F.C.S., Aldeweireldt J., Moesker O., Sloff J. Co-expression of glial fibrillary acidic protein- and vimentin- type intermediate filaments in human astrocytomas. Acta. Neuropathol. (Berl). 1986. V.70. P:333−339.
  166. Heuschling P. Nitric oxide modulates y-interferon-induced MHC class II antigen expression on rat astrocytes. J. Neuroimmunol. 1995. V.57. P.63−69.
  167. Higuchi Y., Hattori H., Hattori R., Furusho K. Increased neurons containing neuronal nitric oxide synthase in the brain of a hydroxic-ischemic neunatal rat model. Brain Dev. 1996. V.18. P.369−375.
  168. Hirokawa N., Glicksman M.A., Willard M.B. Organization of mammalian neurofilament polypeptides within the neuronal cytoskeleton. J. Cell. Biol. 1984. V.98. P.1523−1536.
  169. Hofkelt T., Johansson O., Goldstein M. Chemical anatomy of the brain. Science. 1984. V.225. P.1326−1334.
  170. Holden J., Dolman C.L., Churg A. Immunohistochemistry of meningiomas including the angioblastic type. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1987. V.46. P.50−56.
  171. Hong B.S., Devison P.F. Isolation and characterization of a soluble, immunoreactive peptide of glial fibrillary acidic protein. Biochim. Et Biophys. Acta. 1981. V.670. P.139−145.
  172. Huber PE, Bischof M, Jenne J, Heiland S, Peschke P, Saffrich R, Grone HJ, Debus J, Lipson KE, Abdollahi A. Trimodal cancer treatment: beneficial effects of combined antiangiogenesis, radiation, and chemotherapy. Cancer Res. 2005 May l-65(9):3643−55.
  173. Hulette C.M., Downey B.T., Burger P.C. Macrophage markers in diagnostic neuropathology. Am. J. Surg. Pathol. 1992. V.16. P.493−499.
  174. Iadecola C., Zhang F., Casey R. et al. Inducible nitric oxide synthase gene expression in vascular cell after transsient focal cerebral ishemia //Stroke.— 1996.— 27.—P.1373—80.
  175. Iadecola C. Bright and dark sides of nitric oxide in ischemic brain injury //Trends Neurosci. — 1997.— 20.— P. 132—9.
  176. Ischida Y., Takahashi K., Nakazato Y. Immunhistochemical and electron-microscopie studies of experimental and human oligodendrogliomas. 11th. Int. Congr. Neuropathol. Vienna. 1982. P. 158.
  177. Ischiuchi S., Tamura M. Central neurocytoma: an immunohistochemical, ultrastructural and cell culture study. Acta. Neuropathol. 1997. V.94. P.425−435.
  178. Isner J.M., Asahara T. Therapeutic angiogenesis //Front Biosci.— 1998.— 3.—P.49—69.
  179. Janisch W., Lammel H., Staneczek W. Zur Epidemiologie der Geschwulste des Zentralnervensystems in der DDR. Zentralbl. Pathol. 1986. V.132. P.145.
  180. Janisch W., Schreiber D., Guthert H. Neuropathologies Tumores des Nervensystems. Fischer, Stuttgart New York. 1988.
  181. Jansen M, de Witt Hamer P. C, Witmer AN, Troost D, van Noorden CJ. Current perspectives on antiangiogenesis strategies in the treatment of malignant gliomas. Brain Res Brain Res Rev. 2004 Jul- 45 (3): 143−63.
  182. Jahn R., Schreiber W., Ouimet C., Greengard P. A 38 000-dalton membrane protein (p38) present in synaptic vesicles. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1985. V.82. P.4137−4141.
  183. Janish BJ, Dorn J. How one hospital diversified. Plunging into publishing. Profiles Hosp Mark. 1986 3rd Quarter- (23):20−3.
  184. Jenkins D.S., Charles I.G., Baylis S.A., Lelchuk M.W., Radomski M.W., Moncada S. Human colon cancer cell lines shows a diverse pattern of nitric oxide synthase gene expression and nitric oxide generation. Br. J. Cancer. 1994. V.70. P.847−849.
  185. Jenkins D.C., Charles I.G., Thomsen L.L. et al. Role of nitric oxide in tumor growth //Proc. Natl. Acad. Sei. USA.— 1995 — 92 — P.4392—6.
  186. Jensen R.L. Growth factor-mediated angiogenesis in the malignant progression of glial tumors: a review //Surg. Neurol.— 1998.— 49.— P. 189— 195.
  187. Jay V., Edwards V., Varela-Stavrinou M., Rutka J. Unique intracerebral tumor with divergent differentiation in a patient presenting as NF2: report of acase with features of astrocytoma, ependymoma, and PNET. Ultrastruct. Pathol. 1997. V.21.P.57−71.
  188. Junge C. E, Lee C. J, Hubbard K. B, Zhang Z, Olson J. J, Hepler J. R, Brat D. J, Traynelis S.F. Protease-activated receptor-1 in human brain: localization and functional expression in astrocytes. Exp Neurol. 2004 Jul- 188 (1): 94−103.
  189. Kahn H.J., Marks A., Thorn H., Baumal R. Role of antibody to S-100 protein in diagnostic pathology. Am. J. Clin. Pathol. 1983. V.79. P.341−347.
  190. Kajita Y., Takayasu M., Dietrich H.H., Dacey R.G. Possible Role of Nitric Oxide in Autoregulatory Response in Rat Intracerebral Arterioles-//Neurosurgery — 1998 — 42.— P.834—42.
  191. Kandalkar B, Shah V, Shet T. Desmoplastic astrocytoma of infancy—a case.-, report. Indian J Pathol Microbiol. 2001 Jul- 44 (3): 329−32.
  192. Kartenbeck J., Franke W.W., Moser J.G., Stoffels U. Specific attachment, of desmin filaments to desmosomal plaques in cardiac myocytes. EMBO. J. 1983. V.2. P.735−742.
  193. Kartenbeck J., Schwechheimer K., Moll R., Franke W.W. Attachment of vimentin filaments to desmosomal plaque in human meningiomal cells and arachnoidal tissue. J. Cell. Biol. 1984. P. 1072−1081.
  194. Kato M, Yano H, Okumura A, Shinoda J, Sakai N, Shimokawa K. A noninfantile case of desmoplastic infantile astrocytoma. Childs Nerv Syst. 2004 Jul- 20 (7): 499−501
  195. Kepes J.J. The histopathology of meningiomas. A reflection of origin and expected behaviour? J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1986. V.45. P.95−107.
  196. Kimura T., Budka H., Soler-Federsppiel S. An immuncytochemical comparison of the glia-associated proteins glia fibrillary acidic protein (GFAP) and S-100 protein in human brain tumors. Clin. Neuropathol. 1986. V.5. P.21−27.
  197. Kimelberg H.K. Water homeostasis in the brain: basic concepts. Neuroscience. 2004- 129(4):851−60. Review.
  198. Kimelberg H.K., Norenberg M.D. Astrocytes. Sci. Am. 1989. V.260. P.66−76.
  199. Kindblom L.G., Angervall L., Haglid K. An immuhistochemical analysis, of S-100 protein and glial fibrillary acidic protein in nasal glioma. Acta. Pathol. Microbiol. Scand. 1984. V.92. P.387−389.
  200. Kitamura Y, Ota T, Matsuoka Y, Tooyama I, Kimura H, Shimohama S, Nomura Y, Gebicke-Haerter P. J, Taniguchi T. Hydrogen peroxide-induced apoptosis mediated by p53 protein in glial cells. Glia. 1999 Jan 15−25 (2): 154−64
  201. Kitange G. J, Templeton K. L, Jenkins R.B. Recent advances in the molecular genetics of primary gliomas. Curr Opin Oncol. 2003 May- 15 (3): 197 203.
  202. Kleihues P., Burger P.C., Scheithauer B.W. Histological Typing of Tumours of the Central Nervous System. — Berlin, Springer-Verlag. — 1993.
  203. Kleihues P, Cavanee W (eds): Tumours of the Nervous System. WHO Classification of Tumours. Pathology and Genetics. IARC Press, Lyon, 2000
  204. Kleihues P., Kiessling M., Janzer R.S. Morphological markers in neuro-oncology. In: Seifert G. Morphological tumor markers. General aspects and diagnostic relevance. Springer, Berlin Heidelberg, New York. 1987. P.307−338.
  205. Knowles R., Moncada S. Nitric oxide synthases in mammals. Biochem. J. 1994. V.298. P.249−258.
  206. Kobayashi S. Meningioma, neurilemmoma and astrocytoma specimens obtaned with the squash method for cytodiagnosis. A cytologic and immunochemical study. Acta. Cytol. 1993. V.37. P.913−922.
  207. Kobayashi S., Haba R., Hirakawa E. et al. Cytology and immunohistochemistry of anaplastic meningiomas in squash preparations. A report oftwo cases. Acta. Cytol. 1995. V.39. P. l 18−124. ,
  208. Koga S., Zhang S., Kumanishi T. et al. Acta neuropathol. 1994. V.87. P.225−232.
  209. Korkolopoulou P., Chistodoulou P., Kouzelis K. Et al. MDM2 and p53 expression in gliomas: a multivariate survival analysis including proliferation markers and epidermal growth factor receptor. Br. J. Cancer. 1997. V.75. P. 12 691 278.
  210. Kornblum HI, Hussain R, Wiesen J, Miettinen P, Zurcher SD, Chow K, Derynck R, Werb Z: Abnormal astrocyte development and neuronal death in mice lacking the epidermal growth factor receptor. J Neurosci Res 53, 1998, 697 -717.
  211. Koyama T., Ogawa M., Kurata S., Komazawa M., Murakami M. Meningeal malignant melanoma in a child: immunocytological diagnosis. Acta. Paediatr. Jpn. 1992. V.34. P.173−178.
  212. Kohler G., Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature. 1975. V.256. P.495−497.
  213. Kriho V.K., Yang H.Y., Moskal J.R., Skalli O. .Keratin expression in astrocytomas: an immunfluorescent and biochemical reassessment. Virchows. Arch. 1997. V.431. P. 139−147.
  214. Kroh H., Figols J., Sobieraj A. Intracranial hemangiopericytomas. Histological and immunohistochemical study. Folia. Neuropathol. 1997. V.35. P.121−127.
  215. Kroh H., Matyja E., Bidzinski J. Cerebral gangliogliomas. Morphological and immunohistochemical study. Folia. Neuropathol. 1996. V.34. P.107−113.
  216. Kros J.M. Oligodendrogliomas: clinicopathological correlations. J. Neurooncology. 1995. V.24. P.29−31.
  217. Kunishio K., Shiraishi T., Mishima N. Et al. Immunohistochemical study for choroid plexus papillomad and ependimomas. Neurol. Med. Chir. Tokio. 1991. V.31.P.859−866.
  218. Kuwano R., Iwanaga T., Nakajima T. Et al. Immuncytochemical demonstration of hydroxyindol O-methyltransferase (HJOMT), neurospecific enolase (NSE) and S-100 protein in the bovine pineal gland. Brain Res. 1983. V.274. P.171−175.
  219. Langford L.A., Barre G.M. Tanycytic ependymoma. Ultrastruct. Pathol. 1997. V.21.P.135−142.
  220. Langley O.K., Chandour M.S., Gombos G. Et al. Monoclonal antibodies as neural cell surface markers. Neurochem. Res. 1982. V.7. P.349−362.
  221. Landsberg L. Chromogranin A. N. Engl. J. Med. 1984. V.311. P.794−795.
  222. Lassmann H., Hagn C., Fischer-Colbrie R., Winkler H., Presence of chromogranin A, B and C in bovine endocrine and nervous tissues: a comparative immunohistochemical study. Histochem. J. 1986. V.18. P.380−386.
  223. Lauriola L., Cocchia D., Sentinelli S., Maggiano N., Maira G., Michetti F. Immunohistochemical detection of folliculo-stellte cells in human pituitary adenomas. Virchows. Arch. (Cell. Pathol.) 1984. V.47. P. 189−197.
  224. Lazarides E. Intermediate filaments as mechanical integration of cellular space. Nature. 1980. V.283. P.249−256.
  225. Lee I., Gould V.E., Moll R., Wiedenmann B., Franke W.W. Synaptophysin expressed in the bronchopulmonary tract: neuroendocrine cells, neuroepithelial bodies, and neuroendocrine neoplasms. Differentiation. 1987. V.34. P. 115−125.
  226. Lee V., Wu H.L., Schlaepfer W.W. Monoclonal antibodies recognize individual neurofilament triplet proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V79. P.6089−6092.
  227. Leenstra S. Biology of Gliomas. Amsterdam. 1994.
  228. Levine A.J., Schmidek H.H. Molecular genetics of nervous system tumors. New York. 1993.
  229. Liberski P.P. The ultrastructure of glial tumors of astrocytic lineage: a review. Folia Neuropathol. 1998- 36 (3): 161−77.
  230. Lloyd R.V., Wilson B.S. Specific endocrine tissue marker defined by a monoclonal antibody. Science. 1983. V.222. P.628−630.
  231. Lloyd R.V., Mervak T., Schmidt K., Warner T.F.C.S., Wilson B.S. Immunhistochemical defection of chromogranin and neuron-specific enolase in pancreatic endocrine neoplasms. Am. J. Surg. Pathol. 1984. V.8. P.607−614.
  232. Lopes M. B. S., VanderBerg S. R" Scheithauer B. W. // Molec- 118. ular Genetics of Nervous System Tumors / Eds A. J. Levine, H. H. Schmidek. New York, 1993.-P. 1−36. 119.
  233. Lorente M, Mirapeix RM, Miguel M, Longmei W, Volk' D, Cervos-Navarro J. Chronic hypoxia induced ultrastructural changes in the rat adrenal zona glomerulosa. Histol Histopathol. 2002 Jan- 17 (1): 185−90.
  234. Louis D.N., von Deimling A., Chung R.Y. et al. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1993. V.52.P.31−38.
  235. Lundberg J.M., Hofkelt T. Coexistence of peptides and classical neurotransmitters. Trends. Neurosci. 1983. V.6. P.325−333.
  236. Ma L., Morita I., Murota S., Presence of constitutive type nitric oxide synthase in cultured astrocytes isolated from rat cerebra. Neurosci. Lett. 1994. V.174. P.123−126.
  237. Madsen C., Schroder H.D. Ki-67 immunoreactivity in meningiomas-determination of the proliferative potential of meningiomas using the monoclonal antibody Ki-67. Clin. Neuropathol. 1997. V.16. P. 137−142.
  238. Mahyar-Roemer M, Fritzsche C, Wagner S, Laue M, Roemer K. Mitochondrial p53 levels parallel total p53 levels independent of stress response in human colorectal carcinoma and glioblastoma cells. Oncogene. 2004 Aug 19- 23 (37): 6226−36.
  239. Mannoji H., Becker L.E. Ependymal and choroid plexus tumors. ' Cytokeratin and GFAP expression. Cancer. 1988. V.61. P.1377−1385.
  240. Marangos P.J. Basic and clinical neurobiological applications J of neuronal and nonneuronal enolase. Multiple Forms enzymes. Basel etc.: S.I., 1982- V.l. P.214−219.
  241. Marangos P.J., Campbell I.C., Schmechel D.E. et al. Blood plateles contain a neuron-specific enolase subunit. J. Neurochem. -1980. V.34. P.1254−1258.
  242. Marsden H.B., Kumar S., Kahn J., Anderton B.J. A study of glial fibrillary acidic protein (GFAP) in childhood brain tumours. Int. J. Cancer. 1983. V.31. P.43 9−445.
  243. Maruyama R., Koga K., Nakahara T., Kishida K., Nabeshima K. Cerebral myxopapillary ependimoma. Hum. Pathol. 1992. V.23. P.960−962.
  244. Matsuno A., Sasaki T., Nagashima T., Matsuura R., Tanaka H. et al. Immunohistochemical examination of proliferative potentials and the expressionof cell cycle-related proteins of intracranial chordomas. Hum. Pathol. 1997. V.28. P.714−719.
  245. McConalogue K., Furness J.B. Projectionsof nitric oxide synthesising neurons in the gunea pig colon. Cell Tissue Res. 1993. V.271. P.545−553.
  246. Meis J.M., Ordonez N.G., Bruner J.M. Meningiomas. An immunhistochemical study of 50 cases. Arch. Pathol. Lab. Med. 1986. V.110. P.934−937.
  247. Melgar MA, Rafols J, Gloss D, Diaz FG. Postischemic reperfusion: ultrastructural blood-brain barrier and hemodynamic correlative changes in an awake model of transient forebrain ischemia. Neurosurgery. 2005 Mar-56(3):571−81.
  248. Memoli V.A., Brown E.F., Gould V.E. Glial fibrillary acidic protein (GFAP) immunoreactivity in peripheral nerve sheath tumors. Ultrastruct. Pathol. 1984. V.7. P.269−275.
  249. Mennel H. D, Lell B. Ganglioside (GD2) expression and intermediary filaments in astrocytic tumors. Clin Neuropathol. 2005 Jan-Feb- 24 (1): 13−8.
  250. Merlo A. Genes and pathways driving glioblastomas in humansand murine, disease models. Neurosurg Rev. 2003 Jul- 26 (3): 145−58.
  251. Mhiri C., Ben-Rhouma T., Djindjan M. et al. Pseudo-oligodendrogliomatous meningioma. Report of 2 cases and review of the literature. Neurochirurgie. 1991. V.37. P.398−402.
  252. Michetti F., Rende M., Calagero. et al. Immunochemical detection of S-100 protein in non-nervous structures of the rabbit eye. Ibid. 1985. V.332. P.358−360.
  253. Miettinen M., Clark R., Virtanen I. Intermediate filament proteins in choroid plexus and ependyma and their tumors. Am. J. Pathol. 1986. V.123. P.231−240.
  254. Minc-Golomb D., Tsarfaty I., Schwartz J.P. Expression of inducible nitric oxide synthase by neurons following exposure to endotoxin and cytokine. Br. J. Pharmacol. 1994. V.112. P.720−722.
  255. Mir C, Clotet J, Aledo R, Durany N, Argemi J, Lozano R, Cervos-Navarro J, Casals N. CDP-choline prevents glutamate-mediated cell death in cerebellar granule neurons. J Mol Neurosci. 2003 Feb- 20 (1): 53−60.
  256. Mischel P. S, Nelson S. F, Cloughesy T.F. Molecular analysis of glioblastoma: pathway profiling and its implications for patient therapy. Cancer Biol Ther. 2003 May-Jun- 2 (3): 242−7.
  257. Mizuno J., Iwata K., Takei Y. Immunohistochemical study of hemangioblastoma with special reference to its cytogenesis. Neurol. Med. Chir. Tokyo. 1993. V.33. P.420−424.
  258. Miyagami M., Nakamura S., Tubular bodies in endothelial cells of glioblastomas and astrocytomas. Noshuyo Byori 1996. 13 (2). P. 107−113.
  259. Moll R., Franke W.W., Schiller D.L., Geiger B., Krepler R. The catalog of human cytokeratins: patterns of expression in normal epithelial tumors and cultured cells. Cell. 1982. V.31. P. 11−24.
  260. Moll R., Schweikart G., Czernobilsky B. Desmosomen-assoziirte Vimentin-Filamente als Cytoskelett-Merkmal von Granulosazell-Tumoren des Ovars. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1985. V.69. P.628.
  261. Moll R., Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W. esmosomal proteins: new markers for identification and classification of tumors. Lab. Invest. 1986. V.5. P.4−25.
  262. Moncada S., Palmer R.M.J., Higgs E.A. Nitric oxide: Physiology, pathophysiology and pharmacology. Pharmacol. Rev. 1991. V.43. P. 109−142.
  263. Montagne K, Marie B, Cahn V, Hennequin V, Didelot A, N’Seir R, Beauchesne P, Grignon Y. Systemic metastasis at the time of diagnosis of a glioblastoma. Ann Pathol. 2004 Jun- 24 (3): 268−70.
  264. Nagashima T., DeArmond S J., Murovic J., Hoshino T. Acta neuropathol. 1985. V.67. P.155−159.
  265. Nagle R.B., McDaniel K.M., Clark V.A., Payne C.M. The use of antikeratin antibodies in the diagnosis of human neoplasms. Am. J. Clin. Pathol. 1983. V.79. P.458−466.
  266. Nakajima T., Watanabe S., Sato Y., Kameya T., Hirota T., Shimosato Y. An immunoperoxidase study of S-100 protein distribution in normal and neoplastic tissues. Am. J. Surg. Pathol. 1982. V.6. P.715−727.
  267. Nakamura Y., Becker L.E., Marks A. Distribution of immunoreactive S-100 protein in pediatric brain tumors. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1983. V.42. P.136−145.
  268. Nakazato Y., IshizekiJ., Takahashi K., Yamaguchi H., Kamei T., Mori T. Localization of S-100 protein and glial fibrillary acidic protein-related antigen in pleomorphic adenoma of the salivery glands. Lab. Invest. 1982. V.46. P.621−625.
  269. Nakazato Y., Ishida Y., Takahashi K., Suzuki K. Immunhistochemical distribution of -100 protein and glial fibrillary acidic protein in normal and neoplastic salivary glands. Virchows. Arch. (Pathol. Anat.) 1985. V.405. P.299−310.
  270. Nestler E.J., Walaas S.I., Greengard P. Neuronal phosphoproteins: physiological and clinical implications. Science. 1984. V.225. P.1357−1364.
  271. Nathan C., Sporn M. Cytokines in context. J. Cell. Biol. 1991. V.113. P.981−986.
  272. Neumann M, Kunz U, Lehmann H, Gabel D. Determination of the subcellular distribution of mercaptoundecahydro-closo-dodecaborate (BSH) in human glioblastoma multiforme by electron microscopy. J Neurooncol. 2002 Apr- 57 (2): 97−104.
  273. Ng H.K., Tse C.C.H., Lo S.T.H. Meningiomas and arachnoid cells: an immunohistochemical study of epithelial markers. Pathology. 1987. V.19. P.253−257.
  274. Ng H.K., Lo K.W., Huang D.P., Poon W.S. Int. J. Surg. Pathol. 1994. V.l. P.163−170.
  275. Nomura K., Karim A.B.M.F. Нейроэпителиальные опухоли мозга // Факторы прогноза в онкологии: Пер. с англ. / Под ред. В. Е. Кратенка. — Мн.: Белорусский центр научной медицинской информации, 2000. — С. 294−300.
  276. Nowacki Р, Tabaka J, Jezewski D, Honczarenko К. Diagnosis of brain gliomas in stereotactic biopsy assisted by optical neuro-navigation systemNeurol Neurochir Pol. 2004 Jan-Feb- 38 (1): 3−8.
  277. Ogawa H., Sato Y., Takeshita I. Et al. Transient expression of glial fibrillary acidic protein in developing oligodendrocytes in vitro. Develop. Brain. Res. 1985. V.18. P.133−141.
  278. Osborn M., Weber K. Tumor diagnosis by intermediate filament typing: a novel tool for surgical pathology. Lab. Invest. 1983. V.48. P.372−394.
  279. Osborn M., Franke W.W., Weber K. Direct demonstration of the presence of two immunologically distinct intermediate-sized filament systems in the same cell by double immunofluorescence microscopy. Exp. Cell. Res. 1980. V.125. P.37−46.
  280. Osborn M., Geisler N., Shaw G., Weber K. Intermediate filaments. Cold. Spring. Harbor. Symp. Quant. Biol. 1982. V.46. P.413−429.
  281. Osborn M., Dirk T., Kaser K., Weber K., Altmannsberger M. Immunhistochemical localization of neurofilaments and neuron-specific enolase in 29 cases of neuroblastoma. Am. J. Pathol. 1986. V.122. P.433−442.
  282. Papadopoulos M. C, Saadoun S, Davies D. C, Bell B.A. Emerging molecular mechanisms of brain tumour oedema. Br J Neurosurg. 2001 Apr. 15 (2): 101−8.
  283. Peraud A, Mondal S, Hawkins C, Mastronardi M, Bailey K, Rutka J.T. Expression of fascin, an actin-bundling protein, in astrocytomas of varying grades. Brain Tumor Pathol. 2003- 20 (2): 53−8.
  284. Perry A., Parisi J.E., Kurtin P.J. Metastatic adenocarcinoma to the brain: an immunhistochemical approach. Hum. Pathol. 1997. V.28. P.938−943.
  285. Pixley S.K.R., De Vellis. Transition between immature radial glia and mature astrocytes studied with a monoclonal antibody to vimentin. Dev. Brain. Res. 1984. V.15. P.201−209.
  286. Porter B. F, Summers B. A, Leland M. M, Hubbard G.B. Glioblastoma multiforme in three baboons (Papio spp). Vet Pathol. 2004 Jul. 41 (4): 424−8.
  287. Pollack I.F., Campbell J.W., Hamilton R.L., Martinez A.J., Bozik M.E. Proliferation index as a predictor of prognosis in malignant gliomas of childhood. Cancer. 1997. V.79. P.849−856.
  288. Pollack J.M., van Noorden S. Immuncytochemistry. Practical applications in pathology and biology. Wright. PSG, Bristol. London. Boston. 1983.
  289. Preusser M, Gelpi E, Matej R, Marosi C, Dieckmann K, Rossler K, Budka H, Hainfellner JA. No prognostic impact of survivin expression in glioblastoma. Acta Neuropathol (Berl). 2005 Apr 20-
  290. Probst A., Anderton B., Ulrich J. Neurofibrillary changes in human brain: a neuropathologic revew and an immuncytochemical investigation. J. Submicrocs. Cytol. 1984. V.16. P.187.
  291. Pulford K, Lamant L, Espinos E, Jiang Q, Xue L, Turturro F, Delsol G, Morris S.W. The emerging normal and disease-related roles of anaplastic lymphoma kinase. Cell Mol Life Sei. 2004 Dec- 61(23):2939−53
  292. Quinlan R.A., Schiller D.L., Hatzfeld M., Achtstatter T., Moll R., Jorcano J.L., Magin T.M., Franke W.W. Patterns ofexpression and organization of cytokeratin intermediate filaments. Ann. NY Acad. Sei. 1985. V.455. P.282−306.
  293. Radhakrishnan V.V., Saraswathy A., Radhakrishnan N.S.-, Rout D. Diagnostic utility of immunohistochemical techniques in intramedullary Schwann-cell tumours. Indian. J. Pathol. Microbiol. 1993. V.36. P.87−91.
  294. Raff M.C., Miller R.H., Noble M. A glial progenitor cell that develops in vitro an astrocyte or an oligodendrocyte depending on culture medium. Nature. 1983. V.303. P.390−396.
  295. Ramaekers F.C.S., Stedts F., Voolijs G.P. Current perspectives in molecular and cellular oncology. Ed. D. Spandidos. London. 1992. P.285−318.
  296. Ramos C, Martinez A, Robert B, Soriano E. Msxl expression in the adult mouse brain: characterization of populations of beta-galactosidase-positive cells in the hippocampus and fimbria. Neuroscience. 2004- 127 (4): 893−900.
  297. Rasmussen S., Bock E., Warecka K., Althages G. Quantation of glial fibrillary acidic protein in human brain humours. Brit. J. Cancer. 1980. V.41. P.113−116.
  298. Rehm H., Wiedenmann B., Betz H. Molecular characterization of synaptophysin, a major calcium-binding protein of the synaptic vesicle membrane. EMBO. J. 1986. V.5. P.535−541.
  299. Reifenberger G., Szymas J., Wechsler W. Differential expression of glial-and neuronal associated antigens in human brain tumors of the central and peripheral nervous system. Acta. Neuropathol. (Berl). 1987. V.74. P. 105−123.
  300. Robles SG, Saldana C, Boto GR, Martinez A, Zamarron AP, Jorquera M, Mata P. Intradural extramedullary spinal ependymoma: a benign pathology? Spine. 2005 May 1−30 (9):E251−4.
  301. Roelssman U., Velasco M.E., Sindely S.D., Gambetti P. GFAP in ependimal cells during development. An immuncytochemical study. Brain Res. 1980. V.200. P.13−21.
  302. Roessmann U., Velasco M.E., Gambetti P., Autilio-Gambetti L. Vimentin intermediate filaments are increased in human neoplastic astrocytes. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1983. V.42. P.309.
  303. Rogers N.E., Ignarro L.J. Constitutive nitric oxide synthase from cerebellum is reversibly inhibited by nitric oxide formed from L-arginine. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1992. V.189. P.242−249.
  304. Rojiani A. M, Dorovini-Zis K. Glomeruloid vascular structures in glioblastoma multiforme: an immunohistochemical and ultrastructural study. J Neurosurg. 1996 Dec. 85 (6): 1078−84.
  305. Rosa P., Hile A., Lee R.W.H., Zanini A., DeCamilli P., Huttner W.B. Secretogranins I and II: two tyrosine-sulfated secretory proteins common to a variety of cells secreting peptides by the regulated pathway. J. Cell. Biol. 1985. V.101. P. 1999−2011.
  306. Ross S. E, Greenberg M. E, Stiles C. D: Basic helix-loop-helix factors in cortical development. Neuron 39, 2003, 13−25.
  307. Royds J.A., Ironside J.W., Taylor C.B., Graham D.I., Timperley W.R. An immunhistochemical study of glial and neuronal markers in primary neoplasms of the central nervous system. Acta. Neuropathol. (Berl). 1986. V.70. P.320−326.
  308. Royds J.A., Parsons M.A., Taylor C.B., Timperley W.R. Enolase isoenzyme distribution in the human brain and its tumours. J. Pathol. 1982. V.137. P.37−49.
  309. Royds J.A., Taylor C.B., Timperley W.R. Enolase isoenzymes as diagnostic markers. Neuropathol. Appl. Neurobiol. 1985. V. l 1. P. 1−16.
  310. Rutten E.H., Doesburg W.H., Slooff J.L. Histologic factors in the grading and prognosis of astrocytoma grade I-IV. Journal of Neuro-Oncology 1992 Jul-13(3):223−30.
  311. Russel D., Rubinstein L. Pathology of tumours of the nervous system. 5-th End. London. 1989.
  312. Said J.W., Vimadalal S., Nash G., Shintaku LP. et al. Immunoreactive neuron-specific enolase, bombesin, and chromogranin as markers for neuroendocrine lung tumors. Hum. Pathol. 1985. V.16. P.236−240.
  313. Sang Q., Young H.M. Chemical coding of neurons in the myenteric plexus and external muscle of the small and large intestine of the mouse. Cell Tissue Res. 1996. V.284. P.39−42.
  314. Sarkar C, Sharma MC, Sudha K, Gaikwad S, Varma A. A clinico-pathological study of 29 cases of gliosarcoma with special reference to two unique variants. Indian J Med Res. 1997 Sep- 106: 229−35.
  315. Sasaki A, Yoshida T, Kurihara H, Sasaki T, Nakazato Y. Glioblastoma with large numbers of eosinophilic hyaline droplets in neoplastic astrocytes. Clin Neuropathol. 2001 Jul-Aug. 20 (4): 156−62.
  316. Sauvageot CM, Stiles CD: Molecular mechanisms controlling cortical gliogenesis. Curr Opin Neurobiol 12: 244 249, 2002
  317. Saxon D.W., Beitz A.J. Cerebellar injury induces NOS in Purkinje cells and cerebellar afferent neurons. Neuroreport. 1994. V.21. P.809−825.
  318. Schiffer D., Cavalla P., Chio A., Richiardi P., Giordana M.T. Proliferative activity and prognosis of low-grade astrocytomas. J. Neurooncol. 1997. V.34. P.31−35.
  319. Schiffer D., Cavalla P., Dutto A., Borsotti L. Cell proliferation and invasion in malignant gliomas. Anticancer. Res. 1997. V.17. P.61−69.
  320. Schiffer D., Giordana M.T., Mauro A., Migheli A., Germano I., Giaccone G. Immunohistochemical demonstration of vimentin in human cerebral tumors. Acta. Neuropathol. 1986. V.70. P.209−219.
  321. Schindler E., Gullota F. Glial fibrillary acidic protein in medulloblastomas and other embryonic CNS tumours of children. Virchows. Arch. (Pathol. Anat.) 1983. V.398. P.263−275.
  322. Schmechel D.E., Brightman M.W., Marangos P.J. Neurons switch from non-neuronal enolase to neuron-specific enolase during differentiation. Brain Res. 1980. V.190. P.195−214.
  323. Schmelz M., Duden R., Cowin P., Franke W.W. A constitutive transmembrane glycoprotein of Mr 165 000 (desmoglein) in epidermal and non-epidermal desmosomes. II. Immunolocalization and microinjection studies. Eur. J. Cell. Biol. 1986. V.42. P. 184−199.
  324. Schmid K.W., Fischer-Kolbrie R., Hagn C. Et al. Chromogranin A and B and secretogranin II in medullary carcinomas of the thiroid. Am. J. Surg. Pathol. 1987. V.ll. P.551−556.
  325. Schnitt S.J., Vogel H. Meningiomas. Diagnostic value of immunoperoxidase staining for epithelial membrane antigen. Am. J. Surg. Pathol. 1986. V.10. P.640−649.
  326. Schnitzer J., Franke W.W., Schachner M. Immucytochemical demonstration of vimentin in astrocytes and ependymal cells of developing and adult mouse nervous system. J. Cell. Biol. 1981. V.90. P.435−447.
  327. Schwechheimer K. Nervale Tumormarker. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1986. V.70. P.82−103.
  328. Schwechheimer K. Immuncytochemische Untersuchungen an Tumoren des zentralen, peripheren und autonomen Nervensystemes. Habilitationsschrift, Universitat Heidelberg. 1987.
  329. Schwechheimer K. The cytoskeleton: diagnostic possibilities and limitatios. In: Goerttler, Feichter G.E., Witte S. New frontiers in cytology. Modern aspects of research and practice. Springer, Berlin Heidelberg, New York, Tokyo. 1988. P.166−177.
  330. Schwechheimer K. Spezielle Immunomorphologie neurogener Geschwulste. In: Doerr W., Seifert G. (Hrsg). Spezielle pathologische Anatomie, Bd 13/111. Springer. Berlin Heidelberg. New-York. Tokyo. 1988.
  331. Schwechheimer K., Achtstatter T., Franke W.W. Primare epitheliale intracranielle Tumoren. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1985. V.69. P.645.
  332. Shafer R.A., Murphy S. Activated astrocytes induce nitric oxide synthase-2 in cerebral endothelium via tumor necrosis factor alpha. Glia. 1997. V.21. P.370−379.
  333. Sharma S., Abbott R.I., Zagzag D. Malignant intracerebral nerve sheath tumor: a case report and review of the literature. Cancer. 1998. V.82. P.545−552.
  334. Sheikov N, McDannold N, Vykhodtseva N, Jolesz F, Hynynen K. Cellular mechanisms of the blood-brain barrier opening induced by ultrasound in presence of microbubbles. Ultrasound Med Biol. 2004 Jul- 3 0 (7): 979−89.
  335. Sheppard M.N., Marangos P.J., Bloom S.R., Polak J.M. Neuron specific enolase: a marker for the early development of nerves and endocrine cells in the homan lung. Life Sci. 1984. V.34. P.265−271.
  336. Shimada H., Aoyama C., Chiba T., Newton W.A. Prognostic subgroups for undifferetiated neuroblastoma: immunhistochemical study with anti- S-100 protein antibody. Hum. Pathol. 1985. V.16. P.471−476.
  337. Shih A. H, Holland E.C. Developmental neurobiology and the origin of brain tumors. JNeurooncol. 2004 Nov- 70 (2): 125−36.
  338. Shuangshoti S, Rushing EJ, Mena H, Olsen C, Sandberg GD. Supratentorial extraventricular ependymal neoplasms. Cancer. 2005 Apr 28-
  339. Smith T.W., Nikulasson S., De-Girolami U., De-Gennaro L.G. Immunohistochemistry of synapsin I and synaptophysin in human nervous system and neuroendocrine tumors. Applications in diagnostic neuro-oncology. Clin. Neuropathol. 1993. V.12. P.335−342.
  340. Sobaniec-Lotowska ME. A transmission electron microscopic study of microglia/macrophages in the hippocampal cortex and neocortex following chronic exposure to valproate. Int J Exp Pathol. 2005 Apr-86(2):91−6.
  341. Southam E., Morris R., Garthwaite J. Souces and targets of nitric oxide in rat cerebellum. Neurosci. Lett. 1992. V.137. P.241−244.
  342. Stanton C.5 Perentes E., Collins V.P., Rubinstein L.J. GFA protein reactivity in nerve sheath tumors: a polyvalent and monoclonal antibody study. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1987. V.46. P.634−643.
  343. Stefansson K., Wollmann R.L., Moore B.W. Distribution of S-100 protein outside the central nervous system. Brain Res. 1982. V.234. P.309−3L7.
  344. Steinbach J. P, Weller M. Apoptosis in gliomas: molecular mechanisms and therapeutic implications. J Neurooncol. 2004 Nov. 70 (2): 245−54.
  345. Stendel R, Scheurer L, Stoltenburg-Didinger G, Brock M, Mohler H. Enhancement of Fas-ligand-mediated programmed cell death by taurolidine. Anticancer Res. 2003 May-Jun- 23 (3B): 2309−14.
  346. Stendel R, Stoltenburg-Didinger G, A1 Keikh C. L, Wattrodt M, Brock M. The effect of taurolidine on brain tumor cells. Anticancer Res. 2002 Mar-Apr- 22 (2A): 809−14.
  347. Su M., Ono K., Tanaka R., Takahashi H. An unusual meningioma variant with glial fibrillary acidic protein expression. Acta. Neuropathol. 1997. V.94. P.499−503.
  348. Sumpio B. E, Riley JT, Dardik A. Cells in focus: endothelial cell. Int J Biochem Cell Biol. 2002 Dec. 34 (12): 1508−12.
  349. Takahashi D. K, Dinday M. T, Barbara N. M, Baraban S.C. Abnormal cortical cells and astrocytomas in the Eker rat model of tuberous- sclerosis complex. Epilepsia. 2004 Dec. 45 (12): 1525−30.
  350. Tapscott S.J., Bennett G.S., Toyama Y., Kleinbart F., Holtzer H. Intermediate filament proteins in the developing chick spinal cord. Dev. Biol. 1981. V.86. P.40−54.
  351. Taylor C.R. Principles of immunomicroscopy. In: Taylor C.R. Immunmicroscopy: a diagnostic tool for the surgical pathologist. Saunders, Philadelphia. 1986. P. l-22.
  352. Taylor C.R., Cote C.R. Immunomicroscopy: a diagnostic tool for the surgical pathologist. Philadelphia. 1997.
  353. Terenghi G., Polak J.M., Ballesta J. Et al. Immunocytochemistry of neuronal and glial markers in retinoblastoma. Vircows. Arch. Pathol. Anat. 1984. V.404. P.61−73.
  354. Theaker J.M., Gatter K.C., Esiri M.M., Fleming K.A. Epithelial membrane antigen and cytokeratin expression by meningiomas: an immunhistological study. J. Clin. Pathol. 1986. V.39. P.435−439.
  355. Thomas P., Manderino G.L., Patrick J. A monoclonal antibody against neuron-specific enolase. Immunhistichemical comparison with a polyclonal antiserum. Am. J. Clin. Pathol. 1987. V.88. P.146−152.
  356. Toi M., Kondo Sh., Suzuki H. et al. Quantitative analysis of vascular endothelial growth factor in primary breast cancer //Cancer.— 1996. — 77.— P.1101— 6.
  357. Tomimoto H., Nishimura M., Suenaga T. et al. Distribution of nitric oxide synthase in the human cerebral blood vessels and brain tissues. J. Cereb. Blood. Flow. Metab. 1994. V.14. P.930−938.
  358. Trojanowski J.Q. Neurofilament proteins and human nervous system tumors. J. Histochem. Cytochem. 1987. V.35. P.999−1003.
  359. Tsai J.C., Galdman C.K., Gillespie G.V. Vascular endothelial growth factor in human glioma cell lines: Induced secretion by EGF, PDGF-BB and EFGF // J. Neurosurgery.— 1995.— 82.— P.864—73.
  360. Turpin G., Heshmati H.M., Kujas M., Gremain J., Jaque C.M., Racadot J. Immuncytochemical study of S-100 protein in human pituitary adenomas. Virchows. Arch. (Cell. Pathol.) 1988. V.55. P.107−109.
  361. Van Mourik J. A, Romani De Wit T, Voorberg J. Biogenesis and exocytosis of Weibel-Palade bodies. Histochem Cell Biol. 2002 Feb. 117 (2): 113−22.
  362. Van Noorden S., Polak J.M., Robinson M. et al. Neuron-specific enolase in the pituitary gland. Neuroendocrinology. 1984. V.38. P.309−316.
  363. Viae J., Reano A., Brochier J., Staquet M.J., Thivolet J. Reactivity pattern of a monoclonal antikeratin antibody (KL-1). J. Invest. Dermatol. 1983. V.81. P.351−354.
  364. Vigne P., Damais C., Frelin C. IL 1 and TNF alpha induce cGMP formation in C6 astrocytoma cells via the nitridergic pathway. Brain. Res. 1993. V.606. P.332−334.
  365. Vinores S.A., Marangos P.J. A developmental study of neuron-specific enolase in rat adrenalin medulla. J. Neurochem. 1982. V.39. P. 1748−1750.
  366. Vincent S.R. itric oxide: a radical neurotransmitter in the central nervous system. Progr. Neurobiol. 1994. V.42. P. 129−160.
  367. Vincent S.R., Kimura H. Histochemical mapping of nitric oxide synthase in the rat brain. Neuroscience. 1992. V.46. P.755−765.
  368. Von Eckardstein KL, Patt S, Zhu J, Zhang L, Cervos-Navarro J* Reszka R. Short-term neuropathological aspects of in vivo suicide gene transfer to the F98 rat glioblastoma using liposomal and viral vectors. Histol Histopathol. 2001 Jul- 16 (3): 735−44.
  369. Wahl S.M., Allen J.B., Francis N. Macrophage- and astrocyte-derived transforming growth factor p as a meditor of CNS disfunction in acquired immune deficiency syndrome. J. Exp. Med. 1991. V. 173. P.981−991.
  370. Wallace M.N., Bisland S.K. NADPH- diaphorase activity in activated astrocytes represents inducible nitric oxide synthase. Neuroscience. 1994. V.59. P.905−919.
  371. Warecka K. Onto- and phylogenesis, maturation and genetic differences of glia specific glycoprotein. Neurological mutations affecting myelination: INSERM Symp. № 14.- North- Holland: Biomed. Press. -1980. P.321−326.
  372. Weiss S.W., Langloss J.M., Enzinger F.M. Value of S-100 protein in the diagnosis of soft tissue tumors with particular reference to benign and malignant Schwann cell tumors. Lab. Invest. 1983. V.49. P.299−308.
  373. Wiedenmann B., Franke W.W. Identification and localization of synaptophysin and integral membrane glycoprotein of Mr 38 000 characteristic of presynaptic vesicles. Cell. 1985. V.41. P.1017−1028.
  374. Wilson B.S., Lloyd R.V. Detection of chromogranin in neuroendocrine cells with a monoclonal antibody. Am. J. Pathol. 1984. V. l 15. P.458−468.
  375. Whittle J.R., Collins F., Kelly P.A. et al. Nitric oxide synthase is expressed in experemental malignant glioma and influences tumor malignant glioma and influences tumour blood flow //Acta Neurochir (Wien). — 1996. — P. 870—6.
  376. Wyatt-Ashmead J, Kleinschmidt-DeMasters B. K, Hill D. A, Mierau G. W, McGavran L, Thompson S. J, Foreman N.K. Rhabdoid glioblastoma. Clin Neuropathol. 2001 Nov-Dec- 20 (6): 248−55.
  377. Yamaguchi H. Studies on the immunohistochemical localization of S-100 and glial fibrillary acidic proteins in the rat nervous system and human brain tumours. Brain. Nerve. (Tokio). 1980. V.32. P.287−303.
  378. Yen S.H., Fields K.L. Antibodies to neurofilament, glial filament, and fibroblast intermediate filament proteins bind different cell types of nervous system. J. Cell. Biol. 1981. V.88. P. l 15−126.
  379. Yokoyama R., Mukai K., Hirota T., Beppu Y., Fukuma H. Primary malignant melanoma (clear cell sarcoma) of bone: report of a case arising in the ulna. Cancer. 1996. V.15. P.2471−2475.
  380. Yung W.K.A., Luna M., Borit A. Vimentin and glial fibrillary acidic protein in human brain tumors. J. Neuro-Oncol. 1985. V.3. P.35−38.
  381. Zabel M., Dietel M. S-100 protein and neurospecific enolase in parathyroid glands and C-cells of the thyroid. Histochemie. 1987. V.86. P.3 89−392.
  382. Zamecnik J, Vargova L, Homola A, Kodet R, Sykova E. Extracellular matrix glycoproteins and diffusion barriers in human astrocytic tumours. Neuropathol Appl Neurobiol. 2004 Aug. 30 (4): 338−50.
  383. Zeillinger R., Tantscer E., Schneeberger C., Tschugguel W., Eder S., Sliutz G., Huber J.C. Simultaneous expression of nitric oxide synthase and estrogenreceptor in human breast cancer cell lines. Breast. Cancer. Res. Treat. 1996. V.40.P.205−207.
  384. Zimmerman M., Seifert V. Endothelial and Subarachnoid Hemorrhage: An overview //Neurosurgery. — 1998. — 43. — P.863—76.
  385. Zhu J, Abbruzzese JL, Izzo J, Hittelman WN, Li D. AURKA amplification, chromosome instability, and centrosome abnormality in human pancreatic carcinoma cells. Cancer Genet Cytogenet. 2005 May- 159(1): 10−7.
  386. Zook B. C, Simmens S. J, Jones R.V. Evaluation of ENU-induced gliomas in rats: nomenclature, immunochemistry, and malignancy. Toxicol Pathol. 2000 Jan-Feb- 28 (1): 193−201.
  387. Ztilch K.J. Brain tumors. Their biology and pathology. 3rd end. Springer. Berlin Heidelberg. New York. Tokio. 1986.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!