Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Структура популяции колорадского жука Leptinotarsa decemlineata say на Южном Урале

Диссертация: Структура популяции колорадского жука Leptinotarsa decemlineata say на Южном Урале
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. Впервые в России создан банк ДНК колорадского жука объёмом 1035 образцов. Впервые использованы методы ДНК-анализа для уточнения филогенетических отношений родов Leptinotarsa и Zygogramma. На основе анализа четырёх типов фенов рисунка покровов (22 вариации) впервые показана подразделённость структуры популяции колорадского жука на Южном Урале и установлено наличие популяционной… Читать ещё >

Структура популяции колорадского жука Leptinotarsa decemlineata say на Южном Урале (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Полиморфизм и резистентность к инсектицидам у насекомых обзор литературы)
    • 1. 1. Полиморфизм популяций и адаптивная микроэволюция у насекомых
      • 1. 1. 1. Адаптационный полиморфизм и экологическая пластичность видов
      • 1. 1. 2. Пути видообразования, основанного на популяционном полиморфизме
      • 1. 1. 3. Проблема развития резистентности к пестицидам у членистоногих
    • 1. 2. Методы изучения полиморфизма в популяциях членистоногих
      • 1. 2. 1. Токсикологический метод
      • 1. 2. 2. Фенетический метод
      • 1. 2. 3. Алл озимный полиморфизм
      • 1. 3. 4. Методы анализа ДНК-полиморфизма
    • 1. 3. Полиморфизм и популяционная структура колорадского жука
      • 1. 3. 1. Формирование ареала колорадского жука
      • 1. 3. 2. Структура популяций колорадского жука на территории России
  • Глава 2. Объекты и методы исследования
    • 2. 1. Характеристика объекта исследования
    • 2. 2. Описание исследованных регионов
    • 2. 3. Характеристика использованных инсектицидов
    • 2. 4. Проведение токсикологических экспериментов
    • 2. 5. Методы молекулярно-генетических исследований
      • 2. 5. 1. Сбор, хранение и подготовка биоматериала
      • 2. 5. 2. Выделение ДНК
      • 2. 5. 3. Проведение ПЦР-амплификации ДНК
      • 2. 5. 4. Рестрикционный анализ
      • 2. 5. 5. Электрофоретическое фракционирование ДНК
      • 2. 5. 6. Секвенирование ДНК
    • 2. 6. Методы анализа полиморфизма в популяции колорадского жука 49 2.6.1. Анализ полиморфизма по уровню чувствительности к инсектицидам
      • 2. 6. 2. Анализ фенетцческого полиморфизма
      • 2. 6. 3. Анализ полиморфизма локуса 980A>G гена ацетилхолинэстеразы (AChE)
      • 2. 6. 4. Анализ полиморфизма фрагмента гена цитохромоксидазы I мтДНК 56 2.7. Компьютерный анализ и статистическая обработка результатов 57 РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
  • Глава 3. Полиморфизм колорадского жука на Южном Урале
    • 3. 1. Полиморфизм колорадского жука по уровню чувствительности к инсектицидам
    • 3. 2. Фенетический полиморфизм
      • 3. 2. 1. Определение оптимального объёма выборки колорадского жука
      • 3. 2. 2. Изменение фенетической структуры популяции колорадского жука во времени
      • 3. 2. 3. Изменение уровня разнообразия в локальных популяциях колорадского жука под влиянием инсектицидного пресса
      • 3. 2. 4. Внутрипопуляционный полиморфизм колорадского жука на Южном
  • Урале
    • 3. 2. 5. Межпопуляционный полиморфизм колорадского жука на Южном Урале
    • 3. 3. Полиморфизм фрагмента гена цитохромоксидазы I (COI) мтДНК
    • 3. 4. Структура популяции колорадского жука на Южном Урале 114 3.4.1. Эпигенетический ландшафт популяции колорадского жука на Южном 118 Урале

Колорадский жук — вид с продолжающимися процессами видообразования, характеризуется значительным внутривидовым полиморфизмом и экологической пластичностью (Ушатинская, 1981; Фасулати, 2002). Это позволяет ему успешно адаптироваться, в том числе и к антропогенным воздействиям — у колорадского жука развилась резистентность к почти всем используемым на настоящий момент и применявшимся ранее инсектицидам, во всём его ареале. Согласно современному взгляду на популяцию как на единицу эволюции и одновременно — единицу I управления видами (Яблоков, 1987), очевидна необходимость изучения этого вида на популяционном уровне.

С.Р. Фасулати (1985, 1993) на территории Восточно-Европейской равнины выделил пять популяционных комплексов колорадского жука, а также смежный с ними западно-казахстанский и изолированный от основного ареала среднеазиатский комплексы. Граница между двумя восточно-европейскими комплексами популяций, возможно, проходит по территории Башкортостана (Вилкова, Фасулати, 2001; Вилкова с соавт., 2005).

Изменения структуры популяций колорадского жука, происходящие с высокой скоростью, обуславливают необходимость систематического анализа с использованием большого количества типов фенов. Разработанные в последние десятилетия молекулярно-биологические методы генетического анализа позволяют оценить степень внутривидового полиморфизма на уровне первичной структуры ДНК (Roderick, 1996; Loxdale, Lushai, 1998). Сочетание классических и современных методов должно дать наиболее адекватную оценку уровня полиморфизма и популяционной структуры вида.

Цель работы: выявление особенностей формирования популяционной структуры колорадского жука на Южном Урале.

Для достижения данной дели были поставлены следующие задачи:

1. Собрать биологический материал и создать банк ДНК колорадского жука для проведения популяционно-генетических исследований.

2. Провести анализ полиморфизма в локальных популяциях колорадского жука по уровню чувствительности к инсектицидам.

3. Оценить уровень полиморфизма в модельной локальной популяции с установленным высоким уровнем резистентности к фосфорорганическим инсектицидам по наличию нуклеотидной мутации 980A>G гена ацетилхолинэстеразы (AChE).

4. Проанализировать фенетическую структуру популяции, оценить её динамику во времени и влияние инсектицидного пресса.

5. Провести анализ полиморфизма фрагмента гена цитохромоксидазы I (COI) мтДНК в локальных популяциях колорадского жука.

6. Оценить возможные эволюционные процессы в южноуральской популяции колорадского жука и факторы, влияющие на них.

Научная новизна. Впервые в России создан банк ДНК колорадского жука объёмом 1035 образцов. Впервые использованы методы ДНК-анализа для уточнения филогенетических отношений родов Leptinotarsa и Zygogramma. На основе анализа четырёх типов фенов рисунка покровов (22 вариации) впервые показана подразделённость структуры популяции колорадского жука на Южном Урале и установлено наличие популяционной системы. Впервые проведено исследование частот аллелей 980A>G гена AChE в модельной локальной популяции (Уфимский р-н) с установленным высоким уровнем резистентности к фосфорорганическим инсектицидам.

Практическая значимость работы. Анализ структуры популяции колорадского жука является первым этапом на пути к научному обоснованию проведения мер по регулированию его численности. Выявление двух групп популяций, различающихся по уровню чувствительности к инсектицидам, должно послужить основой для дифференциации схем защиты растений. Полученные в работе результаты помогут скорректировать точность прогноза расселения колорадского жука на территории России и скорость формирования устойчивых к инсектицидам популяций. Отработанные методы анализа полиморфизма колорадского жука могут послужить материалом в процессе учебно-полевых практик, на практических занятиях и при подготовке квалификационных работ в учебных заведениях.

Апробация работы. Основные положения диссертации были представлены на XII — м съезде Русского Энтомологического Общества (Санкт-Петербург, 2002), 6-ой Пущинской школе-коференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2002), международной научно-практической конференции «Экологические аспекты интенсификации сельскохозяйственного производства» (Пенза, 2002), П-й международной конференции «Разнообразие беспозвоночных животных на Севере» (Сыктывкар, 2003), Ш-м съезде ВОГиС (Москва, 2004) и на IX-м Вероссийском популяционном семинаре «Особь и популяция — стратегии жизни» (Уфа, 2006).

Работа выполнялась в соответствии с планами НИР Института биохимии и генетики УНЦ РАН по темам «Генетико-биохимические механизмы адаптивности насекомых» (№ гос. регистрации 01.200. 2 5 310) и «Закономерности адаптивных процессов в онтогенезе и популяциях насекомых» (№ гос. регистрации 0120. 0 500 082). Работа выполнялась в рамках проекта, поддержанного грантом РФФИ «Генетическая структура, специфика формирования резистентности и микроэволюционные процессы в популяциях колорадского жука на территории РБ» (05−04−97 916-рагидельа).

Благодарности. Автор выражает глубокую признательность всем, оказавшим помощь в сборе биологического материала, в особенности сотрудникам Всероссийского института защиты растений (ВИЗР, Санкт-Петербург, Пушкин) и доценту кафедры общей биологии и экологии Башкирского государственного аграрного университета, кандидату биологических наук Татьяне Львовне Леонтьевой. Автор благодарит сотрудника лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии ИБГ УНЦ РАН, кандидата биологических наук, Андрея Ханифовича Баймиева за проведение секвенирования фрагмента гена COI мтДНК колорадского жука. Считаю своим приятным долгом выразить благодарность ведущему научному сотруднику лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии ИБГ УНЦ РАН, кандидату биологических наук Юрию Михайловичу Никонорову за консультации в области молекулярной биологии и кандидату медицинских наук, старшему научному сотруднику лаборатории молекулярной генетики человека Ильдусу Альбертовичу Кутуеву рецензирование данной работы.

124 ВЫВОДЫ.

1. Проведена оценка полиморфизма в популяциях колорадского жука по митохондриальному (COI) и ядерному (.AChE) локусам на основе созданного банка ДНК (1035 образцов из 12 локальных популяций Башкортостана).

2. Показана мозаичность распределения резистентных локальных популяций колорадского жука на территории Южного Урала с использованием генетической характеристики резистентности к инсектицидам (ДК).

3. Установлена сформировавшаяся множественная резистентность в локальных популяциях колорадского жука из центральной и южной частей территории Башкортостана, сопровождающаяся проявлением высокого уровня резистентности к неоникотиноидам. Отмечено снижение эффективности тестированных препаратов в большинстве из обследованных локальных популяций. Сохранение высокого уровня чувствительности к инсектицидам отмечено только в 3-х локальных популяциях из 25-ти обследованных.

4. Показано, что долговременные обработки ФОИ привели к элиминации особей с чувствительными генотипами (гомозиготные аллели дикого типа SS локуса 980A>G гена AChE не были обнаружены), что повлияло на уровень сформировавшейся резистентности.

5. Выявлены изменения фенетической структуры локальных популяций колорадского жука во времени. Экспериментально подтверждено снижение уровня фенетического разнообразия в локальных популяциях колорадского жука под действием инсектицидного пресса, лежащее в основе происходящих изменений.

6. Показано подразделение южноуральской популяции колорадского жука на две группы локальных популяций, приуроченных к центральной и периферийной части Башкортостана и различающихся по уровню фенетического разнообразия и чувствительности к инсектицидам.

7. Выявлены различия между нуклеотидными последовательностями фрагмента гена COI мтДНК южноуральской и североамериканской популяций колорадского жука. Впервые на основе сравнения нуклеотидных последовательностей фрагмента гена COI мтДНК колорадского жука подтверждена общность происхождения родов Zygogramma и Leptinotarsa.

8. Обнаружено, что действие инсектицидного пресса обусловило формирование подразделённой популяционной системы колорадского жука, сохраняющей признаки различий между первичными очагами заселения территории РБ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Таким образом, нами был проведён анализ структуры южноуральской популяции колорадского жука и её динамики в 1994;е и 2002;е годы. Структуру популяции колорадского жука на Южном Урале образно можно представить в виде чаши с углублением в центре (характеризующимся минимальным фенетическим разнообразием и минимальной чувствительностью к действию инсектицидов) и возвышением на окраинах рассматриваемой территории (где отмечен максимальный для данной территории уровень разнообразия и максимальная чувствительность). Определённое совпадение результатов по данным фенетических и токсикологических исследований, на наш взгляд, не случайно и имеет следующее объяснение. Мы считаем, что на формирование эпигенетической структуры популяции колорадского жука на Южном Урале основное влияние оказал инсектицидный пресс. Обработки инсектицидами приводят как к изменению фенотипического состава популяции колорадского жука, так и к снижению уровня разнообразия.

Показать весь текст

Список литературы

  1. ГА. Пчеловодство. М.: Колос. 1982. 319 с.
  2. Ф., Кайгер Дж. Современная генетика: В 3-х т. Т. 3. М.: Мир. 1988.335 с.
  3. Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М.: Академкнига. 2003. 531 с.
  4. Д.В. Биолого-токсикологическое обоснование совершенствования химической защиты картофеля от колорадского жука на Южном Урале // Автореферат диссертации. доктора биологических наук. Санкт-Петербург. 1995. 48 с.
  5. Д.В., Абрамова Т. Л., Беньковская Г. В. Экологические аспекты применения новых классов инсектицидов для борьбы с колорадским жуком // Экологические аспекты гомеостаза в биоценозе. Уфа. 1986. С. 140 149.
  6. Д.В., Беньковская Г. В., Мигранов М. Г. Пиретроиды и ингибиторы синтеза хитина в борьбе с колорадским жуком // Уфа. 1991. 169 с.
  7. Д.В., Поскряков A.B. Диагностика резистентности колорадского жука // Защита растений. 1994. № 12. С. 11−12.
  8. Ассортимент средств защиты растений, включающих новое поколение биопестицидов, БАВ, экологически безопасные пестициды и аналоги природных соединений. Часть 1. Инсектициды, акарициды, фунгициды. СПб. 2000. 76 с.
  9. Атлас республики Башкортостан. М. 1992. 40 с.
  10. Е.И., Ерёмина О. Ю., Рославцева С. А. Роль микросомальных монооксигеназ насекомых в деградации инсектицидов. // Агрохимия. 1996. № 10. С. 145- 154.
  11. М.Б. Элементы количественной оценки фармокологического эффекта. Изд. АН Латв.ССР. 1963. С. 67 80.
  12. Г. В. Биологическое обоснование примененния ингибитеров синтеза хитина для контроля численности колорадского жука в предуралье Башкирии // Автореферат диссертации. кандидата биологических наук. Ленинград. 1990. 18 с.
  13. А.Г. Эпигенетическая изменчивость: неметрические пороговые признаки, фены и их композиции // Фенетика природных популяций. Москва. 1988. С. 158 170.
  14. H.A., Фасулати С. Р. Изменчивость и адаптивная микроэволюция насекомых фитофагов в агробиоценозах в связи с иммуногенетическими свойствами кормовых растений // Труды Руского энтомологического общества. 2001. Т.72. С.107- 128.
  15. С.М. Генетический полиморфизм в популяциях животных и его эволюционное значение. // Журнал общей биологии. 1974. Т. 35. № 5. С. 678−684.
  16. В.Б., Лихман Н. С. Фенетический анализ группировок клопа Lygus rugulipennis Popp. (Heteroptera, Miridae), населяющих г. Воронеж и его окрестности // Вестник ВГУ. 2003. № 1. с. 41 45.
  17. В.Н. Молекулярные основы медицинской генетики. СПб.: Интермедика. 1999. 212 с.
  18. В.В., Глотов Н. В., Орлинский Д. Б. Эколого-гентический анализ изменчивости центральных элементов рисунка переднеспинки у колорадского жука (.Leptinotarsa decemlineata) // Зоологический журнал. 1998. Т. 77. № 3. С. 278 284.
  19. В.В., Соломатин В. М. Анализ популяционной структуры колорадского жука по морфологическим признакам // Фенетика природных популяций. 1990. Тез.докл. М. С. 59.
  20. В.В., Рыбина С. Ю., Лиховидов В. Е., Радул М. М. Аминокислоты гемолимфы и восприимчивость отдалённых популяций колорадского жука к микроорганизмам и биопрепаратам // Тр. ЛСХА-Латв. с.-х. акад. 1990. С. 20−27.
  21. Л.И., Салина Е. А. Полиморфизм и дивергенция мультилокусных маркёров ДНК у видов-двойников Chironomus riparius Meigen и Chironomus piger Strenzke (Diptera, Chironomidae). Генетика. 2003. T. 39. № 8. С. 1059−1065.
  22. И.В. Уровень реализации фенофонда как показатель микроэволюционного состояния популяции // Фенетика природных популяций. М. 1988. С. 177- 185.
  23. И.В., Денисова И. А. Изменчивость некоторых признаков колорадского жука в Саратовской области // Деп. ВИНИТИ. М. 1987. С. 59 70.
  24. JI.A. Показатели популяционной изменчивости по полиморфным признакам // Фенетика популяций. М. 1982. С. 38 -44.
  25. JI.A. Популяционная биометрия. М. 1991. Наука. 269 с.
  26. K.M. Вид и видообразование. 1968. Л.: Наука. 404 с.
  27. В.А., Мельников H.H. Пестициды в современном мире. // Агрохимия. 1996. № 1. С. 100 108.
  28. И.А. Сексуальная жизнь божьей коровки // Природа. 2001. № 12. С. 43.45.
  29. P.M. Оценка полиморфизма рисунка переднеспинки и надкрылий колорадского жука, Leptinotarsa decemlineata, в окрестностях Казани // Зоологический журнал. 2002. Т. 81. № 3. С. 316 322.
  30. .В. Роль мёда и маточного молочка в естественной резистентности медоносных пчёл // Вестн. Росс. акад. с-х. наук. 1992. .№ 6. С. 55 58.
  31. Кайданов JI.3. Генетика популяций. М.: Высшая школа. 1996. 320 с.
  32. H.A., Макеева E.H., Мезенко A.M. Генетика. Энциклопедический словарь. Минск: Технология. 1999. 437 с.
  33. Е.П. Выявление чувствительности колорадского жука к действию инсектицидов с помощью фенов // Фенетика природных популяций. Тез. докл. М. 1988. С. 111−117.
  34. Е.П. Дискретные вариации рисунка на дорсальной стороне тела колорадского жука (Leptinotarsa decemlineata) // Популяционная фенетика. М.: Наука. 1997. С. 45−58.
  35. В.Г., Тюрина Н. М., Соколов М. С. Проблема резистентности фитофагов к пиретроидным инсектицидам и пути её решения (на примере СевероКавказского региона). // Агрохимия. 1998. № 10. С. 24 32.
  36. A.B. Использование молекулярных маркёров в работе с генетическими ресурсами растений // Сельскохозяйственная биология. 1998. № 5. С. 3−25.
  37. .В. Экспрессия и взаимодействие генов в онтогенезе млекопитающих // Биология развития и управления наследственностью. М.: Наука, 1986. С.256−267.
  38. В.Г., Зыкина Н. В. Изменение чувствительности Tetranychus urticae Koch, к пестицидам в тепличных хозяйствах Ленинградской области. // Тез. докл.4 совещ. по резистентности вредителей к хим. сред. защ. раст. М. 1975. С. 39 -40.
  39. Ф.С. Изменчивость фенетической структуры популяций колорадского жука (Leptinotarsa decemlineata Say) в пределах ареала. // Фенетика популяций. Материалы II Всесоюзного совещания (Москва, 1982 г.). М.: Наука. 1982. С. 233−243.
  40. Ф.С. Колорадский жук как модель микроэволюции // Природа. 1981. № 12. С. 86−87.
  41. Ф.С., Климец Е. П., Савченко Т. П., Овчинникова H.A. Генотипические маркёры внутривидовых группировок у колорадского жука // Фенетика популяций. Материалы III Всесоюзного совещания (Саратов, 7−8 февраля 1985 г.). М. 1985. С. 16.
  42. Н.И., Лебедев В. И. Получение и использование продуктов пчеловодства. М.: Нива России. 1993. 285 с.
  43. А.И. Булавоусые чешуекрылые Дальнего Востока СССР: Определитель. М. Наука. 1970. 163 с.
  44. Г. Ф. Биометрия // М. Высшая школа. 1990. 352 с.
  45. Н.И., Еремина И. В. некоторые аспекты изучения фено- и генофонда внутри вида и внутривидовых группировок // Фенетика популяций. М. 1982. С. 56 -69.
  46. И.Н. Биохимические механизмы резистентности насекомых к инсектицидам и пути её преодоления. // Автореф. дис.. канд. биол. наук, Новосибирск, 1986. С. 15.
  47. В.Е., Гулий В. В., Радул М. М., Рыбина С. Ю. Восприимчивость различных экологических популяций колорадского жука к микроорганизмам и биопрепаратам. Инф. бюл. ВПС МОББ. 1987. № 18. С. 41−44.
  48. Я.Я. Таксономические отношения и географическое распространение форм жуков рода Adalia Mulsant // Учен. зап. Латв. гос. ун-та. 1973. Т. 184, № 1. С. 5128.
  49. A.B. Внутривидовой полиморфизм и особенности экспрессии генов антибактериальных пептидов медоносной пчелы (Apis mellifera L.). Автореферат диссертации. .кандадата биологических наук. Уфа. 2002. 22 с.
  50. Э. Зоологический вид и эволюция. Пер. с англ. М.: Мир. 1968. 598 с.
  51. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М.: Мир. 1984. 480 с.
  52. Методические рекомендации по изучению и оценке форм картофеля на устойчивость к колорадскому жуку. Под ред. Вилковой H.A. М. 1993. 47 с.
  53. М.Г. Инсектицидная активность пиретроидов и поиск высокоэффективных препаратов на их основе (на примере колорадского картофельного жука) // Автореферат диссертации. кандидата биологических наук. Ленинград. 1989. 19 с.
  54. М.Г. Пиретроиды: отечественные аналоги и их токсикология. Уфа. 1994. 101 с.
  55. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. // Под ред. Херрингтона С., Макги Дж. М.: Мир. 1999. 558 с.
  56. О.П., Шишлова Ю. В., Маслова О. О. Фенотипическая характеристика слепней Chrysops relictus (Diptera, Tabanidae) Воронежской области // Вестник ВГУ. Серия химия, биология. 2001. № 2. С. 124 127.
  57. С. В., Соломенникова И. В, Волкотруб Э. Н. и др. Механизм резистентности колорадского жука к перметрину. // Агрохимия. 1987. № 4. С. 103 -106.
  58. Ю.М., Г.В.Беньковская, А. В. Поскряков, А.Г.Николенко, В. А. Вахитов. Использование метода ПЦР для контроля чистопородности пчелосемей Apis mellifera mellifera L. в условиях Южного Урала // Генетика. 1998. т.34. № U.C. 1574−1577.
  59. Ю.И. Полиморфизм и видообразование // Журнал общей биологии. 1979. T. XL. № 1. С. 17 33.
  60. Ю.И. Полиморфизм и непрерывная изменчивость в популяциях насекомых // Журнал общей биологии. 1980. T. XLI. № 5. С. 668 679.
  61. Ю.И., Коробицин Н. М. Аберративная изменчивость в природных популяциях насекомых // Журнал общей биологии. 1972. T. XXXIII. № 3. С. 315−324.
  62. К. И., Никанорова Е. В., Сазонова И. Н. и др. Чувствительность ацетилхолинэстеразы тлей и златоглазок к некоторым ингибиторам и инсектицидам. // Агрохимия. 1986. № 2. С. 99 103.
  63. H.A., Климец E.H., Маркелов Г. В. Динамика генетической структуры популяции колорадского жука на территории Липецкой области // Генетика. 1984. T. XX. № 1. С. 140 143.
  64. H.A., Маркелов Г. В. Внутривидовая изменчивость колорадского жука в Липецкой области // Биологические науки. № 7. 1982. С. 63 -67.
  65. Одум Ю.Экология. В 2-х т. Пер. с англ. М.: Мир. 1986. Т. 2. 376 с.
  66. Определение резистентности вредителей сельскохозяйственных культур и зоофагов к пестицидам. Методические указания. М. 1990. 79 с.
  67. М.В., Муха Д. В., Захаров И. А. Изменчивость митохондриального гена цитохромоксидазы I внутри вида Adalia bipunctata и между видами семейства божьи коровки (Coleoptera: Coccinellidae) // Генетика. 2004. Т. 40. № 2. С.205 209.
  68. Т.А. Механизмы устойчивости членистоногих к пиретроидам. // Агрохимия. 1985. № 8. С. 121 132.
  69. Н.Н. Жуки-дровосеки // М. Л.: Изд-во АН СССР. 1936. Ч. 1.612 с.
  70. Преодоление резистентности вредителей сельскохозяйственных культур к пестицидам. Методические рекомендации // М. 1991. 69 с.
  71. Прогноз появления и распространения вредителей и болезней сельскохозяйственных культур в Башкирской АССР в 1978 году и меры борьбы с ними. Уфа. Башкирское книжное издательство. 1978. 94 с.
  72. В.П. Показатели внутрипопуляционного фенетического разнообразия // VI Всероссийский популяционный семинар. Фундаментальные и прикладные проблемы популяционной биологии. Нижний Тагил. 2002. С. 140 -141.
  73. Н.Ф. Популярный биологический словарь. М.: Наука. 1991. 538 с. Рославцева С. А. Мониторинг резистентности колорадского жука к инсектицидам // Агрохимия. 2005. № 2. С. 61 66.
  74. С.А. Новые инсектициды ингибиторы ГАМК-рецептора у насекомых. // Агрохимия. 1996. № 12. С. 122 — 124.
  75. С.А. Новые инсектоакарициды. // Агрохимия. 1997. № 4. С. 8790.
  76. С.А. О механизмах действия инсектицидов и их детоксикация в организме насекомых. // Агрохимия. 1995. № 4. С. 99 105.
  77. С.А. Проблема резистентности членистоногих к инсектоакарицидам. // Агрохимия. 1997. № 3. С. 89 92.
  78. С.А., Михина Н. Г. О резистентности колорадского жука к инсектицидам // Защита и карантин растений. 2001. № 6. С. 27.
  79. С.А., Перегуда Т. А. Механизм действия инсектоакарицидов и механизмы резистентности к ним. // Итоги науки и техники. Сер. Энтомология. 1978. Т. 8. С. 7−62.
  80. В.Н. Популяционно-генетический полиморфизм Башкирской популяции медоносной пчелы Apis mellifera L. // Автореферат на соискание. кандидата биологических наук. Санкт-Петербург. Пушкин. 2000. 24 с.
  81. А.П., Березовская О. П. Индивидуальный полиморфизм по RAPD-маркёрам в весенней генерации колорадского жука Leptinotarsa decemlineata (Say) // Генетика. 2001. Т. 37. № 10. С. 1348 1352.
  82. А.П., Березовская О. П. Генетическая структура популяций колорадского жука Leptinotarsa decemlineata (Coleoptera: Chrysomelidae) // Генетика. 2002. T.38.№ 11. С. 1485−1491.
  83. А.П., Березовская О. П., Созинов А. А. Оценка генетического полиморфизма в популяциях колорадского жука Leptinotarsa decemlineata (Say) по RAPD-маркёрам //Генетика. 2000. Т. 30. № 5. С. 651−656.
  84. А.А. Состояние вопроса об устойчивости паутинного клеща на хлопчатнике к фосфорорганическим акарицидам. // Тез. докл. совещ. по резистентности клещей к акарицидам. Л. 1968. С. 3−6.
  85. А.М. Изменчивость морфологических признаков колорадского жука // Вопросы экологии и охраны животного мира Нечернозёмной зоны РСФСР. Иваново. С. 110−117.
  86. К.Б. Развитие феногенетики в первой половине XX века. М.: Наука. 1998. 160 с.
  87. М.П., Амирханов Д. В. Динамика формирования резистентности к современным инсектицидам и изменение активности основных групп ферментов детоксикации у комнатной мухи. // Агрохимия. 1994. № 7 8. С. 82−88.
  88. О.В. Особенности инсектицидного действия фосфорорганических соединений // Энтомологическое обозрение. 1972. № 3. С. 561 572.
  89. Г. И. Как предотвратить нарастание резистентности колорадского жука к пиретроидам // Защита и карантин растений. № 4. 2002. С. 9 -10.
  90. Г. И. Резистентность у вредных организмов к пестицидам -проблема защиты растений // Вестник защиты растений. 2001. № 1. с. 18 37.
  91. Тимофеев-Ресовский Н.В., Свирежев Ю. М. Об адаптационном полиморфизме в популяциях A dalia bipunctata L. // Проблемы кибернетики. 1966. Т. 16. С. 137- 146.
  92. Тимофеев-Рессовский Н.В. О фенотипическом проявлении генотипа. 1. Геновариация radius incompletus у Drosophila funebris И Журнал экспериментальной биологии. 1925. Т.1. Вып. ¾. С. 93 142.
  93. Тимофеев-Рессовский Н.В., Яблоков А. В. Фены, фенетика и эволюционная биология //Природа. 1973. № 5. С. 40 51.
  94. В.Ю. Биометрические методы (статистическая обработка опытных данных в биологии, сельском хозяйстве и медицине). М.: Наука. 1964. 415с.
  95. Ушатинская Р.С.(ред). Колорадский картофельный жук. Филогения, морфология, физиология, экология, адаптация, естественные враги. М.: Наука. 1981.377 с.
  96. С.Р. Полиморфизм и популяционная структура колорадского жука Leptinotarsa decemlineata Say в Европейской части СССР // Экология. 1985. № 6. С. 50−56.
  97. С.Р. Микроэволюционные аспекты воздействия сортов картофеля на структуру популяций колорадского жука // Труды ВИЗР. JI. 1988. С. 71−84.
  98. С.Р. Территориальное расселение колорадского жука в северных районах картофелеводства. // Экологические аспекты интенсификациисельскохозяйственного производства. Материалы международной научно-практической конференции. Пенза. 2002. С. 205 207.
  99. Фасулати С. Р, Вилкова H.A., Иващенко JI.C. Видовые и внутриродовые особенности пищевых связей колорадского жука с растениями семейства Solanacea II Комуникация насекомых. Материалы международного симпозиума. Харьков. 1994. С.109- 112.
  100. Э.Е. Молекулярные маркёры в растениеводстве // Сельскохозяйственная биология. 1997. № 5. Р. 3 21.
  101. A.B., Ахунов Э.Д, Вахитов В. А. Секвенирование ДНК. М.: Наука. 1999.429 с.
  102. Ю.А. Гетерозис при чистопородном разведении пчёл // Пчеловодство. 1995. № 2. С. 17 19.
  103. С.С. О некоторых моментах эволюционного процесса с точки зрения современной генетики // Журнал экспериментальной биологии. 1926. Т. 2. № 1.С. 3−54.
  104. Чудинов О. С, Поздняков В. Н, Абрамова А. Б, Какпаков В. Т, Козин Р. Б. Оптимизация RAPD-технологии для изучения генетического полиморфизма ДНК генома различных пород пчел // Сельскохозяйственная биология. 1999. № 6. С. 47 -55.
  105. С.С. Экологические закономерности эволюции. М. Наука. 1980. 278с.
  106. O.A., Голуб В.Б, Баранов A.C. Динамика популяционно-генетической структуры клопа-кружевницы Dictyla humuli Fabr.(Heteroptera, Tingidae) в Усманском бору (Воронежская область) в течение 1999 2000 гг. // Экология. 2004. № 4. С. 317−320.
  107. М.А. Индивидуальное развитие и естественный отбор // Онтогенез. 1984. Т. 15. № 2. С. 115 136.
  108. М.А. Эпигенетическая система как объект селективного преобразования // Морфология и эволюция животных. М.: Наука. 1986. С. 63 74.
  109. И.И. Факторы эволюции. Теория стабилизирующего отбора. М.: Наука. 1968. 450 с.
  110. А. В., Юсуфов А. Г. Эволюционное учение. Учеб. для биол. спец. вузов М.: Высш. шк. 2004. 310 с.
  111. А.В. Популяционная биология. М.: Высшая школа. 1987. 303 с.
  112. .В. Колорадский жук // Рига: Гос.инспек. по карантину с.-х. вредит. МСХ СССР. 1960. 152 с.
  113. Abbot W.B. A method for computing the effectiveness of an insecticide IГ J. Econ. Entomol. 1925. No. 18. P.265 -267.
  114. Alberch P.A. A developmental analysis of an evolutionery trend: A digital reduction in amphibian // Evolution. 1985. Vol. 39. P. 8 23.
  115. Alberch P.A. Ontogent and morphological diversification // Amer. Zool. 1980. Vol. 20. P. 653 -667.
  116. Andrews M.C., Callaghant A., Field L.M., Williamson M.S. and Moores G.D. Identification of mutations conferring insecticide-insensitive AChE in the cotton-melon aphid, Aphis gossypii Glover. // Insect Molecular Biology. 2004. No 13. p. 555 561.
  117. Arduino P., Bullini L., Prota R., Verdinelli M. Genetic variation of the gypsy moth, Lymantria dispar complex (Lepidoptera: Lymantriidae) // 20 Int. Congr. Entomol. Firenze. 1996. P. 509.
  118. Arias M.C., Sheppard W.S. Molecular phylogenetics of honey bee subspecies {Apis mellifera L.) inferred from mitochondrial DNA sequence // Molecular phylogenetics and evolytion. 1996. Vol. 5. No 3. P. 557 566.
  119. Aronstein K., Ode P., ffrench-Constant R. H. Direct comparison of PCR-based monitoring for cyclodiene resistance in Drosophilia populations with insecticide bioassay // Pesticide biochemistry and physiology. 1994. No 48. P. 229 233.
  120. Balachowsky A., Mesnil L.E. Les insectes nuisiblesaux plantes cuclives -Chrysomela decemlineata. Busson. 1936. Vol 2. 781 P.
  121. Barthlett A.C., Randall W.C., May J.E. Allozyme variation among populations of boll weevils in Arizona and Mexico // Southwest. Entomol. 1983. Y. 8. No 2. P. 118−130.
  122. Beadle G.V., Tatum E.L. Genetic control of biochemical reactions in Neurospora // Proc. Nat. Acad. Sci. 1941. No 27. P. 499.
  123. Berlocher S.H., McPheron B.A. Population structure of Rhagolethis pomonella, the apple maggot fly // Heredity. 1996. Vol. 77. No 1. P. 83 99.
  124. Brown J.K., Perring T.M., Cooper A.D., Bedford I.D. and Markham P.G. Genetic analysis of Bemisia (Hemiptera: Aleyrodidae) populations by isoelectric focusing electrophoresis // Biochemical genetics. 2000. Vol. 38. No ½. P. 13−25.
  125. Casteels P., Ampe C., Jacobs F., Yaeck M., Temst P. Apidacin: antibacterial peptides from honebees // The EMBO. 1989. Vol. 8. P. 2387 2391.
  126. Cavalli-Sforza L.L., Bodmer W.F. The genetics of human populations. San Francisco: Freeman. 1971. 962 p.
  127. Chalmers K .J., Waugh J.I., Sprent A.J., Simons. A J. and Powell W. Detection of genetic variation between and within populations of Gliricidia sepium and G. maculata using RAPD markers // Heredity. 1992. No 69. P. 465−472.
  128. Chatterjee S.N., Pradeep A.R. Molecular markers (RAPD) associated with growth, yield and origin of the silkworm, Bombyx mori L. in India // Russian Journal of Genetics. Vol. 39. No. 12. 2003. P. 1365 1377.
  129. Chigagure N.N.,.Baxter G. D, Barker S.C. Microsatellite loci of the cattle tick Boophilus microplus (Acari: Ixodidae) // Experimental and Applied Acaralogy. 2000. No 24. P. 951 -956.
  130. Chittenden F.H. The Colorado potato beetle (Leptinotarsa decemlineata Say) // U.S. Dept. Agr. Bur. Entomol. Circ. 1907. Vol. 87. P. 1−15.
  131. Chomezynski P., Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinum ihiocyanate-phenol-chlorophorm extration //Anal. Biochem. 1987. Vol. 162. P. 156−159.
  132. Cornuet J-M., Fresnave J. and Lavie P. Etude biometrique de deux populations d' abeilles cevenoles // Apidologie. 1978. No 9. P.41−55.
  133. Dobzhansky, Th. Genetics of the Evolutionary Process. New York: Columbia. University Press. 1970. 505 p.
  134. Estoup A., Garnery L., Solignac M. and Cornuet J-M. Microsatellite variation in honey bee (Apis mellifera L.) populations: hierarchical structure and test of the infinite allele and stepwise mutation models // Genetics. 1995. No 140. P. 679−695.
  135. Feyereisen R. Molecular biology of insecticide resistance. II Toxicology letters. 1995. No 82/83. P. 83−90.
  136. Field L.M., Javed N., Stribley M.F. and Devonshire A.L. The peach-potato aphid Myzus persicae and the tobacco aphid Myzus nicotinae have the same esterase-based mechanisms of insecticide resistance // Insect Molecular Biology. 1994. No 3. P. 143 148.
  137. Ford E. B. Problems of Heredity in the Lepidoptera // Biological Reviews. No 12. 1937. P.461−503.
  138. Ford E. Polymorphism and taxonomy // The new systematics, Oxford: Clarendon press. 1940. P. 493−513.
  139. Grapputo A., Boman S., Lindstrom., Lyytinen A., Mappes J. The voyage of an invasive species across continents: genetic diversity of North American and European Colorado potato beetle population // Molecular Ecology. 2005. No 14. P. 4207 4219.
  140. Han Q., Caprio M.A. Evidence from genetic markers suggests seasonal variation in dispersal in Heliothis virescens (Lepidoptera: Noctuidae). // Enviromental entomology. 2004. V.33. Iss.5. P.1223 1231.
  141. Hance T., Neuberg P., Noel-Lastelle C. The use of fecundity, lobe biometry and the RAPD-PCR technique in order to compare strains of Tetranychus sp. // Experimental & Applied Acarology. 1998. V. 22. P. 649−666.
  142. Hawthorne D.J. AFLP-based genetic linkage map of the colorado potato beetle Leptinotarsa decemlineata: sex chromosomes and a pyrethroid-resistanse candidate gene. // Genetics. 2001. No 158. P. 695 700.
  143. He I., Chen A.C., Davey R.B. et al. Identification of a point mutation in the paratype sodium channel gene from a pyrethroid-resistant cattle tick. // Biochem. biophys. res. communications. 1999. No 261. P. 558 561.
  144. Hebert P.D.N., Cywinska A, Ball S.L. and de Waard J.R. Biological identifications throughDNA barcodes // Proc. R. Soc. Lond. B. 2003. 270. P. 313 321.
  145. Helle W. Genetics of resistance to organophosphorus compounds and its relation to diapause in Tetranychus urticae Koch. (Acari). // T. Pl.-ziekten. 1962. V. 63. P. 155 195.
  146. Hick C.A., Field L.M., Devonshire A.L. Changes in the methylation of amplified esterase DNA during loss and reselection of insecticide resistanse in peach-potato aphids, Myzus persicae II Insect. Biochem. Molec. Biol. 1996. No 1. P 41 -47.
  147. Hsiao T.N., Hsiao C. Chromosomal analysis of Leptinotarsa and Labidomera species (Coleoptera, Chrysomelidae) // Genetica. 1983. No 60. P. 139−150.
  148. Jamros R.C., Guerrero F.D., Pruett J.H., et al. Molecular and biochemical survey of acaricide resistance mechanism in larvae from mexican strains of the southern cattle tick, Boophilus microplus. II J. insect physiol. 2000. No 46. P. 685 695.
  149. Johannsen W. Elemente der exakten Erblichkeitslehre. Jena: G.Fischer. 1909.516 z.
  150. Kain D.E., F.A.H.Sperling and R.S.Lane. Population genetic structure of Ixodes pacificus (Acari: Ixodidae) uzing allozymes // J. Med. Entomol. 1997. No 34. P. 441−450.
  151. Ke Dong. A single amino acid change in the para sodium channel protein is associated with knockdown-resistance (kdr) to pyrethroid insecticides in German cockroach. Insect. //Biochem. Molec. Biol. 1997. No 2. P. 93 100.
  152. Kettlewell H.B.D. Darwin’s Missing Evidence // Scientific American. 1959. Vol. March. P .48−53
  153. Komazaki S, Osakabe Mh. Discrimination of different clones of Aphis gossypii glover (Homoptera: Aphidae) by RAPD-PCR // 20 Inf. Congr.Entomol. Fierenze, Aug. 25−31, 1996: Proc. Fierenze, 1996. P.245.
  154. Krafsur E.S. Allozyme gene diversities in some leaf beetles (Coleoptera: Chrysomelidae) // Biochemical genetics. 1999. V.37. No.718. P. 215−226.
  155. Magnus, D.B.E. Experimental analysis of the Fritillary butterfly Argynnis paphia L. (Nymphalidae) // Proc. 10th internat. Cong. Entomol. 1958. V.2. P. 405−408.
  156. Messier S. and Mitton J.B. Heterozygositi at the malate dehydrogenase locus and developmental homeostasis in Apis mellifera // Heredity. 1996. V.76. P.616−622.
  157. Mutero A., Pralovorio M., Bride J.M. and Fournier D. Resistance-associated point mutations in insecticide-insensitive acetylcholinesterase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. No 91. P.5922- 5926.
  158. Nabours R. K., Larson I., and Hartwig N. Inheritance of Color Patterns in the Grouse Locust Acrydium arenosum Burmeister. (Tettigidae) // Genetics. 1933. V.18. P. 159−171.
  159. Nomura M., Kato Y. Allozyme survey on populations of Eurema hecabe L. from Japanese main and southwest Islands (Lepidoptera: Pieridae) // 20 Int. Congr. Entomol., Firenze, Aug. 25−31,1996: Proc. Firenze, 1996. P. 261.
  160. Obrycki J.J., Krafsur E.S., Bogran C.E., Gomes L.E.and CaveR.E. Comparative studies of three populations of the lady beetle predator Hippodamia convergens (Coleoptera: Coccinellidae) // Florida entomologist. 2001. V.84 No 1. P. 55−62.
  161. Orengo D.J., Paraceit M. and Juan E. A minisatellite with fold-back structure in included in the 5'-flanking region of the Adh gene of Scaptodrosophilia lebanonensis II Journal of Heredity. 2004. V.95. P. 62−69.
  162. Paar J., Huettinger B.P. and Kastberger G. Genetic structure of an Apis dorsata population: the significance of migration and clony aggregation // Journal of Heredity. 2004. No. 95. P. 119−126.
  163. Packer L., Owen R.E. Variable enzyme systems in the Hymenoptera //, Biochemikal Systematics and Ecology. 1992. V. 20. P. 1−7.
  164. Pamilo P., Varvio-Aho S. and Pekkarinen A. Low enzyne gene variability in Hymenoptera as a consequence of haplodiploidy // Hereditas. 1987. V.88. P. 93−99.
  165. Park Y., Taylor M.F.J. A novel mutation L1029H in sodium channel gene hscp associated with pyrethroid resistance for Heliothis virescens (Lepidoptera: Noctuidae). // Insect. Biochem. Molec. Biol. 1997. No. 1. P. 9 13.
  166. Pauken, R.J., Metter D.E. Geographic representation of morphologic variation among populations of Ascaphus truei Stejneger. // Systematic Zoology. 1971. V. 20. No 4.P. 434−441.
  167. Powell J.R. Progress and prospects in evolutionary biology: the drosophila model. Oxford: Oxford Univ.press. 1997. 562 p.
  168. Powell J.R. The founder-flush speciation theory: An experimental approach // Evolution. 1978. V. 32. P. 465−474.
  169. Remington, C. L. The genetics of Colias (Lepidoptera). Advances in Genetics. // Genetics. 1953. No. 38. P. 65−72.
  170. Roderick G.K. Geographic structure of insect populations: gene flow, phylogeography, and their uses // Ann. Rev. Ent. 1996. No 41. P. 325−352.
  171. Roff D.A., Bentzen P. The statistical analysis of mitochondrial DNA: x2 and problem of smail samples // Mol. Biol. Evol. 1989. V.6. P. 539 545.
  172. Saiki R.K., Gelfand D.H., Stoffel S., Scharf S., Higuchi R., Horn, G.T., Mullis K.B., Erlich H.A. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase // Science. 1988.V.239. P.487 491.
  173. Scarpassa V.M. and Hamada N. Isozyme variation in four species of the Simulium perflavum species group (Diptera: Simuliidae) from the Brazilian Amazon // Genetics and molecular biology. 2003. V.26. No 1. P. 39−46.
  174. Schulten G.G.M. Genetics of organophosphate resistance in the two-spotted spider mite (Tetranychus urticae Koch.). Koninklijk Instituut Voor de Tropen, Amsterdam. 1968. P. 1−57.
  175. Seeley T.D. Honeybee ecology: a study of adaption in social life. Princeton, NJ, Princeton University Press, 1985. 276 p.
  176. Seifert J., Scott G. The CYP6Dlvl allele is associated with pyrethroid resistance in the house fly, Musca domestica // Pesticide biochemistry and physiology. 2002. No 72. P. 40−44.
  177. Shao Z-Y., Mao H-X., Fu W-J., Ono M., Wang D-S., Bonizzoni M. and Zhang Y-P. Genetic structure of asian population of Bombus ignitus (Hymenoptera: Apidae) // Journal of Heredity. 2004. No 95. P.46−52.
  178. Sheppard W.S.and Berlocher S.H. Enzyme polymorphism in Apis mellifera from Norway // Journal of apicultural research. 1984. V.23. No 2. P. 64 69.
  179. Sihanuntavong D., Sittipraneed S., Klinbunga S. Mitochondrial DNA diversity and population structure of the honey bee, Apis cerana, in Thailand // Journal of Apicultural Research. 1999. No 38 (3−4). P. 211 219.
  180. Sittipraneed S, Sihanuntavong D, Klinbunga S. Genetic differentiation of the honey bee (Apis cerana) in Thailand revealed by polymorphism of a large subunit of mitochondrial ribosomal DNA // Insectes sociaux. 2001. No 48.P. 266 272.
  181. Slankovic S, Zabel A, Kostic M, Manojovic B, Rajkovic S. Colorado potato beetle Leptinotarsa decemlineata (Say). resistance to organophosphates and carbamates in Serbia//J.Pest.Sci. 2004. No 77. P. 11−15.
  182. Smith D. R, Palopoli M. F, Taylor B. R, Garnery L. et al. Geographical overlap of two mitochondrial genomes in Spanish honeybees (Apis mellifera iberica) // Journal of Heredity. 1991. No 82. P. 96−100.
  183. Soul M. The epistasis cycle: A theory of marginal populations // Annual Review of Ecology and Systematics. 1973. V.4. P. 165−187.
  184. Steichen J. C, ffrench-Constant R.H. Amplification of specific cyclodiene insecticide resistance alleles by the polymerase chain reaction. // Pesticide biochemistry and physiology. 1994. No 48. P. 1 7.
  185. Stumpf N, Nauen R. Biochemical markers linked to abamectin resistance in Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae) // Pesticide biochemistry and physiology. 2002. No 72. P. 111−121.
  186. Thacker J.R.M. An introduction to Arthropod Pest Control. Cambrige: Cambrige university press. 2002. 343 p.
  187. The Database of Arthropods Resistant to Pesticides, http ://www.pesticideresistance. org
  188. Tower W.L. An investigation of evolution in Chrysomelid beetles of the genus Leptinotarsa // Publ. Carnegie Inst. Wash. 1906. No 48. 320 p.
  189. Vais H, Willamson M. S, Hick C. A, Eldursi N, et al. Functional analysis of a rat sodium channel carrying a for insect knock-down resistance (kdr) to pyrethroids // FEBS Letters. 1997. No 413. P. 327 332.
  190. Valles S.M., Ke Dong, Brenner R.J. Mechanism responsible for cypermethrin resistance in a strain of german cockroach, Blattella germanica. II Pesticide biochemistry and physiology. 2000. No 66. P.195 205.
  191. Vaughan A., Rocheley T. and ff-Constant R. Site-directed mutagenesis of an acetylcholinesterase gene from the yellow fever mosquito Aedes aegypti confers insecticide insensitivity. 11 Exp. parasitol. 1997. No 87. P. 237 244.
  192. Villat F., Zilani Ph., Marcel V. et al. A high number of mutations in insect acetylcholinesterase may provide insecticide resistance. // Pesticide biochemistry and physiology. 2000. No 67. P. 95 102.
  193. Waddington C.H. The strategy of the genes: A discussion on some aspects of theoretical biology. L.: Allen and Unwin. 1957. 262 p.
  194. Whalon M.E., Miller D.L., Hollingworth R.M. et al. Selection of a Colorado Potato Beetle (Coleoptera: Chrysomelidae) Strain Resistant to Bacillus thuringiensis II Journal of Economic Entomology. 1993. V.86. No 2. P. 226−233.
  195. White, M.J.D., Chinnick L.J. Cytogenetics of the grasshopper Moraba scurra, III. Distribution of the 15- and 17- chromosome races // Aust. J. Zool. 1957. No 5. P. 338−347.
  196. Williams J.G.K., Hanafey M.K., Rafalsky J.A., Tingey S.V. Genetic analysis using random amplified polymorphic DNA markers: Methods in Enzymology // Recombinant DNA. San Diego: Academic press. 1993. Vol. 86. P. 68 77.
  197. Williamson M. Data presented at ACS special conference of pesticide resistance //Mol. Gen. Genet 1995. No 238. P. 35−41.
  198. Williamson M.S., Martin-Torrez D., Hick C.A. Devonshire A.L. Identification of mutations in the housefly para-type sodium channel gene associated with knockdown resistance (kdr) to pyrethroid insecticides. // Mol. Gen. Genet. 1996. No 252. P. 51 60.
  199. Wright S. The genetical structure of populations // Ann. Eugenics. 1951. V. 15. P. 323 -354.
  200. Zhu K.Y., Clark J.M. Comparison of kinetic properties of acetylcholinesterase purified from azinphosmethyl-susceptible and resistant strains of Colorado potato beetle. // Pest, biochem. physiol. 1995. No 51. P. 57 67.
  201. Zhu K.Y. Clark J.M. Validation of a point mutation of acetylcholinesterase in Colorado potato beetle by polymerase chain reaction coupled to enzyme inhibition assay. // Pesticide biochemistry and physiology. 1997. No 57. P. 28 35.
  202. Zhu Y.K., Clark J.M. Cloning and sequensing of a cDNA encoding acetylcholinesterase in Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata (Say) // Insect. Biochem. Molec. Biol. 1995. No 10. P. 1129 1138.
  203. Zhu Y.K., Lee S.H., Clark J.M. A point mutation of acetylcholinesterase associated with azinphosmethyl resistance and reduced fitness in Colorado potato beetle // Pesticide biochemistry and physiology. 1996. No 55. P. 100 108.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!